BUDAPESTI MŰSZAKI ÉS GAZDASÁGTUDOMÁNYI EGYETEM VEGYÉSZMÉRNÖKI ÉS BIOMÉRNÖKI KAR OLÁH GYÖRGY DOKTORI ISKOLA
FOLYTONOS, ÁTFOLYÁSOS RENDSZEREK ALKALMAZÁSA RACÉM ALKOHOLOK, AMINOK ÉS AMINOSAVAK ELŐÁLLÍTÁSÁRA ÉS ENZIMKATALIZÁLT REZOLVÁLÁSÁRA
Tézisfüzet
Szerző: Témavezető: Konzulens:
Falus Péter Dr. Nagy József Dr. Poppe László
SZERVES KÉMIA ÉS TECHNOLÓGIA TANSZÉK
2015
1. Bevezetés A XXI. században a szerves kémia egyik legnagyobb kihívása a biológiailag aktív vegyületek gazdaságos szintézise. A gyógyszeripar mellett a növényvédőszergyártásban, a műanyag-, a kozmetikai-, és az élelmiszeriparban is rendkívül fontos az enantiomerek nagytisztaságú előállítása és felhasználása.1,2 A felesleges enantiomer jelenléte akár jelentős problémákat is okozhat, hiszen azok legtöbb fizikai és kémiai tulajdonságai ugyan megegyeznek, ám biológiai hatásukban jelentős különbség mutatkozhat.3 Egyik leghírhedtebb példa erre a Contergan botrány néven elhíresült eset, amikor az (R)-Thalidomide hatóanyagot – mely nyugtató, altató hatású – nem választották el enantiomerpárjától, az (S) Thalidomidetól, mely teratogénnek bizonyult.4 Az enantiomerek eltérő biológiai hatásának oka sok esetben nem tisztázott. A Contergan 1957 és 1961 között volt forgalomban, ezalatt körülbelül 12 000 gyerek született halva vagy csonka végtagokkal, az (S)-enantiomer teratogén hatásának okát viszont csak napjainkban sikerült megfejteni.5 Az
optikailag
aktív
aminok,
alkoholok
és
aminosavak,
melyek
gyógyszerhatóanyagok fontos építőkövei lehetnek, egyik korszerű és környezetbarát előállítási lehetősége a folyamatos üzemű reaktorban történő enzimkatalizált kinetikus rezolválás. A biokatalízis jelentőségére utal az enzimek ipari léptékben történő felhasználása, például a BASF az Egyesült Államokban lipázok felhasználásával gyárt ›3000 tonna/év kapacitású folyamatos üzemben királis aminokat.6 Doktori munkám során racém aminok előállítási valamint racém aminok, alkoholok és aminosavak rezolválási lehetőségeit vizsgáltam folytonos, átfolyásos rendszerek felhasználásával. 1.
Ketonok reduktív aminálása szakaszos és folytonos, átfolyásos üzemben. Az
eredeti Leuckart7 és Leuckart-Wallach8 reakciók módosítása révén új és általánosítható 1
L. Poppe, L. Novák, „Selective Biocatalysis: A Synthetic Approach”, Wiley-VCH, Weinheim, 1992. K. Faber, „Biotransformations in Organic Chemistry (4th edition)”, Springer, Berlin, 2004. 3 R. T. Coutts, G. B. Baker, Chirality, 1989, 1, 99. 4 H. Nishimura, T. Tanimura, „Clinical Aspects of The Teratogenicity of Drugs”, NY: American Elsevier Publishing Company, New York, 1976. 5 T. Ito, H. Ando, T. Suzuki, T. Ogura, K. Hotta, Y. Imamura, Y. Yamaguchi, H. Handa, Science, 2010, 327, 1345. 6 T. C. Nugent, „Chiral Amine Synthesis: Methods, Developments and Applications”, Wiley-VCH, Weinheim, 2010. 7 R. Leuckart, Berichte der Deutschen Chemischen Gesellschaft, 1885, 18, 2341. 8 O. Wallach, Berichte der Deutschen Chemischen Gesellschaft, 1891, 24, 3992. 2
2
módszert dolgoztunk ki racém aminok előállítására Zn és Pd/C katalizátor segítségével. A Pd/C katalizátorral végzett reakciókat folytonos, átfolyásos reaktorban is megvalósítottuk. 2.
Racém aminok kinetikus rezolválása folytonos, átfolyásos rendszerekben.
Különbözőféleképpen rögzített lipáz készítményekkel végzett N-acilezési reakcióban racém aminok kinetikus rezolválását valósítottuk meg. A folyamatos üzemben végzett kinetikus rezolválások során vizsgáltuk az enantiomer szelektivitás és a produktivitás hőmérsékletfüggését, valamint az enzimrögzítés módja és a szubsztrátum minőségének szelektivitásra és produktivitásra gyakorolt hatását. 3.
Szekunder alkoholok kinetikus rezolválása folytonos, átfolyásos rendszerekeben.
Az irodalomban korábban nem vagy csak alig tárgyalt indolvázat tartalmazó szekunder alkoholokat állítottunk elő, melyeket lipáz-katalizált O-acilezési reakcióba vittünk. Folytonos, átfolyásos üzemben vizsáltuk a porduktivitás és a szelektivitás hőmérsékletfüggését, végül, szintén folyamatos üzemben, preparatív léptékben is előállítottuk az enantiomertiszta (R)-és (S)-alkoholokat valamint az (R)-acetátokat. 4.
Racém N-Boc védett fenilalanin tioetilészter dinamikus kinetikus rezolválása
folytonos, átfolyásos rendszerben. A szilárd hordozóhoz rögzített proteázzal, benzil aminnal,
mint
amidálószerrel
és
1,8-diazabiciklo[5.4.0]undek-7-énnel,
mint
racemizálószerrel megvalósított dinamikus kinetikus rezolválás végrehajtásához először megkerestük külön-külön a kinetikus rezolválás és a racemizációs részlépések hőmérséklet optimumát, majd a részlépések egyesítésével megvalósítottuk a dinamikus kinetikus rezolválást folytonos, átfolyásos rendszerben.
2. Kísérleti módszerek A gázkromatográfiás (GC) méréseket Agilent 4890D, Agilent 5890D és YoungLin ACME 6100 készülékeken végeztük, Hydrodex-β-6TBDM (25 m × 0,25 mm × 0,25 mm film, t-butil-dimetilszililezett β-ciklodextrin; Macherey&Nagel) és Hydrodex-βTBDAc (25 m × 0,25 mm × 0,25 mm film, acetilezett és t-butil-dimetilszililezett βciklodextrin; Macherey&Nagel) enantiomer szelektív királis állófázist tartalmazó kolonnákkal. Vivőgázként hidrogént használtunk (fejnyomás 12 psi, split 50:1). Az injektor és a FID detektor hőmérséklete: 250°C. A reakciók követéséhez a GC-hez szükséges mintákat közvetlenül a reakcióelegyekből vettük, majd diklórmetánnal 3
hígítottuk megfelelő koncentrációra (1–2 mg/ml). A nagyhatékonyságú folyadékkromatográfiás (HPLC) méréseket fotodióda-soros detektorral (DAD) felszerelt HP 1090 készüléken végeztük, Daicel Chiralpak® IB (150×2,1 mm, 5 μm szemcseméret, szilika-gélre rögzített trisz(3,5-dimetilfenilkarbamát)-tal módosított cellulóz töltet) enantiomer szelektív királis állófázist tartalmazó kolonnával. A reakciók követéséhez a HPLC-hez szükséges mintákat közvetlenül a reakcióelegyből vettük, majd hexán/izopropanol 98/2 eluenssel hígítottuk a megfelelő koncentrációra (1–1,5 mg/ml).
A folyamatos üzemű reakciók kivitelezéséhez a ThalesNano X-CubeTM (002/2006), illetve a kutatócsoport saját tervezésű és fejlesztésű laborreaktorát használtunk. A CatCart oszlopokat (70 mm × 4 mm ID, ThalesNano) a ThalesNano módszerének megfelelően töltöttük meg katalizátorokkal, és fém ezüst szűrő membránokkal (Sterlitech Silver Membrane Filter, Sigma–Aldrich, No Z623237, pórus méret: 0,45 μm) és teflon (PTFE) tömítések segítségével zártuk le.
3. Eredmények 3.1. Ketonok egylépéses reduktív aminálása Ismert, hogy ketonokból oximokat lehet előállítani hidroxilamin-hidrokloriddal, oximból pedig aminokat. Elsőként ennek a két reakciónak az összekapcsolását valósítottuk meg egy one pot rendszerben, oxim intermedieren keresztül ammóniumformiáttal. Az optimalizálás során kiderült, hogy a reakció hidroxilamin-hidroklorid nélkül, egy lépésben is lejátszódik. Attól függően, hogy a karbonilcsoport hol helyezkedik el, különböző katalizátor és eltérő hőmérséklet bizonyult optimálisnak. Ha a karbonilcsoport egy aromás gyűrűtől α-pozícióban helyezkedik el, akkor Zn katalizátor használata és magas hőmérséklet szükséges. Ha a kiindulási keton nem tartalmaz aromás gyűrűt vagy a karbonilcsoport az aromás gyűrűtől nem α-pozícióban helyezkedik el, akkor a 10%-os Pd/C katalizátor használata és szobahőmérséklet szükséges (1. ábra).
4
1. ábra Ketonok reduktív aminálása
Így egy új, és könnyen általánosítható módszert dolgoztunk ki ketonok egylépéses, one pot reduktív aminálására. 3.2. Ketonok reduktív aminálása folytonos, átfolyásos rendszerben Azokban az esetekben, amikor a reduktív aminálás során 10%-os Pd/C katalizátor alkalmazandó, a reakció megvalósítható folytonos, átfolyásos rendszerben is (1a-d). A katalizátorral töltött és 40°C-ra termosztált oszlopon átfolyatva a metanolban oldott keton ammónium-formiátos reakcióelegyét jó termeléssel kaptuk a kívánt amint (2. ábra).
2. ábra Ketonok reduktív aminálása folytonos, átfolyásos rendszerben
Ezzel a módszerrel elsőként valósítottuk meg alifás és cikloalifás ketonok ammónium-formiáttal történő egylépéses reduktív aminálását folyamatos üzemben. 3.3. Racém aminok és szekunder alkoholok lipáz katalizált kinetikus rezolválása Behatóan tanulmányoztuk mind szakaszos, mind pedig folytonos, átfolyásos üzemben racém aminok (rac-2a, c, e, g) és szekunder alkoholok (rac-5a-c) N- és Oacilezési reakcióit etil-acetáttal illetve vinil-acetáttal különböző lipáz katalizátorok jelenlétében (3. ábra). 5
3. ábra Különböző racém aminok és szekunder aminok lipáz katalizált kinetikus rezolválása szakaszos és folytonos, átfolyásos rendszerben
Azt találtuk, hogy az acilezőszer, az oldószer illetve az enzim minősége mellett annak rögzítési módja is nagyban befolyásolja a produktivitást és a szelektivitást is. Széles
hőmérséklettartományban
(0–70°C)
vizsgáltuk,
hogy
az
enzim
hőmérsékletfüggő paraméterei hogyan változnak az emelkedő hőmérséklettel. Továbbá kimutattuk, hogy adott kinetikus rezolválási reakciót folytonos, átfolyásos rendszerben elvégezve minden esetben magasabb produktivitás értékeket kapunk azonos hőmérsékleten, azonos konverzió mellett. 3.4. Racém aminok és szekunder alkoholok lipáz katalizált preparatív léptékű kinetikus rezolválása folytonos, átfolyásos rendszerben Optimalizált hőmérsékleten megvalósítottuk egyes racém aminok (rac-2a, c, e, g) és szekunder alkoholok (rac-5a-c) lipáz-katalizált preparatív léptékű N- és O-acilezését folyamatos üzemben. Racém aminok esetében folytonos, átfolyásos rendszerben, egyszeri átfolyással 40% fölötti konverzióval és 98-99%-os enantiomer tisztasággal kaptuk az (R)-acetamidot ((R)-3a, c, e, g), míg szekunder alkoholok esetében folytonos, recirkulációs rendszerben 42-45%-os konverzióval és ›99% enantiomer tisztasággal jutottunk az (R)-acetáthoz ((R)-6a-c).
6
4. ábra Különböző racém aminok és szekunder alkoholok lipáz-katalizált preaparatív léptékű kinetikus rezolválása folytonos, átfolyásos rendszerben
3.5. Racém β-aminosav származékok dinamikus kinetikus rezolválása folytonos, átfolyásos rendszerben Megvalósítottuk a racém N-Boc védett fenilalanin tioetilészter (rac-9) dinamikus kinetikus rezolválását folyamatos üzemben (5. ábra). A dinamikus kinetikus rezolválás két részlépését külön-külön optimalizálva vizsgáltuk a kinetikus rezolválás és a racemizáció
hőmérsékletfüggését.
amidáláshoz
etil-módosított
A
benzil-aminnal
szilika-gélre
adszorbeált
történő proteázt
enzimkatalizált (Subtilisin
A)
használtunk 50°C-on, a racemizációt pedig 150°C-on 1,8-diazabiciklo[5.4.0]undek-7én (DBU) báziskatalizátorral végeztük. A reakciókhoz 6 biokatalizátorral és 5 szilikagéllel töltött oszlopok alternáló sorba kötött rendszerét használtunk, melyeken a rac-9, a benzil-amin és a DBU terc-amil-alkoholos oldatát áramoltattuk át. Így a dinamikus kinetikus rezolválás két részlépését térben szétválasztva, eltérő hőmérsékleten, de azonos áramlási sebesség mellett valósítottuk meg.
5. ábra A racém N-Boc védett fenilalanin tioetilészter (rac-9) folyamatos üzemű dinamikus kinetikus rezolválása
A módszer általánosíthatósága miatt ezen az elven további aminosav származékok 7
mellett egyéb racém vegyületek dinamikus kinetikus rezolválása is megvalósítható folytonos, átfolyásos reaktorban. 3.6. A Subtilisin A proteáz rögzítése felületmódosított szilika-gélekre Ismert, hogy a proteázok állás közben fokozatosan elvesztik aktivitásukat, hiszen saját magukat is hidrolizálják. A kereskedelemben kapható Subtilisin A vizes oldata (Alcalase) fél év alatt jelentős aktivitáscsökkenést szenved el, mely az egyik legjelentősebb korlát a biokatalitikus felhasználhatóságát illetően. Felületmódosított szilika-gélekre történő adszorpcióval létrehoztunk több olyan készítményt is mellyel a katalizátor élettartama jelentősen megnőtt: 12 hónapos tárolást követően a készítmények produktivitásuk jelentős részét megőrizték, miközben szelektivitásuk sem csökkent számottevően. Ezen biokatalitikus tulajdonságokat a racém N-Boc védett fenilalanin tioetilészter (rac-9) benzil-aminnal történő kinetikus rezolválása során vizsgáltuk alaposabban (6. ábra), és azt találtuk, hogy több készítménnyel egy év után is 35-40% körüli konverzió érhető el 24 óra után szakaszos üzemben, miközben a termék enantiomer tisztasága sem csökken 95% alá.
6. ábra Racém N-Boc védett fenilalanin amidálása benzil-aminnal különböző felületmódosított szilika-gélekre rögzített Subtilisin A jelenlétében szakaszos üzemben
4. Tézisek 1. Új és általánosítható módszert fejlesztettünk ki ketonok egylépéses reduktív aminálására ammónium-formiát jelenlétében. A karbonil funkcióscsoport helyzetétől függően más katalizátor és eltérő hőmérséklet alkalmazandó. Ha a karbonilcsoport egy aromás gyűrűtől α-pozícióban helyezkedik el, akkor Zn katalizátor használata és magas hőmérséklet szükséges. Ha a kiindulási keton nem tartalmaz aromás gyűrűt vagy a karbonilcsoport az aromás gyűrűtől nem α-pozícióban helyezkedik el, akkor a 10%-os Pd/C katalizátor használata és szobahőmérséklet szükséges. [2] 2. Elsőként valósítottuk meg alifás és cikloalifás ketonok egylépéses reduktív 8
aminálását folytonos, átfolyásos rendszerben 10%-os Pd/C katalizátor és ammónium-formiát jelenlétében. [2] 3. Bizonyos racém aminok és szekunder alkoholok folyamatos üzemű lipázkatalizált N- és O-acilezési reakciójában széles hőmérséklettartományban megmértük az enzimek
hőmérsékletfüggő
tulajdonságait
(produktivitás,
szelektivitás),
és
kimutattuk, hogy a produktivitás minden esetben magasabb folyamatos üzemben a szakaszos üzemben tapasztalthoz képest. [3, 4] 4. Megvalósítottuk néhány racém amin és szekunder alkohol folyamatos üzemű Candida antarctica B lipáz enzimmel katalizált N- és O-acilezési reakcióját preparatív léptékben. A módszerrel magas enantiomer tisztasággal jutottunk mind az (S)-, mind pedig az (R)-enantiomerekhez. [1, 4] 5. Új és általánosítható módszert dolgoztunk ki β-aminosav tioetilészterek benzilaminnal
történő
felületmódosított
folyamatos szilika-gélre
üzemű adszorbeált
dinamikus proteáz
kinetius
rezolválására
biokatalizátor
és
1,8-
diazabiciklo[5.4.0]undek-7-én báziskatalizátor jelenlétében. A dinamikus kinetikus rezolválás két részlépése (kinetikus rezolválás és racemizáció) térben elkülönülve, eltérő hőmérsékleten játszódott le, ezzel elsőként valósítottuk meg aminosavszármazékok folyamatos üzemű dinamikus kinetikus rezolválását alternáló sorba kötött reaktorok kombinációjával. [16] 6. Kifejlesztettünk több stabil, produktív és szelektív enzimkészítményt egy proteáz, a Subtilisin A felületmódosított szilika-gélre történő adszorpciójával. Az általunk készített biokatalizátorok eltarthatósága felülmúlja a kereskedelmi forgalomban kapható enzim vizes oldatának eltarthatóságát, miközben magas produktivitással és szelektivitással katalizálják egyes aminosav-származékok benzil-aminnal történő amidálási reakcióját. [16]
5. Alkalmazási lehetőségek A ketonok reduktív aminálására kidolgozott általános módszer kiterjeszthető további 9
ketonokra is, és a karboxil-csoport pozíciójától függően Zn vagy 10%-os Pd/C katalizátor használandó szakaszos illetve folytonos üzemben. Mivel a folyamatos üzemű eljárások méretnövelhetősége sokkal egyszerűbb, mint a szakaszos üzeműeké, így az általunk leírt folyamatos üzemű amin előállítás akár ipari méretekben is megvalósítható. Az optikailag aktív intermedierek előállítása mind a gyógyszeriparban, mind pedig a finomkémiai iparban egy folyamatosan bővülő terület. A biokatalízis az enantiomer szelektív szintézisek egyik széleskörűen használt eszköze, így az utóbbi években az enzimkatalizált kinetikus rezolválások egyre népszerűbbé váltak a racemátok szétválasztására. Az általunk leírt – akár szakaszos, akár folytonos, átfolyásos üzemű – dinamikus kinetikus és kinetikus rezolválási módszerek könnyen alkalmazhatóak egyéb racém aminok, alkoholok vagy aminosavak rezolválására. A reakciók során előállított enantiomertiszta vegyületek potenciális bioaktivitásuk mellett fontos építőkövei lehetnek különböző gyógyszerhatóanyagoknak.
6. Közlemények 6.1. Az értekezés tárgyát képező közlemények [1] P. Falus, Z. Boros, G. Hornyánszky, J. Nagy, F. Darvas, L. Ürge, L. Poppe: Synthesis and Lipase catalysed kinetic resolution of racemic amines, Studia Universitatis Babeş-Bolyai Seria Chemia, 2010, 55, 289. [IF: 0,231, FP: 95%] [2] P. Falus, Z. Boros, G. Hornyánszky, J. Nagy, F. Darvas, L. Ürge, L. Poppe: Reductive amination of ketones: novel one-step transfer hydrogenations in batch and continuous-flow mode, Tetrahedron Letters, 2011, 52, 1310. [IF: 2,683, FP: 95%, I: 9] [3] Z. Boros, P. Falus, M. Márkus, D. Weiser, M. Oláh, G. Hornyánszky, J. Nagy, L. Poppe: How the mode of Candida antarctica lipase B immobilization affects the continuous-flow kinetic resolution of racemic amines at various temperatures, Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic, 2013, 85-86, 119. [IF: 2,823, FP: 10%, I: 7] [4] P. Falus, Z. Boros, P. Kovács, L. Poppe, J. Nagy: Lipase-Catalyzed Kinetic 10
Resolution of 1-(2-Hydroxycyclohexyl)Indoles in Batch and Continuous-Flow Systems, Journal of Flow Chemistry, 2014, 4, 125. [IF: 1,878, FP: 95%, I: 1] 6.2. Az értekezés tárgyát képező konferencia előadások [5] P. Falus, Z. Boros, G. Hornyánszky, J. Nagy, L. Ürge, F. Darvas, L. Poppe: Ketonok új típusú fémkatalizált reduktív aminálásai szakaszos és folyamatos reaktorban, XXXIII. Kémiai Előadói Napok, 2010. október 25–27, Szeged, Magyarország. [6] P. Falus, Z. Boros, G. Hornyánszky, J. Nagy, L. Ürge, F. Darvas, L. Poppe: Synthesis of chiral amides in chemo-enzymatic cascade system, XVI. Nemzetközi Vegyészkonferencia, 2010. november 11–14, Kolozsvár, Románia. [7] G. Hornyánszky, P. Falus, Z. Boros, J. Nagy, L. Poppe: Királis savamidok előállítási és funkcionalizálási lehetőségeinek vizsgálata kemo-enzimatikus kaszkád rendszerben, MKE 1. Nemzeti Konferencia, 2011. május 22–25, Sopron, Magyarország. [8] Z. Boros, P. Falus, G. Hornyánszky, J. Nagy, L. Ürge, F. Darvas, L. Poppe: Continuous-flow systems for synthesis, kinetic resolution and dynamic kinetic resolution of amines, Biotrans, 10th International Symposium on Biocatalysis, 2011. október 2–6, Giardini Naxos, Szicília, Olaszország. [9] P. Falus, Z. Boros, L. Poppe: Királis savamidok előállítási lehetőségeinek vizsgálata kemo-enzimatikus kaszkád rendszerben, XXXIV. Kémiai Előadói Napok Tudományos Szimpózium, 2011. november 2–4, Szeged, Magyarország. [10] G. Hornyánszky, Z. Boros, P. Csuka, P. Falus, M. Márkus, D. Weiser, M. Oláh, J. Nagy, L. Poppe: Optikailag aktív savamidok enzimatikus előállítása és átalakítása biológiailag aktív vegyületekké, XVIII. Nemzetközi Vegyészkonferencia, 2012. november 22–25, Félixfürdő, Románia. [11] Z. Boros, E. Abaháziová, M. Oláh, L. Nagy-Győr, P. Falus, V. Bódai, P. Sátorhelyi, B. Erdélyi, Gy. Szakács, L. Poppe: Átfolyásos reaktorokban végzett biotranszformációkhoz alkalmazható lipázok tisztítása szelektív adszorpcióval, MKE Vegyészkonferencia, 2013. június 26–28, Hajdúszoboszló, Magyarország. 11
6.3. Az értekezés tárgyát képező poszterek [12] Z. Boros, P. Falus, D. Weiser, K. Kovács, G. Hellner, M. Márkus, E. Abaháziová, M. Oláh, B. G. Vértessy, L. Poppe: Silica-based enzyme immobilization methods for lipase-catalyzed kinetic resolutions of racemic amines and alcohols in continuous-flow bioreactors, biocat2012 – 6th International Congress on Biocatalysis, 2012. szeptember 2–6, Hamburg, Németország. [13] P. Falus, Z. Boros, M. Oláh, V. Bódai, P. Sátorhelyi, B. Erdélyi, P. Kovács, Gy. Szakács, J. Nagy, L. Poppe: Indolvázat tartalmazó heterociklusos szekunder alkoholok előállítása, és lipáz katalizált kinetikus rezolválása szakaszos és folyamatos reaktorokban, MKE Vegyészkonferencia, 2013. június 26–28, Hajdúszoboszló, Magyarország. [14] Z. Boros, E. Abaháziová, M. Oláh, L. Nagy-Győr, P. Falus, V. Bódai, P. Sátorhelyi, B. Erdélyi, L. Poppe: Novel surface-functionalized silica-based supports for selective adsorption of enzymes, Biotrans, 11th International Symposium on Biocatalysis, 2013. július 21–25, Manchester, Egyesült Királyság. [15] P. Falus, Z. Boros, M. Oláh, V. Bódai, P. Sátorhelyi, B. Erdélyi, P. Kovács, Gy. Szakács, J. Nagy, L. Poppe: Preparation and kinetic resolution of indolecontaining heterocyclic secunder alcohols in batch and continuous-flow systems, Biotrans, 11th International Symposium on Biocatalysis, 2013. július 21–25, Manchester, Egyesült Királyság. [16] S. Servi, P. Falus, Z. Boros, L. Cerioli, G. Bajnóczi, D. Weiser, J. Nagy J, D. Tessaro, L. Poppe: A continuous-flow methodology for the amidation of rac-NBoc amino acid thioesters in DKR conditions, Transam 2.0 - Chiral Amines Through (Bio)Catalysis, 2015. március 4–6, Greifswald, Németország.
12
