UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

ANALISIS KANDUNGAN GELATIN BABI DAN GELATIN SAPI PADA CANGKANG KAPSUL KERAS YANG MENGANDUNG VITAMIN A MENGGUNAKAN REAL-TIME POLYMERASE CHAIN REACTION

SKRIPSI

FATHIYAH NIM: 1111102000022

PROGRAM STUDI FARMASI FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA JULI 2015

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

ANALISIS KANDUNGAN GELATIN BABI DAN GELATIN SAPI PADA CANGKANG KAPSUL KERAS YANG MENGANDUNG VITAMIN A MENGGUNAKAN REAL-TIME POLYMERASE CHAIN REACTION

Skripsi Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi

FATHIYAH NIM: 1111102000022

PROGRAM STUDI FARMASI FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA JULI 2015

ABSTRAK

Nama

: Fathiyah

Program Studi : Farmasi Judul

: Analisis Kandungan Gelatin Babi dan Gelatin Sapi pada Cangkang Kapsul Keras yang Mengandung Vitamin A Menggunakan Real-Time Polymerase Chain Reaction

Vitamin A termasuk salah satu vitamin yang banyak dikonsumsi oleh masyarakat Indonesia. Salah satu bentuk sediaan vitamin A yang beredar di Indonesia adalah kapsul keras. Bahan utama untuk membuat cangkang kapsul keras adalah gelatin. Sumber gelatin yang digunakan adalah gelatin sapi dan gelatin babi. Penggunaan gelatin babi menimbulkan kekhawatiran konsumen tentang kehalalan. Penelitian ini bertujuan untuk menganalisis ada atau tidaknya kandungan gelatin babi dan gelatin sapi pada 5 sampel produk cangkang kapsul keras menggunakan RealTime Polymerase Chain Reaction (RT-PCR). DNA gelatin pada cangkang kapsul keras diisolasi menggunakan kit komersial. Isolat DNA yang didapat diamplifikasi menggunakan RT-PCR sebanyak 65 siklus. Hasil kurva amplifikasi menggunakan primer sapi menunjukkan bahwa semua kontrol positif DNA sapi dan sampel E dapat teramplifikasi. Sedangkan hasil kurva amplifikasi menggunakan primer babi menunjukkan bahwa kontrol sampel positif DNA babi, serta sampel A, sampel C, dan sampel E mengalami amplifikasi. Dengan demikian, dari 5 sampel yang diuji, terdapat 2 sampel cangkang kapsul keras yang berasal dari gelatin babi, 1 sampel yang berasal dari gelatin sapi dan gelatin babi, dan 2 sampel yang belum teridentifikasi.

Kata Kunci : gelatin, cangkang kapsul keras, kit komersial, Real-Time Polymerase Chain Reaction (RT-PCR)

v UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

ABSTRACT

Name

: Fathiyah

Major

: Pharmacy

Title

: Analysis of Porcine and Bovine Gelatin in Hard Shell Capsule Containing Vitamin A Using Real-Time Polymerase Chain Reaction

Vitamin A is a vitamin which is widely consumed by Indonesian people. One of vitamin A dosage form in Indonesia is hard capsules. The material component of hard shell capsule is gelatin. The sources of gelatin that used were bovine and porcine gelatins. The used of porcine gelatin raised consumer’s attention about the halal. The aims of this study were to analyze the presence of bovine and porcine gelatin in 5 samples of hard shell capsule by using Real-Time Polymerase Chain Reaction (RT-PCR). DNA of gelatin in hard shell capsules were isolated by using commercial kit. The isolated DNA were amplified by using RT-PCR in 65 cycles. The beef primer amplification curve showed that all of positive control beef DNA and sample E can be amplified. While the pork primer amplification curve showed that all of positive control pork DNA, sample A, sample C, and sample E can be amplified. It can be concluded from 5 samples of hard shell capsule that there were 2 samples which derived from porcine gelatin, 1 sample derived from bovine and porcine gelatin, and 2 samples were not identified yet.

Keyword : gelatin, hard shell capsule, commercial kit, Real-Time Polymerase Chain Reaction (RT-PCR)

vi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

KATA PENGANTAR

Segala puji dan syukur bagi kehadirat Allah SWT yang senantiasa mencurahkan segala rahmat-Nya kepada kita semua, khususnya penulis, dalam menyelesaikan skripsi yang berjudul “Analisis Kandungan Gelatin Babi dan Gelatin Sapi pada Cangkang Kapsul Keras yang Mengandung Vitamin A Menggunakan Real-Time Polymerase Chain Reaction”. Shalawat dan salam senantiasa terlimpah kepada junjungan Nabi Muhammad saw., teladan bagi umat manusia dalam menjalani kehidupan. Skripsi ini disusun untuk memenuhi salah satu syarat menempuh ujian akhir guna mendapatkan gelar Sarjana Farmasi (S. Far) pada Program Studi Farmasi, Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan, Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta. Selesainya penelitian dan penyususnan skripsi ini tidak lepas dari bantuan berbagai pihak. Oleh sebab itu, dalam kesempatan ini perkenankanlah penulis menyampaikan ucapan terimakasih yang tulus dan sebesar-besarnya kepada: 1. Bapak Dr. Arief Sumantri, SKM, M.Kes., selaku Dekan Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta. 2. Bapak Yardi, M. Si., Ph.D. Apt., selaku Ketua Prodi Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta dan Pembimbing Akademik Farmasi 2011 A. 3. Ibu Zilhadia, M.Si. Apt., selaku Pembimbing I dan Ibu Ofa Suzanti Betha, M. Si., Apt. selaku Pembimbing II yang sangat baik telah memberikan ilmu, nasehat,

waktu,

tenaga,

pikiran,

dukungan,

serta

kesabaran

dalam

membimbing selama proses penelitian sampai penulisan skripsi, sehingga penulis dapat menjadi lebih baik. 4. Kedua orang tua, ayahanda tercinta Ahmad Farid Yahya dan ibunda tercinta Intan Assegaf, yang selalu ikhlas memberikan dukungan moral, material, nasehat, serta doa yang tiada pernah putus di setiap waktu dan selalu

vii UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

mendengarkan segala keluh kesah penulis hingga penulis dapat menyelesaikan studi di Farmasi FKIK UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. 5. Kakak-kakak tersayang Mohamad Wildan Yahya, Zakiyah Yahya, dan Zainal Abidin Yahya, yang selalu memberikan dukungan, nasehat, dan semangat kepada penulis hingga penulis dapat menyelesaikan studi di Farmasi FKIK UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. Juga kepada 2 keponakan tersayang, Nur Karimah Shahab dan Ahmad Zain Shahab yang selalu memberikan keceriaan bagi penulis. 6. Ahmad Arif Yahya yang selalu memberikan doa, dukungan, semangat, motivasi, dan waktu untuk mendengarkan keluh kesah penulis. Serta memberikan keceriaan bagi penulis disetiap waktu. 7. Bapak dan Ibu staf pengajar, serta karyawan yang telah memberikan ilmu pengetahuan, bimbingan, dan bantuan selama penulis menempuh pendidikan di Farmasi FKIK UIN Jakarta. 8. Teman-teman Farmasi 2011 “Effervesent” yang telah menemani dan memberikan kenangan tak terlupakan selama penulis menempuh pendidikan di Farmasi FKIK UIN Jakarta, khususnya Farmasi 2011 AC yang telah bersama-sama menjalani proses kuliah dalam 1 kelas selama 3.5 tahun. 9. Kak Rahmadi, Kak Liken, Kak Eris, Kak Lisna, Kak Tiwi, Mbak Rani, Kak Walid, dan Kak Yaenap yang telah banyak membantu penulis melakukan penelitian di laboratorium. 10. Teman-teman seperjuangan PCR, Rian Hidayat, yang telah meluangkan waktunya untuk bekerja sama, berdiskusi, memberikan masukan, pikiran, beribet-ribet ria bersama, dan membantu penulis dalam mengerjakan penelitian sampai penyelesaian skripsi ini. Serta Kak Ifah, Kak Yanti, dan Kak Sulaiman yang selalu memberikan masukan, waktu untuk berdiskusi ditengah kesibukannya, dan semua bantuan berharga bagi penulis selama sebelum memulai skripsi sampai selesainya skipsi ini. 11. Tim Roche Indonesia, Bapak Deka dan Mbak Helen, yang telah memberikan masukan dan bantuan selama penulis melakukan penelitian. Serta Mbak Ayu dari BPPT, yang telah meluangkan waktu untuk membantu penulis dalam melakukan penelitian.

viii UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

12. Sahabat tersayang, Qurry, Santi, dan Dana yang telah memberikan warna bagi penulis selama kuliah di Farmasi FKIK UIN Jakarta. Terimakasih atas dukungan, semangat, doa, perhatian, dan persahabatan yang kalian berikan. Serta Fitri, Herlina, Ghina, Henny, Diyah, Cobi, Nana, Athiyyah, dan Rhesa yang telah membantu dan menemani saat penelitian. Semua kenangan bersama kalian tak akan terlupakan. 13. Dan kepada semua pihak yang telah membantu penulis selama ini yang tidak dapat disebutkan namanya satu persatu. Semoga semua bantuan yang telah diberikan mendapatkan balasan dari Allah SWT. Penulis menyadari bahwa penulisan skripsi ini masih jauh dari sempurna. Oleh karena itu, saran dan kritik yang bersifat membangun akan penulis nantikan. Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi pengembangan ilmu pengetahuan selanjutnya.

Jakarta, 8 Juli 2015

Penulis

ix UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

x UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL

i

HALAMAN PERNYATAAN ORISINALITAS

ii

LEMBAR PERSETUJUAN PEMBIMBING

iii

HALAMAN PENGESAHAN SKRIPSI

iv

ABSTRAK

v

ABSTRACT

vi

KATA PENGANTAR

vii

HALAMAN PERNYATAAN PERSETUJUAN PUBLIKASI

x

DAFTAR ISI

xi

DAFTAR TABEL

xiii

DAFTAR GAMBAR

xiv

DAFTAR LAMPIRAN

xv

DAFTAR SINGKATAN

xvi

DAFTAR ISTILAH

xvii

BAB I.

PENDAHULUAN

1

1.1. Latar Belakang 1.2. Rumusan Masalah 1.3. Hipotesis 1.4. Tujuan Penelitian 1.5. Manfaat Penelitian

1 3 4 4 4

TINJAUAN PUSTAKA

5

2.1. Vitamin A 2.2. Kapsul 2.2.1. Jenis Kapsul 2.2.2. Komponen Pembuatan Kapsul 2.2.3. Cara Penyimpanan Kapsul 2.3. Gelatin 2.3.1. Komposisi dan Struktur Kimia 2.3.2. Tipe Gelatin 2.3.3. Stabilitas 2.3.4. Karakteristik Kimia dan Fisika Gelatin

5 6 7 9 10 10 11 13 14 15

BAB II.

xi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

BAB III.

BAB IV.

BAB V.

2.3.5. Pengaruh Sifat Kimia dan Fisik 2.3.6. Aplikasi Penggunaan Gelatin 2.4. Deoxyribunucleic Acid (DNA) 2.5. Isolasi DNA 2.6. Spektrofotometer UV untuk Pemeriksaan DNA 2.7. Polymerase Chain Reaction (PCR) 2.7.1. Komponen PCR 2.7.2. Tahapan PCR 2.7.3. Real-Time PCR

15 17 18 19 21 21 22 24 27

METODE PENELITIAN

29

3.1. Waktu dan Tempat Penelitian 3.2. Alat dan Bahan 2.1.1. Alat 2.1.2. Bahan 3.3. Tahapan Penelitian 3.4. Prosedur Kerja 3.4.1. Pembuatan Cangkang Kapsul Simulasi Menggunakan Gelatin Babi dan Gelatin Sapi 3.4.2. Pengumpulan Sampel 3.4.3. Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul Keras Sampel 3.4.4. Isolasi DNA Kontrol dan Sampel 3.4.5. Pemeriksaan Kadar dan Kemurnian Isolat DNA Menggunakan Spektrofotometer UV 3.4.6. Pemeriksaan Spesifisitas Primer dan Probe 3.4.7. Amplifikasi DNA Menggunakan Real-Time PCR 3.4.8. Analisis Data

29 29 29 29 30 31 31 31 32 32 34 35 35 36

HASIL DAN PEMBAHASAN

38

4.1. Analisis Lembar Cangkang Kapsul Keras Simulasi 4.2. Proses Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul Keras Sampel 4.3. Proses Isolasi DNA 4.4. Analisis Hasil Isolat DNA 4.5. Amplifikasi Menggunakan Real-Time PCR

38

KESIMPULAN DAN SARAN

49

5.1. Kesimpulan 5.2. Saran

49 49

39 40 42 44

DAFTAR PUSTAKA

50

LAMPIRAN

55

xii UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR TABEL

Tabel 2.1. Rekomendasi Asupan Vitamin A

6

Tabel 2.2. Kandungan Asam Amino Dalam Gelatin

12

Tabel 3.1. Urutan Basa Primer dan TaqMan Probe

30

Tabel 3.2. Formulasi Lembar Cangkang Kapsul Keras

31

Tabel 3.3. Identitas Sampel yang berasal dari Produsen yang Berbeda

32

Tabel 3.4. Pengaturan Program Amplifikasi pada LightCycler® 480 Real-Time PCR

36

Tabel 4.1. Hasil Kemurnian dan Kadar Isolat DNA yang Diperoleh

43

Tabel 6. Spesifikasi High Pure PCR Template Preparation Kit

56

Tabel 7. Campuran Pereaksi PCR Mix untuk Setiap Isolat DNA

59

xiii UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR GAMBAR

Gambar 2.1. Cangkang Kapsul Keras

7

Gambar 2.2. Berbagai Ukuran Kapsul Keras

8

Gambar 2.3. Asam Amino-Asam Amino Penyusun Gelatin

12

Gambar 2.4. Struktur Triple-Helix Gelatin

13

Gambar 2.5. Pengaruh Pemanasan atau Pendinginan Terhadap Struktur Gelatin

16

Gambar 2.6. Struktur dan Komponen Penyusun DNA

18

Gambar 2.7. Spektrofotometri UV untuk Pemeriksaan DNA

21

Gambar 2.8. Tahapan Proses PCR

25

Gambar 2.9. Kerja Fluorescent Dye dan Quencher pada Real-Time PCR

28

Gambar 2.10. Bentuk Kurva Real-Time PCR

28

Gambar 4.1. Lembar Cangkang Kapsul Keras Simulasi (a) Sapi dan (b) Babi

38

Gambar 4.2. Hasil Pengujian Sumber Bahan Baku Cangkang Kapsul

39

Gambar 4.3. Reaksi yang Terjadi pada Proses Identifikasi Gelatin

40

Gambar 4.4. Hasil Amplifikasi Isolat DNA sampel menggunakan Primer Sapi

45

Gambar 4.5. Hasil Amplifikasi Isolat DNA sampel menggunakan Primer Babi

47

xiv UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran 1. Alur Kerja

55

Lampiran 2. Spesifikasi Kit Isolasi DNA

56

Lampiran 3. Uji Spesifikasi Primer Sapi Menggunakan BLAST NCBI

57

Lampiran 4. Uji Spesifikasi Primer Babi Menggunakan BLAST NCBI

58

Lampiran 5. Campuran Reaksi PCR Mix untuk Amplifikasi DNA

59

Lampiran 6. Perhitungan Pembuatan Larutan Primer dan Probe

60

Lampiran 7. Perhitungan Tm (Temperature Melting) Primer

61

Lampiran 8. Gambar Peralatan yang Digunakan dalam Penelitian

62

xv UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR SINGKATAN

BB

: Binding Buffer

BHQ-1

: Black Hole Quencher-1

BLAST

: Basic Local Alignment Search Tool

BLASTn

: Nucleotide Basic Local Alignment Search Tool

Cp

: Crossing Point

dATP

: Deoxyadenosine Triphosphate

dCTP

: Deoxycytidine Triphosphate

dGTP

: Deoxyguanosine Triphosphate

DNA

: Deoxyribonucleic Acid

dNTP

: Deoxynucleotide Triphosphate

dTTP

: Deoxythymidine Triphosphate

EB

: Elution Buffer

EDTA

: Ethylenediaminetetraacetic acid

FAM

: Fluorescein Amidite

IRB

: Inhibitor Removal Buffer

mtDNA

: DNA Mitokondria

NCBI

: National Center for Biotechnology Information

NTC

: No Template Control

RNA

: Ribonucleic Acid

RT-PCR

: Real-Time Polymerase Chain Reaction

TLB

: Tissue Lysis Buffer

Tm

: Temperature Melting

WB

: Washing Buffer

xvi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

DAFTAR ISTILAH

BLAST

: Program untuk menganalisis kesejajaran sekuen query (DNA atau protein) dengan sekuen DNA atau protein pada database di NCBI.

Blastn

: Salah satu variasi dari program BLAST untuk menganalisis kesejajaran nukleotida query dengan nukleotida pada database di NCBI

Cp

: Fraksi jumlah siklus dimana tingkat amplifikasi yang tercermin dari adanya flouresensi mencapai threshold (ambang)

Threshold

: Garis penanda siklus awal dari reaksi PCR, yaitu saat sinyal fluoresensi berada pada tingkat terendah

NCBI

: Suatu institusi milik United States National Library of Medicine yang berperan sebagai sumber informasi perkembangan biologi molekuler.

Query

: Sekuen yang dimasukkan ke dalam program BLAST untuk diketahui kesejajarannya

Tm

:

Temperatur

dimana

50%

untai

ganda

DNA

terpisah

xvii UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

BAB I PENDAHULUAN

1.1. Latar Belakang Vitamin A merupakan nutrien esensial yang bersifat larut lemak yang dibutuhkan oleh tubuh manusia Vitamin ini berfungsi untuk sistem penglihatan, pertumbuhan dan perkembangan, dan menjaga integritas sel epitel, fungsi imun, dan reproduksi (WHO, 2001). Vitamin A biasa dikonsumsi oleh anak-anak, dewasa, dan lansia untuk menjaga kesehatan mata dan memperkuat sistem kekebalan tubuh (Karnadi, 2014). Selain itu, vitamin A juga dikonsumsi oleh ibu hamil untuk perkembangan embrio (Hornstra et. al, 2005). Penggunaan vitamin A di Indonesia terus meningkat. Cakupan pemberian vitamin A ini meningkat dari 71,5 persen pada tahun 2007 menjadi 75,5 persen pada tahun 2013 (Karnadi, 2014). Hal ini disebabkan karena terdapat banyak kasus defisiensi vitamin A yang terjadi, seperti kebutaan dan kematian ibu hamil. Setiap tahunnya, terdapat 250.000 – 500.000 anak yang mengalami kebutaan akibat kekurangan vitamin A di Indonesia. Selain itu, terdapat 9352 ibu yang meninggal di Indonesia pada tahun 2013 (Tempo, 2014). Salah satu bentuk sediaan vitamin A yang beredar di Indonesia adalah kapsul. Kapsul adalah bentuk sediaan padat, dimana ia berisi satu bahan obat atau lebih dan/atau bahan inert lainnya yang dimasukkan ke dalam cangkang atau wadah kecil. Bahan utama untuk membuat cangkang kapsul keras adalah gelatin (Rabadiya, 2013; Ansel, 2008). Gelatin merupakan protein yang diperoleh dari hidrolisis parsial kolagen, yaitu komponen protein utama pada kulit, tulang, kulit jangat, dan jaringan penghubung dari tubuh binatang. Gelatin digolongkan sebagai turunan protein, karena didapat dari proses hidrolisis dan tidak terdapat di alam (Domb et. al, 1997). Kebutuhan dunia terhadap gelatin sangat besar. Laporan terakhir menunjukkan bahwa produksi gelatin dunia setiap tahunnya adalah sekitar 326.000 ton (Shyni et. al., 2013).

1 UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

2

Gelatin dapat dimanfaatkan diberbagai sektor industri, yaitu sektor industri makanan, farmasi, dan fotografi. Dalam industri makanan, gelatin dapat digunakan sebagai gelling agent pada gummy, penstabil pada marshmallow, pencegah kristalisasi gula pada manisan, pemberi bentuk dan pengikat pada daging, emulgator pada produk susu, dan lain-lain. Dalam industri farmasi, gelatin digunakan sebagai komponen pada cangkang kapsul keras dan kapsul lunak, granulasi, penyalut tablet, dan enkapsulasi. Penggunaan gelatin pada berbagai sediaan farmasi diperkirakan sebesar 17% dari konsumsi gelatin di dunia (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Gelatin yang digunakan dapat berasal dari berbagai sumber, yaitu kulit babi 44%, kulit sapi 28%, tulang sapi 27%, dan lainnya (misal gelatin ikan) 1% (Shyni et. al., 2013). Kulit babi memegang persentase paling besar karena bahan baku babi lebih banyak dan harganya lebih murah jika dibandingkan dengan sapi (Aisyah et. al, 2014). Penggunaan gelatin yang berasal dari babi dan sapi sebagai bahan baku ini menimbulkan masalah bagi seorang muslim yang merupakan agama mayoritas yang banyak dianut oleh penduduk di dunia, yaitu 22.43%. Mayoritas penduduk di Indonesia pun beragama Islam, yaitu dengan jumlah 1.6 Milyar penduduk pada tahun 2010 (Riaz dan Caundry, 2004; Republika, 2014). Agama Islam menjelaskan dalam Alqur’an dan Hadits bahwa salah satu sumber makanan yang diharamkan adalah babi dan turunannya. Surat Alqur’an yang menjelaskan tentang hal tersebut diantaranya QS. Al-Baqarah : 173 dan QS. Al-Maidah : 3. Telah banyak metode yang digunakan untuk menganalisis kandungan gelatin dalam rangka mendeteksi kehalalan, misalnya dengan Mass Spectrometry (Zhang et. al., 2009), Fourier Transform Infrared (FTIR) Spectroscopic (Al-Saidi et. al, 2012), dan Sodium Dodecyl SulphatePolyacrylamide Gel Electrophoresis (SDS-PAGE) yang dikombinasi dengan PCA (Azira et. al, 2012). Kekurangan dari metode-metode tersebut adalah analisisnya yang masih didasarkan pada protein, dimana protein bersifat tidak stabil terhadap pemanasan dan pH yang ekstrem. Seiring berjalannya waktu, berkembang metode untuk menganalisis kandungan gelatin pada tingkat

UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

3

DNA, dimana DNA bersifat lebih stabil daripada protein (Cai et. al., 2011). DNA yang akan diuji tersebut dapat diisolasi menggunakan metode kit komersial. Metode ini dianggap lebih baik daripada metode konvensional, karena dapat meminimalisir hilangnya DNA, lebih cepat, dan lebih aman (Rochea, 2008). Analisis tingkat DNA dapat dilakukan menggunakan Polymerase Chain Reaction (PCR). Salah satu tipe PCR yang dapat digunakan untuk mendeteksi kehalalan gelatin dalam suatu produk adalah dengan menggunakan Real-Time Polymerase Chain Reaction (RT-PCR) (Demirhan et. al, 2012). Analisis menggunakan Real-Time PCR atau quantitative PCR (qPCR) ini didasarkan pada kombinasi PCR tradisional yang mengunakan pendeteksi “end-point” dengan teknologi pendeteksi fluoresen untuk mencatat akumulasi amplifikasi dalam suatu waktu pada setiap siklus amplifikasi. Deteksi amplifikasi selama fase eksponensial awal PCR ini memungkinkan kuantifikasi jumlah gen (atau transkrip) ketika konsentrasi template awal proporsional. (Smith dan Osborn, 2008). Metode RT-PCR ini juga dapat mendeteksi campuran gelatin babi dan gelatin sapi dengan level kontaminasi 1% (Cai et. al., 2011). Berdasarkan

uraian

tersebut,

maka

dilakukan

penelitian

untuk

menganalisis kandungan gelatin babi dan gelatin sapi dalam cangkang kapsul keras pada produk vitamin yang mengandung vitamin A yang beredar di Indonesia menggunakan metode Real-Time PCR.

1.2. Rumusan Masalah 1.

Belum

diketahuinya

efektivitas

metode

kit

komersial

untuk

mengisolasi DNA gelatin babi dan gelatin sapi pada cangkang kapsul keras yang mengandung vitamin A. 2.

Belum diketahuinya efektivitas Real-Time PCR untuk mengamplifikasi DNA gelatin babi dan gelatin sapi pada cangkang kapsul keras yang mengandung vitamin A yang terisolasi menggunakan metode kit komersial.


4

1.3. Hipotesis 1.

DNA pada cangkang kapsul vitamin A dapat terisolasi dengan baik menggunakan metode kit komersial

2.

DNA yang diisolasi menggunakan metode kit komersial dapat teramplifikasi dengan baik menggunakan Real-Time PCR.

1.4. Tujuan Penelitian Tujuan penelitian ini adalah untuk menganalisis ada atau tidaknya kandungan gelatin babi dan gelatin sapi pada cangkang kapsul keras dari produk vitamin yang mengandung vitamin A yang beredar di Indonesia.

1.5. Manfaat Penelitian 1.

Mengetahui kondisi optimal yang digunakan untuk mengisolasi menggunakan metode kit komersial dan mengamplifikasi DNA pada cangkang kapsul keras menggunakan Real-Time Polymerase Chain Reaction.

2.

Memperoleh informasi kehalalan mengenai beberapa sediaan kapsul yang beredar di Indonesia.


BAB II TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Vitamin A Vitamin A merupakan nutrien esensial yang bersifat larut lemak yang dibutuhkan dalam jumlah kecil oleh tubuh manusia normal yang berfungsi untuk sistem penglihatan; pertumbuhan dan perkembangan; dan menjaga integritas sel epitel, fungsi imun, dan reproduksi. Vitamin A biasanya disediakan dalam bentuk retinol (khususnya retinyl ester), asam retinoat, dan pro-vitamin A carotenoid yang merupakan prekursor retinol (WHO, 2001; Otten et. al., 2006). Vitamin A dibutuhkan pula untuk perkembangan embrio normal. Asam retinoat adalah retinoid yang secara signifikan mempengaruhi proses embriogenesis. Ia mengatur proses apoptosis, proliferasi, dan differensiasi. Vitamin A disalurkan dari ibu hamil ke janinnya melalui plasenta (Hornstra et. al., 2005). Vitamin A banyak ditemukan di produk hewani, seperti susu, daging, hati, dan minyak hati ikan, dan kuning telur. Pro-vitamin A karotenoid ditemukan dalam sayuran hijau (seperti bayam), sayuran kuning (seperti labu dan wortel), buah-buahan kuning atau oren (seperti mangga dan pepaya) (WHO, 2001). Kekurangan vitamin A didefinisikan sebagai konsentrasi vitamin A jaringan yang rendah dan tidak cukup untuk menimbulkan efek yang menyehatkan bagi tubuh, meskipun tidak ada bukti xeroftalmia (WHO, 2001). Asupan vitamin A untuk laki-laki dan perempuan berbeda. Rekomendasi asupan vitamin A sesuai tingkatan umur dapat dilihat pada tabel 2.1.


6

Tabel 2.1. Rekomendasi Asupan Vitamin A (Sumber : Otten et. al., 2006)

Asupan (µl/hari) Perkiraan Kebutuhan Rata-Rata Laki-Laki Wanita Berdasarkan Umur 1 – 3 tahun 4 – 8 tahun 9 – 13 tahun 14 – 18 tahun 19 – 30 tahun 31 – 50 tahun 51 – 70 tahun Lebih dari 70 tahun Ibu Hamil Kurang dari 18 tahun 19 – 50 tahun Ibu Menyusui Kurang dari 18 tahun 19 – 50 tahun

210 275 445 630 625 625 625 625

210 275 420 485 500 500 500 500 530 550 885 900

2.2. Kapsul Dalam dunia farmasi, kapsul digunakan untuk mendeskripsikan bentuk sediaan padat, dimana ia berisi satu bahan obat atau lebih dan/atau bahan inert lainnya yang dimasukkan ke dalam cangkang atau wadah kecil yang umumnya dibuat dari gelatin yang sesuai (Rabadiya, 2013; Ansel, 2008). Kebanyakan kapsul yang diedarkan di pasaran adalah kapsul yang dapat ditelan oleh pasien untuk keuntungan dalam pengobatan. Kapsul juga dapat dibuat untuk disisipkan ke dalam rektum, sehingga obat dilepaskan dan diabsorpsi di tempat tersebut (Ansel, 2008). Kapsul digunakan sebagai pelindung sediaan antibiotik, multivitamin dan mineral, suplemen, dan sebagainya. Selain sebagai pelindung, kapsul juga berguna untuk menutup rasa dan bau yang tidak menyenangkan dari obat, memudahkan administrasi obat karena mudah ditelan dengan bantuan air, dan cepat dicerna oleh saluran gastrointestinal (Rabadiya, 2013).


7

2.2.1. Jenis Kapsul Berdasarkan elastisitas dan komponen pembentuknya, kapsul dibagi menjadi 2 kategori, yaitu cangkang kapsul keras dan cangkang kapsul lunak (Rabadiya, 2013). a. Cangkang Kapsul Keras Kapsul keras terdiri atas 2 cangkang, yaitu badan kapsul dan tutup kapsul. badan

tutup

Gambar 2.1. Cangkang Kapsul Keras (Sumber: www.snailpharma.com) Tutup kapsul yang sesuai akan menutup badan kapsul dengan rapat. Bahan dasar cangkang kapsul keras terbuat dari campuran gelatin, gula, dan air. Ia bersifat jernih dan tidak berasa (Rabadiya, 2013). Selain itu, titanium oksida juga dapat ditambahkan untuk membuat cangkang menjadi tidak transparan dan tidak tembus cahaya (Ansel, 2008). Pembuatan

cangkang

kapsul

dilakukan

dengan

cara

mencelupkan cetakan logam ke dalam larutan gelatin panas pada suhu kamar, kemudian gel akan membentuk sebuah film. Ia dibiarkan kering, lalu dipotong memanjang dan dirapikan sesuai dengan panjangnya. Proses ini dapat dilakukan menggunakan mesin (Rabadiya, 2013; Ansel, 2008). Ukuran kapsul keras bervariasi. Ia berkisar antara ukuran 000 (paling besar) dan 5 (paling kecil). Secara umum, kapsul keras digunakan untuk mengenkapsulasi antara 65 mg sampai 1 gram (Rabadiya, 2013). Cangkang kapsul gelatin dapat dibuat dengan berbagai ukuran, bervariasi baik panjang maupun diameternya. Pemilihan ukuran tergantung pada berapa banyak isi bahan yang akan dimasukkan ke


8

dalam kapsul dan dibandingkan dengan kapasitas isi dari cangkang kapsul. Karena kepadatan dan penekanan dari serbuk atau campuran serbuk akan menentukan berapa jumlah yang dapat ditampung dalam kapsul dan karena tiap bahan mempunyai sifat tersendiri, maka tidak ada pengaturan yang ketat untuk menentukan ukuran kapsul yang tepat (Ansel, 2008).

Gambar 2.2. Berbagai Ukuran Kapsul Keras (Sumber: Rabadiya, 2013)

b. Cangkang Kapsul Lunak Kapsul lunak terdiri atas 1 cangkang yang tertutup rapat. Kapsul lunak dapat dibentuk menjadi beberapa bentuk, di antaranya oval dan bulat. Kapsul lunak biasanya digunakan untuk mengenkapsulasi formulasi higroskopis dan/atau obat yang sensitif terhadap air, dimana formulasi gelatin standar dimodifikasi agar mengandung sedikit air dan kering dengan cepat, sehingga produk stabil selama proses pembuatan (Rabadiya, 2013). Cangkang kapsul gelatin lunak dapat dibuat dengan cara proses lempeng menggunakan seperangkat cetakan untuk membentuk kapsul atau dengan cara die process yang lebih efisien dan produktif. Yang dimaksud dengan proses lempeng yaitu selembar gelatin hangat ditempatkan pada permukaan cetakan bagian bawah, dan obat yang cair dituangkan kedalamnya. Kemudian selembar gelatin lainnya

ditempatkan diatasnya dan

ditekan untuk

penyegelan. Sedangkan pembuatan dengan die process yaitu cairan gelatin yang dituangkan dari tangki yang terletak diatas, dibentuk menjadi dua buah pita yang berurutan oleh mesin rotary die.


9

Dalam waktu yang bersamaan bahan obat yang akan diisikan dan diukur, dimasukkan diantaraa kedua pita secara tepat, ketika itu dies membentuk kantung dari pita gelatin. Kemudian kantungkantung gelatin yang telah terisi, disegel dengan tekanan dan panas (Ansel, 2008). 2.2.2. Komponen Pembuatan Kapsul Bahan baku dalam pembuatan kapsul adalah gelatin, air, pewarna, dan bahan penolong seperti pengawet dan surfaktan (Rabadiya, 2013; Bhatt, 2007). a. Gelatin Gelatin merupakan komponen utama dari kapsul. Hal ini disebabkan karena kemampuan larutan untuk membentuk gel atau bentuk yang padat pada suhu ruang, dimana memungkinkan terjadinya pembentukan lapisan homogen secara cepat. Gelatin yang digunakan harus memiliki sifat: -

Tidak toksik, dapat secara luas digunakan sebagai bahan makanan dan dapat diterima.

-

Dapat larut dalam cairan biologis pada suhu tubuh.

-

Dapat membentuk lapisan film yang kuat dan fleksibel.

-

Lapisan gelatin homogen.

b. Pewarna Pewarna terutama digunakan sebagai identitas sebuah produk. Pewarna yang dapat digunakan untuk kapsul terbagi menjadi 2 jenis, yaitu pigmen larut air (contohnya eritrosin, indigo carmine, dan quinolone yellow) dan pigmen tidak larut (contohnya iron oxide- black dan titanium dioksida). c. Bahan Penolong Bahan penolong yang biasa ditambahkan adalah pengawet dan surfaktan. Pengawet digunakan untuk mengurangi pertumbuhan bakteri sampai. Pengawet yang biasanya digunakan adalah sulfur dioksida, golongan paraben, dan asam benzoat. Sedangkan


10

surfaktan digunakan untuk wetting agent. Surfaktan yang biasa digunakan adalah natrium lauril sulfat 0.15% b/b (Bhatt, 2007). 2.2.3. Cara Penyimpanan Kapsul Meskipun terlihat keras, cangkang kapsul keras sebenarnya mengandung air dengan kadar 10-15%. Bila disimpan di tempat yang lembab, cangkang kapsul akan menjadi lunak dan lengket satu sama lain, serta sukar dibuka. Sebaliknya bila disimpan di tempat yang terlalu kering, kapsul akan kehilangan kandungan airnya sehingga rapuh dan mudah pecah. Oleh karena itu, kapsul sebaiknya disimpan di dalam tempat atau ruangan dengan kondisi: -

Tidak terlalu lembab atau dingin dan kering.

-

Terbuat dari botol gelas, tertutup rapat, dan diberi bahan pengering (silika gel).

-

Terbuat dari wadah botol plastik, tertutup rapat, dan diberi bahan pengering.

-

Terbuat dari aluminium foil dalam blister atau strip (Syamsuni, 2006).

2.3. Gelatin Gelatin merupakan protein yang diperoleh dari hidrolisis parsial kolagen, yaitu komponen protein utama pada kulit, tulang, kulit jangat, dan jaringan penghubung dari tubuh binatang (Domb et.al, 1997). Ketika kolagen diperlakukan dengan asam atau basa dan diikuti dengan panas, struktur fibrosa kolagen dipecah ireversibel menghasilkan gelatin. Gelatin dihasilkan melalui ikatan cross-linking (ikatan silang-sambung) diantara rantai polipetida pada kolagen (Zhou dan Regenstein, 2004). Gelatin diklasifikasikan sebagai turunan protein. Hal ini disebabkan karena ia diperoleh dari kolagen dengan mengontrol hidrolisis parsial dan tidak terdapat di alam (Domb et.al, 1997). Gelatin tidak dapat diturunkan dari tanduk, kuku, dan bagian non-kolagen lainnya dari binatang vertebrata. Tidak ada tumbuhan yang menghasilkan gelatin dan tidak terdapat hubungan kimia antara gelatin dengan bahan lainnya yang disebut sebagai gelatin nabati,


11

seperti ekstrak rumput laut. Sumber alternatif lainnya adalah unggas dan ikan. Mineral (pada tulang), lemak, albuminoid (pada kulit) akan dihilangkan secara kimia dan perlakuan fisika untuk mendapatkan kolagen murni (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Hidrolisat gelatin atau yang biasanya disebut protein cair, adalah produk yang diperoleh dengan hidrolisis yang lebih sempurna dari kolagen dan dipertimbangkan sebagai fraksi gelatin dengan berat molekul yang lebih kecil. Lem binatang ini pertama kali digunakan pada 4000 SM pada zaman Mesir kuno. Pada abad berikutnya, lem dan ekstrak gelatin mentah dengan sifat organoleptik yang buruk dipreparasi dengan merebus tulang dan lapisan kulit jangat, serta membiarkan larutan tersebut dingin dan menjadi gel. Pada abad ke-17, produksi gelatin secara komersial pertama kali dimulai. Pada awal abad 19, metode produksi komersial secara berangsur-angsur dikembangkan untuk memperoleh ekstrak kolagen dengan berat molekul yang tinggi dengan kualitas yang baik dari karakteristik gel gelatin. (Domb et. al., 1997) 2.3.1. Komposisi dan Struktur Kimia Gelatin tersusun atas berbagai bahan kimia. Gelatin tersusun atas karbon (50.5%), hidrogen (6.8%), nitrogen (17%), dan oksigen (25.2%) (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Penyusun utama gelatin adalah molekul polipeptida kompleks dari komposisi asam amino yang sama seperti kolagen, yang memiliki distribusi rentang berat molekul yang luas. Pada kolagen, 18 asam amino yang berbeda tersusun menjadi rantai yang panjang. Berdasarkan hasil analisis, asam amino yang menyusun gelatin tersusun atas 0.2% tirosin sampai 30.5% glisin. Lima asam amino utama yang menyusunnya adalah glisin 26.4-30.5%; prolin 14.8-18%; hidroksiprolin 13.3-14.5%; asam glutamat 11.111.7%; dan alanin 8.6-11.3%. Selain ke-5 asam amino tersebut, asam amino penyusun lainnya adalah arginin, asam aspartat, lisin, serin, leusin, valin, fenilalanin, treonin, isoleusin, hidroksilisin, histidin, metionin, dan tirosin (Domb et. al., 1997).


12

Gambar 2.3. Asam Amino-Asam Amino Penyusun Gelatin (Sumber: www.pbgelatins.com) Kandungan berbagai asam amino setiap gram dari 100 gram gelatin kering dapat dilihat pada tabel 2.2. Tabel 2.2. Kandungan Asam Amino Dalam Gelatin (Sumber: Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012)

Rantai penyusun gelatin berbentuk seperti batang (rod-like) dengan struktur triple-helix yang tersusun atas 2 rantai identik (disebut α1) dan 1 rantai yang sedikit berbeda (disebut α2). Struktur gelatin dapat diamati dengan mikrsokop elektron. Struktur gel ini merupakan kombinasi dari hubungan rantai dalam yang halus dan kasar, dimana perbandingannya tergantung pada suhu selama interaksi antar polimer dan antara polimer-pelarut membentuk ikatan hidrogen. Rigiditas gel tergantung pada konsentrasi gelatin. Kristalit yang ditunjukkan dengan X-ray diffraction pattern dipercaya menjadi penghubung antara rantai polipeptida.


13

Gambar 2.4. Struktur Triple-Helix Gelatin (Sumber: www.worldwidewounds.com) Rantai tersebut dapat diputus dan dirusak dengan cara hidrolisis. Berat molekul gelatin memiliki rentang dari 25.000-250.000. Distribusi berat molekul diketahui dari presipitasi fraksional dengan etanol atau 2-propoanol dan dari mencampurkannya dengan molekul detergen anionik. Hasilnya diisolasi dan disebut dengan fraksi gelatin (Domb et.al, 1997). 2.3.2. Tipe Gelatin Berdasarkan proses pembuatannya, gelatin digolongkan menjadi 2 tipe, yaitu: a. Gelatin Tipe A (Asam) Gelatin tipe A diproduksi dengan memproses bahan baku kolagen secara asam. Kebanyakan gelatin tipe A dibuat dari kulit babi. Proses ini meliputi manyamak kulit, mencuci pengotor, dan pengembangan selama 10-30 jam dalam 1-5% hidroklorida, fosfor, dan asam sulfur. Kemudian tahap 4 sampai 5 kali ekstraksi yang dilakukan pada suhu 55-65oC untuk ekstraksi pertama dan 95100oC untuk ekstraksi terakhir. Setiap ekstraksi dilakukan selama 4-5 jam. Kemudian lemak dihilangkan, larutan gelatin disaring, dan dideionisasi. Larutan kental didinginkan, ditekan menjadi lapisan tipis, dan dikeringkan pada suhu 30-60oC. b. Gelatin Tipe B (Basa) Tipe B diproduksi dengan proses basa atau dengan kapur. Gelatin tipe B terbuat dari tulang dan kulit sapi, serta kulit babi. Tulang berukuran 0.5-4 cm dengan lemak kurang dari 3% diproses


14

pada suhu dingin, lalu ditambahkan asam hidroklorida selama 4-14 hari untuk menghilangkan kandungan mineralnya. Selanjutnya, demineralisasi dicuci dan dipindahkan ke tangki besar untuk disimpan dalam lime slurry. Pada proses liming selama 3-16 minggu, terjadi beberapa deaminasi kolagen. Proses ini merupakan proses utama yang menghasilkan isoelektrik yang rendah pada gelatin tipe B. Setelah dicuci selama 15-30 jam untuk menghilangkan lime, ia diasamkan pada pH 5-7. Kemudian proses dilanjutkan sesuai dengan tahapan pembuatan gelatin tipe A (Domb et.al., 1997). Suhu, pH, dan jumlah ekstraksi bervariasi tergantung pasa kebutuhan

produk,

tipe

peralatan

yang

digunakan,

waktu

pengoperasian, dan aspek ekonomi. Prosedur ekstraksi harus dikontrol karena akan mempengaruhi kualitas dan kuantitas gelatin yang dihasilkan (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Selama proses pembuatan, kebersihan merupakan hal yang penting untuk mencegah kontaminasi bakteri atau enzim proteolitik. Peralatan yang digunakan selama pembuatan gelatin sebaiknya terbuat dari stainless steel (Domb et.al., 1997). 2.3.3. Stabilitas Gelatin kering disimpan dalam wadah kedap udara pada suhu ruangan memiliki waktu simpan bertahun-tahun. Meskipun begitu, ia terdekomposisi diatas suhu 100oC. Untuk pembakaran yang sempurna, suhu yang diperlukan adalah 500oC. Ketika gelatin kering dipanaskan pada udara yang relatif kelembabannya tinggi (sekitar 60% rh) dan pada suhu yang sedang (diatas 45oC), secara berangsur-angsur ia akan kehilangan kemampuan untuk mengembang dan melarut. Bentuk larutan atau gel dari gelatin sangat rentan terhadap pertumbuhan mikroba dan rusak oleh enzim proteolisis. Stabilitas pH dan elektrolit gelatin akan turun dengan kenaikan suhu yang disebabkan oleh hidrolisis (Domb et.al., 1997).


15

2.3.4. Karakteristik Kimia dan Fisika Gelatin Gelatin memiliki bentuk yang kuat, seragam, jernih, dan fleksibel, dimana dapat mengembang dan menyerap air (Domb et.al., 1997). Gelatin komersial diproduksi pada berbagai rentang ukuran mesh, mulai dari granul kasar sampai serbuk halus. Gelatin ini bersifat rapuh dan berwarna kuning pucat. Gelatin kering komersial memiliki 9-13% kelembaban dan tidak memiliki rasa, serta tidak berbau dengan berat jenis antara 1.3-1.4 (Domb et.al., 1997; Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Kebanyakan sifat fisika dan kimia gelatin diukur dalam bentuk larutan dengan parameter sumber kolagen, metode pembuatan, kondisi dan konsentrasi selama ekstraksi, suhu, pH, dan kemurnian bahan kimia alami dan aditif (Domb et.al., 1997). Kolagen

dapat

dipertimbangkan

sebagai

gelatin

anhidrat.

Perubahan hidrolitik kolagen menjadi gelatin menghasilkan berat molekul yang bervariasi, dimana masing-masing merupakan fragmen dari rantai kolagen. Oleh sebab itu, gelatin merupakan campuran fraksi yang terdiri atas asam amino yang dihubungkan oleh ikatan peptida menjadi polimer yang berat molekulnya bervarasi dari 15.000-400.000. Larutan gelatin bersifat amfoter. Ia dapat bereaksi dengan penambahan asam maupun basa. Dalam suasana asam, gelatin bermuatan positif dan berubah menjadi kation. Begitu pula sebaliknya. pH pada titik intermediet, dimana muatan totalnya adalah 0 dan tidak terdapat pergerakan, dikenal sebagai titik isoelektrik. Gelatin tipe A memiliki rentang isoelektrik yang luas, yaitu 7-9. Sedangkan gelatin tipe

B

memiliki

rentang

isoelektrik

dari

4.7-5.4

(Gelatin

Manufacturers Institute of America, 2012). 2.3.5. Pengaruh Sifat Kimia dan Fisik a. Pembentukan Gel Ketika larutan gelatin dengan konsentrasi yang besar (lebih dari 0.5%) didinginkan pada suhu 35-40oC, akan terjadi kenaikan viskositas dan kemudian membentuk gel. Proses pembentukan gel


16

ini terjadi melalui tahap, yaitu (1) penyusunan ulang dari rantai molekul, struktur heliks, atau lekukan kolagen; (2) penggabungan 2 atau 3 bagian membentuk kristalit; dan (3) stabilisasi struktur dengan ikatan hidrogen rantai dalam pada area heliks. Perubahan suhu gelatin ditentukan oleh titik beku atau titik leleh. Gelatin komersial meleleh pada suhu 23-30oC dan membeku pada suhu 25oC. b. Solubilitas Gelatin larut dalam air dan berbagai polihidrat alkohol, seperti gliserin dan propilenglikol. Gelatin juga larut dalam pelarut dengan kepolaran yang tinggi, seperti asam asetat, trifluoroetanol, dan formamida. Gelatin praktis tidak larut dalam pelarut yang memiliki kepolaran rendah, seperti aseton, karbon tetraklorida, etanol, eter, benzene, dimetilformamida, dan kebanyakan pelarut nonpolar (Domb et.al., 1997). Gelatin larut dalam air hangat dan apabila didinginkan dibawah suhu 30oC, larutan koloid ini akan membetuk gel dengan sifat tiksotropik dan reversibel menjadi cair kembali apabila dipanaskan. pH larutan atau gel gelatin akan berbeda tergantung tipenya yaitu tipe A pH 3.8 – 5.5, sedangkan tipe B pH 5.0 – 7.5 (Rabadiya, 2013).

Gambar 2.5. Pengaruh Pemanasan atau Pendinginan terhadap Struktur Gelatin (Sumber: www.nitta-gelatin.co.jp)


17

c. Koaservasi Merupakan fenomena penggabungan dengan koloid, dimana partikel terdispersi terpisah dari larutan membentuk larutan fase 2. Larutan gelatin membentuk koaservat dengan penambahan garam, seperti natrium sulfat, khususnya pada pH dibawah titik isoionik. Selain itu, larutan gelatin juga membentuk koaservat dengan penambahan

polimer

atau

berlawanan,

seperti

akasia.

makromolekul Sifat

ini

yang

muatannya

bermanfaat

dalam

mikroenkapsulasi (Domb et.al., 1997). d. Pengembangan Sifat ini penting dalam disolusi kapsul farmaseutik. Komposisi elektrolit dan pH mempengaruhi sifat pengembangan gelatin. Pada pH yang lebih rendah dari titik isoelektrik, anion berperan mengatur pengembangan, dan sebaliknya pada pH yang lebih tinggi dari titik isoelektrik, kation berpern dalam mengatur pengembangan. Pada kondisi 90% rh dan 20oC selama 24 jam, pengembangan lapisan penyalut akan sangat berkurang (Domb et.al., 1997). 2.3.6. Aplikasi Penggunaan Gelatin Penggunaan gelatin didasarkan pada kombinasi berbagai sifat; dapat atau tidaknya kembali menjadi bentuk transisi gel-menjadi-sol dari larutannya; viskositas larutan hangatnya; kemampuan untuk bertindak sebagai koloid pelindung; permeabilitas terhadap air, dan ketidaklarutannya dalam air dingin, tetapi larut sempurna dalam air panas. Gelatin juga merupakan protein yang bergizi. Sifat ini dimanfaatkan dalam industri pangan, farmaseutik, dan industri fotografi (Domb et.al., 1997). Dalam industri pangan, gelatin digunakan sebagai gelatin dapat digunakan sebagai gelling agent pada gummy, penstabil pada marshmallow, pencegah kristalisasi gula pada manisan, pemberi bentuk dan pengikat pada daging, dan emulgator pada produk susu.


18

Selain itu, gelatin juga digunakan sebagai koloid pelindung, pembentuk lapisan film, pengental, dan agen perekat. Dalam industri farmaseutik, penggunaan gelatin diperkirakan sebesar 17% dari konsumsi gelatin di seluruh dunia. Penggunaan gelatin ini telah dikenal sejak awal abad 19, yaitu sebagai komponen pada cangkang kapsul keras dan kapsul lunak, granulasi, penyalut tablet, dan enkapsulasi. Tidak hanya pada industri pangan dan farmasi, gelatin juga dapat bermanfaat pada bidang fotografi yaitu sebagai pelapis zat warna film (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012).

2.4. Deoxyribunucleic Acid (DNA) Terdapat 2 jenis asam nukleat, yaitu asam deoksiribonukleat (DNA) dan asam ribonukleat (RNA). DNA merupakan materi genetik yang diwarisi organism dari induk atau orang tuanya. Suatu molekul DNA sangat panjang dan umumnya terdiri atas ribuan gen. DNA dapat mengarahkan replikasinya sendiri. DNA juga dapat mengarahkan sintesis RNA dan mengontrol sintesis protein melalui RNA. Ketika sel bereproduksi dengan cara membelah, DNA akan disalin dan diteruskan dari 1 generasi sel ke generasi sel berikutnya. Informasi yang terkode dalam struktur DNA memprogram semua aktivitas sel tersebut.

Gambar 2.6. Struktur dan Komponen Penyusun DNA (Sumber : serendip.brynmawr.edu)

DNA terdiri atas 2 untai polimer dari monomer nukleotida (basa) yang membentuk struktur double helix. Masing-masing nukleotida terdiri atas 3 bagian, yaitu basa nitrogen (purin dan pirimidin), gula pentosa, dan gugus fosfat. Antara nukleotida tersebut dihubungkan dengan ikatan kovalen yang


19

disebut ikatan fosfodiester, yaitu ikatan antara fosfat dengan gula pentosa (Campbell, 2002). Salah satu jenis DNA yang pada makhluk hidup adalah DNA mitokondria (mtDNA), yaitu DNA rantai ganda yang berbentuk sirkuler yang tersimpan dalam matriks mitokondria (Bandelt et. al., 2006). Ukuran mtDNA relatif sangat kecil dibandingkan dengan ukuran DNA nukleus. Namun, mtDNA mempunyai jumlah kopi yang tinggi, yaitu sekitar 1.000-10.000 kopi. Oleh sebab itu, mtDNA dapat digunakan untuk analisis sampel dengan jumlah DNA yang sangat tebatas (Hartati et. al., 2004)

2.5.Isolasi DNA Isolasi DNA merupakan tahapan penting dalam proses bioteknologi. Prinsip isolasi DNA adalah memisahkan DNA dari komponen-komponen sel lain. Isolasi DNA dari organisme eukariotik dilakukan melalui 3 tahap utama, yaitu proses penghancuran membran sel (lisis), pemisahan DNA dari protein sel dengan cara pengendapan, dan purifikasi DNA (Muladno, 2010). Pertama adalah tahap proses penghancuran membran sel (lisis). Semua protokol isolasi dimulai dengan proses melisiskan sel. Proses ini dapat dilakukan dengan menggunakan bahan denaturasi kuat, seperti detergen ionik, garam guanidium, atau fenol-kloroform. Reagen ini akan melisiskan sel bersamaan dengan mendenaturasikan protein (Greene dan Rao, 1998). Membran terlebih dahulu dilisiskan dengan senyawa kimia yang dapat mempengaruhui dinding sel, seperti lisozim, EDTA, dan SDS (Muladno, 2010). Kerja lisozim dalam melisiskan dinding sel adalah dengan memotong senyawa polimer yang ada pada dinding sel. Kerja EDTA adalah dengan mengikat ion magnesium yang bertugas menjaga struktur dinding sel dan juga menghambat enzim lain yang akan memotong DNA. Sedangkan kerja SDS (Sodium Dodecyl Sulphate) adalah dengan menghilangkan lipid pada dinding sel. Pada tahap preparasi, pelisisan dilakukan pada suasana alkali (pH 12). Pada keadaan ini, molekul DNA akan terfragmentasi dan terdenaturasi. Proses pelisisan juga dapat dilakukan menggunakan metode fisika, misalnya dengan


20

kekuatan mekanik. Namun metode kimia lebih banyak digunakan (Sudjadi, 2008). Kedua adalah tahap pemisahan DNA dari protein sel dengan cara pengendapan. Protein pada sel dihancurkan dengan bantuan enzim proteinase K. Enzim ini dapat memecahkan protein histon, sehingga DNA pun terurai. Untuk menghilangkan protein dari larutan, digunakan fenol (untuk mengikat protein dan sebagian kecil RNA) dan kloroform (untuk membersihkan protein dan polisakarida dari larutan). Umumnya ditambahkan dengan perbandingan 1:1. Kemudian dilakukan sentifugasi kembali untuk mengendapkan molekul yang berat, kemudian DNA yang berada pada supernatan dipisahkan (Muladno, 2010). Ketiga adalah tahap purifikasi DNA. DNA yang telah dibersihkan dari protein masih tercampur dengan RNA. Cara baku untuk menghilangkan protein

adalah

dengan

penambahan

fenol

atau

campuran

fenol:kloroform:isoamil alkohol (50:49:1). Larutan organik ini akan mengendapkan protein yang akan menggumpal pada batas antara fase air dan fase organik. Isoamil alkohol berfungsi mencegah terjadinya emulsi. Sedangkan untuk menghilangkan molekul RNA dari larutan, dapat digunakan enzim RNAse yang akan mendegradasi molekul RNA (Sudjadi, 2008). Dengan hilangnya protein dan RNA, maka DNA dapat diisolasi secara utuh. Molekul DNA yang telah diisolasi tersebut kemudian dimurnikan dengan cara presipitasi menggunakan etanol absolut dan larutan garam. Dengan adanya larutan garam (kation monovalen seperti Na+), pada suhu 20oC etanol absolut dapat mengendapkan DNA dengan baik, sehingga mudah dipisahkan dengan cara sentrifugasi (Muladno, 2010). Setelah semua tahapan isolasi dilakukan, perlu dilakukan penilaian terhadap kemurnian DNA yang dihasilkan. Penilaian dapat dilakukan salah satunya dengan menggunakan spektroskopi UV dan fluorometri. Untuk memperkirakan kemurnian asam nukleat, digunakanlah rasio absorbansi pada 260 nm terhadap 280 nm (rasio A260/A280) atau rasio absorbansi pada 260 nm terhadap 230 nm (rasio A260/A230) (Greene dan Rao, 1998; Kulkarni dan


21

Pfeifer, 2015). Jika rasio berkisar antara 1.8 sampai 2.0, artinya asam nukleat yang diperoleh relatif murni (Greene dan Rao, 1998). Selain menggunakan spektroskopi UV dan fluorometri, metode lain yang dapat digunakan adalah elektroforesis agarosa. Metode ini dapat memastikan adanya berat molekul DNA. Adanya noda (smear) pada hasil elektroforesis menandakan bahwa sampel terdegradasi atau terkontaminasi (Kulkarni dan Pfeifer, 2015).

2.6. Spektrofotometer UV untuk Pemeriksaan DNA Spektrofotometer UV dapat digunakan untuk menghitung kadar dan kemurnian asam nukleat. Spektrofotometer ini dapat mengukur yang sangat kecil, yaitu sekitar 0.2-2 µl tanpa harus mengencerkan sampel terlebih dahulu. Spektrum atau panjang gelombang yang dapat digunakan berkisar dari 220750 nm. Alat ini tidak membutuhkan kuvet dan peralatan sampel lainnya, serta dapat dibersihkan dengan cepat. Pengukuran yang dilakukan oleh alat ini sangat cepat, yaitu hanya beberapa detik. Namun, kontaminan dalam sampel asam nukleat dapat mempengaruhi akurasi yang dihasilkan (Kennedy dan Oswald, 2011).

Gambar 2.7. Spektrofotometer UV untuk Pemeriksaan DNA (Sumber: www.labtech.ie dan www.promarchive.com)

2.7. Polymerase Chain Reaction (PCR) Polymerase Chain Reaction (PCR) merupakan alat yang dapat melakukan amplifikasi DNA yang dipilih pada daerah tertentu genom dengan bantuan sekurangnya sepasang sekuens nukleotidanya (primer) yang telah diketahui (Alberts et. al., 1989). PCR merupakan teknik analisis biologi molekular baru untuk mereplikasi DNA secara enzimatik tanpa menggunakan organisme


22

hidup. Teknik PCR ini membutuhkan jumlah molekul DNA yang sedikit untuk kemudian diamplifikasi beberapa kali dalam fase eksponensial. Dengan lebih banyak DNA yang tersedia, analisis yang dilakukan menjdi lebih mudah. PCR biasanya digunakan dalam laboratorium medic dan biologi untuk tujuan deteksi penyakit keturunan, diagnosis penyakit infeksi, identifikasi sidik jari genetic, kloning gen, paternity testing, dan komputasi DNA (Rahman, et. al., 2013). Teknik ini dikembangkan oleh Kary Mullis pada tahun 1983. PCR dapat menganalisis sampel dengan volume 10-200 µl dalam tabung reaksi kecil (volume 0.2-0.5 ml) dalam thermal cycler. Di dalam thermal cycler, terjadi reaksi pemanasan dan pendinginan kepada tabung untuk memperoleh suhu yang dibutuhkan pada setiap langkah selama reaksi. PCR digunakan untuk mengamplifikasi untai DNA yang pendek dan bagian yang teridentifikasi, yaitu dapat berupa gen tunggal atau hanya bagian dari gen. Berbeda dengan organism hidup, proses PCR dapat menyalin fragmen DNA yang pendek, biasanya sampai 10 kb (kilo base pairs). Beberapa metode tertentu dapat menyalin fragmen sampai ukuran 40 kb, dimana ukuran tersebut lebih kecil daripada kromosom DNA pada sel eukariot (Rahman et. al., 2013). 2.7.1. Komponen PCR Beberapa komponen penting yang dibutuhkan dalam PCR adalah DNA template, primer, enzim Taq Polymerase, deoxyribonucleaside triphosphate (dNTP’s), dan dapar PCR. a. DNA template atau cDNA DNA template mengandung daerah fragmen DNA yang akan diamplifikasi (Rahman et. al., 2013). Fungsi DNA template adalah sebagai cetakan untuk pembentukan molekul DNA baru yang sama. DNA template dapat berupa DNA kromosom atau fragmen DNA apapun yang mengandung fragmen DNA target yang dituju. b. Primer Primer dibutuhkan untuk menentukan awal dan akhir daerah (batas) yang akan diamplifikasi dari fragmen DNA. Primer


23

merupakan untai DNA buatan yang terdiri atas tidak lebih dari 50 nukleotida (biasanya 18-25 bp) yang komplementer dengan urutan nukleotida DNA template. Ia akan menempel ke DNA template pada titik awal dan akhir, tepatnya ditempat DNA polymerase terikat dan mulai mensintesis untai DNA baru. Selain itu, primer menyediakan gugus hidroksi (OH-) pada ujung 3’ yang diperlukan untuk proses pemanjangan DNA. (Rahman et. al., 2013; Handoyo dan Rudiretna, 2000) Perancangan primer dapat dilakukan berdasarkan rutan DNA yang telah diketahui ataupun dari urutan protein yang dituju. Data urutan DNA atau protein bisa didapatkan dari data GenBank. Apabila urutan DNA maupun urutan protein yang dituju belum diketahui, maka perancangan primer dapat didasarkan pada hasil analisis homologi dari urutan DNA atau protein yang telah diketahui mempunyai kekerabatan yang dekat. Dalam perancangan primer, kriteria yang harus dipenuhi adalah: (1) Panjang basa berkisar antara 18-30 basa. Jika terlalu pendek dapat menyebabkan mispriming; (2) Komposisi primer tersusun atas kandungan G+C (% jumlah G dan C) yang sama atau lebih besar dari kandungan G+C DNA target. Hal ini disebabkan karena primer dengan % G+C yang rendah diperkirakan tidak akan mampu berkompetisi untuk menempel secara efektif pada tempat yang dituju; (3) Melting Point (Tm, temperatur dimana 50% untai ganda DNA terpisah) yang dipilih akan berpengaruh dalam pemilihan suhu annealing proses PCR. Penentuan Tm berkaitan dengan komposis primer dan panjang primer. Perhitungan Tm dilakukan dengan rumus [2(A+T)+4(C+G)]. Sebaiknya Tm primer berkisar antara 50 – 65oC; (4) Interaksi primer-primer harus dihindari, seperti cross-homology atau self-homology. c. Enzim Taq polymerase Taq polymerase dibutuhkan sebagai katalisator untuk reaksi polimerisasi DNA yang diperlukan untuk tahap pemanjangan


24

DNA.

Enzim

ini

diisolasi

dari

bakteri

termofilik

atau

hipertermofilik, sehingga bersifat termolabil sampai suhu 95oC. Aktivitas Taq polymerase tergantung dari jenisnya dan asal bakteri tersebut diisolasi. (Handoyo dan Rudiretna, 2000) d. Nukleotida atau deoxyribonucleaside triphosphate (dNTP) Nukleotida merupakan bahan dasar untuk membentuk DNA baru yang bertindak sebagai building block DNA yang diperlukan dalam proses pemanjanan DNA (Rahman et. al., 2013). Ia terdiri atas dATP, dTTP, dGTP, dan dCTP. dNTP akan menempel pada gugus –OH pada ujung 3’ dari primer, kemudian membentuk untai baru yang komplementer dengan untai DNA template. e. Dapar dan MgCl2 Dapar dibutuhkan untuk menjaga pH medium tetap berada pada pH yang sesuai agar proses PCR dapat berlangsung dan menstabilkan enzim DNA polimerase. Sedangkan MgCl2 yang menyediakan ion Mg2+ bertindak sebagai kofaktor yang berfungsi untuk menstimulasi aktivitas DNA polymerase. Dengan adanya MgCl2 ini akan meningkatkan interaksi primer dengan DNA template yang membentuk kompleks larut dengan dNTP. Umumnya dapar PCR sudah mengandung senyawa MgCl2 yang diperlukan. Namun, lebih disarakan agar dapat PCR dan MgCl2 dipisahkan (Handoyo dan Rudiretna, 2000). 2.7.2. Tahapan PCR Tahapan PCR melibatkan 5 tahap, yaitu (1) pradenaturasi DNA template; (2) denaturasi DNA template; (3) penempelan primer pada DNA template (annealing); (4) pemanjangan primer (extension), dan (5) pemantapan (post-extension). Tahap (2) sampai (4) merupakan tahapan berulang (siklus), dimana pada setiap siklus terjadi duplikasi jumlah DNA. Tahapan PCR biasanya terdiri atas 20-35 siklus. Penggunaan jumlah siklus yang terlalu banyak dapat meningkatkan jumlah produk yang non target.


25

Gambar 2.8. Tahapan Proses PCR (Sumber: www.flmnh.ufl.edu)

1. Pemisahan atau Denaturasi Pada tahap ini, DNA untai ganda akan membuka menjadi dua untai tunggal. Hal ini disebabkan karena suhu denaturasi yang tinggi menyebabkan putusnya ikatan hidrogen diantara basa-basa yang komplemen. Enzim Taq polymerase diaktifkan pada tahap ini (Rahman et. al., 2013). Denaturasi biasanya dilakukan antara suhu 90-95oC selama 3 menit untuk meyakinkan bahwa molekul DNA target yang ingin dilipatgandakan jumlahnya benar-benar telah terdenaturasi menjadi untai tunggal. Untuk denaturasi berikutnya, waktu yang diperlukan hanya 30 detik pada suhu 95oC atau 15 detik pada suhu 97oC. Suhu denaturasi dipengaruhi oleh sekuen DNA target. Jika DNA target kaya akan G-C maka diperlukan suhu yang lebih tinggi. Hal ini disebabkan karena ikatan hidrogen pada G-C lebih banyak dibandingkan ikatan A-T. Selain itu, suhu denaturasi juga tidak boleh terlalu tinggi dan waktu denaturasi yang terlalu lama, karena dapat mengakibatkan hilangnya atau berkurangnya aktivitas enzim Taq polymerase (Sambrook et. al., 1989). 2. Penempelan (Annealing) Proses ini biasanya dilakukan pada suhu 50-60oC. Dengan terjadinya penurunan suhu, primer dapat menempel pada untai


26

DNA tunggal (Rahman et. al., 2013). Primer akan menuju daerah yang spesifik, dimana daerah tersebut memiliki komplemen dengan primernya. Pada proses penempelan ini, ikatan hidrogen akan terbentuk. Selanjutnya enzim Taq polymerase akan berikatan, sehingga ikatan hidrogen tersebut akan menjadi sangat kuat dan tidak akan putus kembali. Spesifisitas PCR sangat tergantung pada suhu melting (Tm) primer. Temperatur penempelan yang digunakan biasanya 5oC di bawah Tm (Sambrook et. al., 1989). Jika suhu yang digunakan pada tahap penempelan ini tidak tepat, primer tidak akan mengikat di DNA template atau terikat di bagian yang salah. Waktu yang dibutuhkan untuk tahap ini adalah sekitar 1-2 menit (Rahman, et. al., 2013). 3. Pemanjangan atau polimerasi (Extention) Primer yang telah menempel pada DNA template akan mengalami pemanjangan pada sisi 3' nya dengan penambahan dNTP yang komplemen dengan template oleh DNA polimerase. Umumnya reaksi pemanjangan (extension) atau polimerasi, terjadi pada suhu 72-78oC. Hal ini disebaban karena suhu tersebut merupakan suhu optimum untuk Taq polymerase. Kecepatan penyusunan nukleotida oleh enzim tersebut pada suhu 72-78oC diperkirakan antara 35 sampai 100 nukleotida per detik, bergantung pada dapar, pH, konsentrasi garam, dan molekul DNA target. Dengan demikian, untuk produk PCR sepanjang 2000 pasang basa, waktu 1 menit sudah lebih dari cukup untuk tahap pemanjangan primer ini. Jumlah siklus yang dibutuhkan untuk amplifikasi tergantung pada jumlah salisan DNA template yang ada pada saat mulai reaksi dan efisiensi pemanjangan dan amplifikasi primer. Produk DNA pada siklus amplifikasi pertama akan menjadi cetakan pada siklus berikutnya. Dibutuhkan sedikitnya 25 siklus untuk memperoleh tingkat amplifikasi sekuens target yang diterima (Sambrook et. al., 1989). Secara teori, hubungan kuantitatif antara jumlah awal sekuens target


27

(Xo) dan jumlah produk PCR setiap siklus (Xn) ketika fase eksponensial adalah Xn = Xo (1+E)n., dimana E adalah nilai antara 0 (tidak ada amplifikasi) atau 1 (setiap amplikon tereplikasi setiap siklus) (Vaerman, et. al., 2004). 2.7.3. Real-Time PCR Real-Time PCR juga dikenal sebagai quantitative real time polymerase chain reaction (Q-PCR/qPCR) atau kinetic polymerase chain reaction. Real-Time PCR adalah suatu metoda analisis yang dikembangkan dari reaksi PCR. RT-PCR adalah suatu teknik pengerjaan PCR di laboratorium untuk mengamplifikasi sekaligus mengkuantifikasi jumlah target molekul DNA hasil amplifikasi tersebut, yang bersifat sensitif, spesifik, dan reprodusibel untuk asam nukleat (Vaerman et. al., 2004; Arya et. al., 2005). Pada PCR konvensional, pengamatan hasil amplifikasi DNA dilakukan menggunakan elektroforesis gel agarosa pada end-point amplifikasi DNA tersebut. Sedangkan analisis menggunakan RealTime PCR memungkinkan untuk dilakukan pengamatan pada saat reaksi berlangsung. Keberadaan DNA hasil amplifikasi dapat diamati pada grafik yang muncul sebagai hasil akumulasi fluoresensi dari probe (penanda). Pada Real-Time PCR pengamatan hasil tidak lagi membutuhkan tahap elektroforesis. (Pranawaty et.al., 2012) Konsentrasi awal sekuens target ditunjukkan sebagai fraksi jumlah siklus (CT atau Cycle Theshold). Nilai ini dibutuhkan untuk memperoleh

adanya

awal

amplifikasi.

Real-Time

PCR

tidak

terpengaruh terhadap berbagai variasi komponen dalam reaksi dan kurang sensitif terhadap perbedaan efisiensi amplifikasi. Kemampuan untuk menghitung amplifikasi DNA selama fase eksponensial

dihasilkan

dengan

mengembangkan

ketelitian

menghitung sekuens target. Terdapat beberapa metode untuk menegaskan spesifisitas produk amplifikasi, yaitu dengan melting temperatures,

probe

oligonukleotida

yang

dilabelkan

dengan

fluoresensi, metode TaqMan, hibridisasi probe.


28

Metode TaqMan menggunakan oligonukleotida yang menempel ke sekuens internal dalam fragmen DNA yang diamplifikasi. Biasanya oligonukleotida, yang terdiri atas 20-24 basa, dilabelkan dengan fluorescent group pada ujung 5’ dan quencher group pada akhir 3’, dimana mereka dibatasi oleh PO2, NH2, atau blocked base. Label oligonukleotida tersebut ditambahkan bersama dengan primer untuk mengamati perubahan amplifikasi sekuens target (Sambrook et. al., 1989).

Gambar 2.9. Kerja Fluorescent Dye dan Quencher pada Real-Time PCR (Sumber : www.isu.edu) Hasil

peningkatan

fluorescent

digambarkan

melalui

kurva

amplifikasi yang menunjukkan tiga fasa yaitu fasa awal, fasa eksponensial atau puncak dan fasa plateau atau stabil (Vaerman, 2004).

Gambar 2.10. Bentuk Kurva Real-Time PCR (Sumber: Arya et. al., 2005)


BAB III METODE PENELITIAN

3.1. Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Analisis Obat dan Pangan Halal, Laboratorium Penelitian 2, dan Laboratorium Kimia Obat pada Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan, Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta dan Laboratorium Teknologi Gen, Balai Pengkajian Bioteknologi-BPPT Serpong, Tangerang. Waktu pelaksanaan penelitian dilakukan pada bulan Februari 2015 hingga Juni 2015.

3.2. Alat dan Bahan 3.2.1. Alat Alat yang digunakan pada penelitian ini adalah spatula, plastic wrap, aluminium foil, termometer, api bunsen, mikropipet 0.5-10 µl; 220 µl; 20-200 µl; dan 100-1000 µl [Bio-rad], mikropipet tip 10 µl; 200 µl; dan 1000 µl [Bio-rad], Tabung mikrosentrifugasi [Bio-rad], High Pure Filter Tube [Roche], Collection Tube [Roche], Setrifugator [Eppendorf Centrifuge 5417 R-Ogawa Seiki], Vortex [VM-300], wadah cetakan, lemari pendingin, timbangan analitik, Waterbath [Eyela], Moisture Balance Analyzer [Wiggen], satu set alat Real-Time PCR [LightCycler® 480.0-Roche], dan Spektrofotometer UV [Bio Drop]. Alat gelas yang digunakan yaitu beaker glass, erlenmeyer, batang pengaduk, gelas ukur, pipet tetes, cawan penguap, tabung reaksi, dan kaca arloji. 3.2.2. Bahan Bahan yang diperlukan pada penelitian ini adalah Gelatin Sapi [Sigma-Aldrich], Gelatin Babi [Sigma-Aldrich], sorbitol, pewarna tartrazine, 5 sampel kapsul yang mengandung vitamin A dengan produsen yang berbeda, satu set High Pure PCR Template Preparation


30

Kit (meliputi: Tissue Lysis Buffer, Proteinase K, Binding Buffer, Inhibitor Removal Buffer, Wash Buffer, dan Elution Buffer) [Roche], Aquabidest [Roche], Aquadest, Isopropanol [Merck], Etanol Absolut [Merck], LC 480 TaqMan Probe Master (yang terdiri atas: FastStart Taq DNA Polymerase, buffer, dNTP mix, MgCl2 6.4 mM) [Roche], dan primer-probe dengan urutan basa seperti yang tertera dalam tabel 3.1. Tabel 3.1. Urutan Basa Primer dan TaqMan Probe (Sumber : Tanabe et. al.., 2007)

Nama Primer

Babi

Forward

5'-ATCTTGCAAATCCTAACAGGCCTG -3'

Reverse

5'-CGTTTGCATGTAGATAGCGAATAAC-3'

Probe

Sapi

Urutan Basa

5'-(FAM)-CACAACAACAGCTTTCTCATCAGTTAC-(BHQ1)-3'

Forward

5'-CCCGATTCTTCGCTTTCCAT-3'

Reverse

5'-CTACGTCTGAGGAAATTCCTGTTG-3'

Probe

5'-(FAM)-CATCATAGCAATTGCC-(BHQ1)-3'

3.3. Tahapan Penelitian a. Pembuatan Cangkang Kapsul Simulasi Menggunakan Gelatin Babi dan Gelatin Sapi b. Pengumpulan Sampel c. Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul Keras Sampel d. Isolasi DNA Kontrol dan Sampel e. Pemeriksaan Kadar dan Kemurnian Isolat DNA f. Pemeriksaan Spesifisitas Primer dan Probe g. Amplifikasi DNA Menggunakan Real-Time PCR h. Analisis Hasil


31

3.4. Prosedur Kerja 3.4.1. Pembuatan Lembar Cangkang Kapsul Simulasi Menggunakan Gelatin Sapi dan Gelatin Babi (Widyaninggar et. al., 2012) Tabel 3.2. Formulasi Lembar Cangkang Kapsul Keras Bahan

Jumlah

Gelatin

30%

Sorbitol

5%

Pewarna

0.05%

Aquadest

Ad 100%

Sebanyak 9 gram gelatin sapi ditimbang dan dibasahi dengan 9 ml air panas sambil diaduk perlahan sampai homogen. Kemudian sebanyak 1.5 gram sorbitol dan 0.0015 gram pewarna ditambahkan, lalu dicukupkan sampai 30 ml aquadest. Larutan dipanaskan dan diaduk sampai semua gelatin larut dan larutan menjadi jernih. Larutan tersebut kemudian dituang ke cetakan menjadi sebuah lapisan tipis. Campuran

diletakkan

di

dalam

desikator

untuk

menjaga

kelembabannya. Pembuatan cangkang kapsul dari gelatin babi sama dengan perlakuan seperti diatas. 3.4.2. Pengumpulan Sampel Pengumpulan sampel dilakukan secara acak dengan mendata produk vitamin yang mengandung vitamin A yang berbentuk cangkang kapsul keras yang beredar di Indonesia berdasarkan ISO 2013/2014. Diperoleh sebanyak 14 produsen produk vitamin yang mengandung vitamin A yang berbentuk cangkang kapsul keras. Kemudian lima produk vitamin yang berasal dari produsen yang berbeda diambil secara acak. Pengambilan sampel ini dilakukan pada tanggal 08-20 April 2015. Masing-masing sampel diberi identitas seperti yang terlihat dalam tabel 3.3.


32

Tabel 3.3. Identitas Sampel yang berasal dari Produsen yang Berbeda No.

Sampel

Identitas

1

Produsen E

A

2

Produsen I

B

3

Produsen N

C

4

Produsen Ei

D

5

Produsen V

E

3.4.3. Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul Keras Sampel (Anonim, 2013) Larutan uji yang digunakan untuk uji identifikasi gelatin terdiri atas larutan gelatin sebagai kontrol positif; air, larutan koloid HPMC, dan larutan koloid natrium alginat sebagai kontrol negatif; dan larutan cangkang kapsul sampel. Larutan gelatin dan larutan cangkang kapsul sampel disiapkan dengan cara meleburkan gelatin dan cangkang kapsul tersebut pada air hangat. Larutan koloid HPMC disiapkan dengan cara melarutkan 0.1 gram serbuk HPMC dalam 10 ml aquadest panas (90oC). Sedangkan larutan koloid natrium alginat disiapkan dengan cara melarutkan 0.1 gram serbuk natrium alginat dalam 10 ml aquadest. Proses identifikasi dilakukan dengan cara mengambil sebanyak 2 ml masing-masing larutan uji, lalu menambahkannya dengan 0.05 ml larutan CuSO4 0.7 M dan dihomogenkan. Kemudian sebanyak 0.5 ml larutan NaOH 2 M ditambahkan kedalamnya. Jika timbul warna violet, artinya sampel mengandung gelatin. 3.4.4. Isolasi dan Purifikasi DNA Kontol dan Sampel a.

Preparasi Daging Sapi dan Daging Babi (Rochea, 2008; Erwanto et.al., 2012) Sebanyak 50 mg daging sapi dan daging babi segar dicincang halus dengan pisau steril. Masing-masing daging tersebut dimasukkan ke dalam tabung mikrosentrifugasi. Kemudian ke dalam tube tersebut ditambahkan 200 µl Tissue


33

Lysis Buffer dan 40 µl larutan Proteinase K. Campuran tersebut divortex selama 1 menit dan diinkubasi pada suhu 57oC selama 21 jam dalam waterbath. Selanjutnya larutan preparasi tersebut siap untuk proses ekstraksi dan isolasi DNA. b.

Preparasi Gelatin, Simulasi Cangkang Kapsul, dan Sampel (Rochea, 2008; Izzah dengan modifikasi, 2014) Sebanyak 100 mg gelatin sapi dan gelatin babi, cangkang kapsul simulasi sapi dan simulasi babi, serta cangkang kapsul sampel kosong ditimbang dan ditambahkan air hangat sebanyak

200

µl

mikrosentrifugasi.

dan

dimasukkan

Kemudian

ke

ke

dalam

dalam

tabung

tube

tersebut

ditambahkan 250 µl Tissue Lysis Buffer dan 50µl larutan Proteinase K. Masing-masing campuran tersebut divortex selama 1 menit dan diinkubasi pada suhu 57oC selama 21 jam dalam waterbath. Selanjutnya khusus pada larutan sampel, dilakukan sentrifugasi 10.000 rpm selama 30 menit karena terbentuk endapan putih. Selanjutnya larutan preparasi tersebut siap untuk proses ekstraksi dan isolasi DNA. c. Isolasi DNA (Rochea, 2008; Izzah dengan modifikasi, 2014) Larutan preparasi daging, gelatin, kapsul simulasi , dan kapsul sampel yang didapatkan kemudian ditambahkan sebanyak 200 µl untuk larutan preparasi daging dan sebanyak 230 µl larutan Binding Buffer. Campuran tersebut divortex segera selama 20 detik dan diinkubasi pada suhu 70oC selama 10 menit dalam waterbath. Kemudian ke dalam tube tersebut ditambahkan 150 µl isopropanol dan dihomogenkan dengan vortex selama 20 detik. Campuran dipipet dan dimasukkan ke dalam Filter Tube yang telah dipasangkan Collecting Tube. Kemudian tube ditutup dan disentrifugasi dengan kecepatan 8000 rpm selama 1 menit. Filter Tube dilepaskan dari Collection Tube dan cairan yang melewati filter dibuang bersama dengan Collection Tube.


34

Filter Tube dipasangkan kembali dengan Collection Tube yang baru. Kemudian 500 µl Inhibitor Removal Buffer ditambahkan melalui penyangga atas Filter Tube dan disentrifugasi kembali dengan kecepatan 8000 rpm selama 1 menit. Filter Tube dipasangkan kembali dengan Collection Tube yang baru. Kemudian

500µl

Washing

Buffer

ditambahkan

dan

disentrifugasi dengan kecepatan 8000rpm selama 1 menit. Pencucian

dengan

Washing

Buffer

dilakukan

2

kali.

Selanjutnya, Filter Tube dilepaskan dari Collection Tube dan cairan yang melewati filter dibuang. Filter Tube dipasangkan kembali dengan Collection Tube dan disentrifugasi kembali selama 10 detik dengan kecepatan 12000 rpm agar semua Washing Buffer terbuang dengan sempurna. Setelah disentrifugasi, Collection Tube dipisahkan dengan Filter Tube dan dibuang. Kemudian Filter Tube dipasangkan dengan tabung mikrosentrifugasi steril. Ke dalam filter yang berisi DNA daging sapi, daging babi, gelatin sapi, gelatin babi, kapsul

simulasi,

dan

kapsul

sampel,

masing-masing

ditambahkan 150 µl Elution Buffer hangat (70oC). Filter Tube dan tabung mikrosentrifugasi yang telah ditambahkan Elution Buffer disentrifugasi dengan kecepatan 8000 rpm selama 1 menit. Filter Tube dilepaskan dari tabung sentrifugasi yang telah berisi isolat DNA. Tabung mikrosentrifugasi tersebut disimpan pada suhu 4 oC untuk dianalisis selanjutnya. 3.4.5. Pemeriksaan Kadar dan Kemurnian Isolat DNA Menggunakan Spektrofotometer UV (Biodropb, 2012) Alat dinyalakan dan panel Nucleid Acid dipilih untuk menentukan konsentrasi dan kemurnian DNA. Sample port dibersihkan dengan tisu steril. Sebanyak 2 µl Elution Buffer dituangkan di atas sample port dan dianalisis

sebagai

blanko.

Sample

port

kembali

dibersihkan

menggunakan tisu steril. Identitas sampel dimasukkan pada kolom Sample ID. Kemudian sebanyak 2 µl masing-masing DNA sampel


35

dituangkan di atas sample port secara bergantian. Kemudian tombol Measure ditekan. DNA dianalisis pada panjang gelombang 260 nm dan 280 nm. Hasil instrumentasi yang akan didapat adalah data konsentrasi DNA dengan satuan ng/µl dan data kemurnian DNA dengan perbandingan rasio A260 dan A280. 3.4.6. Pemeriksaan Spesifisitas Primer dan Probe (NCBI) Uji spesifisitas primer dan probe dilakukan dengan melakukan BLAST melalui database NCBI. Pada halaman “BLAST”, dipilih menu “Nucleid Acid”. Kemudian pada kolom “Enter Query Sequence” dimasukkan urutan basa primer yang akan diuji. Tombol “BLAST” diklik. Data hasil pengujian yang didapat berupa daftar spesies yang memiliki kemiripan 99-100% dengan urutan basa primer yang diuji. 3.4.7. Amplifikasi DNA Menggunakan Real-Time PCR (Rocheb, 2005; Rochec; Izzah dengan modifikasi, 2014) Larutan primer dan probe disiapkan dengan konsentrasi 10 µM dari larutan induk dengan konsentrasi 100 µM dan disimpan dalam sebuah tube. Selanjutnya dalam tube berukuran 1,5 ml, sebanyak 15 µl PCR Mix disiapkan dengan cara mencampurkan larutan yang terdiri atas: 1,4 µl aquabidest; 1,6 µl primer forward 10µM; 1,6 µl primer reverse 10 µM; 0,4 µl probe 10 µM; dan 10 µl LightCycler® 480 Probe Master (enzim Taq DNA Polymerase, dNTP mix, dapar, dan 6.4 mM MgCl2). Campuran dihomogenkan menggunakan micropipette dengan cara up and down. Kemudian, sebanyak 5 µl isolat DNA yang akan diuji dipipet ke dalam multiwell plate pada well yang diinginkan dan ditambahkan sebanyak 15 µl PCR Mix yang telah dibuat. Multiwell plate yang berisi campuran DNA yang akan diuji dan PCR Mix tersebut ditutup dengan sealing foil yang akan mengeliminasi penguapan pada suhu tinggi, kemudian diletakkan pada alat Real-Time PCR. Semua proses pencampuran sampai pemipetan ke dalam multiwall plate dilakukan pada tempat yang gelap. Tahap tersebut dilakukan untuk masing-masing DNA daging babi, daging sapi, gelatin


36

sapi, gelatin babi, kapsul simulasi, dan kapsul sampel yang akan diamplifikasi. Program LightCycler® 480 Real-Time PCR yang akan digunakan untuk mengamplifikasi DNA diatur dengan pengaturan seperti yang tertera dalam tabel 3.4. Tabel 3.4. Pengaturan Program Amplifikasi pada LightCycler® 480 Real-Time PCR Jumlah Siklus

Suhu (oC)

Waktu

Pre Incubation

1

95

10 menit

Amplification

65

95

10 detik

60

1 menit

72

1 detik

40

10 detik

Cooling

1

3.4.8. Analisis Data Analisis kandungan babi dan kandungan sapi pada cangkang kapsul keras yang mengandung vitamin A dilakukan dengan melihat hasil amplifikasi DNA pada Real-Time PCR. Jika DNA pada sampel tertentu dengan primer babi dapat teramplifikasi, maka dapat disimpulkan bahwa gelatin pada cangkang kapsul keras tersebut berasal dari babi. Begitu juga sebaliknya, jika DNA pada sampel tertentu dengan primer sapi dapat teramplifikasi, maka dapat disimpulkan bahwa gelatin pada cangkang kapsul keras tersebut berasal dari sapi. Kurva amplifikasi dihasilkan dengan memplotkan jumlah siklus secara

horizontal dan nilai flouresen secara vertikal. Kurva ini

dihasilkan secara otomatis oleh RT-PCR. Dari kurva tersebut, kemudian dilihat nilai Cp (Crossing Point) dari setiap isolat DNA yang diuji. Adanya nilai Cp menunjukkan bahwa isolat DNA tersebut dapat


37

teramplifikasi. Cp adalah fraksi jumlah siklus dimana tingkat amplifikasi yang tercermin dari adanya flouresensi mencapai threshold (ambang). Tingkat ambang flouresensi diatur pada posisi yang sama untuk semua reaksi yang sedang diamati (Vaerman et. al, 2004).


BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Analisis Lembar Cangkang Kapsul Keras Simulasi Cangkang kapsul simulasi dibuat dengan bahan utama gelatin, yaitu gelatin sapi dan gelatin babi secara terpisah. Gelatin yang digunakan sebanyak 30%. Persentase gelatin ini sesuai dengan standar gelatin yang digunakan dalam pembuatan cangkang kapsul keras, yaitu 30% (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Sebagai plasticizer, digunakanlah bahan yang berasal dari golongan gula, yaitu sorbitol. Bahan ini digunakan untuk membuat cangkang kapsul keras tidak terlalu kaku dan dapat diambil dari cetakan. Sorbitol yang digunakan adalah sebanyak 5%. Hal ini sesuai dengan kadar yang ditentukan dalam Handbook of Pharmaceutical Excipients 6th Edition untuk penggunaan sorbitol sebagai plasticizer untuk gelatin.

(a)

(b)

Gambar 4.1. Lembar Cangkang Kapsul Keras Simulasi (a) Sapi dan (b) Babi

Lembaran cangkang kapsul keras simulasi yang dihasilkan berupa lapisan tipis, berwarna kuning, dan dapat digulung. Berdasarkan gambar 4.1, terlihat bahwa lembar cangkang kapsul simulasi sapi yang dihasilkan berwarna kuning pucat dan lembar cangkang kapsul simulasi babi yang dihasilkan berwarna kuning terang. Perbedaan warna ini disebabkan karena warna asal dari gelatin sapi (berwarna kuning pucat) dan gelatin babi (berwarna putih) yang digunakan. Evaluasi yang dilakukan terhadap lembar cangkang kapsul keras simulasi yang dibuat adalah mengukur kadar airnya menggunakan moisture balance analyzer. Kadar air yang didapat adalah berkisar antara 10.6-15% untuk


39

cangkang kapsul keras simulasi sapi dan untuk cangkang kapsul keras simulasi babi. Nilai ini memenuhi syarat sebuah cangkang kapsul keras, yaitu 10-15% (Anonim, 1995).

4.2. Proses Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul Keras Sampel Sebelum dilakukan proses isolasi dan amplifikasi pada cangkang kapsul dari produk yang beredar di Indonesia, terlebih dahulu dilakukan identifikasi gelatin pada setiap cangkang kapsul sampel tersebut. Hal ini dilakukan untuk memastikan bahwa cangkang kapsul yang akan diuji berasal dari gelatin. Pengujian sumber bahan baku dilakukan dengan cara menambahkan CuSO4 dan NaOH ke dalam larutan sampel (Anonim, 2013). Pengujian ini disebut juga uji biuret, yaitu pengujian kandungan protein pada suatu sampel. Uji ini dapat digunakan untuk uji identifikasi gelatin, karena pada dasarnya gelatin adalah turunan protein yang diperoleh dari kolagen (Shyni et. al., 2013). Artinya, gelatin juga mengandung ikatan peptida.

Gambar 4.2. Hasil Pengujian Sumber Bahan Baku Cangkang Kapsul (1) Kontrol Positif; (2) Kontrol Negatif (A. Air, B. Na Alginat, C. HPMC); dan (3)Sampel (A, B, C, D, E)

Larutan yang diuji terdiri atas larutan gelatin sebagai kontrol positif; air, larutan koloid HPMC, dan larutan koloid natrium alginat sebagai kontrol negatif; dan larutan cangkang kapsul sampel. HPMC dan natrium alginat digunakan sebagai kontrol negatif, karena kedua bahan tersebut dapat digunakan sebagai bahan baku cangkang kapsul keras pula (Al-Tabakha, 2010; Natalia, 2011). Pada air, larutan koloid HPMC, dan larutan koloid


40

natrium alginat tidak muncul warna violet. Sedangkan pada larutan gelatin dan kelima larutan cangkang kapsul sampel muncul warna violet. Namun karena cangkang kapsul sampel memiliki warna yang berbeda-beda, perubahan warna violet agak sulit diamati. Berdasarkan proses identifikasi tersebut, dapat disimpulkan bahwa kelima cangkang kapsul pada produk yang ingin diuji berasal dari gelatin. Uji biuret hanya dapat dilakukan untuk menguji sampel yang mengandung lebih dari 2 ikatan peptida (Das, 2010). Gelatin mengandung lebih dari 2 ikatan peptida, sehingga uji ini dapat dilakukan untuk mengidentifikasi gelatin. Setelah ditambahkan CuSO4 dan NaOH, larutan gelatin, dan larutan cangkang kapsul sampel akan membentuk senyawa Cu kompleks yang melibatkan nitrogen dari ikatan peptida dan oksigen dari air. Senyawa Cu kompleks tersebut akan membentuk warna violet pada larutan (Das, 2010). Fungsi NaOH pada proses uji tersebut adalah membuat suasana menjadi basa, sehingga gugus amida pada larutan gelatin dan larutan sampel akan bersifat nukleofilik dan dapat berikatan dengan ion Cu.

Gambar 4.3. Reaksi yang Terjadi pada Proses Identifikasi Gelatin (Sumber: people.uwplatt.edu)

4.3. Proses Isolasi DNA Proses isolasi dibutuhkan untuk mendapatkan DNA dari setiap sampel yang ingin diamplifikasi pada RT-PCR. Prinsip isolasi terdiri atas 3 tahap, yaitu proses penghancuran membran sel (lisis), pemisahan DNA dari protein sel dengan cara pengendapan, dan purifikasi DNA (Muladno, 2010). Pada penelitian ini, isolasi dilakukan dengan menggunakan High Pure PCR Template Preparation Kit yang diproduksi oleh Roche. Metode tersebut dipilih karena memiliki beberapa keuntungan. Pertama, meminimalisir


41

hilangnya DNA pada proses isolasi. Kedua, meminimalisir waktu (jika dibandingkan dengan cara manual yang harus menyiapkan berbagai reagen terlebih dahulu). Ketiga, mengeliminasi penggunaan senyawa organik yang berbahaya (seperti fenol dan kloroform) (Rochea, 2008). Prinsip isolasi menggunakan High Pure PCR Template Preparation Kit adalah melisiskan sel dengan bantuan chaotropic salt, kemudian mengikatkan asam nukleat sel dengan silika yang ada pada filter tube dan mengelusinya kembali dengan low salt elution (Rochea, 2008). Proses isolasi dimulai dengan melisiskan membran sel. Proses penghancuran membran sel ini dilakukan oleh Tissue Lysis Buffer (TLB). TLB ini mengandung Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) yang dapat mengikat ion magnesium (yang bertugas menjaga struktur dinding sel) dan juga menghambat enzim lain yang akan memotong DNA (Sudjadi, 2008). Setelah sel lisis, protein pada sel dihancurkan dengan bantuan enzim proteinase K. Enzim ini dapat memecahkan protein histon, sehingga DNA pun terurai (Muladno, 2010). Selanjutnya reagen lainnya ditambahkan secara berturut-turut, yaitu Binding Buffer (BB) yang dapat membuat DNA (bermuatan negatif) sehingga dapat teradsorpsi oleh silika dioksida (bermuatan positif) yang terdapat pada filter tube; isopropanol yang berguna untuk proses pemurnian DNA; Inhibitor Removal Buffer (IRB) yang berguna untuk menghilangkan berbagai pengotor yang dapat menghambat proses PCR; Washing Buffer (WB) yang berguna untuk mencuci chaotropic salt dan pengotor lainnya; dan Elution Buffer (EB) yang berguna untuk mengelusi DNA yang terikat pada silika (Roched, 2007). Masing-masing reagen ditambahkan bersamaan dengan penggantian collection tube dan disusul dengan proses setrifugasi. Proses isolasi cangkang kapsul sampel dilakukan sama dengan proses isolasi gelatin dan simulasi cangkang kapsul. Namun karena setelah inkubasi 21 jam terbentuk endapan putih, maka dilakukan proses sentrifugasi dengan kecepatan 10.000 rpm selama 30 menit. Sentrifugasi dilakukan untuk memastikan larutan sampel sudah terpisah secara sempurna dengan endapan putih tersebut. Diperkirakan endapan putih yang berasal dari cangkang kapsul


42

sampel tersebut adalah TiO2. Hal ini disebabkan karena endapan tersebut berwarna putih dan tidak larut air. Selain itu jika dilihat cangkang kapsul sampel yang bersifat opaque (tidak transparan), dapat disimpulkan bahwa ada penambahan opacifier. Salah satu opacifier yang sering digunakan adalah TiO2 (Bhatt, 2007). Endapan tersebut harus dihilangkan terlebih dahulu karena dapat menghambat proses PCR (Wan et.al., 2009). Isolat DNA dari daging babi, daging sapi, gelatin sapi, gelatin babi, simulasi cangkang kapsul sapi, simulasi cangkang kapsul babi, dan cangkang kapsul sampel yang telah didapatkan kemudian dianalisis menggunakan spektrofotometer UV.

4.4. Analisis Hasil Isolat DNA Proses analisis hasil isolat DNA dilakukan menggunakan spektrofotometer UV Biodrop. Kelebihan dari alat ini adalah dapat menganalisis isolat DNA dengan volume yang sangat kecil, yaitu 2 µl (Biodropa, 2012). Hal ini sangat berguna, dimana hasil isolat DNA yang didapatkan tidak banyak. Prinsip kerja spektrofotometer UV adalah penyerapan cahaya atau energi radiasi oleh suatu larutan. Jumlah cahaya atau energi radiasi yang diserap memungkinkan pengukuran jumlah zat penyerap dalam larutan secara kuantitatif (Triyati, 1985). Pengukuran dilakukan pada panjang gelombang 260 dan 280, dimana DNA akan terabsorpsi kuat pada panjang gelombang 260 nm dan protein pada panjang gelombang 280 nm. Kuantitas (kadar) dan kualitas (kemurnian) DNA yang diekstraksi dari sampel dipengaruhi oleh berbagai faktor, seperti teknik sampling, ukuran sampel, substansi penghalang, tingkat kerusakan, dan panjang fragmen DNA. Faktor-faktor tersebut tergantung pada sampel itu sendiri, proses pembuatan makanan, dan parameter fisik dan kimia dari metode ekstraksi (Branquinho et. al., 2012). Analisis hasil isolat DNA ini meliputi pemeriksaan kemurnian dan kadar DNA. Data yang didapatkan dari pemeriksaan isolat DNA menggunakan spektrofotometer UV dapat dilihat pada tabel 4.1.


43

Tabel 4.1. Hasil Kemurnian dan Kadar Isolat DNA yang Diperoleh Kemurnian

No.

Isolat

1

Daging Sapi

2.003

75.88

2

Daging Babi

1.882

59.74

3

Gelatin Sapi

1.695

48.77

4

Gelatin Babi

1.519

11.78

2.006

3.988

1.31

4.224

Simulasi Cangkang Kapsul

5

Keras Sapi Simulasi Cangkang Kapsul

6

Keras Babi

(A260/A280)

Kadar (ng/µl)

7

Sampel A

1.589

2.693

8

Sampel B

1.843

4.372

9

Sampel C

1.854

4.342

10

Sampel D

1.725

2.617

11

Sampel E

1.697

2.435

Isolat DNA dikatakan murni atau bebas dari protein jika kemurniannya berkisar antara 1.8-2.0 (Greene dan Rao, 1998). Jika kemurnian isolat DNA lebih kecil dari 1.8 artinya isolat terkontaminasi oleh protein, sedangkan jika kemurnian isolat DNA lebih dari 2 artinya senyawa guanidine-HCl yang digunakan pada saat proses isolasi masih ada (Pranawaty et.al., 2012; Branquinho et. al., 2012). Hasil kemurnian yang diperoleh dari setiap isolat DNA kontrol adalah 2.003 untuk daging sapi; 1.882 untuk daging babi; 1.695 untuk gelatin sapi; 1.519 untuk gelatin babi; 2.006 untuk simulasi cangkang kapsul sapi; dan 1.31 untuk simulasi cangkang kapsul babi. Sedangkan kemurnian dari setiap isolat DNA sampel adalah 1.589 untuk sampel A; 1.843 untuk sampel B; 1.854 untuk sampel C; 1.725 untuk sampel D; dan 1.697 untuk sampel E. Isolat sampel A dan isolat sampel E dapat dikatakan murni, karena memiliki kemurnian dalam rentang 1.8-2.0. Meskipun begitu, isolat DNA yang memiliki kemurnian diatas 1.0 masih dapat diterima dan dapat dilanjutkan ke proses amplifikasi pada RT-PCR (Kusumadewi et.al., 2012).


44

Hasil kadar yang diperoleh dari setiap isolat DNA kontrol adalah 75.88 ng/µl untuk daging sapi; 59,74 ng/µl untuk daging babi; 48.77 ng/µl untuk gelatin sapi; 11.78 ng/µl untuk gelatin babi; 3.988 ng/µl untuk simulasi cangkang kapsul sapi; dan 4.224 ng/µl untuk simulasi cangkang kapsul babi. Sedangkan kadar dari setiap isolat DNA sampel adalah 2.693 ng/µl untuk sampel A; 4.372 ng/µl untuk sampel B; 4.342 ng/µl untuk sampel C; 2.617 ng/µl untuk sampel D; dan 2.435 ng/µl untuk sampel E. Kadar simulasi cangkang kapsul dan kadar sampel berkisar antara 2.0-4.5 ng/µl atau lebih kecil jika dibandingkan dengan kadar gelatin dan daging. Hal ini disebabkan karena pada simulasi cangkang kapsul dan sampel, gelatin yang digunakan sebagai bahan baku telah mengalami berbagai proses yang dapat menyebabkan degradasi DNA yang ada, seperti pemanasan pada suhu tinggi (Demirhan et. al, 2012). Selain itu jika dibandingkan dengan DNA pada daging yang belum mengalami proses pengolahan, kadar DNA pada gelatin akan berjumlah lebih sedikit. Hal ini disebabkan karena gelatin telah mengalami proses lebih lanjut dari bahan asalnya (kolagen) yang dapat menyebabkan degradasi DNA (Puspitaningrum, 2014). Namun dengan jumlah kadar tersebut, semua isolat DNA tetap dapat dilanjutkan untuk proses amplifikasi menggunakan RT-PCR. Hal ini disebabkan karena RT-PCR cukup sensitif dan dapat mendeteksi sampai dengan kadar 1 pg/ml (Cai et. al., 2011).

4.5. Amplifikasi Menggunakan Real-Time PCR Isolat DNA yang didapat kemudian diamplifikasi menggunakan RT-PCR. Proses amplifikasi DNA ini membutuhkan beberapa komponen, yaitu probe dan sepasang primer; isolat DNA sebagai DNA template yang akan diamplifikasi; enzim Taq Polymerase, buffer, MgCl2 dan dNTP (yang terkandung dalam LC 480 Probe Master). Primer yang digunakan diidentifikasi secara in silico dengan bantuan website BLAST NCBI. Berdasarkan hasil BLAST, primer sapi yang digunakan spesifik hanya untuk sapi (Bos taurus) (Lampiran 3). Sedangkan untuk primer babi, terdapat beberapa spesies yang memiliki urutan pasang basa yang mirip, yaitu babi (Sus scrofa), nyamuk (Phlebotomus perniciosus), dan landak afrika (Atherurus


45

africanus) (Lampiran 4). Namun jika dilihat dari spesies dan lokasi adanya spesies tersebut, yang mungkin diambil bagian tubuhnya dan dijadikan sumber gelatin hanya babi (Sus scrofa). Sehingga, primer tersebut dapat digunakan untuk mendeteksi kandungan babi pada sampel. Proses amplifikasi DNA dalam penelitian ini dilakukan dengan metode Hydrolysis Probe. Prinsip kerja metode ini adalah berdasarkan flouresen yang dihasilkan oleh reporter (FAM) yang sebelumnya diredam oleh quencher (BHQ1). Metode Hydrolysis Probe ini dilakukan dalam 3 tahap, yaitu PreIncubation yang berguna untuk mengaktivasi enzim polimerase yang terkandung dalam LC 480 Probe Master, Amplifikasi dari DNA target yang terdiri atas 3 proses (denaturation, annealing, extention), dan Cooling untuk mengembalikan kondisi alat seperti semula. Masing-masing tahapan membutuhkan suhu dan waktu yang berbeda-beda sesuai kondisi optimalnya. Sebelum melakukan amplifikasi pada RT-PCR, harus disiapkan terlebih dahulu PCR mix yang terdiri atas primer forward, primer reverse, probe, dan LC 480 Probe Master sebanyak 15 µl untuk setiap isolat DNA yang ingin diamplifikasi (perhitungan pembuatan PCR mix tertera pada Lampiran 5).

Gambar 4.4. Hasil Amplifikasi Isolat DNA sampel menggunakan Primer Sapi. Keterangan: db = daging babi, gb = gelatin babi, sb = simulasi cangkang kapsul babi, ds=daging sapi, gs = gelatin sapi, dan ss = simulasi cangkang kapsul sapi


46

Amplifikasi pada isolat DNA sampel menggunakan primer sapi dilakukan sebanyak 65 siklus. Jumlah siklus yang digunakan cukup banyak, karena kadar isolat DNA sampel kecil. Hal ini sesuai dengan pernyataan bahwa semakin sedikit jumlah DNA yang akan diamplifikasi, maka siklus yang dibutuhkan akan semakin banyak untuk mencapai Cp (Rochec, 2008). Berdasarkan gambar 4.4, terlihat bahwa daging sapi, gelatin sapi, dan simulasi cangkang kapsul sapi dapat teramplifikasi dengan nilai Cp untuk daging sapi 13.87; gelatin sapi 29.64; dan simulasi cangkang kapsul sapi 30.97. Nilai Cp daging lebih kecil daripada gelatin dan simulasi cangkang kapsul sapi disebabkan karena kadar daging yang lebih besar, yaitu 75.88. Hal ini sesuai dengan penyataan bahwa semakin besar kadar DNA, maka semakin kecil nilai Cp yang didapat. Begitu juga sebaliknya, semakin kecil kadar DNA, maka semakin besar nilai Cp yang didapat (Rochec, 2008). Sedangkan untuk cangkang kapsul sampel, dapat terlihat bahwa sampel E mengalami amplifikasi dengan nilai Cp 57.82. Artinya, cangkang kapsul pada sampel E mengandung gelatin sapi. Nilai Cp yang sangat tinggi pada sampel E dapat disebabkan karena gelatin yang digunakan untuk formulasi cangkang kapsul tersebut sedikit. Namun pada proses amplifikasi menggunakan primer sapi tersebut, terjadi kenaikan positif untuk daging babi dengan nilai Cp 33.01. Hal ini dapat disebabkan karena proses pengerjaan yang kurang baik, sehingga terjadi kontaminasi. Selanjutnya, amplifikasi pada isolat DNA sampel dilakukan menggunakan primer babi sebanyak 65 siklus. Sama halnya dengan amplifikasi dengan primer sapi, jumlah siklus yang digunakan cukup banyak karena kadar isolat DNA sampel kecil.


47

Gambar 4.5. Hasil Amplifikasi Isolat DNA sampel menggunakan Primer Babi. Keterangan: db = daging babi, gb = gelatin babi, sb = simulasi cangkang kapsul babi, ds = daging sapi, gs = gelatin sapi, dan ss = simulasi cangkang kapsul sapi

Berdasarkan gambar 4.5, terlihat bahwa daging babi, gelatin babi, dan simulasi cangkang kapsul babi dapat teramplifikasi dengan nilai Cp untuk daging babi 13.57, gelatin babi 40.08, dan simulasi cangkang kapsul babi 43.51. Nilai Cp daging lebih kecil daripada simulasi cangkang kapsul disebabkan karena nilai kadar daging yang lebih besar, yaitu 59.74. Hal ini sesuai dengan penyataan bahwa semakin besar kadar DNA, maka semakin kecil nilai Cp yang didapat. Begitu juga sebaliknya, semakin kecil kadar DNA, maka semakin besar nilai Cp yang didapat (Rochec, 2008). Untuk cangkang kapsul sampel, terlihat bahwa sampel B, sampel C, dan sampel E dapat teramplifikasi dengan nilai Cp untuk sampel B 53.79, sampel C 31.72, dan sampel E 50.83. Artinya, cangkang kapsul pada sampel C, sampel E, dan sampel B mengandung gelatin babi. Sampel A dan sampel D tidak mengalami amplifikasi menggunakan primer sapi maupun primer babi. Artinya cangkang kapsul pada kedua sampel tersebut tidak mengandung gelatin sapi ataupun gelatin babi, melainkan


48

berasal dari sumber gelatin lainnya seperti ikan atau unggas (Gelatin Manufacturers Institute of America, 2012). Sedangkan untuk sampel E, ia mengalami amplifikasi menggunakan primer sapi dan primer babi. Maka dapat diartikan bahwa cangkang kapsul pada sampel E tersebut berasal dari campuran gelatin sapi dan gelatin babi dengan komposisi gelatin babi lebih banyak daripada gelatin sapi (dilihat dari nilai Cp). Hal ini dapat dilakukan oleh suatu produsen dengan tujuan untuk mendapatkan kualitas cangkang yang bagus dengan harga yang murah. Amplifikasi menggunakan primer babi menghasilkan kurva yang kurang baik (tidak sigmoid). Hal ini dapat disebabkan karena probe babi yang digunakan sudah lama, sehingga kondisinya kurang bagus. Selain itu, amplifikasi DNA sampel juga menghasilkan kurva yang kurang baik. Hal ini dapat disebabkan karena DNA pada sampel tersebut sudah terfragmentasi akibat proses pembuatan cangkang kapsul. Jika fragmentasi DNA terjadi, jumlah produk amplifikasi dan efisiensi amplifikasi akan menurun. Dengan kondisi DNA yang terfragmentasi, DNA templat yang akan dituju oleh primer menjadi terbatas. Akibatnya proses amplifikasi akan semakin sulit (Edward et.al., 1996).


BAB V KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan 1. DNA pada cangkang kapsul keras vitamin A dapat terisolasi dengan baik menggunakan metode kit komersial. Kisaran kemurnian isolat DNA dan kadar isolat DNA yang didapat masing-masing adalah 1.589 – 1.854 dan 2.435 – 4.372 ng/µl. 2. Kurva amplifikasi menggunakan primer sapi menunjukkan hasil positif untuk daging sapi, gelatin sapi, simulasi cangkang kapsul sapi, dan sampel E dengan nilai Cp secara berturut-turut adalah 13.87; 29.64; 30.97; dan 57.82. Namun terjadi hasil positif pada daging babi yang diduga disebabkan oleh kontaminasi. Kurva amplifikasi menggunakan primer babi menunjukkan hasil positif untuk daging babi, gelatin babi, simulasi cangkang kapsul babi, sampel B, sampel C, dan sampel E dengan nilai Cp secara berturut-turut adalah 13.57; 40.08; 43.51; 53.79; 31.72; dan 50.83. 3. Cangkang kapsul pada sampel B dan sampel C mengandung gelatin babi, serta cangkang kapsul pada sampel E mengandung gelatin sapi dan gelatin babi. Sedangkan untuk cangkang kapsul pada sampel A dan sampel D belum teridentifikasi.

5.2. Saran 1. Perlu dilakukan proses optimasi isolasi cangkang kapsul keras lebih lanjut untuk mendapatkan kemurnian yang ideal dan kadar yang lebih banyak. 2. Perlu dilakukan pencarian primer babi yang lebih spesifik yang benarbenar hanya dapat mendeteksi spesies babi. 3. Perlu dilakukan proses optimasi amplifikasi menggunakan RT-PCR untuk isolat DNA dari cangkang kapsul keras lebih lanjut agar mendapatkan kurva amplifikasi yang lebih baik.


DAFTAR PUSTAKA

Abraham J. Domb, Joseph Kost, dan David M. Wiseman. 1997.Handbook of Biodegradable Polymers. Netherlands: Harwood Academic Publishers Al-Saidi, et. al... 2012. Fourier Transform Infrared (FTIR) Spectroscopic Study of Extracted Gelatin from Shaari (Lithrinus Microdon) Skin: Effects of Extraction Conditions. International Food Research Journal 19 (3): 1167-1173 Alberts et.al.. 1989. Molecular Biology of the Cell, Volume 1. New York: Garland Publishing Inc. Al-Tabakha, Moawia M..2010. HPMC Capsules: Current Status and Future Prospects.UAE : J Pharm Pharmaceut Sci 13(3) : 428 - 442 Agustin, Agnes Triasih.2013.Gelatin Ikan: Sumber, Komposisi Kimia dan Potensi Pemanfaatannya.Manado: Jurnal Media Teknologi Hasil Perikanan Vol 1 (2): 44-46 Aisyah et.al.. 2014. Poultry as an Alternative Source of Gelatin. Malaysia: Health and The Environment Journal Vol 5 (1) : 27-49 Anonim.1995.Farmakope Indonesia Edisi 4. Jakarta : Departemen Kesehatan RI Anonim.2013.US Pharmacopeial Convention – Revision Edition. USA : US Pharmacopeial Convention Inc. Ansel, Howard C..2008. Pengantar Bentuk Sediaan Farmasi Edisi 4. Jakarta: UI Press Arya et.al..2005. Basic Principles of Real-Time Quantitative PCR.London: Food Drug Ltd. Vol 5(2) : 209–219 Atto.2008.ATTO Printgraph AE-6933 Operation Manual. Tokyo : ATTO Corp. Azira et.al..2012. Differentiation of Bovine and Porcine Gelatins in Processed Products Via Sodium Dodecyl Sulphate-Polyacrylamide Gel Electrophoresis (SDS-PAGE) and Principal Component Analysis (PCA) Techniques. International Food Research Journal 19 (3): 1175-1180 Bandelt, Hans-Jürgen, Martin Richards, dan Vincent Macaulay.2006. Human Mitochondrial DNA and The Evolution of Homo sapiens.Berlin : Springer Bhatt, Bhawna. 2007. Pharmaceutical Technology : Capsules.India: Delhi Institute of Pharmaceutical Science and Research


51

Biodropa. 2012. BioDrop™ μLITE dsDNA Application Note dari dari http://www.biodrop.co.uk yang diakses pada 21 Januari 2015 pada pukul 20.36 BioDropb. 2012. Quick Start Guide dari http://www.biodrop.co.uk yang diakses pada 28 Januari 2015 pada pukul 18.12 Biorad. 2012. Sub-Cell® GT Agarose Gel Electrophoresis Systems : Instruction Manual.Bio-Rad Laboratories, Inc. Branquinho et. al..2012. Use of Real-Time PCR to Evaluate Two DNA Extraction Methods from Food.Brazil: Ciênc. Tecnol. Aliment., Campinas, 32(1): 112118 Cai, H. et.al.. 2012. Realtime PCR Assays for Detection and Quantitation of Porcine and Bovine DNA in Gelatin Mixtures and Gelatin Capsules. USA : Journal of Food Composition and Analysis 25 : 83–87 Campbell, Neil A.. 2008. Biologi. Jakarta : Erlangga Das, Debajyoti.2010.Biochemistry.Kalkota: Bimal Kumar of Academic Publishers Demirhan Y, Ulca P, dan Senyuva HZ. 2012. Detection of Porcine DNA in Gelatine and Gelatine-Containing Processed Food Products-Halal/Kosher Authentication. NCBI Vol. 90 (3) : 686 – 689 Edward, M.G., Ann Bickel, dan Paul Weihs.1996.Effect of Highly Fragmented DNA on PCR. USA : Oxford University Press Nucleid Acids Research Vol. 24 (24) Erwanto et.al..2012. Pig Species Identification in Meatballs Using Polymerase Chain Reaction – Restriction Fragment Length Polymorphism for Halal Aunthentication. Yogyakarta : International Food Research Journal 19 (3): 901-906 Gelatin Manufacturers Institute of America. 2012. Gelatin Handbook. Massachusetts: Atlantic Gelatin / Kraft Foods Global Inc. Greene, James J.dan Venigalla B. Rao. 1998. Recombinant DNA Principles and Methodologies. New York: Marcel Dekker Inc. Handoyo, Darmo dan Ari Rudiretna.2000.Prinsip Umum dan Pelaksanaan Polymerase Chain Reaction (PCR).Surabaya: Unitas Vol 9 (1) : 17 – 29 Hartati, Yeni W., Maksum, Iman P..2010.Amplifikasi 0,4 kb Daerah D-Loop DNA Mitokondria dari Sel Epitel Rongga Mulut untuk Keperluan Forensik. Bandung : FMIPA-Universitas Padjajaran


52

Hornstra, Gerard, et.al..2005. The Impact of Maternal Nutrition on the Offspring. Switzerland: Karger Izzah, Afifah Nurul.2014.Perbandingan antara Metode SYBR Green dan Metode Hydrolisis Probe dalam Analisis DNA Gelatin Sapi dan DNA Babi dengan Menggunakan Real-Time PCR. Skripsi. Program Studi Farmasi. Fakultas Kedokteran dan Kedokteran dan Ilmu Kesehatan. UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. Karnadi, Annisa.2014.Bulan Vitamin A. http://duniasehat.net/. Diakses pada tanggal 28 April 2015 Kennedy, Suzanne dan Nick Oswald.2011. PCR Troubleshooting and Optimization: The Essential Guide.UK: Caister Academic Press Kulkarni, Shashikant dan John Pfeifer. 2015.Clinical Genomics: A Guide to Clinical Next Generation Sequencing. USA: Academic Press Kusumadewi, Arlene, Soekry Erfan Kusuma, Ahmad Yudianto.2012. Analisis DNA Jaringan Lunak Manusia yang Terpapar Formalin dalam Interval Waktu 1 Bulan Selama 6 Bulan pada Lokus D13S317 dengan Metode STRPCR.Suravaya: JBP Vol. 14 (2) : 115-121 Melia, Colin David.1983. Some Physical Properties of Gelatin Films in Relation to Hard Capsule Production.Inggris: University of Nottingham Muladno. 2010.Teknologi Rekayasa Genetika Edisi ke-2. Bogor : IPB Press Natalia, D.. 2011. Pembuatan Cangkang Kapsul Alginat yang Mengandung Pewarna Ponceau 4R dan Pengujian Sifat-Sifat Fisiknya.Medan : Universitas Sumatera Utara Otten, Jennifer J., et.al..2006. Dietary Reference Intakes: The Essential Guide to Nutrient Requirements. USA: The National Academies Press Pranawaty, Rina Novita, Ibnu Dwi Buwono, dan Evi Liviawaty. 2012. Aplikasi Polymerase Chain Reaction (PCR) konvensional dan Real-Time PCR untuk Deteksi White Spot Syndrome Virus pada Kepiting.Jurnal Perikanan dan Kelautan Vol. 3 (4) : 61 – 74 Puspitaningrum, Yanti.2014.Deteksi DNA Gelatin Sapi dan Gelatin Babi Pada Simulasi Gummy Vitamin C Menggunakan Real-Time Polymerase Chain Reaction untuk Analisis Kehalalan. Skripsi. Program Studi Farmasi. Fakultas Kedokteran dan Kedokteran dan Ilmu Kesehatan. UIN Syarif Hidayatullah Jakarta. Rabadiya, Bhavisha. 2013. A Review: Capsule Shell Material from Gelatin to Non Animal Origin.IJPRBS Vol. 2(3) : 42 – 71


53

Rahman et. al... 2013. Polymerase Chain Reaction (PCR): A Short Review. Dhaka: AKMMC J Vol. 4(1) : 30-36 Republika.2014. Hari Ini, Islam Jadi Agama Terbesar www.republika.co.id. Diakses pada tanggal 13 Januari 2014.

di

Dunia.

Riaz, Mian N.dan Muhammad M. Chaudry. 2004.Halal Food Production. USA: CRC Press Rizal, Subahar.2014. Pengaruh Pemberian Vitamin A Dosis Rendah terhadap Respon Imun Sitokin Proinflamasi dan Antiinflamasi pada Ibu Hamil Terinfeksi Ascaris Lumbricoides. http://fk.ui.ac.id/. Diakses pada tanggal 28 April 2015 Rochea.2008. High Pure PCR Template Preparation Kit : Rapidly Purify Genomic DNA for Diverse Applications. Jerman : Roche Diagnostics GmbH Rocheb.2005.LightCycler® 480 Probes Master. Jerman : Roche Diagnostics GmbH Rochec.2008. LightCycler® 480 Instrument Operator’s Manual : Software Version 1.5. Jerman : Roche Diagnostics GmbH Roched.2007. Nucleic Acid Isolation and Purification 3rd Edition. Jerman : Roche Diagnostics GmbH Rowe, Raymond C., et. al.. 2009. Handbook of Pharmaceutical Excipients 6th Edition. London : Pharmaceutical Press Sambrook et. al.. 1989. Molecular Cloning, A Laboratory Manual Edisi 3. New York: Cold Spring Harbour Lab. Press Smith, Cindy J. dan A. Mark Osborn.2008. Advantages and Limitations of Quantitative PCR (Q-PCR)-Based Approaches in Microbial Ecology. Federation of European Microbiological Societies : Blackwell Publishing Ltd. 67 : 6 – 20 Shyni et.al.. 2013. Isolation and Characterization of Gelatin from The Skins of Skipjack Tuna (Katsuwonus pelamis), Dog Shark (Scoliodon sorrakowah), and Rohu (Labeo rohita). India: Elsevier Food Hydrocolloids 39 : 68-76 Syamsuni. 2006.Farmasetika Dasar dan Hitungan Farmasi.Jakarta: EGC Tanabe, et.al.2007. A Real-Time Quantitative PCR Detection Method for Pork, Chicken, Beef, Mutton, and Horseflesh in Foods. Jepang: Biosci. Biotechnol. Biochem., 71 (12) : 3131–3135.


54

Tempo.2014.Tiap 1 Jam 1 Ibu Meninggal di Indonesia. http://www.tempo.co/. Diakses pada tanggal 28 April 2015 Triyati, Etty.1985. Spektrofotometer Ultra-Violet dan Sinar Tampak Serta Aplikasinya dalam Oseanologi.Jakarta: Pusat Penelitian Ekologi Laut, Lembaga Oseanologi Nasional – LIPI Vol. 10 (1) : 39-47 Vaerman, J.L., P. Saussoy, I. Ingargiola. 2004. Evaluation of Real-Time PCR Data. Belgium : Cliniques Saint Luc, Bruxelles Wan, Weijie, John T.W. Yeow, dan Michele I. Van Dyke.2009.Effect of Silver and Titanium Dioxide Nanoparticles on PCR Efficiency.Canada : 9th IEEE Conference on Nanotechnology : 458 - 461 WHO.2001.Human Vitamin and Mineral Requirements.Thailand: Food and Nutrition Division Widyaninggar, Amalia, et.al..2012. Differentiation Between Porcine and Bovine Gelatin in Commercial Capsule Shells Based on Amino Acid Profiles and Principal Component Analysis.Yogyakarta: Indonesian J. Pharm. Vol. 23 (2) : 96 – 101 Zhang, et.al..2009. Mass Spectrometric Detection of Marker Peptides in Tryptic Digests of Gelatin: A New Method to Differentiate Between Bovine and Porcine Gelatin.Elsevier: Food Hydrocolloids 23 : 2001–2007 Zhou, P. dan Regenstein, J. M. 2005. Effects of Alkaline and Acid Pretreatments on Alaska Pollock Skin Gelatin Extraction. Journal of Food Science, 70(6): C392–C396


Lampiran 1. Alur Penelitian

Membuat Simulasi Cangkang Kapsul Keras

Mengumpulkan Kapsul Keras sebagai Sampel

Evaluasi Simulasi Cangkang Kapsul Keras

Identifikasi Gelatin pada Cangkang Kapsul

Preparasi Isolasi DNA dari Simulasi Cangkang Kapsul Keras

Preparasi Isolasi DNA dari Cangkang Kapsul Keras Sampel

Preparasi Isolasi DNA dari Daging Babi, Daging Sapi, Gelatin Babi, dan Gelatin Sapi

Isolasi DNA

Pemeriksaan Kadar dan Kemurnian Isolat DNA Menggunakan Spektrofotometer UV

Memenuhi Persyaratan

Ya

Amplifikasi DNA Menggunakan RealTime PCR

spesifik

Pemeriksaan Spesifisitas Primer dan Probe

Tidak

Analisis Data


56

Lampiran 2. Spesifikasi Kit Isolasi DNA (Rochea, 2012) Tabel 6. Spesifikasi High Pure PCR Template Preparation Kit No. 1

Nama Tissue Lysis Buffer

Kandungan 4M urea, 200 mM Tris, 20 mM NaCl, 200nM EDTA pH 7.4

Binding Buffer 2

6M guanidine-HCl, 10 mM urea, 10 mM Tris-HCl, 20% Triton X-100 (v/v). pH 4.4

3 4

Proteinase K

Proteinase K (rekombinan, PCR grade)

Inhibitor Removal

5M guanidine-HCl, 20 mM Tris-HCl,

Buffer

36% etanol absolut. pH 6.6 20 mM NaCl, 2 mM Tris-HCl, 80%

5

Washing Buffer

6

Elution Buffer

10 mM Tris-HCl, pH 8.5

High Pure Filter Tube

Berbahan polipropilen dengan filter

7 8

etanol absolute (v/v). pH 7.5

yang terbuat dari kapas fiber glass. Collection Tube

Berbahan polipropilen.


57

Lampiran 3. Uji Spesifikasi Primer Sapi Menggunakan BLAST NCBI

CCCGATTCTTCGCTTTCCATTTTATCCTTCCATTTATCATCATAGCA ATTGCCATAGTCCACCTACTATTCCTCCACGAAACAGGCTCCAACA ACCCAACAGGAATTTCCTCAGACGTAG


58

Lampiran 4. Uji Spesifikasi Primer Babi Menggunakan BLAST NCBI a. Sus scrofa

ATCTTGCAAATCCTAACAGGCCTGTTCTTAGCAATACATTACACATCA GACACAACAACAGCTTTCTCATCAGTTACACACATTTGTCGAGACGTA AATTACGGATGAGTTATTCGCTATCTACATGCAAACG

b. Phlebotomus perniciosus

TCTTGCAAATCCTAACAGGCCTGTTCTTAGCAATACATTACACATCAG ACACAACAACAGCTTTCTCATCAGTTACACACATTTGTCGAGACGTAA ATTACGGATGAGTTATTCGCTATCTACATGCAAACG

c. Atherurus africanus

ATCTTGCAAATCCTAACAGGCCTGTTCTTAGCAATACATTACACATCA GACACAACAACAGCTTTCTCATCAGTTACACACATTTGTCGAGACGTA AATTACGGATGAGTTATTCGCTATCTACATGCAAACG


59

Lampiran 5. Campuran Reaksi PCR Mix untuk Proses Amplifikasi DNA Tabel 7. Campuran Pereaksi PCR Mix untuk Setiap Isolat DNA Konsentrasi

Konsentrasi

Volume yang

dalam PCR Mix

Larutan Induk

digunakan

(µM)

(µM)

(µl)

-

-

1.4

Primer Forward

0.8

10

1.6

Primer Reverse

0.8

10

1.6

Probe

0.2

10

0.4

-

-

10.0

-

-

5.0

ddH2O

LC 480 Probe Master DNA Template

Total Volume PCR Mix

20


60

Lampiran 6. Perhitungan Pembuatan Larutan Primer dan Probe a. Pembuatan larutan primer dengan konsentrasi 10 µM dari larutan induk 100µM

Maka, sebanyak 3 µl dari larutan induk 100 µM pada masing-masing primer diambil dan di add 27 µl ddH2O (PCR water grade) b. Pembuatan larutan primer dengan konsentrasi 0.8 µM dari larutan primer 10µM untuk setiap isolat DNA

Maka, sebanyak 1.6 µl dari masing-masing larutan primer 10 µM diambil dan ditambahkan ke PCR mix. c. Pembuatan larutan probe dengan konsentrasi 10 µM dari larutan induk 100µM

Maka, sebanyak 1 µl dari larutan induk probe 100 µM diambil dan di add 9 µl ddH2O (PCR water grade) d. Pembuatan larutan probe dengan konsetrasi 0.2 µM dari larutan probe 10 µM untuk setiap isolat DNA

Maka, sebanyak 0.4 µl dari larutan probe 10 µM diambil dan ditambahkan ke PCR mix.


61

Lampiran 7. Perhitungan Tm (Temperature Melting) Primer (

)

(

)

a. Primer Sapi -

Primer forward

= 2oC (2+8) + 4oC (2+8) = 60oC

-

Primer reverse

= 2oC (5+8) + 4oC (6+5) = 70oC

b. Primer Babi -

Primer forward

= 2oC (7+6) + 4oC (4+7) = 70oC

-

Primer reverse

= 2oC (8+7) + 4oC (6+3) = 66oC


62

Lampiran 8. Gambar Peralatan yang Digunakan dalam Penelitian

Satu Set Alat Real-Time PCR

Satu Set High Pure PCR Template Preparation Kit

Multiplate Well dan Sealing Foil

Moisture Balance Analyzer

Spektrofotometri UV (Biodrop)

LC 480 Probe Master


UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

Recommend Documents