KELARUTAN MINERAL KALSIUM (Ca) DAN FOSFOR (P) BEBERAPA JENIS LEGUM POHON SECARA IN VITRO SKRIPSI SUHARLINA

KELARUTAN MINERAL KALSIUM (Ca) DAN FOSFOR (P) BEBERAPA JENIS LEGUM POHON SECARA IN VITRO

SKRIPSI SUHARLINA

PROGRAM STUDI NUTRISI DAN MAKANAN TERNAK FAKULTAS PETERNAKAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2006

RINGKASAN Suharlina. D24101026. 2006. Kelarutan Mineral Kalsium (Ca) dan Fosfor Beberapa Jenis Legum Pohon Secara in Vitro. Skripsi. Program Studi Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor. Pembimbing Utama : Dr. Ir. Idat Galih Permana, MSc.Agr. Pembimbing Anggota : Dr. Ir. Luki Abdullah, MSc.Agr Rumput sebagai pakan ternak umumnya mengandung serat yang tinggi dan protein yang rendah. Ketersediaan rumput juga bergantung pada musim. Pada musim hujan hijauan tersedia cukup melimpah dan menurun jika musim kemarau. Sehingga perlu dicari alternatif hijauan yang ketersediaannya cukup sepanjang tahun seperti legum pohon. Legum pohon merupakan tumbuhan yang dapat tumbuh pada lahan kritis dan tahan musim kemarau selama beberapa bulan. Legum pohon merupakan hijauan sumber protein dan memiliki kandungan mineral yang cukup tinggi. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kelarutan mineral makro (Ca dan P) beberapa legum pohon dan nilai fermentabilitasnya didalam rumen. Peubah uang diukur meliputi laju degradasi bahan kering, kelarutaan mineral (Ca dan P), produksi VFA dan NH3 dengan menggunakan teknik in vitro. Materi penelitian berupa lima jenis legum pohon yaitu Angsana (Pterocarpus indicus), Turi (Sesbania grandiflora), Gamal (Gliricidia sepium), Lamtoro (Leucaena leucocephala) dan Kaliandra (Caliandra calothyrsus) yang dinkubasi selama 0, 3, 6, 9, 12, 24, 48 dan 72 jam pada cairan rumen. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Kelompok (RAK) yang terdiri dari 5 perlakuan dan 3 kelompok yang didasarkan pada penggunaan cairan rumen yang berbeda. Data yang diperoleh dianalisis dengan sidik ragam (ANOVA). Untuk mengetahui hubungan laju degradasi pakan dengan produksi VFA dan NH3, dilakukan uji korelasi. Hasil penelitian menunjukkan bahwa kelima jenis legum memiliki produksi VFA yang tidak berbeda nyata (P>0,05). Laju degradasi, kelarutan mineral Ca dan P serta Produksi NH3 masing – masing legum menunjukkan perbedaan yang sangat nyata (P<0,01). Produksi NH3 meningkat jika tingkat degradasi pakan meningkat, tetapi produksi VFA menurun untuk daun turi. Kesimpulan dari penelitian ini adalah Nilai degradasi diurutkan dari tertinggi sampai terendah selama inkubasi 6 hingga 48 jam adalah turi > angsana dan gamal > lamtoro > kaliandra, sedangkan nilai potensi degradasi diurutkan dari yang tertinggi hingga terendah adalah turi dan gamal > angsana dan lamtoro > kaliandra. Kelarutan mineral P setelah inkubasi 24 jam diurutkan dari yang paling tinggi sampai terendah berturut-turut adalah dauun gamal > turi > angsana dan lamtoro > kaliandra. Terdapat hubungan yang erat antara fermentabilitas pakan dengan kelarutan mineral. Kata–kata kunci: legum pohon, degradasi bahan kering, kelarutan mineral, VFA, NH3

ABSTRACT Solubility of Calcium and Phosphor of Several Tree Legumes Using In Vitro Technique Suharlina., I.G. Permana., L. Abdullah An in vitro experiment was carried out to examine the solubility of Ca and P of selected tree legumes in rumen liquor. The legumes were Pterocarpus indicus, Sesbania grandiflora, Gliricidia sepium, Leucaena leucocephala and Caliandra calothyrsus. The legumes leaves were dried, ground and incubated in rumen liquor at 0, 3, 6, 9, 12, 24, 48, and 72 h. The observed variables were degradation rate of legumes leaves, solubility of Ca and P, concentration of ammonia and total VFA concentration. The data were analyzed using analysis of variance. The results showed that the VFA production of tree legumes was no different statistically (P>0.05). However, the degradation rate, solubility of Ca and P and the ammonia concentration of Sesbania grandiflora were significantly higher than those of other legumes (P<0.05). There was significant relationship between the degradation rate, solubility of Ca and P and ammonia concentration. Key words : tree legume, dry matter degradation, mineral solubility, VFA, NH3

KELARUTAN MINERAL KALSIUM (Ca) DAN FOSFOR (P) BEBERAPA JENIS LEGUM POHON SECARA IN VITRO

SUHARLINA D24101026

Srikpsi ini merupakan salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Peternakan pada Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor

PROGRAM STUDI NUTRISI DAN MAKANAN TERNAK FAKULTAS PETERNAKAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2006

KELARUTAN MINERAL KALSIUM (Ca) DAN FOSFOR (P) BEBERAPA JENIS LEGUM POHON SECARA IN VITRO

Oleh SUHARLINA D24101026

Skripsi ini telah disetujui dan disidangkan dihadapan Komisi Ujian Lisan pada tanggal 14 Februari 2006

Pembimbing Utama

Pembimbing Anggota

Dr. Ir. Idat Galih Permana, MSc.Agr. NIP. 131 956 694

Dr. Ir. Luki Abdullah, MSc.Agr. NIP. 131 672 157

Mengetahui, Dekan Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor

Dr. Ir. Ronny R. Noor, M.Rur.Sc. NIP. 131 624 188

RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan pada tanggal 14 Juli 1982 di Pamekasan Jawa Timur. Penulis adalah anak pertama dari empat bersaudara dari pasangan Bapak Achmad Padli dan Ibu Marsuna. Penulis mulai menempuh pendidikan di Sekolah Dasar Negeri Pademawu Timur V Kecamatan Pademawu, Kabupaten Pamekasan pada tahun 1989 dan lulus pada tahun 1995. Pendidikan lanjutan tingkat pertama diselesaikan pada tahun 1998 di SLTP Negeri 1 Pademawu dan pendidikan menengah umum diselesaikan pada tahun 2001 di SMU Negeri 3 Pamekasan. Pada tahun 2001, penulis diterima sebagai mahasiswa Tingkat Persiapan Bersama di Institut Pertanian Bogor (TPB–IPB) melalui Undangan Seleksi Masuk IPB (USMI). Penulis terdaftar sebagai mahasiswa Departemen Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak, Program Studi Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan, Institut Pertanian Bogor. Selama menjadi mahasiswa, penulis pernah aktif di Koperasi Mahasiswa IPB, DPM Fakultas Peternakan, Himpunan Mahasiswa Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak (HIMASITER), DKM Al Hurriyyah IPB, Organisasi Mahasiswa Daerah Madura di Bogor (GASISMA), Senior Residence Asrama TPB–IPB, dan aktif di kepanitian kegiatan yang dilaksanakan oleh lembaga–lembaga kemahasiswaan IPB. Penulis juga pernah menjadi asisten m.a Landasan Ilmu Nutrisi, m.a Nutrisi Terapan, dan m.a Teknik Suplementasi Pakan.

KATA PENGANTAR Syukur Alhamdulillah, penulis panjatkan kehadirat Allah SWT. yang Maha Kuasa atas segala karuniaNya sehingga penulis bisa menyelesaikan karya ilmiah dengan judul Kelarutan Mineral Kalsium (Ca) dan Fosfor (P) Beberapa Jenis Legum Pohon Secara in Vitro. Leguminosa pohon merupakan tumbuhan tropis yang dapat hidup pada lahan yang kurang subur. Sebagai hijauan pakan, leguminosa pohon dikenal sebagai hijauan sumber protein dengan kecernaan yang lebih tinggi dari rumput, kandungan mineral (khususnya kalsium dan fosfor) dan vitamin yang tinggi. Selain itu leguminosa pohon mampu mensuplai protein fermentable dan by pass (dengan adanya tannin). Keuntungan lain dari leguminosa pohon adalah dapat meningkatkan kesuburan tanah, melindungi tanah dari erosi dan merupakan penghasil kayu yang bermutu. Penambahan legum dalam ransum diharapkan dapat mensuplai kebutuhan ternak, sehingga penggunaan ransum lebih efisien. Penulis berharap semoga skripsi ini dapat memberikan kontribusi bagi pengetahuan dalam bidang ilmu nutrisi dan makanan ternak.

Bogor, Februari 2006

Penulis

DAFTAR ISI Halaman RINGKASAN .............................................................................................

i

ABSTRACT

.............................................................................................

ii

RIWAYAT HIDUP .....................................................................................

iii

KATA PENGANTAR .................................................................................

iv

DAFTAR ISI .............................................................................................

v

DAFTAR TABEL........................................................................................

vii

DAFTAR GAMBAR ...................................................................................

viii

DAFTAR LAMPIRAN................................................................................

ix

PENDAHULUAN .......................................................................................

1

Latar Belakang ................................................................................. Perumusan Masalah .......................................................................... Tujuan .............................................................................................

1 2 2

TINJAUAN PUSTAKA ..............................................................................

3

Leguminosa Pohon .......................................................................... Angsana (Pterocarpus indicus) ....................................................... Turi (Sesbania grandiflora) ............................................................. Gamal (Gliricidia sepium) ............................................................... Lamtoro (Leucaena leucocephala) .................................................. Kaliandra (Calliandra calothyrsus) ................................................. Kandungan Anti Nutrisi Leguminosa .............................................. Kandungan Mineral Legum Pohon .................................................. Ketersediaan Mineral Makro dalam Hijauan ................................... Mineral Ca dan P ............................................................................. Cairan Rumen .................................................................................. Teknik In Vitro................................................................................. Metabolisme Rumen ........................................................................ Volatil Fatty Acids ........................................................................... Amonia.............................................................................................

3 4 5 5 6 7 7 9 10 10 11 12 12 13 14

METODE ...................................................................................................

15

Lokasi dan Waktu ........................................................................... Materi ............................................................................................. Pakan Percobaan .................................................................. Cairan Rumen ...................................................................... Prosedur .......................................................................................... Laju Degradasi Bahan Kering Legum Pohon ...................... Pengujian Kelarutan Mineral Makro dalam Rumen dengan Teknik in Vitro ..................................................................... Pengukuran Produksi VFAtotal dan NH3 ..............................

15 15 15 15 15 15 16 18

Analisis Data ....................................................................................

20

HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................................

21

Kandungan Nutrisi Legum Pohon ................................................... Degradasi Pakan .............................................................................. Kelarutan Mineral ............................................................................ Produksi VFA .................................................................................. Produksi Amonia ............................................................................. Hubungan Laju Degradasi dengan Produksi VFA dan NH3............

21 22 24 25 26 27

KESIMPULAN DAN SARAN ...................................................................

29

Kesimpulan ...................................................................................... Saran .............................................................................................

29 29

UCAPAN TERIMAKASIH ........................................................................

30

DAFTAR PUSTAKA ..................................................................................

31

LAMPIRAN

35

.............................................................................................

DAFTAR TABEL Nomor

Halaman

1. Komposisi Abu, Ca dan P Beberapa Legum Pohon (%BK) ...........

3

2. Kandungan Mineral Makro pada Hijauan di Beberapa Lokasi di Pulau Jawa (%BK) ..........................................................................

9

3. Larutan Standar Mineral Fosfor .......................................................

18

4. Kandungan Nutrisi Beberapa Jenis Legum Pohon (%BK) .............

21

5. Laju Degradasi Beberapa Legum Pohon (%BK) .............................

22

6. Kelarutan Mineral Selama Inkubasi 12 dan 24 Jam (mg/kg BK Sampel) ...........................................................................................

24

7. Produksi VFA Beberapa Legum Pohon ..........................................

26

8. Konsentrasi NH3 Beberapa Jenis Legum Pohon .............................

27

9. Hubungan Laju Degradasi dengan Produksi VFA dan NH3 ...........

27

DAFTAR GAMBAR Nomor

Halaman

1. Daun Angsana dan Bunga (a), Buah Angsana (b) ...........................

4

2. Daun Turi (a) dan Bunga (b)............................................................

5

3. Daun Gamal (a) dan Biji (b) ............................................................

6

4. Daun Lamtoro dan Bunga (a), Buah Polong Lamtoro (b) ...............

6

5. Daun Kaliandra (a) dan Buah Polong (b) ........................................

7

DAFTAR LAMPIRAN Nomor

Halaman

1. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 0 Jam ................

36

2. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 3 Jam ................

36

3. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 6 Jam .................

36

4. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 9 Jam .................

37

5. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 12 Jam ...............

37

6. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 24 Jam ...............

37

7. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 48 Jam ...............

38

8. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 72 Jam ...............

38

9. Analisis Ragam Fraksi Terlarut (nilai a) .........................................

38

10. Analisis Ragam Fraksi Tidak Larut (nilai b) ..................................

38

11. Analisis Ragam Potensial Degradasi (nilai a+b) ............................

39

12. Analisis Ragam Laju Degradasi (nilai c) ........................................

39

13. Analisis Ragam Produksi VFA Masa Inkubasi 12 Jam ...................

39

14. Analisis Ragam Produksi VFA Masa Inkubasi 24 Jam ...................

39

15. Analisis Ragam Produksi NH3 Masa Inkubasi 12 Jam ....................

40

16. Analisis Ragam Produksi NH3 Masa Inkubasi 24 Jam ....................

40

17. Analisis Ragam Ca Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam ........................

40

18. Analisis Ragam Ca Tidak Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam .............

41

19. Analisis Ragam P Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam ..........................

41

20. Analisis Ragam P Tidak Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam ................

41

21. Analisis Ragam Ca Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam .......................

42

22. Analisis Ragam Ca Tidak Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam ............

42

23. Analisis Ragam P Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam .........................

42

24. Analisis Ragam P Tidak Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam ...............

43

25. Analisis Ragam Korelasi Laju Degradasi Pakan dengan Produksi VFA dan NH3...................................................................................

43

PENDAHULUAN Latar Belakang Hijauan merupakan bahan pakan yang dibutuhkan ternak ruminansia, namun ketersediaanya sangat tergantung pada musim. Pada musim kemarau sering kali terjadi

defisiensi

mineral

yang

disebabkan

menurunnya

kualitas

padang

penggembalaan alam. Hal ini menyebabkan produktivitas ternak yang rendah. Upaya perbaikan gizi pada ternak ruminansia telah banyak dilakukan dengan cara pemberian hijauan leguminosa. Hijauan legum umumnya hanya digunakan sebagai sumber protein. Namun, demikian dengan melihat kandungan mineral makro yang cukup tinggi, pemanfaatan legum pohon dapat juga ditujukan sebagai sumber mineral makro. Seperti yang dilaporkan oleh Underwood dan Suttle (1999) bahkan kandungan mineral legum pohon cukup tinggi dibandingkan rumput. Hal ini juga sejalan dengan penelitian Sutardi et al. (1994) yang melaporkan bahwa legum pohon pada umumnya kandungan mineralnya cukup tinggi terutama kalsium, sehingga dapat digunakan mengatasi kekurangan mineral. Mineral merupakan zat makanan yang berperan penting pada berbagai proses fisiologis dalam tubuh ternak dan mempengaruhi efisiensi produksi. Kebutuhan mineral pada ternak ruminansia tidak hanya untuk mencukupi kebutuhan pokok ternak sendiri tetapi juga dibutuhkan oleh mikroba didalam rumen. Mineral dalam rumen digunakan untuk aktivitas pembentukan sel, aktivitas selulolitik dan pertumbuhan mikroba. Mineral juga berguna dalam mengatur tekanan osmotik, sebagai larutan penyangga, sebagai potensi reduksi dan mengatur laju kelarutan di dalam rumen. Kebutuhan mineral untuk ternak diperoleh dari kuantitas dan ketersediaannya (bioavailability). Bioavailability mineral adalah mineral yang siap diserap dan dimanfaatkan oleh ternak. Mineral tersedia yang dimaksud adalah mineral yang terlarut dalam rumen sehingga siap diserap oleh usus. Kandungan mineral makro dalam hijauan dipengaruhi oleh beberapa faktor, diantaranya spesies, umur tanaman, pengelolaan, iklim dan tipe tanah (McDowell dan Valle, 2000). Pada daerah yang masih mengandalkan sistem ekstensif, kandungan mineral hijauan tergantung pada ketersediaan air. Pada musim hujan 1

kualitas hijauan relatif baik kandungan mineralnya, sedangkan pada musim kering akan terjadi sebaliknya. Perumusan Masalah Kajian penggunaan hijauan legum pohon pada umumnya hanya ditujukan sebagai sumber protein, namun dengan melihat kandungan mineral makro yang cukup tinggi pemanfaatan legum pohon dapat juga ditujukan sebagai sumber mineral makro. Akan tetapi, informasi mengenai ketersediaan (bioavailability) mineral dalam rumen yang berasal dari legum pohon masih sedikit. Mekanisme hubungan antara kelarutan mineral makro di dalam rumen dengan proses fermentasi juga belum banyak diketahui, terutama sejauh mana peranan mineral dalam menunjang aktivitas mikroba rumen sehingga diperoleh produk-produk fermentasi yang optimal. Tujuan Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kelarutan mineral makro (Ca dan P) beberapa legum pohon berdasarkan nilai fermentabilitasnya di dalam rumen.

2

TINJAUAN PUSTAKA Leguminosa Pohon Leguminosa pohon memiliki beberapa karakteristik yang khas antara lain: kandungan proteinnya yang tinggi (12,5–20,7 %) dengan kecernaan yang lebih tinggi dari rumput, kandungan mineral (khususnya kalsium dan fosfor) dan vitamin yang tinggi. Selain itu leguminosa pohon mampu mensuplai protein fermentable dan by pass karena mengandung zat anti nurisi berupa tannin. Secara ekologis dan ekonomis leguminosa pohon dapat meningkatkan kesuburan tanah, melidungi tanah dari erosi dan merupakan penghasil kayu yang bermutu (Allen dan Allen, 1981). Fleming (1973) mengatakan bahwa secara umum kandungan elemen mineral pada leguminosa lebih banyak dibandingkan pada rumput. Mineral Ca dan Mg pada legum pakan lebih tinggi dari rumput (Serra et al., 1996). Hal serupa dilaporkan Sutardi et al. (1994) yang menganalisa kandungan abu, Ca dan P beberapa legum pohon ( Tabel 1). Tabel 1. Komposisi Abu, Ca dan P Beberapa Legum Pohon (%BK) Jenis hijauan pakan Lamtoro Kaliandra Gamal Angsana Jayanti Rumput lapang*

Abu 8,43 6,06 8,95 6,24 8,43 10,01

Ca 2,77 1,35 2,24 0,52 2,77 0,56

P 0,19 0,25 0,26 0,45 0,19 0,17

Ket: * hasil analisis laboiratorium Ilmu Nutrisi dan Teknologi Pakan

Mineral Ca dalam hijauan pakan umumnya terikat dalam kalsium-oksalat (Ward dan Herber, 1982) bahkan dalam dinding sel (McManus et al., 1979) sehingga sulit untuk dicerna. Oleh karena itu ketersediaan mineral tidak selalu dikaitkan dengan kuantitas mineral. Untuk ternak ruminansia, mineral tidak hanya dibutuhkan oleh ternak tetapi juga oleh mikroba didalam rumen yang dibutuhkan untuk menunjang proses fermentasi yang optimal (Durand dan Kawashima, 1980). Mikroba sangat berperan penting dalam proses fermentasi. Sebagian besar (70-80%) suplai energi pada ternak ruminansia berasal dari proses fermentasi didalam rumen, sehingga kebutuhan mikroba harus benar-benar diperhatikan. Kelarutan mineral baik langsung ataupun tidak langsung akan mempengaruhi produk 3

fermentasi. Mikroba rumen juga penting dalam utilisasi sulfur pada sapi perah (Kandylis, 1984). Penambahan sulfur pada rumen yang mengandung urea dapat meningkatkan retensi nitrogen. Sulfur organik dapat digunakan oleh mikroba untuk sintesis asam amino. Angsana (Pterocarpus indicus) Angsana merupakan legum pohon yang dapat tumbuh dengan cepat mencapai tinggi tegakan 35-40m (Allen dan Allen, 1981). Penggunaan angsana sebagai pakan ternak dibatasi oleh adanya tannin yang merupakan senyawa kimia yang bersifat racun. Dalam jumlah kecil, tannin dipandang menguntungkan bagi ternak ruminansia karena dapat mencegah degradasi protein yang berlebihan oleh mikroorganisme rumen, tetapi kandungan tannin yang tinggi dapat mengganggu metabolisme protein dan karbohidrat sehingga dapat menurunkan penampilan ternak (Leng, 1997). Bentuk daun, bunga dan buah angsana dapat dilihat pada Gambar 1.

(a)

(b)

Gambar 1. Daun Angsana dan Bunga (a), Buah Angsana (b) Kandungan nutrisi angsana menurut analisa proksimat adalah sebagai berikut: protein 18,35%, serat kasar 24,12%, kalsium 1,02%, fosfor 0,86% dan kandungan tannin mencapai 1,15%. Menurut Widiyanto (1992), penggunaan tepung angsana dalam ransum akan meningkatkan konsumsi bahan kering yang dipengaruhi oleh peningkatan palatabilitas ransum.

4

Turi (Sesbania grandiflora) Tanaman turi hanya cocok pada daerah tropika. Tanaman turi termasuk legum dengan tipe daun majemuk sederhana dan memiliki bunga yang besar berwarna putih dan merah, berfungsi sebagai makanan ternak dan pupuk hijau. Tinggi tegak mencapai 12 m, toleran terhadap kekeringan hingga 7 bulan. Daunnya banyak digunakan sebagai pakan ternak dan mempunyai sifat toleran terhadap tanah dengan kadar garam tinggi (Rosa, 1998). Bentuk daun dan bunga turi dapat dilihat pada Gambar 2.

(a)

(b)

Gambar 2. Daun Turi (a) dan Bunga (b) Daun turi muda mengandung karbohidrat 42,30%, protein kasar mencapai 30,13% dan serat kasar 5,1% (Kareem dan Sundarajaj, 1967). Pemberian pada sapi umumnya 1.8 kg segar/hari. Batasan penggunaanya dikarenakan adanya kandungan antinutrisi berupa conavanine dan saponin. Gamal (Gliricidia sepium) Gamal merupakan legum pohon yang tinggi tegaknya mencapai 10 m, tipe daunnya majemuk sederhana dan memiliki bunga berbentuk kupu-kupu berwarna putih dan merah jambu. Tanaman ini toleran terhadap kekeringan hingga 8 bulan dan toleran terhadap tanah yang memiliki kadar garam yang tinggi (Rosa, 1998). Daun gamal digunakan sebagai hijauan pakan ternak. Daya cerna dari gamal berkisar antara 50-75%, dengan kandungan protein kasar 22-27%, serat kasar 14%, NDF 45% dan ADF 34%. Bentuk daun dan buah gamal dapat dilihat pada Gambar 3.

5

(a)

(b)

Gambar 3. Daun Gamal (a) dan Biji (b) Lamtoro (Leucaena leococephala) Tanaman lamtoro hanya tumbuh pada daerah tropis dan subtropis, tahan musim kering sampai 8 bulan bahkan 10 bulan, tidak tahan terhadap embun beku (Karti, 1998). Merupakan legum pohon yang memiliki tipe daun majemuk ganda. Banyak digunakan sebagai hijauan makanan ternak, peneduh dan tanaman hias (Skerman, 1977). Bentuk daun, bunga dan buah lamtoro dapat dilihat pada Gambar 4.

(a)

(b)

Gambar 4. Daun Lamtoro dan Bunga (a), Buah Polong Lamtoro (b) Kecernaan dari lamtoro berkisar antara 65-87% dengan kandungan protein kasar 25,9%, kalsium 2,36%, fosfor 0,23%. Lamtoro mengandung zat antinutrisi berupa tannin (10.15%) dan mimosin (3-5%) (Skerman,1977). Pengaruh mimosin pada ternak yaitu dapat menyebabkan kerontokan bulu dan mempengaruhi fetus pada ternak non ruminan (Karti, 1998). 6

Kaliandra (Calliandra calothyrsus) Kaliandra merupakan tanaman legum yang tinggi tegaknya umumnya mencapai 4-6 m. Memiliki tipe daun majemuk ganda dan berwarna hijau gelap. Tanaman ini dapat tumbuh pada periode musim kering 3-6 bulan tanpa kehilangan daunnya namun tidak tahan genangan. Tamanan ini dapat tumbuh pada tanah yang kurang subur karena adanya simbiosis yang menguntungkan antara mikroba rhizobium dan mikoriza. Bentuk daun dan buah polong kaliandra dapat dilihat pada Gambar 5.

(a)

(b)

Gambar 5. Daun Kaliandra (a) dan Buah Polong (b) Produksi hijauan dan dahan muda, menghasilkan bahan segar 46,2 ton/ha/tahun dengan kandungan protein 22% dan mengandung tannin cukup tinggi (1-3%) sehingga daya cernanya rendah (35-42%). Pemberian pada ternak tidak bermasalah, dari penelitian domba yang diberi hijauan kaliandra sebanyak 40-60% dari pakan menghasilkan respon pertumbuhan yang baik (Karti, 1998). Kandungan Anti Nutrisi Leguminosa Anti

nutrisi

pada

leguminosa

merupakan

faktor

pembatas

dalam

penggunannya sebagai pakan, karena sebagian besar dari zat tersebut bersifat racun bagi ternak. Secara alami, anti nutrisi tersebut terdapat dalam tanaman sebagai proteksi dari serangan hama. Tannin merupakan salah satu anti nutrisi yang sering terdapat dalam leguminosa (Leng, 1997), selain itu juga ada mimosin, asam sianida (pada lamtoro), saponin (turi), dan flavanol (gamal).

7

Tannin: merupakan senyawa polifenol yang terdapat alami dengan sifat utamanya dapat berikatan dengan protein. Menurut Prince et al. (1980), tannin memiliki beberapa sifat yang dapat bersifat sebagai anti nutrisi, yaitu rasa sepat dari tannin dapat menurunkan konsumsi ternak. Tannin juga dapat membentuk ikatan kompleks dengan protein dan zat makanan lainnya, dengan protein endogen dan dengan enzimenzim pencernaan. Penyerapan tannin dan hasil hidrolisanya dapat meracuni ternak dan mengganggu fungsi saluran pencernaan karena tanin dapat melukai saluran pencernaan. Tanin berpengaruh terhadap ternak terutama pada pakan yang mengandung tannin tinggi. Pada saat mastikasi tannin terikat dengan saliva dapat menjadikan pakan tidak palatabel sehingga dapat menurunkan konsumsi pakan (Makkar, 1993; Cheeke dan Shull, 1985). Lebih lanjut dijelaskan bahwa tanin dapat menonaktifkan enzim-enzim yang dihasilkan oleh mikroba dan dapat juga menimbulkan keracunan bagi mikroba (Makkar, 1993). Menurut McLeod (1974), tannin digolongkan menjadi dua golongan yaitu tanin terhidrolisis dan tanin terkondensasi. Tanin terhidrolisis merupakan golongan tanin yang sudah dihidrolisis menjadi gula sederhana dan asam fenolat. Sedangkan tanin terkondensasi adalah tanin yang terjadi karena kondensasi flavanol, dikenal sebagai proathocyanidins, tidak mudah dihidrolisis dan terdapat dalam bentuk yang sangat kompleks (Cheeke dan Shull, 1985). Mimosin: merupakan asam amino bebas yang sedikit larut dalam air. Suttie (1979) menyatakan bahwa kandungan mimosin dipengaruhi oleh varietas tanaman lamtoro dan bagian-bagian tanaman. Ternak ruminansia lebih tahan terhadap pengaruh mimosin dibanding ternak berlambung tunggal. Karena pada rumen terdapat bakteri yang mampu mengubah mimosin menjadi 3-hidroksi-4-1 (H)-piridon atau DHP yang kurang beracun. Beberapa penelitian menyatakan bahwa untuk menurunkan daya racun mimosin dari lamtoro adalah dengan memanaskan, menghancurkan jaringan daun lamtoro, menambahkan garam besi sulfat dan pencucian. Matsumoto et al. (1951) menyatakan bahwa pemanasan daun lamtoro pada suhu 90oC selama 20 jam mampu menurunkan pengaruh racun mimosin yang dibuktikan dengan memberikan daun lamtoro yang telah dipanaskan pada tikus putih tidak menimbulkan gejala keracunan. 8

Kandungan Mineral Legum Pohon Faktor pembatas produksi ruminansia di daerah tropis kekurangan nutrisi terutama defisien energi dan protein. Dalam keadaan tersebut produksi dan reproduksi terlihat tidak normal meskipun bahan makanan diberikan dalam jumlah cukup

banyak.

Keadaan

ini

biasanya

diduga

defisiensi,

kelebihan

atau

ketidakseimbangan mineral dalam bahan pakan, khususnya hijauan yang merupakan sumber makanan utama bagi ruminansia. Faktor yang mempengaruhi kebutuhan mineral adalah (1) jenis dan level produksi (2) level dan bentuk ikatan (3) bangsa ternak (4) proses adaptasi (5) tingkat konsumsi mineral (6) umur ternak (7) adanya hubungan dengan zat makanan lain (Parakasi, 1999). Secara umum mineral dipergunakan dalam memelihara, pertumbuhan, dan pergantian sel–sel dan jaringan yang rusak dalam tubuh ternak (Chase dan Sniffen, 1998). Berdasarkan jumlah yang dibutuhkan mineral dibagi atas mineral makro, mikro dan trace element. Mineral makro antara lain kalsium (Ca), magnesium (Mg), fosfor (P), kalium (K), sulfur (S), natrium (Na) dan klor (Cl). Mineral ini dibutuhkan dalam jumlah yang cukup, namun seringkali terjadi defisiensi yang nantinya berakibat fatal pada ternak. Kandungan mineral pakan sangat bervariasi yang tergantung pada berbagai faktor diantaranya spesies, tipe tanah, iklim dan umur tanaman (Underwood, 1981). Pada umumnya kandungan mineral seperti Ca dan Mg pada legum lebih tinggi dari rumput (Serra et al., 1995). Legum pohon dapat dijadikan sebagai sumber mineral terutama Ca bagi ternak ruminansia. Di daerah Nusa Tenggara, kandungan mineral hijauan sangat tergantung pada ketersediaan air. Pada musim hujan kualitas hijauan relatif baik sehingga kandungan mineralnya lebih baik, namun pada musim kering terjadi hal yang sebaliknya. Kondisi ini juga terjadi di Pulau Jawa bahwa kandungan mineral makro pada hijauan sangat bervariasi seperti yang dilaporkan Kawashima et al., (1989) pada tabel 2. Tabel 2. Kandungan Mineral Makro pada Hijauan di Beberapa Lokasi di Pulau Jawa (%BK) Lokasi Ca P Mg K Na Jonggol 0,61 0,11 0,2 1,59 0,32 Malang 0,44 0,24 0,3 2,09 0,06 Mojokerto 0,65 0,27 0,46 2,11 0,11 9

Ketersediaan Mineral Makro dalam Hijauan Secara umum spesies legum mengandung mineral makro lebih tinggi dari pada rumput. Di daerah tropik kandungan mineral umumnya lebih rendah dibandingkan di daerah temperate. Konsentrasi rata–rata mineral Ca pada legum untuk daerah tropik dan temperate masing–masing 19,1 dan 14,2 g/kg BK, sedangkan untuk rumput masing–masing 3,8 dan 3,7 g/kg BK. Demikian juga konsentrasi Na pada hijauan di daerah tropik 50% lebih rendah dari pada di daerah temperate. Kecukupan kalsium pada ternak yang digembalakan umumnya dapat terpenuhi, khususnya untuk pastura yang mengandung legum. Dengan demikian, penambahan hujauan pohon pada pastura dianjurkan untuk meningkatakan ketersediaan mineral makro. Kandungan Ca pada bagian daun hijauan dua kali lebih tinggi dari pada bagian batang. Penyerapan Ca umumnya terjadi di usus halus, namun ada sebagian di dalam rumen (Yano et al, 1991). Penyerapan Ca (Calcium absorbability = ACa) untuk setiap sumber hijauan berbeda-beda, dengan rata–rata 0,68 (AFRC, 1991). Pada beberapa hijauan nilai ACa lebih rendah disebabkan oleh keberadaan kalsium oksalat yang sulit dicerna didalam rumen (Ward et al., 1979). Bamualim (2004) melaporkan bahwa di daerah Timor kandungan mineral fosfor legum adalah 1,5%, relatif lebih tinggi dibandingkan dengan kebutuhan seekor ternak, namun demikian pada musim kemarau kandungannya relatif rendah dan akan meningkat kembali pada musim hujan. Defisiensi ini terjadi juga pada mineral Na, Cu dan Se. Mineral Ca dan P Kalsium (Ca) adalah mineral yang paling banyak dibutuhkan di dalam tubuh. Secara kuantitatif fungsi utama kalsium adalah pada pembentukan tulang. Tulang tidak saja berfungsi untuk menunjang struktur komponen tubuh tetapi juga mempunyai fungsi fisiologis penting dalam jaringan dalam menyediakan kalsium untuk mempertahankan sistem homeostasis tubuh (Piliang, 2001). Fungsi lain dari kalsium yaitu untuk perkembangan gigi, produksi air susu, transmisi impuls saraf, pemeliharaan eksitabilitas urat daging yang normal (bersama-sama dengan K dan Na), regulasi denyut jantung, geraka-gerakan urat daging, pembekuan darah dan mengaktifkan serta menstabilkan beberapa enzim (Parakkasi, 1999). Defisiensi 10

kalsium pada ternak dapat menyebabkan riketsia, osteoporosis, osteomalasia, pertumbuhan terlambat, hipertropi kelenjar parathiroid, dan milk fever (Underwood, 1981). Mineral P sangat penting peran biokimia dan fiologisnya. Fosfor dideposit dalam tulang dalam bentuk kalsium-hidroksi appetite {Ca10(PO4)6(OH)2)}. Fosfor merupakan komponen dari fosfolipid yang mempengaruhi permiabilitas sel; juga merupakan komponen dari meilin pembungkus urat saraf; banyak transfer energi dalam sel yang melibatkan ikatan fosfat yang kaya energi dalam ATP; fosfor memegang peran dalam sistem buffer dari darah; mengaktifkan beberapa vitamin B (tiamin, niasin, piridoksin, riboflavin, biotin, dan asam pantotenik) untuk membentuk koenzim yang dibutuhkan dalam proses fosforilasi awal, fosfor juga merupakan bagian dari matrik dNA dan RNA (Parakkasi, 1999). Fungsi fosfor antara lain untuk pembentukan dan pemeliharaan tulang dan gigi, sekresi normal air susu, aktivator enzim–enzim dan metabolisme asam amino (Piliang, 2001). Defisien Fosfor pada ternak dapat menyebabkan riketsia, sifat memakan makanan yang aneh–aneh (pica appetite), menurunkan reproduksi dan ukuran tubuh kecil (Underwood, 1981). Durand dan Kawashima (1980) menyatakan bahwa, didalam rumen mineral dipergunakan untuk berbagai aktifitas antara lain untuk pembentukan sel, aktivitas selulolitik dan pertumbuhan mikroba. Disamping itu, mineral juga dipergunakan dalam mengatur tekanan osmotik, buffering capacity, potensial reduksi dan kelarutan di dalam rumen. Cairan Rumen Cairan rumen yang merupakan sumber inokula yang dapat dengan cepat menghancurkan plasmalema dan banyak struktur sitoplasma dari sel tanaman (Cheng et al., 1980). Penghuni terbesar dalam cairan rumen adalah bakteri yaitu 1010– 1012/ml cairan rumen dan populasi terbesar kedua diduduki oleh protozoa yang dapat mencapai 105 – 106 sel/ml, namun demikian karena ukuran tubuhnya lebih besar dari bakteri maka biomassanya ternyata cukup besar yakni mengandung lebih kurang 40% total nitrogen mikroba rumen (Ogimoto dan Imai, 1985).

11

Teknik In vitro Untuk mempelajari pemanfaatan bahan makanan pada ruminansia, ada dua teknik yang dapat digunakan yaitu in vitro dan in vivo (Tilley dan Terry, 1963). Teknik in vitro tergantung dari mikroba yang diambil dari hewan. Kecernaan secara in vitro memiliki keuntungan antara lain pelaksanaannya mudah, mengurangi resiko kematian ternak, lebih ekonomis, mewakili penampilan ternak. Kelemahannya adalah medium kecernaan pada in vitro tidak mungkin sama dengan kecernaan in vivo yang langsung menggunakan ternak. Syarat–syarat yang perlu diperhatikan dalam membuat teknik in vitro adanya larutan penyangga (buffer) dan media makanan. Temperatur optimumnya 390C, dengan pH optimum 6,7– ,0. Metabolisme Rumen Bahan makanan yang masuk ke dalam alat pencernaan akan mengalami perubahan fisik dan kimia. Menurut Sutardi (1980) proses pencernaan pada ternak ruminansia terjadi secara mekanis (di dalam mulut), secara fermentatif (oleh enzim– enzim yang berasal dari mikroba rumen dan secara hidrolitis (oleh enzim–enzim pencernaan hewan induk semang). Organ pencernaan ternak ruminansia terdiri atas mulut, perut, usus halus, dan organ pencernaan bagian belakang. Perut ternak ruminansia terdiri atas 4 bagian, yaitu rumen (perut beludru), retikulum (perut jala), omasum (perut buku) dan abomasum (perut sejati) (Arora, 1989). Rumen adalah suatu ekosistem yang kompleks yang dihuni oleh beranekaragam mikroba anaerob. Mikroba tersebut terdiri atas bakteri, protozoa dan fungi yang memegang peranan penting dalam pencernaan pakan. Bakteri merupakan penghuni terbesar dalam rumen yang kepadatannya mencapai 1010–1012/ml cairan rumen, diikuti protozoa 105–106/ml cairan rumen (Ogimoto dan Imai, 1981). Adanya mikroba dalam rumen menyebabkan ruminansia memiliki kemampuan untuk mencerna Nitrogen Bukan Protein (BNP) dan karbohidrat struktural tanaman (selulosa dan hemiselulosa) melalui proses fermentasi menjadi asam lemak terbang (VFA) (Demeyer, 1981), sedangkan protein terfermentasi menjadi amoniak. Pencernaan mikrobial pada ruminansia memegang peranan yang sangat penting, karena diperkirakan sekitar 70–85% dari bahan kering pakan yang biasa dikonsumsi oleh ternak dapat dicerna dalam rumen (Benerjee, 1978). Pencernaan fermentatif pada ternak ruminansia terjadi di dalam rumen berupa perubahan senyawa–senyawa 12

tertentu menjadi senyawa lain yang sama sekali berbeda dari molekul zat asalnya (Amin,1997). Hasil pencernaan fermentatif berupa VFA, NH3, dan air diserap sebagian di rumen dan sebagian lagi di omasum. Selanjutnya pakan yang tidak dicerna mengalir ke abomasum dan dicerna secara hidrolitik oleh enzim–enzim pencernaan (Sutardi, 1977). Kontribusi proses fermentatif cukup besar, tetapi pada tahap tersebut sebagian energi pakan ada yang terbuang sebagai gas metan dan panas fermentasi. Disamping VFA dan NH3, fermentasi dalam rumen juga menghasilkan gas CO2, H2, dan metan yang dikeluarkan dari rumen melalui proses eruktasi (Arora, 1989). Peranan mikroba dalam proses fermentasi sangat besar. Sebagian besar (7080%) suplai energi pada ternak ruminansia berasal dari proses fermentasi di dalam rumen, sehingga kebutuhan mikroba harus benar–benar diperhatikan. Kelarutan mineral baik langsung maupun tidak langsung akan mempengaruhi produk fermentasi. Mikroba rumen mempunyai peranan penting dalam utilisasi sulfur pada sapi perah (Kandylis, 1984). Penambahan sulfur pada rumen yang mengandung urea dapat meningkatkan retensi nitrogen. Sulfur organik dapat digunakan oleh mikroba untuk sintesis asam amino. Volatil Fatty Acids (VFA) Volatil Fatty Acids (VFA) yang biasa disebut asam lemak terbang juga merupakan salah satu produk fermentasi di dalam rumen. Asam lemak terbang merupakan produk fermentasi dari karbohidrat. Konsentrasi VFA cairan rumen dapat digunakan sebagai salah satu tolak ukur fermentabilitas pakan dan sangat erat kaitannya dengan aktivitas mikroba rumen (Sewet, 1997). Mikroba rumen menghidrolisis selulosa menjadi monosakarida yang kemudian membentuk VFA melalui fermentasi. VFA yang dihasilkan adalah asam asetat, propionat dan butirat. Asam lemak yang lain terdapat didalam rumen dalam jumlah yang kecil adalah asam isobutirat, isovalerat, dan lain-lain. Banyaknya VFA yang dihasilkan di dalam rumen sangat bervariasi tergantung pada jenis ransum yang dikonsumsi (MC Donald et al. 1988). Konsentrasi VFA total yang layak bagi kelangsungan hidup ternak adalah 80–160 mM dengan titik optimumnya 110 mM (Suryapratama, 1999).

13

Amonia (NH3) Amonia (NH3) merupakan salah satu hasil perombakan protein oleh mikroba rumen. Konsentrasi NH3 cairan rumen akan meningkat jika populasi protozoa meningkat karena protozoa ikut berperan dalam proses daur ulang nitrogen (Sewet, 1997). Protozoa akan mencerna protein bakteri yang dimangsanya kemudian dikeluarkan kembali dalam sistem rumen dalam bentuk peptida, asam-asam amino dan amonia. Produksi amonia tergantung pada kelarutan protein ransum, jumlah protein ransum, lamanya makanan di dalam rumen dan pH rumen (Orskov, 1982). Sebagian besar mikroba rumen menggunakan NH3 untuk perbanyakan dirinya terutama dalam proses sintesis selnya (Sutardi, 1979). Konsentrasi optimum NH3 untuk menunjang pertumbuhan mikroba rumen berkisar 85–300 mg/l atau 6–21 mM (McDonald et al., 1995), dengan titik optimum 8 mM (Suryapratama, 1999).

14

METODE Lokasi dan Waktu Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Ilmu Nutrisi Ternak Perah, Departemen Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor mulai bulan Januari sampai September 2005. Penelitian ini terdiri dari tiga tahap pengerjaan yaitu laju degradasi bahan kering legum pohon, pengujian kelarutan mineral kalsium dan fosfor, dan fermentabilitas legum pohon di dalam rumen (produksi VFA dan NH3). Materi 1. Pakan Percobaan Legum pohon yang mempunyai potensi sebagai sumber mineral makro yang akan digunakan dalam penelitian ini adalah angsana (Pterocarpus indicus), turi (Sesbania glandiflora), gamal (Gliricidia sepium), lamtoro (Leucaena leucocephala), dan kaliandra (Calliandra calothyrsus). Bagian yang digunakan dari legum pohon tersebut adalah daunnya. Proporsi daun yang tua lebih banyak digunakan dari pada daun yang muda (pucuk daun). Legum pohon yang digunakan didapatkan di daerah Bogor. Daun legum pohon dikeringkan dibawah sinar matahari dan digiling halus. Daun yang sudah digiling digunakan untuk inkubasi dalam cairan rumen. 2. Cairan Rumen Cairan rumen yang digunakan dalam penelitian ini adalah cairan rumen domba yang diambil dari Rumah Potong Hewan (RPH) di Kecamatan Ciampea. Cairan rumen dimasukkan kedalam termos. Lamanya cairan rumen di dalam termos selama perjalanan dari RPH ke tempat penelitian kurang lebih 30 menit. Prosedur 1. Laju Degradasi Bahan Kering Legum Pohon Parameter yang diukur dalam penelitian ini adalah laju degradasi pakan dari masing–masing legum. Pengukuran laju degradasi dilakukan dengan menggunakan teknik in vitro yang dimodifikasi. Sebanyak satu gram sampel dari berbagai jenis legum (angsana, turi, gamal, lamtoro, dan kaliandra) dimasukkan ke dalam tabung 15

fermentor, kemudian ditambahkan 8 ml cairan rumen dan 12 ml larutan buffer serta dialiri gas CO2 selama 30 detik. Tabung fermentor ditutup dengan karet berventilasi dan dimasukkan dalam shaker bath pada suhu 390C dengan waktu inkubasi 0, 3, 6, 9, 12,

24, 48, dan 72 jam, dengan demikian tabung fermentor yang digunakan

sebanyak 72 buah (dua waktu inkubasi x (lima jenis legum + satu blanko) duplo) x tiga ulangan). Setelah inkubasi disentrifuge pada kecepatan 3.000 rpm selama 15 menit sehingga residu dan supernatannya terpisah. Sampel residu dikeringkan dalam oven untuk diketahui bahan keringnya, sedangkan supernatan digunakan untuk analisis VFAtotal dan NH3. Untuk menghitung laju degradasi legum dalam rumen digunakan model matematik yang dikemukakan oleh Ørskov dan McDonald (1979), yaitu : Y = a + b( 1 – e - ct) Keterangan : Y = degradasi pakan (%BK) a = degradasi pakan dari fraksi terlarut b = degradasi pakan selama fermentasi c = laju degradasi pakan (%/jam) t = waktu inkubasi (jam) 2. Pengujian Kelarutan Mineral Makro dalam Rumen dengan Teknik in Vitro Percobaan ini dilakukan untuk mengetahui kelarutan mineral makro legum pohon dalam rumen dengan menggunakan teknik in vitro. Sampel yang telah diinkubasi seperti prosedur (1), setelah ketahui bahan keringnya, diabukan dengan menggunakan metode pengabuan basah (wet ashing). Mineral yang dianalisis adalah kalsium (Ca) dan Phosphor (P). Analisis mineral dilakukan dengan menggunakan Atomic Absorption Spectrofotometric (AAS). Kandungan residu mineral setiap sampel dalam tabung fermentor memperlihatkan proporsi mineral yang terlarut dalam cairan rumen. Laju kelarutan mineral dalam rumen tersebut dihitung dengan model : Y = a + b (1 – e –ct) Y = kelarutan mineral dalam cairan rumen (mg/gram sample) a = kelarutan awal pakan(mg/gram sample) 16

b = kelarutan mineral selama dalam cairan rumen(mg/gram sample) c = laju kelarutan mineral(mg/jam) t = waktu inkubasi (jam) Kelarutan mineral dihitung berdasarkan jumlah mineral dalam bahan pakan dikurangi dengan mineral yang tersisa pada bahan pakan yang telah diinkubasi. Pengukuran kadar mineral tersebut dilakukan dengan cara pengabuan basah (wet ashing) berdasarkan prosedur Reitz et al. (1960). Sampel yang telah diinkubasi secara in vitro dimasukkan kedalam tabung Erlenmeyer dan ditambahkan lima ml HNO3, lalu dibiarkan selama satu jam sampai menjadi bening atau tidak ada buih. Labu Erlenmeyer dipanaskan pada hot plate selama kurang lebih empat jam. Setelah dingin ditambahkan 0.4 ml H2SO4 pekat, labu Erlenmeyer dipanaskan kembali. Pada saat terjadi perubahan warna volume akan berkurang diteteskan larutan HClO4 dan HNO3 (perbandingan 2:1). Perubahan warna dimulai dari warna coklat menjadi kuning dan bening. Setelah bening, dipanaskan kembali selama 15 menit, lalu ditambahkan dengan dua ml aquades dan 0.6 ml HCl pekat dan dipanaskan kembali hingga larut. Setelah didinginkan, ditambahkan dengan aquades hingga 100 ml. Pengukuran kadar Phospor dilakukan dengan menggunakan spektrofotometer (UV Visible) dengan panjang gelombang 660 nm, sedangkan untuk analisis kalsium dibaca konsentrasinya pada Spektrofotometer serapan atom (AAS). a. Prosedur pengenceran untuk analisa mineral Ca Pengenceran dilakukan untuk menurunkan kadar mineral dalam sampel supaya tidak melebihi standar yang sudah ditetapkan. Langkah-langkah pengenceran adalah sebagai berikut: sebanyak 0.5 ml larutan sampel (sesuai dengan tinggi rendahnya kadar kalsium) yang sudah disiapkan dengan metode pengabuan basah dilarutkan dengan aquades sampai menjadi lima ml pada tabung reaksi dengan menggunakan pipet volumetrik, kemudian ditambahkan larutan lantan sebanyak 0.05 ml yang berfungsi sebagai pengikat terhadap ion-ion pengganggu. Larutan sampel diaduk dengan menggunakan alat pengaduk vortex selama beberapa detik. Sampel siap untuk dianalisa jumlah kandungan mineral kalsium dengan menggunakan mesin Atomic Absorption Spectrofotometric Flame Emission merk Shimidzu tipe AA-160.

17

b. Prosedur pengenceran untuk analisa mineral P Sebelum pengukuran phospor, terlebih dahulu dibuat larutan standar dengan konsentrasi 0, 2, 3, 4 dan 5 ppm. Larutan standar dibuat dengan beberapa tahap. Larutan A (NH4)6Mo7O24) 10% = Ammonium molibdat 10%. Sebanyak sepuluh gram ammonium molibdat ditambah dengan 60 ml aquades dan 28 ml H2SO4 pekat secara bertahap, ditambahkan kembali aquades hingga 100 ml. Larutan B dibuat dengan memasukkan sepuluh ml larutan A ke dalam labu takar 100 ml, kemudian ditambahkan 60 ml aquades dan 5 gram FeSO4.7H2O. Larutan B dibuat menjadi 100 ml dengan menambahkan aquades. Larutan B digunakan dalam pembuatan larutan standar seperti terlihat pada Tabel 3. Tabel 3. Larutan Standar Mineral Fosfor Konsentrasi ppm 0 2 3 4 5

KH2PO4 (ml) 0,4 0,6 0,8 1,0

Larutan B (ml) 2,0 2,0 2,0 2,0 2,0

H2O 3,0 2,6 2,4 2,2 2,0

Sampel yang telah diabukan diambil 0,5 (sesuai dengan tinggi rendahnya phospor dalam sampel), ditambahkan dua ml larutan B dan aquades hingga menjadi 5.0 ml. Selanjutnya dikocok dengan menggunakan vortex agar dapat homogen. Sampel dan larutan standar siap untuk dianalisis kadar phospornya dengan menggunakan spektrofotometer dengan panjang gelombang 660 nm. 3. Pengukuran Produksi VFAtotal dan NH3 Kecukupan mineral makro dalam rumen dapat dilihat dari kemampuan mikroba dalam memfermentasi pakan. Mineral juga membantu dalam menjaga kondisi pH optimal rumen. Untuk melihat hubungan kelarutan mineral makro dengan fermentabilitas hijauan dalam rumen dilakukan pengukuran kadar asam lemak terbang (Volatile Fatty Acids, VFA) dan amonia secara in vitro. Analisis VFAtotal dan NH3 menggunakan supernatan yang telah dipisahkan dari subtrat selama inkubasi 12 dan 24 jam.

18

a. Teknik Analisis VFA Kadar VFAtotal diukur dengan menggunakan Steam Destilation Method. Sebanyak lima ml supernatan sampel (yang diperoleh dari hasil fermentasi secara in vitro selama 12 dan 24 jam) dimasukkan dalam tabung destilasi Markham dan ditambahkan satu ml H2SO4 15%. Hasil destilasi ditampung dalam erlenmeyer yang telah diisi lima ml NaOH 0,5 N hingga destilat mencapai 300 ml. Destilat yang ditampung diberi 2 – 3 tetes indikator phenopthalein kemudian dititrasi dengan HCl 0,5 N hingga terjadi perubahan warna dari pink menjadi bening. Kadar VFAtotal dihitung dengan rumus: VFAtotal = (a – b ) x N-HCl x 1000/5 Keterangan : VFA total dalam mmol a

: volume titran HCl untuk blanko (ml)

b

: volume titran sampel (ml)

b. Teknik Analisis NH3 Kadar amonia diukur dengan metode Micro Diffusion Conway. Sebanyak satu ml supernatan ditempatkan disalah satu ruang bersekat cawan conway dan disisi yang lain ditambahkan satu ml Na2CO3 jenuh, sedangkan dibagian tengah cawan ditempatkan satu ml asam borat yang beri indikator metil merah dan brom kresol biru. Pada bagian pinggir cawan diolesi vaselin kemudian ditutup rapat. Cawan digerakkan perlahan agar supernatan bercampur dengan Na2CO3 jenuh kemudian diinkubasikan selama 24 jam pada suhu ruangan. Amonia yang keluar akan diikat oleh asam borat, lalu dititrasi dengan H2SO4 0.005 N sampai terjadi perubahan warna biru menjadi merah jambu (pink). Kadar amonia dihitung dengan rumus : NH3 = [(Vs – Vo) x N-H2SO4 x 1000], Keterangan : NH3 dalam mmol Vs

: volume titran sampel

Vo

: adalah volume titran blanko

19

Analisis Data Rancangan percobaan yang digunakan dalam penelitian in vitro adalah Rancangan Acak kelompok (RAK) 5 x 3, yang terdiri dari 5 perlakuan legum yang berbeda (angsana, turi, gamal, lamtoro dan kaliandra) dan 3 kelompok berdasarkan cairan rumen yang berbeda. Adapun model matematik rancangan tersebut adalah sebagai berikut : Yij= µ + τi +βj + εij Yij =

Nilai pengamatan dari perlakuan ke-i dalam kelompok ke- j

µ = Nilai tengah populasi τi = Pengaruh aditif dari perlakuan ke-i (jenis legum) βj = Pengaruh aditif dari kelompok ke- j (periode cairan rumen) εij = Pengaruh galat percobaan dari perlakuan ke-i pada kelompok ke-j Data yang diperoleh dianalisis dengan menggunakan sidik ragam (ANOVA) dan untuk mengetahui perbedaan antar perlakuan dilakukan uji kontras ortogonal mengikuti Steel dan Torrie (1991). Hubungan antara laju degradasi bahan kering legum pohon dalam rumen dengan produksi VFA dan NH3 dilakukan dengan Uji Korelasi menggunakan SPSS 11.0.

20

HASIL DAN PEMBAHASAN Kandungan Nutrisi Legum Pohon Legum pohon merupakan hijauan pakan yang dikenal sebagai sumber protein. Namun, dengan melihat kandungan mineralnya yang tinggi, legum pohon dapat dimanfaatkan sebagai sumber mineral makro. Kadungan mineral seperti Ca dan Mg pada legum pohon lebih tinggi dari rumput (Serra et al., 1996). Kualitas hijauan pakan ditentukan oleh komposisi kimia hijauan. Hasil analisa komposisi kimia pakan yang digunakan dapat dilihat pada Tabel 4. Tabel 4. Kandungan Nutrisi Beberapa Jenis Legum Pohon (%BK) Nutrien Abu Protein Kasar Serat Kasar Lemak Kasar Beta-N Ca P Ca : P

Legum Angsana

Turi

Gamal

Lamtoro

Kaliandra

6,27 20,15 23,25 1,33 33,13 1,02 0,31 3:1

7,60 20,99 21,71 1,33 28,57 1,27 0,37 3:1

7,62 18,58 19,74 2,07 38,53 1,45 0,27 5:1

7,24 22,76 18,47 3,02 37,76 1,74 0,35 5:1

4,46 18,70 19,46 1,45 42,93 0,95 0,25 4:1

Keterangan: Hasil analisis Laboratorium Ilmu dan Teknologi Pakan

Legum pohon yang digunakan dalam penelitian ini memiliki kandungan protein kasar 18,58 sampai 22,76%BK. Lamtoro memiliki kandungan protein kasar (PK) yang lebih tinggi dan serat kasar (SK) yang lebih rendah dibandingkan dengan legum yang lain, tetapi rasio Ca : P sangat besar (5:1). Rasio Ca : P dalam ransum sangat penting dibandingkan dengan jumlahnya, karena kedua mineral tersebut saling mempengaruhi. Rasio Ca : P yang direkomendasikan adalah (1:1) sampai (2:1), tetapi pada umumnya ternak ruminansia lebih tahan terhap rasio Ca : P yang luas dibanding hewan–hewan monogastrik (Parakkasi, 1999). Rasio Ca : P legum angsana lebih baik diantara legum yang lain (3:1), tetapi kandungan serat kasar angsana lebih tinggi yaitu 23,25 %BK. Kandungan serat kasar pada pakan dapat mempengaruhi kecernaan pakan.

21

Degradasi Pakan Tingkat degradasi pakan dapat digunakan untuk mengetahui tinggi rendahnya kualitas pakan. Jumlah pakan yang didegradasi dapat menunjukkan porsi pakan yang dapat dicerna. Laju degradasi legum pohon dapat dilihat pada Tabel 5. Tabel 5. Laju Degradasi Beberapa Legum Pohon (%BK) Waktu inkubasi (jam) 0 3 6 9 12 24 48 72 kinetik model a b a+b c

Angsana 5,00 9,59C 13,17B 15,98B 18,19B 23,25B 26,11B 26,65C

Turi 12,73 15,84A 18,40A 20,53A 22,32A 28,49A 31,84A 34,31B

Legum Gamal 8,63 10,83B 12,78B 14,51B 16,04B 20,64B 25,41B 27,52C

5,00 21,79 26,79B 0,08A

12,73 31,75 44,48A 0,05A

8,63 21,47 30,10A 0,04A

Lamtoro Kaliandra 9,91 5,70 11,04B 5,34D 12,08C 6,02D C 13,06 6,67D C 13,97 7,30D 17,03C 9,57D C 21,08 13,49D D 23,39 17,14D 9,91 16,54 26,45B 0,02B

5,70 13,49 19,19C 0,02B

Keterangan: superkrip yang berbeda pada baris yang sama menunjukkan berbeda sangat nyata (P<0,01) a : fraksi terlarut (%BK) b : materi tidak larut tetapi bisa difermentasi(%BK) (a+b) : potensial degradasi(%BK) c : laju degradasi (jam-1)

Tingkat degradasi mulai menunjukkan perbedaan setelah inkubasi selama tiga jam. Tingkat degradasi yang paling tinggi selama inkubasi tiga jam adalah daun turi sedangkan yang paling rendah adalah daun kaliandra. Tingkat degradasi daun angsana selama inkubasi tiga jam lebih rendah dari daun turi tetapi lebih tinggi dari tingkat degradasi daun gamal dan lamtoro. Tingkat degradasi selama inkubasi 6 sampai 48 jam dimulai dari yang tertinggi sampai terendah adalah turi > gamal dan angsana > lamtoro > kaliandra. Tingkat degradasi lamtoro lebih rendah karena lamtoro dan kaliandra mengandung tannin yang lebih tinggi. Hal ini sesuai dengan pernyataan Karti (1998), bahwa kaliandra mengandung tannin yang cukup tinggi (1– 3 %) sehingga daya cernanya rendah. Lamtoro mengandung zat anti nutrisi berupa tannin (10,15%) dan mimosin (3–5%) dari bahan kering. Kecernaan lamtoro berkisar antara (65–87%) (Skerman,1977). 22

Daun turi memiliki tingkat degradasi 6,32 % lebih tinggi dari daun lamtoro dan 12,38% dari daun kaliandra selama inkubasi enam jam. Tingkat degradasi daun lamtoro lebih rendah 8,35% dari daun turi, 4,22% dari daun angsana dan 2,07% dari daun gamal, sedangkan tingkat degradasi kaliandra lebih rendah 15,02% dari daun turi, 10,89% dari daun angsana dan 8,74% dari daun gamal selama inkubasi 12 jam. Hal ini sesuai dengan pernyataan Khamseekhiew et al., (2001) bahwa degradasi bahan kering pada gamal lebih tinggi dari lantoro pada periode inkubasi di atas 6 jam. Selama inkubasi 24 jam tingkat degradasi lamtoro lebih rendah 11,46% dari daun turi, 6,22% dari daun angsana dan 3,61% dari daun gamal. Demikian pula kaliandra memiliki tingkat degradasi 13,68%, 18,92% dan 11,07% lebih rendah dari daun angsana, turi dan gamal. Penambahan waktu inkubasi dari 12 jam hingga 24 jam dapat meningkatkan nilai tercerna pakan dengan rataan mencapai 4,23%. Daun angsana dan gamal memiliki tingkat degradasi yang lebih tinggi walaupun kandungan serat kasarnya juga tinggi. Hal ini sangat bertolak belakang dengan daun lamtoro dan kaliandra yang kandungan serat kasarnya lebih rendah namun tinggkat degradasinya juga rendah. Rendahnya tingkat degradasi daun lamtoro dan kaliandra disebabkan adanya zat anti nutrisi berupa mimosin dan tannin yang dapat melindungi lamtoro dan kaliandra dari mikroba yang akan mencernanya selama inkubasi. Fraksi terlarut (a) adalah kandungan bahan pakan yang dapat larut dalam air dan dapat dicerna tanpa proses fermentasi seperti glukosa. Materi yang tidak larut tetapi dapat didegradasi dalam waktu tertentu disimbolkan (b). Potensial degradasi merupakan jumlah dari degradasi fraksi terlarut dan materi yang tidak terlarut (a+b). Jumlah pakan yang didegradasi setiap satuan waktu disebut laju degradasi (c). Degradasi fraksi terlarut (a) kelima jenis legum tersebut tidak berbeda. Sama halnya dengan nilai fraksi terlarut (a) nilai fraksi tidak larut tetapi masih bisa difermentasi (b) kelima jenis legum tersebut juga tidak menunjukkan perbedaan yang nyata (P>0.05). Nilai fraksi tidak larut (b) daun kaliandra lebih rendah dibandingkan dengan nilai b pada daun legum lainnya. Hal ini mengindikasikan bahwa potensi substrat yang akan terfermentasi pada kaliandra tidak akan berperan signifikan dalam nilai kelarutan mineral yang dikandungnya.

23

Potensial degradasi (a+b) kelima jenis legum tersebut sangat berbeda nyata (P<0.01). Daun turi dan gamal memiliki nilai potensial yang lebih tinggi, sedangkan daun legum yang memiliki nilai potensial degradasi yang rendah adalah angsana dan kaliandra. Laju degradasi (c) daun angsana, turi dan gamal sangat berbeda dengan laju degradasi daun lamtoro dan kaliandra. Laju degradasi (c) daun lamtoro dan kaliandra lebih rendah karena lamtoro dan kaliandra mengandung mimosin dan tannin yang menghambat pencernaan oleh mikroba selama inkubasi dalam cairan rumen. Kelarutan Mineral Mineral merupakan elemen–elemen atau unsur kimia selain dari karbon, hidrogen dan nitrogen (Piliang, 2001). Mineral makro (Ca dan P) yang terlarut dan yang tidak terlarut dapat dilihat pada Tabel 6. Tabel 6. Kelarutan Mineral Selama Inkubasi 12 dan 24 Jam (mg/kg BK Sampel) Legum Angsana Turi Gamal Lamtoro Kaliandra 12 Jam Ca terlarut -0,65A -0,83A -2,09B -2,91B -2,68B D C B A tidak terlarut 12,80 15,34 16,54 19,73 12,09D P

terlarut tidak terlarut

Ca terlarut tidak terlarut P

terlarut tidak terlarut

-5,80A 7,90D

-7,40B 10,27B

-7,44B 9,31C

-10,07C 12,12A

-7,37B 8,74E

1,92 10,24C

24 Jam 1,29A 13,21B

0,96A 13,48B

-0,15B 16,96A

-0,30B 9,71C

5,33B 6,83D

2,98C 11,51A

6,86A 7,58C

4,75B 12,06A

0,02D 9,39B

A

Keterangan: superkrip yang berbeda pada baris yang sama menunjukkan berbeda sangat nyata (P<0,01)

Nilai kelarutan Ca dan P dalam cairan rumen berbeda untuk setiap jenis daun legum. Selama inkubasi 12 jam kandungan Ca tidak larut yang tertinggi terdapat pada lamtoro. Jumlah Ca terlarut selama inkubasi 12 jam pada masing–masing legum bernilai negatif. Hal tersebut menunjukkan bahwa jumlah Ca yang tidak larut lebih besar dibandingkan jumlah Ca yang terdapat dalam pakan. Hal ini bisa terjadi pada saat inkubasi selama 12 jam mikroba sedang aktif mencerna daun legum tersebut, 24

sehingga Ca yang terdapat dalam daun mengalami proses mobilisasi menjadi Caorganik yakni terikat dalam sel mikroba. Dengan demikian jumlah Ca yang tidak larut lebih tinggi dibandingkan jumlah Ca dalam pakan. Akibatnya jumlah Ca yang terdapat larutan bernilai negatif. Tidak jauh berbeda dengan Ca yang tidak terlarut, P yang tidak terlarut tertinggi juga terdapat pada daun lamtoro, dan sedikit lebih rendah dibawahnya adalah daun turi. P terlarut selama inkubasi 12 jam juga bernilai negatif. Hal tersebut karena sifat mineral P yang sangat mobile. Kondisi ini tidak berbeda dengan yang terjadi pada mineral Ca. Mineral P mengalami mobilisasi dan terikat oleh mikroba menjadi P-organik atau mineral P diikat oleh mineral Ca yang pada saat itu menjadi Ca-organik. Nilai kelarutan Ca dan P dapat terlihat setelah inkubasi 24 jam. Kelarutan Ca daun angsana, turi dan gamal sangat berbeda dengan lamtoro dan kaliandra. Kelarutan Ca lamtoro dan kaliandra masih bernilai negatif. Kelarutan mineral P kelima jenis legum setelah inkubasi 24 jam menunjukkan perbedaan yang sangat nyata (P<0.01). Kelarutan mineral P diurutkan dari yang paling tinggi sampai terendah berturut-turut adalah daun gamal > turi > angsana dan lamtoro > kaliandra. Sama halnya dengan degradasi pakan rendahnya kelarutan Ca dan P pada lamtoro dan kaliandra disebabkan oleh kandungan anti nutrisi pada kedua legum tersebut. Lamtoro dan kaliandra mengandung antinutrisi mimosin dan tannin. Keir et al., (1997) dalam penelitiannya menyebutkan bahwa mimosin dan tannin dapat mengurangi fermentabilitas pakan oleh mikroba dalam rumen. Produksi VFA Volatile Fatty Acids (VFA) yang biasa disebut asam lemak terbang merupakan hasil pencernaan karbohidrat oleh mikroba dalam cairan rumen. Komponen asam lemak terbang dalam rumen adalah asam asetat, asam propionat, asam – asam lemak rantai cabang berasal dari katabolisme protein. Konsentrasi asam lemak terbang cairan rumen dapat digunakan sebagai salah satu tolak ukur fermentabilitas pakan dan sangat erat kaitannya dengan aktivitas mikroba rumen (Sewed, 1997). VFA mempunyai peran ganda yaitu sebagai sumber energi utama bagi ternak dan sumber kerangka karbon untuk pembentukan protein mikroba (Sutardi et al., 1983). Jika produksi VFA yang dihasilkan tinggi, maka 25

mengindikasikan bahwa energi yang tersedia bagi mikroba rumen juga semakin tinggi sehingga aktivitas fermentasi mikroba juga dapat meningkat. Konsentrasi VFA dari berbagai jenis legum pohon dapat dilihat pada Tabel 7. Tabel 7. Produksi VFA Beberapa Legum Pohon Produksi VFA (mM)

Legum Angsana

Turi

Gamal

Lamtoro

Kaliandra

12 jam

57,73

99,20

79,56

60,24

55,25

24 jam

57,73

75,84

96,08

92,83

93,25

Produksi VFA rataan hasil penelitian ini berkisar 55,25–99,20 mM. Suryapratama (1999) menyatakan bahwa kisaran konsentrasi VFA total yang layak bagi kelangsungan hidup ternak adalah 80–160 mM, dengan titik optimum 110 mM. Secara umum konsentrasi VFA dari berbagai jenis legum pohon tidak menunjukkan adanya perbedaan (P>0,05). Banyaknya VFA yang dihasilkan didalam rumen sangat bervariasi tergantung pada jenis ransum yang dikonsumsi (McDonald et al., 1988). Konsentrasi VFA pada angsana, turi dan gamal selama inkubasi 12 jam lebih tinggi dari lamtoro dan kaliandra. Akan tetapi, setelah inkubasi 24 jam konsentrasi VFA dari daun turi mengalami penurunan bertolak belakang dengan konsentrasi gamal, lamtoro dan kaliandra yang semakin meningkat. Rendahnya konsentrasi VFA pada lamtoro dan kaliandra selama inkubasi 12 jam pertama disebabkan oleh aktivitas mikroba rumen. Konsentrasi VFA meningkat setelah inkubasi selama 24 jam mengindikasikan bahwa mikroba rumen membutuhkan waktu yang lebih lama dalam mencerna lamtoro dan kaliandra. Lamtoro dan kaliandra mengandung anti nutrisi tannin sehingga daya cernanya rendah. Produksi Amonia (NH3) Amonia (NH3) merupakan salah satu hasil perombakan protein oleh mikroba rumen. Konsentrasi NH3 cairan rumen akan meningkat jika populasi protozoa meningkat, karena protozoa ikut berperan dalam proses daur ulang nitrogen (Sewed, 1997). Konsentrasi NH3 dari beberapa jenis legum pohon disajikan dalam Tabel 8.

26

Tabel 8. Konsentrasi NH3 Beberapa Jenis Legum Pohon Produksi NH3 (mM) 12 jam 24 jam

Angsana 12,28B 19,93B

Turi 28,83A 39,55A

Legum Gamal 8,30C 13,33C

Lamtoro 6,30C 11,30D

Kaliandra 2,51C 3,49E

Keterangan: superkrip yang berbeda pada baris yang sama menunjukkan berbeda sangat nyata (P<0,01)

Konsentrasi NH3 yang ditunjukkan beberapa jenis legum pohon diatas cukup tinggi. Konsentrasi optimal NH3 untuk menunjang pertumbuhan mikroba rumen berkisar antara 85–300 mg/l atau 6–21 mM (McDonald, 1995),

dengan titik

optimum 8 mM (Suryapratama, 1999). Konsentrasi NH3 pada lamtoro, kaliandra dan gamal yang diinkubasi selama 12 jam nyata lebih rendah dibandingkan legum yang lainnya. Legum yang memiliki konsentrasi NH3 yang paling tinggi baik pada inkubasi selama 12 jam maupun 24 jam adalah turi. Hal ini karena kandungan protein kasar pada turi lebih tinggi dibanding legum yang lain, sedangkan lamtoro mempunyai nilai kecernaan yang rendah meskipun protein kasarnya tinggi. Selain itu kaliandra memiliki zat anti nutrisi tanin yang menghambat kerja mikroba rumen dalam mencerna pakan. Produksi NH3 tergantung dari kelarutan protein ransum, jumlah protein ransum, lamanya pakan dalam rumen dan pH rumen (Orskov, 1982). Hubungan Laju Degradasi Bahan Kering dengan Produksi VFA dan NH3 Hubungan laju degradasi dengan produksi VFA dan NH3 beberapa legum pohon dapat dilihat pada Tabel 9. Tabel 9. Hubungan Laju Degradasi Bahan Kering dengan Produksi VFA dan NH3 Korelasi Laju Degradasi (c) VFA (12 jam) -0,518 VFA (24 jam) -0,831 Laju Degradasi (c)

NH3 (12 jam) NH3 (24 jam)

0,935 0,931

Hasil penelitian menunjukkan bahwa terdapat hubungan yang sangat erat antara laju degradasi (c) dengan konsentrasi NH3. Semakin tinggi laju degradasi maka konsentrasi NH3 semakin tinggi. Akan tetapi, laju degradasi berbanding 27

terbalik dengan konsentrasi VFA dalam rumen. Hal ini karena legum yang digunakan dalam percobaan ini mengandung protein yang tinggi. Pakan yang mengandung protein tinggi dan kandungan serat kasar yang relatif rendah jika dibandingkan umumnya hijauan pakan, sehingga produksi NH3 tinggi, tetapi produksi VFA rendah.

28

KESIMPULAN DAN SARAN Kesimpulan Legum pohon memiliki potensi degradasi dan laju degradasi pakan yang berbeda. Legum turi memiliki potensi degradasi dan laju degradasi paling tinggi. Nilai degradasi diurutkan dari tertinggi sampai terendah selama inkubasi 6 hingga 48 jam adalah turi > angsana dan gamal > lamtoro > kaliandra, sedangkan nilai potensi degradasi diurutkan dari yang tertinggi hingga terendah adalah turi dan gamal > angsana dan lamtoro > kaliandra. Perbedaan potensi dan laju degradasi mempengaruhi kelarutan Ca dan P pada masing–masing legum tersebut. Kelarutan Ca dan P dapat terlihat setelah inkubasi 24 jam.

Kelarutan Ca pada angsana, turi dan gamal lebih tinggi

dibandingkan lamtoro dan kaliandra. Sedangkan kelarutan P tertinggi pada legum gamal. Kelarutan mineral P setelah inkubasi 24 jam diurutkan dari yang paling tinggi sampai terendah berturut-turut adalah daun gamal > turi > angsana dan lamtoro > kaliandra. Terdapat hubungan yang erat antara fermentabilitas pakan dengan kelarutan mineral. Saran Untuk menilai kualitas mineral kalsium (Ca) dan fosfor (P) legum pohon perlu dilakukan penelitian terhadap kelarutan mineral kalsium (Ca) dan fosfor (P) dengan selang waktu inkubasi yang lebih panjang.

29

UCAPAN TERIMAKASIH Assalamualaikum Wr. Wb., Puji syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT yang telah melimpahkan rahmat dan hidayah-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi yang diberi judul Kelarutan Mineral Kalsium (Ca) dan Fosfor (P) Beberapa Jenis Legum Pohon Secara in Vitro. Rasa terima kasih yang tulus penulis hanturkan kepada Dr. Ir. Idat G. Permana MSc.Agr. dan Dr. Ir. Luki Abdullah MSc.Agr. selaku dosen pembimbing, yang telah memberikan pengarahan dan bimbingan selama penulis melakukan penelitian hingga penulisan skripsi ini. Juga kepada Ibu dan Bapak yang senantiasa berdoa, mencurahkan kasih sayang serta memberikan semangat baru bagi penulis. Ucapan terimakasih juga penulis sampaikan pada Project DUE Like yang telah memberikan biaya penuh selama penelitian. Kepada teman satu penelitian, Nunik Puji Haryati, terima kasih atas kerja sama dan bantuannya kepada Penulis. Juga kepada Ir. Anita S. T. M.RurSc. sebagai dosen penguji seminar, Ir. Ignatius Kismono MS, dan Ir. Sri Rahayu Msi. sebagai dosen penguji sidang, Dr. Ir. Yuli Retnani MSc. yang telah memberikan dukungan moral, adikku tersayang (Mamat, Syaflan dan Jhon), dan keluarga besar di Madura, keluarga besar Bapak Bahfid dan Bapak Abd. Salam di Madura terima kasih untuk semua perhatian dan kasih sayangnya. Kepada Bu Dian, Pak Adi, Pak Iman dan teman-teman yang telah membantu (Martha, Niken, Edo, Murni, M’Anis, M’Tien, Mamak dan Yudi dan Adik Wulan), semua INMT’38, Keluarga Mahasiswa Madura, teman-teman Senior Residence, teman–teman DKM Al Hurriyyah, Adik–adik angkatan 41 dan 42, terimakasih atas doa, kasih sayang dan dorongan semangatnya. Kepada semua pihak yang tidak bisa penulis sebutkan satu persatu, terima atas semua bantuan, kritik dan sarannya. Akhirnya, penulis berharap semoga tulisan ini bisa bermanfaat bagi yang membutuhkan. Amin. Wassallamualaikum Wr. Wb.

Bogor, Februari 2006

Penulis 30

DAFTAR PUSTAKA Allen, O.N and E. K. Allen. 1981. The Leguminosae, a source Book of Characteristic, Uses and Nodulation. The University of Wisconsin Press. Wisconsin. AFRC. 1991. A reapraisal of the calcium and phosphorus requirement of sheep and cattle. Technical Committee on Responses to Nutrient. Report No 6 Nutr. Abstract. Rev. 61 : 571 – 613. Amin, M. 1997. Pengaruh penggunaan probiotik Saccharomyces cerevisiae dan Aspergillus niger dalam ransum pada populasi mikroba, aktivitas fermentasi rumen, kecernaan dan pertumbuhan sapi perah dara. Tesis. Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Arora, S.P. 1989. Pencernaan Mikroba pada Ruminansia. Cetakan Pertama. Gadjah Mada University Press, Yogyakarta. Bamualim, A. 2004. Strategi pengembangan peternakan pada lahan kering. Makalah. Seminar Nasional Pengembangan Peternakan Berwawasan Lingkungan. Bogor, 15 Januari 2004. Benerjee, G. C. 1978. Animal Nutrition. Oxford and IBM Pub. Co. New Delhi. 232 – 249. Chase, E.L and C.J. Sniffen. 1989. Mineral in dairy cattle nutrition. International Seminar on Holstein Frisien. PPSKI–USHA and Padjadjaran University. Bandung. Cheeke, P. R. and L. R. Shull. 1985. Natural Toxicant in Feeds and Poisonous Plants. Avi Publishing Company. Inc. New York. Cheng, K. J., J. P. Fay, R. E. Howarth, and J. W. Costerton. 1980. Sequence of events in the digestion of fresh legumes leaves by rumen bacteria. Applied Environment Microbiology 40: 613 – 625. Demeyer, D. I. 1981. Rumen Microbes and Digestion of Plant Cell Wall Agriculture and Environment. Elsevier Sci. Pub. Co, Amsterdam. Durand, M. and R. Kawashima. 1980. Influence of mineral in rumen microbial digestion. In: Y. Ruckebusch and P. Thivend (Eds.). Digestive Physiology and Metabolism in Ruminants. MTP Ltd. Lancaster. 275–408. Fleming,G.A. 1973. Mineral composition of herbage. In:Butler, G.W. and R.W. Bailey, (Eds) Chemistry and Biochemistry of Herbage. Academic Press, London, 529-563. Kandylis, K. 1984. Toxicology of Sulfur in Ruminants. Review. J. Dairy Sci. 66 : 2263. Kareem, S. and E.D. Sudararaj. 1967. Why sesbania makes nutritious cattle feed. In: Skerman, P.J. (Eds). 1977. Tropical Forage Legume. Food Agriculture Organisation of The United Nations. Rome. Karti, P.D.M.H. 1998. Klasifikasi, Morfologi dan Pengenalan Jenis Rumput dan Legume. Diktat Kuliah. Fakultas Peternakan. Institut Peternakan Bogor. Bogor. 31

Kawashima, R., L.A. Sofyan, N. Ishida, J. Jachja, K. Katoh, H. Kumagai and H. Yano. 1989. Study on Mineral in Java island in Indonesia. Kyoto University and IPB Project. Bogor. Keir, Brenda., Nguyen Van Lai., T. R. Preston and E. R. Orskov. 1997. Nutritive value of leaves from tropical trees and shrubs: 1. In vitro gas production and in sacco rumen degradability. Livestock Research for Rural Development. 9. 4. Khamseekhiew, B., J. B. Liang, C. C. Wong, and Z. A. Jalan. 2001. Ruminal and intestinal digestibility of some tropical legume forages. AJAS. 14. : 321 – 325. Leng, R.A. 1997. Tree Foliage In Ruminant Nutrition. Food and Agricultural Organization of The United Nations. Rome. Makkar, H. P. S.1993. Antinutritional factors in animals feedstuffs mode of actions. Int. J. Anim. Sci. 6:88-94. Matsumoto, H., E. G. Smith and G. D. Sherman.1951. The effect of elevated temperature on the mimosin content of kao haole (Leucaena glauca). Arch. Bioche. Biophys. 33:201-202. McDonald, P., R.A. Edwards, J.F.D. Greenhalg, and C.A. Morgan. 1988. Animal Nutrition. 4th Edition. Longman Scientific and Technical. New York McDonald, P., R.A. Edwards, and J.F.D. Greenhalg, and C. A. Morgan. 1995. Animal Nutrition. 5th Ed. Longman Scientific and Technical, New York. McDowell, L., and R., G. Valle. 2000. Major mineral in forage. In: D. I. Given, E. owen, R. F. E. Axford and H. M. Omed (Eds) Forage Evaluation in Ruminant Nutrition. CABI Publishing. UK. London. McLeod. N. 1974. Plant Tannins. Their Role in Forage and Quality Nutrition. Abs and Rev. 44 : 804. McManus, W.R., R.G. Antony, L.L. Grout, AS. Malin and V.N.E. Robinson. 1979. Biocristallization of mineral material on forage plant cell walls. Aust. J. Agric. Res. 30 : 635–649. Ogimoto, K. and S. Imai. 1985. Atlas of Rumen Microbiologiy. Japan Science Societies Press, Tokyo. Ørskov, E.R.1982. Protein Nutrition in Ruminants. Academic Press, London. Ǿrskov, E. R., and I. McDonald. 1979. The estimation of protein degradability in rumen from incubation measurements weighed according to rate of passage. J. Agri. Sci. 1979.:499-503. Parakkasi, A. 1999. Ilmu Nutrisi dan Makanan Ternak Ruminan. UI-Press. Jakarta. Piliang, W. G. 2001. Nutrisi Mineral. Edisi ke-4. Pusat Antar Universitas Ilmu Hayat. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Prince, M. L., A. E. Hagerman and L. G. Butler.1980. Tannin content of cowpeas, chispeas, Pegeonpeas and Mung beans. J. Agric. Food. Chem. 28:459-461. Reitz, L. L. W. H. Smith, and M. P. Plumlee. 1960. A Simple Wet Ashing for Biological Materials. Animal Science Department. Purdue University West Lafyee. 32

Rosa, K. R. D. 1998. Nitrogen fixing tress as tool soil builders. FACT. www.winrock.org/forestry/factnet.htm. [5 Oktober 2005] Sewet, U.1997. Dinamika Populasi dan Aktivitas Fermentasi Mikriba Rumen Kambing yang Diberi Pakan Kaliandra (Calliandra calothyrsus). Tesis. Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Serra, S.D., A.B. Serra, T. Ichinohe and T. Fujuhara. 1996. Ruminal sulubilization of macrominerals in selected Philippine forages. AJAS. 9 : 75 – 81. Skerman, P.J. 1977. Tropical Forage Legume. Food Agriculture Organisation of The United Nations. Rome. Steel, R. G. D. and J. H. Torrie. 1981. Principles and Procedures of Statistic. Mc Grow Hill Book Co. Inc.New York. Suryapratama, W. 1999. Efek suplementasi asam lemak volatil bercabang dan kapsul lisin serta treonin terhadap nutrisi protein sapi Holstein. Disertasi. Program Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Sutardi, T. 1977. Ikhtisar Ruminologi. Bahan Penataran Kasus Peternakan Sapi Perah di Kayu Ambon, Lembang. Bandung. Sutardi, T. 1979. Ketahanan protein bahan makanan terhadap degradasi oleh mikroba dan populasi protozoa rumen dan pemanfaatannya bagi produktivitas ternak. Proseding Seminar Penelitian dan Pengembangan Peternakan. Lembaga Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Bogor. Sutardi, T. 1980. Landasan Ilmu Nutrisi. Departemen Ilmu Nutrisi Makanan dan Ternak. Diktat Kuliah. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Sutardi, T. , N. A. Sigit dan T. Toharmat. 1983. Standarisasi mutu protein bahan makanan ruminansia berdasarkan parameter metabolismenya oleh mikroba Rumen. Laporan Penelitian. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor. Sutardi, T., D. Sastradipdradja, T. Toharmat, A. Sardiana dan I.G. Permana. 1994. Peningkatan produksi ternak ruminansia melalui amoniasi pakan serat bermutu rendah, defaunasi dan suplementasi protein tahan degradasi dalam rumen. Laporan Penelitian. Fakultas Peternakan IPB. Bogor. Suttie, J.M. 1979. Leucaena leucocephala (Lam.) de Wit. www.Fao.Org./ag/AGP/AGPC/doc./Gbase/DATA/pf000158.htm. [5 Oktober 2005]. Tilley, J. M. A. and R. A. Terry. 1963. A two stage technique for the In vitro digestion of forage crops. J. British Grassland Society 18, 104 – 111. Underwood, E.J. 1981. The Mineral Nutrition of Livestock. Common Wealth Agricultural Bereaux. London. Underwood, E. J. and N. F. Suttle. 1999. The Mineral Nutrition of Livestock. 3rd Edition. CABI Publishing. London. Ward, G., L. H. Harbers and J.J. Blaha. 1979. Calcium–containing crystals in alfalfa: their fate in cattle. J. Dairy Sci. 62 : 715.722.

33

Ward, G. and L.H. Harbers. 1982. Effect of pH on extractibility of calcium and oxalate from alfafa leafs. J. Dairy Sci. 65 : 154 – 160. Widiyanto. 1992. Kemungkinan penggunaan tepung daun angsana dalam ransum kelinci ditinjau dari penampilan ternak dan produksi karkas. Karya Ilmiah. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Yano, F., H. Yano and G. Breves. 1991. Calcium and phosphorus metabolism in ruminant. In: Proceeding of the 7th International Symposium on Ruminant Physiology. Academic Press. New York. 277–295.

34

LAMPIRAN

35

Lampiran 1. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 0 Jam SK Perlakuan Kelompok Eror Total

db 4 2 8 14

JK 139,86 85,02 80,11

KT 34,96 42,51 10,01

F.hit 3,49 4,25

F.05 3,84 4,46

F.01 7,01 8,65

Lampiran 2. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 3 Jam SK Perlakuan TGL vs AK T vs GL G vs L A vs K Kelompok 1,2 vs 3 1 vs 2 Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 1 1 8 14

JK 169,11 93,86 48,18 0,06 27,01 65,25 65,21 0,04 37,05

KT 42,28 93,86 48,18 0,06 27,01 32,6 65,21 0,04 4,63

F.hit 9,13** 20,27** 10,41** 0,01 5,83* 7,05* 14,08** 0,01

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46 5,32 5,32

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65 11,26 11,26

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 3. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 6 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok 1,2 vs 3 1 vs 2 Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 1 1 8 14

JK 232,50 118,29 58,90 0,22 55,09 54,18 53,89 0,29 22,64

KT 58,12 118,29 58,90 0,22 55,09 27,09 53,89 0,29 2,83

F.hit 20,54** 41,79** 20,81** 0,08 19,46** 9,57** 19,04** 0,10

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46 5,32 5,32

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65 11,26 11,26

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

36

Lampiran 4. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 9 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok 1,2 vs 3 1 vs 2 Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 1 1 8 14

JK 303,95 183,64 55,90 3,23 61,18 47,65 47,10 0,55 22,20

KT 75,99 183,64 55,90 3,23 61,18 23,83 47,10 0,55 2,80

F.hit 27,39** 66,20** 20,15** 1,16 22,05** 8,59* 16,98** 020

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46 5,32 5,32

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65 11,26 11,26

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 5. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok 1,2 vs 3 1 vs 2 Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 1 1 8 14

JK 370,79 242,98 54,11 6,89 66,80 44,09 43,37 0,72 28,06

KT 92,70 242,98 54,11 6,89 66,80 22,05 43,37 0,72 3,50

F.hit 26,42** 69,26** 15,43** 1,96 19,04** 6,28* 12,36** 0,21

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46 5,32 5,32

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65 11,26 11,26

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 6. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok 1,2 vs 3 1 vs 2 Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 1 1 8 14

JK 601,38 421,76 85,85 10,22 83,55 55,77 50,70 5,07 36,68

KT 150,35 421,76 85,85 10,22 83,55 27,88 50,70 5,07 4,59

F.hit 32,79** 91,99** 18,72** 2,23 18,22** 6,082* 11,06** 1,11

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46 5,32 5,32

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65 11,26 11,26

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

37

Lampiran 7. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 48 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 557,94 396,94 73,85 0,74 86,41 46,52 87,89

KT 139,49 396,94 73,85 0,74 86,41 23,26 10,99

F.hit 12,70** 36,13** 6,72* 0,07 7,87* 2,11

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 8. Analisis Ragam Degradasi Pakan Masa Inkubasi 72 Jam SK Perlakuan ATG vs LK T vs AG A vs G L vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 470,92 306,73 104,45 1,14 58,59 42,17 139,74

KT 117,73 306,73 104,45 1,14 58,59 21,09 17,47

F.hit 6,74* 17,56** 5,98* 0,07 3,35 1,20

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 9. Analisis Ragam Fraksi Terlarut (nilai a) SK Perlakuan Kelompok Eror Total

db 4 2 8 14

JK 159,19 102,72 77,24

KT 39,80 51,36 9,65

F.hit 4,12 5,32

F.05 3,84 4,46

F.01 7,01 8,65

Lampiran 10. Analisis Ragam Fraksi Tidak Larut (nilai b) SK Perlakuan Kelompok Eror Total

db 4 2 8 14

JK 829,46 280,81 479,91

KT 207,37 140,41 59,99

F.hit 3,46 2,34

F.05 3,84 4,46

F.01 7,01 8,65

38

Lampiran 11. Analisis Ragam Potensial Degradasi (nilai a+b) SK Perlakuan TG vs ALK T vs G AL vs K A vs L Kelompok Eror Total

db JK 4 1533,39 1 840,40 1 310,46 1 382,35 1 0,17 2 591,99 8 554,98 14

KT 383,35 840,40 310,46 382,35 0,17 295,99 69,37

F.hit 5,53 12,11 4,48 5,51 0,00 4,27

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 12. Analisis Ragam Laju Degradasi (nilai c) SK Perlakuan ATG vs LK A vs TG T vs G L vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 0,0083 0,0046 0,0034 0,0002 0,0001 0,0010 0,0045

KT 0,0021 0,0046 0,0034 0,0002 0,0001 0,0005 0,0006

F.hit 3,7016 8,1529 6,1427 0,3135 0,1973 0,8608

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 13. Analisis Ragam Produksi VFA Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan Kelompok Eror Total

db 4 2 8 14

JK KT 6706,46 1676,61 3252,72 1626,36 8318,84 1039,86 18278,02

F.hit 1,61 1,56

F.05 3,84 4,46

F.01 7,01 8,65

Lampiran 14. Analisis Ragam Produksi VFA Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan Kelompok Eror Total

db 4 2 8 14

JK KT 3164,61 791,15 2839,72 1419,86 7941,93 992,74 13946,26

F.hit 0,80 1,43

F.05 3,84 4,46

F.01 7,01 8,65

39

Lampiran 15. Analisis Ragam Produksi NH3 Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan AT vs GLK A vs T GL vs K G vs L Kelompok Eror Total

db JK 4 1256,56 1 794,01 1 410,62 1 45,96 1 5,98 2 10,49 8 81,05 14 1348,11

KT F.hit 314,14 31,01** 794,01 78,37** 410,62 40,53** 45,96 4,54 5,98 0,59 5,25 0,52 10,13

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 16. Analisis Ragam Produksi NH3 Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan AT vs GLK A vs T G vs LK L vs K Kelompok Eror Total

db JK KT F.hit 4 2230,48 557,62 65,92** 1 1491,02 1491,02 147,17** 1 577,01 577,01 56,95** 1 70,08 70,08 6,92* 1 92,36 92,36 9,12* 2 1,40 0,70 0,08 8 67,67 8,46 14 2299,54 164,25

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 17. Analisis Ragam Ca Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan AT vs GLK A vs T G vs LK L vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 13,05 11,94 0,05 0,98 0,08 0,95 1,59 15,59

KT 3,26 11,94 0,05 0,98 0,08 0,47 0,20

F.hit 16,41** 60,08** 0,24 4,93 0,40 2,38

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

40

Lampiran 18. Analisis Ragam Ca Tidak Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan TGL vs AK TG vs L T vs G A vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 113,07 81,49 28,64 2,19 0,76 0,89 1,68 115,64

KT 28,27 81,49 28,64 2,19 0,76 0,44 0,21

F.hit 134,97 389,06 136,75 10,44 3,63 2,12

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 19. Analisis Ragam P Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan ATGK vs L A vs TGK TK vs G T vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 28,340 22,553 5,780 0,006 0,001 0,338 0,643 29,322

KT F.hit 7,085 88,181** 22,553 280,696** 5,780 71,940** 0,006 0,071 0,001 0,018 0,169 2,105 0,080

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 20. Analisis Ragam P Tidak Terlarut Masa Inkubasi 12 Jam SK Perlakuan TL vs AGK T vs L G vs AK A vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 31,404 23,324 5,098 1,944 1,038 0,332 0,651 32,387

KT F.hit 7,851 96,533** 23,324 286,787** 5,098 62,687** 1,944 23,899** 1,038 12,761** 0,166 2,043 0,081

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

41

Lampiran 21. Analisis Ragam Ca Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan ATG vs LK A vs TG T vs G L vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 10,801 9,355 1,251 0,159 0,036 0,567 2,129 13,496

KT 2,700 9,355 1,251 0,159 0,036 0,283 0,266

F.hit 10,147** 35,157** 4,701 0,597 0,134 1,065

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 22. Analisis Ragam Ca Tidak Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan TGL vs AK TG vs L T vs G A vs K Kelompok Eror Total

db JK 4 101,95 1 75,29 1 26,11 1 0,11 1 0,44 2 0,57 8 2,11 14 104,631

KT 25,49 75,29 26,11 0,11 0,44 0,29 0,26

F.hit 96,65** 285,51** 99,02** 0,43 1,65 1,09

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 23. Analisis Ragam P Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan AGL vs TK G vs AL A vs L T vs K Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 82,28 61,94 6,62 0,51 13,22 0,32 1,09 83,69

KT 20,57 61,94 6,62 0,51 13,22 0,16 0,14

F.hit 151,04** 454,79** 48,57** 3,76 97,03** 118

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

42

Lampiran 24. Analisis Ragam P Tidak Terlarut Masa Inkubasi 24 Jam SK Perlakuan TL vs AGK T vs L AG vs K A vs G Kelompok Eror Total

db 4 1 1 1 1 2 8 14

JK 64,30 53,43 0,46 9,54 0,86 0,33 1,07 65,68

KT 16,07 53,43 0,46 9,54 0,86 0,16 0,13

F.hit 120,54** 400,71** 3,42 71,57** 6,45* 1,23

F.05 3,84 5,32 5,32 5,32 5,32 4,46

F.01 7,01 11,26 11,26 11,26 11,26 8,65

Keterangan: A = Angsana, T = Turi, G =Gamal, L = Lamtoro, K = Kaliandra * menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda nyata (P<0,05) ** menunjukkan perlakuan atau kelompok berbeda sangat nyata (P<0,01)

Lampiran 25. Analisis Ragam Korelasi Laju Degradasi Pakan dengan Produksi VFA dan NH3 RATE NH312 VFA1 2 VFA2 4 NH324

Pearson Correlation Sig. (2-tailed) N Pearson Correlation Sig. (2-tailed) N Pearson Correlation

RATE NH312 VFA12 VFA24 NH324 1,000 ,935 -,518 -,831 ,931 , ,020 ,372 ,081 ,022 5 5 5 5 5 ,935 1,000 -,617 -,727 ,995 ,020 , ,268 ,164 ,000 5 5 5 5 5 -,518 -,617 1,000 ,786 -,613

Sig. (2-tailed) N Pearson Correlation

,372 5 -,831

,268 5 -,727

, 5 ,786

,115 5 1,000

,271 5 -,732

Sig. (2-tailed) N Pearson Correlation Sig. (2-tailed) N

,081 5 ,931 ,022 5

,164 5 ,995 ,000 5

,115 5 -,613 ,271 5

, 5 -,732 ,160 5

,160 5 1,000 , 5

* Correlation is significant at the 0.05 level (2-tailed). ** Correlation is significant at the 0.01 level (2-tailed).

43