ADLN PERPUSTAKAAN UNIVERSITAS AIRLANGGA SKRIPSI

ADLN – PERPUSTAKAAN UNIVERSITAS AIRLANGGA

SKRIPSI

EFEK PERENDAMAN EKSTRAK Spirulina platensis SEBAGAI IMUNOSTIMULAN TERHADAP JUMLAH LEUKOSIT DAN HITUNG JENIS LEUKOSIT IKAN GURAME (Osphronemus goramy) YANG DIINFEKSI BAKTERI Aeromonas hydrophila

Oleh : LITTA LASYA EMANINTA SITEPU NIM 061211133106

FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN UNIVERSITAS AIRLANGGA SURABAYA 2016

i SKRIPSI

EFEK PERENDAMAN EKSTRAK…

LITTA LASYA E. SITEPU


HALAMAN PENGESAHAN .

EFEK PERENDAMAN EKSTRAK Spirulina platensis SEBAGAI IMUNOSTIMULAN TERHADAP JUMLAH LEUKOSIT DAN HITUNG JENIS LEUKOSIT IKAN GURAME (Osphronemus goramy) YANG DIINFEKSI BAKTERI Aeromonas hydrophila

Skripsi Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran Hewan pada Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga

Oleh LITTA LASYA EMANINTA SITEPU NIM 061211133106 Menyetujui Komisi Pembimbing,

(Arimbi, drh., M. Kes) Pembimbing Utama

(Dr. Budi Utomo, drh., M.Si.) Pembimbing Serta ii

SKRIPSI




PERNYATAAN Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi yang berjudul :

EFEK PERENDAMAN EKSTRAK Spirulina platensis SEBAGAI IMUNOSTIMULAN TERHADAP JUMLAH LEUKOSIT DAN HITUNG JENIS LEUKOSIT IKAN GURAME (Osphronemus goramy) YANG DIINFEKSI BAKTERI Aeromonas hydrophila Tidak terdapat karya yang pernah diajukan untuk memperoleh gelar kesarjanaan di suatu perguruan tinggi dan sepanjang pengetahuan saya juga tidak terdapat karya atau pendapat yang pernah ditulis atau diterbitkan oleh orang lain, kecuali yang secara tertulis diacu dalam naskah ini dan disebutkan dalam daftar pustaka.

Surabaya, 6 Juni 2016

LITTA LASYA EMANINTA SITEPU NIM 061211133106

iii SKRIPSI




Telah dinilai pada Seminar Hasil Penelitian Tanggal : 20 Juli 2016

KOMOSI PENILAI SEMINAR HASIL PENELITIAN Ketua

: Setya Budhy, drh., M.Si

Sekretaris

: Emy Koestanti Sabdoningrum, drh., M.Kes.

Anggota

: Suryanie Sarudji, drh., M.Kes.

Pembimbing Utama : Arimbi, drh., M.Kes. Pembimbing Serta

: Dr. Budi Utomo, drh., M.Si

iv SKRIPSI




Telah diuji pada Tanggal : 02 Agustus 2016

KOMISI PENGUJI SKRIPSI Ketua

: Setya Budhy, drh., M.Si

Anggota

: Emy Koestanti Sabdoningrum, drh., M.Kes Suryanie Sarudji, drh., M.Kes Arimbi, drh., M.Kes Dr. Budi Utomo, drh., M.Si

Surabaya, Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga Dekan,

Prof. Dr. Pudji Srianto, drh., M.Kes NIP. 195601051986011001

v SKRIPSI




DIPPING EFFECT OF Spirulina platensis EXTRACT AS IMUNOSTIMULANT TO THE AMOUNT OF LEUCOCYTES AND TYPE COUNT OF LEUCOCYTE GURAME FISH (Osphronemus goramy) INFECTED WITH Aeromonas hydrophila LITTA LASYA EMANINTA SITEPU ABSTRACT

The Purpose of this research was to find out the potency of the extract of Spirulina platensis as immunostimulant on the amount of leucocyte and numbered kind of leucocyte of gurame fish that infected by Aeromonas hydrophila bacteria. Twenty gurame fish wis weight of 20 grams and length of 9 – 10 cm randomly divided into 5 groups. P0(-) as negative control was not submerged by the extract of Spirulina platensis and was out infected of Aeromonas hydrophila bacteria. P0(+) as positive control was not submerged in extract of Spirulina platensis but infected by aeromonas hydrophila 106 cell/ml. The first submersion was done on the first day for three hours, and the second submersion was done on 7th day for three hours, and then after 24 hours infected by Aeromonas hydrophila 106cell/ml. The blood of fish were taken on 4th day after infected, to examine the blood using calculation room and blood smear. Data would be analyzed by using analysis of variant (ANOVA). If there were any significant different between the treatment, analysis continued by using computer software SPSS 18 for windows. The result of the research showed that the extract of Spiruliana platensis could increase the amount of leucocyte, neutrophil, and monocyte of gurame fish. Keywords: Spirulian platensis, Aeromonas hydrophila, amount and leucocyte appearance, fish blood.

vi SKRIPSI




UCAPAN TERIMA KASIH Puji syukur Kepada Tuhan Yesus Kristus karna Anugrahnya saya dapat melaksanakan

penelitian

PERENDAMAN

(Osphronemus

menyelesaikan

EKSTRAK

IMUNOSTIMULAN GAMBARAN

dan

Spirulina

TERHADAP

JUMLAH gouramy)

EFEK

SEBAGAI

LEUKOSIT

PADA

DIINFEKSI

mengenai

platensis

JUMLAH

LEUKOSIT YANG

skripsi

DAN

IKAN

GURAME

BAKTERI

Aeromonas

hydrophila. Penulis juga menyampaikan terima kasih kepada semua pihak yang telah membantu secara langsung maupun tidak langsung dalam penyusunan skripsi ini, antara lain: Kepada Dekan Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga, Prof. Dr. Pudji Srianto, drh., M.Kes. atas kesempatan mengikuti pendidikan di Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Ibu Arimbi, drh., M.Kes selaku dosen pembimbing utama dan Dr. Budi Utomo, drh., M. Si selaku dosen pembimbing serta atas segala arahan, informasi, bimbingan, dan kesabarannya sampai dengan selesainya penelitian ini. Setya

Budhi, drh., M.Si

selaku ketua penilai,

Emy Koestanti

Sabdoningrum, drh., M.Kes selaku sekretaris penilai dan Suryanie Sarudji, drh., M.Kes selaku anggota penilai atas segala saran dan arahan yang telah diberikan kepada penulis dalam menyelesaikan skripsi ini. Prof. Lazuardi selaku dosen wali yang telah memberikan bimbingan selama menempuh kegiatan perkuliahan dan membantu memberikan masukan

vii SKRIPSI




yang bermanfaat bagi penulis selama menempuh S1 di Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Seluruh Bapak Ibu Dosen atau Staf Pengajar yang telah banyak memberi ilmu dan pengalaman selama menempuh kegiatan perkuliahan di Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Seluruh Bapak Ibu Staf Kependidikan, Bagian Kemahasiswaan, Bagian Akademik, Bagian Keuangan, Bagian Tata Usaha, dan Bagian Sistem Informasi yang telah banyak membantu selama penulis menempuh pendidikan di Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga. Kepada Kedua orangtua: Ita Sry Ulina Kembaren, Alm. Jhonson Sitepu, Nenek Karo Sinuhaji, kedua adik : Jeremy dan Jericho, dan Bg Hiskia atas limpahan doa dan pengorbanan yang tak henti-hentinya, kasih sayang, ketulusan cinta, kepercayaan, semangat serta kebahagiaan selama hidup penulis. Staf laboratorium Patologi Klinik Bapak Endis dan Mas Rizky serta Ibu Siti dan Bapak Jum dari Laboratorium Patologi Anatomi di Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga dan Bapak Yusuf yang selalu membantu saya dalam pengambilan darah Ikan gurame. Teman-teman seperjuangan penelitian saya, Cika, Husna, Iga, Husna dan Lita yang senantiasa bekerja sama, menemani dalam suka maupun duka selama penelitian berlangsung sehingga menjadi lebih dekat satu sama lain. Rista, Sofia, Dina, Citra, teman- teman permata yang menyemangati dikala saya selalu tidak semangat dan membuat hari-hari kuliah menjadi lebih indah dan teman-teman angkatan 2012 “Bersatu kita Bisa Semangat Pantang Menyerah Phoenix”, kepada

viii SKRIPSI




angkatan 2010, 2011, 2013, 2014, dan 2015 yang tidak bisa disebutkan satu persatu yang telah memberikan dukungan dan motivasinya. Penulis menyadari bahwa masih terdapat kesalahan dan kekurangan pada skripsi ini, untuk itu mohon kritik dan saran yang membangun demi perbaikan di masa mendatang. Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi penulis khususnya semua pihak yang membutuhkan.

Surabaya, 06 Juni 2016

Penulis

ix SKRIPSI




DAFTAR ISI HALAMAN JUDUL .................................................................................................. i HALAMAN PENGESAHAN ................................................................................... ii HALAMAN PERNYATAAN.................................................................................. iii HALAMAN IDENTITAS ........................................................................................ iv ABSTRACT ............................................................................................................. vi UCAPAN TERIMA KASIH ................................................................................... vii DAFTAR ISI ............................................................................................................. x DAFTAR TABEL ................................................................................................... xii DAFTAR GAMBAR.............................................................................................. xiii DAFTAR LAMPIRAN .......................................................................................... xiv SINGKATAN DAN ARTI LAMBANG................................................................. xv BAB 1 PENDAHULUAN ......................................................................................... 1 1.1 Latar Belakang ........................................................................................ 1 1.2Rumusan Masalah .................................................................................... 3 1.3 Landasan Teori ........................................................................................ 4 1.4 Tujuan Penelitian .................................................................................... 5 1.5 Manfaat Hasil Penelitian ......................................................................... 5 1.6 Hipotesis ................................................................................................. 6 BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ................................................................................ 7 2.1 Ikan Gurame............................................................................................ 7 2.1.1 Klasifikasi .................................................................................. 7 2.1.2 Habitat Ikan gurame................................................................... 8 2.2 Spirulina platensis ................................................................................... 8 2.2.1 Klasifikasi .................................................................................. 8 2.2.2 Kandungan Nutrisi Spirulina platensis ...................................... 9 2.2.3 Sistem Imun Ikan ..................................................................... 10 2.3 Aeromonas hydrophila .......................................................................... 11 2.3.1 Karaterisktik Aeromonas hydrophila ....................................... 13 2.3.2 Patogenesis dan Gejala Klinis ................................................. 14 2.4 Komponen Darah Ikan .......................................................................... 15 2.4.1 Leukosit Ikan ........................................................................... 15 2.4.1.1 Granulosit..................................................................... 15 2.4.1.2 Agranulosit................................................................... 17 2.4.2 Tinjaun Nilai Normal Gambaran Darah Ikan .......................... 19 BAB 3 MATERI DAN METODE PENELITIAN .................................................. 20 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian ............................................................... 20 3.2 Waktu Penelitian ................................................................................... 20 3.3 Rancangan Penelitian ............................................................................ 20 3.4 Materi Penelitian ................................................................................... 20 3.4.1 Hewan Coba ............................................................................. 20 3.4.2 Bahan Penelitian ...................................................................... 21 3.4.3 Alat Penelitian.......................................................................... 21 3.5 Metode Penelitian ................................................................................. 21 x SKRIPSI




3.5.1 Penentuan Dosis Spirulina platensis ............................................ 22 3.5.2 Penentuan Jumlah Sampel ........................................................... 22 3.5.3 Perlakuan Penelitian ................................................................ 22 3.6 Pengambilan Darah untuk Pemeriksaan Jumlah Leukosit dan Hitung Jenis Sel Leukosit ................................................................................ 23 3.6.1 Punksi Pembuluh Darah Bagian Caudal ...................................... 23 3.6.2 Pemeriksaan Jumlah Leukosit dan Hitung Jenis Sel Leukosit ..... 24 3.6.2.1 Pemeriksaan Jumlah Sel Leukosit ............................... 24 3.6.2.2 Menghitung Jumlah Sel Leukosit ................................ 24 3.6.2.3 Pemeriksaan Hitung Jenis Sel Leukosit ....................... 25 3.7 Variabel Penelitian ................................................................................ 25 3.8 Rancangan Penelitian dan Analisis Data .............................................. 26 3.9 Diagram Alur Penelitian ....................................................................... 27 BAB 4 HASIL PENELITIAN ................................................................................. 28 4.1 Pengamatan Gejala Klinis ..................................................................... 28 4.2 Gambaran Jumlah Leukosit .................................................................. 28 4.3 Hitung Jenis Leukosit............................................................................ 31 BAB 5 PEMBAHASAN ......................................................................................... 33 5.1 Gambaran Pengamatan Gejala Klinis ................................................... 33 5.2 Gambaran Jumlah Leukosit .................................................................. 34 5.3 Gambaran Hitung Jenis Leukosit .......................................................... 35 5.3.1 Neutrofil ....................................................................................... 35 5.3.2 Eosinofil ....................................................................................... 36 5.3.3 Basofil .......................................................................................... 36 5.3.4 Limfosit ........................................................................................ 36 5.3.5 Monosit ........................................................................................ 37 BAB 6 KESIMPULAN DAN SARAN .................................................................. 39 6.1 Kesimpulan ........................................................................................... 39 6.2 Saran ..................................................................................................... 39 RINGKASAN.......................................................................................................... 40 DAFTAR PUSTAKA .............................................................................................. 42 LAMPIRAN ............................................................................................................ 48

xi SKRIPSI




DAFTAR TABEL

Tabel

Halaman

2.1 Nilai normal gambaran darah ikan air tawar secara umum 4.1 Rata-rata dan Simpangan Baku Jumlah Leukosit ...............................................28 4.2 Rata-rata dan Simpangan Baku Jenis Leukosit ...................................................30

xii SKRIPSI




DAFTAR GAMBAR

Gambar

Halaman

2.1 Ikan Gurame ......................................................................................................... 7 2.2 Spirulina platensis................................................................................................ 9 2.3 Aeromonas hydrophila .........................................................................................12 2.4 Ikan Gurame yang terserang bakteri Aeromonas hydrophila ..............................14 2.5 Sel Leukosit Silurus glanis L ...............................................................................17 3.1 Diagram Alir Penelitian .......................................................................................26 4.1 Data gambar Ikan Gurame terserang bakteri Aeromonas hydrophila ..................27 4.2 Hasil Pemeriksaan Jumlah Leukosit Ikan Gurame ..............................................28 4.3 Pemeriksaan jumlah leukosit ...............................................................................29 4.4 Hasil Pemeriksaan Jenis Leukosit Ikan Gurame ..................................................31 4.5 Pemeriksaan Darah Ikan Gurame.........................................................................31

xiii SKRIPSI




DAFTAR LAMPIRAN Lampiran

Halaman

1. Perhitungan Dosis ekstrak Spirulina platensis..................................................... 48 2. Metode Pengambilan Darah Ikan Gurame ........................................................... 49 3. Pemeriksaan Jumlah Sel Leukosit ........................................................................ 50 4. Pemeriksaan Hitung Jenis Sel Leukosit ............................................................... 51 5. Data Jumlah Leukosit Ikan Gurame..................................................................... 52 6. Data Jenis Leukosit Ikan Gurame ........................................................................ 53 7

Data Jenis Leukosit Dalam Bentuk Absolut ........................................................ 54

8. Laporan hasil uji bakteri Aeromonas hydrophila ................................................. 55 9. Analisa Statistik Jumlah Leukosit ......................................................................... 56 10. Analisa Statistik Jenis Leukosit ........................................................................... 57 11 Gambar Peralatan dan Bahan Penelitian ............................................................... 62

xiv SKRIPSI




SINGKATAN DAN ARTI LAMBANG

ANOVA

: Analysis of Variant

CFU

: Colony Forming Unit

et al

: et alli, et alia

GLA

: Gamma Linolenic Acid

ID100

: Dosis Infeksi

LPS

: Lipopolisakarida

MAS

: Motile Aeromonas Septicemia

MCA

: Mac Conkey Agar

NK

: Natural Killer

pH

: Derajat Keasaman

TSA

: Tripticase Soya Agar

RAL

: Rancangan Acak Lengkap

SPSS

: Statistical Program of Social Science

WBCs

: White Blood Cells

HE

: Hematoxylin Eosin

ml

: Mililiter

n

: Ulangan

t

: Perlakuan

S

: Signifikan

TS

: Tidak Signifikan

LPS

: Lipopolisakarida

TPC

: Total Plate Count

MGG

: May-Grunwald Giemsa

xv SKRIPSI




BAB 1 PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang Ikan gurame (Osphronemus gouramy L.) merupakan ikan air tawar yang memiliki nilai gizi tinggi dan ekonomi penting serta banyak digemari oleh masyarakat Indonesia. Ikan gurame banyak terdapat di Jawa Barat, Jawa Tengah, Sumatra Barat, dan Sulawesi Utara. Saat ini ikan gurame adalah salah satu dari lima belas jenis komoditas ikan untuk peningkatan produksi dan pendapatan petani. Ikan gurame tidak memerlukan air mengalir sebagai tempat hidupnya (Tarwiyah, 2001). Ikan gurame termasuk dari dua belas jenis komoditas untuk pemenuhan gizi masyarakat (Rukmana, 2005). Budidaya ikan gurame mudah diusahakan dan hasilnya dapat mencapai 8 ton per hekter (Taufik, 2010). Salah satu kendala yang dihadapi dalam budidaya intensif adalah penyakit dengan menimbulkan kerugian ekonomi bagi para pembudidayaan ikan. Salah satu jenis penyakit yang sering dijumpai pada organisme budidaya adalah penyakit bakterial yang disebabkan oleh bakteri Aeromonas hydrophila, termasuk bakteri patogen sebagai penyebab penyakit “Motil Aeromonas Septicemia” (MAS), Bakteri Aeromonas hydrophila sebagai penyebab penyakit MAS sangat berpengaruh dalam budidaya ikan air tawar dan sering menimbulkan wabah penyakit dengan tingkat kematian tinggi (80-100%) dan dalam waktu yg relatif singkat, yakni 1 – 2 minggu (Triyaningsih dkk 2014). Gejala terinfeksinya bakteri Aeromonas hydrophila adalah luka di bagian tubuh dan mengeluarkan darah, perut membesar, lendir mencair, sisik mengelupas, dan timbul luka pada tubuh ikan. Bakteri ini dapat mengakibatkan

1 SKRIPSI




2

kondisi ikan menjadi lemah dalam waktu singkat. Ikan sering muncul ke permukaan, lalu mati. Serangan penyakit ini perlu di waspadai sebab tak jarang menimbulkan kematian masal (Sutanto, 2011). Gambaran darah adalah salah satu indikator dari adanya infeksi (Nuryati dkk, 2006). Dalam bidang perikanan analisa hematologi bisa diterapkan sebagai early detection system untuk mencegah terjadinya kematian masal dalam pembudidayaan ikan (Noercholis, 2013). Manfaat permeriksaan darah antara lain untuk membantu mendiagnosis suatu penyakit, mengetahui jalan nya suatu penyakit, menentukan prognosa, mengetahui efek suatu pengobatan, meneliti sistem imun dan untuk mengetahui status kesehatan hewan (Harvey, 2012). Upaya pencegahan penyakit Aeromonas pada ikan telah dilakukan oleh Ravi et al., (2010) dengan menggunakan Spirulina platensis yang merupakan bahan alami dan aman. Spirulina platensis adalah mikroalga hijau kebiruan, sel berkoloni dan membentuk filamen terpilih yang menyerupai spiral. Alga ini mengandung berbagai zat gizi seperti protein dapat mencapai 72 %, lipid 8%, karbohidrat 16%, vitamin B1, B2, B6, B12, C, niasin, β karotin dan kandungan asam

amino

yang

seimbang.

Spirulina

platensis

juga

mengandung

lipopolisakarida sebesar 1,5% bobot keringnya, kandungan lipopolisakarida inilah yang menjadikan Spirulina platensis digunakan sebagai immunostimulan yang potensial dalam meningkatkan respon kekebalan tubuh pada ikan. (Pelizer et al., 2002). Komponen utama dinding sel S. platensis sama dengan dinding sel bakteri gram negatif yang mengandung peptidoglikan dan lipopolisakarida (Sze 1993). Lipopolisakarida terdiri atas lipid A, polisakarida O (antigen) dan inti

SKRIPSI




3

polisakarida. Lipid A bertanggung jawab terhadap keracunan primer dan bersifat toksik, sedangkan polisakarida O dan inti polisakarida merupakan antigen permukaan yang dapat menginduksi kekebalan spesifik dan non spesifik (Jawetz et al. 1982). Dari penelitian yang dilakukan oleh Tayag et al., (2010) diketahui bahwa kandungan senyawa dari ekstrak air panas Spirulina platensis yaitu polisakarida, dimana polisakarida dapat merangsang kekebalan tubuh pada ikan dan udang. Selain itu, ekstrak Spirulina plantensis yang diaplikasikan melalui metode injeksi dan perendaman menunjukkan peningkatan resistensi terhadap bakteri. Sampai saat ini belum ada informasi tentang pemanfaatan perendaman ekstrak Spirulina platensis terhadap ikan gurame yang diinfeksi bakteri Aeromonas hydophila. Hal ini mendorong peneliti untuk melakukan penelitian tentang efek perendaman ekstrak spirulina plantensis terhadap jumlah leukosit ikan gurame (Osphronemus goramy Lac.) yang diinfeksi Aeromonas hydrophila Hasilnya diharapkan dapat memberikan informasi kepada dunia perikanan.

1.2 Rumusan Masalah Berdasarkan latar belakang yang telah diuraikan di atas, maka dapat dirumuskan permasalahan yaitu apakah perendaman ekstrak Spirulina platensis sebagai imunostimulan dapat meningkatkan jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit ikan gurame yang diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila ?

SKRIPSI




4

1.3 Landasan Teori Aeromonas hydrophila menyebabkan penyakit pada ikan yang dikenal sebagai Motile Aeromonas hydrophila (MAS). Kemampuan bakteri menyebar melalui peredaran darah atau septikemia menyebabkan kerusakan di berbagai organ tubuh ikan. Kerusakan tersebut antara lain: ulcer pada organ kulit, kerusakan mata, lesi pada sirip dan insang, pengelupasan sisik dan hemoragik septikemia. Penyakit yang disebabkan oleh bakteri ini terutama mempengaruhi ikan air tawar (Kumar and Ramalu, 2013). Adanya gangguan kesehatan akibat infeksi ataupun perubahan status fisiologi hewan sering dapat diketahui melalui perubahan yang terjadi pada komponen darahnya (Meyer and Harvey, 1998). Reaksi imunitas ditunjukkan dengan adanya kelainan jumlah leukosit dan dapat diketahui melalui pemeriksaan jumlah total leukosit dan distribusi masing-masing jenis leukosit (differential counting) yang merupakan bagian dari pemeriksaan fisik rutin pada hewan sakit. Melalui kedua pemeriksaan tersebut dapat diperoleh gambaran mengenai kepekaan hewan, pemberian terapi yang tepat dan prognosa dari penyakit (Bijanti dkk, 2010). Pemeriksaan jumlah leukosit dan jenis leukosit yang terdiri dari neutrofil, eosinofil, basofil, monosit, dan limfosit menjadi parameter yang penting untuk dilakukan karena leukosit berperan penting dalam sistem kekebalan tubuh dan berhubungan dengan proses infeksi bakteri. Pada infeksi bakteri terjadi perubahan yaitu berupa peningkatan jumlah leukosit dalam darah (Chairlan, 2011). Pemberian Spirulina plantensis pada ikan menyebabkan meningkatkan aktivitas fagositosis dan meningkatkan presentase kelangsungan hidup ikan

SKRIPSI




5

terhadap resiko Aeromonas hydrophila (Ragap et al., 2002). Spirulina platensis adalah mikroalga hijau-biru. Spirulina platensis mengandung beberapa Vitamin, seperti vitamin B, vitamin E, vitamin K, phenolic acids, tocopherols, g-linolenic acid, asam folat; pigmen, seperti b-carotenes, chlorophyll a dan phycocyanin; dan mineral, teruama zat besi. Spirulina mempunyai fungsi sebagai antioksidan, antiviral, imunomodulator, meningkatkan hemoglobin, leukosit dan trombosit serta mampu menstimuasi stem sel di sumsum tulang (Simanjuntak et al., 2004). Menurut Grzanna et al., (2006) menyatakan bahwa Spirulina platensis mempunyai efek imunostimulator. Simanjuntak et al., (2004) menunjukkan bahwa pemberian Spirulina platensis dalam pakan ikan dapat meningkatkan jumlah eretrosit, total leukosit, dan kadar hemoglobin ikan nilem.

1.4 Tujuan Penelitian Tujuan penelitian ini untuk mengetahui pengaruh ekstrak Spirulina platensis sebagai imunostimulan terhadap jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit ikan gurame yang diinfeksi Aeromonas hydophila.

1.5 Manfaat Hasil Penelitian Hasil penelitian ini diharapkan dapat dikembangkan dan diaplikasikan pada dunia perikanan sebagai alternatif pencegahan maupun pengobatan Aeromonas.

SKRIPSI




6

1.6 Hipotesis Perendaman ekstrak Spirulina platensis sebagai imunostimulan dapat meningkatkan jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit ikan gurame yang diinfeki bakteri Aeromonas hydrophila.

SKRIPSI




BAB II TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Ikan Gurame 2.1.1 Klasifikasi Menurut Ardianto (2012). Ikan gurame dapat diklasifikasikan sebagai berikut : Kingdom

: Animalia

Filum

: Chordata

Subfilum

: Vertebrata

Kelas

: Pisces

Sub Kelas

: Teleostei

Ordo

: Perciformes

Sub ordo

: Belontiidae

Famili

: Osphronemidae

Genus

: Osphronemus

Spesies

: Osphronemus gourami

Gambar 2.1. Osphronemus gouramy (Pingstone, 2005).

7 SKRIPSI




8

Ikan gurame termasuk golongan ikan Labyrinthici, yaitu ikan yang memiliki alat pernafasan tambahan yaitu berupa selaput tambahan berbentuk tonjolan pada tepi atau lapisan insang pertama yang biasa disebut labyrinth. Gurame mempunyai bentuk badan agak panjang, pipih, dan tertutup sisik yang berukuran besar serta terlihat kasar dan kuat (Romero, 2002). 2.1.2

Habitat Ikan gurame Habitat ikan gurame merupakan air tawar sampai sedikit payau, berair

jernih dan dasar kolam yang kurang lumpurnya. Lokasi pemeliharaan yang cocok ialah pada kebuntingan 50- 400m di atas permukaan laut, dengan suhu 24-28oC, sekurang-kurangnya 75 cm. Ikan ini sangat baik di pelihara, walaupun pertumbuhannya lambat. Untuk pertumbuhan pH-nya berkisar antara 7-8 (Dinas Perikanan 1997 dalam Sutrisno 2011). 2.2 Spirulina platensis 2.2.1 Klasifikasi Klasifikasi Spirulina menurut Bold & Wyne (1978) dalam Pamungkas (2005) adalah sebagai berikut :

SKRIPSI

Kingdom

: Protista

Divisi

: Cyanophyta

Kelas

: Cyanophyceae

Ordo

: Nostocales

Famili

: Oscilatoriaceae

Genus

: Spirulina

Spesies

: Spirulina platensis




9

Gambar 2.2 Spirulina sp. (Sumber: R. Locci dalam Cifferi, 1983 dan Henrickson, 1989) Spirulina sp. merupakan mikroalga yang menyebar secara luas, dapat ditemukan di berbagai tipe lingkungan, baik di perairan payau, laut dan tawar (Ciferri, 1983). Ciri-ciri morfologinya yaitu filament yang tesusun di trikoma multiseluler berbentuk spiral yang bergabung menjadi satu, tidak seimbang, tidak bercabang, autrotof, dan berwarna biru kehijauan (Gambar 2.2). 2.2.2

Kandungan Nutrisi Spirulina platensis Analisis kimia Spirulina sp. dimulai pada tahun 1970 yang menunjukkan

Spirulina sp. sebagai sumber yang sangat kaya protein, vitamin, dan mineral. Kandungan protein pada Spirulina sp. berkisar antara 60%-70% dari berat kering, mengandung provitamin A tinggi, sumber β-karoten yang kaya vitamin B12 dan digunakan dalam pengobatan anemia, kandungan lipid sekitar 4-7%, serta karbohidrat sekitar 13,6% (Carrieri et al., 2010). Spirulina sp. juga mengandung kalium, protein dengan kandungan Gomma Linolenic Acid (GLA) yang tinggi (Tokusoglu dan Uunal, 2006). Spirulina juga kaya akan vitamin diantaranya vitamin B1, B2, B3, B6, B9, B12, vitamin C, vitamin D dan vitamin E (Tokusglu and Unal, 2003; Babadzhanov, 2004).

SKRIPSI




10

Komposisi pigmen pada Spirulina sp. merupakan komposisi pigmen yang kompleks dan umum ditemukan pada alga biru hijau. Kompisisi tersebut diantaranya

adalah

klorofil-

a,

xanthophyll,

fikosianin

dan

zeaxanthin

(Christwardana dan Hadiyanto, 2012). Spirulina mengandung fikosianin tinggi sehingga warna cenderung hijau biru (Kebede and Ahlgren, 1996 dalam Christwardana et al., 2009). Penilitian yang dilakukan Woro dkk., (2014) menjelaskan bahwa pemberian fikosianin spirulina dapat meningkatkan leukosit, aktivitas fagositosis dan pertumbuhan pada ikan kerapu bebek juvenil. Abdel et al., (2008) juga pernah melaporkan bahwa penambahan spirulina pada pakan meningkatkan jumlah total eritrosit dan leukosit ikan tilapia (Oreochromis niloticus). El-Sabagh et al., (2014) dalam penelitiannya melaporkan bahwa Spirulina platensis dapat meningkatkan konsentrasi Hb dan sel darah putih pada domba. Peningkatan produksi sel darah putih dikarenakan adanya phycocyanin dan polisakarida yang terkandung dalam spirulina (Zhang, 1994 dalam El-Sabagh et al., 2014). 2.2.3

Sistem Imun Ikan Menurut Rombout et. al. (2005), sistem kekebalan tubuh ikan secara

fisiologis mirip dengan vertebrata yang lebih tinggi, meskipun ada perbedaan tertentu. Berbeda dengan vertebrata yang lebih tinggi, ikan merupakan organisme hidup bebas dari tahap embrionik awal kehidupan yang bergantung pada sistem kekebalan tubuh bawaan mereka untuk bertahan hidup. Menurut Magnadottir (2006), kekebalan non spesifik adalah mekanisme pertahanan mendasar pada ikan. Selain itu, memainkan peran kunci dalam respon

SKRIPSI




11

kekebalan yang diperoleh dan homeostasis melalui sistem protein reseptor. Protein

reseptor

mengidentifikasi

pola-pola

molekuler

yang

khas

dari

mikroorganisme patogen termasuk polisakarida, lipopolisakarida (LPS), DNA bakteri peptidoglikan, RNA virus, dan molekul lain yang tidak normal pada permukaan organisme multi seluler. Tanggapan ini dibagi menjadi hambatan fisik dan respon kekebalan seluler dan humoral. Parameter immunological terdiri dari inhibitor pertumbuhan, enzim litik, jalur komplemen klasik, alternatif dan jalur lektin, aglutinin dan precipitin (opsonin dan lektin primer), antibodi, sitokin, kemokin, dan peptida antibakteri. Berbagai faktor internal dan eksternal dapat mempengaruhi parameter respon kekebalan bawaan. Perubahan suhu, manajemen stres, dan kepadatan memiliki efek penekanan pada jenis respon, sedangkan beberapa aditif makanan dan imunostimulan dapat meningkatkan efisiensi mereka. Peningkatan sel eritrosit sangat berhubungan dengan pengangkutan oksigen keseluruh tubuh dan peningkatan leukosit sangat berhubungan dengan sistem kekebalan tubuh ikan. Leukosit berperan penting dalam imunitas nonspesifik atau jumlahnya di jadikan sebagai indikator kerentanan terhadap penyakit (Matanovic et al., 2007). 2.3 Aeromonas hydrophila Aeromonas hydrophila merupakan bakteri yang banyak ditemukan di lingkungan air tawar, terutama pada lingkungan yang kaya bahan organic. Suhu optimal untuk pertumbuhan Aeromonas hydrophila adalah 20-37C. Penelitian pada udang kurang karang yang hamper mati menunjukkan bahwa luas nekrotik

SKRIPSI




12

inti ditemukan pada jaringan termasuk insang, jantung, hepatopankreas dan sistem peredaran darah (Pathol et al., 2009) Kelompok Bakteri dari genus Aeromonas merupakan bakteri yang dapat ditemukan di daerah perairan tawar, Gram Negatif dan berbentuk batang (Gardenia dkk., 2010). (Gambar 2.3) Morfologi batang pendek dengan ukuran bervariasi antara leber 0,8 sampai 1,0 mikron dengan panjang 1,0 sampai 3,5 mikron, tidak memiliki spora, bakteri bersifat motil karena mempunyai flagella monotrichous. (Herupradoto dan Yuliani, 2010). Pertumbuhan optimal terjadi setelah 24 jam pada suhu 28oC pada media TSA (Tripticase Soya Agar). Pada pewarnaan gram menunjukkan warna merah, tidak menunjukkan reaksi positif pada pewarnaan Ziel dan Nelsen dan Giemsa. Tumbuh pada blood agar pada suhu 37oC selama 18 jam menunjukkan zona beta hemolysis 4 mm, tidak berwarna hingga keabu-abuan. Media MCA suhu 37oC selama 24 jam menunjukkan koloni berwarna pink ( Akkoc et al., 2008). Uji biokimia isolat Aeromonas hydrophila pada media Sulfide Indol Motility (SIM) menunjukkan bakteri motil yang ditandai kekeruhan, indol positif dengan adanya cincin merah, dan menghasilkan H2S positif, pada media Simon Citrat Agar (SCA) bereaksi positif ditandai warna biru pada media dan urase positif ditandai warna merah muda (Yogananth et al., 2009).

SKRIPSI




13

Gambar 2.3 Aeromonas hydrophila dengan Pewarnaan Gram dan perbesaran 1000x (Park, 2011)

2.3.1

Karaterisktik Aeromonas hydrophila Salah satu bakteri yang umum dijumpai pada ekosistem perairan dan

mempunyai peranan sebagai microbial flora bagi organisme air pada kondisi lingkungan yang stabil yaitu bakteri Aeromonas hydrophila. Dimana bakteri tersebut bersifat patogen pada ikan air tawar seperti ikan nila pada kondisi kualitas air yang buruk. Selain itu bakteri Aeromonas hydrophila memiliki kemampuan osmoregulasi yang tinggi dimana mampu bertahan hidup pada perairan tawar, perairan payau dan laut yang memiliki kadar garam tinggi dengan penyebaran melalui air, kotoran burung, saluran pencernaan hewan darat dan hewan amfibi serta reptil (Mangunwardoyo et al., 2010). Aeromonas hydrophila menginfeksi semua jenis ikan air tawar Infeksi biasanya berkaitan dengan kondisi stres kepadatan, malnutrisi, infeksi parasit, kualitas air yang buruk dan flutuasi suhu air yang ekstrim. Serangan bersifat akut.

SKRIPSI




14

Jika kualitas lingkungan air terus menurun, kematian yang ditimbulkan bisa mencapai 100% (Bachtiar 2010). Aeromonas hydrophila

menyebabkan penyakit

Motile Aeromonas

Septicemia (MAS) atau penyakit bercak merah. Bakteri ini menyerang berbagai jenis ikan air tawar seperti lele dumbo (Clarius gariepinus), ikan mas (Cyprinus carpio), gurame (Osphronemus gouramy) dan udang galah (Macrobrachium rosenbergii). Pengendalian bakteri ini sulit karena memiliki banyak strain dan selalu ada di air serta dapat menjadi resisten terhadap obat-obatan (Kamiso dan Triyanto 1993). 2.3.2

Patogenesis dan Gejala Klinis Proses invasi bakteri patogen ke dalam tubuh di awali dengan melekatnya

bakteri pada permukaan kulit. Flagella yang dimiliki oleh bakteri digunakan untuk bergerak, sedangkan pili digunakan untuk melekat kuat pada lapisan terluar tubuh ikan yaitu sisik yang dilindungi oleh zat khitin. Jika organisme melekat pada reseptor spesifik akan membentuk koloni, meluas membentuk toksin yang membantu dalam proses penetrasi sehingga timbul penyakit. (Lee et al., 2000). Menurut Lubis, et al., (2014), ikan yang terserang bakteri Aeromonas hydrophila memiliki gejala klinis berupa luka, warna tubuh pucat, geripis pada sirip-siripnya dan bergerak lambat. Selain itu, ciri-ciri ikan yang terserang bakteri ini biasanya warna tubuh gelap, mata rusak, bernafas di atas permukaan air, insang rusak berwarna merah keputihan, sehingga kesulitan bernafas. Serangan bakteri ini pada kulit menyebabkan kulit menjadi kesat, timbul pendarahan yang selanjutnya diikuti dengan hemoragi, perut kembung serta terjadi pendarahan pada

SKRIPSI




15

hati, ginjal dan limfa saat dilakukan pembedahan. seperti yang terlihat pada gambar 2.4

Gambar 2.4. Terdapat bentukan-bentukan lesi dan terdapat pendarahan pada kulit ikan gurame (Osphronemus goramy Lec.) yan terserang bakteri Aeromonas hydrophila (Tanjung dkk., 2011).

2.4 Komponen Darah Ikan 2.4.1 Leukosit Ikan Ikan mempunyai sel darah putih (leukosit) yang cukup banyak antara 137.000/mm3 – 798.000/mm3. Leukosit ikan dibagi menjadi 2 bagian besar yaitu Granulosit dan Agranulosit (Bijanti, 2005). 2.4.1.1 Granulosit Pada ikan granulosit terbentuk secara embrionik yang dikenal dengan nama granuloblast yang terdapat di ginjal. Granulosit terbagi atas 3 tipe yaitu neutrofil, eosinofi, dan basofil. Fungsi utama granulosit adalah respon perlindunungan tubuh yang non-spesifik melalui proses fagositosis maupun respon sitotoksik. Granulosit bersifat responsive terhadap benda asing yang masuk ke dalam tubuh, tetapi tidak memiliki kemampuan untuk mengenakan antigen yang spesifik. Sel darah putih/granulosit yang berfungsi sebagai fagositosis adalah eosinophil dan neutrofil (Bijanti, 2005).

SKRIPSI




16

a. Neutrofil Neutrofil merupakan fagositas kuat. Fagositosis neutrofil dilakukan dengan cara mendekati partikel asing/bakteri dan mengeluarkan pseudopodi ke segala arah sekitar partikel, satu neutrofil dapat memfagosit 5-20 bakteri sebelum neutrofil tersebut menjadi tidak aktif (Bijanti, 2005). Neutrofil ikan berbentuk bulat sampai oval dengan eksentrik. Homogen. Nukleus neutrofil yang matang mempunyai bermacam bentuk, butir kromatinnya memadat dan pewarnaannya lebih basofilik. Neutrofil beberapa jenis ikan seperti ikan Mas, mempunyai granulosit dengan granula sitoplasma yang lebih asidofilik, sitoplasma tidak berwarna dan inti eksentrik dan selnya lebih digolongkan sebagai heterofil. Diameter berukuran kurang lebih 10 µm (Bijanti dkk., 2010). b. Eosinofil dan Basofil Eosinofil pada hapusan jarang dijumpai pada ulasan darah ikan. Eosinofil hanya dijumpai pada beberapa spesies ikan misalnya ikan Mas. Eosinofil dijumpai sebagai granulosit yang berukuran sedang sampai besar dengan granula eosinofilik. Nukleus bervariasi mulai dari yang bulat sampai segmented dan letaknya eksentrik. Eosinofil ikan Mas berukuran kurang lebih 7,5 µm. peningkatan jumlah eosinophil pada ikan akan mengindikasikan adanya respon inflamasi yang dikaitkan dengan infeksi parasit atau stimulasi antigenik (Bijanti dkk., 2010). Basofil dikenali sebagai sel yang berbentuk bulat dengan granula sitoplasma yang basofilik. Nukleusnya besar, ekstrensik dan bulat. Butir kromatin intinya lebih Homogen. Basofil ikan Mas berukuran 10-20 µm (Bijanti dkk., 2010).

SKRIPSI




17

2.4.1.2 Agranulosit Kelompok leukosit agranulosit terdiri dari limfosit dan monosit. Pada ikan limfosit didapatkan dalam jumlah yang paling banyak diantara jenis leukosit yang lainnya (Bijanti, 2005). a. Limfosit Limfosit memiliki jumlah sekitar 20-35% dari sel darah putih yang beredar (Tambayong, 2002). Limfosit banyak ditemukan pada hapusan darah ikan, ukuran diameternya berkisar antara 5-8 µm. limfosit berbentuk bulat dengan inti yang besar dan sitoplasma yang sedikit (Bijanti dkk., 2010). Limfosit tidak bersifat fagosit tetapi memegang peranan penting dalam pembentukkan atibodi. Fungsi limfosit sendiri adalah sebagai mediator respon imun humoral dan seluler. Penurunan jumlah limfosit dapat menurunkan konsentrasi antibody dan menyebabkan penurunan pertahanan tubuh terhadap serangan penyakit (Bijanti, 2005). b. Monosit Monosit merupakan sel darah yang terbesar dengan diameter kurang lebih 12-15 µm, dan bahkan kadang-kadang mencapai 20 µm. Jumlahnya terdiri 2-8 % dari seluruh jumlah leukosit (Amindariati, 2005). Monosit merupakan leukosit mononuklear yang berukuran besar dengan sitoplasmanya terkadang tidak rata karena adanya pseudopodia. Intinya berbentuk bulat seperti ginjal atau bilobus dan ukurannya bermacam-macam, pada umumnya mencapai 50% dari volume sitoplasmanya, bentuknya tidak teratur. Dengan pengecatan Giemsa inti sel akan berwarna biru tua / ungu dengan sitoplasma berwarna biru kepucatan. Kromatin inti monosit umumnya

SKRIPSI




18

lebih bergranuler dan kurang memadat jika dibandingkan inti limfosit (Bijanti dkk., 2010). Monosit bersifat fagositosis yang lebih kuat dibandingkan dengan neutrofil dan dapat memfagosit partikel yang lebih besar. Oleh sebab itu monosit yang matang disebut makrofag dan beredar pada jaringan (Bijanti, 2010). seperti yang terlihat pada gambar 2.5

B

L

M N

Gambar 2.5. Sel Leukosit (1000x,MGG). Limfosit (L), Neutrofil (N), Monosit (M), Basofil (B) (Doncan et al., 2010).

SKRIPSI




19

2.4.2

Tinjaun Nilai Normal Gambaran Darah Ikan Menurut Salsia dkk (2011), hasil pemeriksaan nilai normal gambaran darah

ikan secara umum ditunjukkan dalam tabel di bawah ini : Tabel 2.1. Nilai normal gambaran darah ikan air tawar secara umum.

SKRIPSI

NO

Pemeriksaan

Nilai / Jumlah

1

Eritrosit

40,76-94,37 (106 / mm3 )

2

Kadar Hb

5,05-8,33g/dl

3

PCV

28,00-35,13%

4

TPP

3,32-5,10g/dl

5

Ukuran eritrosit

8,10×8,25-14,94×10,06 mm

6

Jumlah leukosit

3390-14200 (/mm3 )

7

Neutrofil

3,25-8,40%

8

Eosinofil

2,40-8,00%

9

Limfosit

60,2 – 81,00%

10

Monosit

7,75-29,20%




BAB 3 MATERI DAN METODE PENELITIAN 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Tempat penelitian dilaksanakan di Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga. Pembuatan ekstrak Spirulina platensis dilakukan di Laboratorium Farmakologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Airlangga. Proses pembuatan hapusan darah, penghitungan jumlah leukosit di Laboratorium Patologi Klinik Veteriner Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga Surabaya.

3.2 Waktu Penelitian Waktu Penelitian berlangsung selama satu bulan Bulan April sampai Bulan Mei 2016

3.3 Rancangan Penelitian Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental laboratorium. Pada penelitian ini variable yang diamati adalah jumlah leukosit ikan gurame. Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL), karena kondisi lingkungan dan berat badan yang bersifat homogen, serta sampel dilakukan secara acak dengan empat macam kelompok perlakuan.

3.4 Materi Penelitian 3.4.1

Hewan Coba Hewan coba yang digunakan dalam penelitian ini adalah ikan gurame

(Oshpronemus gouramy) sebanyak 20 ekor dengan berat badan rata-rata 20 gram

20 SKRIPSI




21

dan panjang tubuh 9-10 cm dari kolam yang sama. Hewan coba diperoleh dari Kolam Minazas, Desa bakung, Kecamatan Udan Awu, Blitar. 3.4.2

Bahan Penelitian Bahan-bahan yang diperlukan antara lain pakan ikan standar berbentuk

pellet (Takari®_PT. Central Proteinaprima., Tbk, kode produksi PCP401), air Sumur, Ekstrak Spirulina platensis, bakteri Aeromonas hydrophila yang berjumlah 106 CFU/ml didapat dari Balai Karantina Perikanan Surabaya, dengan pengenceran 100 ml. Bahan untuk pembuatan ekstrak Spirulina platensis adalah tepung Spirulina platensis yang di dapat dari Balai Besar Pengembangan Budidaya Air Payau Jepara. Bahan-bahan untuk pengambilan darah, pembuatan hapusan darah, dan penghitungan jumlah leukosit pada ikan gurame adalah Heparin, larutan Dacies, methanol 95%, zat warna Giemsa beserta Larutan Buffer Pro Giemsa, dan minyak emersi. 3.4.3

Alat Penelitian Peralatan yang digunakan untuk penelitian ini adalah akuarium (ukuran

volume 5 L) sebanyak 5 buah, mesin aerator, selang aerator, filter pembersih air, batu zeloit, timbangan milligram digital, dan jaring ikan kecil. Peralatan untuk Pengambilan darah diperlukan spuit insulin 1 ml dengan jarumnya, tabung ependorf. pembuatan hapusan darah diperlukan glas obyek, dan rak tempat pemulas glas obyek. Penghitungan jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit pada ikan gurame diperlukan kamar hitung Improved Neubauer, Pipet Pasteur,, counter, gelas penutup, mikroskop, gelas obyek, rak tempat pemulas gelas obyek. 3.5 Metode Penelitian

SKRIPSI




22

3.5.1

Penentuan Dosis Spirulina platensis Penentuan dosis berdasarkan penelitian pendahuluan yang telah dilakukan

yaitu dengan bentuk ekstrak air panas Spirulina plantensis. Dosis penelitian tersebut adalah 200 mg/L, 400 mgL, 600 mg/L. Tayag et al., (2010) Perhitungan dosis Spirulina platensis di uraikan pada Lampiran 1. 3.5.2

Penentuan Jumlah Sampel Rumus besaran sampel adalah t(n-1)> 15, dimana t adalah banyaknya

perlakuan dan n adalah banyaknya ulangan (Kusriningrum, 2010). Dalam penelitian ini digunakan 5 perlakuan. Dari rumus tersebut maka ulangan terkecil yang digunakan adalah 4 ekor ikan dalam setiap perlakuan. Untuk menghindari bias maka ditambah 1 ekor pada setiap kelompok perlakuan, sehingga seluruh ulangan tiap perlakuan 5 ekor ikan gurame.

3.5.3

Perlakuan Penelitian Setelah adaptasi selama satu minggu, semua kelompok perlakuan dari

hewan coba di Dipping ekstrak spirulina dengan dosis disetiap perlakuan dan diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila, kecuali PO(-) P0-

: Kelompok perlakuan kontrol negatif Ikan tanpa direndam ektrak Spirulina platensis dan tanpa diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila.

P0+

: Kelompok perlakuan kontrol positif Ikan tanpa direndam ektrak Spirulina platensis, selanjutnya diinfeksi Aeromonas hydrophila 106 sel/ml pada hari ke-15

SKRIPSI




23

P1

: Ikan direndam ekstrak air Spirulina platensis konsentrasi 200 mg/L secara dipping selama 3 jam pada hari pertama dan pada hari ke tujuh, selanjutnya diinfeksi Aeromonas hydrophila 106 sel/ml pada hari ke-15

P2

: Ikan direndam ekstrak air Spirulina platensis konsentrasi 400 mg/L secara dipping selama 3 jam pada hari pertama dan pada hari ke tujuh, selanjutnya diinfeksi Aeromonas hydrophila 106 sel/ml pada hari ke-15

P3

: Ikan direndam ekstrak air Spirulina platensis konsentrasi 600 mg/L secara dipping selama 3 jam pada hari hari pertama dan pada hari ke tujuh, selanjutnya diinfeksi Aeromonas hydrophila 106 sel/ml pada hari ke-15

Pada hari ke-3 setelah perlakuan, darah ikan diambil sesuai proses kemudian diamati gambaran jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit.

3.6 Pengambilan Darah untuk Pemeriksaan Jumlah Leukosit dan Hitung Jumlah Sel Leukosit 3.6.1

Punksi Pembuluh Darah Bagian Caudal Setelah perlakuan selesai, ikan dikorbankan untuk memulai pengambilan

darah dengan teknik Punksi Pembuluh Darah Bagian Caudal. Teknik ini biasa dipergunakan untuk pengambilan sampel darah ikan berukuran besar (>10 cm). Teknik ini mempunyai kelebihan yaitu bisa dipergunakan berulang pada satu ikan. Pengambil darah ikan dengan menggunakan teknik ini yaitu dengan menyiapkan spuit insulin lengkap dengan jarumnya dan kemudian dihisap larutan heparin sampai memenuhi didinding syringe dan hanya disisakan sebanyak ± 50 µl di

SKRIPSI




24

dalam spuit. Pengambilan darah ikan dengan memposisikan jarum pada garis tengah tubuh belakang sirip anal kemudian memasukkan jarum kedalam musculus sampai mencapai tulang belakang (columna spinalis) dengan memastikan tidak terdapat gelembung air yang masuk dalam spuit. Kemudian ditarik perlahan-lahan sampai darah masuk ke dalam spuit (Bijanti, 2010). 3.6.2 3.6.2.1

Pemeriksaan Jumlah Leukosit dan Hitung Jenis Sel Leukosit Pemeriksaan Jumlah Sel Leukosit Menurut Bijanti (2010), metode pemeriksaan jumlah leukosit yaitu sampel

darah diencerkan dengan perbandingan 1:50 menggunakan larutan Dacies yang telah disaring. Pencampuran darah dengan larutan Dacies secara perlahan agar tidak merusak sel darah. Ambil sedikit campuran darah dan larutan Dacies dengan menggunakan pipet Pasteur, kemudian teteskan dalam kamar hitung Improved Neubauer. Letakkan cover glass di atas kamar hitung Improved

Neubauer.

Kemudian hitung jumlah leukosit yang terdapat pada semua kotak leukosit dengan menggunakan mikroskop. 3.6.2.2

Menghitung Jumlah Sel Leukosit Perhitungan jumlah sel leukosit menggunakan mikroskop dengan

pembesaran 10x dengan menurunkan lensa kondensor. Kamar hitung dengan bidang bergarisnya diletakkan di bawah obyektif dan fokus mikroskop diarahkan pada garis-garis bagi tersebut. Kemudian dihitung semua leukosit yang terletak pada ke empat bidang besar (kotak yang berwarna hijau) pada lampiran 4. Perhitungan dimulai dari sudut kiri atas, terus ke kanan, kemudian turun ke bawah dan dari kanan kekiri (pada empat kotak berwarna hijau). Sel yang menyinggung garis batas sebelah kiri atau garis atas haruslah dihitung, sebaliknya sel-sel yang

SKRIPSI




25

menyinggung garis batas sebelah kanan atau garis bawah tidak boleh dihitung (Bijanti, 2010). 3.6.2.3

Pemeriksaan Hitung Jenis Sel Leukosit Menurut Bijanti (2010), metode pemeriksaan jumlah leukosit yaitu satu

tetes sampel darah diletakkan pada slide yang kering dan bersih kemudian buat hapusan darah yang tipis. Keringkan hapusan darah, kemudian hapusan darah yang telah difiksasi dengan metanol 95% selama 1-2 menit, menggunakan pengecatan Giemsa atau May Grunwald ditunggu selama ± 5 menit. Kemudian bilas slide dengan menggunakan air mengalir dan keringkan. Periksa hapusan darah di bawah mikroskop menggunakan emersi (obyektif 1000x) (Bijanti, 2010). Perhitungan dilakukan pada daerah penghitung (Counting Area) dengan memilih bagian dari sediaan yang cukup tipis dengan penyebaran leukosit merata. Perhitungan dimulai dari bagian pinggir atas sediaan kemudian berpindah ke arah pinggir bawah dengan menggunakan mikro manipulator mikroskop. Pada daerah bawah pinggir mulai digeser ke lapangan bagian kanan lebih banyak dari lebarnya emersi, kemudian ke arah pinggir atas lagi. Pada bagian atas geser ke kanan lagi dan kemudian diarahkan ke bagian bawah. Perhitungan ini dilakukan terusmenerus sampai 100 sel (Bijanti dkk., 2014).

3.7 Variabel Penelitian Beberapa peubah yang diamati dalam penelitian ini meliputi: Variabel bebas

: Dosis ekstrak Spirulina platensis 200 mg/L, 400 mg/L, 600 mg/L dan Bakteri Aeromonas hydrophila 106 se/ml

SKRIPSI




26

Variabel tergantung

: Jumlah Leukosit dan hitung jenis Leukosit ikan Gurame

Variabel kendali

: ikan gurame, berat badan ikan, kolam, jumlah pakan.

3.8 Rancangan Penelitian dan Analisis Data Data yang akan diperoleh dalam bentuk nilai jumlah leukosit dan jumlah jenis leukosit hewan coba disusun dalam bentuk tabel yang kemudian akan dianalisis. Untuk mengetahui perbedaan gambaran jumlah dan hitung jenis sel leukosit akibat pemberian bakteri Aeromonas hydrophila yang telah diinfeksi dengan dosis yang berbeda, dan akan dilakukan uji statistik dengan menggunakan sidik ragam ANOVA (Analysis of Variant). Apabila terdapat adanya perbedaan antar perlakuan dilanjutkan dengan uji Jarak Berganda Duncan dengan taraf signifikansi sebesar 5% untuk mengetahui perlakuan yang terbaik. Analisis data dilakukan dengan menggunakan peralatan lunak komputer SPSS 18 for Windows.

SKRIPSI




27

3.9 Diagram Alur Penelitian

20 Ikan Gurame

P0 (-) : tanpa diberi ekstrak Spirulina

Ikan diadaptasikan selama 1 minggu

P0 (+) : tanpa diberi ekstrak Spirulina

P1 : perendaman pertama ekstrak Spirulina 200 mg/L selama 3 jam



1 minggu setelah perendaman pertama

P0 (-) : tanpa diberi ekstrak Spirulina

P0 (+) : tanpa diberi ekstrak Spirulina

P1 : perendaman kedua ekstrak Spirulina 200 mg/L selama 3 jam

P2 : perendaman kedua Spirulina 400 mg/L selama 3 jam

P3 : perendaman kedua ekstrak Spirulina 600 mg/L selama 3 jam

Dipindahkan kembali ke akuarium pemeliharaan

24 jam setelah perendaman kedua ekstrak Spirulina

Infeksi Aeromonas hydrophila 3 hari setelah infeksi

Pengambilan sampel darah, pemeriksaan jumlah leukosit, dan pemeriksaan hitung jenis leukosit

SKRIPSI


Analisis data



BAB 4 HASIL PENELITIAN

4.1 Pengamatan Gejala Klinis Proses infeksi bakteri Aeromonas hydrophila dengan konsentrasi 106 sel/ml sebanyak 1ml dalam 3 L air rendaman. Infeksi Bakteri Aeromonas hydrophila menimbulkan perubahan patologi anatomi pada ikan gurame. Perubahan tersebut diantaranya warna kulit ikan gurame terlihat pucat, hemoraghi, ekor mengalami nekrosis, exophthalmia dan terdapat ascites pada rongga abdomen seperti yang terlihat pada gambar 4.1

Gambar 4.1

: Perubahan patologi anatomi. Keterangan : (A) exophthalmia, (B) ekor mengalami nekrosis, (C) warna kulit tampak pucat, (D) ascites pada rongga abdomen ikan yang terinfeksi Aeromonas hydrophila (dokumentasi pribadi, 2016).

4.2 Gambaran Jumlah Leukosit Hasil penelitian tentang jumlah leukosit ikan Gurame berdasarkan uji ANOVA, maka dapat disimpulkan terdapat perbedaan sangat nyata diantara perlakuan. Tahap berikutnya dilakukan uji Jarak Berganda Duncan dengan taraf signifikansi 5%. Berdasarkan hasil uji Jarak Berganda Duncan menunjukan bahwa

28 SKRIPSI




29

antara perlakuan P0(+) dengan P3 menunjukkan hasil berbeda sangat nyata (p<0,05). Perlakuan P3 menunjukkan hasil berbeda sangat nyata dengan P0(-). Tetapi perlakuan kontrol P0(-) dengan P1 dan P2 tidak menunjukkan berbeda nyata (p>0,05).

Tabel 4.1 Rata-rata dan Simpanan Baku jumlah leukosit ikan Gurame pada akhir penelitian. Perlakuan

Jumlah Leukosit (sel / mm3 )

PO(-)

9162.50a ± 849. 877

PO(+)

29212.50c ± 5341. 563

P1

11875.00ab ± 1564. 981

P2

12875.00ab ± 723. 994

P3

13975.00b ± 504. 149

Keterangan : Superskrip yang berbeda pada kolom yang berbeda menunjukkan adanya perbedaan yang sangat nyata. seperti yang terlihat pada gambar grafik 4.2

40000 30000 20000

Leukosit

10000 0 P0(-)

P0(+)

P1

P2

P3

Gambar 4.2. Jumlah leukosit ikan Gurame

SKRIPSI




30

Gambar 4.3 : Gambaran Jumlah Leukosit Pada Kamar Hitung Leukosit (dokumentasi pribadi, 2016).

SKRIPSI




31

4.3 Hitung Jenis Leukosit Hasil hitung jenis leukosit pada ikan gurame setelah diberikan perlakuan adalah sebagai berikut: Tabel 4.2 Rata-rata dan Simpangan Baku Jenis Leukosit Perlakuan

Neutrofil

Eosinofil

Basofil

Limfosit

Monosit

P0(-)

29.50b ± 6.952

2.50a ± 0.577

1.50a ± 0.577

54.25a ± 3.775

9.25ab ± 5.058

P0(+)

21.00a ± 6.976

3.75b ± 0,957

1.00a ± 0.816

67.50b ± 1.291

5.50a ± 1.915

P1

35.25bc ± 4.992 2.25a ± 0.500

1.25a ± 0.957

50.75a ± 1,258

12.00b ± 1.826

P2

40.00c ± 2.160

1.75a ± 0.957

1.50a ± 0.577

50.25a ± 3.403

14.00bc ± 2.944

P3

45.75d ± 2.500

1.50a ± 0.577

2.00a ± 0.816

50.75a ± 2.217

17.25c ± 3.096

Hasil penelitian menunjukkan terdapat perbedaan yang nyata pada jumlah neutrofil, eosinofil, limfosit dan monosit di antara perlakuan. Setelah diuji dengan Uji Jarak Berganda Duncan diperoleh hasil adanya peningkatan jumlah neutrofil, monosit yang berbeda nyata (P<0,05) bila dibandingkan dengan kontrol P0(+) dan penurunan jumlah limfosit dan eosinofil yang berbeda nyata (P<0.05) bila dibandingkan dengan kontrol P0(+) . Pada jumlah basofil didapatkan hasil berupa peningkatan jumlah basofil yang tidak berbeda nyata (P>0.05) jika dibandingkan dengan kontrol P0(+).seperti yang terlihat pada gambar grafik 4.4

SKRIPSI




32

80 Neutrofil

60

Eosinofil

40

Basofil

20

Limfosit

0

Monosit P0(-)

P0(+)

P1

P2

P3

Gambar 4.4 . Hitung Jenis Leukosit Ikan Gurame

Gambar 4.5. Pemeriksaan Darah Ikan Gurame (A) Neutrofil (B) Eosinofil (C) Basofil (D) Limfosit (E) Monosit (dokumentasi pribadi, 2016).

SKRIPSI




BAB 5 PEMBAHASAN 5.1 Gambaran Pengamatan Gejala Klinis Proses infeksi bakteri Aeromonas hydrophila dengan konsentrasi 106 sel/ml sebanyak perendaman 1 ml dalam 3 L air rendaman. Perubahan gejala klinis terjadi 3 hari setelah infeksi. Perubahan tersebut meliputi tubuh ikan berwarna lebih gelap, timbul luka di permukaan tubuh, hemoraghi lokal pada bagian caudal tubuh dan insang, exophtalmia, terkelupasnya sebagian sisik, sirip ekor lepas, hingga kematian mendadak. Ikan gurame yang diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila sebelum dilakukan pengambilan darah menunjukkan beberapa perubahan pada permukaan tubuh ikan. Perubahan tersebut berupa bercak merah pada permukaan kulit. Bercak merah disebabkan oleh toksin Aeromonas hydrophila yang merusak jaringan tubuh ikan. Menurut Chopra et all (2000) Aeromonas hydrophila menghasilkan hemosilin yang bekerja memecah dan melisiskan sel-sel darah merah, sehingga sel darah merah keluar dari pembuluh darah dan menimbulkan warna kemerahan pada permukaan kulit. Lipopolisakarida

(LPS)

dari

alga

biru-hijau

Spirulina

platensis

menunjukkan aktivitas imunostimulan yang ditunjukkan dengan adanya stimulasi produksi antibodi makro dan mikroglobulin, dan kenaikan makrofag yang signifikan (Winarni, 2014). Lipopolisakarida (LPS) merupakan salah satu imunostimulan yang digunakan untuk stimulasi sel B, meningkatkan aktivitas dan reaktivitas sel pertahanan seluler ataupun humoral. Secara in vitro peningkatan

33 SKRIPSI




34

respon seluler ditunjukkan oleh aktivitas fagositik yang diukur melalui uji nitro blue tetrazolium (NBT) (Andreson and Siwicki, 1993).

5.2 Gambaran Jumlah Leukosit Berdasarkan hasil penelitian bahwa dengan P0(+) dengan P3 menunjukkan hasil berbeda sangat nyata yaitu P0(+) jumlah leukosit lebih tinggi dari P3. Perlakuan P0(+) memiliki jumlah leukosit tinggi. Peningkatan jumlah leukosit (leukositosis) sebagai respon fisiologis untuk melindungi tubuh dari serangan mikroorganisme. Peningkatan sel darah putih merupakan respon dalam bentuk proteksi terhadap adanya sel asing termasuk adanya infeksi bakteri yang masuk ke tubuh ikan. Hasil produksi leukosit akan diarahkan menuju daerah terinfeksi sebagai pertahanan ikan. Naiknya jumlah leukosit merupakan indikator adanya infeksi yang mengakibatkan terjadinya inflamasi (Akhmad, 2011). Terjadinya infeksi yang berkepanjangan menyebabkan jumlah leukosit meningkat dari nilai normal. Hal ini merupakan mobilisasi cadangan dan pembentukan leukosit berjumlah besar selama beberapa hari atau minggu (Tambayong, 2002). Penurunan P3 terjadi disebabkan oleh leukosit yang ada pada pembuluh darah sangat berkurang (menurun) karena sebagian besar leukosit bergerak menuju jaringan-jaringan yang terinfeksi. Hal ini sependapat dengan Nuryati et al., (2010) bahwa penurunan jumlah leukosit setelah uji tantang disebabkan karena leukosit tersebut aktif dan keluar dari pembuluh darah menuju jaringan yang terinfeksi. Perlakuan P3 dengan perlakuan kontrol P0(-) menunjukkan hasil berbeda sangat nyata (p<0,05) yaitu P3 memiliki leukosit yang lebih tinggi dari perlakuan kontrol PO(-). Pemberian ekstrak Spirulina platensis dalam penelitian ini mampu

SKRIPSI




35

meningkatkan produksi leukosit ikan gurame. Leukosit merupakan salah satu sel darah yang mempunyai peranan penting dalam sistem imun ikan. Imunostimulan memiliki fungsi meningkatkan sistem imun non spesifik sehingga dapat melindungi ikan dari infeksi penyakit. (Duncan dan Klesius 1996). Penelitian Harikrishnan et al., (2003) menyatakan terjadi peningkatan jumlah leukosit ikan mas yang ditretmen ekstrak herbal kemudian diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila.

5.3 Gambaran Hitung Jenis Leukosit 5.3.1

Neutrofil Hasil penelitian menunjukkan P0(+) berbeda sangat nyata (p<0,05) dengan

P3 yaitu P0(+) lebih rendah neutrofilnya. Hal tersebut dikarenakan proses fagositosis jarang terjadi di dalam aliran darah teteapi terjadi di jaringan misalkan di daerah luka, maka sel neutrofil akan tertarik ke daerah tersebut (Bijanti, 2010). Infeksi bakteri Aeromonas hydrophila menyebabkan banyak luka di daerah tubuh ikan sehingga menimbulkan reaksi radang. Neutrofil adalah sel radang yang pertama kali ditemukan di tempat jejas dan masuk ke jaringan sehingga di dalam darah jumlah nya menurun (McGavin and Zachary, 2006). Perlakuan P3 terjadi peningkatan neutrofil, dikarenakan neutrofil merupakan yang bertindak untuk menghilangkan iritasi, bakteri, atau sel dan jaringan yang rusak. peningkatan neutrofil dapat menurunkan perlekatan neutrofil pada dinding pembuluh darah dan diduga meningkatkan pelepasan granulosit dari cadangan thimus serta menghalangi migrasi granulosit, sehingga mengakibatkan neutrofil dalam sirkulasi bertambah (Bijanti dkk., 2010). Neutrofil dalam darah

SKRIPSI




36

akan meningkat jika terjadi infeksi dan berperan sebagai pertahanan pertama dalam tubuh (Harikrishnan et al., 2010).

5.3.2

Eosinofil Hasil penelitian menunujukkan P0(+) berbeda sangat nyata dengan P0(-),

P1, P2 dan P3 dan memiliki eosinofil yang lebih rendah dibandingkan P0(+), hal ini menunjukkan Penurunan eosinofil (eosinopenia) dikarenakan adanya reaksi stress. Penurunan eosinofil dapat juga disebabkan oleh keradangan akut dan kronis, intoksikasi, dan trauma. Peningkatan Eosinofil sebagai respon imun terhadap toksik dan enzim ekstraseluler yang dihasilkan Aeromonas hydrophila (Patrick et al., 2002). 5.3.3

Basofil Perlakuan P0(+), P0(-), P1, P2 dan P3 tidak berbeda nyata (p>0,05).

Peningkatan basofil terjadi akibat adanya proses inflamasi (radang), leukemia, dan fase penyembuhan infeksi. Basofil jarang ditemukan ke di dalam hapusan darah ikan (Bijanti, 2010). 5.3.4

Limfosit

Perlakuan P0(+) berbeda sangat nyata dengan P0(-), P1, P2 dan P3. Perlakuan P0(+) jumlah limfosit meningkat. Limfosit dapat bertambah jumlahnya karena ikan stress (Sakai, 1995). Stres dapat menimbulkan gangguan respon imun non spesifik, diantaranya berupa proliferasi limfosit (pertambahan jumlah sel dan perubahan bentuk menjadi sel T dan sel B). Stres juga memacu keluarnya hormon kortisol yang dapat menekan sistem imun (immunosupresif) setelah diransang dan dapat menimbulkan depresi limfosit dan leukosit (Vadstein, 1997).

SKRIPSI




37

Perlakuan P0(-), P1, P2 dan P3 terjadi penurunan limfosit. Bijanti (2005) menjelaskan penurunan sel limfosit dipengaruhi adanya antigen asing sehingga zat kebal terganggu oleh masuknya infeksi yang menyebabkan jumlah limfosit menurun. Kono et al., (2002) sel limfosit yang teraktivasi oleh imunostimulan dapat meningkatkan aktivitas mitogenik yang diinduksi oleh lipopolisakarida dan menghasilkan macrophage activating factors. Tizard (1982) menyatakan penurunan limfosit disebabkan di darah perifer ditarik dari sirkulasi kedalam jaringan yang mengalami peradangan, adanya stres berkepanjangan akan meningkatkan kadar kartisol dalam darah sehingga menyebabkan hilangnya limfosit dalam sirkulasi darah dan organ limfoid. 5.3.5

Monosit Hasil penelitian pada perlakuan P0(+)berbeda nyata dengan P0(-), P1, P2

dan P3 yang memiliki jumlah monosit tinggi , hal ini terkait dengan peran monosit untuk menghancurkan benda asing yang masuk yaitu bakteri. Monosit merupakan sel dalam aliran darah dan berkembang menjadi makrofag. Ketika mengalami aktivitas, makrofag memiliki kapasitas fagosit lebih kuat dari pada neutrofil meskipun granulosit mempunyai jumlah lebih besar (Irianto, 2005). Peningkatan jumlah monosit terjadi selama kebutuhan jaringan untuk proses fagositosis makromolekuler dan dapat ditemukan pada fase penyembuhan infeksi (Bijanti, 2010). Perlakuan P0(+) berbeda sangat nyata dengan P1, P2 dan P3. P0(+) mengalami penurunan jumlah monosit. (Bijanti, 2010) mengatakan pengaruh dari produksi kortikosteroid yang terjadi pada kondisi ikan gurame setelah diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila juga mempengaruhi jumlah monosit pada darah.

SKRIPSI




38

Hormon kortikosteroid selain berperan sebagai anti inflamasi juga berperan dalam menekan respon imun. Hormon kortikosteroid ini yang diduga sebagai penyebab menurunnya jumlah monosit karena aktivitas kortikosteroid yang menyebabkan monosit tidak dilepaskan oleh thymus dalam waktu yang relatif lama, sehingga jumlah monosit dalam sirkulasi berkurang.

SKRIPSI




BAB 6 KESIMPULAN DAN SARAN

6.1 Kesimpulan Berdasarkan hasil penelitian yang telah dilakukan dapat diambil kesimpulan bahwa pemberian ekstrak Spirulina platensis secara perendaman 2 kali selama 3 jam pada hari pertama dan ketujuh dengan dengan dosis 600mg/ L pada ikan gurame yang diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila mampu meningkatkan aktifitas fagosit melalui sistem pertahanan non spesifik dan pertahanan seluler (sel makrofag, jumlah leukosit, jenis leukosit seperti neutrofil dan monosit).

6.2 Saran Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai perbandingan menghitung jumlah leukosit dan gambaran leukosit ikan gurame (Osphronemus gouramy) dengan pemberian ekstrak Spirulina platensis melalui pakan, agar terbentuknya imun pada ikan semakin cepat terjadi yang diinfeksi Aeromonas hydrophila.

39 SKRIPSI




RINGKASAN

LITTA LASYA EMANINTA SITEPU. Motile Aeromonas Septicaemia adalah penyakit yang sering menyerang ikan. Penyakit ini disebabkan oleh bakteri patogen

oportunistik

yaitu

Aeromonas

hydrophila.

Penyakit

ini

dapat

menimbulkan kematian pada ikan budidaya sehingga merugikan petani ikan dengan tingkat kematian cukup tinggi (80-100%) dalam waktu 1-2 minggu Upaya pencegahan penyakit Aeromonas pada ikan telah dilakukan dengan menggunakan Spirulina platensis yang merupakan bahan alami dan aman. Spirulina platensis salah satu jenis mikroalga dari kelompok Cyanophyceae dapat digunakan sebagai imunostimulan. Penelitian ini bertujuan untuk melihat efek ekstrak Spirulina platensis sebagai imunostimulan terhadap jumlah leukosit dan hitung jenis leukosit ikan gurame (Osphronemus goramy) yang diinfeksi bakteri Aeromonas hydrophila. Metode penelitian menggunakan lima perlakuan atau lima kelompok (n = 5) dan empat ulangan. Dua puluh ikan gurami dengan berat rata-rata sebesar 20 gram dan panjang 9 – 10 cm secara acak dibagi menjadi lima kelompok, Termasuk P0-, P0+, P1, P2 dan P3 masing-masing untuk kontrol (P0-), kelompok yang terinfeksi dengan 106 sel/ml Aeromonas hydrophila (P0+) dan kelompokkelompok yang direndam dengan ekstrak Spirulina platensis pada 200, 400 dan 600 mg/L dan terinfeksi 106 sel/ml Aeromonas hydrophila. Setelah satu minggu adaptasi, P1, P2 dan P3 kelompok direndam dengan ekstrak Spirulina platensis pada hari 1 dan 7 hari kemudian dilakukan perendaman kedua, dan kemudian

40 SKRIPSI




41

terinfeksi dengan 106 sel/ml. Aeromonas hydrophila. Setelah 4 hari infeksi, semua ikan di panen untuk pengumpulan data. Hasil penelitian menunjukkan terdapat perbedaan yang nyata pada jumlah leukosit di atara perlakuan. Setelah diuji dengan Uji Jarak Berganda Duncan diperoleh hasil adanya penurunan jumlah leukosit yang berbeda nyata (P<0.05) bila dibandingkan dengan kontrol P0(+) Sedangkan perlakuan P3 dipreroleh hasil adanya peningkatan jumlah leukosit yang berbeda nyata (p<0,05) bila dibandingkan dengan kontrol PO(-). untuk hasil penelitian hitung jenis sel leukosit menunjukkan terdapat perbedaan yang nyata pada jumlah neutrofil, eosinofil, limfosit dan monosit di antara perlakuan. Setelah diuji dengan Uji Jarak Berganda Duncan diperoleh hasil adanya peningkatan jumlah neutrofil dan monosit, penurunan jumlah eosinofil, limfosit yang berbeda nyata (P<0.05) bila dibandingkan dengan kontrol P0(+). Pada jumlah basofil didapatkan hasil berupa peningkatan jumlah basofil yang tidak berbeda nyata (P<0.05) dengan kontrol P0(+).

SKRIPSI




DAFTAR PUSTAKA Abdel-Daim M.M., S. M. M. Abuzead, S.M. Halawa. 2008. Protective Role of Spirulina platensis against Acute Deltamethrin-Induces Toxicity in Rats. J. Plosone. 8(9). Akkoc, A., A. L. Kocabiyik, M. O. Ozyigit, I. T. Cangul, R. Yilmaz and C. Ozakin. 2008. Burkholderia cepacia and Aeromonas hydrophila Septicaemia in an African Grey Parrot (Psittacus erithacus). Turk. J. Vet. Anim. Sci. 32(3): 233-236. Austin, B. and Dawn A. 2007. Bacterial Fish Pathogens Diseases of Farmed and Wild Fish. Fourth Edition. Springer Praxis Publishing: Chichester, UK Bijanti, R. 2010. Hematologi Ikan (Teknik Pengambilan Darah dan Pemeriksaan Hematologi Ikan). Edisis 2. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Airlangga. Surabaya: Pt Revkapetra Media. ISBN: 978602798231-4 Bijanti, R., M. Gandul A. Y., Retno S. W., R. Budi U. 2010. Patologi Klinik Veteriner. Edisi Pertama. Surabaya: Pusat Penerbitan dan Percetakan Unair. ISBN: 978-979-1330-71-8 Bijanti, R., M. Gandul A. Y., Wiwik T. 2011. Antigenesity protein of Aeromonas hydrophila caused ulcer disease on Goldfish (Cyprinus carpio linn) using indirect ELISA technique. Veterinary Basic Science Departement, Microbiology Department Faculty of Veterinary Medicine, Airlangga University. Surabaya Bijanti, R., R. Budi U., Retno S. W., Setya B., M. Gandul A. Y. 2014. Patologi Klinik Veteriner. Penuntun Praktika. Surabaya: Laboratorium Patologi Klinik Veteriner. Departemen Kedokteran Dasar Veteriner. Fakultas Kedokteran Hewan. Universitas Airlangga. Surabaya

Belay, A., Ota, Y., Miyakawa, K., Shimamatsu, H., 1993. Current knowledge on potential health benefits of Spirulina. J. Appl. Phycol. 5, 235 – 241.

Boajiang G. 1994. Study on Effect and Mechanism of Polysaccharida of Spirulina platensis on Body Immune Function Improvement. South China Normal Univ. China. Pub. in Proc. of Second Asia Pasific Conf. on Algal Biotechnol. Univ. of Malaysia. pp: 33-38. Carrieri, D., Momot D., Brasg, I.A., Ananyev, G., Lenz, O., Bryant, D.A. Dismukes, G.C. 2010. Boosting autofermentation rates and product yields with sodium stress cycling: Application to production of renewable fuels

42 SKRIPSI




43

by cyanobacteria. Journal Applied and Environmental Microbiology. 76(19): 6455-6462. Chairlan., M. Biomed., Estu Lestari. 2011. Pedoman Tekiik dasar Untuk Laboratorium Kesehatan (Manual of Basic Techniques for A Health Laboratory) Edisi 2. Jakarta: Penerbit Buku Kedokteran Egc. Hal. 278 Christwardana, M., M. M. A. Nur, dan Hadiyanto. 2009. Spirulina platensis: Potensinya Sebagai Bahan Pangan Fungsional. Jurnal Aplikasi Teknologi Pangan. 2(1). Christwardana, M., Nur, M.M.A. dan Hadiyanto. 2012. Spirulina platensis potensinya sebagai bahan pangan fungsional. Jurnal Aplikasi Teknologi Pangan. 2 (1): 1-4. Chopra A.K, Xu, D. Ribardo, M. Gonzalez, K. Kuhi, J.W. Peterson, and C.W. Houston. 2000. The Cytotoxic Enterotoxin of Aeromonas hydrophila Induces Proinflammatory Cytokine and Activites Arachidonic Acid Metabolism in Macrophages. J. Infection and Immunity. Departement of Microbiologi and Immunology, University of Texas Medical Branch. Galveston, Texas. P: 2808-2818. Docan, A., Cristea, V., Dediu, L., and Grecu, I. 2010. Studies Of European Catfish (Silurus Glanis L.) Leukocytes Reaction In The Condition Of Rearing In ”Flow-through” Aquaculture Systems. “Lucrări Ştiinţifice, Seria Zootehnie”. Universitatea de Ştiinţe Agricole şi Medicină Veterinară Iaşi. Vol. 53 (15) Duncan PL. Klesius PH. 1996. Effects of feeding Spirulina on specific and nonspecific immune responsses of channel catfish. Journal of Aquatic Animal Health 8 : 308 – 313. El-Sabagh, M.R., Eldaim, M. A. A., D.H. Mahboub, and Abdel-Daim, M. 2014. Effects of Spirulina platensis Algae on Growth Performance, Antioxidative Status and Blood Metabolites in Fattening Lambs. Journal of Agricultural Science. 6(3): 92-98. Harikrishnan, R., C. Balasundaram. MS. Heo. 2010. Herbal supplementation diets on hematology and innate immunity in goldfish against Aeromonas hydrophila, Fish & Shellfish Immunology 28 P : 354-361. Haryani, A. 2012. Uji Efektifitas Daun Pepaya (Carica papaya) untuk pengobatan Infeksi Bakteri Aeromonas hydrophila Pada Ikan Mas Koki (Carassius auratus). Skripsi. Program Program Studi Sarjana Perikanan. Universitas Padjadjaran. Haryani, A. ; Roffi G. ; Ibnu D.B. dan Ayi S. 2012. Uji efektivitas daun papaya (Carica papaya) untuk pengobatan infeksi bakteri Aeromonas hydrophila

SKRIPSI




44

pada ikan mas koki (Carassius auratus). Jurnal Perikanan dan Kelautan 3(3): 213-220. Harvey, J. W. 2012. Veterinary Hematology A Diagnostic Guide and Color Atlas. Missouri United State: Elsevier Saunders http://www.merckmanuals.com/home/blood_disorders/white_blood_cell_dis orders/monocyte_disorders.html [19 Desember 2014]. Herupradoto, B. A. dan Yuliani, G. A. 2010. Karakterisasi Protein Spesifik Aeromonas hydrophila Penyebab Penyakit Ulser Pada Ikan Mas. 11 (3): 158 – 162. Irianto, A. 2003. Probiotik Akuakultur. Gajah Mada University Press. Yogyakarta. Kono, Tomoyo, Aranya Ponpornpisit. Masahiro Sakai. 2003. The analysis of expressed genes in head kidney of common carp (Cyprinus carpio L.) Stimulated with peptidoglycan. Aquaculture Vol. 25. P: 37-52. Kusriningrum, P.S. 2010. Perancangan Percobaan. Cetakan Kedua. Airlangga University Press. 44-51. Lee S, Kim S, Oh Y, Lee Y (2000). Characterization of Aeromonas hydrophila Lubis, Y. P. P.; Yunasfi dan R. Leidonald. 2014. Jenis-jenis bakteri pada luka ikan patin Jurnal Aquacostamarine 2(1): 66-77. Magnadottir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish Shellfish Immunol. 20, 137 151. McGavin, M. D., and Zachary, J. F. 2006. Pathologic Basis of Veterinary Disease 4 edition, Mosby. Metanovic, K., Severin, K., Martinkovic, F., Simpraga, M. Janicki, Z., and Barisic, J. 2007. Hematological and Biochemical Changes in Organically Farmed Sheep Naturally Infected with Fasciola hepatica. J. Parasitol. Res. 101: 1657-1661. Noercholis, A., M. Aziz M., Maftuch. 2013. Ekstraksi Fitur Roundness untuk Menghitung Jumlah Leukosit dalam Citra Sel Darah Ikan. Jurnal EECCIS. Volume 7 Nomor 1. Nuryati, S., Maswan, N. A., Alimuddin, Sukenda, Sumantadinata, K., Pasaribu, F. H., Soejoedono, R. D., dan Santika, A. 2010. Gambaran Darah Ikan Mas Setelah Divaksinasi dengan Vaksin DNA dan Diuji Tantang dengan Koi Herpes Virus Jurnal Akuakultur Indonesia. 9 (1): 9-15.

SKRIPSI




45

Pamungkas Estiamboro. 2005. Pengolahan Limbah Cair PT. Pupuk Kujan dengan Spirulina sp. pada Reaktor Curah (Batch). [Skripsi]. Bogor: Departemen Teknologi Hasil Perairan, Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan, IPB.

Pathol, J., Roos S., Edsman L., Liu H., Söderhäll K. 2009. A Highly Virulent Pathogen, Aeromonas Hydrophila, From The Freshwater Crayfish Pacifastacus Leniusculus. Elsevier. PubMed – NCBI. Patrick, T. K. W., D. W. Bruno, and L. H. Susan Lim. 2002. Diseases and Disorders of Finish in Cage Culture. CABI Publishing. London. 126-127. Park, S. Y., Hyun M. N., Kun P., Seok D. P. 2011. Aeromonas hydrophila Sepsis Mimicking Vibrio vulnificus Infection. Department of Dermatology and Institute of Wonkwang Medical Science. Wonkwang University School of Medicine. Iksan-Korea. Vol. 23 Pingstone, A. 2005. https://commons.wikimedia.org/wiki/Osphronemus_goramy#/media/File:Gi ant.gourami.arp.jpg. Diakses pada tanggal 3 Juli 2015. Price & Wilson. (2005). Patofisiologi: Konsep Klinis Proses-Proses Penyakit. Edisi 6. Jakarta: EGC Ragap, H. M., Khall, H. R., Mutawie, H.H. 2012. Immunostimulant effects of dietary Spirulina platensis on tilapia Oreochromis niloticus. Jurnal of Apllied Pharmaceutical Science, 02: 26-31. Rahmaningsih, S. 2012. Pengaruh Ekstrak Sidawayah dengan Konsentrasi yang Berbeda untuk Mengatasi Infeksi Bakteri Aeromonas hydrophyla pada ikan Nila Ravi, M., De, S. L., Azharuddin, S. and Paul, S.F.D. 2010. The beneficial effects of Spirulina focusing on its immunomodulatory and antioxidant properties. Nutrition and Dietary Supplements. 2: 73-83. Romero, P. 2002. An Etymological Dictionary of Taxonomy. Madrid. Spain. Rosidah dan Wila M. A. 2012. Potensi ekstrak daun jambu biji sebagai antibacterial untuk menanggulangi serangan bakteri Aeromonas hydrophila pada ikan gurame (Osphronemus gourami Lacepede). Jurnal Akuatika 3(1): 19-27. Rukmana HR. 2007. Ikan Gurami Soang. Penebar Swadaya . Jakarta.

SKRIPSI




46

Salasia, S.I.O., D. Sulanjari, dan A. Ratnawati. 2001. Studi Hematologi Ikan Air Tawar. Biologi. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. Sakai, M.,1999. Current Research Status of Fis Immunostimulants Aquaculture 172 : 63-92 Sari, I.W. 2006. Perbandingan Daya Antibakteria Gerusan Bawang Putih dengan Serbuk Bawang Putih Paten pade Ikan Maskoki yang Diinfeksi Aeromonas hydrophila. [Skripsi]. Fakultas Perikanan dan Kelautan. Universitas Airlangga. Setiaji, A. 2009. Efektifitas Ekstrak Daun Pepaya Carica papaya L. Untuk Pencegahan dan Pengobatan Ikan lele dumbo Clarias sp. yang Diinfeksi Bakteri Aeromonas hydrophila [Skripsi]. Perikanan dan Ilmu Kelautan, Institut Pertanian Bogor. Siegel, L., Lewis, T.L., Tripati, N.k., Burnley, V.V., & Latimer, K.S. (2002). Ulcerative Bacterial Dermatitis of Koi (Cyprinus carpio) and Ornamental Goldfish (Carassius auratus auratus). Pathology Undergradute & DVM Student Research Program. Simanjuntak, S. B. I. 2002. Histologi Organ Limphoid Ikan Patin Jambal (Pangasius djambal Bleeker) yang Diberi Immunostimulan Spirulina. Thesis. Program Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor, 62 p. Supriyadi, H. dan A. Rukyani 1990. Imunoprofilaksis Dengan Cara Vaksinasi Pada Usaha Budidaya Ikan. Hal 64-70. Prosiding Seminar Nasional II Penyakit Ikan Dan Udang. Balai Penelitian Perikanan Air Tawar. Bogor. Sutanto, D. 2011. Sukses Budi Daya Gurami. Pustaka Baru. Jakarta/ Tambayong, J. 2002. Buku Ajar Histologi. Jakarta: Buku Kedokteran EGC Tayag, C.M., Y. Yong-Chin Lin, Chang-Che Li, Chyng-Hwa Liou, and Jiann-Chu Chen. 2010. Administration of the Hot Water Extract of Spirulina platensis Enchanced the Immune Response of White Shrimp Litopenaeus vannamei and Its Resistance againts Vibrio alginolyticus. J. Fish and Shellfish Immunology. Elsevier. 28: 764-773. Tarwiyah, 2001. Tehnoik Budidaya Ikan Gurame (Osphronemus gouramy). Dinas perikanan, Daerah khusus Ibukota Jakarta. Taufik, M. (2010). Cirebon Galakkan Budidaya Lele dan Gurame. Tanjung, L. R., Triyanto , Sadi, N.H., Haryani, G. S., dan Said, D. S. 2011. Uji Ketahanan Beberapa Strain Ikan Gurame Terhadap Penyakit Aeromonas. LIMNOTEK. 18(1): 58-71.

SKRIPSI




47

seperti yang terlihat pada gambar 4.1seperti yang terlihat pada gambar 4.1William & Wilkins. Tizard, I.R.. 1982. An Introduction of Veterinary Immunology. W. B. Saunders Company. P.254-257. Tokusoglu O. and M.K. Unal. 2003. Biomass Nutrient Profiles of Three Microalgae: Spirulina platensis, Cholorella vulgaris, and Isochrisis falbana. J. Food Sci. 68: 1144-1148. Triyaningsih, Sarjito, Slamet B. P. 2014. Patogenisitas Aeromonas hydrophila yang Diisolasi dari Lele Dumbo (Clarias Gariepinus) yang Berasal dari Boyolali. Journal of Aquaculture Management and Technology. Volume 3, Nomor 2. 11-17 Yogananth, R. Bhakyaraj, A. Chanturu, T. Anbalagan and K. M. Nila. 2009. Detection of Virulence Gene in Aeromonas hydrophila Isolated from Fish Samples Using PCR Technique. J. Glob. Biotech. 4(1): 51-53. Winarni, E.T. 2014. Potensi Spirulina platensis Dalam Meningktakan Kekebalan Tubuh Ikan Air Tawar. Fakultas Biologi Universitas Jendral Soedirman. Puworkerto. 7 hal. Woro HS, Sukenda, Harris E, dan Utomo NBP. 2014. Pemberian Fikosianin Spirulina Meningkatkan Jumlah Sel Darah, Aktivitas Fagositosis, dan Pertumbuhan Ikan Kerapu Bebek Juvenil. Jurnal Veteriner. 15(1): 46-5

SKRIPSI




LAMPIRAN

48 SKRIPSI




Lampiran 1. Perhitungan Dosis Ekstrak Spirulina Platensis Sebanyak 100% infusum platensis mengandung 50% bahan kering Spirulina platensis. Penentuan dosis berdasarkan pada penelitian Tayag et al., (2010) yaitu 200mg/l, 400mg/l, dan 600 mg/l. Perhitungan untuk perlakuan dalam 5 liter air Akuarium diantaranya P1 : 200 mg/ L× 5 L = 1000 mg = 1 g P2 : 400 mg/ L × 5 L = 2000 mg = 2 g P3 : 600 mg/ L × 5 L = 3000 mg = 3 g

SKRIPSI




Lampiran 2. Metode Pengambilan Darah Ikan gurame .

Pertama sediakan spuit lengkap dengan jarumnya

Dalam pengambilan darah ikan. Pastikan tidak terdapat gelembung air yang masuk dalam spuit

Lalu dilakukan Pengambilan larutan heparin sampai memenuhi dinding syringe dan disisakan sebanyak ± 50µl

Pengambilan darah ikan dengan memposisikan jarum pada garis tengah tubuh belakang sirip anal kemudian masukkan jarum kedalam musculus hingga mencapai tulang belakang (columna spinalis). Kemudian ditarik perlahan-lahan sampai darah masuk ke dalam spuit.

SKRIPSI




Lampiran 3. Pemeriksaan Jumlah Sel Leukosit

Pengenceran darah menggunakan larutan Dacies dengan perbandingan 1:50

Lalu campuran darah dengan larutan dacies diambil dengan pipet Pasteur, kemudian di teteskan pada kamar hitung

Setelah itu darah dicampur dengan larutan Dacies

Setelah itu cover glass di letakkan di atas kamar hitung

Perhitungan jumlah sel seukosit menggunakan mikroskop dengan pembesaran 10x (lensa obyektif). Hitung leukosit di 4 kotak (berwarna hijau) yang terletak pada keempat sudut kamar hitung, seperti pada gambar di bawah ini:

SKRIPSI




Lampiran 4. Pemeriksaan Hitung Jenis Sel Leukosit

Satu tetes sampel darah diletakkan pada slide

Daerah perhitungan (Counting area) sesuai dengan arah panah

Setelah itu buat hapusan darah yang tipis

Setelah hapusan darah kering, dilakukan pengecatan Giemsa pada hapusan darah yang telah difiksasi dengan metanol 95% selama 1-2 menit Perhitungan ini dilakukan terus-menerus sampai 100 sel leukosit terhitung menurut jenisnya dengan menggunakan alat Blood Cell Counter.

SKRIPSI




Lampiran 5. Data Jumlah Leukosit Ikan gurame

SKRIPSI

Perlakuan

N

Jumlah Leukosit = N x 50 (sel/mm3)

P0(-) 1

192

9600

P0(-) 2

199

9950

P0(-) 3

160

8000

P0(-) 4

182

9100

P0(+) 1

542

27100

P0(+) 2

459

22950

P0(+) 3

705

35250

P0(+) 4

631

31550

P1 1

275

13750

P1 2

243

12150

P1 3

233

11650

P1 4

199

9950

P2 1

279

13950

P2 2

248

12400

P2 3

250

12500

P2 4

253

12650

P3 1

285

14250

P3 2

278

13900

P3 3

266

13300

P3 4

289

14450




Lampiran 6. Data Jenis Leukosit Ikan gurame Hasil Pemeriksaan Jenis Leukosit dalam bentuk persentase (Relatif) Perlakuan P0(-) 1 P0(-) 2 P0(-) 3 P0(-) 4 P0(+) 1 P0(+) 2 P0(+) 3 P0(+) 4 P1 1 P1 2 P1 3 P1 4 P2 1 P2 2 P2 3 P2 4 P3 1 P3 2 P33 P3 4

SKRIPSI

Neutrofil 29 20 33 36 18 24 13 29 38 28 38 49 43 39 40 38 46 49 43 45

Jenis Leukosit (%) Eosinofil Basofil Limfosit 3 2 53 3 2 59 2 1 50 2 1 55 4 1 66 3 0 68 3 1 67 5 2 69 2 2 49 3 2 51 2 0 51 2 1 52 3 2 49 1 1 55 1 1 50 2 2 47 1 3 52 2 3 50 1 2 48 2 1 53


Monosit 12 15 5 5 4 6 4 8 13 10 11 14 15 10 17 14 17 19 13 20



Lampiran 7 Hasil Pemeriksaan Jenis Leukosit dalam bentuk Absolut Jenis Leukosit (sel/mm3) Perlakuan P0(-) 1 P0(-) 2 P0(-) 3 P0(-) 4 P0(+) 1 P0(+) 2 P0(+) 3 P0(+) 4 P1 1 P1 2 P1 3 P1 4 P2 1 P2 2 P2 3 P2 4 P3 1 P3 2 P3 3 P3 4

SKRIPSI

Neutrofil Eosinofil 2784 1990 2640 3276 4878 5508 4582.5 9149.5 5225 3402 4427 4875.5 5998.5 4836 5000 4807 6555 6817 5719 6502.5

288 298.5 160 182 1084 688.5 1057.5 1577.5 275 364.5 233 199 418.5 124 125 253 142.5 278 133 289

Basofil 192 199 80 91 271 0 352.5 631 275 243 0 99.5 279 124 125 253 427.5 417 266 144.5

Limfosit Monosit 5088 5870.5 4000 5005 17886 15606 23617.5 21769.5 6737.5 6196.5 5941.5 5174 6835.5 6820 6650 5945.5 7410 6950 6384 7658.5


1152 1492.5 400 455 1084 1377 1410 2524 1787.5 1215 1281.5 1393 2092.5 1240 2125 1771 2422.5 2641 1729 2890

Jumlah Leukosit 9600 9950 8000 9100 27100 22950 35250 31550 13750 12150 11650 9950 13950 12400 12500 12650 14250 13900 13300 14450



Lampiran 7. Laporan hasil uji bakteri Aeromonas hydrophila

SKRIPSI




Lampiran 8. Analisa Statistik Jumlah Leukosit

ANOVA

Jumlah leukosit dalam satuan sel/mm3

Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

df

Mean Square

1002085750.000

4

250521437.500

97446250.000

15

6496416.667

F 38.563

Sig. .000

19

1099532000.000

Dalam bentuk persentase Leukosit a

Duncan

Kelompok

N

Subset for alpha = 0.05 1

2

3

P0(-)

4

9162.50

P1

4

11875.00

11875.00

P2

4

12875.00

12875.00

P3

4

P0(+)

4

13975.00 29212.50 .068

.286

1.000

Sig.

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 4.000.

SKRIPSI




Lampiran 9. Analisa Statistik Jenis Leukosit

Neutrofil ANOVA Dalam bentuk persentase Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

Df

Mean Square

1457.700

4

398.500

15

1856.200

19

F 13.717

364.425

Sig. .000

26.567

Dalam bentuk presentase Neutrofil a

Duncan

Kelompok

N


2

3

P0(+)

4

P0(-)

4

29.50

P1

4

35.25

P2

4

P3

4

4

21.00

35.25 40.00

40.00 45.75

1.000

.135

.212

.135

Sig.


SKRIPSI




Eosinofil ANOVA Dalam bentuk persentase Sum of Squares Between Groups

df

Mean Square

12.300

4

3.075

8.250

15

.550

20.550

19

Within Groups

F

Sig. 5.591

.006

Total

Dalam bentuk persentase Eosinofil a

Duncan

Kelompok

N


2

P3

4

1.50

P2

4

1.75

P1

4

2.25

P0(-)

4

2.50

P0(+)

4

3.75 .098

1.000

Sig.


SKRIPSI




Basofil ANOVA Dalam bentuk persentase Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

df

Mean Square

F

2.200

4

.550

8.750

15

.583

10.950

19

Sig. .943

.466

Dalam bentuk persentase Basofil a

Duncan

Kelompok

N


P0(+)

4

1.00

P1

4

1.25

P0(-)

4

1.50

P2

4

1.50

P3

4

2.00 .114

Sig.


SKRIPSI




Limfosit ANOVA Dalam bentuk persentase Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

df

Mean Square

F

860.200

4

215.050

102.000

15

6.800

962.200

19

31.625

Sig. .000

Dalam bentuk persentase Limfosit a

Duncan

Kelompok

N


2

P2

4

50.25

P1

4

50.75

P3

4

50.75

P0(-)

4

54.25

P0(+)

4

67.50 .063

1.000

Sig.


SKRIPSI




Monosit ANOVA Dalam bentuk persentase Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

df

Mean Square

F

322.300

4

80.575

152.500

15

10.167

474.800

19

Sig. 7.925

.001

Dalam bentuk persentase Monosit a

Duncan

Kelompok

N


2

3

P0(+)

4

5.50

P0(-)

4

9.25

P1

4

12.00

P2

4

14.00

P3

4

9.25

14.00 17.25

.117

.063

.170

Sig.


SKRIPSI




Lampiran 10 Gambar Penelitian

ember yang berisi ikan gurame

Pembuatan ekstrak air panas Spirulina platensis.

Evaporasi dengan freeze dryer.

Hasil ekstrak Spirulina platensis yang siap pakai

SKRIPSI




200 mg/l

400 mg/l 600 mg/l

perendaman ikan gurame dengan ekstrak Spirulina platensis

pengambilan darah ikan gurame

SKRIPSI



ADLN PERPUSTAKAAN UNIVERSITAS AIRLANGGA SKRIPSI

Recommend Documents