ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga

ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga

SKRIPSI

PENGARUH PENYIMPANAN PAKAN UDANG KOMERSIAL DENGAN PENAMBAHAN VOLUME AIR BERBEDATERHADAP PERTUMBUHAN JAMUR DAN KANDUNGAN PROTEIN KASAR

Oleh :

ARIF SYAIFURRISAL SIDOARJO – JAWA TIMUR

FAKULTAS PERIKANAN DAN KELAUTAN UNIVERSITAS AIRLANGGA SURABAYA 2014

Skripsi

ARIF SYAIFURRISAL PENGARUH PENYIMPANAN PAKAN UDANG KOMERSIAL DENGAN PENAMBAHAN VOLUME AIR BERBEDATERHADAP PERTUMBUHAN JAMUR DAN KANDUNGAN PROTEIN KASAR


2

SKRIPSI

PENGARUH PENYIMPANAN PAKAN UDANG KOMERSIAL DENGAN PENAMBAHAN VOLUME AIR BERBEDA TERHADAP PERTUMBUHAN JAMUR DAN KANDUNGAN PROTEIN KASAR

Skripsi sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Sarjana Perikanan pada Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga

Oleh : ARIF SYAIFURRISAL NIM : 140911137

Menyetujui, Komisi Pembimbing Pembimbing Utama

Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes NIP. 19591022 198601 2 001

Skripsi

Pembimbing Serta

Agustono, Ir., M.Kes. NIP. 19570630 198601 1 001



3

SKRIPSI

PENGARUH PENYIMPANAN PAKAN UDANG KOMERSIAL DENGAN PENAMBAHAN VOLUME AIR BERBEDA TERHADAP PERTUMBUHAN JAMUR DAN KANDUNGAN PROTEIN KASAR

Oleh :

ARIF SYAIFURRISAL NIM : 140911137

Telah diujikan pada Tanggal : 21 Juli 2014

KOMISI PENGUJI SKRIPSI Ketua

: Sudarno, Ir., M.Kes.

Anggota

: Dr. M. Anam Al Arif, Drh., M.P Prayogo, SPi., MP. Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes. Agustono, Ir., M.Kes.

Surabaya, Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Dekan,

Prof. Dr. Hj.Sri Subekti, drh., DEA NIP. 19520517 197803 2 001

Skripsi



4

RINGKASAN ARIF SYAIFURRISAL. Pengaruh Penyimpanan Pakan Udang Komersial Dengan Penambahan Volume Air Berbeda Terhadap Pertumbuhan Jamur Dan Kandungan Protein Kasar. Dosen Pembimbing I Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes dan Dosen Pembimbing II Agustono, Ir., M.Kes.

Pakan berperan sangat penting pada usaha budidaya perikanan karena bermanfaat untuk memenuhi kebutuhan zat-zat makanan yang diperlukan bagi pertumbuhan, perkembangan dan reproduksi (Suprijatna dkk., 2005). Salah satu kendala penyediaan bahan pakan dalam kegiatan budidaya adalah kerusakan bahan pakanselama penyimpanan (Suparjo, 2010). Salah satu organisme yang menyebabkan kerusakan bahan pakan adalah jamur. Laju reproduksi dan pertumbuhan organisme ini dipengaruhi oleh kadar air, temperatur dan lama penyimpanan bahan. Tingkat kontaminasi oleh jamur sebagian besar ditentukan oleh suhu penyimpanan dan ketersediaan air dan oksigen (Suparjo, 2010). Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengidentifikasi jamur dan mengalanisa perubahan Protein Kasar (PK) akibat pengaruh penyimpanan pakan dengan penambahan volume air yang berbeda. Penelitian dilakukan di Laboratorium Fakultas Perikanan dan Kelautan dan Laboratorium Pakan Ternak Fakultas Kedokteran Hewan Universitas Airlangga Surabaya. Rancangan penelitian yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL) dilanjutkan dengan Uji Jarak Berganda Duncan. Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah media SDA (Sabouraud Dextrose Agar), air steril, akuades steril dan kloramfenikol 50 µg/ml, aquades, NaOH 4% dan 40%, tablet Kjeldahl, H2SO4, asam borat, indikator Metil-merah, Brom cresol green, silika gel dan HCl. Hasil identifikasi jamur menunjukkan adanya lima spesies jamur yang tumbuh pada penyimpanan pakan dengan penambahan volume air berbeda, lima spesies jamur tersebut antara lain Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus, Aspergillus candidus dan Rhizopus oryzae. Hasil analisis varian (ANAVA) yang dilakukan menunjukkan bahwa setiap perlakuan memberikan pengaruh terhadap perubahan kadar protein kasar (p<0,05). Rata-rata perubahan kadar protein kasar tertinggi terjadi pada perlakuan P3 (113,54%) dan terendah pada P2 (90.27%). Pada perlakuan P3 ditemukan empat spesies jamur antara lain Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus dan Rhizopus oryzae, sedangkan pada perlakuan P2 ditemukan dua spesies jamur Aspergillus niger dan Aspergillus flavus.

Skripsi



5

SUMMARY ARIF SYAIFURRISAL. The Effect of Storage Commercial Shrimp Feed With Addition of Different Water Volume to Growth of Fungi and Crude Protein Content. Academic Advisor I Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes dan Academic Advisor II Agustono, Ir., M.Kes.

Feed very important role in aquaculture because it is useful to meet the needs of nutrients necessary for growth, development and reproduction (Suprijatna et al., 2005). One of the constraints in the supply of aquaculture feed is the feed material damage during storage (Suparjo, 2010). One of the organisms that cause damage to the feed material is mildew. The rate of reproduction and growth of this organism is affected by water content, temperature and duration of storage of materials. The level of contamination by fungi are largely determined by the temperature of storage and the availability of water and oxygen (Suparjo, 2010). The purpose of this study is to identify and analyze changes in fungal Crude Protein (CP) due to the influence of feed storage with the addition of different volumes of water. The study was conducted at the Laboratory of The Faculty of Fisheries and Marine and Forage Laboratory Faculty of Veterinary Medicine, Universitas Airlangga, Surabaya. The study design used was Completely Randomized Design (CRD) followed by Duncan's Multiple Range Test. Materials used in this study is a medium SDA (Sabouraud Dextrose Agar), sterile water, sterile distilled water and chloramphenicol 50 ug / ml, distilled water, NaOH 4% and 40%, Kjeldahl tablets, H2SO4, boric acid, methyl-red indicator, Brom cresol green, silica gel and HCl. Fungi identification results show the presence of five species of fungus that grows on food storage with the addition of different volumes of water, five species of fungi include Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus, Aspergillus candidus and Rhizopus oryzae. Results of Analysis of Variance (ANOVA) were conducted showed that each treatment is to give effect to changes in crude protein levels (p <0.05). Average changes in the levels of crude protein was highest in treatment P3 (113.54%) and lowest in P2 (90.27%). At P3 treatment found four species of fungi include Aspergillus niger, Aspergillus flavus, Aspergillus fumigatus and Rhizopus oryzae, whereas the P2 treatment found two species of the fungus Aspergillus niger and Aspergillus flavus.

Skripsi



6

KATA PENGANTAR

Segala puji dan syukur penulis ucapkan atas kehadirat Allah SWT yang telah memberikan limpahan rahmat dan hidayahnya, sehingga

penelitian ini dapat

terselesaikan. Penelitian ini dibuat untuk mengetahui pengaruh penyimpanan pakan udang komersial dengan penambahan volume air berbeda terhadap pertumbuhan jamur dan perubahan protein kasar. Penelitian ini diharapkan dapat bermanfaat bagi peningkatan produktifitas perikanan di Indonesia. Pada kesempatan ini tidak lupa penulis mengucapkan terimakasih yang sebesar–besarnya kepada semua pihak yang telah memberikan ijin dan bantuan fasilitas dalam penyelesaian penelitan ini. Penulis menyadari bahwa Skripsi ini masih belum sempurna, sehingga kritik dan saran yang membangun sangat penulis harapkan demi perbaikan dan kesempurnaan Skripsi ini lebih lanjut. Akhirnya penulis berharap semoga Karya Ilmiah ini dapat bermanfaat untuk memberikan informasi serta perkembangan ilmu dan teknologi di bidang perikanan Indonesia.

Surabaya, Juli 2014

Penulis

Skripsi



7

UCAPAN TERIMA KASIH

Ucapan terima kasih penulis sampaikan kepada : 1. Ibu Prof. Dr. drh. Hj. Sri Subekti B.S., DEA selaku Dekan Fakultas Perikanan dan Kelautan Universitas Airlangga Surabaya. 2. Ibu Rahayu Kusdarwati, Ir., M.Kes. dan Bapak Agustono, Ir., M.Kes. selaku dosen pembimbing pertama dan selaku dosen pembimbing kedua yang selama ini telah memberikan arahan serta bimbingan selama penyusunan skripsi. 3. Bapak Sudarno, Ir., M.Kes., Bapak Dr. M. Anam Al Arif, Drh., M.P dan Bapak Prayogo, SPi., MP. selaku penguji yang telah bersedia meluangkan waktu untuk menguji serta memberikan masukan dan saran atas perbaikan laporan skripsi ini. 4. Bapak Moch. Amin Alamsjah, Ir., M.Si., Ph.D selaku dosen wali yang telah memberikan bimbingan dan motivasi bagi saya selama menempuh kuliah. 5. Bapak/Ibu dosen dan staf

pendidikan di Fakultas Perikanan dan Kelautan

Universitas Airlangga. 6. Ayah dan ibuku yang selalu mendukung segala keputusanku. 7. Rekan-rekan SKI FPK UNAIR 8. Rekan-rekan mahasiswa angkatan 2009. 9. Semua pihak yang membantu dalam penyelesaian skripsi. 10. Dan seluruh rakyat Indonesia yang telah mensubsidi biaya pendidikanku melalui 20% dana APBN untuk pendidikan.

Skripsi



8

DAFTAR ISI

Halaman RINGKASAN ...............................................................................................

iv

SUMMARY ..................................................................................................

v

KATA PENGANTAR ..................................................................................

vi

UCAPAN TERIMA KASIH ........................................................................

vii

DAFTAR ISI .................................................................................................

viii

DAFTAR TABEL .........................................................................................

x

DAFTAR GAMBAR ....................................................................................

xi

DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................

xii

I

PENDAHULUAN ................................................................................

1

1.1 Latar Belakang ................................................................................

1

1.2 Rumusan Masalah ............................................................................

3

1.3 Tujuan .............................................................................................

3

1.4 Manfaat ...........................................................................................

3

TINJAUAN PUSTAKA .......................................................................

4

2.1 Pakan Udang ....................................................................................

4

2.1.1 Protein Kasar (PK) Pakan......................................................

5

2.1.2 Bahan Kering (BK) Pakan .....................................................

5

II

Skripsi



9

2.1.3 Penyimpanan Pakan

2.2 Jamur ................................................................................................

6

7

2.2.1 Jamur pada Pakan Udang .......................................................

III KERANGKA KONSEPTUAL DAN HIPOTESIS ...............................

14

3.1 Kerangka Konseptual Penelitian ...............................................

14

3.2 Hipotesis Penelitian ...................................................................

16

IV METODOLOGI PENELITIAN ............................................................

17

4.1 Waktu dan Tempat ...........................................................................

17

4.2 Materi Penelitian ..............................................................................

17

4.3 Metode Penelitian ...........................................................................

18

4.3.1 Rancangan Penelitian ............................................................

18

4.3.2 Prosedur Kerja .......................................................................

20

A. Penyimpanan Pakan..........................................................

20

B. Isolasi dan Identifikasi Jamur ...........................................

21

C. Analisis Proksimat ............................................................

22

4.3.3 Parameter Pengamatan ..........................................................

23

A. Parameter Utama ..............................................................

23

4.3.4 Analisis Data .........................................................................

23

HASIL DAN PEMBAHASAN .............................................................

24

5.1 Hasil ..................................................................................................

24

5.1.1 Identifikasi ...............................................................................

24

5.1.2 Analisis Proksimat ...................................................................

35

V

Skripsi



10

Skripsi

5.2 Pembahasan .......................................................................................

38

VI SIMPULAN DAN SARAN ..................................................................

42

5.1 Simpulan .........................................................................................

42

5.2 Saran ................................................................................................

42

DAFTAR PUSTAKA ...................................................................................

43

LAMPIRAN .................................................................................................

48



11

DAFTAR TABEL

Tabel

1. Kadar Air dan Kerusakan Pakan

Halaman

7

2. Hasil Identifikasi Jamur pada Penyimpanan Pakan Komersial dengan Penambahan Volume Air Berbeda

25

3. Rata-rata kandungan berat kering pakan komersial dengan penambahan volume air berbeda

35

4. . Rata-rata nilai perubahan kandungan protein kasar pakan komersial dengan penambahan volume air berbeda

Skripsi

36



12

DAFTAR GAMBAR

Gambar

Halaman

1. Aspergillus sp.............................................................................................

7

2. Fusarium sp. ..............................................................................................

11

3. Penicillium sp. ...........................................................................................

13

4 Kerangka Konseptual Penelitian .................................................................

15

5. Denah penempatan perlakuan pada (RAL) ................................................

20

6. Diagram alir penelitian ..............................................................................

23

7. Koloni Aspergillus flavus...........................................................................

27

8. Bagain-bagian Aspergillus flavus secara mikroskopis. ..............................

28

9. Koloni Aspergillus niger ..........................................................................

29

10 Bagian-bagian Aspergillus niger secara mikroskopis. ..............................

30

11. Koloni Aspergillus fumigatus ..................................................................

31

12. Bagian-bagian Aspergillus fumigatus secara mikroskopis.......................

31

13. Koloni Aspergillus candidus ....................................................................

32

14. Bagian-bagian Aspergillus candidus secara mikroskopis.. ......................

33

15. Koloni Rhizopus oryzae ...........................................................................

34

16. Bagian-bagian Rhizopus oryzae secara mikroskopis.. .............................

34

17. Grafik Rata-Rata Nilai Perubahan Protein Kasar pada Masing-Masing Perlakuan Pakan .................................................................

Skripsi

37



13

DAFTAR LAMPIRAN Lampiran

Halaman

1. Prosedur Analisis Proksimat ......................................................................

50

2. Hasil Uji Proksimat Bahan Kering (BK) dan Protein Kasar (PK) Pakan yang diberi Volume Air yang Berbeda Sebelum

Skripsi

Perlakuan Penyimpanan .................................................................................

51

3. Perhitungan Perubahan Protein Kasar (PK). ..............................................

54

4. Data glukosa darah selama penelitian ........................................................

56

5 Kunci Identifikasi Jamur ............................................................................

59



14

I PENDAHULUAN

1.1 Latar belakang Pakan berperan sangat penting pada usaha budidaya perikanan karena bermanfaat untuk memenuhi kebutuhan zat-zat makanan yang diperlukan bagi pertumbuhan, perkembangan dan reproduksi (Suprijatna dkk., 2005). Kebutuhan pakan pada usaha budidaya perikanan dapat mencapai 60-70% dari biaya produksi (Anggraeni dkk., 2010). Salah satu kendala penyediaan bahan pakan dalam kegiatan budidaya adalah kerusakan bahan pakanselama penyimpanan. Kerusakan bahan pakan selama penyimpanan dipengaruhi oleh interaksi kondisi bahan pakan, kondisi lingkungan dan organisme (mikroorganisme, serangga dan rodenta) perusak kualitas bahan pakan. Kerugian yang ditimbulkan selama penyimpanan akibat interaksi tadi berupa kehilangan berat, penurunan kualitas, peningkatan resiko terhadap kesehatan dan kerugian ekonomis (Suparjo, 2010). Penanganan pakan dan bahan baku pakan sangat penting bagi ketersediaan nutrisi pakan, sehingga penyimpanan yang tidak baik berujung pada rusaknya kandungan nutrisi. (Sihombing, 2013). Penyimpanan pakan yang baik akan memperpanjang waktu penyimpanan. (Afrianto dan Liviawaty, 2005 dalam Purbaya, 2011). Menurut (Toto dalam Sihombing, 2013) parameter gudang penyimpanan pakan yang baik adalah terhindar dari sinar matahari langsung, terhindar dari hujan dan bocor, temperatur 300C – 340C, kelembaban tidak lebih dari 70%, bebas dari hama kutu dan tikus serta tidak bercampur dengan bahan

Skripsi



15

kimia seperti pupuk, pestisida atau racun tikus. Pengaturan gudang penyimpanan yang baik adalah harus memiliki catatan stok yang rapi, memiliki jarak antara dinding terhadap tumpukan atau antar tumpukan dan cukup luas untuk mengatur FIFO (First In First Out). Pada daerah dengan iklim tropis, kecepatan penurunan kualitas pakan berlangsung 10 kali lipat lebih cepat, hal ini disebabkan oleh tingginya curah hujan, serta kelembaban yang tinggi yang mengakibatkan terjadinya peningkatan aktivitas air yang terkandung dalam pakan (Sihombing, 2013). Berbagai kerusakan bahan pakan yang terjadi selama penyimpanan secara umum disebabkan oleh jamur, serangga dan tikus. Salah satu organisme yang menyebabkan kerusakan bahan pakan adalah jamur. Laju reproduksi dan pertumbuhan organisme ini dipengaruhi oleh kadar air, temperatur dan lama penyimpanan bahan. Tingkat kontaminasi oleh jamur sebagian besar ditentukan oleh suhu penyimpanan dan ketersediaan air dan oksigen. Jamur dapat tumbuh pada kisaran suhu yang luas, tetapi pertumbuhan jamur akan mengalami penurunan seiring dengan penurunan suhu dan ketersediaan air. Interaksi antara suhu dan kandungan air bahan baku juga mempengaruhi tingkat kolonisasi jamur. Perubahan air bahan menjadi fase uap didorong oleh peningkatan suhu (Suparjo, 2010). Berdasarkan latar belakang permasalahan seperti yang dijelaskan tersebut, maka dilakukan suatu penelitian untuk mengidentifikasi jamur dan analisa protein kasar (PK) akibat pengaruh penyimpanan pakan dengan penambahan volume air yang berbeda.

Skripsi



16

1.2 Rumusan Masalah Berdasarkan latar belakang yang telah diuraikan diatas maka dapat dirumuskan permasalahan sebagai berikut: 1. Jenis jamur apa saja yang tumbuh pada pakan selama penyimpanan dengan penambahan volume air berbeda? 2. Berapa kandungan protein kasar pada pakan yang ditumbuhi jamur selama penyimpanan dengan kadar air berbeda?

1.3 Tujuan Tujuan dilaksanakannya penelitian ini yaitu: 1. Mengetahui Jenis jamur yang tumbuh pada penyimpanan pakan dengan penambahan volume air berbeda. 2. Mengetahui kandungan protein kasar pada pakan yang ditumbuhi jamur pada penyimpanan dengan penambahan volume air berbeda.

1.4 Manfaat Manfaat yang diharapkan dari hasil penelitian ini yaitu dapat dijadikan data untuk melakukan pencegahan penyebaran jamur yang tumbuh pada pakan selama penyimpanan di gudang budidaya. Dapat dijadikan pertimbangan untuk metode penyimpanan pakan agar tidak mengalami kerugian yang besar akibat jamur tersebut.

Skripsi



17

II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Pakan Udang Pakan berperan sangat penting pada usaha budidaya perikanan karena bermanfaat untuk memenuhi kebutuhan zat-zat makanan yang diperlukan bagi pertumbuhan, perkembangan dan reproduksi (Suprijatna dkk., 2005). Menurut Tangendjaja dan Wina (2008), pada budidaya perikanan secara intensif peranan pakan sangat penting karena sebagian besar biaya operasional digunakan untuk pembelian pakan, dan sebagai pengganti pakan alami, pakan buatan harus memiliki kandungan gizi lengkap yaitu sumber kalori, protein, vitamin dan mineral yang sesuai dengan jenis ikan yang dibudidayakan. Pakan dapat digolongkan menjadi dua macam, yaitu pakan alami dan pakan buatan. Pakan alami merupakan makanan yang tumbuh di alam tanpa campur tangan manusia secara langsung, misalnya plankton dan tumbuhan air. Sedangkan pakan buatan merupakan makanan yang dibuat dari campuran bahanbahan alami atau bahan olahan yang selanjutnya dilakukan proses pengolahan serta dibuat dalam bentuk tertentu (Djarijah, 1995). Asal bahan pakan buatan terdiri dari bahan organik dan anorganik. Bahan organik yang terkandung dalam bahan pakan antara lain, protein, lemak, serat kasar, bahan ekstrak tanpa nitrogen, sedang bahan anorganik yang dimaksud seperti kalsium, phospor, magnesium, kalium, natrium dan lain sebagainya (Kartasudjana, 2001). Dalam budidaya udang dibutuhkan pakan buatan dengan kadar protein tinggi. Menurut Balai Budidaya

Skripsi



18

Air Payau Situbondo (2006) menyatakan bahwa, kebutuhan protein pada udang vannamei sebesar 32-38%. 2.1.1 Protein Kasar (PK) Pakan Protein adalah senyawa organik kompleks dan merupakan protoplasma aktif dalam semua sel hidup baik hewan maupun tumbuhan. Protein adalah sumber asam-asam amino yang mengandung unsur C, H, O dan N yang tidak dimiliki oleh lemak atau karbohidrat (Budianto, 2009). Protein pada pakan berasal dari hewani (tepung ikan, tepung daging, tepung darah dan tepung tulang), kacang-kacangan atau leguminosa (kacang tanah, kedelai, turi, gamal dan lamtoro), bungkil (bungkil dari kelapa, kelapa sawit, kedelai, kacang, kapok, kapas dan jagung) (Hartadi dkk., 1997). Protein kasar adalah nilai hasil bagi dari total nitrogen ammonia dengan faktor 16% (16/100) atau hasil kali dari total nitrogen ammonia dengan faktor 6,25 (100/16). Faktor 16% berasal dari asumsi bahwa protein mengandung nitrogen 16%. Kenyataannya nitrogen yang terdapat di dalam pakan tidak hanya berasal dari protein saja tetapi ada juga nitrogen yang berasal dari senyawa bukan protein atau nitrogen nonprotein (non–protein nitrogen / NPN). Nilai yang diperoleh dari perhitungan tersebut merupakan nilai dari apa yang disebut protein kasar (Kamal, 1994). 2.1.2 Bahan Kering (BK) Pakan Bahan kering adalah bahan yang tersisa setelah bahan pakan dipanaskan 105°C selama beberapa waktu sehingga kadar airnya menguap, setelah pemanasan tersebut sampel makanan disebut sampel bahan kering dan pengurangannya

Skripsi



19

disebut persen air atau kadar air. Bahan kering dibagi menjadi dua bagian yaitu bahan kering sebagian (Partial Dry Matter) dan bahan kering bebas air (Dry Matter). Prinsip dari bahan kering sebagian yaitu sebagian air diuapkan sampai kadar air bahan maksimal mencapai 14%, sedangkan bahan kering bebas air yaitu semua air diuapkan sampai kadar bahan air 0%. Bahan kering bebas air digunakan sebagai bahan analisis proksimat lebih lanjut, untuk perhitungan pembandingan nilai nutrisi antar pakan, dan kepadatan suatu pakan. Sampel bahan pakan yang sudah dipanaskan disebut sampel bahan kering dan penguapannya dengan sampel bahan pakan tersebut disebut persen air atau kadar air (Tillman dkk, 1998). Interaksi suhu dan kadar air yang meningkat memacu perkembangan dan pertumbuhan kapang. Pengaruh terhadap bahan pakan adalah penurunan kualitas akibat perubahan komposisi dan serangan kapang yang makin meningkat (Suparjo, 2010). Tabel 1. Kadar Air dan Kerusakan Pakan Kadar Air (%)

Jenis Kerusakan

<8

Kerusakan oleh serangan tikus

8-14

Kerusakan oleh serangan serangga dan tikus

14-28

Kerusakan oleh serangan serangga, jamur dan tikus

20-25

Kerusakan oleh serangan serangga, jamur, bakteri, tikus

Sumber: (Suparjo, 2010) 2.1.3 Penyimpanan Pakan .

Penyimpanan

pakan

yang

baik

akan

memperpanjang

waktu

penyimpanan. Pakan yang terkena air akan menyebabkan kandungan nutrisinya berkurang, aroma berubah, dan berjamur. Pakan yang terlalu lama terkena sinar

Skripsi



20

matahari juga tidak baik karena kandungan vitamin C-nya akan rusak (Afrianto dan Liviawaty, 2005 dalam Purbaya, 2011). Menurut Toto (2008) dalam Sihombing (2013), parameter gudang penyimpanan pakan yang baik adalah terhindar dari sinar matahari langsung, terhindar dari hujan dan bocor, temperatur 30– 34 oC, kelembaban tidak lebih dari 70%, bebas dari hama kutu dan tikus serta tidak bercampur dengan bahan kimia seperti pupuk, pestisida atau racun tikus. Untuk layout atau desain gudang penyimpanan, yang baik adalah cukup luas untuk mengatur FIFO (First In First Out). Gudang penyimpanan harus memiliki catatan stok yang rapi dan cukup jarak antara dinding terhadap tumpukan atau antar tumpukan.

2.2 Jamur Berdasarkan struktur tubuhnya, jamur digolongkan ke dalam tumbuhan tingkat rendah (Thallophyta), tetapi jika dilihat dari ada tidaknya klorofil maka jamur dikelompokkan tersendiri, tidak dijadikan satu kelompok dengan tumbuhan yang lain (Budhisma, 2013). Jamur memerlukan oksigen untuk hidupnya (bersifat aerobik). Habitat (tempat hidup) jamur terdapat pada air dan tanah. Cara hidupnya bebas atau bersimbiosis, tumbuh sebagai saprofit atau parasit pada tanaman, hewan dan manusia (Sumarsih, 2003). Jamur mendapatkan makanan secara heterotrof dengan mengambil makanan dari bahan organik. Bahan organik disekitar tempat tumbuhnya diubah menjadi molekul sederhana dan diserap langsung oleh hifa, oleh karena itu jamur

Skripsi



21

tidak seperti organisme heterotrof lainnya yang menelan makanan kemudian mencernanya sebelum diserap (Iswanto, 2009). Setiap jamur memerlukan tingkat kadar air dan temperatur yang spesifik untuk perkecambahan dan perkembangan. Untuk berkembang jamur akan menghancurkan nutrien dengan bantuan aktivitas enzimnya dan menghasilkan air yang memungkinkan peningkatan kolonisasi (Suparjo, 2010). 2.2.1. Jamur Pada Pakan Udang Tingkat kontaminasi pakan oleh jamur sebagian besar ditentukan oleh suhu penyimpanan dan ketersediaan air dan oksigen. Jamur dapat tumbuh pada kisaran suhu yang luas, tetapi pertumbuhan jamur akan mengalami penurunan seiring dengan penurunan suhu dan ketersediaan air. Interaksi antara suhu dan kandungan air bahan baku juga mempengaruhi tingkat kolonisasi jamur. Perubahan air bahan menjadi fase uap didorong oleh peningkatan suhu. Akibatnya, kandungan air dan pertumbuhan jamur akan meningkat dengan meningkatnya suhu penyimpanan (Suparjo, 2010). Kontaminasi jamur yang paling banyak ditemukan pada pakan ternak di daerah tropis adalah adalah Aspergillus (Dhand, Joshi dan Jand, 1998). Menurut Suparjo (2010), kapang dari genus Aspergillus, Fusarium dan Penicillium merupakan kontaminan utama dalam pakan yang disimpan.

Skripsi



22

A. Aspergillus sp. Menurut Fardiaz (1992), klasifikasi dari Aspergillus sp adalah sebagai berikut : Kingdom Divisi Kelas Ordo Famili Genus Spesies

: Fungi : Amastigomycota : Deutromycetes : Moniliales : Moniliaceae : Aspergillus : Aspergillus sp.

Menurut Sukma dkk. (2010), miselia kapang Aspergillus sp. mulai tumbuh pada hari ke dua inkubasi berupa koloni-koloni kecil yang menyebar pada permukaan media berwarna putih kekuningan. Miselia membentuk koloni lebih luas dan kompak serta berwarna cokelat krem pada hari ke enam. Sumanti dkk. (2003) menyatakan spora Aspergillus sp. berukuran kecil dan ringan, tahan terhadap keadaan kering, memiliki sel kaki yang tidak begitu jelas terlihat, memiliki konidia spora non septa dan membesar menjadi vesikel pada ujungnya dan membentuk sterigmata tempat tumbuhnya konidia. Konidia dari Aspergillus sp. memiliki ukuran diameter 1,5 – 2,4 µm, berdinding halus, berbentuk panjang hingga elips dan striate. Secara mikrokopis, konidiofor biasanya panjang, kolumnar, tidak berwarna (hialin) dan halus sehingga menimbulkan vesikel bulat biseriate (Balajee, 2009). Aspergillus sp. memiliki kemampuan untuk memproduksi aksesoris konidia

(aleuroconidia) yang tumbuh tunggal dari hifa. Permukaan aleuroconidia mulus tanpa struktur yang berbentuk batang atau tonjolan yang jelas. Percobaan in vitro yang telah dilakukan menunjukkan bahwa aleuroconidia dapat dengan mudah

Skripsi



23

terlepas dari hifa. Kemampuan aleuroconidia untuk berkecambah dengan cepat ke dalam jaringan hifa invasif dapat menjadi faktor yang mematikan Aspergillus sp, selain dari konidia istirahat dan perkecambahan yang selanjutnya sangat penting untuk pembentukan infeksi (Deak et al., 2009).

Gambar 1. Aspergillus sp. (Tehnologijahrane, 2014) B. Fusarium sp. Menurut Alexopoulus dan Mims (1979), Fusarium sp. diklasifikasikan sebagai berikut Kingdom Divisi Kelas Ordo Famili Genus Spesies

: Mycetaceae : Amastigomycota : Deuteromycetes : : Moniales : Fusarium : Fusarium sp.

Fusarium sp mempunyai 3 alat reproduksi, yaitu mikrokonidia (terdiri dari 1-2 sel), makrokonidia (3-5 septa), dan klamidospora (pembengkakan pada hifa). Makrokonidia berbentuk melengkung, panjang dengan ujung yang mengecil dan mempunyai satu atau tiga buah sekat. Mikrokonidia merupakan konidia bersel 1 atau 2, dan paling banyak dihasilkan di setiap lingkungan bahkan pada saat

Skripsi



24

patogen berada dalam pembuluh inangnya. Makrokonidia mempunyai bentuk yang khas, melengkung seperti bulan sabit, terdiri dari 3-5 septa, dan biasanya dihasilkan pada permukaan tanaman yang terserang lanjut. Klamidospora memiliki dinding tebal, dihasilkan pada ujung miselium yang sudah tua atau didalam makrokonidia, terdiri dari 1-2 septa dan merupakan fase atau spora bertahan pada lingkungan yang kurang baik (Alexopoulus dan Mims, 1979). Jamur ini tumbuh dari spora dengan struktur yang menyerupai benang, ada yang mempunyai dinding pemisah dan ada yang tidak. Benang secara individu disebut hifa, dan massa benang yang luas disebut miselium. Miselium adalah struktur yang berpengaruh dalam absorbsi nutrisi secara terus-menerus sehingga cendawan dapat tumbuh dan pada akhirnya menghasilkan hifa yang khusus menghasilkan spora reproduktif (Saragih, 2009). Jamur Fusarium sp dapat tumbuh dengan baik pada bermacam-macam media agar terutama media yang mengandung ekstrak sayuran. Tahap pertumbuhan awal miselium tidak berwarna, semakin tua warnanya akan semakin krem, hingga koloni tampak mempunyai benang. Pada miselium yang lebih tua terbentuk klamidospora yang berdinding tebal. Jamur membentuk banyak mikrokonidium bersel satu, tidak berwarna, lonjong atau bulat telur, 6-15 x 2,5-4 µm, makrokonidium lebih jarang, berbentuk kumparan, tidak berwarna, kebanyakan bersekat dua atau tiga, berukuran 25-33 x 3,5-5,5 µm (Semangun, 2001).

Skripsi



25

Gambar 2. Fusarium sp. (Benadof, 2010)

C. Penicillium sp. Menurut Astriana (2010) Penicillium sp. diklasifikasikan sebagai berikut. Kingdom Divisi Kelas Ordo Famili Genus Spesies

: Fungi : Ascomycota : Eurotiomycetes : Eorotiales : Trichocomaceae : Penicillium : Penicillium sp.

Ciri morfologi Penicillium yaitu memiliki hifa bersepta, konidia, sterigma, dan konidiospora (Kurasein, 2009). Kapang Penicillium sp. mempunyai hifa bersepta, miselium bercabang, konidiospora yang muncul di atas permukaan, spora dengan sterigma yang berkelompok, dan konidia membentuk rantai (Fardiaz, 1989). Penicillium sp. pada beberapa spesies, miselium berkembang menjadi sklerotium (Pelczar, 2005). Kapang Penicillium sp. mempunyai hifa vegetative yang disebut dengan hifa udara (aerial hyphae). Penicillium sp. berkembang biak secara aseksual dengan membentuk spora yang dihasilkan dalam suatu kantong (askus) yang

Skripsi



26

disebut askospora dan secara aseksual dengan membentuk konidiospora, yaitu spora yang dihasilkan secara berantai pada ujung suatu hifa (Pohan, 2009). Bentuk sel konidiospora pada kapang Penicillium sp. adalah seperti botol dengan leher panjang atau pendek, jamur ini berwarna hijau kebiruan. Penicillium sp. termasuk jamur yang tidak bersifat patogen kecuali Penicillium marneffei (Gandjar et. al., 2006). Ada dua macam bentuk Penicillium sp. yang dapat diamati secara makroskopis dan mikrokopis. Secara makroskopis, ciri-ciri yang dapat dilihat adalah koloni tumbuh sekitar 4 hari pada suhu 25oC pada medium saboroud dextrose agar dan koloni mula-mula berwarna putih kemudian akan berwarna kehijauan, sedang secara mikroskopis dengan ciri-ciri yang sapat dilihat adalah hifa bersepta dan konidiofor mempunyai cabang yang disebut dengan metula, di atas metula terdapat fialid (Pohan, 2009). Pertumbuhan kapang Penicillium sp. dipengaruhi oleh faktor-faktor yang penting, yaitu : substrat, kelmbaban, suhu, dan pH. Penicillium sp. dapat hidup pada kelembaban yang rendah yaitu 80%. Suhu yang optimum untuk pertumbuhannya adalah

25oC (Gandjar e.t al., 2006). Menurut penelitian

Indahwati (2009), pH optimum yang dihasilan oleh 25oC berkisar 3,15-4,34.

Gambar 3. Penicillium sp. (Martens, 2005)

Skripsi



27

III KONSEPTUAL PENELITIAN DAN HIPOTESIS 3.1 Kerangka Konseptual Pakan merupakan salah satu aspek penting dalam setiap aktivitas budidaya akuatik. Pakan menjadi faktor produksi terbesar dan mencapai 50% atau lebih dari total biaya operasional, sehingga perlu dikelola dengan baik agar dapat digunakan secara efisien bagi kultivan. Salah aspek penting dalam pengolaan pakan adalah aspek penyimpanan (Nur, 2011). Peningkatan kadar air dalam proses penyimpanan pakan dapat menyebabkan munculnya faktor-faktor yang dapat menurunkan kualitas pakan. Menurut Suparjo (2010), kadar air pakan diatas 8-14% dapat memicu kerusakan pakan oleh serangga dan tikus. Kadar air pakan diatas 14-28% dapat memicu kerusakan pakan oleh sarangga, jamur dan tikus. Kadar air pakan diatas 20-25% dapat memicu kerusakan pakan oleh serangga, jamur, tikus, dan bakteri. Sedangkan kadar air pakan diatas 25% dapat memicu kerusakan pakan oleh bakteri, tikus, dan tumbuhnya biji. Tiga hal yang perlu diperhatikan dalam proses penyimpaman, yakni serangga, organisme mikroskopis (bakteri dan jamur) dan perubahan deteriratif, yang akan menyebabkan kehilangan bobot, kualitas, resiko kesehatan dan ekonomis (Sutikno, 2011). Menurut Nur (2011), pakan termasuk produk yang mudah rusak, sehingga perlu disimpan dan ditangani dengan baik untuk menghindari terjadinya hilangnya nutrien tertentu, terjadinya bau tengik, dan tumbuhnya jamur atau kapang. Dampak yang ditimbulkan serangan jamur pada pakan adalah produksi racun mikotoksin oleh jamur, timbulnya panas, naiknya kelembaban (Sutikno, 2011).

Skripsi



28

Berdasarkan hal tersebut dilakukan penelitian untuk mengidentifikasi jamur dan analisa PK akibat pengaruh penyimpanan dengan kadar air yang berbeda. Berikut kerangka konseptual penelitiannya.

Faktor penting budidaya Pakan buatan Penyimpanan Peningkatan Kadar Air

Serangan Serangga alami

Serangan mikroorganisme

Bakteri alami

Jamur alami

alami

Kerusakan nutrisi pakan Kandungan Protein Kasar

Isolasi dan Identifikasi

Analisa Proksimat

Analisa data Gambar 4. Kerangka Konseptual Penelitian Keterangan: : Aspek yang diteliti : Aspek yang tidak diteliti

Skripsi



29

3.2 Hipotesis Hipotesis yang diharapkan dari penelitian ini adalah : H1 : Ditemukan spesies jamur pada penyimpanan pakan dengan kadar air yang berbeda. H2 : Terdapat perbedaan kandungan protein kasar pada penyimpanan pakan dengan kadar air yang berbeda.

Skripsi



30

IV METODOLOGI

4.1 Tempat dan Waktu Penelitian Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Kering Fakultas Perikanan dan Kelautan, Universitas Airlangga, Surabaya dan analisis proksimat di ujikan di Laboratorium Makan Ternak Fakultas Kedokteran Hewan, Universitas Airlangga, Surabaya. Waktu penelitian dilaksanakan pada April sampai Mei 2013. 4.2 Materi Penelitian 4.2.1 Peralatan Penelitian Peralatan yang digunakan untuk penyimpanan sampel yaitu plastik untuk kemasan pakan, ember, plastic sealer, sarung tangan karet dan penyemprot air. Peralatan yang digunakan untuk proses identifikasi jamur yaitu mikroskop cahaya, pinset, bunsen, selotip, cawan petri, gunting bedah, pisau bedah, pinset, ose, gelas ukur, object glass, dan autoklaf. Peralatan untuk analisa proksimat meliputi, cawan porselin, cruss tang, eksikator, oven, neraca analitik, labu Kjeldhal, Erlenmeyer, alat destilasi uap, alat titrasi, pemanas labu Kjeldahl, lemari asam, spatula, seperangkat alat marcam steel. 4.2.2

Bahan Penelitian Bahan yang diperlukan untuk proses identifikasi jamur adalah pakan

komersial yang sering digunakan pembudidaya udang vannamei, media SDA (Sabouraud Dextrose Agar), air steril, akuades steril dan kloramfenikol 50 µg/ml.

Skripsi



31

Bahan yang diperlukan untuk analisa proksimat adalah

antara lain aquades,

NaOH 4% dan 40%, tablet Kjeldahl, H2SO4, asam borat, indikator Metil-merah, Brom cresol green, silika gel dan HCl. 4.3 Metode Penelitian 4.3.1 Rancangan Penelitian Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL). Kusriningrum (2008) menyatakan bahwa rancangan acak lengkap disebut pula Completely Randomized Design atau Fully Randomized Design dipergunakan apabila media, alat dan bahan percobaan seragam atau dapat dianggap seragam. Rancangan Acak Lengkap hanya terdiri dari satu sumber keragaman, sehingga hasil perbedaan antar perlakuan hanya disebabkan oleh pengaruh perlakuan. Model matematika untuk Rancangan Acak Lengkap adalah sebagai berikut : Yij = µ + τi + εij Keterangan : i

= 1,2,3,…..t

j = 1,2,3,…..n Yij = nilai pengamatan pada perlakuan ke-i ulangan ke-j µ

= nilai tengah umum

τi

= pengaruh perlakuan ke-i

εij = pengaruh galat atau acak percobaan (kesalahan percobaan) pada (t = banyaknya perlakuan, n = banyaknya ulangan)

Skripsi



32

Kusriningrum (2008) menyatakan bahwa ulangan adalah banyaknya kali atau frekuensi suatu macam perlakuan yang dicobakan dalam suatu percobaan. Federer (1974) dalam Kusriningrum (2008) menyatakan hubungan antara perlakuan dan ulangan adalah : t (n-1) ≥ 15 Keterangan : t = banyaknya perlakuan; n = banyaknya ulangan

Rancangan percobaan ini terdiri atas lima perlakuan yaitu P0, P1, P2, P3, dan P4 yang diulang sebanyak empat kali sehingga terdapat 20 satuan percobaan, yaitu:

P0.1, P0.2, P0.3, P0.4, P1.1, P1.2, P1.3, P1.4, P2.1, P2.2, P2.3, P2.4, P3.1, P3.2, P3.3, P3.4, P4.1, P4.2, P4.3 dan P4.4. Berdasarkan hasil penelitian pendahuluan yang menunjukkan bahwa BK pakan 90,95%. Untuk meningkatkan kadar air pakan sampai pada kondisi kadar air yang yang cocok untuk pertumbuhan jamur, dalam penelitian ini dilakukan perlakuan sebagai berikut: P0 : Campuran 100 gr Pakan + 0 ml air P1 : Campuran 100 gr Pakan + 5 ml air. P2 : Campuran 100 gr Pakan + 10 ml air. P3 : Campuran 100 gr Pakan + 15 ml air. P4 : Campuran 100 gr Pakan + 20ml air. Penempatan perlakuan-perlakuan ke dalam tempat percobaan setelah dilakukan pengacakan sebagaimana tergambar pada denah berikut (Gambar 4).

Skripsi



33

P2.1

P4.2

P0.1

P1.4

P3.1

P1.3

P4.4

P2.2

P0.3

P3.3

P0.2

P1.2

P4.3

P3.2

P2.3

P1.1

P4.1

P2.4

P0.4

P3.4

Gambar 5. Denah penempatan perlakuan pada (RAL) Keterangan: P1.1 artinya perlakuan P1 ulangan 1 dst. 4.3.2 Prosedur Kerja Penelitian ini dilakukan dalam 3 tahap yaitu a) penyimpanan pakan dengan penambahan air berbeda b.) isolasi dan identifikasi jamur pada pakan c.) analisis proksimat kandungan PK pakan. Langkah-langkah penelitian ini sebagai berikut: A. Penyimpanan Pakan Tiap sampel pakan terlebih dahulu dipastikan dalam kondisi fisik yang baik dan steril, kemudian setiap sampel perlakuan diisi pakan udang seberat 100gr. Pakan ditingkatkan kuantitas airnya dengan lima dosis yang berbeda dengan empat kali pengulangan, suhu ruangan diatur pada suhu 25oC, kemudian disimpan dalam kemasan plastik selama 4 hari. Hasil penelitian pendahuluan menunjukkan bahwa pakan yang disimpan dengan kadar air yang telah dinaikkan diatas 10% akan ditumbuhi jamur pada hari ke 4.

Skripsi



34

B. Isolasi dan Identifikasi Jamur Media SDA (Sabouraud Dextrose Agar) merupakan media yang digunakan utuk mengisolasi jamur. Tahap awal dari persiapan media ini adalah sterilisasi peralatan yang akan digunakan. Sterilisasi merupakan suatu proses untuk mematikan atau menghilangkan semua jasad renik yang ada, sehingga jika ditumbuhkan di dalam suatu medium tidak ada lagi jasad renik yang dapat berkembang biak (Idafi, 2009). Sebelum dilakukan proses isolasi jamur, pakan yang telah ditumbuhi jamur terlebih dahulu di homogenkan dengan dilakukan pengadukan sampai merata dan penggerusan. Menurut Marlia (2014), bagian batch yang diambil sampelnya untuk pengujian harus mewakili batch tersebut. Jamur diisolasi menggunakan pinset dan kemudian ditanam pada media SDA (Saboraud Dextrose Agar) kemudian diinkubasi pada suhu 25oC selama 2-7 hari dan selanjutnya diidentifikasi di laboratorium (Gandjar dkk, 2006). Sampel yang diinokulasi pada media SDA (Saboraud Dextrose Agar) merupakan campuran dari berbagai macam isolat jamur dan tidak jarang terkontaminasi oleh bakteri. Oleh karena itu untuk mempermudah identifikasi maka isolat tersebut dimurnikan. Proses pemurnian dimulai dengan mengambil satu jenis koloni menggunakan ose pada media SDA lama yang memiliki warna dan tekstur sejenis kemudian diisolasi pada media SDA baru dan diinkubasi pada suhu 25oC selama 2-7 hari untuk mendapatkan isolat murni. Jamur yang sudah dimurnikan siap untuk dilakukan identifikasi. Pengamatan isolat jamur dimulai dengan menyiapkan object glass kemudian

Skripsi



35

ditetesi dengan larutan lactophenol blue sebanyak satu tetes. Kemudian dengan selotip secukupnya lalu ditempelkan pada jamur yang tumbuh pada media. Selotip yang tertempel jamur tersebut, ditempelkan pada object glass yang sudah ditetesi dengan lactophenol blue lalu diamati di bawah mikroskop dengan pembesaran 100 dan 400X dan jamur yang terlihat dapat diidentifikasi (Balai Karantina Ikan, 2011). Identifikasi jamur menggunakan teknik identifikasi secara konvensional yang

meliputi dua tahap yaitu pengamatan fungi secara makroskopis dan

mikroskopis. Pengamatan secara makroskopis meliputi bentuk koloni dan warna koloni sedangkan pengamatan secara mikroskopos meliputi bentuk hifa, bentuk spora, letak spora dan identifikasi dilakukan menurut prosedur identifikasi Post (1987) dan Murray et al. (2007). C.

Analisis Proksimat Analisa Proksimat yang dilakukan adalah analisa bahan kering (BK) dan

protein kasar (PK) pakan saat sebelum perlakuan penyimpanan dan sesudah perlakuan penyimpanan. Hal ini berguna untuk mengetahui %pengurangan kadar BK dan PK sebelum penyimpanan (sebelum tumbuh jamur) dan sesudah perlakuan penyimpanan (sudah tumbuh jamur).

Skripsi



36

Penelitian ini dapat disajikan dalam diagram alur penelitian seperti pada Gambar 6 berikut. Penimbangan dan Pengemasan Pakan Perlakuan

P0

P1

P2

P4

P5

Analisa Bahan Kering dan Protein Kasar Pakan

Penyimpanan Pakan

Analisa Bahan Kering dan Protein Kasar Pakan

Identifikasi Jamur

Analisis data Gambar 6. Diagram alir penelitian 4.3.4 Parameter Utama Parameter yang diamati dalam penelitian ini adalah jenis jamur yang tumbuh pada penyimpanan pakan dengan penambahan volume air berbeda dan perubahan nilai protein kasar pada pakan. 4.3.5 Analisis Data Hasil identifikasi jamur dianalisis menggunakan metode deskriptif. Metode analisis

yang menggambarkan fakta-fakta sebagaimana adanya

(Sangadji, 2010). Data persentase perubahan protein kasar pakan dianalisis dengan analisis varian (Anova) untuk kemudian dilajutkan dengan uji jarak berganda Duncan bila data yang didapat menunjukkan perbedaan nyata.

Skripsi



37

BAB V HASIL DAN PEMBAHASAN

5.1 Hasil 5.1.1 Identifikasi Identifikasi bertujuan untuk mengetahui jenis jamur yang tumbuh pada pakan udang yang disimpan dalam berbagai tingkat penambahan volume air. Identifikasi pada fungi dilakukan dengan pemeriksaan secara makroskopis dan mikroskopis (Ronald and Richard, 2000). Pengamatan secara makroskopis pada penelitian ini diawali dengan menanam sampel pakan yang telah disimpan dengan peningkatan kadar air berbeda pada media SDA yang telah disterilisasi dengan pemberian antibiotik penicillin dan streptomycin. Menurut Idafi (2009), Sterilisasi merupakan suatu proses untuk mematikan atau menghilangkan semua jasad renik yang ada, sehingga jika ditumbuhkan di dalam suatu medium tidak ada lagi jasad renik yang dapat berkembang biak. Hasil pengamatan secara makroskopis dan mikroskopis pada penelitian ini mendapatkan lima macam isolat murni koloni fungi yang disajikan pada tabel 4. Isolat murni pertama berwarna hijau tua dengan bentuk koloni granular dan kompak, isolat murni yang ke dua berwarna hitam dengan dengan bentuk koloni granular dan kompak, isolat murni yang ke tiga berwarna hijau muda dengan bentuk koloni granular dan kompak, isolat murni yang ke empat berwarna putih dengan dengan bentuk koloni granular dan kompak, sedangkan isolat murni yang ke lima berwarna putih-abu-abu dengan dengan bentuk koloni seperti kapas.

Skripsi



38

Pengamatan mikroskopis dalam penelitian ini dilakukan dengan metode selotip untuk mendapatkan sampel struktur jamur yang baik dan dapat diamati. Pengamatan menggunakan mikroskop dengan perbesaran 400 untuk dapat mengamati struktur hifa serta organ reproduksi jamur secara jelas (Balai Karantina Ikan, 2011). Tabel 2. Hasil Identifikasi Jamur pada Penyimpanan Pakan Komersial dengan Penambahan Volume Air Berbeda No.

Lokasi

Karakteristik Fungi Karakteristik Fungi Kesimpulan Hasil Pengamatan Sesuai Referensi

1

P1, P2, Makroskopis: Koloni Koloni Hijau (Elmer et Aspergillus P3, P4 hijau, granular, all, 1978) flavus kompak. Konidiofor, vesikel berbentuk bulat, phialids berada di atas Mikroskopis: Vesikel vesikel (Koneman et bulat al., 1992)

2

P1, P2, Makroskopis: P3, P4 hitam.

Koloni Koloni hitam (Elmer et Aspergillus all, 1978) niger

Mikroskopis: Vesikel bulat, konidiofor yang transparan serta konidia yang berwarna hitam kecoklatan

3

P3, P4

Konidiofor halus dan berwarna hitam, vesikel berbentuk bulat, konidia berwarna coklat sampai hitam, kasar dan bulat (Larone, 2002).

Makroskopis: koloni Koloni berwarna hijau Aspergillus hijau tua dengan (Elmer et all, 1978) fumigatus bentuk koloni granular dan kompak Memiliki konidia yang

Skripsi



39

Mikroskopis:

melekat pada vesikel.

Vesikel, dan konidia. (Elmer et all, 1978)

4

P1, P4

Makroskopis: Koloni putih

Koloni yang berwarna Aspergillus putih sampai krem candidus (Murray et al., 1995).

Konidiofor tidak berwarna, memiliki Mikroskopis: vesikel yang berbentuk Hifa tidak bersepta dan bulat, memiliki konidia vesikel yang bulat. bulat dan halus (Murray et al., 1995). 5

P3

Makroskopis:

Koloni mengisi seluruh Rhizopus cawan petri dengan oryzae Koloni abu-abu, miselium berwarna seperti kapas, abu-abu dan memenuhi cawan petri sporangium kecil berwarna abu-abu Mikroskopis:

(Indonesian mycology, 2014)

Sporangium berbentuk bulat Sporangium membulat yang pada awalnya berwarna putih kemudian menjadi hitam agak kelabu pada waktu matang (Indonesian mycology, 2014)

Skripsi



40

1. Aspergillus flavus Menurut Samson and Pitt (2000), klasifikasi Aspergillus flavus adalah sebagai berikut: Phylum Class Ordo Family Genus: Spesies

: Ascomycota : Eurotiomycetes : Eurotiales : Trichocomaceae Aspergillus : Aspergillus flavus Hasil pengamatan secara makroskopis menunjukkan bahwa Aspergillus

flavus memiliki ciri-ciri yaitu, koloni berwarna hijau muda dengan dengan bentuk koloni granular dan kompak. Hal ini sesuai dengan Elmer et all (1978) yang mengatakan, pada isolate murni dalam media SDA Aspergillus flavus memiliki koloni berwarna hijau kekuningan atau kuning kecoklatan, Koloni Aspergillus flavus dapat dilihat pada gambar 7.

Gambar 7. Koloni Aspergillus flavus Secara mikroskopis Aspergillus flavus memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki vesikel yang berbentuk bulat. Hal ini sesuai dengan Koneman et al. (1992) yang menyatakan bahwa Aspergillus flavus memiliki konidiofor, vesikel berbentuk bulat, phialids berada di atas vesikel dan memiliki konidia yang bulat, halus atau

Skripsi



41

kasar. Bagian-bagian Aspergillus flavus secara mikroskopis dapat dilihat pada gambar 8.

a b

Gambar 8. Bagain-bagian Aspergillus flavus secara mikroskopis. Keterangan: (a). Vesikel; (b). Konidia

2. Aspergillus niger Menurut Zhao et al. (2009), klasifikasi Aspergillus niger adalah sebagai berikut: Phylum Class Ordo Family Genus Spesies

: Ascomycota : Eurotiomycetes : Eurotiales : Trichomaceae : Aspergillus : Aspergillus niger

Hasil pengamatan secara makroskopis menunjukkan bahwa Aspergillus niger memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki koloni yang berwana hitam. Hal ini sesuai dengan Elmer et all (1978) yang mengatakan, pada isolat murni dalam media SDA Aspergillus flavus memiliki koloni berwarna hitam. Koloni dari Aspergillus niger dapat dilihat pada gambar 9.

Skripsi



42

Gambar 9. Koloni Aspergillus niger Secara mikroskopis Aspergillus niger memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki vesikel yang berbentuk bulat, konidiofor yang transparan serta konidia yang berwarna hitam kecoklatan. Hal ini sesuai dengan Larone (2002) yang menyatakan bahwa Aspergillus niger memiliki konidiofor halus dan berwarna hitam, memiliki vesikel yang berbentuk bulat, memiliki konidia yang berwarna coklat sampai hitam, kasar dan bulat. Bagian-bagian Aspergillus niger secara mikroskopis dapat dilihat pada gambar 10.

Skripsi



43

b

a c

Gambar 10. Bagian-bagian Aspergillus niger secara mikroskopis. Keterangan: (a). Konidia; (b). Vesikel

3. Aspergillus fumigatus Menurut Bennett dan Klich (1992)., klasifikasi Aspergillus fumigatus adalah sebagai berikut: Kingdom Phylum Class Order Family Genus Species

: Fungi :Ascomycota :Ascomycetes :Eurotiales :Trichocomaceae : Aspergillus : Aspergillus fumigatus

Hasil pengamatan secara makroskopis menunjukkan bahwa Aspergillus fumigatus memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki koloni yang berwarna hijau tua dengan bentuk koloni granular dan kompak. Hal ini sesuai dengan Elmer et all (1978) yang mengatakan, pada isolat murni dalam media SDA Aspergillus fumigatus memiliki koloni berwarna hijau. Koloni dari Aspergillus niger dapat dilihat pada gambar 11.

Skripsi



44

Gambar 11. Koloni Aspergillus fumigatus Hasil pengamatan mikroskopis menunjukkan terdapat ciri-ciri berupa vesikel, dan konidia. Hal ini sesuai dengan pendapat Elmer et all (1978), Aspergillus memiliki karakteristik dengan memiliki rantai oval kecil konidia yang melekat pada ujung satu atau dua baris sterigmata yang teratur melingkar pada permukaan ujung conidiophore yang disebut vesikel.

b

a

Gambar 12. Bagian-bagian Aspergillus fumigatus secara mikroskopis. Keterangan: (a). Konidia; (b). Vesikel

Skripsi



45

4. Aspergillus candidus Menurut Samson and Pitt (2000), klasifikasi Aspergillus candidus adalah sebagai berikut: Phylum Class Ordo Family Genus Spesies

: Ascomycota : Eurotiomycetes : Eurotiales : Trichocomaceae : Aspergillus : Aspergillus candidus

Hasil identifikasi yang telah dilakukan Aspergillus candidus secara makroskopis memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki koloni yang berwarna putih dengan bentuk koloni granular dan kompak. Hal ini sesuai dengan Murray et al. (1995) yang menyaatakan bahwa Aspergillus candidus merupakan jamur yang memiliki ciri koloni yang berwarna putih sampai krem. Koloni dari Aspergillus candidus dapat dilihat pada gambar 13.

Gambar 13. Koloni Aspergillus candidus Secara mikroskopis Aspergillus candidus memiliki ciri yaitu memiliki hifa tidak bersepta dan vesikel yang bulat. Hal ini sesuai dengan Murray et al. (2007) yang menyatakan bahwa Aspergillus candidus secara mikroskopis memiliki ciri yaitu, memiliki konidiofor tidak berwarna, memiliki vesikel yang berbentuk bulat,

Skripsi



46

memiliki konidia bulat dan halus. Bagian-bagian Aspergillus candidus secara mikroskopis dapat dilihat pada gambar 14.

a b

Gambar 14. Bagian-bagian Aspergillus candidus secara mikroskopis. Keterangan: (a). Konidia; (b). Vesikel 5. Rhizopus oryzae Menurut Plantamor (2012), klasifikasi Rhizopus oryzae adalah sebagai berikut: Kingdom Order Family Genus Spesies

:Fungi : Mucorales :Mucoraceae : Rhizopus : Rhizopus oryzae

Hasil identifikasi yang telah dilakukan Rhizopus oryzae secara makroskopis memiliki ciri-ciri yaitu, memiliki koloni berwarna putih-abu-abu dengan dengan bentuk koloni seperti kapas yang memenuhi cawan petri.. Hal ini sesuai dengan Indonesian mycology (2014), Rhizopus oryzae memiliki koloni yang mengisi seluruh cawan petri dengan miselium berwarna abu-abu dan

Skripsi



47

sporangium kecil berwarna abu-abu. Koloni dari Aspergillus candidus dapat dilihat pada gambar 15.

Gambar 15. Koloni Rhizopus oryzae Sedangkan pengamatan secara mikroskopis menunjukkan ciri-ciri berupa adanya sporangium yang berbentuk bulat. Hal ini sesuai dengan pendapat Indonesian mycologi (2014), Rhizopus oryzae memiliki sporangium membulat yang pada awalnya berwarna putih kemudian menjadi hitam agak kelabu pada waktu matang.

a

b

Gambar 16. Bagian-bagian Rhizopus oryzae secara mikroskopis. Keterangan: (a). Sporangium; (b). Hifa

Skripsi



48

5.1.2 Analisis Proksimat Hasil analisis proksimat kandungan berat kering pakan komersial yang telah ditambahkan air dengan volume berbeda dapat dilihat pada Lampiran 2. ratarata kandungan berat kering pakan dapat dilihat pada Tabel 3. Tabel 3. Rata-rata kandungan berat kering pakan komersial dengan penambahan volume air berbeda. Sampel P0

BK Rata-rata (%) 90,1693

Kadar Air Rata-rata (%) 9.8307

P1 P2 P3

86.2811 84.0379 79.8478

13.7189 15.9621 20.1522

P4

76.8667

23.1333

Hasil rata-rata kandungan berat kering dari ke lima perlakuan diketahui P0 sebagai control memiliki rata-rata BK 90,1693% sehingga kadar air rata-rata P0 mencapai 9,8307%. P1 menunjukkan rata-rata BK 86.2811% sehingga kadar air rata-rata P1 mencapai 13, 718%,

P2 menunjukkan rata-rata BK 84.0379%

sehingga kadar air rata-rata P2 mencapai 15.9621%, P3 menunjukkan rata-rata BK 79.8478% sehingga kadar air rata-rata P3 mencapai 20.1522%, dan P4

menunjukkan rata-rata BK 76.8667% sehingga kadar air rata-rata P4 mencapai 23.1333%.

Hasil analisis statistik perubahan nilai bahan kering pada pakan yang diberi perlakuan kadar air yang berbeda dan disimpan selama enam hari, dapat dilihat pada Lampiran 4. Rata-rata perubahan nilai bahan kering menunjukkan

Skripsi



49

bahwa penambahan volume air yang berbeda memberikan perbedaan yang nyata terhadap perubahan bahan kering pada pakan (p<0.05). Perlakuan tersebut selanjutnya dilakukan Uji Jarak Berganda Dunchan (Duncan’s Multiple Range Test) . Tabel 4. Rata-rata nilai perubahan kandungan protein kasar pakan komersial dengan penambahan volume air berbeda. Perlakuan

Rata-rata (X) ± SD

P0

108.98±0.66b

P1

109.85± 2.33b

P2

90.27± 1.05c

P3

113.54± 2.10a

P4

109.18± 2.21b

Keterangan : SD= Standar Deviasi

Notasi Garis P3

P4

P1

P0

P2

a b b b c

Hasil perubahan kandungan protein kasar tertinggi terjadi pada perlakuan P3 sedangkan perubahan kandungan protein kasar terendah terjadi pada perlakuan P2. Dengan demikian perubahan kandungan protein kasar pada perlakuan P2 berbeda nyata terhadap perlakuan P3, P0, P1 dan P4. Perubahan protein kasar

Skripsi



50

pada perlakuan P3 juga berbeda nyata terhadap perlakuan P1, P4 dan P0. Namun perubahan protein kasar pada perlakuan

P1, P4 dan P0 tidak menunjukkan

perbedaan yang signifikan antar perlakuan. 113.54 109.18 120 108.89 109.85 110 100 90.27 90 80 70 60 50 40 30 20 10 0 P0 P1 P2 P3 P4

persentase Perubahan Protein Kasar

Gambar 17. Grafik Rata-Rata Nilai Perubahan Protein Kasar pada MasingMasing Perlakuan Pakan. Grafik di atas menunjukkan rata-rata nilai perubahan protein kasar pakan yang diberi perlakuan penambahan air yang berbeda dan disimpan selama enam hari. Grafik tersebut menunjukkan perbedaan nilai perubahan protein kasar pakan pada setiap perlakuan.

Skripsi



51

5.2 Pembahasan 5.2.1 Pengaruh Penyimpanan Pakan Udang dengan Penambahan Volume Air Berbeda Terhadap Pertumbuhan Jamur Dalam penelitian ini telah terindentifikasi empat spesies Aspergillus (A. niger, A. flavus, A. fumigatus, dan A. candidus) dan satu Spesies Rhizopus oryzae yang menginfeksi pakan komersial yang disimpan dengan perlakuan penambahan volume air yang berbeda. Munculnya spesies Aspergillus pada penyimpanan pakan perlu diwaspadai karena menurut Elmer et all (1978), A. fumigatus, A. Niger, dan A. flavus adalah tiga spesies Aspergillus yang merupakan penghasil toxic dan sering muncul dalam spesimen klinis. Menurut

RHM Technology, 2003 dalam Noor (2006), aflatoksin

dihasilkan oleh A. flavus dan beberapa jamur lain, cyclopiazonic acid dapat dihasilkan oleh A. flavus . Aflatoksin yang terdapat pada ikan dapat menyebabkan pertumbuhan ikan menjadi terganggu (Effiong And Alatise, 2009). Gejala klinis ikan yang terinfeksi antara lain, insang pucat, sistem peredaran darah terganggu, sistem kekebalan menurun, anemia, pertumbuhan terganggu dan kurangnya berat badan dan efek jangka panjang menyebabkan tumor dan gangguan pada hati yang berakibat tingginya mortalitas ikan (Russo and Yanong, 2010). Menurut RHM Technology, 2003 dalam Noor (2006) disebutkan bahwa ochratoksin dapat dihasilkan oleh A. niger, Selain berpotensi menghasilkan toksin, jamur dalam bahan makanan menghasilkan berbagai enzim yang dapat merombak senyawa-senyawa yang terkandung dalam bahan makanan tersebut, sehingga

Skripsi



52

mempengaruhi kualitasnya terutama apabila disimpan terlalu lama. A. niger dapat menghasilkan enzim amilase, selulase, oksidase, oksidase glukosa, lipase dan pektinase (Frazier dan Westhoff, 1988 dalam Noor, 2006). Sedangkan A.fumigatus adalah jenis jamur yang dapat menghasilkan gliotoxin yang menyebabkan penyakit aspergillosis (NCBI, 2006). A. flavus dapat menyebabkan alergi pada paru-paru dan menyebarkan aspergillosis (Elmer et all, 1978). 5.2.1

Pengaruh Penyimpanan Pakan Komersial dengan Penambahan Volume Air Berbeda Terhadap Perubahan Kadar Protein Kasar

Perlakuan P0 dengan rata-rata BK 90,1693% dan rata-rata kadar air 9,8307% tidak ditemukan pertumbuhan jamur pada pakan. Hal ini menunjukkan pakan yang memiliki nilai kadar air dibawah 14% bukan merupakan lingkungan yang baik untuk pertumbuhan jamur. Sedangkan perlakuan P1 dengan rata-rata BK 86.2811% dan rata-rata kadar air 13, 718%, perlakuan P2 dengan rata-rata BK 84.0379% dan rata-rata kadar air 15.9621%, perlakuan P3 dengan rata-rata BK 79.8478% dan rata-rata kadar air 20.1522%, dan perlakuan P4 dengan rata-rata BK 76.8667% dan rata-rata kadar air 23.1333% ditemukan pertumbuhan jamur pada

pakan. Hal ini sesuai dengan Suparjo (2010) yang mengatakan, munculnya jamur pada pakan mulai terjadi pada pakan dengan kadar air 14%.

Skripsi



53

Berdasarkan pada Lampiran 4 dapat kita ketahui bahwa penambahan volume air pada pakan komersial dapat mengakibatkan penurunan kadar protein kasar pada sampel yang belum disimpan, sedangkan sampel yang sudah disimpan menunjukan nilai protein kasar yang meningkat. Hal ini menunjukkan bahwa keberadaan jamur pada pakan dapat meningkatkan kandungan protein pada pakan. Hal ini sesuai dengan FAO (1992), dalam Susi (2011), jamur memiliki kandungan protein yang cukup tinggi mencapai 13,8%. Sehingga kandungan protein jamur dapat meningkatkan kadar protein pakan. Selain itu menurut Purwadaria (1998) dalam Haryati (2006), jamur Aspergillus dapat menghasilkan enzim hidrolitik mananase dan selulase yang dapat menurunkan serat kasar dan meningkatkan protein kasar. Menurut LIM et al. (2001) dalam Simon (2006) menyatakan fermentasi bahan pakan dengan menggunakan A. flavus dapat meningkatkan kadar protein kasar. Menurut Lina (2012)

R. oryzae mampu meningkatkan kadar

protein dan menurunkan kadar HCN dari tepung mocaf. Menurut Sugiyono (2008) dalam Ria (2012), fermentasi A.niger pada ampas sagu dapat meningkatkan kadar protein sebesar 1,9% dalam waktu 12 hari. A. niger secara kultur tunggal sering digunakan dalam pengolahan pakan karena kemampuannya dalam degradasi selulosa maupun pati dan meningkatkan kadar protein. Berdasarkan

hasil

uji

proksimat

protein

kasar

pada

penelitian

penyimpanan pakan komersial dengan penambahan volume air berbeda selama 6 hari yang disajikan pada lampiran 4 dan hasil Analisis Varian dan Duncan pada tabel 5 menunjukkan bahwa perbedaan nilai perubahan (penurunan) kadar protein kering pada penelitian ini signifikan. Dengan perlakuan P3 dengan perubahan

Skripsi



54

kadar protein tertinggi sedangkan P2 dengan perubahan kadar protein terendah. Pada perlakuan P3 teridentifikasi empat spesies jamur yaitu A. niger, A. flavus, A fumigatus, dan R. oryzae. Sedangkan pada perlakuan P2 hanya teridentifikasi dua spesies jamur yaitu A. niger dan A. flavus.

Skripsi



55

VI KESIMPULAN DAN SARAN

6.1.

Kesimpulan Berdasarkan hasil penelitian dapat disimpulkan bahwa:

a. Jamur yang tumbuh pada pakan komersial yang disimpan dengan perlakuan penambahan volume air berbeda adalah Aspergillus flavus, Aspergillus niger, Aspergillus fumigatus, Aspergillus candidus dan Rhizopus oryzae. b. Perubahan kandungan protein kasar pada penyimpanan pakan komersial dengan perlakuan penambahan volume air berbeda menunjukkan perbedaan yang sangat signifikan. Perlakuan P3 menunjukkan perubahan kandungan PK tertinggi, sedangkan perlakuan P2 menunjukkan perubahan kandungan PK terrendah.

6.2

Saran Saran yang dapat diberikan penulis yaitu perlu dilakukan penelitian

mengenai tingkat kandungan nutrisi serta patogenitas dari masing-masing spesies sehingga diperoleh data yang dapat digunakan untuk meningkatkan nutrisi pakan tanpa terkendala masalah toksik pada jamur.

Skripsi



56

DAFTAR PUSTAKA

Anggraeni, H. S., R. R. P. Fasa dan U. K. Alma’rufah. 2010. Inovasi Pengolahan Limbah Tepung (ampas ketela) menjadi Pelet sebagai Makanan Alternatif pada Ikan. http://community.um.ac.id. Diakses 17 Desember 2013. 10 hal. Alexopoulos, C. J. and C. W. Mims. 1979. Introductory Mycology. Third Edition. John Wiley and Sons. New York. Ana, A. 2009. Biosolubilisasi Batubara Hasil Iradiasi Gamma. dalam Berbagai Dosis oleh Kapang Penicillium sp. Program studi Biologi. Fakultas Sains dan Teknologi. Universitas Negeri Jakarta. Balai Budidaya Air Payau (BBAP) Situbondo. 2006. Pembenihan Udang Vannamei. Departemen Kelautan Perikanan. Situbondo. 67 hal. Balai Karantina Ikan. 2011. Teknik Identifikasi Jamur Metode Selotip. Balai Karantina Ikan Kelas II. Tanjung Emas. Semarang. Balajee, M.S. 2009. Aspergillus terreus complex. Medical Mycology. 47: S42 – S46. Benadof, D. F. 2010. Fusarium especie. Revista Chilena Infectologiaa 27 (4): 327-328 Bennett, J.W. and M.A. Klich. 1992. Aspergillus fumigatus. University of Wisconsin.http://bioweb.uwlax.edu/bio203/s2008/miller_melo/Classificati on.htm. Diakses 20 Juni 2014 Budianto, A.K. 2009. Dasar-Dasar Ilmu Gizi. Cetakan keempat. Malang : Penerbit Universitas Muhammadiyah Malang Press. Deak, E., Wilson S.D, White E, Carr J.H., and Balajee S.A. 2009. Aspergillus terreus accessory conidia are unique in surface architecture, cell wall composition and germination kinetics. Plos One 4: e7673. Dhand, N.K., D.V. Joshi, and S.K. Jand. 1998. Fungal contaminants of dairy feed and their toxigenicity. Indian Journal of Animal Sciences 68: 1095-1096. Djarijah, A. S. 1995. Pakan Ikan Alami. Kanisius. Yogyakarta. Elmer, W.K., Glenn, D.R., and Sara, E.W. 1978. Practical Laboratory Mycologi 2nd Edition. The Williams and wilkins co. United States of Amerika. 7-96p Effiong, B. N., and S. P. Alatise. 2009. Effect Of Mold Infested Feeds On The Growth And Survival Of Heterobranchus longifilis Fingerlings. Report and Opinion 1(3):9-14. Erna J. dan Iis A. 2013. Optimasi Penambahan Nutrient terhadap Kadar Protein pada Fermentasi Padat Kulit Umbi Ubi Kayu Menggunakan Response

Skripsi



57

Survace Method. Jurusan Teknik Kimia. Fakultas Teknik. Universitas Diponegoro. Semarang. Fardiaz, S. 1992. Mikrobiologi Pangan 1. PT Gramedia Pustaka Umum.Jakarta. hal 35-37. Gandjar, I. 2008. Subbituminous Coal. http://www.rzfarland.com. 25 Februari 2014. hal 1 Gandjar, K., W. Sjamsurizal dan A. Oetari. 2006. Mikologi Dasar dan terapan. Yayasan Obor Indonesia. Jakarta. 237 Hal Hartadi, H., S. Reksohadiprodjo, dan A.D. Tillman. 1997. Komposisi Pakan Untuk Indonesia. Gadjah mada University Press. Yogyakarta. Haryati, T., Togatorop, M.H., Sinurat, A.P., Purwadaria, T. Dan Murtiyeni. 2006. Pemanfaatan Bungkil Kelapa Fermentasi dengan Aspergillus niger dalam Ransum Ayam Pedaging. Balai Penelitian Ternak. Bogor. Idafi, M. 2009. Sterilisasi dan Pembuatan Medium Mikroba. Program Studi Teknik Lingkungan. Fakultas Teknik. Universitas Lambung Mangkurat. Banjarbaru. http:// www.scribd.com/doc/24542047/Sterilisasi-DanPembuatan-Medium-Mikro bia-Dafi017. Diakses pada tanggal 21 Desember 2011. Indahwati, E. 2009. Degradasi Batubara Subbituminus Asal Kalimantan Timur Menggunakan Fungi Aspergilus sp. dan Penicillium sp. Skripsi Sarjana Biologi. Universitas Islam Negeri Syahid. Jakarta. Indonesian Mycology. 2014. Rhizopus oryzae. pp1. http://203.130.231.174:1107/GST/src/Html/Indonesian/I_Mycology/I_RH IZOPUS.HTM. Diakses 20 Juni 2014. Iswanto, A. H. 2009. Identifikasi Jamur Perusak Kayu. Karya Tulis. Depertemen Kehutanan. Fakultas Pertanian. Universitas Sumatra Utara. 13 Hal Kamal, M. 1994. Nutrisi Ternak I. Laboratorium Makanan Ternak. Jurusan Nutrisi dan Makanan Ternak. Fakultas Peternakan. Universitas Gadjah Mada. Yogyakarta. Kartasudjana, R. 2001. Proses Pemotongan Ternak di RPH. http://125.160.17.21/speedyorari/view.php?file=pendidikan/materi_kejuruan /pertanian/budi_daya_ternak_ruminansia/proses_pemotongan_ternak_di_rph .pdf. 12 November 2012. Koneman, E. M., S. D. Allen., W. M. Janda., P. C. Schreckenberger., and W. C. Winn. 1992. Color Atlas and Text of Diagnostic Mikrobiology. 4th Edition. United States of America. J.B. Lippincott Company. pp 804 Kuraesin, T., I. Sugoro, M.R. Pikoli, S. Hermanto dan P. Aditiawati. 2009. Isolasi dan Seleksi Fungi Pelaku Solubilisasi Batubara Subbituminus. Jurnal Biologi Lingkungan 3 (2) : 75-87.

Skripsi



58

Kusriningrum. 2008. Perancangan Percobaan. Airlangga University Press. Surabaya. Larone, D. H. 2002. Medically Important Fungi. 4th ed. ASM Press. Washington, D.C. pp. 175-266. Lina I. K., Nur A., Setiyo G., dan Tri W. 2012. Pembuatan Mocaf (Modified Cassava Flour) Dengan Proses Fermentasi Menggunakan Lactobacillus Plantarum, Saccharomyces Cereviseae, Dan Rhizopus Oryzae. Jurusan Teknik Kimia. Fakultas Teknologi Industri. Institut Teknologi Sepuluh Nopember (ITS). Surabaya. Marlia, S.W. 2014. Prinsip dan Pelaksanaan Pengambilan Sampel. School of Pharmacy. Institut Teknologi Bandung. Martens, C. and Treves, D. 2005. Penicillium spp. Department of Biology. Indiana University. Southeast New Albany Medion. 2011. Persoalan Jamur dan Mikotoksin pada Ransum. http://info.medion.co.id/index.php/artikel/broiler/tata-laksana/persoalanjamur-dan-mitotoksin-pada-ransum. 16 Juli 2013 Murray, P. R., E. J. Baron., J. H. Jorgensen., M. L. Landry., and M. A. Pfaller. 2007. Manual of Clinical Mikrobiology. 9th Edition. ASM Press. Washington, D.C. pp. 1726 NCBI (US National Library of MedicineNational Institutes of Health). 2006. Disruption of a nonribosomal peptide synthetase in Aspergillus fumigatus eliminates gliotoxin production. pp1. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/16757745. Diakses 20 Juni 2014. Noor, S.H. dan Ratna, S. 2006. Identifikasi Jamur dan Deteksi Aflatoxin B1 pada Petis Udang Komersial. Jurusan Biologi FMIPA Universitas Sebelas Maret. Surakarta. 3 hal Nur, A. 2011. Manajemen Pemeliharaan Udang Vannamei. Direktorat jenderal perikanan budidaya Balai besar pengembangan budidaya air payau. Jepara Pelczar, M. dan E. C. S. Chan. 1986. Dasar-dasar mikrobiologi. Unversitas Indonesia. Jakarta. 443 hal. Pelczar, M.J. dan E.C.S. Chan. 2005. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Indonesia University Press. Jakarta. Plantamor. 2012. Rhizopus oryzae. Article Electronic. http://plantamor.com/index.php?plant=1621. Diakses 20 Juni 2014.

pp1.

Pohan, A. 2009. Kapang Penicillium. [email protected]. 25 Februari 2014. hal 1

Skripsi



59

Post, G. 1987. Textbook of Fish Health. United States of Amerika. TFH Publication. 288 Hal Purbaya, A. 2011. Manajemen Pemberian Pakan Budidaya Udang Putih ( Litopenaeus vannamei ) di PT. Aruna Wijaya Saktitulang Bawang Lampung. Tugas Akhir. Program Studi Budidaya Perairan. Fakultas Peternakan. Politeknik Negeri Lampung. http://www.scribd.com/doc/62645125/29/Prinsip-Manajemen-Pakan. 12 Januari 2013. 63 hal. Ria, F., Nora, I., dan Lia, D. 2012. Pengaruh Waktu Fermentasi Campuran Trichoderma reesei Dan Aspergillus niger Terhadap Kandungan Protein Dan Serat Kasar Ampas Sagu. Program Studi Kimia. Fakultas MIPA. Universitas Tanjungpura. Ronald,A., Sacher, and Richard, A. Mc.Pherson. 2000. Tinjauan klinis hasil pemeriksaan , Laboratorium. Penerbit Buku Kedokteran EGC. Jakarta. Hal:114 Russo, J. A. R., and R. P. E. Yanong. 2010. Molds in Fish Feeds and Aflatoxicosis. Journal Mycologi. 21:1-4. Samson, R. A. and J. I. Pitt. 2000. Integration of Modern Taxonomic Methods for Penicillium and Aspergilluus Classofication. Harwood Scientific Publishers. Amsterdam. Sangadji dan Etta, M. 2010. Metodologi Penelitian Pendektan Praktis dalam Penelitian. CV. Andi. Yogyakarta. Saragih, S. 2009. Jenis-jenis Fungi pada Beberapa Tingkat Kematangan Gambut. Skripsi. Fakultas Pertanian. Universitas Sumatra Utara. Semangun. 2001. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. Yogyakarta: Gajah Mada University Press. 754 hal. Sihombing, A. 2013. Gudang Pakan Ayam yang Baik. bptu-sembawa. http://www.bptu-sembawa.net/v1/data/download/20111210095235.pdf. Diakses pada tanggal 21 Juli 2013. Simon P. G. dan Rantan K. 2006. Pengaruh Fermentasi Menggunakan Beberapa Strain Trichoderma dan Masa Inkubasi Berbeda Terhadap Komposisi Kimiawi Bungkil Inti Sawit. Seminar Nasional Teknologi Peternakan dan Veteriner 2006. Loka Penelitian Kambing Potong. Galang. Sukma, T.A. 2010. Hidrolisis Pati dari Tepung Jalar Ungu (Ipomoea batatas Var. Ayamurasaki) Menggunakan Ekstrak Kasar Amilase dari Aspergillus niger sebagai Bahan Baku Pembuatan Wine.

Skripsi



60

Skripsi. Program Studi Teknologi Produksi Agrikultur. Fakultas Teknologi Agrikultur Universitas Brawijaya. hal. 23 Sumanti, D.M., C. Tjahjadi, M. Herudiyanto, dan T. Sukarti. 2003. Mempelajari Mekanisme Produksi Minyak Sel Tunggal dengan Sistem Fermentasi Padat pada Media Onggok-Ampas Tahu dengan Menggunakan Kapang Aspergillus terreus. Laporan penelitian dasar. Fakultas Pertanian. Universitas Padjadjaran. hal 10. Sumarsih, S. 2003. Diktat Kuliah Mikrobiologi Dasar. Jurusan Ilmu Tanah Fakultas Pertanian UPN “Veteran”. Yogyakarta. 33-34 hal. Suparjo. 2010. Teknik Penyimpanan Pakan: Kerusakan Bahan Pakan Selama Penyimpanan. Laboratorium Makanan Ternak Fakultas Peternakan Universitas Jambi. Jambi Suprijatna, E., U. Atmomarsono dan R. Kartasudjana. 2005. Ilmu Dasar Ternak Unggas. Penerbit Swadaya. Jakarta. Susi, S. 2011. Pengaruh Penambahan Molase pada Berbagai Media Jamur Tiram Putih (Pleurotus ostreatus). Fakultas Pertanian Universitas Sebelas Maret Surakarta. Surakarta Sutikno, E. 2011. Pembuatan pakan buatan ikan bandeng. Direktorat jenderal perikanan budidaya Balai besar pengembangan budidaya air payau. Jepara Tangendjaja, B. dan E. Wina. 2008. Limbah tanaman dan produk samping industri jagung untuk pakan. Dalam: Jagung: Teknik Produksi dan Pengembangan. hlm. 427 – 455. http://balitsereal.litbang.deptan.go.id/bjagung/duadua.pdf. 12 November 2012. Technologija H. 2014. Vrste: A. clavatus, A. versicolor, A. niger, A. flavus. MAGAZIN POSVEĆEN TEHNOLOGIJI PROIZVODNJE HRANE. PP 2. Tillman, A.D., H. Hartadi, S. Reksohadiprojo, S. Prawirokusumo dan S. Labdosukojo. 1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Cetakan Kelima. Gadjah Mada University Press. Yogyakarta. Zhao, K., W. Ping., Q. Li., S. Hao., T. Gao and D. Zhou. 2009. Aspergillus niger var. taxi, a New Species Variant of Taxol-Producing Fungus Isolated from Taxus Cuspidate in China. Journal Microbiology. (2009):1202–1207

Skripsi



61

LAMPIRAN

Lampiran 1. Prosedur Analisis Proksimat 

Analisis Bahan Kering Bebas Air (Bk)

Prosedur kerja : 1. Cawan porselen (alumunium) yang bersih dimasukkan ke dalam oven dengan suhu 105o C selama 1 jam. 2. Cawan dikeluarkan dari oven dan secepatnya dimasukkan ke dalam exicator. Setelah 10-15 menit cawan ditimbang (A gram). 3. Cawan diisi dengan sampel ± 5 gram dan ditimbang (berat cawan + sampel = B gram). Cawan yang berisi sampel dimasukkan ke dalam oven 105o C selama 24 jam. 4. Selanjutnya cawan dikeluarkan dari dalam oven dan secepatnya dimasukkan ke dalam exicator selama 10-15 menit, kemudian ditimbang (C gram). 5. Kadar bahan kering bebas air dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut :

Kadar bahan kering bebas air = C-A x 100% B-A

Skripsi



62

Lanjutan Lampiran 1. 

Analisis Protein Kasar (PK)

Prinsip : Kadar protein kasar adalah nilai hasil kali total nitrogen amonia dengan faktor 6,25 ( = 100/16 ) atau nilai hasil bagi total nitrogen amonia dengan faktor 16 % ( = 16/100 ). Faktor 16 % berasal dari asumsi bahwa protein mengandung nitrogen sebanyak 16 %. Bahan Kimia yang digunakan : Tablet Kjeldhal, H2SO4 pekat, NaOH 40 %, Asam Borat, indikator Metil merah, Brom cresol green, H2SO4 0,01 N dan aquadest. Alat yang digunakan : Labu Kjeldhal 100 cc , pemanas labu Keldhal, spatula , timbangan elektrik Sartorius, gelas ukur, labu ukur 250 cc, erlenmeyer 100 cc dan 1000 cc, serta seperangkat alat Marcam Steel. Cara kerja : 1. Timbang sampel seberat ± 0,5 gram di atas kertas yang telah diketahui beratnya, kemudian masukkan sampel ke dalam labu Kjeldhal. Tambahkan ke dalamnya tablet Kjeldhal (katalisator) sebanyak seperempat bagian kemudian 10 cc H2SO4 pekat. 2. Panaskan labu tersebut di atas pemanas Kjeldhal dalam almari asam. Pemanasan baru dihentikan jika sudah tidak berasap dan warna larutan menjadi hijau atau kuning jernih ( butuh waktu ± 1,5 jam ). Biarkan beberapa saat sampai labu menjadi dingin. 3. Masukkan larutan yang ada dalam labu tersebut ke dalam labu ukur dan encerkan dengan aquadest hingga volumenya menjadi 250 cc. Tuangkan larutan tersebut ke dalam erlenmeyer 300 cc dan kocoklah sampai homogen.

Skripsi



63

4. Siapkan erlenmeyer 100 cc yang diisi dengan 10 cc larutan Asam Borat dan dua tetes indikator metil merah serta tiga tetes Brom cresol green untuk menampung hasil penguapan. 5. Siapkan alat marcam Steel . Labu destilasi 2000 cc diisi dengan air 1000 cc dan diisi dengan beberapa butir batu didih. Taruh erlenmeyer 100 cc yang sudah disiapkan tadi pada rangkaian alat Marcam Steel. 6. Ambil sebanyak 10 cc larutan ( no. 3) dan masukkan ke dalam corong alat Marcam Steel. Tambahkan NaOH 40 % sebanyak 5 cc. 7. Panaskan labu destilasi dan tampunglah uap yang keluar dari alat Marcam Steel ke dalam erlenmeyer. Pemanasan dilakukan selama ± 5 menit terhitung setelah air mendidih atau sampai volume erlenmeyer telah mencapai 50 cc. 8. Titrasilah larutan yang telah bercampur uap tersebut dengan H2SO4 0,01 N sampai warna biru muda berubah menjadi hijau jernih. 9. Kadar protein kasar dapat dihitung dengan rumus sebagai berikut :

Protein kasar =

Keterangan: N adalah normolitas H2SO4 = 0,014 P adalah pengenceran 250 : 10 = 25

Kadar protein kasar berdasarkan bahan kering bebas air : Protein kasar berdasar BK =

Sumber : Setyono, dkk. (2007)

Skripsi



64

Lampiran 2.

Skripsi

Hasil Uji Proksimat Bahan Kering (BK) dan Protein Kasar (PK) Pakan yang diberi Volume Air yang Berbeda Sebelum Perlakuan Penyimpanan



65

Skripsi



66

Skripsi



67

Lampiran 3.

Perhitungan Perubahan Protein Kasar (PK).

cara menghitung protein kasar bebas air sebelum penyimpanan (PKa) % PKa

100% x % PK0

=

% BK0 Contoh:

100%

x 33,56% = 36.85%

91,07%

cara menghitung protein kasar bebas air setelah penyimpanan (PKb) % PKb

100% x % PK1

=

% BK1 Contoh

100% x 35,89% = 40.14% 89.42%

cara menghitung perubahan protein kasar (PK) PKc

= PKb

x 100%

PKa Contoh

40.14%

x 100% = 108,92%

36.85% Keterangan:

PKa : Protein kasar bebas air sebelum penyimpanan PKb : Protein kasar bebas air setelah penyimpanan PKc : Persentase perubahan PK setelah penyimpanan PK0 : PK sebelum penyimpanan PK1 : PK setelah penyimpanan BK0 : BK sebelum penyimpanan BK1 : BK setelah penyimpanan

Skripsi



68

Perla kuan

Skripsi

89.42

35.89

36.85

40.14

108.92

40.51

109.92

3

90.52

36.17

39.96

108.43

36.18

40.04

108.65

44.19

112.37

4

90.36 87.25

85.41

34.31

37.74

39.32

2

86.02

37.62

43.73

111.22

3

86.64

36.96

42.66

108.48

4

87.06

36.75

42.21

107.35

43.15

90.36

83.68

83.82

39.96

36.17

47.75

2

84.43

35.81

42.41

88.82

3

83.96

36.32

43.26

90.59

36.6

43.60

91.31

44.07

111.74

4

83.94 79.24

79.45

31.25

35.01

39.44

2

80.23

35.47

44.21

112.10

3

80.28

36.1

44.97

114.02

4

79.42

36.43

45.87

116.31

43.90

109.12

1

P4

PKc

36.61

1

P3

33.56

PKb

90.38

1

P2

91.07

PKa

2

1

P1

PK (%) PK0 PK1

Ulan gan 1

P0

BK (%) BK0 BK1

76.61

77.5

30.82

34.02

40.23

2

75.57

34.15

45.19

112.33

3

76.52

33.08

43.23

107.46

4

77.87

33.78

43.38

107.83



69

Lampiran 4. Analisa Statistik Data Perubahan Protein Kasar (PK %) Pakan Komersial dengan Penambahan Volume Air Berbeda Setelah Penyimpanan Selama 7 Hari. Perlakuan Ulangan

P0

P1

P2

P3

P4

1

108.92

112.37

90.36

111.74

109.12

2

109.92

111.22

88.82

112.1

112.33

3

108.43

108.48

90.59

114.02

107.46

4

108.65

107.35

91.31

116.31

107.83

Total

435.92

439.42

361.08

454.17

436.74

Rata-Rata

108.98

109.855

90.27

113.5425

109.185

0.66

2.33

1.05

2.10

2.21

SD

Descriptives Protein Kasar 95% Confidence Interval for Mean N

Skripsi

Mean

Std. Deviation

Std. Error

Lower Bound

Upper Bound

Minimum Maximum

kontrol

4 1.0898E2

.65793 .32896

107.9331

110.0269

108.43

109.92

5 ml

4 1.0985E2

2.33482 1.16741

106.1398

113.5702

107.35

112.37

10 ml

4 90.2700

1.04795 .52398

88.6025

91.9375

88.82

91.31

15 ml

4 1.1354E2

2.09896 1.04948

110.2026

116.8824

111.74

116.31

20 ml

4 1.0918E2

2.21411 1.10706

105.6619

112.7081

107.46

112.33

Total

20 1.0637E2

8.58093 1.91876

102.3505

110.3825

88.82

116.31



70

ANOVA Protein Kasar Sum of Squares Between Groups

Mean Square

1350.145

4

337.536

48.871

15

3.258

1399.016

19

Within Groups Total

df

F 103.600

Sig. .000

Post Hoc Tests Homogeneous Subsets Protein Kasar Duncan Subset for alpha = 0.05 Perlakuan

N

1

2

3

P2

4

kontrol

4

1.0898E2

P4

4

1.0918E2

P1

4

1.0985E2

P3

4

Sig.

90.2700

1.1354E2 1.000

.526

1.000

Means for groups in homogeneous subsets are displayed.

Skripsi



71

Perhitungan Manual Jarak Berganda Duncan. LSR = s.e x SSR s.e = = = 0.90 Beda Perlakuan

Rata-Rata

(x – P2) (x – P0) (x – P4) (x – P1)

P

5

3.31

2.99

4

3.25

2.93

3

3.16

2.85

2

3.01

2.72

SSR

LSR

(x)

Skripsi

P3

113.54 a

23.27*

4.56*

4.36*

P1

109.85 b

19.58*

0.87

0.66

P4

109.18 b

18.91*

0.20

P0

108.98 b

18.71*

P2

90.27 c

0

3.69*



72

Lampiran 4. Kunci Identifikasi Jamur

Pengamatan Jenis Jamur Makroskopis Aspergillus sp.

Fusarium sp

Penicillium sp

Skripsi

Warna koloni : putih, kuning, Coklat tua dan hijau Bentuk koloni: granular dan kompak

Warna koloni : putih pada bagian tengah dan jingga pada pinggir koloni Bentuk koloni : seperti kapas

Warna koloni : putih sampai kecoklatan Bentuk koloni : seperti kapas dan granular

Mikroskopis Konidia : Makro konidia dan terdapat vesikel pada ujungnya Hifa : tidak bersepta dan terdapat sterigmata Spora : disimpan dalam askospora Konidia : terbagi menjadi makrokonidia dan mikrokonidia, bentuk seperti bulan sabit Hifa : bersepta dan tidak berwarna (hialin) Spora : disimpan dalam klamidospora Konidia : Makro konidia dan berantai Hifa : bersepta dengan miselium bercabang dan terdapat sterigmata Spora : disimpan dalam konidiospora


ADLN Perpustakaan Universitas Airlangga

Recommend Documents