INHIBISI XANTIN OKSIDASE SECARA IN VITRO OLEH EKSTRAK ROSELA (Hibiscus sabdariffa) DAN CIPLUKAN (Physalis angulata) DEDE YULIANTO

INHIBISI XANTIN OKSIDASE SECARA IN VITRO OLEH EKSTRAK ROSELA (Hibiscus sabdariffa) DAN CIPLUKAN (Physalis angulata)

DEDE YULIANTO

DEPARTEMEN KIMIA FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2009

ABSTRAK DEDE YULIANTO. Inhibisi Xantin Oksidase secara In Vitro oleh Ekstrak Rosela (Hibiscus sabdariffa) dan Ciplukan (Physalis angulata). Dibimbing oleh DYAH ISWANTINI PRADONO dan LATIFAH KOSIM DARUSMAN. Enzim xantin oksidase mengkatalis oksidasi xantin menjadi asam urat, yang berperan penting dalam penyakit asam urat. Rosela dan ciplukan merupakan tanaman obat yang biasa digunakan pada berbagai pengobatan tradisional karena banyak mengandung senyawa metabolit sekunder sehingga berpotensi sebagai penghambat enzim xantin oksidase. Dalam penelitian ini, pada ekstrak air dan etanol dari kelopak rosela dan herba ciplukan dilakukan uji fitokimia, toksisitas pada Artemia salina, dan uji inhibisi pada aktivitas xantin oksidase secara in vitro yang dibandingkan dengan alopurinol sebagai kontrol positif, serta pengamatan laju pembentukan kristal natrium urat dari larutan lewat jenuh dengan metode turbidimetri juga diamati. Uji fitokimia ciplukan memperlihatkan adanya senyawa flavonoid, tanin, saponin, alkaloid dan steroid, namun pada ekstrak rosela tidak ada alkaloid dan steroid. Hasil analisis probit ekstrak air dan etanol dari kelopak rosela dan herba ciplukan menunjukkan nilai konsentrasi letal 50 (LC50) masingmasing sebesar 96.95, 40.03, 252.79, dan 63.83 ppm. Ekstrak etanol dan air ciplukan (70.08 & 43.66%) memiliki daya inhibisi lebih kuat daripada ekstrak etanol dan air rosela (35.53 & 20.42%) tetapi masih lebih rendah daripada alopurinol (98.63%) pada konsentrasi 100 ppm. Dari keempat ekstrak, hanya ekstrak etanol ciplukan yang memiliki nilai konsentrasi inhibisi 50 terendah sebesar 74.49 ppm sehingga berpotensi sebagai obat. Metode turbidimetri tidak berhasil dalam mengamati pembentukan kristal natrium urat.

ABSTRACT DEDE YULIANTO. In Vitro Inhibition of Xanthine Oxidase by Roselle (Hibiscus sabdariffa) and Ciplukan (Physalis angulata) Extracts. Supervised by DYAH ISWANTINI PRADONO and LATIFAH KOSIM DARUSMAN. The enzyme xanthine oxidase catalyses xanthine oxidation into uric acid, which plays a crucial role in gout. Roselle and ciplukan as common medicine herbs used in many traditional treatment because it contains secondary metabolite compounds potentially as xanthine oxidase inhibitory. In this research, to water and ethanol extracts from roselle and ciplukan was conducted phytochemical assay, toxicity to Artemia salina , herbs, extract assay, and inhibition assay to xanthine oxidase activity by in vitro, and than to compared allopurinol as positive control. Uric acid crystal growth rate from saturated solution with turbidimetry method was also observed. Ciplukan phytochemical assay showed that flavonoid, tannin, saponin, alkaloid, and steroid compounds but alkaloid and steroid were not detected in roselle extract. Probit analysis to water and ethanol extracts from roselle calyxes and ciplukan herbs showed lethal concentration 50 value (LC50) of 96.95, 40.03, 252.79, and 63.83 ppm, respectively. Ethanol and water extracts from ciplukan (70.08% and 43.66%) showed higher inhibition activity than ethanol and water roselle extracts (35.53% and 20.42%) but still lower than alloprinol (98.63%) in concentration 100 ppm. Among 4 extracts, only ciplukan ethanol extract had the lowest Inhibition concentration 50 value as 74.49 ppm indicated that it is potential to be developed as medicine. Turbidimetry method was not successful for observing uric acid crystal growth.

INHIBISI XANTIN OKSIDASE SECARA IN VITRO OLEH EKSTRAK ROSELA (Hibiscus sabdariffa) DAN CIPLUKAN (Physalis angulata)

DEDE YULIANTO

Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Sains pada Departemen Kimia

DEPARTEMEN KIMIA FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2009

Judul : Inhibisi Xantin Oksidase secara In Vitro oleh Ekstrak Rosela (Hibiscus sabdariffa) dan Ciplukan (Physalis angulata). Nama : Dede Yulianto NIM : G44204079

Disetujui:

Pembimbing I

Pembimbing II

Dr. Dyah Iswantini Pradono, MAgr NIP 19670730 199103 2 001

Prof. Dr. Latifah K Darusman, MS NIP 19530824 197603 2 001

Diketahui: Dekan Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Institut Pertanian Bogor

Dr. drh. Hasim, DEA NIP 19610328 198601 1002

Tanggal lulus:

PRAKATA Alhamdulillah, puji syukur hadirat Allah SWT, atas segala rahmat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan karya ilmiah ini. Shalawat serta salam semoga tercurah kepada suri tauladan umat manusia Nabi Muhammad SAW. Judul yang di pilih pada karya ilmiah ini adalah Inhibisi Xantin Oksidase secara In Vitro oleh Ekstrak Rosela (Hibiscus sabdariffa) dan Herba Ciplukan (Physalis angulata). Terima kasih penulis ucapkan kepada Ibu Dr. Ir. Dyah Iswantini Pradono, M.Agr sebagai pembimbing I dan Ibu Prof. Dr. Ir. Latifah K Darusman, MS selaku pembimbing II atas bimbingannya selama penelitian dan penyusunan karya ilmiah ini. Ucapan terima kasih penulis ucapkan untuk Mama, Bapa, Mbak, Asti dan segenap keluarga tercinta atas segala dukungan baik moril, materil, serta doa selama penulis menempuh pendidikan hingga selesainya karya ilmiah ini. Selain itu, penulis mengucapkan terima kasih kepada pak Nano, pak Mail, bu Ai, Neneng, Ana, Ai, Budi, Aprian, teman-teman kimia 41 dan 42 serta staf Pusat Studi Biofarmaka yang telah banyak membantu selama pelaksanaan penelitian. Semoga karya ilmiah ini dapat bermanfaat dan memberi sumbangsih bagi kemajuan bangsa.

Bogor, November 2009 (Dede Yulianto)

RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Serang pada tanggal 12 Desember 1984 dari ayah Dodo Zaelani dan ibu Sutari. Penulis merupakan putra kedua dari tiga bersaudara. Tahun 2003 penulis lulus dari SMUN 1 Serang dan pada tahun 2004 lulus seleksi penerimaan mahasiswa baru (SPMB) IPB. Penulis memilih Program Studi Kimia, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam. Selama mengikuti perkuliahan, penulis aktif menjadi asisten praktikum di beberapa mata kuliah, seperti Kimia Fisik S1 Biokimia 2007/2008, Kimia Fisik S1 Kimia 2007/2008, Kimia Industri D3 Analisis Kimia pada tahun ajaran 2007/2008, Kimia Dasar TPB 2008/2009, Kimia Fisik S1 ITP pada tahun ajaran 2008/2009, dan asisten praktikum Kimia Dasar D3 pada tahun ajaran 2009/2010. Penulis menyelesaikan praktik lapangan di bagian laboratorium Quality Control Physical Chemistry PT Indomilk Jakarta Timur Jakarta, pada tahun 2007 dengan judul Perbandingan Metode Rose-Gottlieb, Gerber Neusal, dan Gerber Asam untuk Penentuan Kadar Lemak Total Pada Produk Susu Cair Indomilk Choco.

DAFTRAR ISI Halaman DAFTAR TABEL .........................................................................................................

v

DAFTAR GAMBAR ....................................................................................................

v

DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................................

vi

PENDAHULUAN .........................................................................................................

1

TINJAUAN PUSTAKA Rosela (Hibiscus sabdariffa) ................................................................................... Ciplukan (Physalis angulata) ...................................................................................

Gout (Asam Urat)................................................................................................. Xantin Oksidase ................................................................................................. Flavonoid ........................................................................................................... Turbidimetri ........................................................................................................

1 2 2 3 4 5

BAHAN DAN METODE Bahan dan Alat ..................................................................................................... Lingkup Kerja ......................................................................................................

5 5

HASIL DAN PEMBAHASAN Kadar Air ............................................................................................................ 7 Rendemen............................................................................................................. 8 Fitokimia Rosela dan Ciplukan .......................................................................... 8 Toksisitas Pada Larva Udang .............................................................................. 9 Inhibisi Ekstrak Kasar Rosela Dan Ciplukan Pada Aktivitas Xantin Oksidase ................................................................................................................... 9 Pembentukan Kristal Natrium Urat ..................................................................... 12 SIMPULAN DAN SARAN Simpulan ............................................................................................................. 13 Saran .................................................................................................................... 13 DAFTAR PUSTAKA..................................................................................................... 13 LAMPIRAN .................................................................................................................. 17

DAFTAR TABEL

Halaman 1 Struktur senyawa flavonoid ......................................................................................... 4 2 Kandungan fitokimia simplisia kelopak rosela dan herba ciplukan ............................ 8 3 Kandungan fitokimia ekstrak air rosela dan ciplukan ................................................. 8 4 Kandungan fitokimia ekstrak etanol rosela dan ciplukan ............................................ 9 5 Nilai LC50 ekstrak rosela dan ciplukan terhadap A. salina . ....................................... 9 6 Persamaan linear ekstrak rosela dan ciplukan ............................................................. 11 7 Nilai IC50 ekstrak rosela dan ciplukan terhadap xantin oksidase ................................. 12 8 Indeks laju turbiditas kristal natrium urat .............................................................. 12

DAFTAR GAMBAR Halaman 1 Kelopak rosela ............................................................................................................. 2 2 Tanaman ciplukan ....................................................................................................... 2 3 Skema reaksi xantin oksidase yang mengkonversi hipoxantin menjadi xantin dan asam urat ................................................................................................................... 3 4 Kerangka dasar flavon ................................................................................................. 4 5 Persen inhibisi aktivitas xantin oksidase pada ekstrak air ........................................... 10 6 Persen inhibisi aktivitas xantin oksidase pada ekstrak etanol ..................................... 10 7 Persen inhibisi terbaik dari seluruh ekstrak, kontrol negatif, dan kontrol positif pada konsentrasi 100 ppm ................................................................................ 11

DAFTAR LAMPIRAN Halaman 1 Bagan alir penelitian ................................................................................................. 18 2 Ekstraksi air dan etanol .............................................................................................. 19 3 Pembuatan stok ekstrak dan penetasan kista A. salina ............................................... 20 4 Uji toksisitas ekstrak kasar terhadap larva udang A. salina ....................................... 21 5 Uji inhibisi aktivitas xantin oksidase.......................................................................... 22 6 Kadar air kelopak rosela dan herba ciplukan.............................................................. 23 7 Rendemen ekstrak kelopak rosela dan herba ciplukan ............................................... 23 8 Aktivitas ekstrak rosela dan herba ciplukan terhadap larva A. Salina setelah 24 jam ............................................................................................................................... 25 9 Pembuatan kurva standar........................................................................................... 28 10 Data hasil uji enzimatis berbagai ekstrak ................................................................. 28 11 Turbiditas asam urat dan Na asetat pada berbagai konsentrasi ................................ 33 11 Indeks laju turbiditas kristal natrium urat (TRI) ................................................ 38

PENDAHULUAN Penyakit asam urat (gout) sudah dikenal sejak 2000 tahun yang lalu dan menjadi salah satu penyakit tertua yang dikenal manusia. Diperkirakan bahwa penyakit asam urat terjadi pada 840 orang setiap 100 000 orang (Juandy 2008). Penyakit asam urat sangat berhubungan dengan hiperurisemia akibat kelebihan produksi dari asam urat dan dipengaruhi oleh tingginya masukan makanan yang kaya akan asam nukleat, seperti jeroan, kacang-kacangan, makanan hasil laut, dan makanan hasil fermentasi (Owen & Jhons 1999). Obat sintetik yang biasa dikonsumsi untuk mengobati asam urat adalah alopurinol. Alopurinol merupakan obat medis yang digunakan untuk menghambat enzim xantin oksidase (XO), tetapi obat ini memberikan banyak efek samping seperti radang hati dan reaksi alergi. Dengan demikian, perlu obat alternatif yang memiliki aktivitas pengobatan lebih baik dan efek samping yang rendah (Chiang et al. 1994). Senyawa flavonoid dan alkaloid pada tanaman dapat berperan sebagai obat untuk penyakit gout dengan menghambat kerja XO (Cos et al. 1998; Milián et al. 2004). Penggunaan bahan alam sebagai obat memiliki kelebihan, yaitu meskipun penggunaannya dalam waktu lama tetapi efek samping yang ditimbulkan relatif kecil sehingga dianggap lebih aman (Katno & Pramono 2002). Penelitian penghambat aktivitas XO telah banyak dilakukan pada berbagai tanaman obat yang berpotensi sebagai obat antigout. Penelitian yang dilakukan Kong et al. (2000) melaporkan bahwa ekstrak metanol Cinnamomum cassia, Chrysanthemum indicum, dan Lycopus europaeus memiliki aktivitas menghambat XO lebih besar dari 50%. Ekstrak tanaman Hexachlamys edulis dan Tamus communis L. memiliki aktivitas penghambat XO karena mengandung senyawa flavonoid dan tanin (Schmeda et al. 1996; Boumerfeg et al. 2009). Senyawa 6aminopurine yang berasal dari daun gandum memiliki daya inhibisi yang kuat dengan nilai IC50 10.89 µM (Hsieh et al. 2007). Hasil penelitian Iswantini dan Darusman (2003) menunjukan peran ekstrak kasar flavonoid herba sidaguri sebagai penghambat aktivitas XO dengan daya inhibisi terkuat bila dibandingkan dengan produk jamu komersial antigout lainnya yang beredar di pasaran. Kemampuan ekstrak kasar flavonoid sidaguri sebagai penghambat aktivitas XO mencapai

55.29% melalui mekanisme inhibisi kompetitif (Hidayat 2007). Kelopak rosela kaya flavonoid antosianin, asam sitrat, asam askorbat, tanin, saponin, dan triterpenoid (Mlati et al. 2007). Sementara ciplukan mengandung saponin, flavonoid (luteolin), polifenol, alkaloid, fisalin, asam palmitat, dan asam stearat (Edeoga et al. 2005). Kandungan senyawa flavonoid, tanin, dan alkaloid pada ekstrak kasar herba ciplukan dan rosela berpotensi mampu menghambat XO (Schmeda-Hirschmann et al. 1996; Cos et al. 1998; Milian et al. 2004). Berdasarkan kandungan senyawa yang terdapat pada tanaman rosela dan ciplukan dilakukan uji khasiat ekstrak tanaman terhadap pengobatan gout melalui evaluasi pengamatan pada laju pembentukkan kristal natrium urat dari larutan lewat jenuh. Nilai indeks laju turbiditas (TRI) kristal natrium urat ditentukan untuk menunjukkan efek penghambatan ekstrak rosela dan herba ciplukan pada pembentukkan kristal natrium urat. Penentuan nilai TRI dilakukan menggunakan metode turbidimetri berdasarkan metode Kavanagh et al. (2000) dengan memodifikasi konsentrasi, jenis kristal, dan penentuan waktu pengukuran. Penelitian ini dilakukan untuk membuktikan ekstrak kasar kelopak rosela dan ciplukan mampu menghambat aktivitas XO secara in vitro dan mampu menurunkan nilai TRI kristal natrium urat, serta mengetahui potensinya sebagai antigout dan membandingkannya dengan obat alopurinol.

TINJAUAN PUSTAKA Rosela (Hibiscus sabdariffa) Rosela merupakan tanaman asli Afrika. Rosela didomestikasi pada awal abad 4000 SM di Sudan. Sekarang rosela secara luas menyebar ke negara-negara tropik dan subtropik. Tumbuhan ini umumnya dikenal masyarakat dengan nama rosela, garnet balonda (Sunda), mrambos {Jawa Tengah), dan kasturi roriha (Ternate). Berdasarkan ilmu taksonomi tumbuhan rosela dapat diklasifikasikan dalam divisi Spermatophyta, kelas Magnoliopsida, bangsa Malvales, suku Malvaceae, marga Hibiscus, dan jenis H. sabdariffa (Gambar 1).

tumbuhan ciplukan dapat diklasifikasikan dalam divisi Spermatophyta, kelas Dicotyledonnae, bangsa Solanales, suku Solanaceae, marga Physalis, dan jenis P. angulata.

Gambar 1 Kelopak rosela. Kelopak bunga rosela kaya akan antosianin, asam sitrat, dan pektin. Rosela mengandung flavonoid gosipetin, quarsetin, hibisketin dan sabdaretin. Selain itu juga mengandung mineral seperti zat besi, natrium, kalsium, kalium, karbohidrat, serat, gula, dan vitamin (Duke 2008). Dalam kelopak kering rosela mengandung 1.7–2.5% antosianin (Blunden et al. 2005). Ekstrak rosela mengandung 51% antosianin dan antioksidan 24% (Tsai et al. 2002). Salah et al. (2002) melaporkan kandungan flavonoid kuarsetin, luteolin, dan luteolin glikoksida pada ekstrak rosela. Zat-zat seperti gosipetin, antosianin, dan hibiskin glikosida dipercaya sebagai diuretik (peluruh air seni) dan efek koleretik (pengeluaran empedu oleh hati) (Blunden et al. 2005). Rosela biasa digunakan sebagai obat tradisional untuk penyakit tekanan darah tinggi, penyakit hati, dan demam (Wang et al. 2000; Ross 2003; Mojiminiyi et al. 2007). Pigmen merah antosianin pada kelopak rosela dapat digunakan sebagai pewarna makanan (Esselen & Sammy 1975). Sementara kandungan terbesar dalam ekstrak air rosela ialah asam sitrat, asam askorbat, dan malat (Blunden et al. 2005). Kamhi et al. (2000) merekomendasikan penggunaan herba rosela kepada dokter sebagai pengganti obat medis hipertensi karena rasio dan risiko penggunaan herba rosela lebih aman dan lebih baik dibanding kandungan obat medis. Ciplukan (Physalis angulata) Ciplukan adalah tumbuhan asli Amerika yang kini telah tersebar secara luas di daerah tropis. Di Jawa tumbuh secara liar di kebun, tegalan, tepi jalan, semak, dan tepi hutan. Ciplukan di masyarakat Sunda disebut cecenet, sedangkan di Jawa disebut sebagai ceplukan, serta di masyarakat Bali disebut angket, kepok-kepokan, atau keceplokan. Di Inggris dikenal dengan nama morel berry (Gambar 2). Berdasarkan ilmu taksonomi

Gambar 2 Tanaman ciplukan. Ciplukan adalah tumbuhan yang tersebar sepanjang daerah tropis dan subtropis dunia. Penggunaan tumbuhan ini populer dalam pengobatan menyembuhkan luka, radang hati, malaria, penyakit kelamin, rematik, sakit telinga (Freiburghaus et al. 1996; Schimmer et al. 2001; Ankrah et al. 2003; Choi.& Hwang 2003). Ciplukan mengandung saponin, flavonoid (luteolin), polifenol, alkaloid, steroid, vitamin C, asam palmitat, dan asam stearat (Edeoga et al. 2005). Tanaman ciplukan bersifat analgetik (penghilang nyeri), detoksikan (penetral racun) serta pengaktif fungsi kelenjar-kelenjar tubuh. Saponin dan alkaloid yang terkandung dalam ciplukan memberikan rasa pahit dan berkasiat sebagai anti tumor dan menghambat pertumbuhan kanker, terutama kanker usus besar (Lin et al. 1992; Bastos et al. 2006). Ekstrak etanol ciplukan memiliki aktivitas antibakteri (Nayeemulla et al. 2006). Asam Urat Penyakit asam urat atau sering disebut artritis gout merupakan kelainan metabolik akibat deposisi kristal natrium urat pada jaringan atau akibat supersaturnasi asam urat di dalam cairan ekstra seluler. Asam urat adalah senyawa alkaloid turunan purin (xantin). Senyawa asam urat yang ditemukan pertama kali oleh Scheele pada tahun 1776 merupakan produk akhir dari metabolisme nitrogen. Asam urat diperoleh dari hasil ekskresi pada urin hewan pemakan daging. Asam urat (C5H4N4O3) merupakan kristal putih, tidak berbau dan berasa, mengalami dekomposisi dengan pemanasan menjadi asam sianida (HCN), sangat sukar larut dalam air, larut dalam gliserin dan alkali. Asam urat dapat larut pada larutan dengan pH tinggi dan

dapat pula dipanaskan untuk membantu kelarutannya hingga suhu 60 °C. Natrium urat adalah kristal yang terbentuk akibat tingginya konsentrasi asam urat dalam darah. Kristal natrium urat terkumpul pada persendian dan tulang rawan. Natrium urat sama halnya dengan asam urat, sukar larut dalam air. Faktor yang mempengaruhi pembentukan kristal natrium urat ialah pH, suhu, kekuatan ionik, dan konsentrasi Na+. Bentuk geometris kristal natrium urat adalah triklin atau berbentuk jarum (Rinaudo & Boistelle 1982). Penyakit asam urat umumnya menyerang lebih banyak pria daripada perempuan. Hal ini dikarenakan perempuan memiliki hormon estrogen yang ikut membuang asam urat melalui urin (Mansjoer et al. 2004). Kadar asam urat rata-rata di dalam darah atau serum bergantung pada usia dan jenis kelamin. Pada laki-laki, sebelum pubertas kadarnya sekitar 3,5 mg/dl. Setelah pubertas, kadarnya meningkat secara bertahap dan dapat mencapai 5,2 mg/dl. Pada perempuan kadar asam urat biasanya tetap rendah, baru pada usia pramenopause kadarnya di dalam darah rata-rata sekitar 4 mg/dl. Setelah menopause, kadarnya meningkat lagi sampai 4,7 mg/dl (Dalimartha 2006). Hiperurisemia adalah peningkatan kadar asam urat serum di atas nilai normal, yang pada laki-laki di atas 7 mg/dl dan pada perempuan di atas 6 mg/dl. Hiperurisemia bisa menimbulkan penyakit gout. Pengobatan dan pencegahan asam urat bisa dilakukan dengan beberapa cara. Pengobatan secara medis, yaitu dengan menghambat proses sintesis asam urat melalui pemberian alopurinol dan menghambat masuknya leukosit ke dalam sendi yang terkena deposit asam urat dengan kolkisin, atau dengan pemberian obat AINS (antiinflamasi nonsteroid) (Johnstone 2005). Pengobatan dan pencegahan penyakit gout bisa dilakukan dengan beberapa cara, yang pertama melakukan pola diet makanan, seperti menghindari makanan kaya purin, menghindari alkohol, dan banyak minum air putih. Pengobatan dengan memberikan ramuan tradisional telah terbukti melalui penelitian bahwa beberapa jenis tanaman mengandung berbagai senyawa aktif kimia yang dapat meluruhkan asam urat dengan cepat dan tuntas. Dalam pengobatan asam urat, obat tradisional memiliki beberapa fungsi, yaitu menetralisisr tumpukan sisa asam urat, toksin pada otot, tulang, dan sendi, serta membantu proses pembuangan. Selain

itu juga dapat melancarkan sirkulasi darah sehingga menghilangkan peradangan secara lembut dan aman serta mengurangi rasa nyeri (Dalimartha 2006). Xantin Oksidase Xantin aksidase (XO) berperan penting dalam katabolisme purin. XO mempunyai 2 bentuk, yaitu XO dan xantin dehidrogenase (XDH). XDH dapat dikonversi menjadi XO pada mamalia, baik dalam reaksi reversibel maupun irreversibel. XO merupakan enzim yang tersebar luas dalam beberapa spesies dari bakteri hingga manusia. Di dalam tubuh, XO ditemukan di sel hati dan otot, tetapi tidak ditemukan di dalam darah. XO merupakan suatu kompleks enzim yang terdiri atas 1332 residu asam amino, molibdenum (HO2SMo), FAD, dan Fe2S2 sebagai pusat reaksi redoks, dengan bobot molekul sebesar 275 000 Dalton membentuk 2 subunit yang saling setangkup (Hart et al. 1970). Menurut Westerfeld et al. (1959) Senyawa yang dapat berfungsi sebagai penstabilisasi XO diantaranya adalah salisilat, sistein, histamin, dan versenat. Sementara senyawa yang dapat menginhibisi XO berupa ion logam, urea, purin-6-aldehida, dan 2amino-4-hidroksipteridin-6 aldehida. XO mengkatalis oksidasi hipoxantin menjadi xantin lalu menjadi asam urat yang berperan penting pada penyakit gout. Pada saat bereaksi dengan xantin untuk membentuk asam urat, atom oksigen ditransfer dari molibdenum ke xantin. Perombakan pusat molibdenum yang aktif terjadi dengan penambahan air (Cos et al. 1998) (Gambar 3). Xantin+ 2O2 + H2O Xantin+O2+ H2O

Gambar 3

asam urat + 2O2*-+2H+ asam urat + H2O2

Skema reaksi xantin oksidase yang mengkonversi hipoxantin menjadi xantin dan asam urat (Cos et al. 1998).

Selama proses oksidasi molekul, oksigen bertindak sebagai akseptor elektron menghasilkan radikal superoksida (O2*) dan hidrogen peroksida (Ramdhani 2004). Satu unit XO dapat mengkonversi satu mikromol substrat (xantin) menjadi asam urat tiap satu menit pada pH optimum (pH 7.5) dan suhu optimum (25 °C). Apabila substratnya hipoxantin, aktivitasnya menjadi 50% atau setengahnya. XO dapat diisolasi dari berbagai macam sumber seperti susu, mikroorganisme, dan buttermilk. XO memiliki pengaruh antitumor dan berperan aktif dalam timbulnya panas akibat penyimpanan hepatik ferritin dalam plasma. Selain itu, XO diketahui dapat mengkatalisis reduksi nitrat dan nitrit menjadi nitrit oksida (Millr et al. 2002) dan sekaligus menyebabkan pembentukan radikal superoksida yang dapat menyebabkan peradangan (Bodamyali et al. 2002). Produksi asam urat berlebih dapat menyebabkan hiperurisemia namun ketika asam urat disimpan di dalam persendian akan menyebabkan peradangan dan penyakit gout. Penelitian untuk penghambat XO akan menguntungkan bukan saja untuk mengobati gout tetapi juga untuk menyerang berbagai penyakit lain (Kadota et al. 2004). Flavonoid Flavonoid tersebar luas di alam, terutama dalam tumbuhan tingkat tinggi dan jaringan muda. Sekitar 5–10% metabolit sekunder tumbuhan adalah flavonoid. Flavonoid merupakan grup senyawa alami dengan ragam struktur fenolat yang dapat ditemukan pada buah, sayuran, gandum, batang, akar, cabang, bunga, teh, dan anggur (Middleton 1998). Flavonoid mempunyai kerangka dasar yang terdiri atas 15 atom karbon dengan 2 cincin benzena terikat pada suatu rantai propana membentuk susunan C6-C3-C6 (Gambar 4). Susunan tersebut dapat menghasilkan 3 struktur, yaitu 1,3-diaril propana (flavonoid), 1,2-diarilpropana (isoflavonoid), dan 1,1-diarilpropana (neoflavonoid) (Markham 1988).

Flavonoid sebagai derivat benzo-γ-piron mempunyai banyak kegunaan di samping fungsinya yang pokok sebagai vitamin P untuk meningkatkan resistensi dan menurunkan permeabilitas kapiler darah. Efek lain flavonoid sangat banyak macamnya terhadap berbagai organisme dan efek ini dapat menjelaskan mengapa tumbuhan yang mengandung flavonoid dipakai dalam pengobatan. Flavonoid dapat bekerja sebagai antivirus, antialergi, antimikroorganisme, dan antioksidan untuk mengendalikan radikal bebas yang dapat menyebabkan tumor (Middleton 1998). Flavonoid dikenal sebagai antioksidan dan memberikan daya tarik sejumlah peneliti untuk meneliti flavonoid sebagai obat yang berpotensi mengobati penyakit yang disebabkan oleh radikal bebas. Flavonoid juga penghambat efektif dari beberapa enzim termasuk XO, siklooksigenase, dan lipooksigenase (Ruangrungsi et al. 1981; Hoorn et al. 2002; Hayashi et al. 1988). Flavonoid berpotensi dapat digunakan sebagai obat untuk penyakit gout dan ischemia dengan cara menurunkan konsentrasi asam urat dan penangkapan aktivitas superoksida dalam jaringan manusia (Cotelle et al. 1992). Flavon memiliki aktivitas inhibisi lebih kuat dibandingkan flavonol. Senyawa krisin, apigenin, luteolin, galangin, kaempferol, dan quarsetin memiliki aktivitas penghambat XO dan senyawa yang memiliki aktivitas inhibisi paling kuat adalah senyawa luteolin (Cos et al. 1998). Struktur senyawa flavonoid ditunjukan pada Table 1. Tabel 1 Struktur senyawa flavonoid Senyawa

R3

R5

R6

R7

R3'

R4'

Krisin

H

OH

H

OH

H

H

Apigenin

H

OH

H

OH

H

OH

Luteolin

H

OH

H

OH

OH

OH

Galangin

OH

OH

H

OH

H

H

Kaemferol

OH

OH

H

OH

H

OH

Kuarsetin

OH

OH

H

OH

OH

OH

Turbidimetri

Gambar 4 Kerangka dasar flavon

The America Public Health Association (APHA) mendefinisikan dari sifat optik yang menyebabkan cahaya dihamburkan dan ditransmisikan secara lurus pada sampel. Turbiditas bukanlah ukuran langsung dari partikel suspensi dalam air, tetapi ukuran dari

efek hamburan partikel yang terkena cahaya. Intensitas cahaya yang dihamburkan dan diserap oleh suspensi adalah fungsi konsentrasi jika kondisi lainnya konstan (Khopkar 1984). Kavanagh et al. (2000) menyatakan bahwa indeks laju turbiditas adalah nilai percobaan hasil pengukuran sifat turbiditas reaksi pembentukan suatu kristal. Dalam kaitannya dengan batu kristal natrium urat, nilai ini merupakan dugaan yang memadai terhadap nilai konstanta laju dan karakteristik bentuk kristal natrium urat, dan kedua parameter ini mewakili proses terbentuknya batu kristal natrium urat di dalam ginjal. Pendekatan pengukuran konstanta laju dan karakteristik kristal natrium urat berdasarkan perubahan turbiditasnya dapat dihitung dari persamaan berikut: Ln (∆D/mint=0) ≈ ln (Ka) – n ln (Sprod) + (n x 0,81) ln ([Na]t=0) + n ln ([Urat]t=0) Dimana (∆D/mint=0) = nilai perubahan pembentukan kristal, K = konstanta laju, a = karakteristik kristal, n = orde reaksi, Sprod = perubahan kelarutan, [Na]t=0 dan [urat]t=0 adalah konsentrasi natrium dan urat pada saat t = 0. Indeks laju turbiditas dari kristal natrium urat didapatkan dari anti-ln intersep kurva antara ln (∆D/mint=0) dan ln [Urat]t=0 . Jika percobaan dilakukan dengan penambahan konsentrasi urat yang berbedabeda tapi pada pH, suhu, dan [Na] yang tetap, kemudian diplotkan ln (∆D/min) pada ln [Urat] maka akan diperoleh gradien garis lurus dan sebuah intersep dimana berkaitan langsung dengan ln (Ka) (Kavanagh et al. 2000).

BAHAN DAN LINGKUP KERJA Alat dan Bahan Bahan yang digunakan ialah serbuk kelopak rosela, serbuk herba ciplukan, alopurinol, xantin oksidase, xantin, Tween 80, kista A. salina Leach, asam urat, dan natrium asetat. Bahan baku kelopak rosela dan herba ciplukan diperoleh dari UPT Kebun Percobaan Pusat Studi Biofarmaka LPPMIPB, Bogor. Alat analitis yang digunaka ialah spektrofotometer UV-Vis Hitachi 2800 dan turbidimeter 2100P HACH. .

Lingkup Kerja Penelitian ini dilakukan beberapa tahap, yaitu persiapan sampel, penentuan kadar air, ekstraksi, uji fitokimia, uji toksisitas ekstrak terhadap A. salina Leach, uji inhibisi ekstrak terhadap aktivitas xantin oksidase secara in vitro. Diagram alir penelitian disajikan pada Lampiran 1. Persiapan sampel Kegiatan Sortasi basah bertujuan memisahkan kotoran atau bahan-bahan asing lainnya dari tanaman yang akan diteliti. Pekerjaan dilanjutkan dengan pencucian untuk menghilangkan tanah dan pengotor lainnya yang masih menempel pada bahan yang sudah disortasi basah. Tahap berikutnya adalah perajangan bertujuan mempermudah proses pengeringan dan penggilingan. Tahap terakhir pengeringan dilakukan dengan udara kering hingga kadar air kurang dari 10% agar bahan yang diperoleh tidak mudah rusak akibat dari mikroorganisme. Penentuan kadar air (AOAC 1984) Cawan porselen dikeringkan dalam oven pada suhu 105 ºC selama 30 menit, lalu cawan porselen didinginkan dalam eksikator selama 30 menit dan ditimbang bobot kosongnya. Sampel ditimbang sekitar 3 g dan dimasukkan ke cawan porselen. Sampel beserta cawannya dipanaskan pada suhu 105°C selama 3 jam di dalam oven. Setelah didinginkan dalam eksikator selama 30 menit, cawan beserta isinya ditimbang. Prosedur dilakukan berulang kali sampai didapatkan bobot tetap dengan selisih kurang dari 1 mg. Penentuan kadar air dilakukan sebanyak 3 kali ulangan (triplo). Persen kadar air kelopak rosela dan herba ciplukan dihitung dengan persamaan: a-b % Kadar Air = x 100% a dengan a = bobot sebelum dikeringkan (g) b = bobot setelah dikeringkan (g) Ekstraksi air (BPOM 2004) Serbuk kelopak rosela dan herba ciplukan diekstraksi dengan nisbah sampel pelarut air 1:10 menggunakan metode maserasi selama 6 jam sambil sekali-sekali diaduk, kemudian didiamkan sampai 24 jam. Maserat dipisahkan dan proses diulangi 1 kali dengan jenis dan jumlah pelarut yang sama. Semua maserat dikumpulkan dan diuapkan dengan radas penguap berputar hingga diperoleh ekstrak kering (Lampiran 2).

Ekstraksi etanol (BPOM 2004) Serbuk kelopak rosela dan herba ciplukan diekstraksi dengan nisbah sampel pelarut etanol 95% 1:10 menggunakan metode maserasi selama 6 jam sambil sekali-sekali diaduk, kemudian didiamkan sampai 24 jam. Maserat dipisahkan dan proses diulangi 1 kali dengan jenis dan jumlah pelarut yang sama. Semua maserat dikumpulkan dan diuapkan dengan radas penguap berputar hingga diperoleh ekstrak kental (Lampiran 2). Penentuan rendemen ekstrak (Ramdani 2004) Ekstrak sampel yang telah dipekatkan dengan radas penguap berputar ditambahkan beberapa ml etanol sampai semua etanol menguap. Ekstrak sampel ditimbang dan dihitung rendemennya dengan rumus sebagai berikut: a % Rendemen ekstrak = x 100% (1 - x)b Keterangan: a = bobot ekstrak (g) b = bobot sampel (g) x = kadar air Uji fitokomia (Harborne 1987) Uji alkaloid. Sebanyak 1 g contoh dilarutkan dalam 10 ml kloroform dan 4 tetes NH4OH kemudian disaring dan filtratnya dimasukkan ke dalam tabung reaksi bertutup. Ekstrak kloroform dalam tabung reaksi dikocok dengan 6 ml H2SO4 2 M dan lapisan asamnya dipisahkan ke dalam tabung reaksi yang lain. Lapisan asam ini diteteskan pada lempeng tetes dan ditambahkan pereaksi Meyer, Wagner, dan Dragendrof yang akan menimbulkan endapan warna berturut-turut putih, cokelat, dan merah jingga. Uji triterpenoid dan steroid. Sebanyak 1 g contoh dilarutkan dengan 25 ml etanol panas 50 ºC, kemudian disaring ke dalam pinggan porselen dan diuapkan sampai kering. Residu dilarutkan dengan eter dan dipindahkan ke dalam tabung reaksi, lalu ditambahkan 3 tetes asam asetat anhidrat dan 1 tetes H2SO4 pekat (uji Liebermen-Buchard. Warna merah atau ungu menunjukkan adanya triterpenoid dan warna hijau atau biru menunjukkan adanya steroid. Uji flavonoid. Sebanyak 1 gram contoh ditambahkan 100 ml air panas kemudian dididihkan selama 5 menit dan disaring. Filtrat yang diperoleh kemudian diambil sebanyak 5 ml, ditambah dengan serbuk Mg 0.05 gram, 1 ml HCl pekat, dan 1 ml amil alkohol. Campuran dikocok kuat-kuat. Uji positif

ditandai dengan munculnya warna merah, kuning, atau jingga pada lapisan amil alkohol. Uji saponin. Sebanyak 1 g contoh ditambahkan dalam 100 ml air panas kemudian dididihkan selama 5 menit lalu disaring. Sebanyak 5 ml filtrat dikocok dalam tabung reaksi tertutup selama 10 detik kemudian dibiarkan 10 menit. Adanya saponin ditunjukkan dengan terbentuknya buih stabil. Uji tanin. Sebanyak 1 g contoh ditambah 100 ml air panas, dididihkan selama 5 menit, dan disaring. Sebagian filtrat yang diperoleh ditambah larutan besi(III) klorida. Terbentuknya warna hitam kehijauan menunjukkan adanya tanin. Uji kuinon. Sebanyak 1 g contoh ditambahkan ke dalam 100 ml air panas kemudian dididihkan selama 5 menit lalu disaring. Sebanyak 10 ml filtrat yang dihasilkan kemudian ditambahkan beberapa tetes larutan NaOH 1 N. Terbentuknya warna merah menunjukan adanya kuinon. Uji toksisitas ekstrak terhadap A. salina (Meyer et al. 1982) Penetasan kista. Kista A. salina ditimbang sebanyak 50 mg kemudian dimasukkan ke dalam wadah yang berisi air laut yang sudah disaring. Setelah diaerasi kista dibiarkan selama 48 jam di bawah pencahayaan lampu agar menetas sempurna. Larva yang sudah menetas diambil untuk digunakan dalam uji toksisitas (Lampiran 3). Uji toksisitas pada A. salina. Sebanyak 10 ekor larva A. salina dimasukkan ke dalam vial yang berisi air laut lalu ditambahkan larutan ekstrak (air dan etanol) sehingga konsentrasi akhirnya menjadi 1000, 100, dan 10 ppm. Pengamatan dilakukan setelah 24 jam dengan menghitung jumlah larva yang mati dari total larva yang dimasukkan ke dalam botol vial. Perhitungan memakai bantuan kaca mata pembesar. Pengolahan data persen mortalitas kumulatif digunakan analisis probit LC50 dengan selang kepercayaan 95% (Lampiran 4). Uji inhibisi aktivitas xantin oksidase secara in vitro (Tamta et al. 2005) Penentuan panjang gelombang (λ) maksimum. Larutan bufer fosfat 0.05 M pH 7.5 sebanyak 1.9 ml dimasukkan kedalam tabung reaksi, lalu ditambahkan 1 ml larutan xantin 0.15 M dan 0.1 ml enzim XO 0.1 U/ml protein. Campuran diinkubasi dalam penangas air pada suhu 25 °C selama 30 menit, kemudian segera ditambahkan 1 ml HCl 0.58

M untuk menghentikan reaksi. Serapan campuran diukur menggunakan spektrofotometer UV Hitachi 2800 pada kisaran panjang gelombang (λ) 200–400 nm untuk mengetahui λ maksimumnya. Kurva standar. Larutan substrat (xantin) dibuat pada berbagai konsentrasi (0.1; 0.2; 0.3; 0.4; 0.5; 0.6; 0.7 ppm), kemudian diukur serapannya menggunakan spektrofotometer UV pada panjang gelombang 264 nm. Kurva hubungan antara konsentrasi dan serapan dibuat. Persamaan kurva linear tersebut digunakan untuk menghitung aktivitas XO. Inhibisi Aktivitas Xantin Oksidase. Uji daya inhibisi ekstrak air dan etanol kelopak rosela dan herba ciplukan pada XO dilakukan pada kondisi optimumnya. Kondisi optimum pengujian mengacu pada Iswantini dan Darusman (2003), yaitu pada waktu inkubasi 45 menit, suhu 20 °C, pH 7.5, konsentrasi XO 0.1 unit/ml, dan konsentrasi substrat (xantin) 0.7 mM. Ekstrak dimasukkan ke dalam tabung reaksi dengan beragam konsentrasi berdasarkan hasil uji toksisitas pada A. salina, dan ditambah larutan bufer kalium fosfat 50 mM pH 7.5 sehingga volumenya menjadi 1.9 ml. Campuran kemudian ditambah 1 ml xantin 2.1 mM dan xantin oksidase 0.1 unit/ml sebanyak 0.1 ml lalu diinkubasi pada suhu 20 0 C selama 45 menit. Setelah diinkubasi, campuran segera ditambahkan HCl 0.58 M sebanyak 1 ml untuk menghentikan reaksinya (Lampiran 5). Campuran diukur serapannya menggunakan spektrofotometer UV pada panjang gelombang 264 nm untuk melihat seberapa besar sisa xantin yang tidak bereaksi dalam sampel uji. Daya inhibisi yang diperoleh dibandingkan dengan alopurinol. Preparasi urin buatan (Shmaefsky 2004) Sebanyak 36.4 g urea ditambahkan ke dalam 1.5 L air distilata dan diaduk sampai semua kristal larut. Kemudian ditambahkan 15 g NaCl dan 9 g KCl diaduk sampai larutan jernih. Keasaman (pH) diperiksa dengan menggunakan kertas indikator untuk menjamin agar pH berada pada kisaran urin normal yaitu 5–7. Jika pH berada di luar kisaran tersebut, ditambah HCl 1N untuk menurunkan pH atau NaOH 1N untuk menaikkan pH. Larutan ini siap disimpan sebagai stok untuk larutan urin normal dan dapat didinginkan untuk beberapa minggu atau dibekukan untuk beberapa bulan. Sebelum digunakan larutan dibiarkan sampai mencapai suhu ruang. Untuk menjamin kesamaan dengan urin manusia, sebanyak 4 g kreatin

dan 100 mg albumin dapat dicampurkan secara perlahan ke dalam 2 L larutan. Penentuan waktu pengukuran, konsentrasi natrium dan konsentrasi asam urat (Kavanagh et al. 2000) Urin buatan disiapkan dengan konsentrasi NaCl 2, 4, 6, 8, dan 10 mM, kemudian disiapkan pula larutan asam urat dengan konsentrasi 2, 5, 7, 10, 13, 15, 20, dan 25 mM. Pengukuran turbiditas dilakukan menggunakan turbidimeter. Sel turbidimeter diisi dengan 13.6 ml larutan natrium asetat dan secara cepat ditambahkan 1.4 ml larutan asam urat (waktu tetes pertama asam urat bercampur dengan natrium asetat dihitung sebagai waktu 0 menit). Campuran dikocok pelan selama 10 detik lalu sel dimasukkan ke dalam kompartemen turbidimeter dan diukur nilai turbiditasnya. Pengukuran nilai turbiditas dilakukan selama 16 menit dengan interval waktu satu menit setiap pengukuran. Waktu pengukuran untuk pengukuran selanjutnya ditentukan berdasarkan kelinearitasan kurva turbiditas terhadap waktu yang diperoleh. Konsentrasi asam urat yang dipilih berdasarkan pada kelinearan kurva ln (∆D/min) terhadap ln [asam urat] dan pemilihan konsentrasi natrium berdasarkan pada nilai TRI dari masing-masing konsentrasi natrium. Penentuan indeks laju turbiditas (TRI) kristal natrium urat Penentuan nilai TRI kristal natrium urat dilakukan berdasarkan metode kavanagh et al. (2000) yang dimodifikasi jenis kristal yang digunakan dan penentuan waktu pengukuran. Pengukuran nilai turbiditas dilakukan selama 10 menit dengan interval waktu satu menit setiap pengukuran. Pengaruh dari ekstrak rosela dan ciplukan dilihat dengan menambahkan sampel sebanyak 1 ml ke dalam sel turbidimeter yang berisis larutan natrium klorida, kemudian dengan segera ditambahkan larutan asam urat selanjutnya dilakukan metode yang sama sepaerti pada penentuan TRI kristal natrium urat tanpa sampel dengan ragam konsentrasi natrium dan asam urat yang sama.

HASIL DAN PEMBAHASAN Kadar Air Sampel yang digunakan pada penelitian ini adalah serbuk kelopak rosela dan herba ciplukan. Fungsi penentuan kadar air adalah

untuk mengetahui cara penyimpanan terbaik bagi contoh dan menghindari pengaruh aktivitas mikrob. Selain itu juga dengan mengetahui kadar air suatu contoh dapat diperkirakan faktor koreksi dalam perhitungan rendemen hasil ekstraksi. Kadar air yang diperoleh dari serbuk kelopak rosela dan serbuk herba ciplukan masing-masing adalah 8.79 dan 7.77% (Lampiran 6). Kandungan air pada sampel tersebut terbilang cukup rendah. Perolehan tersebut menunjukkan bahwa kelopak rosela dan herba ciplukan yang berupa serbuk dapat disimpan dalam waktu yang relatif lama untuk digunakan lebih lanjut. Hal ini sesuai dengan pernyataan Winarno (1997), yaitu bila kadar air yang terkandung dalam suatu bahan kurang dari 10% maka kestabilan optimum bahan akan tercapai dan pertumbuhan mikroba dapat dikurangi. Rendemen Ekstrak Mekanisme ekstraksi pada metode maserasi adalah adanya proses difusi pelarut ke dalam dinding sel tumbuhan untuk mengestrak senyawa yang ada dalam tumbuhan tersebut. Alasan etanol digunakan sebagai larutan pengekstrak karena etanol memiliki 2 gugus fungsi yang berbeda kepolarannya diharapkan senyawa-senyawa dengan kepolaran yang berbeda dalam sampel akan terekstrak ke dalam etanol (Khopkar 2002). Rendemen ekstrak etanol rosela dan ciplukan masing-masing, yaitu 30.05 dan 6.28%. Rendemen ekstrak air rosela dan ciplukan masing-masing sebesar 38.68 dan 24.59% pada bobot keringnya (Lampiran 7). Rendemen terbesar dihasilkan pada ekstraksi menggunakan pelarut air hal ini dikarenakan kandungan senyawa polar pada kedua sampel lebih banyak sehingga lebih terekstrak pada pelarut air. Fitokimia Rosela dan Ciplukan Uji fitokimia bertujuan untuk menguji keberadaan golongan senyawa metabolit sekunder seperti alkaloid, flavonoid, saponin, tanin, steroid, triterpenoid, dan kuinon dalam sampel. Uji pendahuluan ini dilakukan untuk mengetahui ada tidaknya flavonoid di dalam ekstrak dan senyawa-senyawa lain yang kemungkinan dapat berperan dalam menginhibisi XO. Tabel 2 menunjukan bahwa simplisia herba ciplukan memiliki senyawa metabolit sekunder lebih banyak daripada simplisia kelopak rosela. Herba ciplukan mengandung

senyawa alkaloid dan steroid yang tidak ditemukan pada kelopak rosela. Hasil ini sesuai dengan penelitian Edeoga et al. (2005) yang melaporkan bahwa ciplukan mengandung saponin, flavonoid (luteolin), polifenol, alkaloid, steroid (fisalin), asam palmitat, dan asam stearat. Tabel 2 Kandungan fitokimia simplisia rosela dan ciplukan Hasil uji Golongan senyawa Rosela Ciplukan Alkaloid +++ Flavonoid +++ +++ Saponin + ++ Tanin ++ ++ Triterpenoid Steroid ++ Kuinon Keterangan: tanda (+) menunjukkan tingkat intensitas warna dan (-) menunjukkan senyawa metabolit sekunder tidak terdapat pada ekstrak

Hasil uji fitokimia pada ekstrak air menunjukkan adanya senyawa flavonoid, tanin, dan saponin pada kedua sampel dengan intensitas yang berbeda. Intensitas warna senyawa flavonoid pada ekstrak air ciplukan lebih tinggi dari pada ekstrak air rosela. Hal ini diduga karena senyawa flavonoid yang terkandung dalam ekstrak air ciplukan lebih banyak. Selain itu dapat diduga karena jenis flavonoid yang terkandung dalam ekstrak air ciplukan berbeda dengan senyawa flavonoid yang terkandung dalam ekstrak air rosela. Senyawa metabolit sekunder lain yang hanya terdapat pada ekstrak air ciplukan adalah alkaloid dan steroid (Tabel 3). Tabel 3

Kandungan fitokimia ekstrak air rosela dan ciplukan Hasil uji Golongan senyawa Rosela Ciplukan Alkaloid +++ Flavonoid ++ +++ Saponin + ++ Tanin + + Triterpenoid Steroid ++ Kuinon -

Keterangan: tanda (+) menunjukkan tingkat intensitas warna dan (-) menunjukkan senyawa metabolit sekunder tidak terdapat pada ekstrak

Ekstrak etanol rosela dan ciplukan menunjukkan senyawa yang sama seperti pada ekstrak air namun intensitas warna ekstrak etanol yang lebih besar terutama pada kandungan tanin. Hal ini diduga karena etanol memiliki gugus polar dan nonpolar, sehingga senyawa dengan kepolaran yang berbeda dapat terekstrak (Tabel 4). Kandungan senyawa pada rosela sesuai dengan penelitian Mlati et al. (2007), yaitu kelopak rosela menunjukkan adanya golongan senyawa flavonoid, tanin, saponin, dan triterpenoid. Namun dalam penelitian ini tidak terdeteksi adanya triterpenoid. Tabel 4

Kandungan fitokimia ekstrak etanol rosela dan ciplukan Hasil uji Golongan senyawa Rosela Ciplukan Alkaloid +++ Flavonoid ++ ++ Saponin + + Tanin ++ ++ Triterpenoid Steroid ++ Kuinon -

Keterangan: tanda (+) menunjukkan tingkat intensitas warna dan (-) menunjukkan senyawa metabolit sekunder tidak terdapat pada ekstrak

Toksisitas pada Larva Udang Uji larva udang biasa digunakan untuk penapisan awal pada senyawa yang diduga berkhasiat sebagai antikanker (Anderson 1991). Pemeriksaan toksisitas diperlukan untuk mengetahui berapa konsentrasi yang dapat menyebabkan keracunan sehingga dapat diketahui jumlah penggunaan yang tepat. Hasil uji toksisitas ini dapat diketahui dari jumlah kematian larva udang A. salina karena pengaruh ekstrak atau senyawa bahan alam tertentu dari dosis yang telah ditentukan. A. salina yang digunakan untuk uji toksisitas diperoleh dari hasil penetasan dengan bantuan aerator untuk memenuhi kadar oksigen yang terlarut. Larva udang yang digunakan berumur 24 jam setelah menetas karena pada umur ini larva A. salina bersifat peka terhadap kondisi lingkungan. Pengujian toksisitas terhadap ekstrak kasar air rosela dan ciplukan diperoleh nilai konsentrasi letal 50 (LC50) masingmasing sebesar 96.95 dan 252.79 ppm (Lampiran 8). Nilai LC50 ekstrak etanol rosela dan ciplukan masing-masing sebesar 40.03 dan 63.83 ppm (Tabel 5). Nilai LC50 ini menunjukkan bahwa ekstrak kasar memiliki

potensi bioaktif karena menurut Meyer et al. (1982) suatu senyawa memiliki potensi bioaktif jika nilai LC50-nya di bawah 1000 ppm. Tabel 5 Nilai LC50 ekstrak roseladan ciplukan terhadap A. salina L Ekstrak LC50 (ppm) Etanol rosela Etanol ciplukan Air rosela Air ciplukan

40.03 63.83 96.95 252.79

Nilai LC50 masing-masing ekstrak dapat dijadikan sebagai batas konsentrasi tertinggi pada penentuan ragam konsentrasi ekstrak dalam uji enzimatik aktivitas XO. Hal ini dikarenakan pada formulasi obat akan lebih aman jika konsentrasinya dibuat di bawah nilai LC50. Inhibisi Ekstrak Kasar Rosela dan Ciplukan pada Aktivitas Xantin Oksidase Penentuan panjang gelombang maksimum dilakukan sebelum uji inhibisi XO. Pengukuran dilakukan menggunakan spektrofotometer ultarviolet (uv) pada kisaran panjang gelombang 200–400 nm karena senyawa yang akan diukur tidak berwarna. Selain itu, senyawa xantin yang akan diukur dari reaksi enzimatis diperkirakan memiliki panjang gelombang 263 nm (Westerfeld et al. 1959). Pengukuran menggunakan spektrofotometer berkas ganda merk Hitachi 2800. Hasil uji pencarian panjang gelombang maksimum diperoleh pada panjang gelombang (λ) 264 nm. Hasil ini tidak berbeda jauh dengan λmaks yang diperoleh Hakim (2005), yaitu 262 nm. Terjadi pergeseran batokromik mungkin dikarenakan pengaruh pelarut sehingga terjadi pergeseran λmaks sebesar 2 nm. Uji inhibisi inhibisi pada XO dilakukan pada semua ekstrak rosela dan ciplukan dengan menggunakan varian konsentrasi. Pengujian pada konsentrasi beragam ini ditunjukkan untuk melihat pengaruh penambahan konsentrasi ekstrak pada peningkatan daya inhibisi. Ragam konsentrasi ekstrak yang digunakan ialah 10–100 ppm. Selain itu juga dilakukan pengamatan aktivitas enzim tanpa penambahan ekstrak (blangko) untuk melihat pengaruh inhibisi ekstrak tersebut pada aktivitas enzim. Pembuatan kurva standar perlu dilakukan sebelum uji enzimatik untuk mengetahui serapan xantin pada berbagai konsentrasi.

Inhibisi (%)

50 43.66 45 40 35 29.6 29.3 27 30 20.82 25 18.75 19.38 18.78 20.82 20.42 20 12.52 15 9.86 10 5 0 10 20 40 60 80 100 Konsentrasi (ppm) Ekstrak air rosela Ekstrak air ciplukan

Gambar 5

Persen inhibisi aktivitas xantin oksidase ekstrak air.

Daya inhibisi ekstrak air ciplukan (43.66%) jauh lebih besar daripada ekstrak rosela (20.82%). Hal ini diduga karena tingginya kandungan alkaloid dan flavonoid pada ekstrak air herba ciplukan sehingga memiliki efek inhibitor XO lebih kuat dibandingkan dengan ekstrak air rosela. Hasil uji fitokimia menunjukkan bahwa ekstrak air herba ciplukan lebih banyak mengandung senyawa metabolit sekunder (Tabel 2). Efek sinergis metabolit sekunder pada ekstrak air ciplukan seperti alkaloid, flavonoid, tanin, dan steroid membuat daya inhibisi ekstrak air ciplukan lebih kuat daripada ekstrak air rosela. Gambar 6 menunjukkan daya inhibisi ekstrak etanol rosela dan ciplukan. Ekstrak etanol herba ciplukan menunjukkan daya inhibisi yang jauh lebih besar (70.08%) dibandingkan dengan ekstrak etanol rosela (35.53%) pada konsentrasi 100 ppm. Berdasarkan data tersebut diduga senyawa metabolit sekunder yang bersifat inhibisi lebih banyak terdapat pada ekstrak ciplukan. 80

70.08

70 60 Inhibisi (%)

Dengan demikian dapat diketahui berapa jumlah xantin yang dikonversi menjadi asam urat dalam reaksi enzimatis. Persamaan linier kurva standar yang diperoleh adalah y=2.0315x+0.2688 dan nilai R = 95.24% (Lampiran 9). Y adalah serapan xantin dengan penambahan ekstrak yang terukur dan x adalah konsentrasi xantin sisa yang tidak terkonversi menjadi asam urat. Konsentrasi ini nantinya dapat diubah menjadi konsentrasi xantin yang bereaksi. Dengan diperolehnya konsentrasi xantin yang bereaksi, maka akan diketahui seberapa besar aktivitas xantin oksidase dalam mengubah xantin menjadi asam urat, sekaligus dapat ditentukan seberapa besar persen inhibisi ekstrak yang diujikan terhadap aktivitas XO. Uji enzimatis dilakukan pada kondisi optimum seperti yang dilaporkan oleh Iswantini & Darusman 2003. Kondisi optimum tersebut adalah pada suhu inkubasi 20 oC, pH 7.5, konsentrasi xantin oksidase 0.1 unit/ml, konsentrasi xantin 0.7 mM, waktu inkubasi selama 45 menit, dan pada panjang gelombang 264 nm yang diperoleh dari pencarian λmaks. Hasil uji menunjukkan bahwa semua ekstrak yang diuji memiliki aktivitas yang lebih rendah dibandingkan dengan blangko. Daya inhibisi seluruh ekstrak rosela dan ciplukan baik dengan menggunakan pelarut air dan etanol menunjukkan bahwa hampir semua ekstrak berpotensi menghambat aktivitas XO. Secara keseluruhan, persen inhibisi aktivitas enzim meningkat seiring dengan meningkatnya konsentrasi ekstrak (Lampiran 10). Ektrak air rosela dan ciplukan terbukti dapat menurunkan kerja enzim XO cukup baik pada konsentrasi rendah 10 ppm dengan % inhibisi masing-masing sebesar 18.75% dan 12.52%, sementara persen inhibisi tertinggi untuk rosela sebesar 20.82% pada konsentrasi 80 ppm dan persen inhibisi tertinggi ekstrak air ciplukan 43.66% pada konsentrasi 100 ppm (Gambar 5). Semakin tinggi konsentasi ekstrak air rosela persen inhibisi XO menurun. Hal ini mungkin disebabkan oleh kandungan asam organik pada ekstrak air rosela yang cukup tinggi sehingga mempengaruhi kerja enzim XO. Blunden et al. (2005) melaporkan tingginya konsentrasi asam organik pada ekstrak air kelopak rosela yang didominasi oleh asam sitrat, asam askorbat, dan malat sehingga keasaman rosela mencapai pH 3. Kerja enzim salah satunya dipengaruhi oleh pH sehingga apabila pH lingkungan tidak sesuai dengan pH optimumnya maka enzim akan berkurang aktivitasnya.

44.41

50

35.3

40 30 20

50.18 35.53

25.21 18.05

19.44 18.52 16.61

10 0 20

40

60

80

100

Konsentrasi (ppm) Ekstrak etanol rosela Ekstrak etanol ciplukan

Gambar 6

Persen inhibisi aktivitas xantin oksidase ekstrak etanol

Berdasarkan uji fitokimia, senyawa metabolit sekunder yang terdapat pada ekstrak

120 100

98.63

80

70.08

60

% Inhibisi

etanol ciplukan meliputi flavonoid, tanin, dan alkaloid yang terbukti melalui beberapa penelitian sangat berperan dalam menghambat kerja XO (Schmeda-Hirschmann et al. 1996; Cos et al. 1998; Milián et al. 2004). Hasil yang didapat sesuai dengan literatur, bahwa tanaman ciplukan mengandung saponin, flavonoid (luteolin), polifenol (tanin), alkaloid, dan steroid (Edeoga et al. 2005). Ekstrak rosela mangandung golongan senyawa flavonoid quarsetin, mirisetin, luteolin, luteolin glikosida, tanin, dan triterpenoid (Mlati et al. 2007). Senyawa flavonoid diisolasi dari ekstrak etil asetat rosela secara kromatografi kertas preparatif. Isolat diduga merupakan senyawa flavonoid glikosida golongan flavon yang mempunyai gugus hidroksil pada posisi 5, 7, dan 4’ (Salah et al. 2002; Mlati et al. 2007). Kandungan flavonoid golongan kuersetin, mirsetin, apigenin, dan luteolin dari ekstrak tumbuhan sebagai inhibitor XO terkuat disebabkan oleh adanya gugus hidroksil (gugus OH) pada C5 dan C7. Selain itu juga disebabkan ikatan rangkap antara C2 dan C3 sehingga cincin B co-planar terhadap A, akibatnya lebih memudahkan interaksi dengan XO, sedangkan adanya ikatan rangkap pada flavonoid memungkinkan reaksi adisi (oksidasi oleh xantin oksidase) (Cos et al. 1998; Van Hoorn et al. 2002). Kemampuan flavonoid dalam menghambat aktivitas XO berlangsung melalui mekanisme inhibisi kompetitif dan interaksi dengan enzim pada gugus samping (Nagao et al. 1999; Lin et al. 2002). Daya inhibisi yang besar pada ekstrak ciplukan diduga karena kandungan senyawa luteolin. Daya inhibisi ekstrak etanol rosela dan ciplukan lebih tinggi daripada ekstrak air. Hal ini diduga karena kandungan senyawa metabolit sekunder yang bersifat semipolar pada ekstrak etanol memiliki efek yang cukup kuat dalam menghambat XO. Gambar 7 menunjukkan perbandingan daya inhibisi setiap ekstrak sampel, ekstrak etanol kumis kucing, produk komersial, dan kontrol positif (dengan penambahan alopurinol) pada konsentrasi terbesar (100 ppm). Berdasarkan hasil penelitian ekstrak etanol ciplukan memiliki daya inhibisi terbesar (70.08%) dibandingkan produk komersial dan ekstrak etanol kumis kucing masing-masing sebesar 34.15 dan 48.28%. Akan tetapi jika dibandingkan alopurinol pada konsentrasi yang sama, daya inhibisi ekstrak masih di bawah alopurinol (98.63%).

48.28

43.66

34.15

40

35.53

20.42 20 0 A

B

C

D

E

F

G

Alopurinol (A)

Biouric (B)

Ekstrak etanol kumis kucing (C)

Ekstrak air rosela (D)

Ekstrak air ciplukan (E)

Ekstrak etanol rosela (F)

Ekstrak etanol ciplukan (G)

Gambar 7 Persen inhibisi terbaik dari seluruh ekstrak, kontrol negatif, dan kontrol positif pada konsentrasi 100 ppm. Hasil penelitian menunjukan daya inhibisi ekstrak etanol ciplukan (70.08%) lebih tinggi daripada ekstrak etanol meniran (31.43%) dan ekstrak kasar flavonoid sidaguri (29.83%) dengan konsentrasi yang sama pada penelitian sebelumnya yang dilakukan oleh Wardani (2008) dan Ramdhani (2004). Namun, daya inhibisi ekstrak etanol ciplukan (70.08%) masih lebih rendah jika dibandingkan dengan ekstrak air salam (82.54%) pada penelitian Muflihat (2008). Data persen inhibisi masing-masing ekstrak digunakan untuk menentukan kurva estimasi dengan program SPSS. Selanjutnya akan diperoleh persamaan kurva estimasi. Dari hasil pengujian didapatkan bahwa inhibisi masing-masing ekstrak memiliki R2 lebih dari 80% pada kurva linear (Tabel 6). Persamaan untuk ekstrak air rosela memiliki R2 lebih kecil dari 80% sehingga persamaan tersebut tidak dapat digunakan untuk mencari nilai IC50. Tabel 6 Persamaan linear ekstrak rosela dan ciplukan Ekstrak Persamaan Air rosela y = 18.827+2.271Ln(x) Air ciplukan y = 9.0474+0.3235 x Etanol rosela y = 11.46+0.2541x Etanol ciplukan

y = 0.693x-1.62

Dari persamaan yang digunakan maka dapat ditentukan nilai IC50 dari masingmasing ekstrak. IC50 merupakan nilai konsentrasi minimal ekstrak yang dapat

menginhibisi enzim sampai 50% (Behera et al. 2003). Nilai konsentrasi dari seluruh ekstrak yang dapat menginhibisi XO sebesar 50% ditunjukkan dalam Tabel 7. Menurut Noro et al. (1983), ekstrak dikatakan berpotensi sebagai inhibitor XO dan bisa dimanfaatkan sebagai obat asam urat bila memiliki daya inhibisi lebih besar dari 50%. Tabel 7 Nilai IC50 ekstrak rosela dan ciplukan terhadap xantin oksidase Ekstrak IC50 (ppm) Air ciplukan 128.81 Etanol rosela 151.67 Etanol ciplukan 74.49 Hasil penelitian menunjukkan ekstrak etanol ciplukan memiliki nilai IC50 yang paling rendah (74.49 ppm). Ekstrak etanol ciplukan terbukti secara in vitro berpotensi sebagai obat antigout karena dapat menghambat enzim XO sampai 50% pada konsentrasi di bawah 100 ppm. Nilai IC50 yang paling tinggi adalah ekstrak etanol rosela, yaitu 151.67 ppm dapat dikatakan ekstrak etanol rosela kurang berpotensi dalam menghambat XO. Nilai IC50 yang rendah pada ekstrak tanaman sangat diharapkan karena dapat memudahkan aplikasinya sebagai obat. Pembentukan Kristal Natrium Urat Metode pengukuran pertumbuhan kristal sangat beragam salah satunya adalah menggunakan metode turbidimetri, metode turbidimetri memiliki keunggulan karena sederhana dan murah. Metode turbidimetri tidak memberikan data pertumbuhan kristal secara langsung namun berdasarkan kekeruhan yang ditimbulkan sebagai pertambahan masa kristal yang terbentuk (Kavanagh et al. 2000). Pada penelitian direaksikan antara asam urat (H2U) dan natrium asetat (CH3COONa) pada berbagai konsentrasi dan diharapkan akan terbentuk kekeruhan yang menggambarkan proses pembentukan kristal natrium urat. Hasil pengukuran turbiditas natrium urat semakin menurun dengan bertambahnya waktu. Hal ini disebabkan oleh kristal natrium urat merupakan kristal yang tidak berwarna sehingga tidak menghasilkan kekeruhan tetapi menurunkan kekeruhan ketika diukur dengan turbidimeter. Penelitian ini dipusatkan terhadap perubahan laju awal dari perubahan peningkatan turbiditas proses kristalisasi (∆D/min). Laju awal dari perubahan turbiditas ini dipengaruhi oleh konsentrasi natrium

asetat. Semakin tinggi konsentrasi natrium asetat maka nilai ∆D/min semakin tinggi, artinya perubahan laju yang terjadi semakin besar dengan bertambahnya konsentrasi natrium asetat, namun dalam penelitian ini tidak terjadi demikian yang terjadi adalah penurunan turbiditas. Nilai ∆D/min semakin menurun sejalan dengan bertambahnya waktu (Lampiran 11). Indeks laju turbiditas (TRI) kristal merupakan dugaan yang memadai terhadap nilai konstanta laju pertumbuhan (K) dan karakteristik bentuk kristal (a) natrium urat. plot dari ln (∆D/min) terhadap ln[asam urat] memberikan intersep dari kurva tersebut yang dapat dihubungkan secara langsung dengan nilai K dan a. Hasil yang diperoleh dari penelitian ini (Tabel 8) memberikan persamaan hubungan antara konsentrasi natrium asetat dengan TRI yang tidak memiliki kelinearan (R=0) sehingga persamaan yang diperleh tidak dapat diolah lebih lanjut data tersebut untuk melihat pertumbuhan kristal natrium urat (Lampiran 12). Tabel 8 Indeks laju turbiditas urat [Na-Asetat] (mM) 2 4 6 8 10

kristal natrium TRI 0.18768 0.17325 0.01407 0.26553 0.13821

Reaksi antara asam urat dan natrium asetat memberikan produk natrium urat yang rendah karena konsentrasi ion natrium dari penguraian natrium asetat dalam air rendah sehingga reaksinya tidak berjalan sempurna. Konsentrasi ion natrium sangat penting dalam terbentuknya kristal natrium urat (Burt & Dutt 1987). Reaksi antara asam urat (H2U) dan natrium hidroksida (NaOH) akan menghasilkan produk natrium urat lebih banyak (Wang & Konigsberg 1998) karena asam urat dapat terdisosiasi dengan baik pada kondisi basa sehingga akan terjadi reaksi pembentukan natrium urat (Na-UH ). Penelitian untuk melihat pertumbuhan kristal natrium urat kurang tepat apabila menggunakan metode turbidimetri karena kristal natrium urat tidak menimbulkan kekeruhan seperti pada kristal kalsium oksalat (CaOX) pada penelitian yang dilakukan Kavanagh et al. (2000). Hal ini, terbukti

dengan kelinearan yang sangat rendah pada kurva hubungan konsentrasi natrium asetat terhadap nilai TRI. Metode yang tepat untuk mempelajari laju pertumbuhan kristal natrium urat adalah metode secara langsung dengan metode gravimetri.

SIMPULAN DAN SARAN Simpulan Ekstrak rosela dan ciplukan dapat menghambat kerja xantin oksidase dalam mengubah xantin menjadi asam urat Dari seluruh ekstrak rosela dan ciplukan, ekstrak etanol ciplukan memiliki daya inhibisi terbesar (70.08%) namun masih lebih kecil dibandingkan dengan daya inhibisi alopurinol (98.63%). Berdasarkan hasil ini terbukti bahwa etanol ciplukan berpotensi sebagai obat antigout dengan cara menghambat enzim xantin oksidase karena memiliki daya inhibisi di atas 50% sedangkan ekstrak rosela daya inhibisinya masih tergolong rendah. Metode turbidimetri tidak dapat digunakan untuk melihat laju pertumbuhan kristal natrium urat karena kristal natrium urat tidak menimbulkan kekeruhan dalam proses pembentukannya dan dibuktikan dengan rendahnya kelinearan kurva hubungan konsentrasi natrium asetat terhadap nilai TRI ( R= 0). Saran Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut untuk mengetahui daya inhibisi ekstrak rosela dan ciplukan secara in vivo dan uji farmakologi lain agar memenuhi syarat sebagai obat. Selain itu, perlu dilakukan fraksinasi, analisis ultraviolet serta inframerah dan analisis NMR. Untuk mengetahui senyawa aktif yang terkandung di dalam ekstrak, yang secara khusus berpotensi menghambat aktivitas xantin oksidase. Perlu pengembangan metode yang tepat seperti metode gravimetri untuk meneliti laju pertumbuhan kristal natrium urat.

DAFTAR PUSTAKA Anderson et al. 1991. List of insect pest isusceptible to neem products. The Neem iTree-Source of Unique Natural products ifor Integrated Pest Management, iMedicine, Industry and Other Purposes. ipp. 195-204.. Weinheim: VCH.

Ankrah NA et al. 2003. Evaluation of efficacy and safety of a herbal medicine used for the treatment of malaria. Phytotherapy Research (17): 697–701. AOAC. 1984. Official Methods of Analysis. Virgina: Association of Official Analitycal Chemistry. [BPOM RI] Badan Pengawasan Obat dan Makanan Republik Indonesia. 2004. Ekstrak Tumbuhan Indonesia Vol. 2. Jakarta: BPOM. Bastos GNT. 2006. Antinociceptive effect of the aqueous extract obtained fromroots of Physalis angulata L. on mice. Journal of Ethnopharmacology :241– 245. Behera BC, Adawadkar B, Makhija U. 2003. Inhibitory activity of xanthine oxidase and superoxide-scavenging activity in some taxa of the lichen family graphidaceae. Phytomedicine 10:536543. Blunden G, Ali HB, Wabel AN. 2005. Phytochemical, pharmacological an toxicological aspect of Hibiscus sabdariffa L. Phytother Res 19:369– 375. Bodamyali T, Kancler JM, Millar TM, Blake DR, Stevens CR. 2002. Free radicals in rheumatoid arthritis: Mediators and modulators. Di dalam: Redox Genome interaction in Health and Disease. Ed J. Fuchs, M. Podda, L. Packer. New York: Marcel Dekker. Boumerfeg S et al. 2009. Antioxidant properties and xanthine oxidase inhibitory effects of Tamus communis L. root extracts. Phytotherapy Research 23:283–288. Chiang HC, Lo YJ, Lu FJ. 1994. J Enz Inhibit 8:61–71 Choi EM, Hwang JK. 2003. Investigations of anti-inflammatory and antinociceptive activities of Piper cubeba, Physalis angulata and Rosa hybrida. Journal of Ethnopharmacology 89: 171–175. Cos

P et al.. 1998. Structure-Activity relationship and classification of

flavonoids as inhibitors of xanthin oxidase and superoxide scavengers. J. Nat. Prod. 61:71-76. Dalimartha S. 2006. Resep Tumbuhan Obat Untuk Asam Urat. Bogor: Penebar Swadaya. Duke

JA. 2008. US. Department of Agriculture phytochemistry and Ethnobotanical data base. http//www.arsgrin.gov/duke/index.html [6 Juli 2008]

Edeoga HO, Okwu DE, Mbaebie BO. 2005. Phytochemical constituents of some Nigerian medicinal plants. African Journal of Biotechnology 7:685-688. Elkhalifa KF, Ibrahim MA, Elghazali G. 2006. A Survey of Medicinal Uses of Gash Delta Vegetation, Eastern Sudan. Saudi Journal of Biological Sciences 1:1–6. Esselen WB, Sammy GM. 1975. Roselle: a natural red colorant for food. Food Product and Development 7:80–82. Freiburghaus F,Kaminsky R,Nkunya MH,Brun R. 1996. Evaluation of African medicinal plants for their in vitro trypanocidal activity. J. Ethnopharmacol 55:1–11. Hakim L. 2005. Inhibisi formula ekstrak sidaguri (Sida rhombifolia L) dan seledri (Apium graveolens) pada enzim xantin oksidase seta efek anti inflamasi [Skripsi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Harborne JB. 1987. Metode Fitokimia. Padmawinata K, Soediro I, penerjemah; Niksolihin S, editor. Bandung: ITB. Terjemahan dari: Phytochemical Methode. Hidayat R. 2007. Kinetika inhibisi flavonoid dalam sidaguri (Sida rhombifolia L.) terhadap aktivitas enzim xantin oksidase [tesis]. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Hsieh JF et al. 2007. The screening and characterization of 6-aminopurinebased Xanthine oxidase inhibitors.

Bioorganic & Medicinal Chemistry 15: 3450–3456. Iswantini D, Darusman LK. 2003. Effect of Sidaguri Extract as an Uric Acid Lowering Agent On the Activity of Xanthine Oxidase Enzyme. Proceedings of International Symposium On Biomedicines. Biopharmaca Research, Bogor Agricultural University. Iswantini D. 2003. Bioprospeksi sidaguri (Sida rhombifolia) dan seledri (Apium graveolens): formulasi obat gout dan aktivitas inhibisinya terhadap xantin oksidase. Bogor: Biofarmaka. Jen KL, Ping CC, Chi TH, Shoei YLS. 2000. Inhibition of xanthine oxidase and suppression of intracellular reactive oxygen species in HL-60 cells by Theaflavin -3,3’-digallate, (-)Epigallocatechin-3-gallate, and Propyl Gallate. J Agric Food Chem 48:27362743. Johnstone A. 2005. Gout; The Disease and Non-drug Treatment. Hospital Pharmacist. 12:391–393 Juandy. 2008. Gout dan Diet. http://www.depkes.go.id/index.php?opt ion=article&task=viewarticle&artid=18 4&Itemid=3. [6 Juli 2008] Katno, Pramono S. 2002. Tingkat manfaat dan keamanan tanaman obat tradisional. Yogyakarta: Universitas Gajah Mada. Kadota et al. 2004. Xanthine Oxidase inhibitory activity of Vietnamese medicinal plants. Biol. Pharm. Bul :1414–1421. Kavanagh JP, Jones L, Rao PN. 2000. Calsium oxalate crystallization kinetics studied by oxalate induced turbidity in fresh human urine and artificial urine. Clin Sci 98:151–158. Khopkar, SM. 2002. Konsep Dasar Kimia Analitik. Jakarta: Universitas Indonesia. Kong LD et al. 2000. Inhibition of xanthine oxidase by some Chinese medicinal plants used to treat gout. Journal of Ethnopharmacology 73:199–207.

Lin YS et al. 1992. Immunomodulatory activity of various fractions derived from Physalis angulata L. extract. The American Journal of Chinese Medicine (20): 233–243. Lin CM, Chen CS, Chen CT, Liang YC, Lin JK. 2002. Molecular modeling of flavonoids that inhibits xanthine oxidase. Biocheml Biophys Res Com. 294:167-172. Mansjoer et al. 2004.Reumatologi. Kapita Selekta Kedokteran. Edisi ketiga jilid 1 Cetk. Keempat. Media Aesculapius FK UI, Jakarta. 542–546. Markam KR. 1988. Cara Mengidentifikasi Flavonoid. Bandung: ITB. Meyer et al. 1982. A covenien general bioassay for active plant constituents. Planta Medica 45:31-34. Middleton, E., C. Kandaswami, and T.C. Theoharides. 1998. The effects of plant flavonoids on mammalian cells: implications for inflammation, heart disease, and cancer. Pharmacological Reviews 52:673-751. Milián et al. 2004. Reactive Oxygen Species (ROS) Generation Inhibited by Aporphine and Phenanthrene Alkaloids Semi-Synthesized from Natural Boldine. Chem. Pharm. Bull. (6): 696– 699. Millar TM, Kanczler JM, Bodamyali T, Blanke DR & Stevens CR. 2002. Xanthine oxidase is a peroxynintrite synthase: Newly identified roles for a very old enzyme. Redox Report 7:6570. Mlati I. 2007. Isolasi Flavonoid Dari Fraksi Etil Asetat Kalik Rosela (Hibiscus sabdariffa L.) [Skripsi]. Bandung: Seklah Farmasi ITB. Mojiminiyi et al. 2007. Antihypertensive effect of an aqueous extract of the calyx of Hibiscus sabdariffa. Fitoterapia 78:292–297. Muflihat AD. 2008. Inhibisi ekstrak herba kumis kucing dan daun salam terhadap

aktivitas xantin oksidase. [Skripsi]. Bogor: Institut Pertanian Bogor. Nayeemulla Shariff1, M. S. Sudarshana1, S. Umesha, P. Hariprasad. 2006. Antimicrobial activity of Rauvolfia tetraphylla and Physalis minima leaf and callus extracts. African Journal of Biotechnology 5:946-950 Nagao A, Michiko S, Hidetaka K. 1999. Inhibition of xanthine oxidase by flavonoids. Biochem J 63:1787–1790. Noro T, Oda Y, Miyase T, Ueno A, Fukushima S. 1983. Inhibition of Xhantine Oxidase from the Flowers and Buds of Daphne genkwa. Chem Pharm Bull 31:3984-3987. Owen PL, Jhons T. 1999. Xanthine oxidase inhibitory activity of northeastern North America plant remedies used for gout. J. Ethnopharmacol :149–160 Ramdani TH. 2003. Isolasi dan identifikasi senyawa bioaktif seledri (Apium graveolens) dalam menghambat aktivitas xantin oksidase [Skripsi]. Bogor. Institut Pertanian Bogor. Rinaudo C, Boistelle R. 1982. Theoretical and experimental growth morphologies of sodium urate crystals. J. Cryst. Growth 57:432-442. Ross IA. 2003. Hibiscus sabdariffa. In Medicinal Plants of the World, Vol 1, 2nd edn. Humana Press: New Jersey. 267–275. Salah AM, Gathumbi J, Vierling W. 2002. Inhibition of intestinal motility by methanolic extracts of Hibiscus sabdariffa L. (Malvaceae) in rats. Phytother Res 16:283–285. Schmeda-Hirschmann et al. 1996. Xanthine Oxidase Inhibitory Activity of Flavonoids and Tannins from Hexachlamys edulis (Myrtaceae). Phytotherapy Research. Vol. 10. 260262. Tamta H, Kalra S, Mukhopadhyay AK. 2005. Biochemical Characterization of Some Pyrazolopyrimidine_Based Inhibitors of Xanthine Oxidase. Biochemistry: 49–54.

Van Hoorn et al. 2002. Accurate prediction of xanthine oxidase inhibition based on the structure of flavonoids. European J Pharm 451:111 – 118. Westerfield W, Richert D, Bloom R. 1959. The Inhibition of Xanthine and Succinic Oxidase by Carboxyl Reagents. J Biol Chem 234.1889.http://www.worthingtoniochem.com/XO/[ 24 Oktober 2008].

Wang CJ, Wang JM, Lin WL et al. 2000. Protective effect of Hibiscus anthocyanins against tert-butyl hydroperoxideinduced hepatic toxicity in rats. Food Chem Toxicol 38: 411– 416. Wang Z, Konigsberger E. 1998. Solubility equilibria in the uric-sodium urate system. Thermochimica Acta: 237-242. Winarno FG. 1997. Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta: Gramedia Pustaka Utama.

LAMPIRAN

Lampiran 1. Bagan alir penelitian

Serbuk daun kelopak rosela dan serbuk herba ciplukan

Penentuan Kadar Air

Ekstraksi

Air

Uji Fitokimia

Etanol

Uji Fitokimia

BSLT

Uji penghambatan pertumbuhan kristal natrium urat

Uji Inhibisi Enzim

dibandingkan

allopurinol

Lampiran 2 Ekstrak air dan etanol Ekstraksi air

Serbuk kelopak rosela dan herba ciplukan

diekstrak dengan air saring dipekatkan dengan rotavapor

Ekstrak air

Ekstraksi etanol

Serbuk kelopak rosela dan herba ciplukan diekstrak dengan etanol disaring

Filtrat dipekatkan dengan rotavapor Ekstrak etanol kering

Lampiran 3 Pembuatan stok ekstrak dan penetasan kista A. salina

Pembuatan ekstrak 5000 ppm

0.2500 g ekstrak

air laut

Labu takar 50 ml Penetasan kista A. salina

Lampu neon

±50 mg kista A. salina

aerator

48 jam

Larva udang

Lampiran 4 Uji toksisitas ekstrak kasar terhadap larva udang A. salina

Pengujian terhadap larva udang A. salina Konsentrasi ekstrak 1000 ppm

Vial ukuran 3000 µl

Diisi 2400 µl air laut

Biarkan selama 24 jam

+10 larva A. salina

+ 600 µl ekstrak

Konsentrasi ekstrak 500 ppm

Vial ukuran 3000 µl

Diisi 2700 µl air laut

Biarkan selama 24 jam

+10 larva A. salina

+ 300 µl ekstrak

Konsentrasi ekstrak 100 ppm

Vial ukuran 3000 µl

Diisi 2940 µl air laut

Biarkan selama 24 jam

+10 larva A. salina

+ 60 µl ekstrak

Konsentrasi ekstrak 10 ppm

Vial ukuran 3000 µl

Diisi 2994 µl air laut

Biarkan selama 24 jam

+10 larva A. salina

+ 6 µl ekstrak

Lampiran 5. Uji inhibisi aktivitas xantin oksidase

Ekstrak Buffer fosfat 0,05 M 1 ml xantin 2,1 mM

dikocok

+ 0,1 ml xantin oksidase 0,1 unit/ml (inkubasi pada pH 7.5, suhu 200C selama 45 menit) + HCl 0,58 M 1 ml

diukur serapannya pada panjang gelombang 264 nm

Lampiran 6 Kadar Air kelopak rosela dan herba ciplukan Penentuan kadar air kelopak rosela

Ulangan

Bobot pinggan Kosong (g)

Bobot contoh kering+pinggan (g)

Bobot contoh (g)

Bobot contoh kering (g)

Kadar air (%b/b)

1

21.9716

24.7092

3.0002

2.7376

8.75

2

21.4059

24.1400

3.0038

2.7341

8.97

3

21.0023

23.7490

3.0072

2.7467

8.66

Bobot contoh (g) 3.0029 3.0039 3.0042

Bobot contoh kering (g) 2.7735 2.7715 2.7651

Penentuan kadar air herba Ciplukan Bobot pinggan Bobot contoh Kosong kering+pinggan Ulangan (g) (g) 1 21.604 24.3775 2 21.7169 24.4884 3 21.0054 23.7705

Kadar air (%b/b) 7.64 7.73 7.96

Kadar air rerata (%b/b) 8.79

Kadar air rerata (%b/b) 7.77

Contoh perhitungan Kadar air =

a -b ´ 100% a

a = bobot sebelum dikeringkan (g) b = bobot setelah dikeringkan (g)

3.0029 - 2.7735 ´ 100% 3.0029 Kadar air = 7.64 % Kadar air

=

Lampiran 7 Rendemen ekstrak kelopak rosela dan herba ciplukan. Rendemen ekstrak etanol rosela

Ulangan

Bobot botol kosong

Bobot botol + Ekstrak

Bobot contoh (W contoh)

Bobot Ekstrak (W ekstrak)

Persen rendemen

Rerata persen rendemen

1

36.7271

64.4395

100.0131

27.9917

30.68

30.05

2

37.1198

64.0546

100.3553

26.9348

29.42

Ulangan

Bobot botol kosong

Bobot botol + Ekstrak

Bobot contoh (W contoh)

Bobot Ekstrak (W ekstrak)

Persen rendemen

Rerata persen rendemen

1

36.7032

72.3846

100.1345

35.6814

39.07

38.68

2

38.2975

73.2323

100.0253

34.9348

38.29

Rendemen ekstrak air rosela

Rendemen ekstrak etanol ciplukan

Ulangan

Bobot botol kosong

Bobot botol + Ekstrak

Bobot contoh (W contoh)

Bobot Ekstrak (W ekstrak)

Persen rendemen

Rerata persen rendemen

1

36.9199

42.4951

100.062

5.5752

6.04

6.28

2

37.1427

43.1685

100.0253

6.0258

6.53

Bobot Ekstrak (W ekstrak)

Persen rendemen

Rerata persen rendeme n 24.59

Rendemen ekstrak air ciplukan

Ulangan

Bobot botol kosong

Bobot botol + Ekstrak

Bobot contoh (W contoh)

1

37.5429

60.0602

100.0523

22.5173

24.40

2

36.8146

59.6777

100.0147

22.8631

24.78

Contoh perhitungan Persen rendemen =

Wekstrak x100% (1 - x)Wcontoh =

27.9917 g (1 - 0.0879)100.0131 g

= 30.68 %(b/b)

x100%

Lampiran 8 Aktivitas ekstrak rosela dan herba ciplukan terhadap larva A. salina Data hasil uji toksisitas ekstrak air Rosela terhadap larva udang A. salina Jumlah Jumlah Udang Konsentrasi ulangan Udang mati % Mortalitas 0 1 10 0 0 2 10 0 0 3 10 0 0 10 1 10 0 0 2 10 1 10 3 10 0 0 100 1 10 5 50 2 10 5 50 3 10 4 40 1000 1 10 10 100 2 10 10 100 3 10 10 100

Rerata

Probit

Log (mg/L)

0

0

0

3.33

3.12

1

46.67

4.92

2

100

7.33

3

Y = 0.274 + 2.379 X r 2 = 0.989 Y= Nilai probit X= log konsentrasi

Y = 0.274 + 2.379 X 5 = 0.274 + 2.379 X 4.726 2.379 X = 1.9865 X =

LC 50 = Anti log(1.9865) LC 50 = 96.9503 mg L Data hasil uji toksisitas ekstrak etanol rosela terhadap larva udang A. salina Jumlah Jumlah % Konsentrasi ulangan Udang Udang mati Mortalitas Rerata 0

10

100

1000

Y = 3.005 + 1.245 X r 2 = 0.991

1 2 3 1 2 3 1 2 3 1 2 3

10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10 10

0 1 0 1 3 2 6 6 7 10 10 10

0 10 0 10 30 20 50 40 40 100 100 100

Probit

Log (mg/L)

3.33

3.12

0

20

4.16

1

63.33

5.33

2

100

7.33

3

Y= Nilai probit X= log konsentrasi

Y = 3.005 + 1.245 X 5 = 3.005 + 1.245 X 1.995 1.245 X = 1.6024 X =

LC 50 = Anti log(1.6024) LC 50 = 40.0322 mg L Data hasil uji toksisitas ekstrak air herba ciplukan Jumlah Jumlah Udang Konsentrasi ulangan Udang mati 1000 1 10 2 11 3 10 500 1 10 2 10 3 10 100 1 10 2 10 3 11 50 1 10 2 11 3 10 10 1 10 2 10 3 10 0 1 10 2 10 3 10

Y = 3.085 + 0.797 X r 2 = 0.995 Y= Nilai probit X= log konsentrasi

Y = 3.085 + 0.797 X 5 = 3.085 + 0.797 X 1.915 0.797 X = 2.4027 X =

LC 50 = Anti log(2.4027) LC 50 = 252.7903 mg L

terhadap larva udang A.salina

6 8 8 6 6 5 5 3 4 2 3 3 1 1 2 0 1 0

% Mortalitas 60 72.73 80 60 60 50 50 30 36.36 20 27.27 30 10 10 20 0 10 0

Rerata

Probit

Log (mg/L)

70.91

5.55

3

56.67

5.18

2.7

38.78

4.72

2

25.76

4.36

1.7

13.33

3.87

1

3.33

3.12

0

Data hasil uji toksisitas ekstrak etanol herba ciplukan terhadap larva udang A.salina Jumlah Jumlah Udang % Konsentrasi ulangan Udang mati Mortalitas Rerata Probit 1000 1 11 11 100 2 10 9 90 93.33 6.48 3 10 9 90.91 500 1 10 8 80 2 10 8 80 80 5.84 3 10 8 80 100 1 10 6 60 2 10 5 50 54.85 5.13 3 11 6 54.54 50 1 10 5 50 2 10 4 40 43.33 4.82 3 10 4 40 10 1 10 2 20 2 10 2 20 20 4.16 3 10 2 20 0 1 10 1 10 2 10 0 0 6.37 3.12 3 11 1 9.1

Y = 3.065 + 1.072 X r 2 = 0.990 % Y= Nilai probit X= log konsentrasi

Y = 3.065 + 1.072 X 5 = 3.065 + 1.072 X 1.935 1.072 X = 1.8050 X =

LC 50 = Anti log(1.8050) LC 50 = 63.8318 mg L

Log (mg/L) 3

2.7

2

1.7

1

0

Lampiran 9 Pembuatan kurva standar Konsentrasi Xantin (mM) 0.0 0.1 0.2 0.3 0.4 0.5 0.6 0.7 λ= 264 nm

Absorban 0.000 0.482 0.805 1.076 1.197 1.323 1.446 1.510

1.8 1.6

Absorban

1.4 1.2 1 0.8

y = 2.0315x + 0.2688 R = 0.9524

0.6 0.4 0.2 0 0

0.2

0.4

0.6

0.8

Konsentrasi Xantin (mM)

Kurva hubungan absorban rerata dengan konsentrasi xantin (mM)

Lampiran 10 Data hasil uji enzimatis berbagai ekstrak Blanko Ulangan

Serapan

Aktivitas (mM/L Menit)

1

0.802

97.2297

2

0.846

92.4166

Rerata

94.82315

Ekstrak air rosela

Konsentrasi (ppm) 10

Ulangan 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2

20 40 60 80 100

Serapan 0.972 1.001 0.963 1.021 1.000 1.009 0.978 0.999 1.013 0.996 0.996 1.006

Aktivitas (mM/L Menit) 78.6337 75.4614 79.6182 73.2737 75.5710 74.5864 77.9774 75.6803 74.1488 76.0084 76.0084 74.9145

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 77.0475

Persen Inhibisi (%) 18.75

76.4459

19.38

75.0787

20.82

76.8288

18.78

75.0786

20.82

75.4614

20.42

Persen Inhibisi (%)

IC50= 914883.65 ppm 21 y = 2.2711Ln(x) + 18.827 R2 = 0.3774

20.5 20 19.5 19 18.5 0

0.5

1

1.5

2

2.5

Log Konsentrasi Ekstrak (ppm)

Kurva estimasi antara log konsentrasi air rosela tehadap daya inhibisi XO Ekstrak air ciplukan

Konsentrasi (ppm) 10 20 40 60 80 100

IC50= 126.59 ppm

Ulangan 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2

Serapan 0.934 0.959 0.925 0.894 1.071 1.081 1.060 1.101 1.063 1.053 1.204 1.201

Aktivitas (mM/L Menit) 82.7905 83.1187 83.7750 87.1660 67.3804 66.7104 69.0075 64.5226 68.6794 69.7732 53.2556 53.5838

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 82.9546

Persen Inhibisi (%) 12.52

85.4705

9.86

67.0454

29.30

66.76505

29.60

69.2263

27.00

53.4197

43.66

Persen Inhibisi (%)

50 45

y = 0.3199x + 8.7942 R= 0.8956

40 35 30 25 20 15 10 5 0 0

50

100

150

Konsentrasi Ekstrak (ppm)

Kurva estimasi antara konsentrasi air ciplukan tehadap daya inhibisi XO Ekstrak etanol rosela

Konsentrasi (ppm) 20

Ulangan 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2

40 60 80 100

Aktivitas (mM/L Menit) 78.5243 76.8835 75.7896 76.9929 72.3986 69.4451 61.7895 60.9128 60.9128 61.3504

Serapan 0.973 0.988 0.998 0.987 1.029 1.056 1.126 1.134 1.134 1.13

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 77.7039

Persen Inhibisi (%) 18.05

76.3913

19.44

70.9219

25.21

61.3511

35.30

61.1316

35.53

IC50= 151.67 ppm

Persen Inhibisi (%)

40 35 30 25 20

y = 0.2541x + 11.46 R = 0.9575

15 10 5 0 0

20

40

60

80

100

120

Konsentrasi ekstrak (ppm)

Persen Inhibisi (%)

Kurva estimasi antara konsentrasi etanol rosela tehadap daya inhibisi XO 80

y = 0.6125x + 10.188 R = 0.9713

70 60 50 40 30 20 10 0 0

50

100

150

Konsentrasi Ekstrak (ppm)

Kurva estimasi antara konsentrasi etanol ciplukan tehadap daya inhibisi XO

Ekstrak etanol ciplukan

Konsentrasi (ppm) 20 40 60 80 100

Ulangan 1 2 1 2 1 2 1 2 1 2

Serapan 0.968 0.968 1.000 0.969 1.206 1.212 1.260 1.258 1.446 1.417

Aktivitas (mM/L Menit) 79.0713 79.0713 75.5710 78.9619 53.0367 52.3806 47.1300 47.3487 26.7837 29.9559

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 79.0713

Persen Inhibisi (%) 16.61

77.2664

18.52

52.7086

44.41

47.2393

50.18

28.3698

70.08

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 20.3298

Persen Inhibisi (%) 78.56

1.29625

98.63

Rerata Aktivitas (mM/L Menit) 62.44425

Persen Inhibisi (%) 34.15

IC50= 74.49 ppm Alopurinol

Konsentrasi (ppm) 70 100

Ulangan 1 2 1 2

Serapan 1.504 1.506 1.686 1.672

Aktivitas (mM/L Menit) 20.4392 20.2204 0.5305 2.0620

Serapan 1.134 1.106

Aktivitas (mM/L Menit) 60.9128 63.9757

Produk komersial (Biouric)

Konsentrasi (ppm) 100

Ulangan 1 2

Ekstrak etanol kumis kucing

Konsentrasi (ppm) 70 (Muflihat 2008) 70 100

Ulangan

Serapan

1 2 1 2 1 2

1.109 1.138 1.083 1.111 1.244 1.241

Contoh perhitungan: Y = a + bx Y = Rata-rata absorban hasil pengukuran

Aktivitas (mM/L Menit)

66.4916 63.4288 48.8801 49.2083

Rerata Aktivitas (mM/L Menit)

Persen Inhibisi (%)

35.1148

77.36

64.9602

31.50

49.0442

48.28

x = Konsentrasi xantin setelah reaksi (konsentrasi sisa) Blanko Y Y 0,824 x

= a + bx = 0,2688 + 2.0315x = 0,2688 + 2.0315x = 0.2733

xantin total 0,7 mM x bereaksi = x mula-mula - x sisa x bereaksi = 0,7 – x = 0,7 - 0.2733 = 0,4267

xantin yang bereaksi (mM)

Aktivitas xantin oksidase =

Volume enzim (L) x Waktu inkubasi (menit)

0,4267 Mm -4 1 x 10 L x 45 menit = 94.82315 mM/L menit

Aktivitas xantin oksidase blanko =

Ekstrak air ciplukan (ulangan 1 konsentrasi 100 ppm) Y = 0,2688 + 2.0315x 1.204 = 0,2688 + 2.0315x x = 0.46035 xantin total 0,7 mM x bereaksi = x mula-mula - x sisa x bereaksi = 0,7 – x = 0,7 - 0.46035 = 0.2397 Aktivitas xantin oksidase =

0.2397 Mm

-4 1 x 10 L x 45 menit = 53.2557 mM/L menit

Persen Inhibisi =

Aktivitas xantin oksidase blanko - Aktivitas xantin oksidase sampel Aktivitas xantin oksidase blanko

Persen inhibisi =

94.82315 - 53.2557

94.82315

= 43.84 %

x 100%

x 100%

Lampiran 11 Turbiditas asam urat dan Na asetat pada berbagai konsentarsi

Konsentrasi Na asetat 2 mM waktu 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

2 7.65 3.73 2.52 4.87 3.55 2.38 2.11 2.00 1.78 1.62 1.52 1.61 1.56 1.69 1.48 1.48

5 16.4 11.4 7.46 4.87 3.21 2.38 1.84 1.67 1.57 1.52 1.51 1.54 1.55 1.57 1.55 1.55

7 25.8 14.5 9.81 6.17 4.19 2.81 2.05 1.58 1.42 1.39 1.39 1.38 1.39 1.42 1.40 1.40

[Asam Urat] (mM) 10 13 68.3 112 42.5 56.3 28.5 47.1 17.6 32.1 11.6 22.1 8.74 15.3 7.01 11.3 5.73 8.96 5.17 7.50 4.52 6.91 3.7 6.59 3.61 6.12 3.42 5.92 2.95 5.83 2.76 5.83 2.65 5.76

20 194 118 72.7 44.1 30.4 23.3 15.5 13.0 8.53 6.17 12.4 11.7 8.77 6.40 7.06 5.99

25 164 154 113 81.6 60.8 44.7 34.1 25.5 21 15.5 12 10.2 9.45 8.25 7.38 6.97

2

3

2 mM

250

3.5

5 mM

3

200

7 mM

150 100

10 mM

2

13 mM

1.5

15 mM 20 mM

50 25 mM

y = 1.5537x - 1.9346 R2 = 0.9774

2.5

ln(ΔD/min)

Turbiditas (D)

15 113 87.8 47.5 30.9 21.1 14.3 10.6 8.73 8.21 7.88 7.01 6.57 6.43 6.04 5.87 5.53

1 0.5 0 -0.5 0

0.5

1

1.5

2.5

-1

0 0

5

10

Waktu (menit)

Kurva turbiditas dan waktu

15

-1.5 ln[Asam Urat]

Kurva hubungan ln[asam urat] dan ln(∆D/min)

3.5

Konsentrasi Na asetat 4 mM waktu 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

2 7.26 3.67 2.06 1.64 1.45 1.54 1.60 1.40 1.38 1.35 1.35 1.36 1.33 1.33 1.32 1.32

5 17.6 9.47 4.36 2.39 1.63 1.39 1.37 1.33 1.29 1.27 1.26 1.29 1.28 1.30 1.27 1.30

7 26.2 10.3 4.68 2.8 1.96 1.84 1.38 1.34 1.26 1.25 1.30 1.32 1.26 1.25 1.27 1.26

[Asam Urat] (mM) 10 13 69.6 114 45 66.4 29.9 39.5 18.8 22.8 12.3 17.7 9.77 15.0 7.75 11.8 6.22 9.87 5.61 8.75 5.32 7.90 5.17 7.18 5.14 6.68 5.11 6.28 5.11 6.16 5.10 5.78 5.10 5.58

20 140 107 74 48.6 32.8 23.7 16.3 12.2 9.15 7.51 6.59 5.90 5.42 5.17 5.02 4.87

25 270 164 95.1 84.3 70.7 44.0 30.9 23.5 19.6 17.2 13.6 14.1 12.4 11.1 11.6 10.8

2 mM

300

3.5

5 mM

250

2.5

150

13 mM

2

15 mM

1.5

20 mM 25 mM

100

ln(ΔD/min)

200

y = 1.6429x - 2.155 R2 = 0.9727

3

7 mM 10 mM

Turbiditas (D)

15 125 90.5 51.8 32.9 23.1 14.8 10.3 7.96 6.79 6.37 6.16 6.15 6.18 6.16 6.12 6.09

1 0.5 0

50

-0.5 0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

-1

0 0

5

10

Waktu (menit)

Kurva turbiditas terhadap waktu

15

-1.5 ln[Asam Urat]

Kurva hubungan ln[asam urat] terhadap ln(∆D/min)

Konsentrasi Na asetat 6 mM waktu 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

2 6.43 5.73 5.76 5.84 5.86 5.84 5.79 5.74 5.87 5.72 6.03 5.81 5.75 5.79 6.00 5.85

5 7.48 5.82 5.72 5.56 4.91 4.68 4.65 4.69 4.49 4.41 4.33 4.28 4.33 4.26 4.26 4.25

7 26.3 12.8 4.56 3.23 2.88 1.97 1.90 1.88 1.57 1.56 1.57 1.49 1.50 1.45 1.43 1.42

200

2 mM

180

5 mM

160

7 mM

15 99 75.6 51.8 34.3 24.5 17.8 13.0 9.56 7.90 7.06 6.46 6.32 6.27 6.06 6.00 5.94

20 190 129 78.6 45.9 30.8 20.7 15.2 11 9.12 8.72 7.40 6.36 5.72 5.70 5.55 5.37

25 172 115 69.9 46.3 27.6 20.5 14.9 10.5 8.83 7.20 5.63 5.29 5.12 4.96 4.97 4.82

4 y = 2.6159x - 5.0108 R2 = 0.9646

3 2

140

10 mM

120

1

100

13 mM

80

15 mM

60

20 mM

40

ln(ΔD/min)

Turbiditas (D)

[Asam Urat] (mM) 10 13 43.2 86 22.8 43.5 11.5 21.1 6.83 10.2 4.49 5.60 3.22 4.06 2.74 3.18 2.16 2.51 2.11 2.03 1.74 1.55 1.52 1.49 1.41 1.51 1.37 1.38 1.45 1.39 1.44 1.34 1.29 1.32

0 -1

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

-2

25 mM

20

-3

0 0

5

10

Waktu (menit)

Kurva turbiditas terhadap waktu

15

-4 ln[Asam Urat]

Kurva hubungan ln[asam urat] terhadap ln(∆D/min)

Konsentrasi Na asetat 8 mM waktu 2 7.69 5.83 4.79 4.56 3.85 3.33 3.08 2.91 2.87 2.53 2.42 2.22 1.84 1.74 1.63 1.59

7 24.1 18.5 14.4 11.3 9.31 7.23 6.03 5.61 5.33 5.09 5.14 5.05 5.04 5.01 5.00 5.03

160

2 mM

3

140

5 mM

2.5

120

7 mM

2

100

10 mM

1.5

80

13 mM

60

15 mM

40

20 mM

20

25 mM

0 0

2

4

6

8

10

Waktu (menit)

Kurva turbiditas terhadap waktu

12

ln(ΔD/min)

Turbiditas (D)

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

5 34.8 18.3 12.0 10.7 10.0 8.44 7.74 6.75 6.60 6.63 6.50 6.27 5.92 5.83 5.79 5.75

[Asam Urat] (mM) 10 13 70.4 74.1 50.6 47.4 35.4 24.2 22.6 10.3 17.1 5.85 13.2 4.55 12.0 3.42 12.1 2.33 10.4 1.78 9.82 1.56 9.45 1.50 9.34 1.37 9.39 1.33 9.22 1.34 9.13 1.28 9.32 1.27

15 94.1 43.8 19.0 10.5 7.03 5.32 3.74 2.69 2.18 2.06 1.73 1.44 1.38 1.31 1.34 1.31

20 81.4 60.4 42.5 29.3 20.1 14.6 11.6 9.39 8.51 7.74 7.47 7.44 7.43 7.35 7.25 7.19

25 136 93.6 58.6 36.4 24.0 15.9 11.6 8.70 7.24 6.54 6.13 5.76 5.61 5.57 5.62 5.60

y = 1.2471x - 1.4319 R2 = 0.9494

1 0.5 0 -0.5

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

-1 ln[Asam Urat]

Kurva hubungan ln[asam urat] terhadap ln(∆D/min)

Konsentrasi Na asetat 10 mM waktu 2 7.36 5.89 5.66 5.56 5.47 5.32 4.98 4.47 4.23 4.15 4.03 3.86 3.95 3.99 3.68 3.50

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16

5 16.81 10.35 5.26 3.01 2.13 1.98 1.65 1.63 1.53 1.42 1.39 1.33 1.28 1.30 1.31 1.30

[Asam Urat] (mM) 7 10 13 33.1 70.8 81 20.4 43.5 45.3 12.9 24.8 17.5 11.3 20.4 11.2 11.3 12.5 6.86 11 8.97 5.22 10 7.64 4.71 8.80 6.23 4.11 8.56 4.57 3.76 8.53 4.23 2.99 8.23 3.93 2.39 8.23 4.19 2.44 8.37 3.58 2.36 8.42 3.15 2.21 8.44 3.01 2.07 8.40 3.27 2.07

180

2 mM

160

5 mM

140

7 mM

2

10 mM

1.5

80

13 mM

1

60

15 mM

40

20 mM 25 mM

ln(ΔD/min)

Turbiditas (D)

20

20 68 55.1 39.2 25.8 17.8 11.8 8.51 7.02 5.60 5.14 4.86 4.70 4.66 4.63 4.59 4.58

25 168 103 57.8 35.1 22.2 14.9 10.0 7.61 6.05 5.32 5.15 5.09 5.08 4.89 4.77 4.76

3 y = 1.5416x - 2.1681 R2 = 0.9453

2.5

120 100

15 116 77.3 48.8 32.8 21.4 14.7 10.5 7.34 5.83 4.57 3.89 3.45 3.22 3.04 2.98 2.95

0.5 0 -0.5 0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

-1

0 0

2

4

6

8

10

Waktu (menit)

Kurva turbiditas terhadap waktu

12

-1.5 ln[Asam Urat]

Kurva hubungan ln[asam urat] terhadap ln(∆D/min)

Lampiran 12 Indeks laju turbiditas kristal natrium urat (TRI) Indeks laju turbiditas kristal natrium urat [Na ln [Na asetat] asetat] a TRI 2 0.6931472 -1.9346 0.144482 4 1.3862944 -2.155 0.115903 6 1.7917595 -5.0108 0.006666 8 2.0794415 -1.4319 0.238855 10 2.3025851 -2.1681 0.114395 0.3 0.25

y = 0.0031x + 0.1052 R2 = 0.0143

TRI

0.2 0.15 0.1 0.05 0 0

2

4

6

8

10

12

[Asam Asetat]

Kurva hubungan konsentrasi Na asetat terhadap nilai TRI