BD CHROMagar Orientation Medium

HASZNÁLATI UTASÍTÁSOK – HASZNÁLATRA KÉSZ TÁPTALAJOK PA-257481.03

Változat: Sep 2011

BD CHROMagar Orientation Medium HASZNÁLATI JAVASLAT A BD CHROMagar Orientation Medium egy nem szelektív táptalaj a húgyúti rendszer kórokozóinak izolálásához, azonosításához, differenciálásához és megszámlálásához. A BD CHROMagar Orientation Medium lehetővé teszi az Escherichia coli és az Enterococcus differenciálását és azonosítását további megerősítő vizsgálatok nélkül.

AZ ELJÁRÁS ELVE ÉS MAGYARÁZATA Mikrobiológiai módszer. Az Escherichia coli, az enterococcusok, a Klebsiella-Enterobacter-Serratia és a ProteusMorganella-Providencia csoport tagjai jelennek meg a leggyakrabban a húgyúti rendszer fertőzéseiben (UTI = Urinary Tract Infection). Az UTI-t 60-70%-ban az E. coli egyedül, vagy enterococcusokkal együtt okozza. Bár kisebb gyakorisággal, de a női UTI-ból Staphylococcus saprophyticus és Streptococcus agalectiae is izolálható. Mivel a mikroorganizmusok antibiotikumokkal szembeni érzékenysége különböző, a biokémiai tesztek alapján történő faj szintű identifikálás elengedhetetlen a hatékony antimikrobiális terápia érdekében. Ez az egyik legidőigényesebb feladat a vizelet minták laboratóriumi feldolgozása során. A leggyakrabban kitenyésztett törzsek vagy mikróba-csoportok jellemzo enzimeket termelnek. Így ezeket a kórokozókat már néhány szubsztrát fermentálási vagy felhasználási teszt alapján lehetséges faji szintig azonosítani.1,2 Ezek közül a kórokozók közül némelyik enzimeket termel a laktóz vagy a glükozidok, vagy mindketto metabolizálásához, míg más kórokozók egyáltalán nem termelnek ilyen enzimeket. Például, az E. coli termel a laktóz felhasználásához szükséges enzimet, de ß-glükozidáz negatív. Az Enterobacteriaceae család más tagjai ß-glükozidáz pozitívek, de nincsenek a laktóz bontáshoz szükséges enzimjeik, megint mások rendelkeznek mindkét enzimmel vagy egyikkel sem. Béta-glükozidázok találhatók a gram-pozitív coccusokban is, mint például az Enterococcus fajok és a Streptococcus agalatiae. A tryptofán-deamináz (TDA) egy, jellegzetesen a Proteus-Morganella-Providencia csoport tagjaiban előforduló enzim. Teljesítmény értékelések kimutatták, hogy a BD CHROMagar Orientation Medium jobban teljesít, mint az izoláláshoz, differenciáláshoz és az ÚTI patogén csíraszám meghatározásához általában használt differenciáló táptalajok, mint amilyen a CLED agar, valamint a véres és a MacConkey agar kombinációja.3-5 A BD CHROMagar Orientation Medium lehetové teszi az E. coli azonosítását közvetlenül az izolációs lemezen, valamint a legtöbb Staphylococcus saprophyticus és S. agalactiae törzs és a Klebsiella-Enterobacter-Serratia (=KES) és a ProteusMorganella-Providencia (= PMP) csoport tagjainak feltételes azonosítását a telepek és a táptalaj színe alapján. Mivel a BD CHROMagar Orientation Medium egy nem szelektív táptalaj, más UTI mikroorganizmusok is növekednek rajta, de ezek azonosításához biokémiai tesztek elvégzése szükséges. A CHROMagar Orientation Medium táptalajt A. Rambach fejlesztette ki és a BD forgalmazza a CHROMagar-ral (Párizs, Franciaország) kötött licensz-szerződés alapján. A BD CHROMagar Candida Medium táptalajban speciálisan kiválasztott peptonok szolgáltatják a tápanyagokat. A kromogén keverék mesterséges szubsztrátokat (kromogéneket) tartalmaz, amelyekből különböző színes termékek szabadulnak fel specifikus bakteriális enzimek hatására, így lehetővé válik bizonyos fajok elkülönítése, vagy bizonyos baktériumcsoportok kimutatása, csupán néhány megerősítő vizsgálattal.

PA-257481.03

-1-

REAGENSEK BD CHROMagar Orientation Medium 1 liter szűrt vízre vonatkoztatva* Krómpepton 16,1 g Kromogén keverék 1,3 Agar 15,0 pH 6,9 +/- 0,2 *Úgy beállítva és/vagy összekeverve, hogy megfeleljen a működési követelményeknek.

FIGYELMEZTETÉS . Használata szakértelmet igényel. . Ne használja a lemezeket, ha azon mikrobiális szennyeződés, kiszáradás és betöredezés, ill. a károsodás bármilyen más jelét észleli. A steril munkával, a biológiai veszélyekkel és a használt termékek hulladékként való kezelésével kapcsolatban olvassa el az ÁLTALÁNOS HASZNÁLATI ÚTMUTATÓT.

TÁROLÁS ÉS ELTARTHATÓSÁG Átvétel után felhasználásig, a lemezeket sötét helyen, 2-8C-on az eredeti lezárt tasakban tárolja. Kerülni kell a lemezek megfagyását, illetve túlmelegedését. A lemezeket a lejárati időn belül kell inokulálni (lásd: csomagolás címkéje) és az előírt inkubációs időt be kell tartani. A felbontott 10-es csomagolás lemezeit, tiszta helyen, 2-8°C-on tárolva, egy héten belül fel kell használni.

USER QUALITY CONTROL Inokulálja a reprezentatív mintát a következő törzsekkel (a részletekért, lásd: ÁLTALÁNOS HASZNÁLATI ÚTMUTATÓT). Inkubálja a lemezeket aerob körülmények között 35 - 37°C-on fordított helyzetben (agar felül), 20-24 óráig. Törzsek Várt eredmény Jó – kiváló növekedés, közepes – széles, sötét rózsaszínű, Escherichia coli ATCC™ 25922 pink, áttetsző telepek Jól, kitűnően nő; közepes méretű, sötétkék telepek, lila Enterobacter cloacae ATCC 13047 udvarral vagy anélkül Jó – kiváló növekedés, közepes méretű telepek, halványak – Proteus mirabilis ATCC 14153 drapp színűek, borostyánszínű vagy barna udvarral, a sűrűn benőtt területeken a táptalaj teljesen borostyánszínű vagy barna lehet. A rajzás részlegesen vagy teljesen gátolt. Jó – kiváló növekedés; kis telepek, kékeszöld-kék színűek Enterococcus faecalis ATCC 29212 Elégséges – jó növekedés; pontszerű – kis telepek; világos Streptococcus agalactiae ATCC 12386 kékeszöld – világos kék színűek, udvarral vagy anélkül Staphylococcus aureus Jó – kiváló növekedés, közepes – kis méretű, természetes ATCC 25923 színű (fehér - krém) telepek Staphylococcus saprophyticus Elégséges – jó növekedés; kis telepek, átlátszatlan, világos ATCC 15305 (=NCTC 10516) élénk rózsaszín - rózsaszínűek Nem inokulált Színtelen – nagyon világos borostyán szín, áttetsző

ELJÁRÁS Szállított anyagok BD CHROMagar Orientation Medium (90 mm Stacker™ lemezek) Mikrobiológiailag ellenőrzött Nem szállított anyagok Kiegészítő tápleves a tenyésztéshez, reagensek és szükséges laboratóriumi eszközök.

PA-257481.03

-2-

Minták típusa Ezt a táptalajt kizárólag a vizeletben lévő baktériumok differenciálására és azok számának megállapítására lehet használni. Felhasználható középsugaras vagy katéterrel, illetve suprapubicus hólyagpunkcióval gyűjtött vizelet (lásd még: TELJESÍTMÉNY JELLEMZŐK ÉS AZ ELJÁRÁS KORLÁTAI). A vizeletminták begyűjtésénél dolgozzon aszeptikusan. Annak érdekében, hogy elkerülje a fertőző ágensek, illetve a szennyező mikroorganizmusok elszaporodását, a vizeletet közvetlenül a táptalajra kell széleszteni (a mintagyűjtést követő 2 órán belül) vagy mélyhűtve kell tárolni (legfeljebb 24 órán át). A teszt kivitelezése A kalibrált kacsok, illetve a vizelet szélesztésben használatos más módszerek alkalmazása feltétlenül szükséges ahhoz, hogy jól elkülönülő, jellegzetes színű és formájú telepeket kapjon. A hígítatlan, gondosan összekevert vizeletből egy kalibrált kacs (0,01 vagy 0,001 ml) segítségével vegyen mintát. Győződjön meg róla, hogy a kacs megfelelő mennyiségű mintát tartalmaz. A lemezt a táptalaj közepén egyetlen egyenes, lefelé húzott vonallal inokulálja, melyből a további szélesztést indíthatja.6,7 Inkubálja az inokulált lemezeket aerob körülmények között 35 - 37°C-on fordított helyzetben (agar felül), 20-24 óráig. Az inkubáció alatt a lemezeket óvja fénytől, mivel az tönkreteheti a kromogéneket. Amint kifejlődött a telepek színe, megengedhető, hogy a lemezeket fény érje. Eredmények Inkubáció után a lemezeken, ott, ahol az inokulum hígítása megfelelo volt, különálló telepek láthatók. Használja az 1. Táblázatot és az 1. Ábrát az azonosításhoz és differenciáláshoz valamint útmutatóként a további megerosíto tesztekhez. Az eredményeket gram-festéssel és mikroszkóppal lehet megerősíteni. 1. Táblázat: Irányelvek a telepek színén alapuló azonosításhoz Mikrooganizmus

Megjelenés BD CHROMagar Orientation Medium táptalajon

E. coli a

Közepes – széles, sötét rózsaszín – pink, áttetsző telepek, udvarral vagy anélkül az őket körülvevő táptalajon. Közepes méretű, kék - sötétkék telepek, lila udvarral vagy anélkül

KES b csoport PMP c csoport

Sápadt, drapp telepek barna udvarral d

Enterococcus S. agalactiae

Kicsi, kékes-zöld telepek Világos kékeszöld – kék, pontszerű – kis telepek; udvarral vagy anélkül Világos élénk rózsaszínű – rózsaszínű, kicsi átlátszatlan telepek udvarral vagy anélkül Természetes (krémszínű) pigmentáció

S. saprophyticus (legtöbb törzs) Más (élesztőket is beleértve) Az a-h lábjegyzeteket lásd 1. Ábra

Megerősítő tesztek (A további differenciáláshoz szükséges)

BBL CRYSTAL E/NF a nemzetségeken belüli differenciáláshoz Indol, H 2 Se, ODCf, BBL™ CRYSTAL™ E/NF a nemzetségeken belüli differenciáláshoz PYR g 5 µg Novobiocin korong h Megfelelő biokémiai vagy szerológiai azonosító tesztek

Megerősítő tesztek Végezze el a szükséges megerosíto teszteket (1. Táblázat, 1. Ábra). Ne öntsön reagenseket közvetlenül a BD CHROMagar Orientation Medium táptalajon növo telepekre. Ehelyett ajánlott a teszteket a tenyészttel szűrőpapíron elvégezni. Azon E. coli telepek esetén, amelyek sötétrózsaszín - pink színűek, de pontszerűek vagy kicsik a méretüket tekintve, ne használja a Kovács-féle indol reagenst, mivel a telepek színe interferálhat a pozitív indol teszt vörös színével, ehelyett használjon dimetil-amino-cinnamaldehid (DMACA) indol reagenst (zöld = pozitív). PA-257481.03

-3-

Ha más megerősítő vizsgálatokat vagy biokémiai azonosító rendszereket alkalmaz, kövesse az azokhoz tartozó utasításokat. Enterococcus-ok esetén megerősítő vizsgálatokat csak abban az esetben végezzen, ha a genus szint alatti azonosítás szükséges. 1. Ábra: Irányelvek az azonosító vizsgálatok elvégzéséhez a kiválasztott baktériumon A telep megjelenése Kicsi, rózsaszínű, átlátszatlan

Színtelen – drapp telepek, narancsosbarna táptalaj

 5 µg Novobiocin  érzékeny S. intermedius BBL CRYSTAL GP a korong S. simulans  rezisztens  S. sapr phyticus, nemzetségen belüli differenciáláshoz S. xylosus  PMP csoport

 DMACAi Indol teszt

 zöld (pozitív)  H 2 S pozitív H 2 S negatív  színtelen – rózsaszínű (negatív) ODC pozitív f ODC negatív f

a

 P. vulgaris Providencia spp, Morganella spp.

 P. mirabilis  P. penneri

Lásd az Eljárás Korlátai KES = Klebsiella-Enterobacter-Serratia csoport c PMP = Proteus-Morganella-Providencia csoport d A borostyán-barna szín a minden, PMP csoportba tartozó mikroorganizmusra jellemzo pozitív triptofán-deamináz (TDA) eredménye. A P. vulgaris törzsek közel 50%-a borostyánszínű-barna táptalajon, kék telepeket fejleszt. e Hagyományos hidrogén-szulfit teszt. f Hagyományos ornitin-dekarboxiláz teszt. g Piroglutamát teszt pirrolidonil arilamidázra nézve. h Az izolátummal szélesztéssel inokuláljon egy Mueller Hinton II Agar lemezt. Helyezzen egy Novobiocin (5 µg) korongot az inokulált lemezre. Inkubálja a lemezt 18-24 órán át 35-37°C-on és határozza meg a gátlási zóna méretét. rezisztens  16 mm; érzékeny: > 16 mm). i DMACA = dimetil-amino-cinnam-aldehid reagens az indol termeléshez. Tegyen egy szűropapírra reagenst, majd dörzsöljön bele a reagens tartalmú szűropapír részbe egy telepet. Várjon 10-20 másodpercig. A zöld szín az indol termelés meglétét mutatja (piros, vagy színtelen = negatív). b

Számlálás és az Eredmények értelmezése 6,7 Számolja meg a lemezen lévő telepeket (cfu). Amennyiben 0,01 ml-es kacsot használt, minden telep 100 CFU/ml vizelet jelent, míg egy 0,001 ml-es kacs esetében egy telep 1000 CFU/ml vizeletet jelent. Középsugaras és katéter vizelet: Az általánosan elfogadott irányelvek szerint egy izolátumból származó 105 cfu/ml sűrűség fertőzésre, <105 cfu/ml uretális vagy vaginális fertőzésre utal, míg egy104 to 105 cfu/ml közötti sűrűség okát a klinikai adatok alapján újra kell értékelni. A fertőző baktériumok általában kis számban és változó telep morfológiával jelennek meg. Suprapubicus hólyagpunkcióval gyűjtött vizelet: Mivel a húgyhólyag a nem fertőzött egyedekben steril, bármekkora cfu fertőzésre utal. A húgyúti rendszer patogén kórokozói általában nagy számban, egységes telep morfológiával és színben jelennek meg ezen a táptalajon.

TELJESÍTMÉNY JELLEMZŐK ÉS AZ ELJÁRÁS KORLÁTAI A BD CHROMagar Orientation Medium egy nem szelektív táptalaj a húgyúti rendszer kórokozóinak izolálásához, azonosításához, differenciálásához és megszámlálásához. A táptalaj számos aerob mikroorganizmus, mint az Enterobacteriaceae-k, a Pseudomonas és más nem fermentáló gram-negatív pálcák, enterococcusok, staphylococcusok és más a vizeletben megtalálható baktériumok izolálására alkalmas. A teljesítmény értékelés kimutatta, hogy a BD CHROMagar Orientation Medium használatának számos előnye van más, az ÚTI patogének izolálásához, differenciálásához és baktériumszámának megállapításához használt differenciáló PA-257481.03

-4-

táptalajokkal szemben, mint amilyen a CLED Agar vagy a véres és MacConkey agarok kombinációja.3-5 A BD CHROMagar Orientation Medium lehetővé teszi az azonosításra vonatkozó CLSI M35-A standard alapján („Abbreviated Identification of Bacteria and Yeast; Approved Guideline" = Baktériumok és gombák rövidített azonosítása) az E. coli és az enterococcusok elkülönítését és azonosítását további biokémiai vizsgálatok nélkül.8 A telepmorfológia, a pigmentáció és a táptalaj elszíneződése alapján lehetővé teszi a S. saprophyticus, a S. agalactiae, a KlebsiellaEnterobacter-Serratia (KES) és a Proteus-Morganella-Providencia (PMP) csoport feltétételezett identifikálását. Mivel a húgyúti fertőzéseket általában az E. coli és/vagy enterococcusok okozzák, ennek a táptalajnak a használata jelentősen lecsökkenti a hagyományos táptalajok alkalmazása esetén szükséges, inokulálásra és az identifikáló rendszerek leolvasására fordított munka és idő mennyiségét. Eredmények4,9,10 A BD CHROMagar Orientation Medium és egy kromogén kompetitor táptalaj mikrobiológiai hatékonyságát összehasonlították a Columbia agar with 5% sheep blood és a kristályibolya nélküli MacConkey agarral a húgyúti fertozésekért felelos kórokozók baktériumszámának megállapítása és az elozetes identifikálásának tekintetében.4 Összesen 658 klinikai vizeletmintából 118 nem mutatott növekedést, 402 minta 105 cfu/ml sejtszámmal növekedett és 138 minta <105 cfu/ml sejtszámmal növekedett. A 105 cfu/ml sejtszám feletti minták közül 163 tiszta kultúra volt, 239 pedig vegyes kultúra. Összesen 266 esetben izoláltak Escherichia coli-t mindkét kromogén agaron, 260 esetben a véres agaron és 248 esetben a MacConkey agaron. A BD CHROMagar Orientation Medium táptalajon egy törzs (0,4%) nem mutatta a várt rózsaszínű telepeket, a kompetitor táptalajon 23 törzs (8,7%) nem mutatta a várt rózsaszínű telepeket. Az enterococcusok (BD CHROMagar Oreintation Medium, n = 266; kompetitor táptalaj, n = 265) mindkét táptalajon kis méretű, kékes-zöld telepeket fejlesztett. A vegyes kultúrák közül 50 tartalmazott enterococcusokat is, ezeket csak a kromogén táptalaj detektálta. A Klebsiella-Enterobacter-Serratia (KES) és a Proteus-Morganella-Providencia (PMP) csoportokat mindkét kromogén táptalaj azonosította. A KES csoport 66 izolátumából 63 a várt színnel nott a BD CHROMagar Orientation Medium táptalajon és 64 izolátumból 58 nott a várt színben a kompetitor táptalajon. A többi mikroorganizmus esetében további azonosító tesztekre volt szükség. Egy második hatékonysági vizsgálat során, összesen 421 klinikai vizeletmintával, 286-ot, melyekből baktériumokat vagy élesztőket lehetett kitenyészteni, BD CHROMagar Orientation Medium és BD Columbia Agar with 5% Sheep Blood táptalajon is megvizsgáltak.9 A kromogén táptalajon 483 izolátumot kaptak, míg a véres agaron 447 törzset izoláltak. A törzseket biokémiai módszerekkel azonosították. Az E. coli törzsek közül 95%-ot a rózsaszínpink szín helyesen azonosított, míg a maradék E. coli törzsek pigment nélküliek voltak. Az Enterococcus fajok összes izolátuma a jellegzetes kékes-zöld színt mutatta. A Streptococcus agalactiae izolátumok apró, világos kék, kékes-zöld telepeket fejlesztettek és az enterococcusoktól egy negatív PYR teszttel különböztették meg oket. Az összes Staphylococcus saprophyticus és S. simulans izolátum kis méretű, rózsaszínű, átlátszatlan telepeket fejlesztettek, egy novobiocin teszttel különböztették meg oket, fajszintű meghatározást biokémiai tesztekkel végezték el. Egy vak belső tanulmány során, melyben 900, vizeletből nyert baktériumtörzset vizsgáltak, E. coli esetén a BD CHROMagar Orientation Medium táptalaj érzékenysége és specifikussága kizárólag a telep színe és morfológiája alapján rendre 97% és 99% volt; Enterococcus esetén az identifikálás érzékenysége és specifikussága 99% és 97% volt (lásd Táblázat).10

PA-257481.03

-5-

Mikrooganizmus

E. coli Enterococcus

Érzékenység % (95% konfidencia intervallum) 277/286 96,9% (94,1-98,6%) 319/324 98,5% (96,4-99,5%)

Specifitás % (95% konfidencia intervallum) 638/645 98,9% (97,8-99,6%) 603/622 97% (95,3-98,2%)

Az eljárás korlátai Mivel ez a táptalaj nem szelektív, más UTI kórokozók is kifejlődnek rajta. Azokat a telepeket, melyek természetes színükkel jelennek meg és nem lépnek reakcióba a BD CHROMagar Orentation Medium táptalaj kromogén szubsztrátjaival, a következőkben a megfelelő biokémiai vagy szerológiai tesztekkel kell differenciálni. Lásd: Irodalomjegyzék.1,2 A sötét rózsaszín – pink E. coli telepek esetében, melyek pontszerűek vagy kis méretűek, további megerősítő tesztek szükségesek, mint például az indol-teszt (DMACA indol reagens). A nem a KES csoportba tartozó gram-negatív pálcák széles kék telepeket fejleszthenek a BD CHROMagar Orentiation Medium táptalajon, ezek azonosításához további biokémiai tesztek szükségesek. Igen ritka esetekben a vizeletből Listeria monocytogenes vagy más Listeria fajok is előfordulhatnak a vizeletben (például a miattuk bekövetkezett vetélés után). A Listeria kicsi, kék - kékeszöld telepeket fejleszt, melyek PYR-negatívak, így összetéveszthetők a Streptococcus agalactiae-val. Ezért hasznosnak bizonyulhat minden ezen a táptalajon apró, kis méretű, kék – kékeszöld, PYR negatív telepeket fejlesztő telepeket gram-festéssel megfesteni. A gram-pozitív pálcák jelenléte jelezheti Listeria fajok jelenlétét, de azok identifikálásához további biokémiai tesztek szükségesek. Igen ritkán, az Aeromonas hydrophila izolátumai rózsaszínű – pink telepeket fejlesztenek. Ezeket az E. coli-tól egy oxidáz-teszttel lehet megkülönböztetni (Aeromonas = pozitív; E. coli = negatív). Esetenként, a S. saprophyticus-tól különböző, koaguláz-negatív staphylococcusok, mint pl. a S. simulans, a S. xylosus és a S. intermedius, kis méretű, rózsaszínű, átlátszatlan telepeket fejlesztenek. Ezért, ezekkel az izolátumokkal további tesztek elvégzése szükséges (lásd 1. Ábra). A BD CHROMagar Orientation Medium nem támogatja az olyan érzékeny mikroorganizmusok, mint a Neisseria, a Haemophilus vagy a Mycoplasma fajok fejlődését. Ennek a táptalajnak a nem vizelet eredetű klinikai és nem klinikai mintákhoz való alkalmazását nem dokumentálták. Mielőtt a BD CHROMagar Orientation Medium táptalajt első ízben alkalmazná, ajánlatos a kolóniák jellegzetes megjelenését ismert törzsekkel, pl. a FELHASZNÁLÓI MINŐSÉGI ELLENŐRZÉS-ben megadott törzsekkel begyakorolni.

IRODALOMJEGYZÉK 1. Isenberg, H.D. (ed.). 1992. Clinical Microbiology Procedures Handbook, vol. 1. American Society for Microbiology. Washington, DC. 2. Forbes, B.A., D.F. Sahm, and A.S. Weissfeld. 1998. Bailey & Scott’s diagnostic microbiology, 10th ed. Mosby, Inc., St. Louis. 3. Merlino, J., S. Siarakas, G. J. Robertson, G. R. Funnell, T. Gottlieb, and R. Bradbury. 1996. Evaluation of CHROMagar Orientation for differentiation and presumptive identification of gramnegative bacilli and Enterococcus species. J. Clin. Microbiol. 34: 1788-1793. 4. Hengstler, K.A., R. Hammann, and A.-M. Fahr. 1997. Evaluation of BBL CHROMagar Orientation medium for detection and presumptive identification of urinary tract pathogens. J. Clin. Microbiol. 35: 2773-2777. PA-257481.03

-6-

5. Samra, Z., M. Heifetz, J. Talmor, E. Bain, and J. Bahar. 1998. Evaluation of use of a new chromogenic agar in detection of urinary tract pathogens. J. Clin. Microbiol. 36: 990-994. 6. Clarridge, J.E., M.T. Pezzlo, and K.L. Vosti. 1987. Cumitech 2A, Laboratory diagnosis of urinary tract infections. Coordinating ed., A.S. Weissfeld. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 7. Forbes, B.A., and P.A. Granato. Processing specimens for bacteria. 1995. In: Murray, P. R., E. J. Baron, M. A. Pfaller, F. C. Tenover, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 6th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

8. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI, formerly NCCLS). Approved Guideline M35. Abbreviated identification of bacteria and yeast, CLSI, Wayne, PA.Search for latest version at www.clsi.org 9. Data on file. BD Diagnostic Systems Europe, Heidelberg, Germany. 10. Data on file. BD Diagnostic Systems, Sparks, MD, USA. 11. Abbott, S.L. 2003. Klebsiella, Enterobacter, Citrobacter, Serratia, Plesiomonas, and other Enterobacteriaceae. In: Murray, P. R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.

KISZERELÉSEK BD CHROMagar Orientation Medium Cat. No. 257481 Használatra kész táptalajok, 20-as csomag Cat. No. 254107 Használatra kész táptalajok, 120-as csomag

TOVÁBBI INFORMÁCIÓK További információkért forduljon a BD helyi képviselőjéhez.

Becton Dickinson GmbH Tullastrasse 8 – 12 D-69126 Heidelberg/Germany Phone: +49-62 21-30 50 Fax: +49-62 21-30 52 16 [email protected] http://www.bd.com http://www.bd.com/europe/regulatory/ CHROMagar is a trademark of Dr. A. Rambach. ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection BD, BD Logo and all other trademarks are property of Becton, Dickinson and Company. © 2011 BD

PA-257481.03

-7-