DAFTAR PUSTAKA AOAC. 1980. Official Methods of Analysis of the Association of Official of Analytical Chemist. Washington. Becker J and Boles E. 2003. A Modified Saccharomyces cereviiae Strain That Consumes L-Arabinose and Produces Ethanol. Appl Environ Microbiol 69(7): 4144-4150. Budiyanto A, Martosuyono P, Richana N. 2006. Optimasi Proses Produksi Tepung Gula Kasava dari Pati Ubi Kayu Skala Laboratorium. Bogor: Buletin Balai Besar Pasca Panen 2(1) 28-35. Chandel AK, Kapoor RK, Rudravaram R. 2006. Production of Bioethanol from Typha latifolia Enzymatic Hydrolysates Under Batch and Fed-batch Fermentation Condition. J Fuel 3317:6 pages. Crueger W, Anneliese C. 1984. Biotechnology A Textbook of Industrial Microbiology. Madison: Science Tech, Inc. Dai D, Hu Z, Pu G, Li H, Wang C. 2006. Energy Efficiency and Potential of Cassava Fuel Ethanol in Guangxi of China. Energy Convers Manage 47 (13-14):1686-1699. Deptan. 2006. Perbandingan Karakteristik Tanaman Umbi. [terhubung berkala]. http://www.deptan.go.id.html [25 Okt 2007] Duryatmo S, Helmina A, Wigunan I, Marliani L, Artdiyasa N. 2007. Soekani Sukses Mengembangkan Agroindustri Bioetanol di Sukabumi. Majalah Trubus [terhubung berkala]. http://www.pusatagroindustri.com.html [18 Jan 2008] Duryatmo S, Helmina A, Wigunan I, Marliani L, Artdiyasa N. 2008. Bensin Singkong dari Halaman Rumah. Majalah Trubus [terhubung berkala]. http://www.trubus.co.id.html [11 Jun 2008] Fardiaz, S. 1988. Fisiologi Fermentasi. Bogor: Pusat Antar Universitas, Institut Pertanian Bogor. Gaptista CMSG, Coias JMA, Oliveira ACM, Oliveira NMC, Rocha JMS, Dempsey MJ, Lannigan KC, Benson PS. 2006. Natural Immobilitation of Microorganisms for Continous Ethanol Production. Enzyme Microb Technol 40:127-131. Heux S, Sablayrolles JM, Cachon R, Dequin S. 2006. Engineering a Saccharomyces cerevisiae Wine Yeast That Exhibits Reduced Ethanol Production during Fermentation under Controlled Microoxygenation Conditions. Appl Environ Microbiol 72(9): 5822-5828.
54
Hidayat D. 2007. Bensin Dioplos Singkong. Koran Tempo [terhubung berkala]. http://www.tempo.co.id.html [18 Jan 2008]. Higins IC, Best DJ, Jones J. 1984. Biotechnology Principles and Application. London: Balckwell scientific publ. Jamai L, Sendide K, Ettayebi K, Errachidi F, Alami OH, Jouti MAT, McDermott T, Ettayebi M. 2001. Physiological Difference during Ethanol Fermentation between Calcium Alginate-Immobilizad Candida tropicalis and Saccharomyces cerevisiae. FEMS Microbiol Lett 204(2):375-379. Judoamidjojo RM, Said EG, Hartoto L. 1989. Biokonversi. Bogor : Pusat Antar Universitas Bioteknologi. Judoamidjojo RM. 1990. Teknologi Fermentasi. Bogor: Pusat Antar Universitas Bioteknologi. Krishna SH, Prasanthi K, Chowdary GV, Ayyanna C. 1998. Simultanoues Saccharification and Fermentation of Pretreated Sugar Cane Leaves to Ethanol. J Process Biochem 33(8):825-830. Lingga P, Sarwono B, Rahardi I, Rahardjo PC, Afriastini JJ, Wudianto R, Apriadji WH. 1986. Bertanam Umbi-umbian. Jakarta: Penebar Swadaya. Maarel MJECVD, Veen BVD, Uitdehaag JCM, Leemhuis H, Dijkhuizen L. 2002. Properties and applications of starch-converting enzymes of the _-amylase family. J Biotechnology 94(2):137-155. Machfud, Said EG, Krisnani. 1989. Fermentor. Bogor: Pusat Antar Universitas, Institut Pertanian Bogor. Maiden AM. 1970. Food and Fermentation Application of Starch Hydrolysates. Di dalam Birch, Green LF, Voulson GB (eds.). Glucose Syrups and Related Carbohydrates. London: Elsevier Publ. Co. Ltd. Maoka T, Akimoto N, Ishiguro K, Yoshinaga M, Yoshimoto M. 2007. Carotenoids with a 5,6-dihydro-5,6-dihydroxy-b-end group, from yellow sweet potato ‘‘Benimasari’’, Ipomoea batatas LAM. J Phytochemistry 68(13):17401745. Morales S, Alvares H, Sanchez C. 2008. Dynamic Models for tha Production of glukose Syrups from Cassava Starch. J Food Bioproducts Process 86:25-30. Musaddad A. 2005. Teknologi Produksi Kacang-Kacangan dan Umbi-Umbian (Kedelai, Kacang Tanah, Kacang Hijau, Ubi Kayu, Ubi Jalar). Malang: Balai Penelitian Tanaman Kacang-Kacangan dan Umbi-Umbian.
55
Narendranath NV and Power R. 2005. Relationship between pH and Mediu Dissolved Solids in Terms of Growth and Metabolism of Lactobacilli and Saccharomyces cerevisiae during Ethanol Production. Appl Environ Microbiol 71(5):2239-2243. Ohgren K, Bengtsson O, Grauslund MFG, Galbe M, Hagerdal BH, Zacchi G. 2006. Simultaneous Saccharification and Co-Fermentation of Glucose and Xylose in Steam-Pretreated Corn Stover at High Fiber Content with Saccharomyces serevisiae TMB 3400. J Biotechn 126(4):488-498. Paturau JM. 1981. By Product of the Cane Sugar Industry : An Introduction to Their Industrial Utilization. Amsterdam: Elsevier Scientific Publ Co. Peppler HJ, Perlman D. 1979. Microbial Technology Fermantation Technology. New York: Academic Press, INC. Pina C, Santos C, Couto JA, Hogg T. 2004. Ethanol Tolerance of Five nonSaccharomyces Wine Yeast in Comparison with a Strain of Saccharomyces cerevisiae – Influence of Differenet Culture Conditions. J Food Microbiol 21:439-447. Prasad S, Singh A, Joshi HC. 2007. Ethanol as an Alternative Fuel From Agricultural, Industrial and Urban Residues. Resources, Conserv Recycling 50(1):1-39. Prescott SC and Dunn M. 1981. Industrial Microbiology. New York: Mc Graw Hill Book Co Ltd. Puslittan (Pusat Penelitian dan Pengembangan Tanaman Pangan). 2008. Ubi Jalar Varietas Unggulan: Sukuh. [terhubung berkala]. http:// www.puslittan.bogor.net.html . [18 Jan 2008] Ratledge C, Kristiansen B. 2001. Basic Biotechnology second edition. London: Cambridge University Press. Sa`id EG. 1985. Pengantar Bioindustri. Bogor: Agroindustri Press, Jurusan TIN – FATETA IPB. Sa`id EG. 1987. Bioindustri Penerapan Teknologi Fermentasi. Jakarta: PT Mediyatama Sarana Perkasa. Sheehan J and Himmel M. 1999. Enzymes, Energy, and the Environment: A Strategic Perspective on the U.S. Department of Energy’s Research and Development Activities for Bioethanol. J Biotechnol. Prog 15: 817-827. Shintawaty A. 2006. Prospek Pengembangan Biodiesel dan Bioetanol Sebagai Bahan Bakar Alternatif di Indonesia. Economic Review No. 23 Maret 2006.
56
Shuler ML, Kargi KF. 1992. Bioprocess Engineering Basic Concepts. New Jersey: Prentice Hall. Stanbury PF, Whitaker A. 1993. Priciples of Fermentation Technology. New York: Pergamon Press. Sudjana MA. 1985. Disain dan Analisis Eksperimen. Bandung: Tarsito. Swain MR, Kar S, Sahoo AK, Ray RC. 2007. Ethanol Fermentation of Mahula (Madhuca latifolia L) Flowers using Free and Immobilized Yeast Saccharomyces cerevisiae. J Microbiol Res 162(2):93-98. Tjokroadikoesoemo PS. 1986. HFS dan Industri Kayu lainnya. Jakarta: Gramedia. Wang DIC, Cooney CL, Demain AL, Dunnill P, Humphrey AE dan Lilly MD. 1979. Fermentation and Enzyme Technology. New York: John Wiley & Sons. Wendhausen R, Fregonesi A, Moran PJS, Joekes I, Augusto J, Rodrigues R, Tonella E, Althoff K. 2001. Continous Fermentation of Sugar Cane Syrup using Immobilized Yeast Cells. J Bioscience Bioeng 91(1):48-52. Winarno FG. 1992. Kimia Pangan dan Gizi. Jakarta: Gramedia. Yoshida F, Yamane T, Nakamoto K. 1973. Fed-batch Hydrocarbon Fermentation with Colloidal Emulsion Feed. Biotech. Bioeng. 15. 257-270. You KM, Rosenfield CL, Knipple DC. 2003. Ethanol Tolerance in the Yeast Saccharomyces cerevisiae Is Dependent on Cellular Oleic Acid Content. J Appl Environ Microbiol 69(3): 1499-1503. Yu B, Zhang F, Zheng Y, Wang P. 1996. Alcohol Fermentation from the Mash of dried Sweet Potato with Its Dregs Using Immobilised Yeast. J Process Biochem 31(1): 1-6. Zaldivar J, Roca C, Foll CL, Hagerdal BH, Olsson L. 2005. Ethanolic Fermentation of Acid Pre-treated Starch Industry Effluents by Recombinant Saccharomyces cerevisiae Strains. J Bioresource Technol 96(15):1670-1676.
58
LAMPIRAN
58
Lampiran 1 Analisa proximat ubi jalar dan pati ubi jalar (AOAC, 1980) A Kadar Air Sebanyak 1 gram sampel segar dalam botol timbangan dimasukkan ke dalam oven pada suhu 105 0C selama 8 jam, lalu ditimbang. Kadar air dihitung dengan rumus: Kadar Air (%) =
Bobot Sampel ( segar − ker ing x 100 % Bobot Sampel Segar
B Kadar Abu Sebanyak 1 gram sampel kering ditempatkan dalam wadah porselin dan dibakar sampai tidak berasap. Kemudian diabukan dalam tanur bersuhu 600 0
C selama 1 jam, lalu ditimbang. Kadar abu dihitung dengan rumus: Kadar Abu (%) =
Bobot Abu x 100 % Bobot Sampel Kering
C Kadar Lemak Kasar Sebanyak 2 gram sample kering disebar di atas kapas yang beralas kertas saring dan digulung membentuk thimble, lalu dimasukkan dalam labu soxhlet. Kemudian dilakukan ekstraksi selama 6 jam dengan menggunakan pelarut lemak berupa heksana sebanyak 150 ml. Lemak yang terekstrak kemudian dikeringkan dalam oven pada suhu 100 0C selama 1 jam. Kadar lemak kasar dihitung dengan rumus: Kadar Lemak (%) =
Bobot Lemak Terekstrak x 100 % Bobot Sampel Kering
D Kadar Protein Kasar Sebanyak 0.25 gram sample kering, ditempatkan dalam labu Kjeldahl 100 ml dan ditambahkan 0.25 gram Selenium dan 3 ml H2SO4 pekat. Kemudian dilakukan dekstruksi (pemanasan dalam keadaan mendidih) selama 1 jam sampai larutan jernih.
59
Setelah dingin ditambahkan 50 ml aquades dan 20 ml NaOH 40 %, lalu didestilasi. Hasil destilasi ditampung dalam Erlenmeyer yang berisi campuran 10 ml H3BO3 2 % dan 2 tetes indicator Brom Cresol Green – Methyl Red berwarna merah muda. Setelah volume hasil tampungan (destilat) menjadi 10 ml dan berwarna hijau kebiruan, destilasi dihentikan dan destilat dititrasi dengan HCl 0.1 N sampai berwarna merah muda. Perlakuan yang sama dilakukan juga terhadap blanko. Dengan metode ini diperoleh kadar Nitrogen total yang dihitung dengan rumus: %N=
( S − B ) x N HCl x 14 x 100 % w x 1000
Ket : S
: Volume titran sample (ml)
B
: Volume titran blanko (ml)
W
: Bobot sample kering (mg)
Kadar protein diperoleh dengan mengalikan kadar Nitrogen dengan 4.38 (faktor perkalian untuk jamur umum). Faktor perkalian untuk berbagai bahan pangan berkisar 5.18 – 6.38. E Kadar Serat Kasar Sebanyak 1 gram sample kering dilarutkan dengan 100 ml H2SO4 1.25 %, dipanaskan hingga mendidih lalu dilanjutkan dengan dekstruksi selama 30 menit. Kemudian disaring menggunakan kertas saring whatman (Φ : 10 cm) dan dengan bantuan corong Buchner. Residu hasil saringan dibilas dengan 20 – 30 ml air mendidih dan dengan 25 ml air sebanyak 3 kali. Residu didekstruksi kembali dengan 100 ml NaOH 1.25 % selama 30 menit. Lalu disaring dengan cara seperti di atas dan dibilas berturut – turut dengan 25 ml H2SO4 1.25 % mendidih, 2.5 ml air sebanyak 3 kali, dan 25 ml alcohol. Residu beserta kertas saring dipindahkan ke cawan porselin dan dikeringkan dalam oven 130 0C selama 2 jam. Setelah dingin residu beserta cawan porselin ditimbang (A), lalu dimasukkan dalam tanur 600 0C selama 30 menit, didinginkan dan ditimbang kembali (B). Ket:
60
Bobot serat kasar = w – w0 W = bobot residu sebelum dibakar dalam tanur = A – (bobot kertas saring + cawan); A = bobot residu + kertas saring + cawan W0 = bobot residu setelah dibakar dalam tanur = B - (bobot cawan) B = bobot residu + cawan Kadar Serat Kasar (%) =
bobot serat kasar x 100 % bobot sampel ker ing
F Kadar Karbohidrat Kadar karbohidrat total ditentukan dengan metode carbohydrate by difference yaitu : 100% - (kadar air + abu + protein + lemak). Kadar karbohidrat N-free menunjukkan besarnya kandungan karbohidrat yang dapat dicerna dari suatu bahan pangan. Ditentukan dengan cara 100% - (kadar air + abu + protein + lemak + serat kasar). G Kadar Pati Sebanyak kurang lebih 5 gram contoh ditimbang dan dimasukkan ke dalam Erlenmeyer. Kemudian ditambahkan 200 ml larutan HCl 3 % dan dididihkan selama 3 jam dengan pendingin tegak. Selanjutnya didinginkan dan dinetralkan dengan larutan NaOH 30 % (indicator lakmus atau fenoftalein), dan ditambahkan sedikit CH3COOH 3 % agar suasana larutan sedikit asam. Isi dipindahkan ke dalam labu ukur 500 ml dan diencerkan hingga tanda tera, kemudian disaring. Sebanyak 10 ml larutan dipipet ke dalam Erlenmeyer 500 ml dan ditambahkan 25 ml larutan Luff (dengan pipet) dan beberapa butir batu didih serta 15 ml air suling. Campuran dipanaskan dengan nyala tetap, diusahakan agar larutan dapat mendidih dalam waktu 3 menit (digunakan stop watch). Campuran terus didihkan selama tepat 10 menit (dihitung dari saat mulai mendidih) kemudian dengan cepat didinginkan dalam bak berisi es. Setelah dingin ditambahkan 15 ml larutan KI 20 % dan 25 ml H2SO4 25 % secara perlahan – lahan. Penitaran dilakukan secepatnya dengan larutan
61
sodium tiosulfat 0.1 N dengan indicator larutan kanji 0.5 %. Pekerjaan yang sama dilakukan juga terhadap blanko. Perhitungan : (Blanko – Penitar) x N sodium tiosulfat x 10 Setara dengan terusi yang tereduksi. Kemudian dengan daftar Luff Schoorl dilihat jumlah mg gula yang terkandung untuk ml sodium tiosulfat yang digunakan.
Kadar Glukosa =
w1 x fp x100% w
Keterangan : w1 : Bobot contoh (mg) w : Glukosa yang terkandung untuk ml sodium tiosulfat yang dipergunakan (mg) fp : faktor pengenceran Tabel 11 Penetapan Gula Berdasarkan Luff Schoorf Na2S2O3 0.1 N (ml) 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23
Glukosa, Fruktosa, Gula Invert (mg) 2.4 4.8 7.2 9.7 12.2 14.7 17.2 19.8 22.4 25.0 27.6 30.3 33.0 35.7 38.5 41.3 44.2 47.1 50.0 53.0 56.0 59.1 62.2
Sumber : SNI 01 – 2891 – 1992
Laktosa (mg) 3.6 7.3 11.0 14.7 18.4 22.1 25.8 29.5 33.2 37.0 40.8 44.6 48.4 52.2 56.0 59.9 63.8 67.7 71.1 75.1 79.8 83.9 88.0
Maltosa (mg) 3.9 7.8 11.7 15.6 19.6 23.5 .27.5 31.5 35.5 39.5 43.5 47.5 51.6 55.7 59.8 63.9 68.0 72.2 76.5 80.9 85.4 90.0 94.6
62
Lampiran 2 Prosedur analisis sirup glukosa Penetapan Total Gula Metode Fenol H2SO4 Sebelum melakukan pengujian sample maka perlu diketahui kurva standar fenol yang digunakan. Pembuatan kurva standar fenol adalah sebagai berikut: 2 ml larutan glukosa standar yang mengandung 0, 10, 20, 30, 40, 50,dan 60 µg glukosa masing-masing dimasukkan ke dalam tabung reaksi, ditambahkan 1 ml larutan fenol 5 persen dan dikocok. Kemudian 5 ml asam sulfat pekat ditambahkan dengan cepat. Biarkan selama 10 menit, kocok lalu tempatkan dalam penangas air selama 15 menit. Absorbansinya diukur pada 490 nm, pengujian sample sama dengan pembuatan kurva standar fenol hanya 2 ml larutan glukosa diganti dengan 2 ml sample. Tabel 12 Kurva standar total gula kandungan glukosa 0 10 20 30 40 50 60
nilai absorbansi 0.088 0.235 0.328 0.478 0.599 0.757 0.881 kurva standar total gula (metode fenol)
y = 0.0132x - 0.0029 R2 = 0.9977
0.9
absorbansi
0.8 0.7 0.6 0.5 0.4 0.3 0.2 0.1 0 0
10
20
30
40
50
60
total gula (g/l)
Gambar 19 Kurva standar total gula (metode fenol)
70
63
Lampiran 3 Prosedur analisis parameter fermentasi 1. pH Pengukuran pH dilakukan dengan pH meter. 2. Penetapan Total Gula Metode Fenol H2SO4 Sebelum melakukan pengujian sample maka perlu diketahui kurva standar fenol yang digunakan. Pembuatan kurva standar fenol adalah sebagai berikut: 2 ml larutan glukosa standar yang mengandung 0, 10, 20, 30, 40, 50,dan 60 µg glukosa masing-masing dimasukkan ke dalam tabung reaksi, ditambahkan 1 ml larutan fenol 5 persen dan dikocok. Kemudian 5 ml asam sulfat pekat ditambahkan dengan cepat. Biarkan selama 10 menit, kocok lalu tempatkan dalam penangas air selama 15 menit. Absorbansinya diukur pada 490 nm, pengujian sample sama dengan pembuatan kurva standar fenol hanya 2 ml larutan glukosa diganti dengan 2 ml sample. 3. Biomasa Pengukuran massa sel dilakukan dengan menggunakan bobot sel kering. Sampel yang akan diukur dimasukkan ke dalam effendorf, kemudian disentrifuse. Setelah itu dicuci dengan menggunakan larutan buffer atau air dan dikeringkan 80 0C selama 24 jam atau 110 0C selama 8 jam. 4. OD Pengukuran OD dilakukan dengan menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 660 nm. 5. Kadar Etanol Pengukuran kadar etanol sampel dilakukan menggunakan GC (Gas Chromatography). Penentuan dilakukan dengan membandingkan waktu retensi sample dengan waktu retensi standar etanol. Standar etanol yang
64
diinjeksikan dengan konsentrasi 99.8 % (v/v). Kadar etanol yang terdapat dalam sample dihitung dengan menggunakan persamaan berikut: Kadar e tan ol =
Luas area sampel x [s tan dar ] Luas area s tan dar
Kondisi analisis pengukuran etanol dengan menggunakan GC adalah sebagai berikut: •
Instrument
: Hitachi
•
Kolom
: OV - 17
•
Gas Pembawa
: N2
•
Detektor
: FID, 250 0C
•
Volume injeksi
: 2 µl
•
Suhu a. Suhu Final
: 100 0C
b. Suhu Initial
: 100 0C
c. Suhu Injector
: 200 0C
d. Suhu Detector
: 250 0C
65
Lampiran 4 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae Tabel 13 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae Biomasa terukur 0.0059 0.006 0.0066 0.0067 0.007 0.0073 0.0074 0.0073 0.0078
OD 0.176 0.269 0.42 0.486 0.528 0.633 0.657 0.659 0.8085
Kurva standar biomasa Vs OD reaktor
Biomasa (g/l)
0.01 0.008 0.006 y = 0.0032x + 0.0053
0.004
2
R = 0.9898
0.002 0 0
0.2
OD vs Biomas Linear (OD vs Biomas)
0.4 OD
0.6
0.8
Gambar 20 Kurva pertumbuhan standar S. cerevisiae
1
66
Lampiran 5 Deskripisi tanaman ubi jalar varietas Sukuh yang digunakan (Puslittan 2008) Asal Tipe tanaman Umur panen Diameter buku ruas Panjang buku ruas Warna dominan sulur Warna sekunder sulur Bentuk kerangka daun Kedalam cuping daun Jumlah cuping Bentuk cuping pusat Ukuran daun dewasa Warna tulang daun permukaan bawah Warna daun dewasa Warna daun muda Pigmentasi pada tangkai daun Panjang tangkai daun Bentuk umbi Susunan pertumbuhan umbi Panjang tangkai umbi Warna kulit umbi Warna daging umbi Rasa umbi Serat Bahan kering Protein Gula total pati Vitamin C Beta carotene Ketahanan terhadap hama Ketahanan terhadap penyakit Keterangan lain
: : : : : : : : : : : : :
Persilangan bebas dari klon induk betina AB 940 Kompak 1-1.5 bulan Tipis Pendek Hampir semua berwarna ungu Hijau pada pucuk Berbentuk hati Tidak ada Bercuping satu Gerigi Sedang Semua tulang daun berwarna ungu
: Hijau dengan tulang tulang daun ungu pada permukaan atas helai daun : Hijau denganwarna ungu melingkari tepi daun : Sebagian besar tangkai ungu hijau sedikit : Pendek : Ellip membulat : Terbuka : : : : : : : : : : : :
Pendek Kuning Putih Enak 0.85% 35.0% 1.62% 4.56% 31.16% 19.21 mg/100 gram 36.59 mkg/100 gram Agak tahan hama boleng (Cylas formicarius) dan tahan hama penggulung daun : Agak tahan penyakit kudis (Sphaceloma batatas) dan bercak daun (Cercospora,sp) : Bahan kering umbi tinggi , warna daging putih, sangat baik untuk digunakan sebagai tepung ubi jalar, cocok ditanam pada lahan tegalan dan sawah
67
Gambar 21 Areal perkebunan ubi jalar varietas sukuh
Gambar 22 Ubi jalar varietas Sukuh
68
Lampiran 5 Data penelitian pada sistem batch A Perlakuan normal Tabel 14 Data penelitian utama perlakuan normal sistem batch Jam ke
Biomasa
TG
pH
0
5.5816 ± 0.054306
218.864 ± 6.428243
4.9
6
6.1192 ± 0
104.508 ± 1.071374
4.6
12
6.6696 ± 0.054306
93.333 ± 3.214122
4.3
18
7.1112 ± 0.33036
76.288 ± 5.892557
3.9
24
7.1272 ± 0.273792
62.462 ± 2.946278
3.8
30
7.156 ± 0.251164
61.326 ± 5.35687
3.6
36
7.156 ± 0.002263
35 ± 5.892557
42
7.1912 ± 0.108612
12.273 ± 0.535687
3.3
48
7.1752 ± 0.339411
4.4697 ± 3.481965
3.2
54
7.1672 ± 0.21496
2.568 ± 1.607061
60
7.3512 ± 0.079196
3.022 ± 1.205296
2.9
66
7.2712 ± 0.067882
3.856 ± 2.410591
2.7
72
7.0632 ± 0.045255
1.524 ± 1.071374
2.5
Etanol
9.07 ± 0.735 68
69
B Perlakuan stop aerasi Tabel 15 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi sistem batch Jam ke
Biomasa
TG
pH
0
5.6136
225.303 ± 10.17805
5.1
6
5.9816 ± 0.040729
171.894 ± 5.892557
4.8
12
6.5576 ± 0.076933
132.5 ± 7.499617
4.3
18
6.796 ± 0.011314
129.469 ± 4.821183
4.1
24
6.788 ± 0.174231
102.196 ± 8.035304
3.8
36
6.82 ± 0.022627
98.03 ± 1.071374
3.5
42
6.836 ± 0.101823
71.136 ± 4.285496
3.4
48
6.932 ± 0.056569
62.045 ± 6.96393
3.4
54
7.1176
59.393 ± 8.035304
3.3
60
7.076 ± 0.079196
28.712 ± 1.893939
3.3
66
7.2136
19.621 ± 4.821183
3.3
72
7.204 ± 0.09051
22.272 ± 3.212479
3.3
Etanol
10.27 ± 0.424
69
70
C Perlakuan stop aerasi dan agitasi Tabel 16 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi dan agitasi sistem batch Jam ke
Biomasa
TG
pH
0
5.9976 ± 0.027153
224.545 ± 8.570991
5.1
6
6.596 ± 0.076933
149.166 ± 12.27322
4.8
12
7.0952 ± 0.022627
120.378 ± 2.678435
3.4
18
7.4456 ± 0.056569
100.303 ± 9.106678
2.8
24
7.4936 ± 0.056569
59.773
2.7
36
7.3608 ± 0.054306
38.182 ± 0.267843
2.6
42
7.4584 ± 0.038467
32.879 ± 7.767461
2.6
48
7.2712 ± 0.027153
31.364 ± 6.96393
2.6
60
7.4776 ± 0.011314
20 ± 0.267843
2.6
66
7.3096 ± 0.009051
19.621 ± 5.35687
2.6
72
7.316 ± 0.081459
14.318 ± 1.339217
2.6
Etanol
8.46 ± 0.438
70
71
Lampiran 6 Data penelitian pada sistem fed batch A Perlakuan normal Tabel 17 Data penelitian utama perlakuan normal sistem fed batch Jam ke-
Biomasa
TG
pH
0
5.7512 ± 0.022627
215.833 ± 1.607061
4.7
6
6.4136 ± 0.009051
159.015 ± 2.142748
4.2
12
7.3352 ± 0.011314
114.697 ± 1.536351
2.6
18
7.6072 ± 0.013576
82.5 ± 6.96393
2.1
24
7.5912 ± 0.045255
99.924 ± 1.473139
2
30
7.6552 ± 0.015839
87.045 ± 5.624713
2
36
7.7352 ± 0.39598
52.197 ± 0.776746
1.9
42
7.7032 ± 0.138027
63.939 ± 4.285496
2.1
48
7.7032 ± 0.036204
35.530 ± 3.214122
2.1
54
7.676
37.046 ± 0.535687
2.2
66
7.876
24.924 ± 1.071374
2.1
72
7.796 ± 0.011314
12.803 ± 1.339217
2.1
Etanol
6.46 ± 0.7637
17.23 ± 1.796
71
72
B Perlakuan stop aerasi Tabel 18 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi sistem fed batch Jam ke-
Biomasa
TG
pH
0
5.4456 ± 0.005091
237.045 ± 7.231774
4.7
6
6.2088 ± 0.048366
132.5 ± 7.231774
4.3
18
7.17 ± 0.025456
93.864 ± 8.8388
2.4
24
7.116 ± 0.025456
100.5 ± 1.787604
2.4
30
7.188 ± 0.012728
95.36 ± 5.892557
2.4
42
7.242 ± 0.012728
67.348 ± 5.089026
2.3
48
7.152 ± 0.001273
22.652 ± 7.499617
2.4
54
7.161 ± 0.025456
30.378 ± 2.678435
2.4
66
7.188 ± 0.114551
17.348 ± 1.838458
2.4
72
7.008 ± 0.025456
11.288 ± 2.303456
2.5
Etanol
6.46 ± 0.7637
21.385 ± 0.57
72
73
C Perlakuan stop aerasi dan agitasi Tabel 19 Data penelitian utama perlakuan stop aerasi dan agitasi sistem fed batch Jam ke-
Biomasa
TG
pH
0
5.8452 ± 0.0245456
215.833 ± 2.678435
5
6
6.3744 ± 0.020365
135.151 ± 8.303148
4
18
6.981 ± 0.08655
88.371 ± 5.35687
2.6
24
6.936 ± 0.005091
135.909 ± 1.594287
2.6
30
6.792 ± 0.020365
120.378 ± 1.50889
2.7
42
6.5508 ± 0.005091
124.167 ± 5.969547
2.8
48
6.5616 ± 0.030547
112.045 ± 9.106678
2.8
54
6.5364 ± 0.005091
99.167 ± 2.142748
2.8
66
6.5724 ± 0.005091
109.399 ± 3.41398
3
72
6.5904 ± 0.020365
88.561 ± 3.274502
3
Etanol
6.46 ± 0.7637
13.275 ± 0.78 73
74
Lampiran 8 Konversi ubi jalar menjadi bioetanol Ubi jalar 10 000g
Ekstraksi pati (rendemen 22.53 ± 1.48 %)
Pati ubi jalar 2253g
Pembuatan sirup glukosa (Efisiensi 97.47 ± 1.27 %)
Sirup glukosa 2195.99g
Pembuatan cairan fermentasi 240g/l
Cairan fermentasi 9.15 liter
Fermentasi 72 jam (kadar etanol 21.385 ± 0.573% v/v)
Etanol (100%) 1.96 liter
Gambar 23 Diagram alir pembuatan bioetanol dari ubi jalar varietas Sukuh
