ÚSTAV TECHNOLOGIE VODY A PROSTŘEDÍ
N217019 - Laboratoř hydrobiologie a mikrobiologie
Název úlohy:
Hydrobiologie: Stanovení koncentrace chlorofylu-a
Vypracováno
Inovace a restrukturalizace předmětu Laboratoř
v rámci projektu:
hydrobiologie a mikrobiologie
PIGA číslo projektu
C_VŠCHT_2015_013 iFIS číslo 217 17 5642 projektu doc. RNDr. Jana Říhová Ambrožová, Ph.D.
Řešitel Spoluřešitelé Rok zpracování:
Ing. Dana Vejmelková, Ph.D. Ing. Vladimíra Škopová 2015
1
Hydrobiologie: Stanovení koncentrace chlorofylu-a
Oblast použití: Metoda se používá pro povrchové vody a obsah chlorofylu-a ve vzorku vody se vztahuje k množství přítomného fytoplanktonu. Stanovený ukazatel: Chlorofyl-a je základní fotosyntetický pigment, který obsahují pouze autotrofní organismy schopné primární produkce, tj. fotosyntézy (vyšší rostliny, sinice a řasy). Přítomnost chlorofylu-a v planktonních sinicích a řasách odlišuje tuto skupinu mikroorganismů od ostatních složek planktonu povrchových vod, kterými jsou mikromycety, bakterie, zooplankton, apod. Podstata zkoušky: Jedná se o spektrofotometrické stanovení chlorofylu-a extrahovaného horkým etanolem ze sinic a řas zachycených filtrací vzorku na filtru ze skleněné vlákniny. Přístroje a pomůcky:
Automatická dávkovací mikropipeta.
Centrifugační zkumavky.
Extrakční zkumavky s těsným uzávěrem (skleněné nebo plastové).
Filtrační aparatura.
Filtry ze skleněné vlákniny (WhatmanGF/C).
Pasteurovy pipety.
Pinzety.
Pipety a špičky.
Spektrofotometr pro měření ve viditelné oblasti spektra do 750 nm, šířka (optická dráha) kyvety od 1 do 5 cm.
Stopky (časovač).
Vodní lázeň s tepelnou regulací (75 ± 1 °C) a s nosičem zkumavek.
Vodní vývěva.
Chemikálie:
Používané chemikálie jsou stupně čistoty ch.č. nebo p.a. Voda se používá destilovaná nebo demineralizovaná bez specifických požadavků na jakost.
Etanol (C2H5OH), vodný roztok, 90% (V/V)
Kyselina chlorovodíková (HCl) v koncentraci 3 mol/l
2
Odběr a úprava vzorků: Vzorky se odebírají do polyethylenových lahví o objemu 1 000 – 2 000 ml. Konzervace vzorků se neprovádí. Vzorky se zpracovávají ihned po odběru. Ve výjimečných případech je možné skladování vzorků méně než 8 h, a to ve tmě a v chladničce při teplotě 2 – 5 °C. Postup zkoušky:
Temperace vzorku: Před vlastním rozborem se vzorek, pokud je odebírán za nízkých teplot nebo uchováván v lednici, nechá vytemperovat na laboratorní teplotu 20 °C až 25 °C. K vytemperování obvykle stačí doba nutná pro přípravu pracovní plochy a všech pomůcek nutných ke zpracování vzorku.
Promíchání vzorku: Vzorek se důkladně promíchá protřepáním.
Filtrace: Odměřená část vzorku, jejíž objem závisí na koncentraci přítomných suspendovaných částic, se zfiltruje přes filtr ze skleněné vlákniny za pomoci jemného podtlaku (obvykle 100 ml až 1 000 ml). Do formuláře na stanovení chlorofylu-a se filtrovaný objem zaznamená. Do extrakční zkumavky se nadávkuje přesný objem 90% etanolu (např. 10 ml). Použitý objem etanolu se zaznamená do formuláře. Filtr se zachyceným materiálem se přeloží filtrační plochou dovnitř a pomocí pinzety se vloží do připravené zkumavky s etanolem. Zkumavka se pevně uzavře (viz obr. 1).
Obr. 1. Postup filtrace definovaného objemu vzorku přes filtr ze skleněných vláken, zachycený podíl biomasy na filtru, přenesení filtru do etanolu a vzhled zkumavky po extrakci chlorofylu v etanolu.
Extrakce a vyčištění extraktu: Zkumavky se umístí do nosiče a vloží do připravené vodní lázně, vytemperované na teplotu 75 ± 1 °C. Ve vodní lázni se zkumavky zahřívají po dobu 5 min. Po vyjmutí z vodní lázně, se zkumavky ponechají zchladit na laboratorní teplotu po dobu 15 min. Po vytemperování se extrahovaný supernatant vyčistí tak, že se opatrně vyjme filtr. Vzorek se přelije do centrifugační zkumavky a vyčistí se od případně zbylých skleněných vláken. Po slití se vyčištěný supernatant proměří spektrofotometrem. Poznámka: Doba mezi extrakcí a následujícím spektrofotometrickým měřením by měla být co nejkratší. Extrakt však může být před měřením skladován přes noc v chladničce při teplotě 4 °C (doba skladování by neměla přesáhnout 3 dny). Skladovat extrakty při teplotě –25 °C je možné až 30 dní.
3
Spektrofotometrické stanovení: Část vyčištěného extraktu se přelije do kyvety spektrofotometru a proměří se při vlnové délce 665 nm a 750 nm proti referenční kyvetě s extrakčním činidlem, tj. 90% etanolem. Po proměření se extrakt oddělí do zkumavky a okyselí přidáním 0,01 ml kyseliny chlorovodíkové (3 mol/l) na 10 ml objemu extraktu. Obsah zkumavky se protřepe. Pozor! Množství přidávané kyseliny je třeba upravit podle skutečného objemu extraktu! Po 5 min se změří absorbance znovu při 665 nm a 750 nm. Hodnoty absorbancí se zaznamenávají do formuláře pro stanovení chlorofylu-a (viz příloha 1).
Vyhodnocení zkoušky:
Zjištěné hodnoty absorbance extraktu před okyselením a po okyselení se použijí pro výpočet koncentrace chlorofylu-a a koncentrace feopigmentů (viz rovnice 1 a 2).
Hodnota koncentrace feopigmentů slouží jako indikace stavu organismů. Feopigmenty jsou produkty rozkladu chlorofylu. Poměr chlorofylu k feopigmentům indikuje fyziologický stav sinic a řas.
Chlorofyl ag / l 29,6 ( A Aa )
v V .d
v Feopigment yg / l 20,8 Aa . chlorofyl a V .d
(1)
(2)
kde: A je (A665 - A750) absorbance před okyselením, Aa je (Aa665 – Aa750) absorbance po okyselení, v je objem extraktu v mililitrech, V je objem zfiltrovaného vzorku v litrech, d je délka kyvety v cm. Uvádění výsledků: Výsledky se uvádějí v mikrogramech na litr, nebo miligramech na metr krychlový, na jedno desetinné místo.
Použitá literatura: Říhová Ambrožová, J. 2008. Mikrobiologie v technologii vod. Skriptum VŠCHT Praha, 252 pp., ISBN 978-80-7080-676-0 (2. přepracované vydání), AA 26,32 ČSN ISO 10 260 (75 7575): Jakost vod - Měření biochemických ukazatelů - Spektrofotometrické stanovení koncentrace chlorofylu-a.
4
Příloha 1 – Formulář pro záznam hodnot měření pro stanovení koncentrace chlorofylu-a
Datum stanovení: Délka kyvety: V Označení vzorku
Objem zfiltrovaného vzorku v litrech
v Objem extraktu v mililitrech
(cm)
Absorbance před a po okyselení vzorku extraktu A665
A750
Aa665
Aa750
5
