11 IV. HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1. Rerata Mortalitas A. craccovira pada beberapa konsentrasi B. Bassiana Hasil uji patogenisitas B. bassiana terhadap A. craccivora dengan perlakuan jumlah konidia/ml B. bassiana menunjukkan bahwa setiap perlakuan dapat mematikan A. craccivora (Tabel 1). Dan berdasarkan analisis statistik mortalitas A. craccivora berbeda nyata pada taraf 5 % (Lampiran 7). Tabel 1. Rerata Mortalitas A. craccivora pada beberapa konsentrasi B. bassiana
Perlakuan
Mortalitas (%)
Mortalitas terkoreksi
(jumlah konidia/ml)
BNT
Abbot
Kontrol
1,66
0
B
10 5
5
3,50
B
10 6
10
5,26
B
10 7
21,66
17,54
A
10 8
28,33
24,56
A
10 9
33,33
29,82
A
Keterangan: angka yang diikuti oleh huruf kecil yang sama berbeda tidak nyata pada uji BNT taraf 5%. Tabel menunjukkan antara perlakuan tertinggi jumlah konidia 109/ml, 108/ml dan 107/ml tidak berbeda dalam mematikan A. craccivora, dan berbeda nyata dengan perlakuan jumlah konidia 106/ml, 105/ml maupun kontrol. Secara keseluruhan perlakuan konsentrasi jumlah konidia/ml B. bassiana yang diaplikasikan pada A. craccivora mampu mematikan serangga uji akan tetapi tidak efektif untuk mematikan A. craccivora secara keseluruhan karena tingkat mortalitasnya di bawah 50%. Berbeda halnya dengan penelitian Gusti (2006), bahwa persentase kematian pada perlakuan jumlah konidia B. bassiana 1015/ml lebih tinggi dibanding perlakuan lain terhadap walang sangit yaitu 1010/ml dan 105/ml pada pengamatan sampai hari ke 10, dengan jumlah konidia yang banyak akan lebih berpeluang untuk menginfeksi sehingga akan lebih banyak mematikan serangga uji. Rendahnya tingkat kematian A. craccivora terjadi karena cendawan B. bassiana memiliki sifat yang agak spesifik dalam menginfeksi serangga. Cendawan ini akan efektif jika diisolasi dari isolat yang sama. Pada penelitian ini isolat yang digunakan adalah walang sangit yang berasal dari family Alydidae (Hemiptera). Menurut Trizelia et al.,
12 (2005), patogenisitas konidia cendawan entomopatogen yang baik adalah isolat berasal dari inang yang sama dengan serangga uji yang berasal dari ekosistem yang sama. Selain itu Soetopo et al., (2005) menambahkan keberhasilan dan kegagalan cendawan entomopatogen ditentukan oleh strain cendawan yang dapat membunuh serangga dan kondisi lingkungan yang sesuai. Tingkat persentase mortalitas tertinggi terlihat pada konsentrasi jumlah konidia 109 /ml dibanding dengan perlakuan lainnya, karena semakin tinggi konsentrasi yang diberikan maka akan semakin besar peluang untuk mematikan serangga. Menurut Wilujeng (2007) dan Wagiman (2003), perbedaan tinggi rendahnya mortalitas serangga yang terinfeksi dipengaruhi oleh patogenisitas B. bassiana, juga umur dan kerentanan serangga uji itu sendiri. Schroer et al., (2005), mengemukakan bahwa keberhasilan aplikasi B. bassiana pada serangga di batasi oleh pengaruh lingkungan seperti suhu, kekeringan dan sinar ultra violet. Menurut Santoso dalam Sapdi (1999) faktor yang sangat penting untuk timbulnya penyakit pada serangga adalah kontak antara inokulum cendawan dengan tubuh serangga. Semakin tinggi konsentrasi akan semakin banyak konidia yang mengalami kontak secara langsung dengan tubuh serangga, sehingga penetrasi dan infeksi konidia cendawan yang berhasil berkecambah akan lebih cepat terjadi. Gambaran perkembangan mortalitas A. craccivora setelah perlakuan B. bassiana dapat dilihat pada Gambar 4 berikut :
Gambar 4. Histogram mortalitas A. craccivora pada beberapa konsentrasi B. bassiana. Gambar 4 terlihat bahwa perlakuan jumlah konidia 109 konidia/ml mengakibatkan persentase kematian A. craccivora 33,33% tertinggi dibanding perlakuan lain. kemudian diikuti konsentrasi 108 konidia/ml (28,33%), 107 konidia/ml (21,65%), 106 konidia/ml (10%), 105 konidia/ml (5%) dan kontrol yaitu 1,66%. Persentase kematian A. craccivora meningkat cepat pada hari ke 3 sampai ke 7, hal ini senada dengan yang disampaikan
13 Bauer et al. (2003) bahwa waktu proses infeksi yang dibutuhkan B. bassiana untuk menginfeksi serangga adalah 7 hari pada kerapatan 106/ml.
4. 2. Waktu kematian A. craccovira setelah aplikasi B. bassiana Hasil penelitian pengaruh B. bassiana dengan berbagai konsentrasi memberikan pengaruh yang tidak nyata (Lampiran 11) terhadap waktu kematian A. craccivora.
Gambar 5. Histogram waktu kematian A. craccivora pada berbagai konsentrasi B. bassiana Gambar 5 menunjukkan bahwa rerata waktu kematian Aphis yang paling lambat mati terjadi pada perlakuan konsentrasi 106 konidia/ml, yaitu 5,44 HSA, diikuti perlakuan 109 konidia/ml yaitu 4,75 HSA, selanjutnya perlakuan 107 konidia/ml ,105 konidia/ml dan 108 konidia/ml masing-masing 3,75 HSA, 3,66 HSA dan 3,63 HSA (Lampiran 10). Antara perlakuan tertinggi maupun terendah tidak berbeda terhadap waktu kematian karena sedikit banyaknya konidia yang menempel pada A. craccivora tidak berpengaruh terhadap waktu kematian setelah dianalisis dengan analisis varian. Pengaruh tidak nyata dari pemberian berbagai jumlah konidia/ml cendawan B. bassiana terhadap A. craccivora disebabkan oleh B. bassiana membutuhkan waktu untuk bisa menginfeksi dan mematikan A. craccovira dimana penetrasinya memerlukan waktu 12-24 jam. Menurut MacLeod (1963) dalam Tanada & Kaya (1993), periode proses awal infeksi sampai kematian serangga terjadi dalam kurun waktu yang singkat yaitu hanya 3 hari dan selambat-lambatnya 12 hari, namun pada umumnya terjadi dalam waktu 5-8 hari dan periode tersebut dapat berbeda tergantung pada ukuran inang. Mekanisme penetrasi dimulai dengan pertumbuhan konidia pada kutikula selanjutnya B. bassiana mengeluarkan
14 enzim-enzim yang dihasilkan oleh konidia cendawan seperti proteinase, lipase dan chitinase ( Burgers, 1970: Tanada, 1994 dalam Kusnadi dan Sanjaya, 2003). Cendawan B. bassiana menginfeksi tubuh serangga dimulai dengan kontak inang, masuk ke dalam tubuh inang, reproduksi di dalam satu atau lebih jaringan inang, kemudian kontak dan menginfeksi inang baru. B. bassiana masuk ke tubuh serangga inang melalui kulit, saluran pencernaan, spirakel dan lubang lainnya. Konidia jamur yang menempel pada tubuh serangga inang akan berkecambah dan berkembang membentuk tabung kecambah, kemudian masuk menembus kulit tubuh. Penembusan dilakukan secara mekanis dan atau kimiawi dengan mengeluarkan enzim atau toksin. Pada proses selanjutnya, jamur akan bereproduksi di dalam tubuh inang. Jamur akan berkecambah dalam tubuh inang dan menyerang seluruh jaringan tubuh, sehingga seluruh hifa memenuhi rongga tubuh A. craccivora dan akhirnya mati. Miselia jamur menembus ke luar tubuh inang, tumbuh menutupi tubuh inang dan memproduksi konidia. Dalam hitungan hari, serangga akan mati. Serangga yang terserang jamur B. bassiana akan mati dengan tubuh mengeras seperti mumi dan jamur menutupi tubuh inang dengan warna putih. (Haryono, (2014).
4.3. Gejala A. craccivora yang terinfeksi B. bassiana. Hasil pengamatan terhadap Aphis yang mati menunjukkan gejala kaku dan mengeras dan rata serta mengering seperti mumi (mumifikasi), seperti yang dapat terlihat pada gambar di bawah ini :
Gambar 6. A. craccivora yang terinfeksi B. Bassiana. Santoso (1994) dalam Jauharlina dan Hendrival (2003) menambahkan bahwa pada umumnya semua jaringan dan cairan tubuh serangga habis digunakan oleh cendawan B. bassiana untuk pertumbuhan dan perkembangannya, akibatnya serangga mati dengan tubuh mengeras seperti mumi. Jika keadaan mendukung, cendawan menembus keluar
15 tubuh serangga terutama pada artikulasi embelan tubuh dan alat mulut. Pada A. craccivora yang tersporulasi cendawan B. bassiana ditandai dengan tumbuhnya miselia cendawan yang berwarna putih pada permukaan tubuh serangga. Saat pengamatan terhadap A. craccovira terinfeksi B. bassiana diketahui bahwa jumlah aphis terinfeksi tertinggi dijumpai pada perlakuan 109 konidia/ml. Kematian A. craccivora yang terinfeksi B. bassiana diakibatkan oleh racun yang dihasilkan oleh cendawan dalam tubuh Aphis. Menurut Robert (1981), setelah melakukan penetrasi ke dalam tubuh serangga, hifa cendawan B. bassiana berkembang dan memasuki pembuluh darah, selain itu cendawan ini juga menghasilkan beberapa toksin yaitu beauvericin, beauverolit, bassianolit dan isorolit, yang dapat menaikkan pH dan penggumpalan darah, serta terhentinya peredaran darah. Cendawan tersebut juga menyebabkan kerusakan jaringan haemocoel secara mekanis seperti saluran pencernaan, otot, sistem pernafasan. Keseluruhan proses tersebut akhirnya menyebabkan matinya serangga tersebut.
16 V. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1. KESIMPULAN Berdasarkan hasil penelitian dapat diambil kesimpulan bahwa : 1. B. bassiana yang diperlakukan dengan berbagai konsentrasi (jumlah konidia/ml) dapat mematikan A. craccivora tapi tidak efektif untuk mengendalikan A. craccivora. 2. Mortalitas tertinggi terdapat pada perlakuan dengan jumlah konidia B. bassiana 109/ml dengan rata-rata persentase kematian A. craccivora 33,33%, waktu yang dibutuhkan untuk mematikan A. craccivora tidak berpengaruh nyata antar perlakuan (3,63 – 5,44) hari.
5.2. SARAN Untuk penelitian selanjutnya maka dianjurkan menguji mortalitas B. bassiana pada serangga hama yang lainnya, serta menggunakan bahan perekat dan melakukan pengamatan A. craccivora yang tersporulasi.
17 DAFTAR PUSTAKA Abdi Negara. 2003. Penggunaan Analisis Probit untuk Pendugaan Tingkat Kepekaan Populasi Spodoptera exigua terhadap Deltametrin di Daerah Istimewa Yogyakarta. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian Sulawesi Tengah. Informatika Pertanian Volume 12 (Desember 2003). Ahmad, R.Z. 2008. Lethal Time 50 Cendawan Beauveria bassiana dan Metarhizium anisopliae terhadap Sarcoptes. [Online]. http: //bbalitvet. litbang. deptan. go. id/ind/attachments /160_33. pdf. Arifin, M., A. Iqbal, I.B.G. Suryawan, T. Djuwarso, dan W. Tengkaao. 1997. Potensi dan pemanfaatan musuh alami dalam pengendalian hama kedelai. Prosiding Simposium Penelitian Tanaman Pangan III. Jakarta/Bogor, 23-25 Agustus 1993. 5: 1383-1393. Barnett. 1960. Ilustrated Genera of Imperfecty Fungi. Second Edition. Burgess Publishing Company. P : 62. Bauer, L.S., H. Liu, dan D. L. 2003. Evaluation of a Mikrobial Insecticide to Control Emerald Ash Borer. www.springerlink.com.pdf. 05 Juli 2014. Cloyd, R. 2004. Orchid pest : Aphis gossypii. G. Lover. http://www.orchid. mo/problem/pest/aphid-gossypii. htm. 12 Januari 2005. Dixon. AFG. 2000. Insect Predator-Prey Dynamics: Ladybird beetles & Biological Control. Spain: Cambridge Univ Pr 257 p. Dunn, J.A. and D.P.H. Kempton. 1971. Seasonal changes in aphid population on Brussels sprouts. Ann. Appl. Biol. 68(3):233-244. Ferron, P. 1978. Influence of relative humidity on the development of fungal infection caused by Beauveria bassiana (Fungi Inperfecti, Monilae) in imagines of acanthoscelides of obtectus (Col : Bruchidae). J. Enthomophaga 22 (4):393-396. Gusti. V. 2006. Patogenisitas Beauveria bassiana (Bals.) Vuill terhadap Walang Sangit (Leptocorisa acuta. Thumb.).
Skripsi. Program Studi Ilmu Hama Penyakit
Tumbuhan. Fakultas Pertanian. Universitas Bengkulu: (tidak dipublikasikan). Haryono, H., S. Nuraiani dan Riyatno. 1993. Prospek Penggunaan Beauveria bassiana untuk Pengendalian Hama Tanaman Perkebunan. Symposium Patologi Serangga. Yogyakarta 12-13 oktober 1993. Haryono,
N.
2014.
Beauveria
Bassiana.
Sumber
:
http://id.wikipedia.
org/wiki/Beauveria_bassiana. diunduh pada tanggal 9 juni 2014. Jauharlina dan Hendrival. 2003. Toksisitas (LC50 dan LT50) jamur entomopatogen B. bassiana. (Bals.) Vuill. terhadap ulat grayak Spodoptera litura F. Jurnal Agrista. 7(3): 295-301.
18 Kalshoven, L. G. E. 1981. Pest of Crops in Indonesia. Revised and translated by P. A. Van der Laan. pr. Ichtiar Baru-Van Hoeve Jakarta. 406 dan 710. Karmila, Y. 2006. Patogenisitas Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Pada Kumbang Penggerek ubi jalar Cylas formicarius Fabr. Skripsi. Program Studi Ilmu Hama Penyakit Tumbuhan. Fakultas Pertanian. Universitas Bengkulu. (tidak di publikasikan). Kessing, L. B and R. F. L. Mau. 2004. Aphis gossypii (Gover). Department of Entomology. Honohulu. Hawaii. Kusnadi dan Y. Sanjaya. 2003. Pengujian Efektivitas Starter Jamur Beauveria bassiana terhadap Mortalitas Hypothenemus hampei. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia. V(9) : 87-91. Kuswanto, A. Kasno, L. Soetopo dan T. Hadiasto. 2005. Seleksi galur-galur harapan kacang panjang (Vigna sesquipedalis L. Fruwirth) Unibraw. Habitat XVI (4) : 258 269. Mudjiono, Trustinah dan Kasno, A. 1999. Toleransi genotipe kacang panjang terhadap komplek hama dan penyakit. Dalam Prosiding Simposium V PERIPI Komisariat Jatim. Universitas Brawijaya. Malang. Nugroho, B. A. 2005. Patogenisitas Beauveria bassiana dengan penambahan ekstrak daun paitan terhadap hama Spodoptera litura (Lepidoptera: Noctuidae). Skripsi Fakultas Pertanian. Universitas Brawijaya. Malang. Prabaningrum, L. 1996. Kehilangan Hasil Panen Kacang Panjang (Vigna sinensis) akibat Serangan Kutu Kacang Aphis craccivora Koch. Prosiding Seminar Ilmiah Nasional Komoditas Sayuran, pp 355-359. Pracaya. 1998. Hama dan Penyakit Tanaman. Penebar Swadaya. Jakarta. Rahayu, D.S. 2006. Keefektifan beberapa strain Beauveria bassiana terhadap mortalitas Helopeltis antonii pada bibit jambu mete (Anacardium ocidentale L.). Skripsi Sarjana Universitas Pakuan, Bogor. halaman. 94. Rauf, A. 1996. PHT mereguk manfaat dari globalisasi pasar. Disampaikan dalam Seminar dan Rapat Koordinasi Wilayah II. Himpunan Mahasiswa Perlindungan Tanaman Indonesia, 22-24 Desember 1996. Robert, D. W. 1981. Toxins of Entomopathogenic Fungi. In H.D. Burges (ed.). Microbial Control of Pest and Plant Disease.1970-1980. First ed. London: Academic Press. Saleh, R. H. M. dan C. Irsan. 2000. Spesies kutu daun (Homoptera : Aphididae) yang terdapat di kampus dan di kebun percobaan Universitas Sriwijaya. Prosiding Simposium Keanekaragaman Hayati Arthropoda. 16-18 Oktober 2000.
19 Sapdi. 1999. Mortalitas nimpha Nezara viridula L. Pada beberapa tingkat konsentrasi suspensi cendawan entomopatogen Beauveria bassiana Vuill. Agrista 3(1). 72-77. Sastrosiswodjo S, Oka I.N. 1997. Implementasi pengelolaan serangga secara berkelanjutan. Makalah disajikan pada Kongres ke V dan Simposium Entomologi. PEI. 24-26 ..Juni 1997, Bandung. Schroer, S, D. Sulistyanto dan R.U. Ehrers. 2005. Control of Plutella xylostella using polymer formulated Steinernema carpocapsae and Bacillus thuringiensis in cabbage fields. Journal Entonomol. 129 : 198-204. Setokuci. 1981. Occurrence and fecundity of two colour forms in A. craccivora. (Homoptera:Aphididae) on Dasheen leaves. Appl. Entomol. Zool. 16(1) 50-52 . Soetopo, D. 2004.
Efficacy of selected Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. isolates in
combination with a resistant cotton variety (PSB-Ct 9) againts the cotton bollworm, Helicoverpa armigera (Hübner) (Lepidoptera: Noctuidae). Philippines: University of The Philippines Los Banos. [Disertasi]. (Tidak Dipublikasikan). Soetopo. D., S. G. Reyes, D.R. Santiago. 2005. Laboratory assay of Beauveria bassiana isolates against Helicoverpa armigera. Paper presented at the 1st International Conference of Crop Security for Food Safety. Malang. 20-22 September 2005. Steinhaus, E.A. 1949. Microbial diseases of insect. In Paul De Bach (Ed.). Biological Control of Insect Pest and Weeds. P.515-546. New York. John Wiley and Sons. Stoll, G.. 1988. Natural Crop Protection in the Tropics. Arecol, Switzerland. Subiyakto. Dan G. Kartono.1998. Prospek penggunaan benih atau tanah sebagai komponen serangga hama penghisap tanaman Kapas. Jurnal Litbang Pertanian. 45-53. Sudarmaji, D. dan S. Gunawan. 1994. Patogenesitas fungi entomopatogen Beauveria bassiana terhadap Helopeltis antonii. Menara Perkebunan. 62 (1) :1-5. Suharto, E.B. Trisusilowati dan H. Purnomo. 1998. Kajian aspek fisiologi Beauveria bassiana dan virulensinya terhadap Helicoverpa armigera. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia. 4 (2): 112-119. Suhaeriyah. 2006. Uji patogenisitas beberapa isolat jamur Beauveria bassiana (Bals) Vuill terhadap larva penggerek batang (Xystrocera festiva Pascoe) pada Albasia (Albizzia falcataria (L) Fosberg) di Balai Penelitian Tanaman Rempah dan Obat. Laporan Praktek Kerja Lapang. 46 hlm. Suharto, E. B. Trisusilowati dan H. Purnomo. 1998. Kajian aspek fisiologis Beauveria bassiana dan virulensinya terhadap Helicoverpa armigera. Jurnal Perlindungan Tanaman Indonesia. 4:112-119.
20 Suharto, M. Zamroni dan E.B. Trisusilowati. 2003. Produksi Beauveria bassiana (Bals.) pada berbagai media cair dan virulensinya terhadap Plutella xylostella (L.). Agrijurnal 8(1): 29-33. Januari-Juni. Tanada Y, Kaya HK. 1993. Insect Pathology. Sandiago: Academic Press, INC. Harcourt Brace Jovanovich Publisher. Trizelia.
2005.
Cendawan
(Deuteromycotyna:
Entomopatogen
Hypomycetes).
Beauveria
Keanekaragaman
bassiana Genetik,
(Bals)
Vuil.
Karekteristik
Fisiologi, dan Virulensinya terhadap Crocidolomia pavonana (F) [disertasi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Trizelia, T. Santoso, Sosromarsono, A. Rauf dan L.I. Sudirman. 2005. Persistence of Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. Conidia (Deuteromycotina: Hypotemycetes) on cabbage plant and in the soil . paper presented at the 1st International Conference of Crop Security for Food Safety. Malang, 20-22 September 2005. Untung. K. 1993. Konsep Pengendalian Hama Terpadu. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Wagiman, F.X., B. Triman, dan Rr. S. Astuti. 2003. Keefektifan Steinernema sp. terhadap Spodoptera exigua. Jurnal perlindungan Tanaman Indonesia. 9(1): 22-27. Wahyono, TE. Dan Tarigan N. 2007. Uji patogenisitas agen hayati Beauveria bassiana dan Metarhizium anisopliae terhadap ulat Serendang (Xystrocera festiva). Buletin Teknik Pertanian. Bogor. Wiludjeng dan Widawati. 2007. Penggunaan nematoda entomopatogen Steinernema carpocapsae (All strain) dan tanaman sela Bawang merah dalam pengendalian hama pada tanaman Kubis. J. Pertanian Mapeta 10 (1) :60-65.
21
LAMPIRAN
22 Lampiran 1. Data mortalitas A. craccivora Pengamatan hari ke Perlakuan ulangan Kontrol
10 5
10 6
10 7
10 8
10 9
1
2
3
4
5
6
7
Total
1
0
0
0
0
0
0
0
0
2
0
0
0
0
0
0
0
0
3
0
1
0
0
0
0
0
1
1
0
0
1
0
0
0
1
2
2
0
0
0
0
0
1
0
1
3
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
1
0
2
0
0
3
2
0
0
0
0
0
0
2
2
3
0
0
0
0
1
0
0
1
1
0
0
3
0
5
0
0
8
2
0
1
1
0
0
0
1
3
3
0
0
2
0
0
0
0
2
1
0
0
2
7
0
0
0
9
2
0
0
2
1
0
0
0
3
3
0
0
1
4
0
0
0
5
1
0
1
1
5
0
0
0
7
2
0
0
2
0
0
0
5
7
3
0
0
1
3
0
0
2
6
23 Lampiran 2. Akumulasi mortalitas A. craccivora pada beberapa konsentrasi B. bassiana pada tiap ulangan. Ulangan Perlakuan
1
11
111
Total
Rata-rata
Kontrol
0
0
1
1
0,33
10 5
2
1
0
3
1
10 6
3
2
1
6
2
10 7
8
3
2
13
4,33
10 8
9
3
5
17
5,66
10 9
7
7
6
20
6,66
Lampiran 3. Rata-rata kumulatif mortalitas A. craccivora selama 7 hari pengamatan (%) Pengamatan hari
Ke
Perlakuan
Ulangan
1
2
3
4
5
6
7
Kontrol
1
0
0
0
0
0
0
0
2
0
0
0
0
0
0
0
3
0
5
0
0
0
0
0
Jumlah
0
5
5
5
5
5
5
Rata-
0
1,66
1,66
1,66
1,66
1,66
1,66
1
0
0
5
5
5
5
10
2
0
0
0
0
0
5
5
3
0
0
0
0
0
0
0
Jumlah
0
0
5
5
5
10
15
Rata-
0
0
1,66
1,66
1,66
3,32
5
0
0
5
5
10
10
15
rata 10 5
rata 10 6
1
24 2
0
0
0
0
0
0
10
3
0
0
0
0
5
5
5
Jumlah
0
0
5
5
15
15
30
Rata-
0
0
1,66
1,66
6,66
6,66
10
1
0
0
15
15
40
40
40
2
0
5
10
10
10
10
15
3
0
0
10
10
10
10
10
Jumlah
0
5
30
30
60
60
65
Rata-
0
1,66
10
11,66
19,99
19,99
21,66
1
0
0
10
45
45
45
45
2
0
0
10
15
15
15
15
3
0
0
5
25
25
25
25
Jumlah
0
0
25
85
85
85
85
Rata-
0
0
8,33
28,33
28,33
28,33
28,33
1
0
5
5
25
35
35
35
2
0
0
10
10
10
10
35
3
0
0
5
15
20
20
30
Jumlah
0
5
20
40
40
40
100
Rata-
0
1,66
8,32
21,65
21,65
21,65
33,33
rata 10 7
rata 10 8
rata 10 9
rata
25 Lampiran 4. Rata-rata akumulasi mortalitas A. craccivora selama 7 hari pengamatan. Ulangan Perlakuan
1
11
111
Total
Rata-rata
Kontrol
0
0
5
5
1,66
10 5
10
5
0
15
5
10 6
15
10
5
30
10
10 7
40
15
10
65
21,66
10 8
45
15
25
85
28,33
10 9
35
35
30
100
33,33
Lampiran 5. Mortalitas A. craccivora (%) Perlakuan Ulangan
Kontrol
10 5
10 6
10 7
10 8
1
2
3
4
5
6
7
Total
1
0
0
0
0
0
0
0
0
2
0
0
0
0
0
0
0
0
3
0
5
0
0
0
0
0
5
1
0
0
5
0
0
0
5
10
2
0
0
0
0
0
5
0
5
3
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
5
0
10
0
0
15
2
0
0
0
0
0
0
10
10
3
0
0
0
0
5
0
0
5
1
0
0
15
0
25
0
0
40
2
0
5
5
0
0
0
5
15
3
0
0
10
0
0
0
0
10
1
0
0
10
35
0
0
0
45
10 9
2
0
0
10
5
0
0
0
26 15
3
0
0
5
20
0
0
0
25
1
0
5
5
25
0
0
0
35
2
0
0
10
0
0
0
25
35
3
0
0
5
15
0
0
10
30
Lampiran 6. Rata-rata mortalitas A. craccivora pada pengamatan hari ke 7 setelah dikoreksi dengan perhitungan abbot. Ulangan Perlakuan
1
11
111
Total
Rata-rata
Kontrol
0
0
0
0
0
10 5
5,263
0
5,263
10,526
3,508
10 6
10,526
5,263
0
15,789
5,263
10 7
36,842
10,526
5,263
52,631
17,543
10 8
42,103
10,526
21,053
73,682
24,560
10 9
31,579
31,579
26,316
89,474
29,824
Lampiran 7. Analisis keragaman persentase mortalitas A. craccivora SK
DB
JK
KT
F HIT
PERLAKUAN
5
2265,283 453,0566 4,600229783*
GALAT
12
1181,828 98,48564
TOTAL
17
3447,111
F TABEL 3,11
F hit > Fa maka Ho : σi = 0 ditolak, artinya terdapat perbedaan nyata antar perlakuan pada variabel yang diamati.
27 Lampiran 8. Uji BNT 5% Konsentrasi (jumlah
Rerata mortalitas
Lambang
F (10 9)
29,82
A
E (10 8)
24,56
A
D (10 7)
17,54
A
C (10 6)
5,26
B
B (10 5)
3,50
B
A (Kontrol)
0
B
konidia/ml
Lampiran 9. Waktu kematian A. craccivora setelah aplikasi (hari) Perlakuan ulangan
1
2
3
4
5
6
7
Ratarata
Kontrol
10 5
10 6
10 7
10 8
10 9
1
0
0
0
0
0
0
0
0
2
0
0
0
0
0
0
0
0
3
0
1
0
0
0
0
0
2
1
0
0
1
0
0
0
1
5
2
0
0
0
0
0
1
0
6
3
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
1
0
2
0
0
4,33
2
0
0
0
0
0
0
2
7
3
0
0
0
0
1
0
0
5
1
0
0
3
0
5
0
0
4,25
2
0
1
1
0
0
0
1
4
3
0
0
2
0
0
0
0
3
1
0
0
2
7
0
0
0
3,77
2
0
0
2
1
0
0
0
3,33
3
0
0
1
4
0
0
0
3,8
1
0
1
1
5
0
0
0
3,57
2
0
0
2
0
0
0
5
5,85
3
0
0
1
3
0
0
2
4,83
28 Lampiran 10. Rata-rata waktu kematian A. craccivora Ulangan Perlakuan
1
11
111
Total
Rata-rata
Kontrol
0
0
2
2
0,66
10 5
5
6
0
11
3,66
10 6
4,33
7
5
16,33
5,44
10 7
4,25
4
3
11,25
3,75
10 8
3,77
3,33
3,8
10,9
3,63
10 9
3,57
5,85
4,83
14,25
4,75
Lampiran 11. Analisis keragaman waktu kematian A. craccivora setelah aplikasi
SK
DB
JK
KT
F HIT
PERLAKUAN
4
7,933773 1,983443 0,704643 ns
GALAT
10
28,1482
TOTAL
14
36,08197
F TABEL 3,48
2,81482
F hit ˂ F tabel, maka ho : σi = diterima, artinya tidak terdapat perbedaan nyata antar perlakuan pada variabel yang diamati.
29 Denah Penelitian I
II
III
K4U1
K2U2
K6U3
K5U2
K4U1
K5U1
K2U2
K6U3
K4U1
K6U3
K3U2
K3U2
K3U3
K5U1
K1U1
K1U2
K1U3
U
K2U2
60 CM
S
Keterangan : K = Perlakuan
U = Ulangan
K1 = KONTROL K2 = 105
K3 = 106
K4 =107 K5 = 108
K6 = 109
