IDENTIFIKASI PARASIT GASTROINTESTINAL PADA ANOA (Bubalus spp.) DI BALAI PENELITIAN DAN PENGEMBANGAN LINGKUNGAN HIDUP DAN KEHUTANAN (BP2LHK) MANADO
SKRIPSI
ANDI ATIKAH KHAIRANA O11112111
PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS HASANUDDIN MAKASSAR 2017
2i
IDENTIFIKASI PARASIT GASTROINTESTINAL PADA ANOA (Bubalus spp.) DI BALAI PENELITIAN DAN PENGEMBANGAN LINGKUNGAN HIDUP DAN KEHUTANAN (BP2LHK) MANADO
ANDI ATIKAH KHAIRANA O11112111
Skripsi : Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran Hewan pada Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran
PROGRAM STUDI KEDOKTERAN HEWAN FAKULTAS KEDOKTERAN UNIVERSITAS HASANUDDIN MAKASSAR 2017
2 ii
2 iii
PERNYATAAN KEASLIAN Dengan ini saya menyatakan dengan sebenar-benarnya bahwa segala pernyataan dalam skripsi saya yang berjudul Identifikasi Parasit Gastrointestinal Pada Anoa (Bubalus spp.) Di Balai Penelitian Dan Pengembangan Lingkungan Hidup Dan Kehutanan (BP2LHK) Manado karya saya sendiri dengan bimbingan Prof. DR. Drh. Lucia Muslimin, M.Sc dan Anita Mayasari, S.Hut, serta belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi manapun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam daftar pustaka pada bagian akhir skripsi ini.
Makassar, 14 Februari 2017
Andi Atikah Khairana O111 12 111
2iv
ABSTRAK ANDI ATIKAH KHAIRANA. NIM O11112111. Identifikasi Parasit Gastrointestinal Pada Anoa (Bubalus spp.) di Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado, dibawah bimbingan Lucia Muslimin dan Anita Mayasari Parasit adalah suatu organisme kecil yang hidup menempel pada tubuh organisme yang lebih besar yang disebut host. Salah satu penyakit yang cukup merugikan pada satwa di penangkaran adalah infeksi parasit gastrointestinal. Parasit gastrointestinal menyebabkan kerugian dengan mengambil sebagian nutrisi host yang dapat mengakibatkan kekurusan, kelemahan dan turunnya daya produksi. Penelitian ini bertujuan untuk mengidentifikasi jenis-jenis parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) di BP2LHK Manado. Pengambilan sampel feses dilakukan pada pada bulan Juni 2016 dan pada bulan September 2016. Sampel yang dikumpulkan berjumlah 38 sampel feses yang berasal dari 6 ekor Anoa. Metode pemeriksaan dilakukan dengan cara metode natif, metode apung dengan sentrifugasi, dan metode Mc. Master. Data yang diperoleh di analisis secara deskriptif. Hasil penelitian menunjukkan bahwa, terdapat 5 sampel feses yang positif terinfeksi parasit Nematoda, Cestoda, Trematoda dn Protozoa. Telur yang teridentifikasi sebanyak 5 jenis yaitu Haemoncus sp. Paramphistomum sp., Mecistocirrus sp., Capillaria sp., Moinezia sp., dan satu jenis protozoa yaitu Eimeria sp. Kata kunci : Anoa (Bubalus spp.), Identifikasi, Parasit Gastrointestinal.
v2
ABSTRACT ANDI ATIKAH KHAIRANA. NIM O11112111. The Identification of Gastrointestinal Parasites In Anoa (Bubalus spp.) at Environment and Foestry Research and Development Institute of Manado. Supervised by Lucia Muslimin and Anita Mayasari
Parasite is a small organism that sticking to live on a bigger organism’s body called host. A disease which is quite detrimental for the animals in captivity is gastrointestinal parasite infection. Gastrointestinal parasite caused deprivation by taking some host’s nutrients that lead to emaciation, debility, and the decrease of productivity. This research aims to identify the types of gastrointestinal parasite on Anoa (Bubalus spp.) at BP2LHK Manado. The faecal sample was taken, on June and September 2016. There were 38 feces collected from 6 Anoas. The methods use were natif, cetrifugal faecal flotation, Mc. Master method. The data were analyzed descriptively. The result showed that there were 5 samples positively infected by gastrointestinal parasite of Nematoda, Cestoda, Trematoda and Protozoa. The types of parasitic egg worm were identified as Haemoncus sp. Paramphistomum sp., Mecistocirrus sp., Capillaria sp., Moinezia sp., and one individu of protozoan that is Eimeria sp. Keyword: Anoa (Bubalus spp.), Identification, Gastrointestinal parasite.
2 vi
KATA PENGANTAR
Alhamdulillahi rabbil ‘alamin. Segala puji syukur penulis panjatkan hanya bagi Allah SWT yang telah memberikan nikmat dan karunia-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul “Identifikasi Parasit Gastrointestinal Pada Anoa (Bubalus spp.) di Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado”. Proses penyusunan skripsi merupakan sebuah proses dan perjalanan panjang yang tidak lepas dari dukungan banyak pihak, penulis mengucapkan terima kasih kepada : 1. Keluarga besar saya, ayahanda Dr. H. Muhammad Yasin, MP, ibunda Ir. Hj. Andi Rugaya, MP, kakak saya Andi Adriani Wahditiya, SP, Ms.i dan kedua Adik saya Andi Ainun Fitriah dan Andi Muhammad Haikal Fajar yang selalu dan tidak henti-hentinya memberikan dukungan moril, doa, kasih sayang, dan tentunya material sehingga peneliti mampu menyelesaikan skripsi ini. Semoga Allah SWT senantiasa melindungi, memberikan kebahagiaan dan keselamatan di dunia dan di akhirat, Aamiin. 2. Prof. Dr. dr. Andi Asadul Islam, Sp.BS sebagai Dekan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin. 3. Prof. DR. Drh. Lucia Muslimin,M.Sc dan Anita Mayasari, S.Hut sebagai dosen pembimbing skripsi yang telah memberikan bimbingan dan nasihat penuh kesabaran dan rasa semangat selama penelitian penyusunan skripsi ini. 4. Prof. DR. Drh. Lucia Muslimin, M.Sc sebagai Ketua Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin. 5. Prof. DR. Drh. Lucia Muslimin, M.Sc sebagai pembimbing akademik yang telah banyak memberi nasihat dan bimbingannya selama penulis kuliah di Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin. 6. Seluruh Staf Dosen, Pegawai di Program Studi Kedokteran Hewan Fakultas Kedokteran Universitas Hasanuddin yang telah memberikan dukungan penuh bagi penulis selama kuliah. 7. Kepala Balai dan Seluruh Staf Pegawai di Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado, yang telah menerima dengan rasa kekeluargaan dan membantu selama proses penelitian berlangsung. 8. Staf Laboratorium Farmasi Fakultas MIPA Universitas Sam Ratulangi Manado, yang telah memberikan fasilitas dan bantuan selama penelitian. 9. Staf Laboratorium Parasitologi BBV (Balai Besar Veteriner) Maros yang banyak membantu dan membimbing penulis selama proses penelitian. 10. TIM ANOA Andi Achmad Rifaldi, Muhammad Zulfadillah, Elphan Augusta, yang banyak membantu selama proses penelitian, memberikan dukungan yang luar biasa hebatnya dalam menyelesaikan skripsi ini.
vii2
11. Sahabat yang saya sayangi, yang saya cintai, Siti Aryni Syahrir, Muliani Masmin, Kharisma selalu hadir baik susah maupun senang, memberikan dukungan yang luar biasa hebatnya dalam menyelesaikan skripsi ini. 12. Teman Hampir 17, aryn, risma, risna, ria, wani, ainun, alfi, fadil, Imran, nawir, ryan, ibnu, rifki, candra, cerdi, teman seperjuangan dari awal masuk menjadi mahasiswa kedokteran hewan selalu meberikan canda dan tawa, membantu serta memberikan dukungan selama penelitian. 13. Teman seperjuangan, teman suka dan duka mulai dari proposal hinga ujian meja, Besse Radita terus kobarkan semangatmu :D 14. Teman seangkatan 2012, ‘Akestor Anwelf’, yang telah menjadi teman seperjuangan dari awal masuk menjadi mahasiswa kedokteran hewan dan membantu serta memberikan dukungan selama penelitian. 15. Dan penghargaan setinggi-tingginya kepada semua pihak yang tidak dapat penulis sebutkan satu per satu. Terima kasih atas bantuan dan dukungannya. Penulis sadar tulisan ini jauh dari kesempurnaan, namun penulis berharap tulisan ini dapat bermanfaat untuk kemajuan ilmu pengetahuan.
Makassar, 14 Februari 2017
Andi Atikah Khairana
viii 2
DAFTAR ISI HALAMAN PENGESAHAN SKRIPSI PERNYATAAN ABSTRAK KATA PENGANTAR DAFTAR ISI DAFTAR GAMBAR DATAR TABEL DAFTAR LAMPIRAN 1. PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang 1.2. Rumusan Masalah 1.3. Tujuan Penelitian 1.4. Manfaat Penelitian 1.5. Hipotesis 1.6. Keaslian Penelitian 2. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Anoa (Bubalus spp.) 2.2 Parasit 2.3 Jenis Parasit Gastrointestinal Pada Famili Bovidae 2.3.1 Cacing Nematoda 2.3.1.1 Capillaria sp. 2.3.1.2 Haemoncus sp. 2.3.1.3 Oeshophagostomum venolosum 2.3.1.4 Mecistocirrus sp. 2.3.1.5 Strongyloides sp. 2.3.2 Cacing Cestoda 2.3.2.1 Moniezia sp. 2.3.3 Cacing Trematoda 2.3.3.1 Fasciola sp. 2.3.3.2 Paramphistomum sp. 2.3.4. Protozoa 2.3.4.1 Eimeria sp. 3. METODE PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat 3.2 Bahan Penelitian 3.3 Jenis Penelitian dan Metode Pengambilan Sampel 3.4 Peralatan Penelitian 3.5 Prosedur Kerja 3.6 Analisis Data 4. HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil dan Pembahasan 5. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan 5.2 Saran DAFTAR PUSTAKA
.
ii iii iv vi viii ix ix ix 1 2 3 3 3 3 3 4 4 6 6 7 8 8 8 9 9 10 10 11 11 11 12 12 14 14 14 14 14 14 15 16 16 25 25 25 26
2 ix
DAFTAR GAMBAR 1. Anoa Dataran Rendah 2. Anoa Dataran Tinggi 3. Cacing Capillaria sp. 4. Telur Oeshophagostomum venulosum 5. Cacing Strongyloides sp. 6. Telur Moniezia expansa 7. Cacing Fasciola sp. 8. Telur Paramphistomum sp. 9. Eimeria sp. 10. Telur cacing Paramphistomum sp. 11. Telur cacing Mecistocirrus sp. 12. Telur cacing Capillaria sp. 13. Telur cacing Haemoncus sp. 14. Telur cacing Moinezia expansa 15. Eimeria sp.
5 5 8 9 9 10 11 11 13 16 17 17 17 18 18
DAFTAR TABEL 1. Karakteristik anoa dataran tinggi dan anoa dataran rendah 2. Jenis - jenis parasit gastrointestinal pada famili Bovidae 3. Jenis parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) 4. Anoa yang terinfeksi telur cacing parasit gastrointestinal 5. Parasit gastrointestinal yang umum ditemukan pada famili Bovidae
4 7 16 19 22
DAFTAR LAMPIRAN 1. Lampiran data anoa 2. Lampiran hasil pemeriksaan feses 3. Lampiran foto penelitian
30 34 35
1
1. PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang Indonesia merupakan salah satu negara di dunia yang memiliki keanekaragaman hayati yang sangat besar dan menduduki posisi penting dalam peta keanekaragaman hayati dunia dan sebagian bersifat endemik, sehingga Indonesia disebut sebagai negara megabiodiversity (Desmawati, 2010). Menurut Utama (2011), Indonesia dikenal sangat kaya akan keanekaragaman hayatinya, baik di darat maupun di laut. Secara biogeografi, kawasan Indonesia berada dalam kawasan Malesia (kawasan Asia Tenggara sampai dengan Papua sebelah barat) dengan dua pusat keanekaragaman yaitu Borneo dan Papua serta tingkat endemisitas yang sangat tinggi dan habitat yang unik, sebagai contoh di kawasan Papua, tingkat endemisitas flora mencapai sekitar 60-70%, antara dua pusat keragaman tersebut, terdapat kawasan transisi yang berada di Selat Makasar (Wallace’s line). Kawasan Wallacea terdiri atas pulau Sulawesi, Maluku, Halmahera, Kepulauan Flores, dan pulau kecil di Nusa Tenggara. Wilayah ini unik karena banyak memiliki flora dan fauna yang endemik dan merupakan kawasan peralihan antara benua Asia dan Australia. Salah satu kawasan yang memiliki flora dan fauna endemik Sulawesi antara lain Kawasan Hutan Lindung Desa Sangginora Kabupaten Poso (Utama, 2011). Anoa (Bubalus spp.) merupakan salah satu satwa endemik yang dilindungi yang menjadi ciri khas Pulau Sulawesi yang turut mendiami Kawasan Hutan Lindung Desa Sangginora Kabupaten Poso (Mustari, 2003). Berdasarkan jejak yang ditemukan dan diidentifikasi, diprediksi bahwa populasi Anoa (Bubalus spp.) yang masih ada di Kawasan Hutan Lindung Desa Sangginora berjumlah kurang lebih 25 ekor dengan kepadatan populasi 1.23 ekor/Km (Ranuntu, 2015). Hewan endemik merupakan spesies asli yang unik dan hanya dapat ditemukan disuatu wilayah tertentu saja. Anoa (Bubalus spp.) salah satu hewan endemik Sulawesi yang tergolong satwa liar yang langka dan dilindungi berdasarkan surat Keputusan Menteri Pertanian RI No: 421/KPTS/ UM/8/1970 dan surat Keputusan Menteri Pertanian No: 90/KPTS/2/1972. Upaya pelestarian terhadap satwa ini sangat penting terutama untuk menjaga keseimbangan ekosistem di alam. Anoa (Bubalus spp.) termasuk dalam salah satu spesies prioritas yaitu sebagai spesies yang dinilai penting untuk dilakukan konservasi jika dibandingkan dengan spesies-spesies lain. Menurut penentuan spesies prioritas untuk suatu taksa flora dan fauna dan berdasarkan 5 kriteria generik yang ditetapkan diantara yaitu endeminitas spesies, status populasi, kondisi habitat, keterancaman, dan status pengelolahan spesies maka anoa dimaksukkan kedalam spesies prioritas tinggi yang status populasinya di alam sedang mengalami penurunan secara drastis, dalam kurun waktu 5 tahun terakhir (Permenhut No.57 Tahun 2008). Anoa sangat memerlukan perhatian khusus pada upaya konservasi dikarenakan statusnya yang menurut CITES (Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora) sudah hampir punah, dan memasukkan satwa langka ini dalam Appendix I, sedangkan IUCN (International Union for Conservation of Nature and Natural Resources) memasukkannya ke dalam kategori endangered species (IUCN, 2008).
2
Berbagai upaya pelestarian Anoa dilakukan di Indonesia seperti dikebun binatang contohnya Taman Safari Bogor dan Kebun Binatang Surabaya. Upaya pelestarian lainnya di lakukan oleh Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado. Anoa Breeding Centre adalah langkah nyata sebagai bagian dari aksi konservasi anoa yang dibawahi oleh Kementrian Kehutanan. Anoa Breeding Centre merupakan suatu kegiatan konservasi Anoa secara ex-situ yang diinisiasi oleh BP2LHK Manado bekerjasama dengan Balai Konservasi Sumber Daya Alam (BKSDA) Sulawesi Utara sebagai salah satu bentuk langkah nyata pelestarian Anoa. Anoa merupakan mamalia yang tergolong dalam famili Bovidae. Anoa (Bubalus spp.) sering dijumpai di hutan, hidupnya berpindah-pindah untuk mencari makan dan minum, apabila terancam anoa akan mempertahankan diri melawan musuh menggunakan tanduknya. Anoa memiliki kebiasaan berkubang atau berendam digenangan air atau di dalam lumpur. Saat ini, ada dua jenis anoa (Bubalus spp.) yang kita kenal, yakni Anoa dataran rendah (Bubalus depressicornis) dan Anoa dataran tingi (Bubalus quarlesis) (Groves, 1969). Di alam bebas Anoa liar memakan “aquatic feed” antara lain berupa pakis, rumput, tunas pohon, buah-buahan yang jatuh, dan jenis umbi-umbian sedangkan Anoa yang berada ditempat penangkaran maupun kebun binatang, anoa diadaptasikan dengan diberi pakan rumput kering dan pellet (Pujaningsih et.al, 2005). Anoa merupakan satwa liar dan tidak menutup kemungkinan terbebas dari serangan penyakit baik yang disebabkan oleh protozoa, maupun cacing. Penyakit satwa liar dapat disebabkan karena kekurangan gizi, infeksi parasit, dan penularan penyakit dapat melalui berbagai media ataupun melalui kontak langsung (Alikodra, 2010). Salah satu penyakit parasit yang umumnya menyerang famili Bovidae yaitu Helminthiosis yang disebabkan oleh cacing Haemonchus contortus. H. contortus dikenal sebagai cacing merah di lambung pada ruminansia yang akan menyebabkan penyakit diare, dehidrasi, berkurangnya bobot badan, serta anemia (Beriajaya, 2005). Menurut pendapat Nugroho (2011) bahwa sanitasi kandang dan lingkungan serta biosecurity perlu dilakukan karena dapat menjadi tempat sumber penyakit apabila kotoran dibiarkan terus menerus menumpuk. Penyakit parasit pada hewan pada umumnya tidak menimbulkan kematian, tetapi bersifat menahun yang dapat mengakibatkan penurunan berat badan dan daya produksi (Alikodra, 2010). Parasit gastrointestinal merupakan endoparasit di dalam tubuh yang mengambil zat-zat makanan yang diperlukan bagi hostnya, dimana cacing dalam jumlah banyak mengakibatkan terjadinya kerusakan usus (Tarmudji et.al, 1988). Tidak menutup kemungkinan jenis-jenis parasit gastrointestinal dapat menyerang anoa khususnya pada anoa yang hidup di lokasi konservasi maupun penangkaran sehingga diperlukan tindakan penanganan yang tepat untuk mengatasinya. Penelitian mengenai jenis-jenis parasit yang menyerang Anoa yang dipelihara secara ex-situ penting untuk dilakukan, karena dapat memberikan informasi mengenai kesehatan satwa dan rekomendasi terkait pengelolaan kesehatannya, sekaligus menjadi bahan penyusun strategi pengendalian atau pelestarian Anoa (Levine, 1990). Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui jenis parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan Manado.
3
1.2 Rumusan Masalah Berdasarkan uraian pada latar belakang, maka dapat ditarik rumusan masalah dalam penelitian ini yaitu apakah terdapat infeksi parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) dan jenis-jenis parasit gastrointestinal apakah yang menginfeksi Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre, Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan Manado. I.3 Tujuan Penelitian 1.3.1. Tujuan Umum Untuk mengetahui ada atau tidaknya parasit gastrointestinal yang menginfesksi Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan Manado. 1.3.2. Tujuan Khusus Untuk mengetahui jenis parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan Manado. I.4 Manfaat Penelitian 1. Memberikan data dan informasi mengenai jenis-jenis parasit gastrointestinal yang menyerang Anoa di Anoa Breeding Centre Manado serta faktor penyebabnya. 2. Sebagai bahan rujukan/referensi dalam upaya pengelolaan kesehatan Anoa dan cara pengendalian penyakit parasit gastrointestinal pada Anoa (Bubalus spp.) 3. Sebagai bahan rujukan/referensi dalam upaya konservasi Anoa baik secara insitu maupun ex-situ. I.5 Hipotesis Berdasarkan rumusan masalah, dapat diajukan bahwa terdapat beberapa parasit gastrointestinal yang menginfeksi Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre, Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan Manado. 1.6 Ruang Lingkup Penelitian Penelitian ini dibatasi lingkupnya pada jenis-jenis cacing Nematoda, Trematoda, Cestoda dan Protozoa yang ditemukan pada famili Bovidae. I.7 Keaslian Penelitian Upaya konservasi anoa telah dilakukan oleh pemerintah, peneliti dan masyarakat. Rusiyanto et.al, 2005 telah melakukan konservasi melalui pendekatan bioteknologi reproduksi. Labiro, 2001 dan Mustari, 2003 telah meneliti nutrisi anoa di TN Lore Lindu dan Kalob Tanjung Peropa. Miyamoto et.al (2005) meneliti studi aliran ingesta, konsumsi dan daya cerna nutrisi anoa. Usaha konservasi juga perlu didukung informasi terkait kesehatan Anoa. Hasil penelitian ini akan menjawab Gap Knowledge yang ada yaitu dari sisi kesehatan satwa, sehingga usaha dalam konservasi baik ex-situ maupun in-situ akan lebih baik.
4
2. TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Anoa (Bubalus spp.) Anoa merupakan satwa endemik Pulau Sulawesi dan Pulau Buton. Populasi anoa sendiri di Sulawesi Selatan sudah semakin langka karna mengalami kepunahan lokal (Solikhah, 2013). Spesies ini ditandai oleh tubuh kekar dan tebal, kulit gelap (jantan lebih gelap dari pada betina). Anoa merupakan golongan ruminansia sedang dengan ciri-ciri morfologi menyerupai kerbau. Tubuh ditutupi dengan rambut coklat sampai kehitaman dan kaki depan memiliki rambut putih atau kekuningan. Tengkuk dan leher juga ditutupi warna rambut kuning-putih pucat. Anoa dewasa memiliki tanduk yang mengarah ke belakang yang datar dan panjangnya mencapai 30 cm dengan berat tubuh hingga 300 kg. Masa kehamilan anoa berlangsung selama 215-315 hari, dengan kelahiran anak hanya 1 ekor (Singer dan Purwanto, 2006). 2.1.1 Taksonomi dan Morfologi Anoa (Bubalus spp.) Menurut Walker (1964) klasifikasi taksonomi Anoa (Bubalus spp.) adalah sebagai berikut: Kingdom : Animalia Phylum : Chordata Sub Phylum : Vertebrata Class : Mammalia Order : Artiodactyla Family : Bovidae Genus : Bubalus Spesies : Bubalus depressicornis, Bubalus quarlessi. Tabel 1. Karakteristik Anoa Dataran Tinggi (B. quarlesi) dan Anoa Dataran Rendah (B. depressicornis). No. Bagian Tubuh
1
Tinggi Punggung (cm)
B. quarlesi
B. depressicornis
75 cm
80-100 cm
2 Panjang badan (cm)
122-153 cm
170-188 cm
3 Panjang Ekor
Ekor berukuran lebih pendek, tidak lebih dari seperdua jarak pangkal ekor dengan persendian lutut belakang
Mencapai persendian lutut
4 Bentuk Tanduk
Berbentuk bulat dengan permukaan yang lebih halus tanpa jalur-jalur
Berberntuk triangular, pipih dengan jalur berbentuk cincin.
5
cincin dibagian pangkal 5
Warna tubuh dan rambut
Coklat hitam, coklat Hitam, rambut kemerahan, rambut agak tampak jarang tebal dan keriting.
6
Garis putih di bawah leher
Tidak ada
Sering ditemukan (♂)
Sumber : Groves (1969)
Penampakan Anoa dataran rendah (Bubalus depressicornis) dapat dilihat pada gambar 1.
Gambar 1. Anoa dataran rendah (iucnredlist, 2008). Penampakan Anoa dataran tinggi (Bubalus querlesi) dapat dilihat pada gambar 2.
Gambar 2. Anoa dataran tinggi (iucnredlist, 2008)
6
Syam (1977) mengungkapkan bahwa pola aktivitas anoa merupakan rangkaian kegiatan yang berhubungan dengan aktivitas mencari makan, minum dan berlindung. Anoa menyukai kegiatan berendam, dan berkubang. Beberapa perilaku lainnya yaitu sering menjilati tanah untuk memenuhi kebutuhan mineral yang membantu proses metabolisme. Anoa juga sering ditemukan menggosokkan dan menajamkan tanduknya. Habitat dari anoa itu sendiri umumnya menempati lokasi yang bervariasi diantaranya dari hutan dataran rendah, rawa, pantai, hingga daerah pegunungan (Taman Safari Indonesia, 1996). 2.2 Parasit Parasit adalah suatu organisme lebih kecil yang hidup menempel pada tubuh organisme yang lebih besar yang disebut host (Bowman, 1999). Terdapat dua jenis parasit yang terbagi berdasarkan letak dan tempat parasit hidup, yaitu ektoparasit dan endoparasit. Ektoparasit adalah parasit yang hidup berparasitnya pada permukaan tubuh host atau di dalam liang-liang pada kulit yang masih mempunyai hubungan bebas dengan dunia luar sedangkan endoparasit merupakan parasit yang hidup dan menginfeksi di dalam tubuh host (Sandjaja, 2007). Istilah infeksi dan infestasi umum digunakan pada parasit. Istilah infeksi biasa digunakan untuk menyatakan tentang masuknya kuman penyakit ke dalam tubuh makhluk hidup. Istilah tersebut berlaku pada parasit-parasit yang masuk dan hidup dalam tubuh makhluk hidup. Sementara untuk ektoparasit yang hidup di atas tubuh makhluk hidup memiliki istilah sendiri, yaitu infestasi (Sandjaja, 2007). 2.3 Jenis - Jenis Parasit Gastrointestinal pada Famili Bovidae Salah satu penyakit yang cukup merugikan pada satwa di penangkaran maupun dilokasi konservasi adalah infeksi organisme parasit gastrointestinal. Parasit gastrointestinal umumnya menyebabkan kerugian dengan mengambil sebagian nutrisi host, memakan jaringan host atau menggunakan sel pada organ pencernaan untuk menyelesaikan fase hidupnya (Levine, 1990). Berdasarkan keterangan standar infeksi, derajat infeksi Telur Cacing Per Gram Tinja (TCPGT) digolongkan menjadi tiga tingkatan. Derajat infeksi ringan berkisar antara 0-500, derajat infeksi sedang bila 501-1000 dan derajat infeksi berat bila TCPGT lebih dari 1000 butir telur dalam tiap gram tinja (Soulby, 1982). Kehadiran fauna parasit terutama cacing pada hewan merupakan salah satu permasalahan yang sering dihadapi. Faktor-faktor lingkungan (suhu, kelembaban, dan curah hujan) serta sanitasi yang kurang baik dapat memengaruhi berkembangnya parasit khususnya cacing gastrointestinal pada hewan (Dwinata, 2004). Berdasarkan habitat parasit dalam tubuh host, pemeriksaan parasit gastrointestinal dapat dilakukan melalui feses. Feses dapat digunakan untuk mengetahui parasit yang hidup di saluran pencernaan. Parasit gastrointestinal menyebabkan penurunan produksi. Parasit ini terdiri dari Nematoda, Cestoda, Trematoda, dan Protozoa (Levine, 1990).
7
Tabel 2. Parasit Gastrointestinal pada Famili Bovidae NO.
KELAS
JENIS
1.
NEMATODA
Capillaria spp. Haemoncus contortus Oesophagostomum venulosum Mecistocirrus sp. Strongyloides sp.
2.
CESTODA
Moniezia sp.
3.
TREMATODA
Fasciola spp. Paramphistomum sp.
4.
PROTOZOA
Eimeria sp. Isospora sp.
Sumber: Parasitic Disease of Wild Animals, (2001). 2.3.1 CACING NEMATODA Secara umum Nematoda berbentuk panjang, silindris, dan kedua bagian ujungnya meruncing. Tubuhnya tidak bersegmen dan diselaputi oleh kutikula yang biasanya relatif tebal. Lapisan kutikula ini juga terdapat pada rongga mulut, esofagus, rektum, dan saluran genital (Soulsby, 1982). Siklus Hidup Nematoda yaitu telur yang diproduksi oleh cacing betina dewasa keluar bersama tinja. Telur berembrio akan menetas di luar tubuh host menjadi stadium larva 1 (L1) yang berkembang menjadi larva 2 (L2). Selanjutnya L2 menjadi larva 3 (L3) namun kutikulanya tidak dilepas sehingga L3 memiliki kutikula rangkap. Selanjutnya L3 disebut sebagai stadium larva infektif. Waktu yang dibutuhkan untuk perkembangan telur menjadi larva infektif tergantung kondisi lingkungan. Dalam kondisi yang optimal (kelembaban tinggi dan temperatur hangat) perkembangannya membutuhkan sekitar tujuh sampai sepuluh hari. Jika temperatur lebih rendah proses perkembangan tersebut memerlukan waktu yang lebih lama. Ruminansia terinfeksi Nematoda setelah menelan L3. Sejumlah L3 tertelan ketika host merumput, selanjutnya mengalami pelepasan kutikula di dalam abomasum atau usus halus dan melakukan penetrasi ke dalam membran mukosa abomasum (Haemonchus) atau masuk ke dalam kelenjar lambung dan menjadi L4 selama sepuluh hingga empat belas hari. Selanjutnya L4 menjadi L5 sebagai cacing muda. Sebagian besar mulai memproduksi telur sekitar tiga minggu setelah infeksi (Soulsby 1982, Levine 1990, Kusumamiharja 1995).
8
2.3.1.1 Capillaria sp. Capillaria adalah genus parasit Nematoda dari subfamili Capillarina (Gosling, 2005). Telur Capillaria umumnya tidak berembrio ketika dikeluarkan (Levine, 1990). Spesies yang akan dibahas kali ini adalah Capillaria bovis, Cappillaria brevipes, dan Capillaria longipes. Capillaria bovis terdapat dalam usus kecil sapi, kerbau air, kambing, dan ruminansia lainnya. Ukuran telur yaitu 45-50 x 22-25 μm (Taylor, 2007). Capillaria brevipes terdapat pada usus halus biri-biri dan ruminansia lain, biasanya tersebar di Amerika Utara tetapi tidak umum. Panjang C. Brevipes jantan 8-9 mm dengan diameter 50 mikron, panjang C. Brevipes betina sekitar 12 mm dan berdiameter 60 mikron, dan telur sekitar 25- 50 mikron (Levine, 1990). Capillaria longipes Termasuk dalam kelompok Nematoda. Jantan berukuran sekitar 11-13 mm dan betina sekitar 20 mm. Telur berukuran 45-50 x 22-25 μm dan berwarna serta memiliki bipolar (Taylor, 2007).
A
B Gambar 3 (a). Cacing Capillaria sp. (b). Telur Capillaria sp. dengan metode apung (Balweber, 2001). 2.3.1.2 Haemoncus contortus Jenis cacing penghisap darah dari genus Haemonchus yang dapat ditemukan di abomasum dari kebanyakan ruminansia (Gosling, 2005). Disebut juga dengan nama Haemonchus placei (Taylor, 2007). Telur cacing ini berbentuk oval, berwarna abu-abu dengan selubung tipis berukuran 70-110 x 30-50 μm, (Balweber, 2001). 2.3.1.3 Oeshophagostomum venolosum Oeshophagostomum venolosum juga terdapat pada usus besar domba, kambing. Cacing jantan panjangnya 11-16 mm dan berdiameter 300-400 mikron. Cacing betina panjangnya 13-24 mm dan berdiameter 500-600 mikron (Levine, 1990). Telur tipis dan berlapis, oval, dengan ukuran 88-105 mikron (Balweber, 2001).
9
Gambar 4. Telur O. Venulosum (Anonim, 2009). 2.3.1.4 Mecistocirrus sp. Mecistocirrus sp. adalah cacing yang menginfeksi abomasum sapi dan kerbau. Pada ruminansia kecil Mecistocirrus sp. jarang ditemukan. Telur Mecistocirrus sp. memiliki ciri-ciri yaitu berbentuk bulat, berukuran sekitar 68101 x 60-86 mikron, bagian dalam telur berwarna keunguan dan kulit tipis berwarna kehijauan (Junquera, 2014). 2.3.1.5 Strongyloides sp. Cacing Strongyloides sp. ini disebut cacing benang. Strongyloides sp. panjangnya 2-9 mm mempunyai esophagus yang sangat panjang dan berbentuk hampir silindris, vulva pada bagian pertengahan tubuh posterior, ekor pendek berbentuk kerucut, dan telur berembrio (Levine, 1990).
A
B Gambar 5 (a) Strongyloides sp (Santos, 2009). (b) Telur cacing Strongyloides papillosus (Anonim, 2009) Strongyloides papillosus terdapat pada mukosa usus halus domba, kambing, sapi, dan berbagai ruminansia lainnya. Cacing ini lebih banyak terdapat pada hewan muda. Cacing betina panjangnya 3.5-6.0 mm dan berdiameter 50-65 mikron dan menghasilkan telur berbentuk elips, berdinding tipis, dan berembrio berukuran 40-64 x 20-42 mikron. Cacing jantan hidup bebas panjagnya 700-825
10
mikron, dengan spikulum melengkung dan panjang sekitar 33 mikron dan gubernukum yang panjangnya 20 mikron dan lebar 2.5 mikron (Levine, 1990). 2.3.2
CACING CESTODA Cestoda pada ruminansia diklasifikasikan menjadi dua kelompok yang berbeda, yaitu kelompok ruminansia sebagai host definitif yang mengandung cacing dewasa dalam saluran pencernaannya (Moniezia) dan host antara (Cysticercus, Coenurus, dan Hydatid) dalam jaringannya. Bentuk tubuh Cestoda panjang, pipih dorsoventral, bersegmen, tanpa rongga badan maupun saluran pencernaan. Panjang tubuhnya beberapa milimeter hingga beberapa meter menurut jenisnya (Soulsby 1982, Levine 1990, Kusumamiharja 1995). Hampir semua Cestoda dalam siklus hidupnya memerlukan host antara. Cestoda yang sering ditemukan menginfeksi adalah jenis Moniezia. Cacing dewasa dalam usus host akan melepaskan segmen gravid yang kemudian keluar secara pasif bersama dengan tinja. Segmen gravid dalam tinja akan tersebar dan mengkontaminasi lapangan penggembalaan. Jika di area ini terdapat host antara yang cocok, yaitu jenis tungau tanah (Oribatidae) dan kemudian memakan segmen gravid yang mengandung telur Cestoda maka akan berkembang menjadi stadium larva (Cysticercoid) dalam rongga tubuhnya. Host definitif akan terinfeksi jika memakan rumput yang terkontaminasi oleh stadium cysticercoid (Anonim, 2008) 2.3.2.1. Moniezia sp. Moniezia sp. termasuk cacing pita dalam famili Anoplocephalidae. Spesies yang termasuk di dalamnya yaitu Moniezia benedeni dan Moniezia expansa. Ditemukan dalam usus halus pada ternak dan ruminansia usia muda (Gosling, 2005). Ditemukan pula pada domba, kambing dan lainnya. Telur M. benedeni terlihat sedikit lebih besar dibanding telur M. expansa (Taylor, 2007). Telur ini berdiameter 75μm untuk M. benedeni dan 56-67μm untuk M. expansa (Ballweber, 2001). Perbedaan telur diantara keduanya selain dari diameter adalah bentuk telur. Persegi empat untuk M. benedeni sedangkan segitiga untuk M. expansa (Levine, 1990).
A
B
Gambar 6 (a) Telur Moniezia expansa (b) Cacing dewasa M. expansa (Anonim, 2009)
11
2.3.3 CACING TREMATODA Trematoda atau cacing daun, merupakan subfilum dari filum: Platyhelmintes, kelas: Trematoda, Ordo: Prosostoma (Ideam dan Pusarawati, 2007). Cacing Trematoda tidak mempunyai rongga badan, tubuh biasanya pipih dorsoventral, biasanya tidak bersegmen dan seperti daun. Mereka mempunyai dua alat penghisap yang disebut asetabulum karena bentuknya mirip dengan mangkuk cuka (Levine, 1990). Habitat cacing dewasa di dalam saluran empedu (Fasciola sp.), rumen (Paramphistomum sp.) (Soulsby 1982, Levine 1990, Kusumamiharja 1995). Cacing dewasa bertelur di dalam habitatnya kemudian menuju usus dan dikeluarkan bersama-sama feses. Telur kemudian menetas membebaskan mirasidium yang bergerak aktif dalam lingkungan akuatik dengan menggunakan silianya mencari dan melakukan penetrasi ke dalam tubuh siput yang cocok kemudian berkembang menjadi beberapa stadium. Lima sampai tujuh minggu setelah infeksi serkaria keluar dari tubuh siput dan berenang bebas kemudian kontak dengan tanaman di sekitarnya membentuk metasekaria. Perkembangan selanjutnya, serkaria membentuk kista pada tanaman atau rumput di area penggembalaan. Infeksi terjadi karena host definitif memakan rumput yang terkontaminasi metaserkaria. Setelah termakan, metaserkaria mengalami ekskistasi membebaskan cacing muda dalam intestin. Kemudian cacing muda ini menembus intestin bermigrasi menuju hati. Setelah sekitar enam sampai delapan minggu cacing muda masuk ke dalam saluran empedu dan berkembang menjadi cacing dewasa hingga memproduksi telur (Bennet, 1999). 2.3.3.1 Fasciola sp. Fasciola sp. ujung anteriornya tidak sama lebar dengan tubuh lainnya, dan membentuk semacam kerucut. Disebut juga cacing hati dan mempunyai induk semang antara dari genus siput Lymnaea (Levine, 1990). Tersebar di seluruh penjuru dunia dan menyerang sapi, domba, kambing, kuda, babi, manusia dan rusa (Taylor, 2007). Fasiola hepatica terdapat didalam pembulu empedu sapi, domba, kambing dan hampir semua mamalia lainnya didunia. Parasit dewasa berbentuk seperti daun, mencapai panjang 5 cm dan lebar 1.5 cm. Telurnya agak kekuningan mencapai 150 x 90 mikron, dan mempunyai sebuah operculum. Pada Fasciola gigantica berukuran 25-27 x 3-12 mm, ujung posterior tumpul, ovarium lebih panjang dengan banyak cabang. Telur Fasciola gigantica memiliki operkulum, berwarna emas dan berukuran 190 x 100 mikron (Baker, 2007).
Gambar 7. Morfologi Fasciola sp. (Nguyen, 2012)
12
2.3.3.2. Paramphistomum sp. Paramphistomum sp. sebagian besar cacing mempunyai panjang 10-12 mm dan lebar 2-4 mm. Paramphistomum cervi terdapat pada rumen dan retikulum ruminansia piaraan/liar, merupakan parasite pada sapi, domba, kambing, kerbau. Tubuh tebal pada penampang transversal dan membulat (Levine, 2012). Morfologi telur Paramphistomum sp. transparan, sel embrional dan operculum yang jelas, dinding berwarna jernih (transparan), sering terdapat tonjolan kecil di ujung posterior dan ukuran telur Paramphistomum sp. lebih besar daripada telur Fasciola sp. Dengan panjang 113-175 mikron dan lebar 73-100 mikron (Purwanta et.al, 2009).
A
B
Gambar 8 (a) Telur Paramphistomum sp. (b) Telur Fasciola sp. (Purwanta et.al, 2009) 2.3.4. PROTOZOA Protozoa tersusun dari organela-organela tetapi bukan organ, merupakan diferensiasi dari satu sel. Protozoa merupakan eukaryotik dengan satu inti yang diselubungi oleh membran (selaput) (Ballweber, 2001). 2.3.4.1 Eimeria sp. Eimeria sp. dari genus Eimeria, termasuk dalam kelas conoidasida yang tersebar secara luas diseluruh dunia. Spesies ini menyerang saluran pencernaan dari ruminansia dan berukuran 12-45 μm. Eimeria auburnesis terdapat dipertegahan dan sepertiga usus halus bagian bawah sapi, dan kerbau air. Ookista panjang dan bulat telur, biasanya halus tetapi kadang-kadang kasar dan berbintilbintil, dan rata-rata sekitar 36-41 x 22-26 mikron. Eimeria bovis terdapat dalam usus halus, ookistanya berbentuk bulat telur, halus dan rata-rata 27-29 x 20-21 mikron (Levine, 1990). Siklus hidup parasit ini berawal dari keluarnya ookista bersama feses, kemudian akan terjadi sprulasi 1-2 hari. Oosit yang telah mengalami sporulasi kemudian termakan oleh hewan, selanjutnya ookita pecah dan terbentuk sporozoit yang menyerang mukosa dan usus. Sprorozoit kemudian berkembang menjadi schizont, makrogametosit dan mikrogametosit. Makrogamet dan mikrogamet kawin akhirnya terbentuk zigot/ookiste. Hewan terinfeksi karena menelan makanan terinfeksi ookista (Darma dan Putra 1997).
13
2.3.4.2. Isospora sp. Jenis Protozoa lainnya yaitu dari genus Isospora, genus ini sangat mirip dengan Eimeria, tetapi ookistanya mengandng dua sporokista, masing-masing dengan empat sporozoit. Isospora sp. umumnya terdapat pada karnivora dan primate serta burung-burung passer, sedangkan Eimeria sp. umumnya pada rodensia, ruminansia dan burung peliharaan (Levine, 1990).
Gambar 9. Eimeria sp. (Anonim, 2009)
14
3. METODOLOGI PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian dilaksanakan pada bulan Juni dan bulan September 2016. Penelitian bertempat di Anoa Breeding Centre, Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado, Laboratorium Farmasi Fakultas MIPA Universitas Sam Ratulangi Manado, Laboratorium BP2LHK, dan Laboratorium Parasitologi Balai Besar Veteriner Maros. 3.2 Jenis Penelitian dan Metode Pengambilan Sampel Jenis penelitian ini termasuk penelitian deskriptif. Pemeriksaan telur parasita gastrointestinal menggunakan metode kuantitatif dan kualitatif. Pemeriksaan kualitatif menggunakan metode Natif dan metode Apung dengan Sentrifus, dimaksudkan untuk mengidentifikasi jenis telur cacing yang menginfeksi Anoa (Bubalus spp.) berdasarkan bentuk dan struktur telur dari larvanya, sedangkan pemeriksaan kuantitatif menggunakan metode Mc. Master dimaksudkan untuk mengetahui banyaknya telur cacing setiap gram feses yang menggambarkan berat ringannya derajat infeksi. 3.3 Bahan Penelitian Bahan penelitian yang digunakan adalah feses segar, larutan NaCL jenuh, aquades, ice gel, dan formalin 10%. 3.4 Peralatan Penelitian Peralatan yang digunakan adalah kantung klip plastik, labeling, kamar hitung Mc Master, buku catatan, ice box, kapas, mortar dan alu, rak tabung, tabung reaksi, object glass serta cover glass, mikroskop, sentrifus, kamera untuk dokumentasi, ose, gloves, masker, pipet tetes, dan timbangan digital. 3.5 Prosedur Kerja Penelitian ini berlangsung pada bulan Juni 2016 dan bulan September 2016. Pengambilan sampel feses segar dilakukan pada 6 ekor Anoa (Bubalus spp.) di Balai Penelitian dan Pengembangan Lingkungan Hidup dan Kehutanan (BP2LHK) Manado, Sulawesi Utara. Waktu pengambilan feses pada pagi dan sore hari, kemudian feses dimasukkan ke dalam kantong plastik yang berisi kapas berformalin, diberi label dan disimpan di dalam ice box. Selanjutnya sampel feses dibawa ke laboratorium dilakukan identifikasi menggunakan Metode Natif dan Metode Apung dengan sentrifugasi selanjutnya dilakukan pemeriksaan dengan metode Mc. Master untuk menghitung jumlah telur cacing tiap gramnya. a. Metode Natif Sampel feses diambil secukupnya menggunakan ose, selanjutnya diletakkan di atas object glass kemudian ditambahkan satu tetes air dan dicampurkan hingga homogen. Tutup dengan cover glass dan diperiksa dibawah mikroskop dengan perbesaran 100x (Kusumamihardja, 1995).
15
b. Metode Apung dengan Sentrifus Sampel feses sebanyak 2 gr dimasukkan kedalam mortar, ditambahkan dan diaduk sampai homogen. Lalu dituangkan ke dalam tabung sentrifus sampai setinggi ¾ tabung. Sentrifus dilakukan dengan kecepatan 2000 rpm selama 5 menit. Selanjutnya, cairan jernih di atas endapan dibuang, dan ditambahkan larutan NaCl jenuh. Tabung disentrifus kembali dengan kecepatan 2000 rpm selama 5 menit. Tabung sentrifus diletakkan di atas rak dengan posisi tegak lurus, diteteskan NaCl jenuh dengan pipet sampai permukaan cairan di dalam tabung menjadi cembung dan dibiarkan selama 3-5 menit, tempelkan object glass di atas permukaan yang cembung tadi dengan hati-hati lalu secepatnya dibalik. Permukaan object glass ditutup dengan menggunakan cover glass dan diperiksa di bawah mikroskop (perbesaran 100x) (Soulsby, 1982). c. Uji Metode Mc. Master Tabung yang berukuran 30 ml diisi dengan air sampai 28 ml kemudian ditambahkan dengan 2 g feses yang telah digerus sampai menunjukkan angka 30 ml dan dihomogenkan. Pada tabung percobaan dimasukkan 1 ml campuran feses yang telah dihomogenkan kemudian ditambahkan dengan 1 ml larutan NaCL jenuh dan dihomogenkan. Larutan tersebut kemudian diteteskan dalam kamar hitung McMaster. Sediaan didiamkan selama 20 menit agar telur mengapung kepermukaan. Kemudian periksa kamar hitung menggunakan mikroskop dengan dan fokuskan pada tiap kolom, dimana dalam 1 kolom chamber (kamar) berisi 6 kolom. Selanjutnya menghitung jumlah telur atau ookista yang terlihat pada tiaptiap kolom. Dalam 1 chamber (kamar) berisi 0,15 ml. Pencampuran berlaku pada tiap telur atau ookista berbeda dalam 1 gram tinja. Jumlah telur/ookista yang terhitung pada kedua chamber (kamar) dikalikan 100 (Soulsby, 1982 dalam Basrul, 2015). 3.6 Analisis Data Analisis data dilakukan secara deskriptif dari hasil identifikasi jenis parasit dan perhitungan telur. Identifikasi jenis parasit gastrointestinal dilakukan berdasarkan morfologi dan ukuran telur hasil pengamatan yang disesuaikan dengan literatur sehingga dapat diketahui jenis parasit yang menginfeksi berdasarkan telur yang ditemukan. Identifikasi jenis parasit menggunakan beberapa literatur diantaranya Bowman (1999) dan Soulby (1982). Penentuan frekuensi kehadiran jenis parasit gastrointestinal dihitung menggunakan rumus (Suin, 1997). a FK = x 100% b Keterangan : FK : Frekuensi Kehadiran a : Jumlah sampel yang ditemukan dan sama jenisnya b : Jumlah seluruh sampel Derajat infeksi Telur Cacing Per Gram Tinja (TCPGT) digolongkan menjadi tiga tingkatan. Derajat infeksi ringan berkisar antara 0-500, derajat infeksi sedang bila 501-1000 dan derajat infeksi berat bila TCPGT lebih dari 1000 butir telur dalam tiap gram tinja (Soulby, 1982).
16
4. HASIL DAN PEMBAHASAN Berdasarkan hasil penelitian terdapat 6 (enam) jenis parasit gastrointestinal yang berhasil diidentifikasi terdiri atas 4 famili, 4 ordo dan 4 kelas yaitu Nematoda, Trematoda, Cestoda dan Protozoa. Sebanyak 5 (lima) jenis telur cacing parasit gastrointestinal diantaranya Paramphistomum sp., Mecistocirrus sp., Capillaria sp., Haemoncus sp., Moinezia sp., dan satu jenis Protozoa yaitu Eimeria sp. Jenis parasit yang menginfestasi Anoa di BP2LHK Manado selengkapnya disajikan dalam Tabel 3. Tabel 3. Jenis parasit gastrointestinal yang ditemukan pada Anoa (Bubalus spp.) di BP2LHK Manado. No
Kelas
Ordo
Famili
Spesies
Metode Pengamatan
Bentuk Parasit
1.
Nematoda
Strongylida
Trichostrongylidae
Haemonchus sp.
Metode Apung
Telur
2.
Nematoda
Strongylida
Trichostrongylidae
Mecistocirrus sp.
Metode Apung
Telur
3.
Nematoda
Trichurida
Capillariidae
Capilarria sp.
Metode Apung
Telur
4.
Trematoda
Echinostomida
Paramphistomatidae
Paramphistomum sp.
Metode Natif
Telur
5.
Cestoda
Cyclophyllidea
Anoplocephalidae
Moinezia sp.
Metode Apung
Telur
6.
Conoidasida
Eucoccidiorida
Eimeriidae
Eimeria sp.
Metode Natif
Ookista
Sumber Data Primer (2016) Berikut perbandingan gambar jenis-jenis parasit yang berhasil ditemukan dengan gambar yang ada di literatur.
A
B
17
Gambar 10. (A) Telur cacing Paramphistomum sp. dengan metode natif dan perbesaran 100x (Data Primer, 2016); (B) Telur cacing Paramphistomum sp. (Lukesova, 2009).
Mecistocirrus sp.
B
A
Gambar 11. (A) Telur cacing Mecistocirrus sp. dengan metode apung dan perbesaran 100x. (Data Primer, 2016); (B) Telur cacing Mecistocirrus sp. (Janquera, 2015).
Capillaria sp. A
B
Gambar 12. (A) Telur cacing Capillaria sp. dengan metode apung dan perbesaran 200x (Data Primer, 2016); (B) Telur cacing Capillaria sp. (Junquera, 2007).
Haemoncus sp. A
B
Gambar 13. (A) Telur cacing Haemoncus sp. dengan metode apung perbesaran 100x (Data primer, 2016); (B) Telur cacing Haemoncus contortus (Purwanta et.al, 2009).
18
Moinezia sp.
A
B
Gambar 14. (A) Telur cacing Moinezia expansa, dengan metode apung dan perbesaran 400x (Data primer, 2016); (B) Telur cacing Moinezia sp. (Zajac, 2012).
Eimeria sp.
A
B
Gambar 15. (A) Eimeria sp. dengan metode natif dan perbesaran 200x (Data primer, 2016); (B) Eimeria sp. (Das et.al, 2015). Berdasarkan Gambar 10. A telur cacing Paramphistomum sp. berbentuk oval, berdinding tipis, agak transparan dan bewarna kekuningan, blastomer memenuhi telur. Hal ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh Purwanta et.al (2009) bahwa morfologi telur Paramphistomum sp. terlihat transparan, sel embrional dan operculum tampak jelas, dinding berwarna jernih (transparan), sering terdapat tonjolan kecil di ujung posterior, ukuran telur Paramphistomum sp. 113-175 mikron. Berdasarkan Gambar 11. A telur cacing Mecistocirrus sp. berbentuk bulat, berkulit tipis, terdapat area bening didalamnya. Hal ini sesuai dengan Junquera (2014) yang menjelaskan bahwa morfologi telur Mecistocirrus sp. memiliki ciriciri berbentuk bulat, berukuran sekitar 68-101 x 60-86 mikron, bagian dalam telur berwarna keunguan dan kulit tipis berwarna kehijauan. Mecistocirrus sp. adalah cacing yang menginfeksi abomasum sapi dan kerbau yang dapat menyebabkan penurunan produksi daging, susu dan tenaga kerja serta kematian (Urquhart et.al, 1996). Berdasarkan Gambar 12. A telur cacing Capillaria sp. bewarna coklat, berbentuk lonjong dan memiliki dinding yang tebal. Sesuai dengan informasi Dehlawi (2007) telur Capillaria bovis berdinding tebal, kedua sisinya datar dan
19
pada ujung anterior sampai posterior terdapat operculum. Ukuran telurnya 30 sampai 45 μm, bentuk ujung telur tidak menonjol. Berdasarkan Gambar 13. A telur cacing Haemoncus sp. teridentifikasi dengan ciri-ciri yaitu berdinding tipis dan berbentuk lonjong. Sesuai dengan Ballweber (2001) yang mengatakan bahwa telur Cacing Haemoncus sp. berbentuk oval, berwarna abu-abu dengan selubung tipis berukuran 70-110 x 3050μm. Berdasarkan Gambar 14. A telur cacing Cestoda yaitu Moinezia sp. dengan ciri-ciri berbentuk segitiga. Berdasarkan Ballweber (2001) telur M. benedeni memiliki diameter 75μm dan telur M. expansa 56-67 μm. Perbedaan diantara keduanya terlihat dari diameter dan bentuk telur, persegi empat untuk M. benedeni sedangkan segitiga untuk M. expansa (Levine et.al, 1990). Selain menemukan telur parasit gastrointestinal, hasil penelitian juga menunjukkan bahwa terdapat jenis Protozoa yang menginfeksi Anoa di BP2LHK Manado. Berdasarkan Gambar 15. A terlihat spesies dari Protozoa yaitu Eimeria sp. dengan ciri ciri berbentuk oval, dan berdinding tipis. Secara morfologi telur Eimeria sp. berukuran antara 12 - 45 mikron (Zajac, 2006) dan berdinding tipis (Bowman, 2009). Terdapat 5 (lima) dari 6 (enam) ekor Anoa di Anoa Breeding Centre BP2LHK terjangkit parasit gastrointestinal, seperti yang diinformasikan dalam Tabel 4. Tabel 4. Daftar Anoa Daftar Anoa di BP2LHK Manado yang terinfeksi parasit gastrointestinal. Kelas Spesies
Nama Anoa
Anoa A 6 thn (jantan)
Anoa B Anoa C Anoa D Anoa E 7 thn 2.5 thn 2.5 thn 7 thn (betina) (betina) (betina) (jantan)
Anoa F 6 thn (betina)
Capillaria sp. Haemoncus sp. Mecistocirrus sp.
_ _ _
_ _ +
_ _ _
_ + _
+ _ _
_ _ _
Cestoda
Moinezia sp.
+
_
_
_
_
Trematoda
Paramphistomum sp.
_
+
+
_
_
_ _
Protozoa
Eimeria sp.
_
+
_
_
_
Nematoda
Sumber : Data primer (2016) Berdasarkan data pada tabel 4, hasil pemeriksaan menunjukkan bahwa 5 (lima) dari 6 (enam) ekor Anoa (Bubalus spp.) di BP2LHK Manado positif terinfeksi parasit gastrointestinal dari kelas Nematoda, Cestoda, Trematoda dan
_
20
Protozoa. Jenis telur cacing yang menginfestasi antara lain dari kelas Trematoda yaitu Paramphistonum sp., kelas Nematoda yaitu Haemoncus sp., Mecistocirrus sp. Capillaria sp., dan kelas telur cacing Cestoda yaitu Moinezia sp. dan juga terdapat Protozoa yaitu Eimeria sp. Terdapat dua ekor Anoa yang terinfeksi Paramphistonum sp. dengan frekuesi kehadiran sebesar 5.28% yaitu Anoa B dan Anoa C. Paramphistomum sp. merupakan salah satu cacing dalam kelas Trematoda yang hidup di dalam rumen, retikulum hewan yang diserangnya. Hal ini menyebabkan kerja rumen menjadi terganggu sehingga pakan tidak dapat dicerna dengan sempurna (Hamdan, 2014). Anoa yang diserang akan bertindak sebagai host definitif. Cacing muda Paramphistomum sp. berpredeliksi di dalam usus halus dan akan bermigrasi ke dalam rumen dan retikulum setelah dewasa (Kamaruddin et.al, 2005). Paramphistomum sp. dalam kelangsungan hidupnya memerlukan siput sebagai host antara yang berasal dari Planorbidae dan Lymneaeidae. Infeksi pada host definitif terjadi pada saat hewan memakan rumput atau meminum air yang mengandung metaserkaria. Paramphistomiasis merupakan penyakit yang disebabkan oleh Paramphistomum sp. yang dapat menghambat pertumbuhan, rusaknya jaringan/organ dan hewan akan mengalami kekurusan disebabkan karena kurangnya nafsu makan (Suryana, 2006). Terdapat satu ekor Anoa yang terinfeksi Capillaria sp. dengan frekuesi kehadiran sebesar 2.63% yaitu Anoa E. Umumnya Capillaria bovis dapat ditemukan di usus kecil pada sapi, kerbau air, kambing dan ruminansia lain diseluruh dunia. Capillariasis merupakan penyakit parasit pada ternak yang disebabkan oleh Capillaria sp. Penyakit ini dapat menyerang ternak mamalia dengan gejala klinis seperti sesak napas, kekurusan, leleran hidung, anemia dan bulu kasar. (Levine et.al, 1990). Terdapat satu ekor Anoa yang terinfeksi Haemoncus sp. dengan frekuesi kehadiran sebesar 2.63% yaitu Anoa D. Telur Haemonchus sp. berdinding tipis, berbentuk lonjong dan terdapat area bening di dalam telur (Purwanta et.al, 2009). Setelah telur berubah menjadi larva dengan tahapan 4 stadium. Larva mampu bertahan selama beberapa minggu di rerumputan dan beberapa bulan bila cuaca lembab. Haemonchus sp. adalah cacing penghisap darah yang rakus. Penyakit yang disebabkan oleh cacing Haemonchus sp. disebut Haemonchosis yang dapat menyebabkan anemia dan kerusakan usus. Gejala lain yang menonjol yaitu penurunan berat badan, pertumbuhan yang buruk dan penurunan produksi susu (Rahayu, 2007). Terdapat satu ekor Anoa yang terinfeksi Mecistocirrus sp. dengan frekuesi kehadiran sebesar 2.63% yaitu Anoa B. Mecistocirrus sp. merupakan cacing Nematoda yang menginfeksi abomasum sapi dan kerbau (Urquhart et.al, 1996). Infeksi cacing Mecistocirrus sp. pada sapi dapat menyebabkan penurunan produksi daging, susu serta kematian (Juniquera, 2014). Penyebaran Mecistocirrus sp. pada umumnya melalui rumput atau pakan hijauan yang terkontaminasi oleh larva stadium infektil (L3) Di dalam lambung, stadium L3 akan menjadi stadium L4, pada stadium L4 dimulai periode di dalam abomasum (Kusumamihardja, 1993). Terdapat satu ekor Anoa yang terinfeksi Moinezia sp. dengan frekuesi kehadiran sebesar 2.63% yaitu Anoa A. Moniezia expansa termasuk cacing pita yang ditemukan dalam usus kecil pada ternak dan ruminansia usia muda (Gosling, 2005). Penyakit yang disebabkan oleh Moinezia sp. disebut dengan Cestodosis
21
dengan gejala yang terlihat antara lain badan kurus, bulu kusam, selaput mata terlihat pucat, anemis, terdapat gejala edema dan mencret (Rahayu, 2007). Terdapat satu ekor Anoa yang terinfeksi Eimeria sp. dengan frekuensi kehadiran 2.63%, yaitu Anoa B. Ookista dari Eimeria zuernii berbentuk bulat, agak bulat tetapi ada juga yang berbentuk ovoid, subovoid dan elips. Demikian pula ukurannya yang bervariasi yaitu 12-29 x 10-21 mikron (Levine et.al, 1990). Sementara pada penelitian yang dilakukan oleh Basrul (2015) menemukan Eimeria sp. dengan bentuk oval dan tidak terlalu bewarna. Senada dengan yang dijelaskan oleh Bowman (2009) bahwa Eimeria sp. memiliki dinding yang tipis, berbentuk lonjong atau oval dan tidak terlalu berwarna. Eimeria zuernii dapat menyebabkan koksidiosis (diare berdarah) dan mortalitas serta kerugian yang nyata pada anak sapi yang berumur kurang dari satu tahun. Infeksi Eimeria sp. pada sapi dilaporkan telah menyebar di seluruh dunia (Alemayehu et.al, 2013). Anoa yang berada di BP2LHK Manado diberi pakan berupa rumputrumputan, daun hijau, umbi dan buah-buahan. Daun hijau diambil dari beberapa jenis pohon pakan yang tumbuh alami dan ditanam di sekitar kandang seperti daun Kayu Kambing (Garuga floribunda), Gamal (Gliricidia sepium), Awar-awar (Ficus septica), Karet Kebo (Ficus elastica), Tali Utan (Meremia peltata) dll. Pakan tambahan seperti jagung dan batang mudanya, ubi jalar, papaya dan pisang diperoleh dari pasar. Rumput lapangan merupakan pakan utama Anoa di BP2LHK Manado yang sebagian besar diambil di tepi jalan, tepi sungai, dan kebun masyarakat yang terdiri dari jenis-jenis rumput Australi (Paspalum dilatatum), Setaria (Setaria sphacelata), dan rumput Gajah (Pennisetum purpureum) yang diduga terdapat larva cacing yang menempel. Selain itu, parasit cacing dapat ditularkan melalui tanah dan makanan berupa hijauan atau buah-buahan yang terkontaminasi telur cacing. Telur-telur cacing akan berkembang menjadi larva infektif bila telah jatuh ke tanah, dan apabila telur/larva itu tertelan tanpa sengaja oleh inang maka inang menjadi terinfeksi oleh parasit tersebut. Anoa di BP2LHK Manado memiliki kebiasaan bermain dengan pakan yang diberikan. Rumput diambil, dibawa dan dijatuhkan ke tanah, kemudian dimakan. Selain itu mereka juga suka memakan tumbuhan liar yang berada di tanah. Kebiasaan-kebiasaan tersebut dapat beresiko menimbulkan kecacingan dengan termakannya larva atau metaserkaria ke tubuh Anoa. Pada pemeriksaan dengan metode Mc. Master tidak ditemukan adanya telur cacing pegram fesesnya, dikarenakan jumlah telur cacing yang terinfestasi dalam feses sangat rendah. Jumlah telur yang sangat sedikit (<10 ttgt) tidak dapat terdeteksi dengan metode Mc. Master (Kusumamihardja, 1995). Diduga hal ini terjadi karena proses pengambilan feses cukup mengalami kesulitan. Karena sifat Anoa yang masih liar dan berpotensi membahayakan, maka pengambilan feses dilakukan dari luar kandang. Apabila jarak feses dengan pagar agak jauh, maka feses diambil menggunakan sebuah bambu berukuran sekitar satu meter. Feses diambil menggunakan ujung bambu kemudian ditarik keluar. Diduga pengambilan dengan cara ini tidak dapat mewakili semua bagian dari feses. Feses yang diambil tidak merata, hanya pada salah satu bagian saja. Oleh karena itu perlu dilakukan modifikasi pengambilan tinja, dengan cara mengambil tinja dari bagian luar, tengah, dan dalam. Pada ketiga bagian tersebut telur cacing yang ditemukan dapat bervariasi jenis dan jumlahnya (Kusumamihardja, 1995). Lebih jelas diungkapkan oleh Kusumamihardja (1995) bahwa jumlah telur tiap gram tinja (ttgt) yang bervariasi pada setiap hewan dapat dipengaruhi oleh
22
beberapa faktor yaitu waktu produksi telur, kepadatan atau konsistensi tinja, serta cara pengambilan tinja yang tidak menyeluruh pada seluruh bagian tinja karena distribusi telur dalam tinja tidak merata. Selain itu faktor dari sistem perkandangan juga akan mempengaruhi jumlah telur cacing yang ditemukan per gram fesesnya, sistem kandang individu akan menekan jumlah kontaminan parasit, kecil kemungkinan parasit tersebut ditularkan dari satu Anoa ke yang lainnya seperti halnya pada Anoa di Anoa Breeding Centre, mereka ditempatkan secara individu dalam kandang semi alami yang dibersihkan secara intensif oleh keeper dan hanya digabung pada masa estrus Anoa betina. (Nofyan et.al, 2010). Berdasarkan informasi diatas, dapat diketahui bahwa Anoa yang berada pada Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado terinfeksi parasit gastrointestinal, dan derajat infeksinya termasuk dalam infeksi kategori ringan, sesuai dengan literatur Soulsby (1982) derajat infeksi Telur Cacing Per Gram Tinja (TCPGT) digolongkan menjadi tiga tingkatan. Derajat infeksi ringan bila TCPGT berkisar antara 0 sampai dengan 500, derajat infeksi sedang bila TCPGT antara 501 sampai dengan 1000 dan derajat infeksi berat bila TCPGT lebih dari 1000 butir telur dalam tiap gram tinja. Satu hal yang harus diingat adalah jumlah telur cacing per gram feses tidak selalu dapat menunjukkan tingkat infeksi yang sebenarnya. Hal ini mengacu pada kenyataan bahwa hanya cacing dewasa saja yang dapat menghasilkan telur, sedangkan larva cacing belum menghasilkan telur (Nofyan et.al, 2010). Berdasarkan hasil identifikasi, jenis parasit gastrointestinal yang menyerang Anoa memiliki kesamaan dengan yang ada pada sapi dan kerbau. Informasi tersebut dapat dilihat pada Tabel 5. Tabel 5. Jenis-jenis parasit gastrointestinal yang menyerang Anoa, Kerbau dan Sapi Jenis Hewan Kelas Nematoda
Spesies Haemonchus sp. Mecistocirrus sp. Capilarria sp. Oesophagostomum sp Trichostrongilus spp Nematodirus spp Ostertagia sp. Strongyloides sp Trichuris sp Cooperia sp. Toxocara sp.
Anoa
Kerbau
Sapi
+ + + -
+ + + + +
+ + + + + + + + +
23
Cestoda
Moinezia sp.
+
-
+
Trematoda
Paramphistomum sp. Fasciola sp.
+ -
+ +
+ +
Protozoa
Eimeria sp.
+
-
+
Sumber : Data primer (2016), Sugama (2011), Baihaqi (2015), Novyan (2010). Dari data tersebut dapat dilihat bahwa frekuensi kehadiran parasit gastrointestinal yang paling tinggi adalah dari kelas Nematoda. Hal ini berkaitan dengan siklus hidup cacing tersebut yaitu tidak memerlukan host perantara, sehingga untuk berlangsungnya siklus hidup cacing ini lebih mudah. Jenis telur parasit gastrointestinal lainnya yang juga sering ditemukan adalah telur cacing dari kelas Trematoda yaitu Paramphistomum sp., dan Fasciola sp. cacing dari kelas Trematoda memerlukan host perantara untuk dapat mencapai hospes definitifnya (Levine, 1990). Kejadian paramphistomiasis dan fasciolosis banyak terjadi di bagian dunia dengan curah hujan yang tinggi dan di padang rumput yang basah, hal ini berkaitan dengan siklus hidup cacing tersebut. Infeksi Paramphistomum sp. pada ternak biasa terjadi pada akhir musim hujan dan awal musim kemarau. Paramphistomiasis tersebar di seluruh dunia dengan prevalensi tertinggi terjadi pada daerah beriklim tropis dan subtropis, seperti Asia, Afrika, Australia, Eropa timur dan Rusia (Subronto, 2007). Hasil penelitian mengenai infeksi Paramphistomum sp. di Indonesia pernah dilaporkan oleh Beriajaya et.al. (1979) pada sapi yang dipotong di Rumah Potong Hewan (RPH) Ujung Pandang dan Kabupaten Gowa, Sulawesi Selatan, yang menyatakan bahwa tingkat prevalensi cacing Paramphistomum sp. adalah 100%. Sementara kejadian fasciolosis pada sapi dan kerbau di Indonesia berdasarkan keterangan dari peneliti melaporkan berkisar antara 60-90% (Soesetya, 1975). Penyebab terjadinya kasus kecacingan tersebut diantaranya karena sapi dan kerbau mengkonsumsi hijauan seperti rumput yang masih berembun dan tercemar oleh vektor pembawa cacing (Abidin, 2002). Risiko kejadian penyakit parasit dipengaruhi oleh tiga faktor yang saling terkait yakni agen penyebab, inang (host), dan faktor lingkungan yaitu kondisi di luar tubuh inang yang mendukung terhadap munculnya kasus cacingan. Faktor pertama munculnya kasus kecacingan pada Anoa dengan agen penyakit yaitu cacing. Cacing parasit gastrointestinal yang umum ditemukan di usus halus dan usus besar. Cacing ini hanya dapat menginfestasi inang dalam bentuk larva infektif (L3). Oleh karena itu, peluang banyaknya kasus kecacingan yang muncul berbanding lurus dengan banyaknya jumlah larva infektif di lingkungan tempat inang berada. Artinya semakin banyak jumlah larva infektif maka peluang munculnya kasus kecacingan juga akan semakin besar dan begitu sebaliknya (Kusumamihardja, 1992).
24
Faktor kedua penyebab munculnya kasus kecacingan terkait dengan host yaitu Anoa. Pada umumnya hewan yang mempunyai daya resistensi tubuh lebih rendah memiliki peluang yang lebih besar terinfestasi oleh penyakit. Sebaliknya, pada hewan yang resistensi tubuhnya tinggi memiliki peluang yang lebih kecil terinfestasi oleh penyakit (Kusumamihardja, 1992) Faktor ketiga penyebab munculnya kasus kecacingan terkait dengan lingkungan tempat inang berada. Menurut Kusumamihardja (1992), kondisi lingkungan di luar tubuh inang sangat mempengaruhi munculnya kasus kecacingan antara lain mencakup kesesuaian suhu dan kelembaban serta ketersediaan oksigen. Lingkungan yang sesuai memungkinkan telur-telur cacing yang keluar bersama feses menetas dan berkembang menjadi larva infektif yang akan menginfestasi inang baru. Hal ini berarti bahwa semakin ideal kondisi lingkungan, peluang munculnya kasus kecacingan akan semakin besar. Untuk itu perlu diperhatikan juga tentang sanitasi lingkungan tempat tinggal inang. Sanitasi yang buruk, khususnya jika feses tidak dibersihkan secara teratur, dapat menjadi sumber infeksi ulang yang parah dan berkelanjutan (Reinecke, 1983). Pengendalian kecacingan bertujuan untuk menekan derajat infeksi. Pengendalian kecacingan dengan pemberian anthelmentika selain mengurangi derajat infeksi juga akan menekan jumlah kontaminan parasit di lapangan. Pengendalian terpadu dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu menggunakan teknik kimiawi dan non-kimiawi termasuk perbaikan nutrisi hewan serta menjaga keamanan lapangan rumput terhadap adanya kontaminan cacing stadium infektif terutama bagi hewan muda (Love dan Hutchinson, 2007).
25
5. PENUTUP 5.1 Kesimpulan 1. Terdapat 6 (enam) jenis parasit gastrointestinal yang menginfeksi Anoa di Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado yaitu 5 (lima) telur cacing jenis Paramphistomum sp., Mecistocirrus sp., Capillaria sp., Haemoncus sp., Moinezia sp. dan 1 (satu) jenis protozoa yaitu Eimeria sp. 2. Frekuensi kehadiran parasit gastrointestinal jenis Paramphistomum sp. adalah yang paling tinggi yaitu 5.28%, Mecistocirrus sp. 2.63% Capillaria sp. 2.63 % Haemoncus sp. 2.63% Moinezia sp 2.63% dan Eimeria sp 2.63%. 3. Pada metode Mc.Master tidak ditemukan adanya telur cacing. Jumlah telur yang sangat sedikit (<10 ttgt) tidak dapat terdeteksi dengan metode Mc. Master. Derajat infeksi Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado termasuk dalam infeksi ringan dengan total telur cacing pergram feses berkisar antara 0 sampai dengan 500 butir telur. 5.2 Saran Berdasarkan penelitian, beberapa hal yang perlu diperhatikan adalah sebagai berikut: 1. Perlunya perbaikan manajemen perkandangan di Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado, seperti perluasan kandang untuk menghindari stress pada Anoa serta perbaikan pakan untuk menunjang kesehatan anoa. 2. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut terkait identifikasi parasit gastrointestinal pada Anoa dengan sampel yang lebih banyak, lokasi yang berbeda dan dengan metode pemeriksaan yang lebih beragam untuk menambah informasi mengenai jenis parasit gastrointestinal pada Anoa. 3. Perlu dilakukan penelitian lebih lanjut untuk mengetahui faktor-faktor yang dapat mempengaruhi terinfeksinya parasit gastrointestinal pada Anoa di Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado. 4. Perlu dilakukan pengobatan infeksi parasit dengan pemberian obat cacing antelmintik golongan pyrantel pamoat dan obat antelmentik berspektrum luas golongan mebendazol. Pengobatan tersebut dilakukan apabila menunjukkan adanya gejala klinis terinfeksi parasit.
26
DAFTAR PUSTAKA Abidin, Z. (2002). Penggemukkan Sapi Potong, Agro Media Pustaka, Jakarta. Alemayehu, A., M. Nuru, and T. Belina. 2013. Prevalence of bovine coccidia in Kombolcha district of South Wollo, Ethiopia. J. Vet. Med. Anim. Health. 5(2):41-45. Alikodra, H. S. (2010). Konsep Pengelolahan Satwa Liar. Bogor: IPB Press. Anonim, (2009). [Online] http://cal.upenn.edu/projects/ parasit06/website/lab6 new 2009. htm diakses pada tanggal 17 Maret 2016. Anonim. (2008). Life Cycle of Moniezia expansa. http://www. pathobio. sdu.edu.cn /sdjsc/ parasiteimages_lifecyle.html (1 september 2016). Baihaqi H. U, Oka Ida, Dwinata. (2015). Prevalensi dan Identifikasi Nematoda Saluran Pencernaan Kerbau Lumpur di Kecamatan Sambelia,. Lombok Timur, NTB. Balweber, L. R. (2001). Veterinary Parasitology. United States of America: Butterworth-Heinemann. Basrul, Z. (2015). Identifikasi Endoparasit pada Saluran Pencernaan Rusa Tutul (Axis axis) di Taman Pintu Satu Universitas Hasanuddin Makassar. Skripsi. Jurusan Kedokteran Hewan. Universitas Hasanuddin Makassar. Bennet C. (1999). Veterinary Ectoparasites and Endoparasites. http://www. soton.ac.uk/~ceb/Insideafluke/lifecycle.htm (1 September 2016). Beriajaya. (2005). Gastrointestinal nematode infections on sheep and goats in West Java, Indonesia. J Ilmu Ternak. Blackwell, B. D. (2007). Flynn’s Parasites of Laboratory Animals. Second edition. USA: Blackwell Publishing. Bowman DD. (2009). Georgis Parasitology for Veteriner. New York : Elsevier Inc. Das M., D. K. Deka , P. C. Sarmah, S. Islam and S. Sarma. (2015). Diversity of Eimeria spp. in dairy cattle of Guwahati, Assam, India. Veterinary World, Vol 8. Dehlawi M S. 2007. The occurrence of Nematodes in the intestine of local (baladi) chicken ( Gallus gallus domesticus) in Jeddah Province. Saudi Arabia. Scientific Journal of King Faisal University. Vol. 8(2): 61-71. Desmawati, I.J.U. (2010). Studi Distribusi Jenis-Jenis Burung Dilindungi Perundang-Undangan Indonesia Di Kawasan Wonorejo, Surabaya. Institut Teknologi Sepuluh November, Surabaya. Dharma DMN, Putra AAG. (1997). Penyidikan Penyakit Hewan. Buku Pegangan. BPPH Wilayah VI Denpasar. Bali Dos Santos KR. (2009). First report of Strongyloides sp (Nematoda, Strongyloididae) in Leopardus tigrinus (Carnivora: Felidae) in the municipality of Botucatu, State of São Paulo, Brazi, Rev Bras Parasitol Vet 18(1):77-79. Dwinata, M. (2004). Prevalensi Cacing Nematoda pada Rusa yang Ditangkarkan. Jurnal Veteriner. Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Udayana, Bali. Gosling, P. J. (2005). Dictionary of Parasitology. United States of America.: CRC Press.
27
Groves, C. (1969). Systematic of Anoa (Mammalia, Bovidae) Beaufortia. 17:1 Hamdan A. (2014). Paramphistomiasis pada ternak ruminansia. Pusat Dokumentasi dan Informasi Ilmiah:Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (akan diterbitkan). Hertzberg H, Figi R, Noto F , and Heckendorn F. (2003). Control of gastrointestinal nematodes in organic beef cattle through grazing management. Proc. The 2nd SAFO Workshop, Witzenhausen, Germany.129-135. Ideham., B. S. (2007). Helmintologi Kedokteran. Surabaya: Airlangga University Press. Jatna Supriatna, M. (2008). Melestarikan Alam Indonesia. Jakarta: Yayasan Obor Indonesia. Junquera, P, (2014). Parasites Of Dogs, Cats And Livestock. http:// parasitipedia. net/index.phpoption=com_content&view=article&id=2530&Itemid=280. Diakses pada tanggal 21 september 2016 pukul 19.30WIB. Kamaruddin M, Fahrimal Y, Hambal M, Hanafiah M. (2005). Buku Ajar Parasitologi Veteriner. Banda Aceh (ID): Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Syah Kuala. Kusumamihardja S. (1995). Parasit dan Parasitosis pada Hewan Ternak dan Hewan Piaraan di Indonesia. Pusat Antar Universitas Bioteknologi IPB: Bogor. Labiro, E. (2001). Analisis komposisi pakan satwa liar anoa (Bubalus sp.) di kawasan hutan Taman Nasional Lore Lindu Propinsi Sulawesi Tengah. Program Pascasarjana, Universitas Lambungmangkurat. Samarinda: Tesis. Levine, N. (1990). Parasitologi Veteriner. (Diterjemahkan oleh G. Ashadi). Yogyakarta: Gajah Mada University Press. Love SC, dan Hutchinson GW. (2003). Pathology and Diagnosis Of Internal Parasties In Ruminants. Proc. 350, Post Graduate Foundation in Vet. Scie. 16: 309-338. Lukesova D. (2009). Atlas of Livestock Parasites Digitized Collection of Microscopical Preparations. Institute of Tropics and Subtropics: Czech University of Life Sciences Prague, Czech Republic. Malik, A. R. (2004). Participatory of Wildlife Conservation in Central Sulawesi Indonesia. (A review on a case study of Anoa (Bubalus sp) as one of endemic endangered animal from Sulawesi, Indonesia). In: Proceeding of The 5th International Symposium-cum-Workshop by SEAG, Royal Agricultural University and the University Consortium Georg-AugustUniversity Göttingen, University of Kassel and Philipps University Marburg. Miyamoto, K. M. (2005). Nutrition of captive lowland anoa (Bubalus depressicornis): A study on ingesta passage, intake, digestibility, and a diet survey. Zoo Biology 24:125-134. Mustari, A. (2003). Ecology and conservation of lowland anoa (Bubalus depressicornis) in Sulawesi, Indonesia. Thesis. University of New England, Armidale. Nguyen TGT. (2012). Zoonotic fasciolosis in Vietnam: molecular identification and geographical distribution. Disertasi. Fakultas Kedokteran Hewan.
28
Noble, E. R, G. A. Noble, G. A. 1989. Parasitology L The Biology of Animal Parasites. Philadelphia, London: Lea dan Febiger.Universitas Gent. Novyan, Erwin, Kamal Mustaka, Rosdiana, Indah. (2010). Identitas Jenis Telur Cacing Parasit Usus Pada Ternak Sapi (Bossp.) dan Kerbau (Bubalus sp) Di Rumah Potong Hewan Palembang. Universitas Sriwijaya, Sumatera Selatan. Nugroho, H. (2011). Manajemen pemeliharaan kambing Peranakan Etawa di Peternakan Bumiku Hijau, Yogyakarta. Universitas Sebelas Maret, Surakarta. Peraturan Menteri Kehutanan Nomor 57 Tahun 2008 tentang Arahan Strategis Konservasi Nasional 2008-2018, tanggal 23 September 2008. Pujaningsih, R. B. (2005). Identification and Feed Technology Processing for Roughage in Term of Anoa (Bubalus sp) conservation. National Seminar of Fundamental Research. Jakarta, 16-18th May 2005. Purwanta, N. J. (2009). Identifikasi Cacing Saluran Pencernaan (Gastrointestinal) pada Sapi Bali Melalui Pemeriksaan tinja di Kabupaten Gowa. Jurnal Agrisistem, Vol .5 No.1. Rahayu, D.I. 2007. Penyakit Parasit Pda Rumiansia. Staf Pengajar Jurusan Peterakan Fakultas Pertanian-Petrnakan. Universitas Muhammidiyah Malang. Malang. Ranuntu. R. A dan Mallombasang. S. N. (2015). Studi Populasi dan Habitat Anoa (Bubalus sp) di Kawasan Hutan Lindung Desa Sangginora Kabupaten Poso. E-Jurnal Mitra Sains. Universitas Tadulako. Reinecke, R.K. 1983. Veterinary Helminthology. Butterworths, Durban. Rusiyanto Y, M. M. (2005). Konservasi anoa (Bubalus sp) dengan pendekatan bioteknologi reproduksi melalui preservasi dan kriopreservasi gamet. IPB-Departemen Kehutanan-Pusat Penelitian Biologi LIPI-Pusat Informasi Lingkungan Hidup, Bogor. Sandjaja, B. 2007. Protozoologi Kedokteran. Penerbit Prestasi Pustaka Publisher. Jakarta Samuel, W. M. (2001). Parasitic Diseases of Wild Mammals. Iowa State University Press. Singer, H. A. O. (2006). Misteri Kekayaan Hayati Hutan Lambusango. Program Konservasi Hutan Lambusango (PKHL)-Operation Wallacea Trust. Buton. Sulawesi Tenggara. Soejoto dan Soebari.(1996). Parasitologi Medik Jilid 3 Protozoologi dan Helmintolog. EGC, Solo. Suin, N.M. 1997. Ekologi Hewan Tanah. Bumi Aksara ITB. Bandung. Solikhah, A. (2013). Anoa, Kerbau Cebol Pemalu Yang Terancam Punah. http://www.ipbmag.ipb.ac.id. 19 April 2016. Soulsby EFL. (1982). Helminths, Anthropods, and Protozoa of domesticated animals. Bailliere Tindall: London. Sugama, I. N. dan I.N. Suyasa. 2011. Keragaan Infeksi Parasit Gastrointestinal Pada Sapi Bali Model Kandang Simantri. Balai Pengkajian Teknologi Pertanian Bali. Suryana. 2006. Tinjauan aspek penyakit dan upaya penanggulangannya pada ternak ruminansia besar di Kalimantan Selatan. Lokakarya Nasional
29
Ketersediaan IPTEK dalam Pengendalian Penyakit Strategis. Kalimantan Selatan: Balai Pengkajian Teknologi Pertanian. Pros. hlm.144-150. Syam, A. (1977). Pengamatan Habitat dan Populasi Anoa (Anoa depressicornis H.Smith) di Cagar Alam Gunung Tangkoko Batuangus Sulawesi Utara. Lembaga Penelitian Hutan. Bogor. Taman Safari Indonesia, (1996). Anoa Species Popultion and Habitat Viability Asseement Workshop Report. Taman Safari Indonesia. Cisarua.: Proceeding. Tarmudji, Deddy Djauhari Siswansyah dan Gatot Adiwinata. 1988. ParasitParasit Cacing gastrointestinal pada Sapi-Sapi di Kabupaten Tapin dan Tabalong Kalimantan Selatan, di dalam Penyakit Hewan. Balai Penelitian Veteriner, Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian , Departemen Pertanian. Jakarta. Taylor, M. C. (2007). Veterinary Parasitology. Navarra, Spain.: Blackwell publishing. The IUCN Red List of Threatened Species, (2008). www.iucnredlist.org. Downloaded on 18 April 2016. Tjahajati, S. (2004). Ilmu Penyakit Ternak (Mamalia) II. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Urquhart, G. M., J. Armour, J. L. Duncan, A. M. Dunn: and F. W. Jennings, (1996). Veterinary Parasitology, 2nd edition, pp 196. Blackwell Science Ltd, Blackwell Publishing Company, Oxford, UK. Pp. 1-138. Utama, M. T. (2011). Keanekaragaman Jenis Burung di Hutan Mangrove Desa Sungai Burung, Kecamatan Dente Teladas, Kabupaten Tulang Bawang. Skripsi. Jurusan Manajemen Hutan. Universitas Lampung. Bandar Lampung. Walker, E. P, (1964). Mammals of the world, 2: i-viii, 647-1500. Baltimore, Johns Hopkins Press. Zajac, A. M. and G. Conboy (2006). Veterinary Clinical Parasitology. 7th ed. Blackwell Publishing Company.
30
LAMPIRAN DATA ANOA A. Data Sinyalemen Nama
Penamaan kandang
Ras
Spesies
Jenis kelamin
Usia
Ciri Khusus
Anoa A Rambo
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Jantan
6 Thn
Dada berwarna putih
Anoa B
Denok
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Betina
7 Thn
-
Anoa C
Rocky
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Jantan
2,5 Thn
-
Anoa D
Rita
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Betina
2,5 Thn
Tanduk kiri bengkok
Anoa E
Manis
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Betina
7 Thn
-
Anoa F
Ana
Bubalus spp.
Bubalus depressicornis
Betina
6 Thn
-
B. Gambar Anoa (Bubalus spp.) di Anoa Breeding Centre BP2LHK Manado.
Rambo (♂) (Anoa A)
Denok (♀) (Anoa B)
Rocky (♂) (Anoa C)
Rita (♀) (Anoa D)
Manis(♀) (Anoa E)
Ana(♀) (Anoa F)
31
C. Data hasil pemeriksaan sampel feses Anoa (Bubalus spp.) No 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23
Nama Anoa Anoa A1 Anoa B1 Anoa E1 Anoa C1 Anoa D1 Anoa F1 Anoa D1 Anoa F1 Anoa A1 Anoa C1 Anoa B1 Anoa E1 Anoa D2 Anoa F2 Anoa F2 Anoa A2 Anoa E2 Anoa B2 Anoa D2 Anoa A2 Anoa C2 Anoa E2 Anoa B2
Waktu Pengambilan Sampel Rabu, 22/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Rabu, 22/06/2016 Rabu, 22/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Rabu, 22/06/2016 Rabu, 22/06/2016 Selasa, 21/06/2016 Rabu, 22/06/2016 Sabtu, 25/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Sabtu, 25/06/2016 Sabtu, 25/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Senin, 27/06/2016 Jumat, 24/06/2016 Sabtu, 25/06/2016
Hasil Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Positif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Positif
24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38
Anoa C2 Anoa F3 Anoa A3 Anoa C3 Anoa D3 Anoa C3 Anoa B3 Anoa E3 Anoa A3 Anoa D3 Anoa B3 Anoa E3 Anoa A3 Anoa E3 Anoa F3
Senin, 27/06/2016 Senin, 05/09/2016 Selasa, 06/09/2016 Senin, 05/09/2016 Senin, 05/09/2016 Senin, 05/09/2016 Rabu, 07/09/2016 Selasa, 06/09/2016 Selasa, 06/09/2016 Senin, 05/09/2016 Rabu, 07/09/2016 Selasa, 06/09/2016 Kamis, 08/09/2016 Kamis, 08/09/2016 Senin, 05/09/2016
Positif Negatif Negatif Negatif Negatif Negatif Positif Negatif Negatif Positif Negatif Positif Negatif Negatif Negatif
Jenis Telur Parasit Gastrointestinal Moinezia expansa Mecistocirrus sp. dan Protoza Eimeria sp Paramphistomum sp. Paramphistomum sp. Haemoncus sp. Capillaria sp. -
32
D. Klasifikasi Telur Parasit Gastrointestinal No
Klasifikasi
Gambar
Keterangan
1.
2.
3.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Species
: Animalia : Nematoda : Secernentea : Strongylida : Trichostrongylidae : Haemonchus : Haemonchus sp.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Spesies
: Animalia : Nematoda : Secernentea : Strongylida : Trichostrongylidae : Mecistocirrus : Mecistocirrus sp.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Species
: Animalia : Platyhelminthes : Trematoda : Echinostomida : Paramphistomatidae : Paramphistomum : Paramphistomum sp.
Metode Apung (Perbesaran 100x)
Metode Apung (Perbesaran 100x)
Metode Natif (Perbesaran 100x)
33
4.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Spesies
: Animalia : Nematoda : Adenophorea : Trichurida : Capillariidae : Capillaria : Capilarria sp.
Metode Apung (Perbesaran 200x)
5.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Spesies
: Animalia : Platyhelminthes : Cestoda : Cyclophyllidea : Anoplocephalidae : Moniezia : Moinezia sp.
Metode Apung (Perbesaran 400x)
6.
Kingdom Phylum Class Ordo Family Genus Spesies
: Animalia : Apicomplexa : Conoidasida : Eucoccidiorida : Eimeriidae : Eimeria : Eimeria sp.
Sumber Data Klasifikasi: (Noble and Noble, 1989)
Metode Natif (Perbesaran 200x)
34
LAMPIRAN HASIL PEMERIKSAAN
35
LAMPIRAN FOTO
Kandang Anoa
Sampel Feses
Pengambilan Sampel Feses
Penimbangan Sampel Feses
36
Proses Uji Natif
Proses Uji Apung
Uji Natif
Uji Apung
37
Proses Metode Mc Master
Proses Sentrifugasi
Metode Mc Master
Pengamatan dibawah Mikroskop
38
RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan pada tanggal 8 Januari 1994 di Pangkep, Sulawesi Selatan dari ayahanda Dr. H. Muhammad Yasin, MP dan ibunda Ir. Hj. Andi Rugaya, MP. Penulis merupakan anak ke dua dari empat bersaudara. Penulis mengenyam pendidikan di TK Oryza Sativa Maros dan lulus pada tahun 1998, selanjutnya menyelesaikan Sekolah Dasar di SDN 21 Barandasi pada tahun 2005, kemudian penulis melanjutkan pendidikan ke SMPN 2 Unggulan Maros dan lulus pada tahun 2008. Pada tahun 2011 penulis menyelesaikan pendidikan di SMA Neg. 1 Maros. Penulis diterima di Program Studi Kedokteran Hewan, Fakultas Kedokteran, Universitas Hasanuddin pada tahun 2012. Selama perkuliahan penulis aktif dalam organisasi internal kampus yaitu Himpunan Mahasiswa Kedokteran Hewan (HIMAKAHA) FK-UH menjabat pada divisi Minat Dan Profesi Perunggasan pada periode 2013-2014. Selain itu, penulis juga aktif dalam berbagai kegiatan yang diselenggarakan oleh Ikatan Mahasiswa Kedokteran Hewan Indonesia (IMAKAHI).
