VARIASI SOMAKLONAL DAN SELEKSI IN VITRO ABAKA (Musa textilis Nee) UNTUK KETAHANAN TERHADAP LAYU FUSARIUM
RULLY DYAH PURWATI
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2007
SURAT PERNYATAAN MENGENAI DISERTASI Saya menyatakan dengan sebenar-benarnya bahwa disertasi saya berjudul “Variasi Somaklonal dan Seleksi In Vitro Abaka (Musa textilis Nee) untuk Ketahanan terhadap Layu Fusarium” adalah benar-benar asli karya saya dengan arahan komisi pembimbing, dan bukan hasil jiplakan atau tiruan dari tulisan siapapun serta belum diajukan dalam bentuk apapun kepada perguruan tinggi manapun.
Bogor, Januari 2007
Rully Dyah Purwati NIM G426010071
ii
ABSTRAK RULLY DYAH PURWATI. Variasi Somaklonal dan Seleksi In Vitro Abaka (Musa textilis Nee.) untuk Ketahanan terhadap Layu Fusarium. Dibimbing oleh EDI GUHARDJA, SAID HARRAN, SUDARSONO dan SUDJINDRO. Kendala utama yang dihadapi dalam pengembangan abaka di daerah tropis adalah adanya serangan penyakit layu yang disebabkan oleh jamur Fusarium oxysporum Schlecht.f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans dan dilaporkan telah menimbulkan kerusakan antara 5-65% dari pertanaman abaka di lapangan. Sejauh ini, penggunaan kultivar abaka yang resisten merupakan metode alternatif pengendalian F. oxysporum f.sp. cubense (Foc) yang efektif. Perakitan kultivar abaka resisten terhadap penyakit tersebut melalui hibridisasi atau seleksi sulit dilakukan karena sempit nya keragaman genetika. Pendekatan induksi keragaman genetika dengan menggunakan kombinasi perlakuan mutagenesis dan perbanyakan tanaman secara in vitro yang dilanjutkan dengan seleksi in vitro merupakan metode yang efisien untuk memperoleh kultivar abaka resisten terhadap penyakit layu Fusarium. Penggunaan mutagen EMS yang dikombinasikan dengan kultur in vitro meningkatkan tipe varian somaklonal diantara bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen. Keberadaan sejumlah fenotipe varian diantara bibit abaka hasil perlakuan EMS pada kalus embriogen mengindikasikan meningkatnya keragaman genetika bibit abaka. Dengan demikian, terbuka peluang penggunaan metode tersebut untuk mendapatkan karakter unggul tertentu seperti produktivitas dan kualitas serat tinggi, atau resistensi terhadap layu Fusarium, meskipun kebanyakan varian yang didapat bersifat negatif. Untuk itu perlu didukung dengan teknik seleksi in vitro menggunakan agens penyeleksi filtrat kultur (FK) Foc atau asam fusarat (AF). Dari hasil pengembangan teknik seleksi in vitro terhadap kalus embriogen abaka, dapat dibuktikan bahwa FK dari tiga isolat Foc dan toksin asam fusarat (AF) mampu menghambat proliferasi kalus embriogen dan tunas abaka. Seleksi in vitro dengan mengkulturkan kalus embriogen abaka yang sebelumnya diberi perlakuan 0.6% EMS dalam media selektif dengan penambahan 40% FK Foc isolat Banyuwangi atau 50 mg/l AF, diperoleh klon-klon varian abaka yang insensitif FK Foc sebanyak 326 tunas dari klon Tangongon dan 176 tunas dari klon Sangihe-1. Dari kalus embriogen abaka hasil seleksi in vitro dengan AF diperoleh tunas yang insensitif terhadap AF sebanyak 85 tunas varian abaka klon Tangongon dan 28 tunas varian klon Sangihe-1. Setelah tahapan aklimatisasi, pembibitan, dan evaluasi respon terhadap inokulasi Foc berhasil diperoleh 8 bibit untuk abaka klon Tangongon dan 8 bibit untuk abaka klon Sangihe-1 yang meningkat resistensinya terhadap infeksi Foc isolat Banyuwangi. Kata kunci: Keragaman somaklonal, seleksi in vitro, abaka, Fusarium oxysporum f.sp. cubense.
iii
ABSTRACT RULLY DYAH PURWATI. Somaclonal Variation and In Vitro Selection of Abaca (Musa textilis Nee) to Resistance against Fusarium Wilt. Supervised by EDI GUHARDJA, SAID HARRAN, SUDARSONO, and SUDJINDRO. Cultivation of abaca (Musa textilis Nee) in Indonesia is hampered by Fusarium wilt (Panama disease) due to infection of Fusarium oxysporum Schlecht f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans (Foc) and caused reduction of abaca fibre yield by as much as 5-65% in comercial abaca cultivation. The use of resistance Fusarium wilt abaca clones is the most efective method for overcoming the problem. However, development of F. oxysporum f.sp cubense (Foc) resistance abaca genotypes requires the availability of a wide abaca genetic variability. Induction of genetic variability through mutagenesis in combination with in vitro selection may be the most efficient method for developing the Foc resistant abaca clones. The use of EMS mutagen combined with in vitro culture improves type of somaclonal variants in abaca plantlets regenerated from embryogenic calli. The existence of somaclonal variants among regenerated abaca plantlet indicate the increased genetic variability of abaca; therefore, open the possibility of using embryogenic calli treated with EMS to obtain desirable mutant such as fiber productivity and quality, or Fusarium wilt resistance, even though most of variants have negative characters. For this reason, the use of in vitro selection using culture filtrates (CF) of Foc or fusaric acid is required. Culture filtrates of three Foc isolates and toxin fusaric acid (FA) inhibited proliferation of embriogenic calli and shoots of abaca. Following treatment by 0.6% EMS of abaca embriogenic calli, and cultured in selection medium containing 40% CF Foc isolate Banyuwangi or 50 mg/l FA, resulted in 326 shoots of abaca variants insensitive to Foc CF from clone Tangongon and 176 shoots from clone Sangihe-1. Meanwhile 85 shoots insensitive to FA of abaca variants clone Tangongon and 28 shoots of clone Sangihe-1 were resulted from in vitro selection using FA as selective agents. Following acclimatization and evaluation of responses to Foc inoculation resulted in 8 plantlets from clone Tangongon and 8 plantlets from clone Sangihe-1 with increase in resistance to Foc infection isolate Banyuwangi. Keywords : somaclonal variation, in vitro selection, abaca, Fusarium oxysporum f.sp. cubense.
iv
© Hak cipta milik Institut Pertanian Bogor, tahun 2007 Hak cipta dilindungi Dilarang mengutip dan memperbanyak tanpa izin tertulis dari Institut Pertanian Bogor, sebagian atau seluruhnya dalam bentuk apa pun, baik cetak, fotokopi, mikrofilm, dan sebagainya.
v
VARIASI SOMAKLONAL DAN SELEKSI IN VITRO ABAKA (Musa textilis Nee) UNTUK KETAHANAN TERHADAP LAYU FUSARIUM
Rully Dyah Purwati
Disertasi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Doktor pada Program Studi Biologi
SEKOLAH PASCASARJANA INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2007
vi
Judul Disertasi : Variasi Somaklonal dan Seleksi In Vitro Abaka (Musa textilis Nee) untuk Ketahanan terhadap Layu Fusarium Nama : Rully Dyah Purwati NRP : G426010071
Disetujui Komisi Pembimbing
Prof. Dr. Ir. Edi Guhardja, MSc Ketua
Dr. Ir. Said Harran, MSc Anggota
Prof. Dr. Ir. Sudarsono, MSc Anggota
Dr. Ir. Sudjindro, MS Anggota
Diketahui Ketua Program Studi Biologi
Dekan Sekolah Pascasarjana
Dr. Ir. Dedy Duryadi S, DEA
Prof. Dr. Ir. Khairil A. Notodiputro, MS
Tanggal Ujian: 20 Desember 2006
Tanggal Lulus:
vii
PRAKATA Puji syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT atas segala karunianya sehingga disertasi ini berhasil diselesaikan. Penelitian yang dilaksanakan sejak bulan Mei 2003 hingga Agustus 2006 berjudul: Variasi somaklonal dan seleksi in vitro abaka (Musa textilis Nee) untuk ketahanan terhadap layu Fusarium. Pemilihan judul tersebut bertujuan untuk memperoleh klon unggul baru abaka yang memiliki produktivitas dan kualitas serat tinggi, serta tahan terhadap penyakit layu fusarium. Penulisan disertasi ini bertujuan untuk memperoleh gelar doktor pada Program Studi Biologi. Terima kasih penulis sampaikan kepada Bapak Prof. Dr. Ir. Edi Guhardja, M.Sc selaku ketua komisi pembimbing, Bapak Dr. Ir. Said Harran, M.Sc, Bapak Prof. Dr. Ir. Sudarsono, M. Sc dan Bapak Dr. Ir. Sudjindro, MS selaku anggota komisi pembimbing, yang telah banyak memberikan saran dan bimbingan. Penulis juga menyampaikan terima kasih kepada Kepala Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian (Jakarta), Kepala Puslit Pengembangan Tanaman Perkebunan (Bogor), dan Kepala Balai Penelitian Tanaman Tembakau dan Serat (Malang) yang telah memberikan kesempatan dan izin studi untuk mengikuti program doktor (S3) pada sekolah Pascasarjana IPB. Berikutnya penulis menyampaikan terima kasih kepada Pemimpin Proyek Pengkajian Teknologi Pertanian Partisipatif (PAATP) yang telah memberikan dana studi S3. Terima kasih juga penulis sampaikan kepada Ibu Dr. Ika Mariska (APU) dari Balai Besar Bioteknologi dan Sumber Daya Genetik (Bogor) atas pemberian saran-saran dan kultur abaka klon Tangongon sebagai bahan penelitian. Tak lupa kepada seluruh rekan-rekan di Balittas, Malang yang telah membantu baik moril maup un materiil, penulis menyampaikan terima kasih. Kepada rekan-rekan di program studi Biologi dan Agronomi yang telah berteman, bersahabat dan berdiskusi selama studi di IPB, penulis menyampaikan terima kasih. Terima kasih yang tak terhingga penulis sampaikan kepada sdri. Aris Farida yang telah setia membantu dalam pelaksanaan penelitian. Ungkapan terima kasih juga disampaikan kepada suami dan anak-anak, serta seluruh keluarga yang telah memberikan do’a, semangat dan kasih sayangnya. Kepada semua pihak yang telah memberikan bantuan selama penelitian dan penyusunan disertasi, penulis menyampaikan terima kasih. Semoga disertasi ini bermanfaat bagi yang membutuhkan. Bogor, Januari 2007 Rully Dyah Purwati
viii
RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Tulungagung pada tanggal 2 Mei 1958 sebagai anak ke empat dari pasangan R.M. Soerjopoetro dan R.Ngt. Soekapti. Pendidikan sarjana ditempuh di Departemen Agronomi, jurusan Pemuliaan Tanaman, Fakultas Pertanian Universitas Gadjah Mada, Jogjakarta, lulus pada tahun 1983. Pendidikan S2 jurusan Bioteknologi Pertanian ditempuh pada tahun 1994-1996 di Murdoch University, Perth, Australia dengan gelar Master of Philosophy yang diperoleh tahun 1998. Beasiswa untuk pendidikan S2 berasal dari pemerintah Australia (Ausaid).Tahun 2001 penulis mendapat kesempatan untuk melanjutkan ke program doktor pada program studi Biologi, sekolah Pascasarjana IPB, dengan beasiswa yang diperoleh dari Proyek PAATP Badan LITBANG Pertanian. Sejak bulan Maret 1984 penulis bekerja sebagai tenaga honorer, terhitung mulai April 1985 diangkat menjadi Pegawai Negeri Sipil di Balai Penelitian Tanaman Tembakau dan Serat (Balittas). Sejumlah tugas yang pernah diembannya antara lain: Ketua Kelompok Peneliti Pemuliaan Balittas (19891992); Focal Point Scientist of IJO (International Jute Organisation) Germplasm Project (1989-1993); National Project Coordinator of IJO Project on Application of Biotechnology in the Improvement of Jute, Kenaf and Allied Fibres Phase II (1998-2000). Jenjang fungsional Peneliti Muda bidang Pemuliaan Tanaman diperoleh pada tahun 2000. Penulis telah berperan aktif dalam berbagai kegiatan penelitian dan pelepasan varietas unggul kenaf: KR 1, KR 2, KR 3, KR 4, KR 5, KR 6, KR 9, KR 11, KR 12 dan KR 13. Sampai saat ini telah memp ublikasikan sejumlah karya ilmiah di berbagai jurnal ilmiah, majalah semi ilmiah, atau prosiding pertemuan ilmiah di tingkat regional, nasional maupun internasional dalam bahasa Indonesia dan Inggris. Beberapa pelatihan yang pernah diikuti untuk meningkatkan keahlian antara lain: Pelatihan di bidang Pemuliaan Radiasi dan Mutasi (BATAN, Jakarta dan BARC, India), Kursus singkat Kultur Jaringan dan Fusi Sel (PAU, UGM, Jogjakarta), serta Pemuliaan Kenaf (IBFC, China).
ix
DAFTAR ISI Halaman DAFTAR TABEL.……………………………………………………..
xiv
DAFTAR GAMBAR ………………………………………………......
xvii
DAFTAR LAMPIRAN............................................................................
xxi
BAB I
PENDAHULUAN ……………………………………....... LATAR BELAKANG ……………………………………. PENDEKATAN MASALAH …………………………….. TUJUAN PENELITIAN ………………………………….. MANFAAT PENELITIAN………………………………... GARIS BESAR DISERTASI ……………………………..
1 1 4 6 7 7
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA………………………………....... TANAMAN ABAKA …………………………………...... 1 Biologi dan manfaatnya …………………………......... 2 Asal dan penyebarannya …………………………….... 3 Plasma nutfah dan pemuliaannya…………………....... PENYAKIT LAYU FUSARIUM…………………………. 1 Gejala yang ditimbulkan ………………………….. .... 2 Respon tanaman terhadap penyakit layu Fusarium ....... 3 Metabolit yang terdapat dalam ekstrak F. oxysporum.... 4 Asam Fusarat dan gejala yang ditimbulkannya ……..... KULTUR JARINGAN ABAKA …………………………. MUTASI DAN KERAGAMAN SOMAKLONAL……….. SELEKSI IN VITRO……………………………………….
14 14 14 14 15 16 17 18 18 19 20 21 23
BAB III
METODE INOKULASI DAN KERAPATAN KONIDIUM Fusarium oxysporum f.sp. cubense UNTUK MENGINFEKSI ABAKA………….................................... ABSTRAK ……………………………………………....... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ……………………………………....... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Isolat F. oxysporum f.sp cubense dan Bahan Tanaman........ Efektivitas Metode Inokulasi…………………………….... Pengaruh Kerapatan Konidia Foc terhadap Intensitas Penyakit….............................................................................
25 25 26 26 27 27 28 29
x
BAB IV
BAB V
Respon 10 Klon Abaka terhadap Infeksi Foc...………….... Skoring Gejala dan Intensitas Penyakit….……………....... Pengamatan Anatomis Akar….………………………….... HASIL …………………………………………………...... Efektivitas Metode Inokulasi………………….. ………..... Pengaruh Kerapatan Konidia Foc………………………..... Respon 10 klon abaka terhadap infeksi Foc……………..... PEMBAHASAN ………………………………………...... SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA...........................................................
29 30 30 31 31 31 33 33 37 39
INDUKSI MUTAN SOMAKLONAL DENGAN PERLAKUAN EMS PADA KULTUR KALUS EMBRIOGEN ABAKA (Musa textilis Nee)…............................................. ABSTRAK ………………………………………………... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ………………………………………... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Induksi dan proliferasi kalus embriogen abaka……..…….. Daya hambat EMS terhadap proliferasi kalus embriogen.... Keragaman fenotipik bibit abaka akibat perlakuan EMS..... HASIL …………………………………………………….. Induksi dan proliferasi kalus embriogen abaka…...……..... Daya hambat EMS terhadap proliferasi kalus embriogen.... Keragaman fenotipik bibit abaka akibat perlakuan EMS..... PEMBAHASAN ………………………………………….. SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA...........................................................
41 41 42 42 43 43 44 44 45 45 45 46 49 51 55
KERAGAAN DI LAPANGAN DARI KLON VARIAN ABAKA YANG DIINDUKSI DENGAN ETHYL METHANESULPHONATE (EMS) …………………….... ABSTRAK ………………………………………………... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ………………………………………... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Induksi varian dengan EMS dan regenerasi tanaman …...... Penanaman bibit abaka varian di lapangan ……………...... Karakter kualitatif tanaman di lapangan….……………..... Karakter kuantitatif tanaman di lapangan….……………... HASIL …………………………………………………….. Karakter kualitatif tanaman di lapangan …………………..
57 57 58 58 59 59 60 60 61 61 61
xi
Karakter kuantitatif tanaman di lapangan ……………….... PEMBAHASAN ………………………………………….. SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA...........................................................
BAB VI
BAB VII
SELEKSI IN VITRO UNTUK RESISTENSI ABAKA TERHADAP F. oxysporum f.sp. cubense MENGGUNAKAN FILTRAT KULTUR SEBAGAI AGENS PENYELEKSI……............................................................... ABSTRAK ………………………………………………... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ………………………………………... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Penyiapan FK Foc ……………………………………….... Daya hambat FK tiga isolat Foc……..…………………..... Seleksi in vitro dengan FK Foc……………………..…….. Regenerasi dan Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi in vitro..................................................................................... HASIL …………………………………………………….. Daya hambat FK tiga isolat Foc………………… ……….. Seleksi in vitro dengan FK Foc………………………….... Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi in vitro……………... PEMBAHASAN ………………………………………….. SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA........................................................... SELEKSI IN VITRO UNTUK RESISTENSI ABAKA TERHADAP F. oxysporum f.sp. cubense MENGGUNAKAN ASAM FUSARAT SEBAGAI AGENS PENYELEKSI………........................................................... ABSTRAK ………………………………………………... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ………………………………………... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Daya hambat AF ………………………………………….. Peningkatan keragaman abaka dengan EMS ……………... Seleksi in vitro dengan AF …………………....................... Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi in vitro……………... HASIL …………………………………………………….. Daya hambat AF ………………………………………….. Seleksi in vitro dengan AF ………………………………... Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi in vitro……………...
xii
62 66 67 71
73 73 74 74 75 75 76 76 77 78 78 79 80 81 83 85
88 88 89 89 91 91 92 92 93 93 93 95 96
PEMBAHASAN ………………………………………….. SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA........................................................... BAB VIII
RESISTENSI KLON ABAKA VARIAN SOMAKLONAL TERHADAP INFEKSI F. oxysporum f.sp cubense ............ ABSTRAK ………………………………………………... ABSTRACT ……………………………………………..... PENDAHULUAN ………………………………………... BAHAN DAN METODE ……………………………….... Populasi bibit abaka ……………………………………..... Inokulasi bibit abaka dengan Foc Bw…………………....... HASIL …………………………………………………….. Populasi bibit abaka……………………………………….. Respon individu bibit terhadap Foc BW………………….. Pengaruh panjang akar dan tinggi bibit awal terhadap resistensi................................................................................ Perbedaan respon klon yang berasal dari satu eksplan ….... PEMBAHASAN ………………………………………….. SIMPULAN ……………………………………………..... DAFTAR PUSTAKA...........................................................
96 99 101
104 104 105 105 107 107 107 108 108 110 112 112 113 115 118
BAB IX
PEMBAHASAN UMUM ………………………………....
120
BAB X
SIMPULAN DAN SARAN ……………………………..... SIMPULAN.......................................................................... SARAN.................................................................................
127 127 129
DAFTAR PUSTAKA …………………………………......
131
LAMPIRAN ………………………………….....................
140
xiii
DAFTAR TABEL Nomor
Judul
Halaman
1
Pengaruh metode inokulasi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi (Bw), Bojonegoro (Bn) atau Malang (Ml) terhadap persentase tanaman bergejala, rataan skor gejala kelayuan dan intensitas penyakit pada bibit abaka klon Tangongon, pada 30 hari sesudah inokulasi.
32
2
Pengaruh kerapatan konidia F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi yang digunakan untuk menginokulasi bibit abaka klon Tangongon (Tg), Sangihe-1 (Sh), atau UB-3 (Ub) terhadap persentase bibit bergejala, rataan skor gejala kelayuan (SGK), dan intensitas penyakit (IP).
32
3
Pengaruh kerapatan konidia F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi yang digunakan untuk menginokulasi bibit abaka klon Tangongon (Tg), Sangihe-1 (Sh), atau UB-3 (Ub) abaka klon Tangongon (Tg), Sangihe-1 (Sh), atau UB-3 (Ub) terhadap persentase bibit bergejala, rataan skor gejala nekrosis(SGN) pada bonggol bibit, dan intensitas penyakit (IP), pada 60 hari sesudah inokulasi.
33
4
Respons 10 klon abaka terhadap infeksi Fusarium oxysporum f.sp. Cubense isolat Banyuwangi. Pengamatan dilakukan pada 60 hari sesudah inokulasi.
34
5
Pengaruh perlakuan berbagai konsentrasi larutan mutagen EMS pada eksplan kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 terhadap persentase eksplan bertunas, jumlah tunas per eksplan, dan penurunan jumlah total tunas. Pengamatan dilakukan 5 bulan setelah perlakuan EMS.
46
6
Tipe dan persentase keragaman karakter kualitatif diantara populasi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan berbagai konsentrasi EMS pada 3 bulan setelah aklimatisasi.
47
7
Rataan berbagai karakter kuantitatif pada populasi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan berbagai konsentrasi EMS pada 3 bulan setelah aklimatisasi.
48
xiv
Nomor
Judul
Halaman
8
Tipe karakter kualitatif varian dan frekuensinya diantara populasi abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan di lapangan hingga 16 bulan.
62
9
Rataan karakter kuantitatif tanaman pada populasi abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan di lapangan hingga 16 bulan.
63
10
Karakter kuantitatif tanaman abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian dengan hasil serat per tanaman tertinggi untuk masing- masing perlakuan EMS 0.3%, 0.4%, 0.5% dan 0.6% dan perlakuan standar (EMS 0%).
65
11
Daya hambat filtrat kultur Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc isolat Banyuwangi [Bw], Malang [Ml], Bojonegoro [Bn]) terhadap pertumbuhan tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1. Pengamatan dilakukan 3 bulan setelah penanaman tunas abaka dalam media selektif.
79
12
Hasil seleksi in vitro kalus embriogen abaka yang telah diberi perlakuan EMS dalam filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi dengan konsentrasi 40% v/v (sub- letal), pada 6 bulan setelah tanam.
80
13
Persentase daun bergejala (DB), rataan skor gejala kerusakan (SGK), intensitas penyakit (IP), dan ketahanan klon varian abaka klon Tangongon (Tg) dan Sangihe-1 (Sh) hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan filtrat kultur Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Foc) isolat Banyuwangi, yang ditentukan berdasarkan hasil uji inokulasi daun dengan Foc isolat Banyuwangi dengan teknik detached leaf dual cultures.
81
14
Persentase kalus bertunas, jumlah tunas per eksplan, total tunas dan persentase penurunan tunas abaka klon Tangongon (Tg) dan Sangihe-1 (Sh) yang dipanen setelah ditanam dalam media selektif dengan penambahan berbagai konsentrasi asam fusarat. Pengamatan dilakukan 5 bulan setelah tanam.
94
xv
Nomor
Judul
Halaman
15
Persentase kematian tunas dan rataan skor kerusakan tunas abaka klon Tangongon yang ditanam dalam media selektif dengan penambahan berbagai konsentrasi asam fusarat (AF), pada 30, 60, dan 90 hari sesudah tanam.
95
16
Penghambatan pertumbuhan kalus embriogen dua klon abaka yang ditanam dalam media proliferasi tunas dengan atau tanpa penambahan asam fusarat (AF). Pengamatan dilakukan 6 bulan setelah tanam.
95
17
Persentase daun bergejala (PDB), rataan skor gejala kerusakan (SGK), intensitas penyakit (IP), dan ketahanan abaka klon Tango ngon (Tg) dari lapang dan klon hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan asam fusarat. Respons ketahanan ditentukan berdasarkan hasil uji inokulasi daun dengan F. oxysporum f. sp. cubense isolat Banyuwangi.
97
18
Respons bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen (Populasi KJ), dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS (Populasi EMS), dari EMS diikuti seleksi in vitro dalam filtrat kultur F. oxysporum f.sp. cubense (Populasi EMS+FK) atau dalam asam fusarat (Populasi EMS+AF) terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Pengamatan dilakukan 60 hari sesudah inokulasi.
108
19
Hubungan antara panjang akar dan tinggi bibit abaka awal dengan skor kerusakan bibit dan hari bibit mati setelah perlakuan inokulasi bibit abaka klon Tangongon dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca.
109
20
Hubungan antara panjang akar dan tinggi bibit abaka awal dengan skor kerusakan bibit (SKB) yang diamati 60 hari sesudah inokulasi dan hari bibit mati setelah perlakuan inokulasi bibit abaka klon Sangihe-1 dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca.
111
21
Keragaman respons terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense diantara bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe1 yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen. Pengamatan skor kerusakan bibit (SKB) dilakukan 60 hari sesudah inokulasi Foc Bw pada bibit yang diuji.
113
xvi
DAFTAR GAMBAR Nomor
Judul
Halaman
1
Diagram alir strategi penelitian dan keterkaitan antar percobaan.
13
2
(a) Biakan Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc) dalam media PDB; (b) Bibit abaka umur 2 bulan yang digunakan dalam penelitian dan siap diinokulasi dengan Foc; (c) Fenotipe bibit dengan gejala layu skor 0, (d) skor 1, (e) skor 2, (f) skor 3, dan (g) skor 4, sesuai dengan kriteria yang dikembangkan oleh Epp (1986); (h) Fotomikrograf penampang melintang akar abaka pada 30 hari sesudah inokulasi dengan Foc (perbesaran 200x) menunjukan adanya kerusakan jaringan penyusun akar yang ditunjukkan oleh warna coklat kehitaman pada jaringan epidermis dan korteks; (i) penampang melintang akar abaka sehat, yang tidak diinokulasi dengan Foc.
38
3
Eksplan kalus embriogen dan perkembangan embrio somatik abaka dengan atau tanpa perlakuan EMS. (a) Close up eksplan kalus embriogen dengan ukuran 3x3x3 mm3, (b) Embrio somatik abaka klon Tangongon (pembesaran 20x) berbentuk jantung (heart shape), (c) Embrio somatik abaka klon Sangihe-1 berbentuk globular (globular shape) pada fase polarisasi (pembesaran 10x), (d) proliferasi kalus embriogen tanpa perlakuan EMS menjadi tunas, (e) penghambatan proliferasi kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS 0.3% dan (f) yang diberi perlakuan EMS 0.5% - setelah 3 bulan dalam media proliferasi tunas.
52
4
Populasi bibit abaka varian, diregenerasikan dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan larutan mutagen EMS. (a) Representatif bibit abaka yang dievaluasi keragaman somaklonalnya, (b) Bibit varian dengan fenotipe kate (kerdil) dibandingkan dengan bibit normal hasil kultur jaringan (tanpa perlakuan EMS), (c) Bibit varian dengan fenotipe daun variegata (dv), (d) Bibit varian dengan fenotipe batang semu yang ramping (br), dan (e) bibit varian dengan pelepah berwarna ungukehitaman (ph). Pengamatan dilakukan pada saat bibit berumur 2 bulan sesudah aklimatisasi.
52
xvii
Nomor
Judul
Halaman
5
Jumlah klon bibit varian, diregenerasikan dari kalus embriogen abaka klon Tangongon yang telah diberi perlakuan EMS, berdasarkan nilai panjang, lebar, rasio panjang/lebar daun (rasio P/L), dan tinggi bibit abaka yang ditumbuhkan di rumah kaca. Tanda panah menunjukkan bibit varian untuk masing- masing fenotipe.
53
6
Jumlah klon bibit varian, diregenerasikan dari kalus embriogen abaka klon Sangihe-1 yang telah diberi perlakuan EMS, berdasarkan nilai panjang, lebar, rasio panjang/lebar daun (rasio P/L), dan tinggi bibit abaka yang ditumbuhkan di rumah kaca.
54
7
(a) Populasi tanaman abaka yang ditumbuhkan di lapangan, (b) daun variegata pada tanaman induk dan anakannya, (c) Tanaman abaka varian dengan fenotipe kate (kerdil), (d) daun berkerut dan tepi daun menggulung, (e) daun berkerut, (f) duduk daun berhadapan, seperti kipas, (g) Perbedaan warna serat antara klon Sangihe-1 dan Tangongon, (h) sel getah (gt) yang diamati diantara sel-sel dari jaringan kalus embriogen abaka klon Sangihe-1
68
8
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang serat, bobot serat dan bobot pelepah per tanaman serta tinggi batang semu tanaman di lapangan diantara populasi tanaman abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%).
69
9
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah bobot dan kekuatan serat, jumlah pelepah per tanaman serta tinggi batang semu tanaman di lapangan diantara populasi tanaman abaka klon Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%).
70
xviii
Nomor
Judul
Halaman
10
Representasi tunas abaka dengan skoring gejala kerusakan tunas 0 hingga 4 (berdasarkan kriteria yang dikembangkan oleh Epp 1987) setelah ditanam dalam media selektif dengan penambahan filtrat kultur kultur Fusarium oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. (FK 0%) atau dalam media selektif dengan FK Foc 10%, 20%, 30%,40%, 50%, atau 60%.
84
11
Daya hambat filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc) isolat Banyuwangi terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka klon Tangongon. Perkembangan tunas dalam media tanpa FK
84
12
Seleksi in vitro kalus embriogen abaka dalam media yang mengandung FK Foc isolat Banyuwangi. Kalus embriogen abaka klon Tangongon (a) mengalami proliferasi tunas dalam media tanpa FK, (b) sebagian besar membusuk dan dorman, atau membusuk dan memproliferasikan (c) tunas, (d) tunas roset, serta (e) kalus embriogen yang insensitif FK dalam media selektif dengan penambahan 40% FK Foc isolat Bw.
85
13
Representasi tunas abaka dengan skoring gejala kerusakan tunas 0 hingga 4 (berdasarkan kriteria yang dikembangkan oleh Epp 1987) setelah ditanam dalam media selektif dengan penambahan AF.
99
14
Daya hambat berbagai konsentrasi asam fusarat (AF) terhadap pertumbuhan dan proliferasi kalus embriogen abaka klon Tangongon (atas) dan Sangihe-1 (bawah). Foto diambil saat 5 bulan setelah penanaman ke dalam media selektif dengan penambahan AF
100
15
Daya hambat berbagai konsentrasi asam fusarat (AF) terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas klon Tangongon, pada saat 3 bulan setelah penanaman ke dalam media selektif dengan penambahan AF.
100
16
Perkembangan eksplan kalus embriogen abaka setelah periode seleksi in vitro dalam media yang mengandung asam fusarat (AF). Kalus embriogen abaka (a) mengalami proliferasi tunas dalam media tanpa AF, (b) membusuk, (c) membusuk dan memproliferasikan kalus embriogen yang insensitif AF, dan (d) memproliferasikan tunas ruset yang insensitif AF, dalam media selektif dengan penambahan AF 50 mg/l.
101
xix
Nomor
Judul
Halaman
17
Fenotipe bibit abaka dengan skor gejala layu (a) skor 0, (b) skor 1, (c) skor 2, (d) skor 3, dan (e) skor 4, sesuai dengan kriteria yang dikembangkan oleh Epp (1987). (f) Representatif populasi bibit abaka yang dievaluasi responsnya terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca. (g) bibit abaka yang mati dan yang tetap bertahan hidup setelah diinokulasi dengan Foc. (h) variasi respons bibit abaka yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc: fenotipe tidak mengalami kerusakan, sebagian mengering, hingga bibit mati.
116
18
Sebaran respons berdasarkan skor kerusakan bibit pada pengamatan 60 hari setelah diinokulasi dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Bibit abaka Populasi KJ (kultur jaringan) diregenerasikan dari kalus embriogen, Populasi EMS – kalus embriogen dengan perlakuan EMS, Populasi EMS+FK – kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti dengan seleksi in vitro dalam filtrat kultur Foc dan Populasi EMS+AF – kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti dengan seleksi in vitro dalam asam fusarat.
117
19
Pengaruh tinggi bibit awal (TBA) dan panjang akar awal (PAA) terhadap skor kerusakan bibit (SKB) pada pengamatan 30 dan 60 hari sesudah inokulasi (hsi) bibit abaka dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Total bibit yang dievaluasi sebanyak 99 bibit yang terdiri atas gabungan populasi kultur jaringan, EMS, EMS+FK, dan EMS+AF dari abaka klon Tangongon dan Sangihe-1.
118
xx
DAFTAR LAMPIRAN Nomor
Judul
Halaman
1
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang daun, lebar daun dan rasio panjang/lebar daun tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam.
140
2
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah diameter batang, bobot batang dan jumlah anakan tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setela h tanam.
141
3
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah jumlah pelepah, kekuatan serat, rendemen serat dari batang, dan dari pelepah tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embrio gen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam.
142
4
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang daun, lebar daun, dan rasio panjang/lebar daun tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam
143
5
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah diameter dan bobot batang, serta jumlah anakan tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam
144
6
Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah bobot pelepah, panjang serat, rendemen serat dari batang dan dari pelepah tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam.
145
xxi
BAB I
PENDAHULUAN LATAR BELAKANG Abaka (Musa textilis Nee) merupakan tanaman sejenis pisang penghasil serat. Abaka memiliki daun dan batang yang lebih ramping, dan ujung daunnya lebih runcing dibandingkan pisang. Pangkal daun membulat dan salah satu sisi lamina lebih pendek dibandingkan sisi lainnya (Berger 1969; Tabora dan Carlos 1978).Tepi lamina daun berwarna hitam sehingga mudah dibedakan dengan daun pisang. Tinggi tanaman berkisar antara 3-7.5 meter, buahnya berisi biji kecilkecil, buah berwarna hijau saat masak tetapi kemudian berubah menjadi kuning pucat dan akhirnya hitam (Dempsey 1963; Tabora dan Carlos 1978). Serat abaka dihasilkan dari pelepah daun yang membentuk batang semu, serat tersebut memiliki nilai ekonomis, karena dapat digunakan sebagai bahan pembuatan tali-temali dan bahan baku kertas berkualitas tinggi (Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Pulp abaka sangat baik digunakan untuk bahan baku kertas tipis seperti kertas saring, kertas dasar stensil, kertas sigaret, kantong teh celup, kertas pembungkus, kertas dinding, kertas dokumen dan kertas uang. Selain itu serat abaka juga digunakan sebagai bahan tekstil, kain jok, pembungkus kabel, popok bayi (pampers) dan bahan peredam suara pada pesawat terbang (Triyanto et al. 1982; Wardiyati 1999). Kebutuhan serat abaka di pasar dunia untuk berbagai industri cukup tinggi, terutama untuk memenuhi permintaan negara-negara maju seperti: Jepang, Amerika Serikat, Inggris, Jerman, dan Italia. Potensi pasar internasional tercatat sebesar 600 000 ton serat abaka per tahun. Philippina sebagai negara terbesar penghasil serat, baru dapat menghasilkan sekitar 80 000 ton atau 13% dan diikuti oleh Equador sekitar 10 000 ton atau 2% dari kebutuhan serat dunia (BI 2003; Aragon 2000). Keadaan ini memberikan peluang untuk mengembangkan abaka di Indonesia, dan secara agronomis penanaman abaka di Indonesia sangat sesuai karena abaka adalah tanaman yang berasal dari daerah tropis. Namun menurut Heliyanto et al. (1995) tersedianya varietas unggul, paket budidaya yang tepat
2
guna, dan teknik pasca panen yang efisien diperlukan untuk mendukung pengembangan industri abaka. Kendala utama yang dihadapi dalam pengembangan abaka di daerah tropis adalah adanya serangan penyakit layu yang disebabkan oleh jamur Fusarium oxysporum f.sp. cubense. Penyakit layu Fusarium, yang juga dikenal sebagai Panama disease, merupakan salah satu penyakit yang sangat merugikan pada tanaman pisang, termasuk abaka yang ditanam di daerah tropika. Penyakit yang disebabkan oleh cendawan Fusarium oxysporum Schlecht.f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans ini telah menginfeksi pertanaman pisang di Asia, Afrika, Australia, dan daerah tropika di Amerika sejak 50 tahun yang lalu (Hwang & Ko 2004). Di Leyte-Filipina F. oxysporum f.sp. cubense (Foc) dilaporkan telah menimbulkan kerusakan antara 5-65% dari pertanaman abaka di lapangan (Bastasa & Baliad 2005). Di Indonesia, Foc diketahui telah menyerang tanaman pisang hingga seluas 3 300 ha di 3 provinsi di Sumatera (Nasir & Jumjunidang 2003). Hal tersebut menjadi kendala pengembangan abaka, tanaman serat untuk pembuatan kertas berkualitas tinggi, bahan industri, dan kerajinan tangan (Hilario 2006) di Indonesia, mengingat genotipe abaka yang resisten terhadap cendawan Foc belum tersedia. Pengendalian Foc di lapangan diketahui sulit dilakukan karena cendawan ini mampu bertahan dalam waktu yang lama diantara sisa-sisa tanaman yang terinfeksi dalam bentuk miselia atau di tanah dalam bentuk klamidospora (Agrios 1997). Dengan demikian, pengendalian penyakit layu Fusarium sebaiknya dilakukan secara terpadu dengan penggunaan bibit sehat dari genotipe abaka yang resisten, penggunaan mikroba antagonis, penanaman gulma berguna dan penggunaan pestisida nabati (Djatnika et al. 2003; Di Pietro et al. 2003). Meskipun telah diuji, efektivitas mikroba antagonis untuk pengendalian Foc masih terbatas, efektivitasnya di lapang masih belum diketahui, dan belum ada mikroba antagonis yang dapat diandalkan untuk secara tuntas mengendalikan Foc (Bastasa & Baliad 2005). Sejauh ini, penggunaan kultivar abaka yang resisten merupakan metode alternatif pengendalian Foc yang efektif (Ploetz 2000). Berbagai teknik dapat digunakan untuk memperoleh kultivar yang resisten terhadap penyakit yang disebabkan oleh Fusarium oxysporum
f.sp. cubense
3
antara lain dengan hibridisasi, seleksi, mutasi dan lain- lain. Penggunaan teknik seleksi in vitro merupakan salah satu cara yang efisien untuk memperoleh kultivar abaka resisten terhadap penyakit layu Fusarium tersebut. Namun sebelum dilakukan seleksi in vitro, keragaman genetika abaka perlu ditingkatkan lebih dulu karena abaka termasuk dalam genus Musa spp. yang diperbanyak secara vegetatif sehingga mempunyai keragaman genetika rendah sebagai akibat tidak terjadinya hibridisasi seksual (Roux 2004). Tanaman dengan karakteristik seperti Musa spp. dapat ditingkatkan keragaman genetikanya melalui induksi variasi somaklonal, sebagaimana yang telah dilakukan pada tanaman apel, nanas, kentang, ubi jalar, ubi kayu, bunga mawar, tulip, krisan, dan anyelir (Ahloowalia & Maluszynski 2001). Induksi varian somaklonal dapat menghasilkan karakter varian defisiensi klorofil, peningkatan atau penurunan kuantitas dan kualitas hasil, serta ketahanan penyakit sebagai akibat perubahan gen tunggal atau perubahan (penggandaan dan rearrangement) di tingkat kromosom (Ahloowalia 1986). Pendekatan
induksi
mutan/varian
dengan
menggunakan
kombinasi
perlakuan mutagenesis dan perbanyakan tanaman secara in vitro merupakan metode yang dapat diterapkan untuk tanaman yang keragaman genetiknya rendah dan diperbanyakan secara vegetatif (klonal) seperti abaka. Perlakuan mutagenesis secara fisik (dengan menggunakan sinar UV, sinar X dan sinar γ) atau secara kimiawi (menggunakan senyawa mutagen colchicine, dietil sulfat [DES], etilenimin [EI], nitroso etil- [NEU] atau nitroso metil urea [NMU|, serta etil metansulfonat [EMS]) telah digunakan untuk meningkatkan frekuensi terjadinya mutasi. Senyawa EMS paling banyak digunakan sebagai mutagen kimia karena mudah dibeli dan tidak bersifat mutagenik setelah dihidrolisis, serta terbukti merupakan mutagen yang efektif untuk berbagai jenis tanaman (van Harten 1998). Senyawa EMS telah berhasil digunakan untuk menginduksi mutan pada tanaman tembakau (Gichner et al. 2001), kubis-kubisan (Sakamoto et al. 2002, Spasibionek 2006), pisang (Roux 2004), dan kenaf (Arumingtyas & Indriyani 2005). Untuk mengidentifikasi mutan/varian yang resisten terhadap infeksi Foc, kultur in vitro yang telah diberi perlakuan mutagenesis diseleksi secara in vitro dalam media selektif dengan penambahan asam fusarat (AF) dan filtrat kultur
4
Foc. Salah satu syarat penggunaan seleksi in vitro untuk menapis varian somaklonal dengan sifat unggul tertentu adalah tersedianya metode kultur jaringan yang dapat menghasilkan banyak plantlet dan mampu menginduksi variasi somaklonal diantara populasi plantlet yang diregenerasikan. Metode baku regenerasi plantlet klonal abaka dalam jumlah besar secara in vitro telah tersedia (Mariska & Suk madjaja 2003) tetapi kemampuannya untuk menginduksi variasi somaklonal secara kuantitatif belum dievaluasi. Dengan tersedianya metode untuk regenerasi plantlet, agens penyeleksi yang sesuai dan metode yang efektif, kegiatan seleksi in vitro dapat dilakukan untuk menghasilkan kultivar yang memiliki keunggulan sifat kuantitatif atau kualitatif tertentu dan resisten terhadap penyakit layu Fusarium.
PENDEKATAN MASALAH Perbaikan klon abaka yang resisten terhadap penyakit layu yang disebabkan oleh Foc dan berdaya hasil tinggi dapat dilakukan dengan melakukan induksi keragaman genetik yang dilanjutkan dengan seleksi in vitro dengan menggunakan agens penyeleksi tertentu. Evaluasi dan identifikasi terhadap hasil seleksi in vitro tersebut berupa karakter resisten terhadap penyakit layu Fusarium perlu dilakukan untuk pengambilan keputusan selanjutnya. Hal penting dalam pemuliaan abaka adalah tersedianya keragaman genetika yang luas, sehingga kegiatan penapisan untuk memperoleh genotipe yang diinginkan seperti resisten terhadap Foc dapat dilakukan dengan mudah. Namun abaka termasuk dalam genus Musa spp. yang diperbanyak secara vegetatif sehingga mempunyai keragaman genetika rendah sebagai akibat tidak terjadinya hibridisasi seksual (Roux 2004). Oleh karena itu, sebelum dilakukan penapisan maupun perakitan klon abaka untuk memperoleh klon unggul yang tahan terhadap infeksi Foc, perlu dilakukan kegiatan peningkatan keragaman genetika. Peningkatan keragaman genetika yang dilakukan dalam penelitian ini adalah induksi keragaman somaklonal karena tanaman dengan karakteristik seperti Musa spp. dapat ditingkatkan keragaman genetikanya melalui induksi variasi somaklonal, sebagaimana yang telah dilakukan pada tanaman apel, nanas, kentang, ubi jalar, ubi kayu, bunga mawar, tulip, krisan, dan anyelir (Ahloowalia
5
& Maluszynski 2001). Untuk memperoleh hasil yang maksimal, induksi keragaman somaklonal pada kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 diberi perlakuan mutagen kimia EMS sebelum dikulturkan secara in vitro. Pendekatan induksi mutan/varian dengan menggunakan kombinasi perlakuan mutagenesis dan perbanyakan tanaman secara in vitro merupakan metode yang dapat diterapkan untuk tanaman yang keragaman genetikanya rendah dan diperbanyak secara vegetatif (klonal) seperti abaka. Induksi varian somaklonal dengan EMS mampu menghasilkan berbagai karakter varian sebagai akibat perubahan gen tunggal atau perubahan (penggandaan dan rearrangement) di tingkat kromosom (Ahloowalia 1986). Untuk mengidentifikasi mutan/varian yang resisten terhadap infeksi Foc, kultur in vitro yang telah diberi perlakuan mutagenesis diseleksi secara in vitro dalam media selektif dengan penambahan filtrat kultur Foc atau asam fusarat (AF). Penggunaan filtrat kultur Foc dan asam fusarat untuk seleksi in vitro berdasarkan laporan bahwa Fusarium oxysporum f.sp. cubense merupakan patoge n yang menyerang abaka dan dalam proses infeksi mensekresikan non-hostspecific toxin yang dapat membantu proses infeksi. Dalam penelitian ini digunakan dua macam agens penyeleksi tersebut untuk membandingkan mana yang lebih efisien dan efektif. Kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dengan perlakuan EMS 0.6% dikulturkan dalam media seleksi dengan penambahan FK Foc atau AF. Tunas abaka yang diproliferasikan dari kalus embriogen
yang
dikulturkan
dalam
media
selektif
tersebut
merupakan
tunas/varia n yang insensitif FK Foc atau AF. Bibit abaka yang diregenerasikan dari tunas insensitif FK Foc atau AF hasil seleksi in vitro diidentifikasi resistensinya terhadap infeksi Foc. Hal ini untuk mengetahui apakah tunas yang insensitif FK Foc atau AF tersebut merupakan tunas varian atau tunas kimera. Tunas kimera yang tersusun dari jaringan varian (resisten) dan jaringan normal (rentan) dapat bertahan dalam media selektif yang mengandung FK Foc atau AF sehingga terjadi salah identifikasi hasil seleksi in vitro. Sel/jaringan kimera yang escaped dari seleksi tidak 100% terdiri atas sel/jaringan varian yang insensitif terhadap FK Foc atau AF tetapi juga terdapat sel/jaringan normal. Pada tahapan proliferasi, sel/jaringan yang escaped dari seleksi juga akan menghasilkan bibit
6
yang rentan terhadap infeksi Foc. Pada tahapan proliferasi dalam media tanpa penambahan FK Foc, tunas baru dapat berkembang dari sel/jaringan normal sehingga menghasilkan bibit dengan fenotipe rentan terhadap infeksi Foc (bibit escaped). Untuk memperoleh metode yang akurat pada identifikasi atau penapisan varian yang resisten terhadap infeksi Foc, juga dilakukan serangkaian percobaan pengembangan metode inokulasi dan kerapatan konidia Foc yang sesuai untuk mengevaluasi resistensi klon-klon abaka terhadap infeksi Foc. Dalam percobaan ini dievaluasi metode inokulasi 1 (INO-1): penanaman bibit abaka dalam media tanam yang diinokulasi dengan Foc. Metode INO-2: penanaman bibit abaka yang akarnya telah dipotong ± 1 cm di bagian ujung dan direndam selama dua jam dalam suspensi konidia Foc (106 konidia/ml) pada media tanah steril. Metode INO-3: penanaman bibit abaka dalam media tana h steril dan penyiraman dengan 50 ml suspensi konidia Foc (106 konidia/ml). Bibit abaka yang tidak diinokulasi Foc digunakan sebagai kontrol. Kerapatan konidia Foc isolat Banyuwangi yang dievaluasi terdiri atas: 105 konidia/ml (KON-1) dan 106 konidia/ml (KON-2). Bibit abaka yang tidak diinokulasi (KON-0) digunakan sebagai kontrol. Sebelum digunakan untuk identifikasi varian abaka hasil seleksi in vitro, metode inokulasi dan kerapatan konidia yang dapat menimbulkan gejala penyakit paling parah digunakan untuk pengujian respon sepuluh genotipe abaka yaitu klon Banjar, BL Manado,
Cilacap,
Cirebon,
Layahan,
MbB,
Sangihe -1,
Sangihe -2,
Tangongon, dan UB 3. Varian hasil seleksi in vitro yang resisten terhadap infeksi Foc berdasarkan evaluasi dengan menggunakan metode ini dikonservasi sebagai materi genetik yang tahan terhadap penyakit layu Fusarium, dan dapat digunakan untuk pengembangan abaka di Indonesia terutama pada daerah-daerah endemis Fusarium.
TUJUAN PENELITIAN Penelitian yang dilakukan bertujuan untuk (1) mengevaluasi efektivitas metoda inokulasi Foc dan kerapatan konidia Foc untuk menginduksi timbulnya infeksi Foc pada bibit abaka, serta mengevaluasi respons sepuluh genotipe abaka terhadap infeksi Foc, (2) meningkatkan keragaman genetika sel/jaringan eksplan
7
abaka yang diseleksi dengan perlakuan EMS (3) mengevaluasi efektivitas senyawa EMS untuk meningkatkan keragaman somaklonal plantlet abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS, (4) mengevaluasi tipe dan frekuensi keragaman karakter kualitatif dan kuantitatif yang timbul diantara populasi tanaman mutan abaka yang didapat dari perlakuan EMS, (5) mengevaluasi daya hambat filtrat kultur (FK) Foc isolat Banyuwangi dan asam fusarat (AF) terhadap proliferasi dan pertumbuhan tunas abaka, (6) menentukan konsentrasi sub- letal FK Foc isolat Banyuwangi dan AF, yaitu konsentrasi yang mempunyai daya hambat paling tinggi terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka, (7) meregenerasikan sel/jaringan varian yang toleran terhadap FK Foc isolat Banyuwangi dan AF menjadi plantlet abaka, dan (8) mengevaluasi respons plantlet yang didapat dari hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc. Target yang dicapai dalam penelitian ini adalah diperolehnya klon unggul abaka baru yang mempunyai sifat kualitatif/kuantitatif tertentu yang diinginkan dan resisten terhadap infeksi Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc).
MANFAAT PENELITIAN Peluang ekspor serat abaka sangat besar, mengingat penghasil serat abaka di dunia hanya negara Philippina dan Equador. Namun pengembangan abaka di Indonesia masih mengalami beberapa kendala antara lain belum tersedianya klon unggul, terutama yang tahan terhadap penyakit layu Fusarium. Dengan diperolehnya klon unggul abaka yang memiliki produktivitas dan kualitas serat tinggi serta tahan terhadap penyakit layu Fusarium, diharapkan dapat meningkatkan luas areal pengembangan abaka di Indonesia sehingga berdampak positif terhadap peningkatan produktivitas serat abaka baik di tingkat petani/pengusaha maupun nasional.
GARIS BESAR DISERTASI Disertasi
ini
disusun
berdasarkan
pemikiran
bahwa
keberhasilan
pengembangan tanaman abaka resisten terhadap penyakit layu Fusarium yang disebabkan oleh cendawan Foc dan berdaya hasil tinggi melalui mutagenesis dan
8
seleksi in vitro akan lebih tinggi apabila: (1) tersedia metode seleksi resistensi terhadap infeksi Foc yang efektif dan akurat untuk tanaman abaka, (2) tersedia metode induksi variasi somaklonal untuk menghasilkan keragaman genetik yang luas pada varian abaka dengan karakter kuantitatif dan kualitatif yang berbeda dengan bibit/tanaman standar, (3) tersedia metode seleksi in vitro yang efektif dan akurat untuk menghasilkan tunas yang insensitif terhadap agens penyeleksi dan resisten terhadap penyakit layu Fusarium. Pengembangan klon abaka tahan penyakit dan unggul dalam sifat kualitatif atau kuantitatif tertentu sulit dilakukan karena keragaman genetika plasma nutfah abaka di Indonesia masih sempit (Hadipoentyanti et al. 2001) dan belum tersedia teknik hibridisasi yang tepat. Oleh karena itu, perlu dilakukan serangkaian percobaan induksi mutan somaklonal yang dilanjutkan dengan seleksi in vitro dengan menggunakan FK Foc dan AF sebagai agens penyeleksi. Namun untuk mengevaluasi bibit/tanaman abaka hasil seleksi in vitro tersebut diperlukan metode penapisan (screening) yang efektif. Percobaan awal dilakukan untuk memperoleh metode inokulasi dan kerapatan konidia Foc yang efektif untuk pengujian resistensi bibit abaka hasil kultur in vitro terhadap infeksi Foc. Percobaan respon abaka terhadap infeksi Foc dilakukan terhadap sepuluh genotipe abaka yang belum diketahui sifat resistensinya. Hal ini untuk membuktikan keefektifan metode inokulasi dan kerapatan konidia yang diperoleh dari percobaan sebelumnya. Induksi mutan somaklonal dilakukan dengan menggunakan mutagen kimia etil metansulfonat (EMS) terhadap kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1. Evaluasi keragaman kuantitatif dan kualitatif dilakukan: (1) pada fase pertumbuhan vegetatif yaitu saat bibit abaka umur 3 bulan setelah aklimatisasi (sebelum ditanam di lapangan); (2) pada fase pertumbuhan generatif yaitu saat tanaman abaka berumur 16 bulan setelah ditanam di lapangan. Hasil evaluasi terhadap keragaman kuantitatif dan kualitatif
abaka hasil perlakuan EMS
digunakan untuk mengembangkan metode induksi varian yang dikombinasikan dengan seleksi in vitro. Seleksi in vitro dengan menggunakan agens penyeleksi FK Foc dan AF dilakukan setelah kalus embriogen diberi perlakuan dengan EMS. Metode seleksi
9
in vitro dikembangkan setelah diketahui konsentrasi sub-letal FK Foc dan AF dari percobaan sebelumnya. Pada bagian akhir penelitian ini, tunas insensitif terhadap FK Foc dan AF yang dihasilkan dari seleksi in vitro dievaluasi resistensinya terhadap infeksi Foc. Hasil yang diperoleh selanjutnya dibahas pada BAB III sampai dengan BAB VIII. BAB III membahas “Keefektifan Metode Inokulasi dan
Kerapatan
Konidia
Fusarium oxysporum
f.sp. cubense
untuk
Menginfeksi Abaka” dan tulisan ini telah disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi dan sedang dalam proses review untuk diterbitkan di jurnal HAYATI Institut Pertanian Bogor. Percobaan-percobaan yang dilakukan pada pembahasan tersebut ditujukan untuk menentukan keefektifan metode inokulasi serta kerapatan konidia Foc untuk menginfeksi bibit abaka hasil kultur in vitro. Hasil percobaan ini digunakan untuk pengujian respon sepuluh genotipe abaka terhadap infeksi Foc dan selanjutnya akan digunakan sebagai metode penapisan klon-klon yang diperoleh dari mutagenesis dan seleksi in vitro pada percobaan berikutnya. Peubah yang diukur dalam percobaan ini adalah persentase tanaman bergejala, rataan skor gejala kelayuan, intensitas penyakit pada bibit abaka, dan resistensi terhadap infeksi Foc. Salah satu upaya untuk meningkatkan keragaman genetika tanaman adalah melakukan mutasi. Mutasi yang dilakukan secara in vitro dengan menggunakan mutagen kimia EMS menghasilkan tunas-tunas mutan somaklonal yang memiliki keragaman sifat kuantitatif dan kualitatif. Dari hasil penelitian diketahui bahwa konsentrasi EMS berkorelasi dengan sifat kuantitatif dan kualitatif bibit abaka varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen hasil perlakuan dengan berbagai konsentrasi EMS. Peubah yang diamati pada percobaan ini meliputi persentase eksplan bertunas, jumlah tunas per eksplan, dan penurunan jumlah total tunas pada 5 bulan setelah perlakuan EMS; tipe dan persentase keragaman karakter kualitatif, serta berbagai karakter kualitatif diantara populasi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan berbagai konsentrasi EMS pada umur 3 bulan setelah aklimatisasi. Hasil percobaan tentang hubungan antara perlakuan EMS dengan proliferasi kalus embriogen, sifat kuantitatif dan kualitatif pada fase pertumbuhan vegetatif bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen yang diberi
10
perlakuan dengan EMS ditulis pada BAB IV, dengan judul “Induksi Mutan Somaklonal dengan Perlakuan EMS pada Kultur Kalus Embriogen Abaka (Musa textilis Nee)”. Bagian dari disertasi ini telah disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi dan sedang dalam proses review untuk diterbitkan di jurnal HAYATI, Institut Pertanian Bogor. Meskipun pada fase pertumbuhan vegetatif telah dilaporkan ada sejumlah varian pada karakter kualitatif dan kuantitatif yang dapat digunakan sebagai indikator terjadinya mutasi somaklonal, namun evaluasi dilanjutkan hingga fase pertumbuhan generatif untuk mengetahui konsentrasi EMS yang dapat menghasilkan keragaman somaklonal pada tanaman abaka, dan mengevaluasi keragaman karakter kualitatif dan kuantitatif yang muncul pada tanaman yang diregenerasikan dari kalus embriogen yang diberi perlakuan dengan EMS pada fase generatif, terutama karakter produktivitas dan kualitas serat. Pengujian dilakukan dengan mengamati tipe dan persentase keragaman kualitatif, karakter kuantitatif yang diamati antara lain: panjang daun, lebar daun, ratio p:l, tinggi tanaman, lingkar batang, berat batang, jumlah pelepah, berat pelepah, berat serat kering, panjang serat kering, kekuatan serat, rendemen serat dari batang, rendemen serat dari pelepah, jumlah anakan, jumlah tanaman produktif. Hasil percobaan tersebut ditulis pada BAB V dengan judul “Keragaan di Lapangan dari Klon Varian Abaka yang Diinduksi dengan Ethyl Methanesulphonate (EMS)” Bagian dari disertasi ini telah disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi HAYATI, Institut Pertanian Bogor. Berdasarkan evaluasi terhadap percobaan induksi mutan somaklonal kalus embriogen abaka dengan perlakuan EMS terhadap varian karakter kualitatif dan kuantitatif telah diperoleh individu- individu yang unggul, namun belum diperoleh klon yang resisten terhadap penyakit layu Fusarium. Sedangkan penyakit layu Fusarium merupakan salah satu kendala dalam pengembangan abaka yang sulit dikendalikan. Untuk mengatasi hal tersebut dilakukan penelitian seleksi in vitro dengan menggunakan filtrat kultur (FK) Foc isolat Banyuwangi sebagai agens penyeleksi. Penggunaan FK Foc sebagai agens penyeleksi diharapkan mampu menghasilkan varian abaka dari klon Tangongon dan Sangihe-1 yang insensitif terhadap Foc dan resisten terhadap infeksi Foc berdasarkan hasil uji inokulasi
11
daun dengan Foc isolat Banyuwangi menggunakan teknik detached leaf dual cultures. Pengamatan pada seleksi in vitro dilakukan terhadap berbagai peubah yaitu daya hambat filtrat kultur terhadap pertumbuhan tunas abaka, eksplan yang bertunas dan dorman, rataan jumlah tunas/eksplan, jumlah tunas, penurunan jumlah tunas akibat FK. Pengamatan pada pengujian resistensi varian abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan filtrat kultur Foc isolat Banyuwangi meliputi: persentase daun bergejala, rataan skor gejala kerusakan, intensitas penyakit, dan ketahanan klon-klon tersebut. Hasil percobaan penggunaan FK Foc untuk seleksi in vitro abaka ditulis pada BAB VI dengan judul “Seleksi In Vitro untuk Resistensi Abaka terhadap F. oxysporum f.sp. cubense Menggunakan Filtrat Kultur sebagai Agens Penyeleksi”. Bagian dari disertasi ini telah disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi dan sedang dalam proses review untuk diterbitkan di jurnal HAYATI, Institut Pertanian Bogor. Dari percobaan sebelumnya diketahui bahwa penggunaan FK Foc sebagai agens penyeleksi dalam seleksi in vitro untuk memperoleh klon varian abaka tahan terhadap Foc cukup efektif. Dari hasil uji inokulasi daun dengan Foc isolat Banyuwangi menggunakan teknik detached leaf dual cultures diperoleh empat bibit varian yang diduga imun, empat – resisten, dan tiga – agak resisten. Namun demikian, untuk membandingkan metode seleksi in vitro mana yang lebih efektif dilakukan percobaan seleksi in vitro dengan menggunakan asam fusarat sebagai agens penyeleksi. Asam fusarat (AF) merupakan toksin murni yang diproduksi oleh cendawan Fusarium spp. yang mempunyai peranan besar dalam infeksi patogen pada tanaman. Seperti halnya pada penggunaan FK Foc, penggunaan AF sebagai agens penye leksi diharapkan mampu menghasilkan varian abaka dari klon Tangongon dan Sangihe-1 yang insensitif terhadap AF dan resisten terhadap infeksi Foc berdasarkan hasil uji inokulasi daun dengan Foc isolat Banyuwangi menggunakan teknik detached leaf dual cultures. Peubah-peubah yang diamati juga sama dengan pada percobaan sebelumnya yaitu: daya hambat AF terhadap pertumbuhan tunas abaka, eksplan yang bertunas dan dorman, rataan jumlah tunas/eksplan, jumlah tunas, penurunan jumlah tunas akibat AF. Pengamatan pada pengujian resistensi varian abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 hasil seleksi in
12
vitro dalam media dengan penambahan AF meliputi: persentase daun bergejala, rataan skor gejala kerusakan, intensitas penyakit, dan ketahanan klon-klon tersebut. Hasil percobaan ini ditulis pada BAB VII dengan judul “Seleksi In Vitro untuk Resistensi Abaka terhadap F. oxysporum f.sp. cubense Menggunakan Asam Fusarat sebagai Agens Penyeleksi”. Bagian dari disertasi ini akan disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi AGROTROPIKA, Universitas Lampung. Pada bagian akhir dari penelitian ini dilakukan serangkaian percobaan untuk mengetahui resistensi bibit varian abaka hasil kultur in vitro, mutagenesis dengan EMS, dan mutagenesis dengan EMS yang dilanjutkan dengan seleksi in vitro dengan menggunakan FK Foc dan AF, terhadap infeksi Foc. Metode inokulasi yang digunakan untuk pengujian resistensi ini merupakan hasil percobaan pada BAB III. Pengamatan terhadap beberapa peubah yaitu: panjang akar bibit sebelum inokulasi, tinggi bib it sebelum dan sesudah inokulasi, skor gejala kelayuan, dan pada hari ke berapa bibit mati. Dari hasil analisis tersebut diperoleh 21 dan 2 klon masing- masing hasil seleksi in vitro dengan agens penyeleksi FK Foc dan AF, 20 klon hasil induksi mutasi dengan EMS, dan 2 klon hasil kultur jaringan (in vitro) yang resisten terhadap infeksi Foc. Dengan demikian strategi pemuliaan untuk resistensi terhadap penyakit layu yang disebabkan oleh F. oxysporum f.sp cubense dapat dilakukan secara in vitro. Hasil percobaan dan pengujian resistensi untuk klon-klon tersebut ditulis pada BAB VIII dengan judul “Resistensi Klon Abaka Varian Somaklonal terhadap Infeksi Fusarium oxysporum f.sp cubense”. Bagian dari disertasi ini akan disubmit ke jurnal ilmiah nasional terakreditasi HAYATI, Institut Pertanian Bogor. Diagram alir strategi penelitian untuk menghasilkan klon abaka unggul baru yang mempunyai sifat kualitatif atau kuantitatif diinginkan dan resisten terhadap infeksi Fusarium oxysporum f.sp. cubense disajikan pada Gambar 1.
13
Plasma Nutfah Abaka
Regenerasi dan aklimatisasi plantlet dari kultur in vitro
Seleksi in vitro pada media dengan FK Foc atau AF ? konsentrasi sub- letal
Mutagenesis in vitro dengan EMS – induksi keragaman genetika
PENGUJIAN: Metode Inokulasi Kerapatan Konidia ? metode screening
Seleksi in vitro pada media dengan FK Foc atau AF ? ES insensitif
Regenerasi dan aklimatisasi plantlet hasil mutagenesis
Regenerasi dan aklimatisasi plantlet hasil seleksi in vitro
Evaluasi keragaman fenotipe bibit di rumah kaca
Pengujian resistensi dengan inokulasi Foc di rumah kaca
Evaluasi keragaman fenotipe tanaman di lapangan
Klon abaka resisten terhadap Foc
Klon abaka dengan sifat unggul (kualitatif & kuantitatif) tertentu
Resistensi 10 Genotipe Abaka
Klon Abaka Unggul Baru
Gambar 1. Diagram alir strategi penelitian dan keterkaitan antar percobaan
14
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA TANAMAN ABAKA 1. Biologi dan manfaatnya Abaka (Musa textilis Nee) merupakan tanaman sejenis pisang penghasil serat termasuk dalam genus: Musa, famili: Musaceae, ordo: Zingiberales. Abaka memiliki daun dan batang yang lebih ramping, dan ujung daunnya lebih runcing dibandingkan pisang. Pangkal daun membulat dan salah satu sisi lamina lebih pendek dibandingkan sisi lainnya (Berger 1969; Tabora dan Carlos 1978).Tepi lamina daun berwarna hitam sehingga mudah dibedakan dengan daun pisang. Tinggi tanaman berkisar antara 3-7.5 meter, buahnya berisi biji kecil-kecil, buah berwarna hijau saat masak tetapi kemudian berubah menjadi kuning pucat dan akhirnya hitam (Dempsey 1963; Tabora dan Carlos 1978). Awalnya serat abaka yang dihasilkan dari pelepah daun yang membentuk batang semu, banyak digunakan sebagai tali-temali, terutama kapal dan bahan untuk industri pancing karena tahan terhadap kelembaban, air laut dan air tawar (Purseglove 1983). Selain itu serat abaka dapat ditenun dan digunakan sebagai bahan pakaian yang sejuk dipakai, untuk kain jok, popok bayi (pampers), pembungkus kabel listrik dan peredam suara kapal terbang (Heyne 1987; Duryatmo dan Dasoeki 1999). Pulp abaka sangat baik digunakan untuk bahan baku kertas tipis seperti kertas dokumen, surat berharga, kertas uang, kertas kemasan (Triyanto et al. 1982), kertas saring, kertas dasar stensil, kertas sigaret, kertas teh celup, kertas pembungkus daging/sosis, dan kertas lensa (Aragon 2000). Penggunaan serat abaka untuk kertas uang peso di Filipina dimulai tahun 2000, sedangkan di Jepang sudah sejak lama dilakukan (Hilario 2006).
2. Asal dan penyebarannya Abaka berasal dari Filipina (Nur 1957, Villordon 2003), daerah penanaman terbesar adalah semenanjung Bicol yang terletak di bagian selatan pulau Luzon; Leyte dan Samar pada kepulauan Visayas; dan propinsi Davao pada kepulauan
15
Mindanao. Karena abaka merupakan tanaman asli Filipina, maka disebut juga sebagai ’Manila Hemp’ dan pada tahun 1690 disebut sebagai Musa mindanensis (Montgomery 1954). Usaha penyebaran abaka sudah dimulai sejak 1811 tetapi selalu mengalami kegagalan karena introduksi menggunakan biji, kondisi pertumb uhan tidak sesuai, dan kurangnya pengetahuan tentang budidaya (Purseglove 1983).
Tahun 1924-1925 bibit abaka berhasil diintroduksi ke
Panama, Costa Rica, Guatemala, dan Honduras, kemudian menyebar dan dapat tumbuh baik di India, Ceylon, Kepulauan Andaman, Bengal, Hawai, Kepulauan Salomon, Jamaica, Tinidad, Sabah, Sumatra, Malaya dan New Guinea (Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Pengembangan abaka di Indonesia dimulai pada tahun 1853 di Minahasa, tetapi pada saat itu keuntungan yang diperoleh dari budidaya abaka sangat rendah. Tahun 1905 mulai dikembangkan di Jawa dan Sumatera Selatan dan tumbuhnya tidak mengecewakan. Pada tahun 1912 dilaporkan bahwa terdapat tiga perkebunan besar di Besuki, Jawa Timur dan pada tahun tersebut dapat mengekspor 200 ton serat, kemudian produktivitas menurun dan keuntungannya terlampau kecil, sehingga perkebunan tersebut tidak berkembang (Heyne 1987; Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Salah satu perkebunan abaka di Indonesia yang masih tersisa antara lain di Bayulor, Banyuwangi seluas ± 400 ha.
3. Plasma nutfah dan pemuliaannya Plasma nutfah abaka di Philippina mencapai sekitar 192 aksesi (Villareal 1988), tetapi hanya 20 diantaranya yang memiliki nilai komersial tinggi. Tiga varietas utama yang banyak ditanam adalah: Tangongon, Bungulanon, dan Maguindanao (Dempsey 1963; Purseglove 1983; Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Di Indonesia, koleksi plasma nutfah yang terdapat di Balittas, hanya 37 aksesi, sepuluh diantaranya telah dianalisis
keragaman genetiknya oleh
Hadipoentyanti et al. (2001), hasil analisis menunjukkan bahwa 10 aksesi tersebut memiliki hubungan kekerabatan dekat. Pemuliaan abaka terutama ditujukan untuk memperoleh varietas tahan terhadap penyakit atau hama. Penyakit yang banyak ditemukan pada pertanaman abaka adalah penyakit yang disebabkan oleh virus bunchy top, mosaik, jamur Fusarium oxysporum Schlecht. f.sp cubensis (E.F.Sm) Synder & Hansen, bakteri
16
Pseudomonas
solanacearum,
serta
nematoda
Radopholus
simulus
dan
Pratylenchus coffeae. Hama utama yang banyak dijumpai adalah: aphids, ulat Cosmopolites sordidus (Germ), hama pemakan daun Thosea sinensis (Purseglove, 1983; Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Persilangan antara abaka (M. textilis, 2n=20, kualitas serat baik) dengan pacol (M. balbisiana, 2n=22, tahan bunchy top dan mosaik), telah menghasilkan hibrid yang memiliki sifat tahan terhadap penyakit tersebut dan kualitas pulp paling tinggi. Hibrid tersebut telah dikembangkan secara besar-besaran di Filipina sebagai agro- industri (Villareal 1988). Varietas unggul abaka diharapkan mempunyai ciri-ciri: batang tinggi besar (minimal tinggi 6 m dan diameter batang bawah 20 cm), perakaran dalam dengan jumlah akar >150 pada setiap tanaman dewasa, memiliki >20 pelepah daun per batang, kandungan serat minimum 2.5 persen, dapat beradaptasi pada kondisi tanah dan lingkungan yang berbeda, resisten terhadap kekeringan dan banjir, masa produktif lama, resisten terhadap hama dan penyakit, memiliki kualitas serat baik (Purseglove 1983).
PENYAKIT LAYU FUSARIUM Penyakit layu Fusarium, yang juga dikenal sebagai Panama disease, merupakan salah satu penyakit yang sangat merugikan pada tanaman pisang, termasuk abaka (Musa textilis Nee) yang ditanam di daerah tropika. Penyakit yang disebabkan oleh cendawan Fusarium oxysporum Schlecht.f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans ini telah menginfeksi pertanaman pisang di Asia, Afrika, Australia, dan daerah tropika di Amerika sejak 50 tahun yang lalu (Hwang & Ko 2004). Cendawan tersebut dapat bertahan lama di dalam tanah dalam sruktur klamidospora pada sisa-sisa tanaman dan merupakan sumber inokulum yang dapat menyerang abaka dan tanaman lainnya. Penyakit ini dapat menular karena perakaran tanaman sehat berhubungan dengan spora yang dilepaskan oleh tanaman sakit yang ada di sekitarnya, dapat juga melalui bibit dan tanah yang terinfeksi (Agrios 1997). Cendawan ini menyebar cepat pada daerah yang kelengasan tanahnya tinggi, drainasenya buruk, tanah remah dan masam. Penyebaran patogen terutama melalui bibit, tanah yang terinfeksi, sisa tanaman sakit, air ya ng mengalir, alat-alat pertanian, dan alat transportasi (Hutagalung
17
2002). Sampai saat ini telah dikenal 4 ras F. oxysporum f.sp. cubense, tiga diantaranya merupakan patogen utama pada pisang (Wibowo et al. 2001).
1. Gejala yang ditimbulkan Fusarium menghasilkan sejumlah senyawa toksik yang dapat berpengaruh terhadap kesehatan manusia dan produktivitas hewan (Ahmed et al. 1991). Tanaman yang terinfeksi menunjukkan gejala awal berupa bercak kekuningan atau garis-garis pada bagian bawah daun pertama atau kedua. Warna kekuningan akan berkembang di sepanjang tepi daun dan menyebar ke arah tulang daun kemudian coklat dan mengering. Apabila terjadi serangan berat tangkai daun disekeliling batang semu patah, kadang-kadang lapisan luar batang semu juga membelah dimulai dari permukaan tanah (Ploetz et al. 1994; Damayanti 2002). Gejala yang paling khas dari penyakit ini adalah gejala dalam yaitu apabila pangkal batang dibelah membujur akan terlihat garis-garis coklat atau hitam menuju ke semua arah, dari bonggol ke pangkal dan tangkai daun melalui jaringan pembuluh. Gejala infeksi lanjut akan terlihat pada bonggol, dimana bonggol menjadi berwarna merah gelap atau merah kecoklatan. Tunas yang tumbuh pada bagian bonggol yang terserang akan berwarna kuning atau merah (Hutagalung 2002). Patogen yang ada di tanah akan masuk ke akar melalui lenti sel akar, kemudian berkembang sangat cepat disepanjang akar dan menghasilkan miselium. Miselium kemudian masuk ke dalam pembuluh xilem melalui noktah dan menghasilkan mikrokonidium. Spora ini terbawa oleh aliran zat cair ke atas, terhenti dan tersangkut pada dinding sel jaringan pembuluh xilem dan berkecambah membentuk miselium sehingga menyumbat aliran zat cair. Polisakarida dan enzim yang dihasilkan patogen ini dapat menyebabkan kerusakan pada sel-sel jaringan xilem membentuk gel dan gum (massa koloidal) dan menyebabkan penyumbatan pembuluh. Adanya sekresi berupa massa koloidal serta mengkerutnya sel-sel pembuluh menyebabkan aliran zat cair menjadi terhambat sehingga terjadi proses penurunan laju aliran air dalam pembuluh dan akhirnya menimbulkan kelayuan (Agrios 1997).
18
2. Respon tanaman terhadap penyakit layu Fusarium Respon tanaman terhadap penyakit pada tahap infeksi awal adalah dengan membentuk jaringan yang memblokir dan membatasi invasi seperti: lignin, suberin dan endodermis, serta mensintesis senyawa anti mikroba yang disebut ‘phytoalexin’ (Scala et al., 1985). Adanya auksin menginduksi pembentukan gel, mempercepat pertumbuhan dan meningkatkan respirasi sehingga terbentuk tilosis pada xilem dan memblokir patogen untuk tidak menyebar lebih jauh. Selain itu, pada varietas yang resisten terhadap Fusarium terdapat konjugasi antara asam fusarat dengan glycine hingga 25%. Konjugasi ini menyebabkan toksin asam fusarat menjadi tidak aktif sehingga efisien untuk menghindari layu (Harborne, 1988). Hasil penelitian pada tanaman pisang menunjukkan bahwa aktivitas peroksidase meningkat secara cepat saat diinfeksi dengan Fusarium, hal ini merupakan bukti bahwa enzim peroksidase berperan dalam respon pertahanan. Peran enzim peroksidase dalam pertahanan tanaman adalah mengoksidasi senyawa fenolik dan meningkatkan laju proliferasi senyawa mirip lignin yang berfungsi sebagai barier. Kecepatan dan besarnya aktivitas mekanisme pertahanan mengekspresikan adanya resistensi. Pada tanaman yang resisten terdapat korelasi positif antara aktivitas enzim peroksidase yang tinggi dengan ketahanan terhadap F. oxysporum f.sp cubense (Morpurgo et al. 1994). Dengan demikian aktivitas enzim peroksidase dapat digunakan sebagai parameter untuk membedakan klon pisang yang rentan dan toleran terhadap F. oxysporum f.sp cubense.
3. Metabolit yang terdapat dalam ekstrak F. oxysporum Metabolit yang disintesis F. oxysporum antara lain zat pengatur tumbuh dari golongan auksin, toksin, dan enzim pektolitik. Produksi metabolit sekunder selama kultur Fusarium spp. tergantung pada bentuk spesiesialis dan kondisi kultur (misal: temperatur), konsentrasi inokulum dan umur kultur (Durbin 1983). Auksin yang disintesis oleh F. oxysporum adalah asam indol-3-asetat (IAA). Kandungan IAA yang meningkat menyebabkan peningkatan plastisitas dinding sel sehingga pektin, selulosa, dan protein penyusun dinding sel lebih mudah dilewati dan terjadi perombakan oleh enzim-enzim yang disekresi patogen (Agrios
19
1997). IAA yang meningkat juga dapat menghambat lignifikasi pada jaringan sehingga mudah dihancurkan oleh enzim yang dikeluarkan patogen. Selain itu kandungan IAA yang tinggi menyebabkan peningkatan laju respirasi pada jaringan yang terinfeksi dan mempengaruhi permeabilitas sel sehingga terjadi peningkatan transpirasi. Beberapa toksin yang dapat diisolasi dari kultur Fusarium spp. antara lain: asam fusarat (5-n-butil asam pikolinat) dari beberapa spesies Fusarium spp. yang menyebabkan layu pada pisang, kapas, tomat; lycomarasmin dari F. oxysporum f.sp. lycopersici; dan eniatins dari beberapa spesies Fusarium spp. (Jin et al. 1996). Enzim-enzim pektolitik yang dihasilkan oleh F. oxysporum memecah bahan pektin pada dinding sel pembuluh kayu dan masuk ke dalam dinding parenkhim xilem (Toyoda et al. 1984a). Sebagai contoh enzim pektinmetilesterase dapat memotong metil pada rantai pektin dan menghasilkan asam pektat. Enzim depolimerase memecah rantai asam pektat menjadi poligalakturonida. Fragmenfragmen asam pektat masuk ke dalam pembuluh kayu dan membentuk massa koloidal yang dapat menyumbat pembuluh. Berkas pembuluh menjadi coklat karena fenol yang dilepaskan dan mengalami polimerisasi menjadi melanin yang berwarna coklat oleh sistem fenol oksidase tumbuhan inang. Warna coklat ini merupakan ciri khas pada penyakit layu yang disebabkan oleh F. oxysporum (Agrios 1997).
4. Asam Fusarat dan gejala yang ditimbulkannya Secara kimia asam fusarat disebut asam piridine karboksilat (5-n-butil asam pikolinat) dengan formulasi C10 H13 O2 N dan mempunyai berat molekul 179. Asam fusarat murni mepunyai titik lebur 98-100o C, tetapi bila mengandung asam dehidrofusarat mempunyai titik lebur di atas 109o C (Damayanti 2002). Umumnya asam fusarat terdapat bersama senyawa la in yaitu asam dehidrofusarat dan asam 10-hidroksi fusarat. Menurut Torssell (1983) asam fusarat merupakan campuran biogenesis dari asam amino dan poliketida. Asam fusarat dihasilkan oleh banyak spesies dari genus Fusarium dan merupakan toksin yang tidak spesifik pada inang tertentu, dapat menimbulkan gejala layu pada beberapa spesies tanaman yang berbeda (Matsumoto et al 1995).
20
Asam fusarat juga merupakan ‘chelator’ logam, produksi asam fusarat secara in vitro dipengaruhi oleh ketersediaan ion logam, terutama zinc (Harborne 1988) dan rasio C dan N dalam media (Remotti 1996). Asam fusarat dapat mempengaruhi fungsi organel, protein atau enzim tertentu dari sel tanaman seperti: menghambat oksidasi sitokrom dan respirasi pada mitokondria sehingga menurunkan ATP yang akhirnya menyebabkan layu; menghambat enzim kristalin katalase dalam pembentukan dinding sel sehingga mengganggu permeabilitas membran sel yang dapat mengakibatkan kebocoran sel; menurunkan aktivitas oksidasi fenol dan polifenol yang memegang peran dalam pertahanan tanaman terhadap patogen (Jin et al. 1996; Remotti 1996). Asam fusarat telah banyak digunakan dalam seleksi in vitro untuk memperoleh tanaman tahan penyakit layu antara lain pada tomat, asparagus, gandum, bunga lily, gladiol, pisang, nanas dan sebagainya. (Toyoda et al. 1984b; Morpurgo et al. 1994; Matsumoto et al. 1995; Remotti et al. 1997; Borras et al. 2001).
KULTUR JARINGAN ABAKA Kultur jaringan abaka telah berkembang baik di Filipina dan terbukti dapat mempercepat propagasi hingga 1 000 - 1 500 kali dibandingkan dengan cara konvensional. Eksplan yang digunakan adalah tunas pucuk (shoot tip), dan media untuk induksi tunas adalah MS dengan penambahan hormon BA dan air kelapa. Dengan teknik kultur jaringan diperoleh 20 000 – 30 000 plantlet/tunas pucuk/tahun,
sementara
dari
tanaman
di
lapang
hanya
diperoleh
20
bibit/anakan/tahun. Plantlet yang diperoleh sangat mudah berakar pada media yang mengandung karbon aktif dan IBA. Hasil pengujian 30 varietas abaka menunjukkan bahwa produksi tunas melalui kultur jaringan tergantung pada varietas (Del-Rosario dan Zamora 1988). Di Indonesia, pengadaan bibit abaka melalui kultur jaringan juga telah banyak dilakukan. Sumber eksplan yang umum digunakan adalah mata tunas atau tunas pucuk yang berasal dari tanaman di lapang. Setelah disterilisasi kemudian ditanam pada media MS yang diberi tambahan BAP (5 mg/l) untuk penggandaan tunas, sedang untuk media perakaran digunakan MS dengan penambahan IBA atau IAA (0.5 mg/l). Produksi plantlet mencapai 28 000 planlet/mata tunas atau
21
tunas pucuk/tahun (Hilman dan Toruan-Mathius 2001). Hasil penelitian Mante dan Tepper (1983) menunjukkan bahwa penambahan BAP pada media inisiasi tunas lebih efektif dibandingkan zat pengatur tumbuh lain, misal: kinetin dan 2iP. Selain itu, pembentukan tunas pada eksplan yang berasal dari tanaman muda (umur 2-6 bulan) lebih cepat dan konsisten dibandingkan tanaman tua (umur 12 bulan), dan yang paling menentukan keberhasilan kultur jaringan abaka adalah intensitas cahaya yang cukup (1 000 – 3 000 lux). Penambahan asam askorbat (100 mg/l) pada media MS yang mengandung BAP (5 mg/l) dapat mengurangi proses pencoklatan (browning) akibat adanya phenol pada jaringan (Damayanti 2002).
MUTASI DAN KERAGAMAN SOMAKLONAL Mutasi secara umum dibedakan dalam dua kelompok, yaitu mutasi alami dan mutasi buatan. Mutasi alami terjadi secara spontan dan berkaitan dengan faktor- faktor lingkungan. Mutasi alami terjadi secara lambat, tetapi berlangsung secara
terus- menerus
sehingga
memerlukan
waktu
yang
lama
untuk
mengakumulasi mutan dalam populasi alami (Damayanti 2002). Mutasi buatan adalah mutasi yang diinduksi yang digunakan sebagai salah satu cara untuk menimbulkan keragaman genetik. Mutasi dapat diinduksi dengan cara fisik menggunakan radiasi atau dengan cara kimia menggunakan senyawa yang bersifat mutagen (van Harten 1998), dan akhir-akhir ini penggunaan elemen transposon yang dikenal dengan mutagenesis insersi dan kultur jaringan yang menimbulkan keragaman somaklonal dinyatakan sebagai teknik biologi unt uk menghasilkan mutasi (Bird & Neuffer 1987). Mutasi buatan telah memberikan kontribusi nyata terhadap perbaikan tanaman di dunia (Maluszynski et al. 1995). Radiasi yang umum digunakan adalah sinar-x atau gamma, sedangkan mutasi kimia antara lain menggunakan colchicin, dietil sulfat (DES), etilenimin (EI), nitroso etil urea, nitroso metil urea, dan etilmetan sulfonat (EMS). EMS termasuk senyawa alkil yang mempunyai potensi tinggi sebagai mutagen yang efisien untuk tanaman tinggi. EMS merupakan mutagen kimia yang paling banyak digunakan karena mudah dibeli, harganya murah dan tidak meninggalkan racun setelah hidrolisat (van Harten 1998). Frekuensi mutasi tinggi diperoleh pada
22
kacang tanah yang diberi perlakuan EMS dengan konsentrasi 0.25 – 0.5% (Gowda et al. 1996). Pada tanaman barley, EMS menimbulkan laju mutasi hingga 4-5 kali lebih tinggi dibandingkan dengan radiasi sinar-x, terutama untuk mutasi klorofil (van Harten 1998). Kombinasi antara EMS (0,3%) dan dimetil sulfonat atau DMSO (4%) telah berhasil meningkatkan frekuensi mutasi pada tanaman pisang (Matsumoto et al. 1995). Keragaman somaklonal merupakan keragaman genetik dari tanaman yang dihasilkan melalui berbagai macam kultur jaringan (Semal & Lepoivre 1990). Keragaman somaklonal dapat berasal dari keragaman genetik yang sebelumnya sudah ada (pre-existing) pada eksplan dan keragaman yang diinduksi selama fase kultur jaringan (Skirvin et al. 1994). Keragaman yang timbul akibat induksi pada kultur in vitro lebih sering terjadi dan mudah diamati, karena varian diperoleh dari tempat yang terbatas dan dalam waktu singkat (Ahloowalia 1986). Keragaman somaklonal terdiri dari dua tipe yaitu: heritabel dan epigenetik. Keragaman heritabel adalah keragaman yang stabil dan diwariskan melalui siklus seksual maupun propagasi akseksual yang berulang, sementara keragaman epigenetik tidak stabil meskipun dipropagasi secara aseksual (Skirvin et al. 1994). Keragaman somaklonal dapat berupa defisiensi klorofil, mutasi gen tunggal, poliploidi, perubahan kromosom, modifikasi hasil, kualitas, ketahanan penyakit, atau kadang-kadang muncul keragaman yang sebelumnya tidak pernah ada di alam (Ahloowalia 1986). Adapun faktor-faktor yang mempengaruhi terbentuknya keragaman somaklonal pada kultur jaringan adalah: fase pertumbuhan awal, genotipe, zat pengatur tumbuh, sumber jaringan eksplan (Karp 1995) dan protokol atau prosedur regenerasi plantlet (Semal & Lepoivre 1990). Keragaman somaklonal memiliki potensi untuk perbaikan varietas karena: menimbulkan sifat-sifat baru yang tidak diperoleh dari persilangan atau mutasi, dan pada somaklonal tidak terdapat hambatan yang sering dijumpai pada hibridisasi seperti: fertilitas rendah, kurangnya keragaman genetik, atau lamanya waktu yang dibutuhkan (Semal & Lepoivre 1990). Menurut Cai dan Butler (1996) penggunaan
keragaman
somaklonal
bersama-sama
dengan
pemuliaan
konvensional dapat meningkatkan efisiensi pemuliaan karena dapat memperluas keragaman dan menyingkat waktu proses pemuliaan.
23
Kombinasi kultur jaringan dengan mutasi buatan dapat mempercepat program pemuliaan mulai dari peningkatan keragaman hingga multiplikasi genotipe yang diinginkan. Pada spesies-spesies yang berkembang biak secara vegetatif (misal: kentang, pisang, abaka dsb.), mutasi yang dikombinasi dengan teknik kultur jaringan merupakan metode yang paling tepat untuk perbaikan kultivar (Maluszynski et al. 1995). Kombinasi antara mutasi dengan kultur jaringan dapat menghasilkan mutan dengan frekuensi tinggi dalam waktu singkat dan mengurangi terjadinya kimera (Nagatomi, 1996).
SELEKSI IN VITRO Seleksi in vitro ditujukan untuk memilih mutan secara efektif dan efisien yang mempunyai sifat sesuai dengan yang diinginkan. Seleksi in vitro yang dikombinasikan dengan keragaman somaklonal telah banyak digunakan untuk memperoleh tanaman resisten terhadap penyakit pada berbagai jenis tanaman (Ahmed et al. 1996). Sebagai contoh adalah untuk memperoleh tanaman tebu toleran terhadap fitotoksin yang dihasilkan oleh Drechslera sacchari (toksin DS) dari varietas yang sangat rentan (Leal et al. 1996). Keragaman somaklonal memberikan kemungkinan terbentuknya resistensi terhadap patogen tanaman dan sangat berguna untuk perbaikan resistensi tanaman terhadap fungi. Keragaman akan lebih terarah dengan adanya tekanan seleksi (patogen itu sendiri, toksin atau filtrat kultur) baik selama fase regenerasi tunas atau sesudah regenerasi tanaman (Orlando et al. 1997). Sistem yang paling banyak digunakan untuk evaluasi in vitro terhadap resistensi/suseptibilitas adalah penggunaan toksin murni atau filtrat jamur (Morpurgo et al. 1994). Asam Fusarat yang dihasilkan oleh berbagai spesies Fusarium merupakan toksin yang menyebabkan gejala layu. Seleksi in vitro mutan- mutan yang toleran terhadap asam fusarat merupakan metode yang efiektif untuk memperoleh tanaman toleran terhadap Fusarium (Matsumoto et al. 1995). Umumnya, ketahanan terhadap toksin yang diekspresikan pada saat regenerasi tanaman memiliki korelasi dengan tingkat ketahanannya terhadap penyakit, karena ketahanan telah ditransmisikan kepada keturunan tanaman yang terseleksi (Ahmed et al. 1991).
24
Teknik filtrat kultur Fusarium spp. juga telah umum digunakan untuk memperoleh somaklon resisten terhadap senyawa toksik yang diproduksi oleh patogen tersebut pada tanaman gandum (Ahmed et al. 1996). Filtrat kultur dapat menghambat pertumbuhan sel dan sel-sel dari spesies inang lebih sensitif terhadap toksin dibandingkan tanaman bukan inang. Kalus tanaman anyelir yang rentan terhadap Fusarium oxysporum f.sp dianthi bila ditanam pada media yang mengandung filtrat kultur nya dapat menghasilkan tanaman resisten terhadap patogen tersebut (Thakur et al. 2002). Penggunaan filtrat kultur lebih baik bila ditambah dengan pengamatan parameter biokimia, misalnya: senyawa fenol. Peroksidase merupakan enzim penting yang berkorelasi dengan mekanisme pertahanan aktif tanaman dengan menyediakan senyawa fenol untuk membentuk lignin (Morpurgo et al. 1994). Pada tanaman strawberry, meningkatnya ketahanan terhadap patogen berkorelasi dengan bertambahnya senyawa fenol terutama ortodihidroksifenol (Orlando et al. 1997).
25
BAB III
METODE INOKULASI DAN KERAPATAN KONIDIUM Fusarium oxysporum f.sp. cubense UNTUK MENGINFEKSI TANAMAN ABAKA
ABSTRAK
Abaka (Musa textilis Nee) merupakan salah satu tanaman industri penting, namun pengembangannya di Indonesia masih mengalami kendala karena adanya penyakit layu Fusarium (penyakit Panama) yang disebabkan oleh infeksi cendawan Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc). Perbaikan tanaman untuk memperoleh genotipe abaka yang resisten terhadap Foc membutuhkan metode inokulasi yang efektif untuk penapisan plasma nutfah. Penelitian ini bertujuan untuk (1) mengevaluasi efektivitas metoda inokulasi Foc dan (2) kerapatan konidia Foc – untuk menginduksi munculnya infeksi Foc pada bibit abaka, serta (3) mengevaluasi respon sepuluh genotipe abaka terhadap infeksi Foc. Hasil penelitian menunjukkan bahwa metode inokulasi dengan memotong akar bibit abaka di bagian ujung dan merendamnya selama dua jam dalam suspensi konidia Foc sebelum tanam (INO-2) pada kerapatan 106 konidia/ml (KON-2) merupakan metode yang paling efektif untuk menginduksi infeksi penyakit pada bibit abaka. Perlakuan tersebut menimbulkan gejala dan intensitas penyakit paling tinggi pada genotype-genotipe abaka yang dievaluasi. Dari sepuluh genotype yang diuji, tidak ada satupun yang resisten terhadap infeksi Foc.
Kata kunci: layu Fusarium, penyakit panama, respon penyakit, Musa textilis
26
INOCULATION METHODS AND CONIDIAL DENSITIES OF Fusarium oxysporum f.sp. cubense FOR INFECTING ABACA ABSTRACT
Despite abaca (Musa textilis Nee) is an important industrial crop; its cultivation in Indonesia is hamperred by Fusarium wilt (Panama disease) due to infection of Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc). Development of Foc resistance abaca genotypes requires availability of established and reliable screening method for resistance against Foc. The objectives of this study were (1) to evaluate effectiveness of Foc inoculation methods and (2) Foc conidial densities - to induce disease infection in abaca, and (3) to evaluate the responses of ten abaca clones against Foc infection. Results of the experiment showed method of inoculation by wounding roots and submerging abaca planting materials for 2 hours in suspension of Foc conidia before planting and the use of suspension of 106 Foc konidium/ml were the most effective method for inducing disease infection in abaca. These treatments resulted in the most severe disease symptoms and disease incidence among tested abaca. Out of ten abaca clones evaluated, none was resistance against Foc infection. Keywords : Fusarium wilt, panama disease, disease response, Musa textilis.
PENDAHULUAN
Penyakit layu Fusarium, yang juga dikenal sebagai Panama disease, merupakan salah satu penyakit yang sangat merugikan pada tanaman pisang, termasuk abaka (Musa textilis Nee) yang ditanam di daerah tropika. Penyakit yang disebabkan oleh cendawan Fusarium oxysporum Schlecht.f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans ini telah menyerang pertanaman pisang di Asia, Afrika, Australia, dan daerah tropika di Amerika sejak 50 tahun yang lalu (Hwang & Ko 2004). Di Leyte-Filipina F. oxysporum f.sp. cubense (Foc) dilaporkan telah menimbulkan kerusakan antara 5-65% dari pertanaman abaka di lapangan (Bastasa & Baliad 2005). Di Indonesia, Foc diketahui telah menyerang tanaman pisang hingga seluas 3 300 ha di 3 provinsi di Sumatera (Nasir & Jumjunidang 2003). Keberadaan patogen ini di berbagai daerah lain di Indonesia juga telah diketahui. Hal tersebut menjadi kendala pengembangan abaka di Indonesia mengingat klon abaka yang resisten terhadap Foc belum tersedia. Di lapangan pengendalian Foc sulit dilakukan karena cendawan ini mampu
27
bertahan lama dalam bentuk miselium diantara sisa-sisa tanaman yang terserang atau dalam bentuk klamidospora di tanah (Agrios 1997). Pengendalian penyakit layu Fusarium disarankan dilakukan secara terpadu dengan penggunaan bibit sehat dari klon abaka yang resisten, penggunaan mikroba antagonis, dan penggunaan pestisida nabati (Djatnika et al. 2003; Di Pietro et al. 2003). Walaupun demikian, efektivitas mikroba antagonis untuk pengendalian Foc masih terbatas, efektivitasnya di lapangan masih belum diketahui, dan belum ada mikroba antagonis yang dapat diandalkan untuk secara tuntas mengendalikan Foc (Bastasa & Baliad 2005). Sejauh ini, penggunaan klon yang resisten merupakan metode alternatif pengendalian Foc yang efektif (Ploetz 2000) Penanaman klon abaka yang resisten terhadap serangan Foc diharapkan merupakan cara alternatif untuk mengatasi kendala serangan layu Fusarium di Indonesia. Dalam usaha untuk mengidentifikasi klon abaka yang resisten terhadap Foc maka perlu dilakukan penapisan respons plasma nutfah abaka yang ada terhadap serangan Foc. Keberhasilan kegiatan penapisan ditentukan oleh tersedianya metode inokulasi Foc yang efektif pada tanaman abaka. Selama ini metode penapisan yang ada untuk evaluasi respons tanaman pisang terhadap Foc tidak praktis dalam penerapannya (Ishak & Dwimahyani 2005). Penelitian yang dilakukan bertujuan untuk (1) menge valuasi efektivitas metoda inokulasi dan (2) kerapatan konidium Foc untuk menginduksi munculnya gejala pada bibit abaka, serta (3) mengevaluasi respons sepuluh klon abaka terhadap serangan Foc.
BAHAN DAN METODE
Isolat F. oxysporum f.sp cubense dan Bahan Tanaman. Cendawan Foc diisolasi dari tanaman abaka yang terinfeksi Foc di perkebunan abaka PT. Bayu Lor, Banyuwangi (Foc isolat Banyuwangi) dan kebun percobaan Balai Penelitian Tembakau dan Tanaman Serat (Balittas) di Sumberejo, Bojonegoro (Foc isolat Bojonegoro) dan di Karangploso, Malang (Foc isolat Malang). Isolat cendawan yang digunakan sebagai sumber inokulum telah dimurnikan dengan menggunakan kultur potongan hifa, diperbanyak dalam media potato dextrose agar (PDA) dan diinkubasikan dalam ruang bersuhu 29-
28
30o C selama 7 hari. Ke dalam botol kultur dengan volume 250 ml dan berisi media potato dextrose broth (PDB) 100 ml diinokulasikan 3 potongan agar (diameter 1 cm) dengan hifa Foc. Kultur digoyang dengan pengocok (shaker) berkecepatan putaran 60 rpm selama 14 hari (Gambar 2.a). Plantlet abaka hasil kultur jaringan yang telah berakar ditanam dalam pot plastik berisi media pasir steril, diinkubasikan di ruangan yang terkontrol kelembaban dan pencahayaannya selama 1 minggu, dan dipindahkan ke rumah kaca hingga bibit berumur 2 bulan (tinggi 15-20 cm). Hanya bibit abaka sehat dan tidak menunjukkan gejala serangan hama dan penyakit yang digunakan dalam percobaan (Gambar 2.b). Abaka klon Tangongon digunakan dalam evaluasi efektivitas metode inokulasi, sedangkan abaka klon Tangongon, Sangihe-1 dan UB-3 digunakan dalam evaluasi efektivitas kerapatan konidia Foc untuk memunculkan gejala infeksi Foc pada bibit abaka yang diuji. Dalam evaluasi respon klon abaka terhadap infeksi Foc digunakan 10 klon abaka yang dibib itkan dari hasil perbanyakan in vitro. Semua bibit ditumbuhkan dalam kantong plastik (polybag) berisi media campuran tanah:pasir (2:1 b/b).
Efektivitas Metode Inokulasi. Dalam percobaan ini dievaluasi metode inokulasi 1 (INO-1): penanaman bibit abaka dalam media tanam yang terkontaminasi Foc. Media terkontaminasi diperoleh dengan mencampur Foc yang dibiakkan dalam media beras dengan media tanam dan diinkubasikan selama satu minggu sebelum bibit abaka ditanam, dengan perbandingan 10 g beras pada 3 kg tanah. Metode INO-2: penanaman bibit abaka yang akarnya telah dipotong ± 1 cm di bagian ujung dan direndam selama dua jam dalam suspensi konidia Foc (106 konidia/ml) pada media tanam steril. Metode INO-3: penanaman bibit abaka dalam media tanam steril dan penyiraman dengan 50 ml suspensi konidia Foc (106 konidia/ml). Bibit abaka yang tidak diinokulasi Foc digunakan sebagai kontrol. Satuan percobaan terdiri atas 5 pot yang ditanami dengan satu bibit abaka per pot dan diulang 3 kali sehingga total terdapat 15 bibit untuk masing- masing perlakuan. Pengamatan dilakukan terhadap persentase bibit bergejala layu karena infeksi Foc, rataan skor gejala layu, dan intensitas penyakit (IP) pada 30 hari sesudah inokulasi (HSI). Untuk semua data
29
yang dihasilkan, hanya nilai rataan skor gejala saja yang dianalisis secara statistik. Persentase tanaman bergejala dan intensitas penyakit tidak dianalisis secara statistik.
Pengaruh Kerapatan Konidia Foc terhadap Intensitas Penyakit. Percobaan ini mengevaluasi pengaruh penggunaan dua tingkat kerapatan konidia terhadap munculnya gejala dan intensitas penyakit layu Fusarium pada tiga klon abaka (Tangongon, Sangihe-1 dan UB-3). Kerapatan konidia Foc isolat Banyuwangi yang dievaluasi terdiri atas: 105 konidia/ml (KON-1) dan 106 konidia/ml (KON-2). Kerapatan stok konidia Foc dihitung menggunakan haemocytometer (5 bidang pandang) dan kerapatan konidia yang diinginkan diperoleh dengan pengenceran stok konidia menggunakan akuades steril. Sebelum ditanam, bibit abaka yang digunakan dilukai perakarannya dan direndam selama 2 jam dalam suspensi konidia Foc dengan kerapatan sesuai perlakuan. Selanjutnya bibit abaka ditanam dalam kantong plastik berisi media tanam sebagaimana telah diuraikan sebelumnya. Bibit abaka yang tidak diinokulasi
(direndam dalam
air
akuades,
KON-0)
digunakan
sebagai
pembanding. Unit percobaan terdiri atas 3 pot yang masing- masing ditanami satu bibit abaka. Setiap perlakuan diulang tiga kali sehingga total digunakan 9 bibit abaka untuk setiap perlakuan. Pengamatan dilakukan pada 30 dan 60 HSI terhadap persentase bibit yang bergejala layu, rataan skor gejala layu dan intensitas penyakit. Pengamatan gejala nekrosis pada bonggol bibit abaka dilakukan pada saat 60 HSI (saat bibit dipanen).
Respon 10 Klon Abaka terhadap Infeksi Foc. Percobaan ini mengevaluasi munculnya gejala, rataan skor gejala dan intensitas penyakit layu Fusarium pada 10 klon abaka (Banjar, BL Manado, Cilacap, Cirebon, Layahan, Mb B, Sangihe-1, Sangihe-2, Tangongon dan UB3) setelah diinokulasi Foc isolat Banyuwangi. Satuan percobaan terdiri atas empat bibit abaka dan untuk masing- masing klon diulang 3 kali sehingga digunakan total 12 bibit abaka untuk setiap klon. Sebelum ditanam, bibit abaka yang digunakan dilukai perakarannya dan
30
direndam selama 2 jam dalam suspensi konidia Foc dengan kerapatan 106 konidia/ml. Selanjutnya bibit abaka ditanam dalam kantong plastik berisi media tanam sebagaimana telah diuraikan sebelumnya. Bibit abaka yang tidak diinokulasi digunakan sebagai pembanding. Pengamatan dilakukan pada saat 30 dan 60 HSI terhadap persentase bibit yang bergejala layu, rataan skor gejala layu dan intensitas penyakit.
Skoring Gejala dan Intensitas Penyakit. Skoring gejala layu pada bibit abaka akibat infeksi Foc (skor 0 – 4) dilakukan mengikuti kriteria yang dikembangkan Epp (1987), yaitu: skor 0 – bibit sehat dan tidak menunjukkan gejala layu; skor 1 – daun bagian bawah sedikit menguning dan mengering; skor 2 – peningkatan jumlah daun yang menguning dan bibit mulai layu; skor 3 – seluruh bibit mengering kecuali daun yang baru atau belum membuka; skor 4 – bibit mati (Gambar 2.c-g). Gejala nekrosis pada bonggol bibit abaka ditandai dengan perubahan warna bonggol dari putih kehijauan menjadi coklat kehitaman. Skoring gejala nekrosis pada bonggol abaka dilakukan sebagai berikut: skor 0 – tidak terjadi perubahan warna bonggol; skor 1 – nekrosis antara 0-5%; skor 2 – nekrosis 5-35%; skor 3 – nekrosis 35-50%; skor 4 – nekrosis 50-75%; dan skor 5 – nekrosis 75-100% dari lingkar batang (Mak et al. 2004b). Intensitas penyakit (IP) untuk gejala layu dan nekrosis bonggol ditentukan dengan rumus sebagai berikut: IP=[? (ni x si)/(N x S)] x 100%; dengan ni: jumlah bibit dengan skor gejala i, si: skor gejala i, N: jumlah total bibit yang diamati, S: skor gejala tertinggi (Cachinero et al. 2002). Penentuan respon bibit abaka yang diuji terhadap infeksi Foc dilakukan dengan kriteria sebagai berikut: imun (I) – jika IP=0%; tahan (T) – jika IP antara 0-5%; agak tahan (AT) – jika IP antara 5-10%; agak rentan (AR) – jika IP antara 10-25%; rentan (R) – jika IP antara 25-50%; dan sangat rentan (SR) – jika IP>50% (Yusnita & Sudarsono 2004).
Pengamatan Anatomis Akar. Akar dari bibit abaka contoh diambil secara acak pada 30 HSI, dicuci
31
dengan air, dan diawetkan dengan larutan formalin acetic acid (FAA). Contoh akar diiris melintang menggunakan pisau silet dan diamati gejala kerusakannya akibat infeksi Foc, yang ditandai dengan warna lebih gelap pada jaringan yang rusak (Nasir et al. 2003).
HASIL
Efektivitas Metode Inokulasi. Bibit abaka yang tidak diinokulasi tidak menunjukkan gejala layu sedangkan yang diinokulasi menunjukkan berbagai tingkatan gejala layu pada 30 HSI. Hasil reisolasi dari bibit yang bergejala layu menggunakan media PDA menghasilkan biakan Foc, yang mengindikasikan keterkaitan antara gejala layu dan patogen Foc. Metode INO-2 mampu menghasilkan rataan skor gejala dan nilai IP yang lebih tinggi dibandingkan metode inokulasi lainnya untuk tiga isolat Foc yang digunakan. Selain itu, hanya metode INO-2 yang secara konsisten menghasilkan 100% bibit bergejala (Tabel 1). Isolat Foc yang berasal dari Banyuwangi, Malang dan Bojonegoro mampu menginfeksi dan menimbulkan gejala layu pada bibit abaka yang diinokulasi dengan metode INO-2. Untuk perlakuan INO-1 atau INO3, selain tidak semua isolat mampu menghasilkan tanaman bergejala 100% juga menghasilkan intensitas penyakit yang lebih rendah dibandingkan INO-2.
Pengaruh Kerapatan Konidia Foc. Perendaman bibit abaka dalam suspensi konidia Foc dengan kerapatan 105 konidia/ml (KON-1) atau 106
konidia/ml (KON-2) sama-sama mampu
menyebabkan munculnya gejala layu pada 3 klon abaka yang diuji. Pada 30 HSI, bibit abaka yang diinokulasi menunjukkan rataan skor gejala layu lebih kecil dari 2 (Tabel 2). Kecuali untuk klon Tangongon pada 30 HSI, perlakuan KON-2 menghasilkan persentase bibit bergejala, rataan skor gejala, dan nilai IP yang lebih tinggi dibandingkan KON-1. Pada 60 HSI, perlakuan KON-1 dan KON-2 samasama mampu menyebabkan 100% bibit klon Tangongon bergejala layu. Sedangkan untuk klon Sangihe-1 dan UB-3 pada 60 HSI, perlakuan KON-2
32
Tabel 1. Pengaruh metode inokulasi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi (Bw), Bojonegoro (Bn) atau Malang (Ml) terhadap persentase tanaman bergejala, rataan skor gejala kelayuan dan intensitas penyakit pada bibit abaka klon Tangongon. Pengamatan dilakukan pada 30 hari setelah inokulasi. Metode inokulasi
Tanaman bergejala (%)
Kontrol
Bw 0
Bn 0
Ml 0
INO-1
73
100
100
100
100
100
100
60
100
INO-2 INO-3
Rataan skor gejala Bw 0
Bn 0
Ml 0
1.5
1.0
1.8
2.0
2.0
2.0
Intensitas penyakit (%)
Rataan 0 c*
Bw 0
Bn 0
Ml 0
1.4b
37
25
45
2.0a
50
50
50
1.3b 40 25 35 1.6 1.0 1.4 Keterangan: *Angka dengan huruf yang sama, tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan dengan α=5%.
menghasilkan persentase gejala layu yang lebih tinggi dibandingkan KON-1. Selain itu pada 60 HSI, KON-2 juga menghasilkan rataan skor gejala dan nilai IP yang lebih tinggi dibandingkan KON-1 untuk tiga klon abaka yang diuji (Tabel 2). Perlakuan 106 konidium/ml juga menyebabkan persentase bonggol bibit abaka bergejala nekrosis dan nilai intensitas penyakit yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan 105 konidium/ml (Tabel 3). Tetapi kedua perlakuan mempunyai rataan skor gejala nekrosis yang sama.
Tabel 2. Pengaruh kerapatan konidia F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi yang digunakan untuk menginokulasi bibit abaka klon Tangongon (Tg), Sangihe-1 (Sh), atau UB-3 (Ub) terhadap persentase bibit bergejala, rataan skor gejala kelayuan (SGK), dan intensitas penyakit (IP). Hari pengamatan & jumlah konidium/ml
Bibit bergejala (%) Tg
Sh
Ub
Skor gejala layu Tg
Sh
Ub
Rataan
Intensitas penyakit (%) Tg Sh Ub
Pengamatan saat 30 hsi: 0 (KON-0) 0 0 0 0 0 0 0 b* 0 0 0 105 (KON-1) 56 22 33 1.3 0.7 0.3 0.7a 33 17 8 106 (KON-2) 44 67 67 1.3 1.7 1.0 1.3a 33 42 25 Pengamatan saat 60 hsi: 0 (KON-0) 0 0 0 0 0 0 0 c 0 0 0 105 (KON-1) 100 89 44 2.3 1.7 1.1 1.7b 58 42 28 106 (KON-2) 100 100 89 3.3 3.7 3.0 3.3a 83 92 75 Keterangan: *Angka dengan huruf yang sama, tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan dengan α=5%.
33
Tabel 3. Pengaruh kerapatan konidia F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi yang digunakan untuk menginokulasi bibit abaka klon Tangongon (Tg), Sangihe-1 (Sh), atau UB-3 (Ub) terhadap persentase bibit bergejala, rataan skor gejala nekrosis (SGN) pada bonggol bibit, dan intensitas penyakit (IP). Pengamatan dilakukan pada 60 hari sesudah inokulasi. Kerapatan Bibit bergejala (%) Rataan SGN IP (%) (konidia/ml) Tg Sh Ub Tg Sh Ub Rataan Tg Sh Ub 0 (KON-0) 0 0 0 0 0 0 0 b* 0 0 0 105 (KON-1) 60 90 70 2.8 2.8 1.8 2.4a 56 56 36 106 (KON-2) 80 100 60 3.2 4.1 2.7 3.3a 65 82 54 Keterangan: *Angka dengan huruf yang sama, tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan dengan α=5%.
Hasil pengamatan anatomis akar pada 30 HSI menunjukkan bibit yang diinokulasi Foc mengalami kerusakan jaringan epidermis dan korteks yang ditandai dengan adanya warna coklat kehitaman (Gambar 2.h). Pengamatan pada 30 HSI yang dilakukan menunjukkan kerusakan jaringan belum mencapai jaringan pengangkut (xylem, phloem dan empulur). Pada Gambar 2.i disajikan penampang melintang akar bibit abaka yang tidak diinokulasi Foc sebagai standar. Respon 10 klon abaka terhadap infeksi Foc. Semua klon abaka yang diinokulasi menunjukkan persentase dan rataan skor gejala serta intensitas penyakit lebih besar dibandingkan yang tidak diinokulasi (Tabel 4). Berdasarkan nilai IP (Tabel 4), 10 klon abaka yang diuji tergolong sangat rentan (SR, 9 klon) atau rentan (R, 1 klon).
PEMBAHASAN
Keberhasilan infeksi Foc merupakan proses kompleks yang melibatkan beberapa tahapan, yaitu: (1) pendeteksian signal dari akar pisang yang terluka oleh Foc, (2) penempelan Foc pada permukaan akar dan penetrasi hifa Foc ke jaringan akar, (3) penetrasi hifa Foc ke dalam korteks dan degradasi sistem pertahanan fisik jaringan akar untuk mencapai jaringan pembuluh, (4) proliferasi hifa Foc dan produksi mikrokonidia dalam jaringan xilem, dan (5) sekresi senyawa toksin dan ensim hidrolisis oleh Foc yang menyebabkan kerusakan lebih lanjut jaringan tanaman (Di Pietro et al. 2003). Adanya luka pada jaringan
34
Tabel 4. Respon 10 klon abaka terhadap infeksi Fusarium oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Pengamatan dilakukan pada 60 hari sesudah inokulasi. Klon dan karakter unggul abaka:
Banjar TT > 2 m, RS > 3%
BL Manado TT > 2 m, RK >70%
Cilacap TT > 3 m, RS > 3%
Cirebon TT > 2 m, RS > 3%
Layahan JA > 25
MbB Sangihe -1 TT > 2 m, RK > 70%
Sangihe -2 TT > 2 m, RS > 3%
Tangongon UB 3
Bibit bergejala (%)
Rataan skor gejala kelayuan INO Tanpa INO
Intensitas penyakit (%) INO
Tanpa INO
Respon terhadap Foc
90
2.2
0.8
55.0
20.0
SR
100
3.5
0.9
87.5
22.5
SR
100
2.8
1.2
65.0
30.0
SR
100
3.9
0.4
97.5
10.0
SR
80
2.1
0.8
52.5
20.0
SR
90
1.6
0.8
40.0
20.0
R
100
3.7
0.8
93.0
20.0
SR
100
3.5
0.6
87.5
15.0
SR
100 85
3.3 3.0
0.8 0
82.0 75.0
20.0 0
SR SR
Keterangan: Deskripsi karakter unggul kultivar abaka sesuai dengan yang dipublikasikan oleh Setyo-Budi et al. (2001); TT: tinggi tanaman di lokasi Kebun Percobaan Karangploso, Malang; RS: rendemen serat; RK: rendemen kertas; JA: jumlah anakan; SR: sangat rentan; R: rentan.
akar merupakan salah satu proses awal infeksi Foc pada tanaman pisang. Di lapangan, pelukaan jaringan tanaman dapat terjadi antara lain akibat pemangkasan anakan, aktivitas serangga penusuk, atau aktivitas infeksi nematoda (Ploetz 2000). Djatnika et al. (2003) menyebutkan bahwa Foc bersifat tular tanah, menginfeksi tanaman melalui akar rambut lateral, dan dapat menginfeksi jaringan melalui luka yang disebabkan oleh nematoda Radopholus similis. Dalam penelitian ini, metode INO-2 dilakukan dengan memberikan pelukaan pada akar bibit abaka yang diuji, diikuti dengan perendaman bibit dalam suspensi konidium Foc. Sebaliknya, dalam perlakuan INO-1 dan INO-3 tidak ada tindakan pelukaan terhadap bibit abaka yang diuji, meskipun bibitnya diberi inokulum Foc dengan konsentrasi inokulum yang tinggi. Bibit abaka yang diinokulasi dengan metode INO-2 menunjukkan gejala layu dan intensitas penyakit yang lebih tinggi. Hal ini sejalan dengan tahapan proses infeksi Foc pada tanaman abaka yang harus dilewati, yaitu adanya luka
35
pada jaringan akar. Pada metode INO-2, pelukaan jaringan akar yang dilakukan dan perendaman bibit pada suspensi konidia Foc menjamin terjadinya proses awal infeksi. Pada metode INO-1 dan INO-3 masih terjadi infeksi meskipun tidak terlalu parah. Hal ini disebabkan karena patogen secara aktif dapat melukai jaringan tanaman secara kimia yaitu mengeluarkan enzim untuk mendegradasi dinding sel tanaman atau secara mekanik menggunakan kapak penetrasi. Namun terjadinya pelukaan oleh Foc membutuhkan waktu dan ada kemungkinan gagal sehingga perlu dibantu dengan perlakuan pelukaan buatan. Perlakuan pelukaan jaringan tanaman yang diuji telah dilaporkan membantu penetrasi inokulum cendawan ke dalam sel/jaringan tanaman yang diinokulasi (Yusnita & Sudarsono 2004; Sakamoto & Gordon 2006). Sesuai dengan tahapan infeksi, kerusakan jaringan akar yang terjadi akibat infeksi Foc dimulai dari jaringan epidermis, diikuti jaringan korteks dan akhirnya jaringan pembuluh (xylem). Tahapan proses infeksi Foc dimulai dari penempelan dan penetrasi jaringan akar dan diikuti penyebaran ke jaringan pembuluh (Mak et al. 2004a; Salerno 2000). Gejala layu yang diamati pada tajuk tanaman terjadi akibat tersumbatnya jaringan pembuluh akar oleh miselia cendawan dan akibat induksi tilosis atau kerusakan jaringan parenkimatis oleh enzim dan asam fusarat yang diproduksi Foc. Pada penelitian yang dilakukan pada bibit abaka ini, kerusakan jaringan akar yang terjadi baru mencapai jaringan korteks setelah 30 HSI. Pengamatan anatomis menunjukkan jaringan akar yang mengalami kerusakan akibat infeksi Foc menjadi berwarna gelap atau coklat kehitaman (Gambar 2.h). Warna gelap pada jaringan akar yang rusak terjadi sebagai akibat penguraian senyawa fenol menjadi senyawa-senyawa yang lebih sederhana oleh enzim fenol oksidase yang dihasilkan Foc dan penyerapan senyawa-senyawa tersebut oleh dinding sel jaringan akar (Semangun 1996). Dengan demikian, perubahan warna jaringan yang diinokulasi menjadi coklat atau kehitaman (gelap) pada preparat anatomis mengindikasikan terjadinya kerusakan pada jaringan akar tanaman abaka yang diinokulasi. Dalam penelitian ini, meskipun pada 30 HSI kerusakan akar yang terjadi baru mencapai jaringan korteks, bibit abaka yang diuji telah menunjukkan gejala
36
layu dengan rataan skor 0.3-1.7. Korteks merupakan jaringan penyusun akar yang terdiri atas sel-sel parenkimatis dan berperan dalam pengangkutan dan penyimpanan oksigen untuk proses respirasi. Meskipun tidak langsung berfungsi dalam proses pengangkutan air, kerusakan jaringan korteks dapat berpengaruh terhadap pengangkutan air dari akar ke jaringan tajuk sehingga menyebabkan munculnya gejala layu. Pada 60 HSI, persentase bibit bergejala, rataan skor gejala kelayuan dan intensitas penyakit yang diamati menjadi lebih tinggi. Meningkatnya keparahan gejala infeksi Foc pada 60 HSI tersebut diduga sebagai akibat hifa Foc sudah mulai merusak jaringan stele (xylem) akar, yang berperan dalam pengangkutan air dan hara yang diserap dari dalam tanah. Kerusakan yang terjadi pada jaringan xylem berdampak langsung terhadap pengangkutan air dari jaringan akar ke tajuk sehingga gejala layu yang terjadi semakin meningkat. Pada kondisi infeksi yang parah, Foc juga menyebabkan terjadinya nekrosis pada jaringan bonggol tanaman pisang. Dalam penelitian ini, gejala nekrosis pada bonggol bibit abaka yang diinokulasi Foc belum menghasilkan nilai intensitas penyakit yang tinggi, terutama pada klon Tangongon. Hal ini mengindikasikan bahwa infeksi Foc pada bibit abaka hingga 60 HSI menyebabkan terjadinya kerusakan sistem perakaran dan belum mencapai jaringan pembuluh batang. Kerapatan konidia Foc yang lebih tinggi untuk menginokulasi bibit abaka terbukti meningkatkan munculnya gejala layu bibit dan nekrosis bonggol. Hal ini sesuai dengan yang diharapkan karena semakin banyak inokulum yang digunakan berpotensi lebih besar untuk menimbulkan gejala penyakit (Agrios 1997). BenYephet et al. (1996) melaporkan adanya korelasi positif antara konsentrasi inokulum awal dengan timbulnya penyakit layu Fusarium pada tanaman anyelir, sedangkan Mak et al. (2004b) melaporkan perbedaan kerapatan inokulum yang digunakan dapat menghasilkan perbedaan respon tanaman yang diuji. Pada tanaman pisang, penggunaan inokulum spora Foc dengan kerapatan 5x102 spora/ml menyebabkan munculnya gejala penyakit ringan, 5x104 spora/ml - gejala sedang, dan pada 5x106 spora/ml - gejala parah (Mak et al. 2004b). Dari sepuluh klon abaka yang diuji dalam percobaan ini tidak satupun yang tergolong tahan terhadap infeksi Foc. Sembilan klon abaka yang diuji tergolong
37
sangat rentan (SR) dan 1 klon tergolong rentan (R). Basuki (2003) menyatakan tanaman pisang (termasuk abaka) dan kapas diketahui tidak mempunyai gen ketahanan terhadap layu Fusarium. Sebaliknya pada tanaman tomat (Lycopersicon esculentum) dilaporkan mempunyai beberapa gen ketahanan terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. lycopersici (Fol). Demikian pula pada tanaman melon terhadap Fusarium oxysporum f.sp. melonis (Burge et al. 2003). Tanaman abaka di Indonesia diketahui mempunyai keragaman genetik rendah dan hal ini telah dibuktikan dari hasil studi marka molekuler (Hadipoentyanti et al. 2001). Secara umum Roux et al. (1999) menyatakan bahwa tanaman yang diperbanyak secara vegetatif seperti Musa spp. pada umumnya memiliki keraga man genetik terbatas karena sifat tanamannya yang mandul jantan dan poliploid. Dengan demikian, respon sepuluh klon abaka yang semuanya terinfeksi Foc diduga mengindikasikan tidak adanya gen ketahanan terhadap Foc dan sempitnya keragaman genetik abaka di Indonesia.
SIMPULAN
Dari penelitian ini dapat disimpulkan bahwa metode inokulasi dengan cara melukai akar bibit abaka diikuti dengan perendaman dalam suspensi konidia Foc dengan kerapatan 106 konidia/ml dapat digunakan untuk penapisan respon plasma nutfah abaka terhadap Foc. Berdasarkan nilai IP yang diamati, 10 klon abaka yang ditanam di Indonesia tergolong sangat rentan terhadap infeksi Foc. Untuk itu, peningkatan keragaman genetik abaka, terutama yang membawa sifat ketahanan terhadap infeksi Foc perlu dilakukan. Karena abaka merupakan tanaman yang berkembangbiak secara vegetatif, induksi keragaman genetik melalui mutasi atau induksi variasi somaklonal merupakan alternatif cara yang dapat digunakan. Metode ini akan lebih berhasil dan terarah apabila dikombinasikan dengan seleksi in vitro menggunakan filtrat kultur (toksin) yang dihasilkan Foc.
38
a
d
b
e
c
f
g ep
ep
kt kt
st st
h
i
Gambar 2. (a) Biakan Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc) dalam media PDB; (b) Bibit abaka umur 2 bulan yang digunakan dalam penelitian dan siap diinokulasi dengan Foc; (c) Fenotipe bibit dengan gejala layu skor 0, (d) skor 1, (e) skor 2, (f) skor 3, dan (g) skor 4, sesuai dengan kriteria yang dikembangkan oleh Epp (1986); (h) Fotomikrograf penampang melintang akar abaka pada 30 hari sesudah inokulasi dengan Foc (200x) menunjukan adanya kerusakan jaringan penyusun akar yang ditunjukkan oleh warna coklat kehitaman pada jaringan epidermis dan korteks; (i) penampang melintang akar abaka sehat, yang tidak diinokulasi dengan Foc. (ep) – epidermis, (kt) – korteks, dan (st) – jaringan stele.
39
DAFTAR PUSTAKA
Agrios GN. 1997. Plant Pathology. San Diego: Academic Press, Inc. Bastasa GN, Baliad AA. 2005. Biological control of Fusarium wilt of abaka (Fusarium oxysporum) with Trichoderma and yeast. Philippines J Crops Sci 30:29-37. Basuki S. 2003. Identification of DNA markers and recombinations events in the vinicity of the Fusarium oxysporum f.sp. licopersici resistance gene I-3 of tomato (Lycopersicon esculentum) [Thesis]. Brisbane: School of Land & Food Sciences and School of Molecular & Microbiology Sciences, The University of Queensland. Ben-Yephet Y, Reuven M, Zviebil A, Shtienberg D. 1996. Effects of initial inoculum and cultivar resistance on incidence of Fusarium wilt and population densities of Fusarium oxysporum F.sp. dianthi on carnation and in soil. Phytopathology 86:751-756. Burge Y, Katzir N, Tzuri G, Portnoy V, Saar U, Shriber S, Perl- Treves R, Cohen R. 2003. Variation in thense of melon genotypes to Fusarium oxysporum f.sp. melonis race 1 determine by inoculation tests and molecular markers. Plant Pathol 52:204-211. Cachinero JM, Hervas A, Jimenez-Diaz RM, Tena M. 2002. Plant defence reactions against Fusarium wilt in chickpea induced by incopatible race 0 of Fusarium oxysporum f.sp. ciceris and non- host isolates of F. oxysporum. Plant Pathol 51:765-776. Di Pietro A, Madrid MP, Caracuel Z, Delgado-Jarana J, Roncero MIG. 2003. Fusarium oxysporum: exploring the molecular arsenal of a vascular wilt fungus. Mol Plant Pathol 4:315-325. Djatnika I, Hermanto C, Eliza. 2003. Pengendalian hayati layu Fusarium pada tanaman pisang dengan Pseudomonas fluorescens dan Gliocladium sp. J Hort 13:205-211. Epp D. 1987. Somaclonal variation in banana: a case study with Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA (ed). Banana and Plantain Breeding Strategies. Canbera: ACIAR Publ, hlm140-150. Hadipoentyanti E, Ratnadewi D, Solihat L. 2001. Variabilitas genetic berbagai varietas abaka (Musa textilis Nee) dan kerabat liar melalui ana lisis RAPD. Zuriat 12:93-106. Hwang SC, Ko WH. 2004. Cavendish banana cultivars resistant to Fusarium wilt acquired through somaclonal variation in Taiwan. Plant Dis 88:580-588.
40
Ishak, Dwimahyani I. 2005. Evaluasi pertumbuhan dan ketahanan galur mutan pisang terhadap F. oxysporum fsp. Cubense (FOC). J Stigma XIII:26-30. Mak C, Ho YW, Liew KW, Asif JM. 2004 a. Biotechnology and in vitro mutagenesis for banana improvement. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 51-68. Mak C, Mohamed AA, Liew KW, Ho YW. 2004 b. Early screening technique for Fusarium wilt resistance in banana micropropagated plants. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Publ, Inc. hlm. 11-20 Nasir N, Jumjunidang. 2003. Karakterisasi ras Fusarium oxysporum f.sp. cubense dengan metode vegetative compatibility group test dan identifikasi kultivar pisang yang terserang. J. Hort. 13(4): 276-284. Nasir N, Jumjunidang, Eliesti F, dab Meldia Y. 2003. Penyakit Layu Panama pada pisang: observasi ras 4 Fusarium oxysporum f.sp. cubense di Jawa Barat. J. Hort 13:269-275. Ploetz RC.2000. Banana disease: a classic and destructive disease of banana. Online Plant Health Progress. www.plantmanagementnetwork.org. Diakses tanggal: 23/2/2006. Roux N, Toloza A, Dolezel J, Swennen R, Lepoivre P, Zapata-Arias FJ. 1999. Usefulness of embriogenic cell suspension for the induction and selection of mutants in Musa spp. Promusa 4:18-19. Sakamoto JM, Gordon TR. 2006. Factors influencing infection of mechanical wounds by Fusarium cincinatum on Monterey pines (Pinus radiata). Plant Pathol 55:130-136. Salerno MI, Gianinazzi S, Gianinazzi-Pearson V. 2000. Effects on growth and comparison of root tissue colonization pattern of Eucaliptus viminalis by pathogenic and non-pathogenic strains of Fusarium oxysporum. New Pythol 146:317-324. Semangun H. 1996. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. Yogyakarta: Universitas Gadjah Mada Press. Setyo-Budi U, Sudjindro, Purwati RD. 2001. Status plasma nutfah abaca: “Menyongsong program agribisnis abaca di Indonesia”. Di dalam: Kasno A et al., editor. Kontribusi Pemuliaan dalam Inovasi Teknologi Ramah Lingkungan. Malang, 28 Agustus 2001. Bandung: PERIPI. hlm 254-258. Yusnita, Sudarsono. 2004. Metode inokulasi dan reaksi ketahanan 30 genotipe kacang tanah terhadap penyakit busuk batang Sclerotium. Hayati 11:53-58.
41
BAB IV
INDUKSI MUTAN SOMAKLONAL DENGAN PERLAKUAN EMS PADA KULTUR KALUS EMBRIOGEN ABAKA (Musa textilis Nee) ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk (1) mengetahui konsentrasi EMS yang tepat untuk menginduksi variasi somaklonal, (2) meregenerasikan populasi plantlets varian dari kalus embriogen abaka (Musa textilis Nee) yang diberi perlakuan dengan EMS, dan (3) mengevaluasi tipe dan frekuensi keragaman fenotipe diantara plantlets yang diregenerasi tersebut. Kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 setelah diberi perlakuan ethylmethane sulfonate (EMS), diproliferasikan dan diregenerasikan menjadi plantlets. Genotoksisitas EMS diukur berdasarkan daya hambatnya terhadap proliferasi kalus embriogen. Evaluasi tipe dan frekuensi varian somaklon diantara plantlets hasil regenerasi dari kalus embriogen yang diperlakukan dengan EMS dilakukan saat plantlets berumur 3-4 bulan setelah dipindahkan ke polybag di rumah kaca. Hasil penelitian mengindikasikan bahwa perlakuan EMS pada kalus embriogen abaka menghambat proliferasi tunas dan meningkatkan tipe maupun frekuensi variasi somaklonal diantara populasi plantlets hasil regenerasi. Tipe variasi fenotipe yang diamati antara lain: daun variegata, daun berkerut, pelepah berwarna hitam, pelepah menyatu dan batang ramping. Keberadaan variasi somaklonal diantara plantlets abaka yang diregenerasi menunjukkan meningkatnya keragaman genetika abaka; dengan demikian membuka peluang untuk melakukan induksi variasi somaklonal kalus embriogen abaka menggunakan EMS hingga diperoleh genotipe mutan yang diinginkan seperti tahan penyakit layu Fusarium. Untuk itu perlu didukung dengan teknik seleksi in vitro yang menggunakan filtrat kultur Foc atau asam fusarat sebagai agens penyeleksi.
Kata kunci: variasi somaklonal, EMS, mutagenesis in vitro, Musa textilis
42
INDUCTION OF SOMACLONAL MUTANTS BY COMBINING EMS TREATMENTS ON EMBRYOGENIC CALLI OF ABACA [Musa textilis Nee]
ABSTRACT
The objectives of this study were (1) to determine suitable concentration of EMS to induce somaclonal variation, (2) to regenerate population of plantlet variants from EMS treated embryogenic calli of abaca (Musa textilis Nee), and (3) to evaluate types and frequencies of fenotypic variance among regenerated plantlets. Embryogenic calli of abaca clone Tangongon and Sangihe-1 were treated with ethyl methanesulphonate (EMS), proliferated and regenerated into plantlets. The genotoxycity of EMS were measured based on its inhibition effects on shoot proliferation of embryogenic calli. The regenerated plantlets were evaluated for the presence and frequency of somaclonal variants 3-4 months after transplanting in the glasshouse. Results of the experiment indicated that EMS treatment on embryogenic calli of abaca inhibited shoot proliferation and increased types and frequencies of somaclonal variation among regenerated plantlets. Types of phenotypic variances include: leaf variegation, curly leaf, black petioles, fused petioles, and slender trunk. The existance of somaclonal variants among regenerated abaca plantlet indicate the increased genetic variability of abaca; therefore, open the possibility of using embryogenic calli treated with EMS to obtain desirable mutant such as Fusarium wilt resistance. For this purpose, the support of in vitro selection techniques using culture filtrates of Fusarium oxysporum f.sp. cubense or fusaric acid solution, is required. Keywords : somaclonal variation, EMS, in vitro mutagenesis, Musa textilis
PENDAHULUAN
Keberadaan Fusarium oxysporum Schlecht f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans (Foc) patogen penyebab penyakit layu Fusarium (Panama disease) di berbagai daerah di Indonesia telah diketahui dan menjadi kendala pengembangan abaka (Musa textilis Nee) mengingat klon yang resisten belum tersedia (Damayanti 2004). Penapisan respon 10 klon abaka dan evaluasi metode inokulasi Foc yang efektif telah dilakukan. Sembilan dari 10 klon yang diuji tergolong sangat rentan dan satu klon tergolong rentan terhadap infeksi Foc. Tanaman Musa spp. termasuk abaka diperbanyak secara vegetatif sehingga mempunyai keragaman genetika rendah karena tidak terjadi hibridisasi seksual (Roux 2004). Keragaman genetika tanaman dengan karakteristik seperti Musa
43
spp. dapat ditingkatkan melalui induksi variasi somaklonal, sebagaimana yang dilakukan pada tanaman nanas, kentang, ubi jalar, dan ubi kayu (Ahloowalia & Maluszynski 2001). Metode kultur jaringan yang dapat menghasilkan banyak plantlet dan mampu menginduksi variasi somaklonal merupakan syarat penerapan seleksi in vitro. Metode baku in vitro untuk produksi plantlet telah tersedia (Rahajeng 2006) tetapi kemampuannya untuk menginduksi variasi somaklonal belum dievaluasi. Etil metansulfonat (EMS) yang mudah dibeli, setelah dihidrolisis tidak bersifat mutagenik, dan terbukti merupakan mutagen yang efektif (van Harten 1998) dan O-phenylene diamine telah digunakan untuk meningkatkan frekuensi terjadinya mutasi (Chen et al. 2000; Gichner et al. 2001; Schierholt et al. 2001; Mangal & Sharma 2002; Sakamoto et al. 2002; Arumingtyas & Indriyani 2005; Spasibionek 2006). Namun demikian, di seluruh dunia selama 70 tahun terakhir ini baru dilepas sebanyak 2 250 varietas tanaman hasil mutasi (Ahloowalia et al. 2004). Penelitian ini bertujuan untuk mengevaluasi efektivitas EMS untuk meningkatkan keragaman somaklonal plantlet abaka yang diregenerasikan dari kultur kalus embriogen. Tujuan khusus penelitian antara lain (1) menentukan konsentrasi EMS yang tepat untuk menginduksi keragaman somaklonal pada kultur kalus embriogen abaka, (2) meregenerasikan populasi plantlet abaka hasil kultur in vitro kalus embriogen dengan perlakuan EMS, dan (3) mengevaluasi tipe dan frekuensi fenotipe varian yang muncul diantara populasi bibit abaka.
BAHAN DAN METODE
Induksi dan proliferasi kalus embriogen abaka. Anakan abaka klon Sangihe-1 (tinggi ± 30 cm) dikupas pelepahnya hingga mencapai diameter ± 3 cm, direndam dalam fungisida Benlate 2 g/l selama 10 menit, rifampicin 600 mg/l - 30 menit, alkohol 70 % - 1 menit, dan larutan pemutih Bayclin 50 % - 10 menit. Setelah dibilas dengan akuades steril, pelepah dikupas hingga diameter tunasnya me njadi ± 1 cm dan panjangnya 1-2 cm. Tunas dibelah menjadi 4 bagian pada titik tumbuhnya. Abaka klon Tangongon dalam bentuk kultur embriogen diperoleh dari Dr. Ika Mariska (BB Biogen, Bogor).
44
Semua kultur ditanam pada media induksi kalus embriogen (MK) yang terdiri atas media MS (Murashige & Skoog 1962) dengan penambahan BAP 5 mg/l, thidiazuron (TDZ) 0.4 mg/l dan vitamin C 100 mg/l, diinkubasikan dalam ruang kultur bersuhu 25 ± 2o C dan diberi penyinaraan 1 000 lux selama 16 jam. Kalus embriogen yang berkembang diverifikasi dengan pewarnaan menggunakan methylene blue dan diamati menggunakan mikroskop. Setelah diproliferasi selama 3 tahun (klon Tangongon) atau selama 8 bulan (klon Sangihe-1) dalam media MK, kalus embriogen digunakan sebagai eksplan untuk pene litian selanjutnya.
Daya hambat EMS terhadap proliferasi kalus embriogen. Kalus embriogen abaka dengan ukuran 3x3x3 mm3 (800 kalus) direndam dalam EMS (0.3%, 0.4%, 0.5% atau 0.6% w/v) yang dilarutkan dalam dimetil sulfonat (DMSO) 4% (v/v). Kalus embriogen yang tidak direndam dalam EMS digunakan sebagai standar (EMS 0%). Eksplan digoyang dengan mesin penggoyang pada kecepatan 100 rpm selama 2 jam, dibilas dengan akuades steril, dikulturkan dalam media MK, dan diinkubasikan dalam ruang kultur bersuhu 25±2o C dengan penyinaran 1 000 lux menggunakan lampu TL selama 16 jam. Daya hambat (genotoksisitas) perlakuan EMS ditentukan dengan mengamati kemampuan
kalus
embriogen
yang
diberi
perlakuan
EMS
untuk
memproliferasikan tunas.
Keragaman fenotipik bibit abaka akibat perlakuan EMS. Kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS diproliferasikan dalam media induksi tunas (media MT, media MS dengan penambahan BAP 0.5 mg/l dan vitamin C 100 mg/l) sehingga berkembang menjadi tunas majemuk (multiple bud clumps [MBC]). MBC dipisah-pisah menjadi individu tunas dan diinduksi membentuk akar dalam media pengakaran (MP, media MS dengan penambahan arang aktif 2 g/l). Setelah tingginya mencapai ± 10 cm, dipilih secara acak 60 plantlet dari setiap perlakuan EMS untuk diaklimatisasi dengan cara menanam plantlet ke dalam gelas plastik 200 ml berisi pasir steril, menyiram bibit dengan larutan MS ¼ konsentrasi normal, dan meletakkan bibit di tempat teduh selama 7 hari. Bibit yang hidup setelah aklimatisasi dipindahkan ke rumah kaca dan
45
ditumbuhkan dalam kantong plastik (polybag) berukuran 15x15x30 cm berisi 5kg campuran tanah:pupuk kandang steril (1:1 v/v). Pengamatan keragaman fenotipe bibit abaka dilakukan saat bibit berumur 3-4 bulan.
HASIL
Induksi dan proliferasi kalus embriogen abaka. Abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang dikulturkan dalam media induksi kalus (MK) mampu berkembang menjadi kalus embriogen (Gambar 3.a). Keberadaan kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 disimpulkan berdasarkan adanya jaringan embrio somatik berbentuk jantung (heart shape) dan globular (globular shape) yang berkembang dari jaringan kalus (Gambar 3.b-c).
Daya hambat EMS terhadap proliferasi kalus embriogen. Pada umur 2 bulan, kalus embriogen dengan perlakuan standar (EMS 0%) memproliferasikan tunas per eksplan lebih banyak dibandingkan yang diberi perlakuan EMS (Gambar 3.d- f). Persentase eksplan bertunas dari abaka klon Tangongon dengan perlakuan standar mencapai 98% sedangkan untuk klon Sangihe-1 mencapai 100% (Tabel 5). Eksplan bertunas klon Tangongon pada perlakuan EMS 0.3% dan 0.4% mencapai 71% dan 81% sedangkan klon Sangihe1 mencapai 70% dan 76%. Pada perlakuan EMS 0.5% dan 0.6% eksplan bertunas klon Tangongon hanya mencapai 34% dan 47% sedangkan klon Sangihe-1 mencapai 42% dan 47% (Tabel 5). Kalus embriogen abaka dengan perlakuan standar mampu menghasilkan 20 tunas/eksplan (klon Tangongon) atau 22 tunas/eksplan (klon Sangihe-1). Pada perlakuan EMS 0.3% dan 0.4%, kalus embriogen abaka klon Tangongon menghasilkan rataan jumlah tunas per eksplan 5.5 dan 9.6 tunas, sehingga jumlah total tunas yang didapat jika dibandingkan dengan perlakuan standar menurun sebesar 80% (jumlah total tunas pada EMS 0.3% hanya 20% dari EMS 0%) atau menurun 60% (EMS 0.4%). Pada perlakuan EMS 0.5% atau 0.6%, rataan jumlah tunas abaka klon Tangongon hanya 3.9 atau 3.5 tunas per eksplan sedangkan jumlah total tunas yang didapat menurun sebesar 93% (EMS 0.5%) atau menurun
46
Tabel 5. Pengaruh perlakuan berbagai konsentrasi larutan mutagen EMS pada eksplan kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 terhadap persentase eksplan bertunas, jumlah tunas per eksplan, dan penurunan jumlah total tunas. Pengamatan dilakukan 5 bulan setelah perlakuan EMS. Klon abaka dan konsentrasi larutan EMS (%) Abaka klon Tangongon: 0 0.3 0.4 0.5 0.6 Abaka klon Sangihe-1: 0 0.3 0.4 0.5 0.6
Eksplan bertunas (%)
Jumlah tunas per eksplan
Penurunan jumlah total tunas (%)
98 71 81 34 47
20.0 a* 5.5 bc 9.6 b 3.9 bc 3.5 c
0 80 60 93 92
100 70 76 42 47
22.0 a* 9.8 b 5.8 c 10.8 b 9.6 b
0 69 80 79 79
Keterangan: Penurunan jumlah total tunas (PJT) dihitung dengan rumus: PJT=[(x0 *y 0 x1 *y 1 )/(x0 *y 0 )]*100%; x0 dan y0: berturut-turut adalah persentase eksplan bertunas dan jumlah tunas per eksplan pada perlakuan standar (larutan EMS 0%), sedangkan x1 dan y1: berturut-turut adalah persentase eksplan bertunas dan jumlah tunas per eksplan pada masing-masing perlakuan penambahan EMS (0.3%, 0.4%, 0.5%, atau 0.6%). *Untuk masing-masing klon abaka, angka dalam kolom yang diikuti oleh huruf yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan (DMRT) pada taraf a=0.05.
92% (EMS 0.6%) dibandingkan perlakuan standar (Tabel 5). Pola respon jumlah tunas per eksplan dan penurunan jumlah total tunas yang didapat dari abaka klon Sangihe-1 mirip dengan klon Tangongon. Perlakuan EMS terhadap kalus embriogen abaka klon Sangihe-1 menurunkan rataan jumlah tunas per eksplan dan menurunkan jumlah total tunas jika dibandingkan dengan perlakuan standar (Tabel 5).
Keragaman fenotipik bibit abaka akibat perlakuan EMS. Fenotipe varian untuk karakter kualitatif yang diamati diantara bibit abaka klon Tangongon dan klon Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen tanpa perlakuan EMS, yaitu varian daun variegata dan daun berkerut (klon Tangongon), ditambah varian tunas kerdil dan pelepah daun warna ungu
47
Tabel 6. Tipe dan persentase keragaman karakter kualitatif diantara populasi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan saat bibit abaka berumur 3 bulan setelah aklimatisasi. Klon abaka dan karakter varian Klon Tangongon: Daun Variegata Daun berkerut Kerdil Pelepah hitam Pelepah menyatu Batang ramping Total
Jumlah dan persentase varian diantara populasi bibit yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS 0% (56)* 4 (7)** 1 (2) 5 (9)
0.3% (49) 1 (2) 1 (2) 1 (2) 3 (6)
0.4% (55) 2 (4) 1 (2) 1 (2) 2 (4) 6 (12)
0.5% (52) 4 (8) 1 (2) 1 (2) 6 (12)
0.6% (55) 5 (9) 3 (5) 2 (4) 10 (18)
Klon Sangihe-1: 0% (43)* 0.3% (44) 0.4% (47) 0.5% (46) 0.6% (53) Daun Variegata 4 (9)** 3 (6) 1 (2) 1 (2) Daun berkerut 2 (5) Kerdil 1 (2) 2 (4) 1 (2) Pelepah hitam 1 (2) Pelepah menyatu Batang ramping Total 8 (18) 3 (6) 3 (6) 2 (4) Keterangan: *m(n) = angka menunjukkan m – konsentrasi larutan mutagen EMS dan n – jumlah bibit yang dievaluasi untuk masing-masing perlakuan mutagen EMS. **o(p) = angka menunjukkan o – jumlah bibit dengan fenotipe varian dan p – persentase bibit varian terhadap bibit yang dianalis is.
kehitaman (klon Sangihe-1). Pada populasi bibit yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS, selain empat macam fenotipe varian tersebut juga diamati adanya fenotipe varian pelepah daun menyatu dan batang ramping. Tipe varian, jumlah dan persentase varian ya ng diamati diantara populasi bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan atau tanpa perlakuan EMS dapat dilihat pada Tabel 6. sedangkan contoh bibit abaka dengan beberapa fenotipe varian yang diamati disajikan pada Gambar 4. Populasi bibit abaka yang didapat dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS secara umum mempunyai rataan panjang, lebar, dan rasio panjang/lebar daun serta rataan tinggi bibit mendekati bibit abaka standar yang diregenerasikan dari kalus embriogen tanpa perlakuan EMS (Tabel 7). Pada Gambar 5 dan 6 disajikan distribusi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan berdasarkan karakter panjang, lebar dan rasio panjang/lebar daun serta tinggi bibit di rumah kaca.
48
Tabel 7. Rataan berbagai karakter kuantitatif pada populasi bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan saat bibit abaka berumur 3 bulan setelah aklimatisasi. Klon abaka dan karakter varian Klon Tangongon: Tinggi bibit (cm) Panjang daun (cm) Lebar daun (cm) Ratio panjang:lebar
Nilai rataan peubah yang diamati diantara bibit varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS 0% (56)* 18.24 26.61 11.54 2.30
0.3% (49) 16.93 24.08 10.31 2.30
0.4% (55) 19.36 27.43 11.76 2.40
0.5% (52) 17.99 25.78 11.31 2.40
0.6% (55) 17.11 25.45 10.90 2.30
Klon Sangihe-1: 0% (43)* 0.3% (44) 0.4% (47) 0.5% (46) 0.6% (53) Tinggi bibit (cm) 13.86 12.75 11.39 13.72 14.08 Panjang daun (cm) 25.18 20.97 18.90 21.36 22.61 Lebar daun (cm) 9.61 8.33 8.22 9.17 9.61 Ratio panjang:lebar 2.30 2.50 2.40 2.30 2.40 Keterangan: *x(y) = angka menunjukkan x – konsentrasi larutan mutagen EMS dan y – jumlah bibit yang dievaluasi untuk masing-masing perlakuan mutagen EMS.
Hasil pengamatan menunjukkan pada populasi abaka bibit klon Tangongon terdapat 4 klon varian pada perlakuan EMS 0.3% dan masing- masing 2 klon varian pada EMS 0.5% dan 0.6% dengan fenotipe daun yang lebih pendek dari daun bibit abaka standar (Gambar 5). Masing- masing satu bibit varian dengan fenotipe daun yang lebih lebar dan rasio p/l daun yang lebih besar dari daun bibit abaka standar diamati pada populasi bibit dengan perlakuan EMS 0.5% (Gambar 5). Selain itu, terdapat sejumlah bibit varian klon Tangongon dengan tinggi yang lebih rendah dibandingkan dengan bibit standar (masing- masing 3 klon dari perlakuan EMS 0.3% dan 0.6% serta 2 klon dari EMS 0.5%) dan sejumlah bibit varian dengan tinggi bibit lebih tinggi dibandingkan dengan bibit standar (masingmasing 1 klon dari perlakuan EMS 0.4% dan 0.6%)(Gambar 5). Pada bibit abaka klon Sangihe-1 terdapat sejumlah bibit varian dengan panjang daun yang lebih kecil dari daun bibit abaka standar (masing- masing 3 klon dari perlakuan EMS 0.3% dan 0.4% serta 2 klon dari perlakuan EMS 0.5%) (Gambar 6). Tetapi bibit abaka varian dengan perubahan fenotipe lebar daun atau fenotipe tinggi tanaman tidak diamati diantara populasi abaka klon Sangihe-1 hasil perlakuan EMS. Semua bibit yang dihasilkan dari perlakuan EMS mempunyai kisaran lebar daun dan tinggi tanaman yang sama dengan bibt abaka standar (Gambar 6). Selain itu terdapat bibit varian dengan rasio panjang/lebar
49
daun yang lebih besar dari daun bibit abaka standar, ya itu masing- masing satu bibit dengan rasio p/l daun antara 3.1-3.5 dan rasio p/l daun > 3.5 dari perlakuan EMS 0.4% (Gambar 6).
PEMBAHASAN
Keefektifan induksi varian somaklonal dari kultur in vitro ditentukan oleh tersedianya metode yang efisien untuk meregenerasikan sel/jaringan yang telah mengalami proses dediferensiasi (jaringan kalus) menjadi plantlet. Hasil penelitian (Mak et al. 2004a) menunjukkan kalus embriogen merupakan eksplan yang memenuhi kriteria tersebut karena merupakan jaringan kalus yang mampu menghasilkan bibit dalam jumlah banyak melalui pembentukan embrio somatik. Bibit yang diregenerasikan dari kalus embriogen/embrio somatik telah terbukti mampu menghasilkan berbagai fenotipe varian (Widoretno et al. 2003; Yusnita et al. 2005). Induksi kalus embriogen abaka telah dilakukan dengan menggunakan media MK (Rahajeng 2006) tetapi dalam penelitian sebelumnya tidak dievaluasi keragaman genetika bibit yang didapat. Dalam penelitian ini ditunjukkan media MK mampu menginduksi pembentukan kalus embriogen dari eksplan. Evaluasi keragaman genetika bibit abaka yang didapat dari kalus embriogen juga telah dilakukan. Dalam percobaan ini, perlakuan EMS pada eksplan kalus embriogen abaka bersifat menghambat pertumbuhan dan perkembangan eksplan dan daya hambatnya tergantung pada konsentrasi. Bibit hasil regenerasi dari
kalus
embriogen abaka yang diberi perlakuan EMS 0.6% memiliki keragaman genetika lebih besar dibandingkan dengan yang berasal dari konsentrasi EMS lebih rendah. Pada penelitian sebelumnya dilaporkan perlakuan mutagen menghambat pertumbuhan serta multiplikasi tunas aksilar Musa sp. dan daya hambatnya meningkat sejalan dengan meningkatnya konsentrasi mutagen (Mak et al. 2004a). Daya
hambat
(genotoksisitas)
EMS
terhadap
pertumbuhan
dan
perkembanga n eksplan salah satunya diduga disebabkan oleh kerusakan DNA pada sel/jaringan eksplan yang diberi perlakuan mutagen (Gichner 2003). Setelah mengalami perbaikan DNA (DNA repair), mutasi dapat terjadi secara acak pada
50
gen-gen tertentu di dalam genom sel tanaman varian. Populasi bibit abaka klon Tangongon dan klon Sangihe-1 mempunyai tipe dan frekuensi fenotipe varian yang berbeda. Perbedaan repon antar kultivar tersebut mengilustrasikan pengaruh genetika terhadap tipe dan frekuensi bibit varian. Perbedaan respon antar klon abaka tersebut diduga juga berhubungan dengan perbedaan umur proliferasi kalus embriogen yang digunakan. Keragaman somaklonal pada tanaman pisang sangat dipengaruhi oleh genotipe yang digunakan, umur kultur dan frekuensi sub-kultur yang dilakukan (Strosse et al. 2004). Keberadaan fenotipe varian diantara populasi bibit abaka dari kalus embriogen tanpa perlakuan EMS mengindikasikan adanya sel/jaringan kalus yang telah mengalami mutasi (sel/jaringan varian) sebelum atau selama proses kultur in vitro. Sel/jaringan varian dapat muncul dalam kultur in vitro karena pengaruh berbagai faktor, antara lain: zat pengatur tumbuh dan sumber eksplan yang digunakan (Skirvin et al. 1994). Penggunaan zat pengatur tumbuh tertentu dalam media dapat menyebabkan perubahan jumlah dan struktur kromosom (Kumar & Matur 2004). Kecepatan multiplikasi sel/jaringan eksplan dalam media yang mengandung zat pengatur tumbuh tertentu juga dapat meningkatkan frekuensi terjadinya variasi somaklonal (Hwang & Ko 2004). Karakter varian somaklonal yang diamati diantara populasi bibit abaka secara umum kurang menguntungkan, antara lain: daun variegata, daun berkerut, batang kerdil, dan batang ramping. Daun variegata merupakan karakter varian yang paling banyak dijumpai diantara populasi bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen setelah diberi perlakuan EMS. Hal ini sejalan dengan hasil penelitian sebelumnya pada tanaman gandum (van Harten 1998). Kebanyakan varian daun variegata terjadi karena mutasi di dalam genom inti sel yang menyebabkan kelainan pada kloroplas (Chen et al. 2000; Sakamoto et al. 2002). Fenotipe varian lain yang frekuensinya tinggi diantara bibit abaka adalah varian daun berkerut dan batang kerdil. Pada tanaman pisang sejumlah fenotipe varian yang diamati meliputi antara lain varian daun variegata, varian bentuk daun, dan varian batang kerdil (dwarf), dan resistensi terhadap penyakit layu Fusarium (Hwang & Ko 1987; Hwang & Ko 2004).
51
Tanaman pisang pada umumnya mempunyai ratio panjang dan lebar daun 2.29 (Hwang & Ko 1987). Dalam penelitian ini, diperoleh varian bibit abaka dengan ratio panjang dan lebar daun > 3.1 (daun lebih sempit atau lebih panjang). Karakter varian dengan fenotipe tersebut diduga menguntungkan karena meningkatkan efisiensi penyerapan ene rji matahari dan mengurangi insiden kejadian penyakit. Dari penelitian yang dilakukan juga diperoleh beberapa varian dengan tinggi bibit lebih tinggi dari populasi bibit standar. Karakter tinggi tanaman merupakan karakter penting karena berpengaruh terhadap produktivitas serat abaka yang diekstraksi dari pelepah (batang semu). Fenotipe varian dapat dikelompokkan menjadi dua, yaitu: yang dikendalikan secara genetika dan diturunkan ke zuriatnya secara seksual atau yang dikendalikan secara epigenetika dan tidak diwariskan secara seksual. Untuk membuktikan hal ini, evaluasi fenotipe varian harus dilakukan pada generasi R0 (somaklon primer), generasi R1 (zuriat dari generasi R0), dan generasi- generasi selanjutnya. Fenotipe varian yang diamati diantara populasi bibit abaka dari kalus embriogen abaka dengan perlakuan EMS tidak dievaluasi sebagai varian yang dikendalikan secara genetika atau epigenetika karena abaka diperbanyak secara vegetatif sehingga tidak memproduksi biji hasil hibridisasi seksual.
SIMPULAN
Dari hasil percobaan dapat disimpulkan perlakuan EMS terhadap kalus embriogen abaka menghambat proliferasi tunas dan meningkatkan tipe varia n somaklonal diantara bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen. Tipe varian somaklonal yang dijumpai diantara bibit abaka antara lain: daun variegata, daun berkerut, pelepah berwarna ungu kehitaman, pelepah menyatu dan batang ramping. Keberadaan sejumlah fenotipe varian diantara bibit abaka hasil perlakuan EMS pada kalus embriogen mengindikasikan meningkatnya keragaman genetika bibit abaka sehingga membuka peluang penggunaan kalus embriogen yang dikombinasikan dengan perlakuan EMS untuk mendapatkan karakter unggul tertentu seperti resistensi terhadap layu Fusarium. Untuk itu perlu didukung dengan teknik seleksi in vitro menggunakan filtrat kultur Foc atau asam fusarat.
52
a
b
c
d
e
f
Gambar 3. Eksplan kalus embriogen dan perkembangan embrio somatik abaka dengan atau tanpa perlakuan EMS. (a) Close up eksplan kalus embriogen dengan ukuran 3x3x3 mm3 , (b) Embrio somatik abaka klon Tangongon (pembesaran 20x) berbentuk jantung (heart shape), (c) Embrio somatik abaka klon Sangihe-1 berbentuk globular (globular shape) pada fase polarisasi (pembesaran 10x), (d) proliferasi kalus embriogen tanpa perlakuan EMS menjadi tunas, (e) penghambatan proliferasi kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS 0.3% dan (f) yang diberi perlakuan EMS 0.5% - setelah 3 bulan dalam media proliferasi tunas.
b
a
normal
kerdil
dv ph
br
c
d
e
Gambar 4. Populasi bibit abaka varian, diregenerasikan dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan larutan mutagen EMS. (a) Representatif bibit abaka yang dievaluasi keragaman somaklonalnya, (b) Bibit varian dengan fenotipe kate (kerdil) dibandingkan dengan bibit normal hasil kultur jaringan (tanpa perlakuan EMS), (c) Bibit varian dengan fenotipe daun variegata (dv), (d) Bibit varian dengan fenotipe batang semu yang ramping (br), dan (e) bibit varian dengan pelepah berwarna ungu-kehitaman (ph). Pengamatan dilakukan pada saat bibit berumur 2 bulan sesudah aklimatisasi.
53
EMS 0.3% 0.4% 0.5% 0.6% 0%
5 6
9 1
3 2 4 5 4
2 2
4
8
21
19
20
30 28
33
40 20 14 18 14 18
Jumlah klon
60
0 <19.3 <25.3 <31.4 Kisaran panjang daun (cm)
43
52 41
40
1
1
7
6 6 3
3
6
20 6
Jumlah klon
60
>31.4
49 46
<13.3
0 <8.1
<14.0 <20.0 <25.9 Kisaran lebar daun (cm)
>25.9
40 34
35
36 36
1
2 3 4
2
9
13
20
15 13 18
40
9
Jumlah klon
60
0 <2.2
<2.6
<3.1
<3.5
>3.5
Kisaran rasio P/L daun
1
1
5
2 3
20
12 10 15
8 10 12 16 12
23
31 24 27 26 29
40
3
Jumlah klon
60
0 <9.7
<15.3 <21.0 <26.6 Kisaran tinggi bibit (cm)
>26.6
Gambar 5. Jumlah klon bibit varian, diregenerasikan dari kalus embriogen abaka klon Tangongon yang telah diberi perlakuan EMS, berdasarkan nilai panjang, lebar, rasio panjang/lebar daun (rasio p/l), dan tinggi bibit abaka yang ditumbuhkan di rumah kaca. Tanda panah menunjukkan bibit varian untuk masing-masing fenotipe.
54
EMS 0.3% 0.4% 0.5% 0.6% 0% 22 26
21
16
4 5
5
6 2
3
2
3
8
11
20
20
34
40
8
Jumlah klon
60
0 <13.3
<19.3
<25.3
<31.4
>31.4
Kisaran panjang daun (cm)
40 3 5
20
11
24 23
32 29
40
13 16
Jumlah klon
60
0 <8.1
<14.0
<20.0
<25.9
>25.9
Kisaran lebar daun (cm)
32
1
1
2 2
4
2
1 1
10
12
20
27
25 26
34
40
9 7
Jumlah klon
60
0 <2.2
<2.6
<3.1
<3.5
>3.5
Kisaran rasio P/L daun
23 26 26 24
35
40
8 8 2
2
4
8
11
13
20 6
Jumlah klon
60
0 <9.7
<15.3
<21.0
<26.6
>26.6
Kisaran tinggi bibit (cm)
Gambar 6. Jumlah klon bibit varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen abaka klon Sangihe-1 yang telah diberi perlakuan EMS, berdasarkan nilai panjang, lebar, rasio panjang/lebar daun (rasio p/l), dan tinggi bibit abaka yang ditumbuhkan di rumah kaca. Tanda panah menunjukkan bibit varian untuk masing-masing fenotipe.
55
DAFTAR PUSTAKA
Ahloowalia BS, Maluszynski M. 2001. Induced mutation - A new paradigm in plant breeding. Euphytica 118: 167-173. Ahloowalia BS, Maluszynski M, Nichterlein K. 2004. Global impact of mutationderived varieties. Euphytica 135:187-204. Arumingtyas EL, Indriyani S. 2005. Induksi variabilitas genetika percabangan tanaman kenaf (Hibiscus cannabinus L.) dengan mutagen kimia Ethyl Methane Sulfonate (EMS). Natural J 8:24-28. Chen M, Choi Y, Voytas DF, Rodermel S. 2000. Mutations in the Arabidopsis VAR2 locus cause leaf variegation due to the loss of chloroplast FtsH protease. Plant J 22:303-313. Damayanti F. 2004. Seleksi in vitro tanaman abaka (Musa textilis Nee) dengan filtrat Fusarium oxysporum untuk ketahanan terhadap penyakit layu Fusarium. Bioscientiae 1:11-22. Gichner T, Stavevra DA, van Breusegem F. 2001. O-phenylene diamine-induce DNA damage and mutagenicity in tobacco seedlings is light-dependent. Mutation Res 495:117-125. Gichner T. 2003. Differential genotoxicity of ethyl methanesulphonate, N-ethylN-nitrosourea and maleic hydrazide in tobacco seedlings based on data of the Comet assay and two recombination assay. Mutation Res 538:171-179. Hwang SC, Ko WH. 1987. Somaclonal variation of bananas and screening for resistance to Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ. De Langhe EA (ed.) Banana and Plantain Breeding Strategies. Canberra: ACIAR. Hlm. 151156. Hwang SC, Ko WH. 2004. Cavendish banana cultivars resistant to Fusarium wilt acquired through somaclonal variation in Taiwan. Plant Dis 88:580-588. Kumar PS, Matur, VL. 2004. Chromosomal instability in callus culture of Pisum sativum. Plant Cell Tiss Org Cult 78: 267-271. Mak C, Ho YW, Liew KW, Asif JM. 2004a. Biotechnology and in vitro mutagenesis for banana improvement. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. Hlm. 51-68. Mangal M, Sharma DR. 2002. In vitro mutagenesis and cell selection for the induction of black rot resistance in cauliflower. J Hort Sci Biotech 77:268272.
56
Rahajeng W. 2006. Interaksi genotipe klon-klon abaka (Musa textilis Nee) dengan beberapa komposisi media pada kultur in vitro. [Skripsi]. Malang: Jurusan Budidaya Pertanian, Faperta, Universitas Brawijaya. Roux NS. 2004. Mutation induction in Musa – a review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. Hlm. 21-29. Sakamoto W, Tamura T, Hanba-Tomita Y, Sodmergen, Murata M. 2002. The VAR1 locus of Arabidopsis encodes a chloroplastic FtsH and is responsible for leaf variegation in mutant alleles. Genes to Cell 7:769-780. Schierholt A, Rucker B, Becker HC. 2001. Inheritance of high oleic acid mutations in winter oilseed rape (Brasica napus L.). Crop Sci 41:1444-1449. Skirvin RM, McPheeters KD, Norton M. 1994. Sources and frequency of somaclonal variation. HortScience 29:1232-1237. Spasibionek S. 2006. New mutants of winter rapeseed (Brasica napus L.) with changed fatty acid composition. Plant Breeding 125:259-267. Strosse H, Van den Houwe I, Panis B. 2004. Banana cell and tissue culture – a review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 1-10. van Harten AM. 1998. Mutation Breeding: Theory and Practical Application. Cambridge: Cambridge Univ Pr. hlm. 111-203. Widoretno W. Harran S, Sudarsono. 2003. Keragaman karakter kualitatif dan kuantitatif pada populasi tanaman somaklon kedelai dari embrio somatik hasil seleksi in vitro. Hayati 10:110-117. Yusnita, Widodo, Sudarsono. 2005. In vitro selection of peanut somatic embryos on medium containing culture filtrate of S. rolfsii and plantlet regeneration. Hayati 12:50-56.
57
BAB V
KERAGAAN DI LAPANGAN DARI KLON VARIAN ABAKA YANG DIINDUKSI DENGAN ETHYL METHANESULPHONATE (EMS)
ABSTRAK
Mutasi in vitro dengan perlakuan mutagen maupun tanpa perlakuan mutagen dapat digunakan untuk meningkatkan keragaman genetika abaka melalui keragaman somaklonal. Penelitian yang dilakukan bertujuan: (1) menentukan konsentrasi optimum EMS untuk induksi keragaman somaklonal dalam kultur kalus embriogen abaka, (2) meregenerasikan bibit abaka varian dari kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS, dan (3) mengevaluasi tipe dan frekuensi keragaman karakter kualitatif dan kuantitatif yang muncul diantara populasi tanaman mutan abaka yang didapat dari regenerasi kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS. Hasil penelitian menunjukkan bahwa konsentrasi optimum mutagen EMS untuk menginduksi keragaman somaklonal adalah 0.6%. Varian yang diperoleh menunjukkan karakter kualitatif dan kuantitatif abnormal. Tipe varian tersebut umumnya bersifat negatif dan kurang menguntungkan dibandingkan dengan populasi standar. Tipe dan frekuensi keragaman kualitatif dan kuantitatif pada klon Tangongon berbeda dengan klon Sangihe-1, mengindikasikan adanya pengaruh genotipe terhadap variasi somaklonal. Varian dari abaka klon Tangongon dengan produktivitas serat tertinggi (161.0 g dan 154.0 g/tanaman) diperoleh dari perlakuan EMS 0.3% (klon T1 28.1.1 dan T1 11.2.2), sedangkan dari klon Sangihe-1, hasil serat tertinggi (35.0 g dan 40.0 g/tanaman) diperoleh dari perlakuan EMS 0.6% (S4 28.1.0 dan S4 56.2.0 lines). Produksi serat tanaman kontrol klon Tangongon dan Sangihe-1 masing- masing 193.0 g dan 70 g/tanaman.
Kata kunci: keragaman somaklonal, EMS, mutagenesis, in vitro, Musa textilis
58
FIELD PERFORMANCE OF ABACA VARIANT LINES INDUCED BY ETHYL METHANESULPHONATE [EMS]
ABSTRACT
In vitro mutation with or without mutagen treatment can be used to increase genetic variability of abaca by inducing somaclonal variation. The objectives of the experiments were to (1) determine optimum concentration of EMS to induce abaca somaclonal variation, (2) produce abaca lines from EMS treated embryogenic calli and evaluate their performance in the field, and (3) evaluate type and frequency of qualitative and quantitative variant characters among regenerated abaca lines. The results showed that EMS treatment on abaca embryogenic calli induced variation and the optimum EMS concentratio n was 0.6%. The variants exhibited a number of abnormal qualitative and quantitative characters. They were generally negative characters since they showed less value as compared to control population. The presence of different types of qualitative and quantitative variant characters was genotype dependent. Variants from Tangongon abaca clones with the highest yield of fibre (161.0 g and 154.0 g/plant) were obtained from 0.3% EMS treatment (T1 28.1.1 and T1 11.2.2 lines). While variants from Sangihe-1 abaca clones with the highest yield of fibre (35.0 g and 40.0 g/plant) were obtained from 0.6% EMS treatment (S4 28.1.0 and S4 56.2.0 lines). The fibre yield of control Tangongon and Sangihe-1 clones were 193.0 g and 70 g/plant, respectively.
Keywords : Induced mutation, somaclonal variation, field evaluation, Musa textilis PENDAHULUAN
Pengembangan klon unggul abaka melalui hibridisasi relatif sulit dilakukan karena sempitnya keragaman genetika tanaman ini. Menurut Roux (2004) peningkatan keragaman genetika tanaman Musa spp. termasuk abaka, yang diperbanyak secara vegetatif biasanya sulit untuk dilakukan melalui hibridisasi. Sebagai alternatif, peningkatkan keragaman genetika tanaman abaka dapat dilakukan dengan induksi keragaman somaklonal dalam kultur in vitro (Ahloowalia & Maluszynski 2001) dan bilamana perlu dikombinasikan dengan induksi mutasi pada eksplan serta seleksi in vitro untuk mengidentifikasi varian dengan karakter unggul tertentu. Induksi mutasi dalam kultur in vitro telah
59
digunakan untuk meningkatkan keragaman genetika tanaman apel, berbagai jenis bunga (anyelir, mawar, krisan, dan tulip), kentang, nenas, pisang, ubi jalar, dan ubi kayu (Ahloowalia & Maluszynski 2001). Mutasi gen dapat diinduksi menggunakan radiasi sinar γ atau mutagen kimia. Mutagen kimia yang sering digunakan antara lain kolkisin untuk penggandaan kromosom dan etil metansulfonat (EMS) untuk menginduksi mutasi acak. Senyawa EMS merupakan senyawa alkil yang berpotensi sebagai mutagen untuk tanaman tingkat tinggi. Dibandingkan dengan mutagen kimia lainnya, EMS paling banyak digunakan karena mudah dibeli, murah harganya dan tidak bersifat mutagenik setelah terhidrolisis (van Harten 1998). Induksi keragaman genetika tanaman menggunakan EMS telah berhasil dilakukan pada berbagai spesies tanaman, seperti tembakau (Gichner et al. 2001), Arabidopsis (Chen et al. 2000; Sakamoto et al. 2002), kubis bunga (Mangal & Sharma, 2002), pisang (Roux 2004), kenaf (Arumingtyas & Indriyani 2005), dan Brasica napus (Schierholt et al. 2001; Spasibionek 2006). Tujuan umum penelitian adalah meningkatkan keragaman genetika abaka dengan perlakuan EMS pada kultur kalus embriogen dan mengidentifikasi fenotipe varian diantara populasi abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS, yang ditumbuhkan di di lapangan. Tujuan khusus penelitian adalah: (1) menetapkan konsentrasi EMS yang mampu menginduksi keragaman somaklonal pada tanaman abaka, (2) meregenerasikan bibit abaka varian dari kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS, dan (3) mengevaluasi keragaan karakter kualitatif dan kuantitatif tanaman varian abaka di lapangan. Hasil percobaan digunakan untuk mengidentifikasi klon abaka varian dengan karakter kuatitatif dan kualitatif unggul tertentu.
BAHAN DAN METODE
Induksi varian dengan EMS dan regenerasi tanaman. Sebanyak 300 potong kalus embriogen abaka (ukuran 3x3x3 mm3 ) direndam dalam berbagai konsentrasi larutan EMS (0%, 0.3, 0.4%, 0.5%, atau 0.6%) dan digojog selama 2 jam dengan kecepatan 60 rpm. Setelah diproliferasi selama
60
enam bulan dalam media induksi kalus (MK) yaitu: media MS (Murashige & Skoog 1962) dengan penambahan BAP 5 mg/l, thidiazuron (TDZ) 0,4 mg/l dan vitamin C 100 mg/l. Selanjutnya kalus embriogen abaka ditumbuhkan hingga membentuk tunas dalam media induksi tunas (MT) yaitu: media MS dengan penambahan BAP 0.5 mg/l dan vitamin C 100 mg/l. Tunas abaka yang didapat ditumbuhkan dalam media perakaran (media MS dengan penambahan arang aktif 1 g/l) hingga membentuk plantlet. Plantlet abaka varian yang telah berakar ditanam dalam pot plastik berisi pasir steril, diaklimatisasi selama satu minggu sebelum dipindahkan ke rumah kaca. Setelah aklimatisasi, bibit abaka dipindahkan ke dalam kantong plastik (polybag, dengan ukuran 15x15x30 cm) yang berisi media campuran tanah:pasir (2:1 b/b) 5 kg dan dipelihara di rumah kaca hingga bibit berumur 5 bulan. Bibit abaka sehat dan tidak menunjukkan gejala serangan hama atau penyakit dipilih dan ditanam di lapangan.
Penanaman bibit abaka varian di lapangan. Bibit abaka varian yang telah disiapkan, ditanam di lapangan dengan jarak 2 m antar baris dan 2 m dalam baris (2x2 m) dalam lubang tanam berukuran 25x25x25 cm (p x l x d). Dalam setiap lubang tanam dimasukkan pupuk kandang (kotoran sapi atau kambing) 7.5 kg pada saat 7 hari menjelang tanam. Unit percobaan terdiri atas satu tanaman dan untuk masing- masing perlakuan konsentrasi EMS ditanam 40 tanaman. Dalam percobaan ini, pemeliharaan tanaman yang dilakukan disesuaikan dengan kondisi di lapangan, meliputi penyiangan gulma, penggemburan tanah, pengairan dan pembuangan daun-daun yang telah kering. Pemupukan dengan pupuk ZA 1 kg/rumpun tanaman abaka diberikan setiap 6 bulan. Kondisi populasi tanaman abaka yang ditanam di lapangan setelah berumur 16 bulan dapat dilihat pada Gambar 1.a.
Karakter kualitatif tanaman di lapangan. Populasi tanaman abaka yang ditanam di lapangan dievaluasi berbagai karakter kualitatifnya. Populasi tanaman abaka yang diberi perlakuan EMS 0%, digunakan sebagai populasi standar. Setiap karakter kualitatif tanaman hasil
61
perlakuan EMS, yang menyimpang dari klon abaka awal dicatat sebagai karakter varian dan dihitung frekuensinya.
Karakter kuantitatif tanaman di lapangan. Karakter kuantitatif yang diamati pada fase pertumbuhan vegetatif meliputi tinggi tanaman, lingkar batang, panjang dan lebar daun. Pengamatan dilakukan setiap 2 bulan, sejak tanaman berumur 1 bulan hingga 16 bulan setelah tanam di lapangan. Karakter kuantitatif yang dievaluasi pada saat panen, meliputi bobot batang semu, bobot dan jumlah pelepah, berat serat kering, rendemen serat dari batang dan pelepah, dan kekuatan serat. Untuk masing- masing peubah, nilai pengamatan dikelompokkan ke dalam 5 kelas, dan individu tanaman yang menyimpang dari sebaran nilai pengamatan dari tanaman standar dianggap sebagai varian. Kualitas warna serat diduga berkorelasi dengan keberadaan tipe sel tertentu (sel getah) di dalam jaringannya. Pewarnaan kalus embriogen yang berkembang dalam media MT dengan pewarna biru metilen (methylene blue) dan diikuti dengan pengamatan jaringan menggunakan mikroskop dilakukan untuk menduga keterkaitan antara keberadaan sel getah dengan warna serat yang dipanen.
HASIL
Karakter kualitatif tanaman di lapangan. Karakter kualitatif varian yang diamati diantara populasi abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 hasil kultur jaringan tanpa perlakuan EMS meliputi daun variegata, daun berkerut, ujung daun mengecil, dan tanaman kerdil. Pada populasi tanaman yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS, terdapat sejumlah karakter varian tambahan yaitu tepi daun menggulung, warna daun kekuningan, dan duduk daun berhadapan seperti kipas. Tipe varian serta jumlah dan persentase tanaman varian yang diamati diantara populasi tanaman abaka di lapangan dapat dilihat pada Tabel 8. Contoh karakter kualitatif varian yang diamati diantara populasi tanaman abaka di lapangan disajikan pada Gambar 7.b-f.
62
Tabel 8. Tipe karakter kualitatif varian dan frekuensinya diantara populasi abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan terhadap tanaman di lapangan hingga 16 bulan. Klon abaka dan karakter kualitatif varian Abaka klon Tangongon:
Jumlah tanaman varian dan persentasenya pada EMS: 0% 0.3% 0.4% 0.5% 0.6%
o Daun variegata o Daun berkerut o Tepi daun menggulung o Ujung daun mengecil o Warna daun kekuningan o Tanaman kerdil o Posisi duduk daun seperti kipas Abaka klon Sangihe-1:
4 (10) 8 (20)
15 (37.5)
4 (10)
4 (10)
o Daun variegata o Daun berkerut o Tepi daun menggulung o Ujung daun mengecil o Warna daun kekuningan o Tanaman kerdil o Posisi duduk daun seperti kipas
3 (7.5) 4 (10)
2 (5) 5 (12.8) 1 (2.6) 1 (2.6) 2 (5) 6 (15)
2 (5) 4 (10) 2 (5) 2 (5) 6 (15)
2 (5) 7 (17.5)
1 (2.5) 5 (12.5)
1 (2.5) 1 (2.6) 2 (5)
1 (2.8) 1 (2.5)
1 (2.5) 3 (7.5)
8 (21)
2 (5)
7 (17.9)
4 (11) 1 (2.8)
1 (2.6)
Karakter kuantitatif tanaman di lapangan. Populasi tanaman abaka klon Tangongon yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS setelah ditanam di lapangan mempunyai rataan yang lebih rendah dibandingkan populasi standar (EMS 0%) untuk sebagian besar karakter kuantitatif yang diamati (Tabel 9). Tetapi untuk kekuatan serat, nilai rataan populasi hasil perlakuan EMS 0.4% lebih tinggi dibandingkan EMS 0%. Berbagai karakter kuantitatif pada populasi tanaman abaka klon Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS memiliki nilai rataan yang bervariasi dibandingkan dengan populasi standar (Tabel 9). Populasi dengan perlakuan EMS mempunyai nilai rataan panjang serat, rendemen serat, dan jumlah tanaman produktif per rumpun yang lebih tinggi dibandingkan populasi standar. Populasi yang dihasilkan dari perlakuan EMS 0.5% mempunyai nilai rataan lebar daun, rasio p/l daun, tinggi tanaman, lingkaran batang, bobot serat, panjang serat, dan kekuatan serat yang sama atau lebih tinggi dari populasi standar (Tabel 9).
63
Tabel 9. Rataan karakter kuantitatif tanaman pada populasi abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS. Pengamatan dilakukan terhadap tanaman di lapangan hingga 16 bulan. Karakter kuantitatif
0%
Nilai rata-rata populasi pada perlakuan EMS: 0.3% 0.4% 0.5% 0.6%
Abaka klon Tangongon o Panjang daun (cm) o Lebar daun (cm) o Ratio p:l daun o Tinggi tanaman (cm) o Lingkar Batang (cm) o Bobot Batang (kg) o Jumlah Pelepah o Bobot Pelepah (kg) o Bobot serat (g) o Panjang serat (cm) o Kekuatan serat (g/tex) o Rendemen serat dari batang (%) o Rendemen serat dari pelepah (%) o Jumlah Anakan o Tanaman produktif per rumpun
167.6 53.9 3.1 181.8 36.4 7.2 10.6 5.6 108.9 150.8 37.8
143.2 49.3 2.9 152.7 32.0 5.4 9.2 4.0 74.4 129.7 36.5
128.8 48.0 2.7 137.3 29.9 4.2 8.7 3.1 48.8 119.0 38.5
110.8 44.2 2.5 116.0 26.2 3.5 7.4 2.4 38.0 112.7 35.6
104.2 40.6 2.6 107.3 23.7 2.5 7.0 1.8 32.2 103.6 34.8
1.5
1.3
1.2
1.0
1.1
1.9
1.8
1.5
1.5
1.6
6.3
5.3
5.0
4.4
4.4
5.4
4.3
5.1
4.8
4.7
98.6 33.8 2.9 101.6 21.8 1.9 7.7 1.5 26.0 94.6 33.0
94.4 33.3 2.7 93.4 21.5 1.9 6.6 1.4 27.6 96.5 32.9
94.3 31.2 3.0 98.0 19.8 1.7 6.7 1.2 25.7 99.7 32.7
98.3 31.2 3.2 102.7 21.7 2.0 6.2 1.4 31.6 104.8 34.4
83.7 28.1 3.0 87.9 17.5 1.2 5.4 0.8 23.5 96.6 32.3
1.3
1.7
1.3
1.3
1.4
1.7
1.8
2.0
1.9
1.9
6.9
5.4
6.2
4.8
4.6
5.4
4.3
6.4
6.1
5.9
Abaka klon Sangihe-1 o Panjang daun (cm) o Lebar daun (cm) o Ratio p:l daun o Tinggi tanaman (cm) o Lingkar Batang (cm) o Bobot Batang (kg) o Jumlah Pelepah o Bobot Pelepah (kg) o Bobot serat (g) o Panjang serat (cm) o Kekuatan serat (g/tex) o Rendemen serat dari batang (%) o Rendemen serat dari pelepah (%) o Jumlah Anakan o Tanaman produktif per rumpun
Karakter kuantitatif dari populasi abaka klon Tangongon dengan perlakuan EMS yang menyebar dengan kisaran sama dengan sebaran individu pada populasi standar adalah rasio p/l daun, jumlah anakan per rumpun, bobot serat dan pelepah per tanaman, serta rendemen serat. Sedangkan karakter kuantitatif yang menyebar di luar sebaran individu pada populasi standar adalah panjang dan lebar daun,
64
tinggi dan lingkaran batang, jumlah pelepah dan panjang serat per tanaman, serta kekuatan serat. Individu tanaman pada populasi abaka klon Tangongon dengan perlakuan EMS yang mempunyai nilai karakter kuantitatif di luar sebaran nilai individu pada populasi standar dikelompokkan sebagai varian, yang pada klon Tangongon merupakan varian negatif (nilainya lebih rendah dari tana man standar). Contoh sebaran nilai individu untuk karakter panjang dan bobot serat per tanaman, bobot pelepah per tanaman, serta tinggi batang dari abaka abaka klon Tangongon dengan atau tanpa perlakuan EMS dapat dilihat pada Gambar 8. Pada Tabel 10 disajikan karakter kuantitatif dari klon abaka klon Tangongon varian terpilih dengan bobot serat per tanaman yang tertinggi untuk masing- masing perlakuan EMS (0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%) serta perlakuan standar (EMS 0%). Karakter kuantitatif dari populasi abaka klon Sangihe-1 dengan perlakuan EMS yang menyebar dengan kisaran sama dengan sebaran individu pada populasi standar adalah panjang, lebar dan rasio p/l daun, tinggi, lingkaran dan bobot batang, jumlah anakan per rumpun, bobot pelepah per tanaman, panjang serat per tanaman, bobot serat per tanaman, serta rendemen serat. Sedangkan karakter kuantitatif yang menyebar di luar sebaran individu pada populasi standar adalah jumlah pelepah per tanaman dan kekuatan serat. Individu tanaman pada populasi abaka klon Sangihe-1 dengan perlakuan EMS yang mempunyai nilai karakter kuantitatif di luar sebaran nilai individu pada populasi standar dan merupakan varian negatif (nilainya lebih rendah dari tanaman standar) adalah jumlah pelepah per tanaman sedangkan yang merupakan varian yang positif adalah kekuatan serat. Contoh sebaran nilai individu untuk karakter bobot dan kekuatan serat per tanaman, jumlah pelepah per tanaman, serta tinggi batang dari abaka abaka klon Sangihe-1 dengan atau tanpa perlakuan EMS dapat dilihat pada Gambar 9. Pada Tabel 10 disajikan karakter kuantitatif dari klon abaka klon Sangihe-1 varian terpilih dengan bobot serat per tanaman yang tertinggi untuk masing- masing perlakuan EMS (0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%) serta perlakuan standar (EMS 0%). Hasil pengamatan karakter kualitatif dan kuantitatif menunjukkan bahwa tanaman abaka varian banyak terdapat pada populasi yang diregenerasikan dari
65
kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS 0.4-0.6% (Tabel 8, Gambar 8-9). Populasi bibit abaka yang didapat dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS secara umum mempunyai warna serat yang berbeda (Gambar 7.g) antara klon Tangongon (warna serat putih) dan Sangihe-1 (warna serat lebih gelap). Pada jaringan klon Sangihe-1 terdapat sel getah yang menyerap pewarna biru metilen (Gambar 7.h) sedangkan pada klon Tangongon tidak terdapat. Hal ini diduga berkorelasi dengan warna serat abaka yang dihasilkan oleh kedua klon tersebut.
Tabel 10. Karakter kuantitatif tanaman abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 varian dengan hasil serat per tanaman tertinggi untuk masing- masing perlakuan EMS 0.3%, 0.4%, 0.5% dan 0.6% dan perlakuan standar (EMS 0%). No. Klon varian
Rasio p/l daun
Batang: Tg
Lkr
Pelepah: Bbt
Bbt
Serat kering:
Jml
Pjg
Bbt
Kek
Abaka klon Tangongon: EMS 0.3%: T1 28.1.1 T1 11.2.2 EMS 0.4%: T2 6.1.0 T2 85.1.0 EMS 0.5%: T3 13.1.0 T3 58.5.0 EMS 0.6%: T4 16.2.0 T4 44.1.3 EMS 0%: TK 13.2 TK 72.3
2.9 2.8
196.3 126.5
42.8 37.1
9.310 11.740
7.890 8.850
12.0 12.0
157.2 168.6
161.0 154.0
40.1 43.4
3.0 2.4
170.0 155.5
36.8 37.3
7.710 6.860
6.570 5.660
12.0 10.0
157.6 122.4
107.0 106.0
44.1 39.7
2.7 2.7
147.6 146.5
33.9 34.6
5.340 5.740
3.720 3.880
8.0 8.0
138.0 146.3
78.0 73.0
32.5 32.7
2.7 2.7
170.5 146.0
35.5 29.9
7.010 4.620
5.930 3.620
12.0 9.0
135.4 143.1
86.0 67.0
34.9 39.9
3.6 3.2
237.8 210.5
51.7 12.630 9.700 45.5 11.450 9.050 Abaka klon Sangihe-1:
12.0 12.0
181.3 173.4
193.0 188.0
32.7 40.9
EMS 0.3%: o S1 16.2.9 3.3 114.6 27.8 3.520 2.530 7.0 106.8 45.0 o S1 10.1.4 2.9 107.5 24.9 2.740 2.240 8.0 105.0 42.0 EMS 0.4%: o S2 59.1.4.1 3.7 136.5 38.1 3.680 2.800 8.0 127.0 59.0 o S2 70.1.0 3.7 132.3 27.5 3.190 2.150 7.0 107.4 59.0 EMS 0.5%: o S3 16.1.3 3.6 132.8 30.2 3.840 3.090 9.0 127.6 74.0 o S3 47.2.4 4.0 147.9 30.0 4.170 3.260 8.0 131.0 65.0 EMS 0.6%: o S4 28.1.0 3.4 118 23.3 2.090 1.180 8.0 106.5 35.0 o S4 56.2.0 3.1 103.7 24.6 2.530 2.040 8.0 96.0 40.0 EMS 0%: o SK 61.3.1 3.7 151.5 31.2 4.660 3.790 9.0 146.0 70.0 o SK 39.2.5 3.6 145.4 28.8 3.750 2.860 8.0 140.4 60.0 Keterangan: Tg: tinggi, Lkr: lingkar, Bbt: bobot, Jml: jumlah, Pjg: panjang, Kek: kekuatan
38.0 35.3 40.9 30.5 38.6 40.0 37.9 27.5 34.2 32.1
66
PEMBAHASAN
Perlakuan EMS pada kalus embriogen abaka menyebabkan munculnya varian untuk sifat kualitatif tanaman, yang meliputi morfologi daun dan pertumbuhan tanaman yang abnormal. Selain itu, perlakuan EMS juga menurunkan berbagai sifat kuantitatif dari tanaman abaka varian yang diuji di lapangan. Peningkatan konsentrasi EMS yang diberikan cenderung menghasilkan tanaman varian dengan sifat kuantitatif yang semakin menurun dibandingkan dengan populasi standar. Penurunan sifat kuantitatif tanaman diduga disebabkan oleh mutasi acak (random mutation) yang terjadi akibat perlakuan mutagen (Gichner 2003), seperti EMS yang digunakan dalam penelitian. Meskipun tidak bersifat letal, mutasi yang terjadi dapat menon-aktifkan sejumlah gen yang mengendalikan sifat kualitatif maup un kuantitatif di dalam genom sel tanaman varian (Ahloowalia 1986). Secara umum, karakter kualitatif dan kuantitatif varian yang diamati diantara populasi tanaman abaka hasil perlakuan EMS tidak menguntungkan, antara lain: daun variegata dan berbagai kelainan morfologi daun. Daun variegata merupakan karakter varian yang paling banyak dijumpai dalam penelitian ini. Hasil penelitian sebelumnya menunjukkan varian daun variegata terjadi karena mutasi gen tunggal dalam genom inti yang menyebabkan kelainan pada kloroplas, seperti degradasi protein tilakoid atau rusaknya plastida (Chen et al. 2000; Sakamoto et al. 2002). Tinggi dan bobot batang semu merupakan karakteristik penting yang terkait dengan produksi serat per tanaman karena serat abaka diperoleh dari batang semunya. Klon varian yang mempunyai tinggi tanaman dan bobot batang semu lebih tinggi dari populasi standar tidak berhasil diperoleh. Sejumlah varian dari klon Sangihe-1 hasil perlakuan EMS diketahui mempunyai kekuatan serat yang lebih tinggi dibandingkan populasi standar (>41.38 g/tex). Klon abaka varian tersebut adalah: S1 38.7.0, S2 89.2.2, dan S3 64.1.1. Tetapi meskipun mempunyai kekuatan serat yang lebih baik, daya hasil serat masing- masing klon varian tersebut hanya 25 g, 20 g, dan 34 g/tanaman. Secara umum, warna serat abaka yang dihasilkan dari abaka klon
67
Tangongon berbeda dengan Sangihe-1. Warna serat klon Sangihe-1 cenderung lebih gelap (coklat tua) dibandingkan dengan klon Tangongon (putih). Perbedaan warna serat yang diamati diduga berhubungan dengan keberadaan sel getah di dalam jaringan tanamannya. Sel getah diketahui mengandung berbagai senyawa kimia, antara lain: tanin dan amilosa yang dapat menyebabkan timbulnya warna coklat. Dugaan ini dibuktikan dengan adanya sel getah pada jaringan abaka klon Sangihe-1 yang dapat menyerap pewarna biru metilen, sedangkan pada jaringan abaka klon Tangongon tidak terdapat sel getah tersebut. Tipe varian kualitatif dan kuantitatif diantara populasi tanaman abaka klon Tangongon dengan perlakuan EMS umumnya lebih banyak dibandingkan dengan klon Sangihe-1, yang mengilustrasikan adanya pengaruh genetika tanaman terhadap keberadaan varian. Pada penelitian sebelumnya telah dilaporkan, variasi somaklonal pada tanaman pisang dipengaruhi oleh kultivar yang digunakan, umur kultur dan frekuensi sub-kultur yang dilakukan (Strosse et al. 2004).
SIMPULAN
Dari hasil percobaan dapat disimpulkan perlakuan EMS pada kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 berhasil menginduksi keragaman. Keberhasilan menginduksi varian diantara populasi yang diuji juga ditunjukkan dengan adanya sejumlah karakter kualitatif yang abnormal. Untuk karakter kuantitatif, kebanyakan varian yang didapat bersifat negatif, sehingga nilai karakter kuantitatif yang diamati pada individu varian lebih rendah dibandingkan populasi standar (EMS 0%). Konsentrasi EMS yang banyak menghasilkan keragaman somaklonal adalah 0.4-0.6%. Namun, varian dengan hasil serat per tanaman tertinggi untuk klon Tangongon diperoleh dari perlakuan EMS 0.3%, yaitu klon T1 28.1.1 dan T1 11.2.2 dengan hasil serat per tanaman masing- masing 161 g dan 154 g/tanaman, sedangkan untuk klon Sangihe-1 dari perlakuan EMS 0.6%, yaitu klon S4 28.1.0 dan S4 56.2.0 dengan hasil serat per tanaman masing- masing 35 g dan 40 g/tanaman. Klon Tangongon dan Sangihe-1 standar yang tertinggi hasil seratnya masing- masing 193 g dan 70 g/tanaman.
68
a
b
c
d
e
f
Sh
Tg g
g
Gt
h
Gambar 7. (a) Populasi tanaman abaka yang ditumbuhkan di lapangan, (b) daun variegata pada tanaman induk dan anakannya, (c) Tanaman abaka varian dengan fenotipe kate (kerdil), (d) daun berkerut dan tepi daun menggulung, (e) daun berkerut, (f) duduk daun berhadapan, seperti kipas, (g) Perbedaan warna serat antara klon Sangihe-1 dan Tangongon, (h) sel getah (gt) yang diamati diantara sel-sel dari jaringan kalus embriogen abaka klon Sangihe-1 (pembesaran 20x).
69
EMS: 0.3% 0.5% 0%
0.4% 0.6%
19 3
2 1 3
5 4
7
9
13
16
16
20
27 22
17
40
10
Jumlah klon
60
0 <93.7
EMS: 0.3% 0.5% 0%
>159.0
0.4% 0.6%
2
3
7
10
11
14 6 6
4
20
17 13
22 24 24
40
11
Jumlah klon
60
<126.3 <159.0 Kisaran panjang serat (cm)
0 <51.3
<98.5 <145.8 Kisaran bobot serat (g/tanaman)
>145.8
17 3
1
2
3
6
7
12 7
20
0.4% 0.6%
19 24 16
26
40
EMS: 0.3% 0.5% 0%
10 11 16
Jumlah klon
60
0 <2493
<4895 <7298 >7298 Kisaran bobot pelepah (g/tanaman)
EMS: 0.3% 0.5% 0%
0.4% 0.6%
1
21 17
18
4
3
18 7 5
10
20
14 19 23 20
40
7
Jumlah klon
60
0 <92.1
<140.7
<189.2
>189.2
Kisaran tinggi batang (cm)
Gambar 8. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang serat, bobot serat, bobot pelepah, dan tinggi batang tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS 0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%. Tanda panah menunjukkan bibit varian untuk masing-masing fenotipe.
70
60 Jumlah klon
EMS: 0.3% 0.5% 0%
3
2 4
18 17
20
18
30
31
40
0.4% 0.6%
0 <51.3
<98.5 <145.8 Kisaran bobot serat (g/tanaman)
>145.8
EMS: 0.3% 0.5% 0%
0.4% 0.6%
1
1
3 4 5 3 2
4 6
11
12
20
10 15 12 8
21
40
4
Jumlah klon
60
<30.67
<36.03 <41.38 Kisaran kekuatan serat (g/tex)
>41.38
EMS: 0.3% 0.5% 0%
0.4% 0.6%
21 4
9 7 9
10 15
20
16
15
19
26
40
2 4
Jumlah klon
60
0 <5
<8 <11 Kisaran jumlah pelepah
>11
EMS: 0.3% 0.5% 0%
0.4% 0.6%
2
1
22 18 15 25
13
11
9
17
20
19
40
11
Jumlah klon
60
0 <92.1
<140.7 <189.2 Kisaran tinggi batang (cm)
>189.2
Gambar 9. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah bobot dan kekuatan serat, jumlah pelepah per tanaman serta tinggi batang tanaman di lapangan diantara populasi tanaman abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS 0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%. Tanda panah menunjukkan bibit varian untuk masing-masing fenotipe.
71
DAFTAR PUSTAKA
Ahloowalia BS. 1986. Limitation to the use of somaclonal variation in crop improvement. Di dalam: Semal J, editor. Somaclonal Variation and Crop Improvement . New York: Martinus Nijhoff Pub. hlm. 14-27 Ahloowalia BS, Maluszynski M. 2001. Induced mutation - A new paradigm in plant breeding. Euphytica 118: 167-173. Arumingtyas EL, Indriyani S. 2005. Induksi variabilitas genetika percabangan tanaman kenaf (Hibiscus cannabinus L.) dengan mutagen kimia Ethyl Methane Sulfonate (EMS). Natural J 8:24-28. Chen M, Choi Y, Voytas DF, Rodermel S. 2000. Mutations in the Arabidopsis VAR2 locus cause leaf variegation due to the loss of chloroplast FtsH protease. Plant J 22:303-313. Gichner T, Stavevra DA, van Breusegem F. 2001. O-phenylene diamine-induce DNA damage and mutagenicity in tobacco seedlings is light-dependent. Mutation Res 495:117-125. Gichner T. 2003. Differential genotoxicity of ethyl methanesulphonate, N-ethylN-nitrosourea and maleic hydrazide in tobacco seedlings based on data of the Comet assay and two recombination assay. Mutation Res 538:171-179. Mangal M, Sharma DR. 2002. In vitro mutagenesis and cell selection for the induction of black rot resistance in cauliflower. J Hort Sci Biotech 77:268272. Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol Plant 15:473-497. Roux NS. 2004. Mutation induction in Musa – a review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. Hlm. 21-29. Sakamoto W, Tamura T, Hanba-Tomita Y, Sodmergen, Murata M. 2002. The VAR1 locus of Arabidopsis encodes a chloroplastic FtsH and is responsible for leaf variegation in mutant alleles. Genes to Cell 7:769-780. Schierholt A, Rucker B, Becker HC. 2001. Inheritance of high oleic acid mutations in winter oilseed rape (Brasica napus L.). Crop Sci 41:1444-1449. Spasibionek S. 2006. New mutants of winter rapeseed (Brasica napus L.) with changed fatty acid composition. Plant Breeding 125:259-267.
72
Strosse H, Van den Houwe I, Panis B. 2004. Banana cell and tissue culture – a review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. Hlm. 1-10. van Harten AM. 1998. Mutation Breeding: Theory and Practical Application. Cambridge: Cambridge Univ Pr. hlm. 111-203.
73
BAB VI SELEKSI IN VITRO UNTUK RESISTENSI ABAKA TERHADAP F. oxysporum f.sp. cubense MENGGUNAKAN FILTRAT KULTUR SEBAGAI AGENS PENYELEKSI ABSTRAK
Abaka (Musa textilis Nee) merupakan salah satu tanaman industri penting, namun pengembangannya di Indonesia masih mengalami kendala karena adanya penyakit layu Fusarium (penyakit Panama) yang disebabkan oleh infeksi cendawan Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc). Penelitian ini bertujuan untuk (1) mengevaluasi daya hambat filtrat kultur (FK) dari tiga isolat Foc terhadap pertumbuhan tunas abaka, (2) menentukan konsentrasi sub- letal FK Foc, yaitu konsentrasi FK yang mempunyai daya hambat terhadap pertumbuhan tunas abaka minimal 90%, (3) meregenerasikan sel/jaringan varian abaka yang insensitif terhadap FK Foc menjadi plantlet, dan (4) mengevaluasi respon plantlet yang didapat dari hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc. Hasil penelitian menunjukkan bahwa tiga isolat Foc yang dievaluasi memiliki daya hambat yang berbeda terhadap pertumbuhan tunas abaka. Isolat yang paling kuat daya hambatnya adalah isolat Banyuwangi. Konsentrasi sub- letal FK Foc isolat Banyuwangi adalah 40%. Dari seleksi in vitro kalus embriogen pada media yang berisi 40% FK Foc isolat Banyuwangi diperoleh sebanyak 326 tunas abaka klon Tangongon dan 176 tunas abaka klon Sangihe-1 yang insensitif terhadap FK Foc. Setelah diaklimatisasi dan diinokulasi dengan konidia Foc diperoleh plantlet imun sebanyak 4 klon, resisten 2 klon dan agak tahan 2 klon dari 45 klon/varian klon Tangongon yang dievaluasi. Sedangkan dari 10 varian abaka klon Sangihe-1 yang diuji didapatkan 2 klon resisten dan 1 klon agak tahan.
Kata kunci: layu Fusarium, seleksi in vitro, Filtrat kultur, EMS, Musa textilis
74
IN VITRO SELECTION OF ABACA FOR RESISTANCE AGAINST F. oxysporum f.sp. cubense USING FUNGAL CULTURE FILTRATES AS SELECTIVE AGENTS ABSTRACT
Abaca (Musa textilis Nee) is an important industrial crop; however, its cultivation in Indonesia is hampered by Fusarium wilt (Panama disease) due to infection of Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc). The objectives of this study were (1) to evaluate inhibitory effects of culture filtrates (CF) of three isolates of Foc on abaca shoot growth, (2) to determine sub- lethal concentration of Foc CF, the concentration causing death of at least 90% of abaca shoots, (3) to isolate variant cells/tissues insensitive to Foc CF regenerate plantlets, and (4) to evaluate response of plantlets against Foc infection. Results of the experiment showed culture filtrates (CF) of three tested Foc isolates inhibited abaca shoots growth and CF of Banyuwangi isolate inhibited the most. Sub- lethal concentration of CF was 40% for Banyuwangi isolate. From abaca clone Tangongon, 326 shoots were regenerated while from clone Sangihe-1, 176 shoots were regenerated from CF insensitive embriogenic calli. Following acclimatization and Foc inoculation, 4 immune, 2 resistant, and 2 moderately resistant plantlets against Foc were identified out of 45 tested variants of abaca clone Tangongon. On the other hand, 2 resistant and 1 moderately resistant plantlets were identified out of 10 tested variants of abaca clone Sangihe-1. Keywords : Fusarium wilt, in vitro selection, culture filtrate, EMS, Musa textilis
PENDAHULUAN
Penapisan respon plasma nutfah abaka terhadap infeksi dan evaluasi metode inokulasi Fusarium oxysporum Schlecht f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans (Foc) yang efektif pada tanaman abaka (Musa textilis Nee) telah dilakukan sebagai usaha untuk mendapatkan klon yang resisten terhadap infeksi Foc. Dari sepuluh klon abaka yang diuji, sembilan klon tergolong sangat rentan dan satu klon tergolong rentan terhadap infeksi Foc. Keberadaan Foc di berbagai daerah di Indonesia menjadi kendala pengembangan abaka mengingat klon yang resisten terhadap Foc belum tersedia (Damayanti 2004). Pengembangan klon abaka yang resisten terhadap Foc penting untuk dilakukan di Indonesia. Abaka mempunyai keragaman genetik rendah dan diperbanyak secara klonal
75
sehingga peningkatan keragaman genetikanya dapat dilakukan melalui induksi variasi somaklonal (Ahloowalia & Maluszynski 2001). Seleksi in vitro dapat digunakan untuk menapis sifat unggul tertentu diantara varian somaklonal (Yusnita et al. 2005). Seleksi in vitro dan induksi variasi somaklonal telah digunakan untuk menghasilkan klon tanaman yang resisten terhadap penyakit (Ahmed et al. 1996; Jin et al. 1996; Hidalgo et al. 1999; Yunus et al. 2000; Borras et al. 2001; Thakur et al. 2002; Inayati 2003). Keberhasilan seleksi in vitro ditentukan antara lain oleh tersedianya (1) metode kultur jaringan yang efektif yaitu mampu menghasilkan plantlet dalam jumlah besar dan sekaligus mampu menginduksi terjadinya variasi somaklonal pada plantlet dan (2) media selektif yang mampu menghambat pertumbuhan sel/jaringan normal dan memproliferasikan sel/jaringan varian dengan sifat tertentu menjadi plantlet (Yusnita et al. 2005). Metode baku regenerasi plantlet abaka dalam jumlah besar secara in vitro telah tersedia (Mariska & Sukmadjaja 2003). Sedangkan untuk mendapatkan ketahanan terhadap infeksi Fusarium, penggunaan filtrat kultur (FK) Fusarium terbukti dapat digunakan sebagai agens penyeleksi (Thakur et al. 2002; Inayati 2003; Damayanti 2004). Dengan demikian, dua persayaratan yang menunjang keberhasilan seleksi in vitro untuk mendapatkan klon abaka yang resisten terhadap Foc telah tersedia. Penelitian yang dilakukan bertujuan untuk mengevaluasi efektivitas metoda seleksi in vitro menggunakan FK dan mengisolasi plantlet varian yang toleran. Penelitian yang dilakukan mempunyai tujuan khusus: (1) mengevaluasi daya hambat FK (FK) dari tiga isolat Foc terhadap pertumbuhan tunas abaka, (2) menentukan konsentrasi sub- letal FK isolat Foc terpilih, yaitu konsentrasi FK yang mempunyai daya hambat terhadap pertumbuhan tunas abaka minimal 90%, (3) meregenerasikan sel/jaringan varian abaka yang insensitif terhadap FK Foc menjadi plantlet, dan (4) mengevaluasi respon plantlet yang didapat dari hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc.
BAHAN DAN METODE Penyiapan FK Foc. Isolasi cendawan Foc isolat Banyuwangi, Bojonegoro, dan Malang yang
76
digunakan telah dilaporkan sebelumnya (pada Bab III). Setelah diperbanyak dalam media potato dextrose agar (PDA) dan diinkubasikan selama 7 hari, hifa cendawan ditumbuhkan dalam media potato dextrose broth (PDB) dan digo yang dengan mesin penggoyang pada kecepatan 60 rpm selama 14 hari untuk memproduksi filtrat kultur (FK). Kultur disterilisasi menggunakan autoklaf (suhu 121o C selama 20 menit ), FK disaring untuk menghilangkan miselia dan digunakan sebagai agens penyeleksi.
Daya hambat FK tiga isolat Foc. Daya hambat FK dari tiga isolat Foc dievaluasi dengan menambahkan FK 10%, 20%, 30%, 40%, 50% atau 60% (v/v) ke dalam media induksi tunas (MT) abaka, yaitu media MS (Murashige & Skoog 1962) dengan BAP 0.5 mg/l dan asam askorbat 100 mg/l. Media MT tanpa FK (0%) digunakan sebagai standar. Tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 hasil kultur jaringan (tinggi 2-3 cm) ditanam dalam media selektif. Tunas disubkultur dua kali dalam periode tiga bulan ke media selektif yang sama, diinkubasikan dalam ruang kultur bersuhu 25+2o C dan diberi penyinaran 1 000 lux selama 16 jam. Satuan percobaan terdiri atas satu tunas yang ditanam dalam satu botol kultur dan setiap perlakuan diulang 20 kali. Pengamatan terhadap persentase kematian dan tingkat kerusakan tunas dilakukan setelah 3 bulan. Skoring tingkat kerusakan tunas ditentukan sebagaimana dilakukan Epp (1987), yaitu: skor 0 – tunas sehat dan hijau, serta tidak mengalami gejala penguningan daun; skor 1 – daun bagian bawah menguning tetapi tunas tumbuh normal atau tunas tetap hijau tetapi pertumbuhannya terhambat; skor 2 – pangkal batang mulai membusuk dan pertumbuhan tunas terhambat, daun yang menguning semakin meluas, dan daun yang baru membuka berwarna kuning pucat; skor 3 – pangkal batang membusuk dan pertumbuhan tunas terhambat, seluruh daun telah menguning; skor 4 – tunas membusuk dan mati (Gambar 10).
Seleksi in vitro dengan FK Foc. Perlakuan mutagenesis menggunakan ethyl methanesulphonate (EMS)
77
dilakukan untuk meningkatkan frekuensi induksi mutan/varian. Masing- masing 100 kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 (ukuran 3x3x3 mm3 ) direndam dengan EMS 0.6% (w/v) dan digoyang selama 2 jam dengan mesin penggoyang kecepatan 100 rpm. Kalus embriogen ditanam dalam media induksi kalus (MK) yaitu media MS dengan penambahan BAP 5 mg/l, thidiazuron [TDZ] 0.4 mg/l, dan asam askorbat 100 mg/l (Mariska & Sukmadjaya 2003), diperbanyak selama 6 bulan sehingga diperoleh minimal 150 potong kalus embriogen (3x3x3 cm3 ) dan digunakan sebagai eksplan pada tahapan seleksi in vitro dalam media MT dengan FK Foc isolat Banyuwangi 40% (v/v). Selama periode 6 bulan, eksplan disub-kultur 3 kali ke dalam media selektif yang masih segar. Pengamatan dilakukan terhadap persentase eksplan yang hidup, eksplan bertunas, dan rataan jumlah tunas per eksplan setelah 6 bulan dalam media seleksi.
Regenerasi dan Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi in vitro. Tunas insensitif terhadap FK Foc hasil seleksi in vitro (R0) ditumbuhkan dalam media MT hingga mencapai ukuran >2 cm dan diakarkan dalam media pengakaran (MP) yaitu media MS dengan penambahan arang aktif 1 g/l. Plantlet (tunas yang telah berakar) diaklimatisasi dan bibit yang diperoleh ditumbuhkan di rumah kaca. Respon bibit terhadap infeksi Foc dievaluasi secara tidak langsung dengan metode detached leaf dual culture test (Pratt 1996). Tujuh potongan daun bibit abaka dengan ukuran 1x1 cm2 diinokulasi dengan hifa cendawan Foc dan diinkubasikan dalam media agar (agar-agar 8 g/1) selama 12 hari. Potongan daun abaka dari lapang yang diinokulasi dengan Foc digunakan sebagai standar. Persentase potongan daun bergejala dan skor gejala kerusakan (SGK) yang terjadi digunakan untuk menghitung intensitas penyakit. Kriteria skor gejala kerusakan daun adalah: skor 0 – tidak ada nekrosis, skor 1 – nekrosis daun kurang dari 35%, skor 2 – nekrosis antara 35 – 70%, skor 3 – nekrosis > 75% dan mulai muncul gejala pembusukan daun, dan skor 4 – daun telah membusuk total. Intensitas penyakit (IP) dihitung dengan rumus IP=[Σ(nixsi)/(NxS)]x100%; ni: jumlah potongan daun dengan skor kerusakan ke- i, si – skor gejala kerusakan ke- i; N – jumlah potongan daun yang diamati, dan S – skor kerusakan tertinggi
78
(Cacchinero et al. 2002). Respon bibit abaka terhadap infeksi Foc disimpulkan dari hasil perhitungan IP, yaitu sebagai imun (I) – jika IP=0%; tahan (T) – jika IP antara 0-5%; agak tahan (AT) – jika IP antara 5-10%; agak rentan (AR) – jika IP antara 10-25%; rentan (R) – jika IP antara 25-50%; dan sangat rentan (SR) – jika IP>50% (Yusnita & Sudarsono 2004).
HASIL
Daya hambat FK tiga isolat Foc. Tunas abaka klon Tangongon atau klon Sangihe-1 tidak ada yang mati dalam media tanpa FK Foc. Untuk klon Tangongon dan Sangihe-1, rataan skor kerusakan tunas (SKT) pada media tanpa FK masing- masing 0.1 dan 0. Tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang ditanam dalam media selektif dengan penambahan FK Foc isolat Banyuwangi sebagian telah mati pada perlakuan konsentrasi 10%. Pada konsentrasi FK 10 - 30%, persentase kematian tunas berkisar dari 8% hingga 40% (Klon Tangongon) dan 21% hingga 62% (Klon Sangihe-1). Sedangkan pada konsentrasi FK 40 - 60%, tingkat kematian tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 berkisar dari 90 - 100% (Tabel 11). Filtrat kultur Foc isolat Malang dan Banyuwangi mempunyai daya hambat lebih rendah dibanding isolat Banyuwangi. Kematian tunas abaka klon Tangongon baru terjadi pada perlakuan FK Foc dengan konsentrasi 40% (isolat Malang) atau 50% (isolat Bojonegoro) sedangkan untuk klon Sangihe-1, pada perlakuan FK 30% (isolat Malang dan Bojonegoro) (Tabel 11). Data SKT abaka yang ditanam dalam media selektif dengan penambahan FK tiga isolat Foc juga menunjukkan pola respon yang sama (Tabel 11). Berdasarkan SKT yang diamati, abaka klon Sangihe-1 lebih sensitif terhadap FK Foc dan daya hambat FK Foc isolat Banyuwangi lebih tinggi dibandingkan dengan isolat Malang atau isolat Bojonegoro. Konsentrasi FK Foc isolat Banyuwangi 40% dan 50% menyebabkan terjadinya kematian tunas sebesar 90% dan 94% (klon Tangongon) atau 90% dan 100% (klon Sangihe-1), sehingga konsentrasi 40% dipilih sebagai konsentrasi sub- letal dan digunakan dalam percobaan berikut. Contoh penghambatan pertumbuhan tunas abaka akibat
79
berbagai konsentrasi FK Foc dapat dilihat pada Gambar 11.
Seleksi in vitro dengan FK Foc. Kalus embriogen abaka diberi perlakuan EMS 0.6% untuk menginduksi terjadinya mutasi pada sel/jaringan kalus embriogen. Meskipun perlakuan EMS menghambat proliferasi tunas tetapi dari kalus embriogen yang direndam EMS 0.6% dapat diregenerasikan rata-rata 20 tunas (klon Tangongon) dan 18 tunas (klon Sangihe-1) per eksplan kalus embriogen (Tabel 11). Kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS dan diseleksi dalam media selektif dengan penambahan FK Foc 40% (konsentrasi sub- letal) sebagian besar membusuk dan hanya sedikit yang mampu menghasilkan kalus embriogen, tunas ruset, atau tunas normal abaka yang insensitif terhadap FK Foc diantara jaringan yang membusuk. Contoh perkembangan kalus embriogen yang diseleksi dalam media selektif dengan penambahan FK Foc 40% dapat dilihat pada Gambar 12 a-e.
Tabel 11. Daya hambat filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc isolat Banyuwangi [Bw], Malang [Ml], atau Bojonegoro [Bn]) terhadap pertumbuhan tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1. Pengamatan dilakukan 3 bulan setelah penanaman tunas abaka dalam media selektif. Klon abaka dan konsentrasi FK (%)
KT* dalam FK Foc isolat: Bw Ml Bn
Abaka klon Tangongon: 0 0 10 8 20 15 30 40 40 90 50 94 60 100
0 0 0 0 37 75 83
0 0 0 0 0 40 87
SKT* dalam FK Foc isolat: Bw Ml Bn 0 aE** 1.7 aD 2.0 aC 3.2 aB 3.9 aA 3.9 aA 4.0 aA
0.1 aD 0.3 bD 0.8 bC 1.0 bC 3.2 bB 3.8 aA 3.9 aA
0 aF 0 cF 0.4 cE 1.2 bD 1.7 cC 3.2 bB 3.9 aA
Abaka klon Sangihe-1: 0 0 0 0 0 aE 0 aE 0.1 aF 10 21 0 0 2.1 aD 1.0 bD 0.4 cE 20 33 0 0 2.7 aC 1.4 bC 1.1 cD 30 62 32 4 3.6 aB 2.8 bB 1.9 cC 40 90 80 11 3.9 aAB 3.9 aA 2.1 bBC 50 100 100 8 4.0 aA 4.0 aA 2.3 bB 60 100 100 50 4.0 aA 4.0 aA 3.4 bA Keterangan: *KT: kematian tunas (%); SKT: skor kerusakan tunas. **Angka pada baris yang diikuti dengan huruf kecil atau pada kolom dengan huruf kapital yang sama tidak berbeda nyata berdasarkan uji jarak berganda Duncan pada α=5%.
80
Tabel 12.
Hasil seleksi in vitro kalus embriogen abaka yang telah diberi perlakuan EMS dalam filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi dengan konsentrasi 40% v/v (sub- letal). Pengamatan dilakukan 6 bulan setelah tanam.
Peubah yang diamati
Abaka klon Tangongon tanpa FK dengan FK 88 137 99 11 1 21 20.0 21.7
Abaka klon Sangihe-1 tanpa FK Dengan FK 88 126 99 19 1 13 18.0 7.4
Eksplan yang hidup: o Bertunas (%) o Dorman (%) Rataan jumlah tunas/eksplan Jumlah tunas: o <2 cm 1454 231 1430 113 o > 2 cm* 286 95 136 63 o Total 1740 326 1566 176 Penurunan (%) jumlah tunas diban88** 92** dingkan tanpa FK Catatan: *Tunas >2 cm merupakan tunas yang siap disub-kultur ke media perakaran. **Persentase penurunan jumlah tunas (%) dihitung dengan rumus [(xo*yo - x1*yo)/(xo*yo)] x 100%. xo dan yo berturut-turut adalah % eksplan bertunas dan jumlah tunas per eksplan untuk perlakuan tanpa FK, sedangkan x1 dan y1 berturut-turut adalah % eksplan bertunas dan jumlah tunas per eksplan untuk perlakuan dengan FK.
Tingkat keberhasilan seleksi in vitro menggunakan FK Foc 40% terhadap kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 disajikan dalam Tabel 12. Seleksi in vitro dalam media MT dengan penambahan FK Foc 40% menghasilkan total 326 tunas abaka klon Tangongon dan 176 tunas abaka klon Sangihe-1 yang insensitif terhadap FK (Tabel 12). Selanjutnya, tunas abaka yang insensitif FK hasil seleksi in vitro, diaklimatisasi dan ditumbuhkan di rumah kaca. Evaluasi Tunas Varian Hasil Seleksi In vitro. Dalam detached leaf dual culture test, tanaman awal abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dikelompokkan sebagai sangat rentan (Tabel 13). Tunas abaka insensitif FK Foc hasil seleksi in vitro yang berhasil melewati tahapan aklimatisasi, dievaluasi responnya terhadap infeksi Foc menggunakan metode yang sama dan hasil evaluasinya dapat dilihat pada Tabel 13. Hasil evaluasi menunjukkan dari 45 tunas abaka klon Tangongon hasil seleksi in vitro yang diuji, berhasil diidentifikasi 4 klon varian/ mutan yang imun dan tidak mengalami kerusakan daun akibat inokulasi dengan Foc, 2 klon yang tahan, dan 2 klon agak tahan terhadap infeksi Foc. Sedangkan untuk tunas abaka klon Sangihe-1, dari 10 tunas hasil seleksi in vitro yang diuji, berhasil diidentifikasi 2 klon varian yang tahan dan 1 klon agak tahan terhadap infeksi Foc.
81
Tabel 13. Persentase daun bergejala (DB), rataan skor gejala kerusakan (SGK), intensitas penyakit (IP), dan ketahanan klon varian abaka klon Tangongon (Tg) dan Sangihe-1 (Sh) hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan filtrat kultur Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Foc) isolat Banyuwangi, yang ditentukan berdasarkan hasil uji inokulasi daun dengan Foc isolat Banyuwangi menggunakan teknik detached leaf dual cultures. Klon abaka awal dan varian DB (%) Rataan SGK IP (%) Ketahanan Daun tanaman awal: Tg dari lapang 86 2.29 57 SR Sh dari lapang 86 2.14 54 SR Daun bibit hasil seleksi: Klon Tangongon Tg 3.2.1.1-Foc3 0 0 0 I Tg 3.2.1.2-Foc3 0 0 0 I Tg 70.2.3-Foc5 0 0 0 I Tg 70.2.3-Foc7 0 0 0 I Tg 3.2.1.1-Foc2 14 0.14 4 T Tg 3.2.1.1-Foc4 14 0.14 4 T Tg 3.2.1.2-Foc4 29 0.29 7 AT Tg 70.2.3-Foc1 29 0.43 9 AT Daun bibit hasil seleksi: Klon Tangongon Sh 1.1.3-Foc4 14 0.14 4 T Sh 1.1.3-Foc8 14 0.14 4 T Sh 17.2.1-Foc7 14 0.29 7 AT Sh 1.1.3-Foc7 29 0.43 11 AR Sh 1.1.3-Foc10 29 0.43 11 AR Sh 4.1.1-Foc1 43 0.29 11 AR Sh 10.1.1-Foc2 43 0.57 14 AR Sh 17.2.1-Foc4 43 0.43 11 AR Sh 17.2.1-Foc3 100 3 75 SR Sh 20.2.2-Foc2 100 2.71 68 SR *Keterangan: I – imun, T– tahan, AT – agak tahan, AR – agak rentan, dan SR – sangat rentan.
PEMBAHASAN
Mutagenesis pada kultur in vitro dengan atau tanpa seleksi in vitro telah digunakan untuk mempercepat didapatkannya plasma nutfah dengan sifat unggul tertentu untuk mendukung program pemuliaan tanaman, khususnya tanaman yang dikembangbiakkan secara vegetatif (Roux et al. 1999, Maluszynski et al. 1995, Joseph et al. 2004). Peningkatan keragaman genetika tanaman merupakan langkah awal untuk mengembangkan klon yang resisten terhadap infeksi penyakit. Hal ini dapat dilakukan melalui perlakuan mutagen pada eksplan dan diikuti dengan pengkulturan eksplan secara in vitro sehingga didapatkan proliferasi sel/jaringan
82
varian. Selanjutnya, sel/jaringan varian dapat diseleksi dalam media selektif dengan penambahan agens penyeleksi tertentu untuk mengidentifikasi sel/jaringan varian yang insensitif. Regenerasi plantlet dari sel/jaringan varian dapat menghasilkan tanaman yang resisten terhadap infeksi penyakit yang diinginkan. Pada penelitian ini digunakan EMS (ethyl methanesulphonate) untuk menginduksi keragaman genetika abaka dan dilanjutkan dengan seleksi in vitro menggunakan FK Foc untuk mengidentifikasi varian yang resisten terhadap Foc. Dari hasil penelitian, FK Foc isolat Banyuwangi, Bojonegoro, dan Malang mempunyai daya hambat yang berbeda. Filtrat kultur tiga isolat Foc yang digunakan berpengaruh negatif terhadap pertumbuhan tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1. Tetapi FK Foc isolat Banyuwangi menunjukkan daya hambat lebih tinggi dibandingkan isolat Bojonegoro dan Malang. Perbedaan tersebut berhubungan dengan produksi toksin oleh masing- masing isolat, karena isolat yang memproduksi toksin lebih tinggi dapat menimbulkan penghambatan lebih kuat (Cachinero et al. 2002). Fusarium oxysporum f.sp. cubense merupakan patogen yang menyerang abaka dan dalam proses infeksi mensekresikan non-host-specific toxin yang dapat membantu proses infeksi. Penggunaan FK Foc untuk seleksi in vitro telah dilakukan untuk mendapatkan klon tomat, gandum, kedelai, nenas, tebu dan anyelir yang resisten terhadap infeksi Fusarium sp. (Toyoda et al. 1984a; Fadel & Wenzel 1993; Ahmed et al. 1996; Jin et al. 1996; Hidalgo et al. 1999; Yunus 2000; Borras et al. 2001; Thakur et al. 2002; Inayati 2003). Selain mensekresikan toksin, Foc diketahui juga mensekresikan zat pengatur tumbuh tanaman (ZPT) seperti auksin atau giberelin atau berbagai alkaloid, protein, steroid, serta terpenoid (Goodman et al. 1986; Rademacher 1994; Thrane 2001) sehingga dapat berpengaruh positif terhadap proliferasi jaringan yang insensitif terhadap toksin. Data hasil penelitian menunjukkan tunas abaka yang insensitif terhadap FK Foc yang ditanam dalam media dengan penambahan FK Foc mempunyai rataan jumlah tunas lebih banyak dibanding perlakuan standar, diduga sebagai akibat pengaruh ZPT atau senyawa lain yang disekresikan oleh Foc. Daya hambat FK Foc yang diamati dalam percobaan menggunakan abaka
83
ini sejalan dengan percobaan pada tanaman anyelir (Thakur et al. 2002) dan nanas (Hidalgo et al. 1999). Dalam berbagai percobaan sebelumnya juga telah ditunjukkan peningkatan konsentrasi FK Foc dalam media meningkatkan persentase kematian eksplan yang diseleksi (Thakur et al. 2002; Li et al. 1999; Borras et al. 2001). Respon yang berbeda antara abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 juga diamati dalam percobaan yang dilakukan. Meskipun dari kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dengan perlakuan EMS 0.6% dapat dihasilkan tunas abaka yang insensitif FK Foc, tidak semua bibit yang diregenerasikan dari tunas hasil seleksi in vitro bersifat resisten terhadap infeksi Foc (sebagian rentan terhadap infeksi Foc). Hal ini diduga antara lain akibat terbentuknya tunas kimera atau terjadinya escaped dalam proses seleksi in vitro. Tunas kimera yang tersusun dari jaringan varian (resisten) dan jaringan normal (rentan) dapat bertahan dalam media selektif yang mengandung FK Foc sehingga terjadi salah identifikasi hasil seleksi in vitro. Sel/jaringan kimera yang escaped dari seleksi tidak 100% terdiri atas sel/jaringan varian yang insensitif terhadap FK Foc tetapi juga terdapat sel/jaringan normal. Pada tahapan proliferasi, sel/jaringan yang escaped dari seleksi juga akan menghasilkan bibit yang rentan terhadap infeksi Foc. Pada tahapan proliferasi dalam media tanpa penambahan FK Foc, tunas baru dapat berkembang dari sel/jaringan normal sehingga menghasilkan bibit dengan fenotipe rentan terhadap infeksi Foc (bibit escaped). SIMPULAN
Dari hasil percobaan dapat disimpulkan filtrat kultur dari tiga isolat Foc mampu menghambat pertumbuhan kalus embriogen abaka tetapi daya hambat FK Foc isolat Banyuwangi lebih tinggi dibanding kedua isolat yang lain. Konsentrasi sub- letal dari FK Foc isolat Banyuwangi adalah 40%. Dari kalus embriogen abaka yang insensitif FK Foc hasil seleksi in vitro telah diperoleh 326 tunas abaka varian dari klon Tangongon dan 176 tunas dari klon Sangihe-1. Setelah tahapan aklimatisasi, pembibitan, dan evaluasi respon terhadap inokulasi Foc berhasil diperoleh empat bibit varian yang diduga imun, empat – resisten, dan tiga – agak resisten.
84
Skor 0
Skor 1
Skor 3
Skor 2
Skor 4
Gambar 10. Representasi tunas abaka dengan skoring gejala kerusakan tunas 0 hingga 4 (berdasarkan kriteria yang dikembangkan oleh Epp 1987) setelah ditanam dalam media selektif dengan penambahan filtrat kultur Fusarium oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi.
FK: 0%
FK: 0%
10%
40%
FK: 0%
FK: 0%
20%
FK: 0%
30%
50%
FK: 0%
60%
Gambar 11. Daya hambat filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc) isolat Banyuwangi terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka klon Tangongon. Perkembangan tunas dalam media tanpa FK (FK 0%) atau dalam media selektif dengan FK Foc 10%, 20%, 30%, 40%, 50%, atau 60%.
85
a
b jm
c
jm
jm
ti
d
tm
e
ke
Gambar 12. Seleksi in vitro kalus embriogen abaka dalam media yang mengandung filtrat kultur (FK) Fusarium oxysporum f.sp. cubense (Foc) isolat Banyuwangi. Kalus embriogen abaka klon Tangongon (a) mengalami proliferasi tunas dalam media tanpa FK, (b) sebagian besar membusuk dan dorman (tidak bertunas), atau membusuk dan memproliferasikan (c) tunas, (d) tunas roset, serta (e) kalus embriogen - yang insensitif FK dalam media selektif dengan penambahan FK Foc isolat Banyuwangi dengan konsentrasi 40 %. jm: jaringan eksplan yang membusuk, ke: kalus embriogen, ti: tunas insensitif FK, tm: tunas majemuk (multiple bud clump).
DAFTAR PUSTAKA Ahloowalia BS, Maluszynski M. 2001. Induced mutation - A new paradigm in plant breeding. Euphytica 118:167-173. Ahmed KZ, Masterhazy A, Bartok T, Sagi F. 1996. In vitro techniques for selecting wheat (Triticum aesticum L.) for Fusarium-resistance II. Culture filtrate technique and inheritance of Fusarium-resistance in the somaclones. Euphytica 91:341-349.
86
Borras O, Santos R, Matos AP, Cabral RS, Arzola M. 2001. A first attemp to use a Fusarium subglutinans culture filtrate for the selection of pineapple cultivars resistant to fusariose disease. Plant Breeding 120:435-438. Cachinero JM, Hervas A, Jimenez-Diaz RM, Tena M. 2002. Plant defence reactions against Fusarium wilt in chickpea induced by incopatible race 0 of Fusarium oxysporum f.sp. ciceris and non- host isolates of F. oxysporum. Plant Pathol 51:765-776. Damayanti F. 2004. Seleksi in vitro tanaman abaka (Musa textilis Nee) dengan filtrat Fusarium oxysporum untuk ketahanan terhadap penyakit layu Fusarium. Bioscientiae 1:11-22. Epp D. 1987. Somaclonal variation in banana: a case study with Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA, editor. Banana and Plantain Breeding Strategies. Canbera: ACIAR Publ., hlm140-150. Fadel F, Wenzel G. 1993. In vitro selection for tolerance to Fusarium in F1 microspore population of wheat. Plant Breeding 110:89-95. Goodman RN, Kiraly Z, Wood KR. 1986. The biochemistry and physiology of plant disease. Missouri: The University of Missouri Pr. 433 hlm. Hidalgo OB, Santos R, Tussel RT, deMatos AP, Cabral RS, Arzola M, Perez MC. 1999. Phytotoxicity of Fusarium subglutinans culture filtrates on in vitro plantlets and calli of resistant and susceptible pineapple (Ananas comosus). Plant Pathol 48:756-758. Inayati A. 2003. Seleksi ketahana n in vitro plantlet vanili terhadap Fusarium oxysporum f.sp. vanilae menggunakan teknik double layer, kultur filtrat dan asam fusarat [Tesis]. Yogyakarta: Pascasarjana, UGM. Jin H, Hartman GL, Huang YH, Nickell CD, Widholm JM. 1996. Regeneration of soybean plants from embryogenic suspension cultures treated with toxic culture filtrate of Fusarium solani and screening of regenerants for resistance. Phytopathology 86:714-718. Joseph R, Yeoh H-H, Loh C-S. 2004. Induced mutations in cassava using somatic embryos and the identification of mutant plants with altered starch yield and composition. Plant Cell Rep 23:91-98. Li S, Hartman GL, Widholm JM. 1999. Viability staining of soybean suspensioncultured cells and a seedling stem cutting assay to evaluate phytotoxicity of Fusarium solani f.sp. glycines culture filtrates. Plant Cell Rep 18:375-380. Maluszynski M, Ahloowalia BS, Sigurbjörnsson B. 1995. Application of in vivo and in vitro mutation techniques for crop improvement. Euphytica 85:303315.
87
Mariska I, Sukmadjaja D. 2003. Perbanyakan Bibit Abaka Melalui Kultur Jaringan. Bogor: Balai Penelitian Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik. Murashige I, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant 159: 473-497 Pratt RG. 1996. Screening for resistance to Sclerotinia trifoliarum in alfalfa by inoculation of excised leaf tissue. Phytopathology 86:923-928. Rademacher W. 1994. Gibberellin formation in microorganism. Plant Growth Reg 15:303-314. Roux N, Tolo za A, Dolezel J, Swennen R, Lepoivre P, Zapata-Arias FJ. 1999. Usefulness of embriogenic cell suspension for the induction and selection of mutants in Musa spp. Promusa 4:18-19. Thakur M, Sharma DR, Sharma SK. 2002. In vitro selection and regeneration of carnation (Dianthus caryophyllus L.) plants resistant to culture filtrate of Fusarium oxysporum f.sp. dianthi. Plant Cell Rep 20:825-828. Thrane U. 2001. Development in the taxonomy of Fusarium species based on secondary metabolites. Di dalam: Sumerell BA, Leslie JF, Backhouse D, Bryden WL, Burgess LW, editor. Fusarium. Minnesota: APS Press. hlm. 29-49. Toyoda H, Tanaka N, Hirai T. 1984a. Effects of the culture filtrate of Fusarium oxysporum f.sp. lycopersici on tomato callus growth and the selection of resistant callus cells to the filtrate. Ann Phytopathol Soc Japan 50:53-62. Yunus A. 2000. Pengaruh ekstrak Fusarium moniliforme terhadap pertumbuhan dan resistensi tanaman tebu terhadap penyakit pokahbung. Agrosains 2:1-9. Yusnita, Sudarsono. 2004. Metode inokulasi dan reaksi ketahanan 30 genotipe kacang tanah terhadap penyakit busuk batang Sclerotium. Hayati 11:53-58. Yusnita, Widodo, Sudarsono. 2005. In vitro selection of peanut somatic embryos on medium containing culture filtrate of Sclerotium rolfsii and plantlet regeneration. Hayati 12: 50-56.
88
BAB VII SELEKSI IN VITRO UNTUK RESISTENSI ABAKA TERHADAP F. oxysporum f.sp. cubense MENGGUNAKAN ASAM FUSARAT SEBAGAI AGENS PENYELEKSI ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk (1) mengevaluasi daya hambat pertumbuhan kalus embriogen abaka, (2) mengetahui konsentrasi sub- letal AF, (3) mengidentifikasi varian embrio somatik abaka yang insensitif AF melalui seleksi in vitro yang dilanjutkan dengan regenerasi plantlet, dan (4) mengevaluasi resistensi plantlet hasil regenerasi terhadap infeksi Foc. Pengkulturan kalus embriogen dan tunas abaka pada medium tunas (MT) yang mengandung berbagai konsentrasi AF digunakan untuk mengetahui pengaruh daya hambat AF. Konsentrasi sub- letal ditentukan sebagai konsentrasi yang paling tinggi menghambat proliferasi kalus embriogen dan tunas abaka. Seleksi in vitro untuk mengidentifikasi embrio somatik yang insensitif AF dilakukan dengan konsentrasi sub- letal. Setelah regenerasi dan aklimatisasi plantlet, klon abaka hasil regenerasi ditanam di rumah kaca untuk pengujian ketahanan terhadap Foc menggunakan metode detached leaf dual culture. Hasil penelitian menunjukkan bahwa AF menghambat pertumbuhan kalus embriogen dan tunas abaka, sedangkan konsentrasi sub-letal AF adalah 50 mg/l. Dari seleksi in vitro dihasilkan 85 plantlet klon Tangongon dan 28 plantlet klon Sangihe-1 yang diregenerasikan dari embrio somatik yang insensitif AF. Genotipe asli Tangongon termasuk dalam kelompok sangat rentan terhadap infeksi Foc, sedangkan dua dari tiga varian dari klon Tangongon yang diuji menunjukkan imun dan satu agak rentan. Pada penelitian ini, pengujian resistensi terhadap infeksi Foc varian yang berasal dari klon Sangihe-1 belum dapat dilakukan.
Kata kunci: Layu Fusarium, keragaman somaklonal, toksin cendawan, EMS, Musa textilis
89
IN VITRO SELECTION OF ABACA FOR RESISTANCE AGAINST F. oxysporum f.sp. cubense USING FUSARIC ACID AS SELECTIVE AGENT
ABSTRACT
The objectives of this study were to (1) evaluate growth inhibition of abaca embriogenic calli (EC) and shoots by FA, (2) determine sub- lethal concentration of FA, (3) identify FA insensitive variants of abaca somatic embryos (SE) through in vitro selection followed by plantlet regeneration, and (4) evaluate resistance of regenerated plantlets against Foc infection. Culturing abaca EC and shoots on MT medium containing various FA concentrations was used to determine FA inhibition effects. Sub- lethal concentration was defined as one of highest inhibiting in proliferation of abaca EC and shoots. In vitro selection to identify FA insensitive SE was conducted using FA sub-lethal concentration. Following plantlet regeneration and acclimatization, the regenerated abaca lines were grown in the glasshouse for testing against Foc using detached leaf dual culture test. Results of the experiment showed FA inhibited abaca EC and shoots growth while sub- lethal concentration of FA was 50 mg/l. Following in vitro selection, 85 plantlets of Tangongon and 28 of Sangihe-1 were regenerated from FA insensitive SE. The original Tangongon genotype was very susceptible against Foc infection. Meanwhile, among three Foc tested lines derived from Tangongon, two lines were considered immune and one was slightly susceptible. However, resistance against Foc of variants derived from Sangihe-1 have not been evaluated in this experiment.
Keywords: Fusarium wilt, somaclonal variation, fungal toxin, EMS, Musa textilis PENDAHULUAN
Berdasarkan data yang ada, belum ditemukan klon abaka (Musa textilis Nee) yang terbukti resisten terhadap infeksi Fusarium oxysporum Schlecht f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans, cendawan penyebab penyakit layu Fusarium (Panama disease) yang sangat merusak kelompok tanaman pisang, termasuk abaka (Ploetz 2000; Bastasa & Baliad 2005; Hwang and Ko 2004; Nasir et al. 2003). Hasil penelitian pada Bab III menunjukkan dari 10 klon abaka yang diuji, sembilan klon tergolong sangat rentan dan satu klon tergolong rentan terhadap infeksi Foc isolat Banyuwangi (Foc Bw). Mengingat penggunaan klon abaka yang resisten merupakan metode yang
90
paling efektif untuk pengendalian Foc (Ploetz 2000), pengembangan klon abaka yang resisten Foc penting untuk dilakukan di Indonesia. Untuk mencapai tujuan tersebut perlu dilakukan peningkatan keragaman genetika abaka menggunakan kombinasi perlakuan mutagenesis dan perbanyakan tanaman secara in vitro, yang terbukti efektif untuk tanaman yang keragaman genetiknya rendah dan diperbanyakan secara klonal (Roux 2004). Mutan/varian yang resisten terhadap infeksi Foc dapat diidentifikasi melalui seleksi secara in vitro dalam media dengan penambahan asam fusarat (AF). Sebagai non-host specific toxin yang disekresikan oleh Foc dalam proses infeksi (Bacon et al. 1996), AF terbukti berkorelasi positif dengan virulensi isolat Foc terhadap tanaman inang. Karena AF merupakan komponen penting dalam proses infeksi, tanaman inang yang insensitif terhadap AF diduga juga resisten/toleran terhadap infeksi Foc. Penggunaan AF sebagai agens penyeleksi dalam seleksi in vitro dapat menghasilkan sel/jaringan mutan/varian insensitif terhadap AF, sehingga setelah diregenerasikan menjadi tanaman dapat menghasilkan klon abaka yang resisten/toleran terhadap infeksi Foc. Identifikasi mutan/varian yang insensitif terhadap AF dengan seleksi in vitro telah dilakukan pada tanaman tomat (Toyoda et al. 1984b), pisang (Morpurgo et al. 1994; Matsumoto et al. 1995), gladiol (Remotti et al. 1997), dan nanas (Borras et al. 2001). Tetapi tidak semua penelitian tersebut mampu menghasilkan tanaman varian yang terbukti resisten terhadap infeksi Foc (Morpurgo et al. 1994). Penelitian ini berusaha memperbesar peluang keberhasilan mengisolasi sel/jaringan
mutan/varian
abaka
yang
insensitif
terhadap
AF
dengan
menggunakan metode kultur kalus embriogen untuk mendapatkan plantlet dalam jumlah banyak, meningkatkan keragaman genetika kalus embriogen abaka dengan perlakuan EMS, menentukan konsentrasi AF sub- letal untuk memperkecil peluang terjadinya escaped, dan menyeleksi secara in vitro kalus embriogen abaka selama tiga kali siklus seleksi, masing- masing siklus selama tiga bulan dalam media dengan penambahan AF sub- letal. Berdasarkan hal tersebut, penelitian yang dilakukan bertujuan untuk (1) mengevaluasi daya hambat asam fusarat (AF) terhadap pertumbuhan kalus/tunas abaka, (2) menentukan konsentrasi sub-letal AF, yaitu konsentrasi yang mempunyai daya hambat paling tinggi terhadap
91
pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka, (3) meregenerasikan sel/jaringan varian yang insensitif AF menjadi plantlet abaka, dan (4) mengevaluasi respon plantlet yang didapat dari hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc.
BAHAN DAN METODE
Daya hambat AF. Percobaan untuk menentukan besarnya daya hambat AF terhadap proliferasi jaringan kalus embriogen abaka dilakukan dengan menanam eksplan dalam media induksi tunas (MT) abaka (media MS dengan penambahan BAP 0.5 mg/l dan asam askorbat 100 mg/l) dengan penambahan AF (Sigma-Aldrich Co.) 30, 45, atau 60 mg/l dan mengamati perkembangan embrio somatiknya. Penanaman kalus embriogen dalam media MT tanpa penambahan AF (0 mg/l) digunakan sebagai pembanding. Eksplan kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dengan ukuran ± 3x3x3 mm3 ditanam dalam media selektif yang telah disiapkan. Satuan percobaan terdiri atas satu kalus yang ditanam dalam satu botol kultur dan setiap perlakuan diulang 20 kali. Kalus disubkultur tiga kali dalam periode lima bulan ke media selektif yang sama. Inkubasi kultur dilakukan dalam ruang kultur bersuhu 25 + 2oC dan dengan penyinaran 1 000 lux selama 16 jam menggunakan lamp u TL. Pengamatan terhadap persentase kalus embriogen yang mampu membentuk tunas, jumlah tunas per eksplan dan penurunan jumlah tunas dilakukan pada akhir percobaan (setelah lima bulan dalam media selektif). Daya hambat AF juga ditentukan dengan menanam tunas abaka ke dalam media MT dengan penambahan AF 40, 45, atau 50 mg/l. Tunas yang ditanam dalam media MT tanpa penambahan AF (0 mg/l) digunakan sebagai pembanding. Tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 hasil kultur jaringan dengan tinggi tunas 2-3 cm ditanam dalam media selektif yang telah disiapkan. Satuan percobaan terdiri atas satu tunas yang ditanam dalam satu botol kultur dan setiap perlakuan diulang 30 kali. Tunas disubkultur tiga kali dalam periode tiga bulan ke media selektif yang sama. Inkubasi kultur dilakukan dalam ruang kultur bersuhu 25+2o C dan dengan penyinaran 1 000 lux selama 16 jam menggunakan lampu TL.
92
Pengamatan terhadap persentase kematian dan tingkat kerusakan tunas dilakukan pada akhir percobaan (setelah 3 bulan dalam media selektif). Tingkat kerusakan tunas ditentukan berdasarkan skoring sebagaimana dilakukan oleh Epp (1987), yaitu: skor 0 – tunas sehat dan hijau, serta tidak mengalami gejala penguningan daun; skor 1 – daun bagian bawah sedikit menguning tetapi tunas tumbuh normal atau tunas tetap hijau tetapi pertumbuhannya terhambat; skor 2 – pangkal batang mulai membusuk dan pertumbuhan tunas terhambat, daun yang menguning semakin meluas, dan daun yang baru membuka berwarna kuning pucat; skor 3 – pangkal batang membusuk dan pertumbuhan tunas terhambat, seluruh daun telah menguning; skor 4 – tunas membusuk dan mati (Gambar 13).
Peningkatan keragaman abaka dengan EMS. Untuk meningkatkan frekuensi mutan/varian, kalus embriogen abaka diberi perlakuan mutagenesis menggunakan la rutan ethyl methanesulphonate (EMS). Sebanyak masing- masing 100 kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 (ukuran 3x3x3 mm3 ) direndam dengan larutan EMS 0.6% selama dua jam dan digojok menggunakan shaker berkecepatan 100 rpm dalam ruangan bersuhu 28+2o C. Untuk memperbanyak biomasa, kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS diproliferasikan dalam media induksi kalus (MK) abaka dengan komposisi: media MS ditambah BAP 5 mg/l, Thidiazuron 0.4 mg/l dan asam askorbat 100 mg/l (Mariska & Sukmadjaya 2003) selama 6 bulan, diinkubasikan dalam ruangan bersuhu 28+2o C, dan diberi penyinaran 1 000 lux selama 16 jam menggunakan lampu TL.
Seleksi in vitro dengan AF. Kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS (300 potong untuk klon Tangongon dan 250 potong kalus untuk klon Sangihe-1 dengan ukuran 3x3x3 cm3 ) diseleksi secara in vitro dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l. Eksplan disub-kultur ke dalam media selektif yang sama yang masih segar setiap dua bulan selama periode enam bulan. Pengamatan dilakukan terhadap persentase kalus embriogen yang mampu bertahan hidup dan bertunas, serta rataan jumlah tunas yang terbentuk per kalus embriogen setelah enam bulan periode seleksi.
93
Selanjutnya, tunas abaka insensitif AF hasil seleksi in vitro ditanam dalam media MT hingga mencapai ukuran 2-3 cm sebelum diaklimatisasi dan dievaluasi responnya terhadap infeksi Foc.
Evaluasi tunas varian hasil seleksi in vitro. Tunas abaka insensitif AF hasil seleksi in vitro dievaluasi responnya terhadap infeksi Foc Bw secara tidak langsung dengan metode detached leaf dual culture test (Pratt 1996). Tujuh potongan daun dengan ukuran 1x1 cm2 dari masing- masing tunas varian diinokulasi dengan hifa cendawan Foc Bw dan diinkubasikan dalam media agar (agar-agar 8 g dalam 1 liter air) selama 12 hari. Potongan daun bibit abaka hasil kultur jaringan digunakan sebagai pembanding. Persentase potongan daun yang mengalami nekrosis dan gejala kerusakan daun yang terjadi diamati serta digunakan untuk menentukan tingkat kerusakan daun (intensitas penyakit). Gejala kerusakan daun diskor menggunakan kriteria sebagai berikut: skor 0 – tidak ada nekrosis, skor 1 – nekrosis daun kurang dari 35%, skor 2 – nekrosis antara 35 – 70%, skor 3 – nekrosis > 75% dan mulai muncul gejala pembusukan daun, dan skor 4 – daun telah membusuk semuanya. Tingkat kerusakan daun (intensitas penyakit; IP) dihitung dengan rumus IP=[Σ(nixsi)/(NxS)]x100%; ni: jumlah potongan daun dengan skor kerusakan ke i, si: skor gejala ke i; N: jumlah potongan daun yang diamati, dan S: skor kerusakan tertinggi (Cachinero et al. 2002). Respon tunas varian abaka yang diuji terhadap infeksi Foc disimpulkan dari nilai hasil perhitungan IP, yaitu imun (I) – jika IP=0%; tahan (T) – jika IP antara 0-5%; agak tahan (AT) – jika IP antara 510%; agak rentan (AR) – jika IP antara 10-25%; rentan (R) – jika IP antara 2550%; dan sangat rentan (SR) – jika IP>50% (Yusnita & Sudarsono 2004).
HASIL
Daya hambat AF. Kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 tidak ada yang berkembang pada media MT dengan penambahan AF 60 mg/l, sebaliknya 90% kalus mampu berproliferasi menjadi tunas dalam media tanpa AF (0 mg/l). Pada 5
94
Tabel 14. Persentase kalus bertunas, jumlah tunas per eksplan, total tunas dan persentase penurunan tunas abaka klon Tangongon (Tg) dan Sangihe-1 (Sh) yang dipanen setelah ditanam dalam media selektif dengan penambahan berbagai konsentrasi asam fusarat (AF). Pengamatan dilakukan 5 bulan setelah tanam. Konsentrasi AF (mg/l)
Kalus bertunas Jumlah Total tunas Penurunan tunas (%) tunas/eksplan (%)* Tg Sh Tg Sh Tg Sh Tg Sh 0 90 90 10.7 11.2 316 191 0 0 30 45 20 7.4 3.5 69 28 79 88 45 25 10 4.5 3.2 31 10 90 95 60 0 0 0 0 0 0 100 100 *Catatan: Penurunan tunas (%) dihitung denngan rumus [(Xo*Yo - X1*Y1)/(Xo*Yo)] x 100%. Xo dan Yo berturut-turut adalah % kalus bertunas dan jumlah tunas per kalus dari perlakuan tanpa AF, sedangkan X1 dan Y1 berturut-turut adalah % kalus bertunas dan jumlah tunas per kalus dari perlakuan dengan AF.
bulan setelah tanam, penurunan kemampuan kalus berproliferasi pada perlakuan penambahan AF 60 mg/l mencapai 100%, pada AF 45 mg/l mencapai 95%, dan pada AF 30 mg/l mencapai 88% (Tabel 14). Nilai persentase kalus yang mengalami proliferasi dan jumlah tunas yang terbentuk per eksplan dipengaruhi oleh konsentrasi AF yang ditambahkan dalam media selektif. Pada Gambar 14. dapat dilihat contoh penghambatan pertumbuhan dan proliferasi kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang ditanam dalam media MT dengan penambahan berbagai konsentrasi AF. Tunas abaka klon Tangongon tidak mati dan tidak rusak (skor 0) ketika ditanam dalam media MT tanpa AF. Sebagian tunas abaka yang diuji mati dalam media MT dengan penambahan AF 40 mg/l. Meningkatnya konsentrasi AF yang ditambahkan berakibat meningkatnya persentase kematian tunas (Tabel 15). Penanaman tunas abaka dalam media selektif dari 30 hari ke 60 hari juga meningkatkan persentase kematian tunas sedangkan dari 60 hari ke 90 hari relatif sama (Tabel 15). Setelah penanaman selama 30 hari dan 60 hari dalam media MT selektif, skor kerusakan tunas (SKT) abaka akibat penambahan AF 45 mg/l dan 50 mg/l tidak berbeda nyata, tetapi pada penambahan AF 40 mg/l nyata lebih rendah dibandingkan AF 45 mg/l atau 50 mg/l (Tabel 15). Sebaliknya setelah 90 dalam media MT selektif, perlakuan penambahan AF 50 mg/l menghasilkan SKT tertinggi sedangkan SKT pada perlakuan AF 40 mg/l dan 45 mg/l tidak berbeda
95
Tabel 15. Persentase kematian tunas dan rataan skor kerusakan tunas abaka klon Tangongon yang ditanam dalam media selektif dengan penambahan berbagai konsentrasi asam fusarat (AF). Pengamatan dilakukan setelah 30, 60, dan 90 hari sesudah tanam. Konsentrasi AF (mg/l) 0 40 45 50
Persentase kematian tunas (%) 30 hr 60 hr 90 hr 0 0 0 7 36 47 32 67 68 56 73 76
Skor kerusakan tunas 30 hr 60 hr 90 hr 0 c 0 c 0 c 1.7 b 2.6 b 3.2 b 3.0 a 3.3 a 3.3 b 3.2 a 3.4 a 3.5 a
nyata (Tabel 15). Pada Gambar 15. dapat dilihat contoh penghambatan pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka klon Tangongon yang ditanam dalam media MT dengan penambahan berbagai konsentrasi AF.
Seleksi in vitro dengan AF. Kalus embriogen abaka yang telah ditingkatkan keragamannya dengan perlakuan EMS tidak terhambat proliferasi tunasnya dalam media MT tanpa AF. Dalam MT tanpa AF, kalus embriogen abaka yang ditanam mampu menghasilkan rata-rata 20 (klon Tangongon) dan 18 (klon Sangihe-1) tunas per eksplan.
Tabel 16. Penghambatan pertumbuhan kalus embriogen dua klon abaka yang ditanam dalam media proliferasi tunas dengan atau tanpa penambahan asam fusarat (AF). Pengamatan dilakukan 6 bulan setelah tanam. Peubah yang diamati
Abaka klon Tangongon tanpa AF dengan AF
Abaka klon Sangihe-1 tanpa AF dengan AF
Jumlah eksplan: o Awal 100 300 100 250 o Diamati 88 281 88 224 Kalus yang hidup: o Bertunas (%) 99 3 99 1 o Dorman (%) 1 10 1 9 Rataan jumlah tunas/eksplan 20.0 10.6 18.0 9.3 Jumlah tunas total: o < 1 cm 1080 67 1049 16 o 1 – 2 cm 374 8 381 9 o > 2 cm 286 10 136 3 o Total 1740 85 1566 28 Penurunan jumlah tunas (dibanding tanpa FK) 98* 99* *Catatan: Penurunan jumlah tunas (%) dihitung denngan rumus [(Xo*Yo - X1*Y1)/(Xo*Yo)] x 100%. Xo dan Yo berturut-turut adalah % kalus bertunas dan jumlah tunas per kalus dari perlakuan tanpa AF, sedangkan X1 dan Y1 berturut-turut adalah % kalus bertunas dan jumlah tunas per kalus dari perlakuan dengan AF.
96
Penanaman kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l menyebabkan seluruh eksplan membusuk atau sebagian besar membusuk, tetapi diantara kalus yang membusuk berkembang kalus embriogen, tunas ruset, atau tunas normal abaka yang insensitif terhadap AF. Pada Gambar 16. disajikan contoh perkembangan kalus embriogen yang diseleksi dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l. Tingkat keberhasilan seleksi in vitro dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l terhadap kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 disajikan dalam Tabel 16. Seleksi in vitro yang dilakukan menghasilkan total 85 tunas dari abaka klon Tangongon dan 28 tunas dari klon Sangihe-1 yang insensitif terhadap AF (Tabel 16). Selanjutnya, tunas hasil seleksi in vitro dengan tinggi > 2 cm ditanam pada media induksi akar (media MS dengan penambahan arang aktif 2 g/l), diaklimatisasi dan ditanam di dalam kantong plastik (polybag) berisi campuran tanah:pupuk kandang (1:1). Setelah periode tiga bulan, bibit abaka yang tetap hidup dievaluasi responnya terhadap infeksi Foc.
Evaluasi tunas varian hasil seleksi in vitro. Daun abaka klon Tangongon pembanding yang diuji mengalami pembusukan total akibat infeksi Foc Bw sehingga tergolong sangat rentan. Hasil evaluasi respon tunas abaka insensitif AF yang didapat dari seleksi in vitro dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l terhadap infeksi Foc Bw dapat dilihat pada Tabel 17. Dari tiga bibit abaka klon Tangongon hasil seleksi in vitro yang diuji, berhasil diidentifikasi dua bibit varian/mutan yang tidak mengalami kerusakan daun akibat inokulasi dengan Foc Bw (imun) dan satu tunas yang tergolong agak rentan (Tabel 17). Dalam percobaan ini, bibit abaka klon Sangihe-1 hasil seleksi in vitro belum dapat dievaluasi responnya terhadap Foc Bw karena plantlet hasil seleksi in vitro belum diaklimatisasi dan bibit yang diperlukan belum siap diuji.
PEMBAHASAN
Keberhasilan seleksi in vitro dipengaruhi oleh ketersediaan metode regenerasi plantlet dalam jumlah banyak dan keefektifan agen penyeleksi yang
97
Tabel 17. Persentase daun bergejala (PDB), rataan skor gejala kerusakan (SGK), intensitas penyakit (IP), dan ketahanan abaka klon Tangongon (Tg) dari lapang dan klon hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan asam fusarat. Respon ketahanan ditentukan berdasarkan hasil uji inokulasi daun dengan F. oxysporum f. sp. cubense isolat Banyuwangi. Klon abaka PDB (%) Rataan SGK IP (%) Ketahanan Tg dari kultur jaringan: o Tg-3 86 2.29 57 SR Tg dari seleksi in vitro: o Tg-70.3.1.1-AF6 43 0.43 10.7 AR o Tg-70.3.1.1-AF1 0 0 0 IM* o Tg-70.3.1.1-AF2 0 0 0 IM* Catatan: *hifa Foc tumbuh di atas potongan daun, tetapi daun tidak mengalami kerusakan. SR: sangat rentan, AR: agak rentan, IM: imun.
digunakan. Metode regenerasi abaka secara in vitro telah dikembangkan oleh peneliti sebelumnya dengan menggunakan tunas pucuk atau mata tunas sebagai eksplan dan ditumbuhkan pada media dasar MS dengan penambahan BAP serta Thidiazuron (Mariska & Sukmadjaja 2003; Rahajeng 2006). Toksin utama yang diproduksi dan disekresikan oleh cendawan Foc adalah asam fusarat (Bacon et al. 1996). Asam fusarat (AF) telah digunakan sebagai agens penyeleksi dala m seleksi in vitro untuk memperoleh varian yang resisten terhadap Foc. Daya hambat in vitro dari AF terhadap pertumbuhan kalus dan tunas abaka klon Tangongon atau Sangihe-1 dipengaruhi oleh konsentrasi AF yang ditambahkan ke dalam media selektif. Penelitian sebelumnya telah menunjukkan penghambatan pertumbuhan jaringan yang diseleksi berkorelasi positif dengan konsentrasi AF yang ditambahkan dalam media (Matsumoto et al. 1995; Bouizgarne et al. 2006). Terhambatnya pertumbuhan kalus dan tunas yang ditanam dalam media selektif dengan penambahan AF diduga sebagai akibat terganggunya permeabilitas membran sel, terhambatnya oksidasi sitokrom dan respirasi pada mitokondria sehingga menghambat sintesis ATP, serta penurunan aktivitas fenol (Jin et al. 1996; Bouizgarne et al. 2006). Daya hambat AF terhadap pertumbuhan kalus dan tunas abaka klon Sangihe-1 lebih tinggi dibandingkan klon Tangongon, mengindikasikan adanya pengaruh faktor genetika. Adanya pengaruh faktor genetika telah diindikasikan berdasarkan hasil penelitian pada tanaman gladiol. Dari 10 genotipe gladiol yang secara genetika beragam, ketika ditanam dalam media dengan penambahan AF
98
mempunyai nilai respon insensitivitas yang berbeda terhadap AF yang ditambahkan ke dalam media in vitro (Remotti & Loffler 1996). Konsentrasi sub- letal AF yang mempunyai daya hambat paling tinggi terhadap pertumbuhan dan proliferasi kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dicapai pada penambahan AF 45 mg/l ke dalam media MT selektif. Namun, setelah diverifikasi ulang dengan kisaran konsentrasi AF yang lebih sempit, diperoleh konsentrasi sub- letal AF pada konsentrasi 50 mg/l. Konsentrasi sub- letal perlu ditentukan untuk meningkatkan efektivitas dan keberhasilan seleksi in vitro (Yusnita et al. 2005). Selanjutnya penmabahan AF dengan konsentrasi 50 mg/l ke dalam media MT digunakan untuk seleksi in vitro kalus embriogen abaka. Kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS 0.6% dan diseleksi dalam media MT selektif dengan penambahan AF 50 mg/l menunjukkan respon yang beragam (eksplan membusuk, diantara kalus yang membusuk berkembang kalus embriogen, tunas ruset, atau tunas normal abaka yang insensitif terhadap AF). Keragaman respon ini diduga terjadi sebagai akibat adanya sel-sel atau jaringan mutan dengan fenotipe insensitif terhadap AF yang diinduksi oleh perlakuan EMS diantara sel-sel atau jaringan wild-type yang sensitif AF. Sel atau jaringan mutan yang insensitif AF mampu tumbuh dan berkembang menjadi kalus embriogen, tunas ruset, atau tunas normal, sedangkan sel atau jaringan wild-type mati (membusuk) dalam media MT yang mengandung AF. Penggunaan kultur kalus embriogen sebagai eksplan dalam seleksi in vitro dapat mengurangi terjadinya kimera karena plantlet varian yang didapat umumnya diregenerasikan dari embrio somatik yang berkembang dari sel tunggal (Strosse et al. 2004). Seleksi in vitro dalam media MT dengan penambahan AF 50 mg/l menghasilkan 85 tunas abaka klon Tangongon dan 28 tunas abaka klon Sangihe-1 yang insensitif terhadap AF. Fenotipe insensitif terhadap AF dapat terjadi sebagai akibat terinduksinya enzim pada tanaman varian yang dapat mendetoksifikasi toksin, aktivasi ketahanan sistemik (SAR) atau elisitor untuk menghasilkan fitoaleksin (Jayasankar et al. 2000; Svabova & Lebeda 2005; Yusnita et al. 2005). Hasil evaluasi bibit varian yang diregenerasikan dari embrio somatik insensitif AF hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan AF menunjukkan bahwa dua dari tiga bibit tersebut imun terhadap infeksi Foc Bw,
99
yang mengindikasikan bahwa seleksi in vitro dengan menggunakan 50 mg/l AF efektif untuk mengisolasi varian yang resisten terhadap infeksi Foc Bw. Hal ini mengkonfirmasi teori yang menyatakan bahwa resistensi tanaman yang diregenerasikan dari jaringan hasil seleksi in vitro menggunakan toksin terhadap infeksi patogennya berkorelasi dengan insensitivitas sel hasil seleksi terhadap toksin yang ditambahkan dalam media selektif (Svabova & Lebeda 2005).
SIMPULAN
Dari hasil percobaan dapat disimpulkan AF yang ditambahkan dalam media MT mampu menghambat proliferasi kalus embriogen dan tunas abaka. Konsentrasi sub- letal AF yang dapat menghambat proliferasi kalus embriogen atau tunas abaka paling tinggi adalah 50 mg/l yang ditambahkan dalam media MT. Dari kalus embriogen abaka yang insensitif AF hasil seleksi in vitro telah diperoleh 85 tunas varian abaka klon Tangongon dan 28 tunas varian klon Sangihe-1. Setelah tahapan aklimatisasi dan evaluasi respon terhadap infeksi Foc, berhasil diidentifikasi dua bibit varian - yang diduga imun dan satu bibit varian dari abaka klon Tangongon yang agak rentan terhadap infeksi Foc Bw.
Skor 0
Skor 3
Skor 1
Skor 2
Skor 4
Gambar 13. Representasi tunas abaka dengan skoring gejala kerusakan tunas 0 hingga 4 (berdasarkan kriteria yang dikembangkan Epp 1987) setelah ditanam dalam media denga n penambahan asam fusarat.
100
AF: 0
30
45
60 mg/l
AF: 0
30
45
60 mg/l
Gambar 14. Daya hambat berbagai konsentrasi asam fusarat (AF) terhadap pertumbuhan dan proliferasi kalus embriogen abaka klon Tangongon (atas) dan Sangihe-1 (bawah). Foto diambil saat 5 bulan setelah penanaman ke dalam media selektif dengan penambahan AF.
AF: 0
40
0
45
0
50 mg/l
Gambar 15. Daya hambat berbagai konsentrasi asam fusarat (AF) terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas klon Tangongon. Foto diambil saat 3 bulan setelah penanaman ke dalam media selektif dengan penambahan AF.
101
a
b
c
d
Gambar 16. Perkembangan eksplan kalus embriogen abaka setelah periode seleksi in vitro dalam media yang mengandung asam fusarat (AF). Kalus embriogen abaka (a) mengalami proliferasi tunas dalam media tanpa AF, (b) membus uk dalam media selektif, (c) membusuk dan memproliferasikan kalus embriogen yang insensitif AF dalam media selektif, dan (d) memproliferasikan tunas ruset yang insensitif AF dalam media selektif dengan penambahan AF 50 mg/l.
DAFTAR PUSTAKA
Bacon CW, Porter JK, Norred WP, Leslie JF. 1996. Production of Fusaric acid by Fusarium species. Applied Env Microbiol 62:4039-4043. Borras O, Santos R, Matos AP, Cabral RS, Arzola M. 2001. A first attemp to use a Fusarium subglutinans culture filtrate for the selection of pineapple cultivars resistant to fusariose disease. Plant Breeding 120:435-438. Bastasa GN, Baliad AA. 2005. Biological control of Fusarium wilt of abaca (Fusarium oxysporum) with Trichoderma and yeast. Philippines J Crops Sci 30:29-37. Bouizgarne B, Bouteau HE, Frankart C, Reboutier D, Madiona K, Pennarun AM, Monestiez M, Trouverie J, Amiar Z, Briand J, Brault M, Rona JP, Ouhdouch Y, Hadrami IE, Bouteau F. 2006. Early physiological responses of Arabidopsis thaliana cells to fusaric acid: toxic and signalling effects. New Phytologist 169:209-218. Cachinero JM, Hervas A, Jimenez-Diaz RM, Tena M. 2002. Plant defence reactions against Fusarium wilt in chickpea induced by incopatible race 0 of Fusarium oxysporum f.sp. ciceris and non- host isolates of F. oxysporum. Plant Pathol 51:765-776. Epp D. 1987. Somaclonal variation in banana: a case study with Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA (ed). Banana and Plantain Breeding Strategies. Canbera: ACIAR Publ, hlm140-150.
102
Hwang SC, Ko WH. 2004. Cavendish banana cultivars resistant to Fusarium wilt acquired through somaclonal variation in Taiwan. Plant Dis 88:580-588. Jayasankar S, Li Z, Gray DJ. 2000. In-vitro selection of Vitis vinifera ‘Chardonnay’ with Elsinoe ampelina culture filtrate is accompanied by fungal resistance and enhanced secretion of chitinase. Planta 211: 200-208. Jin H, Hartman GL, Huang YH, Nickell CD, Widholm JM. 1996. Regeneration of soybean plants from embryogenic suspension cultures treated with toxic culture filtrate of Fusarium solani and screening of regenerants for resistance. Phytopathology 86:714-718. Mariska I, Sukmadjaja D. 2003. Perbanyakan bibit abaka melalui kultur jaringan. Bogor: Balai Penelitian Bioteknologi dan Sumberdaya Genetik. Matsumoto K, Barbosa ML, Souza LAC, Teixeira JB. 1995. Race 1 Fusarium wilt tolerance on banana plants selected by fusaric acid. Euphytica 84:67-71. Morpurgo R, Lopato SV, Afza R, Novak FJ. 1994. Selection parameters for resistance to Fusarium oxysporum f.sp. cubense race 1 and 4 on diploid banana (Musa acuminata Colla). Euphytica 75:121-129. Nasir N, Jumjunidang, Eliesti F, Meldia Y. 2003. Penyakit Layu Panama pada pisang: observasi ras 4 Fusarium oxysporum f.sp. cubense di Jawa Barat. J Hort 13:269-275. Ploetz RC. 2000. Banana disease: a classic and destructive disease of banana. www.plantmanagementnetwork.org. [23 Februari 2006]. Pratt RG. 1996. Screening for resistance to Sclerotinia trifoliarum in alfalfa by inoculation of excised leaf tissue. Phytopathology 86:923-928. Rahajeng W. 2006. Interaksi genotipe klon-klon abaka (Musa textilis Nee) dengan beberapa komposisi media kultur in vitro [Skripsi]. Malang: Jurusan Budidaya Pertanian, Fakultas Pertanian, Universitas Brawijaya. 43 hlm. Remotti PC, Loffler HJM. 1996. The involvement of fusaric acid in the bulb-rot of Gladiolus. J Phytopathol 144:405-411 Remotti PC, Loffler HJM, Loten-Doting LV. 1997. Selection of cell lines and regeneration of plants resistant to fusaric acid from Gladiolus x grandiflorus c.v. ‘Peter Pear’. Euphytica 96:237-245. Roux NS. 2004. Mutation induction in Musa - review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 21-29
103
Strosse H, Van den Houwe I, Panis B. 2004. Banana cell and tissue culturereview. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm 1-10. Svabova L, Lebeda A. 2005. In vitro selection for improved plant resistance to toxin-producing pathogens. J Phytopathol 153:52-64. Toyoda H, Hayashi H, Yamamoto K. 1984b. Selection of resistant tomato calli to fusaric acid. Ann Phytopathol Soc Japan 50:538-540. Yusnita, Sudarsono. 2004. Metode inokulasi dan reaksi ketahanan 30 genotipe kacang tanah terhadap penyakit busuk batang Sclerotium. Hayati 11:53-58. Yusnita, Widodo, Sudarsono. 2005. In vitro selection of peanut somatic embryos on medium containing culture filtrate of Sclerotium rolfsii and plantlet regeneration. Hayati 12:50-56.
104
BAB VIII
RESISTENSI KLON ABAKA VARIAN SOMAKLONAL TERHADAP INFEKSI Fusarium oxysporum f.sp cubense ABSTRAK
Penelitian ini bertujuan untuk (1) mengevaluasi respon klon-klon abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen (kultur jaringan), kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS, dan hasil seleksi in vitro kalus embriogen yang dikulturkan pada medium dengan penambahan filtrat kultur Foc+EMS atau asam fusarat (AF) terhadap infeksi Foc, (2) untuk mengetahui pengaruh panjang akar dan tinggi bibit awal terhadap ketahanan klon-klon abaka yang diinokulasi dengan Foc, dan (3) mengidentifikasi ketahanan klon-klon abaka terhadap Foc. Empat populasi abaka yang diregenerasikan dari penelitian sebelumnya ditanam di rumah kaca dan diinokulasi dengan Foc isolat Banyuwangi (Foc Bw). Panjang akar dan tinggi bibit awal diamati sebelum inokulasi, sedangkan skor kerusakan bibit dan ketahanan diamati 60 hari setelah inokulasi. Hasil penelitian menunjukkan bahwa panjang akar dan tinggi bibit awal tidak berpengaruh terhadap ketahanan klonklon yang diuji. Klon-klon abaka yang rentan mati sebelum umur 60 hari dan yang resisten tetap hidup. Klon abaka yang diregenerasikan dari kelompok kalus embriogen yang sama menunjukkan respon yang berbeda terhadap infeksi Foc isolat Bw mengindikasikan adanya populasi sel campuran. Klon baka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw berhasil diidentifikasi pada empat populasi yang diuji, meskipun dengan frekuensi yang berbeda.
Kata kunci: resisten, penyakit layu fusarium, seleksi in vitro, filtrat kultur, asam fusarat, EMS
105
RESISTANCE OF ABACA SOMACLONAL VARIANT LINES AGAINST Fusarium oxysporum f.sp. cubense ABSTRACT
The objectives of this study was to evaluate response of abaca lines regenerated from embriogenic calli (TC), EMS treated embriogenic calli (EMS), EMS treated, followed by in vitro selection on F. oxysporum f.sp. cubense (Foc) culture filtrate (EMS+CF) or fusaric acid (EMS+AF) embriogenic calli population against Foc infection, to determine initial root length and seedling height effects on survival of inoculated abaca lines, and to identify Foc resistance of abaca lines. Four abaca populations regenerated from previous experiment were grown in the glasshouse and inoculated with Foc Banyuwangi isolate (Foc Bw). Initial root length and plant height were recorded prior to inoculation, while plant damage score, and survival were recorded at 60 days after inoculation. The results showed initial root length and plant height did not affect survival of tested lines. Regardless of their root length and plant height, susceptible lines died prior to 60 days while resistance one still alive. Abaca lines regenerated from the same clump of embryogenic calli showed an array of response against Foc Bw infection, indicating the existence of heterogeneous of cells populations. The Foc Bw resistance abaca lines were successfully identified from four abaca populations tested, although with different frequencies. Keywords: Fusarium wilts, resistance, in vitro selection, culture filtrate, fusaric acid, EMS.
PENDAHULUAN
Layu Fusarium yang disebabkan oleh cendawan Fusarium oxysporum Schlecht f.sp. cubense (E.F. Smith) Snyd & Hans ini merupakan salah satu penyakit yang menyerang tanaman pisang, termasuk abaka yang ditanam di daerah tropika. Di Leyte-Filipina, infeksi layu Fusarium dilaporkan menimbulkan kerusakan pada pertanaman abaka antara 5-65% (Bastasa & Baliad 2005). Sedangkan di berbagai
106
daerah di Indonesia, keberadaan patogen ini menjadi kendala pengembangan abaka karena klon yang resisten terhadap cendawan F. oxysporum f.sp cubense (Foc) belum tersedia (Damayanti 2004). Penggunaan kultivar abaka yang resisten merupakan alternatif metode pengendalian Foc yang efektif (Ploetz 2000). Induksi varian dengan perlakuan mutagenesis dan perbanyakan tanaman secara in vitro merupakan pendekatan yang efektif untuk meningkatkan keragaman genetika tanaman yang diperbanyak secara vegetatif atau klonal (Roux 2004) seperti abaka. Selanjutnya, varian dengan sifat unggul tertentu dapat diidentifikasi diantara populasi tanaman varian yang dihasilkan. Induksi variasi somaklonal dan seleksi in vitro telah digunakan untuk menghasilkan klon tanaman yang resisten terhadap berbagai penyakit tanaman (Ahmed et al. 1996; Jin et al. 1996; Hidalgo et al. 1999; Yunus et al. 2000; Borras et al. 2001; Thakur et al. 2002). Induksi klon abaka varian dengan perlakuan etil metilsulfonat (EMS) dan seleksi in vitro menggunakan filtrat kultur (FK) Foc atau asam fusarat (AF) telah dilakukan untuk meningkatkan keragaman bibit dan mengisolasi klon abaka yang resisten terhadap penyakit layu Fusarium (Panama disease). Dari penelitian sebelumnya telah berhasil diregenerasikan bibit varian abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dari kalus embriogen tanpa perlakuan dan dari kalus embriogen yang diberi perlakuan EMS. Dari penelitian sebelumnya juga berhasil diperoleh varian abaka dari klon Tangongon dan Sangihe-1 yang insensitif terhadap FK Foc isolat Banyuwangi (Foc Bw) atau insensitif terhadap AF hasil seleksi in vitro dalam media dengan penambahan FK Foc atau AF. Penelitian yang dilakukan bertujuan untuk (1) mengevaluasi respon bibit abaka varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen (populasi KJ), dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS (populasi EMS), dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS, diikuti seleksi in vitro dalam media dengan penambahan FK Foc Bw (populasi EMS+FK), dan dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS, diikuti seleksi in vitro dalam media dengan penambahan AF (populasi EMS+AF) terhadap infeksi Foc Bw di rumah kaca, (2) menentukan pengaruh panjang akar dan tinggi bibit awal terhadap survival bibit, dan mengidentifikasi klon abaka yang resisten terhadap Foc.
107
BAHAN DAN METODE Populasi bibit abaka. Plantlet abaka dalam populasi KJ diregenerasikan dari kalus embriogen sedangkan populasi EMS diregenerasikan dari kalus embriogen yang telah diberi perlakuan EMS. Plantlet abaka dalam populasi EMS+FK diregenerasikan dari kalus embriogen abaka yang telah diberi perlakuan EMS dan bertahan hidup melewati tahapan seleksi in vitro dalam media dengan penambahan FK Foc Bw. Sebaliknya, plantlet dalam populasi EMS+AF diregenerasikan dari kalus embriogen abaka yang telah diberi perlakuan EMS dan bertahan hidup melewati tahapan seleksi in vitro dalam media dengan penambahan AF. Regenerasi empat populasi plantlet abaka tersebut telah dilakukan sebelumnya. Semua plantlet diaklimatisasi dan ditumbuhkan di rumah kaca hingga berumur tiga bulan serta tinggi bibitnya antara 15-30 cm serta dievaluasi resistensinya terhadap infeksi Foc Bw.
Inokulasi bibit abaka dengan Foc Bw. Isolat Foc Bw ditumbuhkan dalam media PDA dan diinkubasikan dalam ruangan bersuhu 29-30o C selama 7 hari. Potongan PDA yang ditumbuhi hifa Foc Bw diinokulasikan ke dalam botol kultur dengan volume 250 ml yang berisi 100 ml media PDB. Kultur digoyang dengan shaker pada kecepatan 60 rpm hingga membentuk konidia (14 hari). Kerapatan konidia Foc Bw yang didapat dihitung menggunakan haemocytometer, diencerkan hingga 106 konidia/ml, dan digunakan sebagai inokulum. Semua bibit abaka dievaluasi resistensinya terhadap infeksi Foc Bw menggunakan metode uji yang telah dilaporkan pada bab III. Bibit abaka dilukai perakarannya dan direndam selama 2 jam dalam suspensi konidia Foc Bw. Setelah diinokulasi, bibit ditanam dalam polybag berukuran 15x15x30 cm yang berisi 5 kg media campuran tanah:pasir (2:1 b/b) steril dan diamati pertumbuhannya 60 hari sesudah inokulasi (HSI). Pengamatan dilakukan terhadap panjang akar dan tinggi bibit awal, skor kelayuan bibit (SKB) pada saat 60 HSI, dan umur saat bibit mati (hari).
108
Gejala infeksi Foc pada bibit yang diinokulasi di evaluasi dengan skor kelayuan bibit (SKB). Penentuan skor kelayuan bibit abaka akibat infeksi Foc Bw dilakukan mengikuti kriteria yang dikembangkan oleh Epp (1987) dan telah digunakan dalam penelitian sebelumnya. Contoh bibit abaka dengan berbagai nilai skor kelayuan bibit akibat infeksi Foc Bw dapat dilihat pada Gambar 17.a-e.
HASIL
Populasi bibit abaka. Dalam penelitian ini jumlah bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang dapat diregenerasikan dan dievaluasi resistensinya terhadap Foc Bw untuk populasi KJ masing- masing sebanyak 5 dan 4 bibit, populasi EMS sebanyak 12 dan 27 bibit, populasi EMS+FK sebanyak 17 dan 25 bibit, dan populasi EMS+AF sebanyak 8 bibit (hanya klon Tangongon). Populasi EMS+AF dari klon Sangihe-1 tidak ada yang dievaluasi dalam percobaan karena bibitnya tidak tersedia.
Tabel 18. Respon bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen (Populasi KJ), dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS (Populasi EMS), dari EMS diikuti seleksi in vitro dalam filtrat kultur F. oxysporum f.sp. cubense (Populasi EMS+FK) atau dalam asam fusarat (Populasi EMS+AF) terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Pengamatan dilakukan 60 hari sesudah inokulasi. Jumlah Bibit Abaka: Populasi dan Klon Abaka:
Diinokulasi Foc
Mati
Hidup
Persentase Bibit yang Hidup (%)
Populasi KJ:* o Tangongon 4 3 1 25 o Sangihe-1 5 4 1 20 Populasi EMS: o Tangongon 12 4 8 67 o Sangihe-1 28 15 13 46 Populasi EMS+FK: o Tangongon 17 9 8 47 o Sangihe-1 25 13 12 48 Populasi EMS+AF: o Tangongon 8 6 2 25 o Sangihe-1 ND ND ND ND Keterangan: *Populasi KJ - bibit diregenerasikan dari kalus embriogen; Populasi EMS - dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS, Populasi EMS+FK - dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti seleksi in vitro dalam filtrat kultur F. oxysporum f.sp. cubense, Populasi EMS+AF - diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti seleksi in vitro dalam asam fusarat.
109
Tabel 19. Hubungan antara panjang akar dan tinggi bibit abaka awal dengan skor kerusakan bibit dan hari bibit mati setelah perlakuan inokulasi bibit abaka klon Tangongon dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca. No
Populasi dan No. Klon
Panjang Akar Awal
Tinggi Bibit Awal
SKB (60 HSI)
Hari Bibit Mati
24.5 12.7 32.4 27.5 35.5
24.0 16.8 26.2 23.0 26.5
4 4 4 4 1
14 42 42 42 - **
Populasi KJ:* 1 2 3 4 5
Tg 12 Tg 6 Tg 7 Tg 8 Tg 9 Populasi EMS:
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Tg 45.2.1-1 Tg 59.2-4 Tg 45.2-7 Tg 70.2-4 Tg 25.5.1-4 Tg 25.5.1-5 Tg 59.2-5 Tg 59.2-7 Tg 59.2-8 Tg 70.2-8 Tg 70.2-9 Tg 3.1-2 Populasi EMS+FK:
37.1 19.5 22.2 18.5 8.6 24.3 24.5 23.2 28.3 29.3 27.5 35.7
18.4 19.2 17.4 21.3 18.0 18.4 24.5 24.1 26.2 26.5 25.5 25.0
4 4 4 4 2 2 2 2 2 2 2 1
14 14 28 28 -
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17
Tg 3.2.1.2-5 Tg 45.2.2.1-3 Tg 45.2.2.2-3 Tg 45.2.2.2-4 Tg 45.2.2.2-6 Tg 70.2.3-3 Tg 3.2.1.1-2 Tg 70.2.3-2 Tg 70.2.3-4 Tg 3.2.1.1-3 Tg 3.2.1.1-4 Tg 3.2.1.2-3 Tg 3.2.1.2-4 Tg 45.2.2.2-2 Tg 70.2.3-1 Tg 70.2.3-5 Tg 70.2.3-7 Populasi EMS+AF:
25.5 26.1 32.0 29.0 22.3 24.1 35.0 23.5 20.3 33.5 34.4 19.0 16.0 20.5 37.5 18.1 33.2
20.7 22.5 20.1 15.3 19.4 24.6 22.7 23.6 22.5 25.5 23.8 23.2 21.4 23.5 26.1 23.5 24.6
4 4 4 4 4 4 4 4 4 2 2 2 2 1 1 1 1
14 14 14 14 28 28 56 56 56 -
1 Tg 70.3.1.1-10 30.7 23.3 4 14 2 Tg 70.3.1.1-8 29.1 25.5 4 14 3 Tg 70.3.1.1-9 30.0 24.1 4 14 4 Tg 70.3.1.1-3 24.9 24.1 4 28 5 Tg 70.3.1.1-7 30.1 24.5 4 28 6 Tg 70.3.1.1-4 26.5 24.6 4 56 7 Tg 70.3.1.1-2 23.5 28.1 2 8 Tg 70.3.1.1-6 23.9 22.5 2 Keterangan: *Lihat keterangan pada Tabel 18. ** (-) mengindikasikan bibit mampu bertahan hidup hingga 60 hari dan tidak mati sesudah inokulasi Foc Bw.
110
Setelah diinokulasi dengan Foc Bw, diantara 5 bibit abaka klon Tangongon dan 4 bibit klon Sangihe-1 dari populasi KJ masing- masing berhasil diidentifikasi 1 bibit yang mampu bertahan hidup hingga 60 HSI. Sedangkan diantara 12 bibit abaka klon Tangongon dan 27 bibit klon Sangihe-1 dari populasi EMS, berhasil diidentifikasi masing- masing 8 dan 13 bibit abaka yang mampu bertahan hidup dan tidak mati setelah diinokulasi dengan Foc Bw (Tabel 18). Pada populasi EMS+FK, diantara 17 bibit abaka klon Tangongon dan 25 bibit klon Sangihe-1 yang diinokulasi Foc Bw berhasil diidentifikasi masingmasing 8 dan 12 bibit yang mampu tetap tumbuh hingga 60 HSI. Sedangkan diantara 8 bibit klon Tangongon dari populasi EMS+AF, berhasil didapat dua bibit yang mampu tetap tumbuh hingga akhir periode penelitian (60 HSI) setelah diinokulasi Foc Bw (Tabel 18).
Respon individu bibit terhadap Foc Bw. Diantara semua bibit abaka dari empat populasi (Gambar 17. f) yang diuji resistensinya terhadap Foc Bw, tidak ada satupun yang mempunyai nilai SKB 0 (Gambar 17. a). Bibit dengan nilai SKB 1 atau 2 (Gambar 17. b-c) diamati ada pada populasi KJ, EMS, EMS+FK, dan EMS+AF (Tabel 19-21). Bibit dengan nilai SKB 1 atau 2 pada awalnya menunjukkan gejala infeksi Foc Bw tetapi mampu bertahan hidup serta tidak mati hingga 60 HSI (Gambar 17. g). Bibit dengan nilai SKB 1 atau 2 dikelompokkan sebagai klon yang meningkat resistensinya terhadap infeksi Foc Bw dibandingkan dengan klon abaka asalnya. Sebagian besar bibit abaka yang diuji mempunyai nilai SKB 4 (Gambar 17. e), sebagaimana respon bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 awal yang dijadikan sebagai sumber eksplan (data tidak disajikan). Bibit dengan nilai SKB 4 tersebut mati sebelum 60 HSI (Gambar 17. g), dan dikelompokkan sebagai klon yang sama tingkat resistensinya terhadap infeksi Foc Bw dengan klon abaka asalnya. Pada Gambar 18 disajikan sebaran respon bibit dari populasi KJ, EMS, EMS+FK, dan EMS+AF setelah diinokulasi dengan Foc Bw berdasarkan nilai SKB pada pengamatan 60 HSI.
111
Tabel 20. Hubungan antara panjang akar dan tinggi bibit abaka awal dengan skor kerusakan bibit (SKB) yang diamati 60 hari sesudah inokulasi dan hari bibit mati setelah perlakuan inokulasi bibit abaka klon Sangihe -1 dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca. No
Populasi dan No. Klon Populasi KJ:*
Panjang Akar Awal
Tinggi Bibit Awal
SKB
Hari Bibit Mati
1 2 3 4
Sh 5 Sh 6 Sh 7 Sh 3 Populasi EMS:
6.3 25.6 21.5 34.5
13.9 15.5 24.0 23.7
4 4 4 1
14 14 28 - **
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20
Sh 10.1-10 Sh 10.1-4 Sh 10.1-5 Sh 10.1-6 Sh 17.1.2-1 Sh 17.1.2-4 Sh 42.2-4 Sh 42.2-5 Sh 42.2-7 Sh 1.1.1-2 Sh 1.1.1-1 Sh 10.1-2 Sh 10.1-3 Sh 10.1-8 Sh 17.1.1-1 Sh 17.1.1-2 Sh 17.1.2-2 Sh 42.2-1 Sh 42.2-2 Sh 42.2-8 Populasi EMS+FK:
16.2 19.3 26.0 21.9 29.5 17.9 19.9 17.7 24.2 13.0 25.1 23.5 23.7 17.0 13.6 24.3 22.5 22.0 19.2 25.0
13.5 18.1 18.3 13.2 22.9 22.1 17.8 15.4 21.0 18.2 24.9 17.9 20.0 16.0 16.9 25.2 18.4 24.4 18.8 17.7
4 4 4 4 4 4 4 4 4 2 1 2 1 1 2 1 2 1 2 2
28 28 28 28 28 28 14 28 28 -
1 Sh 1.1.3-11 21.4 16.4 4 14 2 Sh 1.1.3-2 18.8 18.3 4 14 3 Sh 1.1.3-4 16.8 20.1 4 42 4 Sh 10.1.1-4 21.2 22.1 4 28 5 Sh 10.1.1-5 10.0 16.5 4 28 6 Sh 17.2.1-6 19.4 18.3 4 14 7 Sh 17.2.1-8 11.5 18.2 4 14 8 Sh 42.2.3-1 18.5 16.3 4 14 9 Sh 42.2.3-3 11.5 11.7 4 14 10 Sh 42.2.3-6 11.2 17.1 4 14 11 Sh 42.2.3-5 12.5 14.5 4 28 12 Sh 1.1.3-6 24.1 21.4 2 13 Sh 1.1.3-7 15.0 21.3 1 14 Sh 1.1.3-9 20.5 15.0 2 15 Sh 1.1.3-10 29.0 19.1 1 16 Sh 10.1.1-2 36.4 21.8 1 17 Sh 10.1.1-3 18.5 21.0 2 18 Sh 17.2.1-4 22.8 18.7 2 19 Sh 17.2.1-7 19.9 15.7 1 Keterangan: *Lihat keterangan pada Tabel 18. ** (-) mengindikasikan bibit mampu bertahan hidup hingga 60 hari dan tidak mati sesudah inokulasi Foc Bw.
112
Pengaruh panjang akar dan tinggi bibit awal terhadap resistensi. Dari hasil analisis data yang didapat, panjang akar awal (PAA) bibit abaka yang diuji dikelompokkan ke dalam lima kelompok, yaitu: kelompok PA-1 dengan PAA <12.5 cm, PA-2 – antara 12.5 cm – 18.8 cm, PA-3 – antara 18.8 cm – 25.0 cm, PA-4 – antara 25.0 cm – 31.3 cm, dan PA-5 > 31.3 cm. Demikian juga tinggi bibit awal (TBA). dikelompokkan ke dalam lima kelompok, yaitu: kelompok TB-1 dengan TBA <15.0 cm, TB-2 – antara 15.0 cm – 18.3 cm, TB-3 – antara 18.3 cm – 21.5 cm, TB-4 – antara 21.3 cm – 24.8 cm, dan TB-5 > 24.8 cm. Bibit abaka dengan nilai SKB 1 setelah diinokulasi dengan Foc Bw, mempunyai panjang akar dan tinggi bibit awal yang masuk ke dalam kelompok PA-2 hingga PA-5 dan TB-2 hingga TB-5 (Gambar 19). Demikian juga bibit abaka dengan nilai SKB 4, mempunyai panjang akar dan tinggi bibit awal yang masuk ke dalam kelompok PA-1 hingga PA-5 dan TB-1 hingga TB-5 (Gambar 19). Hal tersebut mengindikasikan, perbedaan PAA dan TBA dari masing- masing bibit abaka yang diuji tidak menentukan respon bibitnya. Perbedaan nilai SKB yang diamati lebih ditentukan oleh konstitusi genetika bibit dan bukan panjang akar atau tinggi bibit awalnya. Bibit abaka varian yang resisten (nilai SKB 1) setelah diinokulasi dengan Foc Bw, terlepas dari berapapun panjang akar atau tinggi bibit awalnya mampu bertahan hidup hingga akhir pengamatan (60 HSI). Sebaliknya, bibit abaka yang rentan (nilai SKB 4) setelah diinokulasi dengan Foc Bw, terlepas dari berapapun panjang akar atau tinggi bibit awalnya telah mati sebelum 60 HSI.
Perbedaan respon klon yang berasal dari satu eksplan. Dalam penelitian yang dilakukan, dari satu kalus embriogen dengan perlakuan EMS atau hasil seleksi in vitro dapat dihasilkan lebih dari satu tunas abaka. Sejumlah bibit abaka yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen dengan perlakuan EMS, setelah diinokulasi dengan Foc Bw tidak selalu menghasilkan respon yang sama (Tabel 21). Seleksi in vitro dalam media dengan FK Foc atau AF yang dilakukan tidak mampu mengeliminir fenomena tersebut. Sejumlah bibit abaka yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen hasil seleksi in vitro juga menunjukkan respon yang berbeda terhadap infeksi Foc Bw (Tabel
113
Tabel 21.
No.
Keragaman respon terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense diantara bibit abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen. Pengamatan skor kerusakan bibit (SKB) dilakukan 60 hari sesudah inokulasi Foc Bw pada bibit yang diuji.
No. kode kalus embriogen
Bibit dari kalus embriogen
Jumlah bibit dengan SKB: 1 2 4
Abaka klon Tangongon Populasi EMS:* Tg 25.5.1 Tg 45.2 Tg 59.2 Tg 70.2 Populasi EMS+FK: Tg 45.2.2 Tg 3.2.1 Tg 70.2.3 Populasi EMS+AF: Tg 70.3.1
2 2 4 3
0 0 0 0
2 0 3 2
0 4 1 1
5 6 6
1 0 3
0 4 0
4 2 3
0
2
6
2 7 5 6
1 2 1 1
1 1 2 2
0 4 2 3
7 4 4 4
2 1 1 0
2 1 1 0
3 2 2 4
8 Abaka klon Sangihe-1
Populasi EMS: Sh 1.1.1 Sh 10.1 Sh 17.1.1 Sh 42.2 Populasi EMS+FK: Sh 1.1.3 Sh 10.1.1 Sh 17.2.1 Sh 42.2.3 Keterangan: *Lihat keterangan pada Tabel 18.
21, Gambar 17. h). Hal ini mengindikasikan adanya campuran sel dengan genetic make-up yang berbeda, yang pada tahapan selanjutnya masing- masing berkembang menjadi plantlet.
PEMBAHASAN
Meskipun tidak mendapatkan klon abaka yang terbebas 100% dari infeksi Foc Bw, penelitian yang dilakukan berhasil mengidentifikasi bibit abaka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw, dengan nilai SKB 1 atau 2 dan mampu bertahan hidup hingga 60 HSI. Bibit yang dikelompokkan sebagai meningkat resistensinya dibandingkan klon abaka awalnya tersebut menunjukkan gejala infeksi Foc Bw,
114
tetapi pada periode berikutnya infeksi tidak berkembang dan bibit tetap mampu tumbuh dan berkembang serta tidak mati akibat infeksi Foc Bw. Berdasarkan responnya terhadap infeksi, bibit abaka varian dengan nilai SKB 1 atau 2 diduga mempunyai kemampuan untuk secara bertahap mengaktifkan mekanisme pertahanan terhadap infeksi Foc Bw, sehingga sempat menunjukkan gejala infeksi pada periode awal inokulasi dan pulih dari gejala infeksi (recovery) pada akhirnya. Karena klon abaka awal yang digunakan sebagai sumber eksplan tergolong sangat rentan terhadap Foc Bw (bab III), mekanisme ketahanan pada bibit abaka varian yang resisten diduga diakuisisi selama proses pengkulturan kalus embriogen. Hal ini didukung dengan berhasil didapatkannya bibit abaka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw diantara populasi KJ, meskipun frekuensinya rendah, yaitu 1 diantara 4 atau 5 bibit yang diuji dalam percobaan ini. Data yang ada juga menunjukkan, perlakuan mutagenesis dengan EMS mampu meningkatkan frekuensi didapatkannya bibit abaka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw. Frekuensi didapatkannya bibit abaka varian yang resisten Foc Bw diantara populasi EMS lebih tinggi dibandingkan populasi KJ. Sebaliknya, seleksi in vitro menggunakan media dengan penambahan FK Foc atau AF tidak meningkatkan frekuensi didapatkannya bibit abaka varian yang resisten terhadap Foc Bw. Seleksi in vitro hanya menapis sel/jaringan varian yang ada dan tidak meningkatkan frekuensi terjadinya mutasi. Hal ini terbukti dari data penelitian, frekuensi didapatkannya bibit abaka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw diantara populasi EMS dan populasi EMS+FK hampir sama. Efektivitas penggunaan seleksi in vitro menggunakan AF tidak dapat dibandingkan dengan FK atau perlakuan EMS saja kerena jumlah bibit pada populasi EMS+AF yang dievaluasi hanya sedikit. Evaluasi bibit yang lebih banyak perlu dilakukan sebelum menentukan keefektifan seleksi in vitro menggunakan AF. Namun demikian data yang ada mengindikasikan seleksi in vitro menggunakan FK Foc lebih efektif dibandingkan dengan AF. Hal ini sejalan dengan hasil penelitian sebelumnya yang menyatakan AF bukan satu-satunya toksin yang ada dalam FK Foc karena di dalam FK Foc juga terdapat toksin yang lain seperti trichothecenes (Svabova & Lebeda 2005).
115
Dalam proses patogenisitasnya, Foc mensintesis dan mensekresikan fitotoksin AF yang dapat menurunkan aktivitas ensim fenol dan polyfenol oksidase serta mengakibatkan terganggunya mekanisme pertahanan tanaman inang (Svabova & Lebeda 2005; Bouizgarne et al. 2006). Dalam penelitian ini, bibit abaka varian yang resisten terhadap Foc diregenerasikan dari kalus embriogen yang insensitif terhadap FK Foc atau AF. Dengan demikian, mekanisme resistensi yang ada pada bibit abaka varian diduga melalui mekanisme detoksifikasi toksin. Umumnya, mekanisme alami resistensi tanaman terhadap patogen yang mensekresikan AF terjadi melalui degradasi AF pada awal infeksi (Svabova & Lebeda 2005). Beberapa enzim yang dilaporkan mampu mendegradasikan AF antara lain ensim peroksidase dan fenilalanin amonia- liase (PAL) (He et al. 2002). Penelitian lebih lanjut untuk membuktikan keberadaan mekanisme yang sama pada bibit abaka yang resisten terhadap Foc Bw masih perlu dilakukan.
SIMPULAN
Dari hasil percobaan dapat disimpulkan panjang akar dan tinggi bibit awal tidak berpengaruh terhadap respon bibit abaka terhadap infeksi Foc Bw. Tanpa melihat panjang akar atau tinggi awalnya, bibit abaka yang rentan akan mati sebelum 60 hari sedangkan bibit yang resisten mampu bertahan hidup, 60 hari sesudah diinokulasi dengan Foc Bw. Sejumlah bibit abaka yang diregenerasikan dari potongan kalus embriogen yang sama tidak selalu mempunyai konstitusi genetika yang sama sehingga juga menunjukkan respon yang bervariasi terhadap infeksi Foc Bw. Meskipun dengan frekuensi yang berbeda, bibit abaka yang resisten terhadap infeksi Foc Bw dapat diidentifikasi diantara empat populasi bibit abaka yang diuji. Tetapi klon abaka resisten terhadap infeksi Foc Bw dapat diperoleh dengan frekuensi ya ng tinggi dari kalus embriogen abaka yang diberi perlakuan EMS dan diseleksi secara in vitro dalam media dengan penambahan FK Foc. Dengan prosedur yang dikembangkan berhasil diidentifikasi 8 bibit untuk abaka klon Tangongon dan 8 bibit untuk abaka klon Sangihe-1 yang meningkat resistensinya terhadap infeksi Foc Bw.
116
a
f
b
c
g
d
e
h
Gambar 17. Fenotipe bibit abaka dengan skor gejala layu (a) skor 0, (b) skor 1, (c) skor 2, (d) skor 3, dan (e) skor 4, sesuai dengan kriteria yang dikembangkan oleh Epp (1987). (f) Representatif populasi bibit abaka yang dievaluasi responnya terhadap infeksi F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi di rumah kaca. (g) bibit abaka yang mati dan yang tetap bertahan hidup setelah diinokulasi dengan Foc. (h) variasi respon bibit abaka yang diregenerasikan dari satu kalus embriogen hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc: fenotipe tidak mengalami kerusakan, sebagian mengering, hingga bibit mati.
117
20 Jumlah bibit
Populasi KJ:
Tangongon
Sangihe-1
15 10 5
3 1
3
1
1
0 1
Jumlah bibit
20
2
Populasi EMS:
3
Tangongon
4
Sangihe-1
15
15 9
10
5
5
3
4
3 1
0 1
2
20
Tangongon
Populasi EMS+FK:
Jumlah bibit
3
4
Sangihe-1
15 10
12 7
6
6
5
4
5
2
0 1
2
3
4
20 Jumlah bibit
Populasi EMS+AF:
Tangongon
Sangihe-1
15 10 5 5
2
1
0 1
2 3 Skor Kerusakan Bibit
4
Gambar 18. Sebaran respon berdasarkan skor kerusakan bibit pada 60 hari setelah diinokulasi dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Bw. Bibit abaka Populasi KJ (kultur jaringan) diregenerasikan dari kalus embriogen, Populasi EMS – kalus embriogen dengan perlakuan EMS, Populasi EMS+FK – kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti seleksi in vitro dalam FK Foc dan Populasi EMS+AF – kalus embriogen dengan perlakuan EMS dan diikuti seleksi in vitro dalam asam fusarat.
118
30 TB-3
TB-4
TB-5 19
TB-2
7
6
PA-2
5 5
PA-1
2
3
5
6
10
7
12
15
20
4 3
Jumlah bibit
TB-1
0
PA-4
PA-5
12 6
3 2
5 1
2
6
7
10
8
10
16
18
PA-3
20
3
Jumlah bibit
30
0 1
2 3 Skor kerusakan bibit
4
Gambar 19. Pengaruh tinggi bibit awal (TBA) dan panjang akar awal (PAA) terhadap skor kerusakan bibit (SKB) pada pengamatan 30 dan 60 hari sesudah inokulasi (HSI) bibit abaka dengan F. oxysporum f.sp. cubense isolat Banyuwangi. Total bibit yang dievaluasi sebanyak 99 bibit yang terdiri atas gabungan populasi kultur jaringan, EMS, EMS+FK, dan EMS+AF dari abaka klon Tangongon dan Sangihe-1
DAFTAR PUSTAKA
Ahmed KZ, Masterhazy A, Bartok T, Sagi F. 1996. In vitro techniques for selecting wheat (Triticum aesticum L.) for Fusarium-resistance II. Culture filtrate technique and inheritance of Fusarium-resistance in the somaclones. Euphytica 91:341-349. Bastasa GN, Baliad AA. 2005. Biological control of Fusarium wilt of abaka (Fusarium oxysporum) with Trichoderma and yeast. Philippines J Crops Sci 30:29-37. Borras O, Santos R, Matos AP, Cabral RS, Arzola M. 2001. A first attemp to use a Fusarium subglutinans culture filtrate for the selection of pineapple cultivars resistant to fusariose disease. Plant Breeding 120:435-438.
119
Bouizgarne B, Bouteau HE, Frankart C, Reboutier D, Madiona K, Pennarun AM, Monestiez M, Trouverie J, Amiar Z, Briand J, Brault M, Rona JP, Ouhdouch Y, Hadrami IE, Bouteau F. 2006. Early physiological responses of Arabidopsis thaliana cells to fusaric acid: toxic and signalling effects. New Phytologist 169:209-218. Damayanti F. 2004. Seleksi in vitro tanaman abaka (Musa textilis Nee) dengan filtrat Fusarium oxysporum untuk ketahanan terhadap penyakit layu Fusarium. Bioscientiae 1:11-22. Epp D. 1987. Somaclonal variation in banana: a case study with Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA (ed). Banana and Plantain Breeding Strategies. Canbera: ACIAR Pub. Hlm 140-150. He CY, HSIang T, Wolyn DJ. 2002. Induction of systemic disease resistance and pathogen defence responses in Asparagus officinalis inoculated with nonpathogenic strains of Fusarium oxysporum. Plant Pathol 51:225-230. Hidalgo OB, Santos R, Tussel RT, deMatos AP, Cabral RS, Arzola M, Perez MC. 1999. Phytotoxicity of Fusarium subglutinans culture filtrates on in vitro plantlets and calli of resistant and susceptible pineapple (Ananas comosus). Plant Pathol 48:756-758. Jin H, Hartman GL, Huang YH, Nickell CD, Widholm JM. 1996. Regeneration of soybean plants from embryogenic suspension cultures treated with toxic culture filtrate of Fusarium solani and screening of regenerants for resistance. Phytopathology 86:714-718. Ploetz RC. 2000. Banana disease: a classic and destructive disease of banana. www.plantmanagementnetwork.org. [23 Februari 2006]. Roux NS. 2004. Mutation induction in Musa – a review. Di dalam: Jain SM, Swennen R (ed). Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. Hlm. 21-29. Svabova L, Lebeda A. 2005. In vitro selection for improved plant resistance to toxin-producing pathogens. J Phytopathol 153:52-64. Thakur M, Sharma DR, Sharma SK. 2002. In vitro selection and regeneration of carnation (Dianthus caryophyllus L.) plants resistant to culture filtrate of Fusarium oxysporum f.sp. dianthi. Plant Cell Rep 20:825-828. Yunus A. 2000. Pengaruh ekstrak Fusarium moniliforme terhadap pertumbuhan dan resistensi tanaman tebu terhadap penyakit pokahbung. Agrosains 2:1-9.
120
BAB IX
PEMBAHASAN UMUM Salah satu penyebab rendahnya produktivitas serat abaka antara lain karena adanya penyakit layu Fusarium atau Panama disease yang ditimbulkan oleh cendawan Fusarium oxysporum f.sp cubense (Foc) pada areal pertanaman. Infeksi Foc yang dapat menyebabkan kelayuan dan mengakibatkan kematian tanama n abaka, sangat menurunkan produktivitas karena serat abaka dihasilkan dari pelepah yang membentuk batang semu. Permasalahan ini sulit dipecahkan karena belum tersedianya genotipe abaka yang resisten terhadap penyakit layu Fusarium dan berdaya hasil tinggi di Indonesia. Berbagai alternatif telah dilakukan untuk mengatasi permasalahan tersebut yaitu pengendalian penyakit secara terpadu dengan penggunaan bibit sehat, penggunaan mikroba antagonis, penanaman gulma berguna dan penggunaan pestisida nabati, namun keberhasilannya masih diragukan. Sejauh ini, penggunaan kultivar/klon abaka yang resisten merupakan metode alternatif pengendalian Foc. Diperolehnya klon abaka yang resisten terhadap Foc melalui induksi keragaman genetika yang dikombinasikan dengan seleksi in vitro terhadap genotipe-genotipe abaka yang berdaya hasil tinggi merupakan pemecahan masalah yang strategis. Untuk mendapatkan klon abaka unggul dan resisten terhadap penyakit layu Fusarium tersebut diperlukan tersedianya metode seleksi resistensi terhadap infeksi Foc yang efektif dan akurat untuk tanaman abaka, metode induksi variasi somaklonal untuk meningkatkan keragaman genetika abaka, dan metode seleksi in vitro yang dapat menghasilkan tunas insensitif terhadap agens penyeleksi yaitu filtrat kultur Foc atau asam fusarat. Dengan tersedianya ketiga hal tersebut akan memudahkan evaluasi dan pengambilan keputusan terhadap hasil mutasi dan seleksi in vitro. Dalam penelitian ini digunakan abaca klon Tangongon yang telah diketahui memiliki daya hasil serat tinggi dan Sangihe-1 yang memiliki kualitas pulp/kertas baik. Ciri khas genotipe abaka yang memiliki daya hasil tinggi ditunjukkan dengan beberapa karakter antara lain: tinggi dan lingkar batang besar,
121
jumlah anakan banyak, dan rendemen seratnya tinggi.
Klon Tangongon dapat
mencapai tinggi 4.5-5.5
yang
meter
pada
lingkungan
sesuai
untuk
pertumbuhannya yaitu curah hujan mencapai 2 000-3 000 mm/tahun dengan temperatur rata-rata 27o C dan kelembaban udara 78-88% (Sudjindro 1999; Dempsey 1963). Klon Sangihe-1 memiliki kualitas pulp/kertas baik yang dicirikan dengan lebih tingginya karakter-karakter indeks retak, indeks tarik, indeks sobek, dan rendemen kertas dibandingkan 10 klon lainnya (Setyo-Budi et al. 2001). Namun, kedua klon tersebut tidak didiskripsikan sebagai klon yang resisten terhadap penyakit layu Fusarium. Untuk memperoleh informasi yang akurat apakah aktivitas peningkatan keragaman genetik dan seleksi in vitro diatas efektif atau tidak, diperlukan ukuran karakter resistensi terhadap infeksi Foc pada populasi hasil regenerasi dari seleksi in vitro. Oleh karena itu pada awal penelitian dilakukan percobaan untuk menetapkan karakter yang secara konsisten dapat memisahkan genotipe yang ada kedalam kelompok imun, tahan, agak tahan, agak rentan, rentan, dan sangat rentan, sehingga peluang terjadinya kekeliruan dapat diperkecil. Dalam percobaan untuk pengembangan metode penapisan dievaluasi metode inokulasi 1 (INO-1): penanaman bibit abaka dalam media tanam yang diinfeksi dengan Foc. Inokulum diperoleh dengan mencampur Foc yang dibiakkan dalam media beras (10 g) dengan media tanah (3 kg) dan diinkubasikan selama satu minggu sebelum bibit abaka ditanam. Metode INO-2: penanaman bibit abaka yang akarnya telah dipotong ± 1 cm di bagian ujung dan direndam selama dua jam dalam suspensi konidia Foc (106 konidia/ml) pada media tanah steril. Metode INO-3: penanaman bibit abaka dalam media tana h steril dan penyiraman dengan 50 ml suspensi konidia Foc (106 konidia/ml). Bibit abaka yang tidak diinokulasi Foc digunakan sebagai pembanding. Untuk memperoleh metode penapisan yang lebih akurat, dilakukan evaluasi pengaruh penggunaan dua tingkat kerapatan konidia terhadap munculnya gejala dan intensitas penyakit layu Fusarium pada tiga klon abaka (Tangongon, Sangihe-1 dan UB3). Kerapatan konidia Foc isolat Banyuwangi yang dievaluasi terdiri atas: 105 konidia/ml (KON1) dan 106 konidia/ml (KON-2). Dari hasil percobaan di atas diketahui bahwa perlakuan INO-2 dan
122
kerapatan konidia 106 konidia/ml (KON-2) dapat menimbulkan gejala kelayuan dan intensitas penyakit paling tinggi pada bibit abaka yang diinokulasi. Perlakuan tersebut digunakan untuk pengujian respon sepuluh genotipe abaka dan terbukti dapat memisahkan genotipe abaka ke dalam kelompok sangat rentan dan rentan pada fase pertumbuhan bibit di rumah kaca. Hasil percobaan ini memperlihatkan bahwa sembilan dari sepuluh genotipe yang diuji terhadap infeksi Foc memiliki respon yang sama yaitu sangat rentan, mengindikasikan bahwa genotipe-genotipe tersebut memiliki keragaman genetika sempit (bahasan BAB III). Keragaman genetika yang sempit tersebut dapat ditingkatkan dengan cara induksi variasi somaklonal dengan menambahkan mutagen EMS pada kultur in vitro kalus embriogen abaka. Peningkatan keragaman genetika tanaman merupakan langkah awal untuk mengembangkan klon yang resisten terhadap infeksi penyakit. Pada percobaan evaluasi efektivitas EMS untuk meningkatkan keragaman somaklonal plantlet abaka yang diregenerasikan dari kultur kalus embriogen ini, dua genotipe abaka Tangongon dan Sangihe-1 diperlakukan dengan berbagai konsentrasi EMS. Hasil percobaan menunjukkan bahwa perlakuan EMS terhadap kalus embriogen abaka meskipun menghambat proliferasi tunas, namun dapat meningkatkan tipe varian somaklonal diantara bibit abaka yang diregenerasikan dari kalus embriogen. Tipe varian somaklonal yang dijumpai diantara bibit abaka antara lain: daun variegata, daun berkerut, pelepah berwarna ungu kehitaman, pelepah menyatu dan batang ramping. Keberadaan sejumlah fenotipe varian diantara bibit abaka hasil perlakuan EMS pada kalus embriogen mengindikasikan meningkatnya keragaman genetika bibit abaka sehingga membuka peluang penggunaan kalus embriogen yang dikombinasikan dengan perlakuan EMS untuk mendapatkan karakter unggul tertentu seperti resistensi terhadap layu Fusarium (bahasan BAB IV). Evaluasi varian somaklonal tanaman abaka hasil perlakuan dengan EMS dilanjutkan hingga fase pertumbuhan generatif yaitu umur 16 bulan setelah tanam, dengan tujuan untuk mengevaluasi efektifitas EMS terhadap peningkatan keragaman sifat kuantitatif terutama produktivitas dan kualitas serat. Dari hasil pengukuran karakter kualitatif dan kuantitatif diperoleh beberapa tipe varian antara lain daun variegata, tanaman kate atau kerdil, tanaman lebih tinggi,
123
produktivitas dan kualitas serat tinggi. Selain produktivitas dan kualitas serat, tipe varian yang diamati pada fase pertumbuhan generatif sama dengan pada fase pertumbuhan vegetatif (bibit), hal ini menunjukkan adanya konsistensi pengaruh EMS terhadap peningkatan keragaman genetika abaka. Tipe dan frekuensi keragaman kualitatif dan kuantitatif pada klon Tangongon berbeda dengan klon Sangihe-1, mengindikasikan adanya pengaruh genotipe terhadap terbentuknya varian somaklonal. Diperolehnya varian-varian diantara populasi hasil regenerasi kalus embriogen abaka dengan perlakuan EMS membuka peluang penggunaan kalus
embriogen
yang
dikombinasikan
dengan
perlakuan
EMS
untuk
mendapatkan karakter unggul tertentu seperti resistensi terhadap layu Fusarium. Untuk menyeleksi varian-varian tersebut perlu didukung dengan teknik seleksi in vitro menggunakan filtrat kultur Foc atau asam fusarat (bahasan BAB V). Dalam penelitian ini peningkatan keragaman genetika dilakukan dengan perlakuan EMS pada eksplan dan diikuti dengan pengkulturan eksplan secara in vitro sehingga diperoleh proliferasi sel varian. Selanjutnya, sel atau jaringan varian diseleksi dalam media selektif dengan penambahan agens penyeleksi tertentu untuk mengidentifikasi sel atau jaringan varian yang insensitif. Regenerasi plantlet dari sel atau jaringan varian dapat menghasilkan tanaman yang resisten terhadap infeksi penyakit yang diinginkan. Seleksi in vitro dilakukan dengan menggunakan filtrat kultur (FK) Foc dan asam fusarat (AF) sebagai agens penyeleksi. Pada penggunaan FK Foc, percobaan dilakukan untuk mengevaluasi daya hambat FK dari tiga isolat Foc terhadap pertumbuhan tunas abaka, menentukan konsentrasi sub- letal FK isolat Foc terpilih, yaitu konsentrasi FK yang mempunyai daya hambat terhadap pertumbuha n tunas abaka minimal 90%, meregenerasikan sel/jaringan varian abaka yang insensitif terhadap FK Foc menjadi plantlet, dan mengevaluasi respon plantlet yang didapat dari hasil seleksi in vitro terhadap infeksi Foc. Dari hasil penelitian, FK Foc isolat Banyuwangi, Bojonegoro, dan Malang mempunyai daya hambat yang berbeda. Filtrat kultur tiga isolat Foc yang digunakan berpengaruh negatif terhadap pertumbuhan tunas abaka klon Tangongon dan Sangihe-1. Tetapi FK Foc isolat Banyuwangi menunjukkan daya
124
hambat lebih tinggi dibandingkan isolat Bojonegoro dan Malang. Perbedaan tersebut berhubungan dengan produksi toksin oleh masing- masing isolat, karena isolat yang memproduksi toksin lebih tinggi dapat menimbulkan penghambatan lebih kuat (Cachinero et al. 2002). Meskipun dari kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1 dengan perlakuan EMS 0.6% dapat dihasilkan tunas abaka yang insensitif FK Foc, tidak semua bibit yang diregenerasikan dari tunas hasil seleksi in vitro bersifat resisten terhadap infeksi Foc (sebagian rentan terhadap infeksi Foc). Hal ini diduga antara lain akibat terbentuknya tunas kimera atau terjadinya escaped dalam proses seleksi in vitro. Tunas kimera yang tersusun dari jaringan varian (resisten) dan jaringan normal (rentan) dapat bertahan dalam media selektif yang mengandung FK Foc sehingga terjadi salah identifikasi hasil seleksi in vitro. Sel/jaringan kimera yang escaped dari seleksi tidak 100% terdiri atas sel/jaringan varian yang insensitif terhadap FK Foc tetapi juga terdapat sel/jaringan normal. Pada tahapan proliferasi, sel/jaringan yang escaped dari seleksi juga akan menghasilkan bibit yang rentan terhadap infeksi Foc. Pada tahapan proliferasi dalam media tanpa penambahan FK Foc, tunas baru dapat berkembang dari sel/jaringan normal sehingga menghasilkan bibit dengan fenotipe rentan terhadap infeksi Foc (bahasan BAB VI). Salah satu toksin yang diproduksi oleh cendawan Foc adalah asam fusarat (Bacon et al. 1996), merupakan toksin yang sering digunakan sebagai agens penyeleksi dalam seleksi in vitro untuk memperoleh tanaman tahan terhadap Foc. Daya hambat pertumbuhan kalus dan tunas in vitro klon Tangongon dan Sangihe1 dipengaruhi oleh konsentrasi AF yang ditambahkan ke dalam media selektif. Penghambatan pertumbuhan kalus dan tunas pada media selektif dengan penambahan AF merupakan akibat terganggunya permeabilitas membran sel dan protoplas, terhambatnya oksidasi sitokrom dan respirasi pada mitokondria sehingga menghambat sintesis ATP, serta menurunnya aktivitas fenol (Jin et al. 1996; Bouizgarne et al. 2006). Daya hambat AF terhadap proliferasi kalus dan tunas klon Sangihe-1 lebih tinggi dibandingkan Tangongon, mengindikasikan adanya pengaruh faktor genetika diantara dua klon tersebut.
125
Kalus yang telah diberi perlakuan EMS 0.6% dan diseleksi dalam media selektif dengan penambahan AF 50 mg/l menunjukkan respon yang beragam (eksplan membusuk, diantara kalus yang membusuk berkembang kalus embriogen, tunas ruset, atau tunas normal abaka yang insensitif terhadap AF). Keragaman ini diduga terjadi sebagai akibat adanya mutasi yang diinduksi dengan EMS atau sel-sel yang tidak terseleksi dalam media selektif (kimera). Seleksi in vitro dengan penambahan AF 50 mg/l menghasilkan total 85 tunas abaka klon Tangongon dan 28 tunas abaka klon Sangihe-1 yang insensitif terhadap AF. Tunas yang insensitif terhadap toksin yang digunakan dalam seleksi in vitro merupakan akibat terinduksinya enzim detosifikasi pada tanaman, ketahanan sistemik (SAR) atau elisitor untuk menghasilkan fitoaleksin (Jayasankar et al. 2000; Svabova & Lebeda 2005; Yusnita et al. 2005). Hasil evaluasi tunas yang insensitif AF menunjukkan bahwa 2 dari 3 tunas tersebut imun terhadap infeksi Foc. Resistensi tunas/tanaman hasil seleksi in vitro terhadap patogen berkorelasi dengan ketahanan tunas tersebut terhadap toksin yang ditambahkan dalam media selektif (bahasan BAB VII). Resistensi terhadap infeksi Foc plantlets abaka hasil regenerasi dari seleksi in vitro, mutagenesis dan kultur jaringan dievaluasi dengan metode inokulasi dan kerapatan konidia yang dikembangkan pada BAB III. Pada penelitian ini, persentase bibit abaka resisten terhadap Foc hasil seleksi in vitro dengan agens penyeleksi FK Foc lebih tinggi dibandingkan dengan AF, mengindikasikan bahwa penggunaan FK Foc lebih efektif dibandingkan dengan AF. Efektifitas FK Foc untuk agens penyeleksi dalam seleksi in vitro disebabkan karena dalam FK Foc terdapat fitotoksin lain selain asam fusarat yang disekresikan patogen tersebut antara lain: trichothecenes (Svabova & Lebeda 2005). Sejumlah bibit abaka yang diregenerasikan dari kultur jaringan dan hasil mutagenesis dengan EMS tanpa melalui seleksi in vitro juga resisten terhadap infeksi Foc. Hal ini terjadi karena adanya perubahan genetika yang menyebabkan variasi somaklonal (Skirvin et al. 1994). Perubahan genetika yang mendasari terjadinya variasi somaklonal meliputi mutasi titik, perubahan jumlah kopi gen tertentu,
aktivasi
transposable
element,
perubahan
jumlah
kromosom,
chromosomal rearrangement, dan metilasi DNA ( Larkin & Scowcroft 1981,
126
Gichner 2003). Dari penelitian ini dapat diketahui bahwa resistensi abaka dapat diinduksi dengan kultur jaringan, mutagenesis in vitro menggunakan EMS, dan mutagenesis yang dilanjutkan dengan seleksi in vitro menggunakan FK Foc atau AF sebagai agens penyeleksi (bahasan BAB VIII).
127
BAB X
SIMPULAN DAN SARAN SIMPULAN
1.
Dari evaluasi respon tanaman abaka terhadap infeksi Fusarium oxysporum f.sp. cubense, diperoleh hasil bahwa metode inokulasi dengan cara melukai akar bibit abaka kemudian merendamnya dalam suspensi konidia Foc dengan kerapatan 106 konidia/ml selama 2 jam merupakan metode yang efektif dapat menimbulkan gejala kelayuan, dengan demikian metode ini dapat digunakan untuk penapisan plasma nutfah abaka terhadap infeksi Foc. Berdasarkan nilai intensitas penyakit yang diamati, dari sepuluh genotipe abaka yang dievaluasi responnya terhadap infeksi Foc, 9 genotipe tergolong sangat rentan dan satu genotipe rentan.
2.
Peningkatan keragaman genetika abaka, terutama ya ng membawa sifat ketahanan terhadap infeksi Foc perlu dilakukan dengan metode yang efektif. Karena abaka merupakan tanaman yang berkembangbiak secara vegetatif, induksi keragaman genetika melalui mutasi yang dikombinasikan dengan perbanyakan tanaman secara in vitro untuk menimbulkan variasi somaklonal merupakan alternatif cara yang dapat digunakan. Perlakuan mutagen EMS konsentrasi 0.3-0.6% (v/v) terhadap kalus embriogen abaka dapat menghambat proliferasi kalus atau tunas abaka dan meningkatkan tipe maupun frekuensi variasi somaklonal diantara bibit /tanaman abaka varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen.
3.
Tipe dan frekuensi varian lebih banyak dihasilkan dari perlakuan EMS dengan konsentrasi yang lebih tinggi, namun pada konsentrasi tinggi umumnya diperoleh varian yang bersifat negatif. Keberadaan sejumlah fenotipe varian diantara bibit abaka hasil perlakuan EMS pada kalus embriogen mengindikasikan meningkatnya keragaman genetika bibit abaka sehingga
membuka
peluang
penggunaan
kalus
embriogen
yang
dikombinasikan dengan perlakuan 0.3-0.6% EMS untuk mendapatkan
128
karakter unggul tertentu misalnya ketahanan terhadap patogen. 4.
Secara umum, karakter kualitatif dan kuantitatif varian yang diamati diantara populasi tanaman abaka hasil perlakuan EMS tidak menguntungkan, antara lain: daun variegata dan berbagai kelainan morfologi daun. Namun demikian diperoleh beberapa varian dengan kekuatan serat lebih baik dibandingkan populasi standar yaitu galur S1 38.7.0, S2 89.2.2, dan S3 64.1.1.
5.
Induksi keragaman genetika melalui mutagenesis akan lebih berhasil dan terarah apabila dikombinasikan dengan seleksi in vitro menggunakan filtrat kultur Foc atau toksin yang dihasilkannya yaitu asam fusarat (AF). Dari seleksi in vitro kalus embriogen abaka klon Tangongon dan Sangihe-1, diperoleh hasil bahwa agens penyeleksi filtrat kultur Foc isolat Banyuwangi dan AF mampu menghambat proliferasi dan pertumbuhan kalus abaka yang diseleksi.
6.
Konsentrasi sub- letal yaitu konsentrasi yang mempunyai daya hambat paling tinggi terhadap pertumbuhan dan proliferasi tunas abaka untuk FK Foc isolat Banyuwangi adalah 40% dan untuk asam fusarat (AF) adalah 50 mg/l. Dengan demikian metode seleksi in vitro yang berhasil dikembangkan pada penelitian ini adalah perendaman kalus embriogen abaka dalam larutan 0.6% EMS (v/v) selama 2 jam kemudian dikulturkan dalam media selektif dengan penambahan 40% filtrat kultur Foc isolat yang paling virulen (dalam penelitian ini adalah Banyuwangi) atau 50 mg/l asam fusarat selama tiga periode pengulturan, masing- masing selama 2 bulan.
7. Dari hasil evaluasi varian yang insensitif terhadap FK Foc dengan teknik detached leaf dual cultures, diperoleh 4 varian yang imun (Tg 3.2.1.1-Foc3, Tg 3.2.1.2-Foc3, Tg 70.2.3-Foc5, Tg 70.2.3-Foc7), 4 varian tahan (Tg 3.2.1.1Foc2, Tg 3.2.1.1-Foc4, Sh 1.1.3-Foc4, Sh 1.1.3-Foc8) dan 3 varian agak tahan (Tg 3.2.1.2-Foc4, Tg 70.2.3-Foc1, Sh 17.2.1-Foc7) terhadap infeksi Foc. Sedangkan identifikasi terhadap bibit abaka hasil seleksi in vitro dengan asam fusarat yang insensitif terhadap AF diperoleh 2 bibit abaka (Tg 70.3.1.1-AF1 dan Tg 70.3.1.1-AF2) yang imun terhadap infeksi Foc. Metode seleksi in vitro dengan menggunakan agens penyeleksi FK Foc lebih efektif dibandingkan dengan AF karena FK Foc mengandung toksin lain selain asam fusarat. Pada
129
seleksi in vitro dengan FK Foc dihasilkan varian yang tahan terhadap infeksi Foc lebih banyak dibandingkan dengan AF. 8. Resistensi abaka dapat diinduksi dengan kombinasi antara mutagenesis dengan seleksi in vitro menggunakan FK Foc dan AF sebagai agens penyeleksi, dengan mutagenesis menggunakan EMS, serta melalui variasi somaklonal dari kultur jaringan. Tetapi klon abaka resisten terhadap infeksi Foc Bw dapat diperoleh dengan frekuensi yang tinggi dari kalus embriogen abaka yang diberi perlakuan EMS dan diseleksi secara in vitro dalam media dengan penambahan FK Foc. Dengan prosedur yang dikembangkan berhasil diidentifikasi 8 bibit untuk abaka klon Tangongon (Tg 3.2.1.1-3, Tg 3.2.1.1-4, Tg 3.2.1.2-3, Tg 3.2.1.2-4, Tg 45.2.2.2-2, Tg 70.2.3-1, Tg 70.2.3-5, Tg 70.2.37) dan 8 bibit untuk abaka klon Sangihe-1 (Sh 1.1.3-6, Sh 1.1.3-7, Sh 1.1.3-9, Sh 1.1.3-10, Sh 10.1.1-2, Sh 10.1.1-3, Sh 17.2.1-4, Sh 17.2.1-7) yang meningkat resistensinya terhadap infeksi Foc isolat Banyuwangi.
SARAN
1.
Klon-klon abaka hasil mutasi dan seleksi in vitro yang tahan terhadap Foc sebaiknya diuji lebih lanjut untuk karakter kualitatif dan kuantitatif lainnya seperti: produksi dan kualitas serat. Sebaliknya klon-klon hasil mutagenesis yang memiliki produktivitas dan kualitas serat tinggi seharusnya diuji ketahanannya terhadap infeksi Foc.
2.
Perlu dilakukan pengujian resistensi terhadap infeksi Foc klon-klon abaka yang diperoleh dari penelitian ini di berbagai daerah pengembangan abaka sehingga akan diperoleh klon yang tahan Foc untuk masing- masing daerah tersebut.
3.
Klon-klon abaka yang tahan terhadap infeksi Foc dan yang memiliki karakter kualitatif atau kuantitatif lebih baik dibandingkan klon asalnya dari hasil penelitian ini, perlu dilestarikan sebagai tambahan koleksi plasma nutfah baru.
4.
Sejalan dengan perkembangan patogen, penelitian untuk memperoleh klon yang resisten terhadap Foc perlu dilakukan secara terus- menerus karena
130
dalam kurun waktu tertentu ras Foc yang menyerang abaka akan mengalami perubahan (mutasi alami) untuk mempertahankan kelangsungan hidupnya.
131
DAFTAR PUSTAKA
Agrios GN. 1997. Plant Pathology. San Diego: Academic Press, Inc. Ahloowalia BS. 1986. Limitation to the use of somaclonal variation in crop improvement. Di dalam: Semal J, editor. Somaclonal Variation and Crop Improvement . New York: Martinus Nijhoff Pub. hlm. 14-27 Ahloowalia BS, Maluszynski M. 2001. Induced mutation - A new paradigm in plant breeding. Euphytica 118: 167-173. Ahloowalia BS, Maluszynski M, Nichterlein K. 2004. Global impact of mutationderived varieties. Euphytica 135:187-204. Ahmed KZ, Mesterhazy A, Sagi F. 1991. In vitro techniques for selecting wheat (Triticum aestivum L.) for Fusarium-resistance. I. double- layer culture technique. Euphytica 57:251-257 Ahmed KZ, Mesterhazy A, Bartok T, Sagi F. 1996. In vitro techniques for selecting wheat (Triticum aestivum L.) for Fusarium-resistance II. Culture filtrate technique and inheritance of Fusarium-resistance in the somaclones. Euphytica 91: 341-349 Aragon TC. 2000. Fiber crops programe area research planning and prioritization. Phillipine Institute for Development Studies. http://www.pids.gov.ph [28 Juni 2006] Arumingtyas EL, Indriyani S. 2005. Induksi variabilitas genetik percabangan tanaman kenaf (Hibiscus cannabinus L.) dengan mutagen kimia Ethyl Methane Sulfonate (EMS). Natural Jurnal 8 (2): 24-28 Bacon CW, Porter JK, Norred WP, Leslie JF. 1996. Production of Fusaric acid by Fusarium species. App. Env. Microbiol 62(11): 4039-4043. Bastasa GN, Baliad AA. 2005. Biological control of Fusarium wilt of abaka (Fusarium oxysporum) with Trichoderma and yeast. Philippines J Crops Sci 30:29-37. Basuki S. 2003. Identification of DNA markers and recombinations events in the vinicity of the Fusarium oxysporum f.sp. licopersici resistance gene I-3 of tomato (Lycopersicon esculentum) [Thesis]. Brisbane: School of Land & Food Sciences and School of Molecular & Microbiology Sciences, The University of Queensland.
132
Ben-Yephet Y, Reuven M, Zviebil A, Shtienberg D. 1996. Effects of initial inoculum and cultivar resistance on incidence of Fusarium wilt and population densities of Fusarium oxysporum F.sp. dianthi on carnation and in soil. Phytopathology 86:751-756. Berger J. 1969. The world’s major fibres crops. Their cultivation and manuring. Zurich: Centre d’Etude de l’Azote. BI. 2003. Model Kelayakan Proyek Kemitraan Terpadu perkebunan Pisang Abaka. http://www.bi.go.id/sipuk/lm/ind/pisang-ABACA [18 April 2003] Bird RMcK, Neuffer MG. 1987. Induced mutation in maize. Plant breeding Reviews 5:139-180 Borras O, Santos R, Matos AP, Cabral RS, Arzola M. 2001. A first attempt to use a Fusarium subglutinans culture filtrate for the selection of pineapple cultivars resistant to fusariose disease. Plant Breeding 120: 435-438. Bouizgarne B, Bouteau HE, Frankart C, Reboutier D, Madiona K, Pennarun AM, Monestiez M, Trouverie J, Amiar Z, Briand J, Brault M, Rona JP, Ouhdouch Y, Hadrami IE, Bouteau F. 2006. Early physiological responses of Arabidopsis thaliana cells to fusaric acid: toxic and signalling effects. New Phytologist 169:209-218. Burge Y, Katzir N, Tzuri G, Portnoy V, Saar U, Shriber S, Perl- Treves R, Cohen R. 2003. Variation in the resistance of melon genotypes to Fusarium oxysporum f.sp. melonis race 1 determine by inoculation tests and molecular markers. Plant Pathol 52:204-211. Cachinero JM, Hervas A, Jimenez-Diaz RM, Tena M. 2002. Plant defence reactions against Fusarium wilt in chickpea ind uced by incopatible race 0 of Fusarium oxysporum f.sp. ciceris and non- host isolates of F. Oxysporum. Plant Pathol 51:765-776. Cai T, Butler LG. 1996. Somaclonal variation in sorghum. Di dalam: Bajaj YPS, editor. Di dalam: Biotechnology in Agriculture and Forestry 36: Somaclonal variation in crop improvement II. Springer. hlm. 81-106. Chen M, Choi Y, Voytas DF, Rodermel S. 2000. Mutations in the Arabidopsis VAR2 locus cause leaf variegation due to the loss of chloroplast FtsH protease. The Plant Journal 22(4): 303-313 Damayanti F. 2002. Seleksi in vitro untuk ketahanan terhadap penyakit layu Fusarium pada tanaman abaka (Musa textilis Nee). [Tesis]. Bogor: Program Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor.
133
Damayanti F. 2004. Seleksi in vitro tanaman abaka (Musa textilis Nee) dengan filtrat Fusarium oxysporum untuk ketahanan terhadap penyakit layu Fusarium. Bioscientiae 1(2):11-22. Del-Rosario AG, Zamora AB. 1988. Plant tissue culture research in the Philippines. The Philippine Agric. Special Issue:43-61 Dempsey JM. 1963. Long vegetable fiber development in South Vietnam and other Asian Countries 1957-1962. Saigon: USOM. Di Pietro A, Madrid MP, Caracuel Z, Delgado-Jarana J, Roncero MIG. 2003. Fusarium oxysporum: exploring the molecular arsenal of a vascular wilt fungus. Mol Plant Pathol 4:315-325. Djatnika I, Hermanto C, Eliza. 2003. Pengendalian hayati layu Fusarium pada tanaman pisang dengan Pseudomonas fluorescens dan Gliocladium sp. J Hort 13:205-211. Durbin RD. 1983. Future Prospect in Toxin Research. Di dalam: Daly, Deverall, editor. Toxins and Plant Pathogenesis. Sydney: Academic Press. hlm 159177. Duryatmo S, Dasoeki R. 1999. Pisang abaca bahan baku penghasil uang. Trubus 30 (351):48-49. Epp D. 1987. Somaclonal variation in banana: a case study with Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA, editor. Banana and Plantain Breeding Strategies. Canbera: ACIAR Publ, hlm140-150. Fadel F, Wenzei G. 1993. In vitro selection for tolerance to Fusarium in F1 microspore populations of wheat. Plant Breeding 110: 89-95 Gichner T, Stavevra DA, van Breusegem F. 2001. O-Phenylenediamine- induced DNA damage and mutagenicity in tobacco seedlings is light-dependent. Mutation Research 495: 117-125. Gichner T. 2003. Differential genotoxicity of ethyl methanesulphonate, N-ethylN-nitrosourea and maleic hydrazide in tobacco seedlings based on data of the Comet assay and two recombination assay. Mutation Research 538: 171179 Goodman RN, Kiraly Z, Wood KR. 1986. The biochemistry and physiology of plant disease. Missouri: The University of Missouri Press. Gowda MVC, Nadaf HL, Sheshagiri R. 1996. The role of mutation in intraspecific differentiation of groundnut (Arachis hypogaea L). Euphytica 90:105-113
134
Hadipoentyanti E, Ratnadewi D, Solihat L. 2001. Variabilitas genetik berbagai varietas abaka (Musa textilis Nee) dan kerabat liar melalui analisis RAPD. Zuriat 12:93-106. Harborne JB. 1988. Introduction to ecological biochemistry. Edisi ke-tiga. London: Academic Press Limited. 356 hlm. He CY, Hsiang T, Wolyn DJ. 2002. Induction of systemic disease resistance and pathogen defence responses in Asparagus officinalis inoculated with nonpathogenic strains of Fusarium oxysporum. Plant Pathol 51:225-230. Heliyanto B, Marjani. Setyo-Budi U, Sudjindro, Kangiden DI. 1995. Eksplorasi plasma nutfah abaca di daerah Lampung Selatan. Bul. Tembakau dan Serat 4: 7-9 Heyne K. 1987. Tumbuhan Berguna Indonesia I. Jakarta: Yayasan Sarana Warna Jaya. Hidalgo OB, Santos R, Tussel RT, de Matos AP, Cabral RS, Arzola M, Perez MC. 1999. Phytotoxity of Fusarium subglutinans culture filtrates on in vitro plantlets and calli of resistant and susceptible pineapple (Ananas comosus). Plant Pathol. 48: 756-758. Hilario A. 2006. The abaca republic. Philippines J. Crop Sci. 31(2): 01-02. Hilman I, Toruan-Mathius N. 2001. Budi daya dan prospek pengembangan abaka. Jakarta: Penebar Swadaya. Hwang SC, Ko WH. 1987. Somaclonal variation of bananas and screening for resistance to Fusarium wilt. Di dalam: Persley GJ, De Langhe EA, editor. Banana and plantain breeding strategies. Canberra: ACIAR. hlm 151-156. Hwang SC, Ko WH. 2004. Cavendish banana cultivars resistant to Fusarium wilt acquired through somaclonal variation in Taiwan. Plant Disease 88(6): 580588. Hutagalung L. 2002. Status penyakit layu dan penyakit kerdil pisang di propinsi Lampung. Makalah Seminar Pengendalian Penyakit Layu Pisang. Padang, 22-23 Oktober 2002. 18 hlm. Inayati A. 2003. Seleksi ketahanan in vitro plantlet vanili terhadap Fusarium oxysporum f.sp vanillae menggunakan teknik double layer, kultur filtrat dan asam fusarat. [Tesis]. Yogyakarta: Program Pascasarjana. Universitas Gadjah Mada. Ishak, Dwimahyani I. 2005. Evaluasi pertumbuhan dan ketahanan galur mutan pisang terhadap F. oxysporum fsp. Cubense (FOC). J Stigma 13:26-30.
135
Jayasankar S, Li Z, Gray DJ. 2000. In-vitro selection of Vitis vinifera ‘Chardonnay’ with Elsinoe ampelina culture filtrate is accompanied by fungal resistance and enhanced secretion of chitinase. Planta 211: 200-208. Jin H, Hartman GL, Huang YH, Nickell CD, Widholm JM. 1996. Regeneration of soybean plants from embryogenic suspension cultures treated with toxic culture filtrate of Fusarium solani and screening of regenerants for resistance. Phytopathology 86 (7): 714-718. Joseph R, Yeoh H-H, Loh C-S. 2004. Induced mutations in cassava using somatic embryos and the identification of mutant plants with altered starch yield and composition. Plant Cell Rep 23(1-2):91-98. Karp A. 1995. Somaclonal variation as a tool for crop improvement. Euphytica 85:295-302. Kumar PS, Matur, VL. 2004. Chromosomal instability in callus culture of Pisum sativum. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 78: 267-271. Leal MR, Maribona RH, Rutz A, Kornsva S, Canales E, Dinkova TD, Izquierdo F, Coro O, Rizo D. 1996. Somaclonal variation as a source of resistance to eyespot disease of sugarcane. Plant Breeding 115:37-42. Li S, Hartman GL, Widholm JM. 1999. Viability staining of soybean suspensioncultured cells and a seedling stem cutting assay to evaluate phytotoxicity of Fusarium solani f.sp. glycines culture filtrates. Plant Cell Rep. 18(5): 375380. Mak C, Ho YW, Liew KW, Asif JM. 2004a. Biotechnology and in vitro mutagenesis for banana improvement. Di dalam: Jain SM, Swennen R, editor. Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 51-68. Mak C, Mohamed AA, Liew KW, Ho YW. 2004b. Early screening technique for Fusarium wilt resistance in banana micropropagated plants. Di dalam: Jain SM, Swennen R, editor. Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Publ, Inc. hlm. 11-20 Maluszynski M, Ahloowalia BS, Sigurbjörnsson B. 1995. Application of in vivo and in vitro mutation techniques for crop improvement. Euphytica 85: 303315. Mangal M, Sharma DR. 2002. In vitro mutagenesis and cell selection for the induction of black rot resistance in cauliflower. J. Hort Sci Biotech. 77 (3): 268-272. Mante S, Tepper HB. 1983. Propagation of Musa textilis Nee plants from apical meristem slices in vitro. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 2:151-159.
136
Mariska I, Sukmadjaja D. 2003. Perbanyakan bibit abaka melalui kultur jaringan. Bogor: Balitbiogen. 14 hlm. Matsumoto K, Barbosa ML, Souza LAC, Teixeira. 1995. Race 1 fusarium wilt tolerance on banana plants selected by fusaric acid. Euphytica 84:67-71 Montgomery B. 1954. The leaf fibers. Di dalam Mauersberger HR, editor. Textile fibers. Their physical, microscopic, and chemical properties. New York: John Willey & Sons Inc. hlm 360-391 Morpurgo R, Lopato SV, Afza R, Novak FJ. 1994. Selection parameters for resistance to Fusarium oxysporum f.sp cubense race 1 and 4 on diploid banana (Musa acuminata Colla). Euphytica 75:121-129 Murashige I, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant 159: 473-497 Nagatomi S. 1996. A new approach of radiation breeding toward improvement of disease resistance in crops. Proc. Seminar on Integrated Control on Main Diseases of Industrial Crops. Bogor, 13-14 March 1996. RISMC-JICA. hlm 16-24 Nasir N, Jumjunidang, Eliesti F, dab Meldia Y. 2003. Penyakit layu Panama pada pisang: observasi ras 4 Fusarium oxysporum f.sp. cubense di Jawa Barat. J. Hort 13:269-275. Nasir N, Jumjunidang. 2003. Karakterisasi ras Fusarium oxysporum f.sp. cubense dengan metode vegetative compatibility group test dan identifikasi kultivar pisang yang terserang. J. Hort. 13(4): 276-284. Nur N. 1957. Observasi pada Musa textilis Nee. Bagian pertama: Catatan mengenai biologi bunga. Teknik Pertanian VI(11/12):391-473. Orlando R, Magro P, Rugini E. 1997. Pectic enzymes as a selective pressure tool for in vitro recovery of strawberry plants with fungal disease resistance. Plant Cell Rep. 16:272-276 Ploetz RC, Zentmyer GA, Nishujima WT, Rohrbach KG, Ohr HD. 1994. Compendium of tropical fruit diseases. Minnesota: ADS Press. Ploetz RC. 2000. Banana disease: a classic and destructive disease of banana. www.plantmanagementnetwork.org. [23 Februari 2006]. Pratt RG. 1996. Screening for resistance to Sclerotinia trifoliarum in alfalfa by inoculation of excised leaf tissue. Phytopathology 86:923-928. Purseglove JW. 1983. Tropical Crops Monocotyledons. Britain: ELBS and Longman Group Ltd. hlm 337-384.
137
Rademacher W. 1994. Gibberellin formation in microorganisms. Plant Growth Regul. 15: 303-314. Rahajeng W. 2006. Interaksi genotipe klon-klon abaka (Musa textilis Nee) dengan beberapa komposisi media pada kultur in vitro. [Skripsi]. Malang: Fakultas Pertanian, Universitas Brawijaya. Remotti PC. 1996. The role of fusaric acid in the Fusarium-Gladiolus interaction and its application in in vitro selection for resistance breeding [Disertasi]. Nijmegen: de Katholieke Universiteit Nijmegen. Remotti PC, Loffler HJM. 1996. The involvement of fusaric acid in the bulb-rot of Gladiolus. J Phytopathol 144:405-411 Remotti PC, Loffler HJM, Loten-Doting LV. 1997. Selection of cell lines and regeneration of plants resistant to fusaric acid from Gladiolus x grandiflorus c.v. ‘Peter Pear’. Euphytica 96:237-245. Roux N, Toloza A, Dolezel J, Swennen R, Lepoivre P, Zapata-Arias FJ. 1999. Usefulness of embriogenic cell suspension for the induction and selection of mutants in Musa spp. Promusa 4:18-19 Roux NS. 2004. Mutation induction in Musa-review. Di dalam: Jain SM, Swennen R, editor. Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 21-29. Sakamoto W, Tamura T, Hanba-Tomita Y, Sodmergen, Murata M. 2002. The VAR1 locus of Arabidopsis encodes a chloroplastic FtsH and is responsible for leaf variegation in mutant alleles. Genes to Cell 7:769-780. Sakamoto JM, Gordon TR. 2006. Factors influencing infection of mechanical wounds by Fusarium cincinatum on Monterey pines (Pinus radiata). Plant Pathol 55:130-136. Salerno MI, Gianinazzi S, Gianinazzi-Pearson V. 2000. Effects on growth and comparison of root tissue colonization pattern of Eucaliptus viminalis by pathogenic and non-pathogenic strains of Fusarium oxysporum. New Pythol. 146:317-324. Scala A, Bettini P, Buiatti M, Bogani P, Pellegrini G, Tognoni F. 1985. TomatoFusarium oxysporum f.sp. lycopersici interaction: “in vitro” analysis of several possible pathogenic factors. Phytopath Z, 113:90-94. Schierholt A, Rucker B, Becker HC. 2001. Inheritance of high oleic acid mutations in winter oilseed rape (Brasica napus L.). Crop Sci. 41: 14441449.
138
Semal J, Lepoivre P. 1990. Application of tissue culture variability to crop improvement. Di dalam: Bhojwani SS, editor. Developments in Crop Science 19. Plant Tissue Culture: Applications and Limitations. Amsterdam: Elsevier. hlm 301-315. Semangun H. 1996. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. Ed ke-3. Yogyakarta: Universitas Gadjah Mada Press. Setyo-Budi U, Sudjindro, Purwati RD. 2001. Status plasma nutfah abaca: “Menyongsong program agribisnis abaca di Indonesia”. Di dalam: Kasno A et al., editor. Kontribusi Pemuliaan dalam Inovasi Teknologi Ramah Lingkungan. Malang, 28 Agustus 2001. Bandung: PERIPI. hlm 254-258. Skirvin RM, McPheeters KD, Norton M. 1994. Sources and frequency of somaclonal variation. Hort. Sci. 29(11): 1232-1237 Spasibionek S. 2006. New mutants of winter rapeseed (Brasica napus L.) with changed fatty acid composition. Plant Breeding 125(3): 259-267 Strosse H, Van den Houwe I, Panis B. 2004. Banana cell and tissue culturereview. Di dalam: Jain SM, Swennen R, editor. Banana Improvement: Cellular, Molecular Biology, and Induced Mutations. Enfield: Sci Pub, Inc. hlm. 1-10. Sudjindro. 1999. Pemanfaatan plasma nutfah dalam usaha pengembangan tanaman abaca untuk mendukung industri strategis. Makalah pada Seminar dan Lokakarya Nasional Peluang dan Potensi Serat Abaca sebagai Komoditi Ekspor Prospektif dan Pemberdayaan Ekonomi Rakyat, Jakarta: 15 September 1999. Svabova L, Lebeda A. 2005. In vitro selection for improved plant resistance to toxin-producing pathogens. J Phytopathol 153:52-64. Tabora PC, Carlos JT. 1978. Cultivation species and varieties and relatives. Intern Document Center on Abaca. Los Banos: UPLB Libr. Thakur M, Sharma DR, Sharma SK. 2002. In vitro selection and regene ration of carnation (Dianthus caryophyllus L) plants resistant to culture filtrate of Fusarium oxysporum f.sp. dianthi. Plant Cell Rep 20:825-828. Thrane U. 2001. Developments in the taxonomy of Fusarium species based on secondary metabolites. Di dalam: Sumerell BA, Leslie JF, Backhouse D, Bryden WL, Burgess LW, editor. Fusarium Paul E. Nelson Memorial Symposium. Minnesota: APS Press. hlm 29-49. Toyoda H, Tanaka N, Hirai T. 1984a. Effects of the culture filtrate of Fusarium oxysporum f.sp. Lycopersici on tomato callus growth and the selection of resistant callus cells to the filtrate. Ann. Phytopath Soc. Japan 50 (1): 53-62
139
Toyoda H, Hayashi H, Yamamoto K. 1984b. Selection of resistant tomato calli to fusaric acid. Ann. Phytopath Soc. Japan 50 (4): 538-540 Torssell KBG. 1983. Natural Product Chemistry. A mechanistic and biosynthetic approach to secondary metabolism. Chichester: John Willey & Son. 401 hlm. Triyanto HS, Muliah, Edi M. 1982. Batang abaka (Musa textilis Nee) sebagai bahan baku kertas. Berita Selulosa 18:27. van Harten AM. 1998. Mutation Breeding: theory and practical application. Cambridge: Cambridge University Press. Villareal RL. 1988. Breeding of horticulural crops in the Philippines. The Philippine Agric. Special issue:21-35 Villordon AQ. 2003. The abaca, a Philippine native. http://www.Mozcom.com/ SCF/pv/abaca.html [18 April 2003] Wardiyati T. 1999. Tanaman abaca sebagai alternatif pengembangan agroindustri di Indonesia. Makalah pada Seminar dan Lokakarya Nasional Peluang dan Potensi Serat Abaca sebagai Komoditi Ekspor Prospektif dan Pemberdayaan Ekonomi Rakyat, 15 September 1999, Jakarta. Wibowo A, Suryanti, Sumardiyono C. 2001. Patogenesis 6 isolat Fusarium oxysporum f.sp. cubense penyebab penyakit layu fusarium pada pisang. Didalam: Prosiding Kongres Nasional XVI dan Seminar Ilmiah. Bogor, 2224 Agustus 2001. Bogor: Perhimpunan Fitopatologi Indonesia, hlm 254259. Widoretno W. Harran S, Sudarsono. 2003. Keragaman karakter kualitatif dan kuantitatif pada populasi tanaman somaklon kedelai dari embrio somatik hasil seleksi in vitro. Hayati 10:110-117. Yusnita, Sudarsono. 2004. Metode inokulasi dan reaksi ketahanan 30 genotipe kacang tanah terhadap penyakit busuk batang Sclerotium. Hayati 11:53-58. Yusnita, Widodo, Sudarsono. 2005. In vitro selection of peanut somatic embryos on medium containing culture filtrate of Sclerotium rolfsii and plantlet regeneration. Hayati 12(2): 50-56. Yunus A, 2000. Pengaruh ekstrak Fusarium moniliforme terhadap pertumbuhan dan resistensi tanaman tebu terhadap penyakit pokahbung. Agrosains 2 (1):1-9.
140
Lampiran 1. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang daun, lebar daun dan rasio panjang/lebar daun tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam. 60 0.4%
0.5%
0.6%
Klon Tangongon - Panjang daun
0%
6 4
4
2
8
14
27
28
11
20
24 22
21
40
7 9
Jumlah klon
0.3%
0 <89.3
<135.9
<182.6
>182.6
Kisaran panjang daun (cm) 60
Jumlah klon
0.3%
0.4%
0.5%
0.6%
Klon Tangongon - Lebar daun
0%
40 26
25 23 20
15 4 2
1 3
20
18
8 10
10
10 5 4
3
0 <26.6
<39.1
<51.7
>51.7
Kisaran lebar daun (cm)
60
Jumlah klon
0.3%
0.4%
0.5%
0.6%
Klon Tangongon - Rasio P/L daun
0%
40 31 22 20
12
29 25 15
14
5
21 8
2
3
0 <2.54
<3.28 <4.03 Kisaran rasio panjang/lebar daun
>4.03
141
Lampiran 2. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah diameter batang, bobot batang dan jumlah anakan tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam.
60
Jumlah klon
0.3%
0.4%
0.5%
0.6%
Klon Tangongon - Diameter batang
0%
40 20
18
20
18
12
10 1
27
26
24
8
5
4
8
5
1
0 <19.8
<30.4 <41.1 Kisaran diameter batang (cm)
>41.1
60 Klon Tangongon - Bobot batang 0.4%
0.5%
0.6%
0%
17
6 1
1
2
2
7
8
14
20
16
16
20 25
26
40
9 10
Jumlah klon
0.3%
0 <3345
<6440
<9535
>9535
Kisaran bobot batang (g/tanaman)
60 0.4%
0.5%
0.6%
0%
Klon Tangongon - Jumlah anakan
24 21 29 6 7 6 4 8
10 3
7
5
20
18
25
40
15
Jumlah klon
0.3%
0 <3.75
<6.25
<9.25
Kisaran jumlah anakan
>9.25
142
Lampiran 3. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah jumlah pelepah, kekuatan serat, rendemen serat dari batang, dan dari pelepah tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Tangongon varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam. 60 Klon Tangongon - Jumlah pelepah
0.4%
0.5%
0.6%
0%
18
2
1
8 1
3
6 2
1
20
25 13
11
19
18
20
23
40
9
Jumlah klon
0.3%
0 <5
<8
<11
>11
Kisaran jumlah pelepah 60
0.4%
0.5%
0.6%
0%
5
3
1
2
9
9
11
18
20 14
15
13
16
20
16
16
40
7
Jumlah klon
Klon Tangongon - Kekuatan serat
0.3%
0 <30.67
<36.03
<41.38
>41.38
Kisaran kekuatan serat (g/tex)
60
0.4%
0.5%
0.6%
0%
9 2
1
3
6
7
10
7
20
22
20
28
29
26
40
5
Jumlah klon
Klon Tangongon - Rendemen batang
0.3%
0 <0.93
<1.65 <2.38 Kisaran rendemen serat dari batang (%)
>2.38
60 Klon Tangongon - Rendemen pelepah
0.4%
0.5%
0.6%
0% 30 24
22
25
31
40
2
1
7
8
6 3
6
5
20 5
Jumlah klon
0.3%
0 <1.23
<2.18 <3.13 Kisaran rendemen serat dari pelepah (%)
>3.13
143
Lampiran 4. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah panjang daun, lebar daun, dan rasio panjang/lebar daun tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam 60 Klon Sangihe-1 - Panjang daun 0.5%
0.6%
0%
1
1
2
16 16
22 12
18 12
17 10
20
25
40
10
Jumlah klon
0.3% 0.4%
0 <89.3
<135.9
<182.6
>182.6
Kisaran panjang daun (cm) 60 Klon Sangihe-1 - Lebar Daun 0.6%
0%
17
15
3
4
1
3
4
9
20
15 19
32
34
0.5%
40
7
Jumlah klon
0.3% 0.4%
0 <26.6
<39.1
<51.7
>51.7
Kisaran lebar daun (cm) 60 Klon Sangihe-1 - Rasio P/L daun 0.5%
0.6%
0%
0 <2.54
<3.28
<4.03
Kisaran rasio panjang/lebar daun
>4.03
1
2
4
2
2 1
6
10 8 8
13
20
16
23
25 27
40
8 6
Jumlah klon
0.3% 0.4%
144
Lampiran 5. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah diameter batang, bobot batang, dan jumlah anakan tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam 60 0.5%
0.6%
0%
Klon Sangihe-1 - Diameter batang
1
1
12
12
20 19
22 11
9
20
26
40
12 18
Jumlah klon
0.3% 0.4%
<19.8
<30.4
<41.1
>41.1
Kisaran diameter batang (cm)
60 0.5%
0.6%
Klon Sangihe-1 - Bobot batang
0%
23
34 33
36
40 22 20
1 1
3
4
Jumlah klon
0.3% 0.4%
<3345
<6440
<9535
>9535
Kisaran bobot batang (g/tanaman)
60 0.5%
0.6%
Klon Sangihe-1 - Jumlah anakan
0%
21 24
13 9 10 8
0 <3.75
<6.25
<9.25
Kisaran jumlah anakan
>9.25
1
1
4
3 2 5
3
1
20
13
15 19
40
8
Jumlah klon
0.3% 0.4%
145
Lampiran 6. Sebaran nilai dan jumlah klon berdasarkan peubah bobot pelepah, panjang serat, rendemen serat dari batang dan rendemen serat dari pelepah tanaman di lapangan diantara populasi abaka klon Sangihe -1 varian yang diregenerasikan dari kalus embriogen dengan perlakuan berbagai konsentrasi EMS (0%, 0.3%, 0.4%, 0.5%, dan 0.6%), pada 16 bulan setelah tanam 60 Klon Sangihe-1 - Bobot pelepah
0.6%
0%
22
34
0.5% 34
36
40 21
1
2
5
20 2
Jumlah klon
0.3% 0.4%
0 <2493
<4895 <7298 Kisaran bobot pelepah (g/tanaman)
>7298
60
0.5%
0.6%
0%
13
12
17
3
4
2
1
8
6
8
12
13
20
18
40
6
Jumlah klon
Klon Sangihe-1 - Panjang serat
0.3% 0.4%
0 <93.7
<126.3
<159.0
>159.0
Kisaran panjang serat (cm) 60 Klon Sangihe-1 - Rendemen batang
0.5%
0.6%
0%
1
4
4
6
4
12
1
4
5
7
20
14
14
21
23
40
3
Jumlah klon
0.3% 0.4%
0 <0.93
<1.65
<2.38
>2.38
Kisaran rendemen serat dari batang (%) 60 Klon Sangihe-1 - Rendemen pelepah
0.5%
0.6%
0%
0 <1.23
<2.18
<3.13
Kisaran rendemen serat dari pelepah (%)
>3.13
1
1
1
3
4
5
11
22 12
14
1
2
3
8
20
17
15
40
2
Jumlah klon
0.3% 0.4%
