VARIASI AKTIVITAS KANDUNGAN METABOLIT SEKUNDER SPONS BERDASARKAN KONDISI HABITAT

1025

Variasi aktivitas kandungan metabolit sekunder spons ... (Ruzkiah Asaf)

VARIASI AKTIVITAS KANDUNGAN METABOLIT SEKUNDER SPONS BERDASARKAN KONDISI HABITAT Ruzkiah Asaf*), Budimawan**), dan Ahyar Ahmad**) *) Balai Penelitian dan Pengembangan Budidaya Air Payau Jl. Makmur Dg. Sitakka No. 129, Maros 90512, Sulawesi Selatan E-mail: [email protected] **) Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan Universitas Hasanuddin Jl. Perintis Kemerdekaan Km. 10 Makassar 90245, Sulawesi Selatan

ABSTRAK Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui variasi aktivitas kandungan metabolit sekunder spons berdasarkan kondisi habitat. Kandungan senyawa bioaktif yang dihasilkan dari proses metabolit sekunder spons pada kondisi habitat yang berbeda dilakukan dengan mengambil sampel spons dari empat stasiun kemudian dilakukan uji terhadap anti bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus, serta uji anti jamur Candida albicans dan Malassezia fulfur. Hasil penelitian menunjukkan bahwa kondisi habitat berpengaruh secara nyata terhadap senyawa bioaktif yang dihasilkan. Spons Meloplus sarasinorum memiliki daya hambat terbesar untuk anti bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus serta anti jamur Candida albicans, dengan kondisi habitat yang didominasi oleh karang mati yang ditumbuhi alga. Spons Agelas clathroides memiliki daya hambat terbesar untuk anti jamur Malassezia fulfur dengan kondisi habitat yang didominasi oleh karang mati yang ditumbuhi alga. Hal ini menunjukkan bahwa kandungan senyawa bioaktif dari metabolit sekunder spons berbeda berdasarkan kondisi habitat. KATA KUNCI:

metabolit sekunder, spons, habitat

PENDAHULUAN Metabolit sekunder dihasilkan oleh semua jenis biota dikenal dengan istilah natural produk merupakan hasil metabolisme dalam tubuh organisme. Pembentukan metabolit sekunder dipengaruh oleh lingkungan, sehingga diasumsikan bahwa pada lingkungan yang berbeda walaupun jenisnya sama akan menghasilkan metabolit yang berbeda. Spons adalah jenis invertebrata laut yang memproduksi metabolit sekunder yang merupakan sumber penghasil senyawa bioaktif terbesar di antara invertebrata laut lainnya. Dalam dekade terakhir dilaporkan sebanyak 50% senyawa bioaktif yang ditemukan dalam invertebrata laut, berasal dari filum porifera (Harper et al., 2001). Metabolit sekunder bagi invertebrata laut juga berperan dalam pencarian makanan, pengenalan dengan populasinya, penentuan habitat dan pasangan simbiotik yang sesuai. Selain itu, senyawa kimia yang dihasilkan oleh invertebrata laut, sebagai respons terhadap kompetisi dengan lingkungan. Kegunaan dari senyawa kimia bagi biota yang memproduksinya adalah sebagai pengikat reseptor dalam target ekologinya (Harper et al., 2001). Spons dalam mempertahankan kehidupannya melakukan adaptasi secara morfologis, anatomis, fisiologis, dan kimiawi. Produksi metabolit sekunder dari spons merupakan kompensasi akibat interaksi dengan lingkungan biotik, abiotik, dan sebagai senjata kimia terhadap predator. Salah satu pemicu produksi senyawa terpene, poliketida, dan alkaloid oleh spons adalah adanya kompetisi dengan koral dan untuk mencegah infeksi bakteri patogen. Banyak jenis spons yang ditemui di habitat karang tubuhnya dipenuhi jaringan hidup bluegreen alga. Pada beberapa jenis spons jaringan alga ini menyuplai hampir 100% kebutuhan nutriennya, diperkirakan terdapat sebanyak 10.000 spesies spons di laut. Identifikasi spons sering mengalami kesulitan karena spesies yang sama seringkali menunjukkan bentuk yang berbeda, tergantung pada kondisi habitatnya. Di tempat yang tenang dan terlindung, spesies yang sama akan dapat berbeda bentuknya bila berada di tempat yang berarus kuat di luar terumbu. Spons pada jenis yang sama pertumbuhannya cenderung semakin besar dan meninggi dengan bertambahnya kedalaman laut (Bergquist, 1978; Amir & Budiyanto, 1996). Faktor ekologis sangat berpengaruh terhadap bentuk

Prosiding Indoaqua - Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2012

1026

dan pertumbuhan spons, yaitu kedalaman air, struktur dasar, arus, suhu, kandungan nutrien, dan tingkat sedimentasi (Storr, 1976). Terumbu karang merupakan habitat hidup bagi berbagai biota laut tropis lainnya sehingga terumbu karang memiliki keanekaragaman jenis biota yang sangat tinggi dan produktif. Dengan adanya keanekaragaman biota laut yang berasosiasi pada terumbu karang sehingga memiliki bentuk serta warna yang beraneka ragam pula, di antara berbagai jenis biota terumbu karang, spons menempati relung ekologi yang sangat spesifik yaitu dasar perairan jernih yang masih cukup memperoleh sinar matahari (Ahmad et al., 1996). Pulau Kapoposang merupakan salah satu pulau yang terdapat di dalam gugusan Kepulauan Spermonde. Pulau Kapoposang terletak di Kecamatan Liukang Tupabiring Kabupaten Pangkajene Kepulauan (Pangkep). Pulau Kapoposang merupakan salah satu tipe perwakilan terumbu karang tepi/datar, lamun, dan mangrove di perairan Sulawesi. Di perairan Kapoposang terdapat ekosistem terumbu karang yang hidup di dalamnya berbagai jenis organisme di antaranya adalah spons. Dari hal tersebut maka penelitian dilakukan untuk mengetahui keterkaitan kondisi habitat terhadap kandungan metabolit sekunder spons di Pulau Kapoposang. BAHAN DAN METODE Penelitian dilakukan di Pulau Kapoposang yang merupakan salah satu pulau yang terdapat dalam gugusan Kepulauan Spermonde (Gambar 1). Jumlah tempat pengambilan sampel dibagi dalam 4 stasiun.

Gambar 1. Lokasi penelitian di Pulau Kapoposang Kabupaten Pangkep Pengamatan kondisi lingkungan hidup spons dilakukan dengan mengetahui kondisi terumbu karang dan lingkungan sekitar tempat tumbuh spons ditemukan. Pengamatan kondisi terumbu karang dilakukan dengan metode transek garis (Dartnal & Jones, 1986; English et al., 1994). Adapun metodenya adalah dengan meletakkan transek sepanjang 50 m, dengan menggunakan alat selam dan alat tulis di bawah air, semua biota yang ada pada garis transek dicatat dan diukur dengan ketelitian hingga cm. Pengamatan kondisi habitat spons dilakukan dengan mengamati kondisi yang dominan di mana spons tersebut tumbuh kemudian ditentukan habitatnya.

1027


Pengamatan aktivitas kandungan metabolit sekunder spons diambil dari empat stasiun dengan sembilan jenis spons yang berbeda, dengan kondisi lingkungan yang berbeda pula dengan penyelaman SCUBA (Self Contained Underwater Breathing Apparatus), pada titik yang termonitor oleh alat global positioning system. Setiap sampel yang diambil dari empat stasiun didata kondisi lingkungan tempat sampel itu berada, kemudian diolah dan dilakukan proses ekstraksi dan partisi, selanjutnya dilakukan uji kandungan bioaktif metabolit sekunder terhadap bakteri dan jamur. Analisis bioaktivitas ekstrak metanol spons dilakukan dengan pengamatan terhadap zona bening yang terbentuk dengan mengukur diameter zona hambatan pada masing-masing konsentrasi ekstrak metanol yang diuji pada bakteri dan jamur pada setiap karakteristik lingkungan yang berbeda. Daya hambat kemudian dikelompokkan menurut jenis dan dibandingkan daya hambatnya berdasarkan kondisi habitat spons melalui grafik histogram dan dianalisis secara deskriptif. HASIL DAN BAHASAN Kondisi Terumbu Karang Hasil pengamatan terhadap kondisi terumbu karang pada perairan Pulau Kapoposang dapat dilihat pada Tabel 1. Tabel 1. Persentase terumbu karang pada perairan Pulau Kapoposang

Benthic lifeform (%)

Kedalaman (m)

HCL

DCA

Alga

OT

Abiotik

I

5 15

47,34 24,24

0 0

0 0

7,60 12,48

42,90 54,90

Sedang Rusak

II

6 15

14,61 28,40

39,96 2,40

0 0,52

40,43 18,78

5,00 49,90

Rusak Sedang

III IV

5 5

42,32 22,84

6,24 0

4,55 7,36

10,75 19,28

36,14 50,52

Sedang Rusak

Stasiun

Kondisi

Pada Tabel 1 terlihat bahwa pengamatan terhadap kondisi terumbu karang dilakukan pada empat stasiun dengan berbagai variasi kedalaman. Nilai persentase tutupan karang hidup berkisar 14,61%047,34%. Persentase tutupan karang hidup terbesar didapatkan pada stasiun I pada kedalaman 5 m, sedangkan persentase tutupan karang terkecil didapatkan pada stasiun II pada kedalaman 6 m. Pada Stasiun I dengan dua variasi kedalaman terlihat bahwa, kisaran persentase tutupan karang pada HCL dan abiotik lebih besar dari komponen lainnya. Kondisi ini dapat dikatakan bahwa kondisi terumbu karang HCL pada stasiun ini berada dalam kategori sedang dan menjadi tempat tumbuh yang baik bagi spons. Pada Stasiun II dengan kedalaman 6 m terlihat bahwa persentase tutupan karang pada DCA dan OT lebih besar dari HCL dan Abiotik. Kondisi ini dapat dikatakan bahwa terumbu karang berada dalam kategori terumbu karang dalam kondisi yang rusak. Di samping itu, kondisi ini juga sangat baik bagi spons untuk hidup dengan cara melekat pada pecahan karang, karang mati, dan pada substrat berpasir. Hal ini didasari oleh sifat spons yang memiliki kemampuan bersaing dengan organisme lain dalam mendapatkan tempat untuk tumbuh dan suplai nutrien, atau dengan kata lain spons merupakan hewan pionir yang mampu beradaptasi terhadap lingkungan yang mengalami kerusakan. Pada stasiun III terlihat bahwa persentase tutupan karang pada HCL dan abiotik lebih besar dari komponen lainnya, sehingga kondisi terumbu karang pada stasiun ini dapat dikatakan berada dalam kategori sedang dan baik untuk pertumbuhan spons. Pada Stasiun IV terlihat bahwa persentase tutupan karang abiotik lebih besar dari komponen lainnya. Kondisi terumbu karang pada stasiun ini


1028

berada dalam kategori rusak. Sintasan spons pada stasiun ini didukung oleh besarnya persentase tutupan karang pada komponen abiotik. Spons yang dijadikan sampel pada penelitian ini sebanyak sembilan jenis yang dominan didapatkan pada keempat stasiun pengamatan. Kemudian sampel spons dibandingkan berdasarkan genus dan kondisi habitatnya. Keberadaan sampel spons dominan pada setiap stasiun pengamatan dapat kita lihat pada Tabel 2. Pengamatan Kondisi Habitat Spons Keberadaan sampel spons yang dominan pada setiap stasiun pengamatan dapat dilihat pada Tabel 2 dengan kondisi habitat yang dominan pada masing-masing spons. Tabel 2. Jenis spons dan habitat yang dominan pada setiap stasiun

Stasiun Kedalaman pengamatan (m)

Jenis spons

Habitat dominan

I

15 7 10

Callyspongia aeresuza Karang hidup encrusting Agelas clathroides Karang mati yang ditumbuhi alga Callyspongia fallax Karang hidup branching dan encrusting

II

6 10 5

Callyspongia aerizusa Callyspongia fallax Meloplus sarasinorum

Karang hidup massive dan branching Karang hidup encrusting dan massive Karang mati yang ditumbuhi alga

III

7 5

Callyspongia aeresuza Agelas sp.

Karang hidup karang massive Pasir dan pecahan karang

IV

3

Agelas sp.

Lamun dan pasir

Pada Tabel 2, spons jenis Callyspongia aeresuza terdapat pada stasiun I,II, dan III, Callyspongia fallax didapatkan pada stasiun I dan pada stasiun II, masing-masing pada kedalaman dan kondisi habitat yang berbeda. Sedangkan Agelas sp. didapatkan pada stasiun III dan stasiun IV pada kedalaman dan habitat yang berbeda. Jenis spons yang lain (Agelas clathroides dan Meloplus sarasinorum) terdistribusi masing-masing pada stasiun I dan II. Hal ini mengindikasikan bahwa kedua jenis spons ini tidak dapat hidup pada habitat yang berbeda. Jenis sampel spons dapat kita lihat pada Gambar 2, 3, 4, dan 5. Dari stasiun I, terdapat 3 jenis spons yang berbeda, ketiga jenis spons ini adalah Callyspongia aeresuza, Agelas clathroides, dan Callyspongia fallax. Spons ditemukan hidup dan tumbuh pada habitat yang didominasi karang keras dan karang mati, dengan kondisi terumbu karang dalam kategori sedang.

Gambar 2. Sampel spons stasiun I, Callyspongia aerizusa (kiri), Agelas clathroides, (tengah) dan Callyspongia fallax (kanan)

1029


Gambar 3. Sampel spons stasiun II, a. Callyspongia aerizusa, b. Callyspongia fallax, dan c. Meloplus sarasinorum Pada stasiun II terdapat spons jenis Callyspongia aerizusa, dan Callyspongia fallax, serta jenis spons yang lain yaitu jenis Meloplus sarasinorum. Jenis Agelas clathroides tidak ditemukan pada stasiun ini, ketiga jenis spons ini hidup dan tumbuh pada habitat yang didominasi karang keras dan karang mati dengan kondisi terumbu karang kategori rusak. Terdapat perbedaan antara spons Agelas clathroides dan Meloplus sarasinorum, yaitu spons jenis Agelas clathroides berada pada stasiun I dan Jenis Meloplus sarasinorum berada pada stasiun II, yang berarti kedua jenis spons ini hidup dengan kondisi terumbu karang yang berbeda, sedangkan jenis Callyspongia aerizusa, dan Callyspongia fallax dapat hidup pada stasiun I dan II. Diduga kedua jenis spons ini dapat hidup dengan kondisi terumbu karang dengan kategori sedang dan rusak.

Gambar 4. Sampel spons stasiun III, Callyspongia aerizusa (kiri), Agelas sp. (kanan) Jenis spons pada stasiun III dan IV adalah Callyspongia aerizusa dan Agelas sp., pada stasiun III jenis Callyspongia aerizusa dan Agelas sp. hidup pada habitat yang didominasi oleh karang keras, pasir dan pecahan karang. Adapun kondisi terumbu karang pada stasiun III berada dalam kategori sedang. Pada stasiun IV jenis Callyspongia aerizusa tidak ditemukan lagi dan yang ada pada stasiun ini adalah spons jenis Agelas sp. Jenis spons ini tumbuh pada habitat yang didominasi lamun dan pasir, dengan kondisi terumbu karang berada dalam kategori rusak.

Gambar 5. Sampel spons pada stasiun IV, Agelas sp.


1030

Pengamatan Kandungan Metabolit Sekunder Spons Skrining terhadap aktivitas anti-mikroba dilakukan dengan uji bakteri menggunakan bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus, dan uji jamur menggunakan Candida albicans dan Malassezia furfur. Skrining terhadap aktivitas anti-mikroba dan anti jamur dapat dilihat pada Tabel 3. Hasil skrining menunjukkan bahwa kandungan senyawa spons berdasarkan kelompok dapat dijadikan sebagai acuan dalam mengetahui senyawa yang terkandung dalam spons pada sampel penelitian. Kandungan senyawa spons berdasarkan kelompok dari kelompok spons Callyspongidae diketahui mengandung senyawa Linear 3-alkylpiperidines dan kelompok Agelasidae mengandung Pyrrole-2-carboxylic derivates, selain itu, juga terdapat kelompok Agelas dengan kandungan Di-dan sesquiterpenes (Soest & Braekman, 1999). Tabel 3. Diameter hambatan hasil skrining aktivitas antimikroba ekstrak pada spons dengan konsentrasi 1.000 µg/mL

Stasiun

Diameter hambatan (mm) ekstrak metanol

Kode sampel

Bakteri

Jamur

EC

SA

CA

MF

I

A B C

11,88 16,48 9,55

12,90 19,30 11,70

-

9,88 20,94 -

II

D E F

10,60 18,91

12,01 19,96

17,39

13,97 18,09

III

G H

16,81 12,26

17,28 14,45

-

18,95 15,13

IV

I

-

-

Keterangan: A : Callyspongia aerizusa; SA : Staphylococcus aureus; D : Callyspongia aerizusa; F : Meloplus sarasinorum; I : Agelas sp.

-

EC : Escherichia coli; B : Agelas clathroides; C : Callyspongia fallax; CA : Candida albicans; MF : Malassezia furfur; E : Callyspongia fallax; G : Callyspongia aerizusa; H : Agelas sp.

Pada Tabel 3, nilai diameter hambatan untuk bakteri uji Escherichia coli berkisar 9,55-18,91 mm dan nilai hambatan untuk bakteri uji Staphylococcus aureus berkisar 11,70-19,96 mm. Pada Uji bakteri Escherichia coli dan Staphylococcus aureus tersebut, Meloplus sarasinorum memiliki daya hambat terbesar, sedangkan Callyspongia fallax pada stasiun I memiliki daya hambat terkecil. Besarnya daya hambat Meloplus sarasinorum menunjukkan bahwa spons jenis ini memiliki kandungan senyawa bioaktif berupa triterpenoid (Ariyanti et al., 2008). Besarnya daya hambat jenis spons ini terkait dengan habitat spons tersebut. Besarnya kandungan metabolit pada spons ini diduga oleh banyaknya predator, sehingga spons jenis ini banyak mengalami stres dan dalam mempertahankan diri spons ini memiliki senjata perisai menghasilkan senyawa kimia membentuk metabolit sekunder yang dapat meracuni predator di sekitarnya karena bersifat toksik (Webster, 2003). Jenis-jenis predator spons dapat dilihat pada Tabel 4. Pada uji jamur Candida albicans semua jenis spons tidak memiliki daya hambat kecuali Meloplus sarasinorum, diduga hal ini disebabkan karena jamur Candida albicans mempunyai struktur dinding sel yang kompleks, dengan ketebalan 100-400 nm, selain itu, dinding sel dari jamur ini terdiri atas

1031

Variasi aktivitas kandungan metabolit sekunder spons ... (Ruzkiah Asaf) Tabel 4. Jenis-jenis predator spons

Jenis predator spons Angelfish, Pornacanthus spp. Trunkfish, Acanthostracion spp. Filefish, Aluterus scriptus Spadefish, Chaefodipterus faber Parrotfish, Sparisoma spp. Scarus isertii Starfish, Oreaster reticulatzis Sumber: Atoll Research Bulletin By Janiel Wulff

lima lapisan yang berbeda. Pada uji jamur Malassezia furfur daya hambat berkisar 9,88-20,94 mm, selain itu, juga kandungan spons Meloplus sarasinorum dari triterpenoid terdapat senyawa saponin yang dapat mengganggu perkembangan protozoa dengan terjadinya ikatan antara saponin dengan sterol pada permukaan membran sel protozoa sehingga menyebabkan membran pecah dan sel lisis akan mati. Keberadaan kolesterol pada membran sel eukariotik (termasuk protozoa), tetapi tidak terdapat pada sel bakteri prokariotik, saponin mempunyai tingkat toksisitas yang tinggi melawan jamur, mekanisme kerjanya sebagai anti jamur berhubungan dengan interaksi saponin dengan sterol membran. Pada uji jamur Malassezia furfur spons Agelas clathroides memiliki daya hambat terbesar dan daya hambat terkecil dimiliki oleh Callyspongia aerizusa. Pada uji jamur Malassezia furfur spons Agelas clathroides memiliki daya hambat terbesar, karena adanya kandungan senyawa pada kelompok spons Agelas yaitu seskiterpenoid yang merupakan anti jamur, selain itu, juga besarnya bioaktivitas spons tersebut disebabkan oleh adanya kandungan kimia senyawa tersebut sebagai imunosupressive, neurosupressive, dan anti virus (Sipkema et al., 2005). Callyspongia fallax yang didapatkan pada stasiun II dan Agelas sp. pada stasiun IV tidak memiliki daya hambat baik pada uji bakteri maupun pada uji jamur, hal ini diduga disebabkan karena kondisi terumbu karang yang tidak memungkinkan bagi pertumbuhan spons tersebut di mana berhubungan dengan penyerapan senyawa yang terkandung pada lingkungan sekitarnya. Dari hasil pengamatan kondisi terumbu karang serta habitat yang dominan pada sampel uji dengan daya hambat pada mikroba uji maka dapat dibandingkan dengan menggunakan gambar histogram berdasarkan genus yang sama. Pada Gambar 6 terlihat bahwa spons Callyspongia aeresuza yang hidup pada kondisi habitat yang didominasi karang massive pada uji bakteri dan uji jamur dengan menggunakan jamur Malassezia furfur memiliki daya hambat paling besar dibandingkan dengan kondisi habitat yang lain, sedangkan pada uji jamur Candida albicans tidak memiliki daya hambat. Kondisi habitat yang didominasi oleh encrusting dan campuran karang massive dan branching pada uji bakteri memiliki daya hambat yang tidak terlalu jauh berbeda. Tingginya nilai daya hambat kondisi habitat yang didominasi oleh karang massive pada uji bakteri dan jamur kecuali uji jamur Candida albicans disebabkan oleh karang massive tergolong jenis hard coral non acropora di mana kondisi tersebut didukung dengan kondisi terumbu karang yang tergolong kategori sedang sehingga pertumbuhan spons sangat baik, kondisi tersebut juga dipengaruhi oleh beberapa faktor oseanografi antara lain posisi terumbu karang yang menghadap arah angin, sehingga arus dari arah laut lepas menyuplai banyak makanan dan mempertinggi difusi oksigen dari udara bebas (Suharyanto, 1998). Selain itu, pula tingginya persentase karang hidup yang menyebabkan spons bersaing dengan karang hidup dan untuk menciptakan pertahanan diri spons menghasilkan senyawa kimia membentuk metabolit sekunder yang ditakuti dan dihindari dari predator, senyawa tersebut bersifat toksik dan berkhasiat juga sebagai antikanker (cytotoxic) dan antibiotik (McConnaughey, 1970).

Prosiding Indoaqua - Forum Inovasi Teknologi Akuakultur 2012 20 17,28

16,81

Daya hambat (mm)

16 12

18,95

Encrusting

18 14

1032

Massive & branching Massive

11,88 10,6

13,97

12,9 12,01

9,88

10 8 6 4 2

0

0

0

0 EC

SA

CA

MF

Bakteri dan jamur uji

Gambar 6. Histogram kondisi habitat yang dominan dengan diameter hambatan pada spons Callyspongia aeresuza pada stasiun I, II, dan III Pada Gambar 7 terlihat bahwa hanya spons Callyspongia fallax yang hidup pada kondisi habitat yang didominasi oleh campuran karang branching dan encrusting yang memiliki daya hambat untuk bakteri uji, sedangkan pada jamur uji, kedua kondisi habitat tidak memiliki daya hambat. Hal ini disebabkan karena adanya kandungan senyawa yang lebih reaktif terhadap bakteri dan faktor-faktor lain yang memberikan efek pada perkembangan kandungan senyawa spons baik secara langsung maupun tidak. Beberapa faktor yang dapat mempengaruhi seperti laju pertumbuhan mikroorganisme, kepekaan organisme terhadap zat aktif, kemampuan dan laju difusi bahan aktif, serta ketebalan dan viskositas medium. Besarnya daya hambat bakteri Staphylococcus aureus dibandingkan bakteri Escherichia coli pada disebabkan karena perbedaan bioaktivitas yang dipengaruhi oleh beberapa faktor. Menurut Brench et al. (1993), salah satu faktor yang mempengaruhi bioaktivitas adalah adanya resistensi bakteri yang disebabkan oleh perbedaan struktur dinding selnya. Bakteri Staphylococcus aureus merupakan bakteri gram positif di mana struktur dinding selnya lebih sederhana, dibanding bakteri Escherichia 14

Branching & encrusting 11,7

Daya hambat (mm)

12 10

Encrusting & massive

9,55

8 6 4 2 0

0

0

0

0

0

0 EC

SA

CA

MF


Gambar 7. Histogram kondisi habitat yang dominan dengan diameter hambatan pada spons Callyspongia fallax pada stasiun I dan II

1033


coli yang merupakan bakteri gram negatif dengan struktur dinding sel lebih kuat dan lebih kompleks, sehingga sulit untuk diuaraikan. Bakteri gram negatif mempunyai struktur dinding sel yang tebal dan berlapis-lapis terdiri atas lipoprotein, peptidoglikan, dan lipopolisakarida, lapisan inilah yang menyebabkan dinding sel tidak mudah dipisahkan dari sel bakteri oleh senyawa aktif (Moat, 1979 dalam Kencanawati, 1993). Daya hambat kondisi habitat brancing dan encrusting pada bakteri uji Staphylococcus aureus memiliki nilai hambat lebih besar dibanding pada bakteri uji Escherichia coli. Pada jamur uji, kedua kondisi habitat tidak memiliki daya hambat. Hal ini disebabkan oleh kondisi habitat yang didominasi oleh branching dan encrusting didukung oleh kondisi terumbu karang kategori sedang di mana komponen yang mendominasi pada habitat ini juga mendukung dalam pertumbuhan spons sehingga dalam persaingan pemanfaatan nutrien semakin banyak yang dapat disaring untuk dapat dijadikan makanan atau simbionnya yang akan meningkatkan bioaktivitasnya. Menurut Ailen (1997), nutrien yang disaring spons sangat kecil bahkan seukuran bakteri, spons juga dapat menyaring air sebanyak 4 hingga 5 kali volume tubuhnya.

Daya hambat (mm)

25

Karang mati ditumbuhi alga 20,94 Sand & rubble

19,3

20

Lamun & sand

16,48 15

15,13

14,45 12,26

10 5 0

0

0

0

0

0

0 EC

SA

CA

MF


Gambar 8. Histogram kondisi habitat yang dominan dengan diameter hambatan pada spons Agelas pada stasiun I, III, dan IV Pada Gambar 8 terlihat bahwa pada uji bakteri dan uji jamur kecuali jamur uji Candida albicans, spons Agelas yang hidup pada kondisi habitat yang didominasi oleh karang mati ditumbuhi alga memiliki nilai daya hambat lebih besar dari kondisi habitat pasir dan pecahan karang. Pada uji jamur Candida albicans kedua kondisi habitat tidak memiliki daya hambat. Kondisi habitat yang didominasi oleh lamun dan pasir, baik pada uji bakteri dan jamur tidak memiliki daya hambat. Tingginya nilai hambat yang didominasi oleh karang mati ditumbuhi alga dan tidak adanya daya hambat yang dimiliki oleh kondisi habitat lamun dan pasir pada mikroba uji disebabkan oleh pada kondisi habitat karang mati tersebut spons menghasilkan senyawa untuk mempertahankan diri terhadap kondisi tersebut, sedangkan pada habitat lamun dan pasir organisme yang ada pada kondisi tersebut kurang sehingga spons tidak menghasilkan banyak senyawa kimia untuk mencegah predator dan bersaing dengan organisme lain. Beberapa jenis spons hanya dapat hidup pada daerah yang berarus pelan (Duckworth, 1997). Pada habitat tersebut pergerakan air lebih cepat. Menurut Nybakken (1988), menjelaskan bahwa pergerakan air di daerah pasir lebih cepat dibanding pada daerah lain. Hal ini yang mengakibatkan spons memiliki sedikit kesempatan untuk mendapatkan makanan dan bersimbiosis dengan mikroorgnisme lainnya. Pergerakan air yang cepat ini menyebabkan laju gerak air tidak dapat menahan nutrien dan mikroorganisme akan hanyut yang seharusnya bermanfaat bagi spons dalam meningkatkan bioaktifnya. Menurut Lee (2001), simbiosis spons dengan simbionnya akan meningkatkan bioaktifnya.


1034

Dari pembahasan, menunjukkan bahwa kandungan metabolit sekunder spons sangat dipengaruhi oleh kondisi habitat yang didukung oleh kondisi terumbu karang. Fenomena ini juga dipengaruhi oleh faktor adaptasi spons terhadap kondisi lingkungan di mana struktur tubuh spons dalam menyaring makanan, oksigen, serta mengeluarkan makanan dan CO2. Dalam penyaringan tersebut, ribuan sampai jutaan mikroba terperangkap, apabila konsentrasi mikroba sangat besar maka spons akan terkena infeksi dan sakit, oleh karena itu, perlu memproduksi senyawa kimia yang mampu melumpuhkan mikroba yang terperangkap. Mikroba yang resisten terhadap senyawa kimia tersebut akan bertahan dan hidup bersimbiosis di dalam tubuh spons. Senyawa kimia yang merupakan metabolit sekunder tersebut dirancang untuk melawan pertumbuhan sel yang sangat cepat, mirip ciri-ciri pertumbuhan sel kanker (Cetkovic & Lada, 2003), selain itu, juga dipengaruhi oleh akibat interaksi dengan lingkungan sekitar baik lingkungan biotik maupun abiotik. Spons mentoleransi mikroorganisme yang masuk ke dalam pori-porinya karena mikroorganisme menyediakan sumber makanan atau produk metabolit tertentu yang bermanfaat untuk spons (Guyot, 2000; Faulkner, 2000). KESIMPULAN 

  

Dari hasil pengamatan di perairan Pulau Kapoposang, maka dapat disimpulkan bahwa: Kondisi habitat spons berpengaruh terhadap kandungan senyawa bioaktif yang dihasilkan dari proses metabolit sekunder spons dan besarnya daya hambat yang dihasilkan berbeda sesuai dengan kondisi habitatnya. Spons Meloplus sarasinorum memiliki daya hambat terbesar untuk mikroba uji dan dapat menghambat jamur uji Candida albicans dibanding spons jenis lain. Spons Agelas clathroides memiliki daya hambat terbesar untuk jamur uji Malassezia furfur. Kondisi habitat yang didominasi oleh karang massive dan karang mati yang ditumbuhi alga memiliki daya hambat terbesar untuk bakteri uji dan jamur uji Malassezia furfur, kecuali jamur uji Candida albicans.

DAFTAR ACUAN Ahmad, T., Suryati, E., & Muliani. 1995. Screening Sponss for Bactericide To Be Use in Shrimp Culture. Indonesian Fisheries Research Journal. Allen, G.R. & Steen, R. 1994. Indo-Pasific Coral Reef. Field Guide. Tropical Reef Research. Singapore, 378 pp. Allen, G.R. 1997. Tropical Marine Life of Indonesia. CV. Java Books. Jakarta. Amir, I. & Budiyanto, A. 1996. Mengenal Spons Laut (Demospongiae) Secara Umum. Oseana, 21(2): 15-31. Amir, I. 1991. Fauna Sepon (porifera) dari Terumbu Karang Genteng Besar , Pulau-pulau Seribu. Oseanologi di Indonesia 24. Jakarta, p. 103-104, 107, 118. Bergquist, P.R. 1978. Sponss. Hutchinson. London, 268 pp. Bhakuni, D.S., & Rawat, D.S. 2005. Bioactive Marine Natural Products. Anamaya, India. BKSDA. 2009. Taman Wisata Alam Pulau Kapoposang (online), (http://.www.ditjenphka.go,id.kawasa.html. diakses 12 Februari 2009).Brown, B.E. & Scoffin, T.B. 1986. Human induced damage to coral reef. Diponegoro University Semarang and National Institute Oceanology, 42 pp. Cetkovic & Lada. 2003. Protein from the Marine Spons Suberites domuncula. Food Technology and Biotechnology, (41)4: 361. Clarke, S. 2003. Modern Medical Microbiology The Fundamental. Arnold Members Of Hodder Headline, London UK, p. 83-85. Cole, G.A. 1988. Textbook of Limnology. Third edition. Waveland Press, Inc., Illinois, USA. Darby, E. 1995. A. Tutorial Superficial Fungal Infection of The Skin, (Online). http://www.lookshark.com/ showcase/fungus/versicolor.htm. diakses 7 Februari 2009). Dewi, A.S., Kustiariyah, T., & Uria, A.R. 2008. Marine Natural Products and Impacts on the Sustainable Development in Indonesia. Proceeding of Indonesian Students’ Scientific Meeting. Delft, Netherland.

1035


Djide, N., Sartini, & Kadir, S. 2004. Analisis Mikrobiologi Farmasi. Laboratorium Mikrobiologi Farmasi. FMIPA UNHAS, Makassar, hlm. 283-284. Duchassaing. 1864. Sponss Callyspongia fallax. http://www.Coralpedia.bio.Warwick.ac.uk/en/ sponss.htm. Diakses 20 Agustus 2009. Duckworth, A.R., Battershill, C.N., Schiel, D.R., & Berquist, P.R. 1997. Influence of Explant Producers and Environmental Factors on Cultur Succes of Three Sponss. Quensland Museum. Effendi, H. 2003. Telaah Kualitas Air. Kanisius. Yogyakarta. English, S.C.; Wilkinson and Baker, V., 1997. Survei Manual for Tropical Marine Resources. Asean. ASEAN Australia Marine Science Project: Living Coastal Resources. Entjang, I. 2003. Mikrobiologi & Parasitologi. PT Citra Aditya Bakti, Bandung, hlm. 100-101. Faulkner, D.J. 2000. Marine Natural Products. Nat. Prod.Rep., 17: 7-55. Ganiswara, S. 1995. Farmakologi dan Terapi. Edisi IV. Bagian Farmakologi Fakultas Kedokteran. Universitas Indonesia. Jakarta, hlm. 572-573. Guyot, M. 2000. “Intricate aspects of spons chemistry”. ZOOSYSTEMA, 22: 419-431 Hanani, E., Mun’im, A., Sekarini, R., & Wiryowidagdo, S. 2005. Uji aktivitas antioksidant beberapa spons laut dari Kepulauan Seribu. Jurnal Bahan Alam Indonesia, 5(1): 5-12. Hardbone, J.B. 1987. Metode Fitokimia. Penuntun Cara Modern Mengekstraksi Tumbuhan. Edisi II. Penerbit ITB Bandung. Harper, M.K., Bugni, T.S., Copp, B.R., James, R.D., Lindsay, B.S., Richadson, A.D., Schnabel, P.C. P.C., Tasdemir, D., van Wangoner, R.M., Verbitski, S.M., & Ireland, C.M. 2001. Introduction to the chemical ecology of marine natural product, Marine Chemical Ecology (James, B. McClintock & Bill J. Baker (Eds.) CRC Press USA. p. 3-29. Haslam, S.M. 1995. River Pollution and Ecological Perspective. John Willey and Sons, Chichester, UK. Hutagalung, H.P. & Rozak, A. 1997. Metode Analisis Air Laut, Sedimen dan Biota Laut. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Jeffries, M. & Mills, D. 1996. Freshwater Ecology, Principles, and Aplications. John Wiley and Sons, Chichester, UK. Janiel, Wulff. 2000. Spons Predators May Determine Differences In Spons Fauna Between Two Sets Of Mangrove Cays. Belize Barrier Reef. Washington, D.C., U.S.A. Kencanawati, N. 1993. Ekstraksi Senyawa Aktif dari Famili Euphorbiaceae serta Pengaruhnya terhadap Pertumbuhan Bakteri Eschercia coli dan Staphylococcus aureus. FMIPA. Institute Pertanian Bogor. Kobayashi, M. & Rachmaniar, R. 1999. Overview Of Marine Natural Product Chemistry Prosidings. Seminar Bioteknologi Kelautan Indonesia 1998, Jakarta, 14-15 Oktober 1998, hlm. 151-158. Koesbiono. 1981. Biologi Laut. Fakultas perikanan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Lawson, M.P., Bergquist, P.R., & Cambie, R.C. 1984. Fattayacid Composition and The Classification of The Porifera. Biochem. System and Ecol., 12(4): 375-394. Lee, Y.K. & Lee, J.H. 2001. Microbial Symbiosis in Marine Sponss. (http://mamidi.kord.re.kr/paper/ jm01-symbio.pdf) Diakses 20 Agustus 2009). Mahon, C.R. & Manuselis, G. 1995. Textbook of Diagnostic Microbiology. W.B. Saunders Company, Tokyo. Mayer, A.M.S. 1999. Marine Pharmacology in 1998 : Antitumor and Cytotoxic Compounds. The Pharmacologist, 41(4): 159-164. McNeely, R.N., Nelmanis, V.P., & Dwyer, L. 1979. Water Quality Source Book A Guide to Water Quality Parameter. Inland Water Directorate. Water Quality Branch. Ottawa. Munro, M.H.G., Luibrand, R.T., & Blunt, J.W. 1987. The Search for Antiviral and Anticancer Compounds from Marine Organism. In Scheuer, P.J. Bioorganic Marine Chemistry. Springer-Verlag, Berlin, 1: 94165. Nontji, A. & Djamali, A. 1980. Teluk Jakarta. Pengkajian Fisika, kimia, Biologi dan Geologi Tahun 1975-1979. Lembaga Oseanologi Nasional-Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia. Jakarta. Nontji, A. 2002. Laut Nusantara. Cetakan ke 3. Penerbit Djambatan. Jakarta.


1036

Nontji, A. & Satari, R. 1996. Potensi Pengembangan Bioteknologi Kelautan di Indonesia. Dalam Herunadi, B., Mudita, I., & Udrekh (Eds.) Prosiding Konvensi Nasional Pembangunan Benua Maritim Indonesia dalam Rangka Mengaktualisasikan Wawasan Nusantara, Makassar, 18-19 Desember 1996, hlm. 49-56. Noor, A. 2007. Riset Kelautan Berorientasi Terapan : Keperluan Mendesak Bagi Kawasan Timur Indonesia. Kongres Ilmu Pengetahuan Wilayah Untuk Kawasan Timur Indonesia. Pusat Kegiatan Penelitian Universitas Hasanuddin, Makassar, 23-24 April. Novotny, V. & Olem, H. 1994. Water Quality, Prevention, Identification and Management of Diffuse Pollution. Van Nostrans Reinhold. New York. Nybakken, J.W. 1988. Biologi Laut Suatu Pendekatan Ekologis. PT Gramedia. Jakarta. Parenrengi, A., Suryati, E., Dalfiah, & Rosmiati. 1999. Studi Toksisitas Ekstrak Spons Auletta sp., Callispongia sp., dan Callispongia pseudoreticulata Terhadap Nener Bandeng (Chanos chanos). Pusat Penelitian dan Pengembangan Perikanan, Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian Departemen Pertanian, Jakarta. J. Pen. Perik. Indonesia, V(4). Rogers, C.S., Garrison, G., Grober, R., Hillis, Z., & Ranke, M.A. 1994. Coral Reef Monitoring Manual for the Carribean and Western Atlantic. Virgin Island National Park USVI. Romimohtarto, K. & Juwana, S. 2005. Biologi Laut (Ilmu Pengetahuan Tentang Biota Laut). Djambatan, Jakarta, hlm. 114-120. Rosmiati & Suryati, E. 2001. Isolasi dan Identifikasi Senyawa Bioaktif Spons (Callyspongia pseudoreticulata) terhadap bakteri patogen dan udang. Balai Penelitian, Maros. J. Bioteknologi Pertanian, 6: 16-21. Ryan, M.J. 2007. Novel Secondary Metabolites from New Zealand Marine Sponss. University of Wellington, Victoria. Sapar, A. & Kumanireng, A.S. 2004. Isolasi dan Penentuan Struktur Metabolit Sekunder Aktif Dari Spons Biemma Triraphis Asal Pulau Kapodasang (Kepulauan Spermonde). Makassar. Marina Chimica Acta, 6(1). Satari, R.R. 1999. Penelitian Produk alam laut di Indonesia, arah dan prospek. Seminar Nasional Kimia Bahan Alam. Jakarta, hlm. 29-37. SmallCrab.com. 2008. Karakteristik Candida albicans. http://www.smalcrab.com/kesehatan/25— healthy415-karak-candida-albicans . Diakses 20 Agustus 2009. Soest, R.W.M. & Braekman, J.C. 1999. Chemosystematics of Porifera: A review. Mem. Queensl. Mus., 44: 569-589. Suharyanto, Parenrengi, A., & Suryati, E. 1997. Kelimpahan Spons Pada Kedalaman yang berbeda di Perairan Teluk Labuange Kabupaten Barru. Sulawesi Selatan. Laporan Penelitian. Balai Penelitian Perikanan Pantai, Maros, 10 hlm. Suharyanto. 1998. Studi Distribusi dan Persentasi Penutupan Spons Pada Kedalaman dan Kondisi Terumbu Karang yang Berbeda di Perairan Pulau Barrang Lompo. Program Pascasarjana Universitas Hasanuddin. Suparno. 2005. Kajian Bioaktif Spons Laut (Porifera: Demospongiae) Suatu Peluang Alternatif Pemanfaatan Ekosistem Karang Indonesia dalam Bidang Farmasi, (Online), (http://www.tumoutou.net/ pps702_10245/suparno.pdf., diakses 7 Januari 2009). Storr. 1976. Ecological; Factors controlling spons distribution in the gulf of Mexicomand the resulting zonation. In F.W. Harrison and R.R. Cowden (Eds). Aspec of spons Biology. A Subsidiary of Harcourt Brace Jovanovich, Publishers. Academic press. New York. San Fransisco. London, p. 261-276. Tomascik, T., Mah, A.J., Nontji, A., & Moosa, M.K. 1997. The Ecology of the Indonesia Seas. Part One. The Ecology of Indonesian Series Vol. VII. Periplus Edition (HK) Ltd. Webster, N. 2003. Sponss (http://www.aad.gov.au/default.asp/ ? casid = 5942. Diakses 19 Agustus 2009. Wetzel, R.G. 1975. Limnology. W.B. Saunders Co. Philadelphia, Pennsylvania. Widjoyo, 2001. Zoologi Dasar. Erlangga, Jakarta.

VARIASI AKTIVITAS KANDUNGAN METABOLIT SEKUNDER SPONS BERDASARKAN KONDISI HABITAT

Recommend Documents