DIFERENSIAL LEUKOSIT DAN RASIO NEUTROFIL/LIMFOSIT (N/L) PADA KERBAU LUMPUR (Bubalus bubalis) BETINA
AYU SYLVITA AMANDA
FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2012
PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi Diferensial Leukosit dan Rasio Neutrofil/Limfosit (N/L) pada Kerbau Lumpur (Bubalus bubalis) Betina adalah karya saya dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.
Bogor, September 2012
Ayu Sylvita Amanda NRP B04080168
ABSTRACT AYU SYLVITA AMANDA. Differential of Leucocytes and Neutrophil/Lymphocyte (N/L) Ratio of Female Swamp Buffaloes (Bubalus bubalis). Under direction of HERA MAHESHWARI and ARYANI SISMIN SATYANINGTIJAS. The goal of this research was to study the total number of leucocytes and its variant of leucocytes, also neutrophil/lymphocyte (N/L) ratio as stress index of four female swamp buffaloes for ten weeks. Blood sampling was done every two days for ten weeks. Blood samples were collected from jugularis vein by using an EDTA coated tube. White blood cells was counted on hemocytometer and the blood smears were stained by Giemsa to count the number of total variant of leukocytes. The average of total number of leucocyte was 10845,89±2518,20 cells/mm3, neutrophil was 6084,29±2214,96 cells/mm3, eosinophil was 170,88±156,77 cells/mm3, monocyte was 231,65±172,89 cells/mm3, dan lymphocyte was 4361,17±1926,58 cells/mm3. Neutrophil/lymphocyte (N/L) ratio was 1,76±1,13. Keywords: leucocytes, differential of leucocytes, swamp buffalo, stress
ABSTRAK AYU SYLVITA AMANDA. Diferensial Leukosit dan Rasio Neutrofil/Limfosit (N/L) pada Kerbau Lumpur (Bubalus bubalis) Betina. Dibimbing oleh HERA MAHESHWARI dan ARYANI SISMIN SATYANINGTIJAS. Penelitian ini dilakukan untuk mengetahui jumlah total leukosit, jenis-jenis leukosit, dan rasio neutrofil/limfosit (N/L) sebagai indeks stres pada kerbau lumpur (Bubalus bubalis) betina selama sepuluh minggu. Darah kerbau lumpur diambil setiap dua hari sekali selama sepuluh minggu. Darah diambil melalui vena jugularis menggunakan tabung berisi EDTA. Sel darah putih dihitung dengan kamar hitung (hemocytometer) dan preparat ulas darah untuk menghitung jenis leukosit diwarnai dengan pewarnaan giemsa. Rataan dari total leukosit adalah 10845,89±2518,20 sel/mm3, dengan total neutrofil 6084,29±2214,96 sel/mm 3, eosinofil 170,88±156,77 sel/mm3, monosit 231,65±172,89 sel/mm3, dan limfosit 4361,17±1926,58 sel/mm3. Rasio N/L pada kerbau 1,76±1,13. Kata kunci: leukosit, diferensial leukosit, kerbau lumpur, stres
©Hak Cipta milik IPB, tahun 2012 Hak Cipta dilindungi Undang-Undang Dilarang mengutip sebagian atau seluruh karya tulis ini tanpa mencantumkan atau menyebutkan sumbernya. Pengutipan hanya untuk kepentingan pendidikan, penelitian, penulisan karya ilmiah, penyusunan laporan, penuisan kritik, atau tinjauan suatu masalah; dan pengutipan tersebut tidak merugikan kepentingan yang wajar IPB Dilarang mengumumkan dan memperbanyak sebagian atau seluruh Karya tulis dalam bentuk apa pun tanpa izin IPB
DIFERENSIAL LEUKOSIT DAN RASIO NEUTROFIL/LIMFOSIT (N/L) PADA KERBAU LUMPUR (Bubalus bubalis) BETINA
AYU SYLVITA AMANDA
Skripsi Sebagai Salah Satu Syarat Memperoleh Gelar Sarjana Kedokteran Hewan pada Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor
FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2012
JudulSkripsi
: Diferensial Leukosit dan Rasio Neutrofil/Limfosit pada Kerbau Lumpur (Bubalus bubalis) Betina.
Nama Penulis
: Ayu Sylvita Amanda
NRP
: B04080168
Disetujui, DosenPembimbing I
DosenPembimbing II
Dr. Drh. Hera Maheshwari, M.Sc., AIF NIP. 19640526 198403 1 001
Dr. Drh. Aryani Sismin S., M. Sc. AIF NIP. 19600914 198603 2 001
Diketahui WakilDekanFakultasKedokteranHewan
Drh. AgusSetyono M. S, Ph. D APVet NIP. 19630810 198803 1 004 Tanggal Lulus :
KATA PENGANTAR
Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT atas segala karuniaNya sehingga skripsi ini dapat terselesaikan. Penelitian dilaksanakan sejak bulan Mei sampai Agustus 2011. Skripsi yang berjudul “Diferensial Leukosit dan Rasio Neutrofil/Limfosit (N/L) pada Kerbau Lumpur (Bubalus bubalis) Betina” merupakan salah satu syarat untuk memperoleh gelar sarjana pada Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor. Penulis mengucapkan terima kasih kepada Dr. drh. Hera Maheshwari, M. Sc dan Dr. drh. Aryani Sismin Satyaningtijas, M.Sc. selaku pembimbing yang telah banyak memberi saran dan kritik. Penulis juga menyampaikan terima kasih kepada teman-teman satu penelitian, Ibu Ida, Ibu Sri, dan Bapak Kosasih yang telah membantu selama penelitian. Penulis mempersembahkan skripsi ini kepada Ayahanda dan Ibunda tercinta, Akhmad Munawar dan Misna Darlena atas segala perjuangan beliau membesarkan dan mendidik penulis selama ini, serta seluruh keluarga dan sahabat yang telah mendoakan. Penulis berharap semoga skripsi ini bermanfaat bagi semua pihak yang membutuhkannya dan mudah-mudahan bermanfaat untuk dunia kedokteran hewan Indonesia.
Bogor, September 2012
Ayu Sylvita Amanda
RIWAYAT HIDUP
Penulis dilahirkan di Sukajadi pada tanggal 10 Juni 1991 sebagai anak pertama dari dua bersaudara, dari ayah yang bernama Akhmad Munawar dan ibu Misna Darlena. Penulis menempuh pendidikan di Sekolah Menengah Atas Negeri 1 Pangkalan Balai-Kabupaten Banyuasin mulai tahun 2005 sampai tahun 2008. Penulis diterima sebagai mahasiswa Fakultas Kedokteran Hewan-Institut Pertanian Bogor pada tahun 2008 melalui jalur Seleksi Nasional Masuk Perguruan Tinggi Negeri (SNMPTN). Selama perkuliahan penulis pernah menjabat sebagai anggota Divisi Kewirausahaan-Ikatan Mahasiswa Bumi Sriwijaya (IKAMUSI) periode 2008-2009, Bendahara II Himpunan Minat dan Profesi (Himpro) Ruminansia periode 2009-2010, dan Ketua Divisi Konservasi Reptil Amfibi-Uni Konservasi Fauna (UKF) periode 2010-2011.
DAFTAR ISI Halaman DAFTAR TABEL .................................................................................................. xi DAFTAR GAMBAR ............................................................................................ xii PENDAHULUAN....................................................................................................1 Latar Belakang ...................................................................................................1 Tujuan ................................................................................................................2 Manfaat Penelitian .............................................................................................2 TINJAUAN PUSTAKA...........................................................................................3 Tinjauan Umum Kerbau.....................................................................................3 Darah ..................................................................................................................5 Neutrofil .......................................................................................................8 Eosinofil .......................................................................................................9 Basofil ........................................................................................................11 Monosit ......................................................................................................12 Limfosit ......................................................................................................13 Stres ..................................................................................................................15 METODOLOGI PENELITIAN .............................................................................17 Waktu dan Tempat Penelitian ..........................................................................17 Materi Penelitian ..............................................................................................17 Hewan coba ................................................................................................17 Alat dan bahan............................................................................................17 Metode Penelitian.............................................................................................17 Tahap Persiapan .........................................................................................17 Pengambilan darah kerbau .........................................................................17 Penghitungan jumlah leukosit ....................................................................18 Pembuatan preparat ulas darah dan diferensial leukosit ............................19 Analisis Data ....................................................................................................19 HASIL DAN PEMBAHASAN ..............................................................................20 Leukosit ............................................................................................................20 Neutrofil ...........................................................................................................22 Eosinofil ...........................................................................................................23
Basofil ..............................................................................................................25 Monosit ............................................................................................................25 Limfosit ............................................................................................................27 Neutrofil/limfosit..............................................................................................28 SIMPULAN DAN SARAN ...................................................................................30 Simpulan .........................................................................................................30 Saran ................................................................................................................30 DAFTAR PUSTAKA ...........................................................................................31
DAFTAR TABEL Halaman 1
Karakteristik jenis-jenis sel darah putih .............................................................7
2
Rataan jumlah leukosit, jenis-jenis leukosit, dan rasio N/L kerbau rawa betina selama sepuluh minggu .........................................................................20
DAFTAR GAMBAR Halaman 1
Neutrofil ...........................................................................................................8
2
Eosinofil .........................................................................................................10
3
Basofil ............................................................................................................11
4
Monosit .........................................................................................................12
5
Limfosit ...........................................................................................................14
6
Kamar hitung (hemocytometer) ......................................................................18
7
Jumlah leukosit kerbau rawa selama sepuluh minggu ...................................20
8
Neutrofil..........................................................................................................22
9
Jumlah neutrofil kerbau rawa selama sepuluh minggu .................................23
10 Eosinofil ..........................................................................................................24 11 Jumlah eosinofil kerbau rawa selama sepuluh minggu .................................24 12 Monosit ...........................................................................................................26 13 Jumlah monosit kerbau rawa selama sepuluh minggu ..................................26 14 Limfosit ..........................................................................................................27 15 Jumlah limfosit kerbau rawa selama sepuluh minggu ...................................28 16 Nilai rasio neutrofil/limfosit (N/L) kerbau rawa selama sepuluh minggu ............................................................................................................29
PENDAHULUAN
Latar Belakang Indonesia memiliki plasma nutfah yang berlimpah termasuk hewan ruminansia besar maupun kecil yang sangat berguna bagi kehidupan sehari-hari, terutama ruminansia besar seperti kerbau. Perkembangan populasi kerbau di Indonesia kurang menggembirakan karena selama 70 tahun, dari tahun 1923 sampai tahun 1993 populasi kerbau hanya mengalami sedikit peningkatan, yaitu dari 2.146.437 ekor menjadi 3.060.300 ekor. Berdasarkan data statistik tahun 2006-2011, jumlah kerbau di Indonesia mengalami angka yang fluktuatif. Pada tahun 2006-2008, jumlah kerbau terus menurun, namun pada tahun 2009 dan 2010 mengalami peningkatan, angka sementara pada tahun 2011 adalah 1.305.000 ekor (Ditjennak 2010). Jumlah populasi ini tidak lepas dari pengaruh faktor internal dan faktor eksternal terhadap produksi dan reproduksi kerbau. Faktor internal yang mempengaruhi misalnya berahi diam (silent heat), lama kebuntingan, panjang jarak antar kelahiran (calving interval), dan tingkat kematian yang cukup tinggi pada anak kerbau. Sementara itu, faktor eksternal yang mempengaruhi jumlah populasi yaitu keterbatasan bibit unggul, kualitas pakan yang rendah, perkawinan silang dalam (inbreeding), keterbatasan modal, kelangkaan tenaga, kurangnya pengetahuan ternak tentang produksi kerbau serta kurang tersedianya tenaga penyuluh dan teknologi tepat guna (Suryana 2007). Pencegahan dan pengendalian terhadap penyakit dilakukan sebagai salah satu usaha untuk menanggulangi faktor internal dan eksternal pada kerbau, sehingga dapat mewujudkan program swasembada daging dan penyediaan daging aman, sehat, utuh, dan halal (ASUH). Kesehatan hewan menjadi penting karena jika terdapat infeksi penyakit, dikhawatirkan akan dapat mengganggu kesehatan manusia yang mengkonsumsi pangan asal hewan tersebut. Beberapa penyakit yang pernah dilaporkan terjadi pada kerbau lumpur adalah theilleriosis, fasciolasis, tripanosomiasis, clostridiosis, ngorok, surra, Malignant Catharall Fever (MCF) dan black disease (Suryana 2007; Mahmmod et al. 2011).
Respon pertahanan tubuh terhadap penyakit terdiri atas berbagai cara, salah satunya adalah sistem pertahanan yang dilakukan oleh sel darah putih (leukosit) (Frandson 1992). Sel darah putih dapat melakukan perannya dalam sistem pertahanan melalui jenis-jenis sel yang dimiliki seperti limfosit, monosit, neutrofil, eosinofil, dan basofil. Masing-masing jenis sel darah putih ini memiliki fungsi yang berbeda-beda di dalam menjalankan mekanisme pertahanan tubuh. Indikasi adanya stres, infeksi atau kelainan dalam tubuh karena suatu penyakit dapat dilihat dari perubahan jumlah sel darah putih secara keseluruhan atau salah satu dari jenis sel darah putih. Kesehatan hewan ini erat kaitannya dengan kondisi fisiologis seekor hewan, oleh karena itu, aspek kesehatan hewan harus dijaga. Salah satu penegakan diagnosa adanya penyakit adalah melakukan pemeriksaan darah. Penelitian ini mengulas tentang pemeriksaan sel darah putih dan komponennya sebagai data dasar kerbau lumpur dan untuk mengetahui status kesehatannya.
Tujuan Tujuan penelitian ini adalah untuk mengetahui jumlah rataan leukosit, neutrofil, eosinofil, basofil, monosit, dan limfosit, serta melihat indeks stres kerbau lumpur.
Manfaat Penelitian Penelitian ini diharapkan dapat menambah informasi mengenai kerbau lumpur, khususnya jumlah rataan leukosit dan indeks stres untuk kerbau lumpur. Hasil penelitian ini juga diharapkan dapat dijadikan sebagai acuan dalam penelitian-penelitian selanjutnya yang menggunakan kerbau lumpur sebagai hewan percobaan.
TINJAUAN PUSTAKA Tinjauan Umum Kerbau
Menurut Bhattacharya (1993), semua kerbau domestik diduga berevolusi dari arni (Bubalus arnee) yaitu kerbau liar dari India yang masih dijumpai di hutan-hutan di daerah Assam. Domestikasi kerbau sudah terjadi sejak lama dan tidak diketahui pasti kapan terjadinya. Namun, penemuan-penemuan arkeologis di India menyatakan bahwa kerbau didomestikasi sekitar 4500 tahun yang lalu. Berdasarkan tipe habitatnya, kerbau dibedakan menjadi kerbau sungai (river buffalo) dan kerbau lumpur (swamp buffalo). Kerbau sungai lebih menyukai berada di air yang bersih dan mengalir, sedangkan kerbau lumpur lebih suka berada di lumpur, rawa-rawa, dan air yang menggenang (Bhattacharya 1993). Kedua kerbau ini merupakan kerbau Asia yang didomestikasi dan memiliki jumlah kromosom yang berbeda, yaitu 48 kromosom untuk kerbau lumpur dan 50 kromosom untuk kerbau sungai (Bahri & Talib 2008). Kerbau tersebar di beberapa propinsi di Indonesia, mulai dari populasi terbanyak sampai terendah secara berturut-turut yaitu di Nanggroe Aceh Darussalam, Sumatera Barat, Sumatera Utara, Sulawesi Selatan, Nusa Tenggara Barat, Maluku, dan Papua (Ditjennak 2010). Penyebaran populasi ini merupakan dampak dari adanya zona ideal bagi kerbau untuk dapat hidup dan beradaptasi. Berdasarkan data statistik Direktorat Jendral Peternakan, populasi kerbau lebih banyak terdapat di daerah pulau Sumatera yang relatif memiliki musim panas lebih singkat dan berudara relatif lembab. Kondisi demikianlah yang menjadi kemungkinan populasi kerbau lebih banyak terdapat di daerah Indonesia bagian barat dari pada di Indonesia bagian timur (Bamualim & Muhammad 2008). Kerbau lumpur (Bubalus bubalis)
terdistribusi di negara-negara Asia
Tenggara seperti Burma, Laos, Vietnam, Malaysia, Thailand, Filipina, dan Indonesia, bahkan meluas hingga ke Cina dan Assam. Kerbau lumpur merupakan sebutan untuk semua jenis kerbau lokal yang terdapat di Asia tenggara. Penggunaan nama kerbau lumpur ini dikarenakan di Malaysia bagian barat, habitat alami kerbau ini adalah di lumpur. Klasifikasi dari kerbau lumpur ini (Roth 2004) adalah sebagai berikut:
Kingdom
: Animalia
Filum
: Chordata
Kelas
: Mamalia
Ordo
: Artiodactyla
Subordo
: Ruminansia
Famili
: Bovidae
Genus
: Bubalus
Spesies
: Bubalus bubalis
Secara fenotip, kerbau memiliki tulang yang besar, agak kompak dengan badan yang tergantung rendah pada kaki yang kuat dan kuku yang besar. Kerbau tidak mempunyai glambir maupun punuk. Kerbau mempunyai tanduk yang lebih padat dibandingkan dengan sapi, bahkan beberapa jenis dapat dibedakan melalui bentuk tanduk yang khas (Bhattacharya 1993). Ketika lahir, kulit kerbau berwarna abu-abu. Tanduk, kaki, dan rambut secara normal memiliki warna yang sama dengan kulit, tetapi cenderung sedikit gelap. Pada kerbau sungai, warna rambut biasanya hitam. Kerbau lumpur biasanya memiliki kaki yang berwarna putih atau abu-abu terang dan garis putih atau abu-abu terang menyerupai kalung di bawah dagu dan leher (Robbani 2009). Tanduk pada kerbau muda tumbuh secara lateral dan horizontal, sedangkan pada kerbau dewasa melengkung bulat membentuk setengah lingkaran. Tanduk kerbau memiliki ciri-ciri umum melingkar, lebih padat dari tanduk sapi, terdapat gelang-gelang tanduk dan warna hitam. Berdasarkan penelitian yang dilakukan oleh Robbani (2009), terdapat dua bentuk tanduk kerbau yang dapat ditemukan di daerah Kabupaten Bogor, yaitu melingkar ke belakang dan melingkar ke bawah. Bentuk tanduk yang dominan di daerah tersebut adalah melingkar ke belakang. Namun, di daerah Tapanuli Selatan dominan ditemukan tanduk melingkar ke atas. Selain tanduk, ciri yang khas pada kerbau adalah unyeng-unyeng (whorls). Unyeng-unyeng merupakan garis tanda pada rambut kerbau yang umumnya berbentuk melingkar-lingkar dan semakin terpusat. Unyeng-unyeng dapat ditemukan di bagian kepala, dada, pinggul dan perut (Robbani 2009).
Kerbau merupakan hewan tropik yang memiliki daya tahan rendah terhadap panas. Oleh karena itu, kerbau lebih suka berkubang dan sebaiknya berada di daerah dengan suhu relatif rendah. Hasil penelitian menyatakan bahwa zona paling ideal bagi kerbau untuk bermukim yakni pada kisaran suhu 16 o-24oC, dengan batas toleransi 27,6oC. Suhu tubuh kerbau dalam kisaran normal 37,4o37,8oC, pulsus jantung 38,6-44,7 kali/menit, dan respirasi 25,6-29,4 kali/menit (Bamualim & Muhammad 2008). Adaptasi kerbau lumpur terhadap panas lebih rendah dibandingkan dengan kerbau sungai. Kerbau lumpur membutuhkan air yang lebih banyak dan tidak terbatas untuk mempertahankan agar dirinya tetap sejuk. Kerbau memiliki kulit yang gelap dan rambut yang jarang, sehingga absorbsi panas pada tubuhnya akan lebih besar. Kemampuan evaporasi pendinginan dari tubuh kerbau kurang efisien dikarenakan kemampuan berkeringat yang rendah. Oleh karena itu, kerbau yang dipekerjakan di bawah sinar matahari langsung akan menunjukkan tanda-tanda sakit. Jika dibandingkan dengan sapi, kemampuan adaptasi kerbau terhadap panas memang lebih baik, namun pada kondisi dingin sapi mampu beradaptasi lebih baik (Bhattacharya 1993). Perbedaan yang cukup mencolok antara kerbau dan sapi dapat dilihat dari tingkat efisiensi pakan. Kerbau dapat bertahan hidup dengan kondisi pakan yang berkualitas rendah. Kelebihan ini dapat menjadi keuntungan bagi peternak karena dengan input yang rendah dapat menghasilkan output yang tinggi. Kerbau juga memiliki daya adaptasi yang besar, misalnya pada kondisi dimana terdapat banyak jerami atau rumput air yang tidak dimakan oleh sapi, maka kerbau akan tetap memakan pakan tersebut. Pada kondisi seperti ini, sapi akan memburuk kondisinya, sedangkan kerbau dapat terus bertahan (Bhattacharya 1993).
Darah Darah merupakan elemen paling penting bagi makhluk hidup tingkat tinggi. Darah terdiri atas cairan dan padatan dengan perbandingan 55% cairan dan 45% padatan. Bentuk cairan disebut plasma yang terdiri atas air, protein, elektrolit, gas terlarut, zat makanan (nutrien), hormon, dan produk sisa (waste product). Bentuk padatan terdiri atas sel darah merah (eritrosit), sel darah putih
(leukosit), dan trombosit (platelet). Bentuk cairan dan padatan ini dapat dipisahkan melalui sentrifugasi. Bentuk cairan lebih ringan dibandingkan dengan bentuk padatan, oleh karena itu pada tabung sentrifugasi (centrifuge tube) plasma terletak dibagian atas dari bentuk padatan (Cunningham & Klein 2007). Sebagian besar sel-sel darah beredar di pembuluh darah. Eritrosit dan trombosit tidak dapat menembus pembuluh darah, sedangkan
leukosit dapat
bermigrasi ke jaringan dengan cara menembus pembuluh darah untuk melakukan pertahanan terhadap infeksi. Leukosit merupakan sel darah yang istimewa karena merupakan satu-satunya sel darah mamalia yang bernukleus dan memiliki organel. Leukosit tidak mengandung hemoglobin (Hb). Meskipun jumlahnya hanya 1% dari volume darah, namun leukosit adalah komponen yang sangat penting dalam sistem imun (Akers & Denbow 2008). Leukosit, terutama neutrofil, dapat meninggalkan sistem sirkulasi dan keluar dari pembuluh darah melalui proses yang disebut emigrasi. Menurut Akers & Denbow (2008) proses emigrasi ini terdiri atas beberapa tahap yaitu: 1.
Di dekat daerah peradangan atau inflamasi, sel-sel endotel kapiler mengeluarkan molekul adhesi yang dinamakan selektin pada permukaannya. Neutrofil juga memiliki molekul adhesi yang dinamakan integrin pada permukaannya yang dapat mengenali selektin. Hal ini akan menyebabkan leukosit berbaris pada permukaan dalam kapiler di dekat daerah peradangan. Proses ini disebut marginasi.
2. Leukosit dapat bergerak keluar kapiler melalui proses yang disebut diapedesis. 3. Setelah meninggalkan aliran darah, leukosit bermigrasi secara amoeboid mengikuti sinyal kimia yang dihasilkan oleh jaringan yang rusak. Proses demikian disebut kemotaksis positif. 4. Neutrofil dan makrofag akan menjadi fagosit dan mencerna bakteri dan selsel yang mati. Leukosit dapat dibagi menjadi dua kategori yaitu granulosit dan agranulosit. Granulosit adalah sel yang memiliki segmen atau lobus pada inti sel dan granul pada sitoplasma, terdiri atas neutrofil, eosinofil, dan basofil. Agranulosit adalah sel yang tidak memiliki segmen atau lobus pada inti dan tidak
ada granul pada sitoplasma, terdiri atas monosit dan limfosit (Samuelson 2007). Karakteristik jenis-jenis sel darah putih secara singkat dapat dilihat pada Tabel 1.
Tabel 1 Karakteristik Jenis-Jenis Sel Darah Putih Latar belakang sitoplasma Bentuk dewasa tidak berwarna
Granul
Lama hidup
Granul primer muda berwarna merah-ungu; granul sekunder sedikit asidofilik
4-6 jam (kuda); 714 jam (hewan lain)
Memakan, menghancurkan, dan mencerna bakteri
Sedikit bercak warna biru
Besar, bulat, eosinofilik
30 menit (anjing)
Menghancurkan, mencerna, dan mengontrol parasit; memakan kompleks antigen-antibodi; berkontribusi dalam respon alergi dan peradangan akut.
Memiliki segmen yang paling sedikit diantara granuosit yang lain
Bercak biru muda sampai ungu
Basofilik, ukuran, jumlah, dan karakteristik bervariasi tergantung jenis hewan
Dapat dibanding kan dengan neutrofil
Media respon peradangan; respon reaksi hipersensitifitas melalui sekresi mediator vasoaktif (degranulasi)
Monosit
Tidak bersegmen, bentuk bervariasi (bulat, seperti ginjal)
Bercak birukeabuan dengan variasi ukuran vakuola
Berwarna pink sampai merahkeunguan
2-3 hari
Prekursor makrofag; memakan antigen
Limfosit
Tidak bersegmen, bulat sampai oval, ukuran bervariasi.
Bersih atau bercak biru muda, tetapi dapat menjadi biru tua pada sel yang reaktif
Tanpa granul,tetapi beberapa sel memiliki bercak granul merahkeunguan, ukuran medium sampai besar.
Long-lived (bulan sampai tahun); short lived (beberapa jam sampai 5 hari)
Respon imun berperantara sel (sel T); respon imun humoral (sel B).
Tipe sel
Inti sel
Neutrofil
Bersegmen atau berlobus;
Eosinofil
Lobulasi jelas tetapi jumlah lobus lebih sedikit dibandingkan neutrofil
Basofil
Sumber: Samuelson (2007)
Peran
Neutrofil Neutrofil merupakan komponen terbanyak dari leukosit. Jumlah neutrofil bervariasi pada setiap spesies hewan. Jumlah neutrofil pada hewan dapat mencapai 40% hingga 70%
Pada anjing dan kucing, neutrofil adalah jenis
leukosit yang paling banyak, sedangkan jumlah neutrofil pada kuda sedikit melampaui jumlah limfosit (Dellmann & Eurell 1998). Nama neutrofil berasal dari bahasa Latin (neuter=neither) dan bahasa Yunani (Philein=to love) yang berarti bahwa granul neutrofil tidak bersifat asidofilik mapun basofilik. Jika dilihat pada preparat ulas darah, inti sel neutrofil bersifat heterokromatik, banyak segmen (2-5 segmen), lobulasi jelas yang dipisahkan oleh benang kromatin tipis dan nukleoplasma. Neutrofil memiliki diameter 9-15 m, lebih kecil dari eosinofil dan hampir sama dengan basofil (Samuelson 2007).
Gambar 1 Neutrofil (Hoffbrand 2006)
Sitoplasma neutrofil berisi granul-granul kecil berukuran 0,3-0,8
m.
Granul pada neutrofil ada dua jenis yaitu granul primer atau azurofilik dan granul sekunder atau spesifik. Granul primer mengandung enzim lisosom dan peroksidase, sedangkan granul sekunder yang berukuran lebih kecil mengandung alkalin fosfatase dan zat-zat bakterisidal (protein kationik) yang dinamakan fagositin. Granul pada neutrofil secara umum pucat, tetapi pada kambing dan domba sedikit eosinofilik. Selain granul-granul pada sitoplasma, neutrofil juga memiliki organel sel. Neutrofil jarang mengandung retikulum endoplasma granuler, sedikit mitokondria, apparatus Golgi rudimenter dan sedikit granula glikogen (Akers & Denbow 2008).
Neutrofil diproduksi di sumsum tulang. Neutrofil yang keluar dari sumsum tulang akan bersirkulasi dalam pembuluh darah selama 6 sampai 14 jam sebelum bermigrasi ke jaringan untuk melakukan tugasnya selama periode tertentu. Dalam keadaan sehat, hanya neutrofil dewasa yang bersirkulasi dalam sirkulasi. Neutrofil yang belum matang secara normal berada di dalam sumsum tulang, tetapi dapat dilepaskan ke sirkulasi selama respon granulositik terhadap suatu penyakit (Dellmann & Eurell 1998). Neutrofil merupakan garis pertahanan utama terhadap adanya benda asing yang masuk ke jaringan tubuh. Kemampuan neutrofil untuk menuju ke jaringan tubuh dipengaruhi oleh agen kemotakrik (Samuelson 2007). Pada daerah yang terinfeksi, neutrofil akan memfagosit benda asing secara aktif dan mencernanya dengan bantuan enzim lisosom. Kemampuan neutrofil untuk memfagosit benda asing terbatas, sehingga ada saatnya neutrofil menghancurkan diri melalui autolisis. Neutrofil terdestruksi dan mengeluarkan zat-zat hasil degradasi ke dalam jaringan yang kemudian akan diangkut oleh limfe (Frandson 1992). Neutrofil memiliki metabolisme yang sangat aktif dan mampu melakukan glikolisis baik secara aerob dan anaerob. Kemampuan neutrofil untuk hidup dalam lingkungan anaerob sangat menguntungkan karena dapat membunuh bakteri dan membantu membersihkan debris pada jaringan nekrotik (Efendi 2003). Jumlah neutrofil meningkat pada kejadian infeksi, peradangan atau pun stres. Contoh adanya peningkatan jumlah neutrofil yaitu pada domba priangan yang mengalami stres transportasi. Peningkatan jumlah neutrofil terjadi pada jam ke-8 sampai dengan ke-12 dan mencapai puncak stres pada jam ke-12 setelah transportasi (Satyaningtijas et al. 2010). Di sisi lain, neutrofil pun dapat berkurang jumlahnya akibat infeksi yang mengganggu atau menyebabkan destruksi leukosit secara umum, seperti pada kasus theileriosis (Mahmmod et al. 2011).
Eosinofil Jumlah eosinofil berkisar antara 3 sampai 9% dari jumlah total leukosit. Inti sel memilki 2 sampai 3 segmen. Eosinofil memiliki granul yang bersifat eosinofilik sehingga ciri ini masih menjadi karakter morfologi untuk membedakan eosinofil dengan jenis leukosit yang lain. Hal ini tidak menutup kemungkinan bahwa masih terdapat beberapa variasi granul antar jenis hewan. Hewan
ruminansia dan babi memiliki granul dominan berwarna orange terang daripada merah, sedangkan granul pada eosinofil anjing berwarna pinkish atau orange muda (Dellmann & Eurell 1998). Sama halnya seperti neutrofil, eosinofil juga memiliki dua tipe granul yaitu granul azurofilik dan granul spesifik. Granul azurofilik lebih banyak terdapat pada saat proses perkembangan sel di sumsum tulang. Setelah dewasa, granul azurofilik akan digantikan oleh granul spesifik. Granul spesifik berbentuk bulat atau persegi panjang tergantung jenis hewan. Selain granul, sitoplasma eosinofil juga terdiri atas polisom, retikulum endoplasma kasar, mitokondria yang menyebar, dan apparatus Golgi (Samuelson 2007).
Gambar 2 Eosinofil (Hoffbrand 2006)
Eosinofil merupakan sel fagositik lain yang aktif dan tergantung pada respirasi anaerob untuk memperoleh energi. Target fagositosis eosinofil berbeda dengan neutrofil. Eosinofil berperan dalam memakan kompleks antigen-antibodi, tetapi tidak memakan dan menghancurkan mikroorganisme. Eosinofil tidak mempunyai lisosom yang cukup, seperti yang dimiliki granul neutrofil, untuk membunuh bakteri. Namun, granul eosinofil memiliki protein kationik yang dapat membunuh parasit cacing secara efektif (Samuelson 2007; Akers & Denbow 2008). Membran sel eosinofil dapat berikatan dengan leukotrin, histamin, dan eosinophil chemotactic factor (ECF), yang dapat membawa eosinofil menuju ke lokasi peradangan, invasi cacing, atau reaksi alergi. Ketika sampai ke lokasi, eosinofil akan melepaskan protein kationik yang akan membunuh cacing, atau memakan kompleks antigen-antibodi dan melepaskan substansi yang dapat
mengontrol respon peradangan (Samuelson 2007). Jadi, keadaan peningkatan jumlah eosinofil (eosinofilia) terjadi jika terdapat parasit cacing, peradangan, atau alergi. Sebaliknya, penurunan jumlah eosinofil dapat terjadi jika terdapat parasit darah sepert Theileria annulata. Berdasarkan penelitian Mahmmod et al. (2011), infeksi Theileria annulata pada kerbau sungai menyebabkan jumlah eosinofil atau leukosit secara umum akan menurun karena destruksi leukosit yang terdapat pada kelenjar limfoid dan organ lainnya.
Basofil Basofil adalah jenis leukosit yang paling sedikit ditemukan di dalam darah, yaitu sekitar 0 sampai 3% dari jumlah total leukosit. Basofil memiliki nukleus yang bervariasi, misalnya pada satu contoh memiliki segmen yang jelas namun pada contoh lain memiliki dua lobus yang sederhana. Pada hewan, misalnya kuda, nukleus tertutupi oleh granul sehingga sulit untuk melihat bentuk nukleus (Samuelson 2007). Basofil memiliki granul yang berwarna biru jika diberi pewarnaan Giemsa. Sama halnya seperti neutrofil dan eosinofil, basofil juga memiliki granul azurofilik dan granul spesifik. Granul yang paling banyak adalah granul spesifik yang terletak di sitoplasma, bersama dengan organel sel lain seperti retikulum endoplasma kasar, mitokondria, dan aparatus Golgi. Basofil juga mengandung substansi yang terdapat pada sel mast, seperti heparin, histamin, dan eosinophilic chemotactic factor (ECF). Ukuran granul bervariasi tergantung jenis hewan. Anjing memiliki jumlah basofil yang sedikit dan ukuran lebih besar dibandingkan pada hewan lain, khususnya kuda dan sapi (Samuelson 2007).
Gambar 3 Basofil (Hoffbrand 2006)
Fagositosis oleh basofil sangat terbatas. Basofil muncul utamanya pada aktivitas peradangan langsung dengan mekanisme yang hampir sama seperti yang dilakukan oleh sel mast. Mekanisme terjadinya ikatan antara imunoglobulin E (IgE) pada membran sel basofil membentuk ikatan Fc reseptor sel permukaan yang mirip dengan terjadinya pada sel mast. Ikatan reseptor tersebut akan berikatan dengan antigen sehingga dapat menyebabkan pelepasan isi granul (Samuelson 2007).
Monosit Monosit adalah leukosit terbesar diantara jenis leukosit lainnya. Monosit berdiameter 15 sampai 20 m dan berjumlah 3 sampai 9% dari total leukosit. Monosit memiliki nukleus yang berbentuk lonjong, seperti ginjal atau tapal kuda. Monosit menjadi sulit dibedakan dengan adanya transisi antara limfosit kecil dan besar, karena terdapat kemiripan pada bentuk nucleus, terutama pada ulas darah sapi (Dellmann & Brown 1992). Nukleus monosit memiliki warna yang lebih pucat dari limfosit, sitoplasma lebih banyak dari limfosit dan berwarna biru abuabu pucat. Butir azurofilik yang halus seperti debu juga sering ditemukan. Secara ultrastruktur, sitoplasma mengandung banyak lisosom dengan berbagai stadium aktivitas (lisosom primer dan sekunder), retikulum endoplasma kasar, polisom, mitokondria, dan glikogen.
Gambar 4 Monosit (Handayani 2008)
Peran monosit hampir sama dengan neutrofil, yaitu sebagai fagositik yang berkemampuan memakan antigen, seperti bakteri. Perbedaan monosit dengan neutrofil adalah neutrofil bekerja untuk mengatasi infeksi yang akut, sedangkan monosit mulai bekerja pada infeksi yang tidak terlalu akut seperti tuberkulosis (Frandson 1992). Monosit dalam darah tidak pernah mencapai dewasa penuh sampai bermigrasi ke jaringan menjadi makrofag (Aspinall & O’Reilly 2004) dan menetap di jaringan, seperti pada sinusoid hati, sumsum tulang, alveoli paru-paru, dan jaringan limfoid. Selain sebagai makrofag, monosit juga berperan dalam sistem imun. Kontak yang dekat antara permukaan limfosit dan monosit diperlukan untuk respon imunologis yang maksimal (Dellmann & Brown 1992). Monosit berada di dalam darah hanya beberapa hari, tetapi saat meninggalkan pembuluh darah dan memasuki jaringan akan bertahan sampai berbulan-bulan (Samuelson 2007).
Limfosit Limfosit adalah jenis leukosit yang juga memiliki jumlah bervariasi pada spesies hewan. Limfosit memiliki jumlah yang dominan pada total leukosit ruminansia, tikus, dan mencit, yaitu mencapai 60-70%. Pada anjing, kucing, dan kuda, jumlah limfosit berkisar antara 40 sampai 60% (Dellmann & Eurell 1998). Limfosit dibentuk di jaringan limfoid, meskipun berasal dari sel batang primordial di sumsum tulang (Aspinall & O’Reilly 2004). Limfosit memiliki ukuran dan penampilan yang bervariasi. Limfosit memiliki nukleus yang relatif besar, berbentuk bulat atau sedikit berlekuk, yang dikelilingi oleh sitoplasma. Pada sediaan ulas darah yang telah diwarnai dapat terlihat adanya limfosit besar dan limfosit kecil. Limfosit kecil berdiameter 6 sampai 9
m, memiliki nukleus yang besar yang kuat mengambil warna,
sitoplasma sedikit dan berwarna biru pucat. Limfosit besar berdiameter 12 sampai 15 m, nukleus lebih besar dan sedikit pucat jika dibandingkan dengan limfosit kecil, sitoplasma lebih banyak. Limfosit besar memiliki apparatus Golgi yang lebih jelas, sitoplasma dan mitokondria yang lebih besar, serta poliribosom yang lebih banyak dibandingkan dengan limfosit kecil (Dellmann & Brown 1992).
Fungsi utama limfosit yaitu sebagai respon terhadap adanya antigen dengan cara membentuk antibodi yang bersirkulasi di dalam darah atau dalam pengembangan imunitas seluler (Frandson 1992). Limfosit bertanggung jawab dalam respon imun spesifik dan terdiri atas dua tipe sel yaitu sel B dan sel T. Sel B memproduksi antibodi dan berperan dalam humoral immunity, sedangkan sel T berperan dalam cellular immune response (Aspinall & O’Reilly 2004). Samuelson (2007)
menyebutkan
bahwa
berdasarkan
fungsi
dasar,
limfosit
dapat
dikategorikan menjadi tiga tipe yaitu sel yaitu sel T, sel B, dan sel natural killer (NK). Ketiga tipe sel tersebut tidak dapat dibedakan hanya dengan mikroskop cahaya. Untuk membedakan ketiga sel tersebut, maka dapat digunakan metode imunohistokimia yang dapat menunjukkan perbedaan dari reseptor permukaan sel tersebut (Samuelson 2007).
Gambar 5 Limfosit (Hoffbrand 2006)
Sel T merupakan sel yang paling banyak yaitu sekitar 60-70% dari total limfosit darah dan berperan dalam imunitas seluler. Sel B memiliki jumlah yang sedikit yaitu 10-12% dari total limfosit darah dan beberapa diantaranya tumbuh menjadi sel plasma yang berperan dalam pembentukan antibodi (Dellmann & Brown 1992). Sel NK yang hanya sejumlah kecil dapat menghancurkan benda asing secara langsung (tanpa pengaruh dari sel T atau sel B) melalui cell-mediated cytotoxicity.
Stres Stres adalah kondisi tubuh sebagai respon terhadap suatu ancaman tertentu sehingga tubuh melakukan penyesuaian terhadap kondisi tersebut. Selama proses penyesuaian terhadap kondisi stres terjadi perubahan fisiologis dan tingkah laku hewan sampai proses adaptasi tercapai. Stres dapat dibagi menjadi dua bentuk yaitu stres akut dan stres kronis. Stres akut adalah stres yang muncul cukup kuat, tetapi dapat menghilang dengan cepat, terutama jika penyebab stres dihilangkan. Stres kronis adalah stres yang tidak terlalu kuat, tetapi dapat bertahan lama sampai berhari-hari, berminggu-minggu, bahkan berbulan-bulan (NSC 2004). Stres (misalnya akibat trauma, infeksi, peradangan atau kerusakan jaringan) akan memicu impuls saraf ke hipotalamus. Hipotalamus akan melepaskan hormon pelepas kortikotropin (corticotropin-releasing hormone) yang melewati sistem portal hipotalamus-hipofisis menuju kelenjar pituitari anterior (adenohipofise). Kelenjar pituitari anterior akan dirangsang untuk melepaskan adrenocorticotropin hormone (ACTH). ACTH akan bersirkulasi di dalam darah menuju kelenjar adrenal yang berfungsi untuk mensekresikan glukokortikoid. Zona fasikulata dan zona retikularis lebih sensitif terhadap ACTH untuk menghasilkan glukokortikoid dibandingkan dengan zona glomerulosa yang menghasilkan mineralokortikoid. Glukokortikoid inilah yang mengakibatkan peningkatan persediaan asam amino, lemak, dan glukosa dalam darah untuk membantu memperbaiki kerusakan yang disebabkan oleh stres dan menstabilkan membran lisosom untuk mencegah kerusakan lebih lanjut (Frandson 1992). Stres pada hewan dapat diukur melalui rasio neutrofil/limfosit (N/L). Kannan et al. (2000) menyebutkan bahwa terjadi peningkatan jumlah neutrofil dan penurunan jumlah limfosit pada kambing yang mengalami stres akibat transportasi. Rasio N/L lebih tinggi setelah proses transportasi dibandingkan sebelum proses transportasi. Rasio N/L normal pada kambing adalah 1,5 namun pada kambing yang mengalami stres akibat transportasi dapat mencapai 2,7. Penelitian yang dilakukan oleh Ambore et al. (2009) menunjukkan adanya peningkatan neutrofil pada kambing setelah proses transportasi dan terjadi eosinopenia. Hal ini diduga merupakan respon dari kortisol di dalam darah. Kannan et al. (2000) juga menyebutkan bahwa hasil penelitian yang dilakukan
tidak menunjukkan adanya penurunan jumlah eosinofil dan monosit selama transportasi. Perubahan rasio N/L tidak hanya terjadi pada hewan yang mengalami stres transportasi, tetapi juga pada hewan yang dikandangkan di tempat penangkaran. Penelitian yang dilakukan oleh Maheshwari (2008) terhadap Owa Jawa di tempat penangkaran menunjukkan adanya gambaran rasio N/L yang relatif tinggi. Hal ini diduga bahwa Owa Jawa tersebut berada dalam keadaan tercekam, kemungkinan karena perlakuan pada saat penangkapan atau pembiusan.
METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian ini dimulai pada bulan Mei sampai Agustus 2011 di Laboratorium Fisiologi, Bagian Fisiologi dan Farmakologi Departemen Anatomi, Fisiologi, dan Farmakologi dan di Unit Reproduksi dan Rehabilitasi (URR) Departemen Klinik, Reproduksi, dan Patologi Fakultas Kedokteran HewanInstitut Pertanian Bogor.
Materi Penelitian Hewan Coba Hewan percobaan yang digunakan dalam penelitian ini adalah empat ekor kerbau lumpur (Bubalus bubalis) betina berumur 2 sampai 2,5 tahun. Alat dan Bahan Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah syringe/spuit steril, jarum ukuran 18G, tabung darah, gelas objek, gelas penutup, kamar hitung (hemocytometer), pipet leukosit, label, mikroskop, dan counter. Bahan yang digunakan adalah darah, antikoagulan Ethylene Diamine Tetraacetic Acid (EDTA), tissue, alkohol 70%, kapas, methanol, minyak emersi, pewarna Giemsa 10%, dan larutan Turk. Metode Penelitian Tahap Persiapan Kerbau lumpur diadaptasikan selama dua minggu sebelum dilakukan pengambilan sampel darah. Masing-masing kerbau dipelihara di dalam kandang berukuran 2x2,5 meter, diberi pakan rumput dan air minum ad libitum. Kerbau juga diberi obat cacing albendazol dan diberi vitamin B-kompleks untuk menjaga kondisi kerbau agar tetap optimal. Pengambilan Darah Kerbau Pengambilan darah kerbau dilakukan setiap dua hari sekali pada pagi hari pukul 07.00 WIB di URR. Darah diambil menggunakan spuit steril dan jarum
ukuran 18G melalui vena jugularis yang terletak di lateral leher (Sulong et al. 1980) yang telah dibersihkan dengan kapas yang diberi alkohol 70%. Jumlah darah yang diambil sebanyak 2 ml dan dimasukkan ke tabung yang telah diberi EDTA, lalu dihomogenkan. Tabung darah disimpan di dalam
cool box dan
dibawa ke laboratorium untuk dihitung jumlah leukosit. Penghitungan Jumlah Leukosit Darah pada tabung yang telah dicampur dengan EDTA dihisap dengan pipet hingga tanda 0,5 dan ujung pipet dibersihkan dengan tissue. Kemudian hisap larutan Turk dengan pipet yang sama hingga mencapai batas angka 11. Pipet kemudian dikocok kurang lebih selama tiga menit hingga homogen. Selanjutnya, buang dua atau tiga tetes larutan sebelum dimasukkan ke kamar hitung. Larutan yang telah dimasukkan ke kamar hitung ditunggu selama satu menit, setelah itu leukosit dihitung menggunakan perbesaran 10 kali atau 40 kali pada lensa objektif. Leukosit yang dihitung adalah leukosit yang terdapat pada empat sudut kamar hitung bertuliskan huruf W yang masing masing memiliki 16 kotak kecil yang dapat dilihat pada Gambar 6. Rumus perhitungan jumlah leukosit adalah:
Gambar 6 Kamar hitung (hemocytometer) (McCurnin & Bassert 2006).
Pembuatan Preparat Ulas Darah dan Diferensial Leukosit Pembuatan preparat ulas langsung dilakukan di tempat pengambilan darah yaitu di URR. Pertama-tama, dipersiapkan dua gelas objek. Darah segar yang terdapat pada spuit diteteskan di bagian ujung gelas objek pertama dengan posisi permukaan datar. Lalu, ujung gelas objek kedua disentuhkan pada bagian gelas objek pertama yang ditetesi darah tersebut. Darah akan menyebar ke sisi bagian ujung gelas objek kedua, kemudian posisikan gelas objek kedua agar membentuk sudut 30-45o terhadap gelas objek pertama. Gelas objek kedua didorong di atas permukaan gelas objek pertama agar darah dapat menyebar ke permukaan secara rata dan membentuk lapisan tipis (Samuelson 2007). Ulas darah tidak boleh terlalu tebal karena sel darah akan terlihat sangat padat, sehingga sulit dalam menghitung dan membedakan leukosit. preparat dibiarkan mengering di udara terbuka. Preparat yang telah kering segera difiksasi menggunakan metil alkohol (methanol) selama 3-5 menit, setelah itu diambil dan dikeringkan kembali di udara. Setelah kering, preparat diwarnai dengan Giemsa 10% selama 30 menit. Preparat yang telah diwarnai segera dicuci dengan air dan dibiarkan mengering. Penghitungan persentase jenis leukosit dilakukan dengan perbesaran lensa objektif 100 kali, dengan beberapa lapangan pandang hingga jumlah total leukosit yang ditemukan mencapai 100 leukosit. Penggunaan lensa objektif dengan perbesaran 100 kali harus menggunakan minyak emersi dan dibersihkan dengan xylol. Penghitungan jumlah absolut dari masing-masing jenis leukosit dihitung dengan rumus:
Analisis Data Jumlah total leukosit dan jenis-jenis leukosit akan dihitung rataan dan simpangan baku, selanjutnya dianalisis secara deskriptif.
HASIL DAN PEMBAHASAN Berdasarkan penelitian yang dilakukan pada kerbau lumpur betina, diperoleh jumlah rataan dan simpangan baku dari total leukosit, masing-masing jenis leukosit, serta rasio neutrofil/limfosit (N/L).
LEUKOSIT Berdasarkan perhitungan leukosit pada ulas darah, diperoleh jumlah ratarata dan simpangan baku dari total leukosit, jenis-jenis leukosit, dan rasio N/L seperti yang ditampilkan pada Tabel 2. Tabel 2 Rataan jumlah leukosit, jenis-jenis leukosit, dan rasio N/L kerbau lumpur betina selama sepuluh minggu Minggu Leukosit ke (sel/mm3) 1 11103,33±2470,57
Neutrofil (sel/mm3) 7248,63±2084,64
Eosinofil (sel/mm3) 123,37±107,52
Monosit (sel/mm3) 216,93±148,09
Limfosit (sel/mm3) 3489,40±1793,25
Rasio N/L 2,59±1,29
10684,38±2133,29
6284,13±1500,70
139,72±124,44
186,41±170,96
4074,13±1812,44
1,95±1,38
3
11003,13±1974,04
6761,94±1841,86
177,31±227,25
164,84±155,07
3899,03±1370,84
2,12±1,41
4
11159,38±2725,75
5923,34±2581,60
184,84±117,71
230,31±197,14
4828,53±2070,10
1,58±1,11
5
9871,88±1983,43
5168,41±1884,26
240,69±144,99
266,75±181,75
4196,03±2392,96
1,74±1,20
6
10596,67±1735,91
4841,63±2355,19
288,70±209,75
238,20±164,87
5228,13±1875,26
1,14±0,79
7
11212,50±3235,56
6197,53±2681,26
99,94±134,98
276,25±195,66
4682,97±2305,02
1,65±0,98
8
11437,50±3184,70
6753,33±2410,30
124,71±113,83
280,17±122,86
4279,29±1665,73
1,81±0,85
9
11608,33±3531,21
6509,79±2169,73
188,38±160,13
202,83±215,16
4707,33±2131,65
1,57±0,66
10
9879,17±2020,07
5202,50±1625,29
139,67±93,88
267,13±166,89
4269,88±1397,74
1,35±0,66
Rataan
10845,89±2518,20
6084,29±2214,96
170,88±156,77
231,65±172,89
4361,17±1926,58
1,76±1,13
Jumlah sel (sel/mm3)
2
12000 11500 11000 10500 10000 9500 9000
1
2
3
4
5
6
7
8
Minggu ke-
Gambar 7 Jumlah leukosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu
9
10
Tabel 2 menunjukkan jumlah total leukosit yang paling rendah selama pengamatan
pada minggu ke-5 yaitu 9871,88 sel/mm3 dan jumlah leukosit
tertinggi diperoleh pada minggu ke-9 yaitu 11608,33 sel/mm3. Secara keseluruhan, rataan jumlah leukosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu adalah 10845,89±2518,20 sel/mm3. Jumlah leukosit pada penelitian kali ini dapat dibandingkan dengan penelitian yang dilakukan oleh Sulong et al. (1980) terhadap kerbau lumpur di Malaysia yaitu sebesar 10700±3100 sel/mm 3. Penelitian lain menunjukkan jumlah leukosit kerbau sungai yaitu 9100±400 sel/mm 3 (Mahmmod et al. 2011). Jumlah leukosit kerbau lumpur pada penelitian yang dilakukan oleh Sulong et al. (1980) lebih tinggi dibandingkan dengan jumlah leukosit sapi (8000 sel/mm3) dan kerbau sungai (9110 sel/mm3). Berdasarkan Gambar 7 terlihat sedikit penurunan pada minggu ke-2, kemudian meningkat kembali hingga minggu ke-4. Pada minggu ke-5 terjadi penurunan yang cukup drastis. Penurunan jumlah total leukosit dipengaruhi oleh penurunan dari salah satu atau beberapa jenis leukosit. Adanya penurunan neutrofil pada minggu ke-2 dan ke-5 serta penurunan limfosit pada minggu ke-5 menyebabkan jumlah total leukosit juga menurun. Frandson (1992) menyatakan bahwa neutrofil merupakan komponen paling banyak dari total leukosit. Hal ini dapat dilihat pada rataan neutrofil (6084,29±2214,96 sel/mm3) yang lebih tinggi dari pada rataan limfosit (4361,17±1926,58 sel/mm3). Fluktuasi jumlah leukosit dapat terjadi pada kondisi tertentu, misalnya stres, gizi, umur, penyakit dan lain-lain. Jumlah leukosit yang menyimpang dari keadaan normal mempunyai arti klinik yang penting untuk evaluasi suatu proses penyakit (Dellmann & Brown 1992). Kenaikan jumlah leukosit dapat terjadi bila terdapat benda asing yang masuk.
Beberapa jenis leukosit akan meningkat
jumlahnya untuk melawan antigen yang masuk. Neutrofil dan monosit dapat melawan benda asing yang masuk dengan cara memfagositosis. Pada kondisi terjadi infeksi, limfosit akan melakukan perannya dalam respon imun dengan cara akan membentuk antibodi. Eosinofil dan basofil juga akan meningkat dalam respon pertahanan tubuh yang lain.
NEUTROFIL Neutrofil merupakan jenis leukosit yang jumlahnya cukup dominan. Neutrofil juga merupakan garis pertahanan utama terhadap adanya benda asing yang masuk ke jaringan tubuh (Samuelson 2007). Neutrofil yang ditemukan pada penelitian dapat dilihat pada Gambar 8. Tabel 2 menunjukkan rataan neutrofil kerbau lumpur selama sepuluh minggu. Rataan neutrofil paling rendah diperoleh pada minggu ke-6 yaitu 4841,63 sel/mm3, sedangkan rataan paling tinggi diperoleh pada minggu ke-1 yaitu 7248,63 sel/mm3. Secara keseluruhan, rataan jumlah neutrofil selama sepuluh minggu adalah 6084,29±2214,96 sel/mm3.
Gambar 8 Neutrofil
Persentase jumlah neutrofil pada kerbau lumpur ini berkisar antara 45 sampai 65%. Penelitian oleh Sulong et al. (1980) terhadap kerbau lumpur di Malaysia menunjukkan persentase jumlah neutrofil sebanyak 35,2%. Persentase jumlah neutrofil kerbau lumpur lebih besar jika dibandingkan dengan jumlah neutrofil sapi dan kerbau sungai. Sapi memiliki jumlah neutrofil sebanyak 33,7% dan kerbau sungai sebanyak 28,5%.
Jumlah sel (sel/mm3)
8000 6000 4000 2000 0 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Minggu ke-
Gambar 9 Jumlah neutrofil kerbau lumpur selama sepuluh minggu
Berdasarkan Gambar 9 diatas, terlihat fluktuasi dari jumlah neutrofil. Peningkatan jumlah neutrofil terjadi di beberapa titik yaitu minggu ke-1, minggu ke-3 dan minggu ke-7 hingga ke-8. Jumlah neutrofil yang tinggi atau peningkatan jumlah neutrofil pada minggu-minggu tersebut dapat disebabkan oleh adanya infeksi, peradangan atau stres. Peradangan atau infeksi akan menstimulasi pengeluaran neutrofil untuk menghancurkan benda asing yang masuk ke dalam tubuh. Neutrofil tersebut akan menerima sinyal yang dihasilkan oleh sel yang bersangkutan atau racun dari bakteri (Frandson 1992). Pada kondisi stres, adanya kortisol juga dapat mempengaruhi keluarnya neutrofil dari sumsum tulang . Hal ini menyebabkan peningkatan jumlah neutrofil (Samuelson 2007). Penurunan jumlah neutrofil terjadi di beberapa minggu yaitu minggu ke-2, minggu ke-4 hingga ke-6, dan minggu ke-9 hingga ke-10. Penurunan ini dapat terjadi jika hewan tidak lagi mengalami infeksi, peradangan atau stres. Namun pada infeksi parasit darah (theileriosis) dapat terjadi penurunan jumlah neutrofil karena akan terjadi destruksi organ-organ limfoid penghasil leukosit (Mahmmod et al.2011).
EOSINOFIL Eosinofil merupakan jenis leukosit yang jumlahnya relatif sedikit. Eosinofil berperan aktif dalam mengatur alergi akut dan proses peradangan, mengatur infestasi parasit, dan memfagosit bakteri, kompleks antigen-antibodi, mikoplasma dan ragi (Dellmann & Brown 1992). Eosinofil yang ditemukan pada penelitian ini dapat dilihat pada Gambar 10.
Gambar 10 Eosinofil
Pada penelitian kali ini diperoleh jumlah eosinofil yang disajikan pada Tabel 2, rataan eosinofil paling tinggi dan paling rendah diperoleh pada minggu ke-6 dan ke-7 yaitu 288,70 sel/mm3 dan 99,94 sel/mm3. Secara keseluruhan, rataan eosinofil selama sepuluh minggu adalah 170,88±156,77 sel/mm3. Jika dipersentasekan, jumlah eosinofil kerbau lumpur ini berkisar antara 1 sampai 3%. Penelitian lain mendapatkan jumlah eosinofil sekitar 6,6%. Pada sapi dan kerbau
Jumlah sel (sel/mm3)
sungai, persentase eosinofil sekitar 9,0% dan 4,6% (Sulong et al. 1980).
300 250 200 150 100 50 0 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Minggu ke-
Gambar 11 Jumlah eosinofil kerbau lumpur selama sepuluh minggu
Gambar 11 menunjukkan jumlah eosinofil yang cenderung semakin meningkat dari minggu ke-1 hingga minggu ke-6. Pada minggu ke-7 terjadi penurunan yang cukup signifikan, namun kembali naik pada minggu ke-8 dan ke9. Pada minggu ke-10 terjadi sedikit penurunan. Peningkatan eosinofil diduga karena hewan mengalami alergi akut atau terdapat infestasi parasit. Penurunan
eosinofil terjadi karena tubuh telah dapat mengatasi adanya parasit tersebut atau karena adanya intervensi dari luar yang dapat mengurangi infestasi parasit.
BASOFIL Basofil merupakan jenis leukosit yang memiliki jumlah paling sedikit. Basofil memiliki fungsi utama dalam membangkitkan reaksi hipersensitif dengan sekresi mediator yang bersifat vasoaktif. Sel ini melepaskan mediator untuk aktivitas peradangan dan alergi. Pada sapi dan kerbau jumlah basofil yaitu 0,5% dan 0,97%, sedangkan jumlah basofil pada kerbau lumpur sekitar 0,3% (Sulong et al.1980). Penelitian lain menunjukkan jumlah basofil kerbau sungai sekitar 0,02% (Mahmmod et al. 2011). Pengamatan terhadap darah kerbau lumpur yang dilakukan selama sepuluh minggu ini tidak menemukan adanya basofil. Tidak adanya basofil bukan berarti hewan tidak mengalami alergi atau peradangan, namun perlu dilihat perubahan dari jenis leukosit lainnya untuk memastikan ada tidaknya peradangan tersebut. Karena terlibat dalam proses peradangan, maka terjadi suatu keseimbangan yang peka antara basofil dan eosinofil dalam mengawali dan mengontrol peradangan tersebut (Frandson 1992). Selain itu fagosit oleh basofil bersifat terbatas, sehingga basofil lebih jarang ditemukan (Samuelson 2007).
MONOSIT Monosit merupakan jenis leukosit yang bekerja pada infeksi yang tidak terlalu akut (Dellmann & Brown 1992). Keberadaan leukosit dalam darah hanya beberapa hari (Samuelson 2007). Monosit yang ditemukan pada penelitian ini dapat dilihat pada Gambar 12.
Gambar 12 Monosit
Rataan dan simpangan baku monosit pada kerbau lumpur yang diamati selama sepuluh minggu disajikan pada Tabel 2. Jumlah monosit paling tinggi diperoleh pada minggu ke-8 yaitu 280,17 sel/mm3, sedangkan jumlah neutrofil terendah diperoleh pada minggu ke-3 yaitu 164,84 sel/mm3. Secara keseluruhan, rataan jumlah monosit selama sepuluh minggu adalah 231,65±172,89 sel/mm3. Jika dipersentasekan, maka jumlah monosit sekitar 1 sampai 3%. Pada penelitian sebelumnya, jumlah monosit sekitar 3,7%. Pada sapi dan kerbau sungai,
Jumlah sel (sel/mm3)
persentase jumlah monosit sekitar 4,0% dan 4,2% (Sulong et al.1980).
300 250 200 150 100 50 0 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Minggu ke-
Gambar 13 Jumlah monosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu
Gambar 13 menunjukkan fluktuasi dari monosit selama sepuluh minggu pengamatan. Mulai dari minggu ke-1 terjadi penurunan hingga minggu ke-3, namun kembali meningkat pada minggu ke-4 hingga ke-5. Penurunan terjadi lagi pada minggu ke-6 dan ke-9, kemudian kembali meningkat. Penurunan dan
peningkatan jumlah monosit tidak terjadi secara signifikan, sehingga tidak begitu menggambarkan adanya kelainan. Monosit adalah sel darah yang belum matang sehingga dalam sirkulasi perannya dalam proses fagositosis tidak sebesar ketika monosit menjadi makrofag di jaringan. Monosit muncul jika terdapat antigen yang tidak mampu difagosit oleh neutrofil dengan cara berubah menjadi makrofag yang ukurannya lebih besar (Frandson 1992).
LIMFOSIT Limfosit dikatakan sebagai leukosit yang dominan pada ruminansia. Limfosit juga merupakan leukosit yang berespon terhadap antigen dengan cara membentuk antibodi yang bersirkulasi di dalam darah atau dalam pengembangan imunitas seluler (Frandson 1992). Limfosit yang ditemukan pada penelitian ini dapat dilihat pada Gambar 14. Jumlah rataan dan simpangan baku limfosit kerbau lumpur disajikan pada Tabel 2.
Gambar 14 Limfosit
Berdasarkan Tabel 2, terlihat jumlah limfosit tertinggi pada minggu ke-6 yaitu 5228,13 sel/mm3, sedangkan jumlah limfosit terendah diperoleh pada minggu ke-1 yaitu 3489,40 sel/mm3. Secara keseluruhan, rataan jumlah limfosit selama sepuluh minggu adalah 4361,17±1926,58 sel/mm3. Jika dipersentasekan, maka jumlah limfosit sekitar 30 sampai 50%. Pada penelitian sebelumnya, jumlah limfosit kerbau lumpur sekitar 54,2%. Pada sapi dan kerbau sungai, persentase jumlah limfosit sekitar 58% dan 56,7% (Sulong et al.1980).
Jumlah sel (sel/mm3)
6000 5000
4000 3000 2000 1000 0 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Minggu ke-
Gambar 15 Jumlah limfosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu
Berdasarkan Gambar 15, terlihat adanya fluktuasi jumlah limfosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu. Penurunan dan peningkatan terlihat tidak terlalu signifikan, hanya terjadi sedikit perubahan dari jumlah limfosit. Peningkatan limfosit terjadi jika antigen masuk ke dalam tubuh, sehingga tubuh harus memproduksi antibodi (Frandson 1992). Penurunan limfosit dapat dialami jika terjadi imunosupresi atau kerusakan pada jaringan limfoid akibat faktor tertentu atau hewan dalam keadaan tercekam (stres). Pada penelitian kali ini kerbau lumpur diduga mengalami stres yang berakibat turunnya jumlah limfosit. Pada kondisi stres, kadar kortisol dalam darah meningkat. Kortisol dapat menyebabkan limfopenia dengan cara mengurangi mitosis atau pembentukan limfosit. Kortisol juga berpengaruh terhadap berkurangnya limfosit dalam sirkulasi karena terjadi redistribusi limfosit ke sumsum tulang dan bagian lain. Pembentukan DNA juga terhambat (Chastain & Ganjam 1986).
NEUTROFIL/LIMFOSIT (N/L) Rasio jumlah neutrofil dan limfosit dapat menjadi indikasi adanya stres pada hewan (Kannan et al. 2000). Rasio neutrofil/limfosit pada kerbau lumpur selama sepuluh minggu disajikan pada Tabel 2 dan Gambar 16. Nilai rasio neutrofil/limfosit pada kerbau lumpur paling tinggi pada minggu ke-1 dan paling rendah pada minggu ke-6. Kannan et al. (2000) menjelaskan bahwa indeks stres pada kambing normalnya bernilai 1,5. Jika melebihi nilai 1,5 maka hewan tersebut diduga mengalami stres atau cekaman. Pada sapi dan ruminansia lain, secara normal rasio neutrofil/limfosit sebesar 0,5 (Aiello 2000). Indeks stres tersebut
dapat diperoleh melalui rasio neutrofil/limfosit. Kondisi stres akan menyebabkan peningkatan neutrofil dan penurunan limfosit. Hal ini terbukti dengan tingginya jumlah neutrofil disertai penurunan limfosit pada awal minggu ke-1 dan pada minggu-minggu selanjutnya. Kadar kortisol yang meningkat pada kondisi stres akan menyebabkan neutrofilia karena terjadinya stimulasi pembentukan neutrofil dan pelepasan neutrofil dari sumsum tulang. Kortisol dapat menyebabkan limfopenia, eosinopenia, dan basopenia melalui pelepasan dari sel-sel limpa dan paru-paru dan penurunan mitosis limfosit dari sumsum tulang (Chastain &
Jumlah sel (sel/mm3)
Ganjam 1986).
3 2,5 2 1,5 1 0,5 0 1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
Minggu ke-
Gambar 16 Nilai rasio neutrofil/limfosit (N/L) kerbau lumpur selama sepuluh minggu Kerbau pada penelitian ini diduga mengalami stres yang akut karena memiliki jumlah neutrofil yang tinggi (neutrofilia) dan limfosit yang rendah (limfopenia) pada waktu yang bersamaan. Penyebab stres pada hewan dapat disebabkan oleh berbagai faktor. Faktor lingkungan dan adanya parasit dapat menyebabkan hewan hewan merasa tercekam. Kerbau merupakan hewan yang menyukai air. Kondisi lingkungan yang panas dapat menyebabkan hewan ini stres dan jika tidak berendam di lumpur atau air maka akan semakin gelisah. Adanya ektoparasit seperti caplak juga membuat hewan tidak nyaman, sehingga dapat menimbulkan stres.
SIMPULAN DAN SARAN Simpulan Kesimpulan yang didapat dari penelitian ini adalah rataan jumlah leukosit kerbau lumpur selama sepuluh minggu sebanyak 10845,89±2518,20 sel/mm3. Jumlah rataan dari setiap jenis leukosit yaitu neutrofil berjumlah 6084,29±2214,96 sel/mm3, eosinofil berjumlah 170,88±156,77 sel/mm3, monosit berjumlah 231,65±172,89 sel/mm3, dan limfosit berjumlah 4361,17±1926,58 sel/mm3. Kerbau mengalami stres akut dengan indeks stres 1,76±1,13.
Saran Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut terhadap kerbau lumpur untuk mengetahui rentang nilai normal leukosit pada kerbau lumpur di Indonesia.
DAFTAR PUSTAKA Aiello s. 2000. The Merck Veterinary Manual. USA: Merck & Co., Inc. Akers RM, Denbow DM. 2008. Anatomy & Physiology of Domestic Animals. USA: Blackwell Publishing. Aspinall V, O’Reilly. 2004. Introduction to Veterinary Anatomy and Physiology. China: Butterworth Heinemann an Imprint of Elsevier. Ambore B, Ravikanth K, Maini S, Rekhe DS. 2009. Haematological profile and growth performance of goats under transportation stress. Veterinary World 2(5): 195-198. Bahri S, Thalib C. 2008. Strategi pengembangan perbibitan ternak kerbau. Di dalam: Prosiding Seminar dan Lokakarya Nasional Usaha Ternak Kerbau; Jambi, 22-23 Juni 2007. Bogor: Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan. 2008. hlm 1-11. Bamualim AM, Muhammad Z. 2008. Situasi dan keberadaan ternak kerbau di Indonesia. Di dalam: Prosiding Seminar dan Lokakarya Nasional Usaha Ternak Kerbau; Jambi, 22-23 Juni 2007. Bogor: Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan. 2008. hlm 32-39. Bhattacharya R. 1993. Kerbau. Di dalam: G. Williamson dan W. J. A. Payne. Pengantar Peternakan di Daerah Tropis. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Cunningham JG, Klein BG. 2007. Textbook of Veterinary Physiology. China: Saunders an Imprint of Elsevier Inc. Chastain CB, Ganjam VK. 1986. Clinical Endocrinology of Companion Animals. Philadelphia: Lea & Febiger. Dellmann HD, Brown EM. 1992. Buku Teks Histologi Veteriner I. Jakarta: UI Press. Dellmann HD, Eurell J. 1998. Text Book of Veterinary Histology. USA: Lippincott Williams & Wilkins. [Ditjennak] Direktorat Jendral Peternakan. 2010. Statistik Peternakan 2010. http://ditjennak.deptan.go.id/index.php?page= [terhubung berkala] statistikpeternakan&action=info [3 Feb 2012]. Efendi Z. 2003. Peranan Leukosit sebagai Anti Inflamasi alergik dalam Tubuh. Sumatera Utara : Fakultas Kedokteran Universitas Sumatera Utara. [terhubung berkala] http://library.usu.ac.id/download/fk/histologi-zukesti2. pdf&sa=U&ei=H7IZUJSRDIqUiQKSvoCOCg&ved=0CBoQFjAA&usg= AFQjCNHI8pD-y6aYLuLqCTqkErjSnbXddw [2 Jan 2012] Frandson RD. 1992. Anatomi dan Fisiologi Ternak. Gajah Mada University Press: Yogyakarta.
Handayani W. 2008. Asuhan Keperawatan pada Klien dengan Gangguan Sistem Hematologi. Jakarta: Salemba Medika. Hoffbrand V. 2006. At a Glance Hematology. Jakarta: EMS. Kannan et al. 2000. Transportation of goats: effects on physiological stress responses and live weight loss. Journal of animal science 78:1450-1457. Maheshwari H. 2008. Rasio Netrofil/Limfosit (N/L) sebagai indikator stres pada Owa Jawa (Hylobates moloch audebert 1797) di tempat penangkaran. The Indonesian Journal of Physiology 7(2): 74-154. Mahmmod YS, Elbalkemy FA, Klaas IC, Elmekkawy MF, Monazie AM. 2011. Clinical and haematological study on water buffaloes (Bubalus bubalis) and crossbread cattle naturally infected with Theileria annulata in Sharkia province, Egypt. Tick and Tick-borne Diseases 54: 1-4. McCurnin DM, Bassert JM. 2006. Clinical Textbook for Veterinary Technicians. USA: Elsevier Inc. [NSC] National Safety Council. 2004. Manajemen Stres. Widyastuti P, penerjemah; Yulianti D, editor. Boston: Jones and Bartlett Publisher, Inc. Terjemahan dari: Stress Management. Robbani AR. 2009. Karakteristik fenotipik kerbau lumpur (Swamp Buffalo) di Kabupaten Bogor [skripsi]. Bogor: Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor. Roth J. 2004. Bubalus bubalis. [Terhubung berkala]. http:// http://animaldiversity. ummz.umich.edu/site/accounts/information/Bubalus_bubalis.html [16 Juli 2012]. Samuelson DA. 2007. Textbook of Veterinary Histology. China: Saunders, an imprint of Elsevier Inc. Satyaningtijas AS, Andriyanto, Ramadhoni A, Suci Y, Dewi F, Sutisna A. 2010. Efektifitas multivitamin dan meniran (Phyllantus neruri L.) dalam menurunkan stress pada domba selama transportasi. Berita Biologi 10(3): 393-399. Sulong A, Hilmi M, Jainudeen MR. 1980. Haemotology of the Malaysian swamp buffalo (Bubalus bubalis). Pertanika 3(2): 66-70. Suryana. 2007. Usaha pengembangan kerbau lumpur di Kalimantan Selatan. Jurnal Litbang Pertanian 26(4): 139-145.
