VALIDASI METODE ANALISIS BASA PURIN ADENIN DAN HIPOSANTIN PADA EMPING MELINJO DENGAN INSTRUMEN HPLC-UV MUTIARA PRATIWI

VALIDASI METODE ANALISIS BASA PURIN ADENIN DAN HIPOSANTIN PADA EMPING MELINJO DENGAN INSTRUMEN HPLC-UV

MUTIARA PRATIWI

DEPARTEMEN ILMU DAN TEKNOLOGI PANGAN FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2014

PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI SERTA PELIMPAHAN HAK CIPTA* Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi berjudul Validasi Metode Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Emping Melinjo dengan Instrumen HPLC-UV adalah benar karya saya dengan arahan dari komisi pembimbing dan belum diajukan dalam bentuk apa pun kepada perguruan tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini. Dengan ini saya melimpahkan hak cipta dari karya tulis saya kepada Institut Pertanian Bogor. Bogor, Juli 2014 Mutiara Pratiwi NIM F24100043

ABSTRAK MUTIARA PRATIWI. Validasi Metode Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Emping Melinjo dengan Instrumen HPLC-UV. Dibimbing oleh HANIFAH NURYANI LIOE. Emping melinjo yang umum dikonsumsi oleh orang Indonesia dianggap sebagai salah satu penyebab penyakit asam urat karena senyawa purin yang dikandungnya. Di sisi lain, metode analisis basa purin masih belum banyak dikembangkan oleh laboratorium di Indonesia. Penelitian ini bertujuan untuk melakukan validasi metode analisis basa purin pada emping melinjo dengan menggunakan instrumen HPLC-UV. Jenis basa purin yang dipilih yaitu adenin dan hiposantin karena keduanya diketahui memiliki efek yang lebih besar terhadap akumulasi asam urat dalam tubuh dibandingkan jenis basa purin lainnya yaitu guanin dan santin. Selain itu, guanin dan santin tidak dapat larut dalam fase gerak yang digunakan, sehingga tidak dapat dianalisis secara simultan dengan adenin dan hiposantin. Hasil validasi menunjukkan instrumen memiliki linearitas yang baik pada rentang konsentrasi 7.81–125.00 µg/mL dengan nilai R2 lebih besar dari 0.999 baik untuk analisis adenin maupun hiposantin. Limit deteksi (LOD) dan limit kuantifikasi (LOQ) instrumen pada analisis adenin masingmasing sebesar 0.72 dan 2.39 µg/mL, sedangkan pada analisis hiposantin sebesar 0.69 dan 2.30 µg/mL. Adenin dan hiposantin terdeteksi pada HPLC-UV dengan kolom RP-C18 masing-masing pada menit ke- 5.9-6.8 dan ke- 4.8–5.5 (presisi waktu retensi keduanya <2.0 %). Metode memiliki linearitas yang baik pada rentang konsentrasi 50–800 µg/g sampel dengan nilai R2 lebih besar dari 0.990 baik untuk adenin maupun hiposantin. Limit deteksi metode untuk analisis adenin dan hiposantin berturut-turut sebesar 19.44 dan 14.42 µg/g. Pada analisis adenin, akurasi metode dengan uji rekoveri pada konsentrasi spike 100, 500, dan 1000 µg/g diperoleh hasil rekoveri masing-masing sebesar 79.33%, 89.39%, dan 90.37% dengan presisi metode masing-masing sebesar 5.19%, 4.50%, dan 3.46%. Sementara pada analisis hiposantin diperoleh hasil rekoveri masing-masing sebesar 66.75%, 92.29%, dan 100.15% dengan presisi metode masing-masing sebesar 2.98%, 3.15%, dan 2.22%. Dalam parameter reprodusibilitas intralab, metode belum memenuhi persyaratan dengan nilai reprodusibilitas intralab untuk analisis adenin dan hiposantin masing-masing sebesar 34.52% dan 39.89%. Berdasarkan hasil yang diperoleh, metode analisis basa purin pada sampel emping melinjo telah tervalidasi dan memberi hasil yang akurat pada konsentrasi lebih dari 100 µg/g. Kata kunci: validasi, metode analisis, purin, emping melinjo, HPLC-UV

ABSTRACT MUTIARA PRATIWI. Validation of Analytical Method for Adenine and Hypoxanthine Purine Bases on Melinjo Chips by Using HPLC-UV. Supervised by HANIFAH NURYANI LIOE. Melinjo chips, which is commonly consumed by Indonesian people, is considered as one of the causes which can trigger gout disease in respect with its purine content. However, method for testing purine is still rarely developed by laboratories in Indonesia. The objective of this research was to conduct validation of purine bases analytical method on melinjo chips by using HPLC-UV. Adenine and hypoxanthine were chosen to be analysed due to their characteristics which cause more effect on uric acid accumulation in the body rather than the other purin bases, which are guanine and xanthin. Besides, guanine and xanthin are insoluble in the mobile phase used in this study, so that they can not be simultaneously analysed with adenine and hypoxanthine. The results showed a good linearity of instrument in the concentration range of 7.81–125.00 µg/mL with coefficient of determination (R2) more than 0.999 for both adenine and hypoxanthine. Detection limit (LOD) and quantification limit (LOQ) of the instrument was found to be 0.72 and 2.39 µg/mL for analysis of adenine, while for analysis of hypoxanthine was 0.69 and 2.30 µg/mL respectively. Adenine and hypoxanthine were detected by HPLC-UV equipped with RP-C18 column at retention time of 5.9–6.8 and 4.8–5.5 min respectively (precision of retention time is less than 2.0 %). Method showed a good linearity at a concentration range of 50–800 µg/g sample with R2 more than 0.990 for both adenine and hypoxanthine analysis. Method detection limit (MDL) of adenine and hypoxanthine analysis was 19.44 and 14.42 µg/g respectively. Accuracy of the method was determined by a recovery test at spike concentrations of 100, 500, and 1000 µg/g. In analysis of adenine the recovery results were respectively 79.33%, 89.39%, and 90.37% with precision of method were respectively 5.19%, 4.50%, and 3.46%. While in analysis of hypoxanthine the recovery results were respectively 66.75%, 92.29%, and 100.15% with precision of method were respectively 2.98%, 3.15%, and 2.22%. Method however didn’t show a good result in the parameter of within lab reproducibility (WLR), which exhibited the WLR values 34.52% and 39.89% for analysis of adenine and hypoxanthine respectively. Based on these results, purine bases analytical method on melinjo chips has been validated and was found to be accurate at concentration more than 100 µg/g. Keywords: validation, analytical method, purine, melinjo chips, HPLC-UV

VALIDASI METODE ANALISIS BASA PURIN ADENIN DAN HIPOSANTIN PADA EMPING MELINJO DENGAN INSTRUMEN HPLC-UV

MUTIARA PRATIWI

Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Teknologi Pertanian pada Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan

DEPARTEMEN ILMU DAN TEKNOLOGI PANGAN FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2014

vii

Judul Skripsi: Validasi Metode Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Emping Melinjo dengan Instrumen HPLC-UV Nama : Mutiara Pratiwi NIM : F24100043

Disetujui oleh

Dr. Ir. Hanifah Nuryani Lioe, M.Si Pembimbing

Diketahui oleh

Dr. Ir. Feri Kusnandar, M.Sc Ketua Departemen

Tanggal Lulus:

ix

PRAKATA Puji dan syukur penulis panjatkan kepada Allah subhanahu wa ta’ala, karena atas ridho dan karunia-Nya skripsi ini berhasil diselesaikan dengan baik. Penelitian yang dilaksanakan sejak Januari 2014 ini berjudul Validasi Metode Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Emping Melinjo dengan Instrumen HPLC-UV. Terima kasih penulis ucapkan kepada Ibu Dr. Ir. Hanifah Nuryani Lioe, M.Si selaku pembimbing yang selalu meluangkan waktunya untuk membimbing penulis dengan penuh kesabaran serta telah memberi banyak masukan yang berharga selama studi, penyelesaian penelitian hingga penyusunan skripsi. Terima kasih kepada Ibu Dr. Ir. Didah Nur Faridah, M.Si dan Ir. Sutrisno Koswara, M.Si atas kesediaannya menjadi penguji dalam ujian akhir penulis. Di samping itu, penghargaan penulis sampaikan kepada Mbak Ririn Anggraeni selaku teknisi Laboratorium Jasa Analisis Departemen Ilmu dan Teknologi Pangan yang memberi banyak bantuan dan saran yang baik selama pelaksanaan penelitian serta Annisa Defriana atas kerja sama dan bantuannya selama penelitian. Ungkapan terima kasih juga penulis sampaikan kepada Ibunda, Ayahanda, dan Adikku tercinta atas segala dukungan, doa, dan kasih sayang yang tak henti. Tak lupa juga ungkapan terima kasih penulis sampaikan kepada Rio Damanik atas doa dan dukungan yang tak henti diberikan, juga teruntuk sahabatku Muhana Nurul dan Meira Mawati atas nasihat dan dukungannya, teman-teman terbaikku Ni KD Willi, Cony Arisya, M. Wildan atas bantuan, dukungan, dan kerja samanya selama studi, serta segenap teman-teman ITP 47 tercinta yang tidak bisa disebutkan satu per satu. Semoga skripsi ini bermanfaat.

Bogor, Juli 2014 Mutiara Pratiwi

11

DAFTAR ISI DAFTAR ISI DAFTAR TABEL DAFTAR GAMBAR DAFTAR LAMPIRAN PENDAHULUAN Latar Belakang Tujuan dan Manfaat Penelitian METODOLOGI PENELITIAN Bahan dan Alat Metode Penelitian HASIL DAN PEMBAHASAN Uji Pendahuluan untuk Penentuan Waktu Retensi dan Resolusi Pemisahan Uji Unjuk Kerja Instrumen Pengembangan Prosedur Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Sampel Emping Melinjo Validasi Metode Spesifisitas Metode Linearitas Metode Akurasi dan Presisi Metode dari Uji Rekoveri Limit Deteksi Metode Reprodusibilitas intralab SIMPULAN DAN SARAN Simpulan Saran DAFTAR PUSTAKA LAMPIRAN RIWAYAT HIDUP

v vi vi vii 1 1 2 2 2 3 8 8 9 14 16 16 17 21 23 24 25 25 26 26 28 42

12

DAFTAR TABEL 1 Kondisi operasi analisis basa purin adenin dan hiposantin pada sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 6 2 Keberterimaan hasil uji rekoveri menurut AOAC (2002) 7 3 Hasil uji linearitas instrumen HPLC-UV pada analisis adenin 10 4 Hasil uji linearitas instrumen HPLC-UV pada analisis hiposantin 10 5 Hasil uji unjuk kerja instrumen HPLC-UV pada analisis adenin dan hiposantin 14 6 Hasil orientasi prosedur analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl untuk hidrolisis dalam tahap persiapan sampel sebelum analisis dengan HPLC-UV 15 7 Hasil orientasi prosedur analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl untuk hidrolisis dalam tahap persiapan sampel sebelum analisis dengan HPLC-UV 16 8 Hasil uji linearitas metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 18 9 Hasil uji linearitas metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 18 10 Hasil uji rekoveri metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 21 11 Hasil uji rekoveri metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 21 12 Presisi metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 22 13 Presisi metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 22 14 Hasil uji reprodusibilitas intralab metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 24 15 Hasil uji intralab reprodusibilitas metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV 24

DAFTAR GAMBAR 1 Kromatogram standar adenin (a), standar hiposantin (b), campuran standar adenin dan hiposantin (c) dalam pelarut asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) pada konsentrasi 62.50 µg/mL. 9 2 Kurva linearitas instrumen pada analisis adenin dan hiposantin pada konsentrasi 1.95, 3.91, 7.81, 15.62, 31.25, 62.50, 125.00, dan 250.00 µg/mL dengan HPLC-UV menggunakan kolom C18 dan fase gerak yang terdiri atas asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) 11 3 Kromatogram standar campuran adenin dan hiposantin dalam pelarut asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) pada uji linearitas instrumen

13

4

5

6

7

yang dianalisis dengan instrumen HPLC-UV pada konsentrasi 7.81 (a), 15.62 (b), 31.25 (c), 62.50 (d), dan 125.00(e) µg/mL 12 Kromatogram standar campuran adenin dan hiposantin (a), sampel unspiked (b), dan sampel spiked dengan konsentrasi spike 400 µg/g sampel 17 Kurva linearitas metode analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV menggunakan kolom C18 dan fase gerak yang terdiri atas asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) 19 Kromatogram senyawa adenin dan hiposantin pada uji linearitas metode analisis menggunakan HPLC-UV pada konsentrasi spike 50 (a), 100 (b), 200 (c), 400 (d), dan 800 (e) µg/g 20 Kurva hubungan konsentrasi (µg/g) dan standar deviasi pada penentuan limit deteksi metode analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV 23

DAFTAR LAMPIRAN 1 2 3 4 5 6 7 8

9

Hasil uji linearitas instrumen pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV 28 Hasil uji presisi luas area dan waktu retensi pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV 29 Hasil uji LOD dan LOQ instrumen pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV 30 Hasil orientasi prosedur analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl 31 Hasil uji linearitas metode analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 32 Hasil uji akurasi dan presisi dari uji rekoveri pada analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 33 Hasil uji intralab reprodusibilitas pada analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 37 Hasil uji one-way ANOVA dan uji lanjut Duncan pada hasil analisis reprodusibilitas intralab pada analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 38 Hasil uji one-way ANOVA dan uji lanjut Duncan pada hasil analisis reprodusibilitas intralab pada analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV 40

1

PENDAHULUAN Latar Belakang Purin merupakan basa nitrogen dalam DNA dan RNA yang memiliki struktur cincin heterosiklik (Ellington 2007). Senyawa golongan purin terdiri atas adenin dan guanin. Sementara hiposantin dan santin merupakan senyawa alami turunan purin yang jarang ditemukan sebagai basa dalam DNA dan RNA, tetapi sering bertindak sebagai senyawa antara yang penting dalam proses pembentukan dan pemecahan nukleotida (Garret 2005). Mengingat purin dapat disintesis secara de novo dan dapat digunakan kembali oleh tubuh, kebutuhan purin dari makanan yang dikonsumsi sangatlah sedikit. Purin dari makanan yang diserap tubuh tetapi tidak dibutuhkan akan dikatabolisme dengan produk akhir asam urat (Angstadt 1997). Purin diketahui terkandung dalam berbagai tanaman seperti kacang polong, kacang tanah, bayam, brokoli, oat, dan jamur (Ellington 2007). Dalam penelitian Kaneko et al. (2008), kandungan purin dalam tanaman seperti brokoli, bayam, lobak putih, tauge, bawang putih, jahe, dan berbagai tanaman lainnya berada pada kisaran 22.5-1717.9 µg/g. Gout atau yang juga dikenal dengan penyakit asam urat merupakan kondisi penumpukan kristal asam urat pada persendian. Penumpukan tersebut terjadi karena produksi asam urat berlebih atau kurang optimalnya ekskresi asam urat sebagai produk katabolisme purin. Sumber utama purin dalam tubuh berasal dari makanan yang dikonsumsi (Ellington 2007). Menurut penelitian Clifford (1976) dalam Ellington (2007), adenin dan hiposantin menunjukkan dampak yang lebih besar terhadap kadar asam urat, dibandingkan dengan guanin dan santin. Metode pengujian basa purin dalam makanan belum banyak dikembangkan oleh laboratorium di Indonesia. Mengingat emping melinjo umum dikonsumsi oleh masyarakat Indonesia dan bahkan sudah menjadi komoditas eksport, pengujian kandungan gizi emping melinjo perlu dilakukan, begitu pula kandungan senyawa purin yang dapat menjadi pertimbangan bagi konsumen emping melinjo (Munajad 2009). Dengan demikian, perlu adanya metode analisis yang tervalidasi untuk melakukan pengujian kandungan purin dalam emping melinjo. Purin diketahui dapat dianalisis dengan instrumen HPLC-UV hingga level konsentrasi ppm (mg/kg) (Biearau 2011). Aromatisitas struktur cincin yang dimiliki purin menyebabkan purin dapat menyerap dengan kuat cahaya pada panjang gelombang ultraviolet (UV). Hal ini dapat dimanfaatkan dalam analisis kuantitatif maupun kualitatif pada purin (Garret 2005). HPLC fase terbalik (reverse phase) telah terbukti sangat efisien untuk pengujian asam nukleat (Titkova et al. 1983), dan telah umum digunakan untuk memisahkan dan mengkuantifikasi basa purin (Ellington 2007). Metode HPLC fase terbalik membutuhkan proses hidrolisis asam nukleat menjadi nukleotida dan basa purin bebas dengan menggunakan asam kuat (Ellington 2007). Brule et al. (1988) dalam Ellington (2007) mengembangkan metode persiapan sampel untuk analisis basa purin dengan HPLC fase terbalik dengan menggunakan hidrolisis asam. Dalam penelitian Brule et al. (1998), sampel dihidrolisis dengan menggunakan asam perklorat 11.6 N selama 1 jam pada suhu 100 oC, dilakukan penyesuaian pH dengan menggunakan NH4OH

2 hingga diperoleh pH 4.0, ditera dengan akuades dalam labu ukur 50 mL, disaring, dan akhirnya dianalisis dengan HPLC. Basa purin terpisah secara isokratik dengan HPLC fase terbalik menggunakan kolom C18 dan fase gerak campuran buffer kalium fosfat 0.1 M dan asam fosfat pada pH 4.0. Pada penelitian Sotelo (2002) mengenai penentuan basa purin dalam gonad bulu babi (Paracentortus lividus), sampel dihidrolisis dengan campuran asam trifluoroasetat/asam format (1/1, v/v) pada suhu 90 oC selama 15 menit, ditera dalam labu 250 mL, dan dikeringkan dengan rotary vacuum evaporator pada suhu 75 oC. Basa purin dilarutkan dengan 10 mL buffer KH2PO4 0.3 M (pH 4.0) dan disaring dengan menggunakan membran filter sebelum dianalisis dengan HPLC fase terbalik yang dilengkapi detektor UV-VIS pada panjang gelombang 255 nm. Analisis dilakukan secara gradien menggunakan fase gerak larutan buffer KH2PO4 0.3 M dengan pH 4.0. Pada penelitian ini dilakukan validasi metode analisis basa purin dalam sampel emping melinjo dengan instrumen HPLC-UV. Basa purin yang dipilih ialah adenin dan hiposantin yang diketahui memiliki dampak yang lebih besar terhadap peningkatan asam urat dalam tubuh dibandingkan guanin dan santin. Adenin dan hiposantin dianalisis dengan HPLC fase terbalik dengan kondisi operasi mengacu pada metode analisis adenosin dalam royal jelly pada penelitian Xue et al. (2009). Metode persiapan sampel diadaptasi dari prosedur analisis kualitatif pada basa purin santin (AOAC 2012) dengan beberapa modifikasi. Sampel emping melinjo dihidrolisis dengan HCl 6 N pada suhu 100 oC selama 1 jam, dinetralkan dengan NH4OH 25%, dan ditera dengan aquabidest dalam labu ukur 10 mL. Akhirnya, sampel dilewatkan melalui kolom SPE (Solid Phase Extraction) berisi silika, dan diinjeksikan ke HPLC yang dilengkapi detektor UV. Secara umum penelitian ini terdiri atas empat bagian, yaitu uji pendahuluan untuk penentuan waktu retensi serta resolusi pemisahan, uji unjuk kerja instrumen HPLV-UV, pengembangan prosedur analisis basa purin, dan validasi metode analisis basa purin pada sampel emping melinjo. Validasi metode analisis yang dilakukan meliputi uji spesifisitas metode, linearitas metode, akurasi dan presisi metode dari uji rekoveri, limit deteksi metode, dan reprodusibilitas intralab. Tujuan dan Manfaat Penelitian Tujuan umum dari penelitian ini adalah melakukan validasi metode analisis basa purin dengan instrumen High Performance Liquid Chromatography (HPLC) yang dilengkapi detektor UV. Manfaat penelitian ini adalah dihasilkannya metode analisis yang telah tervalidasi pada penentuan kandungan purin pada emping melinjo dengan menggunakan HPLC-UV.

METODOLOGI PENELITIAN Bahan dan Alat Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah sampel emping melinjo (Sriti, Sriti Food, Jakarta, Indonesia). Bahan-bahan kimia yang digunakan untuk analisis meliputi standar adenin dan hiposantin (98-99%,

3 Sigma, Sigma-Aldrich, USA), asam fosfat 0.4% (Merck, Jerman), metanol (p.a., Merck, Jerman), etanol 80% (p.a., Merck, Jerman), aquabidest, NH4OH 25% (Merck, Jerman), HCl 37% (Merck, Jerman), dan silika 60 (Merck, Jerman). Alat-alat yang dibutuhkan meliputi neraca analitik, food processor, hot plate, magnetic stirrer, penyaring vakum, gelas ukur, sudip, gelas piala, labu ukur, pipet volumetrik, pipet Mohr, vortex, pipet tetes, membran filter millipore 0.45 µm, kolom SPE (Solid Phase Extraction), botol semprot, pengaduk kaca. Instrumen analisis yang digunakan adalah pH-meter, High Performance Liquid Chromatography (HPLC) model LC 6A (Shimadzu, Shimadzu Corp., Kyoto, Jepang) yang dilengkapi detektor UV model SPD-10AV (Shimadzu, Shimadzu Corp., Kyoto, Jepang), perekam data semi otomatis chromatopac (Shimadzu, Shimadzu Corp., Kyoto, Jepang), dan kolom C18 (Zorbax, Agilent Technologies, USA). Metode Penelitian Penelitian ini terdiri atas empat tahapan, yaitu uji pendahuluan untuk penentuan waktu retensi serta resolusi pemisahan, uji unjuk kerja instrumen HPLC-UV untuk analisis basa purin, pengembangan prosedur analisis basa purin pada sampel emping melinjo, dan validasi metode analisis basa purin pada sampel emping melinjo. Basa purin yang dianalisis pada penelitian ini hanya adenin dan hiposantin. Hal tersebut dikarenakan guanin dan santin tidak dapat larut pada fase gerak yang digunakan yang memiliki pH 4. Hasil percobaan yang dilakukan menunjukkan bahwa guanin dan santin baru dapat larut pada pH alkali, yaitu pada pH antara 12-13. Kolom Zorbax C18 yang digunakan untuk pemisahan juga tidak sesuai karena tidak tahan terhadap pH lebih besar dari 8. Dengan demikian, pada penelitian ini, analisis hanya difokuskan pada dua jenis basa purin, yaitu adenin dan hiposantin yang juga diketahui lebih berdampak terhadap akumulasi asam urat dalam tubuh dibandingkan kedua jenis basa purin lainnya. Uji Pendahuluan untuk Penentuan Waktu Retensi dan Resolusi Pemisahan Uji pendahuluan dilakukan dengan menginjeksikan secara terpisah standar adenin dan hiposantin yang telah dilarutkan dalam pelarut asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) pada beberapa konsentrasi untuk mengetahui profil kromatogram serta waktu retensi masing-masing senyawa. Apabila adenin dan hiposantin muncul pada waktu retensi yang berbeda, keduanya diinjeksikan kembali dalam bentuk campurannya untuk mengetahui resolusi peak kedua senyawa jika dianalisis secara bersamaan. Resolusi dapat ditentukan dengan menggunakan persamaan Rs = 2 (tR-B – tR-A)/ wb-A + wb-B dengan tR-A dan tR-B merupakan waktu retensi kedua peak (senyawa A merupakan senyawa yang terelusi lebih dahulu), sementara wb-A dan wb-B merupakan lebar dari baseline (bagian dasar) kedua peak. Resolusi menunjukkan kemampuan kolom untuk memisahkan kedua peak dan dinyatakan baik apabila memiliki nilai lebih besar dari 1.50 (Zhang 2007).

4 Uji Unjuk Kerja Instrumen HPLC-UV untuk Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin Linearitas Instrumen Linearitas diuji dengan cara menginjeksikan larutan standar campuran adenin dan hiposantin pada konsentrasi 1.95, 3.91, 7.81, 15.62, 31.25, 62.50, 125.00, dan 250.00 µg/mL, sehingga dapat diketahui luas area pada berbagai konsentrasi. Pengujian pada larutan standar campuran dengan delapan konsentrasi berbeda tersebut dilakukan sebanyak tiga kali ulangan dengan pembuatan tiga seri larutan standar campuran yang berbeda. Hasil pembacaan HPLC selanjutnya digunakan untuk pembuatan kurva standar hubungan antara konsentrasi (µg/mL) dengan luas area peak, lalu dihitung koefisien determinasinya (R2). Linearitas dianggap baik apabila memiliki R2 lebih besar dari 0.990 (AOAC 2012). Presisi dari Luas Area dan Waktu Retensi Penentuan presisi dari luas area dan waktu retensi dilakukan dengan cara menginjeksikan larutan standar campuran adenin dan hiposantin pada konsentrasi yang sama sebanyak tujuh kali ulangan, dalam hal ini digunakan konsentrasi 7.81 µg/mL. Konsentrasi tersebut dipilih karena merupakan konsentrasi yang cukup rendah namun masih memberikan hasil rekoveri yang cukup tinggi (lebih besar dari 80%) berdasarkan uji coba yang dilakukan. Hasil pengukuran berupa luas area dan waktu retensi ketujuh ulangan dihitung nilai rata-rata, standar deviasi (SD), dan relative standard deviation (RSD). Keberterimaan RSD dalam uji ini ialah lebih kecil dari 2.0% (JECFA 2006). Limit Deteksi dan Limit Kuantifikasi Instrumen Limit deteksi instrumen (LOD instrumen) ditentukan dengan cara menginjeksikan larutan standar campuran pada konsentrasi rendah sebanyak tujuh kali ulangan, dalam hal ini digunakan konsentrasi 7.81 µg/mL. Dasar pemilihan konsentrasi tersebut sama dengan uji presisi dari luas area dan waktu retensi. Konsentrasi masing-masing ulangan dihitung dengan menggunakan kurva linearitas. Standar deviasi dari konsentrasi yang diperoleh pada ketujuh ulangan tersebut dihitung, kemudian LOD ditentukan sebagai tiga kali nilai standar deviasinya. Limit kuantifikasi ditentukan dengan cara yang sama dengan LOD, namun LOQ ditentukan sebagai sepuluh kali nilai standar deviasinya. Pengembangan Prosedur Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Sampel Emping Melinjo Prosedur persiapan sampel untuk analisis basa purin pada sampel emping melinjo menggunakan metode hidrolisis asam yang diadaptasi dari AOAC 2012, Chapter 18, AOAC Official Method 960.56 Microchemical Tests for Xanthine Alkaloids, halaman 53, dengan beberapa modifikasi. Modifikasi dilakukan pada volume HCl yang digunakan untuk menghidrolisis sampel serta pada lamanya

5 proses hidrolisis. Sementara kondisi operasi HPLC-UV untuk analisis basa purin pada sampel emping melinjo mengikuti metode analisis adenosin pada royal jelly (Xue et al. 2009) dengan beberapa modifikasi. Modifikasi dilakukan dalam hal metode elusi dengan fase gerak dan laju aliran fase gerak. Pada tahap persiapan, sampel emping melinjo yang sudah dihaluskan dengan food processor dihidrolisis dengan HCl 6 N pada volume HCl yang berbeda-beda, yaitu 0.5, 1.0, dan 2.0 mL pada suhu 100 oC selama 1 jam, dinetralkan dengan NH4OH 25%, dan ditera dengan aquabidest dalam labu ukur 10 mL. Dilakukan masing-masing dua kali ulangan untuk setiap volume HCl yang diujikan. Selanjutnya sampel dilewatkan melalui kolom SPE (Solid Phase Extraction) berisi silika (kurang lebih 1 gram) dan diinjeksikan ke HPLC yang dilengkapi detektor UV. Sampel yang akan dianalisis dengan HPLC-UV terdiri atas sampel unspiked (tanpa penambahan spike) dan sampel spiked (dengan penambahan spike). Spike yang ditambahkan yaitu standar campuran adenin dan hiposantin dengan konsentrasi 400 µg/g. Dengan demikian, dapat diketahui rekoveri yang diperoleh dengan metode analisis menggunakan hidrolisis asam serta dapat ditentukan volume HCl yang dapat memberikan hasil analisis dengan rekoveri yang terbaik. Prosedur Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin dengan HPLC-UV Persiapan Sampel Pada tahap persiapan sampel, sejumlah 0.5 gram sampel emping melinjo yang sudah dihaluskan dengan food processor ditimbang dengan menggunakan neraca analitik. Kemudian, sampel dihidrolisis dengan HCl 6 N pada suhu 100 oC selama 1 jam. Volume HCl 6 N yang digunakan untuk menghidrolisis yaitu sejumlah 0.5 mL (volume terpilih hasil pengembangan prosedur analisis). Sebelum dihidrolisis, sampel dicampur merata agar HCl membasahi seluruh bagian sampel. Sampel yang telah dihidrolisis kemudian dinetralkan dengan NH4OH 25% dan divortex. Larutan dipindahkan ke dalam labu ukur 10 mL dan ditepatkan hingga tanda tera dengan aquabidest. Larutan analitik tersebut dilewatkan melalui kolom SPE (Solid Phase Extraction) yang berisi silika sejumlah kurang lebih 1 gram sebelum diinjeksikan ke HPLC. Pembuatan Larutan Standar Dibuat larutan stok standar adenin dan hiposantin dengan konsentrasi 500 µg/mL dengan cara melarutkan masing-masing standar sejumlah 0.025 g ke dalam 50 mL fase gerak. Fase gerak terdiri atas campuran asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%). Standar adenin dan hiposantin dicampurkan hingga diperoleh konsentrasi standar campuran dengan konsentrasi 250 µg/mL. Penentuan Kandungan Basa Purin Adenin dan Hiposantin dengan HPLC-UV Analisis basa purin adenin dan hiposantin menggunakan HPLC dengan detektor UV dilakukan secara isokratik mengikuti kondisi pada Tabel 1. Kondisi pengoperasian HPLC untuk analisis basa purin dalam emping melinjo ini

6 mengacu pada metode analisis adenosin dalam royal jelly pada penelitian Xue et al. (2009) dengan modifikasi pada metode elusi dengan fase gerak serta laju aliran fase gerak. Tabel 1. Kondisi operasi analisis basa purin adenin dan hiposantin pada sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Kriteria Kolom

Suhu running Fase gerak

Laju aliran fase gerak Deteksi Sampel loop

Kondisi Zorbax C18 (ODS), ukuran partikel pendukung 5 µm, panjang 250 mm, diameter dalam 4.6 mm Suhu ruang (30 oC) Asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a (10%) dengan penyesuaian pH menggunakan NH4OH 1 M hingga pH 4.0 0.5 mL / menit UV 257 nm 20 µL

Perhitungan Kadar purin/g sampel =

Keterangan: FP = Faktor Pengenceran

Validasi Metode Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin Analisis kandungan basa purin adenin dan hiposantin pada sampel dibandingkan dengan hasil injeksi standar basa purin adenin dan hiposantin. Apabila peak masing-masing basa purin dalam sampel dapat terdeteksi, maka prosedur analisis basa purin yang dikembangkan tersebut dapat digunakan untuk tahap validasi metode. Validasi metode analisis basa purin adenin dan hiposantin terdiri atas: uji spesifisitas metode, linearitas metode, akurasi dan presisi metode dari uji rekoveri limit deteksi metode, dan reprodusibilitas intralab. Validasi metode dilakukan menurut kriteria di bawah ini dengan mengikuti metode EURACHEM (1998). Uji Spesifisitas Metode Uji spesifisitas dilakukan dengan menginjeksikan standar campuran adenin dan hiposantin, sampel tanpa penambahan standar, dan sampel yang telah ditambahkan standar campuran adenin dan hiposantin pada beberapa konsentrasi sebanyak satu kali injeksi untuk setiap konsentrasi. Pada penelitian ini digunakan konsentrasi standar campuran sebesar 400 µg/g sampel. Dengan demikian paling

7 tidak akan diperoleh tiga kromatogram yang dapat diamati peak-peaknya. Jika kromatogram menunjukkan peak-peak yang terpisah dengan baik dan peak tersebut tidak diganggu oleh peak senyawa cemaran dalam sampel, maka spesifisitas metode analisis dinyatakan baik. Linearitas Metode Pengujian dilakukan dengan menggunakan sampel yang di-spike dengan standar adenin dan hiposantin pada konsentrasi 50, 100, 200, 400, dan 800 µg/g, kemudian diberikan perlakuan sesuai prosedur analisis untuk sampel, dan diinjeksikan ke dalam HPLC. Pengujian linearitas metode dilakukan sebanyak tiga ulangan dengan pembuatan tiga seri sampel yang di-spike pada konsentrasi yang ditetapkan. Setelah itu, dibuat kurva linearitas metode yang merupakan hubungan konsentrasi purin (µg/g) dengan luas area peak, sehingga diperoleh persamaan linear y = ax + b. Persyaratan linearitas untuk metode analisis adalah mempunyai R2 lebih besar dari 0.990 atau r lebih besar dari 0.995 (AOAC 2012). Akurasi dan Presisi Metode dari Uji Rekoveri Akurasi Pengujian dilakukan dengan menggunakan sampel yang di-spike dengan standar pada tiga konsentrasi yang berbeda. Konsentrasi spike yang digunakan adalah konsentrasi rendah, sedang, dan tinggi. Pembuatan sampel untuk uji ini dapat dilihat pada tahap pendahuluan, hanya saja pada sampel sengaja ditambahkan standar pada konsentrasi 100, 500, dan 1000 µg/g. Pemilihan konsentrasi tersebut ditentukan berdasarkan pertimbangan nilai 10 kali LOQ, yaitu sebesar 400 µg/g. Dengan demikian dipilih konsentrasi yang lebih kecil (100 µg/g) dan lebih besar (500 dan 1000 µg/g) dari nilai 10 kali LOQ untuk mengetahui kisaran konsentrasi yang memberikan hasil yang akurat. Pengujian dilakukan sebanyak tujuh kali ulangan pada masing-masing konsentrasi spike. Hasil analisis pada masing-masing konsentrasi spike kemudian dihitung persen rekoverinya. Keberterimaan hasil uji rekoveri disajikan pada Tabel 2. Rekoveri dihitung pada masing-masing ulangan dengan menggunakan rumus:

Tabel 2. Keberterimaan hasil uji rekoveri menurut AOAC (2002) Konsentrasi 100% 10% 1% 0.1% 0.01% 10 µg/g 1 µg/g 10 µg/kg

Keberterimaan rekoveri (%) 98 – 101 95 – 102 92 – 105 90 – 108 85 – 110 80 – 115 75 – 120 70 – 125

8 Presisi Data yang diperoleh pada uji rekoveri untuk akurasi pada tiga konsentrasi berbeda tersebut dapat digunakan untuk menentukan presisi metode analisis untuk pengujian purin pada konsentrasi rendah, sedang, dan tinggi. Nilai konsentrasi hasil uji rekoveri yang didapat pada masing-masing ulangan dihitung nilai RSD analisisnya. Presisi ditentukan dengan membandingkan nilai RSD analisis (RSDa) dengan RSD Horwitz (RSDh). Presisi yang baik memiliki nilai RSDa yang lebih kecil dari dari RSDh. Nilai RSDh dapat dihitung dengan menggunakan rumus: RSDh = [2 exp (1-0.5 log C)] Keterangan: C = Nilai rata-rata konsentrasi analat (dalam bentuk fraksi)

Limit Deteksi Metode/Method Detection Limit (MDL) Limit deteksi metode ditentukan dari kurva hubungan antara standar deviasi dengan konsentrasi adenin dan hiposantin dari hasil uji rekoveri pada konsentrasi 100, 500, dan 1000 µg/g. Melalui persamaan linear pada kurva, nilai standar deviasi ditentukan ketika konsentrasinya sama dengan nol (SD0). Nilai MDL yaitu tiga kali nilai SD0 yang diperoleh. Penentuan nilai MDL tersebut mengacu pada EURACHEM (1998). Reprodusibilitas Intralab Pengujian reprodusibilitas intralab dilakukan dengan menggunakan operator dan laboratorium yang sama, akan tetapi dilakukan pada minggu yang berbeda. Persiapan larutan yang akan diinjeksikan pada uji reprodusibilitas intralab mengikuti prosedur baku yang terdapat pada tahap pendahuluan. Hasil analisis kemudian dihitung nilai rata-rata dan RSD analisisnya. Nilai RSD yang diperoleh kemudian dibandingkan dengan nilai RSD yang dihitung menggunakan persamaan Horwitz. Hasil uji reprodusibilitas intralab yang baik memiliki nilai RSD analisis yang lebih kecil dibanding RSD Horwitz. Selain itu, hasil yang diperoleh diolah dengan one-way ANOVA menggunakan program IBM Statistic SPSS 20 untuk menguji signifikansi perbedaan hasil analisis antarminggu yang berbeda. Data hasil analisis kemudian dilakukan uji lanjut Duncan pada taraf uji 5%.

HASIL DAN PEMBAHASAN Uji Pendahuluan untuk Penentuan Waktu Retensi dan Resolusi Pemisahan Uji pendahuluan dilakukan dengan menginjeksikan masing-masing standar adenin dan hiposantin pada beberapa konsentrasi untuk melihat profil kromatogram serta waktu retensi masing-masing senyawa. Kromatogram yang diperoleh menunjukkan adenin muncul pada menit ke- 5.9-6.8, sementara hiposantin muncul pada menit ke- 4.8-5.5. Waktu retensi adenin dan hiposantin yang berbeda menyebabkan peak keduanya tidak saling tumpang tindih, yang

9 artinya kedua senyawa dapat dianalisis secara simultan. Selanjutnya, adenin dan hiposantin dianalisis secara simultan untuk menentukan resolusi pemisahan kedua senyawa. (b)

(c)

Absorbansi pada 257 nm

(a)

Waktu retensi (menit) Gambar 1. Kromatogram standar adenin (a), standar hiposantin (b), campuran standar adenin dan hiposantin (c) dalam pelarut asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) pada konsentrasi 62.50 µg/mL. Peak: (1). adenin, (2). hiposantin Pada Gambar 1 disajikan contoh kromatogram standar adenin, standar hiposantin, dan standar campuran adenin dan hiposantin pada salah satu konsentrasi yang digunakan, yaitu 62.50 µg/mL. Hasil analisis campuran standar adenin dan hiposantin pada konsentrasi 62.50 µg/mL tersebut mempunyai resolusi sebesar 4.51. Resolusi menunjukkan kemampuan kolom untuk memisahkan kedua peak dan dinyatakan baik apabila memiliki nilai lebih besar dari 1.50 (Zhang 2007). Dengan demikian, resolusi peak adenin dan hiposantin tersebut dinyatakan baik, sehingga kedua senyawa dapat dianalisis secara simultan. Uji Unjuk Kerja Instrumen Linearitas Instrumen Linearitas instrumen diuji untuk menentukan seberapa linear respon instrumen terhadap konsentrasi analat pada berbagai tingkat konsentrasi. Pengujian linearitas instrumen dilakukan dengan menginjeksikan standar pada delapan tingkat konsentrasi yang telah ditetapkan sebanyak tiga ulangan. Hasil uji

10 linearitas instrumen berupa persamaan regresi linear y = ax + b dari kurva hubungan antara konsentrasi (sumbu x) dan luas area (sumbu y), dengan a adalah slope dan b adalah intercept. Hasil uji linearitas instrumen pada analisis adenin dan hiposantin masing-masing diperlihatkan pada Tabel 3 dan 4. Hasil uji linearitas instrumen pada analisis adenin maupun hiposantin menunjukkan presisi slope yang baik, dengan nilai RSD lebih kecil dari 5%. Sementara itu, nilai intercept yang diperoleh menunjukkan presisi yang kurang baik pada analisis adenin maupun hiposantin dengan nilai RSD lebih besar dari 20%. Tabel 3. Hasil uji linearitas instrumen HPLC-UV pada analisis adenin Ulangan 1 2 3 Rata-rata SD RSD (%)

Slope 65840 66281 66773 66298 467 0.70

Intercept 92344 139408 44532 92095 47438 51.51

R 0.9998 0.9999 0.9999 0.9999 5.77 x 10-5 0.01

R2 0.9997 0.9998 0.9999 0.9998 1.00 x 10-4 0.01

Tabel 4. Hasil uji linearitas instrumen HPLC-UV pada analisis hiposantin Ulangan 1 2 3 Rata-rata SD RSD (%)

Slope 45434 43748 43076 44086 1215 2.76

Intercept 103801 60649 92983 85811 22452 26.16

R 0.9995 0.9998 0.9995 0.9996 1.73 x 10-4 0.02

R2 0.9991 0.9997 0.9990 0.9993 3.79 x 10-4 0.04

Kurva linearitas rata-rata pada analisis adenin dan hiposantin disajikan pada Gambar 2. Persamaan regresi linear untuk adenin yaitu y = 66298x + 92095 dengan nilai R maupun R2 sebesar 0.9999. Sementara untuk hiposantin diperoleh persamaan regresi linear y = 44086x + 85811 dengan nilai R dan R2 masingmasing sebesar 0.9996 dan 0.9993. Menurut AOAC (2012), linearitas dianggap baik apabila nilai R lebih besar dari 0.995 atau R2 lebih besar dari 0.990. Dengan demikian, linearitas instrumen HPLC-UV yang digunakan dapat dikategorikan baik, yang artinya instrumen mampu menghasilkan respon yang linear terhadap konsentrasi analat pada berbagai tingkat konsentrasi.

11

Gambar 2. Kurva linearitas instrumen pada analisis adenin dan hiposantin pada konsentrasi 1.95, 3.91, 7.81, 15.62, 31.25, 62.50, 125.00, dan 250.00 µg/mL dengan HPLC-UV menggunakan kolom C18 dan fase gerak yang terdiri atas asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%). Kurva merupakan rata-rata dari tiga ulangan uji linearitas instrumen Profil kromatogram pada uji linearitas instrumen disajikan pada Gambar 3. Kromatogram merupakan hubungan antara waktu retensi (menit) dan respon detektor dalam bentuk nilai absorbansi. Profil kromatogram tersebut memperlihatkan peak yang bertumbuh (growing) dari konsentrasi yang terendah hingga konsentrasi yang tertinggi. Hal ini menunjukkan bahwa instrumen mampu memberikan respon yang linear terhadap konsentrasi analat pada kisaran konsentrasi yang digunakan. Respon yang linear juga ditunjukkan oleh nilai R yang lebih besar dari 0.995 dan R2 yang lebih besar dari 0.990 pada persamaan regresi linear kurva yang diperoleh pada uji linearitas.

12

Absorbansi pada 257 nm

(e)

(d)

(c)

(a)

(b) )

Waktu retensi (menit) Gambar 3. Kromatogram standar campuran adenin dan hiposantin dalam pelarut asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) pada uji linearitas instrumen yang dianalisis dengan instrumen HPLC-UV pada konsentrasi 7.81 µg/mL (a), 15.62 µg/mL (b), 31.25 µg/mL (c), 62.50 µg/mL (d), dan 125.00 µg/mL (e). Peak: (1). adenin, (2). hiposantin Presisi dari Luas Area dan Waktu Retensi Presisi menunjukkan kedekatan hasil pengukuran atau tingkat penyebaran dari serangkaian pengukuran dalam beberapa ulangan (APVMA 2004). Presisi kromatogram yang ditentukan pada penelitian ini meliputi presisi

13 luas area dan waktu retensi. Penentuan presisi kromatogram dilakukan dengan menginjeksikan sebanyak tujuh kali larutan standar pada konsentrasi yang sama. Pada standar adenin, diperoleh nilai RSD untuk waktu retensi sebesar 0.67% dan RSD untuk luas area sebesar 3.18%. Sementara pada standar hiposantin, diperoleh nilai RSD untuk waktu retensi sebesar 0.96% dan RSD untuk luas area sebesar 2.97%. Keberterimaan nilai RSD uji ini ialah lebih kecil dari 2.0% (JECFA 2006). Hasil yang diperoleh pada uji presisi dari waktu retensi tersebut memenuhi persyaratan yang ditetapkan, sehingga presisi dari waktu retensi yang dihasilkan oleh instrumen HPLC-UV yang digunakan dapat dikategorikan baik. HPLC yang digunakan pada penelitian ini menggunakan system controller semi otomatis yang secara teoretis dapat mempengaruhi waktu retensi yang dihasilkan. Akan tetapi, hasil pengujian menunjukkan bahwa pada penelitian ini hal tersebut tidak mempengaruhi presisi waktu retensi yang dihasilkan dan instrumen tetap menunjukkan unjuk kerja yang baik dalam hal presisi waktu retensi. Sementara itu, presisi luas area baik untuk adenin maupun hiposantin belum memenuhi persyaratan yang ditetapkan tersebut. Presisi luas area yang kurang baik diduga disebabkan oleh penggunaan data recorder dan printer semi otomatis. Hal tersebut dapat terjadi karena luas area peak dapat dipengaruhi oleh feed speed, yaitu kecepatan keluarnya kertas dari printer semi otomatis yang pada akhirnya berpengaruh terhadap kecepatan tercetaknya data yang terekam oleh data recorder pada kertas. Selain hal tersebut, menurut Barwick (1999), presisi luas area sangat dipengaruhi oleh laju aliran fase gerak. Laju aliran fase gerak yang konstan hanya dapat dihasilkan oleh pompa HPLC yang masih dalam keadaan baik, yaitu yang dapat menghasilkan tekanan yang konstan. Dengan demikian, tekanan pompa HPLC yang tidak konstan dapat diduga sebagai penyebab presisi luas area yang kurang baik. Limit Deteksi dan Limit Kuantifikasi Instrumen Limit deteksi instrumen diuji untuk menentukan konsentrasi analat yang dapat dideteksi oleh instrumen, sedangkan limit kuantifikasi instrumen diuji untuk menentukan jumlah analat yang dapat ditentukan secara kuantitatif dengan presisi tertentu pada kondisi analisis (APVMA 2004). Pengujian dilakukan dengan menginjeksikan standar pada konsentrasi rendah dengan tujuh kali ulangan. Limit deteksi instrumen ditentukan sebagai tiga kali nilai standar deviasi hasil pengukuran sebanyak tujuh ulangan tersebut, sedangkan nilai limit kuantifikasi instrumen merupakan sepuluh kali nilai standar deviasinya. Nilai LOD dan LOQ yang diperoleh pada analisis adenin dan hiposantin masing-masing sebesar 0.72 dan 2.39 µg/mL. Sementara itu, nilai LOD dan LOQ pada analisis hiposantin masing-masing sebesar 0.69 dan 2.30 µg/mL. Sebagai perbandingan, dalam penelitian Sotelo (2002) mengenai penentuan kadar basa purin dalam gonad bulu babi (Paracentortus lividus) dengan instrumen HPLC, diperoleh limit deteksi adenin dan hiposantin masing-masing sebesar 0.076 dan 0.060 µg/mL, yang nilainya kurang lebih sepuluh kali lebih rendah dibandingkan limit deteksi yang diperoleh pada penelitian ini. Presisi hasil analisis pada penentuan limit deteksi dan limit kuantifikasi instrumen ditentukan dengan menghitung nilai RSD analisis (RSDa) dan RSD

14 Horwitz (RSDh). Hasil analisis adenin menunjukkan nilai RSDa (3.90%) lebih kecil dari 2/3 RSDh (8.12%). Begitu pula pada analisis hiposantin, nilai RSDa (3.97%) lebih kecil dari 2/3 RSDh (8.19). Nilai RSDa yang lebih kecil dari 2/3 RSDh menunjukkan presisi pengukuran yang baik. Hasil analisis unjuk kerja secara ringkas dapat dilihat pada Tabel 5. Tabel 5. Hasil uji unjuk kerja instrumen HPLC-UV pada analisis adenin dan hiposantin Unjuk Kerja Instrumen HPLC Linearitas (y = ax + b) slope (a) intercept (b) coef. of correlation (R) coef. of determination (R2)

Hasil Adenin

Hiposantin

66298 ± 467 92095 ± 47438 0.9999 0.9999

44086 ± 1215 85811 ± 22452 0.9996 0.9993

Presisi Instrumen RSD luas area (%) RSD waktu retensi (%)

3.18 0.67

2.97 0.96

(LOD)instr. (µg/mL) (LOQ)instr. (µg/mL)

0.72 2.39

0.69 2.30

Resolusi Range Rata-rata

4.51-8.50 5.83

Persyaratan R > 0.995* R2 > 0.990*

< 2.0%**

> 1.50***

*AOAC (2012) **JECFA (2006) ***Zhang (2007)

Pengembangan Prosedur Analisis Basa Purin Adenin dan Hiposantin pada Sampel Emping Melinjo Prosedur analisis basa purin dalam sampel emping melinjo diadaptasi dari AOAC 2012, Chapter 18, AOAC Official Method 960.56 Microchemical Tests for Xanthine Alkaloids, halaman 53, namun dengan beberapa modifikasi. Modifikasi yang dilakukan yaitu dalam hal volume HCl 6 N yang digunakan serta lamanya proses hidrolisis. Pada prosedur uji untuk santin alkaloid tersebut tidak terdapat informasi mengenai volume HCl 6 N yang digunakan serta lamanya proses hidrolisis yang harus dilakukan. Dengan demikian, dilakukan uji coba penggunaan beberapa volume HCl 6 N yang digunakan untuk menghidrolisis sampel, yaitu pada volume 0.5, 1.0, dan 2.0 mL, masing-masing dilakukan sebanyak dua kali ulangan. Proses hidrolisis dilakukan pada suhu 100 o C selama 1 jam. Sampel yang telah dihidrolisis dinetralkan dengan menggunakan NH4OH 25%, ditera dengan aquabidest dalam labu ukur 10 mL, dan disaring dengan kolom SPE (Solid Phase Extraction) berisi silika sejumlah kurang lebih 1 gram. Penyaringan dengan silika menggunakan kolom SPE bertujuan untuk menghilangkan komponen pengotor yang terdapat di dalam

15 sampel. Sifat silika yang polar menyebabkan sejumlah adenin dan hiposantin yang bersifat polar dapat tertahan oleh silika, sehingga menyebabkan rekoveri yang diperoleh lebih rendah dari yang seharusnya. Akan tetapi, rekoveri yang diperoleh dianggap masih dapat diterima, dengan nilai rekoveri lebih besar dari 65%. Harga kolom SPE silika yang lebih terjangkau dibandingkan kolom SPE C18 menjadi pertimbangan pemilihan silika dibandingkan C18. Penggunaan kolom SPE C18 diduga akan memberikan rekoveri yang lebih baik karena sifat C18 yang non-polar. Setelah disaring dengan kolom SPE, akhirnya sampel siap untuk diinjeksikan ke HPLC. Pada pengembangan prosedur analisis ini, sampel yang telah dipreparasi dengan penambahan HCl 6 N pada berbagai volume tersebut diinjeksikan ke HPLC, dimana sampel terdiri atas sampel unspiked (tanpa penambahan spike) dan sampel spiked (dengan penambahan spike). Spike ditambahkan pada konsentrasi 400 µg/g sampel yang merupakan sepuluh kali nilai LOQ instrumen. Dengan demikian, dapat diketahui rekoveri yang diperoleh dengan adanya pengembangan metode analisis menggunakan hidrolisis asam serta dapat ditentukan volume HCl yang memberikan hasil rekoveri yang terbaik. Hasil analisis sampel tanpa penambahan spike dengan menggunakan volume HCl 0.5, 1.0, dan 2.0 mL menunjukkan bahwa emping melinjo rata-rata mengandung adenin pada kisaran konsentrasi 70.37-171.88 µg/g sampel serta hiposantin pada kisaran konsentrasi 48.37-155.58 µg/g sampel. Menurut Munajad (2009), kandungan total basa purin dalam emping melinjo ialah antara 500-1500 µg/g bahan. Rekoveri yang diperoleh pada penggunaan volume HCl 0.5, 1.0, dan 2.0 mL disajikan pada Tabel 6 dan 7. Hasil tersebut menunjukkan bahwa volume HCl sebanyak 0.5 mL memberikan hasil analisis terbaik dengan pertimbangan hasil rekoveri yang diperoleh. Penggunaan HCl sebanyak 0.5 mL memberikan hasil rekoveri masing-masing sebesar 92.99% dan 113.84% untuk analisis adenin dan hiposantin. Hasil rekoveri tersebut paling mendekati keberterimaan rekoveri menurut AOAC (2002), yaitu antara 85-110%. Sementara pada pengunaan HCl sebanyak 1.0 dan 2.0 mL, hasil rekoveri berada jauh di luar kisaran rekoveri yang dapat diterima menurut AOAC (2002). Tabel 6. Hasil orientasi prosedur analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl untuk hidrolisis dalam tahap persiapan sampel sebelum analisis dengan HPLC-UV* Volume HCl 6 N (mL) 0.5 1.0 2.0

Konsentrasi Konsentrasi sampel unspiked adenin yang (µg/g) di-spike (µg/g) 79.43 ± 2.61 400 171.88 ± 8.85 400 70.37 ± 3.48 400

*Hasil diperoleh dari dua ulangan

Konsentrasi sampel spiked (µg/g) 451.37 ± 12.82 495.54 ± 11.35 559.03 ± 17.25

Rekoveri (%) 92.99 80.91 122.16

16 Tabel 7. Hasil orientasi prosedur analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl untuk hidrolisis dalam tahap persiapan sampel sebelum analisis dengan HPLC-UV* Volume HCl 6 N (mL) 0.5 1.0 2.0

Konsentrasi sampel unspiked (µg/g) 103.29 ± 12.12 48.37 ± 4.42 155.58 ± 0.76

Konsentrasi hiposantin yang di-spike (µg/g) 400 400 400

Konsentrasi sampel spiked (µg/g) 558.64 ± 39.18 650.55 ± 18.93 703.58 ± 5.60

Rekoveri (%) 113.84 150.54 137.00

* Hasil diperoleh dari dua ulangan

Metode yang diadaptasi dari AOAC (2012) tersebut terbukti dapat diaplikasikan untuk analisis basa purin adenin dan hiposantin di dalam sampel emping melinjo. Dengan demikian, prosedur analisis yang telah dikembangkan tersebut dapat digunakan untuk tahap penelitian selanjutnya (validasi metode). Validasi Metode Spesifisitas Metode Spesifisitas metode diuji untuk menentukan kemampuan metode analisis untuk dapat mengukur konsentrasi analat dengan adanya komponen-komponen lain dalam sampel. Spesifisitas metode dapat ditentukan dengan mengamati kromatogram pada standar campuran adenin dan hiposantin, sampel tanpa penambahan standar, serta sampel yang telah ditambahkan standar campuran adenin dan hiposantin. Kromatogram hasil uji spesifisitas metode ditunjukkan oleh Gambar 4. Kromatogram pada Gambar 4 memperlihatkan bahwa peak adenin dan hiposantin dapat terpisah satu sama lain baik dalam bentuk murni (standar) maupun dalam matriks sampel emping melinjo. Peak adenin maupun hiposantin tidak terganggu oleh peak senyawa lain dalam sampel yang terdeteksi dalam kromatogram. Guanin dan santin yang dapat terekstrak ketika proses persiapan sampel juga tidak teranalisis oleh HPLC dikarenakan keduanya tidak dapat dielusi dengan fase gerak yang digunakan. Hal ini menunjukkan bahwa metode analisis yang divalidasi memiliki spesifisitas yang baik. Adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo masing-masing terdeteksi pada menit ke- 5.9-6.8 dan ke- 4.8–5.5. Pada penelitian Sotelo (2002) mengenai penentuan basa purin dalam gonad bulu babi dengan HPLC, adenin dan hiposantin masing-masing terdeteksi di sekitar menit ke- 18 dan 11. Perbedaan yang cukup jauh antara waktu retensi yang diperoleh pada penelitian ini dengan penelitian Sotelo (2002) dikarenakan perbedaan fase gerak yang digunakan. Fase gerak yang digunakan pada penelitian Sotelo (2002) yaitu larutan buffer KH2PO4 0.3 M, sedangkan pada penelitian ini digunakan campuran asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%) sebagai fase gerak. Akan tetapi, secara umum hiposantin akan terdeteksi lebih dahulu oleh HPLC dibandingkan adenin.

17

(c)

Absorbansi pada 257 nm

(b)

(a)

Waktu retensi (menit) Gambar 4. Kromatogram standar campuran adenin dan hiposantin (a), sampel unspiked (b), dan sampel spiked dengan konsentrasi spike 400 µg/g sampel (c). Peak: (1). adenin, (2). hiposantin Linearitas Metode Linearitas metode diuji untuk menentukan seberapa linear respon terhadap konsentrasi analat di dalam sampel dengan metode analisis yang digunakan. Pengujian linearitas metode dilakukan dengan menggunakan sampel yang ditambahkan spike pada lima tingkat konsentrasi yang ditetapkan dengan tiga kali pengulangan. Seperti halnya pada uji linearitas instrumen, hasil uji linearitas metode berupa persamaan regresi linear dari kurva hubungan hubungan antara konsentrasi (sumbu x) dan luas area (sumbu y), dengan a adalah slope dan b adalah intercept. Hasil uji linearitas metode pada analisis adenin dan hiposantin

18 masing-masing diperlihatkan pada Tabel 8 dan 9. Hasil uji linearitas metode pada analisis adenin maupun hiposantin memiliki presisi slope yang kurang baik dengan nilai RSD lebih besar dari 5%. Begitu pula pada nilai intercept, pada analisis adenin maupun hiposantin diperoleh presisi yang kurang baik dengan nilai RSD lebih besar dari 20%. Tabel 8. Hasil uji linearitas metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Ulangan 1 2 3 Rata-rata SD RSD (%)

Slope 3258.9 3930.2 3723.8 3637.7 343.8 9.45

Intercept 263852 250410 400828 305030 83235 27.29

R 0.9981 0.9944 0.9939 0.9955 2.29 x 10-3 0.23

R2 0.9963 0.9889 0.9879 0.9910 4.59 x 10-3 0.46

Tabel 9. Hasil uji linearitas metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Ulangan 1 2 3 Rata-rata SD RSD (%)

Slope 2217.9 2888.7 2500.6 2535.8 336.8 13.28

Intercept 181675 82613 208661 157650 66370 42.10

R 0.9986 0.9902 0.9977 0.9955 4.61 x 10-3 0.46

R2 0.9972 0.9804 0.9955 0.9910 9.25 x 10-3 0.93

Kurva linearitas metode rata-rata pada analisis adenin dan hiposantin disajikan pada Gambar 5. Persamaan regresi linear yang diperoleh pada uji linearitas metode untuk analisis adenin yaitu y = 3637.7x + 305030 dengan nilai R dan R2 masing-masing sebesar 0.9998 dan 0.9996. Sementara itu pengujian yang dilakukan pada hiposantin menghasilkan kurva dengan persamaan y = 2535.8x + 157650 dengan nilai R dan R2 masing-masing sebesar 0.9978 dan 0.9956. Nilai R dan R2 yang diperoleh pada pengujian adenin maupun hiposantin memenuhi persyaratan yang ditetapkan oleh AOAC (2012) yaitu R lebih besar dari 0.995 atau R2 lebih besar dari 0.990. Dengan demikian, metode yang digunakan memiliki linearitas yang baik, yaitu dapat memberikan respon yang linear terhadap konsentrasi analat di dalam sampel. Kromatogram hasil uji linearitas metode disajikan pada Gambar 6.

19

Gambar 5. Kurva linearitas metode analisis adenin dan hiposantin dengan HPLCUV menggunakan kolom C18 dan fase gerak yang terdiri atas asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%). Kurva merupakan rata-rata dari tiga ulangan uji linearitas metode

20

(e) (d) (c) (b)

Absorbansi pada 257 nm

(a)

Waktu retensi (menit) Gambar 6. Kromatogram senyawa adenin dan hiposantin pada uji linearitas metode analisis menggunakan HPLC-UV pada konsentrasi spike 50 µg/g (a), 100 µg/g (b), 200 µg/g (c), 400 µg/g (d), dan 800 µg/g (e). Peak: (1). adenin, (2). hiposantin

21 Akurasi dan Presisi Metode dari Uji Rekoveri Akurasi metode diuji untuk mengetahui kedekatan hasil analisis yang diperoleh dengan nilai benar (true value) yang diketahui menggunakan metode analisis yang dipilih. Penentuan akurasi pada penelitian ini dilakukan dengan uji rekoveri yaitu dengan menggunakan sampel yang ditambahkan spike pada tiga konsentrasi yang telah ditetapkan, yaitu pada konsentrasi rendah, konsentrasi sedang, dan konsentrasi tinggi. Pengujian pada ketiga konsentrasi masing-masing dilakukan sebanyak tujuh ulangan. Penentuan akurasi metode dilakukan dengan menghitung rekoveri dari hasil analisis. Hasil uji rekoveri pada analisis adenin dan hiposantin pada tiga konsentrasi spike masing-masing diperlihatkan pada Tabel 10 dan 11. Tabel 10. Hasil uji rekoveri metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Konsentrasi adenin yang dispike (µg/g) 100 500 1000

Konsentrasi sampel spiked (µg/g) 222.04 ± 11.53* 591.97 ± 26.65* 1044.26 ± 36.19**

Konsentrasi sampel unspiked (µg/g) 142.71 ± 1.35 145.00 ± 4.70 140.53 ± 4.51

Rekoveri rata-rata (%) 79.33 89.39 90.37

*Rekoveri diperoleh dari hasil rata-rata tujuh kali ulangan **Rekoveri diperoleh dari hasil rata-rata lima kali ulangan

Tabel 11. Hasil uji rekoveri metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Konsentrasi hiposantin yang di-spike (µg/g) 100 500 1000

Konsentrasi sampel spiked (µg/g) 285.30 ± 8.49* 592.29 ± 18.67* 1261.64 ± 28.07**

Konsentrasi sampel unspiked (µg/g) 218.55 ± 7.44 130.84 ± 2.74 260.12 ± 11.83

Rekoveri rata-rata (%) 66.75 92.29 100.15

*Rekoveri diperoleh dari hasil rata-rata enam kali ulangan **Rekoveri diperoleh dari hasil rata-rata tujuh kali ulangan

Menurut AOAC (2002), keberterimaan persen rekoveri untuk konsentrasi 100 dan 500 µg/g yaitu sebesar 85-110%, sedangkan untuk konsentrasi 1000 µg/g sebesar 90-108%. Hasil uji rekoveri pada analisis adenin hanya pada konsentrasi spike 500 dan 1000 µg/g yang memenuhi syarat AOAC (2002), yaitu dengan rekoveri masing-masing sebesar 89.39% dan 90.37%. Sementara pada konsentrasi spike 100 µg/g, rekoveri belum memenuhi standar, yaitu sebesar 79.33% (kurang dari 85%). Begitu pula pada hasil uji rekoveri pada analisis hiposantin, rekoveri yang dapat diterima hanya pada konsentrasi spike 500 dan 1000 µg/g, dengan rekoveri masing-masing sebesar 92.29% dan 100.15%. Sementara pada konsentrasi spike 100 µg/g, rekoveri cukup jauh di bawah standar, yaitu sebesar 66.75%. Hal ini dapat disebabkan konsentrasi spike yang relatif rendah serta

22 kandungan analat dalam sampel (tanpa penambahan spike) yang secara alami cukup rendah. Dengan demikian, hilangnya sejumlah analat selama preparasi sampel lebih berdampak signifikan terhadap hasil analisis dibandingkan pada sampel dengan penambahan spike pada konsentrasi yang lebih tinggi. Selain itu, karena adenin dan hiposantin merupakan senyawa alami yang terkandung dalam bahan pangan, kandungan keduanya di dalam bahan pangan dapat bervariasi. Hal ini menyebabkan kadar analat yang terukur dalam sampel tanpa penambahan spike menjadi beragam dan pada akhirnya dapat mempengaruhi rekoveri yang diperoleh. Ketelitian atau presisi adalah ukuran yang menunjukkan derajat kesesuaian antara hasil uji individual, diukur melalui penyebaran hasil individual dari rata–rata jika prosedur diterapkan secara berulang pada sampel–sampel yang diambil dari campuran yang homogen. Ukuran ketelitian dinyatakan dalam nilai RSD dari hasil uji (Harmita 2004). Presisi metode analisis ditentukan dengan menggunakan data pada uji rekoveri untuk penentuan akurasi pada konsentrasi rendah (100 µg/g), sedang (500 µg/g), dan tinggi (1000 µg/g). Presisi metode analisis adenin dan hiposantin masing-masing dapat dilihat pada Tabel 12 dan 13. Tabel 12. Presisi metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Konsentrasi adenin yang di-spike (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa* (%)

RSDh** (%)

2/3 RSDh (%)

100 500 1000

11.53 26.65 36.19

5.19 4.50 3.46

7.09 6.12 5.62

4.73 4.08 3.75

*RSDa merupakan nilai RSD analisis yang diperoleh dengan rumus (SD/rata-rata) x 100% **RSDh merupakan nilai RSD yang diperoleh berdasarkan persamaan Horwitz 2 (1-0.5 log c) dengan nilai c merupakan rata-rata fraksi konsentrasi analat yang terukur dalam sampel

Tabel 13. Presisi metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV Konsentrasi hiposantin yang di-spike (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa* (%)

RSDh** (%)

2/3 RSDh (%)

100 500 1000

8.49 18.67 28.07

2.98 3.15 2.22

6.83 6.12 5.46

4.55 4.08 3.64

*RSDa merupakan nilai RSD analisis yang diperoleh dengan rumus (SD/rata-rata) x 100% **RSDh merupakan nilai RSD yang diperoleh berdasarkan persamaan Horwitz 2 (1-0.5 log c) dengan nilai c merupakan rata-rata fraksi konsentrasi analat yang terukur dalam sampel

Presisi suatu hasil analisis dianggap baik apabila nilai RSDa lebih kecil dari RSDh. Apabila nilai RSDa lebih kecil dari 2/3 RSDh, maka presisi metode lebih baik lagi. Penentuan nilai 2/3 RSDh merupakan standar yang lebih ketat untuk memastikan hasil analisis benar-benar teliti. Pada analisis adenin dengan penambahan spike 100, 500, dan 1000 µg/g nilai RSDa lebih kecil dari RSDh,

23 tetapi hanya pada konsentrasi 1000 µg/g nilai RSDa lebih kecil dari 2/3 RSDh. Hal ini menunjukkan bahwa pada analisis adenin penambahan spike 100 dan 500 µg/g kurang presisi dibandingkan penambahan spike 1000 µg/g. Di sisi lain, pada analisis hiposantin, nilai RSDa lebih kecil dari 2/3 RSDh pada semua konsentrasi spike yang digunakan. Dengan demikian, analisis hiposantin memiliki presisi yang baik pada semua konsentrasi spike yang digunakan. Limit Deteksi Metode Limit deteksi metode diuji pada matriks sampel yang berbeda untuk menguji unjuk kerja operator, unjuk kerja metode, dan efek matriks terhadap analat yang diuji. Penentuan limit deteksi metode berdasarkan hasil uji rekoveri pada penentuan akurasi dan presisi dengan penambahan spike pada tiga konsentrasi yang telah ditetapkan, yaitu pada konsentrasi rendah, sedang, dan tinggi. Limit deteksi metode ditentukan dengan memplot kurva hubungan antara standar deviasi dengan konsentrasi adenin dan hiposantin yang diperoleh pada uji rekoveri. Melalui persamaan linear kurva, ditentukan nilai standar deviasi saat konsentrasi sama dengan nol (SD0). Nilai limit deteksi metode merupakan tiga kali nilai SD0. Kurva hubungan antara standar deviasi dengan konsentrasi adenin dan hiposantin disajikan pada Gambar 7.

Gambar 7. Kurva hubungan konsentrasi (µg/g) dan standar deviasi pada penentuan limit deteksi metode analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV Berdasarkan kurva tersebut, diperoleh nilai SD0 untuk adenin ialah sebesar 6.4794. Dengan demikian, nilai limit deteksi metode untuk adenin ialah sebesar 19.44 µg/g. Sementara nilai SD0 untuk hiposantin ialah sebesar 4.8082, sehingga nilai limit deteksi metode untuk hiposantin ialah sebesar 14.42 µg/g. Kurva hubungan antara standar deviasi dengan konsentrasi adenin maupun hiposantin memiliki nilai R2 lebih kecil dari 0.990, tetapi masih lebih besar dari 0.900. Hal ini menunjukkan bahwa hubungan antara standar deviasi dan konsentrasi tidak

24 terlalu linear, akan tetapi hasil tersebut sudah cukup baik. Umumnya nilai standar deviasi proporsional dengan besarnya konsentrasi analat. Nilai R2 yang lebih kecil dari 0.990 tersebut dapat disebabkan kesalahan acak yang terjadi pada saat preparasi sampel serta ketidakseragaman kandungan analat dalam sampel (tanpa penambahan spike). Reprodusibilitas intralab Pengujian reprodusibilitas intralab memiliki tujuan yang sama dengan penentuan presisi dengan uji rekoveri, hanya saja presisi hasil analisis ditentukan pada data hasil analisis sampel unspiked yang dikerjakan pada minggu yang berbeda. Hasil uji intralab reprodusibilitas pada analisis adenin dan hiposantin masing-masing dapat dilihat pada Tabel 14 dan 15. Tabel 14. Hasil uji reprodusibilitas intralab metode analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV* Minggu ke1 2 3

Kadar adenin (µg/g)** 79.43a 142.10b 165.63b

Rata-rata SD RSDa*** RSDh**** 2/3RSDh (µg/g) (µg/g) (%) (%) (%) 129.03

44.56

34.53

7.7

5.13

* Angka-angka pada kolom yang sama dan diikuti oleh huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (uji lanjut Duncan) **Kadar adenin merupakan rata-rata hasil analisis dari dua kali pengulangan di setiap minggunya ***RSDa merupakan nilai RSD analisis yang diperoleh dengan rumus (SD/rata-rata) x 100% ****RSDh merupakan nilai RSD yang diperoleh berdasarkan persamaan Horwitz 2(1-0.5 log c) dengan nilai c merupakan rata-rata fraksi konsentrasi analat yang terukur dalam sampel

Tabel 15. Hasil uji intralab reprodusibilitas metode analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan instrumen HPLC-UV* Minggu ke1 2 3

Kadar hiposantin (µg/g)** 103.29a 130.84b 218.55c

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

150.89

60.19

RSDa*** RSDh**** (%) (%) 39.89

7.52

2/3RSDh (%) 5.01

* Angka-angka pada kolom yang sama dan diikuti oleh huruf yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada taraf uji 5% (uji lanjut Duncan) **Kadar hiposantin merupakan rata-rata hasil analisis dari dua kali pengulangan di setiap minggunya ***RSDa merupakan nilai RSD analisis yang diperoleh dengan rumus (SD/rata-rata) x 100% ****RSDh merupakan nilai RSD yang diperoleh berdasarkan persamaan Horwitz 2 (1-0.5 log c) dengan nilai c merupakan rata-rata fraksi konsentrasi analat yang terukur dalam sampel

Hasil pengujian pada adenin maupun hiposantin pada minggu yang berbeda menunjukkan nilai reprodusibilitas intralab yang belum memenuhi persyaratan, dengan nilai RSDa jauh lebih besar dibandingkan nilai RSDh. Nilai reprodusibilitas intralab adenin dan hiposantin yang diperoleh masing-masing

25 sebesar 34.53% dan 39.89%. Selain itu, hasil pengujian reprodusibilitas intralab dianalisis secara statistik dengan one-way ANOVA dan uji lanjut Duncan. Hasil uji statistik diperlihatkan pada Lampiran 9. Hasil yang diperoleh menunjukkan bahwa hasil analisis adenin pada minggu ke-1 berbeda nyata dengan hasil analisis pada minggu ke-2 dan ke-3, tetapi hasil analisis pada minggu ke-2 dan ke-3 tidak berbeda nyata satu sama lain pada taraf uji 5%. Sementara itu, hasil analisis hiposantin pada minggu ke-1, ke-2, dan ke-3 berbeda nyata satu sama lain pada taraf uji 5%. Hal ini menunjukkan bahwa metode analisis yang divalidasi memiliki keterulangan yang kurang baik apabila dilakukan pada waktu yang berbeda dengan rentang waktu yang cukup lama, walaupun dikerjakan oleh operator yang sama dan di laboratorium yang sama pula. Hasil yang diperoleh menunjukkan trend kadar adenin dan hiposantin yang meningkat dari minggu ke minggu. Hal tersebut mengindikasikan adanya kesalahan sistematis yang dapat disebabkan oleh beberapa faktor antara lain sampel yang tidak homogen (pada penelitian belum dilakukan uji homogenitas sampel) serta kadar air sampel yang menurun selama penyimpanan dalam refrigerator yang menyebabkan analat terkonsentrasi dan seakan-akan meningkat kadarnya di dalam sampel. Selain itu, hasil pengujian reprodusibilitas yang kurang baik juga diduga berhubungan dengan presisi luas area yang kurang baik yang teramati pada hasil uji unjuk kerja instrumen.

SIMPULAN DAN SARAN Simpulan Prosedur analisis santin alkaloid pada AOAC Official Method 960.56 dapat diterapkan pada analisis basa purin adenin dan hiposantin pada sampel emping melinjo dengan HPLC-UV. Pengembangan prosedur analisis yang dilakukan menunjukkan bahwa metode analisis menggunakan hidrolisis asam tersebut memberikan rekoveri yang terbaik pada penggunaan volume HCl 6 N sejumlah 0.5 mL. Prosedur yang dikembangkan tersebut selanjutnya dapat digunakan pada tahap validasi metode. Dengan prosedur analisis tersebut, adenin dan hiposantin dapat terdeteksi oleh HPLC-UV masing-masing pada menit ke- 5.9-6.8 dan ke- 4.8–5.5. Uji unjuk kerja instrumen HPLC-UV pada analisis adenin dan hiposantin menunjukkan hasil yang baik pada parameter linearitas dan presisi waktu retensi. Pada parameter presisi luas area, nilai RSD belum memenuhi syarat keberterimaan menurut JECFA (2006), yaitu harus lebih kecil dari 2.0%. Hal tersebut diduga disebabkan oleh penggunaan data recorder dan printer semi otomatis serta tekanan pompa HPLC yang tidak konstan. Limit deteksi dan limit kuantifikasi instrumen (LOD dan LOQ) pada analisis adenin masing-masing sebesar 0.72 dan 2.39 µg/mL, sementara LOD dan LOQ pada analisis hiposantin masing-masing sebesar 0.69 dan 2.30 µg/mL. Pada tahap validasi, diperoleh limit deteksi metode pada analisis adenin dan hiposantin masing-masing sebesar 19.44 dan 14.42 µg/g. Pada analisis adenin, metode analisis mampu memberikan rekoveri antara 79.3-90.4% dengan presisi metode antara 3.5-5.2% untuk konsentrasi 100-1000 µg/g sampel. Sementara pada analisis hiposantin, metode analisis mampu memberikan rekoveri antara 66.8-100.2% dengan presisi metode antara 2.2-3.2% untuk konsentrasi 1001000 µg/g sampel. Secara umum metode menunjukkan kinerja yang baik pada hampir seluruh parameter validasi kecuali pada parameter reprodubilitas intralab.

26 Hasil reprodusibilitas intralab yang tidak memenuhi syarat diduga disebabkan oleh sampel yang tidak homogen serta kadar air sampel yang menurun selama penyimpanan dalam refrigerator yang menyebabkan analat terkonsentrasi dan seakan-akan meningkat kadarnya di dalam sampel. Hasil penelitian secara keseluruhan menunjukkan bahwa metode analisis basa purin adenin dan hiposantin pada sampel emping melinjo dengan instrumen HPLC-UV telah tervalidasi dan memberi hasil yang akurat pada konsentrasi lebih dari 100 µg/g. Saran Pada penelitian ini, hanya basa purin adenin dan hiposantin yang dapat dianalisis. Hal ini dikarenakan standar guanin dan santin tidak dapat larut pada fase gerak yang digunakan untuk melarutkan adenin dan hiposantin, yaitu campuran asam fosfat 0.4% (90%) dan metanol p.a. (10%). Metode analisis perlu dikembangkan kembali agar dapat menganalisis santin dan guanin secara simultan. Hal ini penting karena guanin dan santin umum ditemukan pada berbagai sumber tanaman. Pada berbagai sumber tanaman, guanin diketahui dapat ditemukan dengan konsentrasi pada kisaran 10-1000 µg/g. Sementara santin umumnya ditemukan dalam kisaran konsentrasi yang lebih rendah yaitu 1-150 µg/g. Dengan demikian, dapat diperoleh informasi mengenai total basa purin yang terkandung dalam sampel emping melinjo. Pada penelitian ini belum dilakukan uji homogenitas sampel. Sebaiknya uji homogenitas dilakukan untuk memastikan bahwa variasi hasil analisis bukan berasal dari sampel yang tidak homogen. Kadar analat dalam sampel sebaiknya dihitung dalam basis kering untuk memastikan bahwa kadar analat tidak dipengaruhi perubahan kandungan air dalam sampel. Selain dengan cara tersebut, sampel dapat pula disimpan di freezer untuk mencegah perubahan kadar air dalam sampel selama penyimpanan. Penggunaan kolom SPE silika untuk menghilangkan komponen pengotor dalam sampel sebaiknya diganti dengan penggunaan kolom SPE C18. Hal tersebut dikarenakan sifat basa purin adenin dan hiposantin yang polar menyebabkan keduanya dapat tertahan oleh kolom SPE silika yang juga bersifat polar, dengan demikian rekoveri yang diperoleh menjadi lebih kecil dari yang seharusnya. Penggunaan kolom SPE C18 yang bersifat non-polar diharapkan dapat memberikan rekoveri yang lebih baik.

DAFTAR PUSTAKA Angstadt CN. 1997. Purine and Pyrimidine Metabolism. http://library.med.utah.edu/NetBiochem/pupyr/pp.htm. (Agustus 2013). [APVMA] Australian Pesticides and Veterinary Medicines Authority. 2004. Guidelines for the Validation of Analytical Methods for Active Constituent, Agricultural, and Veterinary Chemical Products. http://www.apvma.gov.au. (Maret 2014). [AOAC] Association of Official Analytical Chemists. 1993. Official Methods of Analysis of AOAC International. AOAC International, USA.

27 [AOAC] Association of Official Analytical Chemists. 2002. Peer Verified Methods Program, Manual on Policies and Procedures. Washington D.C.: The Association Analytical Chemist Inc. [AOAC] Association of Official Analytical Chemists. 2012. AOAC Official Methods of Analysis, Appendix K: Guidelines for Single Laboratory Validation of Chemical Methods for Dietary Supplements and Botanical. [AOAC] Association of Official Analytical Chemists. 2012. AOAC Official Method 960.56 Microchemical Tests for Xanthine Alkaloids, halaman 53. Barwick VJ. 1999. Sources of uncertainty in gas chromatography and highperformance liquid chromatography. J. chrom 849: 13-33. Bierau J. 2011. Erndim Advisory Document of The Quantitative Analysis of Purines and Pyrimidines. http://www.erndim.org/store/docs/PurPyrGuidance-UDUREPAT11161410-4-2011.pdf. (Agustus 2013). Clifford AJ, Story DL. 1976. Levels of purines in foods and their metabolic effects in rats. J. Nutr 106: 435-42. EURACHEM Guide. 1998. The Fitness for Purpose of Analytical Methods: a Laboratory Guide to Method Validation and Related Topics. United Kingdom. Ellington A. 2005. Reduction purine content in commonly consumed meat products through rinsing and cooking. Thesis. University of Georgia. Garrett R, Grisham C. 2005. Nucleotides and Nucleic Acid. Biochemistry 3rd edition. Thomson Brooks/Cole.USA. (309-340). Harmita. 2004. Petunjuk Pelaksanaan Validasi Metode dan Cara Perhitungannya. Di dalam: Majalah Ilmu Kefarmasian, Desember, Vol. 1, No. 3, pp. 117 – 135. Departemen Farmasi FMIPA-UI. [JECFA] Joint Expert Committee on Food Additives. 2006. Combined Compendium of Food Additive Specification Volume 4. Anlaytical Methods, Test Procedures and Laboratory Solutions Used by and Referenced in the Food Additive Specifications. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations. Munajad A. 2009. Nilai Gizi Emping Melinjo. http://empingmelinjo5s3.com/kandungan-gizi-emping.html. (Agustus 2013) Sotelo MP, Quiros ARB, Hernandez JL, Lozano JS. 2002. Determination of purine bases in sea urchin (Paracentortus lividus) gonads by highperformance liquid chromatography. Food Chem. 79: 113-117 Titkova NF, Pomazanov VV, Kalinia YT, Sakodysnksii KI. 1983. High performance liquid chromatography of components of nucleic acid. Z Anal Khim 38: 1305-18. Xue XF, Jin HZ, Li MW, Liang HF, Jing Z. 2009. HPLC determination of adenosine in royal jelly. Food Chem 115: 715 – 719. Zhang C. 2007. Fundamentals of Environmental Sampling and Analysis. Hoboken (US): John Wiley & Sons Inc.

28

LAMPIRAN Lampiran 1. Hasil uji linearitas instrumen pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV Adenin Konsentrasi Adenin (µg/mL) 1.95 3.91 7.81 15.62 31.25 62.50 125.00 250.00

Ulangan 1 139131 309727 575649 1103076 2170334 4287204 8500431 16444188

Area Ulangan 2 181551 337474 684855 1349559 2134669 4283828 8466010 16687748

Ulangan 3 149538 274419 543595 1078749 2125186 4266246 8500145 16673782

Rata-rata

SD

156740 22108.05 307207 31602.96 601366 74058.31 1177128 149824.19 2143396 23805.68 4279093 11252.87 8488862 19790.93 16601906 136766.18

RSD 14.10 10.29 12.32 12.73 1.11 0.26 0.23 0.82

Hiposantin Konsentrasi Hiposantin (µg/mL) 1.95 3.91 7.81 15.62 31.25 62.50 125.00 250.00

Ulangan 1 100526 198390 414931 790480 1551267 3091679 5985777 11325208

Area Ulangan 2 104347 189424 372478 723766 1438242 2871550 5657213 10916238

Ulangan 3 109035 198695 376327 738013 1455823 2889110 5705700 10724811

Rata-rata

SD

RSD

104636 195503 387912 750753 1481777 2950780 5782897 10988752

4261.86 5266.78 23478.15 35134.32 60818.44 122337.87 177364.23 306696.73

4.07 2.69 6.05 4.68 4.10 4.15 3.07 2.79

29 Lampiran 2. Hasil uji presisi luas area dan waktu retensi pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV Adenin Ulangan 1 2 3 4 5 6 7 Rata-rata SD RSD (%)

Area 472294 504553 507203 478256 505193 501217 514243 497565.57 15826.47 3.18

Waktu Retensi (menit) 6.69 6.718 6.702 6.712 6.617 6.617 6.71 6.6809

Area 324531 346174 348474 328595 346965 347828 346253 341260 10141.22 2.97

Waktu Retensi (menit) 5.07 5.097 5.072 5.077 4.982 4.975 5.057 5.05 0.05 0.96

0.04 0.67

Hiposantin Ulangan 1 2 3 4 5 6 7 Rata-rata SD RSD (%)

30 Lampiran 3. Hasil uji LOD dan LOQ instrumen pada analisis adenin dan hiposantin dengan HPLC-UV Adenin 7.81 ppm Ulangan

Area

1 2 3 4 5 6 7

472294 504553 507203 478256 505193 501217 514243 Rata-rata SD RSDa RSDh 2/3 RSDh LOD LOQ

Konsentrasi (µg/mL) 5.73 6.22 6.26 5.82 6.23 6.17 6.37

6.12 0.24 3.90% 12.80% 8.12% 0.72 µg/mL 2.39 µg/mL

Hiposantin 7.81 ppm Ulangan 1 2 3 4 5 6 7

Area 324531 346174 348474 328595 346965 347828 346253 Rata-rata SD RSDa RSDh 2/3 RSDh LOD LOQ

Konsentrasi (µg/mL) 5.4149 5.9058 5.9580 5.5071 5.9237 5.9433 5.9076 5.7943 0.2300 3.97% 12.28% 8.19% 0.69 µg/mL 2.30 µg/mL

31

Lampiran 4. Hasil orientasi prosedur analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo menggunakan berbagai volume HCl Adenin  Unspiked Volume HCl 6 N (mL)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

0.50

81.27 77.58 178.14 165.63 67.91 72.83

79.43

2.61

3.28

8.28

5.52

171.88

8.85

5.15

7.37

4.92

70.37

3.48

4.94

8.43

5.62

1.00 2.00  Spiked Volume HCl 6 N (mL)

Added (µg/g)

Found (µg/g)

0.5

400

1

400

2

400

460.4 442.3 487.5 503.6 571.2 546.8

Rata-rata Rekoveri SD (µg/g) (%) (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

451.4

92.99

12.82

2.84

6.38

4.25

495.5

80.91

11.35

2.29

6.29

4.19

559.0

122.16

17.25

3.09

6.17

4.12

Hiposantin  Unspiked Volume HCl 6 N (mL)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSD (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

0.5

111.85 94.72 51.50 45.25 156.12 155.05

103.29

12.12

11.73

7.96

5.31

48.37

4.42

9.14

8.92

5.95

155.58

0.76

0.49

7.49

4.99

1.0 2.0

32 

Spiked Volume HCl 6 N (mL)

Added (µg/g)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

Rekoveri (%)

SD (µg/g)

RSDa RSDh 2/3 RSDh (%) (%) (%)

0.5

400

558.64

113.84

35.94

6.43

6.17

4.12

1.0

400

650.55

150.54

18.93

2.91

6.04

4.02

2.0

400

530.94 586.34 637.17 663.93 699.63 707.54

703.58

175.90

5.60

0.80

5.96

3.98

Lampiran 5. Hasil uji linearitas metode analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Adenin Konsentrasi (µg/g) 50 100 200 400 800

Luas Area Adenin Ulangan 1 Ulangan 2 347893 530891 596374 716063 1005965 978154 1568283 1625396 2852091 3493379

Ulangan 3 638064 735542 1001095 2077318 3324054

Rata – rata 505616 682660 995071 1756999 3223175

Hiposantin Konsentrasi (µg/g) 50 100 200 400 800

Luas Area Hiposantin Ulangan 1 Ulangan 2 Ulangan 3 327344 344580 388751 387439 404086 435964 576939 598746 637949 1104164 1053106 1251758 1950249 2490082 2204849

Rata – rata 353558 409163 604545 1136343 2215060

33 Lampiran 6. Hasil uji akurasi dan presisi dari uji rekoveri pada analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Adenin (100 µg/g)  Unspiked Ulangan

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSD (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

1 2 3

143.94 142.94 141.26

142.71

1.35

0.95

7.58

5.06

 Spiked Ulangan

Added (µg/g)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

Rekoveri (%)

1 2 3 4 5 6 7

100 100 100 100 100 100 100

233.54 208.75 213.92 226.09 236.65 208.87 226.44

222.04

11.53

5.19

7.09

79.32

Adenin (500 µg/g)  Unspiked

Ulangan

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

1 2 3 4

151.86 143.94 142.94 141.26

145.00

4.71

3.24

7.56

5.04

34  Spiked Ulangan

Added (µg/g)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

Rekoveri (%)

1 2 3 4 5 6 7

500 500 500 500 500 500 500

597.44 534.21 586.13 603.44 608.33 605.77 608.46

591.97

26.65

4.50

6.12

89.85

Adenin (1000 µg/g)  Unspiked Ulangan

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSD (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

1 2 3 4

143.94 133.97 142.94 141.26

140.53

4.51

3.21

7.60

5.07

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

 Spiked Ulangan

Added (µg/g)

Found (µg/g)

1 2 3 4 5

1000 1000 1000 1000 1000

1038.87 1083.83 1016.70 1078.77 1003.11

1044.26 36.19065 3.465684 5.620102

Rekoveri (%) 90.15

35 Hiposantin (100 µg/g)  Unspiked Ulangan

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

1 2 3

210.47 220.09 225.09

218.55

SD (µg/g)

RSDa (%)

7.44

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

3.40

7.11

4.74

 Spiked Ulangan

Added (µg/g)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

RSDh (%)

Rekoveri (%)

1 2 3 4 5 6

100 100 100 100 100 100

272.06 288.05 292.01 295.35 279.68 284.66

285.30

8.49

2.98

6.83

66.7

Hiposantin (500 µg/g)  Unspiked Ulangan

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

1 2

128.90 132.78

Ulangan 1 2 3 4 5 6

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

130.84

2.74

2.10

7.68

5.12

Added (µg/g)

Found (µg/g)

Rata-rata (µg/g)

SD (µg/g)

RSDa (%)

500 500 500 500 500 500

557.99 585.75 605.80 607.81 594.32 602.08

529.29

18.67

3.15

 Spiked RSDh (%) 6.12

Rekoveri (%) 92.29

36 Hiposantin (1000 µg/g)  Unspiked Found Rata-rata (µg/g) (µg/g)

SD (µg/g)

RSD (%)

RSDh (%)

2/3 RSDh (%)

259.61 248.55 272.20

260.12

11.83

4.55

6.93

4.62

Ulangan

Added (µg/g)

Found (µg/g)

1 2 3 4 5 6 7

1000 1000 1000 1000 1000 1000 1000

1248.54 1306.05 1277.74 1263.36 1220.02 1274.64 1241.14

Ulangan 1 2 3  Spiked

Rata-rata SD (µg/g) (µg/g) 1261.64

28.07

RSDa (%) 2.22

RSDh Rekoveri (%) (%) 5.46

100.15

37

Lampiran 7. Hasil uji reprodusibilitas intralab pada analisis adenin dan hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Adenin Minggu ke1 2 3

Found (µg/g) 81.27 77.58 142.94 141.26 156.42 174.84

Rata-rata (µg/g) 79.43

SD (µg/g) 2.61

RSDa (%) 3.28

RSDh (%) 8.28

2/3 RSDh (%) 5.52

142.1

1.19

0.84

7.59

5.06

165.63

13.03

7.87

7.41

4.94

Found (µg/g) 111.85 94.72 128.90 132.78 210.47 220.09 225.09

Rata-rata (µg/g) 103.29

SD (µg/g) 12.12

RSDa (%) 11.73

RSDh (%) 7.96

2/3 RSDh (%) 5.31

130.84

2.74

2.10

7.68

5.12

218.55

7.44

3.40

7.11

4.74

Hiposantin Minggu ke1 2 3

38

Lampiran 8. Hasil uji one-way ANOVA dan uji lanjut Duncan pada hasil analisis reprodusibilitas intralab pada analisis adenin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Descriptives Adenin N

Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean Lower Bound

minggu ke-1 minggu ke-2 minggu ke-3 Total

.

Maximum

Upper Bound

2

79.4500

2.61630

1.85000

55.9435

102.9565

77.60

81.30

2

142.1000

1.18794

.84000

131.4268

152.7732

141.26

142.94

2

165.6300

13.02491

9.21000

48.6059

282.6541

156.42

174.84

6

129.0600

40.28653

16.44691

86.7819

171.3381

77.60

174.84

Test of Homogeneity of Variances Adenin Levene Statistic

Minimum

df1 2

df2

Sig. .

.

39

ANOVA Adenin

Between Groups Within Groups Total

Sum of Squares

df

Mean Square

F

Sig.

7937.117 177.904 8115.022

2 3 5

3968.559 59.301

66.922

.003

POST HOC TESTS Adenin Duncan Intralab

N

minggu ke-1 minggu ke-2 minggu ke-3 Sig.

2 2 2

Subset for alpha = 0.05 1

2

79.4500

1.000

142.1000 165.6300 .055

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 2.000.

40

Lampiran 9. Hasil uji one-way ANOVA dan uji lanjut Duncan pada hasil analisis reprodusibilitas intralab pada analisis hiposantin dalam matriks sampel emping melinjo dengan HPLC-UV Descriptives Hiposantin N

Mean

Std. Deviation

Std. Error

95% Confidence Interval for Mean

Minimum

Maximum

94.72 128.90 220.09 94.72

111.85 132.78 225.09 225.09

Lower Bound Upper Bound 1 2 3 Total

2 2 2 6

103.2850 130.8400 222.5900 152.2383

12.11274 2.74357 3.53553 56.16777

Test of Homogeneity of Variances Hiposantin Levene Statistic

df1

df2

Sig.

3305367468929 037.000

2

3

.000

8.56500 1.94000 2.50000 22.93040

-5.5436 106.1900 190.8245 93.2939

212.1136 155.4900 254.3555 211.1828

41

ANOVA Hiposantin Between Groups Within Groups Total

Sum of Squares

df

Mean Square

F

Sig.

15607.349 166.746 15774.095

2 3 5

7803.675 55.582

140.400

.001

POST HOC TESTS Hiposantin Duncan Intralab

N

1 2 3 Sig.

2 2 2

Subset for alpha = 0.05 1

2

3

103.2850 130.8400 1.000

1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed. a. Uses Harmonic Mean Sample Size = 2.000.

222.5900 1.000

42

RIWAYAT HIDUP Penulis lahir di Bogor, 19 September 1991 sebagai anak pertama dari Bapak Achmad Heryanto dan Ibu Anne Indriani. Penulis merupakan anak pertama dari dua bersaudara. Penulis menyelesaikan pendidikan sekolah dasar di SD Negeri Polisi 4 Bogor dan lulus pada tahun 2003. Penulis melalui jenjang pendidikan berikutnya di SMP Negeri 1 Bogor dan lulus pada tahun 2006. Kemudian, penulis melanjutkan pendidikannya ke Sekolah Menengah Analis Kimia Bogor (SMAKBO) dan lulus pada tahun 2010. Selama studi di SMAKBO, penulis meraih beberapa prestasi antara lain juara I Chemistry Challenge pada ajang Pesta Sains Nasional yang diselenggarakan Institut Pertanian Bogor tahun 2007 dan 2009, juara I English Debate dalam ajang Agribusiness Debate for Senior High School di Institut Pertanian Bogor tahun 2008, juara II dalam lomba cepat tepat dalam ajang Asah Terampil Kimia (ASTRA) yang diselenggarakan oleh Universitas Pendidikan Indonesia tahun 2008, serta juara III dalam lomba pidato yang diselenggarakan oleh Universitas Pakuan Bogor pada tahun 2008. Penulis mendapatkan predikat bintang pelajar dari Sekolah Menengah Analis Kimia Bogor pada tahun 2010. Penulis melanjutkan studi ke perguruan tinggi pada program studi Teknologi Pangan di Institut Pertanian Bogor (IPB) dengan seleksi masuk melalui jalur USMI. Selama studi di IPB penulis aktif dalam berbagai kepanitian yang diselenggarakan oleh Himitepa IPB antara lain pelatihan halal dan HACCP pada tahun 2012 dan tahun 2013 serta dalam rangkaian acara Foodival (Food Day Festival) pada tahun 2013. Penulis juga aktif menjadi pengurus pada UKM IPB Debating Community (IDC) sebagai bendahara pada tahun kepengurusan 20122013. Pada tahun 2014, penulis meraih juara I pada ajang English Debate Competition bertema Climate Change yang diselenggarakan oleh Forum Wacana dan UKM Bogor Science Club (BSC) Pascasarjana Institut Pertanian Bogor.