HercepTest™ a Dako Autostainer készülékhez Kódszám: K5207 19. kiadás
Immuncitokémiai festéshez. A készlet 50 teszthez elegendı (100 lemez).
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 1/51
Tartalom Felhasználási terület Összefoglaló és magyarázat – emlı Háttér Jellemzık Az eljárás elve – emlı Reagensek – emlı Mellékelt anyagok Szükséges, de nem mellékelt anyagok Tárolás – emlı A minta elıkészítése – emlı Paraffinba ágyazott metszetek A szövetek kezelése festés elıtt Óvintézkedések – emlı HASZNÁLATI UTASÍTÁS – emlı A. A reagens elıkészítése A.1 Epitópkinyerı oldat A.2 Mosópuffer A.3 Szubsztrát kromogén oldat (DAB) A.4 Kontrasztfestés A.5 Rögzítıszer B. Festési eljárás az Autostainer készüléken B.1 Megjegyzések az eljárással kapcsolatban B.2 Festési protokoll Minıség-ellenırzés – emlı A festés értelmezése – emlı Korlátozások – emlı Általános korlátozások Termékspecifikus korlátozások Teljesítményjellemzık – emlı Háttér Összehasonlító vizsgálatok Összehasonlítás a klinikai vizsgálattal (CTA) Pontosság Megismételhetıség Immunreaktivitás Hibaelhárítás – emlı Összefoglaló és magyarázat – gyomor Háttér Jellemzık Az eljárás elve – gyomor Reagensek – gyomor Mellékelt anyagok Szükséges, de nem mellékelt anyagok Tárolás – gyomor A minta elıkészítése – gyomor Paraffinba ágyazott metszetek A szövetek kezelése festés elıtt Óvintézkedések – gyomor HASZNÁLATI UTASÍTÁS – gyomor A. A reagens elıkészítése A.1 Epitópkinyerı oldat A.2 Mosópuffer A.3 Szubsztrát kromogén oldat (DAB) A.4 Kontrasztfestés A.5 Rögzítıszer
(128387-001)
Oldal 4 5 5 5 5 6 6 7 8 8 8 8 9 10 10 10 10 10 11 11 11 11 13 14 16 19 19 19 20 20 20 20 21 21 22 23 26 26 26 26 27 27 28 28 29 29 29 30 31 31 31 31 32 32 32
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 2/51
B. Festési eljárás az Autostainer készüléken B.1 Megjegyzések az eljárással kapcsolatban B.2 Festési protokoll Minıség-ellenırzés – gyomor A festés értelmezése – gyomor Korlátozások – gyomor Általános korlátozások Termékspecifikus korlátozások Teljesítményjellemzık – gyomor Háttér Megismételhetıség Immunreaktivitás Hibaelhárítás – gyomor Irodalomjegyzék Jelmagyarázat
(128387-001)
32 32 33 34 37 40 40 41 41 41 43 43 46 49 51
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 3/51
Felhasználási terület In vitro diagnosztikai alkalmazásra szolgál.
A HercepTest™ szemikvantitatív immuncitokémiai assay, amely a HER2 fehérje túlzott mértékő expressziójának a kimutatására szolgál a szövettani értékeléshez rutinszerően feldolgozott emlırák-szövetekben, valamint gyomor adenokarcinómában – beleértve a gyomor-nyelıcsı határon lévı adenokarcinómákat – szenvedı páciensekbıl származó, formalinnal fixált, paraffinba ágyazott rákszövetben. A HercepTest™ javallott felhasználási területe olyan betegek vizsgálata, akiknél Herceptin™ (trastuzumab) kezelés jöhet szóba (lásd a Herceptin™ tájékoztatóját). MEGJEGYZÉS kizárólag az emlırák esetében: A Herceptin™ klinikai vizsgálatokban részt vevı alanyokat kísérleti immuncitokémiai klinikai vizsgálat (CTA) alapján választottuk ki. A vizsgálatokban részt vett alanyok egyikét sem a HercepTest™alapján választottuk ki. A HercepTest™ és a CTA összehasonlítása független mintán történt, és elfogadhatóan egyezı eredményeket mutatott ki. A HercepTest™ és a Herceptin™ klinikai eredményének tényleges korrelációját nem állapítottuk meg.
MEGJEGYZÉS – kizárólag gyomorrák esetében: A Hoffmann-La Roche cég által szponzorált III. fázisú BO18255 (ToGA) tanulmányban részt vevı betegek mindegyikét a Dako HercepTest™ (IHC) és a Dako HER2 FISH pharmDx™ Kit (FISH) készletek használatával választották ki. Az inoperábilis, lokálisan elırehaladott, kiújuló és/vagy áttétes gyomoradenokarcinómában vagy gyomor-nyelıcsı határon lévı adenokarcinómában szenvedı betegek HER2-státuszának felmérésére szolgáló mindkét teszt klinikai használhatóságát kimutatta a vizsgálat. Jelen készletben a K5207-es kódszámú reagens mennyiségét kifejezetten az Autostainer készüléknek megfelelıen állítottuk be. Ebben a dokumentumban gyomorrákként szerepel a gyomor adenokarcinómája, beleértve a gyomor-nyelıcsı adenokarcinómáját is. Kérjük, az emlırák esetében történı alkalmazással kapcsolatban tájékozódjon az 5–25. oldalról. Kérjük, a gyomorrák esetében történı alkalmazással kapcsolatban tájékozódjon a 26–48. oldalról. Fontos: Kérjük, hogy különösen a megfestett szövetmetszetek értékelésekor vegye figyelembe az emlırák és a gyomorrák szövetei közti különbségeket.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 4/51
Emlırák Összefoglaló és magyarázat – emlı Háttér A humán HER2 gén (más néven ERBB2 vagy NEU) kódolja a gyakran HER2 fehérjének vagy p185HER2-nek nevezett fehérjét. A HER2 fehérje egy membránreceptor tirozin-kináz, amely homológ az epidermális növekedésifaktor-receptorral (EGFR vagy HER1) (1–8). A HER2 fehérje normális komponens, amely többféle epiteliális sejttípusban is expresszálódik (8). Az emlırákos betegek egy kis hányadánál a HER2 fehérje expressziója emelkedett a malignus transzformáció és a tumorfejlıdési folyamat következtében (9). A HER2 fehérje emelkedett expressziója az emlırákos sejtek felszínén adta az ötletet, hogy terápiás antitest célpontja legyen. A Herceptin™ (trastuzumab) humanizált monoklonális antitest (10), amely nagy affinitással kötıdik a HER2 fehérjéhez, és kimutatottan gátolja a HER2 fehérjét emelkedetten expresszáló humán tumorsejtek proliferációját in vitro és in vivo (11–13).
Jellemzık A HercepTest™ a Herceptin™ klinikai vizsgálataiban alkalmazott kísérleti immunocitokémiai klinikai vizsgálat alternatívájaként lett kifejlesztve. A HercepTest™ eredményességét a HER2 fehérje emelkedett expressziójának meghatározásában független vizsgálattal értékeltük, összehasonlítva a HercepTest™ és a CTA eredményeit 548 emlıtumor-minta esetében, amelyek egyike sem a Herceptin™ klinikai vizsgálataiban részt vett alanytól származott. Az eredmények e szövetmintákon 79%-os megfelelést mutattak a két vizsgálat esetében. A koncordanciadatok azt is jelzik, hogy a HercepTest™ egy 3+ eredménye nagy valószínőséggel megfelel a CTA egy pozitív eredményének, amely teljesítette volna a vizsgálatba történı felvétel követelményeit (2+ vagy 3+). A HercepTest™ egy 2+ eredménye már nem korrelál olyan jól a CTA eredményeivel. A HercepTest™ 2+ eredményeinek körülbelül 42%-a (53/126) negatív volt a CTA szerint (0 – 1+), ami nem tette volna lehetıvé a felvételt a Herceptin™ klinikai vizsgálatába. A HercepTest™ a HER2 fehérje emelkedett expressziójára nézve lehet negatív (0 és 1+ festési intenzitás), enyhén pozitív (2+ festési intenzitás), illetve erısen pozitív (3+ festési intenzitás). A HercepTest™ nem arra készült, hogy diagnosztikai információt adjon a páciens vagy az orvos számára, és ilyen célra nem is lett bevizsgálva.
Az eljárás elve – emlı A HercepTest™ a rutinszerően feldolgozott, paraffinba ágyazott minták teljes kétlépéses immuncitokémiai festési eljárásához szükséges reagenseket tartalmazza. A humán HER2 fehérjével szembeni primer, nyúl eredető antitestekkel végzett inkubálást követıen a készlet a dextrán technológiára alapuló, azonnal felhasználható megjelenítı-reagenst alkalmazza. A reagens közös dextrán polimer alapra kapcsolt másodlagos, kecske eredető, nyúlellenes immunglobulin-molekulákból és torma-peroxidáz molekulákból áll, így kiküszöbölhetı a kapcsolt ellenanyag és a peroxidáz-konjugált ellenanyag egymást követı alkalmazása. A Megjelenítı reagens humán immunglobulinokkal és magzati borjú szérummal való keresztreakcióját szilárdfázisú abszorpcióval távolítjuk el. Az ezután hozzáadott kromogén enzimatikus átalakulása látható reakcióterméket eredményez az antigén helyén. A minta ezután kontrasztfesthetı és fedılemezzel ellátható. Az eredmények fénymikroszkóppal értelmezhetık. A festési menetek validálásához három darab, formalinban fixált, paraffinba ágyazott humán emlırák-sejtvonalat tartalmazó, 0, 1+ és 3+ festési intenzitású kontrollmintát mellékelünk. E sejtvonalak festési intenzitása korrelál a receptorok sejtenkénti számával. A HercepTest™, Kódszám: K5207, felhasználható az Autostainer berendezésekkel végzett automatikus festéshez.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 5/51
Emlırák Reagensek – emlı Mellékelt anyagok Az alább felsorolt anyagok 50 teszt elvégzésére elegendı (50 minta a HER2 fehérje primer antitestével inkubálva, illetve 50 minta a megfelelı negatív kontroll reagenssel inkubálva). A tesztek számát a következı anyagokból szövetmetszetenként (22 mm x 22 mm) 200 µL felhasználásával számítottuk: 1, 2, 3 és 4 jelő ampullák és szubsztrát kromogén oldat (DAB). A észlet legfeljebb 15 különálló festési menethez elegendı anyagot tartalmaz. Ampulla száma
Mennyiség
1
2 x 11 mL
Leírás
Peroxidáz-blokkoló reagens: 3% hidrogén-peroxidban 15 mmol/L nátrium-azid (NaN3). 2
1 x 12 mL Nyúl anti-humán HER2 fehérje: Használatra kész, affinitás alapján tisztított antitest. Kiszerelés: 0,05 mol/L Tris/HCl, 0,1 mol/L NaCl, 15 mmol/L NaN3, pH 7,2; stabilizáló fehérjét tartalmaz. Immunogén: A HER2 fehérje szintetikus C-terminálszakasza (intracitoplazmás rész) KLH-hoz (keyhole limpet hemocianin) kapcsolva. Specificitás: HER2 fehérje. Tisztításai módszer: Az antitest affinitás alapján tisztított immobilizált HER2 fehérje peptid felhasználásával.
3
2 x 11 mL Megjelenítı reagens: Torma-peroxidázzal és affinitás alapján tisztított kecske eredető nyúlellenes immunoglobulinnal konjugált dextrán polimer. Tris/HCl pufferben, stabilizáló fehérjével és mikrobaölı szerrel kiszerelve.
4
1 x 12 mL Negatív kontrollreagens: Normál nyúl szérum immunglobulin frakciója a HER2 fehérje antitestének megfelelı fehérjekoncentrációban. Kiszerelés: 0,05 mol/L Tris/HCl, 0,1 mol/L NaCl, 15 mmol/L NaN3, pH 7,2; stabilizáló fehérjét tartalmaz.
5
15 x 11 mL DAB puffer-szubsztrát: Szubsztrát pufferoldat, pH 7,5; <0,1% hidrogén-peroxidot, stabilizátort, stimulálót és mikrobaölı szert tartalmaz.
6
3 x 3 mL DAB kromogén: 5%-os 3,3’-diaminobenzidin tetrahidroklorid kromogén oldat.
7
3 x 500 mL Epitópkinyerı oldat (Containing Detergent) (10x): 0,1 mol/L-es citrátpuffer detergenssel.
8
2x1L Mosó puffer (10x): Tris/HCl puffer tisztítószerrel és mikrobaölı szerrel.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 6/51
Emlırák 3 x 5 lemez Kontroll lemezek: Minden lemezen három formalinban fixált, paraffinba ágyazott metszet a HER2 fehérje expressziójának eltérı szintjeit mutató emlıkarcinóma sejtvonalakkal: MDA-231 (0), MDA-175 (1+) és SK-BR-3 (3+). A kontroll lemezek hıkezeltek, így a metszetek jobban tapadnak az üveghez. A metszetek jobb tapadását célzó további hıkezelés ronthatja a megfestıdést.
MEGJEGYZÉS: Minden reagenst, epitópkinyerı oldatot és mosópuffert kifejezetten e teszt céljára készítettünk. A teszt megadott jellemzıinek elérése érdekében ne helyettesítse az anyagokat. Mosópuffernek azonban a Dako S3006-os kódszámú terméke is használható. Szükséges, de nem mellékelt anyagok Ammónium-hidroxid, 15 mol/L 37 mmol/L-re hígítva Kontrasztfestés: Hematoxilin, például vízalapú Mayer's Hematoxylin, Dako Kódszám: S3301 (lásd: HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.4) Fedılemezek Desztillált vagy ionmentesített víz (mosóvíz) Szárító kemence, 60 °C vagy alacsonyabb hımérséklet fenntartására alkalmas Etanol, abszolút és 95%-os Fénymikroszkóp (4–40x optikai nagyítás) Rögzítıszer, például a Dako Faramount, Kódszám: S3025, vagy Glycergel™, Kódszám: C0563 Pozitív és negatív szövetek a folyamatok ellenırzéséhez (lásd a Minıség-ellenırzés címő részt) Tárgylemezek, SuperFrost Plus, poly-L-lysine bevonatú lemezek, vagy Dako Silanized Slides, Kódszám: S3003 (lásd A minta elıkészítése címő részt) Festıedények vagy fürdık Stopperóra (2–40 perces idıközök mérésére alkalmas) Vízfürdı fedéllel (az Epitópkinyerı oldatot 95–99 °C-on képes tartani) Xilén, toluén vagy xilént helyettesítı anyag A K5207 az Autostainer Immunostaining System, Kódszám: S3400, rendszerrel való használathoz lett kialakítva. Az Autostainer szükséges komponenseit lásd az Autostainer felhasználói útmutatójában.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 7/51
Emlırák Tárolás – emlı 2–8 °C között tárolandó. A csomagoláson feltüntetett lejárati dátumon túl ne használja fel a készletet. Ha a reagenseket a jelen tájékoztatóban leírtaktól eltérı feltételek között tárolják, akkor a felhasználónak ellenıriznie kell a feltételeket (14a, 14b). Felhívjuk a figyelmét arra, hogy a kontroll-lemezeket is 2–8 °C-on kell tárolni. A termék instabilitásának semmilyen nyilvánvaló jele nincs. Ezért a beteg mintáival párhuzamosan pozitív és negatív kontrollokat kell futtatni. Ha nem várt festés figyelhetı meg, mely a laboratóriumi eljárások módosulásával nem magyarázható, és a HercepTest™ termékkel kapcsolatba hozható probléma gyanúja merül fel, azonnal vegye fel a kapcsolatot a Dako mőszaki szolgálatával.
A minta elıkészítése – emlı A biopsziás mintákat úgy kezelni, hogy a szövet alkalmas maradjon immuncitokémiai festésre. A mintákon a szövetelıkészítés szabványos módszerét kell alkalmazni (15).
Paraffinba ágyazott metszetek A rutinszerő feldolgozásra semleges pufferelt formalinban vagy Bouin fixálószerrel tartósított és paraffinba ágyazott szövetek megfelelnek a célnak. A biopsziás mintákat például 3–4 mmes kockákra vágva 18–24 órán keresztül fixálja semleges pufferelt formalinban. A szöveteket ezután dehidratálja alkoholokban és xilénben, majd olvasztott parafinnal 60 °C-nál nem magasabb hımérsékleten infiltrálja. A megfelelıen fixált és beágyazott, HER2 fehérjét kifejezı szövetek hővös helyen korlátlan ideig tárolhatók a metszetkészítés és felhelyezés elıtt (15–25°C) (15, 16). Az Egyesült Államokban az klini kai laboratórium fejlesztésérıl szóló 1988-as törvény 42 CFR 493.1259(b) szakasza kimondja, hogy „A megfestett lemezeket a vizsgálat napjától számított legalább tíz évig, a feldarabolt mintákat pedig a vizsgálat napjától számított legalább két évig a laboratóriumnak meg kell ıriznie” (16). A szövetmintákat 4–5 µm vastagságúra kell metszeni és tárgylemezre kell helyezni, majd szobahımérséklető levegın legalább 12 órán át (vagy száradásig), vagy 37 °C -on egy éjszakán át, vagy 60 °C-on egy órán át kell száríta ni. FIGYELMEZTETÉS: Egy óránál hosszabb ideig tartó 60 °C fokos vagy annál magasab b hıhatás a speciális membránasszociált HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését vagy elvesztését okozhatja (17). Az antigenitás megırzése érdekében a tárgylemezre (SuperFrost Plus, Poly-L-lysine vagy szilanizált tárgylemez) vitt szövetmetszeteket 4–6 héten belül kell megfesteni, ha szobahımérsékleten (20–25 °C) tárolják ıket (18). A HER2 fehérje kiértékeléséhez és a tumorban jelenlétének ellenırzéséhez szükséges lemezeket egyszerre készítse el. Legalább 5 lemez az ajánlott, 1 lemez a tumor jelenlétének megállapításához, 2 lemez a HER2 fehérje értékeléséhez (1 lemez a 2. számú ampullával, 1 pedig a 4. számú ampullával történı inkubáláshoz), és 2 lemez biztonsági tartaléknak. A HercepTest™ kalciummentesített szöveteken való használatának validálása nem történt meg, így az nem ajánlott. A mintakészítéssel kapcsolatos további tudnivalókért tanulmányozza a Dako „Education Guide: Immunohistochemical Staining Methods” (19) címő kiadványát, illetve a szakirodalomjegyzékben 15. és 16. tétel alatt hivatkozott kiadványokat.
A szövetek kezelése festés elıtt Az assay optimális mőködéséhez specifikus epitópkinyerı módszert, 10 mmol/L citrát puffert kell alkalmazni. Az Epitópkinyerı oldat a HercepTest™ készletben megtalálható. A módszerben a 10 mmol/L citrát pufferbe (20) merített lemezeken fixált metszeteket melegítjük olyan kalibrált vízfürdıbe merítve, amely képes fenntartani az Epitópkinyerı oldat szükséges hımérsékletét (95–99 °C). A tengerszint felett magasabban elhelye zkedı laboratóriumok maguk találják meg a legjobb módszert a vízfürdı szükséges hımérsékletének fenntartásához. Az epitóp kinyerését vízfürdıben kell végezni. Más melegítési módokat is teszteltek, de azok nem adtak
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 8/51
Emlırák reprodukálható eredményeket. Az epitóp kinyerése után azonnal megkezdjük a festési eljárást. A leírt eljárástól való eltérés befolyásolhatja az eredményeket.
Óvintézkedések – emlı 1. In vitro diagnosztikai alkalmazásra szolgál. 2. Csak foglalkozásszerő felhasználók részére! 3. ampulla, Peroxidáz-blokkoló reagens, 3%-os hidrogén-peroxid oldatot tartalmaz. Szakembereknek kérésre anyagbiztonsági adatlapot adunk. 4. ampulla, DAB kromogén, tartalma ≥5-<10% biphenyl-3,3',4,4'-tetrayltetraammonium tetrachloride, felirata:
Veszély
H350 H341 P201 P280 P308 + P313 P405 P501
Rákot okozhat. Feltehetıen genetikai károsodást okoz. Használat elıtt ismerje meg az anyagra vonatkozó különleges utasításokat. Védıkesztyő/védıruha/szemvédı/arcvédı használata kötelezı. Expozíció vagy annak gyanúja esetén: orvosi ellátást kell kérni. Elzárva tárolandó. A tartalom/edény hulladékként történı elhelyezését a helyi, regionális, országos és nemzetközi szabályozásokkal összhangban kell elvégezni.
Általános szabály, hogy 18 év alatti személyek nem dolgozhatnak ezzel a termékkel. A felhasználó legyen alaposan tájékozott a helyes munkavégzési eljárást, a termék veszélyes tulajdonságait és a szükséges biztonsági intézkedéseket illetıen. További információért olvassa el az anyagbiztonsági adatlapot. 5. A 8. ampullában lévı mosópuffer ≥5-<10% 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol hydrochloride, and ≥0.1-<0.2% 5-bromo-5-nitro-1,3-dioxane tartalmaz. Allergiás reakciót okozhat. A Wash Buffer (10x) a következı címkézéssel van ellátva:
Figyelem
H319 P280 P264 P305 + P351 + P338
Súlyos szemirritációt okoz. Szemvédı/arcvédı használata kötelezı. A használatot követıen a kezet alaposan meg kell mosni. SZEMBE KERÜLÉS esetén: Több percig tartó óvatos öblítés vízzel. Adott esetben a kontaktlencsék eltávolítása, ha könnyen megoldható. Az öblítés folytatása.
6. A termék nátrium-azidot (NaN3) tartalmaz, mely tiszta formában nagyon mérgezı vegyület. Bár a termékben található koncentráció besorolása alapján nem veszélyes, a nátrium-azid reakcióba léphet az ólom és réz vízvezetékekkel, mely során rendkívül robbanékony fém-azid lerakódások alakulhatnak ki. Megsemmisítéskor, megelızendı a fém-azidok vízvezetékekben történı lerakódását, nagy mennyiségő vízzel kell leöblíteni (21, 22). 7. A 2., 3.és 4. ampulla állati eredető anyagot tartalmaz. Mint bármely biológiai eredető termék esetén, a megfelelı kezelési eljárásokat kell alkalmazni. 8. A kontroll lemezeket és mintákat fixálás elıtt és után, valamint minden velük érintkezı anyagot fertızésre alkalmasként kezeljen, és a megfelelı óvintézkedésekkel mentesítse (23).
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 9/51
Emlırák A reagenseket soha ne szívja fel szájjal a pipettába, és ügyeljen arra, hogy a reagensek és a minták ne érintkezzenek a bırrel és a nyálkahártyákkal. Ha a reagensek érzékeny területtel érintkeznek, mossa le bı vízzel. 9. Óvja a reagenseket a mikrobaszennyezıdéstıl, hogy elkerülje a nem specifikus megfestıdést. 10. A megadottól eltérı inkubálási idık, hımérsékletek vagy módszerek hibás eredményeket adhatnak. Egy óránál hosszabb ideig tartó 60 °C fokon vagy annál magasabb hımérsékleten történı szárítás a speciális membrán-asszociált HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését vagy elvesztését okozhatja (17). 11. A reagensek az optimális mértékben vannak hígítva. További hígítás az antigén gyengébb festıdését okozhatja. 12. Minden reagenst, epitópkinyerı oldatot és mosópuffert kifejezetten e teszt céljára készítettünk. A teszt megadott jellemzıinek elérése érdekében ne helyettesítse az anyagokat. Mosópuffernek azonban az S3006-os kódszámú termék is használható. 13. A Megjelenítı reagens és a DAB kromogén károsodhat, ha túlzottan erıs fény éri. Ne tárolja a rendszer komponenseit, és ne végezze a festést erıs fényben, például közvetlen napsütésben. 14. Viseljen megfelelı személyi védıeszközöket a bırrel és szemmel történı érintkezés elkerülése érdekében. További információért olvassa el az anyagbiztonsági adatlapot. 15. A paraffinmaradványok hamis negatív eredményeket okozhatnak. 16. Az ajánlottól eltérı reagensmennyiség használata esetén elıfordulhat, hogy a HER2 immunreaktivitás nem lesz látható. A 22 mm x 22 mm méretőnél nagyobb szövetmetszetek esetében 2-3-szor 200 µL reagensre van szükség, 2-3 automata alkalmazási területen alkalmazva.
HASZNÁLATI UTASÍTÁS – emlı A.
A reagens elıkészítése
Érdemes a következı reagenseket a festés elıtt elkészíteni:
A.1 Epitópkinyerı oldat Desztillált vagy ionmentesített vízzel 1:10 arányban hígítson a 7. ampulla tartalmából (Epitópkinyerı oldat x 10) a tervezett festési eljáráshoz elegendı mennyiséget. A fel nem használt hígított oldat 2–8 °C-on egy hónapig tárol ható. A hígított oldatot kezelje hulladékként, ha kicsapódás látható benne.
A.2 Mosópuffer Desztillált vagy ionmentesített vízzel 1:10 arányban hígítson a 8. ampulla tartalmából (Mosópuffer x 10) a mosáshoz szükséges mennyiséget. A fel nem használt hígított puffer 2–8 °C-on egy hónapig tárolható. A puffert öntse ki , ha kicsapódás látható benne. Az Autostainer programja szerint leöblíti a szövetmetszeteket a peroxidáz-blokkoló reagens és a szubsztrát kromogén oldat után. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy ezekben az öblítési lépésekben desztillált (vagy ionmentesített) víz vagy mosópuffer egyaránt használható. Minden más öblítési lépésben mosópuffert kell használni.
A.3 Szubsztrát kromogén oldat (DAB) Készítsen szubsztrát kromogén oldatot a 6-os ampullából 11 csepp (cseppenként 25–30 µL) DAB kromogén egy 5-ös ampulla DAB pufferelt szubsztráthoz (11 mL) adásával és összekeveréséve. Az elkészített szubsztrát kromogén oldat (DAB) 2–8 °C-on tárolva körülbelül 5 napig stabil. Ezt az oldatot felhasználás elıtt alaposan keverje fel. Az oldatban esetleg létrejövı csapadék nem befolyásolja a festés minıségét. MEGJEGYZÉS: Az 6. ampullában lévı DAB kromogén színe átlátszótól világos levendulaszínig változhat. Ez nem befolyásolja a termék viselkedését. A hígítást a jelen
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 10/51
Emlırák tájékoztatóban foglaltak szerint végezze. Túl nagy mennyiségő DAB kromogén hozzáadása a DAB puffer-szubsztráthoz a pozitív jel romlását eredményezi.
A.4 Kontrasztfestés A DAB festési reakció színes végterméke alkoholban és vízben oldhatatlan. Alkalmazzon hematoxilines kontrasztfestést, és a hematoxilin festési intenzitását állítsa be a Dako „HercepTest™ értelmezési kézikönyv – Emlırák” címő dokumentumban bemutatott szinthez hasonlóan. Alkoholvagy vízalapú hematoxilin, például az S3301-es kódszámú Dako Mayer's Hematoxylin használható. A hematoxilines kontrasztfestés után végezzen alapos öblítést desztillált vagy ionmentesített vízzel, majd merítse a szöveteket 37 mmol/L-es szalmiákszesz fürdıjébe (lásd a B.2 szakasz 3. lépését). A szalmiákszesz (37 mmol/L) 2,5 mL 15 mol/L-es (koncentrált) ammonium-hidroxid és1 liter desztillált vagy ionmentesített víz keverésével készül. A fel nem használt 37 mmol/L-es szalmiákszesz szobahımérsékleten (20–25 °C) szorosan lezárt palackban le gfeljebb 12 hónapig tárolható.
A.5 Rögzítıszer Nem vizes, tartós rögzítıszer használata ajánlott. Azonban vízalapú rögzítı is elfogadható. Dako Faramount Aqueous Mounting Medium, Ready-to-Use, Kódszám: S3025, vagy Glycergel™ Mounting Medium, Kódszám: C0563 ajánlott vizes rögzítéshez. A felhasználás elıtt körülbelül 40 (± 5)°C-ra melegítve folyósítsa me g a Glycergel™-t.
B.
Festési eljárás az Autostainer készüléken
B.1 Megjegyzések az eljárással kapcsolatban A felhasználó használat elıtt alaposan tanulmányozza ezeket az utasításokat, és ismerkedjen meg minden komponenssel és mőszerrel (lásd Óvintézkedések). Az immunfestés elıtt a reagenseket hozza szobahımérsékletre (20–25 °C). Ugyanígy minden inkubálást szobahımérsékleten végezzen. Ne hagyja, hogy a szövetmetszetek megszáradjanak a lemezek Autostainer készülékbe töltése és festési eljárás közben. A megszáradt szövetmetszeteken erısebb nem specifikus festıdés jelentkezhet. Ha a festési eljárást meg kell szakítani, a primer antitest inkubálása után a lemezek szobahımérsékleten (20–25 °C) legfeljebb egy óráig a puffe rben tarthatók anélkül, hogy a festés eredményességét ez befolyásolná. Paraffinmentesítés és rehidratálás: Festés elıtt a szövetmetszeteket a beágyazó anyag eltávolításához paraffinmentesíteni, majd rehidratálni kell. Ügyeljen a paraffin teljes eltávolítására. A visszamaradó beágyazó anyag nagyobb nem specifikus megfestıdést eredményezhet. Ezt a lépést szobahımérsékleten (20–25 °C) végezze. 1.
Helyezze a lemezeket xilénfürdıbe, és inkubálja 5 (±1) percig. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
2.
Ütögetéssel távolítsa el a fölös folyadékot, és 3 (±1) percre helyezze a lemezeket abszolút etanolba. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
3.
Ütögetéssel távolítsa el a fölös folyadékot, és 3 (±1) percre helyezze a lemezeket 95%-os etanolba. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
4.
Ütögetéssel távolítsa el a felesleges folyadékot, majd legalább 30 másodpercre helyezze a lemezeket desztillált vagy ionmentesített vízbe. A B.2 szakasz 1. lépésében foglaltak szerint kezdje meg az epitóp kinyerését.
A xilénes és alkoholos oldatokat 40 lemez után cserélni kell. Xilén helyett használható toluén vagy xilént helyettesítı anyag, például Histoclear™. MEGJEGYZÉS: A készletben található reagensek és utasítások az optimális teljesítmény eléréséhez lettek összeállítva. A reagensek további hígítása, az inkubálási hımérséklet megváltoztatása hibás vagy ellentmondó eredményeket adhat. A felhasználó laboratóriumában
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 11/51
Emlırák a szövetek feldolgozásának és a technikai eljárásoknak az eltérései érvényteleníthetik az assay eredményeit a betegek Herceptin™ terápiába való beválasztását illetıen.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 12/51
Emlırák B.2 Festési protokoll Szobahımérsékleten, 20–25 °C között. 1. lépés: Epitóp kinyerése Töltse meg a festıedényeket, pl. Coplin-csészéket hígított Epitópkinyerı oldattal (lásd HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.1 szakasz). Helyezze az Epitópkinyerı oldatot tartalmazó festıedényeket vízfürdıbe. Melegítse fel a vízfürdıt és az Epitópkinyerı oldatot 95–99 °C-ra. Felmelegítéskor az Epitópkinyerı oldat zavarossá válik. A hımérséklet stabilizálása és a párolgás megakadályozása érdekében fedje le a csészéket. Merítse a szobahımérséklető, paraffinmentesített lemezeket a festıedényekben lévı elıre felmelegített Epitópkinyerı oldatba. MELEGÍTSE FEL A VÍZFÜRDİT ÉS AZ EPITÓPKINYERİ OLDATOT ISMÉT 95–99 °C-RA. Inkubálja 40 (±1) percig 95–99 °C-on. A lemezekkel együtt vegye ki a teljes edényt a vízfürdıbıl. Hagyja a lemezeket az epitópkinyerı oldatban 20 (±1) percig szobahımérsékleten hőlni. Öntse le az Epitópkinyerı oldatot, majd öblítse le a metszeteket a mosópufferben (lásd HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.2 szakasz). Az optimális eredmény elérése érdekében az epitóp kinyerése után és a festés megkezdése elıtt 5–20 percig áztassa a metszeteket a mosópufferben. MEGJEGYZÉS: Az Epitópkinyerı oldat egyszeri felhasználásra készült. Ne használja fel ismét. 2. lépés: Autostainer eljárás 1. Az Autostainer által a HercepTest™ programban létrehozott leírásból tájékozódjon a szükséges programidıkrıl és reagensmennyiségekrıl (a konkrét mennyiségeket lásd az alábbi 4. pontban). 2. Helyezze az Autostainer reagensampulláit az Autostainer kosarába a számítógép által létrehozott reagenselrendezés szerint. 3. Töltse be a lemezeket az Autostainer készülékbe a számítógép által létrehozott lemezelrendezés szerint.
4. Állítsa be és indítsa el a HercepTest™ programot. A következıkben a program futásának áttekintése olvasható:
Öblítés
200 µL peroxidáz blokkoló reagens – 5 perc
Öblítés
200 µL priemr Anti-HER2 fehérje (vagy negatív kontrollreagens) – 30 perc
Öblítés
200 µL Megjelenítı reagens – 30 perc
Öblítés
Öblítés
Váltás
200 µL szubsztrát kromogén oldat (DAB) – 10 perc
A szubsztrát kromogén lépés után öblítse le a lemezeket ionmentesített vízzel MEGJEGYZÉS: Az Autostainer 01-es hardververziója a lemezeket pufferben öblíti. Ezért a lemezeket az Autostainer készülékbıl való kivételük után ionmentesített vízzel le kell öblíteni. 3. lépés: Kontrasztfestés (az utasítások hematoxilinre vonatkoznak)
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 13/51
Emlırák Vegye ki a lemezeket az Autostainer készülékbıl és az alább leírt módon végezze el a hematoxilines kontrasztfestést. Merítse a lemezeket hematoxilin fürdıjébe. A használt hematoxilin erısségétıl függıen 2–5 percig inkubálja. Desztillált vagy ionmentesített víz fürdıjében óvatosan öblítse le a lemezeket. Ügyeljen arra, hogy ne maradjon rajtuk hematoxilin. Opcionális: Mártsa a lemezeket 10-szer 37 mmol/L-es szalmiákszesz fürdıjébe (lásd az A.4 szakaszt). Desztillált vagy ionmentesített víz fürdıjében óvatosan öblítse a lemezeket 2–5 percig. MEGJEGYZÉS: Az inkubálás hosszától és a felhasznált hematoxilin erısségétıl függıen a kontrasztfestés a sejtmagok halvány vagy sötétkék elszínezıdését eredményezi. A túlzott vagy elégtelen kontrasztfestés akadályozhatja az eredmények helyes értelmezését. 4. lépés: Felhelyezés Nem vizes, tartós rögzítıszer használata ajánlott. Azonban vízalapú rögzítıszer is elfogadható. A minták vizes rögzítıszerrel, pl. az S3025-ös kódszámú Dako Faramount, vagy a C0563-as kódszámú Glycergel™ rögzíthetık és lefedhetık. MEGJEGYZÉS: A lemezek alkalmas idıben bármikor kiértékelhetık. Azonban némi fakulás következhet be, ha a vizes rögzítıszerrel lefedett lemezeket egy hétnél hosszabb ideig erıs fény éri. A fakulás minimálisra csökkentése érdekében a lemezeket sötét helyen, szobahımérsékleten (20–25 °C között) tárolja.
Minıség-ellenırzés – emlı A szövetek fixálásának és a felhasználó laboratóriumában történı feldolgozásának és beágyazásának eltérései az eredmények jelentıs szórását okozhatják, ezért a Dako által biztosított ellenırzı minták mellett szükséges a rendszeres belsı ellenırzés. Az Egyesült Államokban további tudnivalókért lásd a College of American Pathologists (CAP) Immunhisztokémiai minısítı programjának minıség-ellenırzési követelményeit, a CLSI (korábban NCCLS) Immuncitokémiai Minıségbiztosítás Elfogadott Iirányelveit (24), valamint az irodalomjegyzék 25. számú munkáját. 1. táblázat. A napi minıség-ellenırzés célja. Szövet: A páciens mintájával azonos módon fixált és feldolgozott
Specifikus antitest és szekunder antitest
Nem specifikus antitest* vagy puffer és a specifikus antitesttel használttal azonos szekunder antitest
Pozitív kontroll: A kimutatni kívánt célantigént tartalmazó szövet vagy sejtek (a páciens szövetében található). Az ideális kontroll a gyengén pozitívan festıdı szövet, mivel ez a legérzékenyebb az antitesttel, illetve az antigénlebomlással szemben
Az elemzés minden lépését ellenırzi. Validálja a reagenseket és eljárásokat a HER2 fehérje festése során.
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
Negatív kontroll: Várhatóan negatív szövetek vagy sejtek (megtalálható lehet a páciens szövetmintájában vagy a pozitív kontroll mintában)
Antitest sejtekkel/sejtkomponensekkel szembeni, nem kívánt keresztreaktivitásának kimutatása.
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
Páciens szövetmintája
Specifikus festés kimutatása
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
Dako által mellékelt kontroll lemez
Csak a festési eljárást ellenırzi
* A specifikus antitestével azonos fajtól származó szérum, de nem ugyanazon antigén ellen. Nem specifikus antitestkötés kimutatása, pl. az antitest Fc részének kötıdése a szövethez.
Kontroll lemez (mellékelve): A mellékelt kontrollminták mindegyike a készlet reagálásának ellenırzésére három formalinnal fixált, paraffinba ágyazott humán emlırák-sejtvonalat tartalmaz, amelyek festési értékei 0, 1+ és 3+. Festési eljárásonként egy lemezt fessen meg. A Dako által biztosított kontrollminták sejtvonalainak kiértékelése jelzi a festési menet érvényességét.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 14/51
Emlırák Pozitív kontrollszövet: A kontroll legyen friss autopsziás/biopsziás/sebészeti minta, a páciens mintájával azonos módon fixálva, feldolgozva és beágyazva. A pozitív kontrollszövetek a megfelelıen elıkészített szövetekre és a helyes festési technikákra utalnak. Minden egyes festési menetben, minden egyes vizsgálati körülményhez mellékelni kell egy pozitív kontrollszövetet. A pozitív kontrollszövetek gyenge pozitív festést adjanak, hogy a primer antitest érzékenységének finom változásait is ki tudják mutatni. A készletben mellékelt kontrollminták vagy a páciens mintáitól eltérı módon feldolgozott minták csak a reagens mőködését igazolják, a szövet elıkészítésérıl nem adnak visszajelzést. Pozitív kontrollszövetként egy korábban HER2 fehérjét 2+ értékkel emelkedetten expresszáló invaszív (infiltráló) emlırák-szövet használata ideális. MEGJEGYZÉS: Az ismert pozitív kontrollszöveteket a feldolgozott szövetek és tesztreagensek megfelelıségének ellenırzésére használja, NE a páciensek mintáinak diagnosztizálásához. Ha a pozitív kontrollszövet nem mutat megfelelı pozitív festést, a páciens mintáinak eredményeit érvénytelennek kell tekinteni. Negatív kontrollszövet: A minden festési menetben a páciens mintáival azonos módon fixált, feldolgozott és beágyazott negatív (HER2 fehérjére ismerten negatív) kontrollszövettel ellenırizze a primer ellenanyag specificitását és a háttérfestést. Negatív kontrollszövetnek megfelel a vastagbél, a máj vagy a pajzsmirigy szövete. A legtöbb szövetmetszetben elıforduló több különféle sejttípus belsı negatív kontrollhelyeket kínál (ezt a felhasználónak ellenıriznie kell). A normál emlıvezeték belsı negatív kontrollként szolgálhat. Ha specifikus festés történik a negatív kontrollszövetben vagy a belsı negatív kontrollszövetben, akkor a páciens mintáinak eredményét érvénytelennek kell tekinteni, és a tesztet újra kell futtatni. Nem specifikus negatív kontrollreagens: A nem specifikus festés értékelésére és az antigén helyén a specifikus festés jobb értelmezéséhez a primer antitest helyett használja a mellékelt negatív kontrollreagenst a páciens mintáinak egy metszetén. A negatív kontrollreagens inkubálási idejének a primer antitestének kell megfelelnie. Assay ellenırzése: Az ellenanyag vagy festırendszer diagnosztikai eljárásban történı elsı felhasználása elıtt a felhasználónak ellenıriznie kell az ellenanyag specificitását. Ehhez tesztelni kell azt több, ismert pozitív és negatív szövetet jelzı, ismert immuncitokémiai tulajdonsággal rendelkezı mintán. Lásd a tájékoztató jelen szakaszában fentebb vázolt minıség-ellenırzési eljárásokat és a CAP Immunhisztokémiai Minısítı Programjának minıség-ellenırzési követelményeit, és/vagy a CLSI (korábban NCCLS) Immuncitokémiai Minıségbiztosítás Elfogadott Irányelveit (24). Ezeket a minıség-ellenırzési eljárásokat minden új antitest-tételnél, illetve az assay paramétereinek megváltozásakor meg kell ismételni. A HER2 fehérjére ismert, 0 – 3+ erısségő festést adó, valamint negatív szövetek, pl. a vastagbél, a máj vagy a pajzsmirigy szövetei megfelenek az assay ellenırzéséhez.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 15/51
Emlırák A festés értelmezése – emlı A HER2 fehérje emelkedett expressziójának meghatározásához kizárólag a membrán festési intenzitását és mintáját szabad értékelni a 2. táblázatban bemutatott skála alapján. A lemez értékelését patológus szakembenek kell végeznie fénymikroszkóp segítségével. Az immuncitokémiai festés értelmezésére és értékelésére 10x-es nagyítású objektív a megfelelı. 20–40x-es nagyítású objektív az értékelés megerısítéséhez hasznos. A citoplazma festıdését nem specifikus festıdésnek kell tekinteni, és nem szabad belefoglalni a membrán festési intenzitásának értékelésébe (8). A 0, 1+, 2+ és 3+ erısségő festés megkülönböztetéséhez lásd a Dako „HercepTest™ értelmezési kéziköny – Emlırák” c. dokumentum festéserısségeket szemléltetı képeit. Csak invazív emlıkarcinómás betegek mintáit értékelje. Ha egyazon mintában megtalálható in situ és invazív karcinóma, akkor csak az invazív komponenst értékelje. 2. táblázat. Sejtmembrán festıdési erısségének kritériumai.
Festıdési minta
Érték (Jelentés a kezelıorvosnak)
HER2 fehérje emelkedett expressziójának értékelése (Jelentés a kezelıorvosnak)
Nincs észlelhetı festıdés, vagy a membrán festıdése a tumorsejtek kevesebb mint 10%-ában észlelhetı
0
Negatív
Halvány/alig kivehetı membránfestıdés észlelhetı a tumorsejtek több mint 10%-ában. A sejtek membránja részlegesen festıdött
1+
Negatív
Gyenge/közepes erısségő membránfestıdés észlelhetı a tumorsejtek több mint 10%-ában.
2+
Gyengén pozitív
Erıs membránfestıdés észlelhetı a tumorsejtek több mint 10%-ában.
3+
Erısen pozitív
A HercepTest™ a HER2 fehérje emelkedett expressziójára nézve lehet negatív (0 és 1+ festési intenzitás), enyhén pozitív (2+ festési intenzitás), illetve erısen pozitív (3+ festési intenzitás). A HercepTest™ nem arra készült, hogy diagnosztikai információt adjon a páciens vagy az orvos számára, és ilyen célra nem is lett bevizsgálva. A lemezeket minden festési menetben a 3. táblázatban megadott sorrendben meg kell vizsgálni meghatározandó a festési menet érvényességét, és lehetıvé téve a szövetminta festési intenzitásának félkvantitatív kiértékelését.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 16/51
Emlırák 3. táblázat. A lemezek kiértékelésének sorrendje. Lemezek kiolvasási sorrendje
Magyarázat
1.
A sejtmembrán 3+ erısségő barna festıdése (győrőszerő) a SK-BR-3 jelő 3+ kontroll sejtvonalban, részleges barna győrő az MDA-175 jelő 1+ kontroll sejtvonalban, és a festıdés elmaradása az MDA-231 jelő 0 kontroll sejtvonalban érvényes assay-t jelez.
A három sejtvonalat tartalmazó kontroll lemez
Pontonkénti vagy szaggatott membránfestıdés a pozitív 1+ MDA-175 sejtvonal kevés vagy közepes mennyiségő sejtjében. Ebben a sejtvonalban a citoplazma Golgi-régiójának pontszerő festıdése is megfigyelhetı. Az MDA-231 jelő 0 kontroll sejtvonalban (HER2 fehérje festésére negatív) megjelenı barna festıdés azt jelenti, hogy az assay-ben nem specifikus festıdés történt. Az assay eredményei érvénytelenek lehetnek túlfestıdés miatt. 2.
Pozitív kontrollszövet
Barna membránfestıdést kell észlelni. A citoplazma és a negatív szövetek festıdése nem lehet erısebb mint 1+.
3.
Negatív kontrollszövet
A negatív kontrollszövet specifikus festıdésének HIÁNYA megerısíti a készlet sejtekkel/sejtkomponensekkel szembeni keresztreaktivitásának hiányát. Ha specifikus membránfestés történik a negatív kontrollszövetben, akkor a páciens szövetmintájának eredményét érvénytelennek kell tekinteni.
4.
Negatív kontrollreagens használatával festett, betegbıl származó szövetminta
A specifikus membránfestıdés hiánya igazolja, hogy a primer antitest megjelöli a cél antigént. A negatív kontrollreagenssel kezelt minta citoplazmájában végbemenı egyéb sárgás vagy barna festıdés, például kötıszövetben, leukocitában, eritrocitában vagy nekrotikus szövetben nem specifikus háttérfestésnek tekintendı, és az adatlap megjegyzések rovatában jelentendı.
5.
A primer antitest használatával festett, betegbıl származó szövet
A HER2 fehérje emelkedett expressziója barna győrőként észlelhetı a primer antitesttel kezelt tumorsejtek sejtmembránján.
1. Kontroll lemez (mellékelve): A HercepTest™ assay-vel megfestett kontroll-lemezt kell elsıként értékelni, hogy meggyızıdhessen arról, hogy az összes reagens megfelelıen mőködik-e. A sejtmembránnál található barna (3,3’-diaminobenzidin, DAB) reakciótermék a pozitív reaktivitás jele. A sejtmembrán kerületi (győrőszerő) barna festıdése az SK-BR-3 jelő, 3+ kontroll sejtvonalban, részleges barna győrő az MDA-175 jelő, 1+ kontroll sejtvonalban, valamint a festıdés elmaradása az MDA-231 jelő, 0 kontroll sejtvonalban érvényes assay-t jelez Ha a kontroll sejtvonalak bármelyike esetében az ezen kritériumoktól való eltérés figyelhetı meg, a páciens mintáinak minden eredményét érvénytelennek kell tekinteni. 2. Pozitív kontrollszövet: Ezután a pozitív kontrollszövetet kell megvizsgálni. Ez a lemez ellenırzi, hogy a fixálás és az epitóp kinyerése sikeres-e. A festés értelmezéséhez használjon ép sejteket, mivel a nekrotikus vagy degenerált sejtek gyakran nem specifikusan festıdnek (26). A festıdés a tumorszövetben a sejtmembrán barna elszínezıdéseként jelentkezik. A citoplazma és a negatív szövetek barna festıdése nem lehet erısebb, mint ami az 1+ festési intenzitásnak megfelel. 3. Negatív kontrollszövet: A pozitív kontrollszövet után meg kell vizsgálni a negatív kontrollszövetet ellenırizendı a cél antigén primer antitest általi megjelölésének specifikusságát. A negatív kontrollszövet specifikus festıdésének hiánya megerısíti a készlet sejtekkel/ sejtkomponensekkel szembeni keresztreaktivitásának hiányát. Ha specifikus festés történik a negatív kontrollszövetben, akkor a páciens szövetmintájának eredményét érvénytelennek kell tekinteni. Ezen felül a pozitív kontrollszövet negatív részei negatív kontrollszövetként is szolgálhatnak, de ezt a felhasználónak ellenıriznie kell. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy gyenge reakció (0 – 1+ festési intenzitás) észlelhetı a legtöbb normál epithelialis szövetben. Alkalmazható negatív kontrollszövetek például: vastagbél, máj és pajzsmirigy.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 17/51
Emlırák A nem specifikus festıdés, amennyiben van, megjelenésében diffúz. A formalinban túlzottan fixált szövetekben a kötıszövet helyenkénti festıdése figyelhetı meg. 4 + 5. Páciens szövetmintája: A páciens mintáit utoljára vizsgálja meg a HercepTest™ segítségével. A pozitív festıdés intenzitását a negatív kontrollreagens nem specifikus háttérfestésének kontextusában értékelje. Mint minden immuncitokémiai teszt esetében, a negatív eredmény azt jelenti, hogy az antigén nem volt észlelhetı, nem pedig azt, hogy az antigén nincs jelen a vizsgált sejtekben vagy szövetben. A HercepTest™ immunreaktivitásával kapcsolatos tudnivalókat lásd az „Összefoglalás és magyarázat” és a „Korlátozások és teljesítményjellemzık” címő részekben. További ajánlások a HercepTest™ festésének értelmezéséhez A HER2 fehérje emelkedett expressziója szempontjából vizsgált legtöbb metasztázisos emlıkarcinóma 0 vagy 3+ értéket kap. Míg az esetek legtöbbje egyértelmő, a fennmaradó 1+ és 2+ értékő minták egy részének értelmezése nehezebb lehet. A HercepTest™ festésének értelmezésekor kövesse az alábbi útmutatásokat.
Értékelje ki a kontroll sejtvonalakat az assay mőködésének validálására.
Értékelje ki a pozitív és negatív kontroll lemezeket.
Az elsı értékeléskor ajánlott a szövetminta hematoxilines és eozines festése (H&E). (A tumor esetleg nem szembetőnı a HercepTest™-tel festett mintán. A H&E módszerrel festett lemezre szüksége van a patológusnak a tumor jelenlétének igazolásához.) A HercepTest™-tet a minta azonos paraffinkockájából származó párosított metszeten (metszetsorozaton) végezze el.
A HER2 fehérje emelkedett expressziójának vizsgálatára megfestett metszeteket elıször kis nagyításon értékelje. A pozitív esetek túlnyomó többsége kis nagyításon egyértelmően megállapítható.
A minta jól tartósított és megfestett területeit használja a pozitív tumorsejtek százalékának meghatározásához.
Általában az esethez rendelhetı érték kis nagyításon is nyilvánvaló. Ha az 1+ és 2+ határesetén kis nagyításon nehéz dönteni, akkor az érték általában 1+.
A membrán festıdésének ellenırzéséhez használjon 20–40x-es optikai nagyítást.
Ha a tumorsejtek többsége teljes membránfestıdést mutat, akkor a festıdés erıssége 2+ vagy 3+. Növelje az optikai nagyítást 20–40x-ra az érték megerısítéséhez.
A 3+ esetek többségében a tumorsejtek legalább 80%-a festıdik, és a membrán festése erıs.
Ha a mintában a 10%-os határérték körül van a pozitív tumorsejtek száma, akkor ajánlott legalább 100 tumorsejtet megszámolni a megfestett sejtek arányának meghatározásához.
Ha a tumorsejtek több mint 10%-ában gyenge vagy közepes erısségő teljes membránfestıdés tapasztalható, akkor a minta értéke 2+. Ehhez általában a fennmaradó tumorsejtek többségének nem teljes membránfestıdése társul.
Ha a tumorsejtek kevesebb mint 10%-ánál festıdött a membrán teljesen körkörösen, és a többi tumorsejtnél esetleg nem teljes a festıdés, akkor az érték 1+.
Ha a tumorsejtek kevesebb mint 10%-ánál festıdött a membrán teljesen körkörösen vagy részlegesen, akkor az érték 0.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 18/51
Emlırák Korlátozások – emlı Általános korlátozások 1.
Az immunocitokémia egy többlépcsıs diagnosztikai folyamat, amely speciális képzést igényel a megfelelı reagensek és a szövetek kiválasztása, fixálása és feldolgozása, valamint az immuncitokémiai lemez elıkészítése és a festési eredmények értelmezése területén.
2.
A szövetfestés sikere a szöveteknek a festést megelızı kezelésétıl és feldolgozásától függ. A helytelen fixálás, fagyasztás, kiolvasztás, mosás, szárítás, melegítés, metszetkészítés, illetve más szövetekkel vagy folyadékokkal való szennyezıdés hamis eredményt, az antitest befogódását vagy hamis negatív eredményt adhat. Az inkonzisztens eredményeket okozhatják a fixálási és beágyazási módszer eltérései vagy a szövetelıkészítés inherens szabálytalanságai.
3.
A túlzott vagy elégtelen kontrasztfestés akadályozhatja az eredmények helyes értelmezését.
4.
A pozitív festés vagy annak hiányának klinikai értelmezését a klinikai megjelenés, morfológia és egyéb hisztopatológiai kritériumok kontextusában kell végezni. A festés vagy annak hiányának klinikai értelmezését morfológiai vizsgálatoknak és megfelelı kontrolloknak, valamint egyéb diagnosztikai vizsgálatoknak kell kiegészíteniük. A festett preparátum értelmezése olyan képesített patológus feladata, aki ismeri az antitesteket, reagenseket és az alkalmazott módszereket. A festést tanúsítvánnyal ellátott laboratóriumban kell végezni, olyan patológus felügyelete alatt, aki a festett lemezeket megtekinti, és biztosítja a pozitív és negatív kontrollok megfelelıségét.
5.
A hepatitisz B vírussal fertızött személyektıl származó, hepatitisz B felületi antigént (HBsAg) tartalmazó szövetek torma-peroxidázra nem specifikus festıdést mutathatnak (27).
6.
A reagensek váratlan reakciót adhatnak az elızıleg nem tesztelt szövettípusokon. Az antigén neoplazmában és más patológiás szövetekben való expressziójának biológiai változékonysága következtében a váratlan reakciókat még a tesztelt szövetekben sem lehet teljesen kizárni (28). A dokumentált váratlan reakcióval kapcsolatban forduljon a Dako mőszaki szolgálatához.
7.
Hamis pozitív eredmény lehet látható a fehérjék nem immunológiai kötése vagy a szubsztrát reakciótermékei miatt. Ezt okozhatja még pszeudoperoxidáz aktivitás (eritrociták) vagy endogén peroxidáz aktivitás (citokróm C) (28).
8.
A festési eljárást szobahımérsékleten (20–25 °C) végezze.
Termékspecifikus korlátozások 1.
Az MDA-175 jelő 1+ kontroll sejtvonalban jelen lévı antigén idıvel lebomlik. A kontroll lemez által adott eredményeket a kontroll lemez felhasználhatósági idejéhez viszonyítva értékelje. Az MDA-175 sejtek negatív festıdése jelentheti mindössze azt, hogy a kontroll lemez már nem használható. A kontroll-lemezeket 2–8 °C-on kell tárolni.
2.
A hamis negatív eredményeket okozhatja az, hogy az antigén idıvel lebomlik a szövetekben. A mintákat a lemezen rögzítéstıl számított 4–6 héten belül meg kell festeni, ha azokat szobahımérsékleten (20–25 °C) tárolják (29).
3.
Az optimális és megismételhetı eredmények eléréséhez a HER2 fehérje olyan hıindukált epitópkinyerést igényel, amelyben a szövetek fixálása (semleges pufferelt formalin vagy Bouin fixálószer) és paraffinba ágyazása rutinszerően zajlik. Ezt az elıkezelést a teljes festési eljárást megelızıen kell elvégezni. Lásd a „Minta elıkészítése” részben a „A szövetek kezelése festés elıtt” szakasz utasításait.
4.
A HER2 fehérje hıindukált epitópkinyerését csak kalibrált vízfürdıvel végezze. Más melegítési módokat is teszteltek, de azok nem adtak reprodukálható eredményeket.
5.
Ne helyettesítse a készlet reagenseit más sorozatszámú reagensekkel vagy más gyártótól származó reagensekkel. Az egyetlen kivétel a mosópuffer, amely az S3006 kódszámú Dako Wash Buffer termékkel helyettesíthetı.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 19/51
Emlırák 6. 7.
A citoplazma festıdésének értékelése hamis eredményeket adhat. Az eredmények értékelésekor csak a sejtmembrán festési intenzitását tekintse. A megfestett kontroll lemezeket csak a festési menet validálására használja, ne pontozza vele a szövetmetszetek festési reakcióját.
8.
Idınként erıs helyi festıdés (3+), azaz „forró pontok” láthatók. Ez az egyenetlen fixálás és/vagy szövetfeldolgozás eredménye lehet. Ajánlott ugyanabból a mintából egy második szövetkocka immunfestése.
9.
A HercepTest™ használatát nem semleges pufferelt formalinban vagy Bouin fixálószerben fixált minták esetében nem validálták.
10. Az emlıszövetben lévı normál epithelium festıdésének 0 és 1+ között kell lennie. Ha a normál epithelium 1+ feletti erısségő festıdését észleli, akkor a tesztet meg kell ismételni. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy a normál mandula és a nyelıcsövi epithelium akár 2+ erısséggel is festıdhet.
Teljesítményjellemzık – emlı Háttér A Herceptin™ vizsgálatába beválasztható betegeket azonosító klinikai vizsgálat (CTA) kísérleti jellegő volt és nincs folytatása. A HercepTest™ a CTA összehasonlítható alternatívájaként lett kifejlesztve. A Herceptin™ biztonságosságát és hatékonyságát véletlen kiválasztásos, ellenırzött klinikai vizsgálatban és egy nagy, nyílt vizsgálatban értékelték (Lásd a Herceptin™ tájékoztatóját). A központi laboratóriumban CTA-val végzett immuncitokémiai vizsgálat a Herceptin™ klinikai vizsgálataiba beválasztott betegek mindegyikénél kimutatta a HER2 fehérje emelkedett expresszióját. A betegek akkor voltak beválaszthatók a Herceptin™ kezelésbe, ha a tumor 2+ vagy 3+ szinten mutatta a HER2 fehérje emelkedett expresszióját (a 0 – 3+ skálán, ahol 3+ a legmagasabb szint). E vizsgálatok alcsoport-elemzésének eredménye azt mutatta, hogy azok a betegek, akiknek a szövetei erısen pozitívak (3+) voltak a HER2 fehérje emelkedett expressziója szempontjából, nagyobb mértékben részesültek a Herceptin™ elınyeibıl, mint azok, akiknek a szövetei gyengén pozitívak (2+) voltak. A HER2 fehérje emelkedett expressziójának mértéke potenciálisan fontos elırejelzıje a Herceptin™ kezelés hatékonyságának. Mivel a Herceptin™ vizsgálataiban részt vett egyik beteg sem a HercepTest™ alapján lett beválasztva, a pozitivitás mértékének és a Herceptin™ kezelés klinikai elınyeinek korrelációja nem ismert.
Összehasonlító vizsgálatok A HercepTest™ jellemzésére két vizsgálatot végeztünk. 1) Összehasonlítás a klinikai vizsgálattal (CTA) 2) A pontosság öt további vizsgálattal összehasonlítva.
Összehasonlítás a klinikai vizsgálattal (CTA) A HercepTest™-et összehasonlítottuk a CTA-val a Herceptin™ terápiába beválasztható betegek azonosítása szempontjából 274 darab HER2 fehérje pozitív (2+ vagy 3+) és azonos számú HER2 fehérje negatív emlırák-szövet mintán. A 4. táblázat mutatja az eredményeket 2 x 2 -es diagramban, ahol 0 és 1+ negatívnak, 2+ és 3+ pozitívnak tekintett eredmény. 4. táblátzat. A HercepTest™ és a CTA 2 x 2 -es konkordanicamátrixa (minták száma). Klinikai vizsgálat
HercepTest™
Pozitív
Negatív
Pozitív
216
59
275
Negatív
58
215
273
274
274
548
Összesen
(128387-001)
Összesen
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 20/51
Emlırák Konkordancia: 79% (76–82%) 95% konfidencia intervallum.
A HercepTest™ teljes bináris konkordanciája a CTA-val 79% volt (431/548), a 2 oldalú 95%-os szintő konfidencia intervallum 76–82%. Az eredmények huszonegy százaléka (21%) a két módszer nem egyezését mutatta. A HercepTest™ 0 – 3+ skálán elhelyezkedı eredményeiben a HER2 fehérje emelkedett expresszióját negatívnak (0 és 1+ festési intenzitás), gyengén pozitívnak (2+ festési intenzitás) vagy erısen pozitívnak (3+ festési intenzitás) értelmeztük. 5. táblázat. A HercepTest™ és a CTA 3 x 3-as konkordanicamátrixa. Klinikai vizsgálat
HercepTest™
3+
2+
0 - 1+
3+
107
36
6
149
2+
16
57
53
126
0 - 1+ Összesen
Összesen
8
50
215
273
131
143
274
548
A konkordanciavizsgálat 3 x 3-as mátrixban való megjelenítés azt mutatja, hogy a HercepTest™-ben egy 3+ érték nagy valószínőséggel megfelel a CTA egy olyan pozitív eredményének, amely lehetıvé tette volna a felvételt a Herceptin™ vizsgálatba (2+ vagy 3+). A HercepTest™ egy 2+ eredménye már nem korrelál olyan jól a CTA eredményeivel. A HercepTest™ 2+ eredményeinek körülbelül 42%-a (53/126) negatív volt a CTA szerint (0 – 1+), ami nem tette volna lehetıvé a felvételt a Herceptin™ klinikai vizsgálatába.
Pontosság A HercepTest™-et 2 mikroszkópos lemezen is vizsgáltuk, amelyek paraffinba ágyazott szövetmetszeteket tartalmaztak 168 emlıtumorból. Ezeket a tumorokat korábban öt különbözı módszerrel vizsgáltuk a HER2 gén amplifikációja és a HER2 fehérje emelkedett expressziója szempontjából, ezek: belsı Southern blot, a DNS amplifikációjára fluoreszcens in situ hibridizáció (FISH), Northern blot RNS-analízis, Western blot és immuncitokémia (ICC) fagyasztott szöveteken (29). Az eredményeket a 6. táblázat mutatja be. 6. táblázat. A HercepTest™, valamint a génamplifikáció és a HER2 fehérje emelkedett expresszióját vizsgáló tesztek kombinált eredményeinek (OE) összehasonlítása. Referencia OE osztályozás + HercepTest™
Pozitív egyezés: Negatív egyezés:
-
Összesen
+
43
0
43
-
26
99
125
Összesen
69
99
168
43/69 = 62% 99/99 = 100%
Az eredmények 85%-os (142/168) egyezést mutatnak (95% szintő konfidencia intervallum 78–89%) a HercepTest™ pozitív (2+ és 3+) és a negatív (0 és 1+) festési intenzitásai között. Az 5 különbözı módszer által negatívnak talált egyik minta sem lett pozitív a HercepTest™-tel, míg az 5 különbözı módszer kombinált eredményei a pozitív esetre nagyobb számot adtak.
Megismételhetıség Meneten belüli megismételhetıség: A meneten belüli megismételhetıséget egy laboratórium 5 különbözı ICC festési intenzitású mintán tesztelte. Minden mintát három példányban vizsgáltak maszkolt véletlen kiválasztásos formában. Ezt a protokollt automatizált festés mellett alkalmaztuk. Minden minta 100%-osan megismételhetı eredményt adott. Menetek közti megismételhetıség: A menetek közti megismételhetıséget három laboratórium 4 napon keresztül 5 különbözı ICC festési intenzitású mintán tesztelte véletlen kiválasztásos és maszkolt módszerrel automatizált eljárásban. Kitőnı megismételhetıséget
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 21/51
Emlırák tapasztaltak a pozitív és negatív eredmények megoszlásában (0 és 1+, illetve 2+ és 3+) egy laboratórium két mintája kivételével, amelyek értéke 1+ és 2+ között változott. A 2+ és 3+ értékő minták megismételhetısége 100%-os. Laboratóriumok közti megismételhetıség: A laboratóriumok közti megismételhetıséget három, földrajzilag elkülönülı laboratóriumban tesztelték 40 darab azonos, véletlen kiválasztásos és maszkolt mintán, amelyek különbözı ICC festési intenzitással rendelkeztek. A friss metszeteket elküldték a tesztelı laboratóriumokba patológus által végzett automatizált kiértékelésre. A laboratóriumok közti százalékos egyezés 83% és 90% között változott a pozitív/negatív dichotómiában, ahol 0 és 1+ negatív, míg 2+ és 3+ pozitív a HER2 fehérje emelkedett expressziójának vonatkozásában. A CTA-t végzı refrencialaboratórium eredményeivel összehasonlítva 12,5% (15/120) összevethetı eredmény nem mutatott egyezést a negatív (0 vagy 1+) és pozitív (2+ vagy 3+) besorolást illetıen. További 10% (12/120) diszkrepancia volt jelen a 2+ és 3+ értékek között.
Immunreaktivitás A 7. táblázat összefoglalja a HercepTest™ immunreaktivitását a normál szövetek ajánlott panelével. Minden szövet formalinban fixált, paraffinba ágyazott és a tájékoztatóban leírt módon HercepTest™-tel festett. 7. táblázat. A HercepTest™ normál szövetekre mutatott reaktivitásának összefoglalása. Szövettípus (Vizsgált mennyiség)
Pozitív szövetelem-festıdés és festıdési minta
Mellékvese (3) Csontvelı (3) Agy/Kisagy (3) Agy/Kisagy (3) Emlı (3) Méhnyak (3) Vastagbél (3) Nyelıcsı (3) Szív (3) Vese (3)
Nincs Nincs Nincs Nincs Emlımirigy (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás) Nincs Nincs Nincs Nincs Vese velıállomány tubulusai (3/3 szövet, 1–2+ festıdési intenzitás, a sejtek 5–50%-a mutatja, citoplazmatikus) Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Prosztatamirigy/ductusok (3/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 50%-a mutatja, citoplazmatikus) Nincs Nincs Verejtékmirigyek (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 30%-a mutatja, citoplazmatikus) Hengerhám, felszín (1/3 szövet, 2+ festıdési intenzitás, a sejtek 25%-a mutatja) Nincs Epithelium (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 25%-a mutatja) Nincs Nincs Nincs Laphám (3/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 80%-a mutatja) Nincs
Máj (3) Tüdı (3) Mesothelialis sejtek (3) Petefészek (3) Hasnyálmirigy (3) Mellékpajzsmirigy (3) Perifériás ideg (3) Agyalapi mirigy (3) Prosztata (3) Nyálmirigy (3) Vázizom (3) Bır (3) Vékonybél (3) Lép (3) Gyomor (3) Here (3) Csecsemımirigy (3) Pajzsmirigy (3) Mandula (3) Méh (3)
A jelentett festıdés minden szövet esetében membránban történt, hacsak másképp nem jelezzük. Mindhárom minta minden szövettípusnál ugyanolyan festési intenzitást mutatott, hacsak másképp nem jelezzük.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 22/51
Emlırák Hibaelhárítás – emlı A teendıkért lapozza fel a Dako korábban hivatkozott kézikönyvének Hibakeresés címő részét (18), vagy hívja a Dako mőszaki szolgálatát, ha szokatlan festıdést kíván jelenteni. Probléma 1. A lemezek nem festıdnek
2. A lemezek festése halvány
(128387-001)
Valószínő ok
Javasolt teendı
1a. Programozási hiba. A reagenseket nem a megfelelı sorrendben alkalmazta.
1a. Ellenırizze a programozást, hogy a festési menet helyesen lett-e beprogramozva
1b. A reagenst tartalmazó ampullákat nem a megfelelı sorrendben helyezte be a reagenstartókba
1b. Ellenırizze a Reagenstérképen a reagenst tartalmazó ampullák megfelelı helyét.
1c. Az ampullában lévı reagens mennyisége nem elegendı
1c. A festés elıtt ellenırizze, hogy elegendı reagens került-e az ampullákba. A szükséges mennyiségeket lásd a Reagenstérképen
1d. Nátrium-azid van a mosóoldatban
1d. Használjon a készletben mellékelt mosópufferbıl frisset
1e. A felvitt metszeteket ért túlzott hıhatás a deparaffinálást megelızıen, és a hı indukálta antigén feltárás a látható HER2 immunreaktivitás elvesztéséhez vezethet.
1e. Szobahımérséklető levegın szárítsa a szövetmetszeteket legalább 12 órán át, illetve amíg meg nem száradnak. Alternatív módszerként a szárítás végezhetı 37 °C fokon egy éjszakán át vagy 60 °C fokon maximum egy órán át. A metszetek magasabb hımérsékleten történı szárítása csak kalibrált kemencében, egyenletes hıeloszlás mellett végezhetı (17).
2a. Az epitóp kinyerése nem megfelelı
2a. Ügyeljen arra, hogy az Epitópkinyerı oldat hımérséklete teljes 40 percen át tartsa a 95–99 °C-ot, majd hagyja további 20 percig hőlni
2b. A reagens inkubálási ideje nem megfelelı
2b. Nézze át a Festési eljárás címő rész utasításait
2c. Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
2c. Ügyeljen arra, hogy a páciens szövetmintája ne legyen túlfixálva, és ne használjon helyettesítı fixálószert
2d. A felvitt metszeteket ért túlzott hıhatás a deparaffinálást megelızıen, valamint a hıindukált antigénfeltárás a látható HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését okozhatja.
2d. Szobahımérséklető levegın szárítsa a szövetmetszeteket legalább 12 órán át, illetve amíg meg nem száradnak. Alternatív módszerként a szárítás végezhetı 37 °C-on egy éjszakán át vagy 60 C-on maximum egy órán át. A etszetek magasabb hımérsékleten történı szárítása csak kalibrált kemencében, egyenletes hıeloszlás mellett
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 23/51
Emlırák végezhetı (17).
3. A lemezek háttérfestése túl erıs
2.e Az alkalmazott reagensmennyiség nem elegendı
2.e Ellenırizze a szövetmetszet méretét (22 mm x 22 mm) és az alkalmazott reagensmennyiséget
3a. A paraffin nincs teljesen eltávolítva
3a. Használjon friss tisztítóoldatot, és járjon el a B.1 szakaszban foglaltak szerint
3b. Keményítıtartalmú adalékot használtak a metszetek tárgylemezekre rögzítéséhez
3b. A metszeteknek az üveg tárgylemezekhez való rögzítése során kerülje a keményítıtartalmú adalékok használatát. Sok adalék immunreaktív.
3c. A lemezek nem alaposan lettek leöblítve
3c. Ügyeljen arra, hogy az Autostainer a festés elıtt megfelelıen fel legyen töltve. Ügyeljen arra, hogy a teljes eljárás során a megfelelı puffer használja. Használjon friss puffer- és mosóoldatot
3d. A metszetek megszáradtak a festési eljárás alatt
3d. Ellenırizze, hogy a reagensbıl megfelelı mennyiséget használe a lemezekhez. Ügyeljen arra, hogy az Autostainer készüléket lezárt tetıvel használja, és hogy az ne legyen kitéve túl nagy hınek vagy huzatnak.
3e. A metszetek kiszáradtak az Autostainer készülékbe töltés során
3e. Ügyeljen arra, hogy a metszetek a puffertıl nedvesek maradjanak a betöltés és a menet indítása során.
3f.
3f.
Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
Ügyeljen arra, hogy a jóváhagyott fixálószert használja. Más fixálószer túl erıs háttérfestést okozhat
3g. A reagensek nem specifikus kötése a szövethez
3g. Ellenırizze a minta fixálási módját és nekrózis jelenlétét
4. A szövet leválik a lemezrıl
4a. Nem megfelelı lemez használata
4a. Használjon szilanizált lemezeket, például Kódszám: S3003 Dako Silanized Slides, SuperFrost Plus vagy poly-L-lysine bevonatú lemezeket
5. Túlságosan erıs specifikus festés
5a. Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
5a
5b. Nem megfelelı hıforrás használata epitópkinyeréshez, pl. gızölı, mikrohullámú sütı vagy autokláv
5b. Ügyeljen arra, hogy csak vízfürdıt használjon az epitóp kinyerésének lépésénél
5c. A reagens inkubálási ideje túl hosszú
5c. Nézze át a Festési eljárás címő rész utasításait
5d. Nem megfelelı mosóoldatot
5d. Csak a készlethez ajánlott
(128387-001)
Ügyeljen arra, hogy csak jóváhagyott fixálószert és fixálási módot alkalmazzon
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 24/51
Emlırák alkalmaztak 6. Az 1+ kontrollminta sejtvonalának halvány festése
mosópuffert használja
6a. Helytelen epitópkinyerı protokoll alkalmazása
6a. Merítse a lemezeket az elımelegített epitópkinyerı oldatba. Az epitópkinyerı oldat hımérsékletét emelje ismét 95–99 °C-ra, és végezzen elıkezelést teljes 40 percen át
6b. Nincs reakció a szubsztrát kromogén oldattal (DAB)
6b. Ügyeljen arra, hogy a teljes 10 perces inkubálási idıt kitöltse. Ügyeljen arra, hogy csak egy csepp DAB kromogént adjon a 1 mL DAB pufferelt szubsztráthoz
6c. A kontrollminta bomlása
6c. Ellenırizze a csomagoláson feltüntetett lejárati dátumot és a készlet tárolási körülményeit
7. Az Epitópkinyerı oldat felmelegítéskor zavaros
7.
Felmelegítéskor az oldat zavarossá válik
7.
Ez normális jelenség és nem befolyásolja a festést
8. Az Epitópkinyerı oldat tárolás közben zavarossá válik (felmelegítés elıtt)
8.
Az oldatot nem megfelelıen tárolták vagy túllépték az oldat lejárati idejét
8.
Ellenırizze a csomagoláson feltüntetett lejárati dátumot és a készlet tárolási körülményeit. Dobja ki az Epitópkinyerı oldatot
MEGJEGYZÉS: Ha a probléma a fenti okok egyikének sem tulajdonítható, vagy ha az ajánlott korrekciós lépés nem oldja meg a problémát, további segítségért hívja a Dako technikai szolgálatát. A festési technikákkal és a minta elıkészítésével kapcsolatos további tudnivalókat a Dako korábban hivatkozott kézikönyvében találja (19) (kapható a Dako-nál), Atlas of Immunohistology (30) and Immunoperoxidase Techniques. A Practical Approach to Tumor Diagnosis (31).
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 25/51
Gyomorrák Összefoglaló és magyarázat – gyomor Háttér A humán HER2 gén (más néven ERBB2 vagy NEU) kódolja a gyakran HER2 fehérjének vagy p185HER2-nek nevezett fehérjét. A HER2 fehérje egy membránreceptor tirozin-kináz, amely homológ az epidermális növekedésifaktor-receptorral (EGFR vagy HER1) (1–8). A HER2 fehérje normális komponens, amely többféle epiteliális sejttípusban is expresszálódik (8).
A HER2 fehérje túlzott mértékő expresszióját és a HER2 gén amplifikációját gyomorrákban számos tanulmányban kimutatták (32). IHC vagy FISH módszerrel a páciensek körülbelül 20%-ában mutatható ki a HER2-pozitivitás (32). Preklinikai in vitro és in vivo tanulmányok során bebizonyították, hogy a trasztuzumab (Herceptin™) hatékony különbözı gyomorrák-modellekben, és ez több klinikai tanulmány elindításához vezetett (32–36). Egy III. fázisú BO18255 tanulmányban, a ToGA vizsgálatban, inoperábilis, lokálisan elırehaladott, kiújuló és/vagy áttétes gyomoradenokarcinómában vagy gyomor-nyelıcsı határon lévı adenokarcinómában szenvedı HER2-pozitív betegeket randomizáltak, majd 5-FU vagy capecitabin és ciszplatin kezelésben részesítették ıket, vagy külön, vagy trasztuzumabbal kombinációban. Azon páciensek esetében, akik trasztuzumabból és kemoterápiából álló, kombinált kezelésben részesültek, az összesített túlélés (overall survival – OS) statisztikailag szignifikáns növekedését figyelték meg (37, 38). A trasztuzumab humanizált monoklonális antitest, amely nagy affinitással kötıdik a HER2 fehérjéhez, és kimutatottan gátolja a HER2 fehérjét emelkedett mértékben expresszáló humán tumorsejtek proliferációját in vitro és in vivo (33–36). Jellemzık A ToGA vizsgálatba való besorozáshoz 3803 beteg HER2 státuszát mérték fel. Ebben a vizsgálatban kimutatták mind a HER2 fehérje túlzott expresszióját IHC módszerrel (HercepTest™, Dako), mind a HER2 gén amplifikációját FISH (HER2 FISH pharmDx™, Dako) módszerrel. Értékelhetı vizsgálati eredményeket kaptak az IHC vagy a FISH vizsgálattal 3665 mintánál, 3280 mintánál pedig mindkét vizsgálattal. A ToGA vizsgálat eredményei azt mutatták, hogy IHC vagy FISH vizsgálattal meghatározva, a ToGa HER2 kiválasztási kritériumai alapján az elırehaladott gyomorrákban szenvedı betegek 22,1%-a volt HER2-pozitív (38).
Kérjük, hogy a HercepTest™ használatával kapcsolatos további információkat illetıen tájékozódjon a Herceptin™ terméktájékoztatójából olyan páciensek értékelésében, akiknél megfontolandó a trasztuzumabkezelés.
Az eljárás elve – gyomor A HercepTest™ a rutinszerően feldolgozott, paraffinba ágyazott minták teljes kétlépéses immuncitokémiai festési eljárásához szükséges reagenseket tartalmazza. A humán HER2 fehérjével szembeni primer, nyúl eredető antitestekkel végzett inkubálást követıen a készlet a dextrán technológiára alapuló, azonnal felhasználható megjelenítı-reagenst alkalmazza. A reagens közös dextrán polimer alapra kapcsolt másodlagos, kecske eredető, nyúlellenes immunglobulin-molekulákból és torma-peroxidáz molekulákból áll, így kiküszöbölhetı a kapcsolt ellenanyag és a peroxidáz-konjugált ellenanyag egymást követı alkalmazása. A Megjelenítı reagens humán immunglobulinokkal és magzati borjú szérummal való keresztreakcióját szilárdfázisú abszorpcióval távolítjuk el. Az ezután hozzáadott kromogén enzimatikus átalakulása látható reakcióterméket eredményez az antigén helyén. A minta ezután kontrasztfesthetı és fedılemezzel ellátható. Az eredmények fénymikroszkóppal értelmezhetık. A festési menetek validálásához három darab, formalinban fixált, paraffinba ágyazott humán emlırák-sejtvonalat tartalmazó, 0, 1+ és 3+ festési intenzitású kontrollmintát mellékelünk. E sejtvonalak festési intenzitása korrelál a receptorok sejtenkénti számával.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 26/51
Gyomorrák A HercepTest™, Kódszám: K5207, felhasználható az Autostainer berendezésekkel végzett automatikus festéshez.
Reagensek – gyomor Mellékelt anyagok Az alább felsorolt anyagok 50 teszt elvégzésére elegendı (50 minta a HER2 fehérje primer antitestével inkubálva, illetve 50 minta a megfelelı negatív kontroll reagenssel inkubálva). A tesztek számát a következı anyagokból szövetmetszetenként (22 mm x 22 mm) 200 µL felhasználásával számítottuk: 1, 2, 3 és 4 jelő ampullák és szubsztrát kromogén oldat (DAB). A észlet legfeljebb 15 különálló festési menethez elegendı anyagot tartalmaz. Ampulla száma
Mennyiség
1
2 x 11 mL
Leírás
Peroxidáz-blokkoló reagens: 3% hidrogén-peroxidban 15 mmol/L nátrium-azid (NaN3). 2
1 x 12 mL Nyúl anti-humán HER2 fehérje: Használatra kész, affinitás alapján tisztított antitest. Kiszerelés: 0,05 mol/L Tris/HCl, 0,1 mol/L NaCl, 15 mmol/L NaN3, pH 7,2; stabilizáló fehérjét tartalmaz. Immunogén: A HER2 fehérje szintetikus C-terminálszakasza (intracitoplazmás rész) KLH-hoz (keyhole limpet hemocianin) kapcsolva. Specificitás: HER2 fehérje. Tisztításai módszer: Az antitest affinitás alapján tisztított immobilizált HER2 fehérje peptid felhasználásával.
3
2 x 11 mL Megjelenítı reagens: Torma-peroxidázzal és affinitás alapján tisztított kecske eredető nyúlellenes immunoglobulinnal konjugált dextrán polimer. Tris/HCl pufferben, stabilizáló fehérjével és mikrobaölı szerrel kiszerelve.
4
1 x 12 mL Negatív kontrollreagens: Normál nyúl szérum immunglobulin frakciója a HER2 fehérje antitestének megfelelı fehérjekoncentrációban. Kiszerelés: 0,05 mol/L Tris/HCl, 0,1 mol/L NaCl, 15 mmol/L NaN3, pH 7,2; stabilizáló fehérjét tartalmaz.
5
15 x 11 mL DAB puffer-szubsztrát: Szubsztrát pufferoldat, pH 7,5; <0,1% hidrogén-peroxidot, stabilizátort, stimulálót és mikrobaölı szert tartalmaz.
6
3 x 3 mL DAB kromogén: 5%-os 3,3’-diaminobenzidin tetrahidroklorid kromogén oldat.
7
3 x 500 mL Epitópkinyerı oldat (Containing Detergent) (10x): 0,1 mol/L-es citrátpuffer detergenssel.
8
2x1L Mosó puffer (10x): Tris/HCl puffer tisztítószerrel és mikrobaölı szerrel.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 27/51
Gyomorrák 3 x 5 lemez Kontroll lemezek: Minden lemezen három formalinban fixált, paraffinba ágyazott metszet a HER2 fehérje expressziójának eltérı szintjeit mutató emlıkarcinóma sejtvonalakkal: MDA-231 (0), MDA-175 (1+) és SK-BR-3 (3+). A kontroll lemezek hıkezeltek, így a metszetek jobban tapadnak az üveghez. A metszetek jobb tapadását célzó további hıkezelés ronthatja a megfestıdést.
MEGJEGYZÉS: Minden reagenst, epitópkinyerı oldatot és mosópuffert kifejezetten e teszt céljára készítettünk. A teszt megadott jellemzıinek elérése érdekében ne helyettesítse az anyagokat. Mosópuffernek azonban a Dako S3006-os kódszámú terméke is használható. Szükséges, de nem mellékelt anyagok Ammónium-hidroxid, 15 mol/L 37 mmol/L-re hígítva Kontrasztfestés: Hematoxilin, például vízalapú Mayer's Hematoxylin, Dako Kódszám: S3301 (lásd: HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.4) Fedılemezek Desztillált vagy ionmentesített víz (mosóvíz) Szárító kemence, 60 °C vagy alacsonyabb hımérséklet fenntartására alkalmas Etanol, abszolút és 95%-os Fénymikroszkóp (4–40x optikai nagyítás) Rögzítıszer, például a Dako Faramount, Kódszám: S3025, vagy Glycergel™, Kódszám: C0563 Pozitív és negatív szövetek a folyamatok ellenırzéséhez (lásd a Minıség-ellenırzés címő részt) Tárgylemezek, SuperFrost Plus, poly-L-lysine bevonatú lemezek, vagy Dako Silanized Slides, Kódszám: S3003 (lásd A minta elıkészítése címő részt) Festıedények vagy fürdık Stopperóra (2–40 perces idıközök mérésére alkalmas) Vízfürdı fedéllel (az Epitópkinyerı oldatot 95–99 °C-on képes tartani) Xilén, toluén vagy xilént helyettesítı anyag A K5207 az Autostainer Immunostaining System, Kódszám: S3400, rendszerrel való használathoz lett kialakítva. Az Autostainer szükséges komponenseit lásd az Autostainer felhasználói útmutatójában.
Tárolás – gyomor 2–8 °C között tárolandó. A csomagoláson feltüntetett lejárati dátumon túl ne használja fel a készletet. Ha a reagenseket a jelen tájékoztatóban leírtaktól eltérı feltételek között tárolják, akkor a felhasználónak ellenıriznie kell a feltételeket (14a, 14b). Felhívjuk a figyelmét arra, hogy a kontroll-lemezeket is 2–8 °C-on kell tárolni. A termék instabilitásának semmilyen nyilvánvaló jele nincs. Ezért a beteg mintáival párhuzamosan pozitív és negatív kontrollokat kell futtatni. Ha nem várt festés figyelhetı meg, mely a laboratóriumi eljárások módosulásával nem magyarázható, és a HercepTest™ termékkel kapcsolatba hozható probléma gyanúja merül fel, azonnal vegye fel a kapcsolatot a Dako mőszaki szolgálatával.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 28/51
Gyomorrák A minta elıkészítése – gyomor A gyomor adenokarcinómájából vett mintákat, beleértve a gyomor-nyelıcsı átmenetbıl származó biopsziákat, kimetszett szöveteket és rezekátumokat is, megfelelıen kell kezelni annak érdekében, hogy a szövetet immuncitokémiai festés céljára megırizzük. A mintákon a szövetelıkészítés szabványos módszerét kell alkalmazni (15). Kis biopsziás minták vizsgálata esetében ügyeljen arra, hogy az intakt tumormorfológia megmaradjon, illetve, hogy elegendı tumorsejt legyen az IHC-értékeléshez. Ha a HercepTest™ analízist biopsziás mintán hajtja végre, a HER2-státusz megbízható meghatározása érdekében javasolt, hogy több (7–8) értékelhetı biopsziás minta álljon rendelkezésre a tumor különbözı régióiból. Paraffinba ágyazott metszetek Semleges, pufferelt formalinban tartósított és paraffinba ágyazott szövetek alkalmasak a használatra. A mintákat pl. 3 vagy 4 mm vastagságú blokkokra kell vágni, majd 18–24 órán keresztül semleges pufferelt formalinban kell ıket fixálni. A biopsziás mintákat a ToGA vizsgálat során 6–8 órán át fixáltuk (a tanulmányra vonatkozóan lásd (37)). A szöveteket ezután dehidratálja alkoholokban és xilénben, majd olvasztott parafinnal 60 °C-nál nem magasabb hımérsékleten infiltrálja. A megfelelıen fixált és beágyazott, HER2 fehérjét kifejezı szövetek hővös helyen korlátlan ideig tárolhatók a metszetkészítés és felhelyezés elıtt (15–25°C) (15, 16). Az Egyesült Államokban az kl inikai laboratórium fejlesztésérıl szóló 1988-as törvény 42 CFR 493.1259(b) szakasza kimondja, hogy „A megfestett lemezeket a vizsgálat napjától számított legalább tíz évig, a feldarabolt mintákat pedig a vizsgálat napjától számított legalább két évig a laboratóriumnak meg kell ıriznie” (16). A szövetmintákat 4–5 µm vastagságúra kell metszeni és tárgylemezre kell helyezni, majd szobahımérséklető levegın legalább 12 órán át (vagy száradásig), vagy 37 °C -on egy éjszakán át, vagy 60 °C-on egy órán át kell száríta ni. FIGYELMEZTETÉS: Egy óránál hosszabb ideig tartó 60 °C fokos vagy annál magasab b hıhatás a speciális membránasszociált HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését vagy elvesztését okozhatja (17). Az antigenitás megırzése érdekében a tárgylemezre (SuperFrost Plus, Poly-L-lysine vagy szilanizált tárgylemez) vitt szövetmetszeteket 4–6 héten belül kell megfesteni, ha szobahımérsékleten (20–25 °C) tárolják ıket (18). A HER2 fehérje kiértékeléséhez és a tumorban jelenlétének ellenırzéséhez szükséges lemezeket egyszerre készítse el. Legalább 5 lemez az ajánlott, 1 lemez a tumor jelenlétének megállapításához, 2 lemez a HER2 fehérje értékeléséhez (1 lemez a 2. számú ampullával, 1 pedig a 4. számú ampullával történı inkubáláshoz), és 2 lemez biztonsági tartaléknak. A HercepTest™ kalciummentesített szöveteken való használatának validálása nem történt meg, így az nem ajánlott. A mintakészítéssel kapcsolatos további tudnivalókért tanulmányozza a Dako „Education Guide: Immunohistochemical Staining Methods” (19) címő kiadványát, illetve a szakirodalomjegyzékben 15. és 16. tétel alatt hivatkozott kiadványokat.
A szövetek kezelése festés elıtt Az assay optimális mőködéséhez specifikus epitópkinyerı módszert, 10 mmol/L citrát puffert kell alkalmazni. Az Epitópkinyerı oldat a HercepTest™ készletben megtalálható. A módszerben a 10 mmol/L citrát pufferbe (20) merített lemezeken fixált metszeteket melegítjük olyan kalibrált vízfürdıbe merítve, amely képes fenntartani az Epitópkinyerı oldat szükséges hımérsékletét (95–99 °C). A tengerszint felett magasa bban elhelyezkedı laboratóriumok maguk találják meg a legjobb módszert a vízfürdı szükséges hımérsékletének fenntartásához. Az epitóp kinyerését vízfürdıben kell végezni. Más melegítési módokat is teszteltek, de azok nem adtak reprodukálható eredményeket. Az epitóp kinyerése után azonnal megkezdjük a festési eljárást. A leírt eljárástól való eltérés befolyásolhatja az eredményeket.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 29/51
Gyomorrák Óvintézkedések – gyomor 1. In vitro diagnosztikai alkalmazásra szolgál. 2. Csak foglalkozásszerő felhasználók részére! 3. ampulla, Peroxidáz-blokkoló reagens, 3%-os hidrogén-peroxid oldatot tartalmaz. Szakembereknek kérésre anyagbiztonsági adatlapot adunk. 4. ampulla, DAB kromogén, tartalma ≥5-<10% biphenyl-3,3',4,4'-tetrayltetraammonium tetrachloride, felirata:
Veszély
H350 H341 P201 P280 P308 + P313 P405 P501
Rákot okozhat. Feltehetıen genetikai károsodást okoz. Használat elıtt ismerje meg az anyagra vonatkozó különleges utasításokat. Védıkesztyő/védıruha/szemvédı/arcvédı használata kötelezı. Expozíció vagy annak gyanúja esetén: orvosi ellátást kell kérni. Elzárva tárolandó. A tartalom/edény hulladékként történı elhelyezését a helyi, regionális, országos és nemzetközi szabályozásokkal összhangban kell elvégezni.
Általános szabály, hogy 18 év alatti személyek nem dolgozhatnak ezzel a termékkel. A felhasználó legyen alaposan tájékozott a helyes munkavégzési eljárást, a termék veszélyes tulajdonságait és a szükséges biztonsági intézkedéseket illetıen. További információért olvassa el az anyagbiztonsági adatlapot. 5. A 8. ampullában lévı mosópuffer≥5-<10% 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol hydrochloride, and ≥0.1-<0.2% 5-bromo-5-nitro-1,3-dioxane tartalmaz. Allergiás reakciót okozhat. A Wash Buffer (10x) a következı címkézéssel van ellátva:
Figyelem
H319 P280 P264 P305 + P351 + P338
Súlyos szemirritációt okoz. Szemvédı/arcvédı használata kötelezı. A használatot követıen a kezet alaposan meg kell mosni. SZEMBE KERÜLÉS esetén: Több percig tartó óvatos öblítés vízzel. Adott esetben a kontaktlencsék eltávolítása, ha könnyen megoldható. Az öblítés folytatása.
6.
A termék nátrium-azidot (NaN3) tartalmaz, mely tiszta formában nagyon mérgezı vegyület. Bár a termékben található koncentráció besorolása alapján nem veszélyes, a nátrium-azid reakcióba léphet az ólom és réz vízvezetékekkel, mely során rendkívül robbanékony fém-azid lerakódások alakulhatnak ki. Megsemmisítéskor, megelızendı a fém-azidok vízvezetékekben történı lerakódását, nagy mennyiségő vízzel kell leöblíteni (21, 22).
7.
A 2., 3.és 4. ampulla állati eredető anyagot tartalmaz. Mint bármely biológiai eredető termék esetén, a megfelelı kezelési eljárásokat kell alkalmazni.
8.
A kontroll lemezeket és mintákat fixálás elıtt és után, valamint minden velük érintkezı anyagot fertızésre alkalmasként kezeljen, és a megfelelı óvintézkedésekkel mentesítse (23). A reagenseket soha ne szívja fel szájjal a pipettába, és ügyeljen arra, hogy a
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 30/51
Gyomorrák reagensek és a minták ne érintkezzenek a bırrel és a nyálkahártyákkal. Ha a reagensek érzékeny területtel érintkeznek, mossa le bı vízzel. 9.
Óvja a reagenseket a mikrobaszennyezıdéstıl, hogy elkerülje a nem specifikus megfestıdést.
10. A megadottól eltérı inkubálási idık, hımérsékletek vagy módszerek hibás eredményeket adhatnak. Egy óránál hosszabb ideig tartó 60 °C fokon vagy annál magasabb hımérsékleten történı szárítás a speciális membrán-asszociált HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését vagy elvesztését okozhatja (17). 11. A reagensek az optimális mértékben vannak hígítva. További hígítás az antigén gyengébb festıdését okozhatja. 12. Minden reagenst, epitópkinyerı oldatot és mosópuffert kifejezetten e teszt céljára készítettünk. A teszt megadott jellemzıinek elérése érdekében ne helyettesítse az anyagokat. Mosópuffernek azonban az S3006-os kódszámú termék is használható. 13. A Megjelenítı reagens és a DAB kromogén károsodhat, ha túlzottan erıs fény éri. Ne tárolja a rendszer komponenseit, és ne végezze a festést erıs fényben, például közvetlen napsütésben. 14. Viseljen megfelelı személyi védıeszközöket a bırrel és szemmel történı érintkezés elkerülése érdekében. További információért olvassa el az anyagbiztonsági adatlapot. 15. A paraffinmaradványok hamis negatív eredményeket okozhatnak. 16. A gyomor adenokarcinómájából, ill. a gyomor-nyelıcsı átmenet karcinómájából származó megfestett biopsziás minták HercepTest™ eredményeinek pontos értékeléséhez ajánlott, hogy egy legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló csoportot vizsgáljon meg. A legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló csoport 5 HER2-re jellemzı festést mutató sejt kapcsolatát jelenti. 17. A gyomorrák biopsziás mintáinak heterogén volta miatt fontos, hogy a megbízható eredmény érdekében több (7–8), a tumor különbözı helyeirıl származó biopsziás darabon végezze el a HER2 IHC vizsgálatot. 18. Az ajánlottól eltérı reagensmennyiség használata esetén elıfordulhat, hogy a HER2 immunreaktivitás nem lesz látható. A 22 mm x 22 mm méretőnél nagyobb szövetmetszetek esetében 2-3-szor 200 µL reagensre van szükség, 2-3 automata alkalmazási területen alkalmazva. 19. Ajánlott egynél több gyomorrák reszekcióból származó szövetblokk vizsgálatának elvégzése, ha a vizsgálati minta nagy fokú heterogenitást mutat (41).
HASZNÁLATI UTASÍTÁS – gyomor A.
A reagens elıkészítése
Érdemes a következı reagenseket a festés elıtt elkészíteni:
A.1 Epitópkinyerı oldat Desztillált vagy ionmentesített vízzel 1:10 arányban hígítson a 7. ampulla tartalmából (Epitópkinyerı oldat x 10) a tervezett festési eljáráshoz elegendı mennyiséget. A fel nem használt hígított oldat 2–8 °C-on egy hónapig tárol ható. A hígított oldatot kezelje hulladékként, ha kicsapódás látható benne.
A.2 Mosópuffer Desztillált vagy ionmentesített vízzel 1:10 arányban hígítson a 8. ampulla tartalmából (Mosópuffer x 10) a mosáshoz szükséges mennyiséget. A fel nem használt hígított puffer 2–8 °C-on egy hónapig tárolható. A puffert öntse ki , ha kicsapódás látható benne. Az Autostainer programja szerint leöblíti a szövetmetszeteket a peroxidáz-blokkoló reagens és a szubsztrát kromogén oldat után. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy ezekben az öblítési
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 31/51
Gyomorrák lépésekben desztillált (vagy ionmentesített) víz vagy mosópuffer egyaránt használható. Minden más öblítési lépésben mosópuffert kell használni.
A.3 Szubsztrát kromogén oldat (DAB) Készítsen szubsztrát kromogén oldatot a 6-os ampullából 11 csepp (cseppenként 25–30 µL) DAB kromogén egy 5-ös ampulla DAB pufferelt szubsztráthoz (11 mL) adásával és összekeveréséve. Az elkészített szubsztrát kromogén oldat (DAB) 2–8 °C-on tárolva körülbelül 5 napig stabil. Ezt az oldatot felhasználás elıtt alaposan keverje fel. Az oldatban esetleg létrejövı csapadék nem befolyásolja a festés minıségét. MEGJEGYZÉS: Az 6. ampullában lévı DAB kromogén színe átlátszótól világos levendulaszínig változhat. Ez nem befolyásolja a termék viselkedését. A hígítást a jelen tájékoztatóban foglaltak szerint végezze. Túl nagy mennyiségő DAB kromogén hozzáadása a DAB puffer-szubsztráthoz a pozitív jel romlását eredményezi.
A.4 Kontrasztfestés A DAB festési reakció színes végterméke alkoholban és vízben oldhatatlan. Alkalmazzon hematoxilines kontrasztfestést, és a hematoxilin festési intenzitását állítsa be a Dako „HercepTest™ értelmezési kézikönyv – Gyomorrák” címő dokumentumban bemutatott szinthez hasonlóan. Alkohol- vagy vízalapú hematoxilin, például az S3301-es kódszámú Dako Mayer's Hematoxylin használható. A hematoxilines kontrasztfestés után végezzen alapos öblítést desztillált vagy ionmentesített vízzel, majd merítse a szöveteket 37 mmol/L-es szalmiákszesz fürdıjébe (lásd a B.2 szakasz 3. lépését). A szalmiákszesz (37 mmol/L) 2,5 mL 15 mol/L-es (koncentrált) ammonium-hidroxid és1 liter desztillált vagy ionmentesített víz keverésével készül. A fel nem használt 37 mmol/L-es szalmiákszesz szobahımérsékleten (20–25 °C) szorosan lezárt palackban legfeljebb 12 hónapig tárolható.
A.5 Rögzítıszer Nem vizes, tartós rögzítıszer használata ajánlott. Azonban vízalapú rögzítı is elfogadható. Dako Faramount Aqueous Mounting Medium, Ready-to-Use, Kódszám: S3025, vagy Glycergel™ Mounting Medium, Kódszám: C0563 ajánlott vizes rögzítéshez. A felhasználás elıtt körülbelül 40 (± 5)°C-ra melegítve folyósítsa me g a Glycergel™-t.
B.
Festési eljárás az Autostainer készüléken
B.1 Megjegyzések az eljárással kapcsolatban A felhasználó használat elıtt alaposan tanulmányozza ezeket az utasításokat, és ismerkedjen meg minden komponenssel és mőszerrel (lásd Óvintézkedések). Az immunfestés elıtt a reagenseket hozza szobahımérsékletre (20–25 °C). Ugyanígy minden inkubálást szobahımérsékleten végezzen. Ne hagyja, hogy a szövetmetszetek megszáradjanak a lemezek Autostainer készülékbe töltése és festési eljárás közben. A megszáradt szövetmetszeteken erısebb nem specifikus festıdés jelentkezhet. Ha a festési eljárást meg kell szakítani, a primer antitest inkubálása után a lemezek szobahımérsékleten (20–25 °C) legfeljebb egy óráig a puffe rben tarthatók anélkül, hogy a festés eredményességét ez befolyásolná. Paraffinmentesítés és rehidratálás: Festés elıtt a szövetmetszeteket a beágyazó anyag eltávolításához paraffinmentesíteni, majd rehidratálni kell. Ügyeljen a paraffin teljes eltávolítására. A visszamaradó beágyazó anyag nagyobb nem specifikus megfestıdést eredményezhet. Ezt a lépést szobahımérsékleten (20–25 °C) végezze. 1.
Helyezze a lemezeket xilénfürdıbe, és inkubálja 5 (±1) percig. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 32/51
Gyomorrák 2.
Ütögetéssel távolítsa el a fölös folyadékot, és 3 (±1) percre helyezze a lemezeket abszolút etanolba. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
3.
Ütögetéssel távolítsa el a fölös folyadékot, és 3 (±1) percre helyezze a lemezeket 95%-os etanolba. Cseréljen fürdıt és ismételje meg egyszer.
4.
Ütögetéssel távolítsa el a felesleges folyadékot, majd legalább 30 másodpercre helyezze a lemezeket desztillált vagy ionmentesített vízbe. A B.2 szakasz 1. lépésében foglaltak szerint kezdje meg az epitóp kinyerését.
A xilénes és alkoholos oldatokat 40 lemez után cserélni kell. Xilén helyett használható toluén vagy xilént helyettesítı anyag, például Histoclear™. MEGJEGYZÉS: A készletben található reagensek és utasítások az optimális teljesítmény eléréséhez lettek összeállítva. A reagensek további hígítása, az inkubálási hımérséklet megváltoztatása hibás vagy ellentmondó eredményeket adhat. A felhasználó laboratóriumában a szövetek feldolgozásának és a technikai eljárásoknak az eltérései érvényteleníthetik az assay eredményeit a betegek Herceptin™ terápiába való beválasztását illetıen.
B.2 Festési protokoll Szobahımérsékleten, 20–25 °C között. 1. lépés: Epitóp kinyerése Töltse meg a festıedényeket, pl. Coplin-csészéket hígított Epitópkinyerı oldattal (lásd HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.1 szakasz). Helyezze az Epitópkinyerı oldatot tartalmazó festıedényeket vízfürdıbe. Melegítse fel a vízfürdıt és az Epitópkinyerı oldatot 95–99 °C-ra. Felmelegítéskor az Epitópkinyerı oldat zavarossá válik. A hımérséklet stabilizálása és a párolgás megakadályozása érdekében fedje le a csészéket. Merítse a szobahımérséklető, paraffinmentesített lemezeket a festıedényekben lévı elıre felmelegített Epitópkinyerı oldatba. MELEGÍTSE FEL A VÍZFÜRDİT ÉS AZ EPITÓPKINYERİ OLDATOT ISMÉT 95–99 °C-RA. Inkubálja 40 (±1) percig 95–99 °C-on. A lemezekkel együtt vegye ki a teljes edényt a vízfürdıbıl. Hagyja a lemezeket az epitópkinyerı oldatban 20 (±1) percig szobahımérsékleten hőlni. Öntse le az Epitópkinyerı oldatot, majd öblítse le a metszeteket a mosópufferben (lásd HASZNÁLATI ÚTMUTATÓ, A.2 szakasz). Az optimális eredmény elérése érdekében az epitóp kinyerése után és a festés megkezdése elıtt 5–20 percig áztassa a metszeteket a mosópufferben. MEGJEGYZÉS: Az Epitópkinyerı oldat egyszeri felhasználásra készült. Ne használja fel ismét. 2. lépés: Autostainer eljárás 1. Az Autostainer által a HercepTest™ programban létrehozott leírásból tájékozódjon a szükséges programidıkrıl és reagensmennyiségekrıl (a konkrét mennyiségeket lásd az alábbi 4. pontban). 2. Helyezze az Autostainer reagensampulláit az Autostainer kosarába a számítógép által létrehozott reagenselrendezés szerint. 3. Töltse be a lemezeket az Autostainer készülékbe a számítógép által létrehozott lemezelrendezés szerint. 4. Állítsa be és indítsa el a HercepTest™ programot. A következıkben a program futásának áttekintése olvasható:
(128387-001)
Öblítés
200 µL peroxidáz blokkoló reagens – 5 perc
Öblítés
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 33/51
Gyomorrák
200 µL priemr Anti-HER2 fehérje (vagy negatív kontrollreagens) – 30 perc
Öblítés
200 µL Megjelenítı reagens – 30 perc
Öblítés
Öblítés
Váltás
200 µL szubsztrát kromogén oldat (DAB) – 10 perc
A szubsztrát kromogén lépés után öblítse le a lemezeket ionmentesített vízzel MEGJEGYZÉS: Az Autostainer 01-es hardververziója a lemezeket pufferben öblíti. Ezért a lemezeket az Autostainer készülékbıl való kivételük után ionmentesített vízzel le kell öblíteni. 3. lépés: Kontrasztfestés (az utasítások hematoxilinre vonatkoznak) Vegye ki a lemezeket az Autostainer készülékbıl és az alább leírt módon végezze el a hematoxilines kontrasztfestést. Merítse a lemezeket hematoxilin fürdıjébe. A használt hematoxilin erısségétıl függıen 2–5 percig inkubálja. Desztillált vagy ionmentesített víz fürdıjében óvatosan öblítse le a lemezeket. Ügyeljen arra, hogy ne maradjon rajtuk hematoxilin. Opcionális: Mártsa a lemezeket 10-szer 37 mmol/L-es szalmiákszesz fürdıjébe (lásd az A.4 szakaszt). Desztillált vagy ionmentesített víz fürdıjében óvatosan öblítse a lemezeket 2–5 percig. MEGJEGYZÉS: Az inkubálás hosszától és a felhasznált hematoxilin erısségétıl függıen a kontrasztfestés a sejtmagok halvány vagy sötétkék elszínezıdését eredményezi. A túlzott vagy elégtelen kontrasztfestés akadályozhatja az eredmények helyes értelmezését. 4. lépés: Felhelyezés Nem vizes, tartós rögzítıszer használata ajánlott. Azonban vízalapú rögzítıszer is elfogadható. A minták vizes rögzítıszerrel, pl. az S3025-ös kódszámú Dako Faramount, vagy a C0563-as kódszámú Glycergel™ rögzítıszerrel rögzíthetık és lefedhetık. MEGJEGYZÉS: A lemezek alkalmas idıben bármikor kiértékelhetık. Azonban némi fakulás következhet be, ha a vizes rögzítıszerrel lefedett lemezeket egy hétnél hosszabb ideig erıs fény éri. A fakulás minimálisra csökkentése érdekében a lemezeket sötét helyen, szobahımérsékleten (20–25 °C között) tárolja.
Minıség-ellenırzés – gyomor A szövetek fixálásának és a felhasználó laboratóriumában történı feldolgozásának és beágyazásának eltérései az eredmények jelentıs szórását okozhatják, ezért a Dako által biztosított ellenırzı minták mellett szükséges a rendszeres belsı ellenırzés. Az Egyesült Államokban további tudnivalókért lásd a College of American Pathologists (CAP) Immunhisztokémiai minısítı programjának minıség-ellenırzési követelményeit, a CLSI (korábban NCCLS) Immuncitokémiai Minıségbiztosítás Elfogadott Iirányelveit (24), valamint az irodalomjegyzék 25. számú munkáját. 8. táblázat. A napi minıség-ellenırzés célja. Szövet: A páciens mintájával azonos módon fixált és feldolgozott
Specifikus antitest és szekunder antitest
Nem specifikus antitest* vagy puffer és a specifikus antitesttel használttal azonos szekunder antitest
Pozitív kontroll: A kimutatni kívánt célantigént tartalmazó szövet vagy sejtek (a páciens szövetében található). Az ideális kontroll
Az elemzés minden lépését ellenırzi. Validálja a reagenseket és eljárásokat a HER2 fehérje festése során.
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 34/51
Gyomorrák a gyengén pozitívan festıdı szövet, mivel ez a legérzékenyebb az antitesttel, illetve az antigénlebomlással szemben Negatív kontroll: Várhatóan negatív szövetek vagy sejtek (megtalálható lehet a páciens szövetmintájában vagy a pozitív kontroll mintában)
Antitest sejtekkel/sejtkomponensekkel szembeni, nem kívánt keresztreaktivitásának kimutatása.
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
Páciens szövetmintája
Specifikus festés kimutatása
Nem specifikus háttérfestés kimutatása.
Dako által mellékelt kontroll lemez
Csak a festési eljárást ellenırzi
* A specifikus antitestével azonos fajtól származó szérum, de nem ugyanazon antigén ellen. Nem specifikus antitestkötés kimutatása, pl. az antitest Fc részének kötıdése a szövethez.
Kontroll lemez (mellékelve): A mellékelt kontrollminták mindegyike a készlet reagálásának ellenırzésére három formalinnal fixált, paraffinba ágyazott humán emlırák-sejtvonalat tartalmaz, amelyek festési értékei 0, 1+ és 3+. Festési eljárásonként egy lemezt fessen meg. A Dako által biztosított kontrollminták sejtvonalainak kiértékelése jelzi a festési menet érvényességét. Pozitív kontrollszövet: A kontroll legyen friss autopsziás/biopsziás/sebészeti minta, a páciens mintájával azonos módon fixálva, feldolgozva és beágyazva. A pozitív kontrollszövetek a megfelelıen elıkészített szövetekre és a helyes festési technikákra utalnak. Minden egyes festési menetben, minden egyes vizsgálati körülményhez mellékelni kell egy pozitív kontrollszövetet. A pozitív kontrollszövetek gyenge pozitív festést adjanak, hogy a primer antitest érzékenységének finom változásait is ki tudják mutatni. A készletben mellékelt kontrollminták vagy a páciens mintáitól eltérı módon feldolgozott minták csak a reagens mőködését igazolják, a szövet elıkészítésérıl nem adnak visszajelzést. Pozitív kontrollszövetként egy korábban HER2 fehérjét 2+ értékkel emelkedetten expresszáló gyomor-adenokarcinóma vagy a gyomornyelıcsı átmenetben lévı adenokarcinóma-szövet használata ideális. MEGJEGYZÉS: Az ismert pozitív kontrollszöveteket a feldolgozott szövetek és tesztreagensek megfelelıségének ellenırzésére használja, NE a páciensek mintáinak diagnosztizálásához. Ha a pozitív kontrollszövet nem mutat megfelelı pozitív festést, a páciens mintáinak eredményeit érvénytelennek kell tekinteni. Negatív kontrollszövet: A minden festési menetben a páciens mintáival azonos módon fixált, feldolgozott és beágyazott negatív (HER2 fehérjére ismerten negatív) kontrollszövettel ellenırizze a primer ellenanyag specificitását és a háttérfestést. Negatív kontrollszövetnek megfelel a vastagbél, a máj vagy a pajzsmirigy szövete. A legtöbb szövetmetszetben elıforduló több különféle sejttípus belsı negatív kontrollhelyeket kínál (ezt a felhasználónak ellenıriznie kell). Ha specifikus festés történik a negatív kontrollszövetben, akkor a páciens szövetmintáinak eredményét érvénytelennek kell tekinteni, és a tesztet meg kell ismételni. Nem specifikus negatív kontrollreagens: A nem specifikus festés értékelésére és az antigén helyén a specifikus festés jobb értelmezéséhez a primer antitest helyett használja a mellékelt negatív kontrollreagenst a páciens mintáinak egy metszetén. A negatív kontrollreagens inkubálási idejének a primer antitestének kell megfelelnie. Assay ellenırzése: Az ellenanyag vagy festırendszer diagnosztikai eljárásban történı elsı felhasználása elıtt a felhasználónak ellenıriznie kell az ellenanyag specificitását. Ehhez tesztelni kell azt több, ismert pozitív és negatív szövetet jelzı, ismert immuncitokémiai tulajdonsággal rendelkezı mintán. Lásd a tájékoztató jelen szakaszában fentebb vázolt minıség-ellenırzési eljárásokat és a CAP Immunhisztokémiai Minısítı Programjának minıség-ellenırzési követelményeit, és/vagy a CLSI (korábban NCCLS) Immuncitokémiai Minıségbiztosítás Elfogadott Irányelveit (24). Ezeket a minıség-ellenırzési eljárásokat minden új antitest-tételnél, illetve az assay paramétereinek megváltozásakor meg kell ismételni. A HER2 fehérjére ismert, 0 – 3+ erısségő festıdést adó gyomor vagy gyomor-nyelıcsı
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 35/51
Gyomorrák átmenetben lévı adenokarcinómák, valamint negatív szövetek, pl. a vastagbél, a máj vagy a pajzsmirigy szövetei megfelelnek az assay ellenırzéséhez.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 36/51
Gyomorrák A festés értelmezése – gyomor A HER2 fehérje expressziójának meghatározásához kizárólag a membrán festési intenzitását és mintáját szabad értékelni a 9. táblázatban bemutatott skála alapján. A lemez értékelését patológus szakembernek kell végeznie fénymikroszkóp segítségével. Az immunhisztokémiai festés értelmezésére és értékelésére 10x-es nagyítású objektív a megfelelı. 5–40x-es nagyítású objektív hasznos az értékelés megerısítéséhez. A citoplazma festıdését nem specifikus festıdésnek kell tekinteni, és nem szabad belefoglalni a membrán festési intenzitásának értékelésébe (8). A 0, 1+, 2+ és 3+ erısségő festés megkülönböztetéséhez lásd a Dako „HercepTest™ értelmezési kézikönyv – Gyomorrák” címő dokumentumban a festéserısségeket és mintázatokat szemléltetı képeket. Kizárólag a gyomorrákban ill. a gyomor-nyelıcsı átmenet rákjában szenvedı betegek mintáit értékelje. Ha egyazon mintában megtalálható intesztinális metaplázia és gyomor adenokarcinóma is, akkor csak a gyomor-adenokarcinóma komponenst értékelje. A HercepTest™ módszerrel megfestett biopsziák értelmezéséhez legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló csoport javasolt. A legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló csoport 5 HER2-re jellemzı festést mutató sejt kapcsolatát jelenti. 9. táblázat. A HER2 immunhisztokémiai festés értelmezése és értékelése
Érték
Sebészeti minta – Festıdési minta
Biopsziás minta – Festıdési minta
A HER2 túlzott expressziójának értékelése
0
Nincs reaktivitás, vagy membránhoz kötıdı reaktivitás figyelhetı meg a tumorsejtek kevesebb mint 10%-ában.
Nincs reaktivitás vagy membránhoz kötıdı reaktivitás egyetlen (vagy < 5 tagból álló csoport) tumorsejtben sem.
Negatív
1+
Halvány/alig észrevehetı, membránhoz kötıdı reaktivitás a tumorsejtek ≥ 10%-ában; a sejtek csak a membránjuk egy részén reaktívak
A megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül halvány/alig észrevehetı, membránhoz kötıdı reaktivitás egy tumorsejtcsoportban (≥ 5 sejt)
Negatív
Gyenge–közepes teljes, bazolaterális vagy laterális, membránhoz kötıdı reaktivitás a tumorsejtek ≥ 10%-ában
A megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül gyenge–közepes teljes, bazolaterális vagy laterális, membránhoz kötıdı reaktivitás egy tumorsejtcsoportban (≥ 5 sejt)
Bizonytalan
Erıs teljes, bazolaterális vagy laterális, membránhoz kötıdı reaktivitás a tumorsejtek ≥ 10%-ában
A megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül erıs teljes, bazolaterális vagy laterális, membránhoz kötıdı reaktivitás egy tumorsejtcsoportban (≥ 5 sejt)
Pozitív
2+
3+
Irányelvek Hofmann és mtsai. szerint (40). A HercepTest™ a HER2 fehérje emelkedett expressziójára nézve lehet negatív (0 és 1+ érték), bizonytalan (2+ érték), illetve pozitív (3+ érték). A HercepTest™ nem arra készült, hogy diagnosztikai információt adjon a páciens vagy az orvos számára, és ilyen célra nem is lett bevizsgálva.
A lemezeket minden festési menetben a 10. táblázatban megadott sorrendben meg kell vizsgálni meghatározandó a festési menet érvényességét, és lehetıvé téve a szövetminta festési intenzitásának félkvantitatív kiértékelését.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 37/51
Gyomorrák 10. táblázat. A lemezek kiértékelésének sorrendje. Lemezek kiolvasási sorrendje
Magyarázat
1.
A sejtmembrán 3+ erısségő barna festıdése (győrőszerő) a SK-BR-3 jelő 3+ kontroll sejtvonalban, részleges barna győrő az MDA-175 jelő 1+ kontroll sejtvonalban, és a festıdés elmaradása az MDA-231 jelő 0 kontroll sejtvonalban érvényes assay-t jelez
A három sejtvonalat tartalmazó kontroll lemez
Pontonkénti vagy szaggatott membránfestıdés a pozitív 1+ MDA-175 sejtvonal kevés vagy közepes mennyiségő sejtjében. Ebben a sejtvonalban a citoplazma Golgi-régiójának pontszerő festıdése is megfigyelhetı Az MDA-231 jelő 0 kontroll sejtvonalban (HER2 fehérje festésére negatív) megjelenı barna festıdés azt jelenti, hogy az assay-ben nem specifikus festıdés történt. Az assay eredményei érvénytelenek lehetnek túlfestıdés miatt 2.
Pozitív kontrollszövet
Barna membránfestıdést kell észlelni. A citoplazma és a negatív szövetek festıdése nem lehet erısebb mint 1+
3.
Negatív kontrollszövet
A negatív kontrollszövet specifikus festıdésének HIÁNYA megerısíti a készlet sejtekkel/sejtkomponensekkel szembeni keresztreaktivitásának hiányát. Ha specifikus membránfestés történik a negatív kontrollszövetben, akkor a páciens szövetmintájának eredményét érvénytelennek kell tekinteni.
4.
Negatív kontrollreagens használatával festett, betegbıl származó szövetminta
A specifikus membránfestıdés hiánya igazolja, hogy a primer antitest megjelöli a cél antigént A negatív kontrollreagenssel kezelt minta citoplazmájában végbemenı egyéb sárgás vagy barna festıdés, például kötıszövetben, leukocitában, eritrocitában vagy nekrotikus szövetben nem specifikus háttérfestésnek tekintendı, és az adatlap megjegyzések rovatában jelentendı
5.
A primer antitest használatával festett, betegbıl származó szövet
A HER2 fehérje emelkedett expressziója barna győrőként észlelhetı a primer antitesttel kezelt tumorsejtek sejtmembránján
1. Kontroll lemez (mellékelve): A HercepTest™ assay-vel megfestett kontroll-lemezt kell elsıként értékelni, hogy meggyızıdhessen arról, hogy az összes reagens megfelelıen mőködik-e. A sejtmembránnál található barna (3,3’-diaminobenzidin, DAB) reakciótermék a pozitív reaktivitás jele. A sejtmembrán kerületi (győrőszerő) barna festıdése az SK-BR-3 jelő, 3+ kontroll sejtvonalban, részleges barna győrő az MDA-175 jelő, 1+ kontroll sejtvonalban, valamint a festıdés elmaradása az MDA-231 jelő, 0 kontroll sejtvonalban érvényes assay-t jelez Ha a kontroll sejtvonalak bármelyike esetében az ezen kritériumoktól való eltérés figyelhetı meg, a páciens mintáinak minden eredményét érvénytelennek kell tekinteni. 2. Pozitív kontrollszövet: Ezután a pozitív kontrollszövetet kell megvizsgálni. Ez a lemez ellenırzi, hogy a fixálás és az epitóp kinyerése sikeres-e. A festés értelmezéséhez használjon ép sejteket, mivel a nekrotikus vagy degenerált sejtek gyakran nem specifikusan festıdnek (26). A festıdés a tumorszövetben a sejtmembrán barna elszínezıdéseként jelentkezik. A citoplazma és a negatív szövetek barna festıdése nem lehet erısebb, mint ami az 1+ festési intenzitásnak megfelel. 3. Negatív kontrollszövet: A pozitív kontrollszövet után meg kell vizsgálni a negatív kontrollszövetet ellenırizendı a cél antigén primer antitest általi megjelölésének specifikusságát. A negatív kontrollszövet specifikus festıdésének hiánya megerısíti a készlet sejtekkel/sejtkomponensekkel szembeni keresztreaktivitásának hiányát. Ha specifikus festés történik a negatív kontrollszövetben, akkor a páciens szövetmintájának eredményét érvénytelennek kell tekinteni. Ezen felül a pozitív kontrollszövet negatív részei negatív kontrollszövetként is szolgálhatnak, de ezt a felhasználónak ellenıriznie kell. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy gyenge reakció (0 – 1+ festési intenzitás) észlelhetı a legtöbb normál epithelialis szövetben. Alkalmazható negatív kontrollszövetek például: vastagbél, máj és pajzsmirigy.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 38/51
Gyomorrák A nem specifikus festıdés, amennyiben van, megjelenésében diffúz. A formalinban túlzottan fixált szövetekben a kötıszövet helyenkénti festıdése figyelhetı meg. 4 + 5. Páciens szövetmintája: A páciens mintáit utoljára vizsgálja meg a HercepTest™ segítségével. A pozitív festıdés intenzitását a negatív kontrollreagens nem specifikus háttérfestésének kontextusában értékelje. Mint minden immuncitokémiai teszt esetében, a negatív eredmény azt jelenti, hogy az antigén nem volt észlelhetı, nem pedig azt, hogy az antigén nincs jelen a vizsgált sejtekben vagy szövetben. A HercepTest™ immunreaktivitásával kapcsolatos tudnivalókat lásd az „Összefoglalás és magyarázat” és a „Korlátozások és teljesítményjellemzık” címő részekben. További ajánlások a HercepTest™ festésének értelmezéséhez A gyomor és a gyomor-nyelıcsı átmenet HER2 fehérjét igazoltan emelkedetten expresszáló adenokarcinómája 0 – 3+ értéket kapott. Míg a 0 és a 3+ értékő esetek egyértelmőek, a fennmaradó 1+ és 2+ értékő minták egy részének értelmezése nehezebb lehet. A HercepTest™ festésének értelmezésekor kövesse az alábbi útmutatásokat.
Értékelje ki a kontroll sejtvonalakat az assay mőködésének validálására.
Értékelje ki a pozitív és negatív kontroll lemezeket.
Az elsı értékeléskor ajánlott a szövetminta hematoxilines és eozines festése (H&E). (A tumor esetleg nem szembetőnı a HercepTest™-tel festett mintán. A H&E módszerrel festett lemezre szüksége van a patológusnak a tumor jelenlétének igazolásához.) A HercepTest™-tet a minta azonos paraffinkockájából származó párosított metszeten (metszetsorozaton) végezze el.
A HER2 fehérje emelkedett expressziójának vizsgálatára megfestett metszeteket elıször kis nagyításon értékelje. A pozitív esetek túlnyomó többsége kis nagyításon egyértelmően megállapítható.
Az 1+ értékő esetekben a membránhoz kötıdı festıdés megerısítéséhez alkalmazzon 40x-es nagyítást.
A 2+ értékő esetekben a membránhoz kötıdı festıdés megerısítéséhez alkalmazzon 10–20x-os nagyítást.
Sebészeti minta
A minta jól tartósított és megfestett területeit használja a pozitív tumorsejtek százalékának meghatározásához.
Ha a tumorsejtek többsége teljes, bazolaterális vagy laterális membránfestıdést mutat, akkor a festıdés erıssége 2+ vagy 3+.
Ha a sebészeti mintákban a tumorsejtek 10 vagy nagyobb százalékában erıs intenzitású teljes, bazolaterális vagy laterális membránfestıdés tapasztalható, akkor a minta értéke 3+.
Ha a sebészeti mintákban a tumorsejtek 10 vagy nagyobb százalékában gyenge– közepes intenzitású teljes, bazolaterális vagy laterális membránfestıdés tapasztalható, akkor a minta értéke 2+.
Ha a sebészeti mintákban a tumorsejtek 10 vagy nagyobb százalékában csak részben festıdik meg a membrán halvány/alig észrevehetı intenzitással, akkor a minta értéke 1+.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 39/51
Gyomorrák
Ha a sebészeti mintákban a tumorsejtek kevesebb mint 10%-a mutat teljes, bazolaterális vagy laterális, illetve a membrán egy részére kiterjedı festıdést, akkor az érték 0.
Ha nem figyelhetı meg semmilyen festıdés, akkor a sebészi minta értéke 0.
Biopsziás minta
A legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló csoport 5 HER2-re jellemzı festést mutató sejt kapcsolatát jelenti.
Ha egy, legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló tumorsejtcsoportban erıs teljes, bazolaterális vagy laterális membránfestıdés figyelhetı meg, a biopsziás minta értéke 3+, a megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül.
Ha egy, legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló tumorsejtcsoportban gyenge– közepes teljes, bazolaterális vagy laterális membránfestıdés figyelhetı meg, a biopsziás minta értéke 2+, a megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül.
Ha egy, legalább 5 megfestett tumorsejtbıl álló tumorsejtcsoportban halvány/alig észrevehetı membránfestıdés figyelhetı meg, és a sejtek membránjának csak egy része festıdött, a biopsziás minta értéke 1+, a megfestett tumorsejtek százalékos arányától függetlenül.
Ha nem figyelhetı meg semmilyen festıdés, akkor a biopsziás minta értéke 0.
Ha kevesebb mint 5 tumorsejtcsoportban membránfestıdés figyelhetı meg (függetlenül a festıdés intenzitásától), a biopsziás minta értéke 0.
Korlátozások – gyomor Általános korlátozások 1.
Az immunocitokémia egy többlépcsıs diagnosztikai folyamat, amely speciális képzést igényel a megfelelı reagensek és a szövetek kiválasztása, fixálása és feldolgozása, valamint az immuncitokémiai lemez elıkészítése és a festési eredmények értelmezése területén.
2.
A szövetfestés sikere a szöveteknek a festést megelızı kezelésétıl és feldolgozásától függ. A helytelen fixálás, fagyasztás, kiolvasztás, mosás, szárítás, melegítés, metszetkészítés, illetve más szövetekkel vagy folyadékokkal való szennyezıdés hamis eredményt, az antitest befogódását vagy hamis negatív eredményt adhat. Az inkonzisztens eredményeket okozhatják a fixálási és beágyazási módszer eltérései vagy a szövetelıkészítés inherens szabálytalanságai.
3.
A túlzott vagy elégtelen kontrasztfestés akadályozhatja az eredmények helyes értelmezését.
4.
A pozitív festés vagy annak hiányának klinikai értelmezését a klinikai megjelenés, morfológia és egyéb hisztopatológiai kritériumok kontextusában kell végezni. A festés vagy annak hiányának klinikai értelmezését morfológiai vizsgálatoknak és megfelelı kontrolloknak, valamint egyéb diagnosztikai vizsgálatoknak kell kiegészíteniük. A festett preparátum értelmezése olyan képesített patológus feladata, aki ismeri az antitesteket, reagenseket és az alkalmazott módszereket. A festést tanúsítvánnyal ellátott laboratóriumban kell végezni, olyan patológus felügyelete alatt, aki a festett lemezeket megtekinti, és biztosítja a pozitív és negatív kontrollok megfelelıségét.
5.
A hepatitisz B vírussal fertızött személyektıl származó, hepatitisz B felületi antigént (HBsAg) tartalmazó szövetek torma-peroxidázra nem specifikus festıdést mutathatnak (27). A reagensek váratlan reakciót adhatnak az elızıleg nem tesztelt szövettípusokon. Az antigén neoplazmában és más patológiás szövetekben való expressziójának biológiai változékonysága következtében a váratlan reakciókat még a
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 40/51
Gyomorrák tesztelt szövetekben sem lehet teljesen kizárni (28). A dokumentált váratlan reakcióval kapcsolatban forduljon a Dako mőszaki szolgálatához. 6.
Hamis pozitív eredmény lehet látható a fehérjék nem immunológiai kötése vagy a szubsztrát reakciótermékei miatt. Ezt okozhatja még pszeudoperoxidáz aktivitás (eritrociták) vagy endogén peroxidáz aktivitás (citokróm C) (28).
7.
A festési eljárást szobahımérsékleten (20–25 °C) végezze.
Termékspecifikus korlátozások 1.
Az MDA-175 jelő 1+ kontroll sejtvonalban jelen lévı antigén idıvel lebomlik. A kontroll lemez által adott eredményeket a kontroll lemez felhasználhatósági idejéhez viszonyítva értékelje. Az MDA-175 sejtek negatív festıdése jelentheti mindössze azt, hogy a kontroll lemez már nem használható. A kontroll-lemezeket 2–8 °C-on kell tárolni.
2.
A hamis negatív eredményeket okozhatja az, hogy az antigén idıvel lebomlik a szövetekben. A mintákat a lemezen rögzítéstıl számított 4–6 héten belül meg kell festeni, ha azokat szobahımérsékleten (20–25 °C) tárolják (29).
3.
Az optimális és megismételhetı eredmények eléréséhez a HER2 fehérje olyan hıindukált epitópkinyerést igényel, amelyben a szövetek fixálása (semleges pufferelt formalin) és paraffinba ágyazása rutinszerően zajlik. Ezt az elıkezelést a teljes festési eljárást megelızıen kell elvégezni. Lásd a „Minta elıkészítése” részben a „A szövetek kezelése festés elıtt” szakasz utasításait.
4.
A HER2 fehérje hıindukált epitópkinyerését csak kalibrált vízfürdıvel végezze. Más melegítési módokat is teszteltek, de azok nem adtak reprodukálható eredményeket.
5.
Ne helyettesítse a készlet reagenseit más sorozatszámú reagensekkel vagy más gyártótól származó reagensekkel. Az egyetlen kivétel a mosópuffer, amely az S3006-os kódszámú Dako Wash Buffer termékkel helyettesíthetı.
6.
A citoplazma festıdésének értékelése hamis eredményeket adhat. Az eredmények értékelésekor csak a sejtmembrán festési intenzitását tekintse.
7.
A megfestett kontroll lemezeket csak a festési menet validálására használja, ne pontozza vele a szövetmetszetek festési reakcióját.
8.
Idınként erıs helyi festıdés (3+), azaz „forró pontok” láthatók. Ez az egyenetlen fixálás és/vagy szövetfeldolgozás eredménye lehet. Ajánlott ugyanabból a mintából egy második szövetkocka immunfestése.
9.
A HercepTest™ használatát nem semleges pufferelt formalinban fixált minták esetében nem validálták.
10. Felhívjuk a figyelmét arra, hogy a normál mandula és a nyelıcsövi epithelium akár 2+ erısséggel is festıdhet. 11. Nem szabad szétesett gyomorkarcinóma-mintákat használni, és a biopsziás minta szélein arteficiális festıdést mutató mintákat elemezni.
Teljesítményjellemzık – gyomor Háttér A trasztuzumab (Herceptin™) biztonságosságát és hatékonyságát egy klinikai vizsgálatban (a ToGA vizsgálatban) bebizonyították (38, 39). A vizsgálat nyitott, randomizált, multicentrikus, III. fázisú vizsgálat inoperábilis, lokálisan elırehaladott, kiújuló és/vagy áttétes gyomor- vagy gyomor-nyelıcsı határon lévı adenokarcinómában szenvedı HER2-pozitív betegek részére. A ToGA vizsgálatban a HER2-pozitivitást úgy definiálták, hogy vagy IHC-pozitív (3+) (HercepTest™, Dako) és/vagy HER2 FISH módszerrel pozitív (HER2/CEN17 ≥ 2,0) (HER2 FISH pharmDx™ Kit, Dako). A
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 41/51
Gyomorrák vizsgálatba történı bevonás után a pácienseket random módon csoportokba osztották, amelyek kemoterápiás (5-FU vagy capecitabin és ciszplatin) vagy kemoterápiát és trasztuzumabot magában foglaló, kombinált kezelésben részesültek. A vizsgálat elsıdleges végpontja az összesített túlélés (overall survival – OS) volt. A vizsgálatban összesen 594 beteget randomizáltak, 584 beteg kapta meg a vizsgálati gyógyszert, és lett a teljes analízis halmazba (FAS) sorolva. Az elsıdleges végpont tekintetében a kemoterápiát és trasztuzumabot magában foglaló kombinált kezelés statisztikailag elınyösebbnek bizonyult, mint az önmagában alkalmazott kemoterápia. Az OS mediánja 11,1 hónapról 13,8 hónapra emelkedett (p=0,0046) 0,74-es kockázati aránnyal (95%-os CI: 0,60–0,91). Az OS Kaplan-Meier görbéi az 1. ábrán láthatók. A túlélés valószínősége 1,0 0,9 0,8
Logaritmikus rangsorolási teszt P = 0,0046
0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0
11,1
Idı (hónap) 13,8
Megmaradt Sz. Fluoro/Cisp Tras/Fluoro/Cisp
Kezelési csoport
Fluoro/Cisp
Tras/Fluoro/Cisp
1. ábra. Az OS Kaplan-Meier görbéje (n=584). A HER2-státusz tekintetében az elıre meghatározott feltáró alcsoport-elemzéseket akkor végezték el, amikor az adatok rendelkezésre álltak. Post hoc két új HER2 alcsoportot határoztak meg az IHC pontozás alapján: 1. csoport („alacsony HER2-expressziójú csoport”):
IHC 0/FISH+ és IHC 1+/FISH+ (n=131)
2. csoport („magas HER2expressziójú csoport”):
IHC 2+/FISH+ és IHC 3+ (FISH+ vagy FISH- vagy FISH nincs eredmény (n = 446)
Amikor az OS primer analízisét post hoc megismételték a „magas HER2-expressziójú csoport” (n=446) esetében, a kombinált kezelés jótékony hatása még nagyobb volt. A kemoterápia és trasztuzumab kombinált kezelésben részesülı páciensek csoportjának medián OS-értéke 16,0 hónapra emelkedett, szemben a csak kemoterápiában részesülı páciensek 11,8 hónapos értékével. Ezen analízis kockázati aránya 0,65-re csökkent (95%-os CI: 0,51–
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 42/51
Gyomorrák 0,83). A „magas HER2-expressziójú csoport” OS-ének Kaplan-Meier görbéi a 2. ábrán láthatók. A túlélés valószínősége 1,0 0,9 0,8 0,7 0,6 0,5 0,4 0,3 0,2 0,1 0
11,8
Idı (hónap) 16,0
Megmaradt Sz. Fluoro/Cisp Tras/Fluoro/Cisp
Grupo de tratamiento
Fluoro/Cisp
Tras/Fluoro/Cisp
2. ábra. A „magas HER2-expressziójú csoport” (n=446) OS-ének Kaplan-Meier görbéje. A ToGA vizsgálat kimutatta, hogy az IHC és a FISH tesztelés együttes alkalmazása prediktív értékő a kombinált, kemoterápiát és trasztuzumabot tartalmazó kezelés hatásának a meghatározásakor, a feltáró post hoc elemzések azonban arra utalnak, hogy a magasabb HER2 fehérje expresszióval (IHC2+/FISH+ és IHC3+) rendelkezı betegek elınye nagyobb. Ez azzal magyarázható, hogy a fehérje a trasztuzumab célpontja. Kérjük, a ToGA vizsgálattal kapcsolatos további információkat illetıen olvassa el a Herceptin™ terméktájékoztatóját. Megismételhetıség Meneten belüli megismételhetıség: A meneten belüli megismételhetıséget egy laboratórium 3 különbözı IHC festési intenzitású mintán tesztelte. Minden mintát háromszor vizsgáltak meg. Ezt a protokollt automatizált festés mellett alkalmaztuk. Minden minta 100%-osan megismételhetı eredményt adott. A meneten belüli megismételhetıséget egy laboratórium 11 különbözı IHC festési intenzitású mintán tesztelte. Minden mintát háromszor vizsgáltak meg. Ezt a protokollt a kézi festés során alkalmazták. Minden minta 100%-osan megismételhetı eredményt adott. Menetek közötti és laboratóriumok közti megismételhetıség: HercepTest™ elemzést végeztek 60 különbözı, gyomorrákból ill. a gyomor-nyelıcsı átmenet rákjának területérıl származó mintán, sebészi rezekátumokon és biopsziákon öt nem egymást követı napon, három tanulmányi helyszínen. A tanulmányban szereplı 60 minta egyenlı eloszlást mutatott a HER2-státusz három kategóriájának szempontjából. Hat patológus összesen 2040 HER2értékelést végzett el.
A naponta értékelt véleményegyezések (negatív, bizonytalan, pozitív) aránya 83,1% és 98,3% közé esett. A lehetséges 60 összehasonlítás közül 47 esetben a véleményegyezés aránya 90,0%-os vagy annál magasabb volt. Az alábbi 11. táblázatban láthatók a naponta értékelt összehasonlítások jellemzı példái, ahol a
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 43/51
Gyomorrák véleményegyezés átlagos aránya a három helyszín között 91,2%, 92,5% és 92,5% volt. A különbözı helyszínek esetében a véleményegyezés aránya 82,7%, 75,0% és 88,0% volt, a helyszíneket páronként összehasonlítva (lásd: 12. táblázat). A Fisher-féle teszt (khi-négyzet próba) alapján az egyes helyszínek eredményei nem különböztek egymástól. A vizsgálatot végzı patológusok közötti véleményegyezés a három tanulmányi helyszínen 88,0%, 83,6% és 81,0% volt (13. táblázat). Következésképpen a gyomorrákból vett minták három helyszínen végzett HercepTest™ elemzése jó egyezést mutatott a napok és a helyszínek vonatkozásában ill. a vizsgálatot végzı személyek között. 11. táblázat. Naponta értékelt összesített százalékos véleményegyezés – 60 összehasonlításból 12 esetben Vizsgálatot végzı személy (1. sz.) Véleményegyezés CI95 LL1 1. sz. helyszín
2. sz. helyszín
3. sz. helyszín
Vizsgálatot végzı személy (2. sz.) Véleményegyezés CI95 LL1
1. nap, összehasonlítva a 2. nappal 3. nap, összehasonlítva a 4. nappal
85,0
74,4
93,3
84,9
93,3
84,9
93,3
84,9
1. nap, összehasonlítva a 2. nappal 3. nap, összehasonlítva a 4. nappal
95,0
87,3
83,1
72,0
96,7
89,7
95,0
87,3
1. nap, összehasonlítva a 2. nappal 3. nap, összehasonlítva a 4. nappal
90,0
80,5
91,7
82,7
96,7
89,7
91,7
82,7
Átlag Véleményegyezés 91,2
92,5
92,5
1
CI95 LL: a 95%-os konfidencia-intervallum alsó határa.
12. táblázat. A helyszínek közötti összesített százalékos véleményegyezés
Véleményegyezés
CI95 LL1
Átlagos véleményegyezési arány
1. sz. helyszín, összehasonlítva a 2. sz. helyszínnel
1. nap, összehasonlítva a 1. nappal 2. nap, összehasonlítva a 2. nappal 3. nap, összehasonlítva a 3. nappal 4. nap, összehasonlítva a 4. nappal 5. nap, összehasonlítva a 5. nappal
83,3 85,0 85,0 81,7 78,3
72,4 74,4 74,4 70,5 66,7
82,7
1. sz. helyszín, összehasonlítva a 3. sz. helyszínnel
1. nap, összehasonlítva a 1. nappal 2. nap, összehasonlítva a 2. nappal 3. nap, összehasonlítva a 3. nappal 4. nap, összehasonlítva a 4. nappal 5. nap, összehasonlítva a 5. nappal
80,0 73,3 78,3 68,3 75,0
68,6 61,2 66,7 55,9 63,0
75,0
2. sz. helyszín, összehasonlítva a 3. sz. helyszínnel
1. nap, összehasonlítva a 1. nappal
88,3
78,5
2. nap, összehasonlítva a 2. nappal
86,7
76,4
3. nap, összehasonlítva a 3. nappal
90,0
80,5
4. nap, összehasonlítva a 4. nappal
86,7
76,4
5. nap, összehasonlítva a 5. nappal
88,3
78,5
88,0
1
CI95 LL: a 95%-os konfidencia-intervallum alsó határa.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 44/51
Gyomorrák 13. táblázat. A vizsgálatot végzı személyek közötti százalékos véleményegyezés
1. sz. helyszín
2. sz. helyszín
3. sz. helyszín
Véleményegyezés
CI 95 LL1
1. nap
91,7
82,7
2. nap
91,7
82,7
3. nap
93,3
84,9
4. nap 5. nap
83,3 80,0
72,4 68,6
1. nap 2. nap 3. nap 4. nap 5. nap
86,4 83,3 83,3 83,3 81,7
76,0 72,4 72,4 72,4 70,5
1. nap
80,0
68,6
2. nap
78,3
66,7
3. nap
80,0
68,6
4. nap
78,3
66,7
5. nap
90,0
80,5
Átlagos véleményegyezési arány
88,0
83,6
81,0
1
CI95 LL: a 95%-os konfidencia-intervallum alsó határa.
Immunreaktivitás A 14. táblázat összefoglalja a HercepTest™ immunreaktivitását a normál szövetek ajánlott panelével. Minden szövet formalinban fixált, paraffinba ágyazott és a tájékoztatóban leírt módon HercepTest™-tel festett. 14. táblázat. A HercepTest™ normál szövetekre mutatott reaktivitásának összefoglalása. Szövettípus (Vizsgált mennyiség)
Pozitív szövetelem-festıdés és festıdési minta
Mellékvese (3) Csontvelı (3) Agy/Kisagy (3) Agy/Kisagy (3) Emlı (3) Méhnyak (3) Vastagbél (3) Nyelıcsı (3) Szív (3) Vese (3)
Nincs Nincs Nincs Nincs Emlımirigy (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás) Nincs Nincs Nincs Nincs Vese velıállomány tubulusai (3/3 szövet, 1–2+ festıdési intenzitás, a sejtek 5–50%-a mutatja, citoplazmatikus) Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Nincs Prosztatamirigy/ductusok (3/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 50%-a mutatja, citoplazmatikus) Nincs Nincs Verejtékmirigyek (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 30%-a mutatja, citoplazmatikus) Hengerhám, felszín (1/3 szövet, 2+ festıdési intenzitás, a sejtek 25%-a mutatja) Nincs Epithelium (1/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 25%-a mutatja) Nincs Nincs Nincs Laphám (3/3 szövet, 1+ festıdési intenzitás, a sejtek 80%-a mutatja) Nincs
Máj (3) Tüdı (3) Mesothelialis sejtek (3) Petefészek (3) Hasnyálmirigy (3) Mellékpajzsmirigy (3) Perifériás ideg (3) Agyalapi mirigy (3) Prosztata (3) Nyálmirigy (3) Vázizom (3) Bır (3) Vékonybél (3) Lép (3) Gyomor (3) Here (3) Csecsemımirigy (3) Pajzsmirigy (3) Mandula (3) Méh (3)
A jelentett festıdés minden szövet esetében membránban történt, hacsak másképp nem jelezzük. Mindhárom minta minden szövettípusnál ugyanolyan festési intenzitást mutatott, hacsak másképp nem jelezzük.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 45/51
Gyomorrák Hibaelhárítás – gyomor A teendıkért lapozza fel a Dako korábban hivatkozott kézikönyvének Hibakeresés címő részét (18), vagy hívja a Dako mőszaki szolgálatát, ha szokatlan festıdést kíván jelenteni. Probléma 1. A lemezek nem festıdnek
2. A lemezek festése halvány
(128387-001)
Valószínő ok
Javasolt teendı
1a.
Programozási hiba. A reagenseket nem a megfelelı sorrendben alkalmazta.
1a.
Ellenırizze a programozást, hogy a festési menet helyesen lett-e beprogramozva
1b.
A reagenst tartalmazó ampullákat nem a megfelelı sorrendben helyezte be a reagenstartókba
1b.
Ellenırizze a Reagenstérképen a reagenst tartalmazó ampullák megfelelı helyét.
1c.
Az ampullában lévı reagens mennyisége nem elegendı
1c.
A festés elıtt ellenırizze, hogy elegendı reagens került-e az ampullákba. A szükséges mennyiségeket lásd a Reagenstérképen
1d.
Nátrium-azid van a mosóoldatban
1d.
Használjon a készletben mellékelt mosópufferbıl frisset
1e.
A felvitt metszeteket ért túlzott hıhatás a deparaffinálást megelızıen, és a hı indukálta antigén feltárás a látható HER2 immunreaktivitás elvesztéséhez vezethet.
1e.
Szobahımérséklető levegın szárítsa a szövetmetszeteket legalább 12 órán át, illetve amíg meg nem száradnak. Alternatív módszerként a szárítás végezhetı 37 °C-on egy éjszakán át vagy 60 Con maximum egy órán át. A etszetek magasabb hımérsékleten történı szárítása csak kalibrált kemencében, egyenletes hıeloszlás mellett végezhetı (17).
2a.
Az epitóp kinyerése nem megfelelı
2a.
Ügyeljen arra, hogy az Epitópkinyerı oldat hımérséklete teljes 40 percen át tartsa a 95–99 °C-ot, majd hagyja további 20 percig hőlni
2b.
A reagens inkubálási ideje nem megfelelı
2b.
Nézze át a Festési eljárás címő rész utasításait
2c.
Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
2c.
Ügyeljen arra, hogy a páciens szövetmintája ne legyen túlfixálva, és ne használjon helyettesítı fixálószert
2d.
A felvitt metszeteket ért túlzott hıhatás a deparaffinálást megelızıen, valamint a hıindukált antigénfeltárás a látható HER2 immunreaktivitás jelentıs csökkenését okozhatja.
2d.
Szobahımérséklető levegın szárítsa a szövetmetszeteket legalább 12 órán át, illetve amíg meg nem száradnak. Alternatív módszerként a szárítás végezhetı 37 °C-on egy éjszakán át vagy 60 °C-on maximum egy órán át. A metszetek magasabb hımérsékleten történı szárítása csak kalibrált kemencében, egyenletes hıeloszlás mellett végezhetı (17).
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 46/51
Gyomorrák
3. A lemezek háttérfestése túl erıs
2e.
Az alkalmazott reagensmennyiség nem elegendı
2e.
Ellenırizze a szövetmetszet méretét (22 mm x 22 mm) és az alkalmazott reagensmennyiséget
3a.
A paraffin nincs teljesen eltávolítva
3a.
Használjon friss tisztítóoldatot, és járjon el a B.1 szakaszban foglaltak szerint
3b.
Keményítıtartalmú adalékot használtak a metszetek tárgylemezekre rögzítéséhez
3b.
A metszeteknek az üveg tárgylemezekhez való rögzítése során kerülje a keményítıtartalmú adalékok használatát. Sok adalék immunreaktív.
3c.
A lemezek nem alaposan lettek leöblítve
3c.
Ügyeljen arra, hogy az Autostainer a festés elıtt megfelelıen fel legyen töltve. Ügyeljen arra, hogy a teljes eljárás során a megfelelı puffer használja. Használjon friss puffer- és mosóoldatot
3d.
Ellenırizze, hogy a reagensbıl megfelelı mennyiséget használ-e a lemezekhez. Ügyeljen arra, hogy az Autostainer készüléket lezárt tetıvel használja, és hogy az ne legyen kitéve túl nagy hınek vagy huzatnak.
3e.
Ügyeljen arra, hogy a metszetek a puffertıl nedvesek maradjanak a betöltés és a menet indítása során.
3f.
Ügyeljen arra, hogy a jóváhagyott fixálószert használja. Más fixálószer túl erıs háttérfestést okozhat
3d.
A metszetek megszáradtak a festési eljárás alatt
3e.
A metszetek kiszáradtak az Autostainer készülékbe töltés során
3f.
Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
3g.
A reagensek nem specifikus kötése a szövethez
3g.
Ellenırizze a minta fixálási módját és nekrózis jelenlétét
4. A szövet leválik a lemezrıl
4a.
Nem megfelelı lemez használata
4a.
Használjon szilanizált lemezeket, például S3003-as kódszámú Dako Silanized Slides, SuperFrost Plus vagy poly-L-lysine bevonatú lemezeket
5. Túlságosan erıs specifikus festés
5a.
Nem megfelelı fixálási módot alkalmaztak
5a
Ügyeljen arra, hogy csak jóváhagyott fixálószert és fixálási módot alkalmazzon
5b.
Nem megfelelı hıforrás használata epitópkinyeréshez, pl. gızölı, mikrohullámú sütı vagy autokláv
5b.
Ügyeljen arra, hogy csak vízfürdıt használjon az epitóp kinyerésének lépésénél
5c.
A reagens inkubálási ideje túl hosszú
5c.
Nézze át a Festési eljárás címő rész utasításait
5d.
Nem megfelelı mosóoldatot alkalmaztak
5d.
Csak a készlethez ajánlott mosópuffert használja
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 47/51
Gyomorrák 6. Az 1+ kontrollminta sejtvonalának halvány festése
6a.
Helytelen epitópkinyerı protokoll alkalmazása
6a.
Merítse a lemezeket az elımelegített epitópkinyerı oldatba. Az epitópkinyerı oldat hımérsékletét emelje ismét 95–99 °C-ra, és végezzen elıkezelést teljes 40 percen át
6b.
Nincs reakció a szubsztrát kromogén oldattal (DAB)
6b.
Ügyeljen arra, hogy a teljes 10 perces inkubálási idıt kitöltse. Ügyeljen arra, hogy csak egy csepp DAB kromogént adjon a 1 mL DAB pufferelt szubsztráthoz
6c.
A kontrollminta bomlása
6c.
Ellenırizze a csomagoláson feltüntetett lejárati dátumot és a készlet tárolási körülményeit
7. Az Epitópkinyerı oldat felmelegítéskor zavaros
7.
Felmelegítéskor az oldat zavarossá válik
7.
Ez normális jelenség és nem befolyásolja a festést
8. Az Epitópkinyerı oldat tárolás közben zavarossá válik (felmelegítés elıtt)
8.
Az oldatot nem megfelelıen tárolták vagy túllépték az oldat lejárati idejét
8.
Ellenırizze a csomagoláson feltüntetett lejárati dátumot és a készlet tárolási körülményeit. Dobja ki az Epitópkinyerı oldatot
MEGJEGYZÉS: Ha a probléma a fenti okok egyikének sem tulajdonítható, vagy ha az ajánlott korrekciós lépés nem oldja meg a problémát, további segítségért hívja a Dako technikai szolgálatát.
A festési technikákkal és a minta elıkészítésével kapcsolatos további tudnivalókat a Dako korábban hivatkozott kézikönyvében találja (19) (kapható a Dako-nál), Atlas of Immunohistology (30) and Immunoperoxidase Techniques. A Practical Approach to Tumor Diagnosis (31).
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 48/51
Irodalomjegyzék 1.
2. 3.
4. 5.
6. 7. 8. 9.
10. 11.
12.
13.
14. 15. 16. 17.
18. 19. 20. 21.
22. 23.
24.
25.
Coussens L, Yang-Feng TL, Liao Y-C, Chen E, Gray A, McGrath J, et al. Tyrosine kinase receptor with extensive homology to EGF receptor shares chromosomal location with neu oncogene. Science 1985;230:1132-9. King CR, Kraus MH, Aaronson SA. Amplification of a novel v-erbB-related gene in a human mammary carcinoma. Science 1985;229:974-6. Semba K, Kamata N, Toyoshima K, Yamamoto T. A v-erbB-related protooncogene, c-erbB-2, is distinct from the c-erbB-1/epidermal growth factor-receptor gene and is amplified in a human salivary gland adenocarcinoma. Proc Natl Acad Sci USA 1985;82:6497-501. Yamamoto T, Ikawa S, Akiyama T, Semba K, Nomura N, Miyajima N, et al. Similarity of protein encoded by the human c-erb-B-2 gene to epidermal growth factor receptor. Nature 1986;319:230-4. Schechter AL, Hung M-C, Vaidyanathan L, Weinberg RA, Yang-Feng TL, Francke U, et al. The neu gene: an erbB-homologous gene distinct from and unlinked to the gene encoding the EGF receptor. Science 1985;229:976-8. Bargmann CI, Hung M-C, Weinberg RA. The neu oncogene encodes an epidermal growth factor receptor-related protein. Nature 1986;319:226-30. Natali PG, Nicotra MR, Bigotti A, Venturo I, Slamon DJ, Fendly BM, et al. Expression of the p185 encoded by HER2 oncogene in normal and transformed human tissues. Int J Cancer 1990;45:457-61. Press MF, Cordon-Cardo C, Slamon DJ. Expression of the HER-2/neu proto-oncogene in normal human adult and fetal tissues. Oncogene 1990;5:953-62. Lonardo F, Di Marco E, King CR, Pierce JH, Segatto O, Aaronson SA, et al. The normal erbB-2 product is an atypical receptor-like tyrosine kinase with constitutive activity in the absence of ligand. New Biologist 1990;2:992-1003. Carter P, Presta L, Gorman CM, Ridgway JBB, Henner D, Wong WLT, et al. Humanization of an anti-p185HER2 antibody for human cancer therapy. Proc Natl Acad Sci USA 1992;89:4285-9. HER2 Hudziak RM, Lewis GD, Winget M, Fendly BM, Shepard HM, Ullrich A. p185 monoclonal antibody has antiproliferative effects in vitro and sensitizes human breast tumor cells to tumor necrosis factor. Mol Cell Biol 1989;9:1165-72. Lewis GD, Figari I, Fendly B, Wong WL, Carter P, Gorman C, et al. Differential responses of HER2 human tumor cell lines to anti-p185 monoclonal antibodies. Cancer Immunol Immunother 1993;37:255-63. Baselga J, Norton L, Albanell J, Kim Y-M, Mendelsohn J. Recombinant humanized anti-HER2 antibody (Herceptin™) enhances the antitumor activity of paclitaxel and doxorubicin against HER2/neu overexpressing human breast cancer xenografts. Cancer Res 1998;58:2825-31. a. Medical Laboratories – Particular requirements for quality and competence, ISO 15189:2003. b. Clinical Laboratory Improvement Amendments of 1988: Final Rule, 57CFR7163, February 28, 1992. Sheehan DC, Hrapchak BB. Theory and practice of histotechnology. St. Louis: The C. V. Mosby Company; 1980. Kiernan JA. Histological and histochemical methods: theory & practice. New York: Pergamon Press; 1981. Lundgaard Hansen B, Winther H, Moller K. Excessive section drying of breast cancer tissue prior to deparaffinisation and antigen retrieval causes a loss in HER2 immunoreactivity, Immunocytochemistry 2008;6,119-22. DakoCytomation California Inc., Data on file. Key M. Education Guide: Immunohistochemical Staining Methods. Fifth Edition. Dako, Carpinteria, California; 2009. Leong AS-Y, Milios J, Leong FJ. Epitope retrieval with microwaves. A comparison of citrate buffer and EDTA with three commercial retrieval solutions. Appl Immunohistochem 1996;4:201-7. “Procedures for decontamination of plumbing systems containing copper and/or lead azides”, Department of Health, Education, and Welfare, National Institute for Occupational Safety and Health, Rockville, MD, 1976. “Decontamination of laboratory sink drains to remove azide salts.” Center for Disease Control Manual Guide: Safety Management, No. CDC-22, Atlanta, GA, April 30, 1976. Clinical and Laboratory Standards Institute (formerly NCCLS). Protection of Laboratory Workers From Occupationally Acquired Infections; Approved Guideline – Third Edition. CLSI document M29-A3 [ISBN 1-56238-567-4]. Clinical and Laboratory Standards Institute, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898 USA, 2005. Clinical and Laboratory Standards Institute (formerly NCCLS). Quality assurance for immunocytochemistry; Approved guideline. CLSI document MM4-A (1-56238-396-5) CLSI, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wayne, Pennsylvania 19087-1898 USA; 1999. Elias JM, Gown AM, Nakamura RM, Wilbur DC, Herman GE, Jaffe ES, et al. Special report: quality control in immunohistochemistry. Am J Clin Pathol 1989;92:836-43.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 49/51
26. 27.
28. 29.
30. 31. 32. 33.
34.
35.
36. 37.
38.
39.
40. 41.
Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase: Part I. The technique and its pitfalls. Lab Med 1983;14:767-71. Omata M, Liew C-T, Ashcavai M, Peters RL. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: a possible source of error in immunohistochemistry. Am J Clin Path 1980;73:626-32. Herman GE, Elfont EA. The taming of immunohistochemistry: the new era of quality control. Biotech & Histochem 1991; 66:194-9. Press MF, Hung G, Godolphin W, Slamon DJ. Sensitivity of HER-2/neu antibodies in archival tissue samples: potential source of error in immunohistochemical studies of oncogene expression. Cancer Res 1994;54:2771-7. Tubbs RR, Gephardt GN, Petras RE. Specimen processing and quality assurance. In: Atlas of immunohistology. Chicago: Amer Soc Clin Pathol Press; 1986:16-27. Nadji M, Morales AR. Immunoperoxidase techniques. A practical approach to tumor diagnosis. Chicago: Amer Soc Clin Pathol Press; 1986. Jørgensen JT. Targeted HER2 Treatment in Advanced Gastric Cancer. Oncology 2010;78:26-33. Tanner M, Hollmén M, Junttila TT, Kapanen AI, Tomola S, SoiniY et al. Amplification of HER-2 in gastric carcinoma: association with Topoisomerase II alpha gene amplification, intestinal type, poor prognosis and sensitivity to trastuzumab. Ann Oncol 2005;16: 273-278. Matsui Y, Inomata M, Tojigamori M, Sonoda K, Shiraishi N, Kitano S. Suppression of tumor growth in human gastric cancer with HER2 overexpression by an anti-HER2 antibody in a murine model. Int J Oncol 2005; 27: 681-685. Fujimoto-Ouchi K, Sekiguchi F, Yasuno H, Moriya Y, Mor K, Tanaka Y. Antitumor activity of trastuzumab in combination with chemotherapy in human gastric cancer xenograft models. Cancer Chemother Pharmacol 2007; 59: 795-805. Kim SY, Kim HP, Kim YJ, Oh DY, Im S-A, Lee D et al. Trastuzumab inhibits the growth of human gastric cancer cell lines with HER2 amplification synergistically with cisplatin. Int J Oncol 2008; 32: 89-95. Bang YJ, Van Cutsem E, Feyereislova A, Chung HC, Shen L, Sawaki A et al. Trastuzumab in combination with chemotherapy versus chemotherapy alone for treatment of HER2-positive advanced gastric or gastro-esophageal junction cancer (ToGA): a phase 3, open-label, randomized controlled trial. Lancet 2010. Bang Y, Chung J, Xu J, Lordick F, Sawaki A, Lipatov O et al. Pathological features of advanced Gastric Cancer (GC): Relationship to human epidermal growth factor receptor 2 (HER2) positivity in the global screening programme of the ToGA trial. J Clin Oncol 2009; 27:15s (suppl; abstr 4556). Van Cutsem E, Kang YK, Chung HC, Shen L, Sawaki A, Lordick F, et al. Efficacy results from the ToGA trial: a phase III study of trastuzumab added to standard chemotherapy in first-line human epidermal growth factor receptor 2 (HER2)-positive advanced gastric cancer. (presentation ASCO 2009). Hofmann M, Stoss O, Shi D, Büttner R, van de Vijver M, Kim W, et al. Assessment of a HER2 scoring system for gastric cancer: results from a validation study. Histopath 2008;52:797-805. Asioli S, Maletta F, Verdun di Cantogno L, Satolli MA, Schena M, Pecchioni C, et al. Approaching heterogeneity of human epidermal growth factor receptor 2 in surgical specimens of gastric cancer. Human Pathol 2012;43:11:2070-2079.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 50/51
Jelmagyarázat Katalógusszám
Hımérsékleti korlátozások
Gyártási kód
GHS piktogram (lásd az óvintézkedések címő részt)
In vitro diagnosztizáló orvosi készülék
Törékeny, óvatosan kezelendı
Felhasználható
GHS piktogram (lásd az óvintézkedések címő részt)
Lásd a használati utasítást
„n” számú vizsgálat elvégzéséhez elegendı
Gyártó
Gyártja:
Az Egyesült Államokban forgalmazza:
Dako Denmark A/S Produktionsvej 42 DK-2600 Glostrup Dánia Tel.: +45 44 85 95 00 Fax +45 44 85 95 95
Dako North America, Inc. 6392 Via Real Carpinteria, California 93013, USA Tel.: 805/566-6655 Díjmentesen hívható: 800/235-5743 Rendelési információ: Tel.: 800/235-5763 Fax 805/566-6688 Mőszaki szolgálat: Tel.: 800/424-0021
A HercepTest™ és a Herceptin™ a Genentech, Inc. védjegyei, amelyekre a Dako Denmark A/S és az F. HoffmannLa Roche Ltd. licencei érvényesek.
(128387-001)
P04087HU_01_K520721-2/2015.05 old. 51/51
