BAB IV METODE PENELITIAN
4.1
Ruang lingkup penelitian Disiplin ilmu yang terkait dalam penelitian ini adalah Ilmu Mikrobiologi, Ilmu Kesehatan Anak, dan Ilmu Kesehatan Masyarakat.
4.2
Tempat dan waktu penelitian
4.2.1
Tempat penelitian 1. Pengambilan data berupa sampel swab nasofaring dan kuesioner di posyandu dan PAUD di kecamatan Gayamsari dan Gunungpati kota Semarang. 2. Identifikasi mikrobiologi di laboratorium mikrobiologi Fakultas Kedokteran Universitas Diponegoro.
4.2.2
Waktu penelitian Penelitian dan pengumpulan data dilakukan pada bulan Maei sampai dengan Juli 2013.
4.3
Jenis dan rancangan penelitian Penelitian ini merupakan jenis penelitian observasional analitik dengan pengambilan data secara cross sectional.
4.4
Populasi dan sampel
4.4.1
Populasi target Seluruh balita di wilayah Kotamadya Semarang.
4.4.2
Populasi terjangkau Balita di kecamatan Gayamsari dan kecamatan Gunungpati kota
Semarang. 4.4.3
Sampel Balita yang tinggal di kecamatan Gayamsari dan kecamatan Gunungpati
kota Semarang yang telah dipilih memenuhi kriteria sebagai berikut: 4.4.3.1 Kriteria inklusi 1. Balita usia 6 bulan – 5 tahun yang sedang berada di posyandu dan playgroup pada saat penelitian dilakukan. 2. Balita (orang tua balita) yang bersedia atau tidak menolak saat dilakukan prosedur penelitian, yang meliputi swab nasofaring setelah diberi informed consent. 3. Subyek bebas dari gejala dan tanda infeksi saluran napas saat pengambilan sampel dan tidak sedang mendapat antibiotik. 4.4.3.2 Kriteria eksklusi 1. Terdapat lesi pada mukosa saluran napas. 2. Subyek tidak kooperatif saat prosedur penelitian, yang meliputi swab nasofaring. 4.4.4
Cara sampling Sampel diambil dari swab nasofaring, pemilihan subyek dengan sistem
consecutive sampling.
4.4.5
Besar sampel Besar sampel ditentukan dengan rumus berikut
n = 86 Keterangan : n
= besar sampel yang diperlukan
α
= 0,05
β
= 0,8 = deviat baku normal α = 1,645 = deviat baku normal β = 0,842 = 0,12 (proporsi S. pneumonia yang resisten terhadap berbagai
macam antibiotik, berdasarkan penelitian Al-Tawfiq tahun 2004) = 0,27 (berdasarkan estimasi peneliti sebesar 0,15% lebih tinggi dari P1) P
=
Q
= 1-P
) = 0,24
Jadi sampel untuk setiap kecamatan minimal 86 balita. Sampel keseluruhan adalah 2 × 86 = 172 balita. 4.5
Variabel penelitian
4.5.1
Variabel bebas Lokasi tempat tinggal balita.
4.5.2
Variabel terikat Pola kepekaan S. pneumoniae terhadap antibiotik.
4.6 Definisi operasional Kategori variabel Bebas
Nama variabel
Definisi operasional
Skala
Lokasi tempat Tempat tinggal balita Nominal tinggal balita sehari-hari. Balita yang berada ditengah kota yaitu balita yang mengikuti Posyandu atau PAUD di Kecamatan Gayamsari. Balita yang berada dipinggir kota yaitu balita yang mengikuti Posyandu atau PAUD di Kecamatan Gunungpati.
Nilai data 0 = Tempat tinggal balita berada di wilayah Kecamatan Gayamsari 1 = Tempat tinggal balita berada di wilayah Kecamatan Gunungpati 0 = ≥ 20 mm (sensitif) 1 = ≤19 mm (tidak sensitif) 0 = ≥17 mm (sensitif) 1 = ≤16 mm (tidak sensitif)
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal penisilin pada uji kepekaan menggunakan disk oxacillin 1 µg sesuai standar CLSI.
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal vankomisin pada uji kepekaan menggunakan disk vankomisin 30 µg sesuai standar CLSI.
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal erythromycin pada uji kepekaan menggunakan disk erythromycin 15 µg sesuai standar CLSI.
0 = ≥21 mm (sensitif) 1 = ≤20 mm (tidak sensitif)
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal tetrasiklin pada uji kepekaan menggunakan disk tetrasiklin 30 µg sesuai standar CLSI.
0 = ≥23 mm (sensitif) 1 = ≤22 mm (tidak sensitif)
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal lefofloxacin pada uji kepekaan menggunakan disk levofloxacin 5 µg sesuai standar CLSI.
0 = ≥17 mm (sensitif) 1 = ≤16 mm (tidak sensitif)
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal trimethropimpada uji kepekaan sulfamethoxazole menggunakan disk trimethropimsulfamethoxazole 1.25/23.75 µg sesuai standar CLSI.
0 = ≥19 mm (sensitif) 1 = ≤18 mm (tidak sensitif)
Terikat
Resistensi terhadap Diameter zona inhibisi Nominal penisilin dan ≥2 resisten terhadap disk antibiotik lain oxacillin dan ≥2 antibiotik lain (vankomisin, levofloxacin, tetrasiklin, trimethropimsulfamethoxazole, dan erythromycin) sesuai standar CLSI.
0 = Bukan MDR 1 = MDR
4.7
Cara pengumpulan data
4.7.1
Bahan
− Media Agar Darah + gentamisin 5% − Media Agar Darah − Media Transport STGG − Disk Optochin − Reagen untuk pengecatan gram: Crystal violet, Larutan lugol, Alkohol absolut, Larutan safranin − Disk Antibiotik: Oxacillin 1 µg Erythromycin 15 µg Tetrasiklin 30 µg Vankomisin 30 µg Levofloxacin 5 µg Trimethroprim-sulfamethoxazole 1.25/23.75 µg
4.7.2
Alat
− Kuesioner − Alat swab khusus nasofaring − Inkubator − Osse − Deck glass − Kaca objek − Bunsen − Mikroskop − Lidi kapas steril − Plate − Standar McFarland 0,5 4.7.3
Jenis data Data yang digunakan adalah data primer dari penelitian pada bayi dan
anak balita. 4.7.4
Cara kerja
4.7.4.1 Cara pengambilan sampel Apusan nasofaring diambil menggunakan alat swab khusus nasofaring. Subyek dalam posisi mengadah, fiksasi kepala dengan satu tangan memegang dahi atau dagu subyek. Apusan nasofaring diambil dengan standar metode klinis, dengan cara memasukkan swab kedalam hidung dengan arah mendatar cenderung naik sampai nasofaring, kemudian putar tiga kali atau selama 5 detik. Spesimen
swab dimasukkan kedalam media transport STGG. Tiap media STGG diberi kode dengan nama subyek dan tanggal pengambilan.56,57 4.7.4.2 Isolasi primer Isolasi primer dikerjakan dengan cara Streak-Plate technique. Pada dasar piring petri dibuat 2 daerah dengan spidol. Swab digoreskan pada permukaan media Agar darah + gentamisin 5% pada daerah 1 seluas 2 cm 2. Menyeterilkan osse, kemudian bekas goresan alat swab tadi dilakukan goresan berulang dan rapat pada daerah 1. Osse disterilkan, goresan dilanjutkan ke daerah 2 dan seterusnya hingga daerah 3. Osse kembali disterilkan, piring petri ditutup kemudian diberi label nama subyek dan tanggal inkubasi. Media dieramkan pada inkubator CO2 5% dengan suhu 37oC selama 24 jam. Pertumbuhan koloni dilihat setelah 24 jam.12, 58 4.7.4.3 Identifikasi S. pneumoniae 1) Tes optochin Identifikasi bakteri menggunakan uji optochin. Koloni murni pada media agar darah diambil, kemudian digoreskan diatas media agar darah yang baru. Optochin disk diletakkan ditengah-tengah inokulasi. Media diinkubasi pada suhu 370C selama 24 jam dalam 5% CO2. Mengamati zona inhibisi yang terbentuk, bila zona inhibisi memiliki diameter >14 mm menunjukkan positif S. pneumoniae.9, 33 2) Pengecatan Gram Untuk identifikasi bakteri dengan pengecatan gram, yang pertama harus dilakukan adalah meneteskan larutan garam fisiologis pada obyek gelas. Suspensi bakteri diambil menggunakan osse steril, dicampurkan dengan garam fisiologis
hingga merata. Setelah rata preparat digenangi dengan crystal violet selama 1 menit, kemudian sisa cat dibuang. Langkah selanjutnya preparat digenangi dengan lugol selama 1 menit, buang sisa cat kemudian gunakan air mengalir untuk mencuci. Selanjutnya mencuci preparat menggunakan alkohol absolut sampai semua cat tampak larut. Setelah larut, preparat dicuci lagi menggunakan air mengalir, kemudian genangi dengan larutan safranin selama 45 detik. Preparat dibilas menggunakan air mengalir dan keringkan. Selanjutnya preparat bisa diperiksa dibawah mikroskop.58 4.7.4.4 Tes resistensi terhadap antibiotik (Metode Disc Diffusion) Membuat suspensi bakteri S. pneumoniae sesuai Standar McFarland 0,5. Langkah berikutnya mengoleskan suspensi S. pneumoniae pada permukaan media agar darah sebanyak tiga kali sambil diputar 60o setiap melakukan goresan. Tutup piring agar, biarkan inokulasi pada suhu ruang selama beberapa menit supaya mengering.
Meletakkan
disk
antibiotik
pada
permukaan
agar
dengan
menggunakan pinset. Menginkubasi pada suhu 350C selama 24 jam. Mengukur zona inhibisi dengan satuan milimeter. Kemudian mengkategorikan kepekaan terhadap antibiotik sesuai rekomendasi Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI 2012). S. pneumoniae dikatakan sensitif terhadap antibiotik apabila termasuk dalam kriteria susceptible, dan dikatakan resisten apabila termasuk dalam kriteria intermediate dan resistant. disebutkan tabel 2.
51, 58
Kriteria tersebut sesuai
Tabel 2. Kriteria pola kepekaan antibiotik menurut CLSI 2012.51
No
Jenis antibiotik
1 2 3 4 5 6
Penisilin Vankomisin Erythromycin Tetrasiklin Levofloxacin Trimethropimsulfamethoxazole
4.8
Alur penelitian
Disk antibiotik 1 µg oxacillin 30 µg vankomisin 15 µg erythromycin 30 µg tetrasiklin 5 µg levofloxacin 1.25/23.75 µg trimethropimsulfamethoxazole
Kriteria diameter zona inhibisi (mm) S I R ≥20 ≥17 ≥21 ≥23 ≥17 ≥19
− − 16-20 19-22 14-16 16-18
Pengambilan sampel Isolasi primer pada Agar Darah Inkubasi Uji sensitivitas disk optochin terhadap koloni murni suspect S. pneumoniae Diagnosis S. pneumoniae Suspensi S. pneumoniae sesuai Standard McFarland 0,5 Tes resistensi S. pneumoniae terhadap antibiotik menggunakan disk diffusion: oxacillin, erythromycin, tetrasiklin, vankomisin, levofloxacin, trimethroprim-sulfamethoxazole.
Analisis
− − ≤15 ≤18 ≤13 ≤15
4.9
Analisis data Pengolahan data dilakukan dengan tahapan cleaning, coding, tabulasi dan
analisis data. Data dianalisis dengan analisis deskriptif, bivariat. Analisis bivariat dilakukan dengan menggunakan Chi square. Apabila syarat-syarat Chi square tidak dipenuhi maka dilakukan uji alternatif yaitu Fischer exact test. Perbedaan dianggap bermakna jika p < 0,05.59 4.10
Etika penelitian Ethical clearance diajukan kepada Komisi Etik Penelitian Kesehatan
(KEPK) Fakultas Kedokteran UNDIP. 4.11
Jadwal penelitian Jadwal penelitian adalah sebagai berikut :
Kegiatan 1 Penyusunan proposal Ujian Proposal Ethical clearance Penyediaan alat dan bahan Pengambilan sampel Wawancara dan kuesioner Penelitian di Laboratorium Analisa Hasil Pembuatan laporan akhir
2
3
Bulan 4
5
6
7
