DAFTAR PUSTAKA. Andayani ASNS Pembuatan campuran sosis daging sapi dan tepung kedelai. Skripsi. FATETA IPB. Bogor. 35 hal

DAFTAR PUSTAKA

Akiyama T, T Unuma, T Yamamoto, P Marcouli, S Kishi. 1995. Combinational use of malt protein flour and soybean meal as alternative protein sources of fish meal in fingerling rainbow trout diets. Fisheries Sci, 61: 828-832. Andayani ASNS. 1981. Pembuatan campuran sosis daging sapi dan tepung kedelai. Skripsi. FATETA IPB. Bogor. 35 hal [APHA] American Public Health Association. 1975. Standar methods for the examination of water and wastewater. American Water Works Assosiation and Water Pollution Control Federation. 14th. Ed., Washington, D.C. 1193 pp. Baruah K, Sahu NP, Pal AK, Debnath D. 2004. Dietary phytase: an ideal approach for a cost effective and low-polluting aquafeed. NAGA, Worldfish Center Quarterly, 27 (3 & 4) : 15-19. Cai Y, Zhang H, Zeng Y, Mo J, Bao J, Miao C, Bai J, Yann F, Chen F. 2004. An optimazed gossypol high-performance liquid chromatography assay and its application in evaluation of different gland genotypes of cotton. Journal Biosci, 29: 67-71 Cain KD, DL Garling. 1995. Pretreatment of soybean meal with phytase for salmonid diets to reduce phosphorus concentrations in hatchery effluents. Progressive Fish Culturist, 57: 114-119. Cheeke PR. 1989. Toxicants of plant origin. CRC Press, Inc. Boca Raton. Florida. IV: 2-22. Cheng Z, RW Hardy. 2002. Effect of microbial phytase on apparent nutrient digestibility of barley, canola meal, wheat and wheat middlings, meaured in vivo using rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition, 8: 271-288. Davis DA, DM Gatlin III. 1991. Dietary mineral requirements of fish and shrimp, p.49-67. In: Akiyama DM and RKH Tan (eds). Proceedings of The Aquaculture Feed Processing and Nutrition Workshop. Thailand and Indonesia Denstadli V, Skrede A, Krogdahl A, Sahlstrom, Storebakken T. 2006. Feed intake, feed conversion, digestibility, enzyme activities and intestinal structure in Atlantic salmon (Salmon salar L.) fed graded levels of phytic acid. Aquaculture, 256:365-376. Enzyme Service Commission (ESC). 2001. Phytase. www.phytase.net. [12 Maret 2002]

Eya JC, RT Lovell. 1997. Available phosphorus requirements of food-size channel catfish (Ictalarus punctatus) fed practical diets in ponds. Aquaculture, 154: 283-291 Francis G, Harinder PSM, K Becker. 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Journal Aquaculture, 199:197-227. Han YW, Wilfred AG. 1988. Phytate hydrolysis in soybean and cottonseed meals by Aspergillus ficuum phytase. J Agric. Food Chem., 336:259-262. Hasan MR. 2000. Nutrition and feeding for sustainable aquaculture development in the third millenium. [Article]. Technical Procedings of The Conference on Aquaculture in the Third Millenium, Bangkok, Thailand. Bangkok. 36 pp. Hepher B. 1990. Nutrition of pond fishes. Cambridge University Press. Cambridge. 388 pp. Herman RL. 1970. Effects of gossypol on rainbow trout Salmo gairdneri Richardson. J. Fish Biol., 2: 293-303 Hertrampf JW, Felicitas P. 2000. Handbook on ingredients for aquaculture feeds. Kluwer Academic Publishers. Dordrecht/Boston/London. 573 pp. Hughes KP, JH Soares Jr. 1998. Efficacy of phytase on phosphorus utilization in practical diets fed to striped bass Morone saxatilis. Department of Animal and Avian Scienses and Maryland Agricultural Experiment Station, University of Maryland, College Park, USA, 4: 133-140 Huisman EA. 1976. Food conversion efficiencies at maintenance and production levels for carp, Cyprinus carpio L and rainbow trout, Salmon gairdneri R. Aquaculture, 9: 259-273. Li MH, EH Robinson. 1997. Microbial phytase can replace inorganic phosphorous supplements in channel catfish Ictalurus punctatus diets. Journal World Aquaculture Soc., 28: 402-406. Li MH, BB Manning, EH Robinson. 2004. Summary of phytase studies for channel catfish. Mississippi Agricultural & Forestry Experiment Station, 23 (13): 1-5. Linder MC. 1992. Biokimia nutrisi and metabolisme. Departement of Chemistry, California State University, Fullerton. Terjemahan Aminuddin Parakkasi. Penerbit Universitas Indonesia. 781 hal. Lovell RT. 1989. Nutrition and feeding of fish. An AVI Book, van Nostrand Reinhold. Auburn University. NewYork, 217pp.

Mokoginta I, M A Suprayudi. 1993. Kebutuhan fosfor bagi ikan yang memiliki lambung dan ikan yang tidak memiliki lambung. Laporan penelitian. Pusat Antar Universitas Ilmu Hayat. IPB. 99hal. Morgan SE. 1989. Gossypol as a toxicant in livestock, p. 251-263. In: Burrows GE (eds). The Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. Philadelphia. NRC. 1983. Nutrient requirement of warmwater fishes and shellfishes. (Edisi Revisi). National Academic of Science, Washington D.C. 102 pp. NRC. 1993. Nutrient requirement of fish. National Academy of Science. Washington D.C. 114pp Nursyam H. 1991. Ransum ikan lele (Clarias batrachus Linn) dari limbah ikan tuna. Tesis. Pascasarjana IPB. Bogor. 74 hal. Nwanna LC. 2004. Effect of untreated soybean meal supplemented with phytase in practical diets on growth and mineral deposition in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L). J. Food and Environ, 2: 51-56. Nwanna LC, A Fagbenro, AO Adeyo. 2005. Effects of different treatments of dietary soybean meal and phytase on the growth and mineral deposition in African catfish Clarias gariepinus. Journal of Animal and Veterinary Advances, 4 (12): 980-987. Oderkirk A. 2001. Phytase enzyme for layers. www.gov.ns.ca. [18 Maret 2002]. Papatryphon E, JH Soares Jr. 2001. The effect of phytase on apparent digestibility of four practical plant feedstuff fed to striped bass, Morone saxatilis. Aquaculture Nutrition, 7:161-167. Robinson EH, Li MH. 1994. Use of plant proteins in catfish feed : replacement of soybean meal with cottonseed meal and replacement of fish meal with soybean meal and cottonseed meal. J World Aquacult. Soc., 25: 271-276. Robinson EH, Rawles SD, Oldenburg PW, Stickney R. 1984. Effects of feeding glandless or glanded cottonseed products and gossypol to Tilapia aurea. Aquaculture, 130:219-233. Rodecap J. 2000. Phosphorus, alga in water, human www.extension.aron.iastate.edu. [21 Maret 2002]

helth

linked.

Rodehutscord M, E Pfeffer. 1995. Effects of supplemental microbial phytase on phosphorus digestibility and utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Water Scienci and Technology, 31(10): 141-147. Roehm JN, Lee DJ, Sinnhuber RO. 1967. Accumulation and elimination of dietary gossypol in the organ of rainbow trout. Lipids, 5(1): 80-81.

Sahwan MF. 1999. Pakan ikan dan udang. Penebar swadaya. Jakarta. 52 hal. Sajjadi M, Carter CG. 2004. Dietary phytase supplementation and the utilization of phosphorus by Atlantic salmon (Salmon salar L.) fed a canola-mealbased diet. Aquaculture, 240:417-431. Shimeno S, H Hosokawa, M Kumon, T Masumoto, M Ukawa. 1992. Inclution of deffated soybean meal in the diet for fingerling yellow tail. Nippon Suisan Gakkaishi, 58(7): 1319-1326. Sugiura, SHJ Gabaudan. FM Dong, RW Hardy. 2001. Dietary microbial phytase supplementation and the utilization of phosphorus, trace minerals and protein by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) (Walbaum) fed soybean meal-based diets. Aquaculture Research, 32: 583-592. Suhenda N. 1988. Pertumbuhan benih ikan lele (Clarias batrachus Linn.) yang mendapat ransum dengan kadar protein dan energi yang berbeda. Buletin Perikanan Darat. Bogor. 7(2). Takeuchi T. 1988. Laboratory work-chemical evaluation of dietary nutrients, p.179-233 In: Fish nutrition and mariculture. Watanabe T (ed) 1988. Departement of Aquatic Biosciences. Tokyo University of Fisheries. JICA Yan W. RC Reigh, Z Xu. 2002. Effects of fungal phytase on utilization of dietary protein and minerals and dephosphorylation of phytic acid in the alimentary tract of channel catfish (Ictalurus punctatus) fed an all plant protein diet. Journal of the Worl Aquaculture Society, 33: 10-22. Yulisman. 2006. Penggunaan fitase dalam pakan berbasis tepung bungkil kedelai untuk ikan Baung (Hemibagrus nemurus). Tesis. Sekolah Pascasarjana. IPB. Bogor. 33 hal. Zainuddin. 1998. Kadar fosfor optimum dalam pakan benih ikan Jambal Siam (Pangasius sutchi Fowler). Tesis. Sekolah Pascasarjana IPB. Bogor. 58 hal.

Lampiran 1. Analisis kadar air (Takeuchi, 1988) 1. cawan dipanaskan dalam oven (110 oC) selama 1 jam kemudian dimasukkan ke dalam eksikator selama 30’ dan timbang (X1) 2. bahan ditimbang 2-3 gram (A) 3. cawan dan bahan dipanaskan di dalam oven (110oC) selama 4 jam kemudian dimasukkan kedalam eksikator seelama 30’ lalu ditimbang (X2)

X2 – X1 kadar air =

x 100% A

Lampiran 2. Analisis kadar protein (metode Semi Micro Kjeldahl) (Takeuchi, 1988) 1. sample ditimbang seberat 0.5-1.0 gram dan dimasukkan kedalam labu Kjeldahl. 2. katalis berupa K2SO45H2O dengan rasio 9 : 1 ditimbang sebanyak 3 gram, dan dimasukkan ke dalam labu Kjeldahl. 3. selanjutnya

ditambahkan 10 ml H2SO4 pekat ke dalam labu tersebut dan

kemudian labu dipanaskan selama 3 – 4 jam sampai cairan dalam labu berwarna hijau. 4. larutan didinginkan, lalu ditambahkan air destilasi 30 ml. kemudian masukkan larutan tersebut kedalam labu takar dan diencerkan dengan akuades sampai larutan tersebut mencapai volume 100 ml (larutan A) 5. labu erlemeyer diisi 10 ml H2SO4 0.05 N dan ditambahkan 2 – 3 tetes indicator methylen blue atau methyl red (larutan B) 6. larutan A diambil sebanyak 5 ml dan ditambahkan sebanyak 10 ml NaOH 30% yang dimasukkan ke dalam labu Kjeldahl. Lalu dilakukan pemanasan dan kondensasi selama 10 menit mulai saat tetesan pertama pada larutan B. 7. larutan dalam labu erlemeyer dititrasi dengan 0.05 N larutan NaOH sampai terjadi perubahan warna dari merah muda menjadi hijau muda. 0.0007* x (Vb Vs) x F x 6.25** x 20 8. kadar protei =

x 100 % S

Keterangan : Vs = ml 0.05 N nitran NaOH untuk sample Vb = ml 0.05 N nitran NaOH untuk blanko F = factor koreksi dari 0.05 N larutan NaOH S = bobot sample (gram) *

= setiap ml 0.05 N NaOH ekuivalen dengan 0.0007 gram

nitrogen ** = faktor nitrogen

Lampiran 3. Analisi kadar lemak (metode ether ekstraksi, Takeuchi, 1988)

1. labu ekstraksi di panaskan didalam oven (110oC) selama 1 jam kemudian didinginkan dalam eksikator selama 30’ lalu ditimbang bobot labu tersebut (X1) 2. sample ditimbang sebanyak 1-2 gram (A) dan dimasukkan kedalam tabung filter lalu dipanaskan pada suhu 90-100oC selama 2-3 jam. 3. tabung filter ditempatkan kedalam ekstrak dari alat soxlet. Kemudian disambungkan kondensor dengan labu ekstraksi yang telah diisi 100 ml petroleum eter. 4. eter dipanaskan pada labu ekstraksi dengan menggunakan water bath pada suhu 70oC selama 16 jam. 5. labu ektraksi dipanaskan pada suhu 100oC kemudian ditimbang (X2)

X2 – X1 kadar lemak =

x 100% A

Lampiran 4. Analisis kadar abu pakan dan tubuh ikan (Takeuchi, 1988)

1. cawan dipanaskan di dalam oven (110oC) selama 1 jam kemudian dimasukkan ke dalam eksikator selama 30’ dan ditimbang (X1)\ 2. bahan ditimbang 2-3 garam (A) 3. cawan dan bahan dipanaskan kedalam tanur (600oC) sampai bahan menjadi abu kemudian dimasukkan ke dalam eksikator selama 30’ lalu di timbang (X2)

X2 – X1 kadar abu =

x 100% A

Lampiran 5. Analisis serat kasar pakan dan tubuh ikan (Takeuchi, 1988)

1. kertas filter dipanaskan dalam oven selama 1 jam pada suhu 110oC setelah itu didinginkan dalam eksikator lalu ditimbang (X1) 2. sample ditimbang sebanyak 0.5 gram (A) dan dimasukkan kedalam erlemeyer 250 ml 3. H2SO4 0.3 N sebanyak 50 ml dimasukkan kedalam erlemeyer kemudian dipanaskan selama 30’. Setelah itu NaOH 1.5 N sebanyak 25 ml dimasukkan kedalam erlemeyer lagi kemudian dipanaskan selama 30’ 4. larutan dan bahan yang telah dipanaskan kemudian disaring dalam corong buchner dan dihubungkan pada vacuum pump untuk mempercepat filtrasi. 5. larutan n bahan yang ada pada corong buchner kemudian dibilas secara berturut-turut dengan 50 ml air panas, H2SO4 0.3 N, 50 ml air panas dan 25 ml aseton. 6. kertas saring dan isinya dimasukkan kedalam cawan porselin, lalu dikeringkan selama 1 jam kemudian didinginkan dalam eksikator dan ditimbang (X2) 7. setelah itu dipanaskan dalam tanur 600oC hingga berwarna putih, didinginkan dalam eksikator dan ditimbang (X3)

X2 – X1 – X3 kadar Serat Kasar =

x 100% A

Lampiran 6. Analsis Phospor (metode spektrofotometer) Prosedur Wet Ashing (Pengabuan) 1. Timbang ± 1 gram sample dalam erlenmeyer 2. Tambahkan HNO3 5 ml, biarkan ± 1 jam sampai bening dan tidak ada buih 3. Panaskan sampel ± 4 jam pada hot plate lalu dinginkan 4. Tambahkan 0.4 ml H2SO4 pekat (panaskan kembali jika ada letupan kecil ± 1 jam) 5. Volume sample akan berkurang pada saat ada perubahan warna, lalu teteskan larutan campuran HCLO 4 : HNO3 (2 : 1) sebanyak 3 tetes, panaskan selama ± 1 jam. Terjadi perubahan warna coklat → kuning → bening 6. Tambahkan 2 ml aquades + 0.6 ml HCl(p) 7. Panaskan kembali sampai larut lalu dinginkan 8. Pindahkan ke dalam labu takar kemudian larutkan menjadi 100 ml. Preparasi larutan • Larutan A ((NH4)6Mo 7O24.4H2O 10% = Amonium Molibdat 10%) Ø 10 gram Amonium Molibdat + 60 ml Aquades Ø Tambahkan 28 ml H2SO4 pekat secara bertahap (panas) → reaksi eksoterm Ø Buat larutan sampai 100 ml dengan menambah Aquades Ø Dinginkan larutan tersebut dalam suhu kamar •

Larutan B (dibuat sesaat sebelum analisis) Ø 10 ml larutan A + 60 ml Aquades + 5 gram FeSO 4.7H2O Ø Buat larutan sampai 100 ml dengan menambah Aquades

•

Larutan Standard untuk P Ø Larutkan 4.394 gram KH2PO4 dalam aquades sampai 1 liter (untuk mendapatkan konsentrasi P = 1000 ppm)

Lanjutan………….. Analisis P : Larutan Standar •

Buat konsentrasi larutan standard P = 2,3,4 dan 5 ppm dalam 5 ml, sehingga diperlukan : 2 ppm = 2 ppm/25 ppm x 5 ml = 0.4 ml KH2PO4 3 ppm = 3 ppm/25 ppm x 5 ml = 0.6 ml KH2PO4 4 ppm = 4 ppm/25 ppm x 5 ml = 0.8 ml KH2PO4 5 ppm = 5 ppm/25 ppm x 5 ml = 1.0 ml KH2PO4

•

Masing-masing volume tersebut ditambah aquades sampai 3 ml lalu diaduk menggunakan vortex, kemudian ditambah larutan B sebanyak 2 ml.

•

Baca pada spektrofotometer (UV Visible) dengan panjang gelombang (λ) 660 nm.

Tulang Ikan •

Larutan hasil Wet Ashing Tulang Ikan di labu takar 100 ml di pipet 1 ml kemudian dimasukkan ke tabung reaksi, lalu diencerkan dengan aquades bebas mineral menjadi 5 ml (diaduk).

•

Hasil pengenceran 5 ml di pipet 0.1 ml lalu diencerkan lg dengan menggunakan aquades bebas mineral sampai 3 ml (di aduk dengan vortex) + 2 ml larutan B (diaduk).

•

Larutan siap dianalisis menggunakan alat spektrofotometer dengan panjang gelombang 660 nm

Pakan •

Larutan hasil Wet Ashing Pakan di labu takar 100 ml di pipet 0.2 ml, lalu diencerkan dengan aquades bebas mineral 3 ml (diaduk) + 2 ml larutan B (diaduk).

•

Larutan siap dianalisis menggunakan alat spektrofotometer dengan panjang gelombang 660 nm.

Lampiran 7. Prosedur pembuatan preparat histologi Larutan

Waktu

Bouin

24 jam

Alkohol 70%, 80%, 90%, 95%

Masing-masing 24 jam

Alkohol absolut

30 menit

Xilol I, II, III

30 menit

Parafin I dan II

30 menit

Parafin III Penanaman dalam blok parafin

60 menit 24 jam

Pemotongan dengan mikrotom (5 mikron) Xilol III dan II Xilol I Alkohol III, II, I

masing-masing 3 menit Masing-masing 3 menit Masing-masing 2-3 menit

Air kran

5 menit

Akuades

5 – 10 menit

Pewarnaan hematoksilin

40 detik

Air kran

5 menit

Akuades

5 menit

Pewarnaan eosin

5 menit

Alkohol 70%, 80%, 90%, 95% Alkohol absolute I, II, III

Masing-masing 30 detik Masing-masing 30 detik

Xilol I dan II

Masing-masing 5 menit

Xilol III

10 menit

Ditutup dengan gelas penutup Lampiran 8. Prosedur analisis ammonia (APHA-AWWA-WPCF, 1975) 1. sample sebanyak 25 ml dimasukkan kedalam gelas beker. Tambahkan 1 tetes MnSO4 0.003 M, kemudian di aduk. 2. Tambahkan 0.5 ml larutan chlorox 20% diaduk, lalu segera tambahkan 0.6 ml larutan phenate. Aduk kembali dan diamkan selama 25 menit. 3. ukur

nilai

absorban menggunakan

spektrofotometer pada panjang

gelombang 630 nm. 4. lakukan prosedur yang sama pada larutan blanko dan standar. 5. konsentrasi amoniak dihitung dengan persamaan regresi : Y= -0.0039 + 1.3749 X Keterangan : Y = konsentrasi amoniak sample X = nilai absorban sample

Larutan Phenat 1 gram phenol + 0.25 NaOH + 10 ml aquades lalu diaduk sampai larut.

Larutan Chlorox 4 ml hipoclorin + 16 ml aquades (pH 12) lalu diaduk kemudian tambahkan HCl sampai pH larutan 7

Lampiran 9. Data analisa proksimat bahan (% Bobot kering)

Serat Kasar

BETN

Gross Energi

8.93

0.37

0.30

4010

32.45

9.92

23.47

26.49

4127

7.77

39.37

3.49

11.82

37.55

3909

2.44

64.06

5.91

4.46

23.13

2696

T. Tapioka

0.07

0.91

0.09

0.27

98.66

4104.48

T. Terigu

0.51

13.75

1.41

0.38

83.95

4344.49

Bahan

Abu

T. Ikan

14.40

76.00

T. Biji Kapuk

7.66

T. Bungkil Kedelai T. daging & Tulang

Protein Lemak

Lampiran 10. Data analisa asam amino essensial bahan (% protein)

B

A

H

A

N

Asam Amino Ikan 1)

FM3)

KSM 1)

SBM 2)

MBM 2)

Arginin

2.54

3.9

0.86

6.94

3.38

Histidin

4.24

1.5

0.17

2.64

1.03

Isoleusin

2.01

3.6

0.14

5.01

1.42

Leusin

3.78

5.1

0.73

7.54

2.86

Lisin

3.59

6.4

0.20

6.28

3.75

Metionin

1.84

1.8

0.21

1.38

1.01

Phenilalanin

2.27

2.6

0.38

5.03

1.63

Threonin

2.22

2.8

0.14

4.92

2.50

Tryptophan

0.42

0.7

0.08

1.18

0.24

Valin

2.42

3.5

0.92

4.72

2.18

Keterangan : 1) Hasil analisa, 2) Hetrampf dan Felicitas (2000), 3) Buwono (2000) FM : Fish Meal, KSM : Kapook Seed Meal, SBM : Soybean Meal, MBM : Meat and Bone Meal.

Lampiran 11. Kecernaan P (%) setiap perlakuan Perlakuan/pakan

P pakan Cr pakan Cr feses

P feses

Kecernaan P

A1

0,75

0,58

1,75

0,38

83,21

A1+enzim

0,81

0,55

1,83

0,25

90,91

B1KSM

0,84

0,43

0,79

0,19

87,75

B1KSM+enzim

0,95

0,6

1,34

0,21

90,30

Ket : KSM : Tepung biji kapuk (kapook seed meal)

Lampiran 12. Fosfor (P) yang terkandung dalam tulang (%) setiap perlakuan Ulangan Perlakuan/pakan

Rata-rata 1

2

3

A1

6,47

5,06

4,91

5,48±0,86

A1+enzim

5,14

6,23

4,57

5,31±0,84

B1KSM

4,64

5,20

4,79

4,88±0,29

B1KSM+enzim

4,14

5,18

4,96

4,76±0,55


Lampiran 13. Kecernaan protein pakan (%) setiap perlakuan Protein pakan

Cr pakan

Cr feses

Protein feses

Kecernaan protein

A1

31,79

0,58

1,75

14,00

85,40

A1+enzim

31,65

0,55

1,83

12,71

87,93

B1KSM

31,85

0,43

0,79

9,76

83,32

B1KSM+enzim

31,82

0,6

1,34

10,74

84,89

Perlakaun/pakan

Ket : KSM :Tepung biji kapuk (kapook seed meal)

Lampiran 14. Ekskresi total ammonia nitrogen (TAN) setiap perlakuan Ulangan

Rata-rata

Perlakuan/pakan 1

2

A1

0,001

0,001

0,001 ± 0,00

A1+enzim

0,001

0,001

0,001 ± 0,00

B1KSM

0,001

0,001

0,001 ± 0,00

B1KSM+enzim

0,001

0,001

0,001 ± 0,00


Lampiran 15. Hasil analisis proksimat tubuh awal dan akhir ikan Lele Dumbo (Clarias sp) (% bobot kering) yang dipelihara selama 60 hari. Perlakuan/pakan

Ulangan

Abu

Protein

Lemak

S.Kasar

BETN

1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata

18,00 14,10 16,25 15,66 15,34±1,11 15,66 17,99 14,38 16,01±1,83 14,09 16,34 19,61 16,68±2,78 16,78 17,96 18,28 17,67±0,79

54,55 51,77 50,40 52,03 51,40±0,88 52,69 54,43 49,39 52,17±2,56 54,66 56,70 56,97 56,11±1,26 60,25 66,30 63,96 63,50±3,05

22,07 27,43 25,39 23,25 25,35±2,09 23,89 21,75 32,78 26,14±5,85 23,05 19,01 20,63 20,90±2,03 16,90 13,80 16,52 15,74±1,69

0,36 1,01 1,39 1,35 1,25±0,21 1,70 1,25 1,10 1,35±0,31 1,52 1,23 1,41 1,39±0,15 1,20 1,51 1,12 1,28±0,21

5,02 5,69 6,57 7,71 6,65±1,01 6,07 4,58 2,35 4,34±1,87 6,68 6,72 1,38 4,93±3,07 4,87 0,42 0,13 1,81±2,66

Awal A1

A1+ enzim

B1KSM

B1KSM+enzim


Lampiran 16. Analisa protein dan lemak hati ikan Lele Dumbo (Clarias sp ) (% bobot kering) tiap perlakuan

Perlakuan/pakan

A1

A1+enzim

B1KSM

B1KSM+enzim

Parameter Protein akhir Lemak awal

Ulangan

Protein awal

1

60,46

51,20

36,50

29,96

2

60,46

52,97

36,50

3

60,46

52,00

-

37,59 -

Rata-rata

60,46±0,00

52,06±0,89

36,50±0,00

33,78±5,40

1

60,46

62,04

36,50

24,96

2

60,46

65,39

36,50

3

60,46

68,48

-

32,73 -

Rata-rata

60,46±0,00

65,30±3,22

36,50±0,00

28,85±5,50

1

60,46

53,21

36,50

29,15

2

60,46

57,23

36,50

3

60,46

61,13

-

30,17 -

Rata-rata

60,46±0,00

57,19±3,96

36,50±0,00

29,66±0,72

1

60,46

61,98

36,50

31,59

2

60,46

60,31

36,50

3

60,46

60,91

-

32,12 -

Rata-rata

60,46±0,00

61,07±0,85

36,50±0,00

31,86±0,37


Lemak akhir

47

Lampiran 17. Analisis sidik ragam kadar protein tubuh ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db 1 1 1 8 11

JK 193,04 49,98 32,90 36,44 312,37

KT 193,04 49,98 32,90 4,56

Fhit 42,37* 10,97* 7,22*

P-value 0,00 0,01 0,03

Ftab 3,46 3,46 3,46

* = berbeda nyata pada α = 0,1 A : Bahan nabati (SBM dan SBM+KSM); B : Dengan dan tanpa enzim fitase; AB : Interaksi A&B

Lampiran 18. Analisis sidik ragam kadar lemak tubuh ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db 1 1 1 8 11

JK 165,61 14,34 26,46 91,15 297,57

KT 165,61 14,34 26,46 11,39

Fhit 14,54* 1,26 tn 2,32 tn

P-value

Ftab

0,01 0,29 0,17

3,46 3,46 3,46

* = berbeda nyata pada α = 0,1; tn = tidak berbeda nyata pada α = 0,1 A : Bahan nabati (SBM dan SBM+KSM); B : Dengan dan tanpa enzim fitase; AB : Interaksi A&B

Lampiran 19. Analisis sidik ragam kadar protein hati ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db 1 1 1 8 11

JK 0,60 219,91 65,85 55,12 341,47

KT 0,60 219,91 65,85 6,89

Fhit 0,09 tn 31,92* 9,56*

P-value 0,77 0,00 0,01

Ftab 3,46 3,46 3,46


48

Lampiran 20 Analisis sidik ragam kadar lemak hati ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db

JK

1 1 1 4 7

KT

0,61 3,74 25,38 59,96 89,69

Fhit tn

0,61 3,74 25,38 14,99

0,04 0,25tn 1,69tn

P-value

Ftab

0,85 0,64 0,26

4,54 4,54 4,54

tn = tidak berbeda nyata pada α = 0,1 A : Bahan nabati (SBM dan SBM+KSM); B : Dengan dan tanpa enzim fitase; AB : Interaksi A&B

Lampiran 21. Retensi protein (%) setiap perlakuan Ulangan Perlakuan/pakan

Rata-rata 1

2

3

A1

26,42

31,20

27,67

28,43±2,48

A1+enzim

29,56

27,09

24,20

26,95±2,68

B1KSM

36,20

27,73

36,90

33,61±5,10

B1KSM+enzim

29,20

34,54

38,73

34,16±4,78


Lampiran 22. Retensi lemak (%) setiap perlakuan Perlakuan/pakan

Ulangan

Rata-rata

1

2

3

A1

90,26

97,34

75,83

87,81±10,96

A1+enzim

80,62

61,60

105,26

82,49±21,89

B1KSM

103,00

57,58

85,89

82,16±22,94

B1KSM+enzim

44,36

26,95

47,05

39,45±10,91


49

Lampiran 23. Laju pertumbuhan harian (LPH), efisiensi pakan (EP) dan konsumsi pakan (KP) ikan lele dumbo (Clarias sp) selama 60 hari pemeliharaan.

Perlakuan/pakan

A1

A1+ enzim

B1KSM

B1KSM+enzim

Ulangan

LPH (%)

EP (%)

KP (g)


2,0 2,5 1,9 2,1 ± 0,32 1,7 2,1 2,1 2,0 ± 0,23 1,7 1,9 2,3 2,0 ± 0,31 1,6 1,5 1,4 1,5 ± 0,10

56,51 51,62 54,07 ± 3,46 60,89 56,70 58,80 ± 2,96 60,89 56,70 58,80 ± 2,96 59,71 66,77 63,24 ± 4,99

679,40 882,70 628,70 730,27±134,4 487,20 805,10 636,60 642,97±159,0 498,10 392,10 710,70 533,63±162,2 370,60 359,40 340,40 356,80±15,3


50

Lampiran 24. Analisis sidik ragam retensi protein ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db 1 1 1 8 11

JK 115,07 0,65 3,08 124,42 243,23

KT 115,07 0,65 3,08 15,55

Fhit 7,40* 0,04tn 0,20tn

P-value

Ftab

0,03 0,84 0,67

3,46 3,46 3,46


Lampiran 25. Analisis sidik ragam retensi lemak ANOVA Sumber Keragaman A B AB Galat Total

db 1 1 1 8 11

JK

KT

1778,28 1729,44 1048,32 2489,22 7045,26

1778,28 1729,44 1048,32 311,15

Fhit 5,72* 5,56* 3,37tn

P-value

Ftab

0,04 0,05 0,10

3,46 3,46 3,46


52

Lampiran 28. Perhitungan retensi protein ikan Lele Dumbo (Clarias sp)

Parameter Bobot ikan awal (g) individu

Bobot ikan akhir (g) individu

Ulangan

Perlakuan/pakan A1

A1+enzim

B1KSM

B1KSM+enzim

1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata

27,10 26,77 27,48 27,12±0,36 87,17 116,35 86,90 96,81±16,93

27,10 27,02 26,77 26,96±0,17 72,98 96,28 90,66 86,64±12,16

27,47 27,23 27,27 27,32±0,13 77,03 85,07 106,35 89,48±15,15

27,30 26,80 26,78 26,96±0,30 69,43 64,32 62,65 65,47±3,53

1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata

3,27 3,23 3,31 3,27±0,04 13,29 13,74 13,09 13,37±0,33 11,58 15,99 11,38 12,98±2,61

3,27 3,26 3,23 3,25±0,02 13,63 13,89 13,02 13,51±0,45 9,95 13,37 11,80 11,71±1,71

3,31 3,28 3,29 3,30±0,02 15,13 15,69 14,50 15,11±0,60 11,66 13,35 15,42 13,47±1,88

3,29 3,23 3,23 3,25±0,03 15,58 15,76 14,91 15,42±0,45 10,82 10,14 9,34 10,10±0,74

Prot. Ikan: Σ protein awal (g): 12.06% (bobot basah)

Kadar protein ikan akhir pengamatan (% bobot basah)

Σ protein ikan akhir pengamatan(g)

53

Lanjutan lampiran 28...... Parameter Σ protein disimpan dlm tubuh(g)

Ulangan 1 2 3 Rata-rata

A1 8,32 12,76 8,06 9,71±2,64


113,23 147,12 104,78 121,71±22,41 27,80 27,80 27,80 27,80±0,00 31,48 40,90 29,13 33,84±6,23 26,42 31,20 27,67 28,43±2,48

Perlakuan/pakan A1+enzim B1KSM 6,68 8,34 10,12 10,06 8,58 12,13 8,46±1,72 10,18±1,90

B1KSM+enzim 7,52 6,90 6,11 6,85±0,71

Pakan : Konsumsi pakan (g) individu

Kadar protein pakan (% bobot basah)

Σ protein yang diberikan selama pengamatan (g)

Retensi protein


81,20 134,18 127,32 114,23±28,81 27,83 27,83 27,83 27,83±0,00 22,60 37,34 35,43 31,79±8,02 29,56 27,09 24,20 26,95±2,68

83,02 130,70 118,45 110,72±24,76 27,76 27,76 27,76 27,76±0,00 23,05 36,28 32,88 30,74±6,87 36,20 27,73 36,90 33,61±5,10

92,65 71,88 56,73 73,75±18,03 27,81 27,81 27,81 27,81±0,00 25,77 19,99 15,78 20,51±5,02 29,20 34,54 38,73 34,16±4,78

54

Lampiran 29. Perhitungan retensi lemak ikan Lele Dumbo (Clarias sp) Parameter Bobot ikan awal (g) individu

Bobot ikan akhir (g) individu

Ulangan

Perlakuan/pakan

1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata

A1 27,10 26,77 27,48 27,12±0,36 87,17 116,35 86,90 96,81±16,93

A1+enzim 27,10 27,02 26,77 26,96±0,17 72,98 96,28 90,66 86,64±12,16

B1KSM 27,47 27,23 27,27 27,32±0,13 77,03 85,07 106,35 89,48±15,15

B1KSM+enzim 27,30 26,80 26,78 26,96±0,30 69,43 64,32 62,65 65,47±3,53

1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata 1 2 3 Rata-rata

1,32 1,31 1,34 1,32±0,02 7,04 6,92 5,85 6,60±0,66 6,14 8,05 5,08 6,42±1,51

1,32 1,32 1,31 1,32±0,01 6,18 5,55 8,64 6,79±1,63 4,51 5,34 7,83 5,90±1,73

1,34 1,33 1,33 1,33±0,01 6,38 5,26 5,25 5,63±0,65 4,91 4,47 5,58 4,99±0,56

1,33 1,31 1,31 1,32±0,01 4,37 3,28 3,85 3,83±0,55 3,03 2,11 2,41 2,52±0,47

Lemak pada ikan: Σ lemak awal(g): 4.88% (bobot basah)

Kadar lemak tubuh ikan akhir perlakuan (% bobot basah) Σ lemak tubuh ikan akhir pengamatan (g)

55

Lanjutan lampiran 29...... Parameter

Ulangan

Σ lemak yang disimpan dalam tubuh (g)

1 2 3 Rata-rata

A1 4,81 6,75 3,74 5,10±1,53


113,23 147,12 104,78 121,71±22,41 4,71 4,71 4,71 4,71±0,00 5,33 6,93 4,94 5,73±1,05 9,26 97,34 75,83 87,81±10,96

Perlakuan/pakan A1+enzim B1KSM 3,19 3,57 4,03 3,15 6,53 4,25 4,58±1,74 3,66±0,56

B1KSM+enzim 1,70 0,80 1,10 1,20±0,46

Pakan: Konsumsi pakan (g) individu

Kadar lemak pakan(% bobot basah)

Σ lemak dikonsumsi (g) selama penelitian

Retensi lemak


81,20 134,18 127,32 114,23±28,81 4,87 4,87 4,87 4,87±0,00 3,95 6,53 6,20 5,56±1,40 80,62 61,60 105,26 82,49±21,89

83,02 130,70 118,45 110,72±24,76 4,18 4,18 4,18 4,18±0,00 3,47 5,46 4,95 4,63±1,03 103,00 57,58 85,89 82,16±22,94

92,65 71,88 56,73 73,75±18,03 4,14 4,14 4,14 4,14±0,00 3,84 2,98 2,35 3,05±0,75 44,36 26,95 47,05 39,45±10,91

DAFTAR PUSTAKA. Andayani ASNS Pembuatan campuran sosis daging sapi dan tepung kedelai. Skripsi. FATETA IPB. Bogor. 35 hal

Recommend Documents