UNIVERSITAS INDONESIA
ANALISIS PENGOTOR DAN KARAKTERISASI METAMFETAMIN YANG BEREDAR ILEGAL SECARA KROMATOGRAFI GAS DAN KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI
TESIS
KUSWARDANI 0906495192
FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM PROGRAM STUDI MAGISTER ILMU KEFARMASIAN DEPOK JUNI 2012
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
UNIVERSITAS INDONESIA
ANALISIS PENGOTOR DAN KARAKTERISASI METAMFETAMIN YANG BEREDAR ILEGAL SECARA KROMATOGRAFI GAS DAN KROMATOGRAFI CAIR KINERJA TINGGI
TESIS Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar magister sains
KUSWARDANI 0906496192
FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM PROGRAM STUDI MAGISTER ILMU KEFARMASIAN DEPOK JULI 2012
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
ii Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
iii Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
iv Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
UCAPAN TERIMA KASIH Terucapkan syukur atas segala limpahan karunia dan nikmat yang Allah Subhanahu Wa Ta ‘Ala telah berikan sehingga tugas akhir ini dapat kami selesaikan, demikian pula terima kasih yang sebesar-besarnya kami sampaikan kepada : 1. Bapak Dr. Harmita, Apt, selaku pembimbing pertama dan Ibu Prof. Dr. Yahdiana Harahap, M.S, Apt, selaku pembimbing kedua yang telah sabar membimbing dalam proses penelitian dan penyelesaian tugas akhir ini. 2. Bapak Gories Mere selaku Kepala Badan Narkotika Nasional yang telah memberikan kesempatan kepada kami untuk studi serta memberikan fasilitas selama penelitian di UPT Laboratorium Uji Narkoba. 3. Dr. Yukiko Makino yang telah menyediakan beberapa standar dari hasil sintesis di Graduate School of Pharmaceutical Universitas Tokyo. 4. Bapak Dr. Herman S, MS, Bapak Dr. Arry Yanuar, MS, dan Ibu Dr. Silvia Surini, M.Pharm.Sc selaku penguji dan moderator yang telah membantu penyempurnaan materi penelitian tugas akhir ini. 5. Ketua Program Studi Magister Ilmu Kefararmasian Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Indonesia. 6. Seluruh staf pengajar dan karyawan serta rekan-rekan mahasiwa Program Studi Magister Ilmu Kefarmasian Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Indonesia dan semua pihak yang telah membantu selama penelitian dan penyelesaian tugas akhir ini. Kepada ayahanda Sabar Soedigdo (alm) dan ibunda Rudjifah yang telah memelihara dan mendidik kami, semoga segala jerih payah keduanya mendapat keridloan disisi-Nya, dan seluruh keluarga yang turut mendorong dan memotivasi kami untuk menyelesaikan studi, terutama kepada istriku Yayuk Ernawati, SSi, Apt, serta ananda Dhani R. Pratama dan Donny K. Ramadhan. Semoga tugas akhir ini berguna bagi pengembangan ilmu pengetahuan dan aplikasinya. Penulis 2012
v Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
vi Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
ABSTRAK Nama : Kuswardani Program Studi : Magister Ilmu Kefarmasian Judul : Analisis Pengotor dan Karakterisasi Metamfetamin Yang Beredar Ilegal Secara Kromatografi Gas dan Kromatografi Cair Kinerja Tinggi Metamfetamin merupakan stimulan yang diproduksi secara sintesis dan termasuk salah satu jenis narkotika yang sering disalahgunakan serta diedarkan secara ilegal di Indonesia. Investigasi kasus peredaran ilegalnya di Indonesia selama ini belum didukung pengotor dan karakteristik/profil metamfetamin tersebut. Penelitian ini dilakukan untuk menganalisis pengotor dan membuat karakterisasi/profil serta mengetahui rute sintesis metamfetamin yang beredar ilegal. Penelitian dilakukan pada 20 sampel metamfetamin sitaan penyidik tahun 2011-2012 dengan menggunakan instrumen kromatografi gas spektroskopi massa, kromatografi gas ionisasi nyala dan kromatografi cair kinerja tinggi. Ekstraksi sampel dilakukan dengan dua cara yaitu ekstraksi dengan dapar fosfat pH 10,5 dan etil asetat, dan ekstraksi langsung dengan etil asetat. Hasil penelitian menunjukkan adanya pengotor berupa 1-fenil-2-propanon, (pseudo)efedrin, Nformilmetametamin, N-asetilmetamfetamin, 1-fenil-2-propanol, naftalen, aziridin, dan oksazolidin. Kiralitas sampel menunjukkan adanya metamfetamin yang berbentuk rasemat, levo dan dekstro. Berdasarkan data penelitian di atas dapat disimpulkan 3 rute sintesis yang digunakan yaitu : reduksi aminasi, Emde dan Nagai. Sebaran kemurnian sampel metamfetamin berkisar antara 10% hingga 71%. Kata kunci : Metamfetamin, pengotor, profil, karakterisasi, kromatografi xv+108 halaman : 8 gambar; 11 tabel; 48 lampiran Daftar Pustaka : 28 (1977-2011)
vii
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
ABSTRACT Name Program Study Title
: Kuswardani : Magister of Pharmacy : Analysis of Impurities and Characterization/profiling of illegal methamphetamine by Gas Chromatography and High Performance Liquid Chromatography
Methamphetamine is a stimulant that is produced in the synthesis and include any type of drug that is often missused and illegally circulated in Indonesia. Investigation of cases of illegal circulatian in Indonesia so far has not been supported by impurities and characteristics/profile of methamphetamine. The study was conducted to analyze impurities and make the characterization/profile and find out an out standing synthesis route of illegal methamphetamine. The study was conducted on 20 samples of seized methamphetamine investigation in 2011-2012 by using gas chromatography mass spectroscopy, gas chromatography flame ionization detector, and high performance liquid chromatography. Extraction of samples done in two ways: extraction with phosphate buffer pH 10.5 and ethyl acetate, and direct extraction with ethyl acetate. The results indicate the presence of impurities in the form of 1-phenyl-2-propanone, (pseudo)ephedrine, N-formylmethamphetamine, N-acetylmethamphetamine, 1-phenyl-2-propanol, naphthalene, aziridine, and oxazolidine. Chirality of the sample indicate the presence of racemic, levo and dextro. Based on research data can be concluded that the synthesis of 3 routes used are: reductive amination, Emde and Nagai. Distribution of the purity of methamphetamine samples ranged from 10% to 71%.
Key Words
: Methamphetamine, impurities, profiles, characterization, chromatography xv+108 pages : 8 pictures; 11 tables; 48 appendices Bibliography : 28 (1977-2011)
viii
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
DAFTAR ISI HALAMAN JUDUL ....................................................................................... i SURAT PERNYATAAN BEBAS PLAGIARISME ...................................... ii PERNYATAAN ORISINALITAS .................................................................. iii LEMBAR PENGESAHAN ............................................................................. iv UCAPAN TERIMA KASIH ............................................................................ v LEMBAR PERSETUJUAN PUBLIKASI KARYA ILMIAH ........................ vi ABSTRAK ....................................................................................................... vii ABSTRACT .................................................................................................... viii DAFTAR ISI ................................................................................................... ix DAFTAR GAMBAR ....................................................................................... xi DAFTAR TABEL. ........................................................................................... xii DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................... xiii BAB 1. PENDAHULUAN ............................................................................ 1 1.1 Latar Belakang ........................................................................... 1 1.2 Rumusan Masalah ...................................................................... 3 1.3 Tujuan Penelitian ....................................................................... 3 1.4 Manfaat Penelitian ................................................................... 3 1.5 Hipotesis..................................................................................... 4 BAB 2. TINJAUAN PUSTAKA ................................................................... 5 2.1 Metamfetamin ............................................................................ 5 2.1.1 Sejarah Metamfetamin ...................................................... 5 2.1.2 Tinjauan kimia metamfetamin .......................................... 6 2.1.3 Rute sintesis meteamfetamin............................................. 7 2.2 Impurities/pengotor .................................................................... 9 2.3 Metode-metode analisis karakterisasi metamfetamin ................ 11 2.3.10 UNDCP ........................................................................... 12 2.3.2 Korea ............................................................................... 12 2.3.3 Jepang.............................................................................. 12 2.3.4 Australia .......................................................................... 13 2.4 Kromatografi gas dan kromatografi cair kinerja tinggi.............. 13 2.5 Validasi ...................................................................................... 16 2.5.1 Akurasi ............................................................................ 16 2.5.2 Presisi .............................................................................. 17 2.5.3 Linearitas ......................................................................... 18 2.5.4 Batas deteksi dan batas kuantitasi ................................... 18 BAB 3. METODE PENELITIAN ................................................................. 20 3.1 Lokasi Penelitian ........................................................................ 20 3.2 Bahan .......................................................................................... 20 3.3 Peralatan ...................................................................................... 20 3.4 Cara kerja .................................................................................... 21 3.4.1 Identifikasi awal sampel ................................................... 21 3.4.1.1 Uji kelarutan ....................................................... 21 ix
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
3.4.1.2 Uji pH (derajat keasaman) .................................. 21 3.4.1.3 Uji titik lelah ....................................................... 21 3.4.1.4 Uji reaksi warna .................................................. 21 3.4.2 Analisis kromatografi dan persiapan/preparasi sampel.... 22 3.4.2.1 Analisis dengan kromatografi gas spektroskopi massa .................................................................. 22 3.4.2.2 Analisis dengan kromatografi gas ionisai nyala . 23 3.4.2.3 Analisis dengan kromatografi cair kinerja tinggi (uji kiralitas sampel) .......................................... 24 3.4.3 Validasi Metode ............................................................... 25 3.4.3.1 Penentuan akurasi (kecermatan) dan presisi (keterulangan) ..................................................... 26 3.4.3.2 Penentuan batas deteksi dan kuantitasi ............... 26 3.5 Analisis data ............................................................................... 26 BAB 4. HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN .............................. 27 4.1 Identifikasi awal sampel ............................................................. 27 4.2 Hasil analisis kromatografi ........................................................ 30 4.2.1 Analisis kromatografi gas spektroskopi massa ................ 30 4.2.2 Analisis kromatografi gas ionisasi nyala ......................... 36 4.2.3 Analisis kromatografi cair kinerja tinggi ......................... 38 4.2.4 Validasi metode ................................................................ 42 4.2.4.1 Penentuan akurasi (kecermatan) dan presisi (keterulangan) ..................................................... 42 4.2.4.2 Penentuan batas deteksi dan kuantitasi ................ 42 4.3 Analisis hubungan sampel ......................................................... 43 BAB 5. KESIMPULAN DAN SARAN ........................................................ 45 5.1 Kesimpulan ................................................................................ 45 5.2 Saran ........................................................................................... 45 DAFTAR REFERENSI ................................................................................. 46
x
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
DAFTAR GAMBAR Gambar 2.1 Gambar 2.2 Gambar 2.3 Gambar 4.1 Gambar 4.2
Rumus bangun metamfetamin .................................................... 6 Rute sintesis metamfetamin ........................................................ 7 Diagram untuk membedakan rute sintesis mentamfetamin ........ 10 Sampel Kristal metamfetamin .................................................... 29 Mekanisme reaksi efedrin menghasilkan fenil-2-propanon (P-2-P) ......................................................................................... 34 Gambar 4.3 Rasionalisasi mekanisme pada kondensasi aldol dari 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen dari fenil-2-propanon dalam asam ............... 35 Gambar 4.4 Kurva regresi standar metamfetamin .......................................... 37 Gambar 4.5 Hubungan antar sampel metamfetamin ...................................... 43
xi
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
DAFTAR TABEL Tabel 2.1 Karakteristik detektor .................................................................... 15 Tabel 4.1 Asal sampel metamfetamin ........................................................... 27 Tabel 4.2 Bentuk, warna, derajat keasaman (pH), dan kelarutan sampel metamfetamin ................................................................................ 28 Tabel 4.3 Titik leleh sampel metamfetamin .................................................. 29 Tabel 4.4 Uji reaksi warna sampel metamfetamin ......................................... 30 Tabel 4.5 Massa fragmen ion (m/z) beberapa senyawa pengotor dalam karakterisasi metamfetamin ........................................................... 31 Tabel 4.6 Hasil analisis jejak pengotor sampel metamfetamin ekstraksi dengan dapar fosfat-etil asetat dan ekstraksi langsung dengan etil asetat......................................................................................... 32 Tabel 4.7 Konsentrasi standar metamfetamin dan rerata area ....................... 36 Tabel 4.8 Konsentrasi/kemurnian sampel metamfetamin .............................. 38 Tabel 4.9 Kiralitas sampel-sampel metamfetamin ......................................... 39 Tabel 4.10 Tabulasi analisis jejak pengotor, kiralitas, perkiraan rute sintesis dan kemurnian sampel metamfetamin .................................................. 41
xii
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
DAFTAR LAMPIRAN Lampiran 1. Lampiran 2. Lampiran 3. Lampiran 4. Lampiran 5. Lampiran 6. Lampiran 7. Lampiran 8. Lampiran 9. Lampiran 10. Lampiran 11. Lampiran 12. Lampiran 13. Lampiran 14. Lampiran 15. Lampiran 16. Lampiran 17. Lampiran 18. Lampiran 19. Lampiran 20. Lampiran 21. Lampiran 22. Lampiran 23.
Tabel konsentrasi standar metamfetamin, area dan %RSD masing-masing pengulangan injeksi ........................................ 50 Tabel are standar metamfetamin, rerata, SD, dan %RSD Pada validasi metode ............................................................... 51 Tabel persen perolehan kembali dan simpangan baku relatif.. 52 Tabulasi batas deteksi dan batas kuantitasi sampel Metamfetamin ……………………………………………….. 53 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 1 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ....................................................... 55 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 2 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 56 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 3 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 57 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 4 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 58 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 5 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 59 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 6 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 60 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 7 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 61 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 8 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 62 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 9 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 63 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 10 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 64 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 11 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 65 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 12 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 66 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 13 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 67 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 14 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 68 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 15 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 69 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 16 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 70 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 17 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 71 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 18 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 72 Kromatogram jejak pengotor pada sampel 19 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 73 xiii
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
(lanjutan)
Lampiran 24. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 20 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat ........................................................ 74 Lampiran 25. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 1 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 75 Lampiran 26. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 2 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 76 Lampiran 27. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 3 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 78 Lampiran 28. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 4 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 79 Lampiran 29. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 5 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 80 Lampiran 30. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 6 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 81 Lampiran 31. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 7 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 82 Lampiran 32. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 8 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 83 Lampiran 33. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 9 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 84 Lampiran 34. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 10 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 85 Lampiran 35. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 11 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 86 Lampiran 36. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 12 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 87 Lampiran 37. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 13 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 88 Lampiran 38. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 14 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 89 Lampiran 39. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 15 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 90 Lampiran 40. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 16 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 91 Lampiran 41. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 17 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 92 Lampiran 42. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 18 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 93 Lampiran 43. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 19 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 94 Lampiran 44. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 20 ekstraksi langsung etil asetat ................................................................... 95 Lampiran 45. Kromatogram KG ionisasi nyala beberapa standar pengotor metamfetamin ............................................................ 96 Lampiran 46. Kromatogram KCKT standar d/l-metamfetamin...................... 98
xiv
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
(lanjutan)
Lampiran 47. Kromatogram KCKT (a) sampel 1 : d/l-metamfetamin; (b) sampel 2 : l-metamfetamin ................................................. 99 Lampiran 48. Kromatogram KCKT sampel 3 – 20 : d-metamfetamin ........... 100
xv
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
BAB 1 PENDAHULUAN
1.1
Latar Belakang Metamfetamin merupakan suatu stimulan dan termasuk salah satu
narkotika
yang
sering
disalahgunakan
di
Indonesia.
Kecenderungan
penyalahgunaan dan penyitaan metamfetamin berdasarkan jumlah barang bukti yang disita menunjukkan peningkatan sejak 2003 hingga 2007. Prevalensi penyalahgunaan narkotika juga menunjukkan peningkatan dari 1,5% pada 2005 menjadi 1,98% pada penelitian 2009. (Badan Narkotika Nasional, Jurnal Data P4GN, 2010). Investigasi penyelidikan dan penyidikan yang dilakukan aparat penegak hukum (penyidik) hingga saat ini, sangat tergantung kepada pengakuan tersangka. Kejahatan narkotika jenis metamfetamin merupakan kejahatan yang terorganisir, apabila salah satu pelakunya tertangkap maka pelaku lainnya akan mengamankan diri. Hal ini, tentunya dapat menghambat analisis penyidik dalam menjejak jalur edar dan memutuskan jaringan sindikatnya. Karakterisasi/profiling metamfetamin merupakan suatu kegiatan analisis metamfetamin untuk mencari jejak-jejak kimia berupa pengotor (impurities) dari metamfetamin. Kesamaan pola pengotor ini dapat dijadikan petunjuk yang akan merujuk pada rute sintesis metamfetamin yang digunakan sehingga dapat menjadi informasi penting yang diharapkan akan dapat menjawab pertanyaan-pertanyaan berikut ini (United Nations International Drug Control Programme, Scientific Section, 2001) : -
Apakah ada hubungan antar sampel uji?
-
Apakah hubungan antar sampel uji memiliki informasi yang berguna terkait pasokan dan distribusi lokal, nasional, regional atau internasional?
-
Dari mana sampel uji berasal?
-
Metode apakah yang digunakan dalam produksi? Zat kimia apa yang spesifik digunakan dalam proses sintesis/produksi? Hasil karakterisasi/profiling metamfetamin diharapkan bermanfaat sebagai
data awal untuk analisis penyidik (penegak hukum) dalam membantu
1
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
2
mengungkapkan kasus-kasus metamfetamin berupa kesamaan rute sintesis dan perkiraan korelasi antar kasus satu dengan kasus yang lainnya. Selanjutnya, disimpulkan hubungan antar kasus apakah ada keterkaitan metamfetamin yang disita terutama dari sisi kesamaan pemasok, jaringan distribusi, dan rute sintesis yang digunakan dalam produksi (Sasaki & Makino, 2006). Tentunya untuk melengkapi keperluan ini masih diperlukan kelengkapan data investigasi dan data dukung lainnya seperti jalur komunikasi maupun investigasi jalur keuangannya. Penelitian-penelitian karakteristik/profiling metamfetamin telah dilakukan di beberapa negara. Penelitian tersebut umumnya berkembang ke arah metoda analisis yang digunakan, baik menggunakan instrumen kromatografi gas (KG), kromatografi gas spektroskopi massa (KGSM), kromatografi cair kinerja tinggi (KCKT), elektroforesis kapiler (EK), dan juga penelitian rasio isotop spektroskopi massa (Kuwayana.K., et al, 2008; Sasaki & Makino, 2006; Kurashima, Makino, Sekita, Urano, Nagano, 2004; Makino, Urano, Nagano, 2002). Sedikitnya terdapat 6 (enam) rute sintesis yang umumnya digunakan oleh sindikat dalam mensintesis/memproduksi metamfetamin secara ilegal, yaitu Nagai, Reduksi Aminasi, Leuckart, Birch, Rossenmund, dan Emde (Sasaki & Makino, 2006; Remberg & Stead, 1999). Di Jepang, metamfetamin yang beredar ilegal banyak disintesis dengan rute Emde dan rute Nagai (Makino, Urano, Nagano, 2002). Analisis impurities metamfetamin yang beredar ilegal telah dilaporkan pula di Norwegia (Leuckart), Jepang, Thailand, Philipina dan Cina (Ying Qi, Evans, McCluskey, 2006; Ying Qi, Evans, McCluskey, 2007). Metamfetamin yang beredar ilegal di Indonesia merupakan hasil sintesis baik dari Indonesia maupun diselundupkan dari luar negeri. (Badan Narkotika Nasional, Jurnal Data P4GN, 2010). Pengungkapan kasus-kasus metamfetamin tersebut selama ini belum didukung data penelitian laboratorium terkait analisis jejak pengotor dan karakteristik/profile metamfetamin yang disita. Mengingat kecenderungan peningkatan penyalahgunaan dan peredaran ilegal metamfetamin di Indonesia, maka dirasa perlu dilakukan penelitian/analisis jejak pengotor dan karakteristik/profile metamfetamin yang beredar ilegal di Indonesia.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
3
1.2
Rumusan Masalah Tidak ada data pasti, kapan penyalahgunaan metamfetamin terjadi di
Indonesia. Namun, peningkatan penyalahgunaan, pengungkapan kasus, dan penyitaan barang bukti kejahatan kasus produksi dan peredaran ilegal metamfetamin di Indonesia dari 2000 hingga 2007 serta masih banyaknya kejahatan ini pada tahun-tahun berikutnya membuktikan bahwa kejahatan produksi dan peredaran ilegal serta penyalahgunaan metamfetamin di Indonesia masih relatif tinggi. Berdasarkan hal tersebut, maka permasalahan yang diangkat dalam penelitian ini adalah “Bagaimanakah pola jejak pengotor dan karakteristik/profile metamfetamin yang beredar ilegal dari hasil penyitaan aparat hukum (penyidik) apabila dikaitkan dengan perunutan rute sintesisnya dan kemungkinan kesamaan jaringan/sindikatnya?”
1.3 Tujuan Penelitian Tujuan dari penelitian ini adalah : a.
Menganalisis jejak pengotor dan melakukan karakterisasi metamfetamin
dari peredaran ilegal hasil penyitaan penyidik. b.
Mengetahui rute sintesis metamfetamin yang digunakan dan menganalisis
kemungkinan keterkaitan antar sampel barang bukti metamfetamin dari peredaran ilegal hasil penyitaan penyidik.
1.4
Manfaat Penelitian Penelitian ini akan memberikan manfaat berupa database awal tentang
jejak pengotor (impurities) metamfetamin dari berbagai hasil penyitaan dalam peredaran dan produksi ilegal yang merujuk pada rute sintesisnya, sehingga diharapkan dapat disimpulkan kemungkinan keterkaitan dua atau lebih sindikat kejahatan metamfetamin. Sebagai sebuah database, hasil penelitian ini akan bermanfaat pada waktu mendatang apabila diperoleh hasil karakterisasi/profiling dan rute sintesis metamfetamin yang beredar secara ilegal dari hasil penyitaan lainnya dikemudian hari, dan menjadi sarana evaluasi terhadap perkiraan
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
4
kesamaan jaringan sindikat dalam produksi dan peredaran ilegal metamfetamin di Indonesia. 1.5
Hipotesis
a.
Dapat dilakukan analisis jejak pengotor dan karakterisasi metamfetamin
dari hasil peredaran ilegal dengan pengujian kromatografi. b.
Ada suatu pola tertentu pada keragaman pengotor dan karakteristik
metamfetamin dari hasil peredaran ilegalnya, sehingga akan didapatkan suatu informasi
perkiraan rute sintesis
dan kemungkinan kesamaan
sindikat
produksi/peredaran ilegalnya
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA
2.1 2.1.1
Metamfetamin Sejarah metamfetamin (Mehling, 2007) Metamfetamin disintesis pertama kali pada 1919 oleh seorang kimiawan
dari Jepang. Metamfetamin merupakan suatu stimulan, dengan efek stimulan yang lebih kuat dibandingkan kokain atau stimulan alam lainnya. Penggunaan dalam jumlah besar dapat menyebabkan “violence”, halusinasi, dan psikosis. Umumnya metamfetamin diproduksi sebagai kristal menyerupai serbuk, gumpalan besar kristal, atau dalam bentuk tablet. Penggunaannya dapat dihisap dengan hidung, diminum, dihisap seperti rokok, atau diinjeksikan. Pada 1950-an dan 1960-an, metamfetamin diproduksi secara legal dan dijual sebagai obat OTC (over the counter) dengan nama Methedrine dan dipasarkan secara rumahan sebagai antidot depresi dan untuk penurun berat badan di Amerika. Saat ini, metamfetamin masih diproduksi secara legal, meskipun jarang diresepkan, untuk terapi gangguan konsentrasi dengan hiperaktifitas (ADHD-attention deficit hyperactivity disorder), kegemukan, dan narkolepsi. Adanya penyalahgunaan yang meluas dan menyebabkan paranoid serta psikotik pada para penyalahguna metamfetamin tersebut,
menyebabkan
keberadaan metamfetamin sangat dibatasi oleh suatu badan “Federal Controlled Substances Act” di Amerika pada 1970. Pembatasan tersebut ternyata menimbulkan
permasalahan
berupa
tidak
terpenuhinya
kebutuhan
para
penyalahguna sehingga timbul produksi metamfetamin secara ilegal, dan disebut sebagai clandestine industry, atau clandestine laboratory. Efek metamfetamin dalam jangka pendek antara lain meningkatkan konsentrasi, meningkatkan aktifitas, menurunkan kelelahan, menahan rasa lapar, rasa gembira berlebihan (euphoria), peningkatan respirasi, dan peningkatan suhu badan (hipertermia). Sedangkan efek dalam jangka panjang adalah terjadinya ketergantungan, paranoid, halusinasi dan psikosis, gangguan mood, gangguan aktifitas motorik, stroke, dan penurunan berat badan.
5
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
Universitas Indonesia
6
2.1.2
Tinjauan kimia metamfetamin Metamfetamin dikenali dengan beberapa nama kimia sebagai (αS)-N, α-
Dimethyl-benzene ethanamine; (S)-(+)-N, α-dimethylphenethyl amine; d-Nmethylamphetamine;
d-deoxyephedrine;
methylaminopropane;
d-desoxyephedrine;
d-phenylisopropylmethylamine;
l-phenyl-2methyl-β-
phenylisopropylamine; Norodin (Maryadele, 2006).
NH
CH3
CH3
Gambar 2.1 Rumus bangun metamfetamin
Metamfetamin, C10H15N, memiliki berat molekul 149,23, merupakan suatu stimulan saraf pusat. Metamfetamin umumnya tersedia dalam bentuk garam HCl, dan disebut speed, meth, ice. Dikenal pula dengan nama “crank, dan crystal” (Mehling, 2007). Produk sediaan Amphedroxyn;
farmasi
Desfedrin;
tablet
Desoxyfed;
metamfetamine HCl Desoxyn;
Destim;
antara lain Methampex;
Methedrine; Methylisomyn; Pervitin; Soxysympamine; Syndrox; Tonedron. Metamfetamin HCl,
C10H15N.HCl, memiliki berat molekul 185,69,
dengan titik leleh 170 – 175 0C, dan berasa pahit. Larut dalam air, alkohol, dan kloroform. Praktis tidak larut dalam eter, 1% larutan air bersifat netral atau memberikan reaksi agak asam pada kertas litmus. Pada penggunaan oral, metamfetamin diekskresikan sebagai obat tidak berubah (44%) dan sebagai metabolit utamanya adalah amfetamin (6-20%) dan 4hidroksimetamfetamin (10%). Urine asam akan meningkatkan kecepatan ekskresi dan persen ekskresi obat yang tidak berubah (United Nation Office on Drugs and Crime, 1995; Moffat, Osselton, & Widdop, 2004).
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
7
2.1.3
Rute sintesis metamfetamin Metamfetamin dapat disintesis atau diproduksi melalui beberapa rute.
Sedikitnya ada 6 (enam) rute sintesis metamfetamin yang seringkali digunakan dan ditemukan dalam produksi ilegalnya sebagaimana ditnjukkan pada Gambar 2.2. Berdasarkan bahan baku dasarnya, terdapat 2 (dua) grup rute sintesis mentamfetamin, yaitu (a) sintesis dimulai dengan fenil-2-propanon, menghasilkan metamfetamin rasemat, seperti rute leuckart dan reductive amination; dan (b) rute sintesis menggunakan bahan murni bersifat optis l-efedrin atau d-pseudoefedrin sebagai bahan baku awal menghasilkan d-metamfetamin yang efek stimulannya lebih poten. Rute yang digunakan adalah Nagai route, Birch reduction, Rosenmund hydrogenation, dan Emde route dengan kloro efedrin sebagai produk intermediet (Remberg & Stead, 1999). O
O
H
N
Leuckart
Fenil-2-propanon (P-2-P, Benzil metil keton)
OH
red u
N-formil metamfetamin ksi
am ina
si
Leuckart H
H N
Birch
N
Nagai Efedrin
Metamfetamin Hidrogenasi Rosenmend
Emde
Emde Cl
H N
Kloro ephedrin
[Sumber : Remberg & Stead, 1999]
Gambar 2.2 Rute sintesis metamfetamin
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
8
Salah satu senyawa kimia yang sangat popular digunakan pada sintesis metamfetamin adalah fenil-2-propanon (benzil metil keton atau fenilaseton). Rute sintesis metamfetamin dengan senyawa ini sangat mudah yang disebabkan oleh struktur senyawa yang relatif sederhana dan juga sudah popular penggunaannya. Senyawa fenil-2-propanon ini sangat mudah disintesis dari benzil sianida, asam fenil asetat, kloroaseton ataupun benzil klorida dan asetonitril (United Nations on Drugs and Crime, Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia). Senyawa/bahan kimia lain yang digunakan sebagai bahan awal sintesis metamfetamin adalah efedrin serta pseudoefedrin. Senyawa ini secara ilegal telah lama digunakan dalam produksi metamfetamin. Namun larutan efedrin tidak stabil terhadap sinar matahari langsung dan oksigen. Oksidasi efedrin atau pseudoefedrin menghasilkan 2-metilamino-1-fenil-1-propanon, benzaldehida atau asam
benzoat
(United
Nations
Office
on
Drugs
and
Crime,
Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia). Hanya ada sedikit studi investigasi yang memodifikasi sintesis metamfetamin yang mungkin mempengaruhi pengotor kunci/spesifik (specific impurities), dan memberikan pengaruh perubahan kecil pada kondisi eksperimen terhadap pola pengotornya (impurity). Pengalaman menunjukkan bahwa perubahan kecil dalam sintesis dapat berpengaruh pada formasi yang dihasilkan, dan
tentunya
mempengaruhi
kompleksitas
pengotornya.
Hal-hal
yang
mempengaruhi profil pengotor dalam metamfetamin hasil akhir dari sintesis antara lain : (a) temperature reaksi, (b) waktu reaksi, (c) skala reaksi dan proporsi bahan kimia awal yang digunakan, dan (d) tingkatan dan cara pemurnian produk intermediet dan produk akhir (Remberg & Stead, 1999). Sintesis metamfetamin pada rute Leuckart menggunakan bahan awal fenil-2-propanon, dilakukan dengan cara mereaksikannya pada pemanasan dengan N-metilformamid dan asam format dalam labu bulat menggunakan refluks sebagai pendingin yang akan membentuk intermediet N-formil metamfetamin. Reaksi selanjutnya ditambahkan asam klorida. Hasil reaksi dialkalinasi dengan natrium hidroksida dan didestilasi. Destilat diekstraksi dengan eter dan
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
9
selanjutnya dikeringkan. Pada rute ini, metamfetamin yang terbentuk adalah metamfetamin rasemat (United Nations Office on Drugs and Crime, Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia). Sintesis pada rute reduksi aminasi pada prinsipnya dilakukan dengan mereaksikan fenil-2-propanon dengan metilamin dan merkuri klorida dalam suatu reaktor berpendingin yang dikatalisasi dengan aluminium (Al) atau platina (Pt) atau tembaga (Cu). Sedangkan sintesis rute Birch, Nagai, hidrogenasi Rosenmund dan Emde dilakukan dengan bahan awal l-efedrin atau d-pseudoefedrin. Pada sintesis rute tersebut metamfetamin yang dihasilkan adalah d-metamfetamin. Sintesis dengan rute Birch pada prinsipnya adalah mereduksi efedrin dengan litium (Li) atau natrium (Na) dalam larutan amonia. Rute Nagai mereaksikan efedrin dengan asam hidriodik (HI) dan fosfor merah pada pemanasan. Rute Rosenmund mereaksikan efedrin dengan asam perklorat, katalis paladium-barium sulfat, dan aliran gas hidrogen. Sementara rute Emde mereaksikan efedrin dengan tionil klorida dengan katalis paladium-barium sulfat dan aliran gas hidrogen (Sasaki, Makino, 2006)
2.2
Pengotor/impurities Dalam penelitian ini, yang disebut sebagai pengotor atau impurities adalah
zat aktif atau material lain yang ditemukan dari hasil analisis sampel (kristal) metamfetamin. Material lain yang mungkin ditemukan dalam analisis akan terkait dengan bahan-bahan yang digunakan dan produk intermediet dalam proses sintesis metamfetamin secara gelap. Disebutkan bahwa apabila dalam analisis karakterisasi/profiling (kristal) metamfetamin diperoleh pengotor tertentu maka akan dapat dijadikan petunjuk pada rute sintesisnya. Diagram pada Gambar 2.3 di bawah ini menunjukkan kemungkinan untuk membedakan beberapa pengotor karakteristik dalam rute sintesis metamfetamin (Makino, Urano, Nagano, 2005).
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
10
Sample Ya
Tidak
Naftalen?
Aziridin? atau efedrin/oksazolidin? Ya
Aziridin? atau efedrin/oksazolidin? Tidak
Nagai
Tidak
Ya
Leuckart
Reduksi aminasi
Emde
[Sumber : Y. Makino, Y. Urano, T. Nagano, 2005]
Gambar 2.3 Diagram untuk membedakan rute sintesis metamfetamin
Dari
diagram menunjukkan, keberadaan naftalen dan/atau aziridin
sebagai salah satu pengotor kunci dalam karakterisasi/profiling metamfetamin untuk memperkirakan rute sintesisnya. Keberadaan analit naftalen ataupun aziridin dalam metamfetamin sangat bergantung pada kemurnian hasil sintesis metamfetamin. Semakin murni sampel metamfetamin yang dianalisis, semakin sulit mendapatkan analit tersebut (Sasaki & Makino, 2006). Pada beberapa kasus keberadaan aziridin dalam metamfetamin sulit dideteksi. Dalam kasus yang demikian, keberadaan jejak efedrin atau senyawa yang terkait dengan efedrin, yaitu oksazolidin berupa 3,4-dimetil-5feniloksazolidin mungkin dibutuhkan (Makino, Urano, Nagano, 2005). Beberapa karakterisasi/profiling yang pernah dilakukan di beberapa negara tidak hanya diarahkan kepada pengotor (impurities) naftalen atau aziridin, tetapi analit lain seperti bahan-bahan yang digunakan dalam sintesis dan hasil intermediet selama sintesis seperti efedrin, pseudoefedrin, cis-cinnamilmetamfetamin (rute Nagai), iodoefedrin (rute Nagai), kloro efedrin (rute Emde), kloro pseudoefedrin (rute Emde), N-formil-amfetamin (rute Leuckart), N-acetilmetamfetamin
(rute
Leuckart),
fenil-2-propanon
metilimine
(reductive
amination), atau Pinacol (reduksi aminasi fenil-2-propanon). Pengotor yang
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
11
ditemukan pada rute Rosenmund adalah metkatinon (α-metilaminopropiofenon ) dan cinnamoil metamfetamin, sedangkan pada rute Birch adalah N-metil-1-(1-(1,4 sikloheksadienil)-2-propanamin; Office
on
Drugs
and
2,5-dihidro-metamfetamin
Crime,
(United
Characterization/Impurity
Nations
Profiling
of
Methamfetamine Tablets In South-East Asia). Disebutkan bahwa keberadaan α,α’dimetildifenetilamin dan N, α,α’-trimetildifenetilamin merupakan pengotor kunci dalam rute Leuckart (Kram & Krugel, 1977; Kunalan, Daéid, Kerr, Buchanan, McPherson, (2009). Sementara pengotor kunci dalam rute reduksi aminasi adalah 1-fenil-2-propanol (Kunalan, Daéid, Kerr, Buchanan, McPherson, (2009). Dari penelitian yang diselenggarakan oleh beberapa laboratorium dalam pengawasan United Nations Office on Drugs and Crime (UNODC) terkait profil pengotor metamfetamin, dengan fokus utama rute sintesis yang digunakan produksi ilegal, setidaknya terdapat 57 zat yang telah diidentifikasi dan telah dikompilasi dengan literatur. Zat-zat tersebut termasuk pengotor yang terjadi selama proses sintesis metamfetamin secara ilegal, produk intermediet selama proses sintesis yang kemungkinan terbawa pada hasil akhir, artifak yang kemungkinan terjadi selama preparasi sampel, dan zat-zat yang dekat secara struktural yang memiliki kemiripan spektra massanya. Namun, dituliskan pula bahwa terdapat sejumlah pengotor (impurities) dari spektra massa yang tidak dapat diidentifikasi lebih mendalam. (United Nations Office on Drugs and Crime, Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia)
2.3
Metode-metode analisis karakterisasi metamfetamin Ada beberapa metode yang telah digunakan dibeberapa negara untuk
analisis jejak pengotor dan karakterisasi metamfetamin. Instrumen yang sering digunakan adalah kromatografi gas spektroskopi massa, kromatografi cair kinerja tinggi, dan instrumen lainnya, di antaranya sebagai berikut (United Nations on Drugs and Crime, Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia) :
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
12
2.3.1
UNDCP United Nation Drug Controll Programme (UNDCP), melakukan
pengujian karakteristik metamfetamin dengan GC-FID HP 5890, autoinjektor HP 7673 dilengkapi perangkat lunak ChemStation, Rev. A05.03, menggunakan kolom HP Ultra-2 25m x 0,20mm x 0,33µm, dengan gas nitrogen pada aliran 1,2ml/menit (head pressure 150kPa), program temperatur 50ºC (1 menit) dengan kenaikan 10ºC/menit hingga 300ºC (4 menit); temperatur injektor 250ºC, temperatur detektor 300ºC. Prosedur penyiapan metamfetamin sebelum pengujian adalah 30 mg metamfetamin ditambah 1 ml dapar fosfat (pH 7) ditambahkan 10% Na2CO3 hingga diperoleh pH 10,5, dikocok 5 menit, ditambahkan 200 µl etilasetat yang mengandung 35mg/l difenilamin, kocok 5 menit, kemudian disentrifus.
2.3.2
Korea National Institute of Scientific Investigation, Korea, melakukan pengujian
karakteristik metamfetamin dengan peralatan Donam System 6200 GC-FID, dengan kolom J&W 15m x 0,53mm x 1,5 µm (DB-1), pembawa gas helium, program temperatur : 100ºC (1 menit), 8ºC/menit hingga 300ºC (10 menit). Sedangkan prosedur ekstraksi metamfetamin yang dilakukan adalah 100 mg metamfetamin ditambah 1 ml 0,1M dapar fosfat (pH 7,0), ditambah 0,25 ml 10% Na2CO3 dan ditambah etilasetat yang mengandung dioktilsebakat sebagai standar internal; divorteks 10 menit, dan kemudian dicentrifus.
2.3.3
Jepang Kementerian Kesehatan Jepang, melakukan pengujian karakterisasi
metamfetamin dengan GC-FID/NPD HP 6890 seri II, autoinjektor HP7673, HP ChemStation Rev A 05.05. Kolom yang digunakan HP Ultra-2 25m x 0,20mm x 0,33µm, gas pembawa helium (head pressure 17,3 psi), program temperatur 50ºC (1 menit) dengan kenaikan 10ºC/menit hingga 300ºC (4 menit); temperatur injektor 250ºC, temperatur detektor 300ºC. Prosedur ektraksi/penyiapan metamfetamin yang dilakukan sama dengan UNDCP.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
13
National Research Institute of Police Science, melakukan karakterisasi dengan GC-FID HP 5890, autoinjektor HP 7673, HP 3396 series II integrator, kolom J&W 15m x 0,53mm x 1,5 µm (DB-1), pembawa gas helium dengan aliran 7 ml/menit. Program temperatur dimulai pada 100ºC (1 menit), kenaikan 10ºC/menit hingga 300ºC (20 menit), temperatur injektor 270ºC dan detektor 300 ºC. Penyiapan metamfetamin uji dengan melarutkan 100 mg dalam 1 ml dapar fosfat 0,1M (pH 7,0), ditambahkan 0,25 ml 10% Na2CO3 dan ditambah 0,2 ml etilasetat yang mengandung tetratriakontan 0,05 mg/ml sebagai standar internal, dikocok 10 menit, kemudian disentrifus.
2.3.4 Australia Victoria Forensic Science Center, melakukan karakterisasi dengan GCFID HP 5890 seri II, autoinjektor HP 7673, HP 3365 ChemStation, kolom Ultra-2 25m x 0,20mm x 0,33µm, pembawa gas helium dengan aliran 1 ml/menit (head pressure 150kPa). Program temperatur dimulai pada 50ºC (1 menit), kenaikan 15ºC/menit hingga 200ºC, 1ºC/menit hingga 205ºC, 10ºC/menit hingga 300ºC (3 menit), temperatur injektor 250ºC dan detektor 300ºC. Penyiapan metamfetamin uji dengan melarutkan 200 mg dalam 2 ml dapar pH 6 (50 ml 0,1M potassium dihidrogen ortofosfat dan 5,6 ml 0,1M NaOH), dikocok 5 menit, ditambahkan 2 ml larutan internal standar (2µl n-dekana dan 2,5mg n-eikosan dalam 250 ml n-heptana), dikocok 5 menit.
2.4
Kromatografi Gas dan Kromatografi Cair Kinerja Tinggi Kromatografi gas merupakan suatu proses dimana suatu campuran
zat/material dipisah-pisahkan dengan suatu fase gerak (pembawa) berupa gas melalui suatu penjerap fase diam. Kromatografi gas dibagi dalam 2 (dua) kategori, yaitu (a) kromatografi gas-cair dimana pemisahan terjadi melalui partisi sampel antara fase gerak gas dan suatu lapisan tipis cairan yang tidak menguap yang dilapiskan pada suatu bahan inert, dan (b) kromatografi padatan-gas dimana fase diam yang digunakan berupa padatan. (Vogel, 1989).
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
14
Fase gerak gas (pembawa) yang biasa digunakan dalam kromatografi gas yaitu helium, nitrogen, hidrogen atau argon. Pemilihan gas tersebut tergantung pada faktor-faktor antara lain kemudahan diperoleh, kemurnian yang diinginkan, kebutuhan/konsumsi dan tipe detektor yang digunakan. Namun secara umum gas helium lebih disukai pada penggunaan detektor panas (thermal conductivity detetctors) disebabkan konduktifitas suhu relatif yang tinggi pada penguapan banyak senyawa-senyawa organik (Vogel, 1989). Injeksi sampel yang dianalisis menggunakan kromatografi gas umumnya menggunakan suatu mycrosyringe yang dilengkapi jarum hipodermik melalui septum dan sampel masuk ke dalam suatu heated metal block pada ujung kolom. Berbagai pengembangan prosedur injeksi sampel dibuat untuk meningkatkan keterulangan (reproducibility). Hal ini diperlukan karena sangatlah sulit menginjeksikan sejumlah kecil cairan sampel (ukuran 1-10 µl) dan akan mempengaruhi secara signifikan terhadap hasil kuantitatif analisis dengan kromatografi gas. Salah satu pengembangan prosedur adalah menggunakan internal standar pada berbagai ukuran sampel (Vogel, 1989). Faktor lain yang mempengaruhi hasil analisis kromatografi gas adalah kolom. Pemisahan komponen-komponen sampel dipengaruhi oleh sifat-sifat kolom, diantaranya padatan penyangga, tipe dan jumlah fase cair, metode pengemasan, panjang dan temperature kolom, akan mempengaruhi resolusi yang diinginkan. Kolom berada dalam suatu oven yang suhunya terkontrol dan konstan pada suhu 0,5ºC sampai lebih dari 400ºC. Secara umum, kolom dibagi 2 (dua) jenis yaitu (a) kolom kemas (packed columns) dan (b) kolom tubular terbuka (open tubular columns) (Vogel, 1989). Sebagaimana telah disinggung sebelumnya, selain faktor injeksi sampel dan kolom, hasil analisis kromatografi gas juga dipengaruhi oleh jenis detektor. Fungsi detektor yang dipasang pada ujung kolom pemisah adalah untuk “menangkap” dan mengukur sejumlah kecil keberadaan komponen-komponen yang dipisahkan yang mengalir bersama gas menuju ujung kolom. Keluaran dari detektor adalah suatu pencatatan yang disebut kromatogram. Pemilihan detektor tergantung beberapa faktor, antara lain konsentrasi yang diukur dan sifat-sifat komponen yang dipisahkan. Jenis detektor yang banyak digunakan adalah
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
15
detektor konduktifitas suhu (thermal conductivity detetctor), ionisasi nyala (flame ionization detector), dan penangkap electron (electron capture detector). Sedangkan sifat-sifat penting suatu detektor antara lain sensitifitas, linieritas, stabilitas, dan memberikan respon yang selektif atau universal. Beberapa karakteristik detektor ditampilkan dalam Table 2.1 berikut ini :
Tabel 2.1 Karakteristik detektor Tipe
TCD
Minimum deteksi
Rentang
Batas suhu
(g/detik)
linier
(ºC)
10-6 – 10-8
104
Sifat
Tidak
450
namun
merusak, sensitif
terhadap suhu dan aliran
FID
-11
10
7
10
Merusak,
400
sangat
stabil dan linier
ECD
-13
10
10
2
350
Tidak
merusak
tetapi
mudah
terkontaminasi dan sensitif
terhadap
suhu [Sumber : Vogel, 1989]
Kromatografi cair kinerja tinggi (KCKT) merupakan teknik analisis yang paling cepat berkembang dalam kimia analitik. Penggunaannya yang sangat banyak terdiri atas berbagai metode dalam kromatografi cair. Kromatografi cair terdiri atas (a) kromatografi cair retensif dimana pemisahan dicapai melalui interaksi antara zat terlarut dengan fase diam (tipe ini mencakup fase normal, fase terbalik, dan kromatografi ion), dan (b) kromatografi cair non retensif dimana pemisahan yang dicapai tergantung kepada perbedaan besar molekul zat terlarut dimana terjadi interaksi antara zat terlarut dengan pori-pori yang terdapat di permukaan fase diam (tipe : kromatografi ekslusi) (Harmita, 2006). KCKT memiliki beberapa komponen yang berbeda. Sebagai akibatnya banyak instrument-instrumen KCKT yang tersedia secara komersial telah menggunakan desain standar. Bentuk disain ini sangat menguntungkan karena
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
16
instrument dapat diperbaharui (mengikuti teknologi terkini) hanya dengan menambahkan komponen lain atau dengan mengganti dengan komponenkomponen lain yang sesuai. (Harmita, 2006). Sebuah instrumen KCKT mengandung sistem penyaluran suplai pelarut yaitu pompa. Pompa dipasang pada kolom melalui sistem sampel pendahuluan. Eluat dari kolom kemudian mengalir melewati detektor dan respon dari detektor diukur dengan alat keluaran digital atau analog. (Harmita, 2006). Bagian lain yang penting dari KCKT adalah detektor pada ujung kolom. Idealnya, sebuah detektor seharusnya mempunyai kepekaan yang baik terhadap semua komponen yang berelusi. Detektor seharusnya linier sehingga detektor dapat digunakan dalam analisi kuantitatif. Detektor seharusnya juga tidak mengurangi pemisahan yang terjadi dalam kolom, sehingga detektor dapat dipercaya dan mudah dioperasikan. Banyak detektor yang digunakan dalam KCKT, yang dapat dipilih sesuai kebutuhan analisis, diantaranya detektor fotometri, detektor elektrokimia, detektor reaksi kimia, detektor indeks bias, detektor ionisasi menyala, detektor penangkap electron, detektor fotoionisasi, dan detektor-detektor lainnya. (Harmita, 2006).
2.5
Validasi (Harmita, 2006) Validasi metode analisis adalah suatu tindakan penilaian terhadap
perameter tertentu, berdasarkan percobaan laboratorium untuk membuktikan bahwa parameter tersebut memenuhi persyaratan untuk penggunaannya. Validasi metode dalam pengujian ini dilakukan terkait akurasi (kecermatan), presisi (keseksamaan), linearitas, batas deteksi dan batas kuantitasi.
2.5.1
Akurasi Akurasi akan menunjukkan derajat kedekatan hasil analisis dengan kadar
analit yang sebenarnya. Akurasi dinyatakan sebagai persen perolehan kembali dari analit yang ditambahkan, dan dinyatakan sebagai rasio antara hasil yang diperoleh dengan hasil yang sebenarnya dengan perhitungan sebagai berikut :
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
17
Cf % perolehan kembali = _________ x 100 Ca Dimana :
(2.1)
Cf
= konsentrasi yang diperoleh dari pengukuran (hasil analisis)
Ca
= konsentrasi sesungguhnya
2.5.1 Presisi Presisi merupakan ukuran yang menunjukkan derajat kesesuaian antara hasil uji individual yang diukur melalui penyebaran hasil individual rata-rata jika prosedur yang digunakan secara berulang pada sampel-sampel yang diambil dari campuran yang homogen. Presisi diukur sebagai simpangan baku (SD) atau simpangan baku relative (koefisien variasi/RSD). Presisi dapat dinyatakan sebagai keterulangan (repeatability) yang merupakan keseksamaan metode jika dilakukan secara berulang oleh analis yang sama pada kondisi yang sama dalam interval waktu yang pendek, atau ketertiruan (reproducibility) yang merupakan keseksamaan metode jika dikerjakan oleh analis yang berbeda pada kondisi yang berbeda seperti dilakukan pada laboratorium yang berbeda menggunakan peralatan, pereaksi, dan pelarut yang berbeda pula. Presisi dapat dihitung dengan persamaan sebagai berikut : Hasil analisis adalah x1, x2, x3, x4………xn dan ditentukan rata-ratanya, sehingga simpangan bakunya adalah : (Σ (x-ẍ) 2 ) SD = √ ________ n-1
(2.2)
Simpangan baku relatif (RSD) atau koefisien variasi (KV) adalah KV = (SD/x) x 100%
(2.3)
Kriteria presisi diberikan jika simpangan baku relatif adalah 2% atau kurang.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
18
2.5.2
Linearitas Linearitas merupakan kemampuan metode analisis yang memberikan
respon yang secara langsung atau dengan bantuan persamaan matematika yang baik, proporsional terhadap konsentrasi analit dalam sampel. Sedangkan rentang metode merupakan pernyataan batas terendah dan tertinggi analit yang sudah ditunjukkan
dapat
ditetapkan
sebagai
akurasi
(kecermatan),
presisi
(keseksamaan), dan linearitas yang dapat diterima. Linearitas umumnya dinyatakan dalam istilah variasi sekitar arah garis regresi yang dihitung berdasarkan persamaan matematik data yang diperoleh dari hasil uji analit dalam sampel dengan berbagai konsentrasi analit. Sebagai parameter adanya hubungan linear digunakan koefisien korelasi r pada anlisis regresi linier Y = bx + a. Hubungan linear yang ideal dicapai jika nilai b = 0 dan r = +1 atau -1 bergantung pada arah garis. Sedangkan nilai a menunjukkan kepekaan analisis terutama instrument yang digunakan. 2.5.3
Batas deteksi dan batas kuantitasi Batas deteksi adalah jumlah terkecil analit dalam sampel yang dapat
dideteksi yang masih memberikan respon signifikan dibandingkan dengan blangko. Batas deteksi merupakan parameter uji batas. Batas kuantitasi merupakan parameter pada analisis renik dan diartikan sebagai kuantitas terkecil analit dalam sampel yang masih dapat memenuhi kriteria cermat dan seksama. Pada analisis instrument batas deteksi dapat dihitung dengan mengukur respon blangko beberapa kali lalu dihitung simpangan baku respon blangko dengan formula sebagai berikut : k x Sb Q = ______________
(2.4)
Sl Q = LOD (batas deteksi) atau LOQ (batas kuantitasi) k = 3 untuk batas deteksi atau 10 untuk batas kuantitasi Sb = simpangan baku respon analitik dari blangko Sl = arah garis linear (kepekaan arah) dari kurva antara respon terhadap konsentrasi = slope (b pada persamaan garis y = a + bx)
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
19
Batas deteksi dan kuantitasi dapat dihitung secara statistik melalui persamaan garis regresi linear dari kurva kalibrasi. Nilai pengukuran akan sama dengan nilai b pada persamaan garis linear y = a + bx, sedangkan simpangan baku blangko sama dengan simpangan baku residual (Sy/x).
a. Batas deteksi (Q) Karena k = 3 atau 10 Simpangan baku (Sb) = Sy/x, maka 3 Sy/x Q = ___________
(2.5)
Sl b. Batas kuantitasi (Q) 10 Sy/x (2.6)
Q = ___________ Sl
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
BAB 3 METODE PENELITIAN
3.1
Lokasi penelitian Penelitian dilakukan di UPT Laboratorium Uji Narkoba Badan Narkotika
Nasional, Cawang, Jakarta Timur.
3.2
Bahan Bahan-bahan kimia yang diperlukan dalam penelitian ini antara lain
metamfetamin (Cerilliant); d/l-metamfetamin (Lipomed); natrium dihidrogen fosfat pa (Merck); natrium hidrogen fosfat pa (Merck); kalium hidrogen fosfat pa (Merck); natrium karbonat pa (Merck); etil asetat untuk kromatografi (Merck); asetonitril untuk kromatografi (Merck); metanol untuk kromatografi (Merck); larutan formaldehid 37% (Merck); asam asetat glacial (Merck); asam sulfat pekat pa (Merck); natrium nitroprusida pa (Merck); asetaldehida pa (Merck); aquades (Brataco). Aziridin
(1,2-dimetil-3-fenilaziridin)
dan
naftalen
(1,3-dimetil-2-
fenilnaftalen, 1-benzil-3-fenilnaftalen, 3-benzil-1-metilnaftalen) diperoleh dari Graduate School of Pharmaceutical, Universitas Tokyo dalam bentuk terlarut metanol hasil sintesis Yukiko Makino, PhD. Sampel metamfetamin (kristal/serbuk) yang diuji adalah 20 sampel metamfetamin HCl yang beredar ilegal hasil penyitaan penyidik (barang bukti) yang dikirimkan ke UPT Laboratorium Uji Narkoba BNN untuk diuji dalam periode 2011 hingga 2012 (sampel retensi).
3.3
Peralatan Peralatan yang digunakan dalam penelitian ini antara lain : kromatografi
gas spektroskopi massa (Shimadzu QP 2010) dengan kolom HP 5 MS, kromatografi gas ionisasi nyala (Shimadzu QP 2010) dengan kolom HP 5, kromatografi cair kinerja tinggi (Shimadzu Nexera, DAD series) dengan kolom Shiseido Chiral Drugs, pipet volume/Mohr, alat-alat gelas, vortex mixer (Vision
20
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
21
scientific, tipe KMC-1300V), shaker, sentrifus (Sorvall Legend Mach 1.6, Thermo scientific), pengukur pH (Horiba B212), Melting point app (Stuart, tipe SMP10) dan kertas saring whatmann no.42.
Cara kerja
3.4 3.4.1
Identifikasi awal sampel Identifikasi awal sampel dilakukan dengan uji kelarutan metamfetamin,
pH (derajat keasaman), titik leleh, dan uji reaksi warna.
3.4.1.1 Uji kelarutan Uji kelarutan metamfetamin dilakukan dengan cara melarutkan masingmasing 10 mg sampel metamfetamin dalam 1 ml pelarut (air/aquades, metanol, dan kloroform).
3.4.1.2 Uji pH (derajat keasaman) Keasaman (pH) diuji pada larutan metamfetamin dalam aquades.
3.4.1.3 Uji titik leleh Uji titik leleh dilakukan dengan melting point app (Stuart, tipe SMP10), dengan meletakkan sejumlah kecil sampel metamfetamin ke dalam gelas kapiler pada alat dan diamati suhu titik lelehnya.
3.4.1.4 Uji reaksi warna Uji reaksi warna dilakukan dengan Marquis test dan Simon test. Penyiapan pereaksi Marquis test dan Simon test, masing-masing dilakukan sebagai berikut (United Nation Office on Drugs and Crime, 1994, United Nation Office on Drugs and Crime, 2006) : a. Penyiapan pereaksi Marquist test 1) Larutan A
: tambahkan 8-10 tetes (± 0,25 ml) larutan formaldehid
37% ke dalam asam asetat glasial 2) Larutan B
: asam sulfat pekat
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
22
b. Penyiapan pereaksi Siman test 1) Larutan A
: 0,9 gram natrium nitroprusida dilarutkan dalam 90 ml
aquades, kemudian ditambahkan 10 ml asetaldehida 2) Larutan B
: 2 gram natrium karbonat dilarutkan dalam 100 ml aquades
Pengujian dilakukan dengan cara meletakkan sedikit sampel diplat tetes porselen, kemudian ditambahkan pereaksi 1-3 tetes.
3.4.2
Analisis kromatografi dan persiapan/preparasi sampel Analisis pengotor dan karakterisasi metamfetamin dilakukan dengan cara :
analisis jejak pengotor metamfetamin didasarkan pada keberadaan pengotor kunci (key impurities) dengan kromatografi gas spektroskopi massa, pengujian konsentrasi/kemurnian dengan kromatografi gas ionisasi nyala dan pengujian kiralitas dengan kromatografi cair kinerja tinggi. Sebelum masing-masing analisis dilakukan pengkondisian peralatan serta dilakukan persiapan dan preparasi sampel metamfetamin dimaksud.
3.4.2.1 Analisis dengan kromatografi gas spektroskopi massa Untuk analisis jejak pengotor dan karakterisasi/profiling sampel metamfetamin dengan kromatografi gas spektroskopi massa, disiapkan langkahlangkah sebagai berikut : a. Kondisi kromatografi gas spektroskopi massa Peralatan kromatografi gas spektorskopi massa (shimadzu QP 2010) yang digunakan untuk menganalisis jejak pengotor metamfetamin disiapkan sebagai berikut : kolom HP-5 MS UI (30m x 0.25 mm x 0.25μm), program temperatur oven 50 oC (tahan 1 menit) hingga 300 oC (tahan 15 menit) dengan kenaikan temperatur 10 oC/menit, injektor mode split (250oC), split ratio : 10, temperatur ion source : 200 oC, volume injeksi 1 μl, dan waktu selesai analisa (end time) 41 menit. b. Ekstraksi sampel dengan dapar fosfat pH 10,5-etil asetat 100 mg kristal metamfetamina dilarutkan dengan 3 ml dapar fosfat pH 10.5, kemudian ditambah 0.6 ml etil asetat. Larutan dicampurkan dengan cara digoyang dengan alat vortex mixer selama ± 5 menit. Campuran disentrifus
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
23
pada kecepatan 3000 rpm selama ± 5 menit, kemudian larutan organik (atas) diambil dan ditempatkan dalam vial. Diambil dengan micro syringe 1 µl dan diinjeksikan ke instrumen kromatografi gas spektroskopi massa untuk dianalisis. c. Ekstraksi sampel langsung dengan etil asetat 100 mg kristal metamfetamina ditambah dengan 2 ml etil asetat, dicampur dengan cara digoyang dengan alat vortex mixer selama ± 5 menit, kemudian disentrifus pada kecepatan 3000 rpm selama ± 5 menit. Diambil bagian atas dan ditempatkan dalam vial. Diambil dengan micro syringe 1 µl dan diinjeksikan ke instrumen kromatografi gas spektroskopi massa untuk dianalisis. d. Pembuatan dapar fosfat pH 10,5 Dapar fosfat pH 10,5 dibuat dengan cara mencampurkan 0,1 M dapar fosfat pH 7 dan larutan natrium karbonat 10% dengan perbandingan 4 dibanding 1, yang disiapkan dengan cara : 1) Membuat dapar fosfat 0,1 M pH 7,0 dengan cara mencampurkan 195 ml larutan A dicampur dengan 305 ml larutan B a) Larutan A : 7,8 gram natrium dihidrogen fosfat (NaH2PO4.2H2O) kemudian dilarutkan dalam 500 mL aquades b) Larutan B : 17.9 gram natrium hidrogen fosfat (Na2HPO4. 12H2O) kemudian dilarutkan dalam 500 mL aquades 2) Membuat larutan natrium karbonat (Na2CO3) 10% 10 gram Na2CO3 dilarutkan dengan 100 ml aquades 3.4.2.2 Analisis dengan kromatografi gas ionisasi nyala Untuk mengukur konsentrasi/kemurnian sampel metamfetamin, disiapkan langkah-langkah sebagai berikut : a. Kondisi kromatografi gas ionisasi nyala Peralatan kromatografi gas ionisasi nyala (shimadzu QP 2010) untuk penetapan kemurnian/kadar sampel metamfetamin disiapkan sebagai berikut : kolom HP-5 (30m x 0.25 mm x 0.25μm), program temperatur oven 100oC (tahan 1 menit) hingga 250 oC (tahan 10 menit) dengan kenaikan temperatur
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
24
15 oC/menit, injektor mode split (250 oC), temperatur detektor 300 oC, laju aliran gas pembawa 1 ml/menit (tekanan konstan), waktu selesai analisa (end time) : 20 menit, dan volume injeksi 1 μl (injeksi menggunakan autosampler). b. Persiapan dan preparasi sampel untuk uji kromatografi gas ionisasi nyala (uji kemurnian/kadar sampel metamfetamin) 1) Pembuatan larutan standar metamfetamin dan kurva regresi Larutan metamfetamin (cerilliant) 1000 ppm 1 ml dimasukkan dalam labu ukur 5 ml (dibilas 3 kali dengan metanol) dan ditambahkan metanol hingga tanda garis, sehingga diperoleh konsentrasi 200 ppm. Selanjutnya dari larutan ini dilakukan pengenceran-pengenceran untuk memperoleh konsentrasi 100 ppm, 90 ppm, 81 ppm, 69,66 ppm, dan 59,91 ppm yang ditempatkan dalam vial. Masing-masing konsentrasi ditempatkan dalam rak autosampler dan diinjeksikan 1 µl (pengulangan 3 kali) ke dalam instrumen sehingga diperoleh area masing-masing konsentrasi untuk dibuat kurva kadar versus area (kurva regresi Y = bx + a). 2) Penyiapan larutan sampel metamfetamin Ditimbang masing-masing 10 mg sampel, dan masing-masing dilarutkan dengan metanol dalam labu ukur 10 ml. Selanjutnya dilakukan pengenceran sehingga diperoleh area yang masuk dalam kurva regresi Y = bx + a untuk menentukan konsentrasi sampel. Perhitungan kemurnian metamfetamin (base) dihitung dengan rumus : % K = Kons. x Vol.akhir x F.p x (BM Base/BM HCl) x 100% Berat sampel ditimbang x 103
(3.1)
3.4.2.3 Analisis dengan kromatografi cair kinerja tinggi (uji kiralitas sampel) Untuk uji kiralitas sampel metamfetamin dengan kromatografi cair kinerja tinggi, disiapkan langkah-langkah sebagai berikut : a. Kondisi kromatografi cair kinerja tinggi Peralatan kromatografi cair kinerja tinggi (Shimadzu Nexera, DAD series) dengan kolom Shiseido Chiral Drugs (150mm x I.D 4,6mm x 5µm) untuk menguji kiralitas sampel metamfetamin disiapkan sebagai berikut : fase gerak dapar kalium dihidrogen fosfat 20 mM : asetonitril = 8 dibanding 2, detektor
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
25
Photo Diode Array (210 nm), temperatur kolom 32 oC, laju aliran 1 ml/menit, waktu analisa 20 menit, dan volume injeksi : 2 µl (injeksi menggunakan autosampler). b. Rekristalisasi kristal sampel 100 mg kristal sampel metamfetamina dilarutkan dalam 6 ml kloroform, kemudian ditambahkan 6 ml dietil eter. Kristal yang terbentuk disaring dengan kertas whatmann no. 42 dan dikeringkan. c. Penyiapan larutan sampel untuk pengujian 10 mg kristal sampel metamfetamina hasil rekristalisasi dilarutkan dalam 100 ml aquades (dalam labu ukur 100 ml), kemudian disaring dan diambil 100 µl untuk ditempatkan dalam vial. Vial ditempatkan pada rak autosampler untuk dianalisis. d. Pembuatan fase gerak Dibuat larutan dapar kalium dihidrogen fosfat 20 mM, dengan cara menimbang 2,72 gram padatan kalium dihidrogen fosfat dan dilarutkan dalam 1 liter aquades, kemudian disaring dengan penyaring vakum.
3.4.3
Validasi metode Validasi metode pengujian dilakukan untuk mengetahui akurasi, presisi
dan linearitas serta batas deteksi dan batas kuantitasi instrumen analisis dalam penentuan kadar/kemurnian metamfetamin. Persiapan dan pelaksanaannya dilakukan dengan cara : menimbang sebanyak 10 mg sampel metamfetamin, dilarutkan dengan metanol dalam labu ukur 10 mL kemudian diencerkan hingga 10 kali dengan cara dipipet 0,5 mL, dimasukkan dalam labu ukur 5 mL dan ditambah metanol hingga tanda garis. Selanjutnya dinjeksikan (keberulangan 3 kali-autosampler) ke dalam kromatografi gas ionisasi nyala. Area yang diperoleh dimasukkan dalam kurva regresi Y = bx + a sehingga diperoleh konsentrasi sampel (ppm). Dari konsentasi yang diperoleh, selanjutnya dilakukan pengenceran serial untuk penentuan akurasi (kecermatan), presisi (keterulangan), batas deteksi dan batas kuantitasi.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
26
3.4.3.1 Penentuan akurasi (kecermatan) dan presisi (keterulangan) Penentuan akurasi dan presisi metode analisis dilakukan dengan cara membuat 3 konsentrasi sampel yaitu konsentrasi tinggi, konsentrasi menengah dan konsentrasi rendah. Masing-masing konsentrasi diinjeksikan 1 µl ke dalam peralatan kromatografi gas ionisasi nyala dengan autosampler sebanyak 6 kali. Pengukuran akurasi dinyatakan sebagai persen perolehan kembali yang dihitung berdasarkan perbandingan konsentrasi pengukuran dan konsentrasi yang diketahui, sementara presisi dihitung sebagai simpangan baku relatif (% RSD) masing-masing konsentrasi.
3.4.3.2 Penentuan batas deteksi dan batas kuantitasi Penentuan batas deteksi dan batas kuantitasi dilakukan dengan cara melakukan pengenceran bertahap terhadap larutan sampel metamfetamin yang telah dibuat. Batas deteksi dan kuantitasi ditentukan hingga konsentrasi terendah yang diperoleh namun masih memenuhi kriteria cermat dan seksama.
3.5
Analisis data Data hasil penelitian dikumpulkan berdasarkan jejak analit pengotor dari
masing-masing sampel, menentukan perkiraan rute sintesis dan selanjutnya diperkirakan hubungan kedekatan antar sampelnya.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
BAB 4 HASIL PENELITIAN DAN PEMBAHASAN
4.1
Identifikasi awal sampel Sampel
uji
adalah
metamfetaminn
HCl
(selanjutnya
disebut
metamfetamin), hasil sitaan penyidik yang berasal dari daerah Jakarta, Sukabumi (Jawa Barat), Cilacap (Jawa Barat), Lampung, Banjar (Kalimantan Selatan) dan Banten yang diujikan ke UPT Laboratorium Uji Narkoba BNN Jakarta dalam periode 2011-2012 sebagaimana tertulis dalam Tabel 4.1. Sebaran instansi pengirim dan tempat kejadian perkara (TKP) menunjukkan peredaran ilegal metamfetamin tidak berbatas daerah.
Table 4.1 Asal sampel metamfetamin No
Reg sampel
Instansi pengirim
1
SS5A
Dit. TP Narkoba Polri, Jkt
Kebon Jeruk, Jakbar
Jan 2012
2
42Ab
Dit Narkoba Polda JaBar
Sukabumi
Jan 2012
3
57A1-2
Polres Lampung Selatan
Bakauheni
Jan 2012
4
178B1-2
Polresta Bandar Lampung
Hotel “N” Sukabumi
Peb2012
5
195B
BNN, Jakarta
Banjar Barat, Kalsel
Peb 2012
6
345B
Dit Narkoba Polda Lampg
Bandar Lampung
Peb 2012
7
21C
Dit Narkoba Polda Lampg
Lampung Selatan
Mar 2012
8
SS11C
BNN, Jakarta
Mc Senayan, Jakarta
Mar 2012
9
19C
Dit Narkoba Polda Lampg
Pagar alam B. Lampung
Mar 2012
10
264C
Polres Metro Jakarta Barat
Kemayoran, Jakpus
Peb 2012
11
294C
Polsek Cengkareng, Jakbar
D Mogot,Cengkareng
Mar 2012
12
271A
Dit narkoba Polda Lampg
Bandar Lampung
Mar 2012
13
273C
Dit narkoba Polda Lampg
Bandar Lampung
Mar 2012
14
269A
Dit Narkoba Polri, Jakarta
Pantai, Cilacap, Jabar
Jan 2012
15
127H
Polsek Cilandak, Jaksel
Sawah Besar, Jakpus
Agu 2011
16
55H
Dit narkoba Polda Lampg
Rajabasa, Lampung Sel
Sep 2011
17
10I
Polres Lampung Selatan
Bakauheni
Sep 2011
18
68I
Polres Bandar Lampung
Kedaton, B. Lampung
Sep 2011
19
221J
Polres Metro Tangerang
-
Okt 2011
20
329J
Polresta Tangerang
Tiga Raksa, Tangerang
Okt 2011
27
Asal/TKP
Tahun
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
28
Identifikasi fisik sampel berupa bentuk, warna, derajat keasaman (pH) dan uji kelarutan masing-masing sampel metamfetamin dengan pelarut aquades, metanol, dan kloroform, disajikan dalam Tabel 4.2 di bawah ini :
Tabel 4.2. Bentuk, warna, derajat keasaman (pH), dan kelarutan sampel metamfetamin No
Bentuk
Warna
pH (air)
Pengamatan kelarutan Aquades
Metanol
Kloroform
1
kristal
Putih
6,9
+++++
++++
+++
2
kristal
Putih
7,1
+++++
++++
+++
3
kristal
Putih
6,9
+++++
++++
+++
4
kristal
Putih
7,1
+++++
++++
+++
5
kristal
Putih
6,9
+++++
++++
+++
6
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
7
kristal
Putih kecoklatan
7,0
+++++
++
++
8
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
9
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
10
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
11
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
12
kristal
Putih
7,1
+++++
++++
+++
13
kristal
Putih
7,0
+++++
++
++
14
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
15
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
16
kristal
Putih
7,1
+++++
++
++
17
kristal
Putih
6,9
+++++
++++
+++
18
kristal
Putih
7,0
+++++
++
++
19
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
20
kristal
Putih
7,0
+++++
++++
+++
Keterangan : +++++ : sangat mudah larut; ++++ : mudah larut;
+++ ++
: larut : agak sukar larut
Dari pengamatan uji derajat keasaman sampel-sampel metamfetamin menunjukkan pH kisaran 6,9 sampai dengan 7,1 (netral). Nilai derajat keasaman tersebut berada dalam kisaran derajat keasaman metamfetamin dalam pustaka (United Nation Office on Drugs and Crime, 1995; Moffat, Osselton, & Widdop, 2004; Maryadele, 2006). Sementara kelarutan sampel metamfetamin secara umum
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
29
menunjukkan sangat mudah larut dalam air, namun terdapat variasi kelarutan dalam metanol dan kloroform. Variasi kelarutan ini kemungkinan disebabkan oleh zat-zat pengotor yang tercampur dan kemurnian sampel yang variatif.
Gambar 4.1 Sampel kristal metamfetamin
Hasil pengujian titik leleh terhadap sampel-sampel metamfetamin didapatkan rentang hasil yang berbeda-beda dan disajikan dalam Tabel 4.3. Kemurnian sampel dan adanya campuran zat lain dalam sampel yang tersisa akibat rekristalisasi/pemurnian yang tidak sempurna diperkirakan mempengaruhi keberagaman titik leleh ini. Tabel 4.3 Titik leleh sampel metamfetamin No.
Titik Leleh (° C)
No.
Titik Leleh (° C)
1
175-185
11
111-156
2
125-162
12
110-124
3
171-185
13
106-116
4
103-112
14
176-180
5
173-182
15
174-185
6
173-180
16
120-132
7
135-175
17
174-182
8
119-153
18
108-118
9
137-158
19
176-191
10
135-157
20
173-181
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
30
Identifikasi awal terhadap sampel-sampel metamfetamin secara kualitatif dilakukan juga dengan Marquis test dan Simon test dengan hasil sebagaimana Tabel 4.4 di bawah ini. Marquis test akan memberikan reaksi warna oranye yang berubah kecoklatan terhadap metamfetamin, sedangkan Simon test akan menghasilkan reaksi warna biru. Berdasarkan uji ini, semua sampel metamfetamin memberikan hasil yang sesuai (positif) dengan indikasi uji warna.
Tabel 4.4. Uji reaksi warna sampel metamfetamin No.
Uji reaksi warna
1
Marquis test +
Simon test +
2
+
3
No.
Uji reaksi warna
11
Marquis test +
Simon test +
+
12
+
+
+
+
13
+
+
4
+
+
14
+
+
5
+
+
15
+
+
6
+
+
16
+
+
7
+
+
17
+
+
8
+
+
18
+
+
9
+
+
19
+
+
10
+
+
20
+
+
4.2 4.2.1
Hasil analisis kromatografi Analisis kromatografi gas spektroskopi massa Analisis pengotor dan karakterisasi sampel metamfetamin menggunakan
kromatografi gas spektroskopi massa dilakukan dengan dua perlakuan terhadap masing-masing sampel, yaitu ekstraksi menggunakan dapar fosfat pH 10,5 - etil asetat ( 3 banding 0,6 ) dan ekstraksi langsung dengan etil asetat. Analisis pengotor dalam masing-masing sampel metamfetamin dilakukan dengan cara mencari massa fragmen ion (m/z) senyawa pengotor kunci yang telah diketahui dan memasukkan nilai-nilai massa fragmen ion (m/z) tersebut ke dalam program komputer instrumen. Penentuan nilai massa fragmen ion (m/z) didasarkan dari pustaka elektronik perangkat lunak instrumen kromatografi gas
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
31
spektroskopi massa, dari standar dan dari tinjauan pustaka pada beberapa senyawa pengotor kunci dalam metamfetamin yang tertuang dalam Tabel 4.5 (Kram & Krugel, 1977, Allen & Kiser, 1987, Ko, Suh, S.,I., Suh, Y.J., Kyo In, Kim, 2007, Moffat, Osselton, & Widdop, 2004).
Tabel 4.5
Massa fragmen ion (m/z) senyawa pengotor dalam karakterisasi metamfetamin
Senyawa pengotor
Massa Fragmen Ions (m/z)
BM
fenil-2-propanon
B43, 39, 65, 91, 134
134
α,α’-dimetildifenetilamin
B91, 65, 70, 119, 162
253
N,α,α’-trimetildifenetilamin
B176, 58, 91, 119
267
Efedrin/pseudoefedrin
B58, 30, 77, 105, 106
165
Kloroefedrin
B58, 77, 91, 105, 117, 146
183
Cis/trans-1,2-dimetil-3-fenilaziridin
B146, 42, 91, 105, 132
147
3,4-dimetil-5-fenilloksazolidin
B71 , 56, 43, 91, 77,105
177
α-metilaminopropiofenon
B58, 42, 51, 77, 105, 164
163
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen
B232, 202,215,217
232
1-benzil-3-metilnaftalen
B217, 202, 205, 232
232
N-asetil metamfetamin
B58, 43, 56, 91, 134
191
N-formil metamfetamin
B86, 58, 91, 118, 177
177
fenil-2-propanol
B92,39, 45, 65
136
B = base peak
Hasil analisis jejak pengotor sampel metamfetamin dengan kromatografi gas spektroskopi massa disajikan dalam Tabel 4.6. Pemilihan etil asetat sebagai pelarut pengekstraksi didasarkan pada efisiensi dan efektifitas hasil ekstraksi etil asetat dibandingkan dengan pelarut lain seperti aseton, isopropanol, dan diklorometan (pada kondisi pH asam, basa dan netral) yang pernah dilakukan di mana secara umum lebih banyak senyawa pengotor yang tertarik dan terdeteksi dalam instrumen (Koester, Andresen, Grant, 2002).
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
32
Tabel 4.6 Hasil analisis jejak pengotor sampel metamfetamin yang diekstraksi dengan dapar fosfat pH 10,5-etil asetat dan ekstraksi langsung dengan etil asetat No 1 2
3
4 5
6
7 8 9
10
11
12 13 14 15
16 17 18 19
20
Pengotor metamfetamin yang terdeteksi dapar fosfat pH 10,5-etil asetat etil asetat N-asetil metamfetamin, N-formilmetam fenil-2-propanon, fenil-2-propanol fetamin 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, (pseudo) fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil efedrin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1-ben zil- aziri din, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, 3-metilnaftalen (pseu-do)efedrin, 1,3-dimetil-2fenilnaftalen, 1-benzil-3-metilnaftalen 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, 3,4-dimetil-5- fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil feniloksazolidin aziri din, 3,4-dimetil-5-feniloksazo lidin, (pseudo)efedrin, 1-benzil-3metilnaftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin fenil-2-propanon 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, 3,4-dimetil-5-fe fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil niloksazolidin, (pseudo)efedrin, 1,3-dimetil - oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 2-fenilnaftalen, 1-benzil-3-metil naftalen 1-benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, 1,3-dimetil-2- oksazolidin fenilnaftalen, 1-benzil-3-metil naftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 1-benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin oksazolidin fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil fenil-2-propanon oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenil naftalen, 1benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin, 1,3-dimetil-2- oksazolidin feniln aftalen, 1-benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil fenil-2-propanon oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenil naftalen, 1benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin oksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin aziridin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1benzil-3-metilnaftalen fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin aziridin, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin, 1-benzil-3- aziridin, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin metilnaftalen 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, 3,4-dimetil-5- fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil feniloksazolidin aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
33
Hasil analisis kromatografi gas spektroskopi massa diperoleh adanya jejak senyawa pengotor dari sampel metamfetamin seperti fenil-2-propanon, 1,2dimetil-3-fenilaziridin
(aziridin),
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen,
1-benzil-3-
metilnaftalen (naftalen), (pseudo)efedrin dan 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (oksazolidin), serta didapatkan 1-fenil-2-propanol, N-asetilmetamfetamin dan Nformilmetamfetamin pada khusus pada sampel 1. Terdapat beberapa perbedaan hasil dari kedua perlakuan ekstraksi, yang disebabkan adanya perbedaan pH pengekstraksi yang mempengaruhi disosiasi senyawa pengotor dan berakibat pada penarikan oleh pelarut pengekstraksi. Hasil analisis ekstraksi langsung dengan etil asetat menunjukkan keberadaan fenil-2-propanon (P2P) dalam seluruh sampel. Keberadaan fenil-2-propanon sebagai pengotor, dalam hal ini dapat mengindikasikan sebagai bahan awal (rute Leuckart atau reduksi aminasi) dan dapat pula sebagai senyawa pengotor hasil retro ring opening aziridin yang diikuti hidrolisis dari bahan awal pseudoefedrin atau efedrin sehingga keberadaannya sebagai pengotor merupakan hal yang normal (Cantrell, John, Johnson, Allen, 1988; Skinner, 1990). Dengan demikian fenil-2-propanon bukan merupakan “kunci” dalam analisis jejak pengotor dan karakterisasi metamfetamin. Cantrell, John, Johnson, Allen, 1988, menjelaskan bahwa saat efedrin dipanaskan dengan asam hidriodik (HI), baik dengan atau tanpa fosfor merah, mula-mula gugus hidroksil efedrin akan digantikan dengan iodine. Dari sini penataan ulang kimia dari jejak pengotor dimulai. Senyawa halo akan mengalami reduksi dalam media asam hidriodik menjadi senyawa target (metamfetamin). Sementara itu, pada suhu yang tinggi hidrogen iodida berdisosiasi menjadi iodin dan hidrogen. Kesetimbangan ini dapat berubah karena dekomposisi oleh reaksi hidrogen dengan senyawa organik (dalam hal ini iodoefedrin) yang berupa reaksi reduksi, namun dapat pula dipengaruhi “penghilangan” iodin, dimana iodin bereaksi dengan fosfor membentuk fosfor triiodida yang terdekomposisi dengan adanya air menjadi asam fosfat dan hidrogen iodida. Dengan penambahan fosfor pada campuran reaksi, hidrogen iodida akan tersiklus dan efisiensi reduksi asam hidriodik akan tercapai. Senyawa halo kemungkinan mengalami reaksi substitusi internal, dimana nitrogen digantikan oleh iodin, sebagaimana rute A, B, C, D (gambar 4.2). Karena
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
34
kondisi keasaman yang ekstrem dalam campuran reaksi ini, hanya rute C dan D yang mungkin terjadi. Nitrogen terprotonasi dari senyawa aziridin mengontrol pembukaan cincin (retro ring-opening) untuk memproduksi intermediet zwitterion 8 dan 9. Pilihan rasional rute D didasarkan pada tingginya intermediet zwitterion 9 yang beresonansi overlap pada cincin aromatis. Produk dari “retro ring-opening”, diikuti hidrolisis dari 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (4 atau 5) adalah fenil-2-propanon (13).
HI
N OH
N
3
I
1
Pe na t
aa n
ke m ba li
reduksi
N
2
aziridin 5
4 N
NH
B
A
ring opening
7
6
D
C
9
8 N
N
HN HN
N
10
11
O
O
13
12 P-1-P
P-2-P
O
[Sumber : Cantrell, John, Johnson, Allen, 1988]
Gambar 4.2
Mekanisme reaksi efedrin (1) menghasilkan fenil-2-propanon (P-2-P)(13)
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
35
Dari beberapa sampel produksi ilegal, telah ditemukan keberadaan fenil-2propanon dalam jumlah besar sebagai hasil reaksi “self-condensation” (aldol) yang akan membentuk pengotor hidrokarbon. Senyawa pengotor ini adalah 1bensil-3-metilnaftalen (19) dan 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen (20). Kedua senyawa berkoporasi dengan dua molekul fenil-2-propanon sebagai hasil suatu kondensasi aldol yang diikuti dehidrasi. Gambar 4.3 mengilustrasikan interpretasi mekanisme pembentukan 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen (20). Konstruksi yang serupa kemungkinan terjadi pada senyawa 1-bensil-3-metilnaftalen (19). H O
O
14 13
O
ol ald
O
O
dehidrasi 16
15 H OH
H O
O
18 17
al d
ol
asi idr deh
20
[Sumber : Cantrell, John, Johnson, Allen, 1988]
Gambar 4.3. Rasionalisasi mekanisme pada kondensasi aldol dari 1,3-dimetil-2fenilnaftalen (20) dari fenil-2-propanon (13) dalam asam
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
36
Namun, dinyatakan bahwa mekanisme dalam Gambar 4.3 ini merupakan suatu spekulasi. Senyawa (19) dan (20) dapat terbentuk sebagai hasil tengah dari refluks reaksi terpisah fenil-2-propanol dengan HI. Senyawa tersebut juga dapat terjadi dari konjugasi cincin aromatis pada struktur senyawa (18). Lebih jauh, dari pembukaan cincin senyawa 9 yang terselimuti keton, hal ini berpartisipasi dalam reaksi kondensasi membentuk (19) dan (20). Skinner, H.F., (1990) dalam
penelitiannya tentang sintesis
metamfetamin via reduksi efedrin dengan HI/fosfor merah juga memberikan penjelasan yang sama tentang kondensasi aldol ini. Pada analisis jejak pengotor dengan kromatografi gas spektroskopi massa ini tidak dapat dilakukan pembedaan jejak pengotor pseudoefedrin dan efedrin. Diharapkan, perbedaan pengotor ini dapat ditemukan dalam analisis kromatografi cair kinerja tinggi dengan kolom kiral dan detektor Photo Diode Array.
4.2.2
Analisis kromatografi gas ionisasi nyala Analisis dengan kromatografi gas ionisasi nyala dilakukan untuk
menghitung
konsentrasi/kemurnian
sampel
metamfetamin
dan
sekaligus
melakukan validasi metodenya. Serial konsentrasi standar metamfetamin yang dibuat untuk membuat kurva regresi adalah 100 ppm, 90 ppm, 81 ppm, 69,66 ppm dan 59,91 ppm. Masing-masing konsentrasi larutan standar yang dibuat diinjeksikan 3 kali ke dalam instrumen (autosampler). Area dan nilai simpangan baku relatif (%RSD) masing-masing injeksi tertuang dalam Lampiran 1. Rerata area dari masing-masing konsentrasi standar metamfetamin ditunjukkan dalam Tabel 4.7. Tabel 4.7 Konsentrasi standar metamfetamin dan rerata area No.
Konsentrasi standar (ppm)
Rerata area (µV/s)
1.
59,91
153643
2.
69,66
173189
3.
81
203883
4.
90
235856
5.
100
267758
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
37
Simpangan baku relatif (%RSD) pengulangan injeksi pada masing-masing injeksi memberikan hasil keberterimaan di bawah 2%. Hal ini menunjukkan bahwa presisi (keberulangan) injeksi dari instrumen yang baik. Dari data pada Tabel 4.7 diperoleh persamaan kurva regresi Y = bx + a, dimana nilai b = 2888,98 sedangkan
a = - 24580,66 sehinggan diperoleh
persamaan kurva regresi Y = 2888,98x – 24580,66 dengan linieritas r = 0,9952. Gambar 4.4. menunjukkan kurva regresi linier standar metamfetamin dari data dimaksud.
Gambar 4.4 Kurva regresi standar metamfetamin
Masing-masing larutan sampel metamfetamin yang telah disiapkan diinjeksikan ke dalam kromatografi gas ionisasi nyala untuk memperoleh area, dan dihitung konsentrasi/kemurniannya menggunakan persamaan kurva regresi Y = 2888,98x - 24580,66. Konsentrasi/kemurnian sampel metamfetamin yang diukur memberikan hasil yang bervariasi dari kisaran 10% hingga 71% sebagaimana tertuang dalam
Tabel 4.8. Kisaran konsentrasi/kemurnian yang
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
38
variatif tersebut dapat disebabkan ketidaksempurnaan pemurnian sampel saat sintesis ataupun adanya pengenceran-pengenceran. Tabel 4.8. Konsentrasi/kemurnian sampel metamfetamin No
Area
Kons.
%Kemurnian
(µV/s)
(ppm)
(Base)
1.
206654,7
80,04
64,31%
2.
94879,0
41,35
3.
206585,7
4.
No
Area
Kons.
%Kemurnian
(µV/s)
(ppm)
(Base)
11.
201880,0
78,39
62,98%
33,22%
12.
53473,0
27,02
21,71%
80,02
64,29%
13.
11513,0
12,49
10,04%
119722,0
49,95
40,13%
14.
213381,3
82,37
66,18%
5.
224608,7
86,25
69,30%
15.
230854,0
88,42
71,04%
6.
182833,0
71,79
57,68%
16.
37118,0
21,36
17,16%
7.
194025,0
75,67
60,79%
17.
214841,0
82,87
66,58%
8.
223320,7
85,81
68,94%
18.
215578,0
83,13
66,79%
9.
196291,0
76,45
61,42%
19.
219301,0
84,42
67,83%
10.
206687,0
80,05
64,32%
20.
210963,0
81,53
65,50%
Terdapat beberapa anomali yang ditunjukkan dari data titik leleh, kelarutan dan data kemurnian sampel. Misalnya titik leleh pada sampel 6 yang mendekati titik leleh metamfetamin murni (173-180°C), memiliki kelarutan yang baik namun kemurniannya tidak sampai 60%, sementara pada sampel 18 yang memiliki titik leleh rendah (108-118°C), agak sukar larut dalam metanol dan kloroform namun menunjukkan kemurnian yang lebih tinggi (66,79%). Hal ini dapat dijelaskan karena kondisi sampel yang diuji sangat variatif, di mana sintesis/produksi metamfetamin ilegal dilakukan tanpa kaidah-kaidah yang benar dan proses pemurnian/rekristalisasinya tidak sempurna sehingga sampel-sampel tersebut masih tercampur dengan bahan-bahan awal dalam sintesis dan mempengaruhi titik leleh, kelarutan dan kemurniannya.
4.2.3
Analisis kromatografi cair kinerja tinggi Analisis menggunakan instrumen kromatografi cair kinerja tinggi
dimaksudkan
untuk
menentukan
kiralitas
sampel
metamfetamin.
Hasil
kromatografi cair kinerja tinggi dengan kolom Shiseido Chiral Drugs yang digunakan diperoleh identifikasi adanya d/l-metamfetamin (sampel 1), l-
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
39
metamfetamin (sampel 2), dan d-metamfetamin (sampel 3 s/d 20), sebagaimana tertuang dalam Tabel 4.9.
Tabel 4.9 Kiralitas sampel-sampel metamfetamin No. Sampel 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20
Kiralitas d/l-metamfetamin l-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin d-metamfetamin
d/l-metamfetamin (rasemat) disintesis dari bahan awal fenil-2-propanol. Merujuk pada “pengotor kunci” dan data jejak pengotor hasil kromatografi gas spektroskopi massa dari sampel 1 yang ditemukan jejak fenil-2-propanon, N-asetil metamfetamin, N-formilmetamfetamin dan 1-fenil-2-propanol maka disimpulkan sampel 1 disintesis dengan rute reduksi aminasi. Hal ini didasarkan pada keberadaan 1-fenil-2-propanol yang merupakan pengotor kunci pada rute sintesis reduksi aminasi (Kunalan, Daéid, Kerr, Buchanan, McPherson, 2009). Sampel dua menunjukkan hasil l-metamfetamin, dengan jejak pengotor fenil-2-propanon,
1,2-dimetil-3-fenilaziridin
(aziridin),
3,4-dimetil-5-
feniloksazolidin (oksazolidin), (pseudo)efedrin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1benzil-3-metilnaftalen
(naftalen).
Adanya
bahan
awal
(pseudo)efedrin
menunjukkan bahwa fenil-2-propanon yang didapatkan merupakan hasil
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
40
kondensasi aldol. Keberadaan aziridin dan naftalen mengarahkan pada rute sintesis
Nagai.
Khususnya,
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen
dan
1-benzil-3-
metilnaftalen merupakan pengotor kunci (characteristic unique impurities) dari rute Nagai (Ko, J.B., et al., 2007). Bentuk levo disebabkan bahan awal sintesis yang bersifat optis berupa d-efedrin atau l-pseudoefedrin. Namun pada penjejakan pengotor dengan kromatografi cair kinerja tinggi menggunakan Shiseido Chiral Drug Column dan kondisi instrumen yang digunakan ini tidak bisa memisahkan d-efedrin maupun l-pseudoefedrin. Makino, 2011, menjejak efedrin dan pseudoefedrin dalam metamfetamin dengan mengggunakan tipe kolom oktadesilsilil (ODS), CAPCELLPACK C18 MGII S-5, 250mm x 4,6mm x 5µm, Shiseido, dengan fase gerak asetonitril dan 50mM larutan kalium dihidrogen fosfat. Sampel 3 sampai dengan sampel 20 menunjukkan hasil d-metamfetamin. Hasil ini mengarahkan pada bahan baku sintesis yang digunakan, yaitu pseduoefedrin atau efedrin. Dari data-data penelitian berupa jejak pengotor dan kiralitas 20 sampel metamfetamin yang diteliti sebagaimana tertuang dalam Tabel 4.10 selanjutnya dilakukan analisis karakterisasi/profiling yang mengarahkan pada rute sintesis dari ke-20 sampel metamfetamin tersebut. Hasil analisis karakterisasi/profiling dari 20 sampel metamfetamin dalam penelitian diperkirakan satu sampel disintesis menggunakan rute reduksi aminasi (sampel 1), 8 sampel rute Nagai, dan 11 rute sampel Emde, dengan rincian sampel 1 disintesis dengan rute reduksi aminasi, sedangkan sampel 2, 3, 5, 7, 9, 11, 15 dan 19, disintesis dengan rute Nagai. Sementara sampel 4, 6, 8, 10, 12, 13, 14, 16, 17, 18 dan 20 disintesis dengan rute Emde.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
41
Tabel 4.10 Tabulasi analisis jejak pengotor, kiralitas, perkiraan rute sintesis dan kemurnian sampel metamfetamin No. 1.
2.
3. 4. 5.
6.
7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14.
15.
16. 17. 18. 19. 20.
Jejak pengotor
Kiralitas
Fenil-2-propanon, N-asetilmetamfetmain, N-formilmetamfetamin, 1-fenil-2-propanol Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, (pseu do)efedrin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, (pseudo) efedrin, 1-benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziridin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, (pseudo)efedrin, 1,3-dimetil-2-fenil naftalen, 1-benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziri din, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziri din, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, 1,3-di metil-2-fenilnaftalen, 1-benzil-3-metil naftalen Fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin Fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 3,4-dimetil-5-fenil oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazoli din Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen, 1-benzil-3metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin, 1benzil-3-metilnaftalen Fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenil aziridin, 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
% Kemurnian
d/lmetamfetamin
Rute sintesis Reduksi aminasi
l-metamfetamin
Nagai
33,22
d-metamfetamin
Nagai
64,29
d-metamfetamin
Emde
40,13
d-metamfetamin
Nagai
69,30
d-metamfetamin
Emde
57,68
d-metamfetamin
Nagai
60,79
d-metamfetamin
Emde
68,94
d-metamfetamin
Nagai
61,43
d-metamfetamin
Emde
64,32
d-metamfetamin
Nagai
62,98
d-metamfetamin
Emde
21,71
d-metamfetamin
Emde
10,04
d-metamfetamin
Emde
66,18
d-metamfetamin
Nagai
71,04
d-metamfetamin
Emde
17,16
d-metamfetamin
Emde
66,58
d-metamfetamin
Emde
66,79
d-metamfetamin
Nagai
67,82
d-metamfetamin
Emde
65,51
64,31
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
42
4.2.4
Validasi metode Validasi metode dilakukan dengan cara menimbang sebanyak 10 mg
sampel metamfetamin, dilarutkan dengan metanol dalam labu ukur 10 mL kemudian diencerkan hingga 10 kali dengan cara dipipet 0,5 mL, dimasukkan dalam labu ukur 5 mL dan ditambah metanol hingga tanda garis. Selanjutnya dinjeksikan (keberulangan 3 kali dengan autosampler) ke instrumen kromatografi gas ionisasi nyala, sebagaimana tertuang dalam Lampiran 2. Area yang diperoleh dimasukkan dalam persamaan kurva kalibrasi Y = 2888,98x - 24580,66. Dari perhitungan menggunakan persamaan kurva regresi didapatkan konsentrasi sampel 74,55 ppm. Selanjutnya dilakukan pengenceran secara serial sehingga didapatkan konsentrasi rendah, tengah dan tinggi untuk menentukan akurasi (kecermatan), presisi (keterulangan), batas deteksi dan batas kuantitasi. 4.2.4.1 Akurasi (kecermatan) dan presisi (keterulangan) Akurasi menunjukkan persen perolehan kembali (%recovery). Sementara presisi diukur sebagai simpangan baku (SD) atau simpangan baku relatif (%RSD). Pengujian akurasi dan presisi dilakukan pada 3 konsentrasi yaitu konsentrasi rendah, tengah dan tinggi yang diinjeksikan masing-masing 6 kali sebagaimana tertuang dalam Lampiran 3. Persen perolehan kembali (akurasi) pada konsentrasi rendah (52,48 ppm) berkisar pada 92,49% hingga 96,66% , sedangkan pada konsentrasi tengah (59,64 ppm) diperoleh kisaran 92,26% hingga 94,55%. Pada kedua konsentrasi ini, persen perolehan kembali masih berada pada batas keberterimaan. Sementara pada konsentrasi tinggi (74,55 ppm), persen perolehan kembali menunjukkan perolehan 115,06% hingga 117,81% di luar batas keberterimaan (UNODC, 2009). Sedangkan presisi yang diperoleh pada ketiga konsnetrasi yang dinyatakan dalam %RSD (simpangan baku relatif) menunjukkan nilai di bawah 2%, sehingga dapat disimpulkan presisi alat cukup baik (Harmita, 2006; UNODC, 2009). 4.2.4.2 Batas deteksi dan batas kuantitasi Penentuan batas deteksi dan batas kuantitasi dilakukan dengan cara pengenceran bertahap terhadap sampel metamfetamin (74,55 ppm) hingga
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
43
diperoleh nilai terendah yang masih berada pada batas presisi yang dapat diterima (%RSD < 15%) yaitu 0,75 ppm. Sedangkan batas kuantitasi yang diperoleh adalah 1,86 ppm dalam batas presisi (%RSD < 5%). Tabulasi batas deteksi dan batas kuantitasi terdapat dalam Lampiran 4. 4.3
Analisis hubungan antar sampel Analisis hubungan kedekatan sampel terkait kemungkinan kesamaan
sindikat kejahatan, dilakukan berdasarkan pada perkiraan kesamaan rute sintesis maka diperoleh informasi terdapat 3 sindikat sesuai rute sintesis. Namun dirujukkan pada jejak pengotor yang diperoleh maka terdapat 9 kelompok yang terdiri dari 1 kelompok dari rute reduksi aminasi, 3 kelompok dari rute Emde dan 5 kelompok dari rute Nagai. Rincian kelompok rute Emde adalah a. fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3fenilaziridin (aziridin) dan 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (oksazolidin) (sampel 6, 10, 12, 13, 14, 16, 17, 18, 20); b. fenil-2-propanon dan 3,4-dimetil-5feniloksazolidin (oksazolidin) (sampel 8); c. fenil-2-propanon dan 1,2-dimetil-3fenilaziridin (aziridin) (sampel 4).
Reduksi aminasi
Emde
a
1
6 10
12 13 14 16 17 18 20
Nagai
b
c
8
a
4
2
b
5
c
3
7
d
15
9
e
11
19
Gambar 4.5 Hubungan antar sampel metamfetamin Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
44
Sedangkan (pseudo)efedrin, feniloksazolidin
kelompok
rute
Nagai
1,2-dimetil-3-fenilaziridin (oksazolidin),
adalah
a)
fenil-2-propanon,
(aziridin),
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen
3,4-dimetil-5dan
1-benzil-3-
fenilnaftalen (sampel 2 dan 5); b. fenil-2-propanon, (pseudo)efedrin, 1,2-dimetil3-fenilaziridin (aziridin), 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (oksazolidin) dan 1benzil-3-fenilnaftalen (sampel 3); c. fenil-2-propanon, 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (aziridin), 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (oksazolidin), 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen dan 1-benzil-3-fenilnaftalen (sampel 7 dan 5); d. fenil-2-propanon, oksazolidin, 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen dan 1-benzil-3-fenilnaftalen (sampel 9 dan 11); e. fenil-2-propanon,
1,2-dimetil-3-fenilaziridin
(aziridin),
3,4-dimetil-5-
feniloksazolidin (oksazolidin) dan 1-benzil-3-fenilnaftalen (sampel 19). Adanya profil jejak pengotor pada beberapa sampel yang menunjukkan kesamaan, namun intensitas dan profil kromatogram pada masing-masing sampel menunjukkan perbedaan kemungkinan disebabkan kondisi sintesis saat produksi metamfetamin tersebut berbeda-beda, antara lain temperatur reaksi, waktu reaksi, skala reaksi, dan proporsi bahan kimia awal yang digunakan, serta tingkatan dan cara pemurnian produk intermediet dan produk akhir (Remberg & Stead, 1999). Sebaran konsentrasi/kemurnian sampel metamfetamin yang diukur memberikan hasil yang bervariasi dari kisaran 10% hingga 71%, di mana masingmasing sampel berbeda kadar/kemurniannya. Hal ini sangat mungkin disebabkan banyaknya bahan pengotor sisa sintesis akibat ketidaksempurnaan pemurnian ataupun faktor pengenceran dalam distribusi, terutama pada sindikat-sindikat kecil retailnya.
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
BAB 5 KESIMPULAN DAN SARAN
5.1 Kesimpulan Dari hasil analisis pengotor dan karaketrisasi sampel metametamin yang dilakukan berdasarkan data kromatografi maka dapat disimpulkan : 1. Perbedaan jejak pengotor, kemurnian, karakter fisik serta profil kromatogram dari masing-masing sampel metamfetamin menunjukkan keragaman yang kompleks sampel pada kasus peredaran dan produksi ilegal metamfetamin. 2. Ditemukan adanya 3 indikasi rute sintesis metamfetamin yang digunakan, yaitu reduksi aminasi (sampel 1), Nagai (sampel 2, 3, 5, 7, 9, 11, 15 dan 19), dan Emde (sampel 4, 6, 8, 10, 12, 13, 14, 16, 17, 18 dan 20).
5.2 Saran Rute sintesis kasus metamfetamin ilegal dapat diperkirakan dari analisis kromatografi. Untuk melengkapi analisis ini disarankan dilakukan analisis kiralitas jejak pengotor pseudoefedrin dan efedrin sebagai bahan baku metamfetamin ilegal serta analisis berdasarkan ratio isotop stabil dari atom karbon, nitrogen, dan hidrogen untuk mengelompokkan wilayah (negara-negara) yang memproduksi bahan tersebut.
45
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
DAFTAR REFERENSI
Allen, A.C, and Kiser, W.O. (1987). Methamphetamine from Ephedrine : I. Chloroephedrine and Aziridine, J. Forensic Sci., Vol. 32 No. 4, p. 953962. Badan Narkotika Nasional. (2010). Jurnal Data Pencegahan Penyalahgunaan Pemberantasan Peredaran Gelap Narkoba (P4GN), Jakarta Cantrell, T.S., John, B., Johnson, L., Allen, A.C. (1988). A Study of Impurities Found in Methamphetamine Synthesized From Ephedrine, Forensic Sci. Int., 39, 39-53, Science Direct, Elsevier. Harmita (2006). Buku Ajar Kromatografi, Departemen Farmasi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, Univ. Indonesia. K. Kuwayama, et al., (2008). Comparison and classification of methamphetamine seized in Japan and Thailand using gas chromatography with liquidliquid extraction and solid-phase microextraction, Forensic Sci. Int., 175, 85-92, Science Direct, Elsevier. Ko, B.J, Suh, S.,I., Suh, Y.J., Kyo In, M., Kim, S.H., (2007). The Impurity Characteristics of Methamphetamine Synthesized by Emde and Nagai Method, Forensic Sci Int., 170, 142-147, Science Direct, Elsevier. Koester, C.J., Andresen, B.D., Grant, P.M. (2002). Optimum Methamphetamine Profiling with Sample Preparation by Solid-Phase Microextraction, J. Forensic Sci., Vol. 47, No. 5. Kram, T.C., Krugel, A.V., (1977). The Identification of Impurities in Illicit Methamphetamine Exhibits by Gas Chromatography/Mass Spectrometry and Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy, J. Forensic Sci., Vol. 22, No.1. Kunalan, V., Daéid, N.N., Kerr, J.W., Buchanan, H.A.S., McPherson, A.R., (2009). Characterization of Route Specific Impurities Found in
46
Universitas Indonesia
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
47
Methamphetamine Synthezised by the Leuckart and Reductive Amination Methods, Anal. Chem., 81, 7342-7348. Maryadele, J.O.N., et al., ed. (2006). The Merck Index, An Encyclopedia of Chemicals, Drugs, and Biologicals, 14th. Ed., Merck & Co., Inc., Whitehouse Station, NY. Mehling, R., (2007). Methamphetamine, The Straight Facts, Chelsea House, New York, NY 10001. Moffat, A.C., Oselton, M.D., and Widdop, B. (2004). Clark’s Analysis of Drugs and Poison, 3rd Ed., Pharmaceutical Press, London. N. Kurashima, Y. Makino, S. Sekita, Y. Urano, T. Nagano, (2004). Determination of Origin of Ephedrin Used as Precursor for Illicit Methamphetamine by Carbon and Nitrogen Stable Isotope Ratio Analysis, Anal. Chem., Vol. 76, No. 14. Qing Yi, Evans, I., McCluskey, A., (2007). New impurity profiles of recent Australian imported ‘ice’ : Methamphetamine impurity profiling and identification od (pseudo)ephedrine and Leucart specific marker compounds, Forensic Sci. Int,. 169 (2007) 173-180, Science Direct, Elsevier. Remberg, B., Stead, A.H. (1999). Drugs characterization/impurity profiling, with special focus on methamphetamine : recent work of United Nations International Drugs Control Programme, Scientifics Section, UNDCP, Bulletin on Narcotics, vol. LI, Nos 1 and 2, Vienna. Skinner, H.F., (1990). Methamphetamine Synthesis Via Hydriodic Acid/Red Phosphorus Reduction of Ephedrine, Forensic Sci. Int., 48, 123-134, Science Direct, Elsevier. T. Sasaki, Y. Makino, (2006). Effective injection in pulsed splitless mode for impurity profiling of methamphertamine crystal by GC or GC/MS, Forensic Sci. Int., 160, 1-10, Science Direct, Elsevier. United
Nations International Drug Control Programme. (2001). Drug characterization/impurity profiling, Background and concepts, Manual
Universitas Indonesia Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
48
for use by national law enforcement authorithies and drug testing laboratories, Scientific Section, New York United Nations Office On Drugs and Crime. (1994). Rapid Testing Methods of Drugs of Abuse, Manual for use by National Law Enforcement and Narcotics Laboratory Personnel, New York. United Nations Office On Drugs and Crime. (1995). Recommended Methods for Detection and Assay of Heroin, Cannabinoids, Cocaine, Amphetamine, Methamphetamine and Ring-Substitute Amphetamine Derivates in Biological Specimens, Manual for use by National Laboratories, New York. United Nations Office On Drugs and Crime. (2006). Recommended Methods for The Identification and Analysis of Amphetamine, Methamphetamine and Their Ring_Substituted Analogues in Seized Materials, revised and updated, Manual for use by National Drug Testing Laboratory, New York. United Nations Office On Drugs and Crime. (2009). Guidance for the Validation of analytical Methodology and Calibration of Equipment used for Testing of Illicit Drugs in Seized Materials and Biological Specimens, New York. United Nations On Drugs and Crime, Characterization/Impurity Profiling of Methamfetamine Tablets In South-East Asia. Vogel, A., (1989). Textbook of Quantitative Chemical Analysis, 5th ed., revised by Jeffery, G.H., et al., Longmann Group, UK, England. Y. Makino, (2011). Simple HPLC method for detection od trace ephedrine and pseudoephedrine
in
highpurity
metahamphetamine,
Biomed.
Chromatogr., John Wiley & Sons, Ltd. Y. Makino, Y. Urano, T. Nagano, (2002). Impurity profiling of ephedrines in methamphetamine by high-performance liquid chromatography, J. Of Chrom. A., 947, 151-154, Science Direct, Elsevier.
Universitas Indonesia Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
49
Y. Makino, Y. Urano, T. Nagano, (2005). Investigation of the origin of ephedrine and methamphetamine by stable isotop ratio mass spectrometry : a japanese experience, Bull. On Narcotics, Vol. LVII, Nos 1 and 2, United Nation, New York Ying Qi, Evans, I.D., McCluskey, A. (2006). Australian Federal Police seizures of illicit crystaline methamphetamine (‘ice’) 1998-2002 : Impurity analysis, Forensic Sci. Int., 164, 201-210, Science Direct, Elsevier.
Universitas Indonesia Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
46
Lampiran 1. Tabel konsentrasi standar metamfetamin, area dan %RSD masingmasing pengulangan injeksi No.
1.
2.
3.
4.
5.
Pengulangan injeksi 1. 2. 3.
Konsentrasi standar (ppm)
59,91
1. 2. 3. 1. 2. 3. 1. 2. 3. 1. 2. 3.
Area (µV/s)
155615,932 154473,002 150838,760
Rerata area (µV/s)
% RSD
153643
1,624
173189
1,912
203883
1,217
235856
1,762
267758
0,388
176960,611 69,66
81
90
100
170755,931 171850,197 206376,595 203856,379 201414,875 235448,016 231919,003 240200,636 266734,692 267727,872 268811,302
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
47
Lampiran 2. Tabel area standar metamfetamin, rerata, SD dan % RSD pada validasi metode No.
Area (µV/s)
1.
192826,239
2.
192983,115
3.
186598,737
Rerata
190802,697
SD %RSD
3641,581 1,909
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
48 Lampiran 3. Tabel persen perolehan kembali dan simpangan baku relatif No.
1
Konsentrasi (ppm)
Rendah 52,48
Pengulangan injeksi
Area (µV/s)
Konsentrasi terukur (ppm)
% perolehan kembali
1 2 3 4 5 6
117709 121976 119856 117676 119419 115650 118714,333 2187,117 1,842 %RSD ﻛ2%
49,25 50,73 49,99 49,24 49,84 48,54 49,60 0,757 1,526
93,84 96,66 95,26 93,82 94,97 92,49
135717
55,49
93,03
138337
56,39
94,55
135793
55,51
93,08
135171
55,29
92,72
135144
55,29
92,70 92,26
Rerata SD % RSD Keberterimaan*)
Tengah
2 59,64
1 2 3 4 5 6
Rerata SD % RSD Keberterimaan*)
3
134381
55,02
135757,167
55,50
1361,752
0,471
1,003
0,849 ±20%
%RSDﻛ2%
Tinggi 74,55
Rerata SD % RSD Keberterimaan*)
±20%
1 2 3 4 5 6
224935,49
86,36
115,84
225620,47
86,61
116,16
229171,17
87,83
117,81
227478,53
87,25
117,03
223234,36
85,78
115,06 116,33
225468,22
86,73
225984,706
86,73
2071,221
0,717
0,916
0,827
%RSDﻛ2%
*) UNODC, 2009
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
±15%
49 Lampiran 4. Tabulasi batas deteksi dan batas kuantitasi sampel metamfetamin Batas deteksi terhadap sampel metamfetamin No.
1.
Konsentrasi (ppm)
Pengulangan injeksi
Area (µV/s)
Waktu Retensi
1.
1727.6
4,242
2.
2376.0
4,241
3.
2337.6
4,242
4.
1759.8
4,241
5.
1843.0
4,240
6.
1953.0
4,239
0,75
Rerata
1999.5
SD
287.786
%RSD
14.393
Keberterimaan*)
2.
%RSD < 15% 1.
1104.6
4,240
2.
1119.7
4,243
3.
1449.1
4,244
4.
1463.5
4,242
5.
1237.3
4,242
6.
926.8
4,239
0,37
Rerata
1216.833
SD
210.410
%RSD
17.292
Keberterimaan
%RSD <15%
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
50 (lanjutan) Batas kuantitasi sampel metamfetamin No
Konsentrasi (ppm)
1.
Pengulangan injeksi
Area (µV/s)
Waktu Retensi
1.
5069.4
4,239
2.
4811.3
4,238
3.
5304.3
4,232
4.
4803.5
4,239
5.
5226.0
4,240
6.
4995.0
4,240
1,86
Mean
5034.9
SD
207.567
%RSD
4.122
Keberterimaan*)
2.
%RSD <5% 1.
1727.6
4,242
2.
2376.0
4,241
3.
2337.6
4,242
4.
1759.8
4,241
5.
1843.0
4,240
6.
1953.0
4,239
0,75
Mean
1999.5
SD
287.786
%RSD
14.393
Keberterimaan*)
%RSD < 5%
*) UNODC, 2009
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
51
Lampiran 5. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 1 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 12,225 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (b); tR 15,033 Nasetilmetamfetamin (c); tR 14,650 N-formil metamfetamin (d) dan masing-masing spektrum massanya
3,4-dimetil-5-feniloksazolidin N-Formil Metamfetamin N-Asetill Metamfetamin
(a) % 100.0
tR 12,225 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
71
75.0 50.0 56 25.0
(b)
43
91 117
0.0 %
tR 15,033 N-Asetil Metamfetamin
210
100
253
200
292 315 300
355
393 400
58
100.0
75.0
50.0
100
25.0 42
(c)
0.0
117 134
77
50
100
191 150
200
224 250
274289 313 333348 373 392 300 350 400
%
tR 14,650 N-Formil Metamfetamin
86
100.0
75.0
50.0
58
25.0
91 42
0.0
(d)
50
118 147
100
177 204
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
251 250
295 312 335350 372 389 300
350
400
52
Lampiran 6. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 2 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 12,267 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (b); tR 12,292 (pseudo)efedrin (c); tR 20,192 1-benzil-3-metilnaftalen (d); tR 19,942 1,3-dimetil-2fenilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin Efedrin/Pseudoefedrine
1,3-dimetil-2fenilnaftalen 1-benzil-3metilnaftalen
(a) tR 12,267 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
% 100.0
71
75.0 50.0
(b)
56
25.0
43
91 117
0.0 %
230 257 200
326 300
395 400
58
100.0
tR 12,292 Efedrin/ Pseudoefedrin
175
100
75.0 50.0
(c) 25.0
77 91
42
117 148 176 207 100 200
0.0
%
tR 20,192 1-benzil-3metilnaftalen
100.0
253
306 300
341
399 400
232 217
75.0 50.0 25.0
(d) tR 19,942 1,3-dimetil-2fenilnaftalen
55 44
0.0
202 74
107
249
141
100
%
200
100.0
217 58
25.0
(e)
128 149 76 91108
45 0.0
400
232
75.0 50.0
303 325 356377397 300
256
192 330 288 313 351
178
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
300
395
400
53
Lampiran 7. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 3 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 12,267 3,4dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3-fenil aziridin
3,4-dimetil-5-feniloksazolidin e
(a) tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenil aziridin
% 100.0
146
75.0 50.0
(b)
6679
25.0 41 0.0
105 110
207 162 181
100
231
285 267 303
200
300
395 326 345 381
400
%
tR 12,267 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
100.0
71
75.0
e
50.0 56 25.0 43
(c)
0.0
91 117
176
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
231 256 200
296 320341 373 395 300 400
54
Lampiran 8. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 4 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,508 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,633 fenil-2propanon (c) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3-fenilaziridin
Fenil-2-propanon
(a) %
tR 8,508 1,2-dimetil-3fenilaziridin
100.0
146
75.0 50.0 25.0
(b)
105
42 51 77
0.0
117 162 189 221 100
260 284 310 336 369 398
200
300
400
%
tR 8,633 Fenil-2-propanon
100.0
43
75.0
91
50.0 25.0
(c)
0.0
65
134 81
119 100
158 189 219 241 273 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
317 344 371 395 300
400
55
Lampiran 9. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 5 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,500 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 12,258 3,4dimetil-5-feniloksazolidin (c); tR 12,333 efedrin/pseudoefedrin (d); tR 19,933 1,3dimetil-2-fenilnaftalen (e); tR 20,192 1-benzil-3-metilnaftalen (f) dan spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin
3,4-dimetil-5-feniloksazolidine Efedrin/ Pseudoefedrin
1,3-dimetil-2fenilnaftalen 1-benzil-3metilnaftalen
%
(a) 100.0 tR 8,500 1,2-dimetil-3fenilaziridin
146
75.0 50.0
105
25.0
(b)
42
77
207 200
100
100.0
tR 12,258 3,4-dimetil-5feniloksazolidin e e
117 148 171
0.0 %
253 282 305325 354 300
390 400
71
75.0 50.0
(c)
56
25.0 43
91 117 148 176 229 100 200
0.0
%
100.0
tR 12,333 Efedrin/Pseudoefedrin
270
311332 358 381 300 400
58
75.0 50.0 25.0
(d) tR 19,933 1,3-dimetil-2fenilnaftalen
0.0
44
77
105 132 158 189210 238 270 298 200 300
% 100.0
388 400
232
75.0
50.0
25.0
(e) 0.0 %
tR 20,192 1-benzil-3metilnaftalen
350
100
217
51
101 87 108
152
201 259
138 168
45 100
200
100.0
313
342 352
300
389 400
232 217
75.0
50.0
25.0
(f)
0.0
116 101 129 153 169 54 73 100
202 252 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
311334 300
370 397 400
56
Lampiran 10. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 6 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,525 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,258 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2-propanon
1,2-dimetil-3fenilaziridin
3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
(a) %
tR 8,525 1,2-dimetil-3fenilaziridin
100.0
146
75.0 105
50.0
25.0
(b)
42
0.0
65 77
117
50
100
207 227
156 173 150
200
255 250
291 300
331 353 350
383 400
%
tR 8,650 Fenil-2-propanon
100.0 43 75.0
91
50.0
25.0
134
65
(c)
77
0.0
119 154178 207 200
100
271 298 300
355 400
% 71
100.0
tR 12,258 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 117 100
148 150
182 210 234 279 297 320 351 370 395 200 250 300 350 400
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
57
Lampiran 11. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 7 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,267 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d); tR 19,942 1,3-dimetil-2fenilnaftalen (e); tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (f) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin
Fenil-2-propanon 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
1-benzil-3metilnaftalen
1,3-dimetil-2fenilnaftalen
(a) tR 8,550 1,2-dimetil-3fenilaziridin
% 146
100.0
75.0
44
50.0
(b)
25.0
105 111
161
55
0.0 %
172
50
100
150
203
219
243 261
200
250
288
312
342 353
300
390
350
400
43
100.0
tR 8,650 Fenil-2propanon
79
75.0
91
50.0
25.0
tR 12,267 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
77
0.0
(c)
134
65
%
50
119 100
152
186201 221
150
200
250 272 294 250
324 341 366
300
350
394 400
71
100.0
75.0
50.0 56 25.0 43
(d) tR 19,942 1,3-dimetil-2fenilnaftalen
0.0 %
91
50
100.0
330
376 392 350
400
232
75.0
50.0
115
(e) 25.0 0.0
%
50
217
102
42 64 78
tR 20,200 1-benzil-3metilnaftalen
117132 156 176 208 226 255 281 297 150 200 250 300
100
100
160
187202
255
271
290
150
200
250
100.0
380
326 334
146
300
400
350
400
232 217
75.0
50.0
(f) 25.0 0.0
44 63 82 95 50
115
100
134 152 171 150
202
200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
305 344 363 379 267 286 321 393 250
300
350
400
58
Lampiran 12. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 8 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,667 fenil-2-propanon (b); tR 12,242 3,4-dimetil-5feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2-propanon
3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
(a) %
tR 8,667 Fenil-2propanon
100.0
43
75.0
91
50.0
25.0
(b)
134
65
126 151 176 197
85
0.0
50
100
150
200
228
260 283 298 250
335 357 374 396
300
350
400
% 71
100.0
tR 12,242 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0
P2P
56 25.0 43
(c)
0.0
50
91 100
117 132148 150
176
209 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
237 250
279 300
317 344 377 394 350 400
59
Lampiran 13. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 9 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,633 fenil-2-propanon (b); tR 12,258 3,4-dimetil-5feniloksazolidin (c); tR 19,933 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen (d); tR 20,192 1-benzil-3metilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2propanon P2P
3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
1,3-dimetil-2fenilnaftalen
1-benzil-3metilnaftalen
P2P
P2P
(a) % 43
100.0
tR 8,633 Fenil-2propanon
75.0
91
50.0
P2P
25.0
77
0.0
50
%
118
191
151
100
150
391
265 283 302317 341 361
237
200
250
300
208 200
253 279 250 300
350
400
327 353 371 350
399 400
71
100.0
tR 12,258 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134
65
(b)
75.0
P2P
50.0 56 25.0
(c)
43 0.0
50
%
tR 19,933 1,3-dimetil-2fenilnaftalen P2P
91
117
148
100
179
150
100.0
232
75.0 217
50.0
202
25.0
(d)
65 41
0.0
115 128
82
50
100
158 181 150
258 200
250
295 300
326 343 367382 350
400
%
tR 20,192 1-benzil-3metilnaftalen P2P
100.0
232 217
75.0
50.0 202
25.0
(e) 0.0
44 50
75
115 101 100
155 141 174 150
263 281 302 327 355 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
250
300
350
389 400
60
Lampiran 14. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 10 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,658 fenil-2propanon (c); tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3fenilaziridin
Fenil-2propanon P2P
3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
(a) % 146
100.0
tR 8,550 1,2-dimetil-3fenilaziridin P2P
75.0 105
50.0
(b)
25.0
42
0.0
50
%
tR 8,658 Fenil-2propanon
89
55
100.0
100
150
227 248 265
200
250
299 300
322
352 340
380 395
350
400
43
75.0
P2P
160 174 196
129
91
50.0
(c)
134
25.0
0.0
65 74 50
113 100
168 191 150
220 244 260 277 293 313 334 358 378 395
200
250
300
350
400
% 71
100.0
tR 12,233 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0
P2P
56 25.0 43
(d)
0.0
50
91 100
117132148
178 202 220
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
61
Lampiran 15. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 11 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,650 fenil-2-propanon (b); tR 12,267 3,4-dimetil-5feniloksazolidin (c); tR 19,942 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen (d); tR 20,200 1-benzil-3metilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2propanon
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
1-benzil-3metilnaftalen
1,3-dimetil-2fenilnaftalen
(a)
% 100.0
tR 8,650 Fenil-2propanon
43
75.0
91
50.0
P2P 65
25.0
(b)
74
0.0
%
150
120
50
100
207 227 253 279 300
179
150
200
250
300
341
371 396
350
400
71
100.0
tR 12,267 3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
134
75.0
50.0 56 25.0
(c)
43 0.0 %
tR 19,942 1,3-dimetil-2fenilnaftalen
91
50
117132 148
100
178 202 220
150
255 272 299 318 335 351
200
250
100.0
300
350
382 400
232
75.0
P2P
217 44
50.0
25.0
108 53
(d)
0.0 %
50
81 100
150
200
100.0
tR 20,200 1-benzil-3metilnaftalen
251
202
135151
281
250
312
300
344 365 396 380 350
400
217232
75.0
P2P
50.0
25.0
(e)
0.0
202 40
51
50
84
108 101
100
154 132
185 150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
268 249 250
296 315 336 364 390 300
350
400
62
Lampiran 16. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 12 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3-fenilaziridin Fenil-2propanon
P2P
3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
P2P
(a)
% 146
100.0
tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin
75.0
P2P 105
50.0
25.0
(b)
42
89
55 0.0
50
160 174 196
129
100
150
227 248 265
200
250
299
322
300
380 395
352 340 350
400
341
371 396
% 100.0
tR 8,650 Fenil-2propanon
43
75.0
91
50.0
P2P 65
25.0
(c)
0.0
134
74 50
120 100
150
179
150
207 227 253 279 300 200
250
300
350
400
% 71
100.0
tR 12,233 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
P2P
50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 117132 148 100
178 202 220
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
63
Lampiran 17. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 13 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,633 fenil-2propanon (c); tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2-propanon 1,2-dimetil-3fenilaziridin
P2P
P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
(a)
% 146
100.0
tR 8,550 1,2-dimetil-3fenilaziridin
75.0 105
50.0 42
25.0
89
55
(b) 0.0 %
100
150
227 248 265
200
250
299 300
322
380 395
352 340 350
400
43
100.0
tR 8,633 Fenil-2-propanon
50
160 174 196
129
75.0
91
P2P 50.0
(c)
65
25.0
134
74
0.0
50
120 100
150
179
150
207 227 253 279 300 200
250
300
341
371 396
350
400
%
tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin e
71
100.0
75.0
P2P
50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 100
117132 148
178 202 220
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
255 272 250
299 318 335 351 300
350
382 400
64
Lampiran 18. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 14 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,567 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,217 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3-fenilaziridin Fenil-2-propanon P2P P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
(a) tR 8,567 1,2-dimetil-3-fenilaziridin
% 146
100.0
75.0
P2P
105
50.0 42
25.0
(b)0.0
50
%
100
75.0
P2P
160 174 196
129
150
227 248 265
200
250
299 300
322
352 340
380 395
350
400
43
100.0
tR 8,650 Fenil-2-propanon
89
55
91
50.0 65
25.0
134
74
(c)0.0
50
120 100
150 150
207 227 253 279 300
179
200
250
300
341
371 396
350
400
%
tR 12,217 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
71
100.0
75.0
P2P 50.0 56 25.0 43
(d) 0.0
50
91 117132 148 100
150
178 202 220 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
65
Lampiran 19. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 15 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,517 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,217 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3-fenilaziridin P2P Fenil-2-propanon P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
(a)
% 146
100.0
tR 8,517 1,2-dimetil-3-fenilaziridin
75.0
P2P
105
50.0 25.0 42
(b)
0.0 % 100.0
tR 8,650 Fenil-2propanon
89
55 50
160 174 196
129
100
150
227 248 265
200
250
299 300
322
352 340
380 395
350
400
43
75.0
91
50.0
P2P
65
25.0
(c)
0.0
134
74 50
120 100
150 150
179
207 227 253 279 300 200
250
300
341 350
371 396 400
% 71
100.0
tR 12,217 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0 56
P2P
25.0 43
(d)
0.0
50
91 100
117132148 150
178 202 220 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
255 272 250
299 318 335 351 300
350
382 400
66
Lampiran 20. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 16 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,517 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,625 fenil-2propanon (c); tR 12,2178 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3-fenilaziridin P2P
Fenil-2-propanon 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin
P2P
P2P
(a) %
tR 8,517 1,2-dimetil-3-fenilaziridin
146
100.0
75.0
P2P
105
50.0
25.0
(b)
42
89
55 0.0
50
160 174 196
129
100
150
227 248 265
200
250
299 300
322
352 340
380 395
350
400
% 100.0
tR 8,625 Fenil-2-propanon
43
75.0
91
P2P 50.0
(c)
65
25.0
0.0
134
74 50
120 100
150 179 207 227 253 279 300 150
200
250
300
341
371 396
350
400
% 71
100.0
tR 12,217 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0
P2P
56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 117132148 100
150
178 202 220 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
67
Lampiran 21. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 17 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,533 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,225 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin
Fenil-2-propanon
P2P
P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
(a)
% 146
100.0
tR 8,533 1,2-dimetil-3fenilaziridin
75.0 105
50.0
P2P
42
25.0
89
55
(b)
0.0
50
160 174 196
129
100
150
200
227 248 265 250
299
322
352 340
300
380 395
350
400
% 43
100.0
tR 8,650 Fenil-2propanon P2P
75.0
91
50.0 65
25.0
(c)
74
0.0
120
50
%
100
150 179 207 227 253 279 300 150
200
250
300
341
371 396
350
400
71
100.0
tR 12,225 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134
75.0
50.0
P2P
56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 100
117132148
178 202 220
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
68
Lampiran 22. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 18 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,525 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,250 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin
Fenil-2-propanon P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
(a)
% 146
100.0
tR 8,525 1,2-dimetil-3-fenilaziridin P2P
75.0 105
50.0 42
25.0
89
55
(b)
0.0
50
160 174 196
129
100
150
227 248 265
200
250
299
322
300
380 395
352 340 350
400
% 100.0
tR 8,650 Fenil-2-propanon
43
75.0
P2P
91
50.0
(c)
65
25.0
0.0
134
74 50
120 100
150 150
179
207 227 253 279 300 200
250
300
341
371 396
350
400
% 71
100.0
tR 12,250 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin P2P
75.0
50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
50
91 117132 148 100
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
178 202 220 200
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
69
Lampiran 23. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 19 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,550 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,650 fenil-2propanon (c); tR 12,283 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d); tR 20,185 1-benzil-3metilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3-fenilaziridin P2P
Fenil-2propanon P2P 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin 1-benzil-3metilnaftalen
P2P
P2P
(a) %
tR 8,550 1,2-dimetil-3fenilaziridin
146
100.0
75.0
P2P
105
50.0
25.0
42
(b) 0.0
%
tR 8,650 Fenil-2propanon
89
55 50
100
150
227 248 265
200
250
299
322
300
380 395
352 340 350
400
43
100.0
75.0
P2P
160 174 196
129
91
50.0
(c)
65
25.0
134
74
0.0
120
50
100
150
179
150
207 227 253 279 300 200
250
300
341
371 396
350
400
% 71
100.0
tR 12,283 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
75.0
50.0
P2P
56 25.0
(d)
43 0.0
91
50
117132148
100
178 202 220
150
200
255 272 299 318 335 351 250
300
350
382 400
% 100.0
tR 20,185 1-benzil-3metilnaftalen
232 217
75.0
P2P
50.0
(e)
25.0
0.0
45 52
50
87
108
100
136 124 151
202 250 173
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
261 200
250
296 299 300
346 336 350
366 394
400
70
Lampiran 24. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 20 ekstraksi dapar fosfat pH 10,5 – etil asetat (a); tR 8,533 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 12,167 3,4dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3fenilaziridin
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
P2P
(a) % 146
100.0
tR 8,533 1,2-dimetil-3fenilaziridin
75.0 105
50.0
25.0
(b)
42
89
55 0.0
50
129
100
160 174 196 150
227 248 265
200
250
299
322
300
352 340
380 395
350
400
%
tR 12,167 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
71
100.0
75.0
P2P
50.0 56 25.0
(c)
43 0.0
50
91 100
117132148
178 202 220
150
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
255 272 250
299 318 335 351 300
350
382 400
71
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
71
Lampiran 25. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 1 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 8,683 fenil-2-propanol (c); dan masingmasing spektrum massanya
Fenil-2-propnon
fenil-2-propanol
(a) tR 8,617: fenil-2propanon
% 43
100.0 75.0
91 50.0
(b)
65
25.0
134
74
0.0
111
157
100
219239
272 301 325
200
357
300
394 400
% 100.0
tR 8,683 : fenil-2-propanol
92
75.0
50.0
(c)
25.0
0.0
45 65 77
115136 100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
207 233 200
269
323 300
374 400
72
Lampiran 26. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 2 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,508 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,617 fenil-2-propanon (c); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d); tR 12,908 efedrin/pseudoefedrin (e); tR 19,933 1,2-dimetil-2-fenilnaftalen (f); tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (g) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin Fenil-2-propanon P2P P2P 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
1,3-dimetil-2fenilnaftalen Efedrin/pseudo efedrin
1-benzil-3metilnaftalen
P2P
P2P P2P
P2P
(a) % 100.0
tR 8,508 1,2-dimetil-3fenilaziridin
75.0
146 42 105
50.0
P2P
(b)
25.0
65 79
0.0
117
153 179199218 243
100
335 368
278
394
200
300
400
173 194
245264 296
341 370 395
%
tR 8,617 fenil-2-propanon
43
100.0 75.0
P2P
91 50.0 25.0
65 77
(c) 0.0
134 115 100
200
300
400
%
tR 12,208 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
71
100.0 75.0
P2P 50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
91 117
169
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
207 200
269
306 336 300
383 400
73
(lanjutan) %
tR 12,908: Efedrine/ Pseudoefedrin
58
100.0 75.0
P2P
50.0 25.0 77
42
(e) tR 19,933:
0.0
105 100
%
146 178 207 229 200
100.0
269
329 300
362 383 400
217
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen 75.0 40
P2P
232 258
58
50.0
136
68 89
276 163
0.0
100
312 343
295
187
25.0
(f)
205
200
370
358
300
394
400
% 100.0
tR 20,200: 1-benzil-3-metilnaftalen
232 217
75.0 50.0
P2P 25.0
(g)
42 76
0.0
115 151 108 141 100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
202 187 200
279 265
315 341 372 399 300
400
74
Lampiran 27. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 3 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,507 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,617 fenil-2-propanon (c); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d); tR 12,677 efedrin/pseudoefedrin (e);; tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (f) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin P2P
Fenil-2propanol P2P 3,4-dimetil-5feniloksazolidin Efedrin/pseudo efedrin P2P
1-benzil-3metilnaftalen P2P
(a) tR 8,507 1,2-dimetil-3fenilaziridin
% 100.0
146
75.0 105 50.0 25.0
(b) tR 8,617: Fenil-2propanol
42 51
162 191
%
100.0
100
232
332 353 380
265 288
200
300
400
43
75.0
P2P
117
77
0.0
91
50.0
(c)
65
25.0
134 74
0.0 %
tR 12,208 3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
170 188
127 100
100.0
328
225 256 281
200
365 390
300
400
71
75.0 50.0 56 25.0
(d)
43
91 117
0.0
%
tR 12,667: efedrin/pseu doefedrin
159 183
100
225 255 284 305 335
200
380
300
400
58
100.0 75.0 50.0
P2P
(e)
25.0 42
77
0.0
tR 20,200 : 1-benzil-3metilnaftalen
105
146
100
201 223 200
254
309 300
341362
398 400
% 100.0
232
75.0
P2P
(f)
50.0 25.0 0.0
202
52 45
99 71
121 150 176
273 252
137
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
323
300
394 358 369
400
75
Lampiran 28. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 4 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b) dan spektrum massanya
Fenil-2propanol P2P
(a) %
tR 8,617: Fenil-2propanol
100.0
43
75.0
P2P
91
50.0 25.0
(b)
77 0.0
134
65
118 100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
172
209 232 258 282 307 200
300
378 399 400
76
Lampiran 29. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 5 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (c); tR 19,933 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen (d); tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2propanol
1,3-dimetil-2fenilnaftalen
P2P
1-benzil-3metilnaftalen
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) % 43
100.0
tR 8,617 : Fenil-2propanol
75.0
91
50.0
P2P
25.0
(b)
65 77
0.0
119
164 189 220 246
100
% 100.0
tR 12,208 : 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134 323 355
287
200
399
300
400
71
75.0 50.0
P2P
25.0 41 56
(c)
91
0.0
169 200 231 253 275 305
132
100
%
200
100.0
tR 19,933 : 1,3-dimetil-2fenilnaftalen
391
347
300
400
217
75.0 40
232 258
58
50.0
P2P
136
68 89
276
0.0
100
312 343
295
187
25.0
(d)
205
163
200
300
370
358
394
400
%
tR 20,200 : 1-benzil-3metilnaftalen
100.0
232
75.0
P2P
50.0 25.0
(e)
0.0
202 40 51
115 87 107
152 176
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
250 200
295 323 350 371 391 300
400
77
Lampiran 30. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 6 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya
Fenil-2propanol P2P
3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
(a) % 43
100.0
tR 8,617 : Fenil-2propanol
75.0
91
50.0
P2P 25.0
(b)
77
0.0
119
170 191 215 239 270 293 317
100
%
tR 12,208: 3,4-dimetil-5feniloksazolid in
134
65
200
354
300
393 400
71
100.0 75.0 50.0
P2P
56 25.0 43
(c)
0.0
91
115
168
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
216 239 260 293 320340 200
300
394 400
78
Lampiran 31. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 7 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,508 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,617 fenil-2-propanon (c); tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin P2P
Fenil-2propanon P2P 1-benzil-3-metilnaftalen
(a)
% 100.0
tR 8,508: 1,2-dimetil-3fenilaziridin
146
75.0 105 50.0
P2P
25.0
(b)
77 46
63
173 200 230 262 155
117
0.0
100
200
295315
351
385
300
400
%
tR 8,617: fenil-2propanon
100.0
43
75.0 91
P2P
50.0 65
25.0
(c)
134
77
0.0
119
158
100
230 253
194 200
299
356 378
300
400
%
tR 20,208 : 1-benzil-3metil naftalen P2P
100.0
232 217
75.0 58 343 367 377
50.0 25.0 0.0
(d)
81
96
143
202
124
43 100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
283
200
322 396
250 300
400
79
Lampiran 32. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 8 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya
Fenil-2propanon
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) %
tR 8,617 : fenil-2propanol P2P
100.0
43
75.0 91 50.0 25.0
65 73
0.0
134 117 149 100
(b)
208 196 223
321 333 354
277
200
300
390 400
% 100.0
tR 12,208: 3,4-dimetil-5feniloksazolidi n P2P
71
75.0 50.0 25.0
56 43
(c)
0.0
91 117 132 100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
199 200
239
284 300
327
363
398 400
80
Lampiran 33. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 9 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b) dan spektrum massanya Fenil-2propanol P2P
(a) %
tR 8,617 : fenil-2propanol P2P
100.0
43
75.0
91
50.0 25.0
(b)
0.0
134
65 78 108
153 178
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
233 200
271 295 316 349369 390 300
400
81
Lampiran 34. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 10 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 12,242 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya
Fenil-2propanol P2P
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) %
tR 8,617 : Fenil-2propanol P2P
100.0
43
75.0 91 50.0 25.0
(b)
65
134 83 110
0.0
156 179 202 226 255
100
200
295 322 300
377 400
%
tR 12,242 : 3,4dimetil-5feniloksazolidin P2P
100.0
71
75.0 50.0 56 25.0 43
(c)
0.0
91 117
160 191 218
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
270
314333 300
373 394 400
82
Lampiran 35. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 11 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b) dan spektrum massanya
Fenil-2propanol
(a) % 100.0 43
tR 8,617 : Fenil-2propanol P2P
75.0
91
50.0 25.0
(b)
0.0
65 72
111
134
160
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
186 214 246 282 200
300
334 358
400 400
83
Lampiran 36. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 12 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,618 fenil-2-propanon (b) dan spektrum massanya
Fenil-2propanol
(a) %
tR 8,618 : Fenil-2propanol P2P
100.0
43
75.0 91 50.0 25.0
(b)
134
65 85 111
0.0
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
195 221 250 284 200
300
358 346 368388 400
84
Lampiran 37. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 13 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b) dan spektrum massanya
Fenil-2propanol
(a) %
tR 8,617 : Fenil-2propanol P2P
100.0 43 75.0 91
50.0 25.0
(b)
0.0
65
134 79
119
180 207 233
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
296 300
346 378 400
85
Lampiran 38. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 14 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,617 fenil-2-propanon (b); tR 12,208 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (c) dan masing-masing spektrum massanya Fenil-2propanol
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) tR 8,617 : Fenil-2propanol P2P
% 100.0 43 75.0
91
50.0 65
25.0
77
(b) tR 12,208 : 3,4dimetil-5feniloksazolidin P2P
0.0
134 119
197 230 260 281
155
100
200
329 360 388
300
400
% 100.0
71
75.0 50.0 56 25.0 43
(c)
0.0
91 117 100
187207 231 258 200
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
300 331 300
368 389 400
86
Lampiran 39. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 15 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,492 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,633 fenil-2-propanon (c); tR 19,942 1,3-dimetill-2-fenilnaftalen (d); tR 20,200 1-benzil-3-metilnaftalen (e) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3-fenilaziridin Fenil-2propanon
1,3-dimetil-2fenilnaftalen 1-benzil-3-metilnaftalen
(a) %
tR 8,492 : 1,2dimetil-3fenilaziridin P2P
100.0
146
75.0 105
50.0 25.0
(b)
42 54
0.0
169 162
100
%
337 207 230 257 283 304 200
379
300
400
43
100.0
tR 8,633 : Fenil-2propanol P2P
117
87
75.0
91
50.0 25.0
(c) tR 19,942 : 1,3-dimetil-2fenilnaftalen P2P
0.0
65
134
77
119
159
100
%
195
243 267
200
100.0
302
358
394
300
400
217 232
75.0 50.0 25.0
(d) tR 20,200: 1-benzil-3metilnaftalen P2P
202 41
128 160 169
66 89
0.0
100
%
268 200
100.0
109 58
0.0
300
400
217
50.0
(e)
343 371
232
75.0
25.0
304
49
83
121
199 143 163 187
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
299 328 357 283 256
386 392
300
400
87
Lampiran 40. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 16 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,483 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,600 fenil-2-propanon (c); tR 12,192 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin
Fenil-2propanon
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a)
%
100.0
tR 8,483 : 1,2-dimetil-3fenilaziridin P2P
146
75.0 105
50.0 25.0
43
%
100.0
170 156
(b) 0.0 tR 8,600 : fenil-2propanon P2P
119
63 82
100
201 223 200
259 299 279
349368 399
300
400
43
75.0 91 50.0 25.0
(c)
0.0
%
tR 12,192 : 3,4-dimetil-5feniloksazolidin P2P
134 125
65 78
173
100
100.0
209 232 200
255 284 300
336356
393 400
71
75.0 50.0 25.0
(d)
0.0
56 43
91
117 128
173 193
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
248 274 308 300
346 372 396 400
88
Lampiran 41. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 17 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,483 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,600 fenil-2-propanon (c); tR 12,192 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya
1,2-dimetil-3fenilaziridin Fenil-2propanon 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a)
%
100.0
tR 8,483 : 1,2-dimetil-3fenilaziridin P2P
146
75.0
105
50.0 25.0
42
100.0
160
100
%
tR 8,608 : Fenil-2propanon
117
6579
(b) 0.0
197 227 258 200
296 321
374 395
300
400
43
75.0 91 50.0 25.0
65
tR 12,192: 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
124
78
0.0
(c)
134 171
100
%
100.0
211
245
200
289 300
326
372 400
71
75.0 50.0 25.0
56 43
0.0
(d)
91 117
176 199220 243
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
288 311 339 366 395 300 400
89
Lampiran 42. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 18 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,492 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,617 fenil-2-propanon (c); tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin Fenil-2propanon
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) % 100.0
tR 8,492 : 1,2-dimetil-3fenilaziridin
146
75.0 105 50.0
(b)
42
25.0
77
51
117 151 176
0.0
100
%
221 245 274 200
322 346 300
383 400
100.0 43
tR 8,617 : Fenil-2propanon
75.0
91
50.0 65
25.0
(c)
77
0.0
119
164 189 219
100
%
tR 12,233: 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134
100.0
294 318
200
300
356 378 400
71
75.0 50.0 25.0
(d)
56 43
0.0
91 116
159 190
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
249
285 300
325
398 400
90
Lampiran 43. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 19 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,492 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,617 fenil-2-propanon (c); tR 12,233 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin Fenil-2propanol
3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) tR 8,492 : 1,2-dimetil-3fenilaziridin
% 100.0
146
75.0 105
50.0 25.0
(b) tR 8,608 : Fenil-2propanon
117
77
42
150 177
0.0
100
%
224 200
288 320 346 373 396 251 276 300
400
43
100.0 75.0
91
50.0
(c)
25.0
77
0.0
119 151 185 100
%
tR 12,242 : 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134
65
100.0
200
227
290 300
327
366 400 400
71
75.0 50.0 56 25.0
(d)
43 0.0
91 117
173
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
235 262 296 318337 366 396 300 400
91
Lampiran 44. Kromatogram jejak pengotor pada sampel 20 ekstraksi langsung etil asetat (a); tR 8,492 1,2-dimetil-3-fenilaziridin (b); tR 8,608 fenil-2-propanon (c); tR 12,200 3,4-dimetil-5-feniloksazolidin (d) dan masing-masing spektrum massanya 1,2-dimetil-3fenilaziridin Fenil-2propanon 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
(a) tR 8,492 : 1,2-dimetil-3fenilaziridin
%
100.0
146
75.0 105
50.0 25.0
60 51 77
0.0
117 151 181 207 193 100
337
237 267 298
200
359
350
300
390 398 400
%
tR 8,608 : fenil-2propanon
100.0
43
75.0
91
50.0 65
25.0
77
0.0 %
tR 12,200 : 3,4-dimetil-5feniloksazolidin
134 119 150 179 100
100.0
224 249 280 200
325
300
362 387 400
71
75.0 50.0 25.0 0.0
56 43
91 117
154 183
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
232252
297 300
345 371 395 400
92
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
92
Lampiran 45. metamfetamin
Kromatogram KG ionisasi nyala beberapa standar*)
tR 8,492 Aziridin
pengotor
tR 13,258 kloro(pseudo)efedrin
2-fenillalanin
Kromatogram standar 1,2-dimetil-3-fenilaziridin, kloro (pseudo)efedrin dan 2-fenilalanin
tR 19,933 1,3-dimetil-2-fenilnaftalen
1,3-dimetil-2-fenillnaftalen
tR 20,208 1-benzil-3-metilnaftalen
1-benzil-3-metilnaftalen *) standar diperoleh dari hasil sintesis Dr. Yukiko Makino, Graduate School of Pharmaceutical, Universtitas Tokyo
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
93 (lanjutan)
tR 20,650 3-benzil-1-metilnaftalene
3-benzil-1-metilnaftalen
tR 19,933 1,3-dimetil-2-fenillnaftalen
tR 20,650 3-benzil-1-metilnaftalen
tR 20,208 1-benzil-3-metilnaftalen
Campuran 3 standar Naftalen % 100.0
232
75.0
217
50.0
1,3-dimetil-2-fenilnaftalen
202 25.0
108 63
0.0
89
152 178
100
253 200
311 300
348
381 400
% 100.0
217
75.0
1-benzil-3-metilnaftalen
50.0 202 25.0
44 57 71
0.0
115 101 155 128
178
100
%
200
100.0
253 281 310 341 371 396 300 400
217
75.0
3-benzil-1-metilnaftalen
50.0 202 25.0 0.0
40
65
115 101 141
178
100
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
200
274 295 300
352
397 400
98
Lampiran 42. Kromatogram KCKT standar d/l-metamfetamin
D-Methamphetamina/8.625/119468
mAU Ch1-210nm,4nm (1.00)
L-Methamphetamina/11.419/111413
Datafile Name:Standard d,l metamfetamina_0.lcd Sample Name:Standard d,l metamfetamina Sample ID:STD-0001 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
mAU
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
mAU
30 8.583/ 1.00
20.0
11.380/ 1.00
17.5
25
UV Spektrum d-metamfetamina
20
UV Spektrum l-metamfetamina
15.0 12.5
15
10.0
200
250
300
350
400
450
500
550
650
700
750
nm
200
250
300
350
400
450
Standar d/l- metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
500
550
655
592
600
629
556
485
387
0.0
327
655
600
701
556
485 495
0
447
278
2.5
277
5.0
200 207
5
200 208
7.5
10
650
700
750
nm
99
Lampiran 43. Kromatogram KCKT (a) sampel 1 : d/l-metamfetamin; (b) sampel 2 : lmetamfetamin Datafile Name:Sampel 1_2.lcd Sample Name:Sampel 1 Sample ID:SS5K
5.5 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5
l-metamfetamina/11.564/77113
d- Metamfetamina/8.782/172786
mAU Ch1-210nm,4nm (1.00)
2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 -1.5 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
12.5 11.475/ 1.00
8.772/ 1.00
40
11.0 mAU
mAU
35
10.0
30
UV Spektrum d-metamfetamina
25
UV Spektrum l-metamfetamina
7.5
20 5.0
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
200
nm
250
300
350
400
450
500
550
600
658
631
398 407
255
292
223
0.0
698 709
658 668
621
564
0
486
457
5
486
2.5
201 206
10
201 207
15
650
700
750
nm
(a) Sampel 1 : d/l-metamfetamin Datafile Name:Sampel 2_5.lcd Sample Name:Sampel 2 Sample ID:42Ab
l-metamfetamina/11.558/271562
mAU 6.0 Ch1-210nm,4nm (1.00) 5.5 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 4.0
5.0 mAU
40 11.659/ 1.00
6.0
7.0
8.0
35
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
UV Spektrum l-metamfetamina
30 25 20 15
200
250
300
350
400
450
500
550
600
687
626
580
0
545
5
487
10
292
3.0
271
2.0
223
1.0
201 207
0.0
650
700
750
(b) Sampel 2 : l-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
16.0
17.0
18.0
19.0
min
100
Lampiran 44. Kromatogram KCKT sampel 3 – 20 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 3_7.lcd Sample Name:Sampel 3 Sample ID:57A1-2
d-metamfetamina/8.751/249827
mAU Ch1-210nm ,4nm (1.00) 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 -1 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
mAU
8.725/ 1.00
60
50
UV Spektrum d-metamfetamina
40
30
200
250
300
350
400
450
500
550
600
694
620
583
485
469
427
0
257
231
10
201 206
20
650
700
750
nm
Sampel 3 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 4_9.lcd Sample Name:Sampel 4 Sample ID:178B1-2 mAU 4.0 Ch1-210nm ,4nm (1.00)
d-metamfetamina/8.874/21464
3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 -1.5 -2.0 4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
6 8.915/ 1.00
5
4
UV Spektrum d-metamfetamina
3
0
-1
200
250
300
350
400
450
500
658 668
1
550
600
650
696 712
2
552
3.0
507
2.0
460 463
1.0
202 207
0.0
700
750
Sampel 4 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
17.0
18.0
19.0
min
101 Datafile Name:Sampel 5_6.lcd Sample Name:Sampel 5 Sample ID:195Ba
(lanjutan)
d-metamfetamina/8.722/362744
mAU 14 Ch1-210nm,4nm (1.00) 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 -1 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
90 8.772/ 1.00 80
UV Spektrum d-metamfetamina
70 60 50 40
20
201 206
30
200
250
300
350
400
450
500
550
600
750
624 638
584
529
0
476 484
258
10
650
700
750
nm
Sampel 5 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 6_8.lcd Sample Name:Sampel 6 Sample ID:345B1-2
d-metamfetamina/8.790/249872
mAU Ch1-210nm,4nm (1.00) 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 -1 4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
8.725/ 1.00
55
UV Spektrum d-metamfetamina
50 45 40 35 30 25 20
791
0
768
5
706
10
725
15
657
3.0
466 471
2.0
367
1.0
201 206
0.0
-5 200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
Sampel 6 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
16.0
17.0
18.0
19.0
min
102 Datafile Name:Sampel 7_1.lcd Sample Name:Sampel 7 Sample ID:21C
(lanjutan)
d-metamfetamina/8.896/83676
mAU Ch1-210nm,4nm (1.00) 3.0
2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0.0
-0.5
-1.0 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
16.0
17.0
18.0
19.0
min
mAU
8.915/ 1.00
22.5
UV Spektrum d-metamfetamina
20.0 17.5 15.0 12.5 10.0
5.0
200 206
7.5
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
761
714
642
384
228
0.0 -2.5
484 493 496
2.5
750
nm
Sampel 7 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 8_11.lcd Sample Name:Sampel 8 Sample ID:SS11C
d-metamfetamina/8.887/112523
mAU 4.5 Ch1-210nm,4nm (1.00) 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
8.910/ 1.00
30
UV Spektrum d-metamfetamina
25
20
15
10
200
250
300
350
400
450
647 658
507
0
483
5
360 363
3.0
336
2.0
258
1.0
201 206
0.0
500
550
600
650
700
750
Sampel 8 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
103
(lanjutan) Datafile Name:Sampel 9_1.lcd Sample Name:Sampel 9 Sample ID:19Ca
d-metamfetamina/8.727/201458
mAU 5.5 Ch1-210nm ,4nm (1.00) 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 -1.5 -2.0 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0 mAU
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
8.720/ 1.00
40
UV Spektrum d-metamfetamina
35 30 25 20
200
250
300
350
400
450
500
550
614
638 650 658
0
568 582
486
5
274
10
201 207
15
600
650
700
750
nm
Sampel 9 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 10_14.lcd Sample Name:Sampel 10 Sample ID:264C
d-metamfetamina/8.581/327486
mAU Ch1-210nm ,4nm (1.00) 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 -1 4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
mAU
8.626/ 1.00
60
UV Spektrum d-metamfetamina
50
40
30
20
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
751
658
630
515
0
551
10
486
3.0
462
2.0
398
1.0
201 206
0.0
700
750
nm
Sampel 10 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
104
(lanjutan)
Datafile Name:Sampel 11_1.lcd Sample Name:Sampel 11 Sample ID:294C
d-metamfetamina/8.831/167678
mAU Ch1-210nm ,4nm (1.00) 5.5 5.0 4.5 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
8.848/ 1.00
35
UV Spektrum d-metamfetamina
30 25 20
10
201 206
15
200
250
300
350
400
500
550
600
697
657
487
450
513
0
457
241
418 425
5
650
700
750
nm
Sampel 11 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 12_13.lcd Sample Name:Sampel 12 Sample ID:271C
d-metamfetamina/10.335/318083
15.0
mAU Ch1-210nm4nm (1.00)
12.5
10.0
7.5
5.0
2.5
0.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
mAU
50 10.290/ 1.00 45 40
UV Spektrum d-metamfetamina
35 30 25 20 15
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
785
733
0
704
5
637
10
580
4.0
531
3.0
509
2.0
394
1.0
200 206
0.0
750
Sampel 12 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
16.0
17.0
18.0
19.0
min
105
(lanjutan) Datafile Name:Sampel 13_15.lcd Sample Name:Sampel 13 Sample ID:273C
d-metamfetamina/10.297/221265
mAU Ch1-210nm 4nm (1.00) 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 -1 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
16.0
17.0
18.0
19.0
min
mAU
40 10.290/ 1.00 35
UV Spektrum d-metamfetamina
30 25 20
10
201 206
15
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
731
687 690
655
0
520
258
473
5
700
750
nm
Sampel 13 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 14_23.lcd Sample Name:Sampel 14 Sample ID:269A mAU Ch1-210nm ,4nm (1.00)
d-metamfetamina/8.700/583803
15.0
12.5
10.0
7.5
5.0
2.5
0.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
mAU
100 8.772/ 1.00 90
UV Spektrum d-metamfetamina
80 70 60 50 40 30
200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
769
694 706
0
638
10
527
20
485
3.0
375
2.0
255
1.0
201 206
0.0
750
Sampel 14 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
106
(lanjutan) Datafile Name:Sampel 15_2.lcd Sample Name:Sampel 15 Sample ID:127Ha mAU Ch1-210nm4nm (1.00)
9 8
d-metamfetamina/10.183/128380
/0.199/162302
10
7 6 5 4 3 2 1 0 -1 -2 -3 -4 -5 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0 mAU
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
16.0
17.0
18.0
19.0
min
10.148/ 1.00
22.5
UV Spektrum d-metamfetamina
20.0 17.5 15.0 12.5 10.0
721
655
485
415
0.0
432
332 335
2.5
226
5.0
201 206
7.5
-2.5 200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
nm
Sampel 15 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 16_9.lcd Sample Name:Sampel 16 Sample ID:55 Hb1-6 mAU Ch1-210nm4nm (1.00) 25.0
d-metamfetamina/10.291/157880
22.5 20.0 17.5 15.0 12.5 10.0 7.5 5.0 2.5 0.0 -2.5 -5.0 -7.5 -10.0 4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
mAU
25.0
10.379/ 1.00
22.5
UV Spektrum d-metamfetamina
20.0 17.5 15.0 12.5 10.0 7.5
2.5 0.0
761 772
5.0
644 655
3.0
499 511
2.0
200 206
1.0
228
0.0
-2.5 200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
Sampel 16 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
107 Datafile Name:Sampel 17_11.lcd Sample Name:Sampel 17 Sample ID:10I1-10
(lanjutan)
mAU Ch1-210nm 4nm (1.00)
d-metamfetamina/10.095/237421
15.0
12.5
10.0
7.5
5.0
2.5
0.0
-2.5
0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
min
16.0
17.0
18.0
19.0
min
mAU
40
10.047/ 1.00
35
UV Spektrum d-metamfetamina
30 25 20
200
250
300
350
400
450
655
513
470
426
0
393 402
5
355 358
10
200 207
15
500
550
600
650
700
750
nm
Sampel 17 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 18_13.lcd Sample Name:Sampel 18 Sample ID:68I1-2 mAU Ch1-210nm4nm (1.00) 9 8
d-metamfetamina/10.143/67173
7 6 5 4 3 2 1 0 -1 4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
mAU
10 10.095/ 1.00 9
UV Spektrum d-metamfetamina
8 7 6 5 4 3
703
629
0
521
1
485 489
2
469
3.0
393
2.0
292
1.0
201 205
0.0
-1 200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
Sampel 18 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm
108
(lanjutan)
Datafile Name:Sampel 19_12.lcd Sample Name:Sampel 19 m AU 32.5 Ch1-210nm4nm (1.00) 30.0 27.5
d-metamfetamina/10.255/283168
25.0 22.5 20.0 17.5 15.0 12.5 10.0 7.5 5.0 2.5 0.0 -2.5 0.0
1.0
2.0
3.0
4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
16.0
17.0
18.0
19.0
m in
16.0
17.0
18.0
19.0
m in
mAU
55 10.195/ 1.00 50 45
UV Spektrum d-metamfetamina
40 35 30 25 20
200
250
300
350
400
450
500
550
600
659
688
643
453
399
0 -5
336
243
5
269
10
202 205
15
650
700
750
nm
Sampel 19 : d-metamfetamin Datafile Name:Sampel 20_14.lcd Sample Name:Sampel 20 m AU Ch1-210nm4nm (1.00) 4.5 4.0 3.5
d-metamfetamina/10.315/14882
/19.842/12646
3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 -0.5 -1.0 4.0
5.0
6.0
7.0
8.0
9.0
10.0
11.0
12.0
13.0
14.0
15.0
mAU
10.290/ 1.00
3.0
UV Spektrum d-metamfetamina
2.5 2.0 1.5 1.0
763
623
645 658
0.0
541
0.5 505
3.0
474
2.0
396 407
1.0
228
0.0
-0.5 200
250
300
350
400
450
500
550
600
650
700
750
Sampel 20 : d-metamfetamin
Analisis pengotor..., Kuswardani, FMIPA UI, 2012
nm