Kelas A & B Dosen: Prof. Dr. Ir. Aswaldi Anwar Dr. Yusniwati, SP, MP Prof.Dr.Ir.Warnita, MS Armansyah, SP.MP SKS : 3 (2+1)
Kontrak Perkuliahan
AEP 313
Semua mahasiswa harus mematuhi peraturan yang berlaku di FPUA Masuk ruang kuliah paling lambat 10 menit dari jadwal yang ditetapkan Tidak dibenarkan mengaktifkan dering HP selama perkuliahan berlangsung Perkuliahan harus diikuti minimal 75 % Sistem perkuliahan: gabungan TCL dan SCL
Sistem Penilaian/Evaluasi
Materi Perkuliahan: 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16.
Kontrak Perkuliahan & Pendahuluan Pengantar Biologi Reproduksi Tumbuhan Angiospermae Pengantar Biologi Reproduksi Tumbuhan Gymnospermae Peranan Penyerbukan dalam Perbanyakan Tanaman Pembentukan Biji dan Buah Aspek Dormansi dalam Perbanyakan Tanaman Sistem Perbanyakan Tanaman secara Sexual Perbanyakan sexual vs asexual Sistem Perbanyakan Tanaman secara Asexual Perbanyakan Asexual Alami Perbanyakan Asexual Buatan Sistem Perbanyakan Tanaman In-Vitro Sistem Perbanyakan Tanaman In-Vitro (lanjutan) Benih Sintetis Persemaian dan Pembibitan Anomali dalam Sistem Perbanyakan Tanaman
Bahan Bacaan: 1. 2. 3. 4. 5. 6.
Bhojwani, S.S. 1990. Plant Tissue Culture: Applications and Limitations. Elsevier. Amsterdam. Copeland, L.O and M.B. McDonald. 2001. Principles of Seed Science and Technology. Kluwer Academic Publishers. London. Cresti, M and A.Tiezzi. 1992. Sexual Plant Reproduction. Springer-Verlag. New York. Maheswari, P. 1950. An Introduction to the Embryology of Angiosperms. McGraw Hill Book Co. Inc. New York. Hartmann, H.T. Kofranek , A.M. Rubatzky, V.E. and Flocker W.J. 1988. Plant Science, Growth Development and Utilization of Cultivated Plants. Prentice Hall, Inc. New Jersey. Agronomy Journal dan jurnal-jurnal terkait lainnya …
Ruang Lingkup: Mata kuliah ini mencakup segala bentuk perbanyakan tanaman baik yang berkaitan dengan organ seksual maupun aseksual dari tanaman serta perkembangan terkini dari perbanyakan tanaman. Mempelajari dasardasar sistem reproduksi angiospermae dan gymnospermae, berbagai cara perbanyakannya serta anomali dalam sistem perbanyakan tanaman.
Pendahuluan: Pada dasarnya setiap makhluk hidup mempunyai kemampuan untuk memperbanyak diri. Manusia memanipulasi berbagai sistem perbanyakan tersebut untuk kepentingannya. Secara umum dikenal perbanyakan secara generatif dan perbanyakan secara vegetatif (dasarnya …. Organ generatif (seksual) dan organ vegetatif (aseksual..?)
Pendahuluan:
2
BIOLOGI BUNGA Bunga Sempurna Bunga tidak Sempurna Struktur Bunga: Tangkai Bunga, Kelopak, Mahkota, Putik, Benang Sari Bunga lengkap Bunga tidak lengkap
petal
anther
filament
stigma
stilus ovary
androecium Benang sari
gynoecium
Bunga tomat sepal
Putik
Berbagai bentuk kepala putik (stigma)
STIGMA
STIGMA & STAMEN
STIGMA & ANTHERS
Berbagai Posisi Stamen & pistil Stamen Pistil
11 jun 09
Proses pembungaan pada tanaman andalas
28 jun 09
1 juli 09 3 juli 09
18 juli 09 13 juli 09
10 juli 09
6 juli 09
3
Two spore types, microspores and megaspores, are, in general, produced in pollen cones or ovulate cones, respectively. A short-lived multicellular haploid, gametebearing phase (gametophyte) develops inside the spore wall. Pollen grains (microgametophytes) mature from microspores, and ultimately produce sperm cells; megagametophyte tissue develops in the megaspore of each ovule, and produces multiple egg cells. Thus, megaspores are enclosed in ovules (unfertilized seeds) and give rise to megagametophytes and ultimately to egg cells. During pollination, pollen grains are physically transferred between plants, from pollen cone to the ovule, being transferred by wind or insects. Whole grains enter each ovule through a microscopic gap in the ovule coat (integument) called the micropyle.
The pollen grains mature further inside the ovule and produce sperm cells. Two main modes of fertilization are found in gymnosperms. Cycads and Ginkgo have motile sperm that swim directly to the egg inside the ovule, whereas conifers and gnetophytes have sperm with no flagella that are conveyed to the egg along a pollen tube. After fertilization (joining of the sperm and egg cell), the zygote develops into an embryo (young sporophyte). More than one embryo is usually initiated in each gymnosperm seed. Competition between the embryos for nutritional resources within polyembryonic seeds produces programmed cell death to all but one embryo. The mature seed comprises the embryo and the remains of the female gametophyte, which serves as a food supply, and the seed coat (integument).
The pollination drop is a liquid secretion produced by the ovule and exposed outside the micropyle (Doyle, 1945). Abies, Cedrus, Larix, Pseudotsuga and Tsuga sp. (Pinaceae) have stigmatic micropyles and no pollination drop. In Auracaria, Agathis, Tsuga dumosa and T. heterophylla pollen lands on sites different from the micropyle (Singh, 1978; Owens et al., 1998). In other gymnosperms, pollen lands on the surface of the pollination drop or on a nearby cone surface and is then picked up by the pollination drop (Owens et al., 1998), rehydrates, and enters the ovule as the drop retracts. It is now known that pollination drops and cones enhance and facilitate pollen capture (Niklas, 1985; Greenwood, 1986; Buchmann et al., 1989; Owens et al., 1998; Roussy and Kevan, 2000).
Female reproductive structures and pollination drops in gymnosperms: (A) the modified scale of Ginkgo biloba (Ginkgoaceae) contains only one ovule that produces a small pollination drop; (B) female cone of Taxus baccata (Taxaceae) containing one ovule that secrets a large pollination drop; (C) female cone of Juniperus communis (Cupressaceae) bearing three ovules, each one with its own pollination drops; (D) female cone of Cupressus sempervirens (Cupressaceae) with numerous small pollination drops each one secreted by an ovule. Scale bars = 1 mm.
Longitudinal section of a mature Megasporangiate cone of Pinus: Note the location of the Ovules close to the Axis
Figure 1.4: Embryogenesis - gymnosperm vs. angiosperm [30]. The embryogenesis process in gymnosperms and angiosperms are similar but have several distinct features. While gymnosperms undergo single fertilization to produce diploid embryo and haploid female megagametophyte (FMg), the angiosperms undergo double fertilization to produce a diploid embryo and triploid endosperm. In gymnosperms FMg develop before fertilization whereas in angiosperms endosperm development after fertilization; initially polyembryony (1-4) vs. single embryo; Morphological differences can be observed in the embryos in the later stages. 6-8 cotyledonary primordia grow to form cotyledons and enclose the SAM in gymnosperm vs. conspicuous embryo with heart, torpedo and bent cotyledonary stage (dicot) are seen in angiosperms.
Pine life cycle 1-2. Male cones 3. Pollen 4. Sporangium 5. Sporophyll 9. Nuclei of pollen 10. pollen wings 11-12. female cone 13. Ovuliferous branch 14. Ovule 16. Micropyle 17. Integument 18. Megaspore 19-20. Young female gametophyte 21. Pollen tubes 22. Archegonia 23. Mature female gametophytye 24. Sperm 25. Egg 26. Zygote 27-28. first mitotic divisions 29-30. Proembryo (16 cells) 31. Seed 32. Cotyledons 33. Seed coat 34. Embryo 35. Seedling
Gingko Life Cycle A. sporophyte tree B. Male branch 1. Leaf 2. Male cone C. Male cone (l.s.) 4. Axis 5. Microsporophyll 7. Pollen D. Female branch 8-9. Pair ovules E. Ovule (l.s.) 10. Micropyle 11. Integument 14. Gametophyte F. Archegonium G. Branch with seeds H. Proembryo stage I. Developing embryo J. Seed 24. Root 26. Shoot 27. Cotyledons K. Young sporophyte plant
The pollination drop is a liquid secretion produced by the ovule and exposed outside the micropyle. In many gymnosperms, pollen lands on the surface of the pollination drop, rehydrates and enters the ovule as the drop retracts. The objective of this work was to study the formation of the pollination drop in Juniperus communis, its carbohydrate composition and the response to deposition of conspecific pollen, foreign pollen and other particulate material, in an attempt to clarify the mechanism of pollination drop retraction. Sugar analysis confirmed the general trend of fructose dominance in gymnosperm pollination drops. Complete pollination drop withdrawal appears to be triggered by a biochemical mechanism resulting from interaction between pollen and drop constituents. The results of particle deposition suggest the existence of a non-specific, particle-size-dependent mechanism that induces partial pollination drop withdrawal. These results suggest that the non-specific response may decrease the probability of pollen landing on the drop, reducing pollination efficiency.
SIKLUS HIDUP PINUS (Gymnospermae)
4
Apa itu penyerbukan ? Bagian tanaman yang terlibat dalam penyerbukan ....? About 80% of all plant pollination is biotic
If the environment has been stable for many generations, variability may not be as essential to the survival of the species
About 80% of all plant pollination is biotic
Of the abiotically pollinated species, 98% are anemophilous and 2% hydrophilous, being pollinated by water
No. 1 2 3 4
Warna Bunga Merah Coklat Hijau Putih
5 6 7
Kuning Ungu Biru
Hewan/Penyerbuk Kupu-kupu, burung Kumbang, lalat, penyengat Burung Kelelawar, lebah, kupu-kupu, ngengat Lebah, kupu-kupu Lebah Lebah, kupu-kupu, burung
1. Jelaskanlah jenis-jenis penyerbukan yang umum terjadi pada tumbuhan angiospermae. Lengkapi dengan contoh tanaman dan hewan/serangga yang terlibat dalam proses tersebut. 2. Buatlah sebuah analisis hubungan antara sistem pertanaman dengan keragaman genetik, baik itu keragaman pada jenis tanaman maupun makhluk hidup lain di sekitarnya. 3. Buatlah suatu analisis sederhana, mengapa penggunaan insektisida yang berlebihan dapat menurunkan produksi tanaman yang dipanen dalam bentuk buah/biji. Tugas dikumpulkan tanggal 19 November 2013
Pembentukan Biji & Buah
5
Anther pollen
Stamen
Filament
fruit
Petal
Bunga
sepal Tangkai bunga stigma
ovule
embryo
Egg cell style
Pistil
ovary
Nucellus integument funiculus micropyle
Dinding ovary
Seed
Polar nuclei
zygot
25 Agt 2013
20 Okt 2013
25 Agt 2013
20 Okt 2013
6
In plant physiology, dormancy is a period of arrested plant growth. It is a survival strategy exhibited by many plant species, which enables them to survive in climates where part of the year is unsuitable for growth, such as winter or dry seasons.
Plant
Dormansi Tunas
Benih
6
Many plant species that exhibit dormancy have a biological clock that tells them when to slow activity and to prepare soft tissues for a period of freezing temperatures or water shortage. On the other hand, dormancy can be triggered after a normal growing season by decreasing temperatures, shortened day length, and/or a reduction in rainfall. Chemical treatment on dormant plants has been proven to an effective method to break dormancy, particularly in woody plants such as grapes, berries, apples, peaches and kiwis. Specifically, hydrogen cyanamide stimulates cell division and growth in dormant plants, causing budbreak when the plant is on the edge of breaking dormancy. Slight injury of cells may play a role in the mechanism of action. The injury is thought to result in increased permeability of cellular membraines. The injury is associated with the inhibition of catalase, which in turn stimulates the pentose phosphate cycle. Hydrogen cyanamide interacts with the cytokinin metabolic cycle, which results in triggering a new growth cycle. The images below show two particularly widespread dormancy patterns amongst sympodially growing orchids:
Annual life cycle of sympodially growing orchids with dormancy after completion of new growth/pseudobulb, e.g., Miltonia, or Odontoglossum
Annual life cycle of sympodially growing orchids with dormancy after blooming, e.g., Cycnoches ventricosum, Dendrobium nobile, or Laelia
In many species, progress through bud dormancy then resumption of growth depends on temperature. Two factors are involved: first, the satisfaction of chilling requirements depends on suitable periods at low temperature (measured as chill units), but can be negated by temperatures about 15°C; second, temperatures above 4.5°C have a growthpromoting effect, measured as thermal units. (Based on Seeley 1996)
7
Perbanyakan yang dikenal secara umum: Cara pebanyakan tanaman secara umum dapat di golongkan menjadi dua bagian yaitu perbanyakan generatif dan perbanyakan vegetatif. Perbanyakan generatif (biji) Keuntungan : -. Sistem perakaran lebih kuat -. lebih mudah di perbanyak -. jangka waktu berbuah lebih panjang Kelemahan : -. waktu untuk mulai berbuah lebih lama -. sifat turunan tidak sama dengan induk -. ada banyak jenis tanaman produksi benihnya sedikit atau benihnya sulit untuk berkecambah
7
Perbanyakan Vegetatif Keuntungan : -. lebih cepat berbuah -. sifat turunan sesuai dengan induk -. dapat digabung sifat-sifat yang diinginkan Kelemahan : -. perakaran kurang baik -. lebih sulit di kerjakan karena membutuhkan keahlian tertentu -. jangka waktu berbuah menjadi pendek
They may not look like much, but these little fellas could be the Holy Grail of growing citrus from seed – polyembryonic seedlings. What’s happening is that two seedlings are growing out of one seed (in other cases it can be three). One of these seedlings is a true seedling, formed via the normal process of fertilization. It will therefore have characteristics from both its parents. The other seedling has come about differently, essentially formed by vegetative propagation inside the seed. It is a clone of its mother – it will grow up to bear fruit with the same eating qualities as the fruit it came from.
8
8
9
10
Stolon pada Starwberry
10
11
Tujuan Utama: untuk mendapatkan turunan yang mempunyai sifat persis sama dengan induknya dengan menggunakan bahan perbanyakan asexual. Bahan perbanyakan asexual adalah organ, jaringan atau bagian lain tanaman yang secara genetik berasal dari jaringan/bagian somatik (tidak melibatkan proses meiosis dalam pembentukannya).
11
okulasi sambung
11
11
11
11
12 & 13
Kultur jaringan/Kultur In Vitro/Tissue Culture Merupakan suatu teknik untuk mengisolasi, sel, protoplasma, jaringan, dan organ dan menumbuhkan bagian tersebut pada nutrisi yang mengandung zat pengatur tumbuh tanaman pada kondisi aseptik,sehingga bagian-bagian tersebut dapat memperbanyak diri dan beregenerasi menjadi tanaman sempurna kembali
• Prinsip utama : perbanyakan tanaman menggunakan bagian jaringan tanaman (jaringan akar, tunas, pollen dsb.) menjadi tanaman utuh (sempurna) dikondisi invitro (didalam gelas), menggunakan media buatan yang dilakukan di tempat steril • Dasar yang digunakan adalah Teori Sel. • Sel merupakan satuan dasar minimum suatu jasad hidup yang mampu melakukan perbanyakan sendiri (self duplication).
• Semua jasad (organisme) hidup terdiri dari sel yang memiliki nukleus (inti) yang terbungkus membran atau struktur serupa tapi tanpa membran. • Sel-lah yang menentukan struktur maupun fungsi semua jasad hidup, baik tingkat rendah maupun tinggi. Sel hanya terjadi dari pembelahan sel yang ada sebelumnya, dan masing-masing sel mempunyai sistem kehidupan sendiri.
• Sel dari suatu organisme multiseluler di manapun letaknya, sebenarnya sama dengan sel zigot karena berasal dari satu sel tersebut • setiap sel berasal dari satu sel...Omni cellula cellula • Sel mengalami proses pertumbuhan dan perkembangan (pembelahan dan pembesaran, serta diferensiasi) juga dediferensiasi... • Teori Totipotensi Sel (Total Genetic Potential), artinya setiap sel memiliki potensi genetik seperti sel zigot yaitu mampu memperbanyak diri dan berdiferensiasi menjadi tanaman lengkap.
Embrio (eksplan) Jaringan floem
Keuntungan : 1.Bibit (hasil) yang didapat berjumlah banyak dan dalam waktu yang singkat 2.Sifat identik dengan induk 3.Dapat diperoleh sifat-sifat yang dikehendaki 4.Metabolit sekunder tanaman segera didapat tanpa perlu menunggu tanaman dewasa
Kerugian : 1. Bibit hasil kultur jaringan sangat rentan terhadap hama penyakit dan udara luar 2. Bagi orang tertentu, cara kultur jaringan dinilai mahal dan sulit. 3. Membutuhkan modal ivestasi awal yang tinggi untuk bangunan (laboratorium khusus), peralatan dan perlengkapan. 4. Diperlukan persiapan SDM yang handal untuk mengerjakan perbanyakan kultur jaringan agar dapat memperoleh hasil yg memuaskan 5. Produk kultur jaringan pd akarnya kurang kokoh 6. Mahal
STERILISASI 1.STERILISASI RUANGAN 2.STERILISASI ALAT 3.STERILISASI BAHAN TANAM 4.STERILISASI MEDIA
1. STERILISASI RUANGAN • Ruangan disterilisasi dengan menggunakan larutan Formalin • Sterilisasi dilakukan dengan cara penyemprotan ke seluruh bagian/sudut ruangan dan diamkan selama beberapa hari • Uji kesterilan rungan dengan melakukan uji aseptisitas
2. STERILISASI ALAT dan MEDIA • Peralatan dan Media Tanam disteril dengan menggunakan Autoclave, dengan tekanan 15 PSI dan Suhu 121°C.
3. STERILISASI BAHAN TANAM
• Sebatas sterilisasi permukaan atau desinfestasi (menghilangkan infestasi kontaminan). Bukan disinfeksi (menghilangkan infeksi kontaminan dalam eksplan). • Membersihkan debu, cendawan dan bakteri atau kontaminan dari bagian permukaan eksplan.
MELAKUKAN INOKULASI • SIKLUS KULTUR JARINGAN Pemilihan Tanaman Induk unggul untuk dijadikan sumber bahan tanam, pembentukan tunas in-vitro Penanaman di lapangan dalam skala luas
Perbanyakan tunas (10 -20 tunas/3 bulan)
Aklimatisasi di rumah kaca/persemAIAN
Pembentukan Planlet
MELAKUKAN AKLIMATISASI • Merupakan masa adaptasi tanaman hasil pembiakan secara kultur jaringan yang semula kondisinya terkendali (in vitro), kemudian berubah pada lingkungan lapangan yang kondisinya tidak terkendali lagi (ex vitro). Disamping itu tanaman juga harus mengubah pola hidupnya dari tanaman heterotrof ke autotrof. Planlet Pisang Siap di Aklimatisasi
Gambar : Tahapan perkembangan tanaman cabai secara in vitro mulai dari sterilisasi benih sampai terbentuk shootlet
Teknik Inokulasi Tanaman Pisang Secara Kultur Jaringan
Sterilisasi eksplan Inisiasi
Enam kali subkultur Tanaman sehat
Sterilisasi planlet Siap tanam
Akli matisasi dalam seedbed
Designed byby: : Desi gned AgusRamadhoni Sutanto Moch.
14
BENIH SINTETIK
BENIH SINTETIK
Benih sintetik Embrio somatik yang memiliki lapisan pelindung struktur dan sifat seperti embrio zigotik Lapisan pelindung berperan sebagai endosperm buatan yg terdiri dari : sumber karbon nutrisi zat pengaturtumbuh agen anti mikroba
• Konsep produksi dan pemanfaatan benih sintetik pertama kali di kembangkan oleh : Murashige th 1977, dan dikembangkan oleh Radenbaugh et al., 1984
• Benih sintetik dapat diproduksi dengan pengkapsulan tanaman yang dikembangkan dalam susunan yang memungkinkan tumbuh menjadi tanaman.
Propagules tanaman bisa terdiri dari
1. Shoot buds 2. Embrio somatik yg telah ditumbuhkan secara aseptik pada kultur jaringan
Benih sintetik dibuat dengan pendekatan • Enkapsulasi (Alginasi) • Yg dikembangkan oleh: Redenbaugh et al (1985)
Cara membuat benih sintetik:
Embrio somatik dibungkus dengan natrium alginat yaitu sejenis gel yg dapat diperkaya dengan hara, ZPT, mikroorganisme yg bersifat simbiosis
Alginat • Didefinisikan oleh The Food Chemical Codex
sebagai suatu karbohidrat koloid hidrofilik yg diekstrak dari spesies ganggang coklat (Phaeophyceae).
Alginat • Secara komersial dikenal dengan dengan berbagai jenis yaitu : natrium alginat kalium alginat amonium alginat propilen glikol alginat
• Alginat bersifat permeabel dibandingkan substrat agar dan dapat larut pada suhu kamar tanpa panas (Bapat et al., 1987)
Sifat penting dari alginat: kemampuannya untuk bereaksi dengan kation-kation logam polivalen, khususnya ion-ion kalsium, menghasilkan: (1) larutan dg kekentalan lebih tinggi dari pada larutannya sendiri (2)gel (polimer-polimer yg tidak larut) Reaksi ini terjadi karena adanya kationkation kalsiumnya berkaitan dengan anion-anion karboksilat sintetik
Faktor-faktor yg mempengaruhi keberhasilan teknologi benih sintetik al: 1. Benih sintetik mampu membuat sistem embrio somatik yg dapat tumbuh 2. Keseragaman perkembangan embrio somatik 3. Penggunaan kapsulasi yg tidak toksik 4. Viabilitas embrio yg tetap tinggi proses penyimpanan 5. Dan pertumbuhan embrio somatik dalam kapsul setelah aklimatisasi
Prosedur produksi benih sintetik (Saiprasad, 2001) 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9.
Membuat embriogenesis somatik Embriogenesis masak Menyerempakkan pertumbuhan embrio somatik Produksi massa dari embrio somatik Standarisasi dari enkapsulasi Standarisasi dari endosperm sintetik Prouksi masa benih sintetik Aklimatisasi Penanaman di lapangan
Proses pembuatan benih sintetik (Shu, 2001) 1. Shoot buds di potong dg ukuran 2-3 mm dan dimasukkan dalam matriks kapsul 2. Embrio somatik yg dibentuk dari kultur tanaman , ideal untuk produksi benih sintetik 3. Dengan menggunakan 10 ml pipet steril, sh0ot bud embrio somatik dicampur dg matrik kapsul 4. Embrio somatik dimasukkan dlm campuran dan dibentuk kapsul dan kemudian dikeraskan. Kekerasan kapsul dikontrol melalui konsentrasi larutan campuran dan waktu mencampur
• Ukuran kapsul ditentukan oleh ukuran dari embrio • Kapsul atau benih sintetik dikumpulkan, dan dibilas dengan air. • Benih sintetik harus cukup lentur sebagai bantalan dan melindungi embrio dan juga untuk pertumbuhan embrio somatik.
• Terdapat dua tipe benih sintetik : hydrated artificial seed dan desicated artificial seed (Bhojwani dan Razdan, 1996) • Hydrated artificial seed: terdiri dari embriosomatik tunggal yang diselubungi dengan hydrogel salah satunya dg selubung calsium alginat. Embrio bercampur dengan calsium alginat dimasukkan ke dalam larutan garam calsium untuk membentuk kapsul
Desicated artificial seed : dibuat dengan memberikan perlakuan desikasi pada embriosomatik tunggal, akar, dan kalus
Menurut Radenbough and Ruzin (1988), beberapa hal yg harus diperhatikan dalam produksi benih sintetik al: 1. Kualitas embrio somatik harus dapat dijaga 2. Viabilitas embrio harus dijaga tetap tinggi setelah penyimpanan dan pertumbuhan embrio somatik yg di enkapsulasi setelah aklimatisasi 3. Sorting embrio, dibutuhkan embrio yg homogen untuk membuat keseragaman benih sintetik 4. Proses kapsulasi Penentuan kekerasan gel Komposisi nutrisi yg cukup untuk embrio dan fungsi kapsul sebagai pelindung dan tidak toksik 5. Preservasi, bagaimana mengkombinasikan metode penyimpanan embriosomatik dg metode kapsulasi
15 Persemaian :
Pembibitan :
Naungan pada pembibitan, Fungsinya …..?
Pagar pada pembibitan, Fungsinya…..?
Pohon jabon (
Suren Toona sureni (Blume) Merr. Panen buah dan tatanama Pengumpulan buah dilakukanTaksonomi jika Bunga surian, kedudukan bunga adalah terminal Famili: Meliaceae telah berwarna coklat sebelum dimana keluar dari ujung batang pohon. Susunan Sinonim: Cedrela Blume (1823), Toona merekah. Buah dikumpulkan dengan bungafebrifuga membentuk malai sampai 1 meter. Musim febrifuga (Blume) Roemer cara menggoncang atau memangkas bungaM.J. 2 kali dalam (1946), setahunCedrela yaitu bulan FebruariBurkill cabang. Jika pengumpulannyasureni (Blume) Maret dan(1930). September-Oktober. Suren, surian, surian amba terlambat, maka banyak benihNama yang lokal/daerah: Buah surian, musim buah 2 kali dalam setahun yaitu (Sumatera). bulan Desember-Februari dan April-September, hilang ketika buah merekah. Buah dipanen bulan Maret atau Oktober, dihasilkan dalam bentuk rangkaian (malai) seperti ketika akhir musim kemarau. rangkaian bunganya dengan jumlah lebih dari 100 buah pada setiap malai. Buah berbentuk oval, Pengolahan dan penanganan benih terbagi menjadi 5 ruang secara vertikal, setiap Buah dijemur selama 1-2 hari hingga ruang berisi 6 9 benih. Buah masak ditandai dengan terbuka. Benih dipisahkan dari sayap warna kulit buah berubah dari hijau menjadi coklat dan kotoran lainnya dengan tua kusam dan kasar, apabila pecah akan terlihat penampian. seperti bintang. Ciri lain dari buah masak yaitu, pohon seperti meranggas/tidak berdaun. Benih surian, warna benih coklat , panjang benih 36 mm dan 2-4 mm lebarnya dan pipih, bersayap pada satu sisi sehingga benihnya akan terbang terbawa angin. Dalam 1 kg terdapat 64.000 benih.
Penyimpanan dan viabilitas Benih dapat dipertahankan viabilitasnya selama 2-3 bulan, tetapi dengan penyimpanan dalam ruang sejuk akan memperpanjang periode simpan tersebut. Penelitian di Balai Teknologi Perbenihan (Bogor) menunjukkan bahwa benih yang disimpan di ruang ber-AC (18-20)oC dapat dipertahankan daya kecambahnya sebesar 56% setelah 5 bulan. Penaburan dan perkecambahan Benih mudah berkecambah dan tidak memerlukan perlakuan pendahuluan. Benih ditabur di bedeng dengan naungan 60%. Perkecambahannya dapat mencapai 80% setelah 4-7 hari. Kecambah tergolong epigeal. Setelah 1 bulan, kecambah dapat disapih ke kantong plastik.
Deskripsi buah dan benih Buah: Buah tersusun seperti malai yang pan-jangnya dapat mencapai 1 m, dimana setiap malai terdiri dari lebih 100 buah. Buah berupa kapsul lonjong. Buah terdiri dari 5 ruang, dimana setiap ruang terdiri 6-9 benih. Buah masak berwarna coklat tua, keras, dan pecah seperti bintang. Benih: bersayap pada kedua ujungnya. Panjang benih 3-6 mm, dan lebarnya 2-4 mm; berwarna coklat. Setiap kg benih terdiri 64.000 butir. Musim berbunga dan berbuah Berbunga dan berbuah bulan Desember – Februari atau April – September pada waktu gugur daun. Penyerbukan oleh berbagai serangga. Produksi buah umumnya melimpah.
16
Apomiksis adalah suatu bentuk reproduksi nonseksual pada tumbuhan melalui biji. Pada apomiksis, kecambah(-kecambah) muncul dari biji tetapi bukan berasal dari embrio (lembaga), melainkan dari jaringan maternal (asal tetua betina). Akibatnya, secara genetik tumbuhantumbuhan baru yang muncul adalah identik dengan tetua betinanya (klon). Walaupun demikian, sekarang ditemukan kasus "apomiksis jantan" yang terjadi pada sejenis sipres (Cupressus dupreziana). Kasus apomiksis banyak terjadi pada tumbuhan tropika. Beberapa varietas manggis dan kerabatnya (marga Garcinia) dapat memperbanyak hanya melalui apomiksis. Contoh tumbuhan lain yang diketahui memiliki perilaku ini adalah berbagai jenis jeruk dan duku.
16
Apomiksis adalah terbentuknya individu baru yang berasala dari biji yang tidak mengalami fertilisasi. Berdasarkan asal embrio dalam biji tersebut, apomiksis dibagi menjadi dua macam, yaitu gametophytic apomixes, embrio dibentuk dari sel inti induk megaspore, dan sporophitic apomixes, jika embrio dibentuk dari sel gametofik lain, embrionya disebut adventiv embrioni, misalnya pada jeruk dan manggis. Ada empat tipe apomixes yaitu non-recurrent apomixes, recurrent apomixes, adventives embryonic dan vegetative apomixes. Tanaman manggis dikategorikan dalam tanaman adventives embryonic. Dengan sifat tersebut, diduga bahwa manggis memiliki varietas yang sama di seluruh wilayah. Perbedaan-perbedaaan yang terjadi disebabkan oleh akumulasi mutasi gen atau karena pengaruh lingkungan.
Abstract Highest polyembryony, range of embryo, clutch size and frequency of quintuplets, sextuplets and heptuplets were observed in Citrus jambhiri. However, quadruplet and triplet embryos were more frequent regardless the genotypes. Embryos were mainly arranged at micropylar region which were characterized by asynchronous developments. Moreover, their biomass partitioning significantly varied with morphotypes. C. jambhiri also had highest CVE and uncertainty of emergence. However, it had minimal emergence time (34.4 ± 1.8 days) and synchronization index. Additionally, it had highest frequency of triplet and quadruplet seedlings and maximal embryo to seedling conversion rate. Synchronization index showed significantly negative correlation with the number of seedlings and frequency of multiple seedlings. Emergence rate and time were not influenced with the intensity of embryony in citrus genotypes. Moreover staggered seedling emergence gives an indication of bet-hedging strategy which helps in better seedling survival in a temporally variable environment.
fungisida Fipronil 1 gr/l untuk mencegah rebah semai atau damping off), setelah itu jangan dilakukan penyiraman lagi sampai benih berkecamabah
