PLAGIAT MERUPAKAN TINDAKAN TIDAK TERPUJI

PLAGIAT PLAGIATMERUPAKAN MERUPAKANTINDAKAN TINDAKANTIDAK TIDAKTERPUJI TERPUJI

UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN MENGGUNAKAN METODE DEOKSIRIBOSA DAN PENETAPAN KANDUNGAN FENOLIK TOTAL PADA FRAKSI ETIL ASETAT EKSTRAK ETANOL BUAH JAMBU METE ( Anacardium occidentale L. )

SKRIPSI Diajukan untuk Memenuhi Salah Satu Syarat Memperoleh Gelar Sarjana Farmasi (S.Farm.) Program Studi Farmasi

Oleh: Yoanes Kapistran Ervan Prasetio Kusumanto NIM : 118114096

FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SANATA DHARMA YOGYAKARTA 2015


UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN MENGGUNAKAN METODE DEOKSIRIBOSA DAN PENETAPAN KANDUNGAN FENOLIK TOTAL PADA FRAKSI ETIL ASETAT EKSTRAK ETANOL BUAH JAMBU METE ( Anacardium occidentale L. )

SKRIPSI Diajukan untuk Memenuhi Salah Satu Syarat Memperoleh Gelar Sarjana Farmasi (S.Farm.) Program Studi Farmasi

Oleh: Yoanes Kapistran Ervan Prasetio Kusumanto NIM : 118114096

FAKULTAS FARMASI UNIVERSITAS SANATA DHARMA YOGYAKARTA 2015

i


ii


iii


iv


v


PRAKATA Puji syukur penulis panjatkan kepada Tuhan atas berkat dan bimbinganNya penulis dapat menyelesaikan Skripsi yang berjudul “Uji Aktivitas Antioksidan Menggunakan Metode Deoksiribosa Dan Penetapan Kandungan Fenolik Total Pada Fraksi Etil Asetat Ekstrak Etanol Buah Jambu Mete (Anacardium occidentale L.)” ini dengan baik. Skripsi ini disusun untuk memenuhi salah satu syarat memperoleh gelar Sarjana Strata Satu Program Studi Farmasi, Fakultas Farmasi, Universitas Sanata Dharma. Penulis mengalami berbagai macam kesulitan dan masalah dalam proses pengerjaan Skripsi ini. Kesulitan dan masalah ini dapat diatasi penulis dengan bantuan dari segala pihak. Oleh karena itu penulis hendak mengucapkan terima kasih kepada : 1.

Aris Widayati, M.Si., Ph.D.., Apt., selaku Dekan Fakultas Farmasi Universitas Sanata Dharma

2.

Yohanes Dwiatmaka, M.Si., selaku Dosen Pembimbing dan Dosen Penguji Skripsi atas segala kesabaran dan masukan sehingga Skripsi ini dapat diselesaikan dengan baik.

3.

Prof. Dr. C.J. Soegihardjo, Apt., selaku Dosen Penguji Skripsi atas masukkan, kritik, dan saran kepada penulis dalam penyusunan Skripsi ini.

4.

Dr. Erna Tri Wulandari, M.Si., Apt., selaku Dosen Penguji Skripsi atas masukkan, kritik, dan saran kepada penulis dalam penyusunan Skripsi ini.

5.

Agustina Setiawati, M.Sc., Apt., selaku Kepala Laboratorium Fakultas Farmasi yang telah memberikan izin dalam penggunaan laboratorium.

6.

Pak Wagiran selaku Laboran Laboratorium Farmakognosi - Fitokimia, Pak Suparlan selaku Laboran Laboratorium Kimia Organik, Mas Kunto selaku Laboran Laboratorium Kimia Analisis, Mas Sigit selaku Laboran Kebun

vi


Tanaman Obat atas segala bantuan dan kerja samanya selama proses penelitian. 7.

Keluarga

yang

selalu

memotivasi

dan

mendukung

penulis

dalam

menyelesaikan Skripsi ini. 8.

Rose Verginie Erita, selaku sahabat dan orang tersayang dari penulis yang selalu memberikan kasih sayang dan semangat untuk kesuksesan penulis dalam Skripsi ini.

9.

I Putu Abhiseka Pranajaya, selaku teman seperjuangan dalam menyelesaikan Skripsi ini.

10. Teman-teman FST A 2011, FSM C 2011 dan teman-teman Fakultas Farmasi Sanata Dharma angkatan 2011 yang selalu memberikan dukungan dan semangat dalam penyusunan Skripsi ini. 11. Semua pihak yang telah membantu dan memberikan dukungan yang tidak dapat disebutkan satu per satu. Penulis menyadari bahwa Skripsi ini masih memiliki kekurangan dalam berbagai macam hal. Untuk itu penulis mengharapkan kritik dan saran yang membangun dari segala pihak. Semoga Skripsi ini dapat berguna bagi seluruh pembaca.

Yogyakarta, 18 Juni 2015

Penulis

vii


DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL...................................................................................

i

HALAMAN PERSETUJUAN PEMBIMBING .........................................

ii

HALAMAN PENGESAHAN .....................................................................

iii

PERNYATAAN KEASLIAN KARYA .....................................................

iv

PERNYATAAN PERSETUJUAN PUBLIKASI .......................................

v

PRAKATA ..................................................................................................

vi

DAFTAR ISI ...............................................................................................

viii

DAFTAR TABEL .......................................................................................

xi

DAFTAR GAMBAR ..................................................................................

xii

DAFTAR LAMPIRAN ...............................................................................

xiii

INTISARI....................................................................................................

xv

ABSTRACT ..................................................................................................

xvi

BAB I PENGANTAR .................................................................................

1

A. Latar Belakang .......................................................................................

1

B. Permasalahan ..........................................................................................

3

C. Keaslian Penelitian .................................................................................

3

D. Manfaat Penelitian ..................................................................................

4

E. Tujuan Penelitian ....................................................................................

4

BAB II PENELAAHAN PUSTAKA..........................................................

6

A. Jambu Mete ............................................................................................

6

B. Senyawa Fenolik ....................................................................................

8

C. Metode Folin-Cioucalteu ........................................................................

9

viii


D. Radikal Bebas .........................................................................................

10

E. Antioksidan ............................................................................................

11

F. Metode Deoksiribosa ..............................................................................

13

G. Ekstraksi .................................................................................................

14

H. Spektrofotometri .....................................................................................

17

I. Landasan Teori .......................................................................................

18

J. Hipotesis .................................................................................................

20

BAB III METODE PENELITIAN..............................................................

21

A. Jenis dan Rancangan Penelitian .............................................................

21

B. Variabel ..................................................................................................

21

C. Definisi Operasional ...............................................................................

21

D. Bahan dan Alat Penelitian ......................................................................

22

1. Bahan penelitian ...............................................................................

22

2. Alat penelitian ..................................................................................

22

E. Tatacara Penelitian .................................................................................

23

1. Determinasi tanaman ........................................................................

23

2. Pengumpulan buah jambu mete .......................................................

23

3. Preparasi buah jambu mete...............................................................

23

4. Penetapan kandungan fenolik total...................................................

25

5. Uji aktivitas antioksidan ...................................................................

27

F. Analisis Data ..........................................................................................

33

1. Penetapan kandungan fenolik total...................................................

33

2. Aktivitas penangkapan radikal hidroksil ..........................................

33

ix


BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ....................................................

35

A. Hasil Determinasi Tanaman ...................................................................

35

B. Hasil Pengumpulan Tanaman .................................................................

35

C. Hasil Preparasi Buah Jambu Mete..........................................................

37

1. Hasil pembuatan serbuk simplisia ....................................................

37

2. Hasil proses ekstraksi .......................................................................

38

3. Hasil proses fraksinasi ......................................................................

39

D. Hasil Uji Kualitatif .................................................................................

40

1. Hasil uji kualitatif senyawa fenolik ..................................................

40

2. Hasil uji kualitatif aktivitas antioksidan ...........................................

41

E. Hasil Optimasi Metode Uji Fenolik Total ..............................................

43

1. Penentuan operating time .................................................................

43

2. Penentuan panjang gelombang maksimum ......................................

44

F. Penetapan Kandungan Fenolik Total .....................................................

45

G. Hasil Optimasi Metode Uji Aktivitas Antioksidan ................................

48

1. Penentuan operating time .................................................................

48

2. Penentuan panjang gelombang maksimum ......................................

49

H. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan .............................................................

50

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN ......................................................

56

A. Kesimpulan .............................................................................................

56

B. Saran .......................................................................................................

56

DAFTAR PUSTAKA .................................................................................

57

LAMPIRAN ................................................................................................

60

BIOGRAFI PENULIS ................................................................................

89

x


DAFTAR TABEL Halaman Tabel I.

Hasil scanning panjang gelombang maksimum untuk penentuan fenolik total...........................................................

45

Tabel II.

Hasil pengukuran absorbansi kurva baku asam galat ............

47

Tabel III.

Hasil penetapan kandungan fenolik total fraksi etil asetat buah jambu mete ..........................................................

48

Tabel IV.

Hasil penentuan operating time uji aktivitas antioksidan ......

49

Tabel V.

Hasil scanning panjang gelombang maksimum untuk uji aktivitas antioksidan .........................................................

Tabel VI.

Tabel VII.

50

Hasil pengukuran absorbansi fraksi etil asetat buah jambu mete .............................................................................

52

Hasil aktivitas antioksidan fraksi etil asetat buah jambu mete

52

Tabel VIII. Hasil pengukuran absorbansi rutin ........................................

53

Tabel IX.

54

Hasil uji aktivitas antioksidan rutin .......................................

xi


DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 1.

Struktur dasar asam fenolat dan flavonoid ............................

9

Gambar 2.

Buah jambu mete ...................................................................

36

Gambar 3.

Reaksi oksidasi polifenol oleh enzim polifenol oksidase (PPO) .....................................................................................

Gambar 4.

38

Hasil uji kualitatif senyawa fenolik pada fraksi etil asetat buah jambu mete ....................................................................

41

Gambar 5.

Reaksi pembentukan kromogen MDA-TBA .........................

42

Gambar 6.

Hasil uji kualitatif aktivitas antioksidan pada fraksi etil asetat buah jambu mete ..........................................................

Gambar 7.

43

Grafik operating time (replikasi 1) untuk penetapan fenolik total ............................................................................

44

Gambar 8.

Struktur asam galat ................................................................

46

Gambar 9.

Kurva baku asam galat untuk penetapan kandungan fenolik total ............................................................................

xii

47


DAFTAR LAMPIRAN Halaman Lampiran 1.

Surat determinasi tanaman ..................................................

Lampiran 2.

Gambar tanaman jambu mete di desa Karangtengah,

61

Imogiri, Bantul ....................................................................

62

Lampiran 3.

Perhitungan rendemen ekstrak dan fraksi............................

64

Lampiran 4.

Data penimbangan untuk penetapan kandungan fenolik total 65

Lampiran 5.

Data perhitungan konsentrasi asam galat dan fraksi etil asetat untuk penetapan kandungan fenolik total ............................

Lampiran 6.

Hasil optimasi operating time untuk penetapan kandungan fenolik total ..........................................................................

Lampiran 7.

68

Optimasi panjang gelombang maksimum untuk penetapan kandungan fenolik total .......................................................

Lampiran 8.

66

70

Hasil pengukuran kurva baku untuk penetapan kandungan fenolik total ..........................................................................

73

Perhitungan kandungan fenolik total fraksi etil asetat ........

74

Lampiran 10. Perhitungan konsentrasi bahan untuk metode deoksiribosa

75

Lampiran 9.

Lampiran 11. Penimbangan dan perhitungan konsentrasi fraksi etil asetat untuk pengukuran aktivitas antioksidan ..............................

77

Lampiran 12. Penimbangan dan perhitungan konsentrasi rutin untuk pengukuran aktivitas antioksidan ........................................

79

Lampiran 13. Optimasi operating time metode deoksiribosa ....................

81

Lampiran 14. Optimasi panjang gelombang maksimum metode Deoksiribosa ........................................................................

xiii

82


Lampiran 15. Hasil pengukuran absorbansi dan perhitungan aktivitas antioksidan rutin ..................................................................

85

Lampiran 16. Hasil pengukuran absorbansi dan perhitungan aktivitas antioksidan fraksi etil asetat ................................................

xiv

87


INTISARI Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui seberapa besar aktivitas antioksidan dan kandungan fenolik total yang terdapat dalam fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete (Anacardium occidentale L.). Tanaman ini diduga memiliki kandungan senyawa fenolik terutama senyawa golongan flavonoid yang merupakan salah satu golongan senyawa dengan sifat sebagai antioksidan. Pengukuran aktivitas antioksidan dilakukan dengan metode deoksiribosa dan penetapan kandungan fenolik total dilakukan dengan metode Folin-Ciocalteu. Metode deoksiribosa didasarkan pada pendegradasian deoksiribosa oleh radikal hidroksil yang dihasilkan dari sistem Fenton. Hasil degradasi berupa malonaldehida ketika direaksikan dengan TBA pada pH rendah akan menghasilkan kromogen berwarna merah muda. Kromogen yang dihasilkan selanjutnya dibaca serapannya dengan spektrofotometer. Data yang diperoleh kemudian diolah sehingga menghasilkan nilai IC25. Metode Folin-Ciocalteu didasarkan pada reduksi asam fosfotungstat dalam larutan alkali menjadi fosfotungstat biru. Senyawa berwarna yang terbentuk kemudian diukur serapannya menggunakan spektrofotometer. Nilai serapan yang diperoleh sebanding dengan jumlah senyawa fenolik yang terdapat dalam sampel. Berdasarkan hasil penelitian ini, fraksi etil asetat buah jambu mete mempunyai kandungan fenolik total sebesar 339,3 ± 13,1 mg ekivalen asam galat. Nilai IC25 yang diperoleh pada fraksi etil asetat buah jambu mete sebesar 285,4 ± 17,9 µg/mL, sedangkan nilai IC25 rutin sebagai kontrol positif sebesar 18,9 ± 1,2 μg/mL.

Kata kunci : Jambu mete, Anacardium occidentale L., Antioksidan, Fenolik Total, Metode Deoksiribosa, Metode Folin-Ciocalteu.

xv


ABSTRACT The purpose of this study was to determine how much antioxidant activity and total phenolic content in ethyl acetate fraction ethanolic extract of cashew apple (Anacardium occidentale L.). This plant is thought to contain phenolic compounds, especially flavonoids which is one of the compounds with antioxidant properties. Antioxidant activity was measured by deoxyribose method and determination of total phenolic content was measured by Folin-Ciocalteu method. Deoxyribose method is based on the degradation of deoxyribose by hydroxyl radicals generated from Fenton system. Degradated deoxyribose will produce malonaldehyde (MDA). When MDA reacted with TBA at low pH will produce pink chromogen. The chromogen absorption was measured with a spectrophotometer. The data obtained are then processed to produce IC25 value. Folin-Ciocalteu method based on the reduction phosphotungsten acid in alkaline solution becomes blue phosphotungsten. Absorbance of colored compound was measured using spectrophotometer. Uptake value obtained is proportional to the amount of phenolic compounds contained in the sample. Based on these results, the ethyl acetate fraction of cashew apple has a total phenolic content of 339.3 ± 13.1 mg Gallic Acid Equivalents (GAE). IC25 of ethyl acetate fraction were obtained for 285.4 ± 17.9 μg/mL. While IC25 of rutin as a positive control was 18.9 ± 1.2 μg / mL. Keywords : Cashew apple, Anacardium occidentale L., antioxidant, total phenolics, deoxyribose method, Folin-Cioucalteu method.

xvi


BAB I PENGANTAR

A. Latar Belakang Radikal bebas terbentuk melalui suatu reaksi oksidasi. Radikal bebas yang terbentuk memiliki reaktivitas yang tinggi sehingga dapat menyebabkan kerusakan sel. Kerusakan oksidatif yang ditimbulkan karena terpapar radikal bebas dapat menyebabkan penuaan dan beragam penyakit seperti arterosklerosis, diabetes, sirosis, dan kanker (Aruldoss and Thangavel, 2011). Kerusakan yang disebabkan oleh radikal bebas dapat dihambat oleh antioksidan. Antioksidan merupakan senyawa pemberi elektron atau reduktan. Antioksidan menghambat suatu radikal bebas dengan cara bereaksi dengan radikal bebas reaktif membentuk radikal bebas tak reaktif dan relatif stabil (Fessenden dan Fessenden, 1982). Tubuh secara alami memiliki antioksidan untuk membatasi kerusakan yang disebabkan oleh radikal bebas. Salah satu contoh antioksidan alami yang terdapat pada tubuh adalah enzim superoxyde dismutase (SOD). Antioksidan dalam tubuh jumlahnya cukup terbatas, oleh karena itu dibutuhkan asupan antioksidan tambahan dari luar tubuh. Sumber antioksidan dapat berasal dari alam maupun sintetik. Antioksidan sintetik

menunjukkan

adanya

potensi

sebagai

agen

penyebab

kanker

(karsinogenik). Beberapa antioksidan sintetik menunjukkan dampak yang merugikan pada kesehatan, meskipun tidak beracun pada tingkat yang biasa digunakan, tetapi antioksidan sintetik terlibat dalam menimbulkan beberapa penyakit, misalnya kanker. Antioksidan sintetik seperti butylated hydroxyanisole

1


2

(BHA) dan butylated hydroxytoluene (BHT) belakangan diketahui berbahaya bagi kesehatan manusia. Oleh karena hal tersebut penelitian terkait bahan alam yang efektif, tidak toksik, dan memiliki aktivitas sebagai antioksidan semakin gencar dilakukan (Gupta and Sharma, 2006). Antioksidan yang berasal dari alam dapat diperoleh dari buah dan sayuran. Jambu mete merupakan salah satu sumber antioksidan yang potensial. Hasil penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012) menunjukkan bahwa jus buah jambu mete memiliki kandungan fenolik total sebesar 1653,8 ± 2,3 sampai 2374,2 ± 5,4 mg/L dan kandungan flavonoid total sebesar 298,6 ± 1,5 sampai 479,8 ± 2,6 mg/L. Senyawa fenolik termasuk juga flavonoid memiliki aktivitas sebagai antioksidan yang mampu menangkal radikal bebas. Untuk mengukur seberapa besar kandungan fenolik total dan aktivitas antioksidan dalam suatu sampel diperlukan suatu metode uji. Metode uji yang sering digunakan untuk penentuan kandungan fenolik total adalah metode Folin – Cioucalteu. Metode ini merupakan metode sederhana yang berguna untuk karakterisasi sampel (Prior et al., 2005). Untuk mengukur aktivitas antioksidan, salah satu metode yang dapat digunakan adalah metode deoksiribosa. Metode deoksiribosa merupakan metode sederhana dan murah serta mampu memberikan hasil yang sama dan akurat (Halliwell, 1987). Metode deoksiribosa dapat memberikan gambaran bagaimana radikal hidroksil dapat merusak salah satu unsur DNA. Radikal bebas yang dihasilkan pada metode deoksiribosa, yaitu radikal hidroksil yang memiliki reaktivitas lebih tinggi (Valko et al., 2006) dibandingkan dengan radikal bebas lainnya seperti DPPH.


3

B. Permasalahan 1. Berapakah kandungan fenolik total pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete dalam massa ekivalen asam galat yang diukur dengan metode Folin - Ciocalteu? 2. Berapakah nilai aktivitas antioksidan pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete dalam nilai IC25 yang diukur dengan metode deoksiribosa?

C. Keaslian Penelitian Sejauh

pengetahuan

penulis,

penelitian

mengenai

uji

aktivitas

antioksidan menggunakan metode deoksiribosa dan penetapan kandungan fenolik total pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete belum pernah dilakukan. Penelitian lain terkait dengan penelitan ini antara lain: 1. Penelitian yang dilakukan oleh Jaiswal et al. (2010). Pada penelitian Jaiswal et al. (2010) dilakukan penetapan kandungan fenolik total dan pengujian aktivitas antioksidan pada ekstrak daun jambu mete dengan metode DPPH. Perbedaan antara penelitian ini dengan penelitian Jaiswal et al. (2010) terletak pada bagian tanaman yang digunakan dan metode uji aktivitas antioksidan yang digunakan. Hasil pada penelitian Jaiswal et al. (2010) menunjukkan bahwa ekstrak etanol daun jambu mete memiliki kandungan fenolik total sebesar 40,26 mg ekivalen asam galat dan aktivitas antioksidan yang dinyatakan dalam IC50 sebesar 9,41 μg/mL.


4

2. Penlitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012). Pada penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012) dilakukan pengujian terkait dengan kandungan fenolik total, flavonoid total, dan pengujian terkait profil senyawa fenolik yang ada pada jus buah jambu mete. Hasil pada penelitian Adou et al. (2012) menunjukkan jus buah jambu mete memiliki kandungan fenolik total sebesar 1653,8 ± 2.3 sampai 2374,2 ± 5.4 mg/L dan kandungan flavonoid total sebesar 298,6 ± 1,5 sampai 479,8 ± 2,6 mg/L. Senyawa fenolik yang terdeteksi antara lain kuersetin, naringenin, asam kafeat, asam kumarat, asam ferulat, dan asam galat. D. Manfaat Penelitian 1. Manfaat teoritis : penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi mengenai aktivitas antioksidan pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete yang diukur dengan metode deoksiribosa. 2. Manfaat praktis : penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi tentang aktivitas antioksidan yang terdapat pada jambu mete sehingga dapat dimanfaatkan untuk meningkatkan pertahanan tubuh manusia dari radikal bebas. E. Tujuan Penelitian 1. Tujuan umum : menguji aktivitas antioksidan dengan metode deoksiribosa dan menetapkan kandungan fenolik total menggunakan metode Folin – Ciocalteu pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete.


5

2. Tujuan khusus : a. Mengetahui nilai kandungan fenolik total pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete. b. Mengetahui nilai aktivitas antioksidan dengan metode deoksiribosa yang dinyatakan dengan nilai IC25 pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete.


BAB II PENELAAHAN PUSTAKA

A. Jambu Mete Menurut United States Depatement of Agriculture (USDA), tanaman jambu mete diklasifikasikan sebagai berikut. Kerajaan

: Plantae

Subkerajaan

: Tracheobionta

Superdivisi

: Spermatophyta

Divisi

: Magnoliophyta

Kelas

: Magnoliopsida

Subkelas

: Rosidae

Bangsa

: Sapindales

Keluarga

: Anacardiaceae

Marga

: Anacardium L.

Jenis

: Anacardium occidentale L.

Tanaman jambu mete memiliki nama ilmiah yaitu Anacardium occidentale L. dan memiliki sinonim Acajuba occidentalis atau Cassuvium pomiferum. Tanaman jambu mete memiliki nama yang berbeda di beberapa negara, contohnya maranon, cajuil, merey (Spanyol), caju (Portugal), acaju (Perancis). Tanaman jambu mete merupakan tanaman buah berupa pohon yang berasal dari Brazil. Penyebaran tanaman jambu mete cukup luas pada daerah tropis dan subtropis, salah satunya adalah Indonesia. Jambu mete tersebar di seluruh Indonesia dengan nama berbeda-beda, contohnya jambu erang (Sumatera

6


7

Barat), gayu (Lampung), jambu mede (Jawa Barat), jambu monyet (Jawa Tengah dan Jawa Timur), jambu jipang atau jambu dwipa (Bali), dan buah yaki (Sulawesi Utara) (Prihatman, 2000). Pada umumnya, tanaman jambu mete merupakan tanaman yang lebat, bercabang rendah dan menyebar. Tingginya dapat mencapai 10,6 meter. Daunnya berbentuk lonjong atau bulat telur, panjangnya berkisar antara 10-20 cm dan lebarnya antara 5-10 cm. Bunga dari tanaman ini berwarna merah muda kekuningan, dengan jumlah kelopak 5 (Morton, 1987). Jambu mete termasuk tumbuhan dikotil yang dapat tumbuh di daerah kering atau panas maupun daerah subur yang mempunyai ketinggian 100 meter diatas permukaan laut. Bagian buahnya yang membesar, berdaging lunak, berarir dan berwarna kuning kemerah merahan adalah buah semu. Bagian itu bukan buah sebenarnya, tetapi merupakan tangkai buah yang membesar. Buah jambu mete sejati merupakan buah batu yang berbentuk ginjal dengan kulit keras (Thomas, 2012). Beberapa penelitian tentang jambu mete menyatakan bahwa buah jambu mete memiliki kandungan senyawa fenolik yang berlimpah, khususnya senyawa – senyawa flavonoid yang memiliki aktivitas antioksidan. Adou et al. (2012) menyebutkan bahwa buah jambu mete memiliki kandungan fenolik total sebesar 1653,8 ± 2,3 sampai 2374,2 ± 5,4 mg/L dan kandungan flavonoid total sebesar 298,6 ± 1,5 sampai 479,8 ± 2,6 mg/L. Senyawa fenolik yang terdapat pada jus buah jambu mete antara lain kuersetin, naringenin, asam kafeat, asam kumarat, asam ferulat, dan asam galat.


8

B. Senyawa Fenolik Tumbuhan merupakan sumber makanan yang kaya akan senyawa fenolik. Senyawa fenolik ini merupakan molekul yang dapat bertindak sebagai antioksidan untuk mencegah penyakit jantung, mengurangi peradangan, menurunkan kejadian kanker dan diabetes, serta mengurangi tingkat mutagenesis pada sel manusia. Perlindungan yang diperoleh dari mengonsumsi produk tanaman seperti buah-buahan, sayuran dan kacang-kacangan sebagian besar terkait dengan adanya senyawa fenolik pada tanaman tersebut (Khoddami et al., 2013). Senyawa fenolik dapat memberikan perlindungan sebagai antioksidan dikarenakan senyawa fenolik dapat bereaksi dengan reactive oxygen species (ROS) dan menghilangkan aktivitas radikalnya sehingga tidak berbahaya lagi terhadap sel tubuh manusia (Sochor, 2010). Secara umum senyawa fenolik merupakan zat atau senyawa yang mengandung satu atau lebih cincin aromatik dengan satu atau lebih gugus hidroksil yang menempel. Senyawa fenolik dapat diklasifikasikan menjadi tiga kategori utama, yaitu (1) fenol sederhana yang meliputi asam fenolik, (2) polifenol yang dibentuk oleh flavonoid dan tanin, (3) macam-macam kelompok lainnya yang terdiri dari senyawa seperti kumarin, stilben dan lignan (Vermerris dan Nicholson, 2006). Asam fenolik adalah salah satu kelas fenolik utama, biasanya berbentuk ester, glikosida atau amida. Variasi asam fenolik terletak pada jumlah dan lokasi dari gugus hidroksil yang melekat pada cincin aromatik. Asam fenolik memiliki dua struktur induk, yaitu asam hidroksisinamat dan asam hidroksibenzoat.


9

Flavonoid merupakan senyawa fenolik yang paling umum, karena tersebar luas di jaringan tanaman, dan bersama karotenoid dan klorofil bertanggung jawab memberikan warna seperti biru, ungu, kuning, oranye dan merah pada tanaman. Flavonoid meliputi flavon, flavonol, iso-flavonol, anthocyanin, anthocyanidin, proanthocyanidin dan katekin. Semua flavonoid merupakan turunan dari asam amino aromatis, fenilalanin dan tirosin, serta memiliki struktur yang terdiri dari tiga cincin (Khoddami et al., 2013). HO O

OH

HO

HO

asam hidroksibenzoat

O

O

asam hidroksisinamat

flavonoid

Gambar 1. Struktur dasar asam fenolat dan flavonoid.

C. Metode Folin – Ciocalteu Metode Folin-Ciocalteu sering digunakan dalam penentuan total senyawa fenol dalam suatu tanaman atau buah (Hemingway, 1991). Metode ini didasarkan pada reduksi asam fosfotungstat dalam larutan alkali menjadi fosfotungstat biru. Absorbansi yang terbentuk akibat fosfotungstat biru sebanding dengan jumlah senyawa fenolik aromatik yang terdapat dalam sampel, sehingga dapat diketahui seberapa besar jumlah kandungan senyawa dengan gugus fenol dalam suatu sampel tanaman yang dinyatakan dengan ekuivalen asam gallat sebagai pengkalibrasi (Cindrić et al., 2011).


10

Reaksi kolorimetrik banyak digunakan dalam metode spektrofotometri UV / VIS, karena mudah dilakukan, cepat dan dapat digunakan di laboratorium secara rutin, dan biayanya rendah. Metode ini mengukur konsentrasi total senyawa fenolik dalam ekstrak tumbuhan. Polifenol dalam ekstrak tumbuhan bereaksi dengan reagen Folin Ciocalteu untuk membentuk kompleks biru yang dapat diukur dengan cahaya tampak spektrofotometri. Reagen ini memiliki kelemahan, yaitu sangat cepat terurai dalam larutan alkali, sehingga perlu untuk menggunakan reagen secara berlebih untuk mendapatkan reaksi yang lengkap. Namun, penggunaan reagen berlebih dapat menimbulkan endapan dan kekeruhan yang tinggi, sehingga membuat analisis spektrofotometri tidak mungkin untuk dilakukan. Untuk mengatasi masalah ini, didalam reagen Folin Ciocalteu terdapat garam lithium, yang dapat mencegah kekeruhan. Reaksi ini pada umumnya memberikan data yang akurat dan spesifik pada beberapa kelompok senyawa fenolik, walaupun beberapa senyawa menimbulkan warna yang sedikit berbeda karena adanya perbedaan dalam satuan massa dan kinetika reaksi (Blainski et al., 2013). D. Radikal Bebas Dalam struktur atom dan molekul, elektron biasanya dalam keadaan berpasangan, setiap pasangan bergerak dalam orbitnya. Namun mungkin pula terdapat suatu spesies elektron yang mampu bergerak dalam orbital dengan keadaan tanpa pasangan. Spesies elektron yang mampu bergerak dalam orbitnya tanpa pasangan biasa masuk dalam istilah “free”. Atom tanpa pasangan tersebut biasanya akan lebih reaktif untuk menstabilkan dirinya, sehingga akan bersifat


11

radikal dan akan mudah dalam berinteraksi dengan senyawa-senyawa lain. Senyawa dengan elektron tak berpasangan tersebut disebut dengan radikal bebas (Nonhebel, 1974). Oxigen free radicals atau lebih umum dikenal sebagai Reactive Oxigen Species (ROS), serta Reactive Nitrogen Species (RNS), adalah produk dari metabolisme sel normal. ROS dan RNS juga diakui memainkan peran ganda baik sebagai spesies yang memberikan manfaat dan spesies yang dapat merusak bagi sistem kehidupan. Efek menguntungkan dari ROS terjadi pada konsentrasi rendah/ sedang, misalnya dalam pertahanan terhadap agen infeksi dan fungsi dari sejumlah sistem sinyal seluler (Valko et al., 2006). Efek berbahaya dari radikal bebas menyebabkan potensi kerusakan biologis yang disebut oxidative stress dan nitrosative stress. Hal ini terjadi dalam sistem biologi bila ada produksi lebih dari ROS / RNS dan kekurangan enzim dan antioksidan non-enzimatik. Kelebihan ROS dapat merusak jaringan lipid, protein, atau DNA seluler sehingga menghambat fungsi normal mereka. Oleh karena hal tersebut maka oxidative stress disimpulkan terlibat dalam menimbulkan sejumlah penyakit pada manusia serta dalam proses penuaan. Radikal hidroksil, •OH, adalah bentuk netral dari ion hidroksida. Radikal hidroksil memiliki reaktivitas yang tinggi, membuatnya menjadi sangat berbahaya dan radikal hidroksil ini memiliki in vivo half-life yang sangat singkat kira-kira 10-9 s (Valko et al., 2006). E. Antioksidan Antioksidan adalah suatu senyawa yang ketika dalam konsentrasi rendah berada bersama substrat yang mudah teroksidasi secara signifikan mampu untuk


12

menunda atau menghambat reaksi oksidasi dari substrat tersebut (Cadenas and Packer, 2002). Secara umum antioksidan dibedakan menjadi dua, yaitu antioksidan enzimatis dan antioksidan non-enzimatis. Antioksidan enzimatis disebut juga sebagai antioksidan primer atau antioksidan endogenus. Suatu senyawa dapat dikatakan sebagai antioksidan primer apabila dapat memberikan atom hidrogen secara cepat kepada senyawa radikal, kemudian radikal antioksidan yang terbentuk segera menjadi senyawa yang lebih stabil. Contoh antioksidan enzimatis adalah superoksida dismutase (SOD), katalase, dan glutation peroksidase. Antioksidan non enzimatis disebut juga sebagai antioksidan sekunder atau antioksidan eksogenus. Kerja sistem antioksidan non enzimatis yaitu dengan cara memotong reaksi oksidasi berantai dari radikal bebas atau dengan cara menangkap radikal bebas sehingga radikal bebas tidak akan bereaksi dengan komponen seluler (Winarsi, 2007). Aktivitas antioksidan dinyatakan dalam nilai inhibition concentration (IC). Nilai IC yang biasanya digunakan adalah nilai IC50. Nilai IC50 merupakan konsentrasi antioksidan yang mampu menghambat radikal bebas sekitar 50%. Konsep nilai IC50 ini mirip dengan konsep nilai LD50 pada bidang ilmu toksikologi. Nilai LD50 merupakan dosis suatu zat yang dapat menyebabkan kematian sekitar 50% dari populasi. Tak hanya LD50, Sweet (1997) menjelaskan terdapat beberapa nilai yang lain untuk menyatakan persen kematian. Nilai lain seperti LD1, LD10, LD30, dan LD99 dapat digunakan untuk tujuan tertentu dari penulis (Sweet, 1997). Bidang ilmu toksikologi juga menggunakan nilai IC untuk


13

menyatakan tingkat ketoksikan. Salah satunya adalah nilai IC25 yang digunakan untuk pengujian toksisitas kronis (DEP Division of Water, 2011). Umumnya nilai IC50 digunakan karena dapat menggambarkan setengah dari kekuatan maksimal antioksidan. Nilai lain seperti IC25, IC75, ataupun IC90 juga dapat digunakan tergantung dari tujuan penulis. Seperti pada penelitian Fernandes et al. (2007), dimana IC25 digunakan untuk membandingkan hasil ketika aktivitas penangkapan radikal bebas tidak mencapai 50%. F. Metode Deoksiribosa Metode deoksiribosa atau sering disebut juga sebagai hydroxyl radical scvenging

assay

merupakan suatu metode untuk

pengukuran

aktivitas

penghambatan radikal bebas oleh suatu senyawa antioksidan. Prinsip dari metode ini adalah radikal hidroksil yang dihasilkan oleh reaksi kompleks Fe-EDTA dengan H2O2 dengan penambahan asam askorbat (Sistem Fenton), akan menyerang/mendegradasi deoksiribosa sehingga menghasilkan suatu produk, yaitu malonaldehida (MDA), setelah pemanasan dengan penambahan asam thiobarbiturat pada pH rendah, produk tersebut (malonaldehid) akan bereaksi dengan asam thiobarbiturat sehingga menghasilkan kromogen berwarna merah muda. Ketika ditambahkan suatu senyawa yang memiliki aktivitas antioksidan, deoksiribosa akan dilindungi dari radikal hidroksil sehingga produksi dan pembentukan kromogen berwarna merah muda berkurang (Halliwell, 1987).


14

Secara singkat proses pembentukan kromogen berwarna merah muda dijelaskan melalui reaksi berikut. Fe2+- EDTA + O2

Fe3+-EDTA + O2-

Fe3+-EDTA + ascorbate

Fe2+- EDTA + oxidized ascorbate

Fe2+- EDTA + H2O2

OH- + OH + Fe3+-EDTA

.

OH + deoxyribose

MDA

2TBA + MDA

chromogen

.

G. Ekstraksi Ekstraksi merupakan pemisahan zat aktif jaringan tanaman atau hewan dari komponen inaktif atau inert dengan menggunakan pelarut yang selektif sesuai dengan prosedur standar. Tujuan dari ekstraksi simplisia adalah untuk mendapatkan zat aktif yang diinginkan. Beberapa teknik ekstraksi yang sering digunakan menurut Handa et al. (2008) adalah : 1. Maserasi Maserasi merupakan proses dimana serbuk simplisia ditempatkan dalam wadah bertutup dengan pelarut dan didiamkan pada suhu kamar dengan agitasi. 2. Perkolasi Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai terjadi penyarian sempurna yang dilakukan pada suhu kamar. Tahapan dari proses perkolasi antara lain pengembangan bahan, tahap perendaman antara, dan penampungan ekstrak.


15

3. Digesti Digesti adalah maserasi dengan pengadukan pada temperatur yang lebih tinggi daripada temperatur ruangan. 4. Penyarian dengan alat Soxhlet. Merupakan ekstraksi menggunakan pelarut yang selalu baru, dengan menggunakan alat soxhlet sehingga terjadi ekstraksi terus menerus dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendinginan balik. 5. Dekok Dekok adalah ekstraksi dengan pelarut air pada temperatur 90oC selama 30 menit. 6. Infundasi Infundasi adalah ekstraksi menggunakan pelarut air pada suhu 90oC selama 15 menit. Ekstrak yang diperoleh dapat difraksinasi untuk mengisolasi suatu senyawa kimia yang lebih spesifik. Salah satu metode untuk fraksinasi adalah ekstraksi cair-cair. Metode ekstraksi cair-cair menggunakan dua pelarut yang tidak bercampur. Salah satu pelarut biasanya adalah air dan pelarut lainnya merupakan pelarut organik. Distribusi analit antara fase air dan fase organik didasarkan pada Hukum Nernst, dimana koefisien ditribusi (KD) sama dengan perbandingan analit pada masing-masing fase dalam keadaan setimbang. Distribusi analit antara dua pelarut yang tidak bercampur didasarkan pada kelarutan analit pada masing-masing pelarut (Wells, 2003).


Keterangan : KD Corg Caq

16

= koefisien distribusi = konsentrasi analit pada pelarut organik = konsentrasi analit pada pelarut air

Faktor-faktor berikut harus dipertimbangkan ketika memilih pelarut untuk ekstraksi: (1) Kekuatan pelarut (selektivitas) Konstituen yang diinginkan harus terekstrak dari bahan tanaman, oleh karena itu selektivitas yang tinggi sangat diperlukan. (2) Titik didih Titik didih pelarut adalah serendah mungkin untuk memudahkan penghilangan pelarut dari produk. (3) Reaktivitas Pelarut seharusnya tidak bereaksi secara kimia dengan ekstrak. (4) Viskositas Pelarut dengan viskositas rendah akan menyebabkan penurunan tekanan dan perpindahan massa yang baik. (5) Keamanan Pelarut harus tidak mudah terbakar dan non-korosif, tidak menimbulkan bahaya beracun, dan tidak merusak lingkungan lingkungan. (6) Biaya Pelarut harus tersedia dengan biaya rendah.


17

(7) Tekanan uap Untuk mencegah hilangnya pelarut oleh penguapan, tekanan uap rendah pada suhu operasi diperlukan. (8) Recovery Pelarut harus dapat dipisahkan dengan mudah dari ekstrak untuk menghasilkan ekstrak bebas pelarut. H. Spektrofotometri Spektrofotometri UV/Visibel memiliki prinsip yaitu radiasi pada rentang panjang gelombang 200–700 nm dilewatkan melalui suatu larutan senyawa. Elektron pada ikatan dalam molekul menjadi tereksitasi sehingga berada pada keadaan energi yang lebih tinggi dalam proses menyerap sejumlah energi yang melewati larutan tersebut. Semakin longgar elektron tersebut ditahan di dalam ikatan molekul, panjang gelombang radiasi yang diserap semakin panjang (Watson, 2010). Absorpsi cahaya ultraviolet atau cahaya tampak mengakibatkan adanya transisi elektronik, yaitu perpindahan elektron dari orbital dasar yang energinya rendah menuju keadaan tereksitasi yang energinya lebih tinggi. Panjang gelombang cahaya ultraviolet atau cahaya tampak bergantung pada mudahnya perpindahan elektron. Molekul – molekul yang memerlukan energi lebih banyak untuk memindahkan elektron, akan menyerap pada panjang gelombang yang lebih pendek dan begitu sebaliknya (Fessenden dan Fessenden, 1982). Kolorimetri merupakan salah satu metode analisa kimia yang berdasarkan pada perbandingan intensitas warna larutan. Metode kolorometri


18

merupakan bagian dari metode spektroskopi sinar tampak berdasarkan panjang gelombang sinar tampak pada suatu larutan berwarna. Reaksi kolorimetrik banyak digunakan dalam metode spektrofotometri UV / VIS, karena mudah dilakukan, cepat dan dapat digunakan di laboratorium secara rutin, dan biayanya rendah. Beberapa hal yang perlu diperhatikan dalam analisis spektrofotometri antara lain waktu operasional dan panjang gelombang maksimum. Waktu operasional ditentukan dengan mengukur hubungan antara waktu pengukuran dengan absorbansi larutan. Tujuan dari waktu operasional untuk mengetahui waktu pengukuran yang stabil. Pada awal terjadi reaksi absorbansi akan terus meningkat hingga pada waktu tertentu absorbansi yang dihasilkan stabil. Terdapat kemungkinan senyawa mengalami kerusakan atau terurai sehingga menyebabkan intensitas warna dan absorbansinya menurun seiring bertambahnya waktu. Oleh karena hal tersebut perlu dilakukan pengukuran pada saat waktu operasional yang tepat (Gandjar dan Rohman, 2007). Panjang gelombang yang digunakan dalam pengukuran adalah panjang gelombang yang memiliki absorbansi maksimal. Pada panjang gelombang maksimal kepekaan yang dihasilkan tinggi. Oleh karena itu perubahan absorbansi untuk setiap satuan konsentrasi adalah yang paling besar (Gandjar dan Rohman, 2007). I.

Landasan Teori

Radikal bebas dapat menyebabkan kerusakan pada tubuh manusia sehingga perlu suatu mekanisme pertahanan untuk menjaga agar tubuh tidak mengalami kerusakan. Salah satu caranya dengan mekanisme antioksidan.


19

Antioksidan sintetik belakangan diketahui sebagai penyumbang kerusakan pada tubuh, oleh karena itu antioksidan alami lebih baik untuk digunakan. Tanaman jambu mete merupakan sumber antioksidan yang potensial. Beberapa penelitian menyebutkan bahwa pada buah jambu mete memiliki kandungan senyawa fenolik yang tinggi. Flavonoid merupakan salah satu senyawa fenolik yang memiliki aktivitas sebagai antioksidan. Buah jambu mete memiliki kandungan flavonoid aglikon, yaitu kuersetin dan naringenin. Kuersetin (flavonol) dan naringenin (flavonon) merupakan flavonoid yang tingkat kepolarannya rendah, sehingga dapat diekstraksi menggunakan etil asetat. Metode

deoksiribosa

merupakan

metode

pengukuruan

aktivitas

antioksidan suatu sampel. Prinsipnya adalah pendegradasian deoksiribosa oleh radikal hidroksi yang dihasilkan oleh sistem Fenton. Deoksiribosa yang terdegradasi menghasilkan produk berupa malonaldehida yang ketika direaksikan dengan TBA pada pH rendah akan menghasilkan kromogen berwarna merah muda. Kromogen yang terbentuk kemudian dibaca serapannya menggunakan spektrofotometer. Apabila ditambahkan suatu antioksidan ke dalam sistem ini maka warna kromogen yang terbentuk akan semakin pudar karena antioksidan akan menangkal radikal hidroksi sehingga tidak dapat mendegradasi deoksiribosa. Metode Folin-Ciocalteu didasarkan pada reduksi asam fosfotungstat dalam larutan alkali menjadi fosfotungstat biru. Senyawa berwarna ini diukur serapannya dengan spektrofotometer. Serapan yang dihasilkan sebanding dengan jumlah senyawa fenolik yang terdapat dalam sampel. Kandungan fenolik total dinyatakan dengan ekuivalen asam gallat sebagai pengkalibrasi.


J.

20

Hipotesis

1. Fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete memiliki kandungan senyawa fenolik yang dapat diukur dengan metode Folin-Cioucalteu. 2. Fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete memiliki aktivitas antioksidan yang dapat diukur dengan metode deoksiribosa.


BAB III METODE PENELITIAN

A. Jenis dan Rancangan Penelitian Penelitian ini termasuk dalam jenis penelitian eksperimental murni dengan rancangan acak sederhana.

B. Variabel 1.

Variabel bebas dalam penelitian ini adalah konsentrasi fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete.

2.

Variabel tergantung dalam penelitian ini adalah % IC.

3.

Variabel pengacau terkendali dalam penelitian ini adalah waktu pemanenan, umur buah yang dipanen, waktu inkubasi, suhu pada saat inkubasi.

4.

Variabel pengacau tak terkendali dalam penelitian ini adalah kondisi cuaca pada tempat tumbuh tanaman.

C. Definisi Operasional 1.

Buah jambu mete adalah buah semu jambu mete yang sudah masak dari tanaman jambu mete yang tumbuh di Desa Wisata Karangtengah, Mojolegi, Imogiri, Bantul, Daerah Istimewa Yogyakarta.

2.

Ekstrak etanol buah jambu mete adalah hasil dari proses maserasi serbuk simplisia kering buah jambu mete dengan menggunakan pelarut etanol 70%.

3.

Fraksi etil asetat adalah hasil fraksinasi dengan metode ekstraksi cair-cair dari ekstrak etanol buah jambu mete menggunakan etil asetat, yang sebelumnya ekstrak etanol buah jambu mete dilarutkan terlebih dahulu dalam akuades.

21


4.

22

Persen inhibitiory concentration (%IC) adalah nilai yang menyatakan kemampuan fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete dalam menangkap radikal bebas hidroksi.

5.

Inhibitory concentration 25 (IC25) merupakan nilai konsentrasi fraksi etil asetat yang menghasilkan penangkapan 25% radikal bebas hidroksi.

D. Bahan dan Alat Penelitian 1.

Bahan penelitian Bahan – bahan yang digunakan dalam penelitian ini antara lain: buah

jambu mete dari Desa Wisata Karangtengah, Mojolegi, Imogiri, Bantul, Daerah Istimewa Yogyakarta. Akuades (Laboratorium Kimia Organik Universitas Sanata Dharma Yogyakarta). Bahan – bahan kualitas teknis : etanol 70%, natrium karbonat, asam etilendiamin tetrasetat (EDTA). Bahan – bahan kualitas pro analisis E. Merck : metanol, etil asetat, dinatrium hidrogen fosfat, kalium dihirogen fosfat, ferri klorida heksahidrat, larutan hidrogen peroksida 35%, asam askorbat, asam tiobarbiturat (TBA), asam trikloroasetat (TCA). Bahan kualitas pro analisis Sigma Chem Co. USA : asam galat, rutin, reagen Folin-Ciocalteu, 2deoxy-D-ribose. 2.

Alat penelitian Alat – alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah pisau stainless

steel, blender, neraca analitik, maserator / orbital shaker, corong Buchner, pompa vaccum, vaccum rotary evaporator, waterbath, spektrofotometer UV-Vis (Shimadzu), oven, vortex, micropipet 50 – 200 μl, 200 – 1000 μl, dan alat-alat gelas yang lazim digunakan di laboratorium analisis (Pyrex).


23

E. Tatacara Penelitian 1. Determinasi tanaman Determinasi tanaman jambu mete dilakukan di Laboratorium Kebun Tanaman Obat, Fakultas Farmasi Universitas Sanata Dharma Yogyakarta. 2. Pengumpulan buah jambu mete Buah jambu mete yang sudah masak dikumpulkan dari tanaman jambu mete yang tumbuh di kawasan Desa Wisata Karangtengah, Mojolegi, Imogiri, Bantul, Daerah Istimewa Yogyakarta. Buah dipanen pada awal bulan November 2014. Pemanenan dilakukan pada pagi hari. 3. Preparasi buah jambu mete Buah jambu mete dicuci menggunakan air mengalir. Buah jambu mete yang telah dicuci kemudian dipotong tipis – tipis menggunakan pisau stainless steel. Buah jambu mete yang telah dipotong selanjutnya ditimbang kemudian ditata di atas tampah. Buah jambu mete selanjutnya dikeringkan dibawah sinar matahari pada pagi hari pukul 08.00 – 11.00 dan sore hari pukul 15.00 – 17.00 dengan ditutup kain hitam. Pengeringan dilakukan hingga potongan buah mudah dipatahkan. Hasil pengeringan kemudian diblender dan diayak menggunakan ayakan 40 mess. Serbuk hasil pengayakan kemudian ditimbang. Serbuk buah jambu mete ditimbang sebanyak 100 g, masukkan dalam Erlenmeyer 500 mL, etanol 70% ditambahkan ke dalam Erlenmeyer hingga semua bagian serbuk buah jambu terendam seluruhnya. Penambahan etanol dilebihkan hingga lebih kurang 2 cm diatas permukaan serbuk buah jambu mete. Erlenmeyer ditutup menggunakan alumunium foil. Proses maserasi dilakukan


24

dengan penggojogan selama 24 jam menggunakan orbital shaker pada suhu ruang. Hasil dari proses maserasi disaring menggunakan kertas saring dengan bantuan corong Buchner dan pompa vakum. Filtrat kemudian disimpan dalam kondisi penyimpanan yang sesuai. Ampas dari proses penyaringan kemudian dimaserasi kembali selama 24 jam. Proses maserasi dan penyaringan ini dilakukan sebanyak tiga kali. Dilakukan replikasi sebanyak tiga kali. Semua filtrat yang diperoleh kemudian disatukan dalam labu alas bulat dan dipekatkan menggunakan vaccum rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak etanol kental buah jambu mete. Setelah dipekatkan ekstrak kental ini kemudian dipanaskan pada waterbath hingga bebas penyari. Ekstrak kental ini kemudian difraksinasi menggunakan metode ekstraksi cair – cair. Ekstrak kental dilarutkan dalam akuades hangat, kemudian difraksinasi menggunakan etil asetat dengan perbandingan akuades : etil asetat 1:1 v/v didalam corong pisah. Terbentuk dua lapisan, yaitu lapisan air dan lapisan etil asetat. Lapisan etil asetat (bagian atas) kemudian diambil dan ditampung dalam wadah. Lapisan air (bagian bawah) difraksinasi kembali menggunakan etil asetat dengan perbandingan yang sama. Tahapan ini diulang hingga tiga kali. Fraksi etil asetat kemudian dipekatkan menggunakan vaccum rotary evaporator. Fraksi etil asetat pekat kemudian dikeringkan menggunakan waterbath. Fraksi etil asetat yang diperoleh kemudian disimpan dalam desikator.


25

4. Penetapan kandungan fenolik total a. Pembuatan larutan asam galat Asam galat ditimbang sebanyak 10 mg, kemudian dimasukkan ke dalam gelas Beker dan dilarutkan dengan aquades : metanol p.a (1:1). Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL, tambahkan akuades : metanol p.a (1:1) sampai batas tanda. Larutan tersebut diambil sebanyak 0,4; 0,5 ; 0,6 ; 0,7 ; dan 0,8 mL, masukkan ke dalam labu takar 10 mL dan tambahkan aquades : metanol p.a (1:1) sampai batas tanda, sehingga diperoleh konsentrasi larutan baku asam galat sebesar 40; 50; 60; 70; dan 80 μg / mL. b. Pembuatan larutan uji untuk penentuan kandungan fenolik total Fraksi etil asetat ditimbang sebanyak 10 mg, larutkan menggunakan aquades : metanol p.a ( 1:1 ) dalam gelas beker. Kemudian masukkan ke dalam labu takar 10 mL dan ditambahkan aquades : metanol p.a ( 1:1 ) hingga batas tanda. Larutan diambil 2,0 mL, masukkan ke dalam labu takar 10 mL dan ditambahkan aquades : metanol p.a ( 1:1 ) hingga batas tanda. Konsentrasi larutan uji sebesar 200,0 μg / mL. c. Penentuan operating time Larutan asam galat dengan konsentrasi 40; 60; dan 80 μg / mL diambil sebanyak 0,5 mL. Reagen Folin-Ciocalteu ditambahkan sebanyak 2,0 mL pada masing – masing larutan, diamkan selama 5 menit. Selanjutnya, ditambahkan dengan 4,0 mL natrium karbonat 1 M. Baca absorbansi larutan setiap 5 menit dengan spektrofotometer visibel pada


26

panjang gelombang 750 nm selama 60 menit. Lakukan replikasi sebanyak 3 kali. d. Penentuan panjang gelombang maksimum Larutan asam galat dengan konsentrasi 40; 60; dan 80 μg / mL diambil sebanyak 0,5 mL. Reagen Folin-Ciocalteu ditambahkan sebanyak 2 mL pada masing – masing larutan, diamkan selama 5 menit. Selanjutnya, ditambahkan dengan 4,0 mL natrium karbonat 1 M. Diamkan selama operating time yang telah didapat, kemudian dilakukan scanning panjang gelombang maksimum dengan spektrofotometer visibel dengan panjang gelombang 600-800 nm. e. Pembuatan kurva baku asam galat Larutan asam galat dengan konsentrasi 40; 50; 60; 70; dan 80 μg / mL diambil sebanyak 0,5 mL. Reagen Folin-Ciocalteu ditambahkan sebanyak 2 mL, diamkan selama 5 menit. Selanjutnya, ditambahkan dengan 4,0 mL natrium karbonat 1 M, diamkan selama operating time yang telah didapat. Baca absorbansinya pada panjang gelombang maksimum yang telah diperoleh. Lakukan replikasi sebanyak 3 kali. f. Estimasi kandungan fenolik total larutan uji Larutan uji dengan konsentrasi 200,0 μg/mL diambil sebanyak 0,5 mL. Reagen Folin-Ciocalteu ditambahkan sebanyak 2 mL, diamkan selama 5 menit. Selanjutnya, ditambahkan dengan 4,0 mL natrium karbonat 1 M, diamkan selama operating time yang telah didapat. Baca absorbansinya pada panjang gelombang maksimum yang telah diperoleh.


27

5. Uji aktivitas antioksidan a. Pembuatan larutan stok rutin Rutin ditimbang sebanyak 10 mg. Masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan dengan akuades hangat. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 100 mL dan tambahkan akuades hingga batas tanda sehingga diperoleh konsentrasi larutan stok rutin sebesar 100 μg / mL. b. Pembuatan larutan pembanding Larutan stok rutin diambil sebanyak 0,5; 1; 1,5; 2,0; 2,5 mL. Masukkan ke dalam labu takar 10 mL dan tambahkan aquades sampai batas tanda, sehingga diperoleh konsentrasi larutan pembanding rutin sebesar 5; 10; 15; 20; dan 25 μg / mL. c. Pembuatan Reagen Fenton 1. Larutan FeCl3 1mM Ferri klorida heksahidrat ditimbang sebanyak 13,5 mg, masukkan ke dalam gelas bekker dan larutkan dengan aquades secukupnya. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL, kemudian tambahkan aquades hingga batas tanda. Ambil 2,0 mL larutan, masukkan ke dalam labu takar 10 mL, tambahkan aquades hingga batas tanda. 2. Larutan EDTA 1mM Serbuk EDTA ditimbang sebanyak 14,6 mg, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan aquades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL, kemudian tambahkan aquades


28

hingga batas tanda. Ambil 2,0 mL larutan, masukkan ke dalam labu takar 10 mL, tambahkan aquades hingga batas tanda. 3. Larutan asam askorbat 1 mM Asam askorbat ditimbang sebanyak 17,6 mg, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan aquades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL, kemudian tambahkan aquades hingga batas tanda. Ambil 1,0 mL larutan, masukkan ke dalam labu takar 10 mL, tambahkan aquades hingga batas tanda. 4. Larutan H2O2 20 mM Sebanyak 0,078 mL larutan H2O2 35% diambil, kemudian di masukkan ke dalam labu takar 10 mL dan tambahkan aquades hingga batas tanda. Sebanyak 2,5 mL larutan tersebut diambil dan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL. Tambahkan aquades hingga batas tanda. d. Pembuatan larutan Deoksiribosa 2,5 mM Deoksiribosa ditimbang sebanyak 20,9 mg, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan aquades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 10 mL dan tambahkan aquades hingga batas tanda. Ambil 4,0 mL larutan, masukkan ke dalam labu takar 25 mL. Tambahkan akuades hingga batas tanda. e. Pembuatan larutan TCA 5% TCA ditimbang sebanyak 2,5 g, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan akuades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 50 mL dan tambahkan akuades hingga batas tanda.


29

f. Pembuatan larutan TBA 1% TBA ditimbang sebanyak 0,25 g, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan akuades secukupnya, proses pelarutan dilakukan di atas hot plate hingga seluruh TBA larut. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 25 mL dan tambahkan akuades hingga batas tanda. g. Pembuatan larutan bufer fosfat Na2HPO4 ditimbang sebanyak 1,4196 g, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan aquades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 500 mL, tambahkan aquades hingga batas tanda. Kemudian timbang sebanyak 0,6805 gram KH2PO4, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan menggunakan aquades. Larutan dimasukkan ke dalam labu takar 250 mL dan tambahkan aquades hingga batas tanda. Masukkan larutan Na2HPO4 secukupnya ke dalam gelas beker dan tambahkan larutan KH2PO4 tetes demi tetes hingga pH larutan sebesar 7. h. Larutan uji untuk aktivitas antioksidan Fraksi etil asetat ditimbang sebanyak 50,0 mg, masukkan ke dalam gelas beker dan larutkan dengan akuades hangat. Larutan kemudian dimasukkan ke dalam labu takar 50 mL dan ditambahkan akuades sampai batas tanda. Larutan diambil sebanyak 1,0; 2,0; 3,0; 4,0; dan 5,0 mL, masukkan ke dalam labu takar 10 mL, kemuadian tambahkan akuades sampai batas tanda. Konsentrasi larutan uji yang diperoleh sebesar 100; 200; 300; 400; dan 500 μg / mL.


30

i. Penentuan Operating time Sebanyak 300 μL larutan FeCl3 1 mM, 300 μL larutan EDTA 1 mM, 300 μL larutan H2O2 20 mM, 300; μL larutan deoksiribosa 2,5 mM, 4500 μL bufer fosfat dan 300 μL larutan asam askorbat 1 mM dimasukkan pada tabung reaksi bertutup. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan kemudian diinkubasi selama 1 jam pada suhu 37oC menggunakan oven. Setelah larutan diinkubasi, tambahkan 1 mL TCA 5% dan 1 mL TBA 1%. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan tersebut dipanaskan pada waterbath dengan suhu 80oC selama 30 menit. Dinginkan dengan bantuan air mengalir selama 5 menit. Baca absorbansinya setiap 5 menit pada panjang gelombang maksimum teoritis 532 nm selama 1 jam. j. Penentuan panjang gelombang maksimum Pada 3 tabung reaksi bertutup, masukkan sebanyak 300 μL larutan FeCl3 1 mM, 300 μL larutan EDTA 1 mM, 300 μL larutan H2O2 20 mM, 200; 300; 400 μL larutan deoksiribosa 2,5 mM, 4600; 4500; 4400 μL bufer fosfat dan 300 μL larutan asam askorbat 1 mM pada masing – masing tabung reaksi. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan kemudian diinkubasi selama 1 jam pada suhu 37oC menggunakan oven. Setelah larutan diinkubasi, tambahkan 1 mL TCA 5% dan 1 mL TBA 1%. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan tersebut dipanaskan pada waterbath dengan suhu 80oC selama 30 menit. Dinginkan dengan bantuan air mengalir selama 5


31

menit. Diamkan selama operating time yang telah didapat. Lakukan scanning pada panjang gelombang 400 – 600 nm. k. Pengujian aktivitas penangkapan radikal hidroksil 1. Kontrol negatif Sebanyak 300 μL larutan FeCl3 1 mM, 300 μL larutan EDTA 1 mM, 300 μL larutan H2O2 20 mM, 300 μL larutan deoksiribosa 2,5 mM, 1 mL akuades, 3500 μL bufer fosfat dan 300 μL larutan asam askorbat 1 mM dimasukkan ke dalam tabung reaksi bertutup. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan kemudian diinkubasi selama 1 jam pada suhu 37oC menggunakan oven. Setelah larutan diinkubasi, tambahkan 1 mL TCA 5% dan 1 mL TBA 1%. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan tersebut dipanaskan pada waterbath dengan suhu 80oC selama 30 menit. Dinginkan dengan bantuan air mengalir selama 5 menit. Diamkan selama operating time. Ukur serapan pada panjang gelombang maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya. 2. Larutan pembanding rutin Pada 5 tabung reaksi bertutup, masukkan sebanyak 300 μL larutan FeCl3 1 mM, 300 μL larutan EDTA 1 mM, 300 μL larutan H2O2 20 mM, 300 μL larutan deoksiribosa 2,5 mM, 1 mL larutan pembanding rutin dengan konsentrasi 5; 10; 15; 20; dan 25 μg / mL, 3500 μL bufer fosfat dan 300 μL larutan asam askorbat 1 mM pada masing – masing tabung reaksi. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih


32

kurang 10 detik. Larutan kemudian diinkubasi selama 1 jam pada suhu 37oC menggunakan oven. Setelah larutan diinkubasi, tambahkan 1 mL TCA 5% dan 1 mL TBA 1%. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan tersebut dipanaskan pada waterbath dengan suhu 80oC selama 30 menit. Dinginkan dengan bantuan air mengalir selama 5 menit. Diamkan selama operating time. Ukur serapan pada panjang gelombang maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya. Persen IC dihitung dari hasil absorbansi yang diperoleh. Dibuat persamaan regresi linier antara konsentrasi larutan pembanding rutin vs % IC untuk menentukan nilai IC25. Dilakukan replikasi sebanyak 3 kali. 3.

Larutan uji Pada 5 tabung reaksi bertutup, dimasukkan sebanyak 300 μL larutan FeCl3 1 mM, 300 μL larutan EDTA 1 mM, 300 μL larutan H2O2 20 mM, 300 μL larutan deoksiribosa 2,5 mM, 1 mL larutan uji dengan konsentrasi 100; 200; 300; 400; dan 500 μg / mL, 3500 μL bufer fosfat dan 300 μL larutan asam askorbat 1 mM pada masing – masing tabung reaksi. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan kemudian diinkubasi selama 1 jam pada suhu 37oC menggunakan oven. Setelah larutan diinkubasi, tambahkan 1 mL TCA 5% dan 1 mL TBA 1%. Larutan dicampur menggunakan vortex selama lebih kurang 10 detik. Larutan tersebut dipanaskan pada waterbath dengan suhu 80oC selama 30 menit. Dinginkan dengan bantuan air


33

mengalir selama 5 menit. Diamkan selama operating time. Ukur serapan pada panjang gelombang maksimum yang telah ditetapkan sebelumnya. Dari hasil absorbansi yang diperoleh, hitung % IC dan dibuat persamaan regresi linier yang merupakan hubungan antara konsentrasi larutan pembanding rutin vs %IC untuk menentukan nilai IC25. Lakukan replikasi sebanyak 3 kali.

F. Analisis Data 1. Penetapan kandungan fenolik total Kandungan fenolik total dinyatakan dalam nilai mg ekivalen asam galat per gram fraksi etil astat. Nilai tersebut didapatkan dari analisis regresi linier dengan data kurva baku asam galat, sehingga akan diperoleh kandungan fenolik total dengan perhitungan menggunakan rumus :

X

= kadar fenolik yang diperoleh dari persamaan kurva baku (mg / mL)

v

= volume akhir larutan dikali faktor pengenceran (mL)

m

= bobot fraksi (gram)

2. Aktifitas penangkapan radikal hidroksil Aktivitas penangkapan radikal hidroksil dinyatakan dalam % IC, yang dapat dihitung dengan rumus :

A kontrol

= Absorbansi campuran reaksi kontrol negatif

A sampel

= Absorbansi campuran reaksi kontrol positif atau larutan uji


34

Nilai IC25 ditetapkan menggunakan persamaan regresi linier, dengan sumbu x adalah konsentrasi larutan pembanding rutin atau larutan uji fraksi etil asetat buah jambu mete dan sumbu y adalah % IC.


BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

A. Hasil Determinasi Tanaman Determinasi tanaman bertujuan untuk memastikan kebenaran tanaman yang digunakan sebagai sampel. Kebenaran bahan merupakan salah satu syarat utama dalam penelitian. Determinasi tanaman dilakukan di Laboratorium Kebun Tanaman Obat Fakultas Farmasi Universitas Sanata Dharma Yogyakarta dengan acuan van Steenis (1981). Hasil determinasi menunjukkan tanaman yang digunakan adalah Anacardium occidentale L. (Lampiran 1). B. Hasil Pengumpulan Tanaman Buah jambu mete dikumpulkan dari tanaman jambu mete yang tumbuh di kawasan Desa Wisata Karangtengah, Mojolegi, Imogiri, Bantul, Daerah Istimewa Yogyakarta. Tanaman jambu mete dapat dipanen untuk pertama kali pada umur 3-4 tahun. Pada dasarnya masa panen buah jambu mete berlangsung selama 4 bulan, yaitu sekitar bulan November sampai bulan Februari tahun berikutnya. Pada penelitian ini buah jambu mete dipanen pada awal bulan November 2014. Buah yang dipanen adalah buah yang sudah masak. Ciri – ciri buah yang sudah masak dan dapat dipanen menurut Prihatman (2000) adalah : 1. Warna kulit buah semu menjadi kuning, oranye, atau merah tergantung pada jenisnya. 2. Ukuran buah semu lebih besar dari buah sejati. 3. Tekstur daging semu lunak, rasanya asam agak manis, berair, dan aroma buahnya mirip aroma stroberi.

35


36

4. Warna kulit bijinya menjadi putih keabu-abuan dan mengkilat. Buah hasil panen (Gambar 2) memiliki ciri-ciri seperti yang disebutkan oleh Prihatman (2000). Buah jambu mete yang dipanen berwarna kuning dan merah. Ukuran buah semu lebih besar daripada buah sejati. Tekstur buah semu lunak, berair, rasanya asam, dan beraroma khas. Bagian buah yang digunakan pada penelitian ini adalah buah semu, tanpa buah sejati (mete).

Gambar 2. Buah jambu mete Pemanenan dilakukan pada pagi hari sekitar pukul 06.00 hingga 07.00 WIB. Kondisi hari dan cuaca sangat mempengaruhi kualitas dari produk yang akan dipanen. Menurut Pallipane and Rolle (2008) pemanenan paling baik dilakukan pada kondisi tersejuk, yaitu pagi hari atau malam hari ketika aktivitas fisiologis tanaman rendah.


37

C. Hasil Preparasi Buah Jambu Mete 1. Hasil pembuatan serbuk simplisia Sebanyak lebih kurang 3 kg buah jambu mete segar yang telah dicuci, dipotong tipis-tipis menggunakan pisau stainless steel. Pemotongan dengan pisau stainless steel karena bahan dari pisau ini bersifat inert, tahan terhadap korosi, mudah dibersihkan dan disterilkan (Newson, 2003). Buah yang telah dipotong dikeringkan di bawah sinar matahari. Tujuan pengeringan adalah untuk menginaktivasi enzim yang ada dalam buah jambu mete. Pengeringan dilakukan dengan menutup buah jambu mete menggunakan kain hitam. Pengeringan dengan ditutup kain hitam bertujuan untuk menghindari kontak langsung antara sampel dengan sinar matahari. Adanya kontak langsung dengan sinar matahari dapat merusak senyawa yang terkandung dalam sampel. Buah jambu mete dikeringkan hingga mudah dipatahkan. Buah jambu mete yang sudah kering kemudian dihaluskan dengan blender dan diayak menggunakan ayakan mess 40. Hasil dari proses ini didapatkan lebih kurang 1 kg serbuk halus. Pada dasarnya proses pengeringan bertujuan untuk menginaktivasi enzim polifenol oksidase (PPO). Enzim ini dapat menyebabkan reaksi oksidasi. Proses oksidasi ini dapat menyebabkan senyawa fenolik kehilangan gugus hidroksi yang berperan dalam aktivitas antioksidan. Reaksi oksidasi oleh polifenol oksidase (Gambar 3) ini biasanya dimulai dengan adanya oksidasi enzimatik pada senyawa monofenol ke o-difenol dan o-difenol ke kuinon. Adanya oksidasi tersebut menyebabkan

polimerisasi non-enzimatik yang mengarah pada

pembentukan pigmen berwarna coklat (He, Luo, and Chen, 2008). Pada proses


38

pengeringan ini terjadi perubahan warna buah jambu mete menjadi coklat. Hal ini menunjukkan masih ada enzim polifenol oksidase yang belum terinaktivasi dan bereaksi dengan senyawa fenolik yang terdapat dalam buah jambu mete.

Gambar 3. Reaksi oksidasi polifenol oleh enzim polifenol oksidase (PPO) 2. Hasil proses ekstraksi Ekstraksi, dalam istilah farmasi, merupakan proses pemisahan komponen aktif dari jaringan tumbuhan atau hewan menggunakan pelarut yang selektif. Pada penelitian ini metode ekstraksi yang digunakan adalah maserasi. Maserasi merupakan proses dimana serbuk simplisia ditempatkan dalam wadah bertutup dengan pelarut dan didiamkan pada suhu kamar dengan agitasi (Handa, 2008). Maserasi merupakan salah satu cara yang sering digunakan dalam mengektraksi tanaman. Metode ini tidak menggunakan pemanasan sehingga dapat meminimalisir kerusakan senyawa saat proses ekstraksi berlangsung. Serbuk halus simplisia buah jambu mete ditimbang sebanyak 100 gram, dimasukkan dalam Erlenmeyer 500 mL. Serbuk halus memiliki keunggulan yaitu meningkatkan keefektifan proses ekstraksi karena luas permukaan kontak antara matriks tanaman dan pelarut semakin besar sehingga difusi bahan kimia dari matriks tanaman juga semakin besar (Wang and Weller, 2006). Pelarut yang digunakan adalah etanol 70%. Dasar pemilihan pelarut ini mempertimbangkan beberapa hal seperti kekuatan pelarut/selektifitas, titik didih, dan biaya. Senyawa


39

fenolik dapat diekstraksi dengan pelarut polar, salah satunya etanol. Etanol juga memiliki titik didih yang cukup rendah sehingga mudah diuapkan. Dari segi ekonomi etanol merupakan pelarut yang cukup murah. Maserasi dilakukan selama 3 hari. Setiap harinya dilakukan remaserasi dengan mengganti pelarut yang digunakan dengan pelarut yang baru. Remaserasi ini bertujuan untuk menarik lebih banyak senyawa dari sampel dan juga menghindari kejenuhan pelarut dalam sistem. Ekstrak yang diperoleh selanjutnya dipekatkan menggunakan vaccum rotary evaporator. Prinsip pemekatan dengan vaccum rotary evaporator adalah menguapkan pelarut dibawah titik didihnya seiring dengan penurunan tekanan dalam sistem. Hal ini memberikan keuntungan yaitu menghindari kerusakan terhadap senyawa hasil ekstraksi. Hasil pemekatan kemudian diletakkan diatas waterbath dan dipanaskan hingga menjadi ekstrak kental bebas penyari. Ekstraksi ini dilakukan sebanyak 3 kali replikasi. Hasil ratarata rendemen ekstrak yang diperoleh sebesar 34,0 %. 3. Hasil proses fraksinasi Ekstrak yang diperoleh kemudian difraksinasi dengan metode ekstraksi cair – cair. Prinsip metode ekstraksi cair – cair adalah partisi menggunakan dua pelarut yang tidak bercampur (Wells, 2003). Seluruh ekstrak yang diperoleh pada tiap replikasi, masing – masing dilarutkan dengan air hangat sebanyak 100 mL. Kemudian larutan ekstrak ini dimasukkan ke dalam corong pisah. Etil asetat ditambahkan sebanyak 100 mL ke dalam corong pisah sehingga perbandingan antara air : etil asetat dalam corong adalah 1 : 1. Terdapat dua fase yang terbentuk dari tahap ini. Fase etil asetat berada pada bagian atas dan fase air berada pada


40

bagian bawah dalam corong pisah. Hal ini disebabkan berat jenis etil asetat lebih kecil (0,898) dibandingkan berat jenis air (0,996). Fraksi etil asetat ditampung dalam wadah. Kemudian fase air diekstraksi kembali menggunakan etil asetat baru. Hal ini dilakukan sebanyak 3 kali. Semakin banyak ekstraksi cair – cair dilakukan maka efektifitas semakin tinggi (Wells, 2003). Hasil rata-rata persen rendemen fraksi yang diperoleh sebesar 0,6 %. Pemilihan etil asetat sebagai pelarut yang digunakan pada proses ekstraksi cair-cair didasarkan pada penelitian sebelumnya. Dalam penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012) disimpulkan bahwa jus buah jambu mete mengandung senyawa fenolik dan flavonoid yang tinggi. Penelitian Adou et al. (2012) menunjukkan hasil bahwa jus buah jambu mete mengandung flavonoid aglikon, yaitu kuersetin (flavonol) dan naringenin (flavonon). Etil asetat merupakan pelarut organik yang dapat menarik senyawa – senyawa flavonoid dalam sampel. Senyawa-senyawa flavonoid yang bersifat kurang polar seperti isoflavon, flavanon, methylated flavones, dan flavonol dapat diekstraksi menggunakan etil asetat (Andersen and Markham, 2006). D. Hasil Uji Kualitatif 1. Hasil uji kualitatif senyawa fenolik Uji kualitatif senyawa fenolik didasarkan pada reduksi asam fosfotungstat dalam larutan alkali menjadi fosfotungstat biru. Pada mulanya senyawa fenol akan mengalami oksidasi oleh reagen Folin Ciocalteu yang berisi asam fosfotungstat dan asam fosfomolibdat. Setelah oksidasi senyawa fenol, campuran akan tereduksi menjadi tungsten biru dan molibdenum. Perubahan


41

menjadi warna biru inilah yang digunakan sebagai indikator keberadaan senyawa fenolik dalam sampel. Hasil dari uji kualitatif fraksi etil asetat buah jambu mete (Gambar 4) menunjukkan perubahan warna menjadi biru, sama seperti kontrol positif. Hal ini berarti dalam fraksi etil asetat buah jambu mete mengandung senyawa – senyawa fenolik.

A

B

C

D

E

Gambar 4. Hasil uji kualitatif senyawa fenolik pada fraksi etil asetat buah jambu mete Keterangan Gambar 4: A = kontrol negatif (reagen Folin-Cioucalteu, dan natrium karbonat) B = kontrol positif (asam galat, reagen Folin-Cioucalteu, dan natrium karbonat) C = larutan uji (fraksi etil asetat buah jambu mete, reagen FolinCioucalteu, dan natrium karbonat) D = larutan asam galat dalam metanol : air (1:1) E = larutan fraksi etil asetat buah jambu mete dalam metanol : air (1:1) 2. Hasil uji kualitatif aktivitas antioksidan Uji kualitatif ini bertujuan untuk melihat ada atau tidaknya aktivitas antioksidan pada fraksi etil asetat buah jambu mete. Uji ini didasarkan pada


42

metode deoksiribosa. Pada prinsipnya reaksi Fenton akan menghasilkan suatu radikal hidroksi. Radikal hidroksi ini akan mendegradasi senyawa deoksiribosa menjadi malonaldehida (MDA). Dengan suatu pemanasan, produk degradasi berupa malonaldehida ini akan membentuk kompleks dengan asam tiobarbiturat (TBA). Reaksi pembentukan kompleks MDA – TBA (Gambar 5) ini akan menghasilkan kromogen berwarna merah muda. Apabila suatu senyawa memiliki aktivitas sebagai antioksidan ditambahkan kedalam campuran, maka intensitas warna yang dihasilkan dari kompleks MDA – TBA akan semakain memudar. Hal ini disebabkan karena radikal hidroksi akan berikatan dengan senyawa antioksidan sehingga degradasi deoksiribosa akan berkurang dan MDA yang terbentuk semakin sedikit.

Gambar 5. Reaksi pembentukan kromogen MDA-TBA


A

B

43

C

Gambar 6. Hasil uji kualitatif aktivitas antioksidan pada fraksi etil asetat buah jambu mete Keterangan Gambar 6 : A = kontrol negatif (tanpa penambahan senyawa antioksidan) B = kontrol positif (rutin) C = larutan uji (fraksi etil asetat buah jambu mete) Hasil uji kualitatif fraksi etil asetat buah jambu mete menunjukkan hasil positif (Gambar 6). Intensitas warna yang terbentuk pada sampel uji lebih pudar apabila dibandingkan dengan kontrol negatif. Hal ini berarti fraksi etil asetat buah jambu mete memiliki aktivitas sebagai antioksidan. E. Hasil Optimasi Metode Uji Fenolik Total 1. Penentuan Operating time Penentuan operating time bertujuan untuk mendapatkan waktu dimana reaksi antara sampel dan pereaksi berada pada kondisi optimum. Keadaan reaksi yang optimum ditunjukkan dengan nilai absorbansi yang relatif stabil. Pada saat awal terjadi reaksi, absorbansi senyawa yang berwarna akan terus meningkat hingga pada waktu tertentu akan diperoleh absorbansi yang stabil. Namun


44

semakin lama waktu pengukuran, ada kemungkinan senyawa berwarna tersebut akan mengalami kerusakan sehingga menyebabkan intensitas warnanya menurun dan absorbansinya juga menurun (Gandjar dan Rohman, 2007).

Absorbansi

Grafik Operating Time Untuk Penetapan Fenolik Total 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0

40 μg / mL 60 μg / mL 80 μg / mL 0

5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60 65 Waktu (menit)

Gambar 7. Grafik operating time (replikasi 1) untuk penetapan fenolik total Penentuan operating time pada metode Folin – Ciocalteu untuk penetapan kandungan fenolik total ini dilakukan selama 60 menit. Setiap 5 menit absorbansi larutan diukur pada panjang gelombang teoritis (750 nm). Absorbansi yang diperoleh selama 60 menit kemudian dilihat pada waktu keberapa menghasilkan absorbansi yang cenderung stabil atau selisihnya kecil. Gambar 7 menunjukkan grafik operating time pada replikasi 1. Operating time yang didapat untuk penetapan kandungan fenolik total adalah 35 menit. Pada waktu tersebut diperoleh nilai absorbansi yang stabil. 2. Penentuan panjang gelombang maksimum Penentuan

panjang

gelombang

maksimum

bertujuan

untuk

mendapatkan nilai serapan maksimum dari hasil reaksi antara asam galat dengan


45

reagen Folin-Cioucalteu. Pengukuran suatu analit harus pada panjang gelombang maksimum karena pada panjang gelombang maksimum kepekaannya tinggi, sehingga perubahan absorbansi untuk setiap satuan konsentrasi adalah yang paling besar (Gandjar dan Rohman, 2007). Pada penentuan panjang gelombang maksimum digunakan tiga tingkat konsentrasi yaitu rendah (40 µg/mL), sedang (60 µg/mL), dan tinggi (80 µg/mL). Tujuan dilakukan scanning pada tiga tingkat konsentrasi yang berbeda adalah untuk merepresentasikan panjang gelombang maksimum pada tiap konsentrasi. Pengukuran lambda maksimum dilakukan pada rentang panjang gelombang antara 600 – 800 nm. Tabel I. Hasil scanning panjang gelombang maksimum untuk penentuan fenolik total Konsentrasi Larutan Asam Galat 40 µg/mL 60 µg/mL 80 µg/mL

Lambda maksimum hasil scanning 739 nm 739 nm 738 nm

Lambda maksimum yang digunakan

Lambda maksimum teoritis

739 nm

750 nm

Panjang gelombang maksimum yang digunakan adalah 739 nm. Hasil yang diperoleh dari hasil scanning panjang gelombang maksimum menunjukkan hasil yang berbeda dengan lambda maksimum teoritis (Tabel I). Hal ini dapat disebabkan oleh beberapa hal antara lain jenis pelarut, pH larutan, suhu, konsentrasi tinggi, dan zat – zat pengganggu (Gandjar dan Rohman, 2007). F. Penetapan Kandungan Fenolik Total Senyawa fenolik termasuk senyawa fenol sederhana, asam fenolat, tanin, flavonoid, lignan, dan lignin merupakan metabolit sekunder yang banyak terkandung dalam tanaman. Senyawa ini memiliki peran antara lain sebagai pigmentasi, antioksidan, dan pelindung terhadap sinar ultraviolet (Blainski et al.,


46

2013). Berdasarkan pada peran yang cukup penting maka keberadaan senyawa fenolik dalam suatu tanaman perlu untuk dikuantifikasi. Banyak metode yang digunakan untuk mengkuantifikasi senyawa fenolik. Salah satu metode yang sering digunakan adalah kuantifikasi dengan spektrofotometri.

Reaksi

kolorimetri

banyak

digunakan

dalam

metode

spektrofotometri UV/VIS. Metode ini akan mengukur konsentrasi senyawa fenolik secara total dalam ekstrak tumbuhan. Pada prinsipnya, senyawa fenolik dalam ekstrak tumbuhan akan bereaksi dengan reagen redoks tertentu (Folin Ciocalteu-reagen) untuk membentuk kompleks biru yang dapat diukur dengan cahaya tampak. Reaksi pembentukan kromofor biru didasari oleh kompleks fosfotungstat-fosfomolibdat. Pada reaksi ini serapan yang dihasilkan bergantung pada larutan alkali dan konsentrasi senyawa fenolik (Blainski et al., 2013).

Gambar 8. Struktur asam galat Penetapan kandungan fenolik total dimulai dengan membuat kurva baku asam galat. Asam galat (Gambar 8) digunakan sebagai standar kurva baku karena asam galat merupakan senyawa polifenol yang dapat menggambarkan senyawa fenolik

dalam suatu sampel. Pembuatan kurva baku ini dilakukan

sebanyak tiga kali replikasi. Kurva baku ini menghasilkan suatu persamaan regresi linier yang digunakan dalam menentukan jumlah kandungan fenolik total dalam sampel. Tidak semua persamaan regresi linier digunakan dalam


47

menentukan kandungan fenolik total. Persamaan regresi dengan linieritas terbaik (nilai R mendekati 1) akan digunakan untuk menentukan kandungan fenolik total. Tabel II menunjukkan hasil pengukuran absorbansi kurva baku asam galat. Tabel II. Hasil pengukuran absorbansi kurva baku asam galat. Replikasi 1

Replikasi 2

Replikasi 3

Konsentrasi Absorbansi 40,4 μg/mL 0,3108 50,5 μg/mL 0,3931 60,6 μg/mL 0,4652 70,7 μg/mL 0,5665 80,8 μg/mL 0,6459 y = 0,0084x – 0,0299 r = 0,9988

Konsentrasi Absorbansi 40,8 μg/mL 0,3674 51,0 μg/mL 0,4404 61,2 μg/mL 0,5026 71,4 μg/mL 0,5731 81,6 μg/mL 0,6559 y = 0,007x + 0,0821 r = 0,9989

Konsentrasi Absorbansi 40,4 μg/mL 0,3093 50,5 μg/mL 0,3889 60,6 μg/mL 0,4553 70,7 μg/mL 0,5253 80,8 μg/mL 0,5916 y = 0,0069x + 0,0335 r = 0,9994

Grafik Kurva Baku Asam Galat 0,7 y = 0.0069x + 0.0335 R = 0.9994

Absorbansi

0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0 0

20

40

60

80

100

Konsentrasi (μg/mL)

Gambar 9. Kurva baku asam galat untuk penetapan kandungan fenolik total Persamaan yang digunakan dalam menentukan kandungan fenolik total adalah persamaan regresi dari replikasi ketiga, yaitu y = 0,0069x + 0,0335 dengan linieritas sebesar 0,9994. Nilai linieritas menunjukkan korelasi antara konsentrasi


48

dan absorbansi yang dihasilkan. Semakin baik nilai linieritas (nilai R sama dengan 1 atau mendekati 1) maka korelasi juga semakin baik. Tabel III. Hasil penetapan kandungan fenolik total fraksi etil asetat buah jambu mete

Replikasi 1 Replikasi 2 Replikasi 3

Konsentrasi

Absorbansi

202 μg/mL 202 μg/mL 204 μg/mL

0,4808 0,5219 0,5165

Kandungan fenolik total 320,921 350,409 346,535

Rata rata

% CV

339,3 ± 13,1

3,8 %

Tabel III menunjukkan hasil pengukuran sampel uji untuk penentuan kandungan fenolik total. Absorbansi sampel yang diperoleh kemudian dimasukkan ke dalam persamaan regresi linier yang telah didapatkan. Hasil perhitungan menunjukkan bahwa fraksi etil asetat buah jambu mete memiliki nilai kandungan fenolik total sebesar 339,3 ± 13,1 mg ekivalen asam galat. Penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012) menyatakan kandungan senyawa fenolik pada jus buah jambu mete sebesar 1653,8 ± 2.3 sampai 2374,2 ± 5.4 mg ekivalen asam galat. Apabila dibandingkan antara penelitian ini dengan penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012), hasil senyawa fenolik pada penelitian ini tergolong rendah. Hal ini dikarenakan adanya proses oksidasi oleh enzim polifenol oksidase saat proses pengeringan, sehingga menyebabkan kerusakan pada senyawa polofenol yang ada pada buah jambu mete. G. Hasil Optimasi Metode Uji Aktivitas Antioksidan 1. Penentuan Operating time Pada umumnya penentuan operating time dilakukan jika pengukuran yang dilakukan merupakan hasil reaksi atau pembentukan warna. Operating time merupakan waktu yang dibutuhkan suatu senyawa untuk bereaksi dengan


49

senyawa lain hingga terbentuk senyawa produk yang stabil. Produk yang stabil ini dapat dilihat dari hasil pembacaan absorbansi yang menunjukkan nilai absorbansi yang tetap atau selisihnya kecil. Tabel IV. Hasil penentuan operating time uji aktivitas antioksidan Menit ke 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60

Absorbansi 0,6267 0,6278 0,6298 0,6295 0,6313 0,6310 0,6318 0,6327 0,6344 0,6327 0,6339 0,6353 0,6360

Penentuan operating time metode deoksiribosa untuk menentukan aktivitas antioksidan dilakukan selama 60 menit. Pengukuran absorbansi dilakukan setiap 5 menit sekali pada panjang gelombang teoritis, yaitu 532 nm. Operating time ditentukan dengan melihat pada menit keberapa absorbansi yang dihasilkan stabil. Hasil menunjukkan bahwa pada waktu 20 menit absorbansi yang dihasilkan stabil (Tabel IV). 2. Penentuan panjang gelombang maksimum Penentuan panjang gelombang maksimum perlu dilakukan karena pada panjang gelombang maksimum serapan yang dihasilkan suatu sampel juga maksimum. Pada panjang gelombang maksimum perubahan konsentrasi akan menghasilkan selisih serapan yang paling besar karena pada panjang gelombang


50

maksimum memiliki kepekaan yang paling tinggi. Pada penelitian ini dilakukan tiga variasi penambahan larutan deoksiribosa dalam penentuan lambda maksimum. Tiga variasi penambahan larutan deoksiribosa, yaitu sebesar 200 µL, 300 µL, dan 400 µL. Variasi penambahan larutan deoksiribosa akan menyebabkan konsentrasi larutan deoksiribosa dalam sistem berbeda – beda sehingga diharapkan dapat merepresentasikan panjang gelombang maksimum pada tiap tingkat konsentrasi. Tabel V menunjukkan hasil scanning panjang gelombang maksimum untuk uji aktivitas antioksidan. Penentuan panjang gelombang maksimum dilakukan pada rentang panjang gelombang 400 – 600 nm. Panjang gelombang maksimum yang digunakan dalam penelitian ini adalah 530,5 nm. Hasil scanning ini tidak jauh berbeda dengan panjang gelombang maksimum teoritis. Tabel V. Hasil scanning panjang gelombang maksimum untuk uji aktivitas antioksidan Penambahan larutan deoksiribosa 200 µL 300 µL 400 µL

Lambda maksimum hasil scanning 530,5 nm 530,5 nm 531,0 nm

Lambda maksimum yang digunakan

Lambda maksimum teoritis

530,5 nm

532 nm

H. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Uji aktivitas antioksidan dilakukan dengan metode deoksiribosa. Pada prinsipnya metode ini akan menghasilkan suatu radikal hidroksi dari reaksi Fenton yang melibatkan ferri klorida, EDTA, dan H2O2. Radikal hidroksi yang terbentuk akan mendegradasi deoksiribosa menjadi malonaldehida pada pH 7. Hal ini juga dipercepat dengan penambahan vitamin C. Hasil degradasi MDA akan membentuk suatu kromogen berwarna merah muda bila bereaksi dengan TBA.


51

Pembentukan kromogen ini dipercepat dengan adanya pemanasan. Kromogen inilah yang kemudian diukur absorbansinya dan digunakan dalam menentukan aktivitas antioksidan. Berikut persamaan reaksi yang terjadi : Fe2+- EDTA + O2

Fe3+-EDTA + O2-

Fe3+-EDTA + ascorbate

Fe2+- EDTA + oxidized ascorbate

Fe2+- EDTA + H2O2

OH- + OH + Fe3+-EDTA

.

OH + deoxyribose

MDA

2TBA + MDA

chromogen

.

Proses pembentukan kromogen berwarna merah muda diawali dengan mereaksikan campuran yang telah diinkubasi dengan asam trikloroasetat dan asam tiobarbiturat.

Penambahan

TCA

akan

menurunkan

kecepatan

degradasi

deoksiribosa oleh radikal hidroksi. Hal ini dapat terjadi karena pada suasana asam oksidasi vitamin C akan terhambat. Akibatnya reduksi Fe3+ menjadi Fe2+ terhambat sehingga pembentukan radikal hidroksi juga akan terhambat. Suasana asam yang ditimbulkan oleh TCA akan mengkatalis pembentukan kompleks MDA-TBA. Intensitas warna yang terbentuk akan berkurang seiring dengan adanya senyawa antioksidan yang ditambahkan ke dalam sistem. Menurut penelitian Adou et al. (2012) buah jambu mete segar memiliki kandungan flavonoid yang cukup tinggi sehingga dapat memberikan aktivitas antioksidan. Aktivitas antioksidan dinyatakan dalam IC25. Nilai IC25 merupakan konsentrasi sampel yang mampu menghambat 25% radikal bebas. Nilai ini diperoleh dengan menggunakan persamaan regresi linier dimana nilai y = 25. Tabel VI menunjukkan hasil


52

persamaan regresi linier yang didapat dari 3 kali replikasi pengukuran fraksi etil asetat buah jambu mete. Tabel VI. Hasil pengukuran absorbansi fraksi etil asetat buah jambu mete Replikasi

Replikasi 1

Replikasi 2

Replikasi 3

Konsentrasi (μg/mL) 100,8 201,6 302,4 403,2 504,0 100,6 201,2 301,8 402,4 503,0 100,2 200,4 300,6 400,8 501,0

Absorbansi Kontrol Negatif

0,6378

0,4524

0,7128

Absorbansi Sampel

% IC

0,6211 0,5497 0,4684 0,4242 0,3217 0,3744 0,3553 0,3309 0,3013 0,2874 0,6112 0,5858 0,5444 0,4808 0,4403

2,618 13,813 26,560 33,490 49,561 17,241 21,463 26,857 33,400 36,472 14,254 17,817 23,625 32,548 38,230

Persamaan regresi linier y = 0,1127x – 8,8601 r = 0,9946

y = 0,0501x + 11,967 r = 0,9950

y = 0,0626x + 6,4899 r = 0,9905

Tabel VII. Hasil aktivitas antioksidan fraksi etil asetat buah jambu mete Replikasi 1 Replikasi 2 Replikasi 3

IC25 (μg/mL) 300,445 260,139 295,689

Rata - rata

% CV

285,4 ± 17,9

6,3 %

Parameter IC25 digunakan pada penelitian ini karena nilai % IC tidak mencapai 50%. Pada umumnya parameter aktivitas antioksidan yang sering digunakan adalah IC50. Parameter IC50 dapat menggambarkan setengah dari kekuatan maksimum. Parameter ini lebih baik dihitung secara intrapolasi. Perhitungan secara intrapolasi lebih akurat dibandingkan ekstrapolasi. Persen IC yang diperoleh tidak mencapai 50% sehingga bila dipaksakan perhitungan parameter IC50 harus dilakukan secara ekstrapolasi dimana keakuratannya kurang


53

baik. Oleh karena itu untuk menjaga perhitungan tetap akurat maka parameter yang digunakan adalah IC25 dan dihitung secara intrapolasi. Aktivitas antioksidan kemudian ditetapkan menggunakan persamaan regresi linier yang diperoleh pada tiap replikasi. Hasil dari penelitian ini menunjukkan bahwa fraksi etil asetat buah jambu mete memiliki potensi yang kecil dalam memberikan aktivitas antioksidan. Tabel VII menunjukkan hasil pengukuran aktivitas antioksidan yang dinyatakan dalam IC25 pada fraksi etil asetat buah jambu mete. Hasil IC25 pada fraksi etil asetat buah jambu mete yang diperoleh sebesar 285,4 ± 17,9 µg/mL. Tabel VIII. Hasil pengukuran absorbansi rutin Replikasi

Replikasi 1

Replikasi 2

Replikasi 3

Konsentrasi (μg/mL) 5,1 10,2 15,3 20,4 25,5 5,05 10,10 15,15 20,20 25,25 5,05 10,10 15,15 20,20 25,25

Absorbansi Kontrol Negatif

0,7697

0,6427

0,7006

Absorbansi Sampel

% IC

0,6788 0,6404 0,6112 0,5675 0,5524 0,5568 0,5315 0,4944 0,4775 0,4498 0,5940 0,5684 0,5311 0,5095 0,4867

11,810 16,799 20,592 26,270 28,232 13,365 17,302 23,075 25,704 30,014 15,216 18,870 24,194 27,277 30,531

Persamaan regresi linier

y = 0,8297x + 8,046 r = 0,9910

y = 0,8257x + 9,3823 r = 0,9949

y = 0,773x + 11,506 ; r = 0,9952

Kontrol positif digunakan sebagai pembanding aktivitas antioksidan. Pada penelitian ini digunakan rutin yang termasuk senyawa flavonoid sebagai pembanding. Rutin merupakan salah satu senyawa flavonoid glikosida. Rutin


54

termasuk ke dalam golongan flavon. Metode deoksiribosa memiliki kelemahan yaitu senyawa yang digunakan hendaknya larut air, untuk itu rutin digunakan sebagai kontrol positif karena rutin dapat larut dalam air. Rutin juga sudah menjadi sediaan antioksidan di pasaran sehingga terbukti memiliki potensi sebagai antioksidan. Hasil aktivitas antioksidan rutin dapat dilihat pada Tabel IX. Hasil IC25 pada kontrol positif rutin yang diperoleh sebesar 18,9 ± 1,2 µg/mL. Tabel IX. Hasil uji aktivitas antioksidan rutin Replikasi 1 Replikasi 2 Replikasi 3

IC25 (μg / mL) 20,434 18,915 17,457

Rata - rata

% CV

18,935 ± 1,216

6,419

Hasil antara sampel dan kontrol positif sangat jauh berbeda. Hal ini menunjukkan bahwa sampel kurang memiliki potensi aktivitas antioksidan. Padahal pada penelitian Adou et al. (2012) disebutkan bahwa buah segar jambu mete memiliki senyawa flavonoid sebesar 298,6 ± 1,5 sampai 479,8 ± 2,6 mg/L sehingga memiliki potensi sebagai antioksidan. Hal ini dapat terjadi karena pada penelitian kali ini digunakan simplisia kering buah jambu mete. Tahap pengeringan simplisia ini kemungkinan berperan dalam menurunkan kandungan senyawa antioksidan yang terdapat dalam buah jambu mete. Pada tahap pengeringan yang bertujuan untuk menginaktivasi enzim berjalan kurang baik. Hal ini ditunjukkan dengan terjadinya peristiwa browning, karena enzim polifenol oksidase masih mampu mengoksidasi senyawa fenolik yang terkandung dalam buah jambu mete. Akibatnya senyawa fenol dalam sampel berkurang. Hal ini diperkuat dengan data penelitian yang dilakukan oleh Adou et al. (2012). Kandungan fenolik total dari buah segar jambu mete berkisar antara 1653,8 ± 2,3


55

sampai 2374,2 ± 5,4 mg ekivalen asam galat, sedangkan pada penelitian ini kandungan fenolik total simplisia kering buah jambu mete hanya 339,3 ± 13,1 mg ekivalen asam galat. Penurunan kandungan senyawa fenolik karena adanya proses browning ini berdampak pada menurunnya aktivitas antioksidan. Senyawa fenolik yang mengalami oksidasi akan kehilangan gugus hidroksil pada cincin aromatisnya. Seperti diketahui gugus hidroksil pada cincin aromatis senyawa fenolik inilah yang mempunyai peran sebagai antioksidan. Hilangnya gugus hidroksil ini menyebabkan kemampuan antioksidan dari senyawa tersebut menurun atau hilang. Hal ini menyebabkan IC25 yang didapat pada fraksi etil asetat ekstrak etanol buah jambu mete sebesar 285,4 ± 17,9 µg/mL.


BAB V KESIMPULAN DAN SARAN

A. Kesimpulan 1. Kandungan fenolik total yang dinyatakan dalam mg ekivalen per gram asam galat pada fraksi etil asetat buah jambu mete sebesar 339,3 ± 13,1 mg ekivalen asam galat. 2. Aktivitas antioksidan yang dinyatakan dalam nilai IC25 pada fraksi etil asetat buah jambu mete sebesar 285,4 ± 17,9 µg/mL.

B. Saran 1.

Perlu dilakukan pengujian aktivitas antioksidan pada buah segar jambu mete.

2.

Perlu dilakukan penetapan kandungan fenolik total menggunakan metode lain, contohnya metode penetapan kandungan fenolik total menggunakan ferri klorida.

3.

Perlu dilakukan pemilahan warna buah semu jambu mete yang akan digunakan sebagai sampel uji dalam penelitian.

4.

Perlu dilakukan inaktivasi enzim polifenol oksidase dengan cara yang tepat, contohnya dengan memberikan pemanasan pada sampel menggunakan microwave (Reyes et al., 2013).

56


57

DAFTAR PUSTAKA Adou, M., Kouassi, D.A., Tetchi, F.A., and Amani, N.G., 2012, Phenolic profile of cashew apple juice (Anacardium occidentale L.) from Yamoussoukro and Korhogo (Côte d’Ivoire), Journal of Applied Biosciences, 49 : 3331– 3338. Andersen, O. M., and Markham, K. R., 2006, Flavonoid : Chemistry, Biochemistry and Applications, CRC Press, USA, pp. 2. Blainski, A., Lopes, G.C., and de Mello, J.C.P., 2013, Application and Analysis of the Folin Ciocalteu Method for the Determination of the Total Phenolic Content from Limonium brasiliense L, Molecules, 18 : 6852-6865. Cadenas, E. and Packer, L., 2002, Handbook of Antioxidant, Second Edition, USA, Marcell Dekker Inc, pp. 4. Cindric, I.J., Kunstic, M., Zeiner, M., Stingeder, G., and Rusak, G., 2011, Sample Preparation Methods for the Determination of the Antioxidative Capacity of Apple Juices, Croat. Chem. Acta, 84 (3), 435-438. DEP Division of Water, 2011, Energy and Environment Cabinet, DEP, http://water.ky.gov/permitting/Pages/FAQs.aspx, diakses tanggal 16 Juni 2015. Fernandes, F., Valenta, P., Sousa, C., Pereira, J. A., Seabra, R. M., and Andrade, P. B., 2007, Chemical and antioxidative assessment of dietary turnip (Brassica rapa var. rapa L.), Food Chemistry, 105, 1003–1010. Fessenden, R. J., and Fessenden, J.S., 1982, Kimia Organik, Edisi Ketiga, Jilid 1, Jakarta, Erlangga, pp. 240. Fessenden, R. J., and Fessenden, J.S., 1982, Kimia Organik, Edisi Ketiga, jilid 2, Jakarta, Erlangga, pp. 436 – 437. Gandjar, I. G., dan Rohman, A., 2007, Kimia Farmasi Analisis, Pustaka Pelajar, Yogyakarta, pp. 253 – 254. Gupta, V. K., and Sharma, S. K., 2006, Plants as Natural Antioxidant, Natural Product Radiance, Vol. 5(4) : 326-334.


58

Halliwell, B., Gutteridge, J.M.C., and Aruoma, O.I., 1987, The Deoxyribose Method: A Simple “Test-Tube” Assay for Determination of Rate Constants for Reactions of Hydroxyl Radicals, ANALYTICAL BIOCHEMISTRY (165) : 215-219. Handa, S.S., Khanuja, S. P. S., Longo, G., and Rakesh, D.D, 2008, Extraction Technologies for Medicinal and Aromatic Plants, International Centre For Science And High Technology, Trieste, pp. 22 – 23. He, Q., Luo, Y., and Chen, P., 2008, Elucidation Of The Mechanism Of Enzymatic Browning Inhibition By Sodium Chlorite, Food Chemistry (110):47–851. Hemingway, R., and Peter, L., 1991, Plant Polyphenols : Synthesis, Properties, Significance, Vol. 59, Plenum Press, New York, pp. 263-264. Jaiswal, Y.S., Tatke, P.A., Gabhe, S.Y., and Vaidya, A., 2010, Antioxidant Activity of Various Extracts of Leaves of Anacardium Occidentale (Cashew), Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences, 1(4):112-119. Khoddami, A., Wilkes, M.A., and Roberts, T.H., 2013, Techniques for Analysis of Plant Phenolic Compounds, Molecules, 18 : 2328-2375. Morton, J., 1987, Fruits of Warm Climates, Mabolo, Miami, FL, pp. 239-240. Newson, T., 2003, Stainless steel for Hygienic Applications, European Confederation of Iron and Steel Industries, Sheffield, pp. 1-2. Nonhebel, D.C., and Walton, J.C., 1974, Free-radical Chemistry; Structure and Mechanism, Cambridge University Press, London, pp. 1-6. Pallipane, K.B., and Rolle, R., 2008, Good Practice For Assuring The PostHarvest Quality Of Exotic Tree Fruit Crops Produced In Jamaica, FAO, Rome, pp. 12. Prihatman, K., 2000, Tentang Budidaya Pertanian : Jambu Mete, Kantor Deputi Menegristek Bidang Pendayagunaan dan Pemasyarakatan Ilmu Pengetahuan dan Teknologi, Jakarta, pp. 1-12. Prior, R. L., Wu, X., and Schaich, K., 2005, Standardized Methods for the Determination of Antioxidant Capacity and Phenolics in Foods and Dietary Supplements, J. Agric. Food Chem., 53 : 4290 – 4302.


59

Reyes, Y.C., Alvarez, L.D., Baez, D.A., Esquivel, O.O., and Moreno, A.O., 2013, Polyphenol Oxidase Inactivation by Microwave Oven and Its Effect on Phenolic Profile of Loquat (Eriobotrya japonica) Fruit, Food and Nutrition Sciences, 4:87-94. Sochor, J., Zitka, O., Skutkova, H., Pavlik, D., Babula, P., Krska, B., Horna, A., Adam, V., Provaznik, I., and Kizek, R., 2010, Content of Phenolic Compounds and Antioxidant Capacity in Fruits of Apricot Genotypes, Molecules, 15(9) : 6285-6305. Steenis, C. G. G. J. V., 1981, Flora Untuk Sekolah di Indonesia, Pradnya Paramita, Jakarta. Sweet, D. V., 1997, Registry Of Toxic Effects Of Chemical Substances (Rtecs®) Comprehensive Guide To The Rtecs®, U.S. Department of Health and Human Services, Ohio, pp. 21-22. Thomas, A.N.S., 2012, Tanaman Obat Tradisional I, Kanisius, Yogyakarta, pp. 96-97. Valko, M., Leibfritz, D., Moncol, J., Cronin, M. T. D., Mazur, and M., Telser, J., 2006, Free Radicals and Antioxidants in Normal Physiological Functions and Human Disease, The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 39 : 44–84. Vermerris, W., and Nicholson, R., 2006, Phenolic Compound Biochemistry, Springer, USA, pp. 1-2. Wang, L,. and Weller, C.L., 2006, Recent Advances In Extraction Of Nutraceuticals From Plants, Trends in Food Science & Technology (17):300–312. Watson, D. G., 2010, Analisis Farmasi : Buku Ajar Untuk Mahasiswa Farmasi Dan Praktisi Kimia Farmasi, Edisi 2, EGC, Jakarta, pp. 105. Wells, M. J. M., 2003, Principles Of Extraction And The Extraction Of Semivolatile Organics From Liquids, John Wiley & Sons Inc, pp. 57. Winarsi, H., 2007, Antioksidan Alami dan Radikal Bebas, Kanisius, Yogyakarta, pp. 78 – 80.


60

LAMPIRAN


Lampiran 1. Surat determinasi tanaman

61


62

Lampiran 2. Gambar tanaman jambu mete di desa Karangtengah, Imogiri, Bantul


63


64

Lampiran 3. Perhitungan rendemen ekstrak dan fraksi a. Ekstrak etanol buah jambu mete Replikasi 1 (gram) Replikasi 2 (gram) Bobot simplisia 102,25 103,63 yang digunakan Bobot cawan 51,2046 51,5231 kosong Bobot cawan + 83,9803 88,7676 ekstrak Bobot ekstrak 32,7757 37,2445

b. Fraksi etil asetat buah jambu mete Replikasi 1 Bobot simplisia 102,25 yang digunakan Bobot cawan 41,1872 kosong Bobot cawan + 41,7741 fraksi etil asetat Bobot fraksi etil 0,5869 asetat

Replikasi 3 (gram) 100,89 61,3214 95,6696 34,3482

Replikasi 2

Replikasi 3

103,63

100,89

41,2963

40,8761

41,9494

41,4911

0,6531

0,6150


65

Lampiran 4. Data penimbangan untuk penetapan kandungan fenolik total a. Penimbangan asam galat 1. Asam galat untuk operating time

Bobot kertas Bobot kertas + zat Bobot kertas + sisa Bobot zat

Replikasi 1 (gram) 0,2669 0,2773 0,2672 0,0101

Replikasi 2 (gram) 0,2675 0,2776 0,2675 0,0101

Replikasi 3 (gram) 0,2697 0,2799 0,2699 0,0100

2. Asam galat untuk lamda maksimum Bobot kertas Bobot kertas + zat Bobot kertas + sisa Bobot zat

0,2487 g 0,2591 g 0,2488 g 0,0103 g

3. Asam galat untuk seri konsentrasi kurva baku


Replikasi 1 (gram) 0,2501 0,2604 0,2503 0,0101

b. Penimbangan fraksi etil asetat Replikasi 1 (gram) Bobot gelas Bekker 63,0473 kosong Bobot gelas Bekker 63,0574 + fraksi Bobot fraksi 0,0101

Replikasi 2 (gram) 0,2430 0,2536 0,2434 0,0102

Replikasi 3 (gram) 0,2497 0,2599 0,2498 0,0101

Replikasi 2 (gram) 61,2744

Replikasi 3 (gram) 61,8427

61,2845

61,8529

0,0101

0,0102


66

Lampiran 5. Data perhitungan konsentrasi asam galat dan fraksi etil asetat untuk penetapan kandungan fenolik total a. Contoh perhitungan konsentrasi asam galat Bobot asam galat replikasi 1 = 0,0101 g = 10,1 mg ⁄ Perhitungan seri konsentrasi replikasi 1 Seri 1 : V1. C1 = V2. C2 0,4 mL . 1,01 = 10 mL . C2 C2 = 0,0404 mg/mL = 40,4 μg/ mL Seri 2 : V1. C1 = V2. C2 0,5 mL . 1,01 = 10 mL . C2 C2 = 0,0505 mg/mL = 50,5 μg / mL Sei 3 : V1. C1 = V2. C2 0,6 mL . 1,01 = 10 mL . C2 C2 = 0,0606 mg/mL = 60,6 μg / mL Seri 4 : V1. C1 = V2. C2 0,7 mL . 1,01 = 10 mL . C2 C2 = 0,0707 mg/mL = 70,7 μg / mL


Seri 5 : V1. C1 = V2. C2 0,8 mL . 1,01 = 10 mL . C2 C2 = 0,0808 mg/mL = 80,8 μg / mL

Seri 1 Seri 2 Seri 3 Seri 4 Seri 5

Replikasi 2 40,8 μg / mL 51,0 μg / mL 61,2 μg / mL 71,4 μg / mL 81,6 μg / mL


b. Contoh perhitungan konsentrasi fraksi etil asetat Bobot fraksi etil asetat replikasi 1 = 0,0101 gram = 10,1 mg ⁄ Pengenceran fraksi etil asetat replikasi 1 V1 . C1 = V2 . C2 2 mL . 1,01 = 10 . C2 C2 = 0,202 mg/mL = 202 μg / mL

Konsentrasi fraksi

Replikasi 2 202 μg / mL

Replikasi 3 204 μg / mL

67


Lampiran 6. Hasil optimasi operating time untuk penetapan kandungan fenolik total a. Replikasi 1 Menit Ke -

Absorbansi pada panjang gelombang 750 nm 40 μg / mL 60 μg / mL 80 μg / mL 5 0,2631 0,4249 0,5785 10 0,2838 0,4982 0,6763 15 0,2957 0,5254 0,7068 20 0,3025 0,5337 0,7395 25 0,3075 0,5389 0,7469 30 0,3090 0,5399 0,7513 35 0,3165 0,5381 0,7507 40 0,3177 0,5389 0,7511 45 0,3198 0,5389 0,7505 50 0,3202 0,5388 0,7487 55 0,3204 0,5370 0,7451 60 0,3204 0,5345 0,7410 Pada replikasi 1, operating time yang didapat 35 - 40 menit b. Replikasi 2 Menit Ke -

Absorbansi pada panjang gelombang 750 nm 40 μg / mL 60 μg / mL 80 μg / mL 5 0,2915 0,3989 0,5486 10 0,3141 0,4554 0,5791 15 0,3280 0,4766 0,6035 20 0,3368 0,4865 0,6167 25 0,3427 0,4927 0,6271 30 0,3472 0,4958 0,6332 35 0,3496 0,4985 0,6371 40 0,3519 0,4999 0,6399 45 0,3533 0,4995 0,6415 50 0,3542 0,4999 0,6431 55 0,3550 0,4991 0,6440 60 0,3553 0,4972 0,6433 Pada replikasi 2, operating time yang didapat 35 - 40 menit

68


c. Replikasi 3 Menit Ke -

Absorbansi pada panjang gelombang 750 nm 40 μg / mL 60 μg / mL 80 μg / mL 5 0,2820 0,4226 0,5562 10 0,3088 0,4501 0,5948 15 0,3231 0,4656 0,6191 20 0,3317 0,4767 0,6332 25 0,3379 0,4839 0,6422 30 0,3429 0,4894 0,6488 35 0,3457 0,4927 0,6537 40 0,3478 0,4954 0,6569 45 0,3503 0,4972 0,6591 50 0,3507 0,4982 0,6610 55 0,3513 0,4990 0,6620 60 0,3521 0,4996 0,6630 Pada replikasi 2, operating time yang didapat 35 - 40 menit

69


Lampiran 7. Optimasi panjang gelombang maksimum untuk penetapan kandungan fenolik total a. Konsentrasi 40

70


b. Konsentrasi 60

71


c. Konsentrasi 80

72


Lampiran 8. Hasil pengukuran kurva baku untuk penetapan kandungan fenolik total. a. Replikasi 1 Seri 1 2 3 4 5

Konsentrasi 40,4 μg / mL 50,5 μg / mL 60,6 μg / mL 70,7 μg / mL 80,8 μg / mL

Absorbansi 0,3108 0,3931 0,4652 0,5665 0,6459

Persamaan kurva baku

Absorbansi 0,3674 0,4404 0,5026 0,5731 0,6559


Absorbansi 0,3093 0,3889 0,4553 0,5253 0,5916


y = 0,0084x – 0,0299 r = 0,9988

b. Replikasi 2 Seri 1 2 3 4 5


y = 0,007x + 0,0821 r = 0,9989

c. Replikasi 3 Seri 1 2 3 4 5


y = 0,0069x + 0,0335 r = 0,9994

73


74

Lampiran 9. Perhitungan kandungan fenolik total fraksi etil asetat


Konsentrasi

Absorbansi

202 μg/mL 202 μg/mL 204 μg/mL

0,4808 0,5219 0,5165

Kandungan fenolik total 320,921 350,409 346,535

Rata rata

% CV

339,288 ± 13,083

3,856 %

Contoh perhitungan kandungan fenolik total replikasi 1 : y

= 0,0069x + 0,0335

0,4808 = 0,0069x + 0,0335 x

= 64,83 μg / mL = 0,06483 mg / mL

Bobot fraksi = 0,0101 gram

Maka kandungan fenolik total dalam sampel replikasi 1 sebesar 320,921 mg ekivalen per gram asam galat.


Lampiran 10. Perhitungan konsentrasi bahan untuk metode deoksiribosa a. Ferri Klorida 1 mM

b. EDTA 1 mM

BM = 270,2957

BM = 292,24

Bobot yang ditimbang = 0,0135 g


V1 . C1 = V2 . C2

V1 . C1 = V2 . C2

2 . 0,00495 = 10 . C2

2 . 0,004996 = 10 . C2

C2 = 0,000999 M = 0,999 mM

C2 = 0,000999 M = 0,999 mM

c. Vitamin C 1 mM

d. Deoksiribosa 2,5 mM

BM = 176,12

BM = 134,13



V1 . C1 = V2 . C2

V1 . C1 = V2 . C2

1 . 0,009993 = 10 . C2

4 . 0,00495 = 25 . C2

C2 = 0,000999 M = 0,999 mM

C2 = 0,002493 M = 2,493 mM

75


e. NaH2PO4 20 mM

f. KH2PO4 20 mM

BM = 141,96

BM = 136,09



g. TCA 5%

h. TBA 1%



⁄

⁄

76


Lampiran 11. Penimbangan dan perhitungan konsetrasi fraksi etil asetat untuk pengukuran aktivitas antioksidan a. Penimbangan fraksi etil asetat

Bobot gelas Bekker kosong Bobot gelas Bekker + fraksi Bobot fraksi

Replikasi 1 (gram)

Replikasi 2 (gram)

Replikasi 3 (gram)

61,0775

62,1720

61,0797

61,1279

62,2223

61,1298

0,0504

0,0503

0,0501

b. Contoh perhitungan konsentrasi fraksi etil asetat Bobot fraksi etil asetat replikasi 1 = 0,0504 g = 50,4 mg ⁄ Perhitungan seri konsentrasi replikasi 1 Seri 1 : V1. C1 = V2. C2 1 mL . 1,008 = 10 mL . C2 C2 = 0,1008 mg/mL = 100,8 μg/ mL Seri 2 : V1. C1 = V2. C2 2 mL . 1,008 = 10 mL . C2 C2 = 0,2016 mg/mL = 201,6 μg / mL Sei 3 : V1. C1 = V2. C2 3 mL . 1,008 = 10 mL . C2 C2 = 0,3024 mg/mL = 302,4 μg / mL

77


Seri 4 : V1. C1 = V2. C2 4 mL . 1,008 = 10 mL . C2 C2 = 0,4032 mg/mL = 403,2 μg / mL Seri 5 : V1. C1 = V2. C2 5 mL . 1,008 = 10 mL . C2 C2 = 0,5040 mg/mL = 504,0 μg / mL




78


79

Lampiran 12. Penimbangan dan perhitungan konsentrasi rutin untuk pengukuran aktivitas antioksidan a. Penimbangan rutin


Replikasi 1 (gram) 0,2653 0,2755 0,2653

Replikasi 2 (gram) 0,2573 0,2674 0,2573

Replikasi 3 (gram) 0,2504 0,2607 0,2506

0,0102

0,0101

0,0101

b. Contoh perhitungan konsentrasi rutin Bobot rutin replikasi 1 = 0,0102 gram = 10,2 mg ⁄ Perhitungan seri konsentrasi replikasi 1


Seri 1 : V1. C1 = V2. C2 0,5 mL . 102 μg/ mL = 10 mL . C2 C2 = 5,1 μg/ mL Seri 2 : V1. C1 = V2. C2 1 mL . 102 μg/ mL = 10 mL . C2 C2 = 10,2 μg / mL Sei 3 : V1. C1 = V2. C2 1,5 mL . 102 μg/ mL = 10 mL . C2 C2 = 15,3 μg / mL Seri 4 : V1. C1 = V2. C2 2 mL . 102 μg/ mL = 10 mL . C2 C2 = 20,4 μg / mL Seri 5 : V1. C1 = V2. C2 2,5 mL . 102 μg/ mL = 10 mL . C2 C2 = 25,5 μg / mL




80


Lampiran 13. Optimasi operating time metode deoksiribosa Hasil pengukuran absorbansi metode deoksiribosa Menit ke 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60

Absorbansi 0,6267 0,6278 0,6298 0,6295 0,6313 0,6310 0,6318 0,6327 0,6344 0,6327 0,6339 0,6353 0,6360

Operating time yang didapat 20 menit.

81


82

Lampiran 14. Optimasi panjang gelombang maksimum metode deoksiribosa a. Jumlah larutan deoksiribosa yang ditambahkan 200 μL.


b. Jumlah larutan deoksiribosa yang ditambahkan 300 μL

83


c. Jumlah larutan deoksiribosa yang ditambahkan 400 μL

84


Lampiran 15. Hasil pengukuran absorbansi dan perhitungan aktivitas antioksidan rutin a. Hasil pengukuran absorbansi rutin replikasi 1 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 5,1 0,6788 2 10,2 0,6404 3 15,3 0,7697 0,6112 4 20,4 0,5675 5 25,5 0,5524 Persamaan regresi y = 0,8297x + 8,046 ; r = 0,9919 Seri

% IC 11,810 16,799 20,592 26,270 28,232

Nilai IC25 dimana y sama dengan 25 25

= 0,8297x + 8,046

x

= 20,434 μg / mL

b. Hasil pengukuran absorbansi rutin replikasi 2 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 5,05 0,5568 2 10,10 0,5315 3 15,15 0,6427 0,4944 4 20,20 0,4775 5 25,25 0,4498 Persamaan regresi y = 0,8257x + 9,3823 ; r = 0,9949 Seri


= 0,8257x + 9,3823

x

= 18,915 μg / mL

% IC 13,365 17,302 23,075 25,704 30,014

85


c. Hasil pengukuran absorbansi rutin replikasi 3 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 5,05 0,5940 2 10,10 0,5684 3 15,15 0,7006 0,5311 4 20,20 0,5095 5 25,25 0,4867 Persamaan regresi y = 0,773x + 11,506 ; r = 0,9952 Seri

% IC 15,216 18,870 24,194 27,277 30,531


= 0,773x + 11,506

x

= 17,457 μg / mL

d. IC25 rutin


IC25 (μg / mL) 20,434 18,915 17,457

Rata - rata

% CV

18,935 ± 1,216

6,419

86


Lampiran 16. Hasil pengukuran absorbansi dan perhitungan aktivitas antioksidan fraksi etil asetat a. Hasil pengukuran absorbansi fraksi etil asetat replikasi 1 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 100,8 0,5289 2 201,6 0,5011 3 302,4 0,6378 0,4618 4 403,2 0,4257 5 504,0 0,4012 Persamaan regresi y = 0,1127x – 8,8601 ; r = 0,9946 Seri

% IC 2,618 13,813 26,560 33,490 49,561


= 0,1127x – 8,8601

x

= 300,445 μg / mL

b. Hasil pengukuran absorbansi fraksi etil asetat replikasi 2 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 100,6 0,3744 2 201,2 0,3553 3 301,8 0,4524 0,3309 4 402,4 0,3013 5 503,0 0,2874 Persamaan regresi y = 0,0501x + 11,967 ; r = 0,9950 Seri


= 0,0501x + 11,967

x

= 260,139 μg / mL

% IC 17,241 21,463 26,857 33,400 36,472

87


c. Hasil pengukuran absorbansi fraksi etil asetat replikasi 3 Konsentrasi Absorbansi Absorbansi (μg / mL) kontrol negatif sampel 1 100,2 0,6112 2 200,4 0,5858 3 300,6 0,7128 0,5444 4 400,8 0,4808 5 501,0 0,4403 Persamaan regresi y = 0,0626x + 6,4899 ; r = 0,9905 Seri

% IC 14,254 17,817 23,625 32,548 38,230


= 0,0626x + 6,4899

x

= 295,689 μg / mL

d. IC25 fraksi etil asetat


IC25 (μg / mL) 300,445 260,139 295,689

Rata - rata

% CV

285,424 ± 17,984

6,301

88


89

BIOGRAFI PENULIS

Penulis

skripsi

yang

berjudul

“Uji

Aktivitas

Antioksidan Menggunakan Metode Deoksiribosa Dan Penetapan Kandungan Fenolik Total Pada Fraksi Etil Asetat Ekstrak Etanolik Buah Jambu Mete (Anacardium Occidentale L.)” memiliki nama lengkap Yoanes Kapistran Ervan Prasetio Kusumanto. Dilahirkan di Yogyakarta pada tanggal 23 Oktober 1992 dari pasangan Bapak Yustinus Gan Kong Liok dan Ibu Veronica Jeniarti. Penulis merupakan anak ketiga dari empat bersaudara. Penulis telah menyelesaikan pendidikan di TK Tarakanita Bumijo Yogyakarta pada tahun 1997 hingga 1999 lalu melanjutkan pendidikan di SD Tarakanita Bumijo pada tahun 1999 hingga 2005. Penulis menempuh sekolah menengah di SMP Stella Duce I Yogyakarta pada tahun 2005 hingga 2008 kemudian melanjukan sekolah tingkat atas di SMA Kolese De Britto Yogyakarta pada tahun 2008 hingga 2011. Penulis melanjutkan pendidikan perguruan tinggi di Fakultas Farmasi Universitas Sanata Dharma Yogyakarta pada tahun 2011 hingga 2015. Selama menjadi mahasiswa di Fakultas Farmasi Universitas Sanata Dharma penulis cukup aktif dalam kegiatan kemahasiswaaan dan kepanitiaan.

PLAGIAT MERUPAKAN TINDAKAN TIDAK TERPUJI

Recommend Documents