BD BBL CHROMagar Salmonella

HASZNÁLATI UTASÍTÁSOK – HASZNÁLATRA KÉSZ TÁPTALAJOK PA-254104.08

Frissítés: April 2013

BD BBL CHROMagar Salmonella 5.098.832, 5.194.374 számú U.S. szabadalom

HASZNÁLATI JAVASLAT A BBL CHROMagar Salmonella szelektív és differenciáló tápközeg a Salmonella-fajok elkülönítésére és feltehető azonosítására klinikai székletmintában. A BBL CHROMagar Salmonella tápközeget az AOAC Research Institute is hitelesítette Performance Tested Methods programjának keretében, de csak a nyers darált marhahús, nyers csirkehús, nyers hal, fejes saláta és héjas tojások esetében. ISO, USDA FSIS és FDA BAM módszerekkel végezték.1-3 A BBL CHROMagar Salmonella a megállapítások szerint egyenértékű az ISO, FDA és USDA módszerek által ajánlott lemezes közegek.

AZ ELJÁRÁS ELVE ÉS MAGYARÁZATA Mikrobiológiai módszer. Salmonella mindenütt jelen van az állatpopulációkban és általában az állatok és emberek bálcsatornájából izolálják. Egyike a legelterjedtebb mikroorganizmusoknak amelyt az élelmiszerek terjesztette betegségekkel társítanak, és ez gyakran állati eredetű.4 A Salmonella által okozott betegségeket szárnyas és marhahússal, csokoládéval, tej és zöldségtermékekkel társítják.5 A BBL CHROMagar Salmonella rendeltetése a Salmonella fajok kiválasztása és megkülönböztetése. Kromogén szubsztrátumok hozzáadása táptalajhoz, megkönnyíti a Salmonella fajok megkülnböztatését egyéb baktériumoktól. BBL CHROMagar Salmonella eredeti kifejlesztője A. Rambach, CHROMagar, Párizs, Franciaország. Licencegyezség alapján és szabadalmaztatott módszerek alkalmazásával a BD optimalizálta az összetételt, és ehhez a BBL CHROMagar Salmonella előállításánál használt lemezes közeget használtuk a Difco CHROMagar Salmonella dehidratált táptalaj összetétel alkalmazásával. A BD CHROMagar Salmonella táptalajban speciálisan kiválasztott peptonok szolgáltatják a tápanyagokat. A gramm-pozitív mikroorganizmusokat általában gátolja a szelektív közeg alapja. Gombaellenes szer hozzáadása megelőzi a Candida fajok szaporodását és egyéb mikrobaellenes szerekkel meggátolják a gramm-negatív, nem-glükóz erjesztő baktériumok és Proteus fajok szaporodását, amelyek potenciálisan túlnőhetik a Salmonella telepeket. A közeg kromogén elegyet tartalmaz. Az anyagcsere különbségek miatt, a kiválasztott kromogének jelenlétében a Salmonella fajok telepei mályvaszínűek (rózsaszíntől a bíborig), miközben a nem kívánt baktériumok gátoltak, illetve kék-zöld vagy színtelen telepeket hoznak létre.

REAGENSEK 1 liter szűrt vízre vonatkoztatott összetétel** Kromopepton 22,0 g Kromogén keverék 0,34 g Gátló anyagok 0,02 g Agar 15,0 g pH 7,7 ± 0,2 **Úgy beállítva és/vagy kiegészítve, hogy megfeleljen a működési követelményeknek. *FÜGGETLEN MÓDSZEREKKEL ÉRTÉKELTÉK ENNEK A VIZSGÁLATI KÉSZLET MODELLNEK A GYÁRTÓ ÁLTAL BIZTOSÍTOTT MINTÁIT AZ AOAC KUTATÓITÉZETBEN ÉS MEGÁLLAPÍTÁST NYERT, HOGY MEGFELELNEK A GYÁRTÓ SPECIFIKÁCIÓINAK, A KÉSZLET TÁJÉKOZTATÓJÁBAN SZEREPLŐ ÉRTÉKEKNEK MEGFELELŐEN. A GYÁRTÓ SZAVATOLJA, HOGY EZ A KÉSZLET MINDENBEN MEGFELEL AZ AOAC RESEARCH INSTITUTE ÁLTAL EREDETILEG VIZSGÁLT SPECIFIKÁCIÓKNAK AMELYNEK RÉSZLETEI FELLELHETŐK A Performance Tested Methods SM TANÚSÍTVÁNY SZÁMA 020502.

PA-254104.08

1 / 7. oldal

FIGYELMEZTETÉS . Csak szakember kezéhez. Amennyiben túl sok a nedesség, fordítsanak egy alsórészt a fedélre és hagyják levegőben megszáradni, hogy megelőzzék tömítés képződését a lemez teteje és alja között az inkubáció során. Védjék a fényhatásoktól a száradás ideje alatt. lásd TÁROLÁS ÉS ELTARTHATÓSÁG. Annak érdekében, hogy a felhasználó megszokja a Salmonella által kiváltott kromogén (szín) reakciókat, ajánlatos, hogy az intézetükben szokványosan előforduló törzsekkel oltsák be. A következő törzsek javasoltak: Salmonella ser. Typhimurium, ATCC 14028; Salmonella ser. Dublin, ATCC 15480; Salmonella ser. Typhi, ATCC 19430; and Salmonella enterica subsp. arizonae, ATCC 12323.

A klinikai mintákban patogén mikroorganizmusok, pl. hepatitis és HIV-vírusok lehetnek jelen. Szokásos óvintézkedéseket 6-9 és az intézeti irányelveket kell követni amikor vérrel és egyéb testfolyedékokkal szennyezett dolgokat kezelnek. Láasd az ÁLTALÁNOS HASZNÁLATI UTASÍTÁSOK dokumentumot a részletek, valamint az aszeptikus kezelés eljárások, biológiai veszélyek, és a használt termék ártalmatlanítása tekintetében.

TÁROLÁS ÉS ELTARTHATÓSÁG Átvétel után felhasználásig, a lemezeket sötét helyen, 2-8C-on az eredeti lezárt tasakban tárolja. Kerülni kell a lemezek megfagyását, illetve túlmelegedését. A lemezeket a lejárati időn belül kell inokulálni (lásd: csomagolás címkéje) és az előírt inkubációs időt be kell tartani. A felbontott 10-es csomagolás lemezeit, tiszta helyen, 2-8°C-on tárolva, egy héten belül fel kell használni. Termék szavatossága Ne használja a lemezeket, ha azon mikrobiális szennyeződést, elszíneződést, kiszáradást és betöredezést, illetve a károsodás bármilyen más jelét észleli.

FELHASZNÁLÓI MINŐSÉG-ELLENŐRZÉS Ellenőrizze a lemezeket minőségromlás szempontjából a Termék szavatossága fejezetben leírtak szerint. A teljesítmény ellenőrzéséhez inokuláljon lemezeket stabil kontrollmikroorganizmusok tiszta tenyészetével, hogy az ismert, várt eredményeket kapja. Ehhez a következő törzsek ajánlottak: Törzsek Salmonella Typhimurium ATCC 14028 Salmonella Enteritidis ATCC 13076 Citrobacter freundii ATCC 8090 Escherichia coli ATCC 25922 Klebsiella pneumoniae ATCC 33495 Proteus mirabilis ATCC 43071 Enterococcus faecalis ATCC 29212 Staphylococcus aureus ATCC 25923 A nem beoltott táptalaj színe

Szaporodási eredmény A telepek színe mérsékelt vagy erős nehéz szaporodás esetén, világos mályvaszíntől, mályvaszínig (rózsaszíntől a bíborig) Szaporodás; mályvaszínű (=rózsaszínűtől a bíborig) telepek A telepek színe mérsékelt vagy erős nehéz szaporodás esetén, világos kékeszöldtől a kékezöldig Gátlás részleges – teljes; kékeszöld telepek Gátlás részleges; kékeszöld telepek Gátlás részleges – teljes Gátlás részleges – teljes; kicsi, kékeszöld telepek Gátlás (részleges – teljes) Színtelen vagy világos sárga, átlátszó

Megjegyzés: A minőségellenőrzési követelmények betartásának összhangban kell lennie a vonatkozó helyi, állami és/vagy szövetségi szabályozásokkal vagy követelményekkel és a végző laboratórium irányadó minőségellenőrzési eljárásaival.

ELJÁRÁS Szállított anyagok BBL CHROMagar Salmonella (90 mm egymásra helyezett lemezek). Mikrobiológiailag ellenőrzött.

PA-254104.08

2 / 7. oldal

Szükséges, de nem szállított anyagok Mellékelt táptalaj, reagensek, minőség-ellenőrzési mikroorganizmusok és egyéb laboratóriumi berendezések, az alkalmazott laboratóriumi eljárásnakmegfelelően, mint pl. ISO 7218, USDA FSIS MLG, FDA BAM vagy az Önök specifikus laboratóriumi eljárása. Mintavétel Olvassák el a mintagyűjtésről és kezelésről szóló szakirodalmat.1-5 Minták típusa Ezt a közeget klinikai széklet mintákhoz és különböző élelmiszer mintákhoz lehet alkalmazni (nyers darált marhahús, nyers csirke, nyershal, saláta és héjas tojások). A teszt kivitelezése Aszeptikus eljárás alkalmazása javasolt. Az agar felülete legyen sima és nedves, de felesleges nedvességtől mentes. Beoltás előtt hagyja a tápközeget szobahőmérsékletre felmelegedni. A klinikai minták esetében: Lehetőség szerint a mintákat a laboratóriumba érkezésük után azonnal inokulálja egy kacs segítségével egy BBL CHROMagar Salmonella lemezen. Amennyiben a tenyésztést közvetlenül a mintavételi pálcáról indítja, forgassa meg a pálcát a táptalaj kis felületén, majd onnét, kaccsal szélessze. A helyi eljárásoktól függően, kötelező lehet további táptalaj inokulálása a Salmonella kiválasztásához és egyéb bélcsatorna patogének kimutatása érdekében. Inkubálják a lemezeket levegőben 35 ± 2 °C hőmérsékleten megfordított helyzetben (agar-oldal felül) 24 h. Amennyiben 24 h után az eredmény negatív, a végleges következtetést további 24 h inkubálás után lehet levonni. Miután a telep színe kialakul, megengedett a BBL CHROMagar Salmonella kitétele a fény hatásának. A tipikus Salmonella telepeket biokémiai vagy szerológiai vizsgálatokkal kell igazolni. BBL CHROMagar Salmonella alkalmazható az elődúsító közegből való továbboltásra, mint pl. a szelenit vagy tetrationát tápleves. Az élelmiszer minták esetében: Kövessék a mintaelőkészítési módszert, amint ez az USDA FSIS Microbiology Laboratory Guidebook (Mikrobiológiai laboratóriumi útmutatóban) szerepel: A Salmonella Isolation and Identification of Salmonella from Meat, Poultry, and Egg Products (kiválasztását és azonosítását húsból, szárnyasokból és tojástermékekből), az FDA BAM Salmonella fejezete, ISO irányelvek vagy a mintatípusnak, illetve földrajzi helyzetnek megfelelő eljárási irányelveknek megfelelően kell elvégezni. Oltsák be az inkubált dúsító tápleves mintát a BBL CHROMagar Salmonella lemezre. Szigeteljék el a lemezeket, majd inkubálják levegőben 35 ± 2 °C hőmérsékleten megfordított helyzetben (agar-oldal felül) 24 h. Amennyiben 24 h után az eredmény negatív, a végleges következtetést további 24 h inkubálás után lehet levonni. A tipikus Salmonella telepeket amelyek BBL CHROMagar Salmonella közegben szaporodnak, ISO, USDA FSIS és FDA BAM eljárások szerint kell igazolni.1-3 Eredmények Szabályos inkubálás után, a lemezeket fekete háttér előtt értékeljék. Salmonella typhimurium és egyéb Salmonella fajok világos mályvaszínűtől a mályvaszínűíg színezett telepként jelennek meg, a Salmonella enterica alfaj arizonae és egyéb Salmonella fajok amelyek pozitívak laktózra és ß-glükozidázra. Ezek az izolátumok kékeslila vagy bíbor telepként jelennek meg. Citrobacter és egyéb koliformok világos kékeszöldtől a kékeszöldig színű telepként jelennek meg. Egyes mikroorganizmusok amelyek nem hidrolizálnak egyetlen kromogén vegyülettel sem, színtelen telepként jelennek meg.

TELJESÍTMÉNYJELLEMZŐK ÉS AZ ELJÁRÁS KORLÁTAI BBL CHROMagar Salmonella egy szelektív és differenciáló közeg a Salmonella fajok elkülönítésére és feltehető azonosítására klinikai széklet mintákban és különböző élelmiszermintákban.

PA-254104.08

3 / 7. oldal

Várt eredmények Salmonella fajok világos mályvaszínűtől a mályvaszínűíg színezett telepként jelennek meg (=rózsaszínűtől a bíborig), azon Salmonella fajok kivételével amelyek pozitívak laktózra és ßglükozidázra. Ezek az izolátumok kékeslila vagy bíbor telepként jelennek meg. A következő mikroorganizmusokat izolálták a BBL CHROMagar Salmonella a klinikai és ipari minták belső és külső értékelése során: Salmonella 8, (20):-:26 Salmonella ser. Javiana Salmonella enterica subsp. arizonae Salmonella ser. Johannesburg Salmonella enterica subsp. diarizonae Salmonella ser. Kentucky Salmonella ser. Abony Salmonella ser. London Salmonella ser. Adelaide Salmonella ser. Mbandaka Salmonella ser. Agona Salmonella ser. Michigan Salmonella ser. Anatum Salmonella ser. Minnesota Salmonella ser. Bareilly Salmonella ser. Montevideo Salmonella ser. Berta Salmonella ser. Muenster Salmonella ser. Brandenburg Salmonella ser. Newport Salmonella ser. California Salmonella ser. Oranienburg Salmonella ser. Cerro Salmonella ser. Panama Salmonella ser. Choleraesuis Salmonella ser. Paratyphi A Salmonella ser. Cubana Salmonella ser. Paratyphi B Salmonella ser. Derby Salmonella ser. Pomona Salmonella ser. DT 104 Salmonella ser. Poona Salmonella ser. Dublin Salmonella ser. Potsdam Salmonella ser. Enteritidis Salmonella ser. Pullorum Salmonella ser. Essen Salmonella ser. Rubislaw Salmonella ser. Gallinarum Salmonella ser. Schwarzengrund Salmonella ser. Gaminara Salmonella ser. Senftenberg Salmonella ser. Hadar Salmonella ser. St. Paul Salmonella ser. Hartford Salmonella ser. Thompson Salmonella ser. Heidelberg Salmonella ser. Typhi Salmonella ser. Illinois Salmonella ser. Typhimurium Salmonella ser. Infantis Salmonella ser. Typhimurium (laktóz pozitív) Salmonella ser. Iverness Salmonella ser. Weltevreden Teljesítményjellemzők10 Klinikai vizsgálatok: BBL CHROMagar Salmonella lett vizsgálva egy nagy diagnosztikai laboratóriumban. A összesen 150 ismerten negatív széklet mintát és 110 ismerten pozitív székletmintát vizsgáltak BBL CHROMagar Salmonella segítségével és az eredményeket összehasonlították az XLD és Hektoen Enteric közegekkel nyert eredményekkel. A BBL CHROMagar Salmonella közeg érzékenysége és specificitása 18-24 h inkubálás után 76 %, illetve 99 % volt, 48 h inkubálás után pedig 90 %, illetve 94 %. Az érzékenység és specificitás 99 %, illetve 97 % értékre nőtt amikor selenite F táplevesből történt a továbboltás. Az összehasonlított érzékenység és specificitás eredmények az XLD közeg esetében 71%, illetve 97 %, 18-24 h inkubálásnál, és 78 %, illetve 95 % a 48 h inkubálás esetében; az érzékenység és specificitás eredmények a Hektoen Enteric közeg esetében 71 % and 94 % volt 18-24 óránál, illetve 79 % és 93 % a 48 h inkubálásnál. Mezőgazdasági termékek vizsgálata: USDA és FDA módszerek BBL CHROMagar Salmonella közeget értékelték a Salmonella visszanyerhetősége szempontjából a nyers csirke, nyers darált hús, nyershal, fejes saláta és héjas tojás esetében, belső és az AOAC által akkreditált külső laboratóriumokban. A nyers csirkét és darált marhahúst az USDA FSIS referencia módszerek szerint készítették elő. A nyershalat, fejes salátát és héjas tojást az FDA BAM eljárások szerint készítették elő. BBL CHROMagar Salmonella közeget referencia módszerrel hasonlították össze a Salmonella szelektív PA-254104.08

4 / 7. oldal

visszanyerése szempontjából. Összesen 16 darab pozitív tenyészetet nyertek nyers csirkéből, 17 darabot nyers darált marhahúsból, 18 darabot nyershalból és fejes salátából és 11 darabot héjas tojás mintákból. BBL CHROMagar Salmonella hasonló eredményeket adott a referencia módszerek eredményeihez minden alapanyagon, a módszerek egyezése ezek szerint 100% volt. 20 adalékolt nyers csirkét és darált marhahúst az USDA FSIS referencia módszerek szerint vizsgáltak. A csirke mintákat 8 CFU/25 g mint alsó szint 50 CFU/25 g mint felső szint töménységgel oltották be. BBL CHROMagar Salmonella visszanyerése 100% volt (20/20) a Salmonella alsó és felső szintjén is. Amennyiben a beoltás 1 CFU/25 g alatt volt, a visszanyerés csak részleges volt. Természetesen fertőzőtt csirkét is vizsgáltak. A Salmonella visszanyerése ismét 100% volt és a legvalószínűbb szám (MPN)/g, értéke 0,23 volt. Száztizennyolc (118) Salmonella élelmiszer eredetű izolátum, beleértve különböző szerotípusokat, laktóz táplevesen lett tenyésztve 24 h, majd továbboltva tetrationát táplevesbe 24 h. A tetrationát táplevest továbboltották BBL CHROMagar Salmonella közegbe és 35°C hőmérsékleten inkubálták. Amennyiben mályvaszínű telepek nem jelentek meg 24 órán belül, az inkubálást további 24 óráig folytatták. BBL CHROMagar Salmonella 111 izolátumot nyert vissza. Négy törzset gátolt a tetrationát tápleves és nem voltak visszanyerhetők a BBL CHROMagar Salmonella közegen vagy egy nem szelektív kontroll lemezen. Ugyanazon szerotípusok egyéb izolátumai, mint a négy negatív, nem produkáltak jellegzetes telepeket, így a pozitív reakció hiánya törzs és nem szerotípus specifikus volt. A BBL CHROMagar Salmonella általános érzékenysége 94% volt (111 a 118 izolátumból). Hatvanöt (65) izolátumot amely nem-Salmonella szív-agyvelő infúziós téplevesen tenyésztettek 35°C hőmérsékleten 24 h, majd továbboltották BBL CHROMagar Salmonella közegbe 35°C hőmérsékleten 24 h. A negatív lemezeket összesen 48 h inkubálták. Hatvanegy (61) 65 izolátumból nem mutatott mályvaszínű színeződést a BBL CHROMagar Salmonella esetében a 94% specificitást feltételezve. A négy nem-Salmonella törzset amely mályvaszínű színeződést mutatott, tetrationát táplevesbe oltották (az USDA és FDA módszerek által ajánoltt dúsító leves). 24 h inkubálás után, a tetrationát tépleveseket továboltották BBL CHROMagar Salmonella közegbe. 48 h inkubálás után, egyik törzs mályvaszínű telepeket kpezett és három törzs gátolt volt. A tetrationátos tápleves dúsítás alkalmazására alapozva, az általános specificitás a BBL CHROMagar Salmonella esetében ebben a kísérletben 98% volt. ISO módszer BBL CHROMagar Salmonella közeget referencia módszerrel hasonlították össze a Salmonella szelektív visszanyerése szempontjából, nyers csirke, nyers darált hús, nyershal, fejes saláta és héjas tojás esetében. Minden alapanyagot az ISO tenyészet módszer szerint dolgoztak fel. Összesen 16 darab pozitív tenyészetet nyertek nyers csirkéből, 17 darabot nyers darált marhahúsból, 9 darabot nyershalból, 19 darabot fejes salátából és héjas tojás mintákból. BBL CHROMagar Salmonella hasonló eredményeket adott a referencia módszerek eredményeihez minden alapanyagon, a módszerek egyezése ezek szerint 100% volt. Húsz (20) nyers darált marhahús, nyershal, fejes saláta és héjas tojás mintát alacsony szint Salmonella bektériummal oltottak be, majd az ISO tenyészet eljárás szerint vizsgálták. Húsz (20) természetesen fertőzött nyers csirke mintát vizsgáltak az ISO tenyészet eljárás szerint. BBL CHROMagar Salmonella lett adalékolva a referencia közegekhez, minden vizsgált élelmiszer alapanyag esetében. A módszer egyezése BBL CHROMagar Salmonella és a egyéb vizsgált referencia közegek között 100% volt. Az alacsony inokulum szintek 0,0036 és 0,23 MPN/g voltak. Százhuszonhét (127) élelmiszer eredetű Salmonella izolátumot tenyésztettek pufferolt pepton vízben 18 h, majd továbboltották Rappaport-Vassiliades és szója (RVS) közegbe 24 h. Az RVS tápleveseket továbboltották BBL CHROMagar Salmonella közegbe és 35°C hőmérsékleten inkubálták 24 h. Amennyiben mályvaszínű telepek nem jelentek meg 24 h PA-254104.08

5 / 7. oldal

után, a lemezeket további 24 h inkubálták. BBL CHROMagar Salmonella, 123 izolátumot nyert vissza. Annak a 4 törzsnek a visszanyerése amely nem szaporodott a BBL CHROMagar Salmonella közegen, gyenge volt a nem-szelektív kontroll közegen is. A BBL CHROMagar Salmonella általános érzékenysége 96,8% volt (123 a 127 izolátumból). AZ ELJÁRÁS KORLÁTAI Ritkán a Aeromonas hydrophila, Hafnia alvei, Pseudomonas aeruginosa, P. putida, Stenotrophomonas maltophilia, Acinobacter törzsek, vagy Candida fajok nem gátoltak teljesen és a telepek világos mályvaszínűtől a mályvaszínűig színeződést mutathatnak. Azok az igazoló tesztek amelyek mályvaszínt vagy bíbort alkalmaznak indikátor színreakcióként, nehézségeket okozhatnak az értékelésben a telepek színe miatt. Ritka törzsek a következő mikroorganizmusok közül: S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Typhimurium, S. Choleraesuis, S. Minnesota, S. enterica subsp. arizonae, és S. Pullorum esetleg nem szaporodnak vagy csökkent a szaporodásuk ezen a közegen. Ez törzsspecifikus és a letöbb vizsgált törzs esetében minden ilyen serovart visszanyertek. A BD CHROMagar Salmonella táptalaj a Salmonella fajon kívül nem alkalmas más bélpatogének kimutatására. Egyes minták vizsgálatánál, a közeg bíbor elszíneződését észlelték, érzékelhető telepszaporulat hiányában is. Ezt negatív eredménynek kell tekinteni. Minimalizálni kell a BBL CHROMagar Salmonella kitételét a fény hatásának az inkubálás előtt és után, mivel a fény megsemmisítheti a kromogéneket. A tárolás teljes időtartamára hagyja a lemezeket az eredeti zacskójukban és kartondobozukban. Inkubálás CO2 környezetben nem javasolt.

IRODALOMJEGYZÉK 1. Rose, Bonnie E. 2001. Isolation and identification of Salmonella from meat, poultry and egg products. In: Microbiology laboratory guidebook, 3 rd ed., Food Safety and Inspection Service, U.S. Department of Agriculture, Washington, D.C. 2. U.S. Food and Drug Administration. 2003. Bacteriological analytical manual (online), AOAC International, Gaithersburg, MD. 3. International Organization for Standards (ISO). Microbiology of food and animal feeding stuffs Horizontal method for the detection of Salmonella spp., 4 th Edition, ISO 6579:2002. 4. Bopp, Brenner, Fields, Wells and Strockbine. 2003. Escherichia, Shigella, and Salmonella. In Murray, Baron, Jorgensen, Pfaller, and Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 8 th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 5. D‘Aoust, Mauer and Bailey. 2001. Salmonella species. In: Doyle, Beuchat and Montville (ed.), Food microbiology: fundamentals and frontiers, 2 nd ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 6. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2001. Approved Guideline M29-A2. Protection of laboratory workers from occupationally acquired infections, 2 nd ed. NCCLS, Wayne, Pa. 7. Garner, J.S. 1996. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee, U.S. Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for isolation precautions in hospitals. Infect. Control Hospital Epidemiol. 17:53-80. 8. U.S. Department of Health and Human Services. 1999. Biosafety in microbiological and biomedical laboratories, HHS Publication (CDC), 4 th ed. U.S. Government Printing Office, Washington, D.C. 9. Directive 2000/54/EC of the European Parliament and of the Council of 18 September 2000 on the protection of workers from risks related to exposure to biological agents at work (seventh individual directive within the meaning of Article 16(1) of Directive 89/391/EEC). Official Journal L262, 17/10/2000, p. 0021-0045. 10. Jegyezett adatok, BD Diagnostic Systems.

PA-254104.08

6 / 7. oldal

CSOMAGOLÁS/KISZERELÉSEK BBL CHROMagar Salmonella Használatra kész táptalajok, 20-as csomag REF 254104

TOVÁBBI INFORMÁCIÓK További információkért forduljon a BD helyi képviseletéhez.

Becton Dickinson GmbH Tullastrasse 8 – 12 D-69126 Heidelberg/Germany Phone: +49-62 21-30 50 Fax: +49-62 21-30 52 16 [email protected] http://www.bd.com http://www.bd.com/europe/regulatory/ AOAC is a trademark and Performance Tested is a service mark of AOAC International. CHROMagar is a trademark of Dr. A. Rambach. Difco is a trademark of Difco Laboratories, subsidiary of Becton, Dickinson and Company. ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection BD, BD Logo and all other trademarks are property of Becton, Dickinson and Company. © 2013 BD

PA-254104.08

7 / 7. oldal