UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DAN UJI TOKSISITAS EKSTRAK ETANOL 70% DAN EKSTRAK AIR KULIT BATANG KAYU JAWA (Lannea coromandelica) SKRIPSI

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DAN UJI TOKSISITAS EKSTRAK ETANOL 70% DAN EKSTRAK AIR KULIT BATANG KAYU JAWA (Lannea coromandelica)

SKRIPSI

ERWIN PRAWIRODIHARJO 1110102000037

FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN PROGRAM STUDI FARMASI JAKARTA JULI 2014

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DAN UJI TOKSISITAS EKSTRAK ETANOL 70% DAN EKSTRAK AIR KULIT BATANG KAYU JAWA (Lannea coromandelica)

SKRIPSI Diajukan sebagai salah satu syarat memperoleh gelar sarjana Farmasi

ERWIN PRAWIRODIHARJO 1110102000037

FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN PROGRAM STUDI FARMASI JAKARTA JULI 2014 ii

ABSTRAK Nama

: Erwin Prawirodiharjo

Program Studi

: Farmasi

Judul

: Uji Aktivitas Antioksidan dan Uji Toksisitas Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica)

Penelitian ini dilakukan untuk menguji aktivitas antioksidan dan toksisitas ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica). Ekstrak etanol 70% diperoleh melalui metode maserasi, sedangkan ekstrak air diperoleh melalui metode dekokta. Pengujian aktivitas antioksidan dilakukan dengan metode DPPH (2,2 Difenil-1 Pikrihidrazil) dengan vitamin C sebagai kontrol positif. Hasil uji aktivitas antioksidan yang dilakukan menunjukkan nilai AAI (Antioxidant activity index) ekstrak etanol 70%, ekstrak air, dan vitamin C berturut-turut 5,5679 (sangat kuat); 0,0667 (lemah); dan 9,6254 (sangat kuat). Pengujian toksisitas juga dilakukan terhadap ekstrak etanol 70% dan ekstrak air menggunakan metode BSLT (Brine shrimp lethality test). Hasil uji toksisitas yang dihitung menggunakan metode probit menunjukkan ekstrak air tidak memiliki aktivitas toksik dengan nilai LC50 3.171 ppm, sedangkan ekstrak etanol 70% menunjukkan aktivitas toksik dengan nilai LC50 23,774 ppm. Berdasarkan penelitian ini, ekstrak etanol 70% kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) diduga memiliki potensi antikanker.

Kata kunci : Kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica), antioksidan, DPPH, AAI, toksisitas, BSLT, LC50

vi

ABSTRACT Name

: Erwin Prawirodiharjo

Program Study

: Pharmacy

Judul

: Antioxidant Activity Test and Toxicity Test of 70% Ethanolic Extract and Aqueous Extract of kayu jawa (Lannea coromandelica) Bark

This study aimed to find out antioxidant activity and toxicity of 70% ethanolic extract and aqueous extract of kayu jawa (Lannea coromandelica) Bark. 70% ethanolic exctract was obtained by maceration method, whereas aqueous extract was obtained by decoction method. Antioxidant activity testing was tested by DPPH (2,2 Diphenyl1 Picrylhydrazyl) method with vitamin C as a positive control. The result of antioxidant activity showed that AAI (Antioxidant activity index) value of 70% ethanolic extract, aqueous extract, and vitamin C were 3,6792 (very strong); 0,0667 (weak); dan 9,6254 (very strong) respectively. Toxicity testing also was tested to 70% ethanolic extract and aqueous extract by BSLT (Brine shrimp lethality test) method. The result of toxicity test which was computed by probit method showed that aqueous extract didn’t have toxic activity with LC50 value 3.171 ppm, whereas 70% ethanolic extract showed toxic activity with LC50 value 23,774 ppm. Based on this study, 70% ethanolic extract of kayu jawa (Lannea coromandelica) bark was thought to have anticancer potential.

Key words : Kayu jawa (Lannea coromandelica) bark, antioxidant, DPPH, AAI, toxicity, BSLT, LC50

vii

KATA PENGANTAR Assalamu ‘alaikum warahmatullahi wabarakatuh Alhamdulillahirabbil’alamin, puji syukur selalu terpanjatkan atas kehadirat Allah subhanahu wa ta’ala atas segala berkah dan kasih sayang-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan penelitian dan penyusunan skripsi ini. Shalawat serta salam senantiasa tercurahkan kepada keharibaan junjungan Nabi Besar Muhammad SAW, beserta keluarga, sahabat, dan para pengikutnya hingga hari akhir nanti semoga kita mendapatkan syafaat dari beliau. Aamiin yaa rabbal ‘alamin. Skripsi dengan judul “Uji Aktivitas Antioksidan dan Uji Toksisitas Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica)” ini disusun dalam rangka memenuhi salah satu syarat menempuh ujian akhir guna mendapatkan gelar Sarjana Farmasi pada Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta. Selama proses penelitian dan penyusunan skripsi ini, penulis menyadari begitu banyak bantuan dari berbagai pihak yang telah meluangkan waktunya, mendidik dan membimbing, memberikan secercah harapan, dan mendoakan yang terbaik kepada penulis. Maka pada kesempatan ini, penulis menyampaikan penghargaan setinggitingginya dan rasa terima kasih yang sebesar-besarnya kepada : 1.

Bapak Prof. Dr. (hc) dr. M. K. Tadjudin, Sp. And selaku Dekan Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta.

2.

Bapak Drs. Umar Mansur, M.Sc., Apt. selaku Ketua Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta.

3.

Bapak Yardi, Ph. D., Apt dan Ibu Eka Putri, M. Sc., Apt. sebagai Pembimbing I dan Pembimbing II yang dengan sabar senantiasa meluangkan waktu dan pikirannya untuk membimbing dan mendidik penulis.

4.

Bapak dan Ibu Dosen Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta yang telah

viii

memberikan ilmunya kepada penulis, semoga ilmu yang diberikan berberkah dan menjadi ilmu yang bermanfaat bagi kita semua. Aamiin. 5.

Ayahanda tercinta H. Muh. Syukri dan Ibunda tercinta Hj. Ernawati bidadari dalam hidup ini yang selalu menyelimuti kegelisahan hingga menjadi sebuah ketenangan yang begitu menenangkan, yang selalu memberikan cinta dan kasih sayang, semangat, dukungan, do’a, dan nasihatnya yang tak akan pernah mampu penulis membalas itu semua. Maafkan penulis yang terkadang hanya bisa mengeluh tanpa pernah bisa memberikan sesuatu yang baik untuk senyumanmu. Penulis hanya bisa berdo’a kepada Allah yang maha pengasih lagi maha penyayang agar kiranya dengan segala kebesaran-Nya mengasihi dan melindungi Ayahanda dan Ibunda tercinta, melimpahkan rezeki, dan memberikan keselamatan di dunia dan di akhirat kelak. Aamiin.

6.

Kakakku yang terhebat Irwan Susanto, S. HI., adik-adikku tersayang Sri Mustika dan Muh. Andika Saputra yang selalu memberikan semangat dan keceriaan pada hidup penulis.

7.

Teman-teman seperjuangan Farmasi Angkatan 2010 “Andalusia” yang selalu memberikan warna baru dalam hidup penulis, kebersamaan yang begitu indah, dan ilmu tentang hidup dan kehidupan yang begitu berharga.

8.

Kak Lisna, Kak Tiwi, Kak Liken, Kak Eris, Mba Rani, dan Kang Rahmadi yang telah membantu keseharian penulis selama penelitian di laboratorium.

9.

Serta semua pihak yang telah membantu penulis selama ini yang tidak dapat penulis sebutkan satu per satu. Semoga Allah swt memberikan balasan yang berlipat ganda atas segala bantuan

dan dukungannya kepada penulis. Penulis menyadari bahwa dalam penulisan skripsi ini masih banyak kelemahan dan kekurangan. Maka dari itu, dengan segala kerendahan hati penulis sangat mengharapkan kritik dan saran pembaca agar lebih sempurnanya skripsi ini.

Jakarta, 11 Juli 2014

Penulis

ix

DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL .......................................................................................... ii HALAMAN PERNYATAAN ORISINALITAS .............................................. iii HALAMAN PERSETUJUAN PEMBIMBING ............................................. iv HALAMAN PENGESAHAN ............................................................................ v ABSTRAK .......................................................................................................... vi ABSTRACT ........................................................................................................ vii KATA PENGANTAR ........................................................................................ viii HALAMAN PENYATAAN PERSETUJUAN PUBLIKASI TUGAS AKHIR UNTUK KEPENTINGAN AKADEMIS ........................................... x DAFTAR ISI ....................................................................................................... xi DAFTAR TABEL ............................................................................................... xiv DAFTAR GAMBAR .......................................................................................... xv DAFTAR LAMPIRAN ...................................................................................... xvi

BAB 1 PENDAHULUAN ................................................................................ 1 1.1 Latar Belakang .............................................................................. 1 1.2 Rumusan Masalah ......................................................................... 4 1.3 Tujuan Penelitian .......................................................................... 4 1.4 Manfaat Penelitian ........................................................................ 4

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ...................................................................... 5 2.1 Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ............................................ 5 2.2 Ekstrak dan Ekstraksi .................................................................... 6 2.3 Pelarut ............................................................................................ 9 2.4 Kromatografi Lapis Tipis (KLT) ................................................... 11 2.5 Spektrofotometri UV-Vis ............................................................... 13 2.6 Antioksidan .................................................................................... 16 2.7 Uji Aktivitas Antioksidan Metode DPPH ...................................... 18 2.8 Uji Toksisitas BSLT Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) ............ 20

xi

BAB 3 METODOLOGI PENELITIAN ........................................................ 22 3.1 Tempat dan Waktu Penelitian ....................................................... 22 3.2 Alat dan Bahan .............................................................................. 22 3.2.1

Alat .................................................................................... 22

3.2.2

Bahan ................................................................................. 22

3.3 Prosedur Kerja ............................................................................... 22 3.3.1

Penyiapan Sampel .............................................................. 22

3.3.2

Ekstrasi Sampel Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ................................................................... 23

3.3.3

Penapisan Fitokimia .......................................................... 24

3.3.4

Parameter Ekstrak .............................................................. 25

3.3.5

Pengujian Antioksidan secara Kualitatif dengan Metode Kromatografi Lapis Tipis (KLT) ........................................ 26

3.3.6

Pengujian Antioksidan secara Kuantitatif dengan Metode DPPH .................................................................................. 26 3.3.6.1 Pembuatan larutan DPPH 0,1 mM ........................ 26 3.3.6.2 Penentuan Panjang Gelombang Maksimum DPPH 26 3.3.6.3 Pembuatan Larutan Blangko ................................ 26 3.3.6.4 Pembuatan Larutan Uji Ekstrak Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ............................. 27 3.3.6.5 Pembuatan Larutan Pembanding Vitamin C ......... 27 3.3.6.6 Analisis Data ......................................................... 28

3.3.7

Pengujian Toksisitas dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) ........................................................ 28 3.3.7.1 Persiapan Larva Artemia salina ............................ 28 3.3.7.2 Pembuatan Larutan Uji Ekstrak Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ..................... 29 3.3.7.3 Pengujian Toksisitas .............................................. 29 3.3.7.4 Analisis Data ......................................................... 30

BAB 4 HASIL DAN PEMBAHASAN ........................................................... 31 4.1 Determinasi Tanaman .................................................................... 31 4.2 Penyiapan Sampel .......................................................................... 31 4.3 Ekstraksi ........................................................................................ 32

xii

4.4 Parameter Ekstrak .......................................................................... 33 4.5 Penapisan Fitokimia ...................................................................... 34 4.6 Uji Aktivitas Antioksidan secara Kualitatif ................................... 35 4.7 Uji Aktivitas Antioksidan secara Kuantitatif ................................. 35 4.8 Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ................................ 40 BAB 5 KESIMPULAN DAN SARAN ........................................................... 45 5.1 Kesimpulan .................................................................................... 45 5.2 Saran ............................................................................................ 45

DAFTAR PUSTAKA ......................................................................................... 46 LAMPIRAN ........................................................................................................ 50

xiii

DAFTAR TABEL Tabel 4.1. Hasil Penetapan Parameter Spesifik dan Non Spesifik Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ..................................................................................

33

Tabel 4.2. Hasil Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) .....................

35

Tabel 4.3. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ..................................

37

Tabel 4.4. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ..........................................................

37

Tabel 4.5. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Vitamin C ......................................

37

Tabel 4.6. Hasil Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ...............................................

41

Tabel 4.7. Hasil Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) ..........................................................

42

xiv

DAFTAR GAMBAR

Gambar 2.1. Tanaman Lannea coromandelica ................................................. 5 Gambar 4.1.

Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Lannea coromandelica .................................... 38

Gambar 4.2. Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Air Kulit Batang Lannea coromandelica............................................. 39 Gambar 4.3.

Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Vitamin C ............. 39

Gambar 4.4.

Kurva Hubungan Log Konsentrasi Ekstrak Etanol 70% dengan Probit ................................................................................ 42

Gambar 4.5.

Kurva Hubungan Log Konsentrasi Ekstrak Air dengan Probit ... 43

xv

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran 1. Alur Kerja Penelitian ...................................................................... 50 Lampiran 2. Hasil Determinasi Lannea coromandelica .................................... 51 Lampiran 3. Penapisan Fitokimia Ekstrak Air ................................................... 52 Lampiran 4. Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol 70% ..................................... 52 Lampiran 5. Perhitungan Rendemen Ekstrak Etanol 70% .................................. 54 Lampiran 6. Perhitungan Residu Pelarut Etanol pada Ekstrak Etanol 70% ....... 54 Lampiran 7. Perhitungan Kadar Abu Total Ekstrak Etanol 70% ........................ 54 Lampiran 8. Hasil KLT Uji Aktivitas Antioksidan Secara Kualitatif................. 54 Lampiran 9. Perhitungan dalam Uji Antioksidan .............................................. 56 Lampiran 10. Perhitungan dalam Uji Toksisitas BSLT ........................................ 59 Lampiran 11. Panjang Gelombang Maksimum DPPH ......................................... 61 Lampiran 12. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 70% menggunakan Metode DPPH ........................................................ 62 Lampiran 13. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air menggunakan Metode DPPH ................................................................................ 63 Lampiran 14. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Kontrol Positif Vitamin C menggunakan Metode DPPH ........................................................ 64 Lampiran 15. Skema Uji Toksisitas ekstrak etanol 70% menggunakan Metode BSLT ............................................................................................. 65 Lampiran 16. Skema Uji Toksisitas Ekstrak Air menggunakan Metode BSLT ............................................................................................. 66 Lampiran 17. Data Absorbansi Uji Aktivitas Antioksidan .................................. 67 Lampiran 18. Data Analisis Statistik One Way Anova ........................................ 68

xvi

1

BAB 1 PENDAHULUAN

1.1

Latar Belakang Indonesia adalah negara yang kaya akan keanekaragaman hayati.

Kekayaan alam yang melimpah ini merupakan suatu berkah dari Allah swt., yang sangat besar potensinya untuk dikembangkan dalam bidang ekonomi, kesehatan, maupun dalam pengembangan ilmu pengetahuan. Etnis bugis adalah etnis terbesar yang ada di Sulawesi Selatan. Tradisi pengobatan etnis bugis, sebelum bahkan setelah populernya pengobatan holistik, masyarakat mengenal adanya sanro (dukun) yang dalam kesehariannya dipercayai dapat membantu mengobati berbagai penyakit. Sanro dalam pengobatannya mayoritas menggunakan tumbuh-tumbuhan, baik dalam bentuk tunggal ataupun diramu sedemikian rupa dengan tumbuhan lainnya. Selain tumbuh-tumbuhan, terkadang sanro juga menggunakan bahan obat dari hewan ataupun bahan lainnya (mineral). Kemampuan pengobatan seperti ini diwariskan secara turun menurun dan oleh masyarakat terus digunakan sampai saat ini (Asni & Dewi, 2010). Kayu jawa atau dalam masyarakat bugis dikenal dengan sebutan aju jawa adalah salah satu tanaman obat tradisional yang masih sering digunakan oleh masyarakat bugis sampai sekarang ini karena khasiatnya yang dipercaya sangat ampuh untuk mengobati luka dalam maupun luka luar. Selain itu, masyarakat sering menggunakan tanaman ini untuk mengobati bintitan. Cara penggunaan tanaman ini berbeda-beda tergantung tujuan penggunaannya, misalnya untuk pengobatan muntah darah masyarakat meminum rebusan kulit batang tanaman ini. Sedangkan untuk mempercepat penyembuhan luka, masyarakat biasanya langsung menggunakan kulit batang ini dengan menempelkannya ke bagian luka. Berdasarkan studi fitokimia, kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) telah dilaporkan mengandung senyawa golongan karbohidrat, steroid, alkaloid, glikosida jantung, terpenoid, tanin, dan flavonoid (Manik, et al., 2013). Venkata (2008) melaporkan kulit batang Lannea coromandelica memiliki

1

UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

2

potensi antikanker. Studi farmakologi juga telah dilaporkan bahwa ekstrak metanol kulit batang kayu jawa memiliki aktivitas biologis seperti antioksidan dan analgesik (Alam, et al., 2013). Selain itu, fraksi n-hexan, diklorometana, dan etil asetat kulit batang dan daun tumbuhan kayu jawa memiliki aktivitas antioksidan, antimikroba, dan trombolitik. Fraksi etil asetat menunjukkan aktivitas antioksidan paling besar dengan IC50 sebesar 3,8±0,14 μg/ml (Manik, et al., 2013). Banyak proses fisiologis dan biokimia dalam tubuh manusia dapat menghasilkan radikal bebas dan senyawa oksigen reaktif lainnya. Radikal bebas tersebut dapat menyebabkan kerusakan oksidatif pada biomolekul (misalnya lipid, protein, DNA) dan akhirnya menimbulkan berbagai penyakit, seperti kanker, aterosklerosis, diabetes, dan berbagai penyakit degeneratif lainnya pada manusia (Ivanišová, et al., 2013). Selain dari dalam tubuh, sumber radikal bebas dapat berasal dari luar tubuh meliputi asap rokok, polusi, radiasi, sinar ultraviolet, obatobatan, pestisida, dan ozon (Langseth, 1995). Salah satu senyawa yang dapat menghambat terjadinya kerusakan oksidatif tersebut adalah antioksidan. Antioksidan adalah senyawa kimia yang dapat menyumbangkan satu atau lebih elektron kepada radikal bebas, sehingga radikal bebas tersebut dapat dihambat (Pratimasari, 2009). Berdasarkan sumber perolehannya ada 2 macam antioksidan, yaitu antioksidan alami dan antioksidan buatan (sintetik). Antioksidan sintetik seperti butylated hydroxyanisole (BHA) dan butylated hydroxytoluene (BHT) banyak digunakan karena efektif dan harga relatif murah. Namun, keamanan dan toksisitas antioksidan sintetik telah mendapatkan perhatian yang serius. Oleh karena itu, penggunaan antioksidan alami meningkat (Ivanišová, et al., 2013). Sesungguhnya Allah telah mengisyaratkan dalam al-Qur’an Surah asy-Syuara ayat 7 sebagai berikut.

ٍ‫َأوَلَ ْم َي َروْا إِلَى الَْأ ْرضِ كَمْ َأ ْن َبتْنَا فِيهَا ِمنْ ُك ّلِ َزوْجٍ َكرِيم‬ Artinya: “Dan apakah mereka tidak memperhatikan bumi, berapakah banyaknya Kami tumbuhkan di bumi itu berbagai macam tumbuh-tumbuhan yang baik?


3

Tanaman banyak mengandung berbagai molekul penghambat radikal bebas, seperti senyawa fenolik (asam fenolik, flavonoid, kuinon, kumarin, lignan, stilbenes, tanin), senyawa nitrogen (alkaloid, amina, betalain), vitamin, terpenoid (termasuk karotenoid), dan beberapa metabolit endogen lainnya yang kaya akan aktivitas antioksidan (Ivanišová, et al., 2013). Senyawa metabolit ini umumnya bersifat polar sehingga dalam penelitian ini digunakan pelarut polar yaitu etanol 70% dan air. Pelarut polar ini diharapkan dapat menyari lebih banyak senyawa yang berpotensi sebagai antioksidan tersebut. Selain uji aktivitas antioksidan, juga dilakukan pengujian toksisitas. Metode BSLT (Brine shrimp lethality test) merupakan salah satu metode uji toksisitas untuk mengetahui keamanan penggunaan suatu bahan alam serta untuk skrining senyawa antikanker karena adanya korelasi positif antara metode BSLT dengan uji sitotoksik menggunakan kultur sel kanker (Carballo, et al., 2002). Metode ini memiliki beberapa keuntungan antara lain lebih cepat, murah, mudah, tidak memerlukan kondisi aseptis dan dapat dipercaya (Meyer, et al., 1982). Pada penelitian ini, kulit batang kayu jawa diekstraksi menggunakan metode maserasi dan dekokta. Metode maserasi dipilih karena pengerjaan dan peralatan yang cukup mudah dan sederhana dimana kebanyakan sediaan herbal terstandar diekstraksi dengan metode ini. Sementara itu, pemilihan metode dekokta didasari oleh cara penggunaan kulit batang kayu jawa ini sebagai obat di dalam masyarakat. Penggunaan empiris secara luas untuk pengobatan dalam masyarakat bugis menggunakan kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) serta belum adanya publikasi ilmiah tentang pengujian aktivitas antioksidan dan uji toksisitas tanaman ini di Indonesia, melatarbelakangi dilakukannya penelitian tentang aktivitas antioksidan dan toksisitas ekstrak etanol 70% dengan metode maserasi serta ekstrak air dengan metode dekokta.


4

1.2

Rumusan Masalah Adapun rumusan masalah dari penelitian ini sebagai berikut. 1. Bagaimana aktivitas antioksidan ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) yang diperoleh menggunakan metode maserasi dan dekokta? 2. Bagaimana toksisitas ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) yang diperoleh menggunakan metode maserasi dan dekokta?

1.3

Tujuan Penelitian Penelitian ini dilakukan bertujuan sebagai berikut. 1. Mengetahui aktivitas antioksidan ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) yang diperoleh menggunakan metode maserasi dan dekokta. 2. Mengetahui toksisitas ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) yang diperoleh menggunakan metode maserasi dan dekokta.

1.4

Manfaat Penelitian 1. Manfaat teoritis : menambah khazanah ilmu pengetahuan dan memberikan informasi ilmiah mengenai potensi kearifan lokal tanaman obat di Indonesia 2. Manfaat metodologis : sebagai referensi untuk penelitian selanjutnya dan sebagai acuan metodologi khususnya aktivitas antioksidan dan toksisitas

dari

kulit

batang

tanaman

kayu

jawa

(Lannea

coromandelica) 3. Manfaat aplikatif : dapat dijadikan sebagai landasan ilmiah penggunaan kulit batang kayu jawa sebagai obat dalam upaya peningkatan kesehatan dan pemanfaatannya di bidang industri farmasi.


5

6

Kayu jawa merupakan deciduous tree atau pohon gugur yang dapat tumbuh hingga mencapai 25 m (umumnya 10-15 m). Permukaan batang berwarna abu-abu sampai coklat tua, kasar, ada pengelupasan serpihan kecil yang tidak teratur, batang dalam berserat berwarna merah atau merah muda gelap, dan memiliki eksudat yang bergetah. Daun imparipinnate, meruncing, dan berjumlah 7-11. Bunga berkelamin tunggal berwarna hijau kekuningan. Buah berbiji dengan panjang 12 mm, bulat telur, kemerahan, dan agak keras. Tanaman ini berbunga dan berbuah dari bulan Januari hingga Mei (Sasidharan, 2004). Lannea coromandelica memiliki sinonim Odina wodier yang tersebar di Himalaya (SwatBhutan), Assam, Burma, Indo-China, Ceylon, Pulau Andaman, China, dan Malaysia (Sasidharan, 2004). Tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) merupakan tanaman pekarangan yang dapat dimanfaatkan daun dan kulit batangnya dengan cara ditumbuk ataupun direbus untuk mengobati luka luar, luka dalam, dan perawatan paska persalinan (Rahayu, et al., 2006). Kulit batang dapat digunakan sebagai astringen, mengobati sakit perut, lepra, ulcer, penyakit jantung, disentri, dan sariawan. Kulit batang digunakan bersama dengan kulit batang Aegle mermelos, Artocarpus heterophyllus dan Sygygium cumini berguna dalam penyembuhan impotensi. Kulit batang dapat dikunyah selama 2-3 hari untuk menyembuhkan glossitis. Perebusan daun juga dianjurkan untuk pembengkakan dan nyeri lokal (Wahid, 2009). Dari kulit batang dapat ditemukan β-sitosterol, physcion, dan physcion anthranol B (Wahid, 2009). Md. Tofazzal Islam, et al., (2009) telah mengisolasi dihydroflavonols, (2R,3S)-(+)-3′,5-dihydroxy-4′,7-dimethoxydihydroflavonol and (2R,3R)-(+)-4′,5,7-trimethoxy

dihydroflavonol

dari

kulit

batang

Lannea

coromandelica. 2.2

Ekstrak dan Ekstraksi Ekstrak adalah sediaan kental yang diperoleh dengan mengekstraksi zat

aktif dari simplisia nabati atau simplisia hewani menggunakan pelarut yang sesuai, kemudian semua atau hampir semua pelarut dan massa atau serbuk yang


7

tersisa diperlakukan sehingga memenuhi baku yang telah ditetapkan (Soesilo, 1995). Ekstrak adalah sediaan kering, kental atau cair dibuat dengan menyari simplisia nabati atau hewani menurut cara yang sesuai, diluar pengaruh cahaya matahari langsung (Tiwari, et al., 2011). Parameter yang mempengaruhi kualitas dari ekstrak adalah bagian dari tumbuhan yang digunakan, pelarut yang digunakan untuk ekstrak, dan prosedur ekstraksi (Tiwari, et al., 2011). Ekstraksi adalah pemisahan bagian aktif sebagai obat dari jaringan tumbuhan ataupun hewan menggunakan pelarut yang sesuai melalui prosedur yang telah ditetapkan (Tiwari, et al., 2011). Selama proses ekstraksi, pelarut akan berdifusi sampai ke material padat dari tumbuhan dan akan melarutkan senyawa dengan polaritas yang sesuai dengan pelarutnya (Tiwari, et al., 2011). Beberapa metode ekstraksi dengan menggunakan pelarut dibagi menjadi dua cara, yaitu cara panas dan cara dingin (Ditjen POM, 2000). Ekstraksi cara dingin dapat dibedakan sebagai berikut. 1. Maserasi Maserasi adalah proses penyarian simplisia menggunakan pelarut dengan beberapa kali pengocokan atau pengadukan pada temperatur kamar (Ditjen POM, 2000). Keuntungan ekstraksi dengan cara maserasi adalah pengerjaan dan peralatan yang digunakan sederhana, sedangkan kerugiannya yakni cara pengerjaannya lama, membutuhkan pelarut yang banyak dan penyarian kurang sempurna. Dalam maserasi (untuk ekstrak cairan), serbuk halus atau kasar dari tumbuhan obat yang kontak dengan pelarut disimpan dalam wadah tertutup untuk periode tertentu dengan pengadukan yang sering, sampai zat tertentu dapat terlarut. Metode ini cocok digunakan untuk senyawa yang termolabil (Tiwari, et al., 2011).


8

2. Perkolasi Perkolasi adalah ekstraksi dengan pelarut yang selalu baru sampai terjadi penyarian sempurna yang umumnya dilakukan pada temperatur kamar. Proses perkolasi terdiri dari tahap pengembangan bahan, tahap perendaman,

tahap

perkolasi

antara,

tahap

perkolasi

sebenarnya

(penampungan ekstrak) secara terus menerus sampai diperoleh ekstrak (perkolat). Untuk menentukan akhir dari pada perkolasi dapat dilakukan pemeriksaan zat secara kualitatif pada perkolat akhir. Ini adalah prosedur yang paling sering digunakan untuk mengekstrak bahan aktif dalam penyusunan tincture dan ekstrak cairan (Tiwari, et al., 2011).

Ekstraksi cara panas dapat dibedakan sebagai berikut. 1. Sokletasi Sokletasi adalah ekstraksi mengunakan pelarut yang selalu baru, dengan menggunakan alat soklet sehingga terjadi ekstraksi kontinyu dengan jumlah pelarut relatif konstan dengan adanya pendingin balik (Ditjen POM, 2000). 2. Refluks Refluks adalah ekstraksi dengan menggunakan pelarut pada temperatur titik didihnya, selama waktu tertentu dan jumlah pelarut terbatas yang relatif konstan dengan adanya pendingin balik (Ditjen POM, 2000). 3. Infusa Infusa adalah ekstraksi dengan pelarut air pada temperatur 90 0C selama 15 menit. Infusa adalah ekstraksi menggunakan pelarut air pada temperatur penangas air dimana bejana infus tercelup dalam penangas air mendidih, temperatur yang digunakan (96-980C) selama waktu tertentu (1520 menit) (Ditjen POM, 2000). Cara ini menghasilkan larutan encer dari komponen yang mudah larut dari simplisia (Tiwari, et al., 2011). 4. Dekok Dekok adalah infus pada waktu yang lebih lama (≥30 oC) dan temperatur sampai titik didih air (Ditjen POM, 2000). Dekok adalah ekstraksi dengan pelarut air pada temperatur 90 oC selama 30 menit. Metode


9

ini digunakan untuk ekstraksi konstituen yang larut dalam air dan konstituen yang stabil terhadap panas (Tiwari, et al., 2011). 5. Digesti Digesti adalah maserasi kinetik pada temperatur lebih tinggi dari temperatur suhu kamar, yaitu secara umum dilakukan pada temperatur 4050oC (Ditjen POM, 2000). Digesti adalah maserasi dengan pengadukan kontinyu pada temperatur lebih tinggi dari temperatur ruang (umumnya 2530oC). Ini adalah jenis ekstraksi maserasi di mana suhu sedang digunakan selama proses ekstraksi (Tiwari, et al., 2011). 2.3

Pelarut Pelarut adalah zat yang digunakan sebagai media untuk melarutkan zat

lain. kesuksesan penentuan senyawa biologis aktif dari bahan tumbuhan sangat tergantung pada jenis pelarut yang digunakan dalam prosedur ekstraksi (Ncube, et al., 2008). Sifat pelarut yang baik untuk ekstraksi yaitu toksisitas dari pelarut yang rendah, mudah menguap pada suhu yang rendah, dapat mengekstraksi komponen senyawa dengan cepat, dapat mengawetkan dan tidak menyebabkan ekstrak terdisosiasi (Tiwari, et al., 2011). Pemilihan pelarut juga akan tergantung pada senyawa yang ditargetkan. Faktor-faktor yang mempengaruhi pemilihan pelarut adalah jumlah senyawa yang akan diekstraksi, laju ekstraksi, keragaman senyawa yang akan diekstraksi, kemudahan dalam penanganan ekstrak untuk perlakuan berikutnya, toksisitas pelarut dalam proses bioassay, potensial bahaya kesehatan dari pelarut (Tiwari, et al., 2011). Berbagai pelarut yang digunakan dalam prosedur ekstraksi antara lain: 1. Air Air

adalah

pelarut

universal,

biasanya

digunakan

untuk

mengekstraksi produk tumbuhan dengan aktivitas antimikroba. Meskipun pengobatan secara tradisional menggunakan air sebagai pelarut, tetapi ekstrak tumbuhan dari pelarut organik telah ditemukan untuk memberikan aktivitas antimikroba lebih konsisten dibandingkan dengan ekstrak air


10

(Tiwari, et al., 2011). Air juga melarutkan senyawa fenolik yang memiliki aktivitas penting sebagai antioksidan (Tiwari, et al., 2011). 2. Aseton Aseton melarutkan beberapa komponen senyawa hidrofilik dan lipofilik dari tumbuhan. keuntungan pelarut aseton yaitu dapat bercampur dengan air, mudah menguap dan memiliki toksisitas rendah. Aseton digunakan terutama untuk studi antimikroba dimana banyak senyawa fenolik yang terekstraksi dengan aseton (Tiwari, et al., 2011). 3. Alkohol Aktivitas antibakteri yang lebih tinggi dari ekstrak etanol dibandingkan dengan ekstrak air dapat dikaitkan dengan adanya jumlah polifenol yang lebih tinggi pada ekstrak etanol dibandingkan dengan ekstrak air. Konsentrasi yang lebih tinggi dari senyawa flavonoid terdeteksi dengan etanol 70% karena polaritas yang lebih tinggi daripada etanol murni (Tiwari, et al., 2011). Etanol lebih mudah untuk menembus membran sel untuk mengekstrak bahan intraseluler dari bahan tumbuhan. Metanol lebih polar dibanding etanol namun karena sifat yang toksik, sehingga tidak cocok digunakan untuk ekstraksi (Tiwari, et al., 2011). 4. Kloroform Terpenoid lakton telah diperoleh dengan ekstraksi berturut-turut menggunakan heksan, kloroform dan metanol dengan konsentrasi aktivitas tertinggi terdapat dalam fraksi kloroform. Kadang-kadang tanin dan terpenoid ditemukan dalam fase air, tetapi lebih sering diperoleh dengan pelarut semipolar (Tiwari, et al., 2011). 5. Eter Eter umumnya digunakan secara selektif untuk ekstraksi kumarin dan asam lemak (Tiwari, et al., 2011). 6. n-Heksan n-Heksan mempunyai karakteristik sangat tidak polar, volatil, mempunyai bau khas yang dapat menyebabkan pingsan. Berat molekul heksana adalah 86,2 gram/mol dengan titik leleh -94,3 sampai -95,3°C. Titik


11

didih heksana pada tekanan 760 mmHg adalah 66 sampai 71°C (Daintith, 1994). n-Heksan biasanya digunakan sebagai pelarut untuk ekstraksi minyak nabati. 7. Etil asetat Etil asetat merupakan pelarut dengan karekateristik semipolar. Etil asetat secara selektif akan menarik senyawa yang bersifat semipolar seperti fenol dan terpenoid (Tiwari, et al., 2011). 2.4

Kromatografi Lapis Tipis (KLT) Kromatografi lapis tipis (KLT) merupakan salah satu metode pilihan

kromatografi secara fisikokimia (Gandjar & Rohman, 2007). KLT merupakan bentuk kromatografi planar, selain kromatografi kertas dan elektroforesis. Pada KLT fase diamnya berupa lapisan yang seragam (uniform) pada permukaan bidang datar yang didukung oleh lempeng kaca, pelat alumunium atau plat plastik. Meskipun demikian, kromatografi planar ini merupakan bentuk terbuka dari kromatografi kolom (Gritter, et al., 1991). KLT dapat dipakai dengan dua tujuan. Pertama, dipakai untuk mencapai hasil kualitatif, kuantitatif atau preparatif. Kedua dipakai untuk menjajaki sistem pelarut dan sistem penyangga yang akan dipakai dalam kromatografi kolom (Gritter, et al., 1991). Kromatografi lapis tipis (KLT) dapat digunakan untuk tujuan analitik dan preparatif. KLT analitik digunakan untuk menganalisa senyawa-senyawa organik dalam jumlah kecil misalnya, menentukan jumlah komponen dalam campuran dan menentukan pelarut yang tepat untuk pemisahan dengan KLT preparatif. Sedangkan KLT preparatif digunakan untuk memisahkan campuran senyawa dari sampel dalam jumlah besar berdasarkan fraksinya, yang selanjutnya fraksi-fraksi tersebut dikumpulkan dan digunakan untuk analisa berikutnya (Townshend, 1995). KLT merupakan teknik yang benar-benar menguntungkan karena tingkat sensitifitasnya sangat besar dan konsekuensinya jumlah sampel lebih sedikit. Fase gerak yang dikenal sebagai pelarut pengembang atau cairan


12

pengelusi akan bergerak sepanjang fase diam karena pengaruh kapiler pada pengembangan secara mekanik (ascending), atau karena pengaruh gravitasi pada pengembangan menurun (descending) (Gritter, et al., 1991). Jumlah volume fase gerak harus mampu mengelusi lempeng sampai ketinggian lempeng yang telah ditentukan. Setelah lempeng terelusi, dilakukan deteksi bercak (Gandjar & Rohman, 2007). Laju pergerakan fase gerak terhadap fase diam dihitung sebagai retardation farctor (Rf). Nilai Rf diperoleh dengan membandingkan jarak yang ditempuh oleh zat terlarut dengan jarak yang ditempuh oleh fase gerak (Gandjar & Rohman, 2007). Fase gerak harus memiliki kemurnian yang tinggi. Hal ini dikarenakan KLT merupakan teknik yang sensitif. Fase gerak yang digunakan adalah pelarut organik yang memiliki tingkat polaritas tersendiri, melarutkan senyawa contoh, dan tidak bereaksi dengan penjerap. Adsorben umumnya digunakan dalam KLT meliputi partikel silika gel ukuran 12 µm, alumina, mineral oksida, silika gel dengan ikatan kimia, selulosa, poliamida, polimer penukar ion, silika gel, dan fase kiral (Gritter, et al., 1991). Ada beberapa cara untuk mendeteksi senyawa yang tidak berwarna pada kromatogram. Deteksi paling sederhana adalah jika senyawa menunjukkan penyerapan di daerah UV gelombang pendek (radiasi utama kira-kira 254 nm) atau jika senyawa itu dapat dieksitasi pada radiasi UV gelombang pendek dan gelombang panjang (365 nm). Pada senyawa yang mempuyai dua ikatan rangkap atau lebih dan senyawa aromatik seperti turunan benzena, mempunyai serapan kuat ± di daerah 230-300 nm (Stahl, 1985). Identifikasi dari senyawa-senyawa yang terpisah dari lapisan tipis menggunakan nilai Rf. Polaritas fase gerak perlu diperhatikan pada analisa dengan KLT, sebaiknya digunakan campuran pelarut organik yang mempunyai polaritas serendah mungkin. Campuran yang baik memberikan fase gerak yang mempunyai kekuatan bergerak sedang. Secara umum dikatakan bahwa fase diam yang polar akan mengikat senyawa polar dengan kuat sehingga bahan yang


13

kurang sifat kepolarannya akan bergerak lebih cepat dibandingkan bahan-bahan polar (Gritter, et al., 1991). Fase gerak harus memiliki kemurnian yang tinggi. Hal ini dikarenakan KLT merupakan teknik yang sensitif. Fase gerak yang digunakan adalah pelarut organik yang memiliki tingkat polaritas tersendiri, melarutkan senyawa contoh, dan tidak bereaksi dengan penjerap (Gritter, et al., 1991). Pelarut yang ideal harus melarutkan linarut dan harus cukup baik sebagai pelarut yang bersaing dengan daya serap penjerap. Keadaan yang ideal tersebut mungkin terjadi jika pelarut tidak berproton seperti hidrokarbon, eter dan senyawa karbonil dipakai sebagai pelarut pengembang (Gritter, et al., 1991). 2.5

Spektrofotometer UV-Vis Spektrum serapan kandungan tumbuhan dapat diukur dalam larutan

yang sangat

encer dengan pembanding blangko pelarut menggunakan

spektrofotometer. Senyawa tanpa warna diukur pada panjang gelombang 200-400 nm, senyawa berwarna pada panjang gelombang 400-800 nm. Prinsip kerja spektrofotometer UV-Vis ialah interaksi sinar ultraviolet atau tampak dengan molekul sampel. Energi cahaya akan mengeksitasi elektron terluar molekul ke orbital lebih tinggi (Harborne, 1987). Pada kondisi ini, elektron tidak stabil dan dapat melepas energi untuk kembali ke tingkat dasar, dengan disertai emisi cahaya. Besarnya penyerapan cahaya sebanding dengan molekul, sesuai dengan hukum lambert-Beer: A= ɛ B C Keterangan: A= serapan ɛ = absortivitas molar B= tebal tempat komponen C= konsentrasi komponen (Day & Underwood, 1980).


14

Sumber radiasi pada spektrofotometer UV-Vis berdasarkan panjang gelombang terbagi menjadi 2, yaitu lampu deuterium dan tungstent. Lampu deuterium menghasilkan sinar 160-500 nm. Lampu tungstent digunakan di daerah sinar tampak 350-3500 nm. Sumber radiasi dikatakan ideal jika memancarkan sperktrum radiasi yang kontinyu, intensitasnya tinggi dan stabil pada semua panjang gelombang. Radiasi ultraviolet dan sinar tampak diabsorpsi oleh molekul organic aromatik, molekul yang mengandung elektron-π terkonyugasi dan atau atom yang mengandung elektron-n, menyebabkan transisi elektron di orbital terluarnya dari tingkat energi elektron dasar ke tingkat energi elektron tereksitasi lebih tin ggi. Besarnya serapan radiasi tersebut sebanding dengan banyaknya molekul analit yang mengabsorpsi sehingga dapat digunakan untuk analisis kuantitatif. Gugus fungsi yang menyerap radiasi di daerah ultraviolet dekat dan daerah tampak disebut kromofor dan hampir semua kromofor mempunyai ikatan tak jenuh. Pada kromofor jenis ini transisi terjadi dari π→π*, yang menyerap pada λmax kecil dari 200 nm (tidak terkonyugasi), misalnya pada >C=C< dan -C≡C-. Kromofor ini merupakan tipe transisi dari sistem yang mengandung elektron π pada orbital molekulnya. Untuk senyawa yang mempunyai sistem konjugasi, perbedaan energi antara keadaan dasar dan keadaan tereksitasi menjadi lebih kecil sehingga penyerapan terjadi pada panjang gelombang yang lebih besar. Gugus fungsi seperti –OH, -NH2, dan –Cl yang mempunyai elektron-elektron valensi bukan ikatan disebut auksokrom yang tidak menyerap radiasi pada panjang gelombang lebih besar dari 200 nm, tetapi menyerap kuat pada daerah ultraviolet jauh. Bila suatu auksokrom terikat pada suatu kromofor, maka pita serapan kromofor bergeser ke panjang gelombang yang lebih panjang (efek batokrom) dengan intensitas yang lebih kuat. Efek hipsokrom adalah suatu pergeseran pita serapan ke panjang gelombang lebih pendek, yang sering kali terjadi bila muatan positif dimasukkan ke dalam molekul dan bila pelarut berubah dari non polar ke pelarut polar (Dachriyanus, 2004). Secara eksperimental, sangat mudah untuk mengukur banyaknya radiasi yang diserap oleh suatu molekul sebagai fungsi frekuensi radiasi. Suatu grafik


15

yang menghubungkan antara banyaknya sinar yang diserap dengan frekuensi (atau panjang gelombang) sinar merupakan spektrum absorpsi. Transisi yang dibolehkan (allowed transition) untuk suatu molekul dengan struktur kimia yang berbeda adalah tidak sama, sehingga spektrum absorpsinya juga berbeda. Dengan demikian, spektrum dapat digunakan sebagai bahan informasi yang bermanfaat untuk analisis kualitatif. Banyaknya sinar yang diabsorpsi pada panjang gelombang tertentu sebanding dengan banyaknya molekul yang menyerap radiasi, sehingga spektrum absorpsi juga dapat digunakan untuk analisis kuantitatif (Gandjar dan Rohman, 2007). Hal–hal yang harus diperhatikan dalam analisis spektofotometri UVVis sebagai berikut. 1. Penentuan panjang gelombang maksimum Panjang gelombang yang digunakan untuk analisis kuantitatif adalah panjang gelombang dimana terjadi serapan maksimum. Untuk memperoleh panjang gelombang serapan maksimum, dilakukan dengan membuat kurva hubungan antara absorbansi dengan panjang gelombang dari suatu larutan baku pada konsentrasi tertentu. 2. Pembuatan kurva kalibrasi Dibuat seri larutan baku dari zat yang akan dianalisis dengan berbagai konsentrasi. Masing–masing absorbansi larutan dengan berbagai konsentrasi diukur, kemudian dibuat kurva yang merupakan hubungan antara absorbansi dengan konsentrasi. Bila hukum Lambert-Beer terpenuhi maka kurva kalibrasi berupa garis lurus. 3. Pembacaan absorbansi sampel atau cuplikan Absorbansi yang terbaca pada spektrofotometer hendaknya antara 0,2 sampai 0,6. Anjuran ini berdasarkan anggapan bahwa pada kisaran nilai absorbansi tersebut kesalahan fotometrik yang terjadi adalah paling minimal (Gandjar dan Rohman, 2007).


16

2.6

Antioksidan Radikal bebas merupakan atom, molekul atau senyawa-senyawa yang

mengandung satu atau lebih elektron yang tidak berpasangan yang bersifat sangat reaktif dan tidak stabil (Surai, 2003). Agar menjadi stabil, radikal bebas memerlukan elektron yang berasal dari pasangan elektron di sekitarnya, sehingga terjadi perpindahan elektron dari molekul donor ke molekul radikal untuk menjadikan radikal tersebut stabil (Simanjuntak, et al., 2012). Antioksidan adalah zat yang dapat melawan pengaruh bahaya dari radikal bebas atau Reactive Oxygen Species (ROS) yang terbentuk sebagai hasil dari metabolisme oksidatif yaitu hasil dari reaksi-reaksi kimia dan proses metabolik yang terjadi dalam tubuh. Senyawa antioksidan dapat berfungsi sebagai penangkap radikal bebas, membentuk kompleks dengan logam-logam peroksida dan sebagai senyawa pereduksi (Goldberd, 2003). Banyak proses fisiologis dan biokimia dalam tubuh manusia (endogen) dapat menghasilkan radikal bebas dan senyawa oksigen reaktif (ROS) lainnya seperti proses autooksidasi, aktivitas oksidasi, dan sistem transpor electron. Selama produksi radikal bebas tersebut dapat menyebabkan kerusakan oksidatif pada biomolekul (misalnya lipid, protein, DNA) dan akhirnya menimbulkan berbagai penyakit kronis, seperti aterosklerosis, kanker, diabetes, dan penyakit degeneratif lainnya pada manusia (Ivanišová, et al., 2013). Selain dari dalam tubuh, sumber radikal bebas dapat berasal dari luar tubuh manusia (eksogen) meliputi asap rokok, polusi lingkungan, radiasi, sinar ultraviolet obat-obatan, pestisida, anestetik, pelarut industri, dan ozon (Langseth, 1995). Antioksidan

dapat

menangkap

radikal

bebas

sehingga

dapat

menghambat mekanisme oksidatif yang merupakan penyebab penyakit-penyakit kronis dan degeneratif seperti penyakit jantung, kanker, katarak, disfungsi otak dan artritis (Miller, et al., 2000). Mekanisme kerja antioksidan memiliki beberapa fungsi. Fungsi pertama merupakan fungsi utama dari antioksidan yaitu memberikan atom hidrogen yang berasal dari gugus hidroksi senyawa fenol sehingga terbentuk senyawa yang stabil. Senyawa antioksidan yang termasuk


17

kelompok ini misalnya BHA, BHT, PG, TBHQ, dan tokoferol. Antioksidan yang mempunyai fungsi utama tersebut sering disebut sebagai antioksidan primer. Antioksidan tersebut dapat memberikan atom hidrogen secara cepat ke radikal lipida (R*,ROO*) atau mengubahnya ke bentuk lebih stabil, sementara turunan radikal antioksidan (A*) tersebut memiliki keadaan lebih stabil dibandingkan radikal lipida. Fungsi kedua merupakan mekanisme fungsi sekunder antioksidan, yaitu memperlambat laju autooksidasi dengan berbagai mekanisme diluar mekanisme pemutusan rantai autooksidasi dengan pengubahan radikal lipida ke bentuk lebih stabil. Senyawa-senyawa ini mempunyai kemampuan untuk mendekomposisi hidroperoksida menjadi produk akhir yang stabil. Tipe antioksidan ini pada umumnya digunakan untuk menstabilkan poliolefin resin. Contohnya, asam tiodipropionat dan dilauriltiopropionat (Gordon, 1990). Fungsi ketiga adalah sebagai Oxygen scavengers, yaitu senyawasenyawa yang berperan sebagai pengikat oksigen sehingga tidak mendukung reaksi oksidasi. Dalam hal ini, senyawa tersebut akan mengadakan reaksi dengan oksigen yang berada dalam sistem sehingga jumlah oksigen akan berkurang. Contoh dari senyawa-senyawa kelompok ini adalah vitamin C (asam askorbat), askorbilpalminat, asam eritorbat, dan sulfit (Gordon, 1990). Antioxidative Enzime merupakan enzim yang berperan mencegah terbentuknya radikal bebas. Contohnya glukose oksidase, superoksidase dismutase (SOD), glutation peroksidase, dan kalalase. Selain itu, ada juga senyawa-senyawa yang mampu mengikat logam seperti besi dan tembaga yang mampu mengkatalis reaksi oksidasi lemak. Senyawa-senyawa ini disebut juga dengan Chelators sequestrants, yang termasuk didalamnya adalah asam sitrat, asam amino, ethylenediaminetetra acetid acid (EDTA), dan fosfolipid (Gordon, 1990). Berdasarkan sumber perolehannya, ada 2 macam antioksidan yaitu antioksidan alami dan antioksidan buatan (sintetik). Antioksidan sintetis seperti butylated hydroxyanisole (BHA) dan butylated hydroxytoluene (BHT) banyak


18

digunakan karena efektif dan lebih murah daripada yang alami. Namun, keamanan dan toksisitas antioksidan sintetik telah mendapatkan perhatian yang serius. Oleh karena itu, penggunaan antioksidan alami yang juga mungkin memiliki sifat gizi menyebabkan penggunaannya meningkat (Ivanišová, et al., 2013). 2.7

Uji Aktivitas Antioksidan Metode DPPH Metode DPPH merupakan salah satu metode untuk menentukan

aktivitas antioksidan yang sederhana dengan menggunakan 2,2-diphenyl-1picrylhydrazyl (DPPH) sebagai senyawa pendeteksi (Surai, 2003). DPPH adalah senyawa radikal bebas yang dapat bereaksi dengan atom hidrogen yang berasal dari suatu antioksidan membentuk DPPH tereduksi (Surai, 2003). Metode DPPH (2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl) digunakan secara luas untuk menguji kemampuan senyawa yang berperan sebagai pendonor elektron atau atom hidrogen. Metode DPPH merupakan metode yang dapat mengukur aktivitas total antioksidan baik dalam pelarut polar maupun nonpolar. Beberapa metode lain terbatas mengukur komponen yang larut dalam pelarut yang digunakan dalam analisa. Metode DPPH mengukur semua komponen antioksidan, baik yang larut dalam lemak maupun dalam air (Prakash, 2001). Metode DPPH merupakan metode yang sederhana, mudah, cepat dan peka, serta hanya memerlukan sedikit sampel. DPPH adalah senyawa radikal bebas stabil kelompok nitrit oksida. Senyawa ini mempunyai ciri-ciri padatan berwarna ungu kehitaman, larut dalam pelarut DMF atau etanol/metanol 394,3 g/mol, rumus molekul C18H12N5O6 (Prakash, 2001). Radikal bebas DPPH yang memiliki elektron tidak berpasangan memberikan warna ungu dan menghasilkan absorbansi maksimum pada panjang gelombang 517 nm. Warna akan berubah menjadi kuning saat elektronnya berpasangan. Pengurangan intensitas warna yang terjadi berhubungan dengan jumlah elektron DPPH yang menangkap atom hidrogen. Sehingga pengurangan intensitas warna mengindikasikan peningkatan kemampuan antioksidan untuk menangkap radikal bebas (Prakash, 2001).


19

Aktivitas antioksidan dapat dinyatakan dengan satuan % aktivitas. Nilai ini diperoleh dengan rumus sebagai berikut (Molyneux, 2003). % Inhibisi Absorbansi blangko yang digunakan dalam prosedur ini adalah absorbansi DPPH dengan metanol pro analisa. Berdasarkan rumus tersebut, semakin tinggi tingkat diskolorisasi (absorbansi semakin kecil) maka semakin tinggi nilai aktivitas penangkapan radikal bebas (Molyneux, 2003). Aktivitas antioksidan pada metode DPPH dinyatakan dengan IC 50 (Inhibition Concentration). IC50 adalah bilangan yang menunjukkan konsentrasi ekstrak yang mampu menghambat aktivitas DPPH sebesar 50%. Semakin kecil nilai IC50 berarti semakin tinggi aktivitas antioksidan (Blois, 1958). AAI (Antioxidant activity index) adalah nilai yang menunjukkan besarnya aktivitas antioksidan yang dimiliki suatu ekstrak atau bahan uji. Nilai AAI dapat ditentukan dengan cara konsentrasi DPPH yang digunakan dalam uji (ppm) dibagi dengan nilai IC50 yang diperoleh (ppm). Penggolongan nilai AAI ini dilakukan oleh Scherer dan Godoy (2009). Nilai AAI yang <0,5 menandakan antioksidan lemah, AAI > 0,5-1 menandakan antioksidan sedang, AAI >1-2 menandakan antioksidan kuat, dan AAI >2 menandakan antioksidan yang sangat kuat (Vasic, Stefanovic, Licina, Radojevic & Comic, 2012). 2.8 Uji Toksisitas Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) Menurut Meyer, et al., (1982), salah satu uji bioaktivitas yang mudah, cepat, murah dan akurat yaitu dengan menggunakan larva udang Artemia salina Leach. dikenal dengan istilah

Brine Shrimp Lethality Test

(BSLT).

Uji

mortalitas larva udang merupakan salah satu metode uji bioaktivitas pada penelitian senyawa bahan alam. Penggunaan larva udang untuk kepentingan studi bioaktivitas sudah dilakukan sejak tahun 1956 dan sejak saat itu telah banyak dilakukan pada studi lingkungan, toksisitas, dan penapisan senyawa bioaktif dari jaringan tanaman.


20

Uji ini merupakan uji pendahuluan untuk mengamati aktivitas farmakologi suatu senyawa salah satunya adalah anti kanker. Adapun penerapan untuk sistem bioaktivitas dengan menggunakan larva udang tersebut, antara lain untuk mengetahui residu pestisida, anastetik lokal, senyawa turunan morpin, mikotoksin, karsinogenitas suatu senyawa dan polutan untuk air laut serta sebagai alternatif metode yang murah untuk uji sitotoksisitas (Hamburger & Hostettmann, 1991). Senyawa aktif yang memiliki daya bioaktivitas tinggi diketahui berdasarkan nilai nilai

yang menunjukkan

Lethal Concentration 50% (LC50), yaitu suatu konsentrasi

zat toksik yang dapat menyebabkan

kematian hewan uji sampai 50%. Data mortalitas yang diperoleh kemudian diolah dengan analisis probit yang dirumuskan oleh Finney (1971) untuk menentukan nilai LC50

pada derajat kepercayaan 95%. Senyawa kimia

memiliki potensi bioaktif jika mempunyai nilai LC50 kurang dari 1.000 µg/ml (Meyer, et al., 1982). Uji BSLT dengan menggunakan larva udang Artemia salina dilakukan dengan menetaskan telur-telur tersebut dalam air laut yang dibantu dengan aerasi. Telur Artemia salina akan menetas sempurna menjadi larva dalam waktu 24 jam. Larva A. salina yang baik digunakan untuk uji BSLT adalah yang berumur 48 jam sebab jika lebih dari 48 jam dikhawatirkan kematian Artemia salina bukan disebabkan toksisitas ekstrak melainkan oleh terbatasnya persediaan makanan (Meyer, et al., 1982). Keunggulan penggunaan larva udang A. salina untuk uji BSLT ini ialah sifatnya yang peka terhadap bahan uji, waktu siklus hidup yang lebih cepat, mudah dibiakkan dan harganya yang murah. Sifat peka A. salina kemungkinan disebabkan oleh keadaan membran kulitnya yang sangat tipis sehingga memungkinkan

terjadinya

difusi

mempengaruhi metabolisme dalam tubuhnya. pada

zat

dari

A. salina

lingkungan

yang

ditemukan hampir

seluruh permukaan perairan di bumi yang memiliki kisaran salinitas 10 -

20g/L, hal inilah yang menyebabkannya mudah dibiakkan. Larva yang baru saja menetas disebut nauplius berbentuk bulat lonjong dan berwarna kemerahmerahan dengan panjang 400 μm dengan berat 15 μg. Anggota badannya


21

terdiri dari sepasang sungut kecil (anteluena atau antena I) dan sepasang sungut besar (antena atau antena II). Di bagian depan di antara kedua sungut kecil tersebut

terdapat bintik merah

yang berfungsi

sebagai mata (oselus). Di

belakang sungut besarnya terdapat sepasang mandibula (rahang) yang sedangkan

di

bagian

perut

(ventral)

sebelah

depan

terdapat

kecil, labrum

(Mudjiman, 1988).


22

BAB 3 METODOLOGI PENELITIAN

3.1

Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian dilaksanakan di laboratorium Penelitian I, laboratorium Kimia

Obat, dan laboratorium Analisis Obat dan Pangan Halal, Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan, Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta. Waktu penelitian dimulai pada bulan Maret hingga bulan Juni 2014. 3.2

Alat Dan Bahan

3.2.1 Alat Alat serta instrumen yang digunakan dalam penelitian ini antara lain timbangan analitik (AND GH-202), blender, kertas label, penggaris, pensil, aluminium foil, plastik, kertas saring, kapas, labu erlenmeyer, becker glass, gelas ukur, corong, tabung reaksi, spatula, batang pengaduk, pipet tetes, kaca arloji, botol kaca, krus porselen, botol timbang, gelas ukur, pipa kapiler, vial, elektromantel, panci dekok, plat KLT, chamber, oven, tanur (Thermolyne), spektrofotometer UV-Vis (Hitachi U-2910), dan vacuum rotary evaporator (EYELA N-1000). 3.2.2 Bahan Bahan serta reagen kimia yang digunakan dalam penelitian ini adalah kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica), vitamin C (PT. Indofarma), etanol 70%, metanol pro analisa (Merck), aquades, air laut, DPPH (2,2-diphenyl1-picrylhydrazyl) (Sigma-Aldrich), asam klorida, pereaksi Dragendorf, pereaksi Mayer, NaOH, kloroform, asam sulfat pekat, dan ferri klorida. Tanaman Kayu Jawa (Lannea coromandelica) yang digunakan telah dideterminasi di Herbarium Bogoriense, Pusat Penelitian Biologi LIPI (Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia) Cibinong, Bogor.

22


23

3.3 Prosedur Kerja 3.3.1 Penyiapan Sampel Sampel kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) diperoleh dari daerah Watampone, Kabupaten Bone, Sulawesi Selatan. Sampel kulit batang dikumpulkan pada bulan Februari 2014. Sebanyak 1,5 kg kulit batang segar disortasi basah, selanjutnya dicuci dengan air mengalir. Sampel kemudian dirajang dan dikeringkan dengan cara dikering-anginkan. Selanjutnya sampel yang telah kering disortasi kering dan dihaluskan menggunakan blender hingga diperoleh serbuk simplisia kering sebanyak 688 gram. 3.3.2 Ekstraksi Sampel Kulit Batang Kayu Jawa (Lannae coromandelica) Serbuk kering kulit batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) diekstraksi dengan menggunakan dua metode yang berbeda yaitu sebagai berikut. 1. Metode Maserasi Serbuk simplisia

kering kulit

batang kayu jawa

(Lannea

coromandelica) ditimbang 344 gram dan dimaserasi dengan etanol 70% selama 2 sampai 3 hari. Prosedur diulangi hingga 6 kali proses maserasi. Selanjutnya masing-masing hasil ekstraksi disaring dan filtrat yang diperoleh dipekatkan dengan vacuum rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak kental. Selanjutnya ekstrak kental yang diperoleh, dihitung rendemennya.

2. Metode Dekokta Dekokta kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) dibuat larutan induk konsentrasi 5%. Serbuk simplisia kering kulit batang Kayu Jawa ditimbang 5 gram. Serbuk simplisia yang telah ditimbang dimasukkan ke dalam botol dan ditambahkan aquades hingga 100 mL. Botol tersebut ditutup dengan aluminium foil untuk menjaga volume air dalam botol tetap. Botol tersebut selanjutnya dipanaskan selama 30 menit dalam alat


24

kukusan/dandan. Waktu 30 menit dihitung setelah suhu dalam botol telah mencapai 90°C (Tiwari, et al., 2011). 3.3.3 Penapisan Fitokimia Penapisan fitokimia dilakukan untuk mengetahui metabolit sekunder yang terkandung di dalam ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica). Metabolit sekunder yang diuji secara kualitatif ini antara lain alkaloid, flavonoid, saponin, glikosida, triterpenoid, fenol, dan tanin. 1. Uji Alkaloid Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dalam larutan HCl encer kemudian disaring. Tes Mayer dilakukan dengan menambahkan filtrat dengan reagen mayer (Potassium Mercuric Iodide). Terjadinya endapan berwarna kuning mengindikasikan adanya senyawa alkaloid (Tiwari, et al., 2011). Tes Dragendorf juga dapat dilakukan untuk mengetahui keberadaan alkaloid. Filtrat yang diperoleh ditambahkan reagen dragendorf (solution of Potassium

Bismuth

Iodide).

Terjadinya

endapan

berwarna

merah

mengindikasikan adanya senyawa alkaloid (Tiwari, et al., 2011). 2. Uji Flavonoid Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dengan 2 mL etanol 70% dan ditambahkan 3 tetes larutan NaOH. Terjadinya perubahan intensitas warna kuning

menjadi

tidak

berwarna

pada

penambahan

asam

sulfat

mengindikasikan adanya senyawa flavonoid (Tiwari, et al., 2011). 3. Uji Saponin Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dalam 20 mL aquades, kemudian larutan dikocok dalam labu ukur selama 15 menit. Terbentuknya busa setinggi 1 cm mengindikasikan adanya senyawa saponin (Tiwari, et al., 2011). 4. Uji Glikosida 0 Sebanyak 0,5 gram ekstrak ditambahkan 1 mL aquades dan ditambahkan larutan NaOH. Terbentuknya warna kuning mengindikasikan adanya senyawa glikosida (Tiwari, et al., 2011).


25

5. Uji Triterpenoid Tes Salkowski dapat digunakan untuk mengidentifikasi keberadaan senyawa triterpen. Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dalam kloroform dan disaring. Kemudian filtrat ditambahkan beberapa tetes asam sulfat dan dikocok. Terbentuknya warna kuning emas mengindikasikan adanya senyawa triterpen. 6. Uji Fenol Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dengan 2 mL etanol 70% dan ditambahkan 3 tetes larutan FeCl3. Terbentuknya warna hitam kebiruan mengindikasikan adanya senyawa fenol (Tiwari, et al., 2011). 7. Uji Tanin Sebanyak 0,5 gram ekstrak dilarutkan dengan 2 mL etanol 70%, dididihkan dalam 10 mL aquades dalam tabung reaksi kemudian disaring. Ditambahkan 3 tetes larutan ferri klorida 0,1% dan diamati terbentuknya warna hijau kecoklatan atau biru kehitaman menunjukkan adanya tanin (Ayoola, et al., 2008).

3.3.4 Parameter Ekstrak 1. Identitas Ekstrak dideskripsikan dengan tata nama yang meliputi nama ekstrak, nama latin tumbuhan, bagian tumbuhan yang digunakan, dan nama Indonesia tumbuhan (Depkes RI, 2000). 2. Organoleptik Ekstrak

dideskripsikan

menggunakan

panca

indera

untuk

mengetahui bentuk, warna, bau, dan rasa (Depkes RI, 2000). 3. Residu Pelarut Etanol Sebanyak 2 gram ekstrak etanol 70% dilarutkan dalam aquades hingga 25 mL dan di destilasi pada suhu 78,5°C hingga diperoleh destilat sebanyak 2 mL. Destilat ditambahkan aquades hingga 25 mL. Selanjutnya bobot jenis cairan ditetapkan menggunakan piknometer. Persentase residu pelarut etanol dalam ekstrak dihitung menggunakan tabel bobot jenis dan kadar etanol pada Farmakope Indonesia edisi III (Depkes RI, 2000).


26

4. Kadar Abu Total Penetapan kadar abu total dilakukan sebanyak tiga kali (triplo). Sebanyak 2 gram ekstrak etanol 70% ditimbang ke dalam krus yang telah ditara dan dipijarkan perlahan. Suhu dinaikkan secara bertahap hingga 600±25°C. Didinginkan dalam desikator dan ditimbang berat abu. Kadar abu dihitung dalam persen terhadap berat sampel awal (Depkes RI, 2000).

3.3.5 Pengujian Antioksidan secara Kualitatif dengan Metode Kromatografi Lapis Tipis (KLT) Ekstrak etanol 70% ditimbang 50 mg dilarutkan dengan etanol 50 mL (1000 ppm). Ekstrak air digunakan konsentrasi 5%. Silika gel pada lempeng aluminium digunakan sebagai fase diam. Fase gerak digunakan etanol, etil asetat, dan kloroform dengan perbandingan 2:1:1. Setelah itu chamber yang berisi eluen dijenuhkan (Ghasal & Mandal, 2012). Ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica), ditotolkan pada plat KLT menggunakan pipa kapiler. Proses elusi dilakukan dengan cara plat KLT dimasukkan ke dalam chamber yang berisi eluen dan telah dijenuhkan. Eluen dibiarkan merambat hingga mencapai batas plat yang telah ditandai sebelumnya. Setelah selesai, plat KLT dikeluarkan dari chamber. Plat KLT kemudian dikeringkan dan disemprot dengan larutan DPPH 0,1 mM (Ghasal & Mandal, 2012). Bercak pada plat KLT yang memiliki aktivitas antioksidan akan berubah menjadi warna putih kuning dengan latar belakang ungu (Kuntorini & Astuti, 2010). 3.3.6 Pengujian Antioksidan secara Kuantitatif dengan Metode DPPH 3.3.6.1 Pembuatan Larutan DPPH 0,1 mM Serbuk DPPH (BM 394,32) sebanyak 1,98 mg dilarutkan dengan metanol p.a (pro analisa) dan dimasukkan ke dalam labu ukur 50 mL.

Volume

dicukupkan dengan metanol p.a hingga tanda batas , kemudian ditempatkan dalam botol gelap.


27

3.3.6.2 Penentuan Panjang Gelombang Maksimum DPPH Larutan DPPH 0,1 mM sebanyak 2 mL dimasukkan ke dalam tabung reaksi lalu ditambahkan metanol p.a sebanyak 2 mL, tutup dengan aluminium foil, dihomogenkan dengan vortex lalu dituang ke dalam kuvet dan diukur pada panjang gelombang 400-800 nm menggunakan spektrofotometer UV-Vis (Musfiroh & Syarief, 2009). Panjang gelombang maksimum DPPH yang digunakan berada pada 515,5 nm.

3.3.6.3 Pembuatan Larutan Blangko Larutan DPPH 0,1 mM sebanyak 2 mL dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan metanol p.a sebanyak 2 mL. Tutup dengan aluminium foil. Campuran dihomogenkan dengan vortex dan diinkubasi dalam ruangan gelap selama 30 menit (Molyneux, 2004). Selanjutnya, serapan larutan blangko diukur pada panjang gelombang maksimum yaitu 515,5 nm.

3.3.6.4 Pembuatan Larutan Uji Ekstrak Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) 1.

Pembuatan Larutan uji ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Larutan induk ekstrak etanol 70% dibuat terlebih dahulu dengan

menimbang 50 mg ekstrak dan dibasahi dengan 5 tetes etanol 70%. Etanol 70% dibiarkan menguap kemudian dilarutkan dengan metanol p.a. Larutan dimasukkan ke dalam labu ukur 50 mL. Volume dicukupkan dengan metanol p.a sampai tanda batas (1000 ppm). Kemudian dari larutan induk dibuat seri konsentrasi 5 ppm, 10 ppm, 15 ppm, 20 ppm, dan 25 ppm. Larutan induk ekstrak air diperoleh dari hasil dekokta 5%. Kemudian dari larutan induk 5% tersebut dibuat seri konsentrasi yaitu 0,03%, 0,05%, 0,12%, dan 0,15%. 2.

Pengukuran serapan dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis Masing-masing konsentrasi larutan uji sebanyak 2 mL dimasukkan

ke dalam tabung reaksi. Ditambahkan larutan DPPH 0,1 mM sebanyak 2


28

mL, dihomogenkan dengan vortex. Selanjutnya, diinkubasi dalam ruangan gelap selama 30 menit (Molyneux, 2004). Serapan diukur pada panjang gelombang maksimum yaitu 515,5 nm.

3.3.6.5 Pembuatan Larutan Pembanding Vitamin C 1.

Pembuatan larutan pembanding Vitamin C Membuat larutan induk Vitamin C 1000 ppm dengan cara

menimbang 50 mg serbuk vitamin C, dilarutkan dengan metanol p.a dan dimasukkan ke dalam labu ukur 50 mL. Volume dicukupkan dengan metanol p.a sampai tanda batas. Kemudian dari larutan induk dibuat seri konsentrasi 2 ppm, 4 ppm, 6 ppm, 8 ppm, dan 10 ppm. 2.

Pengukuran serapan dengan menggunakan spektrofotometer UV-Vis Pengujian dilakukan dengan cara masing-masing konsentrasi

larutan pembanding vitamin C sebanyak 2 mL dimasukkan ke dalam tabung reaksi. Ditambahkan larutan DPPH 0,1 mM sebanyak 2 mL, dihomogenkan dengan vortex. Selanjutnya, diinkubasi dalam ruangan gelap selama 30 menit (Molyneux, 2004). Serapan diukur pada panjang gelombang maksimum yaitu 515,5 nm.

3.3.6.6 Analisis Data 1.

Penentuan Nilai IC50 (Inhibitory Concentration) Parameter yang biasa digunakan untuk menginterpretasikan hasil

dari uji aktivitas antioksidan dengan metode DPPH adalah dengan nilai efficient concentration (EC50) atau sering disebut nilai IC50, yaitu konsentrasi yang menyebabkan hilangnya 50% aktivitas DPPH (Molyneux, 2004). Untuk menghitung nilai IC50 diperlukan data persen inhibisi dari pengujian yang dilakukan. Persen inhibisi dapat dihitung dengan menggunakan rumus sebagai berikut:

(Ghosal & Mandal, 2012)


29

Konsentrasi sampel dan persen inhibisi yang diperoleh diplot masing-masing pada sumbu x dan y pada persamaan regresi linear. Persamaan tersebut digunakan untuk menentukan nilai IC 50 dari masingmasing sampel dinyatakan dengan nilai y sebesar 50 dan nilai x yang akan diperoleh sebagai IC50 (Nurjanah, Izzati & Abdullah, 2011). 2.

Penentuan Nilai AAI (Antioxidant Activity Index) Nilai AAI dapat ditentukan dengan cara konsentrasi DPPH yang

digunakan dalam uji (ppm) dibagi dengan nilai IC 50 yang diperoleh (ppm). Nilai AAI yang <0,5 menandakan antioksidan lemah, AAI > 0,5-1 menandakan antioksidan sedang, AAI >1-2 menandakan antioksidan kuat, dan AAI >2 menandakan antioksidan yang sangat kuat (Vasic, Stefanovic, Licina, Radojevic & Comic, 2012). 3.3.7 Pengujian Toksisitas dengan Metode Brine Shrimp Lethality Test (BSLT) 3.3.7.1 Persiapan Larva Artemia salina Penetasan telur Artemia salina dilakukan dengan cara menetaskan sebanyak 50 mg telur Artemia salina dalam wadah yang berisi air laut, disekat menjadi dua bagian yang salah satunya dibuat gelap dan diletakkan dibawah lampu (Meyer, et al., 1982). Telur Artemia salina akan menetas dan menjadi larva setelah 24 jam (Mudjiman, 1988). 3.3.7.2 Pembuatan Larutan Uji Ekstrak Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Larutan uji ekstrak etanol 70% kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) dibuat dengan cara menimbang 50 mg ekstrak etanol 70% kemudian dilarutkan dengan sedikit etanol 70% dan ditambahkan aquades hingga 50 mL sebagai larutan induk 1000 ppm. Larutan uji dibuat seri konsentrasi akhir menjadi 1 ppm, 10 ppm, 100 ppm, dan 500 ppm. Larutan uji ekstrak air kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) dibuat dari ekstrak air hasil dekokta 5%. Larutan induk 5% ini selanjutnya dibuat larutan uji dengan konsentrasi akhir 0,15%, 0,3%, 0,5%, dan 0,1%.


30

3.3.7.3 Pengujian Toksisitas Pengujian toksisitas larutan uji ekstrak etanol 70% dan ekstrak air dilakukan dengan mengambil sebanyak 10 ekor larva udang menggunakan pipet tetes dan dimasukkan ke dalam tabung reaksi. Pada pengujian ekstrak etanol 70%, masing-masing tabung kemudian ditambahkan larutan uji ekstrak etanol 70%. Sedangkan pada pengujian ekstrak air, masing-masing tabung ditambahkan larutan uji ekstrak air. Volume digenapkan dengan aquades hingga 10 mL sehingga terjadi pengenceran. Larutan diaduk perlahan sampai homogen. Untuk setiap konsentrasi dilakukan 3 kali pengulangan (triplikat) (Anderson, 1991). Untuk kontrol dilakukan tanpa penambahan sampel. Larutan dibiarkan selama 24 jam, kemudian dihitung jumlah larva yang mati dan masih hidup dari tiap tabung (Juniarti, et al., 2009). 3.3.7.4 Analisis Data Pengujian efek toksik dihitung dengan menentukan nilai LC50. Nilai LC50 diperoleh dengan terlebih dahulu menghitung persentase mortalitas hewan uji setelah 24 jam dengan cara :

Selanjutnya dicari angka probit melalui tabel probit dan dibuat grafik dengan log konsentrasi sebagai sumbu x terhadap persentase mortalitas dalam satuan probit sebagai sumbu y. Nilai LC50 merupakan konsentrasi dimana suatu zat menyebabkan kematian 50% hewan uji yang diperoleh dengan menggunakan persamaan regresi linier y = a + bx. Suatu zat dikatakan aktif atau toksik bila nilai LC50 kurang dari 1000 ppm untuk ekstrak dan kurang dari 30 ppm untuk suatu senyawa (Juniarti, et al., 2009).


31

BAB 4 HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Determinasi Tanaman Determinasi tanaman terlebih dahulu dilakukan untuk mengetahui identitas tanaman yang digunakan. Determinasi tanaman ini dilakukan di Herbarium

Bogoriense,

Pusat

Penelitian Biologi

LIPI (Lembaga

Ilmu

Pengetahuan Indonesia) Cibinong, Bogor. Hasil determinasi menunjukkan bahwa sampel yang digunakan merupakan Lannea coromandelica (Houtt.) Merr. dari famili Anacardiacea (lampiran 2). 4.2 Penyiapan Sampel Bagian tanaman yang digunakan pada penelitian ini adalah kulit batang dari tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica). Kayu jawa yang menjadi sampel adalah kayu jawa yang tumbuh di daerah Watampone, kabupaten Bone, Sulawesi Selatan. Tanaman ini banyak tumbuh liar ataupun sengaja ditanam sebagai tanaman pagar. Kulit batang yang digunakan dari batang kayu jawa yang berdiameter 5 sampai 6 cm. Kulit batangnya biasanya berukuran 3 sampai 5 mm. Kulit batang mulai dikumpulkan pada bulan februari 2014. Sebanyak 1,5 kg kulit batang segar disortasi basah untuk memisahkan dengan pengotor seperti tanah ataupun bagian tanaman yang tidak digunakan dalam penelitian dan terbawa pada saat proses pengumpulan kulit batang. Kulit batang selanjutnya dicuci dengan air mengalir. Kulit batang yang telah dicuci dirajang untuk memperbesar luas permukaan sampel sehingga pelarut lebih mudah berpenetrasi ke dalam sel sehingga penarikan senyawa kimia yang terkandung dalam sampel lebih maksimal. Setelah proses perajangan, dilanjutkan proses pengeringan dengan cara dikering-anginkan. Pengeringan dilakukan untuk menghentikan reaksi enzimatik yang dapat menyebabkan penguraian atau perubahan kandungan kimia yang terdapat pada kulit batang. Selain itu, pengeringan dilakukan di tempat yang terlindung dari cahaya matahari langsung. Hal ini dilakukan untuk menghindari kemungkinan terjadinya kerusakan pada

31


32

kandungan kimia kulit batang akibat pemanasan. Selanjutnya, kulit batang yang telah kering disortasi kering untuk meisahkan dari pengotor-pengotor yang masih terbawa pada saat proses pengeringan. Kulit batang yang telah disortasi dihaluskan menggunakan blender hingga dan diperoleh serbuk simplisia kering sebanyak 688 gram. 4.3 Ekstraksi Proses ekstraksi simplisia kulit batang kayu jawa dilakukan dengan dua cara berbeda yaitu maserasi langsung dan dekokta. Maserasi langsung dilakukan dengan mengekstraksi langsung simplisia kulit batang dengan etanol 70%. Maserasi dipilih karena proses pengerjaan yang mudah dan peralatan yang cukup sederhana. Pada maserasi ini, digunakan simplisia sebanyak 344 gram. Proses maserasi dilakukan selama 2 sampai 3 hari. Prosedur diulangi hingga 6 kali proses maserasi. Total pelarut etanol 70% yang digunakan sebanyak 6,2 L dan sebelumnya telah didestilasi terlebih dahulu. Menurut Tiwari, et al. (2011), etanol lebih efisien dalam degradasi dinding sel sehingga polifenol akan tersari lebih banyak. Selain itu, flavonoid ditemukan lebih tinggi pada penggunaan etanol 70% pada proses ekstraksi. Filtrat hasil maserasi disaring dengan kapas dan kertas saring yang kemudian dipekatkan dengan vacuum rotary evaporator pada suhu 45-50°C hingga diperoleh ekstrak kental sebanyak 41 gram. Rendemen ekstrak etanol 70% adalah 11,919 %. Proses ekstraksi menggunakan metode dekokta juga dilakukan untuk mendapatkan ekstrak air kulit batang Lannea coromandelica. Metode dekokta merupakan metode ekstraksi dengan proses pemanasan. Metode ini dilakukan untuk menggambarkan cara penggunaan kulit batang kayu jawa di dalam masyarakat sebagai obat. Dekokta yang dibuat memiliki konsentrasi 5%. Konsentrasi 5% ini dipilih agar penarikan senyawa kimia dalam sampel lebih maksimal. Ekstrak air yang diperoleh langsung digunakan dalam pengujian.


33

4.4 Parameter Ekstrak Parameter ekstrak terbagi atas 2 (dua) jenis yaitu parameter spesifik dan parameter non spesifik. Hasil penetapan parameter ekstrak dapat dilihat pada tabel berikut ini. Tabel 4.1. Hasil Penetapan Parameter Spesifik dan Non Spesifik Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Karakteristik

Hasil Ekstrak Etanol 70%

Ekstrak Air

Parameter Spesifik 1. Identitas - Nama latin

- Lannea coromandelica

- Bagian tumbuhan

- Kulit batang (cortex)

- Nama Indonesia

- Kayu Jawa

2. Organoleptik - Bentuk

- Kental

- Cair

- Warna

- Coklat kehitaman

- Coklat kekuningan

- Bau

- Khas

- Khas

- Rasa

- Agak sepat

- Agak sepat

Parameter Non Spesifik 1.Residu Pelarut Etanol 2. Kadar Abu

-

0% 14,505 %

-

Parameter spesifik yang dilakukan yaitu mengidentifikasi identitas dan organoleptik ekstrak yang digunakan. Tanaman yang digunakan merupakan kayu jawa dengan nama latin Lannea coromandelica. Ekstrak dibuat dari bagian kulit batang tanaman tersebut. Organoleptik ekstrak diidentifikasi menggunakan panca indera. Parameter non spesifik merupakan aspek yang tidak terkait dengan aktivitas farmakologis secara langsung namun mempengaruhi aspek keamanan


34

dan stabilitas ekstrak (Saifudin, Rahayu, & Teruna, 2011). Parameter residu pelarut etanol dilakukan untuk memastikan bahwa tidak ada lagi pelarut etanol yang tersisa setelah proses pemekatan ekstrak. Bila sisa pelarut berupa etanol masih tinggi dalam ekstrak, maka kemungkinan bila masuk ke dalam tubuh dapat memberikan reaksi efek samping (Saifudin, Rahayu, & Teruna, 2011). Selain itu, pelarut etanol yang tersisa di dalam ekstrak dapat mengganggu hasil uji toksisitas yang dilakukan karena memberikan intervensi atas kematian larva uji. Pada hasil penelitian ini,bobot jenis rata-rata yang diperoleh adalah 1,0072. Nilai bobot jenis tersebut dalam tabel bobot jenis dan kadar etanol pada Farmakope Indonesia edisi III menunjukkan bahwa kandungan etanol yang dimiliki sama dengan nol (lampiran 8). Selain itu, pada penentuan parameter non spesifik dilakukan penentuan kadar abu.Penentuan kadar abu dilakukan bertujuan untuk memberikan gambarankandungan mineral internal dan eksternal yang berasal dari proses awal sampaiterbentuknya ekstrak. Pada tahap ini ekstrak dipanaskan hingga senyawa organik dan turunannya terdestruksi dan menguap sampai tinggal unsur mineral dan anorganik saja (Depkes RI, 2000). Kadar abu ekstrak etanol 70% kulit batang Lannea coromandelica sebesar 14,5087%. Hal ini menunjukkan bahwa kadar abu ekstrak tersebut cukup tinggi. Tingginya kadar abu ini dapat dikarenakan tingginya

kandungan

mineral

internal

di

dalam

kulit

batang

Lannea

coromandelica sendiri ataupun mineral yang berasal dari luar (mineral eksternal). 4.5 Penapisan Fitokimia Penapisan fitokimia

dilakukan untuk mengidentifikasi

kandungan

metabolit sekunder yang tersari di dalam ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang Lannea coromandelica, sehingga dapat diketahui metabolit sekunder yang berpotensi memiliki aktivitas antioksidan ataupun antikanker dalam pengujian toksisitas. Hasil penapisan fitokimia yang dilakukan dapat dilihat pada tabel berikut ini.


35

Tabel 4.2. Hasil Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Pengujian Senyawa

Hasil Ekstrak Etanol 70%

Ekstrak Air

Alkaloid

-

-

Flavonoid

+

+

Saponin

+

+

Glikosida

+

+

Triterpenoid

-

-

Fenol

+

+

Tanin

+

+

Hasil penapisan fitokimia yang dilakukan pada ekstrak etanol 70% menunjukkan adanya kandungan senyawa metabolit sekunder diantaranya flavonoid, saponin, glikosida, fenol, dan tanin. Penapisan fitokimia pada ekstrak air pun menunjukkan kandungan yang sama yaitu flavonoid, saponin, glikosida, fenol, dan tanin. Umumnya metabolit sekunder yang diperoleh bersifat polar sehingga tersari di dalam pelarut polar yang digunakan yaitu etanol 70% dan air. 4.6 Uji Aktivitas Antioksidan secara Kualitatif Pengujian kualitatif antioksidan terlebih dahulu dilakukan elusi dengan beberapa kombinasi eluen. Kombinasi eluen yang cukup baik untuk mengelusi ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang Lannea coromandelica yaitu dengan pelarut etanol, etil asetat, dan kloroform dengan perbandingan 2:1:1 (Lampiran 8). Adanya perubahan warna DPPH yang disemprotkan pada bercak plat KLT dari ungu menjadi putih kekuningan menandakan bahwa ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang Lannea coromandelica memiliki aktivitas antioksidan. 4.7 Uji Aktivitas Antioksidan secara Kuantitatif Pengujian aktivitas antioksidan secara kuantitatif dilakukan dengan menggunakan metode DPPH (2,2-difenil-1-pikrilhidrazil). Metode DPPH ini


36

dipilih karena merupakan metode yang sederhana, mudah, cepat dan peka serta hanya memerlukan sedikit sampel untuk evaluasi aktivitas antioksidan dari senyawa bahan alam (Molyneux, 2004). Prinsip pengukuran aktivitas antioksidan secara kuantitatif menggunakan metode DPPH ini adalah adanya perubahan intensitas warna ungu DPPH yang sebanding dengan konsentrasi larutan DPPH tersebut. Radikal bebas DPPH yang memiliki elektron tidak berpasangan akan memberikan warna ungu. Warna akan berubah menjadi kuning saat elektronnya berpasangan. Perubahan intensitas warna ungu ini terjadi karena adanya peredaman radikal bebas yang dihasilkan oleh bereaksinya molekul DPPH dengan atom hidrogen yang dilepaskan oleh molekul senyawa sampel sehingga terbentuk senyawa Difenil pikril hidrazin dan menyebabkan terjadinya peluruhan warna DPPH dari ungu ke kuning. Perubahan warna ini akan memberikan perubahan absorbansi pada panjang gelombang maksimum DPPH menggunakan spektrofotometri

UV-Vis

sehingga akan

diketahui nilai aktivitas peredaman radikal bebas yang dinyatakan dengan nilai IC50 (Inhibitory concentration) (Molyneux, 2004). Nilai IC50 didefinisikan sebagai besarnya konsentrasi senyawa uji yang dapat meredam radikal bebas sebanyak 50%. Semakin kecil nilai IC 50 maka aktivitas peredaman radikal bebas semakin tinggi (Molyneux, 2004). Nilai AAI (Antioxidant activity index) ditentukan untuk menggolongkan sifat antioksidan ekstrak sebagaimana yang dilakukan oleh Scherer dan Godoy (2009). Nilai AAI diperoleh dengan membandingkan konsentrasi DPPH yang digunakan dalam uji dengan nilai IC50 yang diperoleh.Pengujian aktivitas antioksidan secara kuantitatif ekstrak air, ekstrak etanol 70%, beserta kontrol positif vitamin C dilakukan dengan berbagai seri konsentrasi menggunakan metode DPPH yang selanjutnya absorbansinya diukur menggunakan spektrofotometri UV-Vis. Pengukuran

absorbansi

ekstrak

dengan

DPPH

menggunakan

spektrofotometer UV-Vis sebelumnya dilakukan penentuan panjang gelombang maksimum DPPH. Panjang gelombang maksimum DPPH yang digunakan berada pada panjang gelombang 515,5 nm (Lampiran 9). Panjang gelombang maksimum ini memberikan serapan paling maksimal dari larutan uji dan memberikan


37

kepekaan paling besar. Selanjutnya, besarnya aktivitas antioksidan dari ekstrak dan kontrol positif yang digunakan diukur pada panjang gelombang maksimum. Hasil uji aktivitas antioksidan yang diperoleh dapat dilihat pada tabel berikut. Tabel 4.3. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Lannea coromandelica Konsentrasi (ppm) 5 10 15 20 25

Absorbansi Rata-rata 0,2950 0,1786 0,1170 0,0720 0,0313

% Inhibisi (%) 23,3766 53,6104 69,6103 81,2987 91,8701

IC50

AAI

7,1122 ppm

5,5679 (>2 atau sangat kuat)

Tabel 4.4. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air Kulit Batang Lannea coromandelica Konsentrasi (%) 0,03 0,05 0,12 0,15

Absorbansi Rata-rata 0,3493 0,3080 0,1187 0,0690

% Inhibisi (%) 37,5134 44,9016 78,7656 87,6565

IC50

AAI

0,0594 %

0,0667 (<0,5 atau lemah)

IC50

AAI

4,1141 ppm

9,6254 (>2 atau sangat kuat)

Tabel 4.5. Hasil Uji Aktivitas Antioksidan Vitamin C Konsentrasi (ppm) 2 4 6 8 10

Absorbansi Rata-rata 0,5237 0,4273 0,3747 0,2923 0,1670

% Inhibisi (%) 40,0801 51,1098 57,1281 66,5561 80,8924

Pengujian aktivitas antioksidan yang dilakukan terhadap ekstrak etanol 70% diperoleh nilai IC50 7,1122 ppm dengan nilai AAI 5,5679. Ekstrak air memiliki nilai IC50 0,0594% dengan nilai AAI 0,0667. Vitamin C sebagai kontrol positif memiliki nilai IC50 4,1141 ppm dengan nilai AAI 9,6254. Nilai AAI menggambarkan aktivitas antioksidan. Nilai AAI yang kurang dari 0,5


38

menandakan antioksidan lemah, nilai AAI diantara 0,5 sampai 1 menandakan antioksidan sedang, nilai AAI diantara 1 sampai 2 menandakan antioksidan kuat, dan nilai AAI lebih dari 2 menandakan antioksidan yang sangat kuat (Vasic, Stefanovic, Licina, Radojevic & Comic, 2012). Berdasarkan penggolongan tersebut, ekstrak etanol 70% memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat, sedangkan ekstrak air memiliki aktivitas antioksidan yang lemah. Vitamin C sebagai kontrol positif juga memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat. Berdasarkan analisis stastistik menggunakan program IBM SPSS 22 One Way Anova, besarnya antioksidan ekstrak etanol 70% berbeda secara bermakna dengan besarnya aktivitas antioksidan vitamin C. Perbedaan bermakna ini diartikan bahwa ekstrak etanol 70% memiliki aktivitas antioksidan lebih lemah dibandingkan vitamin C. Vitamin C merupakan antikosidan yang bekerja sebagai oxygen scavengers, yaitu mengikat oksigen sehingga tidak mendukung reaksi oksidasi. Dalam hal ini, vitamin C akan mengadakan reaksi dengan oksigen yang berada dalam sistem sehingga jumlah oksigen akan berkurang. Selain vitamin C, senyawa yang bekerja sebagai oxygen scavengers diantaranya askorbilpalminat, asam eritorbat, dan sulfit (Gordon, 1990). Peningkatan konsentrasi senyawa mempengaruhi aktivitas antioksidannya. Kurva hubungan konsentrasi ekstrak terhadap persen inhibisi sebagai persen penghambatan radikal bebas DPPH dari ekstrak etanol 70%, ekstrak air, dan kontrol positif vitamin C dapat dilihat pada gambar berikut. Gambar 4.1. Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Lannea coromandelica Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Lannea coromandelica

% Inhibisi

100 80 60 40

y = 2,5294x + 29,834 R² = 0,9902

20 0 5

10

15

20

25

30

Konsenrasi (ppm)


39

Gambar 4.2. Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Air Kulit Batang

Lannea coromandelica

% Inhibisi

Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Ekstrak Air Kulit Batang Lannea coromandelica 100 80 60 40 20 0

y = 433,86x + 24,247 R² = 0,9946 0

0,05

0,1

0,15

0,2

Konsentrasi (%)

Gambar 4.3. Kurva Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Vitamin C

% Inhibisi

Hubungan Konsentrasi dan % Inhibisi Vitamin C 100 80 60 40 20 0

y = 4,8535x + 30,032 R² = 0,9816 0

2

4

6

8

10

12

Konsentrasi (ppm)

Kurva di atas diperoleh dengan menggunakan regresi linier pada aplikasi pengolah data microsoft excel 2010. Koefisien y pada persamaan linier bernilai 50 merupakan koefisien IC50, sedangkan koefisien x pada persamaan linier ini merupakan konsentrasi ekstrak yang akan dicari nilainya, dimana x yang diperoleh merupakan besarnya konsentrasi yang diperlukan meredam 50% aktivitas radikal DPPH.

untuk

dapat

Nilai R2 menggambarkan linieritas

konsentrasi terhadap % inhibisi. Nilai R2 yang mendekati +1 (bernilai positif) menandakan bahwa dengan semakin meningkatnya konsentrasi ekstrak, semakin meningkat pula aktivitas antioksidannya. Hal ini berkaitan dengan jumlah senyawa metabolit sekunder yang terlarut di dalam ekstrak dan memiliki aktivitas antioksidan.


40

Aktivitas antioksidan dari ekstrak etanol yang tergolong sangat kuat berhubungan dengan kandungan metabolit sekunder yang dikandungnya. Flavonoid merupakan antioksidan eksogen yang mengandung gugus fenolik dan telah dibuktikan bermanfaat dalam mencegah kerusakan sel akibat stres oksidatif. Mekanisme kerja dari flavonoid sebagai antioksidan dapat secara langsung maupun secara tidak langsung. Flavonoid sebagai antioksidan secara langsung adalah dengan mendonorkan ion hidrogen sehingga dapat menstabilkan radikal bebas yang reaktif (Saija, et al., 1995; Arora, et al.,1998) dan bertindak sebagai scavenger/penangkal radikal bebas secara langsung (Arora, et al.,1998; Nijveldt, et al., 2001). Flavonoid sebagai antioksidan secara tidak langsung bekerja di dalam tubuh dengan meningkatkan ekspresi gen antioksidan endogen melalui beberapa mekanisme seperti peningkatan ekspresi gen antioksidan melalui aktivasi nuclear factor eryhtrid 2 related factor 2 (Nrf2) sehingga terjadi peningkatan gen yang berperan dalam sintesis enzim antioksidan endogen seperti SOD (superoxide dismutase) (Sumardika, Jawi, 2012). Selain itu, Sahidi (1997) mengatakan bahwa komponen fenol dari tanaman merupakan konstituen yang berperan aktif sebagai antioksidan. Antioksidan senyawa fenolik dapat menghentikan atau menghambat tahapan inisiasi dengan cara bereaksi dengan radikal asam lemak atau menghambat propagasi dengan cara bereaksi dengan radikal peroksi atau radikal alkoksi. Oleh karena itu, semakin tinggi kandungan senyawa fenolik dalam ekstrak seperti tanin, antosianin, dan asam-asam fenolat akan memberikan efek penghambatan peroksida lebih besar. 4.8

Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Etanol 70% dan Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Uji toksisitas dengan metode BSLT merupakan uji toksisitas akut dimana

efek toksik dari suatu senyawa ditentukan dalam waktu singkat, yaitu rentang waktu selama 24 jam setelah pemberian dosis uji (Meyer, 1982). Metode BSLT dipilih karena merupakan salah satu metode bioaktivitas yang mudah, cepat, murah dan akurat. Metode ini sering dimanfaatkan untuk mengetahui toksisitas bahan alam/ ekstrak tumbuhan serta untuk skrining senyawa antikanker karena adanya korelasi positif antara metode BSLT dengan uji sitotoksik menggunakan kultur sel kanker (Carballo, et al., 2002).


41

Uji toksisitas BSLT dilakukan dengan menentukan nilai LC 50 dari aktivitas komponen aktif tanaman terhadap larva Artemia salina Leach. Suatu ekstrak dikatakan toksik berdasarkan metode BSLT jika ekstrak dapat menyebabkan kematian 50% hewan uji pada konsentrasi kurang dari 1000 ppm (Meyer, 1982). Pengujian toksisitas terhadap ekstrak etanol 70% dan ekstrak air dilakukan sebanyak 3 kali (triplo). Data mortalitas larva yang diperoleh diolah dengan analisis probit yang dirumuskan oleh Finney (1971) untuk menentukan nilai LC50 pada derajat kepercayaan hingga 95%. Hasil uji toksisitas ekstrak etanol 70% dan ekstrak air kulit batang Lannea coromandelica dapat dilihat pada tabel dan gambar berikut. Tabel 4.6. Hasil Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Etanol 70% Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Banyaknya Konsentrasi (ppm)

Log C

Larva

Total

Hidup

Larva

(Awal)

(x)

1

2

Mati

3

Persen Kematian

Probit

Larva (%)

LC50

(y)

0 (kontrol)

-

10 10 10

0

-

-

1

0

10 10 10

3

10

3,7184

23,774 ppm

10

1

10 10 10

7

23,3

4,2710

(<1000 ppm

100

2

10 10 10

23

76,7

5,7200

atau toksik)

500

2,699

10 10 10

28

93,3

6,4985


42

Gambar 4.4. Kurva Hubungan Log Konsentrasi Ekstrak Etanol 70% dengan Probit

Hubungan Log C Ekstrak Etanol 70% dengan Probit 7 6

Probit

5 4 y = 1,0707x + 3,5266 R² = 0,969

3 2 1 0 0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

Log C

Tabel 4.7. Uji Toksisitas BSLT Ekstrak Air Kulit Batang Kayu Jawa (Lannea coromandelica) Banyaknya

Konsentrasi (%)

Larva Hidup

Log C

(x)

Larva

(Awal)

1

2

3

-

10

10

10

0,15

-0.824

10

10

0,3

-0,523

10

0,5

-0,310 0

0 (kontrol)

1

Total

Mati

Persen Kematian

Probit

LC50

Larva (%)

(y)

0

-

-

0,3171 %

10

9

30

4,4756

atau 3.171

10

10

13

43,3

4,8313

ppm

10

10

10

18

60

5,2533

(>1000 ppm

10

10

10

86,7

6,1123

26

atau tidak toksik)


43

Gambar 4.5. Kurva Hubungan Log Konsentrasi Ekstrak Air dengan Probit

Hubungan Log C Ekstrak Air dengan Probit 7 6 5 Probit

4 3

y = 1,989x + 5,9921 R² = 0,9605

2 1 0

-1

-0,8

-0,6

-0,4

-0,2

0

Log C

Uji toksisitas yang dilakukan terhadap ekstrak etanol 70% kulit batang Lannea coromandelica menunjukkan nilai LC50 sebesar 23,774 ppm. Hal ini menunjukkan bahwa ekstrak etanol 70% memiliki potensi toksisitas akut menurut metode BSLT dan dapat dikembangkan sebagai antikanker. Pengujian toksisitas terhadap ekstrak air diperoleh nilai LC50 0,3171 % atau setara dengan 3.171 ppm sehingga disimpulkan ekstrak air ini tidak memiliki potensi toksisitas akut dalam pengujian toksisitas yang dilakukan. Potensi toksisitas akut yang dimiliki ekstrak etanol 70% dipengaruhi oleh kandungan metabolit sekunder yang dimiliki ekstrak tersebut. Adanya flavonoid ekstrak dalam lingkungan sel, menyebabkan gugus OH- pada flavonoid berikatan dengan protein integral membran sel. Hal ini menyebabkan terbendungnya transport aktif Na+ - K+. Transpor aktif yang berhenti menyebabkan pemasukan ion Na+ yang tidak terkendali ke dalam sel, hal ini menyebabkan pecahnya membran sel (Scheuer, 1994). Pecahnya membran sel inilah yang menyebabkan kematian larva Artemia salina.


44

Selain flavonoid, ada beberapa senyawa metabolit sekunder yang terdapat dalam ekstrak etanol 70%. Senyawa-senyawa metabolit sekunder tersebut antara lain adalah saponin dan glikosida. Senyawa-senyawa tersebut dapat bertindak sebagai stomach poisoning atau racun perut. Oleh karena itu, ketika senyawasenyawa ini masuk ke dalam tubuh larva, alat pencernaan larva akan terganggu. Selain itu, senyawa ini menghambat reseptor perasa pada daerah mulut larva. Hal ini mengakibatkan larva gagal mendapatkan stimulus rasa sehingga tidak mampu mengenali makanannya. Akibatnya, larva mati kelaparan (Rita, Suirta, Sabikin, 2008; Nguyen, Widodo, Momordica, 1999) Di dalam tubuh manusia, flavonoid dan glikosida dapat memacu apoptosis sel. Flavonoid dapat memacu apoptosis melalui beberapa mekanisme antara lain penghambatan aktivitas DNA topoisomerase I/II, penurunan ekspresi gen Bcl-2 dan Bcl-XL, serta peningkatkan ekspresi gen Bax dan Bak (Ren, et al., 2003).


45

BAB 5 KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan 1.

Pengujian antioksidan dengan metode DPPH menunjukkan bahwa ekstrak dari hasil maserasi etanol 70% kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) dan kontrol positif vitamin C memiliki aktivitas antioksidan yang sangat kuat (AAI >2) dengan nilai AAI masingmasing 5,5679 dan 9,6254 sedangkan ekstrak air dari hasil dekokta kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) memiliki aktivitas antioksidan yang lemah (AAI <0,5) dengan nilai AAI 0,0667.

2.

Pengujian antioksidan dengan metode BSLT menunjukkan bahwa ekstrak dari hasil maserasi etanol 70% kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) memiliki aktivitas toksik (LC50 <1000 ppm) dengan LC50 23,774 ppm sedangkan ekstrak air dari hasil dekokta kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica) tidak menunjukkan aktivitas toksik (LC50 >1000 ppm) dengan LC50 3.171 ppm.

5.2 Saran Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut tentang isolasi senyawa-senyawa yang memiliki aktivitas antioksidan dari kulit batang kayu jawa. Selain itu, perlu dilakukan juga penelitian lebih lanjut tentang toksisitas kronik dan aktivitas antikanker dari kulit batang kayu jawa (Lannea coromandelica).

45


46

DAFTAR PUSTAKA Alam Badrul, Hossain Sarowar, Habib Razibul, Rea Julia, dan Islam Anwarul. 2012. Antioxidant and Analgesic Activities of Lannea coromandelica Linn. Bark Extract. International Journal of Pharmacology 8 (4): 224-233. ISSN 1811-7775. Bangladesh Asni, A & Dewi, Y. 2010. Etnofarmakologi Tumbuhan Obat Pada Etnis Bugis Untuk Pengobatan Gangguan Saluran Cerna Dan Identifikasi Farmakognostiknya. Prosiding Seminar Nasional “Eight Star Performance Pharmacist”. Yogyakarta. Anderson, J.E. 1991. A Blind Comparison Of Simple Bench Top Bioassay And Human Tumor Cell Cytotoxities As Antitumor Prescreens Natural Product Chemistry. Phytochemical Analysis 2: 107-111. Arora, A., M.G. Nair, and G.M. Strasburg. 1998. Structure – activity relationships for antioxidant activities of a series of flavonoids in a liposomal system. Free Radic. Biol.& Med. 24(9): 1355-1363 Badan POM RI. Acuan Sediaan Herbal. 2010. Beck, W.T., Mo, Y.Y., dan Bhat, U.G., 2001, Cytotoxic signalling by inhibitor of DNA topoisomerase II. Biochemical Society, 29(6), 702–70 Bimakr Mandana, et al. 2011. Comparison of Different Extraction Methods for the Extraction of Major Bioactive ﬂavonoid Compounds from Spearmint (Mentha spicata L.) leaves. Food and Bioproducts Processing 89 : 67-72 Elsevier Journal. Dachriyanus. 2004.Analisis Struktur Senyawa Organik Secara Spektrofotometri. Padang. CV. Trianda Anugrah Pratama. Daintith, John. 1994. A Concise Dictionary of Chemistry Oxford. Oxford University Press. Day R.A.&Underwood. 1980. Analisa Kimia Kuantitatif. Erlangga, Jakarta. Depkes RI. 1995. Materia Medika Indonesia Jilid VI. Jakarta. Depkes RI. 1995. Farmakope Indonesia Jilid IV. Jakarta. Direktorat Jenderal Pengawasan Obat dan Makanan. 2000. Parameter Standar Umum Ekstrak Tumbuhan Obat. Departemen Kesehatan Republik Indonesia. Jakarta. E. Kubicka, L Jçdrychowski and R. Amarowicz. 1999. Effect of Phenolic Compounds Extracted From Sunflower Seeds on Native Lipoxygenase Activity. Farnworth, N. R. 1966. Biological and Phytochemical Screening of Plants. Journal of Pharmaceutical Sciences.


47

Finney, D.J. 1971. Probit Analysis, 3rd edition. Cambridge University Press, Cambridge, UK. ISBN 0-521-08041-X. Gandjar &Rohman. 2007. Kimia Farmasi Analisis. Pustaka Pelajar. Yogyakarta Gritter Roy J., James M. Bobbit, Arthur E. S., 1991. Pengantar Kromatografi. Penerbit ITB. Bandung. Harborne, J.B. 1987.Metode Fitokimia: Penuntun Cara modern Menganalisis Tumbuhan.Penerjemah: Kosasih P, Soediro Iwang. Bandung. Penerbit ITB. Hal: 6-17. Hernani & M. Raharjo. 2005. Tanaman Berkhaisat Antioksidan. Jakarta. Penerbit Swadaya. Hiroe Kikuzaki, Masashi Hisamoto, Kanae Hirose,Kayo Akiyama& Hisaji Taniguchi. 2002. Antioxidant Properties of Ferulic Acid and Its Related Compounds. Journal of Agric. Food Chem. Isnindar, Wahyuono, S., & Setyowati, E. P. 2011. Isolasi dan Identifikasi Senyawa Antioksidan Daun Kesemek (Diospyros kaki Thunb.) dengan Metode DPPH (2,2-Difenil-1-pikrihidrazil). Majalah Obat Tradisional. 16(3), 157-164. Ivanišová,et al. 2013. Antioxidant Activity of Selected Plant Products. Journal of Microbiology, Biotechnology, and Food Sciences. Joseph Stalin D, D. Thomas Babu, S. Senthil Kumar. 2013. A Study on the Antioxidant and Free Radical Scavenging Property of Lannea coromandelica Bark Extract. International Journal Of Universal Pharmacy And Life Sciences. Kuncahyo, I. & Sunardi. 2007. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Belimbing Wuluh (Averrhoa bilimbi, L.) terhadap 1,1-diphenyl-2-Picrylhidrazil (DPPH). Seminar Nasional Teknologi. ISSN: 1978-9777. Kuntorini,E. M. & Astuti, M. D. 2010. Penentuan Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol Bulbus Bawang Dayak (Eleutherine Americana Merr.). Jurnal Sains dan Terapan Kimia. Langseth Lilian. 1995. Oxidants, Antioxidants, and Diseaseprevention. Mandal, P. & Ghasal, M.. 2012. Phytochemical Screening and Antioxidant Activities of Two Selected ‘Bihi’ Fruits Used as Vegetables in Darjeeling Himalaya. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences. ISSN: 0975-1491. Manik, M.A. Wahid, S.M.A. Islam, A. Pal, K.T. Ahmed. 2013. A Comparative Study of the Antioxidant, Antimicrobial and Thrombolytic Activity of the Bark and Leaves of lannea coromandelica (Anacardiaceae). International


48

Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. Vol. 4(7): 2609-2614. E-ISSN: 0975-8232; P-ISSN: 2320-5148. Maulida, Dewi & Naufal, Zulkarnaen. 2010. Ekstraksi Antioksidan (Likopen) dari Buah Tomat dengan Menggunakan Sovent Campuran, n-Heksana, Aseton dan Etanol. Universitas Diponegoro. Semarang Meyer B. N., et al. 1982. Brine Shrimp: A Convenient General Bioassay For Active Plant Constituents. Journal of Medical Plant Research Vol. 45. Molyneux, P. 2004. The Use of the Stable Free Radical Diphenylpicryl Hydrazyl (DPPH) for Estimating Antioxidant Activity. SongklanakarinJournal Science and Technology. Musfiroh & Syarief. 2012. Uji Aktivitas Peredaman Radikal Bebas Nanopartikel Emas dengan Berbagai Konsentrasi sebagai Material Antiaging dalam Kosmetik. UNESA Journal of Chemistry Vol. 1 (2). Nurjanah, Izzati, Abdullah. 2011. Aktivitas Antioksidan dan Komponen Bioaktif Kerang Pisau (Solen sp.). Jurnal Ilmu Kelautan Vol 16 (3): 119-124. ISSN 0853-7291. Prakash, A. 2011. Antioxidant activity. Medallion Laboratories: Analytical Progress Vol 19 (2). Prasad, MR. Rajendra & Mani, T. Tamiz. 2014. Phytochemical Evaluation and Biological Studies on the Bark of odina wodier roxb. International Journal Of Pharmaceutical And Chemical Sciences. India. Rahayu, Sunarti , S. Diah, P. Suhardjono. 2006. Pemanfaatan Tumbuhan Obat secara Tradisional oleh Masyarakat Lokal di Pulau Wawonii, Sulawesi Tenggara. Jurnal Biodiversitas Vol. 7 (3). Rao V. Srinivasa, Einstein John Wilkin, Das Kuntal. 2014. Hepatoprotective and Antioxidant Activity of Lannea coromandelica Linn. on Thioacetamide Induced Hepatotoxicity in Rats. International Letters of Natural Sciences. Ren, W., Qiao, Z., Wang, H., Zhu, L., Zhang, L., 2003. Flavonoids: Promising Anticancer Agents. Medicinal Research Reviews, 23 (4), 519–534 Sahidi F., and P.K.J. Warnasundara. 1997. Phenolic antioxidant. Crit Rev J. Food Sci. Nutrition. Saifudin, Rahayu, & Teruna. 2011. Standarisasi Bahan Obat Alam. Graha Ilmu: Yogyakarta. Saija, A., et al. 1995. Flavonoids as antioxidant agents : importance of their interaction with biomembranes. Free Radic. Biol. & Med. 19(4): 481-486. Sastrohamidjojo. 2005. Kimia Organik; Stereokimia, Karbohidrat, Lemak. dan Protein. Penerbit Gadjah Mada University Press: Yogyakarta.


49

Scherer R, Godoy HT.2009. Antioxidant activity index (AAI) by the 2,2-diphenyl1-picrylhydrazyl method. Food Chemistry:112(3): 654-658. Scheuer, J. S. 1994. Produk Alami Lautan. IKIP Semarang Press: Semarang. Shetti, Neelu & Pati, Renuka. 2011. Antioxidants: Its Beneficial Role Against Health Damaging Free Radical. World Journal of Science and Technology. Sumardika & Jawi. 2012. Water Extract of Sweet Potato Leaf Improved Lipid Profile and Blood SOD Cntent of Rats with High Cholesterol Diet. Medicina vol. 43:2. Sunardi. 2005. Uji Mutu Teh Hijau Perdagangan. Jurnal Kimia dan Teknologi. ISSN 0216-163. Tiwari, Kumar, Kaur Mandeep, Kaur Gurpreet & Kaur Harleem. 2011. Phytochemical Screening and Extraction: A Review. Internationale Pharmaceutica Sciencia vol. 1: issue 1. Tofazzal, I. Toshiaki, S. Mitsuyoshi, T. Satoshi. 2002. Zoosporicidal Activity of Polyflavonoid Tannin Identified in Lannea coromandelicaStem Bark against Phytopathogenic Oomycete Aphanomyces cochlioides. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vasic, S. M., Stefanovic, O. D., Licina, B. Z., Radojevic, I. D., & Comic, L. R. 2012. Biological Activities of Extracts from Cultivated Granadilla passifloraalata. EXCLI Journal. ISSN: 1611-2156. Venkata s. S. N. Kantamreddi, Y. Nagendra Lakshmi and V. V. V. Satyanarayana Kasapu. 2010. Preliminary Phytochemical Analysis of Some Important Indian Plant Species. International Journal of Pharma and Bio Sciences. Vimala S., Ilham, Adenan Mohd., Rashih, Ahmad Abdull., Rohana, Shahdan. 2003. Nature’s choice to wellness: Antioxidant Vegetables/ Ulam. Forest Reserach Institut Malaysia. W.M. Koné, D Soro, B. Dro, K. Yao, K. Kamanz. 2011. Chemical Composition, Antioxidant, Antimicrobial And Acetylcholinesterase Inhibitory Properties of Lannea Barteri (Anacardiaceae). Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 5(10): 1516-1523. Wahid Arif. In Vitro Phytochemical and Biological Investigation of Plant Lannea coromandelica(Family: Anacardiaceae). Thesis to Department of Pharmacy, East West University. Bangladesh. Winarsi, Hery. 2007. Antioksidan Alami dan Radikal Bebas. Yogyakarta: Kanisius. Deresan. http://indiabiodiversity.org/species/show/230190 (diakses pada tanggal 21 Maret pukul 08.26 WIB).


50

Lampiran 1. Alur Kerja Penelitian

Tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica) segar

Determinasi Tanaman

1,5 kg kulit batang tanaman kayu jawa (Lannea coromandelica)

Penyiapan Simplisia Sortasi basah, dicuci, dikering anginkan, sortasi kering, dihaluskan Serbuk Simplisia 688 gram

344 gram dimaserasi dengan menggunakan etanol 70%

5 gram didekokta 5% dengan menggunakan air

Diuapkan

Ekstrak kental

Ekstrak air

Skrining Fitokimia

Uji Antioksidan secara kualitatif menggunakan metode KLT

Uji Antioksidan secara kuantitatif menggunakan metode DPPH

Uji Toksisitas menggunakan metode BSLT

Analisa data


51

Lampiran 2. Hasil Determinasi Lannea coromandelica

Lampiran 3. Penapisan Fitokimia Ekstrak Air


52

No. 1.

Golongan Senyawa Alkaloid

Gambar

(Dragendorf) (Mayer)

Keterangan (Hasil Uji) -Tidak terbentuk endapan kuning (Mayer) -Hasil (-) alkaloid -Tidak terbentuk endapan merah (Dragendorf) -Hasil (-) alkaloid -Perubahan intensitas warna kuning menjadi tidak berwarna -Hasil (+) flavonoid -Tebentuk busa setinggi 1 cm yang stabil -Hasil (+)saponin

2.

Flavonoid

3,

Saponin

4.

Glikosida

-Terbentuk larutan berwarna kuning -Hasil (+) glikosida

5.

Triterpenoid

-Tidak terbentuk warna kuning emas -Hasil (-) triterpenoid

6.

Fenol

-Terbentuk warna hitam kebiruan -Hasil (+) fenol

7.

Tanin

-Terbentuk biru kehitaman -Hasil (+) tanin (Setelah) (Sebelum) Penambahan larutan FeCl3 0,1 %


53

Lampiran 4. Penapisan Fitokimia Ekstrak Etanol 70% No. 1.

Golongan Senyawa Alkaloid

Gambar

(Dragendorf)

(Mayer)

Keterangan (Hasil Uji) -Tidak terbentuk endapan kuning (Mayer) -Hasil (-) alkaloid -Tidak terbentuk endapan merah (Dragendorf) -Hasil (-) alkaloid -Perubahan intensitas warna kuning menjadi tidak berwarna -Hasil (+) flavonoid -Tebentuk busa setinggi 1 cm yang stabil -Hasil (+)saponin

2.

Flavonoid

3,

Saponin

4.

Glikosida

-Terbentuk larutan berwarna kuning -Hasil (+) glikosida

5.

Triterpenoid

-Terbentuk warna kuning emas -Hasil (-) triterpenoid

6.

Fenol

-Terbentuk warna hitam kebiruan -Hasil (+) fenol

7.

Tanin

-Terbentuk biru kehitaman -Hasil (+) tanin (Sebelum) (Setelah) Penambahan larutan FeCl3 0,1 %


54

Lampiran 5. Perhitungan Rendemen Ekstrak Etanol 70%

Lampiran 6. Perhitungan Residu Pelarut Etanol pada Ekstrak Etanol 70%

Penimbangan Bobot piknometer + ekstrak (gram) Bobot piknometer kosong (gram) Bobot piknometer + aquades (gram) Bobot Jenis Bobot Jenis Rata-rata

1 40,962

1,0049

2 41,108 15,922 40,839 1,0107 1,0072

3 40,991

1,0061

Bobot jenis yang diperoleh disetarakan dengan kadar etanol pada tabel bobot jenis dan kadar etanol pada Farmakope Indonesia edisi III, sehingga diperoleh kesetaraan sama dengan 0%.

Lampiran 7. Perhitungan Kadar Abu Total Ekstrak Etanol 70% % Kadar abu = Bobot abu akhir – Bobot krus tanpa tutup x 100% Bobot ekstrak

Penimbangan Bobot krus tanpa tutup (gram) Bobot ekstrak (gram) Bobot abu akhir (gram) Persen Kadar Abu Total (%) Persen Kadar Abu Total Rata-rata

1 24,894 2,061 25,188 14,265

2 25,618 2,032 25,913 14,517

3 29,774 2,070 30,079 14,734

14,505 %


55

Lampiran 8. Hasil KLT Uji Aktivitas Antioksidan Secara Kualitatif

Eluen etanol, etil asetat, dan kloroform dengan perbandingan 2:1:1

E. Etanol

E. Air

E. Etanol

E. Air

Setelah disemprot dengan DPPH

Recolor dengan saturasi 0%

E. Etanol

E. Air

E. Etanol

E. Air

Setelah disemprot dengan DPPH


56

Lampiran 9. Perhitungan dalam Uji Antioksidan

1. Pembuatan larutan DPPH (0,1 mM) - Banyaknya DPPH yang ditimbang :

X = 1,98 mg - Jadi, ditimbang 1,98 mg DPPH dan dilarutkan dengan metanol p.a serta dicukupkan volumenya hingga 50 mL.

2. Pembuatan larutan induk ekstrak etanol 70% 1000 ppm - Konsentrasi 1 ppm setara dengan 1 µg/mL, sehingga untuk membuat konsentrasi 1000 ppm dapat dilakukan dengan menimbang 50 mg ekstrak dan dicukupkan dengan metanol p.a hingga 50 mL.

3. Contoh perhitungan pembuatan larutan uji dan kontrol positif - Pembuatan larutan uji ekstrak etanol 70% konsentrasi 20 ppm dari larutan induk 1000 ppm menggunakan labu ukur 10 mL

N1

x V1 =

N2

x

10000 ppm x V1 = 20 ppm x V1

=

V2 10 mL

0,2 mL atau 200 µL (jumlah yang dipipet dari larutan

induk), kemudian dicukupkan dengan metanol p.a hingga 10 mL pada labu ukur.


57

- Pembuatan larutan uji ekstrak air konsentrasi 0,15% dari larutan induk 5% menggunakan labu ukur 10 mL

N1 x V1 =

N2

x

5% x V1 = 0,15% x V1

=

V2 10 mL

0,3 mL atau 300 µL (jumlah yang dipipet dari larutan induk)

Kemudian dicukupkan dengan metanol p.a hingga 10 mL pada labu ukur.

4. Perhitungan % inhibisi - Contoh perhitungan % inhibisi pada absorbansi rata-rata konsentrasi 0,05% ekstrak air sebesar 0,2913 dengan absorbansi blangko (DPPH) sebesar 0,523.

5. Perhitungan IC50 - Contoh perhitungan IC50 pada ekstrak etanol 70% Sebelumnya, konsentrasi (x) dan % inhibisi (y) dari ekstrak etanol 70% dibuat persamaan regresi linearnya menggunakan aplikasi pengolah data microsoft excel 2010 hingga diperoleh persamaan y = 2,3797x + 33,075. Dari persamaan ini dihitunglah nilai IC50 nya. y = 2,3797x + 33,075 50 = 2,3797x + 33,075 x = 7,1122 ppm Jadi, nilai IC50 dari ekstrak etanol 70% adalah 7,1122 ppm


58

6. Perhitungan nilai AAI (Antioxidant Activity Index) - Contoh perhitungan nilai AAI dari kontrol positif vitamin C Konsentrasi DPPH yang digunakan adalah 1,98 mg/50 mL = 39,6 ppm serta nilai IC50 vitamin C yang diperoleh sebesar

.

Jadi, nilai AAI dari vitamin C adalah 9,6254 dan tergolong sangat kuat.


59

Lampiran 10. Perhitungan dalam Uji Toksisitas BSLT

1. Perhitungan pembuatan larutan uji - Contoh pembuatan larutan uji ekstrak etanol 70% konsentrasi 100 ppm dari larutan induk 1000 ppm menggunakan tabung reaksi 10 mL N1 1000 ppm

x V1 =

N2

x

x V1 = 100 ppm x V1

=

V2 10 mL

1 mL atau 1000 µL (jumlah yang dipipet dari larutan

induk), kemudian dicukupkan dengan aquades hingga 10 mL (telah ditakar sebelumnya) pada tabung reaksi yang telah berisi 10 ekor larva Artemia salina.

- Contoh pembuatan larutan uji ekstrak air konsentrasi 1% dari larutan induk 5% menggunakan tabung reaksi 10 mL

N1 x V1 = N2 x V2 5% x V1 = 1% x 10 mL V1

= 2 mL atau 2000 µL (jumlah yang dipipet dari larutan induk),

kemudian dicukupkan dengan aquades hingga 10 mL (telah ditakar sebelumnya) pada tabung reaksi yang telah berisi 10 ekor larva Artemia salina.

2. Perhitungan % kematian larva - Contoh perhitungan % kematian larva pada ekstrak etanol 70% konsentrasi 10 ppm dimana diperoleh larva yang mati setelah 24 jam sebanyak 7 ekor dari jumlah larva uji sebanyak 30 ekor.


60

3. Pencarian nilai probit pada tabel probit - Contoh pencarian nilai probit dari % kematian larva 23,3% pada tabel probit.

4. Perhitungan nilai LC50 - Contoh perhitungan LC50 pada ekstrak etanol 70% Sebelumnya, log konsentrasi (x) dan probit (y) dari ekstrak etanol 70% dibuat persamaan regresi linearnya menggunakan aplikasi pengolah data microsoft excel 2010 hingga diperoleh persamaan y = 1,0707x + 3,5266. Dari persamaan ini dihitunglah nilai LC50 nya. y = 1,0707x + 3,5266 5 = 1,0707x + 3,5266 x = 1,3761 anti Log 1,3761= 23,774 ppm

Jadi, nilai LC50 dari ekstrak etanol 70% adalah 23,774 ppm dan tergolong toksik.


61

Lampiran 11. Panjang Gelombang Maksimum DPPH


62

Lampiran 12. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Etanol 70% menggunakan Metode DPPH

Larutan induk ekstrak etanol 70% (1000 ppm) (50 mg ekstrak ad metanol p.a hingga 50 mL)

50 µL Ad metanol p.a hingga 10 mL

5 ppm





10 ppm

15 ppm

20 ppm

25 ppm

Masing-masing ditambahkan 2 mL DPPH 0,1 mM Vorteks dan inkubasi 30 menit (tempat gelap)

Ukur absorbansi pada panjang gelombang 515,5 nm

Absorbansi

% Inhibisi

IC50

AAI

Analisa data


63

Lampiran 13. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Air menggunakan Metode DPPH

Larutan induk ekstrak air 5% (dekokta 5 gram simplisia dalam 100 mL aquades)





0,03 %

0,05 %

0,12 %

0,15 %



Absorbansi

% Inhibisi

IC50

AAI

Analisa data


64

Lampiran 14. Skema Uji Aktivitas Antioksidan Kontrol Positif Vitamin C menggunakan Metode DPPH

Larutan induk vitamin C (1000 ppm) (50 mg serbuk vitamin C ad metanol p.a hingga 50 mL)






2 ppm

4 ppm

6 ppm

8 ppm

10 ppm



Absorbansi

% Inhibisi

IC50

AAI

Analisa data


65

Lampiran 15. Skema Uji Toksisitas Ekstrak Etanol 70% menggunakan Metode BSLT

Larutan induk ekstrak etanol 70% (1000 ppm) (50 mg ekstrak ad metanol p.a hingga 50 mL)

100 µL Ad aquades hingga 10 mL

10 ppm

+10 ekor larva +1000 µL Ad aquades hingga 10 mL




1 ppm

10 ppm

100 ppm

500 ppm

Inkubasi di bawah lampu selama 24 jam

Hitung larva yang mati

Probit

LC50

Analisa data - Kontrol hanya terdiri dari 10 ekor larva dan aquades hingga 10 mL A. salina - Setiap konsentrasi dilakukan pengujian sebanyak 3 kali (triplikat)


66

Lampiran 16. Skema Uji Toksisitas Ekstrak Air menggunakan Metode BSLT

Larutan induk ekstrak air 5% (dekokta 5 gram simplisia dalam 100 mL aquades)





0,15%

0,3%

0,5%

1%

Inkubasi di bawah lampu selama 24 jam

Hitung larva yang mati

Probit

LC50

Analisa data

- Kontrol hanya terdiri dari aquades hingga 10 mL dan 10 ekor larva A. salina - Setiap konsentrasi dilakukan pengujian sebanyak 3 kali (triplikat)


67

Lampiran 17. Data Absorbansi Uji Aktivitas Antioksidan

- Data absorbansi pengujian antioksidan ekstrak etanol 70% Konsentrasi (ppm) 5 10 15 20 25

Absorbansi pada Pengulangan ke1 2 3 0,298 0,311 0,276 0,169 0,183 0,184 0,114 0,117 0,120 0,072 0,066 0,078 0,030 0,032 0,032

Absorbansi Rata-rata

% Inhibisi (%)

0,2950 0,1786 0,1170 0,0720 0,0313

23,3766 53,6104 69,6103 81,2987 91,8701


% Inhibisi (%)

0,3493 0,3080 0,1187 0,0690

37,5134 44,9016 78,7656 87,6565


% Inhibisi (%)

0,5237 0,4273 0,3747 0,2923 0,1670

40,0801 51,1098 57,1281 66,5561 80,8924

- Data absorbansi pengujian antioksidan ekstrak air Konsentrasi (%) 0,03 0,05 0,12 0,15

Absorbansi pada Pengulangan ke1 2 3 0,352 0,354 0,342 0,305 0,318 0,301 0,110 0,123 0,123 0,068 0,070 0,069

- Data absorbansi pengujian antioksidan vitamin C Konsentrasi (ppm) 2 4 6 8 10

Absorbansi pada Pengulangan ke1 2 3 0,372 0,598 0,595 0,440 0,415 0,427 0,382 0,363 0,379 0,352 0,309 0,216 0,129 0,172 0,200


68

Lampiran 18. Data Analisis Statististik One Way Anova

Analisis stastistik menggunakan program IBM SPSS 22 dilakukan dengan membandingkan persen inhibisi ekstrak etanol 70% dan vitamin C pada konsentrasi 10 ppm. 1. Uji Normalitas Saphiro-Wilk Tujuan : Untuk mengetahui normalitas dari distribusi persen inhibisi ekstrak etanol 70% dan vitamin C Hipotesis : Ho

: data % inhibisi terdistribusi normal

Ha

: data % inhibisi tidak terdistribusi normal

Pengambilan keputusan : Jika nilai signifikan ≥ 0,05 maka Ho diterima. Jika nilai signifikan < 0,05 maka Ho ditolak

Tests of Normality Kelompok PersenInhibisi Ekstrak Etanol 70% Vitamin C

Shapiro-Wilk Statistic df ,800 3 ,985 3

Sig. ,114 ,768

a. Lilliefors Significance Correction Keputusan : Uji normalitas persen inhibisi seluruh kelompok terdstribusi normal (p ≥ 0,05).


69

2. Uji Homogenitas Lavene Tujuan : Untuk mengetahui homogenitas dari distribusi persen inhibisi ekstrak etanol 70% dan vitamin C Hipotesis : Ho

: data % inhibisi homogen

Ha

: data % inhibisi tidak homogen


Test of Homogeneity of Variances PersenInhibisi Levene Statistic

df1

,960

df2 1

Sig. 4

,383

Keputusan : Uji homogenitas persen inhibisi seluruh kelompok homogen (p ≥ 0,05).


70

3. Uji One Way Anova Tujuan : Untuk mengetahui perbedaan bermakna dari persen inhibisi ekstrak etanol 70% dan vitamin C Hipotesis : Ho

: data % inhibisi tidak berbeda bermakna

Ha

: data % inhibisi berbeda bermakna


ANOVA PersenInhibisi Sum of Squares Between Groups Within Groups Total

df

Mean Square

1117,883

1

1117,883

42,984 1160,867

4 5

10,746

F 104,028

Sig. ,001

Keputusan : Data persen inhibisi berbeda bermakna (p < 0,05).


UJI AKTIVITAS ANTIOKSIDAN DAN UJI TOKSISITAS EKSTRAK ETANOL 70% DAN EKSTRAK AIR KULIT BATANG KAYU JAWA (Lannea coromandelica) SKRIPSI

Recommend Documents