UJI INOKULASI Ganoderma spp. TERHADAP TANAMAN SENGON (Paraserianthes falcataria) SEBAGAI TANAMAN PENAUNG KAKAO (Theobroma cacao)

i

UJI INOKULASI Ganoderma spp. TERHADAP TANAMAN SENGON (Paraserianthes falcataria) SEBAGAI TANAMAN PENAUNG KAKAO (Theobroma cacao)

PERMANA ZAINAL E44052097

DEPARTEMEN SILVIKULTUR FAKULTAS KEHUTANAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2011

iv

RINGKASAN Permana Zainal. E44052097. Uji Inokulasi Ganoderma spp. Terhadap Tanaman Sengon (Paraserianthes falcataria) Sebagai Tanaman Penaung Kakao (Theobroma cacao). Dibawah Bimbingan Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M.Si dan Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M.Sc. Ganoderma spp. adalah jamur penyebab penyakit busuk akar yang menyerang tanaman sengon (Paraserianthes falcataria) dan kakao (Theobroma cacao). Penanganan dari penyakit busuk akar relatif sulit dilakukan, sehingga perlu dikembangkan teknik pengendalian Ganoderma spp. yang lebih aplikatif. Salah satu upaya untuk mengembangkan teknik pengendalian penyakit tersebut adalah dengan melakukan uji inokulasi. Pada umumnya Ganoderma spp. ditemukan di lapangan pada tanaman yang sudah dewasa, namun untuk efektifitas waktu dan materi maka perlu dikembangkan teknik inokulasi pada tanaman tingkat semai. Tujuan dari penelitian ini adalah menemukan teknik inokulasi Ganoderma spp. yang efektif terhadap bibit tanaman sengon usia semai. Bahan yang digunakan dalam penelitian ini antara lain, isolat Ganoderma spp. sengon (Sp.3), isolat Ganoderma spp. kakao (Sp.4), bibit sengon, kayu, dan PDA. Alat yang digunakan antara lain toples transparan berukuran diameter 12~15 cm dan tinggi 13~16 cm, cawan Petri, alat isolasi aseptik, autoclave, sungkup bambu dan rumah kaca. Metode yang digunakan dalam penelitian ini meliputi pembuatan bahan pembawa kayu dan bahan pembawa agar, penanaman sengon bersama bahan pembawa, pengamatan, pemeliharaan, dan analisis statistik. Pembuatan bahan pembawa kayu terdiri dari sterilisasi kayu, perbanyakan isolat pada toples, dan inokulasi isolat pada media kayu ke dalam toples. Sterilisasi kayu terdiri dari kegiatan pengupasan kulit kayu, perebusan kayu selama 2 jam, dan sterilisasi dengan autoclave selama 30 menit. Selain pada wadah toples, isolat juga diperbanyak pada wadah cawan Petri, untuk digunakan sebagai bahan pembawa agar. Setelah isolat memenuhi permukaan agar, kayu dimasukkan ke dalam toples kemudian kayu tersebut di inkubasi selama 1~2 bulan. Analisis statistik menggunakan model RAK dua faktor dan 4 blok. Faktor yang digunakan terdiri dari, faktor jenis isolat dan faktor pemotongan akar. Blok dibedakan berdasarkan jenis bahan pembawa, yaitu, bahan pembawa kayu diameter 3 (K3), 4 (K4), dan 5cm (K5), dan bahan pembawa agar (A). Variabel yang diamati adalah variabel pertambahan jumlah anak daun dan pertambahan tinggi tanaman. Hasil penelitian menjelaskan bahwa metode inokulasi kayu yang dilakukan cukup efektif menginfeksi bibit tanaman sengon. Jenis pembawa yang paling efektif adalah pembawa kayu dengan diameter 5 cm dengan nilai rata-rata pertambahan tinggi dan jumlah daun 0,4 cm dan 0,2 cm. Selain itu pada perlakuan kayu ditemukan tanda penyakit berupa miselium pada akar dan tubuh buah. Tanaman yang diberikan perlakuan agar tidak terlihat secara pasti pengaruhnya karena mendapat gangguan dari serangan kutu putih. Isolat Sp.3 dan isolat Sp.4 dapat dengan baik menginfeksi tanaman sengon. Hal tersebut dapat dilihat dari nilai rata rata pertambahan daun dari Sp.0, Sp.3, dan Sp.4 yang bernilai berturut-turut 10,9, -1,3, dan -1,0. Sedangkan rata-rata

v

pertambahan tinggi dari perlakuan Sp.0, Sp.3, dan Sp.4 adalah berturut-turut 4,3, 0,3, dan -0,2 cm. Faktor pemotongan akar tidak berpengaruh nyata pada taraf uji 0,05. Kemudian pada interaksi kedua faktor, variabel pertambahan jumlah daun berbeda nyata pada taraf uji 0,05, dan variabel pertambahan tinggi berbeda nyata pada taraf uji 0,01. pada variabel pertambahan jumlah anak daun, perlakuan yang memiliki pertumbuhan paling baik adalah P0 Sp.0 dengan nilai 14,2, sedangkan perlakuan yang memiliki pertambahan anak daun terendah adalah P0 Sp.4 dengan nilai -2,4. Pada variabel pertambahan tinggi perlakuan P0 Sp.0 memiliki pertumbuhan yang paling tinggi yaitu 4,5 cm, sedangkan perlakuan P1 Sp.4 memiliki pertumbuhan paling rendah dengan nilai -0,3 cm. Kata kunci: Ganoderma, uji inokulasi, sengon, kakao, patogen.

vi

SUMMARY Permana Zainal. E44052097. Inoculation test of Ganoderma spp. Against Albizia (Paraserianthes falcataria) as shade plants of Cacao (Theobroma cacao). Under Academic Supervision Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M.Si and Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M.Sc. Root rot diseases of albizia (Paraserianthes falcataria) and cocoa (Theobroma cacao) is relatively difficult to handle, so the development of more applicable techniques to control Ganoderma spp. is needed. One effort to develop it is to do inoculation test. In general, Ganoderma spp. found in the field on plants that have been mature, but for time and materials effectiveness, the development of inoculation technique of Ganoderma spp. on seedling plants is needed. The purpose of this study was to find effective inoculation technique of Ganoderma spp. against albizia on seedling age. Materials used in this study are isolates of Ganoderma spp. albizia (Sp.3), isolates of Ganoderma spp. cocoa (Sp.4), albizia seeds, woods, and PDAs. Tools that used in this study consist of transparent jar with 12 -15 cm diameter and 1316 cm height, a Petri dish, aseptic isolation equipment, autoclave, bamboo containment and greenhouse. The method used in this study consist of the manufacture of wood and agar carriers, albizia planting with wood and agar carriers, observation, maintenance, and statistical analysis. Manufacturing process of wood carrier consists of wood sterilization, isolates multiplication in jars, and inoculation of woods on isolates inside the jars. Wood sterilization process consists of stripping bark, wood boiling for 2 hours, and sterilization by autoclave for 30 minutes. Beside the jars, isolates were also multiplied on Petri dish to be used as agar carrier. The wood inserted into the jar after the isolates wrapped surface of agar and then the wood incubated for 1 ~ 2 months until Ganoderma spp. mycelium wrapped surface of woods. Statistical analysis used RBD model with two factors and four blocks. Factors consist of isolate types and root cutting factors. Blocks differentiated by type of carrier, wood carriers 3 (K3), 4 (K4), and 5 cm (K5) diameter, and agar carriers (A). Observed variables are number of leaflet and plant height increment. The result explains that the method of wood inoculation done quite effectively infect albizia seeds. The most effective type of carrier is wood carriers with diameter of 5 cm with an average value of height 0.4 cm and number of leaflet 0.2. Moreover in the treatment of wood carriers found signs of disease such as mycelium at the roots and fruiting bodies. The effect of agar carrier treatment seeds did not to look exactly because they get interference from white lice. Both of Sp.4 isolates and Sp.3 isolates can infect albizia seeds well. This can be seen from the average value of the number of leaflet of Sp.0, Sp.3, and Sp.4 are successively 10.9, -1.3, and -1.0. While the average height increment of treatment Sp.0, Sp.3, and Sp.4 are successively 4.3, 0.3, and -0.2 cm. Root cutting factors have no effect on the tangible test level of 0.05. Then on the interaction of these two factors, the number of leaflet variables were significantly different on a test level of 0.05, and high accretion variables significantly different on a test level of 0.01. On the variables of the number of leaflets, the treatment that has the

vii

best growth is P0 Sp.0 with average value 14.2, whereas the treatment that had the lowest is Sp.4 P0 with the average value -2.4. At high accretion variable Sp.0 P0 treatment had the highest growth in average value 4.5 cm, while the P1 Sp.4 treatment has the lowest growth in average value of -0.3 cm. Keywords: Ganoderma, Inoculation test, abizia, cacao, Pathogen

ii

UJI INOKULASI Ganoderma spp. TERHADAP TANAMAN SENGON (Paraserianthes falcataria) SEBAGAI TANAMAN PENAUNG KAKAO (Theobroma cacao)

PERMANA ZAINAL E44052097

Skripsi Sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kehutanan Pada Departemen Silvikultur Fakultas Kehutanan Institut Pertanian Bogor

DEPARTEMEN SILVIKULTUR FAKULTAS KEHUTANAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2011

iii

Judul Skripsi

: Uji Inokulasi Ganoderma spp. terhadap Tanaman Sengon

(Paraserianthes falcataria) sebagai Tanaman Penaung Kakao (Theobroma cacao) Nama

: Permana Zainal

NIM

: E44052097

Menyetujui : Dosen Pembimbing,

Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M.Si

Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M.Sc

NIP. 19670421 199103 2 001

NIK. 110 400 12

Mengetahui : Plh. Ketua Departemen Silvikultur

Dr. Ir. Noor Farikhah Haneda, M.Si NIP. 19660921 199003 2 001

Tanggal:

viii

PERNYATAAN Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi berjudul ”Uji Inokulasi Ganoderma spp. terhadap Tanaman Sengon (Paraserianthes falcataria) sebagai Tanaman Penaung Kakao (Theobroma cacao)” adalah benar-benar hasil karya saya sendiri dengan bimbingan dosen pembimbing belum pernah digunakan sebagai karya ilmiah pada perguruan tinggi atau lembaga manapun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari penulis lain telah disebutkan dalam teks dan dicantumkan dalam daftar pustaka di bagian akhir skripsi ini.

Bogor, Mei 2011

Permana Zainal NRP E44052097

vii

KATA PENGANTAR Puji syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT. atas segala rahmat, taufik, dan hidayat-Nya, sehingga penulis dapat menyelesaikan karya ilmiah yang berjudul

”Uji

Inokulasi

Ganoderma

spp.

terhadap

Tanaman

Sengon

(Paraserianthes falcataria) sebagai Tanaman Penaung Kakao (Theobroma cacao)”. Karya ilmiah ini merupakan salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kehutanan di Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor. Tujuan dari penelitian ini ialah untuk mendapatkan teknik inokulasi Ganoderma spp. yang efektif terhadap bibit sengon. Selain itu penelitian ini bertujuan untuk membandingkan efektifitas bahan pembawa PDA dan bahan pembawa kayu. Terima kasih penulis ucapkan kepada Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M. Si selaku dosen pembimbing I dan juga kepada Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M. Sc selaku dosen pembimbing II yang telah memberikan arahan dan bimbingan. Selain itu penghargaan penulis disampaikan pula kepada para staf dan dosen pengajar Departemen Silvikultur serta teman-teman yang membantu dalam menyelesaikan karya ilmiah ini. Penulis menyadari banyak kekurangan dan kelemahan dalam penulisan karya ilmiah ini, untuk itu saran dan kritikan sangat saya harapkan. Ungkapan terimakasih juga penulis sampaikan kepada ayah, ibu serta seluruh keluarga atas segala dukungan, doa dan kasih sayangnya. Semoga karya ilmiah ini bermanfaat.

Bogor, Mei 2011

Permana Zainal

viii

RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Makassar, Sulawesi Selatan pada tanggal 2 November 1987 sebagai anak pertama dari dua bersaudara dengan nama orang tua BJ. Basuki dan Nadhya Damayanti. Penulis menyelesaikan pedidikan sekolah menengah atas di SMA Negeri 2 Bekasi pada tahun 2005. Penulis masuk Institut Pertanian Bogor pada tahun 2005 melalui jalur SPMB di Departemen Silvikultur, Fakultas Kehutanan, Institut Pertanian Bogor. Selama menjadi mahasiswa, penulis aktif di organisasi kemahasiswaan sebagai anggota himpunan mahasiswa TGC (Tree Grower Community) Fakultas Kehutanan IPB. Penulis juga melaksanakan Praktek Pengenalan Ekosistem Hutan (PPEH) di Kamojang dan Sancang pada tahun 2007. Pada tahun 2009, Penulis melaksanakan Praktek Pengelolaan Hutan (PPH) di Hutan Pendidikan Gunung Walat (HPGW) Sukabumi. Penulis juga melaksanakan Praktek Kerja Profesi (PKP) di PT. Erna Djuliawati, Kalimantan Tengah pada bulan Maret- Mei 2010 di bawah bimbingan Dadan Mulyana, S. Hut. M. Si. Untuk memperoleh gelar Sarjana Kehutanan IPB, penulis menyelesaikan skripsi dengan judul ” Uji Inokulasi Ganoderma spp. terhadap Tanaman Sengon (Paraserianthes falcataria) sebagai Tanaman Penaung Kakao (Theobroma cacao)” dibawah bimbingan Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M. Si dan Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M. Sc.

ix

UCAPAN TERIMA KASIH Pada kesempatan ini, penulis dengan kerendahan hati ingin menyampaikan penghargaan dan terima kasih kepada : 1. Keluarga saya tercinta, Bapak Ir. BJ. Basuki dan Ibu Nadhya Damayanti, beserta adik Ahadiah Nur Maisaroh yang telah memberi semangat, doa, dukungan, dan kasih sayang dalam menyelesaikan karya ilmiah ini. 2. Keluarga Besar Najamudin Saleh terutama Ir. Jeffrey Mulyono dan Ibu Rita Tejamirah atas semangat yang diberikan dan partisipasinya dalam mendukung kelancaran studi saya sampai bisa mencapai tingkat sarjana. 3. Dr. Ir. Elis Nina Herliyana, M. Si dan Dr. Ir. Darmono Taniwiryono, M.Sc sebagai dosen pembimbing yang telah sabar memberikan bimbingan, pengarahan dan saran selama penelitian hingga penyelesaian karya ilmiah ini. 4. Dosen moderator seminar Dr. Ir. Basuki Wasis, MS. Kemudian Dr. Ir. Nurheni Wijayanto, MS dan Ir. Rachmat Hermawan, M.Sc selaku ketua sidang

dan

dosen

penguji

atas

pengarahan,

saran,

dan

kritik

pembangunnya. 5. Keluarga bapak Rachmat Djiono serta ibu Sugiati dan Lukman Muharom yang telah memberikan semangat moril dan kepercayaan untuk menyelesaikan skripsi. Ratna Jamilah terima kasih atas bantuan, dukungan, doa, dan semangat yang diberikan. 6. Prof. Dr. Ir. Andry Indrawan, MS atas nasihat, semangat dan dukungannya. Serta memberikan kesempatan untuk saya agar dapat melakukan Praktek Kerja Profesi di PT. Erna Djuliawati. 7. Ibu Aliyah, Kang saiful, Ibu Tutin, Kakak Ai R., Kakak Agus, Ismail, Bibi Ncah, staf ahli Laboratorium biologi tanah yang telah memberikan bantuan, semangat, doa dan kelancaran administrasi. 8. Bapak Sardjito dan Bapak Gunawan yang telah memberikan pengarahan mengenai sterilisasi tanah. 9. Saudaraku dalam Pondok Yasmin Abang Zul, Mas Bom-bom, Mas Arga, Mas Respati Adikatmoyo, Mas Bagas Maulana, Mas Asep Rohdiansyah

x

atas penghiburan, deskripsi masa depan dan harapan yang telah kalian tanamkan. 10. Teman-temanku Enike Ratna Sari, Helga Sugiarti, Wulan, Icha, Dedi Mulyana, Randhi F. Kiswantara, Niechi Valentino, Hania Purwitasari, Noviandri Asmar, Radita Daneswara, Linda , dan Suke atas bantuan, semangat, dukungan dan penghiburannya. 11. Adik kelasku Nur Syamsi, Subhan, Umar Atik, Renando Mieko, Fransisxo Tambunan, yang telah membantu pada saat penelitian. Beserta keluarga besar Fahutan, khususnya Silvikultur. 12. Guru-guru sekolah menengah yang saya hormati alm. Drs. Khaerudin, Dra. Farida, dan Drs. Sarmani Abbas, M.Pd. 13. Semua pihak yang tidak dapat disebutkan satu per satu dan telah membantu dalam penyelesaian karya ilmiah ini.

xi

DAFTAR ISI Halaman DAFTAR ISI .......................................................................................................... xi DAFTAR TABEL ................................................................................................ xiii DAFTAR GAMBAR ........................................................................................... xiv DAFTAR LAMPIRAN ......................................................................................... xv BAB I PENDAHULUAN ....................................................................................... 1 1.1 Latar Belakang .............................................................................................. 1 1.2 Tujuan ........................................................................................................... 3 1.3 Manfaat…………………………………………………………………..…...4 BAB II TINJAUAN PUSTAKA............................................................................. 5 2.1 Kakao (Theobroma cacao)............................................................................ 5 2.2 Sengon (Paraserianthes falcataria) .............................................................. 5 2.3 Inokulasi ........................................................................................................ 7 2.3.1 Teknik Inokulasi Dengan Pembawa Organik ........................................ 8 2.4 Teknik Aseptik .............................................................................................. 9 2.5 Biologi Jamur ................................................................................................ 9 2.5.1 Botani ..................................................................................................... 9 2.5.2 Kebutuhan Nutrisi ................................................................................ 11 2.5.3 Pengaruh Lingkungan .......................................................................... 12 2.6 Ganoderma spp. .......................................................................................... 13 BAB III METODOLOGI ...................................................................................... 16 3.1 Waktu dan tempat ....................................................................................... 16 3.2 Bahan dan Alat ............................................................................................ 16 3.3 Metode Penelitian ....................................................................................... 16 3.3.1 Pembuatan Bahan Pembawa Kayu dan Bahan Pembawa PDA ........... 17 3.3.2 Penanaman Inokulum Bersama Bibit Sengon Usia 1½ Bulan. ............ 19 3.3.3 Pengamatan, Pengambilan Data, dan Pengolahan Data ....................... 21 BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN .............................................................. 23 4.1 Hasil ............................................................................................................ 23 4.1.1. Pengaruh Blok (Jenis Bahan Pembawa) ............................................. 25 4.1.2. Pengaruh Jenis Isolat (Sp.) .................................................................. 26 4.1.3. Pengaruh Pemotongan Akar (P) .......................................................... 28

xii

Halaman 4.1.4. Pengaruh Interaksi Faktor Pemotongan Akar dan Jenis Isolat............ 29 4.2. Pembahasan ................................................................................................ 30 BAB V KESIMPULAN DAN SARAN................................................................ 34 5.1. Kesimpulan ................................................................................................ 34 5.2 Saran............................................................................................................ 34 DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... s35

xiii

DAFTAR TABEL No. 1.

Uraian

Halaman

Jumlah pohon dan % siap panen 8 jenis pohon pada hutan rakyat di beberapa daerah…..……………………………………………………

6

2.

Jenis hama dan penyakit tanaman sengon............................................

7

3.

Ciri-ciri utama kelas jamur…………………………………………….

10

4.

Rekapitulasi rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan tinggi tanaman selama 2 bulan……………………………………………….. 24

5.

Rekapitulasi hasil sidik ragam terhadap variabel yang diamati……….. 26

6.

Hasil uji Duncan pengaruh blok terhadap pertambahan anak daun…… 27

7.

Hasil uji Duncan pengaruh blok terhadap pertambahan tinggi………..

8.

Hasil uji Duncan pengaruh faktor jenis isolat jamur terhadap pertambahan anak daun……………………………………………….. 28

9.

Hasil uji Duncan pengaruh faktor jenis isolat jamur terhadap pertambahan tinggi tanaman…………………………………………... 28

10.

Hasil uji Duncan pengaruh pemotongan akar terhadap pertambahan anak daun……………………………………………………………… 29

11.

Hasil uji Duncan pengaruh pemotongan akar terhadap pertambahan tinggi…………………………………………………………………... 29

12.

Hasil uji Duncan pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan jumlah anak daun……………... 30

13.

Hasil uji Duncan pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan jumlah anak daun……………... 31

\

27

xiv

DAFTAR GAMBAR No.

Uraian

Halaman

1.

Pengamatan mikroskopis Ganoderma spp……….…………………….

15

2.

Bagan kegiatan penelitian….……………………………….................

17

3.

Tahapan sterilisasi kayu. 3a Pengupasan kulit. 3b Perebusan kayu. 3c Pengukusan kayu dengan autoclave…………………………………… 18

4.

Bahan pembawa kayu………………………………………………….. 19

5.

Perbandingan kompos, arang sekam, dan tanah……………………….. 20

6.

Perbandingan perlakuan Sp.0, Sp.3, dan Sp.4…………………………. 25

7.

Tubuh buah Ganoderma spp. pada perlakuan kayu yang diinokulasi Isolat Sp.3 dan Sp.4 (diberi tanda lingkaran putih)……………………. 25

8.

Tubuh buah setelah polibag dibuka……………………………………. 33

9.

Miselium pada akar tanaman yang diberikan perlakuan inokulasi kayu……………………………………………………………………. 33

10.

Hama kutu putih………………………………………………………..

34

xv

DAFTAR LAMPIRAN No. 1. 2.

Uraian

Halaman

Hasil uji Duncan terhadap variabel jumlah anak daun menggunakan software SAS 9………………………………........................................

41

Hasil uji Duncan terhadap variabel jumlah tinggi menggunakan software SAS 9………………………………………………………… 47

1

BAB I PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang Alih-guna lahan hutan menjadi lahan pertanian atau perkebunan disadari menimbulkan banyak masalah seperti penurunan kesuburan tanah, erosi, kepunahan flora dan fauna, banjir, kekeringan dan bahkan perubahan lingkungan global. Masalah ini bertambah berat dari waktu ke waktu sejalan dengan meningkatnya luas areal hutan yang dialih-gunakan menjadi lahan usaha lain. Agroforestri merupakan salah satu sistem pengelolaan lahan yang dapat ditawarkan untuk mengatasi masalah yang timbul akibat adanya alih guna lahan tersebut. Sebagai contoh di daerah hulu Way Besai, hutan yang semula luasnya mencapai 60% telah berubah menjadi perkebunan rakyat, persawahan di lembah bukit, dan perkampungan, sehingga hutan yang tersisa hanya 12% dari total luas lahannya. Namun, karena himbauan yang dilakukan selama 15 tahun terakhir, semakin banyak budidaya perkebunan yang semula berbentuk sistem monokultur, secara bertahap berubah menjadi budidaya perkebunan campuran dengan pohon penaung (Verbist et al., 2004). Salah satu tanaman perkebunan yang populer dan banyak dibudidayakan petani di indonesia adalah kakao (Daniri, 2010). Kakao (Theobroma cacao) merupakan komoditas ekspor yang cukup menjanjikan di masa depan dan mempunyai posisi kuat di pasar dunia, sehingga sangat potensial untuk dikembangkan di Indonesia. Komoditas kakao pada masa yang akan datang diharapkan menduduki tempat yang sejajar dengan komoditas-komoditas perkebunan lainnya seperti karet dan kelapa sawit, setidaknya dari segi luas area tanam dan kuantitas produksi yang memadai untuk memenuhi pangsa pasar yang terus meningkat (Daniri, 2010). Tanaman kakao berasal dari daerah hutan hujan tropis di Amerika Selatan. Di daerah asalnya, kakao merupakan tanaman kecil di bagian bawah hutan hujan tropis dan tumbuh terlindung oleh pohon-pohon yang besar. Oleh karena itu dalam budidayanya, tanaman kakao memerlukan naungan. Tanpa persiapan lahan

2

dan tanpa persiapan naungan yang baik, pengembangan tanaman kakao akan sulit diharapkan keberhasilannya. Salah satu tanaman penaung yang populer dalam pengusahaan agroforestri kakao adalah tanaman leguminosa, salah satunya sengon (Paraserianthes falcataria). Selain sebagai tanaman pelindung, tanaman sengon juga bernilai ekologis sebagai salah satu tanaman konservasi tanah dan air, sengon juga memiliki ekonomi yang baik dan cukup banyak diminati sebagai jenis tanaman hutan rakyat. Secara umum di Jawa terdapat hutan rakyat seluas hampir 400 ha. dan mampu memasok kurang lebih 895.000 m3 kayu per tahun; dan jumlah ini adalah 10% serapan kayu berbagai industri di pulau Jawa. Produktivitas hutan rakyat di pulau Jawa rata-rata adalah 2,29 m3/ha/tahun (Arupa, 2008). Selain bernilai ekonomi yang cukup menjanjikan, tanaman sengon juga rentan terhadap serangan hama dan penyakit, ada sekitar 9 jenis hama dan penyakit yang menyerang sengon (Nair, 2000). Dari seluruh patogen yang menyerang tanaman sengon, serangan penyakit busuk akar yang disebabkan oleh jamur Ganoderma spp. pada tanaman kehutanan termasuk sengon telah banyak dilaporkan (Basset dan Peters, 2003; Widyastuti, 2007). Serangan Ganoderma spp. di lapangan sulit di deteksi karena gejalanya mirip dengan gejala kekeringan. Meskipun tanaman sudah menunjukkan gejala sakit, namun terkadang tubuh buah Ganoderma spp. belum terbentuk. Dan di lain pihak, pada tanaman yang tampak sehat ditemukan tubuh buah Ganoderma spp. di pangkal batangnya (Bassett dan Peters, 2003). Kasus kerusakan akibat penyakit jamur akar merah ini di tegakan sengon masih jarang, belum banyak dijumpai. Namun demikian bilamana kasus serangan sudah

dapat

dijumpai

maka

pada

tahun-tahun

mendatang

potensi

kerusakan/kematian pohon pada tegakan akan semakin membesar. Ganoderma spp. membentuk tubuh buah berupa piringan keras yang menempel pada pangkal batang tanaman, permukaan atas berwarna cokelat kemerahan sampai cokelat tua, licin nampak mengkilat seperti dilapisi lilin, bagian tepinya yang aktif tumbuh berwarna lebih muda kemudian berubah warna ketika menua. Bagian permukaan bawah berwarna putih kekuning-kuningan tersusun dari jutaan pori-pori tempat dimana ribuan basidia tumbuh dan

3

menghasilka jutaan spora secara serentak. Spora yang diterbangkan oleh angin dan dibawa terbang oleh serangga diduga memiliki peranan penting dalam penularan penyakit dari tanaman satu ke tanaman lain pada jarak yang melebihi jarak perkembangan sistem perakaran, dan penularan penyakit dari tanaman yang sakit ke tanaman sehat yang berada di dekatnya terjadi melalui kontak akar (Darmono dan Panji, 1999). Uji inokulasi Ganoderma spp. perlu dilakukan sebagai salah satu upaya untuk meningkatkan teknologi perlindungan tanaman sengon dan kakao terhadap penyakit busuk akar. inokulasi adalah pekerjaan memasukkan inokulum dari medium yang lama ke medium yang baru dengan tingkat ketelitian yang sangat tinggi (Pelczar dan Chan, 1986). Produksi bahan pembawa jamur pada umumnya menggunakan bahan pembawa anorganik seperti zeolit. Seiring dengan perkembangannya, terutama di dalam hal pemanfaatan sumber daya lokal dan menciptakan biaya produksi yang lebih ekonomis, dirasakan perlu untuk dicarikan alternatif bahan pembawa lain yang lebih murah dan mudah didapat tanpa mengurangi kualitas dari bahan pembawa. Bahan organik belum banyak digunakan sebagai bahan pembawa bahan pembawa, sebagai contoh, kompos gambut pernah digunakan sebagai carrier (pembawa) bahan pembawa mikoriza (Baon, 1998), akan tetapi informasi mengenai penggunaan bahan organik atau limbah organik lain masih sangat terbatas. Kasus Serangan Ganoderma Spp. yang ditemukan di lapangan biasanya terdapat pada tanaman dewasa yang pertumbuhannya sudah menurun (Widyastuti, 2007). Karena keterbatasan waktu dan materi, perlu dilakukan simulasi menggunakan tanaman pada usia semai, serta menguji efektifitas metode inokulasi Ganoderma spp. pada tanaman sengon tingkat semai. Dalam penelitian.ini, usia semai yang digunakan adalah 1-1 ½ bulan, dan bahan pembawa yang digunakan adalah kayu sengon dan Potato Dextrose Agar (PDA). 1.2 Tujuan Penelitian ini secara umum bertujuan untuk mendapatkan teknik inokulasi Ganoderma spp. yang efektif menginfeksi bibit sengon usia semai. Selain itu penelitian ini bertujuan untuk membandingkan efektifitas bahan pembawa PDA

4

dan bahan pembawa kayu, dan menguji kemungkinan penularan Ganoderma spp. dari tanaman kakao ke tanaman sengon. 1.3 Manfaat Selama ini belum ada penelitian mengenai uji inokulasi Ganoderma spp. pada tanaman sengon usia semai. Selanjutnya, hasil penelitian ini dapat digunakan sebagai acuan ntuk mengembangkan teknik pengendalian serangan Ganoderma spp. terhadap tanaman sengon dan kakao secara terpadu.

5

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Kakao (T. cacao) Menurut Tjitrosoepomo (1988) sistematika tanaman ini sebagai berikut : •

Divisi

Spermatophyta

•

Anak divisi

Angioospermae

•

Kelas

Dicotyledoneae

•

Anak kelas

Dialypetalae

•

Bangsa

Malvales

•

Suku

Sterculiaceae

•

Marga

Theobroma

•

Jenis

T. cacao L.

Beberapa sifat (penciri) dari buah dan biji digunakan dasar klasifikasi dalam

sistem

taksonomi.

Berdasarkan

bentuk

buahnya,

kakao

dapat

dikelompokkan ke dalam empat populasi Kakao lindak (bulk) yang telah tersebar luas di daerah tropika adalah anggota subjenis Sphaerocarpum. Bentuk bijinya lonjong (oval), pipih dan keping bijinya (kotiledon) berwarna ungu gelap. Mutunya beragam tetapi lebih rendah daripada subjenis cacao. Permukaan kulit buahnya relatif halus karena aluralurnya dangkal. Kulit buah ini tipis tetapi keras (liat). Pertumbuhan tanamannya kuat dan cepat, daya hasilnya tinggi dan relatif tahan terhadap beberapa jenis hama dan penyakit (Tjitrosoepomo, 1988). 2.2 Sengon (P. falcataria) Sengon (P. falcataria) merupakan jenis tanaman kayu yang banyak tumbuh di Indonesia. Kayu sengon termasuk kelas awet IV-V dan kelas kuat IVV. Kayunya lunak dan mempunyai nilai penyusutan dalam arah radial dan tangensial berturut-turut 2,5 % dan 5,2 % (basah sampai kering tanur). Kayunya mudah digergaji, tetapi tidak semudah kayu meranti merah dan dapat dikeringkan dengan cepat tanpa cacat yang berarti. Cacat pengeringan yang lazim adalah kayunya melengkung atau memilin. (Martawijaya dan Kartasujana, 1977). Selain memiliki ketahanan yang tinggi terhadap berbagai kondisi lahan (Akbar dan

6

Hendromono, 1992), menurut Dela Cruz (1988) dalam Haselwandter and Bowen (1996), sengon juga bersimbiosis dengan mikoriza arbuskular karena sengon adalah tanaman leguminosa yang mampu melakukan fiksasi nitrogen. Karena hal tersebut tanaman sengon baik untuk konservasi tanah dan air (Nusantara, 2002) Pada tahun 2003, Biro Pusat Statistik (BPS) bekerjasama dengan Departemen Kehutanan telah melakukan pandataan potensi hutan rakyat di Indonesia (Arupa, 2004). Sensus tersebut mencakup 22 jenis tanaman kehutanan, namun data potensi hutan rakyat hanya mencakup 10 jenis, yaitu: akasia, bamboo, cendana, jati, mahoni, pinus, sengon, rotan, sonokeling dan sungkai. Pemilihan kesepuluh jenis tanaman kehutanan tersebut berdasarkan distribusi penyebarannya hampir merata di seluruh Indonesia selain jenis-jenis tersebut dianggap komoditi unggulan nasional (BPS, 2004). Hasil sensus yang dilakukan di seluruh wilayah Indonesia kecuali propinsi Nanggroe Aceh menunjukkan bahwa konsentrasi tanaman hutan rakyat adalah di Pulau Jawa, sedangkan beberapa jenis lainnya tersebar di Sumatera, Sulawesi dan Kalimantan. Tabel 1. Jumlah pohon dan % siap panen 8 jenis pohon pada hutan rakyat di beberapa daerah Jenis Pohon Akasia Cendana

Jumlah Kebun Rakyat 1.200.000 73.400

Jumlah dan % Siap Panen Jumlah Siap Panen (%) 32.020.000 37,69 66.330 30,01

Jati Mahoni Pinus

3.050.000 2.310.000 156.000

79.710.000 45.260.000 5.820.000

23,14 20,98 46,73

Sengon Sonokeling

2.320.000 204.000

59.830.000 2.350.000

41,13 31,56

22.300

1.010.000

37,72

Sungkai

Konsentrasi Lokasi Jawa NTT, Sulsel, Jateng, DIY Jawa Jawa Jawa, Sumut, Sulsel Jawa Jateng, DIY, Jatim Kalimantan, Sumsel, Sulsel

Sumber: BPS (2004)

Berdasarkan tabel diatas tanaman sengon siap panen di hutan rakyat daerah Jawa didominasi oleh sengon (P. falcataria) dengan 41,13 %, membuktikan bahwa sengon diminati oleh pengelola hutan rakyat di daerah Jawa. Hal ini disebabkan oleh daur tebang sengon yang relatif cepat (5 tahun), pohonnya dapat mencapai tinggi sekitar 30–45 meter dengan diameter batang sekitar 70 – 80

7

cm, serta bentuk batang sengon yang bulat dan tidak berbanir, sehingga banyak petani memilih pohon ini sebagai tanaman peneduh tanaman kopi dan kakao. Jenis sengon ini rentan terhadap serangan Ganoderma spp.. Gejalanya adalah tampak pada anak daun yang layu dan rontok sehingga akhirnya sengon bisa mati. Jika kulit akar dikupas tampak benang merah menempel pada kayu akar (Siregar et al., 2008). Berikut adalah hama dan penyakit yang menyerang tanaman sengon (Nair, 2000) ditampilkan pada Tabel 2. Tabel 2. Jenis hama dan penyakit tanaman sengon No

Bagian yang diserang

Jenis hama dan penyakit

Nama umum

1

Menggerek Batang

Hama boktor

2

Pemakan anak daun

3

Pemakan akar

4

Pemakan kulit batang

5

Penggerek batang

6

Damping-off

7

Penyakit Antraknosa

Xystrocera festiva (Coleoptera, Ceramycidae) X. globosa Pteroma plagiophleps (Lepidoptera,Psychidae) Eurema blanda (Lepidoptera, Pieridae) Beberapa spesies (Coleoptera, Scarabaeidae) Indarbela quadrinotata (Lepidoptera, Indarbelidae) Xylosandrus morigerus (Coleoptera, Scolytidae) Pythium sp. Phytoptora sp. Rhizoctonia sp. Colletotrichum sp.

8

Busuk akar

Jamur akar

9

Kanker karat/puru

Botryo diplodia sp. Ganoderma sp. Ustulina sp. Rosellinia sp. Uromycladium tepperianum

Ulat kantong kecil Ulat kupukupu kuning Ulat putih Ulat kulit batang Kumbang sisik Lodoh akar/batang Antraknosa

Jamur karat

Keterangan

Serangan spradis

Menyerang sapling

Menyerang semai Menyerang semai Menyerang tanaman muda Menyerang semua umur

Sumber: Nair (2000)

2.3 Inokulasi inokulasi adalah pekerjaan memindahkan mikroorganisme dari medium yang lama ke medium yang baru dengan tingkat ketelitian yang sangat tinggi. Untuk melakukan inokulasi, terlebih dahulu diusakan agar semua alat yang ada dalam hubungannya dengan medium agar tetap steril, hal ini agar menghindari terjadinya kontaminasi (Pelczar dan Chan, 1986). Ada beberapa tahap yang harus dilakukan sebelum melakukan teknik inokulasi yaitu :

8

1. Menyiapkan ruangan Ruang tempat harus bersih dan keadannya harus steril agar tidak terjadi kesalahan dalam pengamatan atau percobaaan .dalam labotarium pembuataan serum vaksin dan sebagainya. Inokulasi dapat dilakukan dalam sebuah kotak kaca (encast) udara yang lewat dalam kotak tersebut dilewatkan saringan melalui suatu jalan agar tekena sinar ultraviolet (Pelczar dan Chan, 1986). 2. Pemindahan dengan dengan pipet Cara ini dilakukan dalam penyelidikan air minum atau pada penyelidikan untuk diambil 1 ml contoh yang akan diencerkan oleh air sebanyak 99 ml murni (Pelczar dan Chan, 1986). 3. Pemindahan dengan kawat inokulasi Ujung kawat inokulasi sebaliknya dari platina atau nikel .ujungnya boleh lurus juga boleh berupa kolongan yang diametrnya 1-3mm. Dalam melakukuan penanaman bakteri kawat ini terlebih dahulu dipijarkan sedangkan sisanya tungkai cukup dilewatkan nyala api saja setelah dingin kembali kawat itu disentuhkan lagi dalam nyala (Pelczar dan Chan, 1986). 2.3.1 Teknik Inokulasi Dengan Pembawa Organik Bahan pembawa umumnya berbentuk spora dari spesies tertentu ataupun campuran lebih dari satu spesies jamur. Spora dan miselia yang dihasilkan dicampur dengan bahan pembawa yang umumnya berupa mineral lempung atau zeolit (Prematuri dan Faiqoh, 1999). Salah satu hambatan belum meluasnya penggunaan teknologi inokulasi di masyarakat Indonesia adalah masih terbatasnya ketersediaan bahan pembawa, yang diproduksi dalam skala besar secara komersial. Produksi bahan pembawa mikoriza sebenarnya relatif sederhana. Hal terpenting di dalam proses produksi ini adalah tersedianya sumber daya manusia, starter inokulum dengan kualitas yang baik, sumber bahan baku pembawa seperti pasir atau zeolit, tanaman inang dan fasilitas produksi (Redecker et al., 1998; Prematuri dan Faiqoh, 1999 dalam Nurbaity et al., 2009). Bahan organik belum banyak digunakan sebagai bahan pembawa bahan pembawa suatu jenis jamur. Padahal, jamur mikoriza diketahui berinteraksi positif dengan bahan organik di dalam tanah, termasuk pada lahan-lahan bermasalah seperti lahan tercemar logam berat (Nurbaity, 2000 dalam Nurbaity et al.,2009),

9

lahan salin (Nurbaity et al., 2005 dalam Nurbaity et al. 2009), dan lahan yang tercekam kekeringan (Nurbaity et al., 2007 dalam Nurbaity et al., 2009). Kompos gambut pernah digunakan sebagai pembawa bahan pembawa mikoriza (Baon, 1998 dalam Nurbaity et al., 2009). 2.4 Teknik Aseptik Sebelum benar-benar dilakukan proses kultur mikroorganisme, pertamatama kita harus mempertimbangkan bagaimana agar tidak terjadi kontaminasi. Karena ukurannya yang sangat kecil, mikroorganisme mudah lepas dalam udara dan permukaan. Oleh karena itu, medium kultur harus disterilisasi secepatnya setelah preparasi untuk pemindahan mikroorganisme. Mediun kultur harus tetap steril demikian juga materi yang lain dalam isolasi (Cappuccino dan Sherman, 1983). Teknik yang digunakan dalam pencegahan kontaminasi disebut teknik aseptik. Kontaminasi udara paling sering menjadi masalah karena udara selalu kontak dengan partikel mikroorganisme pada debu. Pembukaan wadah isolasi harus dengan hati-hati agar tidak terkontaminasi dengan udara sekitar. Transfer aseptik pada kultur dari salah satu medium ke medium yang lain harus dengan cermat. Alat pemindah materi (loop inokulasi atau jarum) harus disterilisasi oleh pembakaran pada nyala api. Dalam pertumbuhan kultur dibutuhkan tempat yang mudah dipindahkan ke permukaan agar datar, dimana pertumbuhan suatu koloni berasal dari pertumbuhan dan pembelahan sel tunggal (Cappuccino dan Sherman, 1983). 2.5 Biologi Jamur 2.5.1 Botani Jamur dalam bahasa yunani disebut myless, dalam bahasa latin disebut fungus (Schlegel dan Schmidt, 1985). Jamur adalah mikroorganisme yang tidak berklorofil, berbentuk hifa atau sel tunggal, termasuk eukariotik, dinding sel dari kitin atau selulosa, berproduksi secara seksual dan aseksual, dan memperoleh energi melalui absorpsi bahan organik (Gandjar et al., 1999). Bagian dari organ jamur berupa talus, hifa, keseluruhan talis dan hifa disebut miselium. Talus terdiri dari benang benang dengan garis tengah lima

10

mikron yang bercabang beberapa kali. Benang atau hifa terdiri dari dinding sel dan sitoplasma. Hifa pada jamur tingkat rendah mungkin tanpa dinding melintang (asepta) atau pada jamur tingkat tinggi sel-selnya terpisah oleh dinding-dinding melintang (septa) (Schlegel dan Schmidt, 1985). Pada sebagian besar jamur, tiap-tiap bagian dari miselium memiliki potensi untuk tumbuh. Hal ini memudahkan memindahtumbuhkan jamur untuk perbanyakan (peremajaan) atau untuk mempertahankan isolat. Miselium dapat dibedakan atas miselium vegetatif yang berfungsi menyerap nutrisi dari lingkungan dan miselium fertil yang berfungsi dalam reproduksi (Gandjar et al., 1999). Kebanyakan jamur berproduksi secara seksual dan aseksual. Secara aseksual dengan membentuk spora, pembelahan, atau penguncupan (Pelczar dan Chan, 1986). Secara seksual berakhir dengan penyatuan dua inti. Reproduksi secara seksual dibedakan menjadi tiga tahap, yaitu: (1) plasmogami, yaitu penyatuan kedua protoplasma, sel yang terbentuk mengandung dua inti yang tidak segera menyatu diri tetapi dapat bertahan selama pembelahan sel sebagai stadium dikariotik, (2) kariogami, yaitu peleburan kedua inti haploid, dan (3) meiosis, yaitu pengurangan jumlah kromosom ke jumlah asal (haploid). Klasifikasi jamur didasarkan pada ciri-ciri spora seksual dan tubuh buah yang dihasilkan selama tahap-tahap seksual dalam daur hidupnya. Jamur yang telah diketahui tingkat seksualnya disebut jamur sempurna, sedangkan jamur yang belum diketahui tingkat seksualnya disebut jamur tidak sempurna (Pelczar dan Chan, 1986). Berdasarkan cara dan ciri reproduksinya jamur dibagi menjadi empat

kelas,

yaitu:

Phycomycetes,

Ascomycetes,

Basidiomycetes

dan

Deuteromycetes. Ciri utama keempat jamur tersebut diuraikan dalam Tabel 3. Tabel 3. Ciri-ciri utama kelas jamur Kelas Ciri-ciri Phycomycetes

Ascomycetes

Basidiomycetes

Deuteromycetes

Miselium

Aseptat

Septat

Septat

Septat

Spora aseksual

Sporangiospora, Konida

Konida`

Konida

Konida

Spora seksual

Zigospora, Oospora

Askospora

Basidiospora

Tidak diketahui

Habitat alami

Air, tanah, hewan

Air, hewan,

Tanah, tumbuhan

Tanah, hewan,

tumbuhan Sumber: Pelczer dan Chan (1986)

tumbuhan

11

2.5.2 Kebutuhan Nutrisi Jamur dapat dibiakkan pada berbagai medium. Kebanyakan jamur dapat tumbuh dan berkembang baik pada medium yang mengandung karbohidrat tinggi dengan kisaran pH antara 5-6 (Dharmaputra et al., 1989). Kebutuhan nutrisi jamur diantaranya: karbon, nitrogen, mineral, oksigen dan zat-zat pelengkap. a.

Karbon Jamur mendapatkan energi dengan cara mengoksidasi senyawa-senyawa

organik atau dengan memanfaatkan CO2 sebagai sumber energi (Schlegel dan Schmidt, 1985). Karbon dibutuhkan untuk pembentukan komponen sel (karbohidrat, asam amino, lipid, asam nukleat). Jamur memerlukan senyawa organik yang bersumber dari karbon seperti karbohidrat (monosakarida, disakarida, dan polisakarida) dan asam organik. Dari semua itu yang terpenting adalah karbohidrat (Landecker, 1996). Disakarida dan polisakarida merupakan kelompok gula yang lebih kompleks dan merupakan sumber karbon yang paling banyak terdapat di alam, sedangkan monosakarida merupakan kelompok gula sederhana yang paling sering digunakan dalam jumlah sekitar 2%. Untuk memecahkan disakarida atau polisakarida jamur harus menghasilkan enzim ekstraseluler dan menyederhanakan komponen substrat menjadi unit yang larut yang kemudian dibawa hifa secara absortif (Miles, 1993). b.

Nitrogen Nitrogen berperan untuk sintesa asam amino yang akan dipakai untuk

membangun protoplasma (cairan sel). Nitrogen juga berperan sebagai komponen asam nukleat dan beberapa vitamin (B1, B2, dan lainnya). Sumber nitrogen yang umum pada media tumbuh jamur adalah garam nitrat, ammonium, dan komponen N organik (dalam bentuk asam amino, peptida atau pepton) (Landecker, 1996). c.

Mineral Mineral yang diperlukan jamur untuk pertumbuhan sama halnya dengan

tumbuhan, berupa makro elemen seperti fosfor, sulfur, kalium, magnesium, dan berupa mikro elemen seperti: besi, seng, mangan, tembaga, dan molybdenum. Sulfur dalam bentuk sulfat, berperan sebagai komponen asam amino sulfur (seperti sistein dan metionin), vitamin berupa tiamin dan biotin, dan juga untuk

12

produk-produk metabolit sekunder. Fosfor terdapar dalam ATP, asam nukleat, dan fosfolipid membran. Kalium sebagai kofaktor berbagaisistem enzim. Magnesium sebagai pengaktivasi enzim. Elemen mukro berperan sebagai elemen konstituen dalam enzim-enzim dan dibutuhkan jamur dalam jumlah dan jenis yang terbatas. d.

Oksigen Fungsi utama oksigen adalah sebagai akseptor elektron terminal pada

respirasi aerob, pada peristiwa ini oksigen direduksi menjadi air. Untuk sel oksigen tersedia dalam bentuk air selanjutnya oksigen juga terdapat dalam CO2 dan dalam banyak senyawa organik (Schlegel dan Schmidt, 1985). e.

Zat pelengkap Zat pelengkap merupakan zat-zat yang diperlukan oleh banyak organisme

disamping nutrisi. Ada tiga kelompok zat pelengkap yaitu: asam-asam amino, senyawa purin, senyawa pirimidin, dan vitamin-vitamin. Senyawa purin, senyawa pirimidin dan asam amino merupakan bagian dari senyawa protein dan asam nukleat. Vitamin merupakan bagian dari iso enzim dan gugus prostetik yang mempunyai fungsi enzimatik katalitik yang digunakan dalam jumlah amat kecil (Schlegel dan Schmidt, 1985). 2.5.3 Pengaruh Lingkungan a.

Suhu Suhu berpengaruh terhadap aktivitas enzim, yaitu setiap kenaikan 10 oC

aktivitas enzim berlangsung dua kali lebih cepat. Enzim juga terinaktivasi dapa suhu tinggi yang mempengaruhi kemampuan mensintesis komponen-komponen yang dibutuhkan, seperti vitamin, asam amino, atau metabolit lainnya (Landecker, 1996). b.

Derajat Keasaman (pH) Pengaruh pH terhadap pertumbuhan yaitu berpengaruh terhadap

ketersediaan ion logam dan terhadap permeabilitas sel. Ion logam dapat membentuk kompleks-kompleks yang tidak larut dalam kisaran pH tertentu. Ion Mg dan P dapat tetap ada pada bentuk bebasnya pada pH rendah, tetapi pada pH yang lebih tinggi membentuk kompleks yang tidak larut, yang mengurangi ion-ion tersebut untuk jamur. Permeabilitas sel, berubah pada derajat keasaman berbeda. Pada pH rendah membranprotoplasmik menjadi jenuh dengan ion H sehingga lalu

13

lintas kation esensial terbatas, sebaliknya pada pH tinggi menjadi jenuh dengan ion OH sehingga anion esensial terbatas (Landecker, 1996) c.

Cahaya Pertumbuhan miselia sebagian besar jamur tidak sensitive terhadap

cahaya. Meskipun demikian, cahaya yang kuat dapat menghambat pertumbuhan miselia, bahkan dapat membunuhnya, efek cahaya dapat merusak vitamin yang dibentuk jamur. Sebaliknya cahaya dibutuhkan pada pembentukan tubuh buah (Landecker, 1996) 2.6 Ganoderma spp. Jamur pelapuk kayu dan penyebab penyakit pada pohon pohon hutan sebagian besar berasal dari beberapa spesies Ganoderma spp.. Ganoderma spp. merupakan jamur tingkat tinggi yang tergolong dalam kelas Basidiomycetes ordo Polyporanceae family Ganodermataceae. Ganoderma spp. adalah jamur polyporus yang mempunyai daerah penyebaran tempat tumbuh yang cukup luas dan dikenal sebagai penyebab penyakit akar pada banyak jenis tanaman berkayu. Di hutan alam jamur ini cenderung menyerang pohon-pohon tua atau yang telah mengalami penurunan pertumbuhan, dan juga dapat menyebabkan pembusukan kayu kayu yang sudah mati. Pada hutan tanaman dan perkebunan jamur ini telah dilaporkan menjadi pathogen akar yang potensial dan telah banyak menyerang beberapa jenis tanaman (Semangun, 2000). Tubuh buah merupakan hasil pembuahan seksual yang menyerupai cakram dengan permukaan atas berwarna coklat muda sampai coklat tua dan permukaan bawah berwarna putih sampai krem, berstruktur liat pada waktu muda dan keras pada waktu tua. Tubuh buah mula-mula tampak sebagai bongkol kecil berwarna putih, terus berkembang membentuk kipas yang lebar dan tebal. . Kadang-kadang tubuh buah membentuk tangkai atau saling bersambungan sehingga menjadi suatu susunan yang besar. Disamping hidup sebagai parasit, Ganoderma spp. Mampu hidup sebagai saprofit dengan memanfaatkan sisa-sisa tanaman, seperti sisa-sisa akar dalam tanah, ranting-ranting, dan batang pohon di hutan (Semangun, 2000; Darmono dan Panji, 1999).

14

Keunikan dari jenis ini adalah miseliumnya yang tidak sekompleks tubuh buahnya. Pada miselium Ganoderma spp. sebagian besar kandungan di dalamnya adalah senyawa polisakarida dan Germanium organic sedangkan dalam tubuh buahnya Ganoderma spp. memilki lebih dari 200 senyawa aktif dengan tiga kelompok utama. Kelompok pertama adalah senyawa larut dalam air sebanyak 30% seperti polisakarida dan Germanium organic, senyawa yang larut dalam pelarut organik 65% seperti adenosin dan terpenoid, 5% nya adalah senyawa volatil seperti ganoderat. Zat unik dalam jenis ini adalah immunopotentiator dan polisakarida yang dapat menginduksi interferon (Jong dan Birmingham, 1992). Jamur ini dideskripsikan pertama kali oleh Karsten (1881, dalam Basset, 2005) dengan G. Lucidun (W. Curt. Fr.) sebagai satu-satunya jenis. Murill (1908, dalam Pajirmo dan Soenanto, 2008), yang mendasarkan taksonominya pada spesifikasi inang, distribusi geografi, dan morfologi luar tubuh buah, menyebutkan terdapat tujuh jenis Ganoderma spp. yang hidup di daerah iklim sedang, yaitu G. tsugae, G. sessile, G. zonatum, G. ulcatum, G. Oregonense, G. sequolae dan G. nevadense. Turner (1981) melaporkan bahwa paling sedikit terdapat 15 species Ganoderma di berbagai tempat di dunia, yang menyebabkan penyakit busuk pangkal batang. Saat ini di seluruh dunia sudah diidentifikasi 250 spesies Ganoderma spp. namun masih terdapatnya tumpang tindihnya penamaan yang menyebabkan perkiraan jumlah spesies Ganoderma spp. sebenarnya kurang dari angka tersebut. Infeksi patogen lebih mudah terjadi melalui luka dan lentisel, walaupun penetrasi secara langsung mungkin terjadi, pada tanaman karet sering ditemukan bagian leher akar pecah, dan ini merupakan tempat yang baik bagi infeksi jamur. Patogen kemudian kebagian yang lebih dalam dari akar. Tanaman akan mengadakan reaksi pertahanan seperti pembentukan kambium, gabus dan kalus. Akan tetapi hal ini sering tidak dapat menahan perkembangan lanjut patogen. Serangan akan lebih tinggi akan ditemukan pada tanaman okulasi dibandingkan dengan tanaman biji. Hal ini disebabkan pada tanaman okulasi ada bagian-bagian luka, sehingga memudahkan Ganoderma spp. untuk mengadakan infeksi (Sinulingga, 1989).

15

Berikut adalah deskripsi dari tubuh buah Ganoderma Spp. yang diamati secara mikroskopis.

3cm

1mm

5μm

Sumber: Pukon (2011)

Gambar 1 Pengamatan mikroskopis Ganoderma spp.

16

BAB III METODOLOGI

3.1 Waktu dan tempat Seluruh rangkaian kegiatan dari penelitian ini dilakukan selama kurang lebih 9 bulan efektif. Setiap kegiatan dari penelitian ini dilakukan pada tempat yang berbeda-beda. Peremajaan dan inokulasi dari kedua buah Ganoderma spp. tersebut dilakukan di Laboratorium Penyakit Hutan IPB dan LRPI. Selanjutnya seluruh rangkaian kegiatan dilakukan di Laboratorium Penyakit Hutan IPB, Laboratorium Biologi Tanah IPB, dan rumah kaca Departemen Silvikultur IPB. 3.2 Bahan dan Alat Bahan dan alat yang digunakan untuk inokulasi isolat Ganoderma spp. ke media kayu, antara lain, toples kaca transparan berukuran diameter 12 -15 cm dan tinggi 13-16 cm berlabel, kayu sengon diameter 3 cm, 4 cm, dan 5 cm dengan panjang 5 cm, PDA steril, Laminar air flow, dan peralatan isolasi aseptik, Autoclave, Plastic wrap, dan Isolat murni dari Ganoderma spp. dari tanaman kakao (Sp.4) dan sengon (Sp.3) koleksi laboratorium Penyakit Hutan. Lalu bahan dan alat untuk penanaman inokulum Ganoderma spp. bersama bibit sengon usia 2 bulan antara lain, bibit sengon usia 1½ bulan dari persemaian Cibanteng, Bogor, Polibag, bahan pembawa agar dan bahan pembawa kayu yang telah diinokulasi Ganoderma spp. kakao dan sengon, PDA steril dan kayu steril, media tanam tanah, arang sekam, dan kompos dengan perbandingan 2:1:1, Autoclave dan plastik PP, dan Sungkup bambu dengan paranet 75 % 3.3 Metode Penelitian Rangkaian kegiatan dari penelitian ini terdiri dari pembuatan bahan pembawa, penanaman bahan pembawa bersama bibit sengon, pemeliharaan bibit, pengambilan data, dan analisis statistik. Kegiatan ini dimulai dari kegiatan pembuatan bahan pembawa PDA dan bahan pembawa kayu. Bahan pembawa PDA dibuat dengan cara peremajaan isolat Ganoderma spp. kakao (Sp.4) dan isolat Ganoderma spp. sengon (Sp.3). bahan pembawa kayu dibuat dengan cara menginokulasi isolat Sp.3 dan Sp.4 pada kayu melalui bahan pembawa PDA.

17

Kegiatan penanaman bahan pembawa bersama bibit membutuhkan PDA dan kayu yang steril, dan PDA dan kayu yang telah diinokulasi. Apabila semua tanaman sengon pada semua perlakuan berhasil hidup dengan stabil pasca penyapihan, kegiatan pengamatan dan pengambilan data dari tanaman dapat dilakukan. Data yang dikumpulkan selama kegiatan pengamatan diolah kembali dalam kegiatan analisa statistik. Secara umum, rangkaian kegiatan penelitian ini digambarkan dalam Bagan berikut (Gambar 1).

Gambar 2 Bagan kegiatan penelitian. 3.3.1 Pembuatan Bahan Pembawa Kayu dan Bahan Pembawa PDA Kegiatan ini terdiri atas sterilisasi media kayu sengon, peremajaan isolat Sp.3 dan isolat Sp.4 pada wadah stoples dan cawan Petri yang diisi media PDA, dan kegiatan inokulasi isolat ke media kayu dengan menggunakan bahan pembawa PDA. Kegiatan sterilisasi kayu dimulai dengan kegiatan pengupasan kulit kayu untuk mempermudah infeksi jamur terhadap kayu (Sinulingga, 1989). Sterilisasi kayu dilakukan dengan cara merebus kayu sengon selama 2 jam, kemudian kayu yang sudah direbus ditiriskan dan didiamkan selama 12 jam, lalu kayu tersebut dikukus dengan menggunakan Autoclave selama 30 menit pada suhu 121 oC dan tekanan 1 atm.

18

5 cm

5 cm 5 cm

a

b

c

Gambar 3 Tahapan sterilisasi kayu. 3a Pengupasan kulit. 3b Perebusan kayu. 3c Pengukusan kayu dengan autoclave. Kegiatan peremajaan isolat dilakukan secara aseptik dalam laminar air flow. Cawan Petri yang digunakan memiliki ukuran diameter 9 cm. Stoples yang digunakan sebagai wadah memiliki ukuran diameter 12 cm-15 cm dan tinggi 13 cm-16 cm. Isolat murni Ganoderma spp. dari cawan Petri ditanamkan pada media PDA dalam stoples hingga isolat berkembang dan menutupi seluruh permukaan media PDA. Setelah isolat menutupi seluruh permukaan media didalam stoples dan dipastikan tidak terjadi kontaminasi, Media kayu steril dimasukkan ke dalam stoples, jumlah kayu disesuaikan berdasarkan ukuran diameter kayu dan diameter stoples. Kemudian stoples diinkubasi selama 1-2 bulan atau sampai miselium Ganoderma spp. merayap naik ke atas media kayu dan menutupi seluruh permukaan kayu.

5 cm

Gambar 4 Bahan pembawa kayu.

19

3.3.2 Penanaman Inokulum Bersama Bibit Sengon Usia 1½ Bulan. Kegiatan ini diawali dengan kegiatan penyiapan media tanam sengon steril dengan komposisi tanah, arang sekam, dan kompos sapi dengan perbandingan 2:1:1. Metode sterilisasi tanah yang digunakan adalah sterilisasi panas basah dengan menggunakan autoclave. Tanah yang sudah steril langsung digunakan setelah 1x24 jam untuk mengantisipasi terjadinya kontaminasi dan menghindari suhu tanah yang terlalu panas. Penyapihan dilakukan setelah batangnya berkayu dan kulit terlepas, yaitu pada umur 1 – 1½ bulan setelah tumbuh pada waktu pagi atau sore hari (Hidayat 2002). Setelah seluruh bibit sengon di sapih dan inokulum ditanam bersama bibit, seluruh bibit di letakkan ke dalam sungkup yang telah dilapisi dengan paranet 75% untuk menjaga ke stabilan suhu dan mengurangi intensitas cahaya matahari.

1m

Kompos

Arang Sekam

Tanah

Gambar 5 Perbandingan kompos, arang sekam, dan tanah. Bibit sengon ditanam dengan beberapa perlakuan yang berbeda, yaitu perlakuan kontrol, penanaman kayu tanpa inokulasi (Sp.0) dan kayu dengan inokulasi (Sp.3 dan Sp.4), dan penanaman PDA tanpa inokulasi dan PDA dengan inokulasi (A). Kayu yang ditanamkan bersama bibit untuk dibedakan atas 3 ukuran, yaitu kayu dengan diameter 3 cm (K3), 4 cm (K4), dan 5 cm (K5). Isolat yang ditanamkan terbagi atas 2 jenis yaitu isolat Ganoderma spp. sengon (Sp.3) dan isolat Ganoderma spp. kakao (Sp.4). Bibit sengon pada setiap perlakuan diberikan 2 jenis perlakuan pemotongan akar, yaitu dengan pemotongan akar (P1) dan tanpa pemotongan akar (P0). Setiap perlakuan diberikan 3 kali ulangan, sehingga apabila seluruh perlakuan diurutkan adalah sebagai berikut :

20

•

Perlakuan 1, yaitu perlakuan kontrol, tanpa pemotongan akar (Kontrol P0)

•

Perlakuan 2, yaitu perlakuan kontrol, pemotongan akar (Kontrol P1)

•

Perlakuan 3, yaitu penanaman dengan kayu tanpa inokulasi 3 cm, tanpa pemotongan akar (K3 Sp.0 P0)

•

Perlakuan 4, yaitu penanaman dengan kayu tanpa inokulasi 3 cm, pemotongan akar (K3 Sp.0 P1)

•


•


•


•


•

Perlakuan 9, yaitu penanaman dengan PDA tanpa inokulasi, tanpa pemotongan akar (A Sp.0 P0)

•

Perlakuan 10, yaitu penanaman dengan PDA tanpa inokulasi, pemotongan akar (A Sp.0 P1)

•

Perlakuan 11, yaitu penanaman dengan kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon 3 cm, tanpa pemotongan akar (K3 Sp.3 P0)

•

Perlakuan 12, yaitu penanaman dengan kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon 3 cm, pemotongan akar (K3 Sp.3 P1)

•

Perlakuan 13, yaitu penanaman kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon 4 cm, tanpa pemotongan akar (K4 Sp.3 P0)

•

Perlakuan 14, yaitu penanaman kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon 4 cm, pemotongan akar (K4 Sp.3 P1)

•

Perlakuan 15, yaitu penanaman kayuyang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon 5 cm, tanpa pemotongan akar (K5 Sp.3 P0)

•

Perlakuan 16, yaitu penanaman kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. kakao 5 cm, pemotongan akar (K5 Sp.3 P1)

•

Perlakuan 17, yaitu penanaman PDA yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon, tanpa pemotongan akar (A Sp.3 P0)

21

•

Perlakuan 18, yaitu penanaman PDA yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. sengon, pemotongan akar (A Sp.3 P1)

•

Perlakuan 19, yaitu penanaman kayu yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. kakao 3 cm, tanpa pemotongan akar (K3 Sp.4 P0)

•


•


•


•


•


•

Perlakuan 25, yaitu penanaman PDA yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. kakao, tanpa pemotongan akar (A Sp.4 P0)

•

Perlakuan 26, yaitu penanaman PDA yang diinokulasi isolat Ganoderma spp. kakao, pemotongan akar (A Sp.4 P1)

3.3.3 Pengamatan, Pengambilan Data, dan Pengolahan Data Variabel yang diukur adalah pertambahan jumlah anak daun dan tinggi bibit. Tinggi bibit yang diukur adalah dari pangkal batang bawah hingga pucuk teratas yang dilakukan dengan menggunakan penggaris. Data yang didapat kemudian dituliskan pada tally sheet (lampiran) yang telah dipersiapkan. Data akhir diolah menggunakan program SAS versi 9. Pengolahan data bertujuan untuk mengukur pengaruh inokulasi Ganoderma spp. terhadap pertumbuhan bibit sengon (P. falcataria), memperhitungkan pengaruh ukuran kayu sebagai pembawa, membandingkan jenis isolat Ganoderma spp., dan mengukur pengaruh pemotongan akar terhadap kedua variabel yang diamati. Pemeliharaan tanaman terbagi atas penyiraman dan penanganan terhadap hama. Penyiraman dilakukan 2 kali sehari. Penanganan terhadap hama

22

kebanyakan dilakukan secara mekanik (pengambilan langsung hama yang terlihat) supaya tidak mempengaruhi pertumbuhan jamur. Model analisa yang digunakan adalah RAK (Rancangan acak kelompok) 4 blok dan 2 faktor. Model ini digunakan karena setiap amatan ditempatkan pada kondisi bahan pembawa jamur yang berbeda. Empat blok amatan terbagi atas, pembawa kayu diameter 3 cm, pembawa kayu diameter 4 cm, pembawa kayu 5 cm, dan pembawa agar (PDA). Faktor dalam model terdiri dari faktor pemotongan akar dan faktor isolat Ganoderma spp. yang digunakan. Faktor pemotongan akar terdiri dari dengan pemotongan akar (P1) dan tanpa pemotongan akar (P0). Faktor inokulasi terdiri dari inokulasi isolat sengon (Sp.3), inokulasi isolat kakao (Sp.4), dan tanpa inokulasi (Sp.0). Pengolahan data dimulai dengan analisis sidik ragam dengan tingkat kepercayaan 95%, apabila blok atau faktor berbeda nyata, pengolahan data dilanjutkan dengan uji lanjut. Uji lanjut digunakan untuk membandingkan perlakuan mana yang paling baik dalam percobaan. Pengujian lanjut ini menggunakan uji Duncan karena uji inilah yang paling sering digunakan dalam pengujian lanjut analisis sidik ragam.

23

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Berikut ini adalah rekapitulasi dari rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan pertambahan tinggi sengon di setiap perakuan yang ditampilkan dalam bentuk tabel. Tabel 4. Rekapitulasi rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan tinggi tanaman selama 2 bulan No.

Jenis perlakuan

Rataan pertambahan jumlah anak daun

1. Kontrol P0 13,1 2. Kontrol P1 21,7 3. K3 Sp.0 P0 16,6 4. K3 Sp.0 P1 12,1 5. K4 Sp.0 P0 26,6 6. K4 Sp.0 P1 13,7 7. K5 Sp.0 P0 12,0 8. K5 Sp.0 P1 3.7 9. A Sp.0. P0 1,6 10. A Sp.0 P1 0,5 11. K3 Sp.3 P0 -0,3 12. K3 Sp.3 P1 -1,7 13. K4 Sp.3 P0 -0,1 14. K4 Sp.3 P1 -2,6 15. K5 Sp.3 P0 -4,4 16. K5 Sp.3 P1 -3,3 17. A Sp.3 P0 2,2 18. A Sp.3 P1 2,4 19. K3 Sp.4 P0 -0,8 20. K3 Sp.4 P1 0,5 21. K4 Sp.4 P0 -3,3 22. K4 Sp.4 P1 1,0 23. K5 Sp.4 P0 -4,8 24. K3 Sp.4 P1 -2,0 25. A Sp.4 P0 -0,9 26. A Sp.4 P1 -0,2 Keterangan: A = Bahan pembawa Potato Dextrose Agar K3= Bahan pembawa kayu diameter 3cm K4= Bahan pembawa kayu diameter 4cm K5= Bahan pembawa kayu diameter 5cm P0= Tanpa pemotongan akar P1= Perlakuan Pemotongan akar Sp.0= Tanpa inokulasi Sp.3= Inokulasi Ganoderma spp. sengon Sp.4= Inokulasi Ganoderma spp. kakao

Rataan pertambahan tinggi (cm) 5,0 2,9 1,7 7,7 9,5 7,0 5,9 1,1 1,0 0,5 0,5 0,3 0,3 0,5 0,1 0,1 0,2 0,4 0,2 -0,3 -0,2 -0,1 -0,3 -0,7 -0,01 0,02

24

Berdasarkan tabel rekapitulasi diatas, dapat diketahui bahwa perlakuan inokulasi Ganoderma spp. (Sp.3 dan Sp.4) memiliki tingkat pertumbuhan anak daun dan tinggi lebih rendah daripada perlakuan tanpa inokulasi (Sp.0). Hal tersebut juga terlihat dari pengamatan fisik sesuai dengan Gambar 5 dibawah ini.

10 cm

Gambar 6 Perbandingan perlakuan Sp.0, Sp.3, dan Sp.4. Nilai minus disebabkan oleh berkurangnya rata-rata pertambahan jumlah anak daun dan tinggi tanaman. Secara kasat mata, pada 3 minggu pertama setelah penanaman, tidak ada perbedaan yang mencolok dari perkembangan tanaman sengon pada setiap perlakuan. Pada minggu ke-5, pertumbuhan tanaman antara perlakuan Sp.0, Sp.3 dan Sp.4 mulai terlihat perbedaannya. Perbedaan tersebut terdapat pada perkembangan pucuk tanaman yang terhambat, serta munculnya tanda penyakit berupa tubuh buah Ganoderma spp. pada beberapa tanaman sengon yang diberikan perlakuan kayu yang diinokulasi isolat Sp.3 dan Sp.4 seperti yang ditunjukkan pada Gambar 6.

5 cm

Gambar 7 Tubuh buah Ganoderma spp pada perlakuan kayu yang diinokulasi Isolat Sp.3 dan Sp.4 (diberi tanda lingkaran putih).

25

Tabel 5. Rekapitulasi hasil sidik ragam terhadap variabel yang diamati Blok

Pemotongan akar (P)

Jenis isolat (Sp.)

P*Sp.

Tinggi

*

tn

***

*

Jumlah Anak daun

**

tn

***

**

Variabel

Keterangan : ***= Berbeda nyata pada taraf uji 0,01 **= Berbeda nyata pada taraf uji 0,05 *= Berbeda nyata pada taraf uji 0,1 tn= Tidak berbeda nyata

Berdasarkan hasil sidik ragam, faktor pemotongan akar tidak berbeda nyata terhadap variabel pertambahan tinggi dan pertambahan jumlah anak daun. Faktor jenis isolat (Sp.0, Sp.3, dan Sp.4) berbeda nyata pada pada tingkat kepercayaan 99% terhadap kedua variabel. Interaksi kedua faktor tersebut berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95% terhadap variabel pertambahan jumlah anak daun dan berbeda nyata terhadap variabel pertambahan tinggi pada tingkat kepercayaan 90%. Blok yang terdiri dari jenis bahan pembawa yang digunakan (PDA, kayu diameter 3 cm, 4, cm, dan 5 cm) berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 90% terhadap variabel pertambahan tinggi dan berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95% terhadap variabel pertambahan anak daun. 4.1.1. Pengaruh Blok (Jenis Bahan Pembawa) Tabel 6. Hasil uji Duncan pengaruh blok terhadap pertambahan anak daun Jenis bahan pembawa

Rata-rata pertambahan jumlah anak daun

Kayu diameter 4 cm (K3)

5,9 a


4,4 ab


0,2 c

PDA (A)

0,9 bc

Keterangan: Huruf yang sama dibelakang angka menunjukkan pengaruh yang tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%.

Secara umum keempat jenis bahan pembawa memberikan pengaruh yang berbeda, baik terhadap pertambahan anak daun, maupun terhadap pertambahan tinggi tanaman. K5 memiliki rata-rata pertambahan jumlah anak daun terkecil dengan nilai 0,2, kemudian A memiliki rata-rata pertumbuhan daun terkecil kedua

26

dengan nilai 0,9. Nilai dari rata-rata pertumbuhan anak daun kedua jenis bahan pembawa tersebut berbeda cukup jauh dengan rata-rata pertumbuhan anak daun dari K4 dan K3 yang masing masing bernilai 5,9 dan 4,4. Walaupun nilai dari A dan K4 terpaut cukup jauh, namun kedua perlakuan tersebut tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%. Perlakuan A hanya berbeda nyata terhadap perlakuan K3 dan tidak berbeda nyata dengan perlakuan K5. Perlakuan K5 berbeda nyata dengan perlakuan K4 dan K3, namun tidak berbeda nyata dengan perlakuan A. Pengaruh jenis bahan pembawa terhadap pertumbuhan tinggi tanaman tidak menunjukkan perbedaan menonjol sebagaimana ditunjukkan pada variabel pertambahan jumlah anak daun. Rata-rata pertambahan tinggi terkecil terdapat pada jenis bahan pembawa K5 dengan nilai 0,4 cm. Rata-rata pertumbuhan tinggi yang paling tinggi terdapat pada jenis bahan pembawa K4 dengan nilai 2,8 cm. K3 dan A masing masing bernilai 1,7 cm dan 1,0 cm. Tabel 7. Hasil uji Duncan pengaruh blok terhadap pertambahan tinggi Jenis bahan pembawa

Rata-rata pertambahan tinggi (cm)


1,7 ab


2,8 a


0,4 b

PDA (A)

1,0 ab

Keterangan: Huruf yang sama dibelakang angka menunjukkan pengaruh yang tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%

Jenis bahan pembawa yang berbeda nyata pada variabel pertambahan tinggi hanya K4 dan K5. Bahan pembawa K3 dan A tidak berbeda nyata satu sama lain dan tidak berbeda nyata dengan bahan pembawa K3 dan A. 4.1.2. Pengaruh Jenis Isolat (Sp.) Isolat jamur yang digunakan dalam penelitian ini hanya 2 jenis, namun untuk membandingkan perlakuan dengan kontrol, maka Sp.0 (tanpa inokulasi) dimasukkan dalam pengujian statistik. Seperti diketahui sejak awal bahwa secara kasat mata terlihat bahwa perlakuan Sp.0 memiliki pertambahan tinggi dan

27

pertambahan jumlah anak daun yang lebih baik daripada perlakuan Sp.3 (inokulasi isolat sengon) dan SP.4 (inokulasi isolat kakao). Perbedaan tersebut juga terlihat secara statistik. Tanaman yang diberikan perlakuan Sp.0 memiliki rata-rata pertambahan anak daun paling tinggi dengan nilai 10,9. Nilai tersebut jauh lebih tinggi jika dibandingkan rata-rata pertambahan anak daun dari tanaman yang diberikan perlakuan Sp.4 dan Sp.3 yang masing masing bernilai -1,3 dan -1,0. Tabel 8. Hasil uji Duncan pengaruh faktor jenis isolat jamur terhadap pertambahan anak daun Perlakuan jenis isolat


Tanpa Inokulasi (Sp.0)

10,9 a

Inokulasi Ganoderma spp. kakao (Sp.4)

-1,3 b

Inokulasi Ganoderma spp. sengon (Sp.3)

-1,0 b


Pada hasil uji Duncan pengaruh faktor jenis isolat terhadap pertambahan anak daun, perlakuan Sp.0 berbeda nyata dengan Sp.3 dan Sp.4. Walaupun rata-rata pertambahan anak daun perlakuan Sp.3 memiliki rata-rata pertambahan jumlah anak daun yang lebih kecil daripada perlakuan Sp.4, namun perlakuan Sp.3 tidak berbeda nyata dengan perlakuan Sp.4. Tanaman yang diberikan perlakuan Sp.0 memiliki rata-rata pertambahan tinggi yang paling tinggi dengan nilai 4,3 cm. Perlakuan Sp.3 memiliki rata-rata pertambahan tinggi 0,3 cm dan Perlakuan Sp.4 memiliki rata-rata pertambahan tinggi -0,2 cm. Tabel 9. Hasil uji Duncan pengaruh faktor jenis isolat jamur terhadap pertambahan tinggi tanaman Perlakuan jenis jamur


Tanpa Inokulasi (Sp.0)

4,3 a

Inokulasi Ganoderma spp. sengon (Sp.3)

0,3 b

Inokulasi Ganoderma spp. kakao (Sp.4)

-0,2 b


28

Hasil uji Duncan faktor jenis isolat jamur terhadap pertambahan tinggi menunjukkan bahwa, pertambahan tinggi paling rendah terdapat pada tanaman yang diberikan inokulasi isolat jamur Sp.4. Perlakuan Sp.3 dan Sp.4 tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%. Perlakuan Sp.3 dan Sp.4 berbeda nyata terhadap perlakuan Sp.0 yang memiliki rata-rata pertambahan tinggi paling tinggi. 4.1.3. Pengaruh Pemotongan Akar (P) Perlakuan P1 memiliki pertambahan anak daun lebih tinggi dengan nilai dengan nilai 3,7. Perlakuan P0 yang memiliki rata-rata pertambahan jumlah anak daun lebih rendah dengan nilai 2,0. Kedua perlakuan tersebut tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%. Tabel 10. Hasil uji Duncan pengaruh pemotongan akar terhadap pertambahan anak daun Perlakuan pemotongan akar


Pemotongan Akar (P1)

3,7 a

Tanpa Pemotongan Akar (P0)

2,0 a


Perlakuan P0 dan P1 tidak memiliki perbedaan nilai rata-rata pertambahan tinggi yang signifikan. Rata-rata pertambahan tinggi dari kedua perlakuan tersebut hanya terpaut kurang dari 1 cm. Rata-rata pertambahan tinggi tanaman pada perlakuan P0 lebih tinggi daripada rata-rata pertambahan tinggi tanaman pada perlakuan P1. Nilai dari rata-rata pertambahan tinggi dari kedua perlakuan tersebut secara berturut-turut adalah 1,6 cm untuk perlakuan P0 dan 1,4 cm untuk perlakuan P1. Tabel 11. Hasil uji Duncan pengaruh pemotongan akar terhadap pertambahan tinggi Perlakuan pemotongan akar


Pemotongan Akar (P1)

1,4 a

Tanpa Pemotongan Akar (P0)

1,6 a


29

4.1.4. Pengaruh Interaksi Faktor Pemotongan Akar dan Jenis Isolat Tabel 12. Hasil uji Duncan pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan jumlah anak daun Perlakuan Interaksi 2 Faktor


Pemotongan akar, tanpa inokulasi (P1 Sp.0)

7,5 b

Tanpa pemotongan akar, tanpa inokulasi (P0 Sp.0)

14,2 a

Tanpa Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. sengon (P0 Sp.3)

-0,7 c

Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. sengon (P1 Sp.3)

-1,3 c

Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. kakao (P1 Sp.4)

-0,2 c

Tanpa pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. kakao (P0 Sp.4)

-2,4 c


Interaksi faktor dalam suatu penelitian menjelaskan bagaimana interaksi antar faktor dapat mempengaruhi respon atau variabel yang diamati. Dalam penelitian ini hanya terdapat dua faktor sehingga hanya ada 1 interaksi yaitu interaksi antara faktor pemotongan akar dengan faktor jenis isolat jamur. Rata-rata pertambahan jumlah anak daun tertinggi terdapat pada perlakuan P0 Sp.0 dengan nilai 14,2. Rata-rata pertambahan anak daun yang paling rendah terdapat pada perlakuan P1 Sp.4 dengan nilai -0,2. Interaksi dari kedua faktor mempengaruhi pertambahan jumlah anak daun pada tanaman. Perlakuan P0 Sp.0 berbeda nyata dengan perlakuan P1 Sp.0. Perlakuan P0 Sp.0 dan perlakuan P1 Sp.0 berbeda nyata dengan perlakuan P1 Sp.3, P0 Sp.3, P1 Sp.4, dan P0 Sp.4. Perlakuan P1 Sp.3, P0 Sp.3, P1 Sp.4, dan P0 Sp.4 tidak berbeda nyata satu sama lain. Pada tabel hasil uji Duncan pengaruh interaksi faktor terhadap pertambahan tinggi tanaman, perlakuan P0 Sp.0 dan P1 Sp.0, yang nilai memiliki nilai rata-rata pertambahan tinggi masing-masing 4,5 cm dan 4,064 cm, tidak berbeda nyata satu sama lain. Perlakuan P0 Sp.0 dan P1 Sp.0 berbeda nyata dengan perlakuan P0 Sp.3, P1 Sp.3, P0 Sp.4, dan P0 Sp.4 yang masing masing bernilai 0,3 cm, 0,3 cm, -0,07 cm, dan -0,3 cm.

30

Tabel 13. Hasil uji Duncan pengaruh interaksi antara faktor pemotongan akar dan jenis isolat terhadap pertambahan jumlah anak daun Perlakuan interaksi 2 faktor Tanpa pemotongan akar, tanpa inokulasi (P0 Sp.0) Pemotongan akar, tanpa inokulasi (P1 Sp.0) Tanpa Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. sengon (P0 Sp.3) Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. sengon (P1 Sp.3) Tanpa Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. kakao (P0 Sp.4) Pemotongan akar, inokulasi Ganoderma spp. kakao (P1 Sp.4)

Rata-rata pertambahan tinggi (cm) 4,5 a 4,1 a 0,3 b 0,3 b -0,07 b -0,3 b


4.2. Pembahasan Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa faktor yang paling mempengaruhi pertumbuhan tanaman secara nyata adalah faktor jenis isolat. Hal tersebut menunjukkan perbedaan antara perlakuan tanpa inokulasi dan perlakuan dengan inokulasi, sehingga terdapat gambaran bahwa metode inokulasi Ganoderma spp. yang dilakukan cukup efektif. Isolat Ganoderma spp., baik yang diambil dari tanaman sengon maupun tanaman kakao, mampu menginfeksi tanaman sengon dengan baik. Meskipun tanaman yang diberikan perlakuan isolat Sp.4 memiliki pertumbuhan yang lebih buruk terhadap pertambahan tinggi dan pertambahan jumlah anak daun dibandingkan dengan tanaman yang diberikan perlakuan isolat Sp.3, namun kedua isolat yang diujikan tidak berbeda nyata pada tingkat kepercayaan 95%. Hal tersebut mengindikasikan bahwa Ganoderma spp. yang menginfeksi tanaman kakao dapat menular ke tanaman sengon, begitu pula sebaliknya. Sehingga bisa dikatakan bahwa sistem agroforestri tanaman cokelat dan sengon memiliki resiko epidemi penyakit busuk akar yang disebabkan Ganoderma Spp.. Hasil Penelitian juga mengindikasikan bahwa tanaman sengon pada tingkat semai dapat terinfeksi Ganoderma spp. apabila media tanam telah telah terkontaminasi Ganoderma spp.dengan tingkat konsentrasi yang cukup tinggi.

31

Faktor pemotongan akar yang tidak berbeda nyata satu sama lain disebabkan oleh perbedaan reaksi dari tanaman yang diberikan perlakuan tanpa inokulasi dan perlakuan inokulasi terhadap pemotongan akar. Tanaman yang diberikan perlakuan potong akar pada perlakuan tanpa inokulasi (Sp.0 P1) memiliki rata-rata pertambahan anak daun yang lebih tinggi dibandingkan perlakuan tanpa inokulasi tanpa potong akar (Sp.0 P0). Rook (1972) menyatakan bahwa semai yang diberikan perlakuan pemotongan akar memiliki rasio pucuk/akar yang lebih seimbang dan meningkatkan keberhasilan penanaman di lapangan. Sedangkan Darmono dan Panji (1999) menyatakan bahwa penularan Ganoderma terjadi melalui kontak akar dengan cendawan,luka pada akar dapat meningkatkan kemungkinan infeksi dari jamur busuk akar. Gejala yang dialami oleh tanaman yang terinfeksi jamur Ganoderma spp. antara lain, terhambatnya perkembangan pucuk dan akar, serta daun yang rontok. Pada penelitian ini perlakuan pemotongan akar dan tanpa pemotongan akar pada perlakuan inokulasi tidak berbeda nyata, hal ini menunjukkan bahwa terdapat faktor lain diluar perlakuan yang mempengaruhi perlakuan pemotongan akar. Pada beberapa perlakuan inokulasi kayu ditemukan tubuh buah Ganoderma spp.. Jamur yang telah membentuk tubuh buah memiliki hambatan pertumbuhan lebih rendah (Jones, 1997), maka kemungkinan jamur untuk berkembang dan menginfeksi akar akan semakin besar. Tubuh buah Ganoderma spp. pada bibit sengon tidak muncul pada pangkal batang sebagaimana ditemukan pada tanaman dewasa (Basset dan Peters, 2003). Tubuh buah Ganoderma spp. muncul dari bagian polibag yang berlubang. Ganoderma spp dari kayu diduga berkembang dan merambat melalui arang sekam dan membentuk tubuh buah. Arang sekam digunakan sebagai campuran media dalam penelitian ini karena memiliki porositas yang baik bagi perkembangan akar dan memiliki daya pegang air yang tinggi (Balai Penelitian Pasca Panen, 2001 dalam Nurbaity et al., 2009). Namun rupanya baru-baru ini media arang sekam juga telah digunakan sebagai media bahan pembawa mikoriza arbuskula untuk aplikasinya di lapangan (Patadungan, 2009 dalam Nurbaity et al.,2009). Dengan begitu, ada kemungkinan bahwa arang sekam juga efektif sebagai bahan pembawa pada uji inokulasi Ganoderma spp.. Selain tubuh buah pada beberapa tanaman pada perlakuan

32

inokulasi dengan menggunakan bahan pembawa kayu, terdapat tanda penyakit lain yaitu miselium pada akar tanaman.

1 cm Gambar 8 Tubuh buah setelah polibag dibuka. Pertumbuhan tinggi dan anak daun yang paling rendah ditemukan pada tanaman dengan jenis bahan pembawa kayu berdiameter 5 cm. Dengan kata lain bahan pembawa kayu berukuran 5 cm adalah bahan pembawa yang paling efektif untuk menginokulasi tanaman. Hal ini disebabkan karena kayu dengan diameter 5 cm memiliki volume yang lebih besar dan secara memiliki kandungan nutrisi yang lebih banyak, sehingga lebih menunjang jamur untuk berkembang.

1 cm

1 cm

Gambar 9 Miselium pada akar tanaman yang diberikan perlakuan inokulasi kayu Walaupun perlakuan inokulasi dengan bahan pembawa PDA memiliki rata-rata pertambahan tinggi dan anak daun yang kecil, namun pada perlakuan tersebut tidak ditemukan tanda penyakit seperti miselium akar dan tubuh buah, sebagaimana yang muncul pada perlakuan inokulasi kayu. Berdasarkan data yang didapatkan, pertumbuhan seluruh tanaman yang diberikan perlakuan dengan

33

bahan pembawa PDA cenderung buruk. Tanaman yang diberikan perlakuan inokulasi isolat Sp.3 pada media agar memiliki pertambahan tinggi dan jumlah anak daun yang lebih tinggi dibandingkan tanaman yang diberikan perlakuan agar tanpa inokulasi, hal tersebut menunjukkan bahwa ada faktor lain yang berpengaruh terhadap tanaman selain perlakuan yang diberikan. Setelah dicermati dilapangan, ditemukan serangga kutu putih pada sebagian besar perlakuan yang menggunakan bahan pembawa PDA. Serangga kutu putih menyerang pucuk tanaman muda dan menghisap cairan dari tanaman tersebut sehingga dapat menghambat pertumbuhan tanaman sampai mematikan tanaman (Wibawanti, 2010). Serangga tersebut bersimbiosis dengan semut untuk membantu penyebarannya (Wibawanti, 2010). Karena bahan pembawa PDA yang digunakan mengandung gula, maka penyebaran semut kerap kali berada pada perlakuan bahan pembawa PDA, sehingga penyebaran kutu putih umumnya berkisar pada tanaman yang diberikan perlakuan agar dan mempengaruhi pertumbuhan tanaman tersebut.

1 cm

Gambar 10 Hama kutu putih.

34

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan Metode inokulasi kayu yang diaplikasikan dalam penelitian ini efektif dalam menginokulasi tanaman sengon pada tingkat semai. Kedua isolat yang dipakai dalam penelitian ini efektif menyebabkan infeksi yang menghambat pertumbuhan tanaman. Inokulasi menggunakan pembawa kayu lebih efektif daripada inokulasi menggunakan pembawa agar. Perlakuan pemotongan akar cenderung tidak berpengaruh. Pola agroforestri sengon dan kakao memiliki resiko terkena epidemi penyakit busuk akar, karena isolat Ganoderma spp. yang didapat dari tanaman kakao dapat menginfeksi tanaman sengon. 5.2 Saran Variabel yang digunakan dalam penelitian perlu ditambahkan, seperti tingkat infeksi dan berat akar segar tanaman, untuk lebih memastikan keefektifan metode inokulasi yang diuji. Perlu diadakan penelitian lanjutan penanaman bibit sengon bersama Ganoderma spp. dan agen antagonis untuk menguji efektifitas agen antagonis tersebut dalam mengendalikan Ganoderma spp. secara hayati. Karena penelitian ini hanya memakai satu jenis tanaman dengan jumlah cukup banyak, maka resiko terkena hama akan semakin besar, sehingga selanjutnya perlu dicari metode yang minim gangguan hama, tanpa menghambat proses inokulasi cendawan.

35

DAFTAR PUSTAKA Arupa.

2008. Hutan Rakyat Wonosobo. http://www.arupa.or.id/index2.php?option=com_content&do_pdf=1&id=3 9 [16 november 2010].

Basset K, Peters. 2003. Ganoderma: A Significant Root Pathogen. Arborilogical Services Inc. Publication. http://www.arborilogical.com/articles/Ganoderma.htm. [6 Februari 2010] Basset. 2005. Poroid Fungi of the Northeast – Orders, Families & Genera. http://www.nemf.org/files/poroid/poretax.pdf [25 September 2010]. [BPS]

Biro Pusat Statistik. 2004. Statistik Kehutanan. http://www.dephut.go.id/informasi/statistic/stat_2004/BPS/11402/pdf [6 Juli 2010].

Cappuccino JG, Sherman N. 1983. Microbiology: a Laboratory Manual. Benjamin-cummings Publishing Company: California. 477p. Darmono TW, Panji T. 1999. Ganoderma, dari Penyakit Tanaman ke Obat Serbaguna Bagi Manusia. Di dalam: Teknis Bioteknologi Perkebunan Untuk Praktek. Prosiding Pertemuan Ilmiah Tahunan; Bogor, 5-6 Mei 1999. Bogor: Perhimpunan Mikrobiologi Indonesia Cabang Bogor. Hlm 31-37. Dharmaputra OK, Gunawan AW, Nampiah. 1989. Penuntun Praktikum Mikologi Dasar. Bogor: Pusat Antar Universitas Ilmu Hayat, Institut Pertanian Bogor. 47hal. Gandjar I, Samson RA, Vermeulen KT, Oetari A, Santoso I. 1999. Pengenalan Kapang Tropika Umum. Universitas Indonesia: Depok. 136 hal. Haselwandter K., Bowen G.D. 1996. Mycorrhizal Relations in Trees for Agroforestry and Land Rehabilitation. J. Forest Ecology and Management 8(1): 1-17. Hendromono. 1992. Kemungkinan Penggunaan Sub-soil Tanah Pertumbuhan Bibit Sengon. Balai Penelitian Hutan. Bogor. 7 hal.

Untuk

Jones K. 1997. Shitake The Healing Mushroom. Rochester: Healing Arts Press. 120 p. Jong SC, Birmingham JM. 1992. Medicinal Benefits of the Mushroom Ganoderma. J. Advances in Applied Microbiology, 37(6): 101-134. Landecker E.M,. 1996. Fundamentals of The Fungi. New Jersey: Prantice-Hall, Inc. 1475 p. Martawijaya. A, I. Kartasujana. 1977. Ciri Umum, Sifat dan Kegunaan Jenis-Jenis Kayu Indonesia. Publikasi Khusus No. 41. LPHH, Bogor. Miles PG. 1993. Biological Background for Mushroom Breeding. Amsterdam: Gordon and Breach Science Publisher.

36

Nair, KSS. 2000. Insects Pest and Diseases in Indonesian Forest an Assessment of the Major Threats, Research Efforts and Literature. Center for International Forestry Research (CIFOR). Bogor. Nurbaity A, Herdiantoro D, Mulyani O. 2009. Pemanfaatan Bahan Organik Sebagai Bahan Pembawa Inokulan Fungi Mikoriza Arbuskula. J. Biologi 13(1): 7-11. Nusantara AD. 2002. Tanggap Semai Sengon (Paraserianthes falcataria (L) Nielsen) Terhadap Inolukasi Ganda Cendawan Mikoriza Arbuskular dan Rhizobium sp. J. Ilmu-Ilmu Pertanian Indonesia 4(4): 62-70. Pajirmo H, Soenanto H. 2008. Jamur Ling Zhi Raja Herbal, Seribu Khasiat. Jakarta: PT. Agromedia Pustaka. Pelczar MJJr, Chan E.C.S. 1986. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Vol ke-1,2. Hadioetomo RS, Imas T, Tjirosomo SS, Angka SL, penerjemah; Jakarta UI Press. Terjemahan dari: Elements of Microbiology. Pukon. 2011. Mengenal Pathogen Ganoderma Pada Kelapa Sawit - Volume II. http://www.pukon.co.id/nogan/index.php/id/berita/127-mengenalpathogen-Ganoderma-pada-kelapa-sawit-volume-ii [25 Mei 2011] Schlegel HG, Schmidtt K. 1985. Mikrobiologi Umum. Ed ke-6. Baskoro RMT, penerjemah; Wattimena JR, Editor Yogyakarta: Gajah Mada Univ Press. Terjemahan dari: Allgemeine Mikrobiologie. 678 p. Semangun H. 2000. Penyakit-Penyakit Tanaman Perkebunan Indonesia. Yogyakarta: Gajah Mada Univ Press. 808 hal. Sinulingga, W. 1989. Pengendalian Biologi Penyakit Cendawan Akar Putih pada Tanaman Karet. Pusat Penelitian Perkebunan Sei. Putih, Galang. Hal. 1-7. Tjitrosoepomo. 1988. Taksonomi Tumbuhan. Gajah Mada University. Press: Yogyakarta. 447 hal. Turner PD. 1981. Diseases and Disorders of the Oil Palm in Malaysia. Oxford University Press. 247 p. Verbist B, Van Noordwjik M, Agus F, Suprayogo D, Hairiah K, Pasya G, Farida. 2004. Peranan Agroforestri dalam Mempertahankan Fungsi Hidrologi Daerah Aliran Sungai (DAS). J. Agrivita 26(1): 1-8. Wibawanti R. 2010. Mengendalikan Hama Kakao. http://ditjenbun.deptan.go.id/perlindungan/index.php?option=com_content &view=article&id=55%3Akutu-putih-mealy-bugmembantumengendalikan-hama-kakao&catid=15%3Ahome&Itemid=21 [20 Januari 2011]. Widyastuti SM. 2007. Peran Trichoderma spp. Dalam Revitalisasi Kehutanan di Indonesia. Yogyakarta: Gajah Mada University Press, 255 hal.

37

LAMPIRAN

38

Lampiran 1. Hasil uji Duncan terhadap variabel jumlah anak daun menggunakan software SAS 9 HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Class Level Information Class

Levels Values

blok

4 agar kayu3 kayu4 kayu5

P

2 P0 P1

Sp.

3 Sp.0 Sp.1 Sp.2 Number of Observations Read 72 Number of Observations Used 72

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Dependent Variable: anak daun Source

DF Sum of Squares Mean Square F Value

Model

8

3013.054294

376.631787

Error

63

2128.979056

33.793318

Corrected Total

71

5142.033350

11.15 <.0001

R-Square Coeff Var Root MSE daun Mean 0.585966

203.1996

5.813202

Pr > F

2.860833

39

Source DF

Type I SS Mean Square F Value

Pr > F

blok

3

401.821228

133.940409

3.96

0.0119

P

1

51.511250

51.511250

1.52

0.2216

Sp.

2 2306.931608 1153.465804

P*Sp.

2

252.790208

34.13 <.0001

126.395104

3.74

0.0292

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for daun Note: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha

0.05

Error Degrees of Freedom Error Mean Square Number of Means Critical Range

63 33.79332

2

3

4

3.872 4.074 4.207

Means with the same letter are not significantly different. Duncan Grouping

Mean

N blok

5.897

18 kayu4

A

4.400

18 kayu3

C

0.938

18 agar

0.208

18 kayu5

A A B B B

C C

40

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for daun

Note: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha

0.05

Error Degrees of Freedom

63

Error Mean Square

33.79332

Number of Means Critical Range

2 2.738

Means with the same letter are not significantly different. Duncan Grouping Mean A

N P

3.707 36 P1

A A

2.015 36 P0

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for daun Note: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha Error Degrees of Freedom Error Mean Square

0.05 63 33.79332

41


2

3

3.354 3.528


Mean

N Sp.

A

10.864 24 Sp.0

B

-0.979 24 Sp.3

B B

-1.302 24 Sp.4

HASIL ANALISIS RAGAM RAL 1 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN ( MELIHAT INTERAKSI) The GLM Procedure Class Level Information Class P*Sp.

Levels Values 6 P1Sp.3 P1Sp.4 P1Sp.O P0Sp.3 P0Sp.2 P0Sp.O Number of Observations Read 72 Number of Observations Used 72

HASIL ANALISIS RAGAM RAL 1 FACTOR untuk DELTA DAUN ( MELIHAT INTERAKSI) The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for daun

Note: This test controls the Type I comparisonwise error rate, not the

42

experimentwise error rate. Alpha

0.05


2

66 38.34546

3

4

5

5.048 5.310 5.484 5.610 5.708


Mean

N P*Sp.

A

14.224 12 P0Sp.O

B

7.503 12 P1Sp.O

C

-0.167 12 P0Sp.4

C C

-0.667 12 P1Sp.3

C C

-1.292 12 P1Sp.3

C C

6

-2.438 12 P0Sp.4

43

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA ANAK DAUN The GLM Procedure Level of Level of perl1 perl2

N

Anak Daun Mean

Std Dev

P1

Sp.0

12

7.5033333

6.6982920

P1

Sp.3

12

-1.2916667

3.3317231

P1

Sp.4

12

-0.1666667

2.9873471

P0

Sp.0

12 14.2241667 12.1039396

P0

Sp.3

12

-0.6666667

3.3984176

P0

Sp.4

12

-2.4375000

2.6695356

44

Lampiran 2. Hasil Uji Duncan terhadap variabel tinggi menggunakan SAS 9

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Class Level Information Class Levels Values blok

4 agar kayu3 kayu4 kayu5

P

2 P1 P0

Sp.

3 SP.0 SP.3 SP.4

Number of Observations Read 72 Number of Observations Used 72

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Dependent Variable: tinggi Source

DF Sum of Squares Mean Square F Value

Model

8

349.6691500

43.7086438

Error

63

528.1684375

8.3836260

Corrected Total

71

877.8375875

5.21 <.0001

R-Square Coeff Var Root MSE tinggi Mean 0.398330

195.4734

2.895449

Pr > F

1.481250

45

Source DF

Type I SS Mean Square F Value

Pr > F

blok

3

60.3306042

20.1102014

2.40

0.0762

P

1

0.6942347

0.6942347

0.08

0.7745

Sp.

2 287.8337583 143.9168792

P*Sp.

2

0.8105528

17.17 <.0001

0.4052764

0.05

0.9528

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for tinggi Note: This test controls the Type I comP1risonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha

0.05


63 8.383626

2

3

4

1.929 2.029 2.095

Means with the same letter are not significantly different. Duncan Grouping A

Mean

N blok

2.8428

18 kayu4

1.6911

18 kayu3

1.0267

18 kayu5

0.3644

18 agar

A B

A

B

A

B

A

B B

46

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for tinggi

Note: This test controls the Type I comP1risonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha

0.05

Error Degrees of Freedom

63

Error Mean Square

8.383626


2 1.364

Means with the same letter are not significantly different. Duncan Grouping A

Mean

N P

1.5794 36 P0

A A

1.3831 36 P1

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Duncan's Multiple Range Test for tinggi Note: This test controls the Type I comP1risonwise error rate, not the experimentwise error rate. Alpha Error Degrees of Freedom Error Mean Square

0.05 63 8.383626

47


2

3

1.670 1.757


Mean

N Sp.

A

4.2958 24 SP.0

B

0.3088 24 SP.3

B B

-0.1608 24 SP.4

HASIL ANALISIS RAGAM RAK 2 FACTOR untuk DELTA TINGGI The GLM Procedure Level of Level of P Sp.

N

tinggi Mean

Std Dev

P1

SP.0

12

4.06416667 4.57508958

P1

SP.3

12

0.33666667 0.39375427

P1

SP.4

12 -0.25166667 0.72930644

P0

SP.0

12

4.52750000 5.37634233

P0

SP.3

12

0.28083333 0.32258778

P0

SP.4

12 -0.07000000 1.69482099

UJI INOKULASI Ganoderma spp. TERHADAP TANAMAN SENGON (Paraserianthes falcataria) SEBAGAI TANAMAN PENAUNG KAKAO (Theobroma cacao)

Recommend Documents