ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga KATA PENGANTAR. sehingga penyusun dapat menyelesaikan naskah skripsi dengan judul Aplikasi

ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga

KATA PENGANTAR Puji syukur kehadirat Allah SWT atas segala rahmat dan hidayah-Nya, sehingga penyusun dapat menyelesaikan naskah skripsi dengan judul Aplikasi Penambahan Lakase pada Kombinasi Selulase dan Xilanase dalam Proses Pemutihan Pulp pada Deinking Kertas Koran Bekas Penyusun menyadari bahwa penulisan naskah skripsi ini tidak lepas dari bantuan berbagai pihak, untuk itu penyusun menyampaikan terima kasih kepada: 1. Ibu Prof.Dr. Ni Nyoman Tri Puspaningsih. M.Si selaku pembingbing I dan Bapak Drs.Handoko Darmokoesoemo, DEA selaku pembingbing II yang telah memberikan saran, doa dan bimbingan sampai terselesaikan naskah skripsi ini. 2. Bapak Drs. Purkan, S.si. M.si dan Bapak Dr. rer. nat Ganden Supriyanto, M.Sc selaku dosen penguji yang banyak memberikan saran. 3. Ibu Dra.Hartati, M.Si selaku Dosen Wali yang senantiasa membimbing serta memberikan banyak masukan. 4. Ibu Dr. Alfinda Novi Kristanti, DEA selaku Ketua Departemen Kimia yang senantiasa memberikan dukungan. 5. Seluruh keluarga besar Departemen Kimia dan FSAINTEK yang telah memberikan banyak ilmu serta dukungan. 6. Papa dan Mama selaku orang tua yang memberikan kasih sayang, doa, kepercayaan, dan dukungan baik secara moril maupun materi.

v Skripsi

Aplikasi Penambahan Lakase pada Kombinasi Selulase dan Xilanase dalam Proses Pemutihan Pulp pada Deinking Kertas Koran Bekas

Nadya Aisya


7. Bapak Onny Koerniawan selaku HRD PT.Adiprima Suraprinta yang telah memberikan ijin untuk melakukan penelitian di laboratorium Adiprima. 8. Bapak Ari Sudin dan Bapak Sunoto Subianto selaku pembimbing penelitian dibagian RnD PT.Adiprima Suraprinta yang selalu memberikan arahan dan meluangkan waktu dalam proses pelaksanaan penelitian skripsi. 9. Seluruh pihak yang tidak dapat disebutkan yang banyak memberikan dukungan, saran dan pengalamannya. Penyusun menyadari bahwa dalam penulisan naskah skripsi ini masih banyak kekurangan, sehingga penyusun mengharapkan kritik dan saran yang membangun demi perbaikan naskah skripsi ini selanjutnya. Penyusun berharap naskah skripsi ini dapat bermanfaat bagi perkembangan ilmu pengetahuan.

Surabaya, Juli 2012 Penyusun

Nadya Aisya

vi Skripsi


Nadya Aisya


٧

ْ َ ‫ َوإ َ َرّ َ َ ْر‬٦ ْ َ ِ ِ

َ َ ََْ َ َ ً ْ ُ ْ ُْ ََ ‫ﱠ‬ ‫ ِ ذا‬٥ ‫ا‬ ِ ‫ِإن "! ا‬

“Sesungguhnya bersama kesulitan ada kemudahan. Maka apabila engkau telah selesai (dari sesuatu urusan), tetaplah bekerja keras (untuk urusan yang lain). Dan hanya kepada Tuhanmulah engkau berharap” (QS : Ash Sharh 5-7)

Karya ini kupersembahkan untuk kedua orang tuaku yang telah membesarkanku dan mendidikku sampai aku bisa menjadi sarjana

Skripsi


Nadya Aisya


Kupersembahkan karya ini dan ucapan terima kasih kepada : 1. Mama dan Papa yang merupakan orang tua terhebat di dunia yang selalu memberi semangat, doa, kepercayaan, motivasi, pesan-pesan yang sangat berguna dan dukungan baik moral maupun materi. 2. Kakakku Wildan Firdian dan adikku Aulia Ulfah serta seluruh keluarga besarku yang selalu memberikan semangat, doa dan dukungan. 3. Keluarga besar PT Adiprima Suraprinta khususnya Bapak Onny, Bapak Muhaimin, Bapak Ari Sudin dan Bapak Sunoto Subianto yang banyak membantu, memberikan ilmunya dan membimbing dalam melaksanakan penelitian skripsi ini. 4. Sahabat - sahabat “Keluarga Besar” (Anggi, Jemmy, Asri, Ayu, Ryan, Yan Polan, Tari, Sari) yang selalu menjadi tempat berbagi dan selalu menemani disaat senang atau sedih. 5. Teman-Teman “Biokim Blast” (Dita, Siska, Rohis, Resti, Mumun, Amel, Amal, Septhia, Previta, Luluk, Mbak Kunsha) yang selalu kompak bekerjasama dan saling membantu selama penelitian skirpsi ini. 6. Sahabat – Sahabat Chemistry 2008 (Avi, Faiz, Ike, Ziad, Mariyam, Vincent, Rita, Riza, Hayati, Bella, Suci, dll) yang telah membantu, memberi semangat dan motivasi. 7. Seluruh keluarga besar Chemistry 2008, yang selalu menemani, mendukung dan membantu dalam menuntut ilmu serta selalu berbagi canda tawa bersama. Semangat terus teman-teman! 8. Kakak - kakak alumni (Mbak Anita, Mbak One, Mas Fanani, Mbak Ratna, Mbak Winni, Mbak Zaroh, Mbak Kristin, Mbak Gytha) yang telah memberi dukungan, memberikan semangat dan selalu membantu dalam pelaksanaan penelitian ini. 9. Pak Damam, Mbak Yuli, Mas Rochadi, Pak Giman, Pak Kamto, Mbak Kiki atas bimbingannya dan atas bantuannya dalam penelitian ini di laboratorium.

Skripsi


Nadya Aisya


10. Staff Laboratorium Sentral FMIPA Universitas Negeri Malang dan Staff Laboratorium Dasar Bersama Fakultas Farmasi Universitas Airlangga yang telah membantu dalam pengujian sampel. 11. Teman – Teman “AWONC” (Ayi, Wowe, Wanda, Cynthia) yang selalu memberikan semangat dan dukungan. 12. Teman – Teman KKN-BBM 45 Tanjung Harjo (Fitrah, Fariz, Lusi, Alfi, Fika, Nikita, Ekki, Ninis) yang berjuang bersama saat KKN dan selalu memberikan semangat. 13. Joss Scud Qadhafie yang selalu memberikan semangat, motivasi, segala bantuan dan nasehatnya.

Skripsi


Nadya Aisya


Nadya Aisya., 2012, Aplikasi Penambahan Lakase pada Kombinasi Selulase dan Xilanase dalam Proses Pemutihan Pulp pada Deinking Kertas Koran Bekas. Skripsi ini di bawah bimbingan Prof. Dr. Ni Nyoman Tri Puspaningsih, M.Si dan Drs. Handoko Darmokoesoemo, DEA, Departemen Kimia, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga, Surabaya.

ABSTRAK Deinking merupakan suatu proses untuk melepaskan dan memisahkan partikel tinta cetak dari serat kertas bekas yang didaur-ulang untuk memperbaiki sifat optik dari serat yang diperoleh. Pada penelitian ini proses deinking kertas koran bekas menggunakan kombinasi enzim selulase dari Actinobaccilus sp.dan enzim xilanase rekombinan dari E. coli DH5 α rekombinan (pTP 510) yang ditambahkan enzim lakase dari Aspergillus sp. untuk meningkatkan derajat putih pada serat kertas. Uji aktivitas enzim selulase dan xilanase menggunakan metode DNS (3,5dinitrosalicylic acid) dan uji aktivitas enzim lakase menggunakan metode ABTS. Aktivitas enzim selulase yang dihasilkan pada penelitian ini adalah 0,1425 U/mL, untuk enzim xilanase yang dihasilkan pada penelitian ini adalah 0,1295 U/mL dan untuk enzim lakase yang dihasilkan pada penelitian ini adalah 0,1245 U/mL. Proses deinking menggunakan kombinasi enzim selulase dan xilanase dengan asumsi perbandingan 4:1 dengan dosis enzim sebesar 650 ppm dan penambahan enzim lakase dengan variasi perbandingan aktivitas 0,036; 0,072; 0,109; 0,145; 0,291; 0,436; 0,582 U. Hasil dari proses deinking ini yaitu lembaran kertas selanjutnya di uji derajat putih (brightness), indeks tarik dan karakteristik permukaan (SEM). Hasil derajat putih yang diperoleh sebesar 60,4%ISO pada perbandingan aktivitas penambahan lakase sebesar 0,291 U, hasil ini telah melampaui standart SNI 14-0091-1998 tentang spesifikasi kertas koran yaitu minimal 55%. Hasil indeks tarik yang didapatkan sebesar 30,08 – 26, 18 Nm/g. Nilai indeks tarik yang didapatkan untuk semua kombinasi penambahan enzim sudah memenuhi syarat harga SNI 14-0091-1998 yaitu minimal 21,5 Nm/g. Kata kunci : selulase, xilanase, lakase, deinking

vii Skripsi


Nadya Aisya


Nadya Aisya., 2012, Application of Laccase Addition in Cellulase and Xylanase Combination in Paper Pulp Bleaching Process in The Paper Used Deinking. Script is under guidance of Prof. Dr. Ni Nyoman Tri Puspaningsih, M.Si. and Drs. Handoko Darmokoesoemo, DEA, Departement of Chemistry, Faculty of Science and Technology, Airlangga University, Surabaya.

ABSTRACT Deinking is a process for removing and separating the printing ink particles from waste paper fiber is recycled to improve the optical properties of the fibers obtained. In this research paper newsprint deinking process uses a combination of cellulase enzymes from the recombinant xylanase enzyme Actinobaccilus sp.dan of E. coli DH5 α recombinant (PTP 510) were added laccase enzyme from Aspergillus sp. to increase the degree of white on the paper fibers. Test cellulase and xylanase enzyme activity using the method of DNS (3,5-dinitrosalicylic acid) and laccase enzyme activity assay using ABTS method. Cellulase enzyme activity generated in this study was 0.1425 U / mL, for xylanase enzyme produced in this study was 0.1295 U / mL and for the enzyme laccase produced in this study was 0.1245 U / mL. Deinking process uses a combination of cellulase and xylanase enzymes assuming the ratio of 4:1 with an enzyme dosage of 650 ppm and the addition of laccase enzyme activity with a variation ratio of 0.036: 0.072: 0.109: 0.145: 0.291: 0.436: 0.582 U. The results of deinking process is the next sheet in the test of brightness, tensile index and surface characteristics (SEM). The results obtained for the brightness 60.4% ISO on a comparison of the activity of laccase by the addition of 0.291 U, this result has exceeded the standard SNI 14-00911998 on newsprint specification that is at least 55%. The results obtained for tensile index from 30.08 to 26, 18 Nm / g. Tensile index values obtained for all combinations of addition of enzymes already qualified SNI 14-0091-1998 price that is at least 21.5 Nm / g. Keyword : cellulase , xylanase, laccase, deinking

viii Skripsi


Nadya Aisya


DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL ....................................................................................... LEMBAR PERNYATAAN ............................................................................ LEMBAR PENGESAHAN ............................................................................ LEMBAR PEDOMAN PENGGUNAAN SKRIPSI ....................................... KATA PENGANTAR .................................................................................... ABSTRAK ...................................................................................................... ABSTRACT .................................................................................................... DAFTAR ISI ................................................................................................... DAFTAR GAMBAR ...................................................................................... DAFTAR LAMPIRAN ...................................................................................

i ii iii iv v vii viii ix xii xiii

BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar belakang………………………………………………….. 1.2 Rumusan masalah………………………………………………. 1.3 Tujuan penelitian………………………………………………… 1.4 Manfaat penelitian………………………………………………

1 4 5 5

BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Kertas bekas………………………………………………… 2.2 Tinta cetak…………………………………………………… 2.3 Selulosa………………………………………………………. 2.4 Lignin………………………………………………………….. 2.5 Xilan…………………………………………………………… 2.6 Enzim…………………………………………………………. 2.6.1 Mekanisme kerja enzim……………………………….. 2.6.2 Klasifikasi enzim………………………………………... 2.6.3 Inhibisi enzim…………………………………………… 2.7 Enzim Selulase……….……………………………………….. 2.8 Enzim Lakase……….………………………………………… 2.9 Enzim Xilanase………………………………………………… 2.10 Deingking………………………………………………………. 2.10.1 Derajat putih……………………………………………… 2.10.2 Indeks tarik ……………………………………………… 2.10.3 Scanning Electron Microscopy (SEM)……………………

6 7 8 10 12 13 15 18 19 20 22 23 24 26 27 27

BAB III METODOLOGI PENELITIAN 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian………………………………….. 3.2 Sample Penelitian……………………………………………..... 3.2.1 Kertas koran……………………………………………… 3.2.2 Mikroba………………………………………………….. 3.3 Alat dan Bahan Penelitian……………………………………… 3.3.1 Alat penelitian……………………………………………

29 29 29 29 30 30

ix Skripsi


Nadya Aisya


3.4 3.5

3.3.2 Bahan penelitian…………………………………………. Diagram penelitian……………………………………………. Prosedur penelitian……………………………………………. 3.5.1 Pembuatan reagen………………………………………. 3.5.1.1 Pembuatan larutan NaOH 0,2 M………………….. 3.5.1.2 Pembuatan larutan buffer universal ……………... 3.5.1.3 Pembuatan larutan asam 3,5 dinitrosalisilat……….. 3.5.1.4 Pembuatan larutan CMC…………………………… 3.5.1.5 Pembuatan larutan oat spelt-xylan 1%....................... 3.5.1.6 Pembuatan larutan induk glukosa 10 mg/mL………. 3.5.1.7 Pembuatan larutan induk xilosa 10 mg/mL………. 3.5.1.8 Pembuatan larutan subtrat ABTS………………… 3.5.2 Produksi enzim selulase………………………………… 3.5.2.1 Pembuatan media cair…………………………….. 3.5.2.2 Pembuatan media padat…………………………… 3.5.2.3 Pembuatan inokulum……………………………… 3.5.2.4 Produksi enzim selulase…………………………… 3.5.2.5 Pembuatan kurva standar glukosa………………… 3.5.2.6 Uji aktivitas selulase………………………………. 3.5.3 Produksi enzim lakase………………………………….. 3.5.3.1 Pembuatan media PDA………………………..…… 3.5.3.2 Pembuatan media PDA cawan petri………………... 3.5.3.2 Pembuatan media PDA agar miring………………… 3.5.3.4 Pembuatan media cair……………………….…….. 3.5.3.5 Produksi enzim lakase………………….………….. 3.5.3.6 Uji aktivitas enzim lakase………………………….. 3.5.4 Produksi enzim xilanase………………………………... 3.5.4.1 Pembuatan media padat……………………………. 3.5.4.2 Pembuatan media cair……………………………… 3.5.4.3 Pembuatan inokulum……………………………… 3.5.4.4 Produksi enzim xilanase……………………………. 3.5.4.5 Kurva standar xilosa……………………………….. 3.5.4.6 Uji aktivitas enzim xilanase………………………. 3.5.5 Proses pulping…………………………………………… 3.5.5.1 Proses pulping dengan penambahan enzim lakase dari Aspergillus sp. pada kombinasi enzim selulase dari Actinobaccilus sp. dan enzim xilanase dari E. coli (pTP 510) 3.5.6 Proses flotasi…………………………………………… 3.5.7 Pembuatan lembaran tangan dan pengujian…………..

BAB IV PEMBAHASAN 4.1 Produksi enzim………………………………………………… 4.1.1 Produksi enzim selulase………………………………. 4.1.2 Produksi enzim xilanase……………………………… 4.1.3 Uji aktivitas enzim selulase dan enzim xilanase…….

30 31 32 32 32 32 33 33 33 33 34 34 34 34 34 35 35 35 35 37 37 37 37 37 38 38 39 39 40 40 40 41 41 42

42 43 43

44 44 45 46

x Skripsi


Nadya Aisya


4.1.4 Produksi dan uji aktivitas enzim lakase…………….. 4.2 Proses Biodeinking…………………………………………………… 4.3 Pengujian lembaran kertas…………………………………… 4.3.1 Pengujian derajat putih (brightness)…………………. 4.3.2 Pengujian indeks tarik……………………………….. 4.3.3 Pengujian SEM……………………………………….

48 49 50 50 53 54

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan………………………………………………….. 5.2 Saran…………………………………………………………...

56 56

DAFTAR PUSTAKA…………………………………………………….

58

LAMPIRAN

xi Skripsi


Nadya Aisya


DAFTAR GAMBAR Judul Gambar

Halaman

2.1

Struktur molekul selulosa……………………………………………… 8

2.2

Unit fenil propana dari lignin ................................................................. 10

2.3

Prekursor penyusun lignin ...................................................................... 11

2.4

Struktur molekul xilan ............................................................................ 13

2.5

Interaksi substrat dan enzim model Lock and Key .................................. 16

2.6

Interaksi substrat dan enzim model Induced fit....................................... 17

4.1

Reaksi perubahan ABTS menjadi radikal kation ABTS…… ................... 49

4.2

Kurva hubungan antara dosis penambahan lakase dengan derajat putih……………………………………………… ................................... 51

4.3

Kurva hubungan antara dosis penambahan enzim lakase dengan nilai indeks tarik …………………………………………………………... .... 53

4.4

Topografi permukaan serat…………………………………………........ 54

xii Skripsi


Nadya Aisya


DAFTAR LAMPIRAN

Nomor

Judul

1

Data hasil uji aktivitas selulase

2

Data hasil uji aktivitas xilanase

3

Data hasil uji aktivitas lakase

4

Perhitungan indeks tarik tiap sampel

5

Perhitungan data Stress, Strain dan Modulus Young

xiii Skripsi


Nadya Aisya


BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Dewasa ini penggunaan sumber daya alam hutan pada kehidupan manusia semakin meningkat pesat. Hal ini akan berpengaruh dengan semakin bertambah banyaknya penebangan pohon yang dapat merusak ekosistem hutan. Salah satu penggunaan hasil hutan yaitu kayu sebagai bahan baku kertas. Sebelum menjadi kertas, kayu diolah menjadi pulp yang terdiri dari serat-serat (selulosa dan hemiselulosa). Meskipun semua kayu dapat dibuat menjadi bahan baku kertas yaitu pulp, tetapi hanya jenis kayu tertentu saja yang digunakan untuk pulp. Beberapa penyebab hal tersebut adalah kualitas serat dan ketersediaan, waktu tumbuh yang lama, energi pemanenan dan pemrosesan yang tinggi serta masalah lingkungan (Smook. G.A., 1989). Salah satu alternatif untuk mengatasi masalah keterbatasan dan mahalnya bahan baku kertas dan pulp asli (virgin pulp), yaitu dengan pemakaian kembali kertas bekas sebagai bahan baku kertas. Kertas bekas dapat dikumpulkan dari berbagai sumber antara lain perkantoran, rumah tangga, pembuangan sampah dan lain sebagainya. Kertas bekas merupakan salah satu sumber serat yang potensial dan mempunyai prospek ekonomis yang tinggi. Kertas bekas yang telah mengalami pengolahan merupakan bahan baku serat yang dikenal dengan istilah serat sekunder (secondary fiber) (Rismijana et al, 2003). Serat-serat sekunder merujuk kepada kertas-kertas daur ulang (Smook G.A., 1989).

1 Skripsi


Nadya Aisya


2

Untuk memperoleh serat dari kertas bekas biasanya dilakukan melalui proses deinking yaitu proses penghilangan tinta dari serat. Selama ini, proses penghilangan

tinta

sudah

dilakukan

secara

konvensional

(deinking

konvensional). Proses deinking konvensional ini terdiri dari tahapan proses flotasi dan pencucian yang bertujuan untuk menghilangkan tinta dan kontaminan dari suspensi pulp (Wirawan, et al., 2008). Pada proses penghilangan tinta secara konvensional dilakukan penambahan bahan kimia untuk membantu pelepasan tinta dari serat seperti natrium hidroksida, natrium silikat dan hidrogen peroksida (Wirawan et al, 2008). Dengan menggunakan bahan kimia tersebut akan menghasilkan limbah kimia dan akan berdampak terhadap pencemaran lingkungan. Saat ini dengan pesatnya perkembangan dibidang bioteknologi, memberikan alternatif baru dalam pengembangan industri pulp dan kertas. Salah satu alternatif yaitu penggunaan enzim. Enzim telah digunakan untuk biopulping, biobleaching, konversi starch, waste water treatment, pitch kontrol, dan banyak lainnya (Rismijana et al, 2003). Keuntungan pemakaian enzim antara lain drainage stock lebih cepat, mempercepat waktu penggilingan, derajat putih yang diperoleh dengan proses konvensional (Rismijana et al, 2003). Enzim yang umum digunakan dalam daur ulang kertas bekas adalah selulase, xylanase, hemiselulase (Bajpai, 1998). Proses daur ulang kertas menggunakan enzim disebut biodeinking. Metode biodeinking sedang dikembangkan untuk mengurangi pemakaian bahan kimia berbahaya. Metode ini dapat dilakukan dengan menggunakan kombinasi dua enzim yang

Skripsi


Nadya Aisya


3

berpotensi dalam pelepasan tinta dan menghasilkan serat sekunder dengan kualitas yang baik. Dalam penelitian sebelumnya yang telah dilakukan oleh Winni Pilarsih (2011) digunakan kombinasi dalam proses biodeinking yaitu, selulase dan xilanase. Penggunaan enzim selulase dengan xilanase pada proses deinking memberikan hasil kualitas kertas yang lebih baik daripada deinking konvensional. Proses deinking dengan menggunakan kombinasi enzim xilanase dengan enzim selulase sudah efektif dan sudah memenuhi Standar Nasional Indonesia, karena brightness kertas yang diperoleh sudah memenuhi standar ISO. Hasil brightness yang didapatkan sebesar 55,88% ISO, dengan ketahanan tarik sebesar 33,01 Nm/g. Oleh karena itu, dikembangkan juga metode biodeinking dengan menggunakan menambahkan enzim lakase dari Aspergillus sp pada kombinasi enzim selulase dari Actinobaccilus sp. dan enzim xilanase dari E. coli DH5 α rekombinan (pTP510) untuk meningkatkan kefektifan proses biodeinking dan diharapkan lebih meningkatkan lagi derajat putihnya. Pemilihan penggunaan enzim selulase dikarenakan kandungan utama dari serat kertas adalah selulosa yang pada kertas bekas tertempel oleh tinta. Dengan demikian enzim selulase dapat mempermudah pelepasan tinta pada serat kertas sebelum dilakukan proses flotasi. Penggunaan enzim xilanase rekombinan dari E. coli (pTP 510) dipilih selain agar dapat mendukung selulase dalam pelepasan tinta pada kertas bekas juga dikarenakan pada potensinya dalam mendegradasi hemiselulosa yang terikat bersama lignin yang masih terkandung di dalam kertas koran bekas. Di samping itu, enzim ini diketahui memiliki aktivitas yang baik karena telah mengalami

Skripsi


Nadya Aisya


4

proses rekombinan (Puspaningsih, 2004). Sedangkan, enzim lakase (EC 1.10.3.2, bezenediol: oxygen oxidoreductase) merupakan salah satu enzim ektraseluler yang berfungsi mengkatalis proses hidrolisis lignin, sehingga dapat digunakan sebagai bahan aktif pada proses pemutihan pulp. Dengan kemampuan ini, enzim lakase dari Aspergillus sp dipakai oleh industri pulp, kertas dan tekstil untuk mendapatkan proses produksi yang efisien dan ramah lingkungan (Risdianto et al, 2008). Hasil keefektifitasan kombinasi enzim tersebut dapat dilihat dari kualitas serat sekunder yang dihasilkan akan dibuat lembaran kertas dengan gramatur 55 g/m2. Lembaran tangan tersebut akan diuji derajat putih, ketahanan tarik dan karakteristik permukaannya. Kemudian, hasil tersebut akan dibandingkan dengan Standar Nasional Indonesia (SNI) sehingga dapat diketahui dengan pasti kualitas kertas hasil deinking dengan menggunakan penambahan enzim lakase dari Aspergillus sp. pada kombinasi enzim selulase dari Actinobaccilus sp dan enzim xilanase dari E. coli DH5 α rekombinan (pTP510). 1.2 Rumusan Masalah Dari latar belakang di atas maka dapat dirumuskan masalah sebagai berikut. Bagaimanakah keefektifitasan penambahan enzim lakase dari isolat Aspergillus sp. pada kombinasi enzim xilanase rekombinan dari E. coli (pTP 510) dengan enzim selulase dari Actinobaccilus sp. dalam mendegradasi permukaan serat kertas koran bekas pada proses deinking ?

Skripsi


Nadya Aisya


5

1.3 Tujuan Penelitian Tujuan penelitian ini adalah untuk : Menentukan keefektifitasan penambahan enzim lakase dari isolat Aspergillus sp., pada kombinasi enzim xilanolitik rekombinan dari E. coli (pTP 510) dengan enzim selulase dari Actinobaccilus sp. dalam mendegradasi permukaan serat kertas koran bekas. 1.4 Manfaat Penelitian Meningkatkan efisiensi waktu proses deinking kertas koran bekas dan kualitas derajat putih (brightness) serta ketahanan tarik kertas hasil pengolahan dari kertas koran bekas melalui proses deinking dengan menggunakan penambahan enzim lakase dari isolat Aspergillus sp. pada kombinasi enzim xilanase rekombinan dari E. coli (pTP 510) dengan enzim selulase dari Actinobaccilus sp.

Skripsi


Nadya Aisya


BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Kertas Bekas Kertas koran merupakan salah satu jenis kertas yang banyak digunakan sebagai media massa cetak yang diterbitkan setiap hari dengan jumlah yang besar dan setelah dibaca langsung dibuang (Rismijana et al, 2003). Kertas koran mengandung sekitar 80-85 % pulp mekanis dan 15-20 % pulp kimia yang berfungsi untuk meningkatkan kekuatan kertas. Kertas koran dapat dibuat dari berbagai bahan baku diantaranya kertas koran bekas (ONP), campuran kertas bekas (MWP), CPO, campuran pulp dan kertas bekas. Pada kertas koran bekas, kontaminan utamanya adalah tinta cetak yang umumnya terdiri dari pigmen atau butiran tinta yang berperan sebagai pembawa warna berbentuk partikel padatan kecil, vehicle atau zat pembawa pigmen berfungsi mengalirkan pigmen tinta pada kertas selama pencetakan sehingga dapat berikatan dengan serat. Vehicle umumnya berupa resin, minyak nabati, dan larutan volatile (Paraskevas et al, 1990). Kertas koran bekas merupakan salah satu bahan kertas yang potensial untuk dimanfaatkan kembali menjadi kertas daur ulang. Akan tetapi, kertas koran bekas memiliki warna yang gelap karena tidak mengalami proses pemutihan sehingga masih mengandung lignin. Proses cetak pada kertas koran umumnya dilakukan secara offset atau letterpress. Sistem pencetakan pada kertas memakai tinta dengan zat pembawa pigmen tidak mengering tetapi hanya diabsorpsikan pada serat dan dicetakkan pada kertas yang tidak disalut (uncoated). Zat pembawa pembawa pigmen

6 Skripsi


Nadya Aisya


7

tersebut dapat disabunkan dengan alkali untuk menjadi partikel-partikel halus yang dapat dihilangkan secara efisien dengan proses deinking konvensional yakni cara flotasi atau washing. Dengan perkembangan dalam bidang bioteknologi, biodeingking semakin diminati dengan penggunaan enzim untuk menghilangkan kontaminan tinta dari kertas bekas karena lebih ramah lingkungan dan tidak banyak limbah dari penggunaan bahan kimia (Rismijana et al, 2003). Kertas bekas yang diperoleh dari perkantoran merupakan kertas bekas yang tintanya sulit dihilangkan karena dicetakkan menggunakan proses fotokopi atau dengan printer laser yang tintanya masuk ke dalam serat (Toulousia, 2008). 2.2 Tinta Cetak Tinta cetak adalah cairan atau pasta berwarna yang diformulasikan untuk ditransferkan atau diproduksi menghasilkan gambar pada suatu media. Tinta umumnya digunakan untuk mencetak pesan, memberi perlindungan dan memberikan efek dekoratif pada media yang dicetak. Tinta cetak digunakan pada sebagian besar media seperti : kertas, plastik, gelas, dan tekstil, juga pada media yang berbentuk rata (Leach, 1993) Ditinjau dari proses pencetakan tinta pada kertas, dapat dibedakan menjadi dua cara. Kertas koran mengandung tinta yang dicetak berdasarkan proses impact. Tinta yang digunakan merupakan pigmen karbon yang terdispersi dalam minyak mineral atau disebut minyak dasar (Retnowati et al, 1988) Tinta fotokopi dan tinta cetak umumnya terbuat dari bahan polietilen, kopolimer stiren dan senyawa-senyawa serupa yang dicampur dengan karbon dan sedikit pigmen lain. Partikel-partikel tinta yang menempel pada kertas bekas dapat

Skripsi


Nadya Aisya


8

dipisahkan dengan cara menambahkan bahan kimia seperti sabun dan dispersan ke dalam proses pengapungan dan pencucian dan juga proses pemanasan (Retnowati et all, 1988) Tinta untuk mencetak mempunyai dua dasar, yaitu pigmen atau bahan pencelup untuk memberikan warna pada lembaran dan vehicle (minyak dasar), sarana yang membawa pigmen atau zat pencelup. Minyak dasar pada umumnya terbuat dari minyak sayur, mineral yang didistilasi, resin, plastik dan pelarut yang mudah menguap. Ditambahkan bahwa penetrasi tinta ke dalam serat kertas dipengaruhi oleh sifat cairnya dan daya lekatnya yang baik (Shrinath et al, 1991). 2.3 Selulosa Selulosa ialah senyawa organik dengan rumus (C6H10O5)n. Selulosa merupakan kandungan utama dalam serat tumbuhan, yang berfungsi sebagai komponen struktur tumbuhan terutama pada dinding sel. Selulosa adalah kumpulan polisakarida yang dengan rantai linear yang lurus yang merupakan hasil dari gabungan atau ikatan glukosa jenis β dari beberapa ratus atau lebih unit glukosa. Selulosa tidak larut air tetapi larut dalam larutan kupri hidroksida berammonia (uji Schweitzer). Selulosa juga tidak memberi warna biru dengan uji iodin.

Gambar 2.1. Struktur molekul selulosa (Klemm et al, 2005)

Skripsi


Nadya Aisya


9

Selulosa terdapat pada dinding sel bersama lignin berperan dalam mengokohkan struktur tumbuhan. Struktur berkristal serta adanya lignin dan hemiselulosa

disekeliling

selulosa

merupakan

hambatan

utama

dalam

menghidrolisis selulosa. Kristalisasi selulosa dan pengerasan fibril selulosa oleh lignin membentuk suatu senyawa lignoselulosa yang keras. Hidrolisis selulosa dan hemiselulosa pada bahan berlignoselulosa sangat sulit dilakukan kecuali lignin dilarutkan atau dihilangkan terlebih dahulu. Selulosa pada kayu umumnya berkisar 40-50%, sedangkan pada kapas hampir mencapai 98%. Pada dinding sel molekul selulosa, molekul dikelompokkan sejajar satu sama lain membentuk mikrofibril (dengan diameter 45x85 Ǻ ) (Robinson, 1995). Mikrofibril-mikrofibil ini tersusun menjadi fibril. Selulosa dapat ditemukan pada semua tanaman dari pohon bertingkat tinggi hingga organisme primitif seperti rumput laut, flagelata, dan bakteri. Selulosa bahkan dapat diperoleh dalam dunia binatang, seperti tunicin, zat kutikula tunicate, adalah identik dengan selulosa nabati (Fengel dan Wegener, 1995). Jumlah selulosa di alam sangat berlimpah sebagai limbah tanaman pertanian seperti jerami padi, kulit jagung, gandum, kulit tebu dan lainlain. Pemecahan selulosa dilakukan oleh selulase. Menilik hasil pemeriksaan pada fungsi sistem selulase sekurang-kurangnya terdiri dari tiga enzim : 1. Enzim endo-β-1,4-glukanase mempengaruhi secara serentak ikatan β1,4 di dalam makromolekul dan menghasilkan potongan-potongan besar memotong mulai dari ujung-ujung bebas.

Skripsi


Nadya Aisya


10

2. Enzim ekso-β-1,4-glukanase memotong mulai dari ujung-ujung rantai disakarida selobiosa. 3. Enzim β-glukosidase menghidrolisis selobiosa dengan membentuk glukosa (Schlegel, 1994). 2.4 Lignin Lignin adalah suatu polimer kompleks dengan berat

molekul tinggi,

tersusun atas unit-unit fenilpropana (coumaril alkohol, coniferil alkohol, dan/atau sinapil alkohol) yang berikatan satu sama lain dengan ikatan karbon dengan karbon (C-C), ikatan karbon dengan oksigen (C-O) dan juga adanya ikatan eter. Felipropana adalah unit dasar lignin yang diketahui sudah sejak lama, tetapi sulit diterima bahwa ada gugus aromatik. Adanya gugus aromatik dibuktikan oleh Lange pada tahun 1954 dengan spektroskopi ultraviolet (Achmadi, 1990).

Gambar 2.2. Unit fenil propana dari lignin (Sucipto, 2009) Lignin merupakan produk alami yang dihasilkan oleh semua tumbuhan berkayu (Pizzi, 1994). Kendungan lignin dalam kayu mencapai 15-40% dari berat kering kayu dengan variasi dalam kandungan lignin yang disebabkan oleh spesies, kondisi pertumbuhan, bagian dari tumbuhan yang dianalisis dan banyak faktor lain. Dari segi morfologi, lignin merupakan senyawa amorf yang terdapat dalam

Skripsi


Nadya Aisya


11

lamela tengah maupun dalam dinding sekunder (Sucipto, 2009). Lignin terinkrustasi di dalam jaringan tumbuhan, lignin terletak di dalam lamel sekunder

dinding sel berfungsi untuk mengikat sel secara bersama-sama dan untuk memberikan keteguhan dalam sel. Lignin adalah produk massa tumbuhan yang secara biologi paling lambat dirusak. Dengan demikian lignin merupakan sumber

utama bahan organik yang lambat dirusak yang ada dalam tanah, terutama asamasam huminat (Schlegel, 1994) Secara garis besar, kegunaan lignin dapat digolongkan menjadi tiga kelompok, yaitu sebagai bahan bakar, sebagai produk polimer dan sebagai sumber

bahan-bahan kimia dengan dengan berat molekul rendah. Dalam proses pembuatan pulp, lignin merupakan limbah yang tidak bernilai dan diusahakan dihilangkan

(Sucipto, 2009) .

A a

b

c

Gambar 2.3. Prekursor penyusun lignin; a) coumaril alcohol, b) coniferil alcohol, c) sinapil alcohol (Toumela, 2002) Penguraian lignin di dalam tumbuh-tumbuhan yang masih hidup diuraikan oleh beberapa fungi. Dapat dianggap bahwa serangan pertama pada perusakan lignin terjadi oleh eksoenzim. Karena fungi yang menyerang lignin pada

Skripsi


Nadya Aisya


12

umumnya mengekresi fenoloksidase, maka enzim ini bertanggung jawab untuk pembelahan ikatan aromatik (Schlegel, 1994). 2.5 Xilan Xilan tergolong karbohidrat yang juga disebut sebagai hemiselulosa. Hemiselulosa terdiri dari pentose (xilosa, arabinosa) atau hexosa (glukosa, manosa, galaktosa) maupun uranoat (Beg et al, 2001). Untuk menguraikan senyawa ini secara enzimatik diperlukan kerja sinergi beberapa enzim xilanolitik. Penguraian xilan oleh enzim xilanolitik akan menghasilkan oligosakarida dan monosakarida yang selanjutnya dapat dimanfaatkan untuk membuat senyawa turunannya, seperti xilitol, 2,3-butanadiol, atau etanol (Herrmann et al, 1997., Thomson, 1993). Enzim xilanolitik dapat ditemukan pada berbagai macam kapang dan bakteri sebagai enzim ekstraselluler (Beg et al., 2001). Di dalam tumbuh-tumbuhan hemiselulosa ini berfungsi sebagai zat cadangan atau penopang. Kandungan xilan pada tumbuhan diketahui pada merang, kulit pohon dan ampas sampai 30%, pada kayu konifera sampai 7-12% dan kayu pohon berdaun sampai 20-25% (Schlegel, 1994). Xilan merupakan komponen hemisellulosa dengan penyusun utama berupa xilosa (C5H10O5). Rantai xilan terdiri dari β-D-xilosa yang bersambung secara 1,4glikosidik yang merupakan komponen utama hemiselulosa, memiliki kerangka dasar residu ikatan 1,4-β-D-xilopiranosil yang rantai sampingnya disubtitusi dengan asetil, 4-o-metil-D-glukuronisil dan α-arabinofuranosil (Subramaniyan et al, 2002). Rantai ini secara resmi berasal dari rantai selulosa dengan mengganti gugus CH2-OH dengan atom H tetapi derajat polimerisasinya jauh lebih rendah

Skripsi


Nadya Aisya


13

(30-100). Beberapa xilan mengandung tambahan arabinosa, glukosa, galaktosa dan glukuronat (Schlegel, 1994). Struktur xilan terlihat pada Gambar 2.4.

Gambar 2.4. Strutur molekul xilan (Beg et al., 2001) Hemiselulolsa mempunyai struktur yang amorf, random, dan kekuatan strukturnya lebih lemah dibanding selulosa. Oleh karena itu hemiselulosa lebih mudah dihidrolisis oleh enzim, asam atau basa (Saha, 2003). Hidrolisis enzimatis mempunyai nilai ekonomis dan komersial yang lebih tinggi dan penting karena pembelahan struktuk kayu oleh enzim akan lebih mudah dalam proses pemutihan pulp dan kertas secara industri. Perlakuan ini akan mengurangi pemakaian teknik pemutihan konvensional yang menggunakan sejumlah besar bahan kimia seperti klorin yang berdampak buruk terhadap lingkungan (Asmarani, 2006).

2.6 Enzim Enzim adalah katalis katalis biologi yang terutama bersifat protein. Katalis adalah zat kimia yang dapat mengubah laju reaksi, dan karena dapat berubah selama reaksi, ia harus dalam keadaan yang sama sesudah dan sebelum reaksi (Ackerman, 1988). Enzim adalah senyawa organik yang dihasilkan oleh sel-sel hidup. Ini mengapa enzim dikatan dikatan sebagai katalis biologi. Katalis juga menampakan

Skripsi


Nadya Aisya


14

spesifitas atau kekhususan. Artinya, suatu katalis tertentu akan berfungsi pada hanya suatu jenis reaksi tertentu (Pelczar, 1986) . Enzim memiliki tenaga katalitik yang luar biasa, yang biasanya jauh lebih besar dari katalisator sintetik. Spesifitas enzim amat tinggi terhadap substratnya, enzim mempercepat reaksi kimiawi spesifik tanpa pembentukan produk samping dan molekul ini berfungsi di dalam larutan encer pada keadaan suhu dan pH normal (Lehninger, 1997). Sekalipun semua enzim pada mulanya dihasilkan di dalam sel, beberapa diekskresikan melalui dinding sel dan dapat berfungsi di luar sel. Jadi dikenal dengan dua tipe, enzim ekstraselular atau eksoenzim (berfungsi di luar sel) dan enzim intraselular atau endoenzim (berfungsi di dalam sel). Fungsi utama eksoenzim ialah melangsungkan perubahan-perubahan seperlunya pada nutrient di sekitarnya sehingga memungkinkan nutrient tersebut memasuki sel. Enzim intraselular mensintesis bahan selular dan juga menguraikan nutrient untuk menyediakan energy yang dibutuhkan oleh sel (Pelczar, 1986). Enzim dapat berupa protein murni atau gabungan antara protein dengan gugusan-gugusan kimiawi lainnya. Sepertinya halnya semua protein, enzim akan terdenaturasikan oleh panas, terpresipitasikan (terendapkan) oleh etanol atau garam-garam anorganik berkonsentrasi tinggi seperti ammonium sulfat dan tidak dapat melewati membran semipermeable atau membran selektif dengan perkataan lain tak terdialisis. Protein enzim adalah molekul yang amat besar, berat molekulnya berkisar antara kurang lebih 10.000 sampai satu juta. Banyak enzim terdiri dari protein yang bergabung dengan molekul organik dengan berat molekul rendah yang dinamakan koenzim. Bagian proteinnya disebut

Skripsi


Nadya Aisya


15

apoenzim. Bila bergabung, kedua bagian tersebut membentuk enzim yang lengkap, disebut holoenzim (Pelczar, 1986). Bagian lain yang yang terdiri dari ion atau molekul-molekul dari jenis lain disebut kofaktor misalnya HPO4- atau ion logam yang berperan serta dengan enzim dalam mentransformasikan substrat. Kofaktor dapat berupa ion logam, misal misal Mg2+, Fe2+, atau senyawa organik yang disebut koenzim, misal vitamin B (Hein, et al., 1993). Mereka sangat diperlukan sebagai katalisator oleh enzim dalam menjalankan perannya. Jadi kofaktor sangat penting umtuk membentuk tempat aktif dari enzim (Manitto, 1992). 2.6.1 Mekanisme kerja enzim Kebanyakan reaksi enzim dapat dinyatakan dengan persamaan reaksi keseluruhan sebagai berikut : Enzim (E) + Substrat (S) ⇌ komplek enzim – substrat ES ⇌ produk (P) + Enzim (E)

Enzim E dan substrat S bergabung menjadi kompleks enzim-substrat ES, yang kemudian terurai menjadi produk P. Enzimnya tidak terkonsumsi di dalam reaksi tersebut tetapi dilepaskan kembali untuk reaksi selanjutnya dengan molekul substrat yang lain. Proses ini diulang ulang banyak sekali sampai semua molekul substansi yang tersedia habis terpakai. Yang menjadi pokok dalam teori mengenai mekanisme kerja enzim ialah konsep aktivasi substrat yang terjadi setelah pembentukan kompleks enzim substrat (ES). Aktivasi memungkinkan substrat diubah oleh kerja enzim. Terjadinya aktivasi molekul substrat ini disebabkan oleh aktivitas kimiawi substrat yang tinggi terhadap daerah-daerah tertentu pada permukaan enzim yang

Skripsi


Nadya Aisya


16

disebut sisi aktif enzim (Pelczar, 1986). Sisi aktif enzim adalah tempat pengikatan substrat yang mengandung residu asam amino sebagai gugus katalitiknya dan secara langsung terlibat dalam pembuatan serta pemutusan ikatan selama proses katalisis Kompleks enzim-substrat berikatan melalui ikatan elektrostatik, ikatan hydrogen, gaya van der Walls dan interaksi hidrofobik. Ikatan yang terjadi antara enzim dan substrat ini merupakan ikatan yang lemah. Interaksi yang terjadi antara molekul enzim dan substrat melibatkan gugus reaktif baik dari enzim maupun dari substrat. Enzim hanya dapat mengikat substrat yang memiliki gugus reaktif yang sama (Stryer et al, 2002). Model interaksi enzim substrat dibedakan menjadi : 1. Model Lock and Key (lubang dan anak kunci) : dikemukakan oleh Emil Fischer pada Tahun 1890. Pada model ini, spesifitas pengikatan tergantung pada ketepatan pengaturan atom-atom pada sisi aktif. Substrat dapat terikat pada enzim bila mempunyai ukuran atau bentuk yang sesuai dengan sisi aktif enzim (Gambar.). Karenanya model ini merupakan model cetakan yang kaku. Dalam model Fischer, tempat katalitik dianggap terbentuk terlebih dahulu agar sesuai dengan substratnya (Stryer et al, 2002).

Gambar 2.5. Interaksi substrat dan enzim Model Lock and Key

Skripsi


Nadya Aisya


17

2. Model Induced Fit : dikemukakan oleh Daniel G. Koshland pada Tahun 1958. Kohland mengemukakan bahwa ukuran atau bentuk sisi aktif enzim dapat mengalami modifikasi oleh adanya pengikatan substrat (Gambar 6.). Pada model ini, sisi aktif enzim diasumsikan cocok dengan substratnya sesaat setelah enzim mengikat substrat. Jadi substrat dianggap mampu menginduksi perubahan bentuk dalam sisi aktif enzim. Perubahan ini menempatkan

residu

asam

amino

pada sisi

aktif enzim

yang

memungkinkan terjadinya pengikatan substrat selama proses katalis. Enzim menunjukan fleksibilitasnya dalam berikatan dengan substrat (Stryer et al, 2002).

Gambar 2.6. Interaksi substrat dan enzim Model induced fit Laju pengubahan yang dikatalis enzim, yang dinyatakan dalam jumlah zat persatuan waktu (pada umumnya µmol substrat yang dirubah/menit), selain tergantung pada kadar enzim (E) dan substratnya (S) atau produk (P), juga pada afinitas enzim terhadap substrat (Km) dan kecepatan maksimumnya (νmax). Km adalah konstanta Michaelis-Menten, konstanta ini menyatakan kadar substrat di mana aktivitas enzim mencapai kecepatan separuh kecepatan maksimum (νmax/2). Enzim mencapai kecepatan maksimum jika substrat terdapat dalam jumlah yang berlebihan, jadi enzim dijenuhi dengan substrat (Schlegel, 1994). Tetapan tersebut

Skripsi


Nadya Aisya


18

dapat didefinisikan secara sederhana sebagai kosentrasi substrat tertentu pada saat enzim mencapai setengah kecepatan maksimumnya (grafik pengaruh konsentrasi substrat terhadap kec awal rx enzim). Bentuk kurva kejenuhan substrat yang khas bagi suatu enzim dapat dinyatakan secara matematik oleh persamaan MichaelisMenten : = dengan ν0

+

= kecepatan awal pada konsentrasi substrat [S]

Vmaks

= kecepatan maksimum

Km

= tetapan Michaelis-Menten enzim substrat tertentu

Persamaan ini, yang diturunkan oleh Michaelis dan Menten, berawal dari hipotesis dasar bahwa tahap pembatas kecepatan di dalam reaksi enzimatik adalah tahap penguraian kompleks ES, menjadi produk dan enzim bebas (Lehninger, 1997). Dalam kinerja enzim untuk mengkatalis suatu reaksi, kinerja enzim dipengaruhi oleh suhu, pH, konsenstrasi enzim dan konsentrasi substrat pada aktivitas enzim. 2.6.2 Klasifikasi Enzim Berdasarkan jenis reaksi yang dikatalis oleh enzim maka enzim dibagi menjadi enam klasifikasi yang juga digunakan dalam penamaan suatu enzim. Terdapat enam klasifikasi enzim yaitu : 1. Oksidoreduktase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis reaksi transfer elektron (pemindahan elektron atau atom hidrogen)

Skripsi


Nadya Aisya


19

2. Transferase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis reaksi perpindahan gugus fungsi dari suatu substrat ke substrat yang lain (gugus fungsi mencakup fosfat, metal, amino dsb). 3. Hidrolase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis hidrolisis (penambahan molekul air untuk memecahkan ikatan kimiawi), dapat terjadi pada senyawa golongan ester, karbohidrat maupun protein. 4. Isomerase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis terjadinya reaksi isomerisasi (pengubahan suatu senyawa menjadi isomer, misalnya suatu senyawa yang memiliki atom-atom yang sama tetapi berbeda struktur molekulnya). 5. Liase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis terjadinya penambahan ikatan ganda pada molekul dan juga pengusiran nonhidrolik gugusangugusan kimiawi. 6. Ligase, yaitu golongan enzim yang mengkatalis terjadinya pembentukan ikatan disertai pemecahan atau penambahan ATP (adenin trifosfat) (Pelczar, 1986). 2.6.3 Inhibisi Enzim Dalam mengkatalis suatu reaksi, dikenal istilah aktivasi yaitu suatu proses yang meningkatkan kinerja dari enzim sedangkan proses yang menurunkan atau bahkan membuat kinerja enzim berhenti disebut inhibisi. Pada proses inhibisi terdapat tiga macam inhibitor, yaitu (McMurry and Mary, 1994).

Skripsi


Nadya Aisya


20

1. Inhibitor kompetitif, adalah suatu molekul yang memiliki kemiripan bentuk dan ukuran dengan suatu substrat sehingga terjadi kompetisi untuk dapat berikatan dengan sisi aktif enzim. 2. Inhibitor Nonkompetitif, adalah suatu molekul yang dapat berikatan dengan enzim pada sisi selain sisi aktif enzim sehingga membuat enzim dapat mengalami perubahan bentuk termasuk sisi aktifnya. Dengan perubahan tersebut membuat substrat sulit masuk bahkan tidak lagi dapat berikatan dengan enzim. 3. Inhibitor Irreversible, adalah suatu molekul yang dapat masuk ke dalam sisi aktif enzim dan membentuk ikatan kovalen dengan enzim sehingga sisi aktif terblok secara permanen dan membuat enzim inaktif. 2.7 Enzim Selulase Enzim selulase merupakan enzim ekstraseluler yang terdiri atas kompleks endo-β-1,4-glukonase (CMCCase, Cx selulase endoselulase atau carboxymethyl cellulose), kompleks ekso-β-1,4-glukonase (aviselase, selobiohidrolase, C1 selulase) dan β-1,4-glukosidase atau selobiase (Crueger, 1984). Enzim selulase merupakan salah satu enzim yang telah banyak diketahui manfaatnya khususnya dalam pengolahan limbah pertanian. Menurut klasifikasinya enzim selulase termasuk golongan hidrolase karena mengkatalis terjadinya reaksi hidrolisis substrat, yaitu selulosa. Oleh karena fungsinya tersebut, maka penamaan resmi komponen selulase selalu mengandung kata hidrolase. Ketiga komponen di dalam enzim selulase bekerja secara spesifik pada ikatan-ikatan tertentu. Endo-1,4-β-D-glukanase yang memecah ikatan-ikatan β-

Skripsi


Nadya Aisya


21

glikosida sehingga menghasilkan potongan-potongan besar berbentuk rantai dengan ujung-ujung bebas. Ekso-1,4-β-D-glukanase yang memecah unit selobiosa dan glukosa dari ujung bukan pereduksi, dan β-glukosidase yang menghidrolisis selobiosa menjadi glukosa, dan asam selobionat menjadi glukosa dan glukonolakton (Marsiati, 1989). Karena adanya ketiga komponen di dalam enzim selulase

maka

selulase

dikatakan

enzim

kompleks

yang

mana

dapat

menghidrolisis selulosa secara sempurna dengan kinerja sinergitas ketiga komponen tersebut. Selulase digunakan secara luas dalam industri tekstil, deterjen, pulp dan kertas. Selulase juga digunakan dalam pengolahan kopi dan kadang-kadang digunakan dalam industri farmasi sebagai

zat untuk membantu sistem

pencernaan. Selulase juga dimanfaatkan dalam proses fermentasi dari biomassa menjadi biofuel, seperti bioethanol. Saat ini, enzim selulase juga digunakan sebagai pengganti bahan kimia pada proses pembuatan alkohol dari bahan yang mengandung selulosa (Zhiliang Fan et al, 2006). Selulase dapat diproduksi oleh fungi, bakteri, dan ruminansia. Produksi enzim secara komersial biasanya menggunakan fungi atau bakteri. Fungi yang bisa menghasilkan selulase antara lain genus

Tricoderma, Aspergillus, dan

Penicillium. Jenis fungi yang biasa digunakan dalam produksi selulase adalah Aspergillus niger. Sifat-sifat enzim selulase bergantung pada asal mikroorganisme dan substratnya serta aktivitas enzim ini dipengaruhi oleh pH dan suhu. Misalnya, pada produksi selulase dari Trichoderma mempunyai pH optimum antara 4-5 dan

Skripsi


Nadya Aisya


22

suhu optimum 280C. Dan, produksi selulase dari Myrothecium verracaria memiliki pH optimum 5-6 dan suhu optimum 250C (Marsiati, 1989). 2.8 Enzim Lakase Lakase adalah sekelompok enzim yang mengkatalisis oksidasi dari beberapa

jenis

substrat,

termasuk

p-difenol,

o-difenol,

monofenol,

p-

fenilendiamina. Nama lakase berasal dari fakta bahwa ekstrak pertama yang mampu untuk mengoksidasi fenol dengan oksigen atmosfir, diisolasi dari Rhus vernicifera, suatu pohon yang berasal dari Jepang yang menghasilkan lak (Manitto, 1992). Lakase adalah multi-cooper enzim. Lakase mampu mengkatalisis oksidasi satu elektron dari senyawa fenolik dengan memanfaatkan oksigen sebagai penerima, sehingga menghasilkan produk berupa senyawa kuinon atau radikal fenoksi bebas. Lakase banyak digunakan untuk tekstil, makanan dan industri lainnya. Banyak

industri

menggunakan

aplikasi

lakase

untuk

mengembangkan

produksinya misalnya industri pulp dan kertas, tekstil, sintesis organik, lingkungan, makanan, farmasi dan nanobioteknologi. Pemakaian lakase ini dapat menghemat energy, bersifat biodegradable, efisien dan ramah lingkungan. Lakase merupakan salah satu enzim ekstraseluler yang berfungsi mengkatalis proses pemecahan lignin, sehingga dapat digunakan sebagai bahan aktif pada proses pemutihan pulp. Dengan kemampuan ini, industri pulp, kertas dan tekstil mulai menggunakan enzim iniuntuk mendapatkan proses produksi yang efisien dan ramah lingkungan. Hal ini karena enzim ini hanya memerlukan oksigen dan menghasilkan air sebagai satu-satunya produk samping (Riva, 2005).

Skripsi


Nadya Aisya


23

Lakase banyak dihasilkan oleh jamur pelapuk putih yang merupakan kelompok jamur pengurai kayu dengan kemampuan mendegradasi lignin dan melakukan dekomposisi lignin (Pérez dkk, 2002). Lakase merupakan hasil metabolisme sekunder dari jamur pelapuk putih pada kondisi tertentu seperti nitrogen dan karbon yang terbatas (Ten Have dan Teunissen, 2001). 2.9 Enzim Xilanase Xilanase merupakan kelompok enzim yang memiliki kemampuan menghidrolisis hemiselulosa dalam hal ini ialah xilan atau polimer dari xilosa dan xilo-oligosakarida. Xilanase dapat diklasifikasikan berdasarkan substrat yang dihidrolisis, diantaranya β-xilosidase, eksoxilanase, dan endoxilanase. β-xilosidase, yaitu xilanase yang mampu menghidrolisis xilooligosakarida rantai pendek menjadi xilosa. Aktivitas enzim akan menurun dengan meningkatnya rantai xilooligosakarida (Richana, 2002). Xilosa selain merupakan hasil hidrolisis juga merupakan inhibitor bagi enzim β-xilosidase. Sebagian besar enzim

β-xilosidase yang berhasil dimurnikan masih menunjukkan adanya

aktivitas transferase yang menyebabkan enzim ini kurang dapat digunakan industri penghasil xilosa. Eksoxilanase mampu memutus rantai polimer xilosa (xilan) pada ujung reduksi, sehingga menghasilkan xilosa sebagai produk utama dan sejumlah oligosakarida rantai pendek. Enzim ini dapat mengandung sedikit aktivitas transferase sehingga potensial dalam industr penghasil xilosa. Endoxilanase mampu memutus ikatan β 1-4 pada bagian dalam rantai xilan secara teratur. Ikatan yang diputus ditentukan berdasarkan panjang rantai substrat, derajad

Skripsi


Nadya Aisya


24

percabangan, ada atau tidaknya gugus substitusi, dan pola pemutusan dari enzim hidrolase tersebut. Hidrolisis total xilan membutuhkan beberapa enzim yang berbeda, yaitu endo-1,4-β-xilanase, α-L-arabinofuranodidase dan 1,4-β-D-xilosidase. Gugus samping yang menyusun xilan akan dibebaskan oleh α-L-arabinofuranosidase, αglukoronidase, galaktosidase dan asetil xilan esretase menjadi arabinosa, glukuronat, galaktosa dan asetat arabinofuranosida yang cukup besar, sehingga akan terjadi halangan ruang bagi aktivitas endo-xilanase dan xilosidase. Oleh karena itu, keberadaan enzim arabinofuranosidase sangat penting dalam degradasi total xilan (Debeche et al, 2002). Xilanase umumnya merupakan protein kecil dengan berat molekul antara 15.000-30.000 Dalton, aktif pada suhu 55oC dengan pH 9 (Yu et al., 1991). Pada suhu 60oC dan pH normal, xilanase lebih stabil (Tsujibo et al., 1992; Cho-Goo et al., 1996). Enzim ini dapat digunakan untuk biobleaching pada industri kertas, penjernihan dan meningkatkan aroma jus dan anggur, meningkatkan kualitas roti dan pakan ternak, pengolahan limbah serta pengomposan (Meryandini et al, 2008). 2.10 Deinking Deinking merupakan salah satu proses unuk melepaskan dan memisahakan partikel tinta cetak dari serat kertas bekas yang didaur-ulang untuk memperbaiki sifat optik dari serat yang diperoleh. Proses deinking merupakan proses penghilangan tinta pada kertas bekas sehingga tampilan kertas menjadi baik. Hal ini dapat menyebabkan derajat putih yang tinggi dan kemampuan cetak (opasitas)

Skripsi


Nadya Aisya


25

yang optimal (Toulousia, 2008). Pelepasan tinta cetak dari serat yang telah diuraikan lebih dulu selama tahap daur-ulang dapat dilakuakan secara kimia dan mekanis. Partikel yang telah terlepas dari permukaan serat selanjutnya dipisahkan dari stok dengan cara flotasi atau pencucian. Efektifitas deinking sangat ditentukan oleh pemilihan proses pemisahan yang tepat dan ini tergantung pada jenis tinta/proses cetak yang telah dialami oleh kertas (Dina Farah dan Elyani, 2009). Secara garis besar rangkaian tahapan proses penghilangan tinta dari kertas bekas, baik secara kovensional maupun enzimatis (biodeinking) adlah sama yaitu : tahap penguraian, tahap pelepasan tinta dan tahap pemisahan tinta. Hal yang utama yang membedakan antara sistem konvensional dan biodeiking adalah pada tahap pelepasan tinta. Pada deinking konvensional, pelepasan tinta dilakukan secara kimiawi dengan menambahkan senyawa alkali untuk menggantikan sebagian fungsi bahan kimia yang digunakan pada proses deinking konvensional. Dari beberapa hasil pengamatan menyimpulkan bahwa proses enzimatis dapat dihubungkan sebagai aktivitas biologi yang khas dari enzim yang memutus ikatan serat serta mengeluarkan tinta yang diikat pada permukaan serat dan juga yang terdapat dalam ikatan serat atau diantara fibril-fibril. Sebagian enzim menghidrolisis selulosa ke dalam struktur mikro permukaan serat selama tahap pulping. Karena aktivitas biologis dari enzim ini, partikel tinta halus yang melekat ke dalam ikatan serat, fibril-fibril dan serat halus yang tidak mungkin dihilangkan melalui bahan kimi deinking kovensional, dapat dihilangkan melalui proses biodeinking (Dina Farah dan Elyani, 2009). Pemutihan pulp secara enzimatik

Skripsi


Nadya Aisya


26

miliki sifat-sifat fisik yang superior, derajat putih yang lebih tinggi, dan memiliki sisa tinta yang sedikit dibandingkan dengan pemutihan pulp secara kimia. Lebih penting lagi, distribusi ukuran dan bentuk tinta dapat dikendalikan secara efektif menggunakan proses enzimatik untuk memaksimalkan efisiensi pada proses flotasi. Proses penghilangan tinta secara enzimatik juga meningkatkan freeness dibandingkan dengan proses penghilangan tinta secara kimia (Prasad et al, 1993). 2.10.1 Derajat Putih Derajat putih berhubungan erat dengan keberhasilan proses penghilangan tinta dari kertas bekas, semakin rendah kandungan noda lembaran hasil deinking semakin tinggi derajat putih lembaran. Derajat putih lembaran dapat dijadikan sebagai indikator kandungan lignin dalam serat. Derajat putih lembaran yang terbuat dari pulp mekanis yang banyak mengandung lignin akan menurun dengan cepat selama penyimpanan (Rismijana et al, 2003). Derajat putih atau brightness merupakan salah satu parameter kualitas kertas yang ditentukan dengan mengukur banyaknya sinar yang dipantulkan kembali oleh selembar kertas dengan mengangap kertas yang paling putih memantulkan sinar kembali 100%. Untuk kertas tertentu diperlukan derajat putih yang tinggi. Derajat putih dapat ditentukan dengann alat Reflektor, Brightness Tester dan Spektrofotometer. Pengujian berdasarkan penyerapan sinar oleh kertas yaitu dengan cara mengukur sinar yang dipantulkan kembali dan dinyatakan dalam presentase atau derajat (Edahwati, 2008)

Skripsi


Nadya Aisya


27

Parameter derajat putih pada kertas cetak lebih diperuntukkan untuk memberikan nilai estetika yang baik sehingga orang sering mengidentikkan kertas yang lebih putih akan terlihat lebih baik dibanding kertas yang cenderung berwarna kekuningan, meskipun diketahui derajat putih kertas yang tinggi berdampak kurang baik terhadap kesehatan mata (Dina Farah dan Elyani, 2009). 2.10.2 Indeks Tarik Indeks tarik merupakan nilai ketahanan tarik dalam satuan newton per meter dibagi gramatur dalam satuan gram per meter persegi, sedangkan ketahanan tarik adalah gaya tarik yang bekerja pada kedua ujung kertas diukur pada kondisi standar (Rismijana et al, 2003). Menurut SNI 14-0437-1998 tentang cara uji ketahanan tarik kertas dan karton, ketahanan tarik di definisikan sebagai gaya tarik yang bekerja pada kedua ujung kertas dan karton, di ukur pada kondisi standar. Faktor-faktor yang mempengaruhi ketahanan tarik (tensile

strength)

adalah jumlah dan kualitas ikatan antar serat, penggilingan, panjang serat, bahan pengisi (filler) dan fines. Sedangkan semakin panjang serat, ketahanan tariknya semakin tinggi juga, apabila kandungan bahan pengisi dan fines yang cukup tinggi maka ketahanan tariknya cenderung menurun, karena di akibatkan ikatan antar serat menjadi berkurang (Elyani et al, 2011). 2.10.3 Scanning electron microscopy (SEM) Scanning Electron Microscopy (SEM) memiliki prinsip kerja yaitu ketika suatu berkas electron primer dengan energi kinetic 10-25 kV dengan diameter 510 nm mengenai sampel, maka elektron tersebut direfleksikan atau dipancarkan.

Skripsi


Nadya Aisya


28

Elektron yang direfleksikan ini yang disebut dengan elektron sekunder yang akan muncul dan menentukan image yang akan tampak pada layar micrograph pada SEM. SEM adalah salah satu jenis mikroskop elektron yang menggunakan berkas elektron untuk menggambar profil permukaan benda selain itu digunakan untuk mempelajari tekstur, topografi dan permukaan benda. SEM akan mendeteksi elektron yang dipantulkan dan menentukan lokasi berkas yang dipantulkan dengan intensitas tertinggi sehingga akan memberikan informasi profil permukaan benda (Mulder, 1996). Pada saat pengukuran SEM, lokasi dipermukaan sampel tidak boleh terlalu lama dikenai berkas elektron. Elektron yang berenergi tinggi pada berkas dapat mencabut atom-atom di permukaan sampel akan menguap dan akhirnya bayangan yang terekam menjadi hitam (kabur) (Mikrajuddin, 2010)

Skripsi


Nadya Aisya


BAB III METODE PENELITIAN

3.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Kimia Organik-Biokimia, Departemen Kimia, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga Surabaya dan Pabrik Kertas Adiprima Suraprinta, Wringinanom, Gresik. Penelitian ini dimulai pada bulan Januari 2012 sampai bulan Juli 2012. Analisis uji tarik dilaksanakan di Laboratorium Dasar Bersama Fakultas Farmasi Universitas Airlangga, sedangkan analisis SEM dilaksanakan di Laboratorium Sentral FMIPA Universitas Negeri Malang (UM). 3.2 Sampel Penelitian 3.2.1 Kertas koran Kertas koran yang digunakan dalam penelitian ini adalah kertas koran bekas yang dikumpulkan dari sumber rumah tangga. 3.2.2 Mikroba Mikroba yang digunakan dalam penelitian ini dimana berfungsi sebagai sumber enzim lakase adalah Aspergillus sp. TKKS(4) (hijau tua) yang diisolasi dari tandan kosong kelapa sawit dan menjadi koleksi Laboratorium Biokimia Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga Surabaya. Sedangkan bakteri yang digunakan sebagai sumber enzim xilanase adalah E. coli DH5 α rekombinan (pTP510) (Puspaningsih, 2004) koleksi Laboratorium Biokimia Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga Surabaya dan bakteri yang digunakan

29 Skripsi


Nadya Aisya


30

sebagai penghasil enzim selulase adalah Actinobacillus sp. (Lamid, 2008) koleksi laboratorium Biokimia Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga Surabaya. 3.3 Alat dan Bahan Penelitian 3.3.1 Alat penelitian Penelitian ini menggunakan beberapa peralatan diantaranya peralatan gelas dan non gelas yang biasa dipakai di laboratorium Biokimia, antara lain: gelas ukur, gelas beaker, labu Erlenmeyer 100 ml, labu ukur 10 ml, botol reagen, tabung Eppendorf, cawan petri, jarum ose, pipet mikro (Eppendorf), dan tip. Instrumen yang digunakan diantaranya neraca analitik (Mettler Toledo), autoklaf (OSK 6508 Steam pressure apparatus Ogawa Seiki Co., LTD), Laminair air flow cabinet (Kottermann 8580), shaker incubator, sentrifuge Beckman (tipe TJ-6), ultrasonikator, water bath (Memmert), spectrophotometer uv-vis (Shimadzu Pharmaspec 1700), pH meter (Metrohm 744), mini pulper (Toyoseiki), oven (Binder), gramatur hand-sheet (Toyoseiki), brightness tester (Lorntzen and Wettre), tensile index (Autograph AG-10 TE Shimadzu). 3.3.2 Bahan penelitian Bahan yang diperlukan pada penelitian ini antara lain adalah NaOH, asam sitrat, natrium fosfat, NaCl, Asam asetat glasial, Natrium asetat, yeast extract, tripton, bacto agar, CMC (Carboxyl Methyl Cellulose), oat spelt-xylan, xilosa, glukosa, aquades, asam 3,5-DNS, kentang, agar-agar, dextrose, (potato dextrose agar

Skripsi

/PDA),

pewarna

non-phenol

Asam

2,2’azinobis-di-(3-


Nadya Aisya


31

ethylbenzthiazolinesulphonat), malt extract, fenol, Na (K) tartrat (garam Rochelle), Na-sulfit dan surfaktan jenis liptol. 3.4 Diagram Penelitian Produksi xilanase, selulase dan lakase uji aktivitas

Penguraian kertas koran menjadi potongan kecil

Proses pulping dengan selulase dari Actinobacillus sp., enzim xilanase adalah E. coli DH5 α rekombinan (pTP510) dan enzim lakase dari Aspergillus sp

Proses Flotasi

Stok hasil flotasi dibuat lembaran kertas

Penentuan derajat putih

Skripsi

Penentuan indeks tarik

Karakterisasi Profil Permukaan


Nadya Aisya


32

3.5 Prosedur Penelitian 3.5.1 Pembuatan Reagen 3.5.1.1 Pembuatan larutan NaOH 0,2 M Larutan NaOH dengan konsentrasi 0,2 M dibuat dengan cara menimbang 0,08 g NaOH kemudian dilarutkan dengan 10 ml akuades dalam gelas beaker. 3.5.1.2 Larutan buffer universal Larutan stok A asam sitrat (C6H8O7) 0,1 M dibuat dengan cara menimbang 1,921 g asam sitrat lalu dilarutkan dalam aquades dan diencerkan dalam labu ukur 100 mL hingga tanda batas. Larutan stok B natrium fosfat dibasis (Na2HPO4.7H2O) 0,2 M dibuat dengan cara menimbang 5,365 g lalu dilarutkan dalam aquades dan diencerkan dalam labu ukur 100 mL hingga tanda batas. Larutan buffer universal pH 3-8 dibuat dengan cara mencampurkan larutan A dan B dengan komposisi larutan yang sesuai kemudian diencerkan dalam aquades sampai volume campuran tepat 100 mL. Tabel 1. Komposisi buffer universal

Skripsi

A (mL)

B (mL)

pH

48,50

51,50

5

36,85

63,15

6

17,65

82,35

7


Nadya Aisya


33

3.5.1.3 Pembuatan larutan asam 3,5 dinitrosalisilat (DNS) Larutan asam 3,5 dinitrosalisilat dibuat dengan cara sebanyak 1 gram NaOH dilarutkan dalam 60 mL akuades, ditambahkan 18,2 g Na (K) tartrat (garam Rochelle) dan 1 g asam 3,5-dinitrosalisilat (ditambahkan perlahan-lahan sambil diaduk dengan pengaduk magnetik hingga larut sempurna). Setelah itu, ditambahkan 0,2 g fenol dan 0,05 g Na-sulfit dan diaduk kembali selama ± 5 menit. Selanjutnya larutan tersebut dipindahkan ke dalam labu ukur 100 mL dan ditambahkan akuades hingga tanda batas. 3.5.1.4 Pembuatan larutan CMC (Carboxyl Methyl Cellulose) 1% Larutan CMC 1% dibuat dengan cara menimbang 0,05 g CMC (Carboxyl Methyl Cellulose) lalu masukkan ke dalam gelas beaker kemudian dilarutkan dengan 5 mL buffer fosfat sitrat (PC) 100 mM pH 6. 3.5.1.5 Pembuatan larutan oat spelt-xylan 1% Larutan oat spelt-xylan 1% dibuat dengan cara menimbang 0,05 g oat spelt-xylan lalu masukkan ke dalam gelas beaker kemudian dilarutkan dengan 5 mL buffer fosfat sitrat (PC) 100 mM pH 7. 3.5.1.6 Pembuatan larutan induk glukosa 10 mg/mL Larutan induk glukosa dibuat dengan cara menimbang 0,1 g glukosa kemudian dilarutkan dengan sedikit buffer fosfat sitrat pH 6 dalam gelas beaker. Setelah itu, secara kuantitatif dipindah ke dalam labu ukur 10 mL dan ditambah dengan buffer fosfat sitrat hingga tanda batas.

Skripsi


Nadya Aisya


34

3.5.1.7 Pembuatan larutan induk xilosa 10 mg/mL Larutan induk xilosa dibuat dengan menimbang 0,1 g xilosa kemudian dilarutkan dengan sedikit buffer fosfat sitrat pH 7 dalam gelas beaker. Setelah itu, secara kuantitatif dipindah ke dalam labu ukur 10 mL dan ditambah dengan buffer fosfat sitrat hingga tanda batas. 3.5.1.8 Pembuatan Larutan Substrat ABTS 0,4 mM Larutan substrat ABTS dibuat dengan cara menimbang 0,0011 g ABTS. ABTS tersebut dilarutkan dalam Buffer universal pH 5 sebanyak 5 mL dalam botol tertutup tidak terkena cahaya. 3.5.2 Produksi enzim selulase 3.5.2.1 Pembuatan media cair Media cair dibuat dengan cara menimbang 0,2 g tripton; 0,1 g yeast ekstrak; 0,2 g NaCl; 0,2 g CMC. Kemudian semua bahan ditaruh dalam labu Erlenmeyer 50 mL dan ditambahkan dengan 20 mL akuades. Setelah itu, labu Erlenmeyer ditutup dengan kapas dan aluminium foil. Selanjutnya, labu Erlenmeyer disterilkan dengan autoklaf selama 15 menit pada suhu 121oC dan tekanan 1 atm. 3.5.2.2 Pembuatan media padat Media padat dibuat dengan cara menimbang 0,2 g tripton; 0,1 g yeast ekstrak; 0,2 g NaCl; 0,2 g CMC; 0,4 g bacto agar. Kemudian semua bahan ditaruh dalam labu Erlenmeyer 50 mL dan ditambahkan dengan 20 mL akuades. Kemudian labu Erlenmeyer ditutup dengan kapas dan aluminium foil. Setelah itu disterilkan dengan autoklaf selama 15 menit pada suhu 121oC dan tekanan 1 atm.

Skripsi


Nadya Aisya


35

Setelah itu campuran larutan ditunggu sampai suam-suam kuku lalu medium dituang ke dasar cawan petri dan dibiarkan sampai menjadi dingin dan padat. 3.5.2.3 Pembuatan inokulum Isolat Actinobaccilus sp. yang telah diremajakan dipindahkan ke media pertumbuhan cair 20 mL dalam labu Erlenmeyer 50 mL. Setelah itu, media pertumbuhan diinkubasi pada suhu 40 0C dengan penggojogan 150 rpm selama waktu kultivasi optimal yang diperoleh dari kurva pertumbuhan, yaitu ±18 jam. Hasil kultivasi adalah suspensi sel yang merupakan inokulum. 3.5.2.4 Produksi enzim selulase Produksi enzim selulase dilakukan dengan cara menginokulasikan 1% inokulum ke dalam 100 mL media cair yang mengandung 1% Carboxyl Methyl Cellulose (CMC) dalam labu Erlenmeyer 500 mL. Kemudian larutan diinkubasi pada suhu 40oC selama ±18 jam dengan penggojogan 170 rpm. Hasil inkubasi kemudian disentrifugasi selama 15 menit dengan kecepatan 8000 rpm dan diambil supernatannya untuk diuji aktivitas enzim selulase. 3.5.2.5 Pembuatan kurva standar glukosa Kurva standar glukosa dibuat dengan cara membuat larutan induk glukosa 10 mg/mL. Kemudian, standar glukosa dibuat pada variasi konsentrasi 0,15; 0,20; 0,25; 0,30; 0,35; 0,40 dan

0,45 µg/mL dari larutan induk glukosa. Dengan

menggunakan metode DNS, diambil larutan standar glukosa 200 µ L dan larutan DNS 600 µ L, dikocok dan dipanaskan pada penangas air mendidih 100ºC selama 15 menit kemudian didinginkan dalam penangas es selama 20 menit. Kemudian dilakukan pengukuran absorbansi dengan spektrofotometer UV-Vis pada panjang

Skripsi


Nadya Aisya


36

gelombang ( λ ) 550 nm. Blanko yang digunakan adalah DNS dengan buffer fosfat sitrat. Dari data yang diperoleh kemudian dibuat kurva standar antara konsentrasi glukosa dengan absorbansi. Aktivitas selulase (U/ml) dapat dihitung dengan rumus : aktivitas selulase

U = ml

10

!

Keterangan: C

= konsentrasi gula pereduksi

T

= waktu inkubasi

Fp

= faktor pengenceran

BM glukosa = 180 3.5.2.6 Uji aktivitas selulase Aktivitas enzim selulase diuji dengan menggunakan metode asam 3,5dinitrosalisilat (DNS) yaitu dengan mencampurkan 100 µL enzim dengan 100 µL substrat, yaitu 1% CMC dalam 100 mM buffer fosfat sitrat pada pH 6. Kemudian dimasukkan dalam tabung Eppendorf, diinkubasi dalam penangas air pada suhu 45oC selama 60 menit. Hasil inkubasi ditambahkan dengan 600 µ L pereaksi DNS lalu dimasukkan ke dalam penangas air mendidih selama 15 menit (bersama-sama dengan control). Setelah itu, segera didinginkan dalam penangas air es selama 20 menit. Kontrol yang digunakan adalah 100 µ L enzim, 100 µ L substrat dan 600 µ L pereaksi DNS tanpa diinkubasi. Setelah itu, gula pereduksi yang terbentuk diukur dengan spektrofotometer UV-Vis pada panjang gelombang ( λ ) 550 nm. Satu unit aktivitas enzim didefinisikan sebagai banyaknya enzim yang diperlukan

Skripsi


Nadya Aisya


37

untuk membentuk 1 µmol produk per satuan waktu untuk setiap mL enzim (Miller, 1960) 3.5.3 Produksi enzim lakase dari Aspergillus sp 3.5.3.1 Pembuatan media PDA Kentang 200 g yang telah dikupas, diiris tipis kemudian direbus sampai lunak. Selanjutnya air rebusan kentang disaring dan diencerkan dengan akuades sampai 1000 mL. Ke dalam air saringan kentang kemudian ditambahkan agar-agar 18 g/l dextrose 20 g/l. Kemudian media ini dipindahkan ke dalam tabung enlenmeyer 500 mL dan ditutup dengan kapas. Selanjutnya disterilkan dalam autoclave pada suhu 1210C selama 20 menit. 3.5.3.2 Pembuatan media PDA cawan petri Setelah PDA disterilkan dalam autoclave, PDA didiamkan sampai hangat dan dituang dalam cawan petri masing-masing sebanyak 20 mL. Cawan petri yang telah berisi PDA didiamkan sampai memadat. 3.5.3.3 Pembuatan media PDA agar miring PDA dituang ke dalam tabung reaksi masing-masing 6 mL. Kemudian mulut tabung ditutup dengan kapas dan dilapisi alumunium foil. Tabung reaksi berisi PDA disterilkan dalam autoclave suhu 1210C selama 20 menit. Setelah steril dimiringkan dan ditunggu sampai memadat. 3.5.3.4 Pembuatan media cair Media cair yang digunakan adalah GMY. Media cair ini berfungsi sebagai media pertumbuhan. Komposisi dari media GMY adalah 4 g Glukosa, 4 g Yeast Extract dan 10 g Malt Extract. Campuran ini dilarutkan dalam akuades, kemudian

Skripsi


Nadya Aisya


38

diatur pHnya sampai 7,2 dengan KOH. Selanjutnya ditambah akuades sampai volumenya 1000 mL. Media ini disterilkan dalam autoclave suhu 1210C selama 20 menit 3.5.3.5 Produksi enzim lakase Kapang yang telah tumbuh dan di inkubasi di media PDA agar miring selama 5 hari dibuat inokulum dengan cara melarutkan spora pada media PDA dengan akuades steril. Larutan yang berisi spora ini selanjutnya ditentukan jumlah spora/ml dengan alat hemositometer dan diukur absorbansinya sebesar 0,5 dengan spektrofotometri. Setelah diketahui jumlah sporanya, inokulum dimasukkan sebanyak 1% ke dalam media cair (media GMY). Media GMY yang mengandung inokulum diinkubasi selama 7 hari pada suhu ruang, digojog dengan kecepatan 150 rpm. Pada hari ketiga yang merupakan fase log, media ditambahkan kofaktor Cu2+ sampai konsentrasinya 0,5. Pada hari ketujuh, media GMY yang telah diinkubasi, disentrifugasi dengan kecepatan 3300 rpm, 40C selama 2 menit. Supernatan yang terbentuk setelah disentrifugasi adalah enzim lakase. 3.5.3.6 Uji aktivitas enzim lakase Uji aktivitas enzim lakase dilakukan berdasarkan metode Bourbonnais dan Paice (1990). Prinsip uji ini adalah sebagai berikut : pewarna non-phenol Asam 2,2’-azinobis-di-(3-ethylbenzthiazolinesulphonate)

(ABTS)

dioksidasi

oleh

lakase menjadi radikal kation (ABTS-) yang lebih stabil. Konsentrasi radikal kation yang berwarna biru kehijauan (dibaca pada panjang gelombang 420 nm) berkolerasi dengan aktivitas lakase (Bar, 2001).

Skripsi


Nadya Aisya


39

Pengukuran aktivitas lakase dilakukan sebagai berikut : Larutan 0,4 mM ABTS dalam buffer universal (pH 7) sebanyak 1160 µl dimasukkan ke dalam kuvet 1,5 ml, selanjutnya ke dalam kuvet dimasukkan 40 µl enzim yang dikocok agar tercampur homogen. Kemudian diinkubasi pada suhu 50oC selama 30 menit dan setiap 5 menit diukur absorbansi radikal kationnya pada panjang gelombang 420 nm (εmM = 36mM-1 cm-1) menggunakan spektrofotometer UV-Vis. Aktivitas lakase dinyatakan sebagai Internasional Unit (IU) per liter, dengan 1 IU didefinisikan sebagai jumlah enzim yang dapat mengoksidasi 1 µmol ABTS tiap menit. Aktivitas lakase ditentukan dengan menggunakan persamaan sebagai berikut : ! "#$#"!

%&

=2

( $ ) *

∆,. .#/01 1000

Dengan : V = volume total reaksi (ml) ν = volume enzim (ml) ε = extinction coefficient ABTS pada 420 nm = 36 mM-1 cm-1 d = Light path of cuvette (cm) ∆A.min-1 = perubahan absorbansi tiap 5 menit pada 420 nm 3.5.4 Produksi enzim xilanase dari E. coli (pTP 510) 3.5.4.1 Pembuatan media padat Media padat dibuat dengan menimbang 0,2 g tripton; 0,1 g yeast ekstrak; 0,2 g NaCl; 0,4 g bacto agar. Kemudian semua bahan ditaruh dalam labu Erlenmeyer 50 mL dan ditambahkan dengan 20 mL akuades. Kemudian labu Erlenmeyer ditutup dengan kapas dan aluminium foil. Setelah itu disterilkan

Skripsi


Nadya Aisya


40

dengan autoklaf selama 15 menit pada suhu 121oC dan tekanan 1 atm. Setelah itu campuran larutan ditunggu sampai suam-suam kuku. Selanjutnya, media steril yang telah suam-suam kuku ditambah dengan 20 µ L ampisilin (100 mg/mL), dihomogenkan kemudian medium dituang ke dasar cawan petri dan dibiarkan sampai menjadi dingin dan padat (Puspaningsih, 2004). 3.5.4.2 Pembuatan media cair Media cair dibuat dengan menimbang 0,2 g tripton; 0,1 g yeast ekstrak; 0,2 g NaCl. Kemudian semua bahan ditaruh dalam labu Erlenmeyer 50 mL dan ditambahkan dengan 20 mL akuades. Setelah itu, labu Erlenmeyer ditutup dengan kapas dan aluminium foil. Labu Erlenmeyer disterilkan dengan autoklaf selama 15 menit pada suhu 121oC dan tekanan 1 atm. 3.5.4.3 Pembuatan inokulum Biakan bakteri E. coli DH5 α

rekombinan (pTP510) yang telah

diremajakan dipindahkan ke media pertumbuhan 20 mL dalam labu Erlenmeyer 50 mL yang sebelumnya telah ditambahkan 20 µ L ampisilin (100 mg/mL). Setelah itu, media pertumbuhan diinkubasi pada suhu 37 0C dengan penggojogan 150 rpm selama waktu kultivasi optimal yang diperoleh dari kurva pertumbuhan, yaitu ±18 jam. Hasil kultivasi adalah suspensi sel yang merupakan inokulum. 3.5.4.4 Produksi enzim xilanase dari E. coli (pTP 510) Produksi enzim xilanase dilakukan dengan cara menginokulasikan 1% inokulum ke dalam 100 mL media cair yang mengandung 100 µ L ampisilin (100 mg/mL) dalam labu Erlenmeyer 500 mL. Kemudian larutan diinkubasi pada suhu 45oC selama ±18 jam dengan penggojogan 150 rpm. Sel dipanen setelah ±18 jam

Skripsi


Nadya Aisya


41

pertumbuhan dengan cara sentifugasi dengan kecepatan 6000 rpm selama 10 menit. Kemudian supernatan dibuang, dan pelet dilarutkan dalam buffer fosfat sitrat dingin (PC) 100 mM pH 7 lalu dilisis dengan ultrasonikator dengan frekuensi 20 Hz selama 1 menit diulang 2 kali. Enzim xilanase didapat dari supernatan hasil sentrifugasi dengan kecepatan 10.000 rpm selama 10 menit (Puspaningsih, 2004). 3.5.4.5 Kurva standar xilosa Kurva standar xilosa dibuat dengan cara membuat larutan induk xilosa 10 mg/mL. Kemudian, standar xilosa dibuat pada variasi konsentrasi 0,30; 0,40; 0,50; 0,60; 0,70; 0,80 mg/mL dari larutan induk xilosa. Dengan menggunakan metode DNS, diambil larutan standar glukosa 200 µ L dan larutan DNS 600 µ L, dikocok dan dipanaskan pada penangas air mendidih 100ºC selama 15 menit kemudian didinginkan dalam penangas es selama 20 menit. Kemudian dilakukan pengukuran

absorbansi

dengan

spektrofotometer

UV-Vis

pada

panjang

gelombang ( λ ) 550 nm. Blanko yang digunakan adalah DNS dengan buffer fosfat sitrat. Dari data yang diperoleh kemudian dibuat kurva standar antara konsentrasi xilosa dengan absorbansi. 3.5.4.6 Uji aktivitas enzim xilanase rekombinan Uji aktivitas enzim xilanase dilakukan dengan mencampurkan 100 µ L enzim dengan 100 µ L substrat, yaitu 1% oat spelt-xylan dalam 100 mM buffer fosfat sitrat pada pH 7. Kemudian dimasukkan dalam tabung Eppendorf, diinkubasi dalam penangas air pada suhu 70oC selama 60 menit. Hasil inkubasi ditambah dengan 600 µ L pereaksi DNS lalu dimasukkan ke dalam penangas air

Skripsi


Nadya Aisya


42

mendidih selama 15 menit. Setelah itu, segera didinginkan dalam penangas air es selama 20 menit. Kontrol yang digunakan adalah 100 µ L enzim, 100 µ L substrat dan 600 µ L pereaksi DNS dicampurkan menjadi satu kemudian diperlakukan sama dengan kondisi di atas tanpa diinkubasi. Setelah itu, gula pereduksi yang terbentuk diukur dengan spektrofotometer UV-Vis pada panjang gelombang ( λ ) 550 nm. 3.5.5 Proses pulping Proses pulping ini diawali dengan penimbangan 150 gram kertas koran bekas. Kemudian, ditambahkan air hingga 1850 gram untuk menjadikan konsistensi stok sama dengan 7,5%. Setelah itu, kertas koran diuraikan dalam mini pulper hingga skala 1500. Perlakuan di atas diulangi hingga 5 kali. Buburan kertas yang terbentuk dihomogenkan selanjutnya sampel diambil sedikit untuk dilakukan pengecekan konsistensi. Kemudian buburan kertas yang sudah homogen ditimbang sebesar 600 gram per sampel selanjutnya dilakukan penambahan enzim lakase dengan asumsi perbandingan variasi aktivitas 0,036; 0,072; 0,109; 0,145; 0,291; 0,436; 0,582 U kemudian ditambahkan enzim selulase dan enzim xilanase dengan asumsi perbandingan volume 4:1 atau perbandingan aktivitas 0,333:0,075 serta ditambahkan 0,15 % surfaktan lalu diaduk selama 1 menit.

Setelah itu, larutan suspensi kertas koran dibiarkan bereaksi selama 15 menit untuk masing-masing enzim mendegradasi permukaan serat. Enzim selulase direaksikan dengan mengatur suhu 45 0C pada water bath selama 15 menit.

Skripsi


Nadya Aisya


43

Kemudian enzim lakase direaksikan dengan mengatur suhu 500C pada waterbath selama 15 menit. Kemudian, suhu pada water bath dinaikkan menjadi 70 0C untuk enzim xilanase dapat bekerja selama 15 menit. Setelah itu, larutan suspensi kertas koran dimasukkan dalam penangas es menghentikan aktivitas enzim. 3.5.6 Proses flotasi Proses flotasi ini dilakukan setelah proses pulping selesai. Stok diencerkan menjadi konsistensi 0,9% terhadap berat kering. Kemudian dilakukan proses flotasi selama 5 menit. 3.5.7 Pembuatan lembaran tangan dan pengujian Stok hasil flotasi dari proses biodeinking, masing-masing dibuat lembaran tangan dengan gramatur 55 g/m2 menggunakan gramatur hand-sheet. Setelah itu, dilakukan pengujian terhadap lembaran tangan tersebut, pengujian meliputi derajat putih, ketahanan tarik dan karakterisasi profil permukaan serat kertas menggunakan scanning electron microscopy (SEM).

Skripsi


Nadya Aisya


BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Produksi Enzim 4.1.1 Produksi enzim selulase dari Actinobacillus sp. Proses produksi enzim selulase diawali dengan meremajakan isolat Actinobaccilus sp. dalam media padat Luria Bertani (LB). Kemudian dari isolat yang sudah diremajakan tersebut diambil satu koloni tunggal untuk diinokulasikan ke dalam 20 mL media cair LB. Setelah itu, inokulum diinkubasi pada suhu 450C selama 18 jam dengan penggojogan menggunakan kecepatan 170 rpm. Suspensi inokulum yang sudah diinkubasi dimasukan sebanyak 1% (2 mL) ke dalam 200 mL media cair yang telah mengandung substrat yaitu 1 % Methyl Cellulose (CMC). Penambahan substrat 1 % Methyl Cellulose (CMC) ini berfungsi untuk menginduksi metabolisme dari Actinobaccilus sp. dan menghasilkan enzim selulase. Seperti inokulum, media produksi juga diinkubasi pada suhu 450C selama 18 jam dengan penggojogan menggunakan kecepatan 150 rpm. Proses penggojogan ini berfungsi untuk agitasi dan aerasi yaitu proses pengadukan yang bertujuan untuk homogenisasi dan untuk memenuhi kebutuhan oksigen mikroba yang sedang ditumbuhkan. Pertumbuhan bakteri ditandai dengan terbentuknya suspensi sel dalam media produksi. Setelah 18 jam, suspensi yang didapatkan disentrifus dengan alat sentrifus selama 15 menit dengan kecepatan 8000 rpm. Supernatan yang merupakan enzim selulase di tampung dan pelet sel dibuang. Setelah itu enzim yang telah di dapatkan di uji aktivitasnya dengan uji DNS.

44 Skripsi


Nadya Aisya


45

4.1.2 Produksi enzim xilanase dari E. coli (pTP 510) Proses produksi enzim xilanase ini, dimulai dengan merejamakan isolat E.coli DH5 α rekombinan (pTP 510) dalam media padat Luria Bertani (LB). Pada pembuatan media padat LB ditambahkan 20 µ L ampisilin (100µL/ml) yang bertujuan untuk penanda biakan E.coli rekombinan sehingga dimungkinkan tidak terjadi kontaminasi oleh bakteri yang lain. Hal ini dikarenakan dalam proses rekombinasi bakteri E.coli DH5 α telah disisipi plasmid yang mengandung penanda resistensi antibiotik ampisilin. Setelah koloni dalam media padat tumbuh, diambil satu koloni untuk diinokulasi kedalam media cair Luria Bertani (LB) yang mengandung 20 µL ampisilin. Kemudian, inokulum diinkubasi pada suhu 370C selama 18 jam dengan penggojogan menggunakan kecepatan 150 rpm. Fungsi pembuatan inokulum ini untuk memperkaya bakteri yang tumbuh. Hasil dari inokulasi ini dipipet dan dipindahkan 1% kedalam 600 mL media LB yang mengandung 600 µL ampisilin (100µL/ml). Lalu media itu dibagi kedalam 4 Enlenmeyer ukuran 500 mL, jadi masing-masing Enlenmeyer berisi 150 mL media cair sehingga dapat memenuhi kebutuhan oksigen pada proses aerasi dan agitasi. Sama halnya dengan inokulum, media produksi juga diinkubasi pada suhu 370C selama 18 jam dengan penggojogan menggunakan kecepatan 150 rpm. Pertumbuhan bakteri ditandai dengan terbentuknya suspensi sel dalam media produksi. Suspensi sel yang terbentuk dipisahkan antara supernatan dan pelet selnya dengan cara disentrifus selama 10 menit dengan kecepatan 6000 rpm. Supernatan dibuang karena pelet sel merupakan sumber enzim xilanase rekombinan intrasel

Skripsi


Nadya Aisya


46

(pTP 510) yang dihasilkan di dalam sel inang E.coli DH 5 α . Oleh karena enzimnya merupakan intrasel maka perlu dilakukan pemecahan sel dengan menggunakan ultrasonikator dengan frekuensi 20 Hz selama 1 menit diulang 2 kali. Setelah sel dipecah maka dilakukan sentrifus kembali dengan kecepatan 10000 rpm selama 10 menit. Kemudian supernatan yang merupakan ekstrak enzim xilanase dipisahkan dari pelet dan pelet dibuang. 4.1.3 Uji aktivitas enzim selulase dan enzim xilanase Uji aktivitas yang digunakan adalah uji DNS (asam 3,5-dinitrosalisilat). Uji aktivitas enzim ini dilakukan untuk mengetahui banyaknya selulosa yang bisa dihidrolisis secara enzimatis menjadi glukosa. Prinsipnya adalah menentukan gula

pereduksi yaitu glukosa yang merupakan hasil degradasi substrat oleh enzim. Banyaknya gula pereduksi diukur menggunakan spektrofotometri pada λ 550 nm (Miller, 1959). Uji ini dilakukan dengan mereaksikan gula pereduksi hasil hidrolisis enzim dengan pereaksi asam 3,5-dinitrosalisilat (DNS) yang dimasukkan ke dalam penangas air mendidih selama 15 menit lalu dimasukkan ke dalam penangas es selama 20 menit untuk menghentikan reaksi. Hasil dari reaksi tersebut yaitu perubahan warna larutan menjadi berwarna kuning kecoklatan dari semula larutan berwarna kuning muda. Hal itu menunjukkan adanya reaksi reduksi oleh gula pereduksi. Gula pereduksi direaksikan dengan larutan asam 3,5dinitrosalisilat (DNS) yang menghasilkan larutan asam 3-amino-5-nitrosalisilat dan hasil oksidasi dari gula pereduksi, yaitu asam xilonat dan glukonat. Reaksinya adalah

Skripsi


Nadya Aisya


47

Perubahan warna yang terjadi diukur absorbansinya menggunakkan spektrofotometri UV-VIS. Absorbansi yang di dapatkan dimasukkan kedalam persamaan regresi linier kurva standart, untuk kurva standart glukosa yaitu y= 0,001x - 0,112 sehingga diketahui aktivitas enzim selulase sebelum freeze dry adalah 0,0675 U/mL dan setelah freez dry yang dilarutkan dlm buffer sebanyak 1% adalah 0,1425 U/mL. Harga aktivitas tersebut menunjukan bahwa terbentuk 0,0675 dan 0,1425 µ mol glukosa permenit untuk setiap mL enzim. Untuk persamaan linier kurva standart xilosa yaitu y= 4,512x – 0,039 sehingga diketahui aktivitas enzim xilanase sebelum freez dry adalah 0,1267 U/mL dan setelah freez dry yang dilarutkan dlm buffer sebanyak 1% adalah 0,1295 U/mL. Harga aktivitas tersebut menunjukkan bahwa terbentuk 0,1267 dan 0,1295 µ mol xilosa permenit untuk setiap mL enzim. Meningkatnya aktivitas enzim xilanase dan selulase setelah proses freeze dry dikarenakan air yang masih tercampur dengan enzim ditarik keluar dengan cara sublimasi sehingga terjadi pemekatan volume enzim. Freeze drying merupakan tahap pemekatan atau pengeringan larutan protein untuk mencegah denaturasi protein (Susanti, 2002)

Skripsi


Nadya Aisya


48

4.1.4 Produksi dan uji aktivitas enzim lakase dari kapang Aspergillus sp. Produksi enzim lakase yang dihasilkan dari kapang Aspergillus sp. diawali dengan meremajakan kapang pada media PDA agar miring yang diinkubasi selama 5 hari pada suhu 370C. Hasil peremajaan tersebut dibuat inokulum dengan cara menambahkan aquades steril pada media PDA agar miring yang selanjutnya divorteks untuk mendapatkan suspensi spora kapang. Suspensi ini ditentukan absorbansinya pada λ 600 nm yaitu sebesar 0,5 menggunakan Spektrofotometer UV-Vis, jumlah sel dalam suspensi berbanding lurus dengan jumlah sinar yang diabsorpsi pada panjang gelombang λ 600 nm. Selanjutnya, inokulum di masukkan sebesar 1% dari media pertumbuhan GMY. Media pertumbuhan GMY dibuat sebanyak 200 mL, lalu dimasukkan inokulum sebanyak 2 mL. Setelah itu dilakukan inkubasi dengan cara penggojogan pada suhu ruang dengan kecepatan 150 rpm selama 7 hari. Pada hari ketiga saat fase log, media ditambahkan larutan Cu2+ yang berfungsi sebagai kofaktor enzim sampai konsetrasi 0,5 M. Setelah 7 hari inkubasi dilakukan pemanenan enzim dengan cara memisahkan supernatan dengan sel kapang. Media pertumbuhan yang sudah ditumbuhi sel kapang disaring dengan kertas saring lalu diambil supernatannya karena enzim lakase ini merupakan enzim ekstraseluler. Enzim yang diperoleh ini di uji aktivitasnya dengan metode Bourbonnais dan Paice (1990). Prinsip uji ini adalah sebagai berikut : pewarna non-phenol Asam 2,2’-azinobis-di-(3ethylbenzthiazolinesulphonate) (ABTS) dioksidasi oleh lakase menjadi radikal kation (ABTS+) yang lebih stabil. Konsentrasi radikal kation yang berwarna biru kehijauan (dibaca pada panjang gelombang 420 nm) berkolerasi dengan aktivitas

Skripsi


Nadya Aisya


49

lakase (Bar, 2001). Berikut adalah gambar perubahan ABTS menjadi radikal kation ABTS :

Gambar 4.1 Reaksi perubahan ABTS menjadi radikal kation ABTS (Macherczyk et al., 1998) Perubahan absorbansi diamati setiap 5 menit dengan inkubasi selama 30 menit pada suhu 500C. Aktivitas lakase dinyatakan sebagai International Unit (IU) per mililiter, dengan 1 IU didefinisikan sebagai jumlah enzim yang dapat mengoksidasi 1 µmol ABTS tiap menit. Perubahan setiap 5 menit di buat kurva grafik linier dan di dapatkan persamaan y= 0,00042x + 0,173 sehingga diketahui aktivitas enzim lakase sebelum freeze dry sebesar 1,75 x 10-2 U/mL dan setelah freeze dry sebesar 0,1245 U/mL. 4.2 Proses biodeinking Deinking merupakan suatu proses untuk melepaskan dan memisahkan partikel tinta cetak dari serat kertas bekas yang didaur-ulang untuk memperbaiki sifat optik dari serat yang diperoleh (Dina dkk,2009). Proses biodeinking

Skripsi


Nadya Aisya


50

merupakan proses deinking yang menggunakan hasil dari makhluk hidup sebagai media

bahan

pemutihnya.

Pada

biodeinking,

digunakan

enzim

untuk

menggantikan sebagian fungsi bahan kimia yang digunakan pada proses deinking konvensional. Pada proses biodeinking ini digunakan kombinasi enzim xilanase dan selulase yang sudah ditentukan perbandingannya yaitu perbandingan selulase : xilanase 4:1 dimana dosis enzim sebesar 650 ppm atau dengan perbandingan aktivitas 0,333:0,075 lalu ditambahankan lakase dengan variasi perbandingan aktivitas 0,036; 0,072; 0,109; 0,145; 0,291; 0,436; 0,582 U. Penggunaan variasi aktivitas ini bertujuan untuk mengetahui penambahan jumlah enzim lakase yang optimum dengan kadar substrat yang sama. Proses awal yang dilakukan adalah menghancurkan kertas oleh mesin mini pulper, proses ini berfungsi untuk membuat kertas menjadi buburan kertas (pulp). Setelah setelah itu, diberi penambahan enzim dan deinking agent (surfaktan) yang berfungsi pada proses floatasi untuk membantu mengangkat partikel tinta yang sudah terlepas dari serat kertas bersama gelembung udara untuk dipisahkan. Setelah dilakukan penambahan enzim, buburan kertas disesuaikan pH nya lalu dilakukan inkubasi pada suhu 45oC, 50oC, 70oC masing-masing selama 15 menit. Selanjutnya dilakukan proses floatasi dengan konsistensi 0,9 % selama 5 menit untuk mengangkat tinta yang sudah terlepas dari serat kertas. Proses selanjutnya yaitu mencetak kertas menjadi hand sheet dengan gramatur 55 g/m2 .

Skripsi


Nadya Aisya


51

4.3 Pengujian lembaran kertas 4.3.1 Pengujian derajat putih (brightness) Banyak faktor yang mempengaruhi derajat putih kertas, beberapa diantaranya adalah: derajat putih pulp yang digunakan sebagai bahan baku kertas, jumlah noda yang berasal dari serat sekunder serta jenis dan karakteristik bahan pengisi yang ditambahkan. Terkait dengan kandungan noda yang sebagian berasal dari partikel tinta, merupakan salah satu parameter penting untuk melihat kinerja proses deinking, namun kadang kala memberikan korelasi negatif terhadap derajat putih kertas. Pada proses deinking yang efektif, jumlah noda yang terbawa pada kertas semakin rendah dan menghasilkan lembaran dengan derajat putih lebih tinggi. Namun apabila proses deinking tidak efektif, terutama dalam pemilihan tahap pelepasan partikel tinta (pencucian, flotasi atau kombinasi keduanya), maka menyebabkan partikel berukuran sangat kecil (< 0,04 mm2) akan terbawa kedalam kertas dan tidak dapat dideteksi melalui uji noda. Adanya noda yang demikian justru akan menurunkan nilai derajat putih lembaran dan freeness

Hasil Brightness (%ISO)

terhadap indeks tarik lembaran (Dina dkk, 2009). 62 60 58 56 54 52 50

59,93 60,04 58,69

60,4

54,5

53,52

53,38

50,78 0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7

Perbandingan aktivitas penambahan lakase (U)

Gambar 4.2 Kurva hubungan antara perbandingan aktivitas penambahan lakase dengan derajat putih

Skripsi


Nadya Aisya


52

Pengujian derajat putih ini menggunakan alat Lorntzen and Wettre. Dari gambar diatas terlihat bahwa dengan penambahan enzim lakase pada kombinasi enzim selulase dan xilanase ini dapat meningkatkan nilai derajat putih sampai 60,4% ISO pada perbandingan aktivitas penambahan lakase 0,291 U, nilai ini telah memenuhi persyaratan derajat putih dalam SNI 14-0091-1998 tentang spesifikasi kertas koran yaitu minimal 55%. Peningkatan derajat putih yang lebih tinggi dibandingkan dengan penelitian sebelumnya oleh Winni Pilarsih yag menggunakan kombinasi enzim selulase dan xilanase saja yaitu 55,88 %ISO, hal ini dikarenakan enzim lakase dapat mendegradasi kandungan lignin dalam kertas yang dapat menyebabkan kertas terlihat lebih gelap dan merupakan faktor penyebab nilai derajat putih yang rendah . Derajat putih pada kertas mengalami peningkatan seiring dengan meningkatnya penambahan enzim lakase sampai didapatkan titik optimum pada variasi perbandingan aktivitas penambahan lakase 0,291 U dan setelah dilakukan penambahan lagi, derajat putih menurun. Hal ini dapat disebabkan karena semakin banyaknya kandungan enzim lakase pada kertas secara tidak langsung akan merusak fibril-fibril pengikatan antara selulosa, hemiselulosa dan lignin dan membuat serat dalam kertas lebih renggang dan menurunkan tingkat pemantulan cahaya pada pengukuran derajat putih. Selain itu, diduga karena dalam kinerja enzim dipengaruhi oleh beberapa hal, salah satunya adalah konsentrasi enzim. Pada kinerja enzim tidak semua substrat diikat oleh enzim. Oleh karena itu, saat aktivitas enzim sudah optimum maka penambahan konsentrasi enzim tidak akan memberikan hasil yang lebih baik.

Skripsi


Nadya Aisya


53

4.3.2 Pengujian indeks tarik Pengujian indeks tarik kertas ini menggunakan alat Autograph AG-10 TE Shimadzu. Dari hasil pengukuran dengan alat tersebut selain dapat ditentukan indeks tariknya juga dapat di tentukan nilai stress, strain dan Modulus Young. Faktor-faktor yang mempengaruhi ketahanan tarik (tensile strength) adalah jumlah dan kualitas ikatan antar serat, penggilingan, panjang serat, bahan pengisi (filler) dan fines (Elyani dkk, 2011). Dari hasil pengujian indeks tarik di dapatkan data sebagai

Indeks tarik (Nm/g)

berikut : 32 29,4 28,24 27,44 26,99 25,36

29 26

25,99

25,78

25,42

23 20 0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7


Gambar 4.3 Kurva hubungan antara perbandingan aktivitas penambahan enzim lakase dengan nilai indeks tarik

Dari gambar di atas terlihat bahwa penambahan enzim lakase pada kombinasi enzim xilanase dan selulase pada proses deinking ini cenderung menurunkan indeks tarik. Hal ini dikarenakan enzim lakase yang bekerja mendegradasi lignin yang merupakan komponen pengikat antara serat-serat pada kertas. Lignin yang telah terdegradasi menyebabkan ikatan antar serat berkurang dan menyebabkan kertas lebih mudah rapuh. Diperoleh kondisi optimum pada variasi perbandingan aktivitas penambahan enzim lakase 0,145 U. Nilai indeks

Skripsi


Nadya Aisya


54

tarik yang didapatkan untuk semua kombinasi penambahan enzim sudah memenuhi syarat harga SNI 14-0091-1998 yaitu minimal 21,5 Nm/g. 4.3.3 Pengujian SEM (Scanning Electron Microscopy) SEM merupakan metode karakterisasi struktur pada kertas. Syarat agar SEM menghasilkan permukaan yang tajam maka permukaan benda atau sampel harus bersifat logam (Mikrajuddin, 2010). Sampel yang digunakan dalam penelitian ini merupakan bahan yang tidak bersifat logam, oleh karena itu perlu dilapisi bahan logam yaitu emas palladium. Hasil dari pengujian karakteristik permukaan tersebut sebagai berikut :

(a)

(b)

(b)

(d)

Gambar 4.4 (a) Topografi permukaan serat control tanpa penambahan enzim perbesaran 2000x (b) Topografi permukaan serat dengan penambahan enzim lakase variasi perbandingan aktivitas 0,291 U perbesaran 2000x (c) Topografi permukaan serat control tanpa penambahan enzim perbesaran 3000x (d) Topografi permukaan

Skripsi


Nadya Aisya


55

serat dengan penambahan enzim lakase variasi perbandingan aktivitas 0,291 U perbesaran 3000x. Sampel kertas yang di uji SEM ini merupakan sampel kertas hasil dari proses deinking dengan kombinasi penambahan lakase dengan variasi perbandingan aktivitas 0,291 U yang mempunyai derajat putih yang paling tinggi. Sedangkan kontrol yang digunakan adalah sampel kertas blanko yang merupakan sampel kertas yang tidak diberi penambahan enzim. Dari gambar diatas dapat diketahui bahwa permukaan serat pada kertas yang telah dilakukan penambahan enzim lakase pada kombinasi xilanase dan selulase dalam proses deinkingnya mempunyai serat yang lebih renggang. Jika dibandingkan dengan kontrolnya yaitu kertas yang tidak diberi penambahan enzim, terlihat bahwa serat control lebih padat dan pada kertas yang ditambahkan enzim seratnya lebih rusak. Hal ini disebabkan karena enzim selulase dan xilanase mendegradasi serat-serat kertas halus yang terdiri dari selulosa dan xilan dan enzim lakase mendegradasi lignin yang merupakan pengikat antar serat. Oleh karena itu, terlihat jelas kerusakan yang terjadi pada serat yang menunjukan enzim-enzim tersebut bekerja mendegradasi permukaan serat kertas.

Skripsi


Nadya Aisya


BAB V KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan Berdasarkan hasil dan pembahasan yang telah diuraikan sebelumnya, dapat disimpulkan: 1. Penambahan enzim lakase pada kombinasi enzim selulase dan enzim xilanase dalam proses deinking kertas koran bekas dapat peningkatkan derajat putih kertas sebesar 60,4 % ISO, hasil tersebut telah memenuhi standart SNI-14-0091-1998 yaitu 55 % ISO. Dengan penambahan enzim lakase optimum yaitu pada variasi perbandingan aktivitas 0,291 U. 2. Proses deinking dengan penambahan enzim lakase ini membuat indeks tarik mengalami penurunan sebesar 53,4 – 24,5 Nm/g, tetapi pada kondisi optimum indeks tarik naik menjadi 35,6 Nm/g, hasil indeks tarik ini telah memenuhi standart SNI-14-0091-1998 yaitu 21,5 Nm/g. Hasil SEM menujukan adanya perubahan pada serat kertas, hal ini menujukan bahwa enzim bekerja mendegradasi serat kertas. 5.2 Saran Saran untuk penelitian selanjutnya sebagai berikut. 1. Menggunakan enzim lakase yang aktivitasnya lebih baik dengan mempunyai waktu produksi yang lebih singkat.

56 Skripsi


Nadya Aisya


57

2. Mencari waktu optimum untuk kombinasi penambahan enzim pada proses deinking kertas koran bekas. 3. Membuat kombinasi enzim amobil yang dapat digunakan berulang ulang untuk menghemat biaya produksi dalam aplikasinya.

Skripsi


Nadya Aisya


58

DAFTAR PUSTAKA

Achmadi, SS. 1990. Kimia Kayu. Pusat Antar Universitas. Bogor : Institut Pertanian Bogor. Ackerman, Eugene., et al., 1988, Ilmu Biofisika. Airlangga University Press, Surabaya. 401-404. Asmarani, One., 2006. Hidrolisis Beberapa Jenis Xilan dengan Enzim Xilanolitik Rekombinan, Skripsi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga, Surabaya. Bajpai, P., Pramod, K. B, 1998, Deinking with Enzyme : a Review, TAPPI Journal, 81:12, 111. Bar, M., 2001, Kinetics and Physico-chemical Properties of White-Rot Fungal Laccases, Thesis, University of The Free State, Bloemfontein. Beg, Q.K.M., Kapoor L., Mahajan G., Hoondal S., 2001, Microbial Xylanase and Their Industrial Aplication : a Review. Appl Microbiol Biotechnol, 56:326-338. Cho-Goo, S., J.H. Suh., and Y. I. Choi, 1996, Overproduction, purification, and characterization of Bacillus stearothmophilus Endo-xylanase A (xynA), J Microbiology and Biotchnology, 6:79-85. Crueger, W., Crueger, A., 1984, Biotechnology : A Textbook of Industrial Microbiology, Minuaer Associates, Sunderland. Debeche, T., Bliard, C., Debire, P., and O’Donohue, M.J., 2002, Probing The Catalytically Essential Residues of the α-L-arabinofuranosidase from Thermobacillus xylanilyticus, Protein Enginering 15: 21-28. Dina, F. S., Elyani, N, 2009, Penggunaan Surfaktan pada Proses Biodeinking Kertas Bekas Perkantoran Untuk Kertas Cetak, BS, 44:1-10. Edahwati, Luluk., 2008, Proses Deinking Kertas Koran Bekas Menggunakan Hidrogen Peroksida (H2O2), Jurnal Kimia dan Teknologi, Fakultas Teknologi Industri, UPN “Veteran” Jatim, Surabaya 4:322-327. Elyani, N., Rismijana, J., Wirawan, S, K., Cucu, 2011, Penanganan Sticky dan Pitch Secara Enzimatis Pada Daur Ulang Kertas Bekas, Jurnal Selulosa, Balai Besar Pulp dan Kertas, Bandung 1:15-19.

Skripsi


Nadya Aisya


59

Fengel, D., Wegener, G., 1995, Kayu : Kimia Ultrastruktur Reaksi-Reaksi, (diterjemahkan oleh Hardjono Sastrohamidjoyo), Cetakan pertama, Penerbit UGM Press, Yogyakarta. Hein, Morris, Leo, R.B., Scott, P., Susan, A., 1993, Introduction to Organic and Biochemistry, Cole Publishing Company, California. Herrmann, N. C., Vrsanska, M., Jurickova, M., Hirsch, J., Biely, P., and Kubicek, C. P., 1997, The β-D-Xylosidase of Trichoderma reesi is a Multifunctional β-D-xylanxylohidrolase, Biochem. J. Klemm, D., Heublein, B., Fink, H., and Bohn, A, 2005, Cellulose : fascinating biopoplymer and sustainable raw material, ChemInform, 36:3358-3393. Leach, Richard, H., 1993, The Printing Ink Manual, Fifth Edition. Kluwer Academic Pub, London. 141-197 Lehninger, A.L., 1997, Dasar-dasar Biokimia, Jilid I. Penerjemah Maggy Thenawijaya, Penerbit Erlangga, Jakarta. 235-243. Majcherczyk, A., Johannes, C. and Hutterman, A. (1998). Oxidation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAH) by laccase of Trametes versicolor. Enzyme and Microbial Technology, 22: 335-341. Manitto, Paolo. 1992. Biosintesis produk alam. IKIP Semarang Press, Semarang 50-91. Marsiati, H., 1989, Isolasi dan Karakterisasi Enzim Selulase dari Jamur Volvariella volvacea, Tesis, Institut Teknologi Bandung, Bandung. McMurry, J., Mary E. C., 1994, Fundamental of Organic and Biological Chemistry, Prentice Hall, New Jersey. Meryandini, A., Widhyastuti, N., Lestari, Y, Pemurnian dan Karakterisasi Xilanase Streptomyces sp. SKK1-8, Makara Sains, Institut Pertanian Bogor, Bogor, 2:55-60. Mikrajuddin, A., Khairurrijal., 2010, Karakteristik Nanomaterial : Teori, Penerapan dan Pengolahan Data, Bandung Rezeki Putera Bandung, 4569. Miller, L.G., 1959, Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar, Anal chem 31:426-428. Pelczar, J. Michael. 1986. Dasar-dasar Mikrobiologi. Jilid 1. Penerbit Universitas Indonesia, Jakarta 317-331.

Skripsi


Nadya Aisya


60

Pérez, J., Muňoz-Dorado, J., de la Rubia, T., Martinez, J., 2002, Biodegradation and biological treatment of cellulose, hemicelluloses and lignin : an overview, J Int. Microbial, 5:53-63. Pizzi, A. 1994. Advanced Wood Adhesives Technology. New York : Marcel Dekker, Inc. Prasad, K.K., Mohan, S.V., Babu, V. L., Pati, B. R., Sarma, P. N., 2005, Laccase production using Pleurotus ostreatus 1804 immobilized on PUF cubes in batch and packed bed reactors : influence of culture condition. The Journal of Microbiology, 43:301-307. Puspaningsih, N.N.T., 2004, Gen Penyandi Xilosidase dari Bacillus thermoleovorans IT-08, Desertasi S3-IPB, Bogor. Retnowati, E. dan N. Elyani., 1988, Penelitian Proses Penghilangan Tinta Kertas Bekas dengan Cara Pencucian., Litbang Industri Selulosa, Bandung. Richana, N., 2002, Produksi dan Prospek Enzim Xilanase dalam Pengembangan Bioindustri di Indonesia. Buletin AgroBio, 5 (1). Risdianto, H., Suhardi, S. H., Niloperbowo, W., Setiadi, T, 2008, Produksi Lakase dan Potensial Aplikasinya Dalam Proses Pemutihan Pulp, Berita Selulosa, Balai Besar Pulp dan Kertas, Bandung 43:1-10. Rismijana, J., Indriani, I. N., Pitriyani, T, 2003. Penggunaan Enzim SelulaseHemiselulase pada Proses Deinking Kertas Koran Bekas, Jurnal Matematika dan Sains, Balai Besar Litbang Industri Selulosa, Bandung 8:67-71. Riva, S., 2006, Laccase : blue enzyme for green chemistry, J Biotechnology, 24:119-226. Robinson, T, 1995. Kandungan Organik Tumbuhan Tingkat Tinggi. Edisi Keenam. Institut Teknologi Bandung, Bandung. Saha, B.C, 2003, Hemicellulose Bioconvertion, J Ind Microbiol Biotechnol., 30:279-291. Schlegel, Hans.G, 1994, Mikrobiologi Umum. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta. 470-476, 484-486, 570.

Skripsi


Nadya Aisya


61

Shrinath, A., J. T. Szewczak, and I. J. Bowen., 1991. A Review of Ink – Removal Techniques in Current Deinking Tecnology. TAPPI Journal Press, Atlantha. Smook, G.A, 1989, Overview of the pulp and paper industry from a chemical industry perspective. Journal of Chemical Technology and Biotechnology, 38:15-27. Stryer, L., Tymoczko, J.L., Berg, J.M., 2002, Boichemistry, Edisi 5, New York, Wh Freeman. Subramaniyan, S., Prema, P., 2002, Biotecnology of Microbial Xylanase : Enzymology, Molecular Biology, and Application, Critical Rev Biotechnol, 22:33-64. Sucipto, Tito. 2009. Pelekat Lignin. Karya Tulis, Fakultas Pertanian, Universitas Sumatra Utara, Medan. Susanti, Elfi., 2002. Isolasi dan Karakterisasi Protease dari Bacillus subtilis 1012M15. Ten Have, R., Teunissen, P.J.M., 2001. Oxidative mechanisms involved in lignin degradation by white rot fungi, Chem. Rev. 101. Thomson, J.A., 1993, Molecular Biology of Xylan Degradation, FEMS Microbiol. Rev., 104:65-82. Toulousia, I. RR. S., 2008, Fitoremediasi Tanah Tercemar Logam Berat Cu dan Pb Limbah Pada Proses Deinking Industri Kertas oleh Tanaman Rumput Gajah (Pennisetum purpureum), Thesis, Institut Teknologi Bandung, Bandung. Tuomela, M., 2002, Degradation of lignin and other 14C-labelled compounds in compact and soil with an emphasis on white-rot fungi, Thesis, University of Helsinki, Finland. Tsujibo, H., Miyomoto, T., Kuda, K., Minami, T., Sakamoto, T., Hasegawa., and Lanamori, Y, 1992, Purification, properties, and partial amino acid sequence of thermostable xylanase from Streptomyces termoviolaceus OPC-520, Apll. Environ. Microbiol, 58:371-375. Voutou, B., Stefanaki, E. C., 2008, Electron Microscopy : The Basic, Physics of Advanced Materials, Winter School, Aristotle University of Thessaloniki, Greece, pp 1-11.

Skripsi


Nadya Aisya


62

Wirawan, S. K., Rismijana, J., Cucu., Asid, D, S, 2010, Pulp Rami Putih Sebagai Bahan Baku Kertas, Berita Selulosa, Balai Penelitian Pulp dan Kertas, Bandung 45:57-63. Wirawan, S. K., Rismijana, J., Hidayat, T, 2008, Aplikasi α-amilase dan Selulase pada Proses Deinking Kertas Bekas Campuran, Berita Selulosa, Balai Penelitian Pulp dan Kertas, Bandung 43:11-18. Yu, E.K.C., Saddler, J.N., 1985, Biomass convention to butanediol by simultaneouns saccharification and fermentation, Trends Biotecnol 3 : 100-104. Zhiliang Fan., Lee R. Lynd, 2006. Conversion of Paper Sludge to Ethanol, II : Proses Design and Economic Analysis, Bioprocess Biosyst Eng 30:3545.

Skripsi


Nadya Aisya


LAMPIRAN Lampiran 1. Data uji aktivitas selulase a. Data Kurva standart glukosa Konsentrasi (µg/mL) 200 400 600 800 1000

Absorbansi 0.262 0.617 1.053 1.412 1.75

absorbansi

kurva standar glukosa 2 1,8 1,6 1,4 1,2 1 0,8 0,6 0,4 0,2 0

y = 0,001x - 0,112 R² = 0,998

0

200

400

600

800

1000

1200

konsentrasi (µg/mL)

b. Hasil aktivitas selulase sebelum freeze dry

Absorbansi

Skripsi

Sampel

Kontrol

0,482

0,409


Nadya Aisya


1. Enzim : y

= 0,001x – 0,112

0,482

= 0,001x – 0,112

x

=

0,482 + 0,112 = 594 µg/mL 0,001

2. Kontrol : y

= 0,001x – 0,112

0,409

= 0,001x – 0,112

x

=

0,409 + 0,112 = 521 µg/mL 0,001

Aktivitas enzim

= (Ks-Kk) x 1 x Faktor pengenceran x 10 BM Glukosa x waktu inkubasi =

(594 − 521) x1x10 = 0,0675 U/mL 180 x 60

Keterangan : Ks : Konsentrasi sampel Kk : Konsentrasi kontrol BM : Berat Molekul c. Hasil aktivitas selulase setelah freeze dry Absorbansi

Skripsi

Sample

Kontrol

0,389

0,235


Nadya Aisya


1. Enzim : y

= 0,001x – 0,112

0,389

= 0,001x – 0,112

x

=

0,389 + 0,112 = 501 µg/mL 0,001

2. Kontrol : y

= 0,001x – 0,112

0,235

= 0,001x – 0,112

x

=

0,235 + 0,112 = 347 µg/mL 0,001

Aktivitas enzim


(501 − 347) x1x10 = 0,1425 U/mL 180 x60

Keterangan : Ks : Konsentrasi sampel Kk : Konsentrasi kontrol BM : Berat Molekul

Skripsi


Nadya Aisya


Lampiran 2. Data hasil uji aktivitas xilanase a. Data Kurva standart xilosa Konsentrasi (mg/mL)

Absorbansi

0.1

0.399

0.2

0.823

0.4

1.842

0.6

2.678

0.8

3.536

Absorbansi

Kurva Standart Xilosa 4 3,5 3 2,5 2 1,5 1 0,5 0

y = 4,512x - 0,039 R² = 0,998

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

Konsentrasi Xilosa (mg/mL)

b. Hasil uji aktivitas xilanase sebelum freeze dry Absorbansi

Skripsi

Sampel

Kontrol

0,750

0,581


Nadya Aisya


1. Enzim : y

= 4,512x – 0,039

0,750

= 4,512x – 0,039

x

=

0,750 + 0,039 = 0,1748 mg/mL 4,512

2. Kontrol : y

= 4,512x – 0,039

0,596

= 4,512x – 0,039

x

=

0,235 + 0,039 = 0,0607 µg/mL 4,512

Aktivitas enzim


(0,1748 − 0,0607) x1x1000 x10 = 0,1267 U/mL 150 x 600

Keterangan : Ks : Konsentrasi sampel Kk : Konsentrasi kontrol BM : Berat Molekul c. Hasil uji aktivitas xilanase setelah freeze dry Absorbansi

Skripsi

Sampel

Kontrol

1,3707

0,8446


Nadya Aisya


1. Enzim : y

= 4,512x – 0,039

1,3707 = 4,512x – 0,039 x

=

1,3707 + 0,039 = 0,3124 mg/mL 4,512

2. Kontrol : y

= 4,512x – 0,039

0,8446 = 4,512x – 0,039 x

=

0,8446 + 0,039 = 0,1958 µg/mL 4,512

Aktivitas enzim


(0,3124 − 0,1958) x1x1000 x10 = 0,1295 U/mL 150 x 600

Keterangan : Ks : Konsentrasi sampel Kk : Konsentrasi kontrol BM : Berat Molekul

Skripsi


Nadya Aisya


Lampiran 3. Data hasil uji aktivitas lakase a. Hasil uji aktivitas lakase sebelum freeze dry Waktu inkubasi

Absorbansi

menit ke-

(Abs)

0

0.173

5

0.175

10

0.177

15

0.179

20

0.183

25

0.184

30

0.185

0,188 y = 0.00042x + 0.173 R² = 0.976

Absorbansi (Abs)

0,186 0,184

0,183

0,182 0,18

0,185

0,184

0,179

0,178

0,177

0,176 0,174

0,175 0,173

0,172 0

5

10

15

20

25

30

35

Waktu inkubasi (menit ke-)

Konsentrasi (U/mL) = 2

Skripsi

,

,

0,00042 1000 = 1,75x10-2 U/mL


Nadya Aisya


b. Hasil uji aktivitas lakase setelah freeze dry Waktu inkubasi

Absorbansi

menit ke-

(Abs)

0

0.173

5

0.175

10

0.177

15

0.179

20

0.183

25

0.184

30

0.185

0,76 y = 0,003x + 0,625 R² = 0,950 0,721 0,705

(Absorbansi)

0,74 0,72 0,7

0,724

0,695

0,68 0,66

0,658

0,64

0,635

0,626

0,62 0

5

10

15

20

25

30

35

Waktu inkubasi (menit ke-)

Konsentrasi (U/mL) = 2

Skripsi

,

,

0,003 1000 = 0,1245 U/mL


Nadya Aisya


Lampiran 4. Perhitungan Indeks Tarik Tiap Sample Perbandingan No Aktivitas Lakase (U) 1 0 2 0.036 3 0.072 4 0.109 5 0.145 6 0.291 7 0.436 8 0.582 Persamaan Indeks Tarik :

Ketahanan Tarik (N) I 5.18 3.21 3.53 3.18 2.89 3.85 5.08 4.27

=

II Rata-rata 5.08 5.13 3.65 3.43 3.89 3.71 3.32 3.25 3.27 3.08 4.15 4 5.24 5.16 4.63 4.45

Gramatur (g/m2) 85.5 59.5 66.25 59 59.5 76 97.25 85.75

Indeks Tarik (Nm/g) 29.4 28.24 27.44 26.99 25.36 25.78 25.99 25.42

ℎ " " # $%& (() 9,8 , ,$ - .$ / 0 $(-) -

1. Blanko 5,13 ( 9,8 = 29,4 (-/, , 0,02 85,5 2. Sampel 1 3,43 ( 9,8 = 28,24 (-/, , 0,02 59,5 3. Sampel 2 3,71 ( 9,8 = 27,44 (-/, , 66,25 0,02 4. Sampel 3 3,25 ( 9,8 = 26,99 (-/, , 59 0,02 5. Sampel 4

Skripsi


Nadya Aisya


3,08 ( 9,8 = 25,36 (-/, , 59,5 0,02 6. Sampel 5 4 ( 9,8 = 25,78 (-/, , 0,02 76 7. Sampel 6 5,16 ( 9,8 = 25,99 (-/, , 0,02 97,25 8. Sampel 7 4,45 ( 9,8 = 25,42 (-/, , 85,75 0,02 -

Skripsi


Nadya Aisya


Lampiran 4. Perhitungan data Stress, Strain dan Modulus Young a. Data perhitungan ketahanan tarik (Stress)

Perbandingan No Aktivitas Lakase (U) 1 2 3 4 5 6 7 8

0 0.036 0.072 0.109 0.145 0.291 0.436 0.582

Gaya (N)

Luas Penampang Stress (mm2) (N/mm2) Rata-rata

I

II

5.18 3.21 3.53 3.18 2.89 3.85 5.08 4.27

5.08 3.65 3.89 3.32 3.27 4.15 5.24 4.63

5.13 3.43 3.71 3.25 3.08 4 5.16 4.45

1.8 1.8 1.4 2 1.2 1.6 2.2 2

2.85 1.905 2.65 1.625 2.56 2.5 2.34 2.225

Stress (N/mm2)

6 5,16

5,13

5 4

3,433,713,25 3,08

3

4,45

4

2 1 0 0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7


b. Data perhitungan renggangan (Strain) No 1 2 3 4 5 6 7 8

Skripsi

Perbandingan Aktivitas Lakase (U) 0 0.036 0.072 0.109 0.145 0.291 0.436 0.582

Pertambahan Panjang (mm) I II Rata-rata 1.80 2.07 1.94 1.67 1.60 1.64 1.40 2.80 2.10 1.63 3.21 2.42 4.60 1.29 2.95 1.89 2.64 2.27 1.47 1.40 1.44 1.36 1.59 1.48


Strain 0.0241 0.0204 0.02625 0.03025 0.0368 0.0283 0.0179 0.0184

Nadya Aisya

Strain


0,04 0,035 0,03 0,025 0,02 0,015 0,01 0,005 0

0,0368 0,03025 0,02625 0,0241 0,0204

0

0,1

0,2

0,0283 0,0184

0,0179

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7


c. Data perhitungan Modulus Young No

Modulus Young

(N/mm2)

1 2 3 4 5 6 7 8

Perbandingan Aktivitas Lakase (U) 0 0.036 0.072 0.109 0.145 0.291 0.436 0.582

Stress (N/mm2) 2.85 1.905 2.65 1.625 2.566 2.5 2.345 2.225

140

0.0241 0.0204 0.02625 0.03025 0.0368 0.0283 0.0179 1.59

130,75

120

117,82 100,95 93,23

100 80

Modulus Young 117.82946 93.238192 100.95238 53.719008 69.722694 88.300221 130.75705 120.67797

Strain

120,67

88,3

69,72 53,71

60 40 20 0 0

0,1

0,2

0,3

0,4

0,5

0,6

0,7


Skripsi


Nadya Aisya

ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga KATA PENGANTAR. sehingga penyusun dapat menyelesaikan naskah skripsi dengan judul Aplikasi

Recommend Documents