PERTUMBUHAN DAN KELANGSUNGAN HIDUP BENIH IKAN BETOK YANG DIRENDAM DENGAN HORMON PERTUMBUHAN REKOMBINAN IKAN KERAPU KERTANG PADA DOSIS BERBEDA
HIKMA NADIATUL HUSNA
DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2012
PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi yang berjudul:
PERTUMBUHAN DAN KELANGSUNGAN HIDUP BENIH IKAN BETOK YANG DIRENDAM DENGAN HORMON PERTUMBUHAN REKOMBINAN IKAN KERAPU KERTANG PADA DOSIS BERBEDA adalah benar merupakan hasil karya yang belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Semua sumber data dan informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun yang tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.
Bogor, Mei 2012
HIKMA NADIATUL HUSNA C14080005
ABSTRAK HIKMA NADIATUL HUSNA. Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Betok yang Direndam dengan Hormon Pertumbuhan Rekombinan Ikan Kerapu Kertang pada Dosis Berbeda. Dibimbing oleh Dr.Alimuddin dan Dr.Odang Carman Penelitian ini dilakukan untuk menentukan dosis perendaman hormon pertumbuhan rekombinan ikan kerapu kertang (rElHP) yang menghasilkan pertumbuhan dan kelangsungan hidup benih ikan betok tertinggi. Dosis rElHP yang diberikan, yaitu 3 mg/L, 6 mg/L, dan 12 mg/L serta tanpa pemberian rElHP sebagai kontrol. Benih ikan sebanyak 200 ekor yang berumur 6 hari setelah menetas (habis kuning telur) direndam ke dalam 200 mL larutan rElHP selama 2 jam. Ikan dipelihara dalam akuarium (30x20x20 cm) dengan padat tebar 20 ekor/L selama 8 minggu dan diberi pakan rotifer, naupli Artemia dan cacing sutera 4 kali dalam sehari secara ad libithum serta pakan buatan at satiation. Hasil penelitian menunjukkan bahwa panjang baku benih ikan betok yang diberi perlakuan perendaman rElHP dengan dosis 12 mg/L (4,62 cm) lebih tinggi (P<0,05) dibandingkan dengan perlakuan 6 mg/L (4,56 cm), 3 mg/L (4,46 cm), dan kontrol (4,49 cm). Biomassa ikan yang diberi perlakuan perendaman rHP dengan dosis 12 mg/L (529,01 g) juga lebih tinggi (P<0,05) daripada perlakuan 6 mg/L (487,55 g), 3 mg/L (476,18 g), dan kontrol (416,17 g). Laju pertumbuhan spesifik tidak berbeda antar perlakuan, dan kontrol (P>0,05). Tingkat kelangsungan hidup benih ikan betok perlakuan 12 mg/L lebih tinggi dibandingkan perlakuan lain, dan kontrol. Dengan demikian perendaman benih dalam larutan rElHP dengan dosis 12 mg/L dapat diaplikasikan untuk meningkatkan pertumbuhan, dan kelangsungan hidup ikan betok. Kata Kunci: hormon pertumbuhan rekombinan, perendaman, ikan betok, dosis.
ABSTRACT HIKMA NADIATUL HUSNA. Growth and Survival of Climbing Perch Anabas testudineus Juveniles Immersed in Recombinant Giant Grouper Growth Hormone at Different Dose. Supervised by Dr. Alimuddin and Dr. Odang Carman This research was conducted to determine the dose of immersion recombinant giant grouper growth hormone (rElGH) that generates the highest growth and survival rate of climbing perch Anabas testudineus juveniles. The dose of rElGH used was 3 mg/L, 6 mg/L, and 12 mg/L and without administration of rElGH as a control. Two hundred juveniles of 6 days after hatching (were the yolk egg absorbed) were immersed into 200 mL of rElGH solution for 2 hours. Fish were reared in aquarium (30x20x20 cm) at stocking densities of 20 fish/L. Fish were maintained for 8 weeks and fed on rotifer, Artemia nauplii and silk worm 4 times a day ad libithum and commercial diet at satiation. The results showed that the body length of 12 mg/L rGH-treated fish (4.6233 cm) were higher (P<0.05) compared to that of 6 mg/L (4.5633 cm), 3 mg/L (4.4633 cm) and control (4.4967 cm). Biomass of fish treated with rGH in a dose of 12 mg/L (529.01 g) were higher (P<0.05) compared to that of 6 mg/L (487.55 g), 3 mg/L (476.18 g) and control (416.17 g). Specific growth rate of among rGH-treated fish, and control were similar (P>0.05). Survival rate of 12 mg/L rElGH-treated fish was also higher compared with other treatments and control. Thus, immersion of fish in 12 mg/L rElGH solution can be applied to enhance the growth and survival rate of climbing perch. Keywords: recombinant growth hormone, immersion, climbing perch, dose.
PERTUMBUHAN DAN KELANGSUNGAN HIDUP BENIH IKAN BETOK YANG DIRENDAM DENGAN HORMON PERTUMBUHAN REKOMBINAN IKAN KERAPU KERTANG PADA DOSIS BERBEDA
HIKMA NADIATUL HUSNA
SKRIPSI sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Perikanan pada Program Studi Teknologi dan Manajemen Perikanan Budidaya Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor
DEPARTEMEN BUDIDAYA PERAIRAN FAKULTAS PERIKANAN DAN ILMU KELAUTAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2012
SKRIPSI Judul Nama Nrp
:
Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Betok yang Direndam dengan Hormon Pertumbuhan Rekombinan Ikan Kerapu Kertang pada Dosis Berbeda : Hikma Nadiatul Husna : C14080005
Menyetujui,
Pembimbing I
Pembimbing II
Dr. Alimuddin NIP. 19700103 199512 1 001
Dr. Odang Carman NIP. 19591222 198601 1 001
Mengetahui, Ketua Departemen Budidaya Perairan
Dr. Odang Carman NIP. 19591222 198601 1 001
Tanggal Lulus : ………………
KATA PENGANTAR Puji syukur penulis ucapkan kepada Allah SWT atas segala rahmat-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan karya tulis ini. Penelitian ini telah dilaksanakan dari bulan Januari sampai April 2012, bertempat di Laboratorium Reproduksi dan Genetika Organisme Akuatik, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu kelautan, Institut Pertanian Bogor. Beragam kata tak mudah diutarakan, hanyalah ungkapan kebahagiaan dan terimakasih yang tulus kepada: 1. Dr. Alimuddin, selaku Pembimbing I dan Pembimbing Akademik 2. Dr. Odang Carman, selaku Pembimbing II 3. Dr. Nur Bambang Priyo Utomo, selaku Penguji Tamu dalam ujian akhir 4. Dr. Mia Setiawati, selaku Komisi Pendidikan Program S1 5. Drs. H. Afif Bintoro, MP dan Dra. Hj. Hastutiningsih, selaku orang tua yang selalu memberikan dukungan moriil dan kasih sayang yang tidak terkira serta Saudara-saudari tersayang Niskan WM, S.Hut, M.Sc, Aini, Rodhia, dan Zur’an yang selalu memberikan dukungan dan semangat 6. Anna Octavera, S.Pi, M.Si, yang telah banyak membantu dalam penelitian dan penyusunan serta penulisan skripsi ini 7. Bu Yulintine, S.Pi, M.Sc, Bu Eny, S.Pi, Mas Boyun S.Pi, Genetic’s Crew dan Pak Aam yang telah memberikan motivasi, informasi, bimbingan serta ilmu yang telah diberikan 8. Fajar Maulana S.Pi yang selalu memberikan dukungan dan bantuan dalam menyelesaikan skripsi ini. Rima, Nurlatifa, Dita, Aminah, Sri, M. Firdaus, Yadi, teman-teman Laboratorium Reproduksi dan Genetika Organisme Akuatik, sahabat BDP 45 (2008), 44, 46 dan 47 serta berbagai pihak yang selalu memberikan dukungan. Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi semua pihak dan berguna bagi kesejahteraan masyarakat. Bogor, Mei 2012
Hikma Nadiatul Husna
RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Bandar Lampung pada tanggal 13 Agustus 1990. Mengawali pendidikan di SD Negeri 2 Merapi Perumnas Way Halim pada tahun 1996 dan menyelesaikannya pada tahun 2002. Melanjutkan pendidikan di SMP Negeri 1 Bandar Lampung (2002-2005) dan SMA Negeri 1 Natar Lampung Selatan (2005-2008). Tahun 2008 diterima di Institut Pertanian Bogor (IPB) sebagai mahasiswa Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, melalui jalur Undangan Seleksi Masuk IPB (USMI). Selama mengikuti perkuliahan, aktif sebagai anggota Himpunan Mahasiswa Akuakultur (HIMAKUA) periode 20102011, dan asisten praktikum mata kuliah Dasar-dasar Genetika Ikan periode 2012. Penulis aktif di Laboratorium Reproduksi dan Genetika Organisme Akuatik, Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan. Pada bulan Juni-Juli 2010, penulis pernah melaksanakan magang di dua tempat yaitu Balai Besar Pengembangan Budidaya Laut (BBPBL) Lampung dan Balai Budidaya Air Payau (BBAP) Situbondo. Penulis pernah menjadi anggota PKM dengan judul “Optimalisasi Metode Elektroporasi untuk Produksi Ikan Betok (Anabas testudineus Bloch.) Transgenik” kemudian menjadi ketua PKM dengan judul “Aplikasi Protein Rekombinan dalam Meningkatkan Laju Pertumbuhan Ikan Betok (Anabas testudineus Bloch.)” yang keduanya didanai oleh DIKTI. Penulis juga pernah melaksanakan praktik kerja lapangan dengan judul “Pembenihan Ikan Bawal Bintang Trachinotus blochii di Balai Budidaya Air Payau Situbondo”. Tugas akhir dalam pendidikan tinggi diselesaikan dengan menulis Skripsi yang berjudul “Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Betok yang Direndam dengan Hormon Pertumbuhan Rekombinan Ikan Kerapu Kertang pada Dosis Berbeda”.
DAFTAR ISI Halaman DAFTAR TABEL .......................................................................................... x DAFTAR GAMBAR ...................................................................................... xi DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................. xii I.
PENDAHULUAN ................................................................................. 1 1.1. Latar Belakang................................................................................. 1 1.2. Tujuan .............................................................................................. 2
II.
BAHAN DAN METODE ...................................................................... 2.1. Penelitian Pendahuluan ................................................................... 2.2. Produksi Protein rHP ....................................................................... 2.3. Rancangan Perlakuan ...................................................................... 2.4. Pemberian Pakan dan Pemeliharaan Ikan Betok ............................. 2.5. Analisis Statistik ..............................................................................
3 3 3 4 5 5
III. HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................. 3.1. Hasil ................................................................................................. 3.1.1. Pertumbuhan Panjang Benih Ikan Betok ............................. 3.1.2. Biomassa dan Rerata Bobot Tubuh Ikan ............................. 3.1.3. Kelangsungan Hidup Ikan ................................................... 3.2. Pembahasan .....................................................................................
6 6 6 7 8 9
IV. KESIMPULAN ..................................................................................... 12 4.1. Kesimpulan .................................................................................... 12 4.2. Saran .............................................................................................. 12 DAFTAR PUSTAKA ..................................................................................... 13 LAMPIRAN.................................................................................................... 15
DAFTAR TABEL Halaman 1. Tingkat kelangsungan hidup benih ikan betok setelah diberi kejut salinitas selama 2 menit dilanjutkan perendaman salinitas berbeda selama 2 jam ............................................................................................. 3 2. Jenis dan skedul pemberian pakan pada ikan betok selama pemeliharaan ............................................................................................. 5 3. Rerata panjang (cm) benih ikan betok pada perendaman rHP dengan dosis berbeda ............................................................................................. 6 4. Biomassa (g) dan rerata bobot tubuh akhir (g) benih ikan betok pada perendaman rHP dengan dosis berbeda .................................................... 7 5. Growth rate (GR; g) dan specific growth rate (SGR; %) benih ikan betok pada kontrol dan perlakuan perendaman rHP dengan dosis berbeda ...................................................................................................... 7
x
DAFTAR GAMBAR Halaman 1. Perbandingan pertumbuhan panjang baku benih ikan betok perlakuan 12 mg/L dan kontrol.................................................................................. 6 2. Biomassa benih ikan betok kontrol dan yang diberis perendaman rElHP dosis berbeda setelah pemeliharaan selama 8 minggu .............................. 7 3. Ikan betok kontrol dan yang diberi perendaman rElHP dosis berbeda setelah pemeliharaan selama 8 minggu..................................................... 8 4. Tingkat kelangsungan hidup benih ikan betok kontrol dan yang diberi perendaman rElHP dosis berbeda setelah pemeliharaan selama 8 minggu ...................................................................................................... 8
xi
DAFTAR LAMPIRAN Halaman 1. Analisis sidik ragam (ANOVA) dan Uji lanjut Tukey’s........................... 16 2. Skema penelitian pendahuluan ................................................................. 19 3. Proses produksi rHP .................................................................................. 19 4. Dokumentasi produksi rHP ....................................................................... 20
xii
I. PENDAHULUAN
1.1.
Latar Belakang Ikan betok Anabas testudineus Bloch. atau dikenal dengan nama ikan
papuyu di daerah Banjar, Kalimantan Selatan (Kottelat et al., 1993) merupakan salah satu ikan air tawar yang berpotensi untuk dikembangkan karena memiliki nilai ekonomis cukup tinggi yaitu harganya dapat mencapai Rp100.000,00 per kg (Borneonews, 2011). Budidaya ikan betok hingga saat ini masih belum banyak dikembangkan. Salah satu hambatannya adalah pertumbuhan yang lambat dan memerlukan waktu kurang lebih satu tahun untuk mencapai ukuran konsumsi (70100 gram) (Departemen Kelautan dan Perikanan, 2008). Pertumbuhan ikan dapat ditingkatkan melalui perbaikan mutu ikan. Perbaikan mutu ikan dapat dilakukan dengan metode seleksi, hibridisasi, transgenesis, dan aplikasi protein rekombinan. Aplikasi metode seleksi membutuhkan waktu relatif lama untuk mencapai efek signifikan khususnya pada ikan yang membutuhkan waktu lama untuk mencapai matang kelamin pertama kali (Bolivar et al., 2002). Penerapan teknologi hibridisasi juga memerlukan waktu relatif lama. Selain itu, aplikasi teknologi transgenesis dapat menghasilkan ikan dengan tingkat perbaikan kualitas tinggi dalam waktu relatif cepat, tetapi teknologi ini masih menimbulkan kontroversi terhadap keamanan pangan. Sementara itu, hingga saat ini penggunaan hormon pertumbuhan rekombinan (rHP) pada ikan dikatakan aman untuk dikonsumsi, karena rHP tidak ditransmisikan ke keturunan selanjutnya sehingga tidak termasuk organisme transgenik (Acosta et al., 2007). Protein rHP cukup efektif digunakan untuk meningkatkan laju pertumbuhan ikan. rHP merupakan polipeptida rantai tunggal dengan ukuran sekitar 22 kDa yang dihasilkan menggunakan bioreactor/fermentor, seperti bakteri (Rousseau & Dufour, 2007 dalam Acosta et al., 2009). Penggunaan teknologi protein rHP untuk mempercepat pertumbuhan ikan sudah banyak dilakukan pada beberapa spesies ikan dengan metode yang berbeda. Pemberian rHP ikan mas melalui metode injeksi dengan dosis sebesar 0,1 µg/g bobot tubuh pada benih ikan nila dapat meningkatkan bobot tubuh sebesar 53,1%
1
dibandingkan dengan kontrol (Li et al. 2003). Pemberian jenis rHP yang berbeda pada ikan nila melalui teknik penyuntikan atau injeksi berhasil meningkatkan bobot ikan yaitu sebesar 20,94% dengan rHP ikan kerapu kertang; 18,09% dengan rHP ikan mas; 16,99% dengan rHP ikan gurame (Alimuddin et al., 2010). Pemberian rHP ikan mas melalui pakan Artemia pada benih ikan gurame dapat meningkatkan pertumbuhan sebesar 13% (Rahmawaty, 2011). Hasil lain diperoleh dari pemberian protein rHP ikan gurame pada benih ikan gurame melalui metode perendaman dengan dosis 30 mg/L sebanyak 3 kali perendaman efektif meningkatkan pertumbuhan sebesar 75,04% dibandingkan dengan kontrol (Putra, 2011). Pemberian rHP dapat dilakukan dengan beberapa metode, di antaranya: perendaman/imersi (Moriyama, 1990; Acosta et al., 2007; Putra, 2011), penyuntikan/injection (Li et al., 2003; Lesmana, 2010), dan melalui pakan (Moriyama et al., 1993; Xu et al., 2001; Rahmawaty, 2011). Berdasarkan ketiga metode yang telah dilakukan, metode penyuntikan dikatakan kurang aplikatif dan memperlihatkan respons yang lambat, sedangkan metode perendaman pada stadia larva atau juvenil merupakan cara yang aplikatif untuk skala massal. Pada metode perendaman diperlukan kejut salinitas. Menurut Ratnawati (2012) kejut salinitas berfungsi untuk membuka jalur masuknya rHP melalui insang dengan memanfaatkan mekanisme pertukaran cairan tubuh. Protein rekombinan yang digunakan dalam kegiatan ini rElHP (hormon pertumbuhan ikan kerapu kertang Epinephelus lanceolatus) (Lesmana, 2010). Hormon ini digunakan karena tingkat produksi rHP ikan kerapu kertang pada Escherichia coli lebih tinggi dibandingkan dengan rHP ikan gurame dan ikan mas (Irmawati et al., 2011 belum dipublikasikan). Selain itu, rElHP telah terbukti memiliki bioaktivitas dalam menginduksi pertumbuhan ikan nila (Alimuddin et al., 2010) dan ikan sidat (Aminah, 2012).
1.2.
Tujuan Penelitian ini dilakukan untuk menentukan dosis protein rHP ikan kerapu
kertang (rElHP) yang diberikan melalui perendaman yang dapat menghasilkan pertumbuhan dan kelangsungan hidup benih ikan betok terbaik.
2
II.
2.1.
BAHAN DAN METODE
Penelitian Pendahuluan Penelitian pendahuluan dilakukan untuk menentukan salinitas kejut (shock
salinity) untuk larva ikan betok. Larva ikan betok berumur 6 hari diberi kejut salinitas 3,0%; 2,5% dan 2,0% NaCl selama 2 menit. Selanjutnya benih ikan betok direndam dalam larutan NaCl 0,3%; 0,5%; dan 0,7% selama 2 jam dengan satu kali ulangan. Pada setiap perlakuan digunakan benih umur 6 hari sebanyak 100 ekor. Setelah itu ikan diperlihara selama 14 hari. Perlakuan yang memberikan kelangsungan hidup tertinggi digunakan dalam penelitian utama. Tabel 1. Tingkat kelangsungan hidup (survival rate/SR) benih ikan betok setelah diberi kejut salinitas selama 2 menit, dilanjutkan perendaman salinitas berbeda selama 2 jam Kejut salinitas berbeda (%) selama 2 menit 3,0 2,5 2,0
Salinitas (%) perendaman larva selama 2 jam 0,3
0,5
0,7
46 65 54
80 58 58
48 53 54
Berdasarkan Tabel 1, dapat diketahui bahwa tingkat kelangsungan hidup tertinggi (80%) diperoleh pada perlakuan dengan kejut salinitas NaCl 3,0% dan perendaman pada larutan NaCl 0,5%. Salinitas tersebut selanjutnya digunakan pada penelitian utama.
2.2.
Produksi Protein rHP Produksi protein rHP yang dilakukan pada penelitian ini menggunakan
bakteri E. coli BL21 yang mengandung pCold-I/ElHP yang dibuat oleh Lesmana (2010). Bakteri dikultur awal dalam 3 mL media LB cair yang mengandung ampisilin dan NaOH 5M, lalu diinkubasi suhu 37 oC dengan menggunakan shaker kecepatan 200 rpm selama 18 jam. Setelah itu, dilakukan subkultur dengan mengambil sebanyak 1% dari kultur awal dan dimasukkan ke dalam 100 ml media LB cair mengandung ampisilin dan NaOH yang baru, lalu diinkubasi lagi pada suhu 37 oC dengan menggunakan shaker 250 rpm selama 3 jam. Selanjutnya 3
diberikan kejutan dengan suhu 15 oC selama 30 menit, ditambahkan IPTG sebanyak 750 µL dan diinkubasi menggunakan shaker pada suhu 15 oC selama 24 jam. Bakteri hasil kultur disentrifugasi kecepatan 12.000 rpm selama 1 menit dengan tujuan mengendapkan sel bakteri. Pelet bakteri yang diperoleh dicuci dengan phosphate buffer saline (PBS) sebanyak 1 kali, selanjutnya disimpan dalam deep-freezer (-80 oC) hingga akan digunakan. Inaktivasi bakteri dilakukan dengan cara pelet bakteri yang diperoleh dan mengandung rekombinan ElHP dimasukkan ke dalam freezer -20 oC selama semalam, kemudian dimasukkan kembali ke deep-freezer (-80 oC). Lisis dinding sel bakteri dilakukan secara kimiawi menggunakan lisozim. Pelet bakteri hasil sentrifugasi dicuci menggunakan bufer Tris-EDTA (TE) sebanyak 1 mL per 200 mg bakteri, lalu diinkubasi pada suhu 37 oC selama 20 menit. Selanjutnya, tabung disentrifugasi pada kecepatan 12.000 rpm selama 1 menit, kemudian supernatan dalam tabung mikro dibuang. Pelet bakteri (natan) yang diperoleh ditambahkan 500 µL larutan lisozim (10 mg dalam 1 mL bufer TE), lalu diinkubasi suhu 37 oC selama 20 menit, selanjutnya disentrifugasi dengan kecepatan 12.000 rpm selama 1 menit. Supernatan dalam tabung mikro dibuang dan pelet yang terbentuk merupakan protein rHP dalam bentuk badan inklusi (inclusion body). Pelet protein rHP dicuci PBS sebanyak satu kali dan disimpan dalam deep-freezer (-80 oC) hingga akan digunakan.
2.3.
Rancangan Perlakuan Penelitian ini menggunakan rancangan acak lengkap yang terdiri dari
empat perlakuan dengan tiga ulangan. Benih ikan betok yang digunakan berumur 6 hari. Ikan dipuasakan terlebih dahulu sehari sebelum diberi perlakuan. Pada setiap perlakuan, sebanyak 200 ekor ikan betok direndam (salinity shock) dalam 200 mL media NaCl 3,0% selama 2 menit, lalu dimasukkan dalam larutan yang mengandung rHP dengan dosis berbeda. Dosis rHP yang diuji yaitu 3 mg/L, 6 mg/L dan 12 mg/L dalam larutan NaCl 0,5% dan BSA (bovine serum albumine) 0,01%. Untuk perlakuan kontrol, ikan diberikan kejut salinitas NaCl 3,0% selama 2 menit, lalu dimasukkan dalam larutan NaCl 0,5% dan BSA 0,01% (tidak mengandung rHP) selama 2 jam.
4
2.4.
Pemberian Pakan dan Pemeliharaan Ikan Betok Ikan betok diberi pakan dengan skedul seperti disajikan pada Tabel 2. Ikan
dipelihara dalam akuarium ukuran 30x20x20 cm dengan volume air 10 liter hingga berumur 30 hari, lalu pada akuarium dengan volume air 20 liter hingga berumur 40 hari dan selanjutnya dipindah ke media hapa berukuran 1x1 meter. Sampling panjang dilakukan pada awal pemeliharaan, hari ke-18, 30, dan 58. Pada awal pemeliharaan, panjang ikan diukur menggunakan mikroskop dibantu mikrometer dengan galat 0,05, sedangkan pada sampling kedua hingga akhir digunakan milimeter blok untuk mengukur panjang. Sampling bobot dilakukan pada awal pemeliharaan dan akhir pemeliharaan dengan jumlah ikan yang diambil 30 ekor per perlakuan menggunakan timbangan digital. Pergantian air sebanyak 60% dilakukan pada waktu sampling kedua, dan ketiga. Tabel 2. Jenis dan skedul pemberian pakan pada ikan betok selama pemeliharaan Pakan
Hari ke-
Frekuensi
Rotifer
6 s/d 9
4 x sehari (ad-libithum)
Rotifer + Artemia
10 s/d 11
4 x sehari (ad-libithum)
Naupli Artemia
12 s/d 13
4 x sehari (ad-libithum)
Artemia + cacing cacah
14 s/d 17
4 x sehari (ad-libithum)
Cacing sutera dicacah
18 s/d 19
4 x sehari (ad-libithum)
Cacing sutera
20 s/d 30
Cacing + Pakan Buatan
31 s/d 40
Pakan Buatan
41 s/d 57
3 x sehari (ad-libithum) Cacing : malam hari Pakan Buatan : at-satiation 1 jam sekali (at-satiation)
2.5.
Analisis Statistik Parameter yang diamati pada penelitian ini meliputi pertumbuhan panjang
(panjang baku; panjang total), biomassa, rerata bobot tubuh, growth rate (GR), spesific growth rate (SGR) dan tingkat kelangsungan hidup. Parameter yang diamati tersebut dianalisis menggunakan metode sidik ragam (ANOVA) dan uji lanjut Tukey’s dengan bantuan program SPSS 17.0.
5
III. HASIL DAN PEMBAHASAN 3.1. Hasil 3.1.1. Pertumbuhan Panjang Benih Ikan Betok Pertumbuhan panjang benih ikan betok pada akhir penelitian setelah perendaman 2 jam dengan protein rHP pada dosis berbeda disajikan pada Tabel 3 dan Gambar 1. Rerata panjang baku benih ikan betok yang diberi perlakuan perendaman rHP dosis 12 mg/L (4,62 cm) adalah lebih tinggi (P<0,05) dibandingkan perlakuan 6 mg/L (4,56 cm), 3 mg/L (4,46 cm) dan kontrol (4,49 cm). Pertambahan panjang total juga berbeda antar perlakuan (P<0,05; Tabel 3). Rerata panjang total benih ikan betok yang diberi perlakuan perendaman rHP dosis 12 mg/L (5,59 cm) dan dosis 6 mg/L (5,51 cm) juga lebih tinggi (P<0,05) dibandingkan perlakuan 3 mg/L (5,430 cm), dan kontrol (5,477cm). Rerata tinggi badan antar perlakuan tidak berbeda nyata (P>0,05; Tabel 3). Tabel 3. Rerata panjang (cm) benih ikan betok pada perendaman rHP dengan dosis berbeda Dosis ElHP (mg/L) Kontrol (0) 3 6 12
Panjang Baku
Panjang Total
Tinggi badan
4,49 ± 0,04a 4,46 ± 0,03a 4,56 ± 0,06ab 4,62 ± 0,03b
5,47± 0,04ab 5,43± 0,04a 5,51 ± 0,09ab 5,590± 0,01b
1,75 ± 0,01a 1,74 ± 0,03a 1,77 ± 0,02a 1,79 ± 0,02a
Panjang (cm)
Keterangan: Huruf superskrip berbeda pada kolom yang sama adalah berbeda nyata (P<0,05). Data tersebut berdasarkan rerata dari 3 kali ulangan
5,0 4,5 4,0 3,5 3,0 2,5 2,0 1,5 1,0 0,5 0,0 Sampling ke-1 Sampling ke-2 Sampling ke-3 Sampling ke-4
Gambar 1. Pertumbuhan panjang baku benih ikan betok perlakuan12 mg/L(■) dan kontrol (♦). Pengukuran panjang ikan dilakukan pada awal penelitian, hari ke-18, 30, dan 58 setelah perlakuan perendaman rElHP. 6
3.1.2. 3 Biom massa dan Rerata R Boboot Tubuh Ik kan Biom massa dan reerata bobot tuubuh akhir benih b ikan beetok di akhirr penelitian pada p kontroll, dan perlakkuan perendaaman protein n rHP dosis berbeda b yan ng disajikan pada p Tabel 4 dan Gam mbar 2. Bioomassa setiap perlakuaan dan konttrol adalah berbeda b nyaata (P<0,05)), sedangkann bobot tubbuh akhir ggrowth rate (GR), dan specific s grow wth rate (SG GR) secara sttatistik tidakk berbeda nyata (P>0,05;; Tabel 5). Tabel T 4. Biomassa (g) dan rerata bobot b tubuhh akhir (g) benih b ikan betok b pada perendaman p n rHP dengann dosis berbeeda Dosis ElH HP (mg/L)) Kontrol (0) ( 3 6 12
Reerata bobott tub buh akhir (g g) a 3,,40 ± 0,207 3,,39 ± 0,024a 3,,41 ± 0,066a 3,,47 ± 0,014a
Biomassa (g) 416,17 ± 388,57a 4476,18 ± 36,47ab 4487,55 ± 25,63ab 529,01 ± 199,15b
Keterangan: Huruf supersk krip berbeda pada p kolom yaang sama adalaah berbeda nyata (P<0,05). Data tersebuut berdasarkan rerata dari 3 kaali ulangan. 600
Bobot (g)
500
476,18
487,55
529,01
3 mg/L
6 mg/L
12 mg/L
416,17
400 300 200 100 0 Kontrol
Perlaku uan
Gambar G 2. Biomassa B beenih ikan bettok kontrol dan d yang dibberi perendam man rElHP dosis d berbed da setelah peemeliharaan selama 8 miinggu. Tabel T 5. Grrowth rate (GR; g), speesific growthh rate (SGR R; %) benih ikan betok pada p kontroll dan perlaku uan perendam man rHP denngan dosis berbeda b Dosis ElH HP (mg/L)) Kontrol (0) ( 3 6 12
GR (g/harri)
S SGR (%)
0,0653 ± 0,00039a 0,0651 ± 0,00011a 0,0655 ± 0,00013a 0,0665 ± 0,00002a
11,63374 ± 0,1193 3a 11,63345 ± 0,0319 9a 11,64454 ± 0,0374 4a 11,67753 ± 0,0077 7a
Keterangan: Huruf supersskrip berbeda pada kolom yang sama addalah tidak beerbeda nyata (P>0,05). Daata tersebut berrdasarkan reratta dari 3 kali ulangan.
7
Kontrol
3 mg/L L
6 mg/L
12 mg/L L
Gambar G 3. Ikan betok kontrol dan yang diberii perendamann rElHP dossis berbeda setelah pemeeliharaan sellama 8 mingggu. 3.1.3. 3 Kela angsungan Hidup H (Survvival Rate/ SR) S Ikan Tinggkat kelangssungan hiduup benih ikkan betok cenderung meningkat dengan d menningkatnya dosis perenndaman rHP P (P>0,05; Gambar 4). 4 Hal ini menunjukka m an bahwa peerlakuan rH HP berpengaruh terhadapp kelangsun ngan hidup
g g hidup p ((%)) Kelangsungan
benih b ikan betok. b 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0
a
a
a
a
Konntrol
3 mg/L
6 mg/L
12 mg/L
uan Perlaku
Gambar G 4. Tingkat T kelaangsungan hidup benih ikan i betok kontrol k dan yang y diberi perendaman p n rElHP dosis berbeda seetelah pemeliiharaan selam ma 8 mingguu. 8
3.2.
Pembahasan Aplikasi protein rElHP dosis 12 mg/L menunjukkan peningkatan
pertumbuhan panjang dan biomassa lebih tinggi dibandingkan perlakuan lainnya (Gambar 1 dan 2). Perlakuan rHP dosis 12 mg/L mampu meningkatkan biomassa 27,11% lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol (P<0,05; Lampiran 1) serta lebih tinggi 150% dibandingkan dengan yang dilakukan Pogram (2012, belum dipublikasikan). Pogram (2012) melakukan perendaman hari ke-12 dengan dosis 12 mg/L memiliki kelangsungan hidup 30,5% setelah 35 hari pemeliharaan. Perbedaan hasil tersebut diduga karena perbedaan umur larva saat perendaman, penelitian ini menggunakan larva berumur 6 hari, ada kemungkinan rHP lebih mudah terserap melalui pori-pori dan insang sehingga respons pertumbuhan dan kelangsungan hidup yang diperoleh lebih baik. Hal yang sama juga telah dilakukan Putra (2011) pada penelitian sebelumnya, yaitu benih ikan gurame yang diberi perlakuan perendaman rHP ikan gurame dengan dosis 20 mg/L dan 30 mg/L berhasil meningkatkan pertumbuhan masing-masing 63,95% dan 75,04% lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol. Perbedaan persentase hasil antara penelitian ini dengan penelitian sebelumnya diduga karena perbedaan rHP dan ikan target yang digunakan. Penelitian Putra (2011) menggunakan jenis rHP yang sama dengan ikan yang diujikan sehingga rHP ikan gurame yang diberikan dapat diterima dengan baik oleh reseptor HP pada ikan gurame yang diujikan untuk memicu pertumbuhan. Pada penelitian ini diperoleh bahwa peningkatan benih ikan betok yang diberi perlakuan rHP dosis 12 mg/L memiliki peningkatan pertumbuhan biomassa terbaik, yaitu 1,27 kali lebih tinggi daripada kontrol. Hal tersebut hampir sama dengan penelitian Moriyama dan Kawauchi (2004) yaitu perendaman benih abalon dengan rsHP dosis 30 mg/L dengan frekuensi pemberian setiap 7 hari sekali selama 84 hari pemeliharaan mampu meningkatkan bobot tubuh sebesar 1,2 kali dari kontrol. Namun pada penelitian ini perendaman hanya dilakukan satu kali sehingga metode perendaman dalam penelitian ini lebih praktis. Pertumbuhan ikan betok pada kontrol dan perlakuan rHP 12 mg/L mengalami peningkatan panjang baku dari awal pemeliharaan hingga hari ke-12 (sampling ke-2), namun dari hari ke-12 hingga ke-30 terlihat bahwa ikan pada
9
perlakuan 12 mg/L mengalami peningkatan yang cukup tinggi yaitu 0,99 kali menjadi 1,06 kali lipat lebih tinggi dibandingkan kontrol. Namun, pada hari ke-58 terjadi penurunan menjadi 1,02 kali lebih tinggi dibandingkan kontrol. Hal tersebut sesuai pernyataan Acosta et al. (2009) bahwa pemberian tiGH dengan metode perendaman pada larva ikan mas koki dengan frekuensi sebanyak 3 kali seminggu dapat meningkatkan bobot tubuh sebesar 3,5 kali lipat dari perlakuan kontrol setelah pemeliharaan 15 hari dan menurun pada hari ke-30 yaitu hanya sebesar 2,2 kali lipat dari perlakuan kontrol. Hal tersebut diduga terkait dengan daya dukung wadah pemeliharaan, pada minggu ke-8 daya dukung wadah sudah tercapai. Perlakuan perendaman rHP dengan dosis 12 mg/L memiliki biomassa (529,01 g) dan tingkat kelangsungan hidup (76,33%) benih ikan betok lebih tinggi dibandingkan dengan perlakuan lain dan kontrol. Menurut Putra (2011) hal tersebut diduga karena rHP yang diberikan memberikan pengaruh peningkatan daya tahan tubuh khususnya terhadap stres berupa kejutan salinitas yang diberikan. Pada penelitian Acosta et al., (2009) disampaikan bahwa pemberian rHP pada larva dapat meningkatkan kelangsungan hidup dan daya tahan terhadap stres serta infeksi penyakit. Pemberian nHP dan rHP pada ikan rainbow trout juga efektif meningkatkan resistensi terhadap Vibrio anguillarum (Sakai et al., 1997). Pada penelitian ini kelangsungan hidup meningkat diduga juga karena peningkatan daya tahan terhadap penyakit, meskipun pada penelitian ini tidak dilakukan uji tantang atau pemeriksaan prevalensi penyakit. Sementara itu, biomassa ikan terlihat meningkat 1,27 kali lipat pada minggu ke-8. Peningkatan biomassa tersebut diduga karena pada minggu ke-7 dilakukan pemindahan ikan ke media yang lebih besar, yaitu hapa ukuran 1x1 meter sehingga pertumbuhan ikan lebih maksimum. Peningkatan biomassa dan kelangsungan hidup ikan memiliki keterkaitan dengan selera makan ikan, pada perlakuan 12 mg/L nafsu makan ikan lebih tinggi dibanding perlakuan lain dan kontrol. Hal yang sama juga telah disampaikan oleh Promdonkoy et al. (2004) bahwa pemberian gcGH pada ikan mas koki (Carassius auratus) dapat meningkatkan nafsu makan dan tingkah laku makan yang lebih agresif serta enerjik terhadap pakan yang diberikan.
10
Selain itu, apabila dilihat dari analisis keseragaman rerata bobot tubuh akhir ikan pada Tabel 4, perlakuan 12 mg/L memiliki standar deviasi yang paling rendah (0,014) dibandingkan perlakuan lain. Hal tersebut menandakan bahwa ukuran ikan pada perlakuan 12 mg/L lebih seragam. Sementara itu, standar deviasi pada kontrol terlihat paling tinggi (0,207), hal tersebut menunjukkan bahwa tingkat keragaman ikan pada kontrol tinggi (beragam). Dengan demikian, dapat dikatakan bahwa perlakuan perendaman rHP memiliki tingkat keseragaman ukuran ikan yang lebih tinggi dibandingkan dengan kontrol. Ukuran ikan yang lebih seragam dapat berimplikasi pada waktu pemanenan ikan, harga jual, dan pendapatan pembudidaya. Mekanisme penyerapan rHP ke dalam tubuh ikan belum diketahui secara pasti. Namun demikian, menurut Sherwood & Harvey (1986) dalam Moriyama (1990) pemberian gonadotropin releasing hormone (GnRH) terlihat berpengaruh pada plasma ikan mas setelah pemberian melalui insang. Hal tersebut diperkuat dengan pernyataan Smith (1982) dalam Moriyama (1990) bahwa ditemukan ditemukan radiolabeled-BSA pada insang dan epidermis ikan rainbow trout setelah perendaman dalam larutan dan diduga bahwa larutan tersebut masuk melalui insang. Oleh karena itu diduga bahwa mekanisme masuknya rHP pada ikan betok juga melalui insang. Metode perendaman merupakan salah satu metode yang aplikatif dilakukan secara massal dan mudah diterapkan oleh pembudidaya. Jumlah benih yang direndam pada penelitian ini adalah 200 ekor/200 mL media, perendaman dilakukan pada hari ke-6. Pemeliharaan benih ikan betok dilakukan pada media pemeliharaan dengan volume 10 liter hingga benih berumur 23 hari, selanjutnya benih ikan dipelihara pada akuarium dengan volume 20 liter, lalu dipindah ke wadah yang lebih besar yaitu hapa dengan ukuran 1x1 meter agar pertumbuhan ikan dapat lebih maksimal. Penggunaan media yang kurang sesuai dengan padat tebar ikan dapat menyebabkan pertumbuhan ikan menjadi terhambat.
11
IV. KESIMPULAN DAN SARAN
4.1.
Kesimpulan Pemberian rElHP dosis 12 mg/L melalui perendaman dapat meningkatkan
pertumbuhan benih ikan betok.
4.2.
Saran Metode pendederan ikan betok di akuarium belum diketahui dengan baik.
Pada penelitian selanjutnya diharapkan jumlah larva yang ditebar harus disesuaikan dengan daya dukung wadah, agar tercapai pertumbuhan yang optimal. Kepadatan optimum masih perlu diteliti lebih lanjut.
12
DAFTAR PUSTAKA Acosta J, Morales R, Morales A, Alonso M, Estrada MP. 2007. Pichia pastoris expressing recombinant tilapia growth hormone accelerates the growth of tilapia. Biotechnol Lett 29:1671–1676 , Estrada MP, Carpio Y, Ruiz O, Morales R, Martinez E, Valdes J, Borroto C, Besada V, Sanchez A, Herrera F. 2009. Tilapia somatotropin polypeptides : potent enhanchers of fish growth and innate immunity. Biotecnologia Aplicada 26: 267-272. Alimuddin, Lesmana I, Sudrajat AO, Carman O, Faizal I. 2010. Production and bioactivity potential of three recombinant growth hormones of farmed fish. Indonesian Aquaculture Journal 5(1): 11-17. Aminah. 2012. Aplikasi Hormon Pertumbuhan Rekombinan Ikan Kerapu Kertang pada Glass eel dengan Dosis Perendaman Berbeda. Bolivar RB, Gary F, Newkirk. 2002. Response to within family selection for body weight in Nile tilapia Oreochromis niloticus using a single-trait animal model. Aquaculture 204: 371-381 Borneonews. 2011. Harga Ikan Papuyu 2011. http://www.borneonews.co.id/news/palangkaraya/11palangkaraya/1389/har ga-papuyu-rp100-ribu-per-kg.html. [10 Maret 2012] Departemen Kelautan dan Perikanan. 2008. Biologi Ikan Papuyu Mandiangin: Balai Budidaya Air Tawar Mandiangin, Direktorat Jenderal Perikanan Budidaya Departemen Kelautan dan Perikanan (DKP). Handoyo. 2012. Aplikasi Pemberian Rekombinan Hormon Pertumbuhan dengan Metode Berbeda pada Ikan Sidat (Anguilla sp.) dan Responnya [Tesis]. Sekolah Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. Irmawati, Alimuddin, Zairin M, Suprayudi MA, Wahyudi AT. 2012. Respons Benih Ikan Gurame (Osphronemus goramy Lac.) yang Direndam dengan Hormon Pertumbuhan Ikan Mas. Jurnal Iktiologi Indonesia (IN PRESS). Kottelat M, Whitten AJ, Kartikasari SN, Wirjoatmodjo S.1993. Freshwater Fishes of Western Indonesia and Sulawesi. Jakarta: Periplus Editions-Proyek EMDI. Lesmana I. 2010. Produksi dan Bioaktivitas Protein Rekombinan Hormon Pertumbuhan Dari Tiga Jenis Ikan Budidaya. [Tesis]. Sekolah Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. Li Y, Bai J, Jian Q, Ye X, Lao H, Li X, Luo J, Liang X. 2003. Expression of common carp growth hormone in the yeast Pichia pastoris and growth
13
stimulation of juvenile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture 216: 329-341. Moriyama S, Kawauchi H. 1990. Growth stimulation of juvenile salmonids by immersion in recombinant salmon growth hormone. Nippon Suisan Gakkaishi 56: 31-34. , Hiroshi Y, Seiji S, Toshio A, Tetsuya H, and Hiroshi K. 1993. Oral administration of recombinant salmon growth hormone to rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture 112: 99-106. , Kawauchi H. 2004. Somatic growth acceleration of juvenile abalone, Haliotis discus hannai, by immersion in and intramuscular injection of recombinant salmon growth hormone. Aquaculture 229: 469478. Pogram RKS. 2012. Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Betok Umur 12 Hari yang Direndam dengan Hormon Pertumbuhan Rekombinan Ikan Kerapu Kertang pada Dosis Berbeda. Promdonkoy B, Warit S, Panyim S. 2004. Production of a biologically active growth hormone from giant catfish (Pangasianodon gigas) in Escherichia coli. Biotechnology Lett 26: 649-653. Putra HGP. 2011. Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Gurame yang Diberi Protein Rekombinan GH Melalui Perendaman dengan Dosis Berbeda [Skripsi]. Departemen Budidaya Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Rahmawaty. 2011. Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Gurame yang Diberi Pakan Alami yang Disuplementasi Hormon Pertumbuhan Rekombinan. [Skripsi]. Departemen Budidaya Perairan. Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Ratnawati. 2012. Pertumbuhan dan Kelangsungan Hidup Benih Ikan Gurame yang Diberi Hormon Pertumbuhan Rekombinan dengan Lama Perendaman yang Berbeda. [Skripsi]. Departemen Budidaya Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Sakai M , Kajita Y, Kobayashi M, Kawauchi H. 1997. Immunostimulating effect of growth hormone: in-vivo administration of growth hormone in rainbow trout enhances resistance to Vibrio anguillarum infection. Veterinary Immunology and Immunopathology 57: 147-152.
Xu B, Mai K, Xu Y, Miao H, Liu Z, Dong Y, Lan S, Wang R, Zhang P. 2001. Growth promotion of red sea bream, Pagrosomus major, by oral administration of recombinant eel and salmon growth hormone. Chin J Oceanol Limnol 19: 141-146.
14
LA AMPIR IRAN
15
Lampiran 1. Analisis Sidik Ragam (ANOVA) dan Uji Lanjut Tukey’s
Descriptives Parameter
Perlakuan
N
Mean
P.Baku
Kontrol (0) 3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0) 3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0) 3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0) 3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L
3 3 3 3 12 3 3 3 3 12 3 3 3 3 12 3 3 3 3
4,4967 4,4633 4,5633 4,6233 4,5367 5,4767 5,4300 5,5100 5,5900 5,5017 1,7567 1,7467 1,7733 1,7967 1,7683 416,1733 476,1800 487,5533 529,0100
,04040 ,03335 ,06000 ,02995 ,07390 ,04665 ,04670 ,09165 ,01000 ,07782 ,01000 ,02665 ,02335 ,02335 ,02713 38,57378 36,47076 25,62691 19,14772
95% Confidence Interval for Mean Lower Upper Bound Bound 4,3963 4,5971 4,3805 4,5462 4,4143 4,7123 4,5489 4,6977 4,4897 4,5836 5,3608 5,5926 5,3140 5,5460 5,2823 5,7377 5,5652 5,6148 5,4522 5,5511 1,7319 1,7815 1,6805 1,8129 1,7153 1,8313 1,7387 1,8547 1,7511 1,7856 320,3508 511,9959 385,5816 566,7784 423,8926 551,2141 481,4444 576,5756
Total
12
477,2292
49,75680
445,6152
Kontrol (0)
3
3,4022
,20708
2,8877
3,9166
SGR
3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0) 3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0)
3 3 3 12 3 3 3 3 12 3
3,3931 3,4124 3,4655 3,4183 ,0653 ,0651 ,0655 ,0665 ,0656 11,6374
,05659 ,06601 ,01395 ,10033 ,00398 ,00113 ,00127 ,00026 ,00193 ,11926
3,2525 3,2484 3,4308 3,3545 ,0554 ,0623 ,0623 ,0658 ,0644 11,3412
3,5337 3,5764 3,5001 3,4820 ,0752 ,0679 ,0686 ,0672 ,0668 11,9337
SR
3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total Kontrol (0)
3 3 3 12 3
11,6345 11,6454 11,6753 11,6482 61,5000
,03192 ,03743 ,00772 ,05764 9,04157
11,5553 11,5524 11,6561 11,6116 39,0395
11,7138 11,7384 11,6945 11,6848 83,9605
3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L Total
3 3 3 12
70,1667 71,5000 76,3333 69,8750
5,25198 5,07445 3,05505 7,58325
57,1200 58,8944 68,7442 65,0568
83,2133 84,1056 83,9225 74,6932
P.Total
Tinggi
Biomassa
ABW
GR
Std. Deviation
508,8431
16
ANOVA Sum of Squares P.Baku
df
Mean Square
Between Groups
,046
3
,015
Within Groups Total
,014 ,060
8 11
,002
P.Total
Between Groups Within Groups Total
,041 ,026 ,067
3 8 11
Tinggi
Between Groups Within Groups Total
,004 ,004 ,008
Biomassa
Between Groups Within Groups Total
ABW
GR
F
Sig.
8,394
,007
,014 ,003
4,241
,045
3 8 11
,001 ,000
3,015
,094
19550,276 7682,853 27233,129
3 8 11
6516,759 960,357
6,786
,014
Between Groups Within Groups Total
,009 ,101 ,111
3 8 11
,003 ,013
,249
,860
Between Groups Within Groups
,000 ,000
3 8
,000 ,000
,248
,861
,001 ,004
,250
,859
3,173
,085
Total
,000
11
SGR
Between Groups Within Groups
,003 ,033
3 8
,037
11
SR
Between Groups
343,729
3
114,576
Within Groups Total
288,833 632,563
8 11
36,104
Total
P.Baku
P.Total a
Tukey HSD Perlakuan
N
3 mg/L
3
Subset for alpha = 0,05 1
2
4,4633
Kontrol (0) 3 4,4967 6 mg/L 3 4,5633 4,5633 12 mg/L 3 4,6233 Sig. ,079 ,371 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
Perlakuan 3 mg/L Kontrol (0)
Tukey HSDa Subset for alpha = 0,05 N 1 2 3 3
5,4300 5,4767
5,4767
6 mg/L 3 5,5100 5,5100 12 mg/L 3 5,5900 Sig. ,370 ,144 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
17
Biomassa
Tinggi
Tukey HSDa
a
Tukey HSD Perlakuan
N
3 mg/L Kontrol (0) 6 mg/L
3 3 3
Subset for alpha = 0,05 1 1,7467 1,7567 1,7733
12 mg/L 3 1,7967 Sig. ,087 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
Perlakuan
Subset for alpha = 0,05
N
1
Kontrol (0)
3
416,1733
3 mg/L
3
476,1800
GR Tukey HSDa
a
Tukey HSD
Subset for alpha = 0,05
Perlakuan
N
3 mg/L
3
3,3931
Kontrol (0)
3
3,4022
1
6 mg/L 3 3,4124 12 mg/L 3 3,4655 Sig. ,858 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
Perlakuan
N
Subset for alpha = 0.05 1
3 mg/L 3 ,0651 Kontrol (0) 3 ,0653 6 mg/L 3 ,0655 12 mg/L 3 ,0665 Sig. ,857 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
SGR
SR
Tukey HSDa
Tukey HSDa
N
476,1800
6 mg/L 3 487,5533 487,5533 12 mg/L 3 529,0100 Sig. ,086 ,235 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
ABW
Perlakuan
2
Subset for alpha = 0,05 1
3 mg/L 3 11,6345 Kontrol (0) 3 11,6374 6 mg/L 3 11,6454 12 mg/L 3 11,6753 Sig. ,865 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
Subset for alpha = 0,05
Perlakuan
N
Kontrol (0)
3
61,5000
3 mg/L 6 mg/L 12 mg/L
3 3 3
70,1667 71,5000 76,3333
1
Sig. ,064 Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 3.000.
18
Lampiran 2. Skema Penelitian Pendahuluan
Penelitian Pendahuluan
Benih Ikan Betok Umur 6 hari
NaCl 3,0% 2 menit
NaCl 2,5% 2 menit
NaCl 2,0% 2 menit
Larutan NaCl 0,2%; 0,5% dan 0,7% selama 2 jam
SR terbaik sebesar 80% setelah 14 hari pemeliharaan
1 ulangan @ 100 ekor
Akuarium ukuran: 30 x 20 x 20 cm Diisi : 10 liter air tawar
Lampiran 3. Proses Produksi rHP
Produksi Bakteri rHP Escherichia Coli BL21
Culture
Suhu 150C
1 mL
Sub culture Plate E. coli BL21 hasil transformasi 3 ml LB + 3 µl 100 ml LB + 100 µl Cold shock 30 menit pCold – ElHP Amp+ NaOH 5M Amp shake (Alimuddin et al., (3 jam, 370C) Shake 2010) (over night) + 500 µl IPTG 100 mM
pelet ElHP‐BL21
Sentrifuse 12.000 rpm selama 1 menit
Culture 24 jam (shake), 150C
19
Lampiran 4. Dokumentasi Produksi rHP
20
