DETOKSIFIKASI DAN UJI TOKSISITAS AKUT LIMBAH BUNGKIL BIJI JARAK PAGAR TERHADAP TIKUS PUTIH (Detoxification and Acute Toxicity Assay of Jatropha curcas Cake to Rats) Oleh/By: R. Sudradjat, D.W Lussy & D.Setiawan
ABSTRACT Jatropha curcas meal are produced as a residue from biodiesel production. Several findings showed that the cake have high protein content which can be used as an alternative protein supplement for livestock food, but the meal contains dangerous toxins such as saponins, lectin (curcin), tripsin inhibitors, and phorbolesters. The objectives of this research are : to detoxify the toxins, to determine the nutrient contents, and to observe the acute toxicity assay. Phytochemistry analysis shows that detoxification eliminates saponins and alkaloid compound. According to proximate analysis, some parameters such as ash, fat, and sugar content are affected by detoxification, while moisture, protein, and crude fiber are not. According to animal feed proximate standard, the cake are suitable for ruminant feed. Acute toxicity assay shows that there is no tested animal death, so it is concluded that the LD50 lays over 15 g/kg dose of body weight is nontoxic. Keywords : Detoxification, toxicity assay, Jatropha curcas meal, rats.
ABSTRAK
1
Bungkil biji jarak pagar merupakan limbah dari produksi biodiesel. Beberapa penelitian menyebutkan bahwa bungkil masih mengandung kadar protein yang tinggi sehingga dapat digunakan sebagai alternatif suplemen pakan ternak. Namun dikatakan juga bahwa bungkil biji jarak mengandung racun yang berbahaya seperti saponin, lektin (kursin), inhibitor tripsin dan ester forbol. Penelitian ini dilakukan untuk mengetahui kandungan gizi, mendetoksifikasi racun dalam bungkil dan menguji toksisitas akut bungkil terhadap tikus putih. Analisis fitokimia menunjukkan bahwa detoksifikasi dapat mengurangi senyawaan saponin dan alkaloid contoh. Berdasarkan analisis proksimat, beberapa parameter seperti kadar abu, lemak dan gula pereduksi contoh dipengaruhi oleh detoksifikasi, sedangkan kadar air, protein dan serat kasar tidak dipengaruhi oleh detoksifikasi. Berdasarkan standar proksimat pakan ternak, ampas bungkil biji jarak cocok untuk pakan ruminansia. Uji toksisitas akut menunjukkan bahwa tidak ada kematian dari hewan coba, sehingga diduga LD50 di atas dosis 15 g/kg BB dan ampas bungkil biji jarak dapat digolongkan non toksik. Kata kunci : Detoksifikasi, uji toksisitas, biji jarak pagar, tikus putih .
I. PENDAHULUAN Jarak pagar merupakan tanaman yang tersebar luas di beberapa wilayah di Indonesia.
2
Tanaman ini dapat menghasilkan minyak sebagai biodiesel untuk pengganti BBM (Sudradjat, 2006). Proses pembuatan biodiesel dari tanaman jarak pagar akan menghasilkan limbah berupa bungkil biji jarak pagar. Bungkil tersebut masih mengandung sisa-sisa minyak dan kandungan gizi terutama protein. Bungkil biji jarak pagar dapat dimanfaatkan untuk pupuk, produksi biogas dan untuk pakan ternak terutama dari varietas yang tidak beracun (Heyne, 1987). Menurut Becker dan Makkar (1998), bungkil biji jarak pagar memiliki kandungan nutrisi yang tinggi terutama protein yaitu sekitar 53 - 58%, sehingga dapat digunakan sebagai suplemen protein untuk pakan ternak jika racunnya telah dihilangkan. Menurut Sinaga (2005), kandungan kimia kayu jarak pagar terdiri atas n-1-triakontanol, αamirin, kampesterol, stigmasterol, β-sitosterol, isoviteksin, viteksin dan HCN. Daun dan batangnya mengandung saponin, senyawaan flavonoid, tanin dan polifenol. Getahnya mengandung tanin sebesar 11 - 18%. Bijinya mengandung senyawaan alkaloid, saponin dan sejenis protein beracun yaitu kursin. Biji jarak mengandung minyak yang terdiri atas berbagai trigliserida dari asam stearat, oleat, linoleat, palmitat dan sebagainya. Menurut Kulkarni et al. (2005), senyawa racun pada tumbuhan jarak pagar paling banyak ditemukan pada bijinya. Senyawa racun itu adalah kursin (lektin) yang merupakan molekul protein kompleks yang memiliki toksisitas tinggi. Senyawa toksik lain yang ditemukan dalam tumbuhan jarak pagar di antaranya adalah asam sianat (Kulkarni et al., 2005), ester forbol, inhibitor tripsin, lektin (kursin) dan saponin (Makkar et al., 1997), flavonoid, viteksin dan isoviteksin (Mourque et al., 1961 diacu dalam Aregheore et al., 2003) dan 12-deoksil-16-hidroksiforbol (Adolf et al., 1984 diacu dalam Aregheore et al., 2003). Toksisitas jarak pagar disebabkan oleh keberadaan ester forbol pada varietas beracun, sehingga tidak dapat digunakan sebagai bahan pakan. Adapun keberadaan lektin (kursin) dan inhibitor tripsin yang tinggi tidak berperan serta dalam toksisitas jangka
3
pendek Kajian mengenai efek racun dari biji jarak pagar telah dilakukan pada beberapa hewan coba (Adam, 1974 ; Ahmed & Adam, 1979 ; El Balwi et al., 1995 ; Liberalino et al., 1988, diacu dalam Aregheore et al., 2003). Hasilnya menunjukkan bahwa biji jarak pagar bersifat racun. Adapun racun yang berperan dalam toksisitas biji jarak pagar adalah ester forbol, inhibitor tripsin, lektin dan saponin (Makkar et al., 1997). Efek racun dapat dilihat dari tingginya tingkat kematian hewan coba dan gejala klinis yang terjadi seperti diare, dehidrasi, mata cekung dan menurunnya kondisi tubuh hewan percobaan. Sementara itu, kajian terhadap toksisitas bungkil biji jarak belum pernah dilakukan sebelumnya. Oleh karena itu, penelitian ini diarahkan untuk mengetahui toksisitas akut dari bungkil biji jarak dengan pengujian terhadap tikus putih. Kajian lebih lanjut dari penelitian ini adalah pemanfaatan bungkil biji jarak pagar sebagai alternatif pakan ternak. Sebelum dimanfaatkan sebagai pakan ternak, bungkil biji jarak perlu didetoksifikasi terlebih dahulu. Tujuannya adalah untuk menghilangkan senyawa-senyawa toksik dari bungkil biji jarak. Hasil penelitian ini diharapkan memberikan informasi yang bermanfaat tentang kelayakan sisa bungkil biji jarak untuk pakan ternak dilihat dari uji toksisitas yang dilakukan.
II. METODOLOGI A. Bahan dan Alat Bungkil biji jarak yang digunakan dalam penelitian ini adalah ampas bungkil sebelum dan setelah detoksifikasi. Ampas bungkil sebelum detoksifikasi adalah ampas bungkil yang hanya diekstraksi dengan cara maserasi, sedangkan ampas bungkil setelah detoksifikasi merupakan
4
ampas bungkil yang mengalami perlakuan lebih lanjut setelah ekstraksi secara maserasi yaitu detoksifikasi. Hewan percobaan yang digunakan dalam uji toksisitas adalah tikus putih jantan galur Spraque-Dawley, dalam kondisi sehat, mempunyai aktivitas normal dan berusia 2 bulan. Bahan-bahan yang digunakan untuk detoksifikasi bungkil biji jarak adalah petroleum eter, akuades dan metanol 92%. Bungkil biji jarak pagar berasal dari Nusa Tenggara Barat. Bahanbahan untuk uji fitokimia adalah HCl pekat, Mg, amil alkohol, kloroform, amonia, H2SO4 2M, pereaksi Meyer, metanol, FeCl3 1%, akuades, etanol, pereaksi Lieberman-Buchard,
kertas
saring, asam pikrat (2,4,6-trinitrofenol), NaHCO3, dan toluena. Bahan-bahan untuk uji proksimat adalah bungkil biji jarak, H2SO4 pekat, selenium, asam borat 4%, indikator BCG-MM, HCl 0,02 N, petroleum benzena, H2SO4 1,25%, kertas saring Whatman 41, etanol 96%, etanol 70%, larutan Luff Schoorl, KI 20%, H2SO4 25%, Na2S2O3 0,1 N dan indikator pati. Alat-alat yang digunakan adalah blender, cawan porselin, tanur, pembakar gas, piringan pemanas, alat destruksi protein, labu dan alat destilasi Kjeltech, seperangkat soxlet dan refluks, pendingin tegak, pompa vakum, oven, penangas air, eksikator, neraca analitik, penguap putar (rotary evaporator), spot plate dan alat-alat gelas lainnya.
B. Metode Tahapan yang dilakukan dalam penelitian ini terdiri atas preparasi contoh, yaitu ekstraksi bungkil biji jarak dengan cara maserasi, analisis proksimat ampas bungkil biji jarak, detoksifikasi ampas bungkil biji jarak, analisis proksimat bungkil biji jarak setelah detoksifikasi, uji fitokimia dan pengujian toksisitas akut dari ampas setelah detoksifikasi terhadap tikus putih. Pemilihan metode ekstraksi terhadap bungkil adalah dengan cara maserasi. Hal itu
5
didasarkan karena metode ini memiliki keuntungan dalam segi penanganan yang lebih mudah dan biaya yang lebih murah dibandingkan dengan metode ekstraksi lain. Adapun tujuan ekstraksi adalah untuk menghilangkan minyak dan menghilangkan racun nonpolar. 1. Alur proses Tahapan penelitian ini dilakukan mengikuti alur proses seperti tertera pada Gambar 1 yaitu ekstraksi bungkil biji jarak dengan proses maserasi, kemudian ekstrak dilakukan uji proksimat, fitokimia dan selanjutnya dilakukan proses detoksifikasi. Proses detoksifikasi dilakukan dengan penambahan air ke dalam bungkil sebanyak 2 kali volume bungkil, kemudian disterilisasi dalam autoklaf pada suhu 121°C selama 30 menit. Setelah itu ditempatkan dalam pendingin dan diliofilisasi (dikeringkan dan dibekukan), kemudian digerus, dicuci dengan metanol 92% sebanyak 4 kali. Setelah selesai proses detoksifikasi selanjutnya dilakukan kembali uji proksimat, fitokimia dan uji toksisitas. Sampai tahap ini bungkil siap untuk diberikan sebagai pakan kepada tikus uji coba. Jumlah tikus uji coba yang diberi pakan bungkil hasil detoksifikasi adalah 24 ekor tikus putih. Bungkil biji jarak diberikan secara oral (cekok) dengan variasi konsentrasi 0,40 mg/kg, 400 mg/kg, 4 g/kg, 10 g/kg dan 20 g/kg bobot badan tikus. Untuk setiap kelompok dosis digunakan 4 ekor tikus. Sebelum diberi pakan dalam konsentrasi sesuai perlakuan, keseluruhan tikus diberi pakan dasar yang bobotnya sama selama 1 minggu. Selanjutnya diberikan pakan sesuai dosis perlakuan dan dilihat tingkat kematiannya pada 24 jam pertama, dilanjutkan sampai 7 hari. Setiap hari diamati gejala klinisnya seperti nafsu makan, bobot badan, keadaan mata dan bulu dan tingkah laku. Penentuan LD50 dilakukan dengan analisis probit.
Bungkil biji jarak pagar (Jatropha curcas cake)
6
maserasi (maceration) Ampas bungkil biji jarak sebelum detoksifikasi (Jatropha curcas cake before detoxification) uji proksimat (proxymate analyses) uji fito-kimia (phyto-chemical analyses) detoksifikasi (detoxification) Ampas bungkil biji jarak setelah detoksifikasi (Jatropha curcas cake after detoxification) uji proksimat (proxymate analyses) uji fito-kimia (phyto-chemical analyses) uji toksisitas akut (acute toxicity analyses) Pakan tikus (Rat feed) uji bobot badan (body weight measurement) uji klinis (clinical analyses) uji toksisitas akut (acut toxicity analyses) Pakan ternak (Animal feed) ( Gambar 1. Ekstraksi bungkil biji jarak dengan cara maserasi Figure 1. Extraction of Jatropha curcas cake through maceration 2. Ekstraksi minyak dari bungkil biji jarak Sebanyak 500 g bungkil biji jarak dimasukkan ke dalam gelas piala dan ditambah-kan petroleum eter sebanyak 750 ml. Gelas piala ditutup, isi dikocok beberapa menit dan dibiarkan sampai terjadi pemisahan antara endapan dengan ekstrak pelarutnya, kemudian larutan disaring. Ampasnya diberi pelarut lagi dan tahapan selanjutnya sama. Pengulangan dilakukan sampai ekstrak yang dihasilkan menjadi bening. Filtrat dari semua ulangan digabungkan, lalu ampas dikeringkan.
3. Analisis proksimat
7
a. Preparasi contoh Ampas bungkil biji jarak dihaluskan dengan blender sehingga membentuk serbuk. Serbuk ini digunakan untuk analisis proksimat meliputi penentuan kadar air, kadar abu, kadar lemak, kadar protein, kadar serat kasar dan kadar gula pereduksi. b. Penentuan kadar air (AOAC, 1999) Sebanyak 5 g contoh yang telah dihaluskan, ditimbang dan dikeringkan dalam oven pada suhu 105°C selama 48 jam. Contoh diangkat dari oven dan didinginkan di dalam eksikator dan ditimbang. Prosedur diulang hingga kehilangan bobot selama pemanasan 3 jam tidak lebih dari 0,05%. Kadar air bungkil jarak pagar dihitung. c. Penentuan kadar abu (AOAC, 1999) Cawan porselin yang kosong dimasukkan ke dalam tanur 600°C selama 30 menit. Cawan dikeluarkan dan didinginkan dalam eksikator lalu ditimbang. Sebanyak 2 g contoh dimasukkan ke dalam cawan porselin dan dipanaskan diatas pembakar gas sampai tidak berasa lagi. Pemanasan dilanjutkan di dalam oven 600°C selama 6 jam (sampai tidak berjelaga), lalu dikeluarkan, di dinginkan dalam eksikator dan ditimbang sampai diperoleh bobot tetap. d. Penetapan nitrogen (AOAC, 1999) Penentuan nitrogen dilakukan dengan metode Kjeldahl terhadap ampas bungkil jarak pagar untuk menentukan % N total. Sebanyak 0,5 g bungkil biji jarak ditimbang dalam labu destruksi, kemudian ditambahkan 12 ml H2SO4 pekat dan 1 butir tablet selenium. Larutan ini didestruksi selama 45 menit sampai diperoleh larutan berwarna hijau jernih. Larutan ini ditempatkan pada alat destilasi Kjeltech, kemudian didestilasi uap. Uapnya ditampung di dalam erlenmeyer yang berisi asam borat 4% dan indikator BCG-MM. Destilat yang diperoleh dititrasi dengan HCl 0,02 N. Titik akhir titrasi ditandai dengan terjadinya perubahan warna biru menjadi
8
merah muda. Dilakukan juga dilakukan penetapan blanko. Kadar nitrogen (%) = (A − B) x 14,007 x N HCl bobot contoh (mg) dimana : A = volume HCl untuk titrasi contoh (ml) B = volume HCl untuk titrasi blanko (ml) e. Penetapan kadar lemak (AOAC, 1999) Labu lemak yang bersih ditambahkan beberapa batu didih lalu ditimbang bobot kosongnya. Labu lemak ini diisi dengan 50 ml pelarut petroleum eter. Sebanyak 3 g bungkil dibungkus dengan kertas saring yang dibuat seperti selongsong, lalu ditempatkan dalam alat soxlet yang disambungkan dengan alat refluks dan labu lemak. Ekstraksi dilakukan selama kurang lebih 6 jam. Larutan lemak dalam pelarut disulingkan, sehingga diperoleh kembali pelarut yang semula dipakai dalam alat soxlet dan lemak dalam labu lemak. Labu lemak kemudian dikeringkan pada oven 60°C dan ditimbang sampai diperoleh bobot konstan. Kadar lemak = bobot lemak (g) x 100% bobot contoh (g) f. Penetapan kadar serat kasar (AOAC, 1999) Sebanyak 5 g bungkil dimasukkan dalam labu erlenmeyer 500 ml, ditambahkan 50 ml H2SO4 1,25% dan diekstraksi dengan pendingin tegak selama 30 menit. Selanjutnya ditambahkan 50 ml NaOH 3,25% dan pemanasan dilanjutkan kembali selama 30 menit. Larutan disaring panas-panas dengan kertas saring Whatman 41 yang telah diketahui bobotnya. Wadah dicuci dengan air panas yang mengandung H2SO4 1,25%. Endapan yang diperoleh dicuci dengan alkohol 96%, kemudian dikeringkan dalam oven 105°C, didinginkan dan ditimbang sampai diperoleh bobot tetap. Kadar serat kasar = bobot serat x 100% bobot contoh g. Penentuan karbohidrat dengan metode selisih (by difference) 9
Kadar karbohidrat % (b/b) = 100% - {kadar air (% (b/b)) + kadar lemak (% (b/b)) + kadar abu (% (b/b)) + kadar protein (% (b/b)) + kadar serat kasar (% (b/b)) h. Penentuan kadar gula pereduksi (Metode Luff Schoorl). Ekstraksi gula pereduksi dilakukan dengan menimbang sebanyak 10 g bungkil diekstraksi dengan 75 ml etanol 70% dalam labu erlenmeyer asah yang disambungkan dengan alat refluks. Ekstraksi dilakukan selama 1 jam. Larutan disaring dan ditera dalam labu takar 100 ml dengan etanol 70%. Penentuan kadar gula pereduksi : Sebanyak 10 ml ekstrak gula pereduksi ditambah dengan 25 ml larutan Luff Schoorl dimasukkan ke dalam labu erlenmeyer 100 ml, selanjutnya dipanaskan hingga larutan mendidih dan dibiarkan selama kurang lebih 10 menit. Setelah dingin, ditambahkan dengan 10 ml KI 20% dan 25 mL H2SO4 25% dan segera dititrasi dengan Na2S2O3 0,1 N yang ditandai dengan perubahan warna menjadi kuning muda, lalu ditambahkan 3 tetes indikator pati dan titrasi dilanjutkan sampai titik akhir yang ditandai dengan perubahan warna dari biru kehitaman menjadi tidak berwarna. Prosedur ini dilakukan juga terhadap blanko. Kadar gula pereduksi = (Vb−Vc) x N tiosulfat x BE glukosa x fp x 100% bobot contoh di mana : Vb = volume Na2S2O3 untuk titrasi blanko (ml) Vc = volume Na2S2O3 untuk titrasi contoh (ml) 4. Detoksifikasi ampas bungkil biji jarak (Aregheore et al., 2003) Sebanyak 300 g ampas bungkil biji jarak ditimbang dan dimasukkan ke dalam gelas piala 1 liter dan ditambahkan air destilata sebanyak 600 ml. Campuran dibuat menjadi pasta ke dalam erlenmeyer yang ditutupi dengan alumunium foil dan dipanaskan dalam autoklaf pada 121°C selama 30 menit, tujuannya adalah untuk sterilisasi contoh dan mendetoksifikasi lektin (kursin) dan inhibitor tripsin yang seperti dikatakan sebelumnya merupakan racun dalam jarak pagar. Hal 10
ini dikarenakan pemanasan dengan autoklaf pada suhu tersebut dapat menonaktifkan lektin dan inhibitor tripsin. (Aregheore et al., 2003). Contoh yang telah diautoklaf, dipindahkan dan didinginkan dalam suhu kamar. Setelah itu ditempatkan dalam pendingin dan diliofilisasi pada hari berikutnya, kemudian digerus. Contoh yang diliofilisasi dibilas dengan metanol 92% sebanyak 4 kali. 5. Analisis fitokimia (Harborne, 1986) a. Uji flavonoid Sebanyak 0,1 g contoh dimasukkan ke dalam 100 ml air panas, kemudian dididihkan selama 5 menit. Sebanyak 5 ml filtratnya dimasukkan ke dalam tabung reaksi, ditambahkan 0,1 mg Mg, 1 ml HCl pekat dan 1 ml amil alkohol, kemudian dikocok. Terbentuknya warna kuning sampai merah menandakan adanya flavonoid. b. Uji alkaloid Sebanyak 0,3 g contoh dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan 10 ml kloroform-amonia dan beberapa tetes H2SO4 2 M, lalu dikocok perlahan sehingga terbentuk dua lapisan. Lapisan asam (lapisan tak berwarna) dipipet ke dalam tabung reaksi lain dan ditambahkan pereaksi Meyer. Reaksi positif ditandai dengan adanya kabut putih hingga gumpalan putih. c. Uji tanin Sebanyak 0,1 g contoh dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan 1 ml metanol dan beberapa tetes FeCl3 1%. Terjadinya warna biru, hijau atau ungu menunjukkan adanya tanin. d. Uji saponin. Sebanyak 1 g contoh dimasukkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan 5 ml akuades,
11
selanjutnya dididihkan selama 5 menit dan dikocok hingga berbusa. Adanya busa yang mantap selama 15 menit menunjukkan adanya saponin. e. Uji steroid dan terpenoid. Sebanyak 1 g contoh diekstrak dengan 12,5 ml etanol panas, kemudian ekstrak dikeringkan di dalam pinggan porselin. Residu yang diperoleh dilarutkan dalam eter. Ekstrak yang larut dalam eter diuji dengan pereaksi Lieberman-Buchard. Residu yang diperoleh dilarutkan kembali dalam eter dan diuji dengan pereaksi Lieberman-Buchard. Terbentuknya warna biru atau hijau menunjukkan adanya steroid dan warna merah atau ungu menunjukkan adanya terpenoid.
f. Uji glikogen sianogen. Keberadaan glikosida sianogen dalam tumbuhan dideteksi dengan kertas pikrat. Kertas pikrat dibuat dengan mencelupkan kertas saring ke dalam larutan jenuh asam pikrat (2,4,6trinitrofenol) yang telah dinetralkan dengan NaHCO3. Ekstrak ditempatkan ke dalam tabung reaksi dan ditambahkan satu tetes air dan dua tetes toluena. Suspensi kertas pikrat dimasukkan ke dalam tabung reaksi, kemudian tabung ditutup dan diinkubasi pada suhu 40°C selama 2 jam. Perubahan warna kuning menjadi coklat merah menunjukkan adanya HCN yang dibebaskan secara enzimatik. 6. Uji toksisitas akut Untuk uji toksisitas akut digunakan 24 ekor tikus putih. Ampas bungkil biji jarak setelah detoksifikasi diberikan secara oral dengan variasi konsentrasi 0,40 mg/kg, 400 mg/kg, 4 g/kg, 10 g/kg dan 20 g/kg bobot badan tikus. Untuk setiap kelompok dosis digunakan 4 ekor tikus. Semua hewan pada tiap kelompok dilihat tingkat kematiannya pada 24 jam pertama, dilanjutkan sampai
12
7 hari. Setiap hari diamati gejala klinisnya seperti nafsu makan, bobot badan, keadaan mata dan bulu serta tingkah laku. Penentuan LD50 dilakukan dengan analisis probit. 7. Rancangan percobaan Pengolahan data dilakukan menggunakan uji F (uji beda) nilai sebelum dan setelah detoksifikasi untuk data kadar air, abu, lemak, protein, serat kasar dan gula pereduksi. Di mana : Ho = nilai sebelum detoksifikasi dan setelah detoksifikasi sama dan H1 = nilai sebelum detoksifikasi dan setelah detoksifikasi berbeda. Jika Fhitung > Ftabel = maka Ho ditolak Jika
hitung
< Ftabel = maka Ho diterima
III. HASIL DAN PEMBAHASAN A. Detoksifikasi Contoh yang diberikan pada hewan percobaan adalah contoh setelah detoksifikasi. Hal ini dilakukan karena di dalam bungkil biji jarak mengandung racun baik polar maupun non polar. Detoksifikasi terhadap bungkil biji jarak dilakukan dengan tiga taha-pan yaitu pemanasan, liofilisasi dan pembilasan dengan metanol (Aregheore et al., 2003). Sebelum dipanaskan dengan autoklaf pada suhu 121oC selama 30 menit, contoh dibuat pasta terlebih dahulu agar bungkil tidak terlalu kering ketika pemanasan dilakukan. Liofilisasi merupakan metode pengeringan dengan pembekuan, tujuannya adalah untuk menghilangkan pelarut-pelarut yang digunakan sebelumnya. Sampel dibekukan terlebih dahulu dan es yang terjebak di dalamnya dibuang dengan pompa vakum (es menyublim). Air dan pelarut lain dapat disingkirkan tanpa merusak bahan yang dikeringkan karena dalam pengeringannya tidak menggunakan kalor (Daintith, 1990, diacu dalam Endra, 2006). Adapun pembilasan dengan metanol ditujukan untuk menghilangkan saponin dan ester forbol (Makkar & Becker, 1999).
13
a
b
Gambar 2. Bungkil sebelum detoksifikasi (a) dan bungkil setelah detoksifikasi (b) Figure 2. Cake before detoxification (a) and cake after detoxification (b)
B. Analisis Proksimat Pengujian kadar kandungan proksimat dilakukan terhadap contoh sebelum dan setelah detoksifikasi. Hal ini ditujukan untuk membandingkan antara kandungan nutrisi contoh sebelum dan setelah detoksifikasi, sehingga dapat dilihat pengaruh detoksifikasi terhadap kadar proksimat contoh sebelum dan setelah detoksifikasi. Tabel 1 menunjukkan nilai dan standar deviasi kandungan proksimat contoh yang meliputi kadar air, abu, lemak, protein, serat kasar, gula pereduksi dan karbohidrat. Tabel 1. Kandungan proksimat (%) contoh berdasarkan bobot basah Table1. Proximate analyses (%) of samples in wet basis Parameter (Parameters)
Sebelum detoksifikasi (Before detoxification)
Setelah detoksifikasi (After detoxification)
Kadar air (Moisture), %
4,97 ± 0,48
5,20 ± 0,10
Kadar abu (Ash), %*)
9,28 ± 0,01
9,84 ± 0,02
Kadar lemak (Fat), %*)
7,86 ± 0,54
2,34 ± 0,31
Kadar protein (Protein), % Kadar serat kasar (Crude fiber), % Kadar gula (Sugar), %*)
46,36 ± 0,73
46,83 ± 0,79
20,06 ± 3,88
20,04 ± 1,19
3,74 ± 0,13
5,87 ± 0,06
14
Kadar karbohidrat 7,73 ± 0,00 9,88 ± 0,00 (Carbohydrate), %*) Keterangan (Remarks) : * = Menunjukkan perbedaan nyata antara sebelum dan sesudah detoksifikasi (Shows significance difference value between before and after detoxification) Berdasarkan Tabel 1, detoksifikasi dapat mempengaruhi beberapa parameter analisis proksimat, sedangkan parameter lainnya tidak dipengaruhi oleh detoksifikasi. Parameter yang berubah karena detoksifikasi adalah kadar abu, kadar lemak, kadar gula pereduksi dan kadar karbohidrat. Hasil pengukuran menunjukkan bahwa kadar abu sebelum dan setelah detoksifikasi berturut-turut sebesar 9,28% (b/b) dan 9,84% (b/b). Berdasarkan analisis statistika dengan menggunakan uji keragaman (ANOVA satu arah), kadar abu bungkil sebelum dan setelah detoksifikasi berbeda nyata. Hal ini diduga karena faktor pelarut yaitu akuades yang digunakan ketika detoksifikasi diduga mengandung mineral yang menyebabkan kadar abu bertambah. Mineral yang diperlukan untuk makanan ternak adalah Ca, P, Mg, Mn, Co, Fe, Cu, Na, Cl, K, I2 dan F. Parameter lain yang berubah karena detoksifikasi adalah kadar lemak. Hasil penetapan menunjukkan bahwa kadar lemak contoh sebelum detoksifikasi sebesar 7,86% (b/b), sedangkan kadar lemak contoh setelah detoksifikasi sebesar 2,34% (b/b). Berdasarkan analisis statistika dengan menggunakan uji keragaman (ANOVA satu arah), kadar lemak contoh sebelum dan setelah detoksifikasi berbeda nyata. Turunnya kadar lemak contoh sebelum dan setelah detoksifikasi diduga karena proses detoksifikasi yang menyebabkan terjadinya hidrolisis lemak menjadi asam lemak bebas, selain itu juga pada waktu pemanasan dengan autoclave pada suhu 121oC menyebabkan menguapnya asam lemak yang titik didihnya berada di bawah suhu tersebut. Lama penyimpanan bungkil sebelum analisis kimia,
kemungkinan berpengaruh
terhadap munculnya mikroorganisme yang dapat mendegradasi asam lemak. Mikroorganisme
15
menghidrolisis trigliserida secara enzimatik kemudian mendegradasi asam lemak bebas dengan jalur β-oksidasi membentuk metil keton (Belitz & Grosch, 1999). Kadar gula pereduksi merupakan salah satu parameter yang berubah karena detoksifikasi. Berdasarkan hasil pengukuran diperoleh kadar gula pereduksi contoh sebelum detoksifikasi sebesar 3,74% (b/b), sedangkan kadar gula pereduksi setelah detoksifikasi sebesar 5,87% (b/b). Analisis statistika menggunakan uji keragaman (ANOVA satu arah) menunjukkan bahwa kadar gula pereduksi contoh sebelum dan setelah detoksifikasi berbeda nyata. Kenaikan kadar gula pereduksi ini ketika detoksifikasi dilakukan menyebabkan terjadinya hidrolisis sebagian yang mengakibatkan terdegradasinya selulosa (bukan gula pereduksi) menjadi selobiosa (gula pereduksi) sehingga terjadi kenaikan kadar gula pereduksi (Fessenden & Fessenden, 1986). Karbohidrat diperoleh dengan menggunakan metode selisih (by difference). Kadar karbohidrat contoh sebelum detoksifikasi diperoleh sebesar 7,73% (b/b). Nilai ini lebih rendah dibanding dengan contoh setelah detoksifikasi yaitu sebesar 9,88% (b/b). Hal ini dikarenakan dari hasil analisis proksimat, kadar lemak contoh setelah detoksifikasi memiliki kadar yang jauh lebih rendah dibandingkan dengan contoh sebelum detoksifikasi (Tabel 1), sehingga berpengaruh pada kadar karbohidrat contoh. Parameter analisis proksimat yang tidak mengalami perubahan akibat detoksifikasi meliputi kadar air, kadar protein dan serat kasar. Hal ini didasarkan pada analisis statis-tika menggunakan uji keragaman (ANOVA satu arah) seperti terlihat pada lampiran. Kadar proksimat contoh hasil analisis dibandingkan dengan standar proksimat beberapa hewan ternak (Tabel 2). Perbandingan kadar proksimat contoh dengan standar kadar proksimat pakan ternak (ikan sidat, ayam petelur, puyuh petelur pemula, dan sapi perah dara) menunjukkan bahwa contoh berada pada kisaran standar pakan untuk sapi perah dara. Kadar serat kasar
16
bungkil jarak pagar lebih tinggi daripada kadar serat standar pakan sapi perah dara. Namun dengan kadar serat tersebut, ampas bungkil biji jarak pagar masih cocok digunakan untuk pakan ruminansia seperti kambing, sapi dan kerbau (Makkar & Becker, 1999). Hal ini dikarenakan ruminansia memiliki bakteri rumen yang menghasilkan enzim selulase sehingga selulosa (serat) dapat dicerna. Semakin tinggi kadar serat kasar, maka mutu pakan semakin rendah karena pakan akan semakin sulit untuk dicerna dan tidak dapat memberikan zat-zat nutrisi yang berimbang untuk mendukung produktivitas yang optimal. Makanan dengan kandungan serat kasar yang tinggi juga dilaporkan dapat mengurangi bobot badan (Bell et al., 1990, diacu dalam Joseph, 2002). Serat makanan akan tinggal dalam saluran pencernaan dalam waktu relatif singkat, sehingga absorpsi zat makanan berkurang. Selain itu makanan yang mengandung serat yang relatif tinggi akan memberikan rasa kenyang, sehingga menghentikan nafsu makan dan berakibat pada turunnya konsumsi makanan. C. Analisis Fitokimia Analisis fitokimia dilakukan sebagai uji tambahan terhadap detoksifikasi yang dilakukan. Bungkil biji jarak sebelum dan setelah detoksifikasi dianalisis kandungan senyawa aktifnya. Hasil dari analisis fitokimia menunjukkan bahwa bungkil biji jarak sebelum dan setelah detoksifikasi mengandung alkaloid, saponin dan triterpenoid. Tetapi kandungan senyawa aktif dalam bungkil memiliki kadar yang berbeda kecuali untuk triterpenoid. Detoksifikasi yang dilakukan dapat mengurangi kadar saponin dan alkaloid dalam bungkil biji jarak. Berkurangnya saponin dan alkaloid dalam contoh diduga karena detoksifikasi. Pembilasan dengan metanol menyebabkan ikut terbuangnya saponin dan alkaloid bersama metanol. Menurut Sinaga (2005), jarak pagar mengandung HCN yang bersifat racun. Uji glikogen sianogen merupakan suatu uji untuk mendeteksi keberadaan HCN. Senyawaan glikosida
17
sianogen menghasilkan HCN jika terhidrolisis. Keberadaan HCN tidak terdeteksi dalam sampel, diduga HCN yang terdapat dalam bungkil telah terhidrolisis dan teruapkan karena pemanasan saat pengeringan. Titik didih HCN sebesar 26°C (Weast, 1981), sehingga dengan pengeringan menggunakan oven pada suhu 40-50°C kemungkinan teruapkan sangat besar. Adapun reaksi hidrolisis senyawaan glikosida sianogen sebagai berikut : C13H19O9N + H2O (ginokardin) + HCN (sianida)
C6H8O4 + C6H12O6
(Robinson, 1995 dalam Arif, 2006) Tabel 2. Perbandingan nutrisi bungkil biji jarak pagar dengan standar pakan untuk beberapa hewan ternak Table 2. Nutrition comparation between jatropha seed cake with some animals feed Parameter (Treatments) % (b/b)
Ikan sidat (Sidat fish) SNI 013906-1995
Ayam petelur (Egg chicken): SNI 013929-1995
Puyuh petelur (Eggpuyuh): SNI 013906-1995
Sapi perah (Milk-sheep): SNI 01-31481992
Bungkil jarak setelah detoksifikasi (Jatropha seed after detoxification)
Air (Moisture)
Maks. 10
Maks. 14
Maks. 14
Maks. 14
5,21
Abu (Ash)
Maks. 11
10 – 14
Maks. 8
-
9,84
Min. 7
2,5 – 7
Min. 2,8
Maks. 7
2,34
Min. 40
13,5
Min. 20
Min. 16
46,72
Maks. 2
Maks. 7
Maks. 5
Maks. 18
20,24
Lemak (Fat) Protein (Protein) Serat (Fiber)
Tabel 3. Hasil analisis fitokimia ampas bungkil biji jarak sebelum dan setelah detoksifikasi Table 3. Phytochemistry analyses results of jatropha seed cake before and after detoxification Analisis (Analyses) Flavonoid Fenolik hidrokuinon (Phenolic hydroquinon) Alkoloid (Alcoloid) Tanin Saponin
Sebelum detoksifikasi (Before detoxification) -
Setelah detoksifikasi (After detoxofocation) -
+++ +++++
+ ++
18
Steroid Triterpenoid + + Glikogen sianogen (Glycogen syanogen) Keterangan (Remarks) : - = Tidak ada kandungan zat tersebut (Substance not present) + = Ada kandungan zat tersebut (Substance is present) Menunjukkan jumlah secara kuantitatif (Shows quantitatively total numbers) D. Toksisitas 1. Keadaan fisik hewan coba a. Bobot badan (BB) Bobot badan hewan percobaan mengalami kenaikan baik untuk kontrol normal maupun kelompok perlakuan (Tabel 4). Untuk kelompok hewan percobaan dengan dosis 40 mg/kg BB sampai dosis tertinggi (20 g/kg BB), terjadi penurunan bobot badan selama dua hari setelah pencekokan. Tetapi setelah itu, bobot badan cenderung meningkat. Penurunan ini diduga karena hewan coba stres akibat pencekokan atau banyaknya contoh yang diberikan melebihi kapasitas perut hewan coba. Tabel 4. Rata-rata bobot badan tikus-coba sebelum dan setelah perlakuan Table 4. Weight means of test-rat before and after treatments Perlakuan (Treatments)
Sebelum perlakuan (Before treatments)
Setelah perlakuan (After treatments)
Kenaikan bobot badan (Increasing body weight)
Kontrol (Control)
100,00
128,75
28,75
Dosis 4 mg/kg BB
146,25
177,50
21,37
Dosis 40 mg/kg BB
161,25
167,50
3,88
Dosis 400 mg/kg BB
157,50
171,25
8,73
Dosis 1000 g/kg BB
157,50
172,50
9,52
Dosis 2000 g/kg BB
160,00
173,75
8.59
Kenaikan bobot badan hewan coba kelompok normal dan dosis 4 mg/kg BB lebih tinggi 19
daripada kenaikan bobot badan hewan coba kelompok dosis lain di atas 40 mg/kg BB. Hal ini diduga karena pemberian dosis di atas 40 mg/kg BB dikatakan cukup banyak, sehingga pencekokan dilakukan berkali-kali yang menyebabkan hewan coba stres dan mengalami penurunan nafsu makan. Hal ini menyebabkan kenaikan bobot badan cenderung konstan. Perbedaan kenaikan bobot badan hewan coba pada kelompok perlakuan di atas 40 mg/kg BB dikarenakan hewan coba berada dalam masa pertumbuhan. Pertumbuhan hewan coba yang satu dengan yang lainnya berbeda karena setiap hewan coba memiliki sistem metabolisme dan pertumbuhan yang berbeda. b. Gejala klinis Selain pengamatan bobot badan, dilakukan pula pengamatan gejala klinis hewan percobaan selama adaptasi dan setelah perlakuan seperti nafsu makan, keadaan mata dan bulu serta tingkah laku. Berdasarkan hasil pengamatan, nafsu makan pada semua hewan berbanding lurus dengan bobot badan. Nafsu makan hewan percobaan selama adaptasi dan setelah perlakuan mengalami perubahan untuk kontrol dan dosis 4 mg/kg BB. Hal ini sebanding dengan perubahan bobot badan hewan percobaan, sedang untuk dosis lain diatas 4 mg/kg BB tidak mengalami perubahan yang berarti baik dari nafsu makan maupun bobot badan. Adapun keadaan mata dan bulu semua hewan percobaan menunjukkan keadaan normal. Berbeda halnya dengan tingkah laku. Sehari setelah pencekokan, tingkah laku hewan percobaan yang dicekok sampel dengan dosis 40 mg/kg BB, 400 mg/kg BB, 10 g/kg BB dan 20 g/kg BB cenderung tidak aktif. Hal ini diduga karena hewan percobaan stres akibat pencekokan atau banyaknya contoh yang diberikan melebihi kapasitas perut tikus. c. Penentuan toksisitas akut (LD50) Secara keseluruhan, hewan coba yang dicekok dengan contoh setelah detoksifikasi selama
20
perlakuan baik setelah 24 jam pertama maupun 7 hari berikutnya tidak menunjukkan adanya kematian. Oleh karena itu, LD50 tidak dapat ditentukan. Tidak adanya kematian sampai hari ke7 pada kelompok hewan yang diberi dosis tertinggi, menyebabkan percobaan tidak dilanjutkan sampai penentuan LD50 yang pasti. Percobaan tidak dilanjutkan dengan meningkatkan dosis lebih dari 20 g/kg BB, karena tidak mungkin diberikan secara oral pada tikus. Pemberian dosis sebesar 20 g/kg BB tidak menyebabkan kematian, sehingga dapat dikatakan bahwa ampas bungkil setelah detoksifikasi yang diberikan kepada tikus tidak berbahaya. Keadaan seperti ini sesuai dengan pernyataan Lu (1995), yaitu dalam beberapa hal khususnya apabila toksisitas akutnya rendah terkadang tidak perlu untuk menentukan LD50 secara tepat. Suatu angka perkiraan sudah dapat memberikan manfaat. Informasi bahwa dosis yang cukup besar saja menyebabkan hanya sedikit kematian atau bahkan tidak menyebabkan kematian sudah cukup (EPA, 1988, diacu dalam Lu, 1995). Apabila sejumlah zat diberikan kepada hewan dengan dosis tinggi dan tidak ada hewan yang mati, dianggap bahwa semua toksisitas akut yang berbahaya dapat disingkirkan dan LD50 tidak perlu ditentukan. Prinsip ini telah diterapkan dan diterima oleh FAO/WHO Expert Committee on Food Additives (Lu, 1995). Ampas bungkil biji jarak pagar setelah detoksifikasi yang diberikan dengan berbagai dosis tidak menimbulkan kematian pada hewan percobaan, maka diperkirakan bungkil ini memiliki LD50 di atas dosis 15 g/kg BB. Berdasarkan klasifikasi toksisitas, maka nilai tersebut termasuk kategori nontoksik.
21
IV. KESIMPULAN DAN SARAN 1.
Detoksifikasi berpengaruh terhadap kadar abu, lemak, karbohidrat dan kadar gula pereduksi contoh, sedangkan kadar air, protein dan serat kasar contoh tidak mengalami perubahan secara nyata.
2.
Berdasarkan analisis proksimat yang dilakukan, ampas bungkil biji jarak mendekati nilai kadar standar proksimat untuk pakan ruminansia.
3.
Analisis tambahan terhadap detoksifikasi yang dilakukan adalah analisis fitokimia, menunjukkan bahwa detoksifikasi dapat mengurangi kadar saponin dan alkaloid contoh.
4.
Uji toksisitas menyatakan bahwa ampas bungkil biji jarak setelah diberi perlakuan detoksifikasi, maka bungkil tersebut menjadi tidak toksik.
5.
Perlu penelitian toksisitas lebih lanjut dengan jangka waktu dan pemakaian yang lebih lama seperti toksisitas kronik atau subkronik dengan menggunakan hewan percobaan dari spesies yang sama disertai dengan analisis histopatologi organ.
6.
Perlu adanya analisis kualitatif maupun kuantitatif terhadap racun-racun yang diduga berperan dalam toksisitas biji jarak seperti ester forbol dan juga racun-racun lainnya.
V. DAFTAR PUSTAKA AOAC. Association of Official Analytical Chemist. 1999. Official methods of analysis of AOAC International. Ed. ke-8. AOAC International. Maryland. Aregheore, E.M., Becker. K., and Makkar, H.P.S. 2003. Detoxification of toxic variety of Jatropha curcas using heat and chemical treatment, and preliminary nutritional evaluation with rats. S. Pac. J. Nat. Sci. 21 : 50 - 56. Arif, Z. 2006. Identifikasi fraksi daging buah picung (Pangium edule Reinw.) yang aktif sebagai insektisida botani terhadap ulat grayak (Spodoptera litura F (Lepidoptera: Noctuidae)).
22
Skripsi : Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB. Bogor. Badan Standardisasi Nasional. 1992. SNI 01-3148-1992 : Ransum Sapi Perah. BSN. Jakarta. ________________________. 1995. SNI 01-3906-1995 : Ransum Puyuh Petelur Dara. BSN. Jakarta. ________________________. 1995. SNI 01-3929-1995 : Ayam Petelur. BSN. Jakarta. Becker, K., and Makkar, H.P.S. 1998. Effects of Phorbol Esters in Carp (Cyprinus carpio L). Vet Human Toxicol, 40 (2) : 82 - 86. Belitz, H.D., and Grosch, W. 1999. Food Chemistry. Spinger. Heidelberg - Berlin. Endra, Y. 2006. Analisis Proksimat dan Komposisi Asam Amino Buah Pisang Batu (Musa balbisiana Colla). Skripsi : Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB. Bogor. Fessenden, R.J., and Fessenden, J.S. 1986. Kimia Organik. Jilid ke-2. Edisi ke-3. Pudjaatmaka, A.H., penerjemah ; Terjemahan dari : Organic Chemistry, Third Edition. Erlangga. Jakarta. Harborne, J.B. 1987. Metode Fitokimia : Penuntun Cara Modern Menganalisis Tumbuhan. Padmawinata, K. & Sudiro, I., penerjemah ; Terjemahan dari : Phytochemical Methods. ITB. Bandung. Heyne, K. 1987. Tumbuhan Berguna Indonesia. Terjemahan Badan Litbang Kehutanan. Yayasan Sarana Wana Jaya. Jakarta. Joseph, G. 2002. Manfaat serat makanan bagi kesehatan kita. Makalah Falsafah Sains. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Kulkarni, M.L., Sreekar, H., Keshavamurthy, K.S., and Shenoy, N. 2005. Jatropha curcas – Poisoning. Indian J Pediatr. 72 : 75 - 76. [Terhubung berkala] http://www.ijp pediatricsindia.org/article.asp. [11 Februari 2006]. Lu, F.C. 1995. Toksikologi Dasar : Asas, Organ Sasaran dan Penilaian Resiko. Nugroho, E., penerjemah ; Terjemahan dari : Basic Toxicology: fundamentals, target organs, and risk assesment. UI Pr. Jakarta. Makkar, H.P.S., Becker, K., Sporer, F., and Wink, M. 1997. Studies on nutritive potential and toxic constituents of different provenances of Jatropha curcas. J. Agric. Food Chem., 45 : 3152 - 3157. Makkar, H.P.S., and Becker, K. 1999. Plant toxins and detoxification methods to improve feed quality of tropical seed. Asian-Australian Journal of Animal Sciences, 12 : 467 - 480. Sinaga, E. 2005. Jatropha curcas L. jarak pagar. 4 : 3. [Terhubung berkala]. http://www.apjii.or.id/artikel/ttg tanamanobat/unas/jarakpagar.pdf. [18 Januari 2006]. Sudradjat, R. 2006. Memproduksi Biodiesel dari Jarak Pagar. Seri Argitekno. Penebar Swadaya. Jakarta. Weast, R.C. 1981. Handbook of Chemistry and Physics. 61st Ed. 1980 - 1981. CRC Pr. Boca Raton. Lampiran 1. Data analisis varian dari kadar proksimat contoh 23
Appendix 1. Data of variance analysis of proximate content Proksimat (Proximate) Air (Moisture) Abu (Ash) Lemak (Fat) Protein (Protein) Serat (Fiber) Gula Pereduksi (Reduxition sugar)
Jumlah kuadrat (SS)
dB (df)
Rata-rata kuadrat (MS)
F-hitung (F.calc.)
F-tabel (F.tab.)
0,079
1
0,079
0,658
7,71
0,470
1
0,470
1411,200
7,71
30,526
1
30,526
155,248
18,51
0,216
1
0,216
0,374
18,51
0,000
1
0,000
0,000
7,71
6,827
1
6,827
681,531
7,71
Hipotesis (Hypothesis) : Ho : diduga bahwa nilai dari kedua contoh adalah sama (assumed that those two values are same) Hi : diduga bahwa nilai dari kedua contoh adalah berbeda (assumed that those two values are different) Pengujian hipotesis (Hypothesis analysis) : Jika (If) F-hitung > F-tabel, maka Ho ditolak (F.calc > F.tab, Ho refused) F-hitung < F-tabel, maka Ho diterima (F.calc < F.tab, Ho accepted)
24
25
Lampiran (Appendix) 2. Data bobot badan tikus selama adaptasi dan setelah perlakuan (Weight of test-rat before and after treatments) Bobot badan (Body weight) (gram). Hari (Day) ke-10
Dosis (Dossis)
Tikus (Rat)
Kontrol (Control)
1 2 3
-7 100 110 80
-6 100 110 80
4
90
90
90
95
95
95
95
95
110
95
95
96.25
100
100
100
100
100
107.5
140 125 165
140 125 165
145 125 165
150 125 170
150 130 170
150 130 170
150 130 170
150 130 170
150 135 175
165 140 180
Rata2 (Means):
4 mg/kg BB
1 2 3 4
110 110 85
1 115 110 95
2 115 115 95
3 120 115 100
4 130 115 100
5 130 120 115
6 135 125 115
7 145 125 115
110
115
115
125
130
130
108.75
112.5
115
122.5
126.25
128.75
165 145 175
170 155 185
170 160 190
175 160 190
175 170 190
135
135
135
135
135
135
140
155
150
160
165
170
175
142.5
145
146.25
146.25
146.25
146.25
150
160
158.75
167.5
171.25
173.75
177.5
1 2 3
135 155 110
135 160 115
140 160 115
140 160 120
140 160 120
140 160 120
140 160 120
145 160 120
135 170 115
130 175 115
135 180 130
135 180 130
135 190 135
135 195 135
150 195 140
4
205
210
210
215
215
215
215
220
205
200
190
190
190
190
185
151.25
155
156.25
158.75
158.75
158.75
158.75
161.25
156.25
155
158.75
158.75
162.5
163.75
167.5
1 2 3
135 150 100
135 150 110
135 150 110
135 155 115
135 155 115
135 160 115
135 160 120
135 160 120
145 140 120
150 140 120
155 140 130
160 140 130
160 140 135
160 150 140
170 155 140
4
200
200
200
210
210
215
215
215
200
205
200
205
210
220
220
146.25
148.75
148.75
153.75
153.75
156.25
157.5
157.5
151.25
153.75
156.25
158.75
161.25
167.5
171.25
135 165 110
135 165 110
140 165 115
140 165 115
145 165 115
145 165 115
145 165 120
145 170 125
135 170 115
140 170 115
145 175 130
150 185 135
155 185 135
155 185 135
155 195 140
1 2 3 4
1 2 3 4
Rata2 (Means):
110 110 85
135
Rata2 (Means):
20 g/kg BB
-2 110 110 85
141.25
Rata2 (Means):
10 g/kg BB
-3 110 110 85
135
Rata2 (Means):
400mg/kg BB
-4 110 110 85
141.25
Rata2 (Means):
40 mg/kg BB
-5 105 110 80
180
180
180
180
180
180
180
190
180
175
185
185
185
190
200
147.5
147.5
150
150
151.25
151.25
152.5
157.5
150
150
158.75
163.75
165
166.25
172.5
130 140 155
135 140 155
135 140 155
140 140 155
140 140 155
140 140 155
140 145 155
145 145 160
140 135 160
140 135 165
150 135 170
155 140 170
165 140 165
165 140 175
170 155 175
180
180
180
180
180
180
185
190
170
180
185
185
190
190
195
151.25
152.5
152.5
153.75
153.75
153.75
156.25
160
151.25
155
160
162.5
165
167.5
173.75
26
LEMBARAN ABSTRAK UDC (USDC) 630*86 Sudradjat, R., D.W. Lussy & D. Setiawan Detoksifikasi dan uji toksisitas akut limbah bungkil biji jarak pagar terhadap tikus putih J. Penelt.Has.Hut. .......... 2008, vol. .........., no. ............., hal. ............. Bungkil biji jarak mengandung racun yang berbahaya seperti saponin, lektin (kursin), inhibitor tripsin dan ester forbol. Analisis fitokimia menunjukkan bahwa detoksifikasi dapat mengurangi senyawaan saponin dan alkaloid. Berdasarkan standar proksimat pakan ternak, nutrisi ampas bungkil biji jarak memenuhi standar pakan ruminansia dan tidak ada tikus mati. Jadi, uji toksisitas akut menunjukkan bungkil biji jarak setelah didetoksifikasi tergolong non toksik dan dapat digunakan sebagai pakan ternak. Kata kunci : Detoksifikasi, uji toksisitas, biji jarak pagar, tikus putih.
ASTRACT UDC (USDC) 630*86 Sudradjat, R., D.W. Lussy & D. Setiawan Detoxification and acute toxicity assay of Jatropha curcas meal to rats J. Penelt.Has.Hut. .......... 2008, vol. ........., no. ............., pg. ............. Jatropha curcas cake contains dangerous toxins such as saponins, lectin (curcin), tripsin inhibitors, and phorbolesters. Phytochemistry analysis shows that detoxification could eliminate saponins and alkaloid compound. According to animal feed
27
proximate standard, the cake is suitable for ruminant feed and there are no rats died after feeding. So, Jatropha cake after detoxifying was categorized as non toxic and suitable for animal feed. Key words : Detoxification, toxicity assay, Jatropha curcas meal, rats.
28
