TESIS
SPIRULINA PLATENSIS MENCEGAH PENURUNAN KOMPONEN DARAH PERIFER PADA TIKUS (RATTUS NORVEGICUS) YANG DIBERIKAN CYCLOPHOSPAMIDE
RATNA SARI DEWI
PROGRAM PASCASARJANA UNIVERSITAS UDAYANA DENPASAR 2014 1
2
TESIS
SPIRULINA PLATENSIS MENCEGAH PENURUNAN KOMPONEN DARAH PERIFER PADA TIKUS (RATTUS NORVEGICUS) YANG DIBERIKAN CYCLOPHOSPAMIDE
RATNA SARI DEWI NIM 0814048201
PROGRAM MAGISTER PROGRAM STUDI ILMU BIOMEDIK PROGRAM PASCASARJANA UNIVERSITAS UDAYANA DENPASAR 2014
3
SPIRULINA PLATENSIS MENCEGAH PENURUNAN KOMPONEN DARAH PERIFER PADA TIKUS (RATTUS NORVEGICUS) YANG DIBERIKAN CYCLOPHOSPAMIDE
Tesis untuk Memperoleh Gelar Magister Pada Program Magister, Program Studi Ilmu Biomedik, Program Pascasarjana Universitas Udayana
RATNA SARI DEWI NIM 0814048201
PROGRAM MAGISTER PROGRAM STUDI ILMU BIOMEDIK PROGRAM PASCASARJANA UNIVERSITAS UDAYANA DENPASAR 2014
4
Lembar Pengesahan
TESIS INI TELAH DISETUJUI PADA TANGGAL 20 FEBRUARI 2014
Pembimbing I,
Prof. dr. I Gusti Made Aman, Sp.FK NIP 1945 0619 197602 1 001
Pembimbing II,
dr. Tjokorda Gde Dharmayuda, Sp.PD, KHOM NIP 1956 0621 198312 1 001
Mengetahui
Ketua Program Magister Ilmu Biomedik Program Pascasarjana Universitas Udayana,
Prof. Dr. dr. Wimpie Pangkahila, Sp.And.FAACS NIP: 19461213 197107 1 001
Direktur Program Pascasarjana Universitas Udayana,
Prof. Dr. dr. AA. Raka Sudewi, Sp.S (K) NIP: 19590215 198510 2 001
5
Tesis Ini Telah Diuji Pada Tanggal 28 Februari 2014
Panitia Penguji Tesis Berdasarkan SK Rektor Universitas Udayana Nomor: 0382a/UN144/HK/2014, Tertanggal 17 Februari 2014
Ketua
: Prof. dr. I Gusti Made Aman, Sp.FK
Sekretaris
: dr. Tjokorda Gde Dharmayuda, Sp.PD, KHOM
Anggota
: 1. Prof. Dr. dr. N. Adiputra, MOH 2. Prof. Dr. dr. N. Tigeh Suryadhi, MPH, Ph.D 3. Dr. dr. Ida Sri Iswari, SpMK, M.Kes
6
ABSTRAK
SPIRULINA PLATENSIS MENCEGAH PENURUNAN KOMPONEN DARAH PERIFER PADA TIKUS (RATTUS NORVEGICUS) YANG DIBERIKAN CYCLOPHOSPAMIDE
Spirulina platensis adalah mikroalga hijau-biru. Spirulina platensis mengandung vitamin seperti vitamin B, vitamin E, Vitamin K, phenolic acids, tocopherols, g-linolenic acid, asam folat, pigmen seperti b-carotenes, chlorophyll a dan phycocyanin, dan mineral terutama zat besi. Spirulina mempunyai fungsi sebagai antioksidan, antiviral, imunomodulator, mampu mengobati dislipidemia, meningkat hemoglobin, leukosit dan trombosit serta mampu menstimulasi stem sel di sumsum tulang. Kemampuan meningkatkan dan menstimulasi sumsum tulang dan diperkirakan bisa mengurangi efek samping supresi sumsum tulang akibat pemberian cyclophospamide. Penelitian ini bertujuan untuk melihat bahwa Spirulina platensis bisa mencegah penurunan komponen darah perifer pada tikus yang diberikan cyclophospamide. Penelitian Randomized Post Test Only Control Group Design ini dilakukan selama 14 hari dengan menggunakan 30 ekor Rattus norvegicus, jantan dewasa yang dibagi menjadi Kelompok Kontrol (akuabides 2cc), Kelompok Perlakuan 1 (spirulina 250 mg / Kg BB) dan Perlakuan 2 (spirulina 500 mg / Kg BB). Perlakuan masing-masing kelompok dimulai dari hari 1-14 dan pada hari ke 7 diberikan cyclophopamide 50 mg / Kg BB intraperitoneal dosis tunggal. Pemeriksaan darah dilakukan pada hari ke 11 dan hari ke 14. Pada penelitian ini dengan analisis One Way Anova didapatkan perbedaan yang bermakna (p < 0,05) kadar hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit dan neutrofil pada hari ke 11 dan 14 pada kelompok kontrol, kelompok perlakuan 1 dan 2. Pada uji Post Hoc-LSD ditemukan bahwa pencegahan penurunan hemoglobin, eritrosit, trombosit sudah terjadi pada dosis 250 mg/Kg BB dan leukosit dan neutrofil dibutuhkan peningkatan dosis sampai 500 mg/Kg BB tikus (p < 0,05). Penelitian menyimpulkan bahwa spirulina 250 – 500 mg / kg BB tikus dapat mencegah penurunan hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit dan neutrofil. Disarankan untuk melakukan penelitian lebih lanjut untuk mencari dosis yang lebih tepat agar bisa menghindari efek pro oksidan pada hemoglobin tetapi sekaligus mampu memenuhi kebutuhan dosis pada kelompok leukosit.
Kata kunci: Cyclophospamide, spirulina, Rattus norvegicus, darah perifer
7
ABSTRACT
SPIRULINA PLATENSIS PREVENTED THE DECREASE IN PERIPHERAL BLOOD IN RATTUS NORVEGICUS ADMINISTRATED CYCLOPHOSPAMIDE
Spirulina platensis is a blue-green micro-algae. Spirulina contains vitamins like vitamin B, vitamin E, Vitamin K, phenolic acids, tocopherols, glinolenic acid, folic acid, pigments like b-carotenes, chlorophyll a and phycocyanin and mineral like iron. Spirulina has functions as anti-oxidant, antiviral, immunomodulatory, treating dyslipidemia, stimulating stem cells in the bone marrows and increasing hemoglobin, leucocyte and platelets. The ability of Spirulina to improve and stimulate the bone marrow is expected to reduce the side effects of bone marrow suppression due to cyclophospamide administration. This study aimed to see that spirulina may prevent the decrease in peripheral blood components in rats injected cyclophospamide. A Randomized Post Test Only Control Group Design experiment was conducted for 14 days, using 30 adult males of Rattus norvegicus. The rats was divided into three groups consisting of ten animals in each group. Control-Group animals were fed orally with 2 ml of aquabidest for 14 days. Group-I animals were each fed with 250 mg/kg body of spirulina and Group-2 animals were each fed with 500 mg/kg body of spirulina for 14 days. On the day 7, the rats were given a single i.p. injection of cyclophospamide 50 mg/kg body. The blood samples were collected from each group on day 11th and 14th, respectively. In this study, a significant difference (p < 0,05) in the level of hemoglobin, erythrocytes, leucocytes, platelets and neutrophils on day 11 and 14 in the control group and treatment group1 and 2 were found in One Way Anova analysis. The post ad Hoc analysis found that the prevention of hemoglobin, erythrocytes, and platelets decline had occurred at a dose 250 mg/Kg BB. Leucocytes and neutrophils required increasing doses up to 500 mg/Kg BB rat (p < 0,05). In summary, the study showed that the dose of spirulina of 250 – 500 mg/kg body weight could prevent the decrease of hemoglobin, eritrocyte, leucocyte, platelet, and neutrophil. The specific spirulina dose to prevent prooxidant effect on hemoglobin is needed to be further evaluated.
Key words: Cyclophospamide, spirulina, Rattus norvegicus, peripheral blood
8
DAFTAR ISI
Halaman SAMPUL DALAM …………………………………………………………….. PRASYARAT GELAR...………………….………….…………………...…… LEMBAR PERSETUJUAN..…………………………………………………. LEMBAR PENGESAHAN……………………………………………………. SURAT PERNYATAAN BEBAS PLAGIAT...………………………………. UCAPAN TERIMA KASIH….……………………………………………….. ABSTRAK…………………………………………………………………….... ABSTRACT……………..……………………………………………………… DAFTAR ISI……………………………………………………………………. DAFTAR TABEL…..…………………………………………...…………….. DAFTAR GAMBAR .....……….………………………………………………. DAFTAR SINGKATAN DAN LAMBANG …………………...…………….. DAFTAR LAMPIRAN ………………………………………………………..
BAB I PENDAHULUAN ………………………………….……………….. 1.1
Latar Belakang ……………………..….………………………………..
1.2
Rumusan Masalah ………………..……………………………………..
1.3
Tujuan Penelitian ……………………………………………………….
1.3.1 Tujuan Umum………………………………...…………………………
9
1.3.2 Tujuan Khusus..………………………………..……………………….. 1.4
Manfaat Penelitian……………….………………..……………………
BAB II
KAJIAN PUSTAKA………….….…………………………..……
2.1
Cyclophospamide ..………………………………………………….…
2.1.1
Efek Farmakologis ...………………………….………………………
2.2
Spirulina ..…………………………………….……………...…………
2.2.1
Spirulina sebagai antioksidan …………………………………………
2.2.2
Spirulina dan pengaruh pada sistem hematopoiesis tikus ...…...……
2.3
Hematopoesis Manusia …...……………………………………………
2.4
Tikus Winstar (Rattus norvegicus)…………….………………………
2.4.1
Hematopoiesis Rattus norvegicus…………………….………………
2.4.2
Nilai Normal Darah Perifer ………………………..………………..
BAB
III
KERANGKA BERPIKIR, PENELITIAN
KONSEP
DAN
HIPOTESIS
3.1
Kerangka Berpikir ……………...……………………..………………
3.2
Konsep Penelitian .……………………..………………………………
3.3
Hipotesis Penelitian……...………………………..…………………….
BAB IV
METODE PENELITIAN ……………………………...………......
4.1
Rancangan Penelitian…………………………………..……………….
4.2
Subjek dan Sampel……….……………..…………………..…………..
10
4.2.1 Besaran Sampel ………………………………………………………… 4.2.1.1 Teknik penentuan Sampel ……………………………………………. 4.3
Variabel ……..………………………………………………………...…
4.3.1
Klasifikasi Variabel.………………………………………………...…
4.3.2
Definisi operasional variable…………………………………………...
4.4
Bahan dan Instrumen Penlitian ………………………………………
4.5
Protokol Penelitian ………...…………………………………………..
4.6
Analisis Data …………………………………………………………....
BAB V
HASIL PENELITIAN ………..……………………………………..
5.1
Uji Normalitas Data………………...…………………………………..
5.2
Uji Homogenitas Data antar Kelompok…...………………………….
5.3
Hemoglobin…………………………………….……………………….
5.3.1
Efek perlakuan antar kelompok di hari ke 11………………………..
5.3.2
Efek perlakuan antar kelompok hari ke 14……………...……………
5.4
Eritrosit……………………………….………………………………….
5.4.1 Efek perlakuan hari ke 11………………………..……………………. 5.4.2 Efek perlakuan hari ke 14………………………...……………………. 5.5
Leukosit……………………………….………………………………….
5.5.1 Efek perlakuan hari ke 11……………………………………………… 5.5.2 Efek perlakuan hari ke 14……………………………………………… 5.6
Trombosit…………………………….………………………………….
11
5.6.1 Efek perlakuan hari ke 11……………………………………………… 5.6.2 Efek perlakuan hari ke 14……………………………………………… 5.7
Neutrofil………………………….……………………………………….
5.7.1 Efek perlakuan hari ke 11………………………………………………. 5.7.2 Efek perlakuan hari ke 14……………………………………………….
BAB VI
PEMBAHASAN…………………………………………………….
6.1
Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Hemoglobin....
6.2.
Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Leukosit dan Neutrofil ......................................................................................................
6.3.
Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Eritrosit..........
6.4
Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Trombosit.......
BAB VII SIMPULAN DAN SARAN…………………………………………
DAFTAR PUSTAKA…..………………………………………………………. LAMPIRAN …………………………………………………………………… DAFTAR TABEL
12
DAFTAR TABEL
Halaman
Table 2.1
Komposisi Vitamin pada Spirulina ............................................
Tabel 2.2
Jenis Pigment pada Spirulina powder ......................................
Table 2.3
Hitung Jenis Leukosit Tikus .......................................................
Tabel 5.1
Uji Normalitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil .............................................................
Tabel 5.2
Uji Homogenitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil .............................................................
Tabel 5.3
Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan ...................................................................
Tabel 5.4
Analisis Komparasi Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 11 …………. .............................................................................
Tabel 5.5
Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.6
Analisis Komparasi Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 14.. ..................................................................................
Tabel 5.7
Rerata Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.8
Analisis Komparasi Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 11 ..............................................................................................
Tabel 5.9
Rerata Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.10
Analisis Komparasi Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 14 .............................................................................................
Tabel 5.11
Rerata Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
13
Tabel 5.12
Analisis Komparasi Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 11 .....................................................................................
Tabel 5.13
Rerata Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah DiberikanPerlakuan ....................................................
Tabel 5.14
Analisis Komparasi Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 14 ..............................................................................................
Tabel 5.15
Rerata Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.16
Analisis Komparasi Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 11 ..............................................................................................
Tabel 5.17
Rerata Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.18
Analisis Komparasi Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 14 .....................................................................................
Tabel 5.19
Rerata Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.20
Analisis Komparasi Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 11 .....................................................................................
Tabel 5.21
Rerata Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan ....................................................
Tabel 5.22
Analisis Komparasi Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 14 ....................................................................................
14
DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 2.1
Gugus kimia Cyclophospamide ……………………….............
Gambar 2.2
Mekanisme alkilasi Alkylating agents dengan N7 DNA ………..
Gambar 2.3
Spirulina ……….………………………………………..............
Gambar 2.4
Jalur Produksi Reactive Oxygen Species (ROS) dan Pembersihan dengan GSH, glutathione ………………..............
Gambar 2.5
Diagram Sistem Hirarki Sel Induk Hematopoeitik Manusia ..
Gambar 2.6
Skema diferensiasi hematopoiesis sel darah tikus ……………..
Bagan 3.1
Konsep Penelitian ..………………………………........................
Bagan 4.1
Skema Rancangan Penelitian …………………………………..
Bagan 4.2
Skema Hubungan antar Variabel Penelitian …………………..
Bagan 4.3
Skema Alur Penelitian ………………………………………….
Gambar 5.1
Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14………………………………………………………………..
Gambar 5.2
Rerata Eritrosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14…………………………………………………………………...
Gambar 5.3
Rerata Leukosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14……………………………………………………………...
Gambar 5.4
Rerata Trombosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14……………………………………………………………...
Gambar 5.5
Rerata Neutrofil antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14……………………………………………..
15
DAFTAR SINGKATAN ATAU TANDA
SINGKATAN BB
: Berat badan
Cm
: Centimeter
CXC
: Cyclophospamide
DNA
: Deoxyribonucleic acid
EM
: Mielosit awal
EO
: Eosinofil
EOp
: Prekursor eosinofil
Er
: Prekursor eritroid
GRAS
: Substances Generally Recognized as Safe
G0
: Fase istirahat
Hb
: Hemoglobin
Ht
: Hematokrit
Kg
: Kilogram
LA
: Linoleic acid
GM-CSF
: Granulocyte stimulating factor
Gy
: Gray
IL-3
: Interleukin-3
M
: Mielosit lanjut
MB
: Mieloblast
MDA
: Malondialdehyde
ME
: Metarubisit
mg
: Milligram
ml
: Milliliter
macrophage-colony
16
MM
: Metamielosit
NSN
: Neutrofil non segmented
P
: Promielosit
PCB
: Chromophore phycocyanobilin
PR
: Prorubisit
RB
: Rubiblast
RU
: Rubisit
SIH
: Sel induk hemopoetik
SL
: Limfosit
SN
: Neutrofil segmented
Sp
: Spirulina
TPO
: Thrombopoietin
17
DAFTAR LAMPIRAN
Halaman Lampiran 1
Tempat dan Waktu Penelitian ..........................................
Lampiran 2
Keterangan Kelaikan Etik (Ethical Clearence) ...............
Lampiran 3
Keterangan kandungan Serbuk spirulina platensis yang dipakai pada penelitian ....................................................
Lampiran 4
Pengujian Kenormalan Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil ................
Lampiran 5
Pengujian Homogenitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil ................
Lampiran 6
Pengujian Deskriptif Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil .................................
Lampiran 7
Pengujian One Way Anova pada Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil ................
Lampiran 8
Pengujian Multipel Komparasi pada Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit, dan Neutrofil.......................................................................
18
BAB I PENDAHULUAN
1.1 Latar Belakang Spirulina platensis adalah mikroalga hijau-biru. Spirulina platensis mengandung beberapa vitamin, seperti vitamin B, vitamin E, Vitamin K, phenolic acids, tocopherols, g-linolenic acid, asam folat; pigmen, seperti b-carotenes, chlorophyll a dan phycocyanin; dan mineral, terutama zat besi. Spirulina mempunyai fungsi sebagai antioksidan, antiviral, imunomodulator, mampu mengobati dislipidemia, meningkatkan hemoglobin, leukosit dan trombosit serta mampu menstimulasi stem sel di sumsum tulang. Kemampuan meningkatkan dan menstimulasi sumsum tulang dan diperkirakan bisa mengurangi efek samping cyclophospamide. Cyclophospamide adalah salah satu golongan Alkylating agent yang bersifat sitotoksik dengan cara merusak sintesis DNA dan pembelahan sel (Brunton, 2008; Katzung, 2006). Hal ini dibuktikan dalam beberapa penelitian seperti berikut ini. Penyuntikan cyclophospamide 300 mg/kg, dosis tunggal intraperitoneal pada tikus menemukan deplesi masif sel hemopoietik dan kerusakan berat pada sel stroma, sel endotel sinus, sel retikuler dan makrofag serta dilatasi sinusoid di sumsum tulang (Anton, 1997). Setelah 8 jam penyuntikan cyclophospamide 100 mg/kg intravena pada tikus usia 8-10 minggu didapatkan peningkatan pengambilan radiolabeled Anexin V oleh sel yang mengalami
19
apoptosis intramedular pada tulang panjang, pelvis dan vertebra serta lien sehingga terjadi penurunan selularitas sumsum tulang terutama sel mononuklear, pendarahan, dilatasi sinusioid dan selular atipik ringan (Blankenberg, dkk., 2001). Apoptosis ini disebabkan oleh efek dari derivat hidroperoksida Cyclophospamide (4-OOH-CY). Derivat hidroperoksida inilah yang akan merusak sel hematopoietik dan stromal sumsum tulang sehingga menyebabkan mielosupresi sumsum tulang dengan cara mengaktifkan jalur kematian dengan memproduksi reaktif oksigen spesies (ROS), berkurangnya glutation (GSH) dan gangguan pada membran mitokondria sehingga akan terjadi apoptosis (Murata dkk, 2004; Tsai-Turton, dkk., 2007; Strauss, dkk., 2008). Mielosupresi sumsum tulang akan bermanifestasi sebagai anemia, leukopenia, neutropenia dan trombositopenia di darah perifer (Tobias, 2010). Trombositopenia pada jumlah trombosit < 20.000 sel / uL akan memudahkan terjadinya perdarahan dan jumlah neutrofil < 500 sel /uL akan memudahkan terjadi infeksi yang bisa mengancam nyawa (Glaspy, 2008). Ratna (2013). Penelitian pendahuluan pada tikus mendapatkan bahwa dengan pemberian cyclophospamide dosis 30 mg – 50 mg / kilogram berat badan didapatkan penurunan leukosit 64% -74%, penurunan hemoglobin 11% - 15%, penurunan trombosit sebesar 27,6% - 46% dan neutrofil sebesar 62% -91%. Penurunan hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit bisa berakibat fatal pada individu. Anemia akan mengurangi transfer oksigen ke seluruh tubuh. Trombositopenia pada jumlah trombosit < 20.000 sel / uL akan memudahkan
20
terjadi pendarahan dan jumlah neutrofil < 500 sel /uL akan mudah terjadi infeksi yang bisa mengancam nyawa (Glaspy, 2008). Anemia, leukopenia dan neutropenia serta trombositopenia akibat mielosupresi yang diinduksi oleh cyclophospamide pada beberapa penelitian bisa diatasi oleh spirulina. Kandungan vitamin B12, Asam folat dan zat besi pada Spirulina platensis mampu meningkatkan produksi hemoglobin, leukosit dan hitung jenis darah perifer. Kandungan vitamin E dan Phenolic acids (Shukla, dkk., 2009; Shanmugapriya dan Ramanathan, 2012), b-carotenes dan chlorophyll a (Mohammed, 2011) dan C-phycocyanin (Estrada, dkk., 2001) memberikan kemampuan antioksidan pada Spirulina platensis. Hal ini dibuktikan dengan penurunan produksi ROS (reactive oxygen species) dan menurunkan kadar malondialdehyde (MDA) hati (Verma, dkk., 2006; Li dkk., 2009.), meningkatkan aktivitas enzim NADPH oxidase (Romay, 1998), enzim superoxide dismutase (SOD) (Li, dkk., 2009) dan glutathione peroxidase (Verma, dkk., 2006; Li, dkk., 2009). Spirulina platensis 300 mg/kg pada tikus albino wistar meningkatkan kadar hemoglobin, leukosit dan hitung jenis dimulai pada hari ke-15 dan maksimal pada hari ke-30 (Simsek, dkk., 2007). Spirulina platensis 60 mg/kg tikus yang diberikan 5 hari sebelum penyuntikan cyclophospamide 100 mg/kg selama 3 hari dan dilanjutkan sampai 7 hari setelahnya menunjukkan peningkatan produksi leukosit (Zhang, dkk., 2001). Phycocyanin yang terkandung pada Spirulina platensis
meningkatkan proliferasi sel - sel sumsum tulang akibat
menstimulasi Granulocyte macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) dan
21
interleukin-3 (IL-3) dan menginduksi aktivitas pembentukan koloni (colonyforming) pada kultur sel lien tikus, serta meningkatkan rasio neutrofil dan limfosit pada darah perifer tikus (Hayashi, dkk., 2006) Peneliti berdasarkan data berikut ini:
1). efek cyclophospamide yang
mensupresi sumsum tulang pada hari ke 4 sehingga kadar hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit darah perifer menurun dan bisa mengancam nyawa; 2) Kemampuan memperbaiki diri sel hematopoietik yang baik setelah disupresi oleh cyclophospamid yang dimulai pada hari ke tujuh; 3) Efek spirulina platensis mampu meningkatkan produksi sumsum tulang dengan memperbaiki lingkungan mikro dan meningkatkan mekanisme regulasi sistem hematopoisis. Maka Penelitian ini dilakukan untuk melihat efek dan mencari dosis spirulina untuk mencegah penurunan kadar hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit darah perifer pada tikus yang diberikan Cyclophospamide tanpa dipengaruhi oleh kemampuan memperbaiki diri sel hematopoietik sumsum tulang.
22
1.2 Rumusan Masalah Berdasarkan latar belakang yang disampaikan maka dapat disimpulkan permasalahan yang akan dicari jawabannya melalui penelitian ini dapat dirumuskan sebagai berikut: 1. Apakah pemberian spirulina dapat mencegah penurunan hemoglobin pada tikus yang diberikan cyclophospamide? 2. Apakah pemberian spirulina dapat mencegah penurunan eritrosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide? 3. Apakah pemberian spirulina mencegah penurunan leukosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide? 4. Apakah pemberian spirulina dapat mencegah penurunan trombosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide? 5. Apakah pemberian spirulina dapat mencegah penurunan neutrofil pada tikus yang diberi cyclophospamide?
1.3 Tujuan Penelitian 1.3.1
Tujuan umum Untuk mengetahui spirulina dapat mencegah penurunan hemoglobin,
eritrosit, leukosit, neutrofil cyclophospamide.
dan trombosit
pada tikus
yang diberikan
23
1.3.2
Tujuan khusus
1. Untuk mengetahui pemberian spirulina mencegah penurunan hemoglobin pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 2. Untuk mengetahui pemberian spirulina mencegah penurunan eritrosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 3. Untuk mengetahui pemberian spirulina mencegah penurunan leukosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 4. Untuk mengetahui pemberian spirulina mencegah penurunan trombosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 5. Untuk mengetahui pemberian spirulina mencegah penurunan neutrofil pada tikus yang diberikan cyclophospamide.
1.4 Manfaat Penelitian 1.4.1
Manfaat akademis Menambah informasi ilmiah mengenai pengaruh spirulina terhadap
hemoglobin, eritrosit, trombosit, leukosit dan neutrofil darah perifer tikus yang diberikan cyclophospamide pada saat terjadi mielosupresi.
1.4.2
Manfaat praktis Pada langkah selanjutnya, dapat dilakukan penelitian uji klinik dengan
pemberian spirulina pada pasien yang mendapatkan cyclophospamide untuk menilai kemampuan pencegahan penurunan hemoglobin, eritrosit, trombosit, leukosit dan neutrofil darah perifer.
24
BAB II KAJIAN PUSTAKA
2.1 Cyclophosphamide Cyclophosphamide (Gambar 2.1) adalah salah satu jenis dari nitrogen mustards dari kelas Alkylating agents dan paling banyak digunakan (Brunton, 2008).
Gambar 2.1 Gugus kimia. Dikutip dari Bruton, 2006
Efek dari cyclophospamide adalah melalui transfer gugus alkyl ke komponen sel. Alkilasi dari DNA (Deoxyribonucleic acid ) nukleus menyebabkan kematian sel. Sisi utama alkilasi pada DNA inti adalah posisi N7 dari guanine (Gambar 2.2). Basa-basa yang lain juga bisa berikatan di N1 dan N3 adenin, N3 dari cytosine, dan O6 dari guanine, atom phosphate dan protein-protein yang berasosiasi dengan DNA. Kemampuan berikatan dengan basa-basa lain ini lebih jarang bila dibandingkan dengan N7 guanin. Interaksi dapat terjadi pada satu atau dua untai DNA melalui cross-linking. Alkylating agents bersifat bifungsional pada dua reaktif group di mana alkilasi pada guanine dapat menyebabkan miscoding 7
25
pasangan basa dengan thymine atau pada depurinasi residu guanine. Efek lebih lanjut adalah pemutusan rantai DNA pada sisi gula-phospat (backbone of DNA). Obat ini sangat berpengaruh pada replikasi sel terutama pada fase lanjut G1 dan S dan memblok fase G2 (Katzung, 2006; Brunton, 2008)
Gambar 2.2 Mekanisme alkilasi Alkylating agents dengan N7 DNA. Dikutip dari Bruton, 2006
2.1.1 Efek farmakologis Alkylating agents mempunyai efek lokal dan sistemik. Efek lokal berupa kerusakan jaringan tempat sisi injeksi. Efek sistemik terjadi tergantung pada dosis dan umumnya mengenai jaringan yang cepat bertumbuh seperti sumsum tulang, sistem gastrointestinal dan sistem reproduksi. Cyclophospamide bersifat cell cycle phase-non-specific drugs yang berarti obat ini bekerja pada semua fase proliferasi sel kecuali pada fase G0 (fase istirahat). Cyclophospamide bersifat dose dependent di mana semakin besar dosis maka semakin besar efek merusak sel dan semakin besar pula efek toksik. Obat ini diberikan dengan dosis tinggi dan dalam waktu singkat di mana dapat menyebabkan aplastik sumsum tulang dan dalam waktu
26
yang bersamaan membunuh banyak sel tumor. Efikasi klinis ini bermanfaat pada keganasan hematologi seperti leukemia dan limphoma (Ritter, dkk., 2010). Dosis Cyclophospamide pada manusia adalah 3.5–5 mg/kg/hari per oral selama 10 hari atau 1 g/m2 IV dosis tunggal. Dosis yang berlebihan dapat menyebabkan depresi berat sumsum tulang manusia yang ditandai dengan mielosupresi akut berupa leukopenia, trombositopenia, dan perdarahan, alopesia dan hemorrhagic cystitis. Hitung granulosit darah tepi manusia turun sampai titik nadir pada hari ke 6 -10 dan membaik pada hari ke 14-21. Cyclophospamide mempunyai efek yang lebih kecil pada trombosit darah perifer manusia dibandingkan dengan obat lain (Katzung, 2006; Brunton, 2008; Ritter, dkk., 2010). Brown dan Carbone (1971). meneliti efek cyclophospamide terhadap sumsum tulang tikus normal. Peneliti menemukan bahwa penekanan sumsum tulang terjadi pada dosis di atas 30 mg/kg dan bersifat eksponensial. Dari penelitian ini didapatkan bahwa cyclophospamide 200 mg/kg intraperitoneal menurunkan selularitas sumsum tulang setelah 24 jam pemberian pada tikus. Penyuntikan intraperitoneal cyclophospamide 50 mg/kg pada tikus akan mendepresi sumsum tulang. Mielosupresi akan terus menurun sampai 4 hari berikutnya lalu membaik pada hari ke-6 sampai hari ke-10 (Sladek, 1972). Pada sumsum tulang paha tikus, 12 jam pertama setelah penyuntikan didapatkan deplasi masif sel-sel hemopoietik dan mulai membaik 10 hari setelah penyuntikan (Anton, 1997). Penyuntikan Cyclophospamide dengan dosis 30 mg/kg – 50 mg/kg intra peritoneal dosis tunggal pada tikus ditemukan pada hari ke-4 sudah
27
didapatkan rerata penurunan leukosit 64%-74%, penurunan hemoglobin 11%15%, penurunan trombosit sebesar 27,6% - 46% dan neutrofil sebesar 62% - 91%. Penurunan komponen darah perifer sudah terjadi pada dosis 30 mg/kg berat badan dan penurunan lebih banyak terjadi pada dosis 50 mg/kg berat badan. Pada hari ke-7 setelah penyuntikan didapatkan rerata peningkatan leukosit 120% -143%, neutrofil 8% - 171%, hemoglobin 11% - 17%, dan trombosit 18% -12% (Ratna, 2013). Efek cyclophopamide dengan dosis 50 mg/kg ke intra peritoneal selama 10 hari menunjukkan penurunan Hb yang signifikan dibandingkan kontrol (p<0,05) (Chakraborty, dkk., 2009). Penelitian lain menunjukkan bahwa cyclophospamide dengan dosis 50 mg/kg selama 3 kali signifikan menurunkan Hb (hemoglobin), retikulosit, leukosit, neutrofil, limfosit, dan trombosit (Molyneux, dkk., 2011). Di sumsum tulang, setelah 12 jam penyuntikan cyclophospamide 300 mg/kg, dosis tunggal intraperitoneal, menemukan deplesi masif sel hemopoietik dan kerusakan berat pada sel stroma, sel endotel sinus, sel retikuler dan makrofag serta dilatasi sinusoid di sumsum tulang. Kerusakan akibat perlakuan bersifat sementara di mana sel hemopoietik sumsum tulang membaik pada hari ke-10. Sel stromal menunjukkan kerusakan sampai hari ke-15 dan kembali normal pada hari ke-30. Hal ini menunjukkan bahwa kemampuan memperbaiki diri yang tinggi pada sel hemopoietik sumsum tulang walaupun pada saat itu terjadi kerusakan sel stroma sumsum tulang (Anton, 1997). Penyuntikan Cyclophospamide 100 mg/kg intravena pada tikus usia 8-10 minggu setelah 8 jam didapatkan peningkatan pengambilan radiolabeled Anexin V oleh sel yang mengalami apoptosis intramedular pada tulang panjang, pelvis dan vertebra serta lien dimana pada
28
pemeriksaan histologi sumsum tulang 8 jam setelah penyuntikan didapatkan penurunan selularitas sumsum tulang terutama sel mononuklear, pendarahan, dilatasi sinusioid dan selular atipik ringan. Kerusakan ini mencapai puncak 24 jam setelah penyuntikan dimana secara histologi ditemukan hiposelular sumsum tulang yang bermakna terutama pada sel mononuclear dibandingkan prekusor eritrosit, proses apoptosis yang semakin berlanjut (ditandai dengan peningkatan dilatasi sinusoid dan pendarahan). Pada 72 jam berikutnya ditemukan dilatasi sinusoid dan hiposelular, proliferasi fibroblas dengan berbagai derajat, pendarahan dan sel atipik (Blankenberg, dkk., 2001). Apoptosis pada sumsum tulang ini disebabkan oleh efek dari derivat hidroperoksida Cyclophospamide (4-OOH-CY). Derivat
hidroperoksida
ini
akan
mengaktifkan
jalur
kematian
dengan
memproduksi reaktif oksigen spesies (ROS), berkurangnya glutation (GSH) dan gangguan pada membran mitokondria sehingga akan terjadi apoptosis
pada
sumsum tulang (Murata, dkk., 2004; Tsai-Turton, dkk., 2007; Strauss, dkk., 2008).
2.2 Spirulina Spirulina adalah mikroalga hijau biru berbentuk filament spiral yang mampu berfotosintesis (Gambar 2.3). Dua jenis Spirulina yang penting adalah Spirulina maxima and Spirulina platensis. Saat ini ada dua sudut pandang tentang jenis mikroorganisme ini. Dengan adanya klorofil maka Spirulina digolongkan sebagai tumbuhan dengan kelas Chyanophyceae tetapi menurut bakteriologis, Spirulina adalah bakteri karena mempuyai struktur prokariotik. Spirulina sebagai
29
makanan sudah dikenal sejak Aztec (400 tahun yang lalu) dan di Kanembu, Republic of Chad (Belay, 2002; Sanchez, dkk., 2003). Saat ini produksi spirulina di seluruh dunia diperkirakan kurang lebih 3.000 ton metrik. Spirulina dijual dengan leluasa di toko makanan dan pasar umum dan sudah terbukti keamananannya. Spirulina mengandung tinggi protein (60% -70 % dari berat kering). Siprulina juga mengandung asam amino essensial seperti leucine (10.9%), valine (7.5%), dan isoleucine (6.8%), (Cohen, 1997 dikutip dari Sanchez, dkk., 2003). Di antara makanan, spirulina mengandung tinggi provitamin A (β-carotene) dan B12. Spirulina mengandung 4% -7% lipid (linoleic acid (LA) dan γ-linolenic acid). Kandungan mineral yang dikandung terbanyak spirulina adalah besi (60%) di mana lebih mudah diserap daripada ferrous sulfate (Pyufoulhoux, dkk., 2001 dikutip dari Sanchez dkk, 2003). Karbohidrat juga terkandung dalam spirulina sebanyak 13,6% berupa glukosa, rhamnose, mannose, xylose and galaktosa. Spirulina tidak mempunyai selulosa pada dinding selnya sehingga mudah dicerna dan diserap (Sanchez, dkk., 2003). Spirulina mengandung pigmen chlorophyll a, carotenes dan phycobiliprotein (phycocyanin dan allophycocyanin) (Estrada, dkk., 2001). Berikut adalah tabel kandungan spirulina: vitamin (Tabel 2.1), dan pigment (Table 2.2) (Belay, 2002).
Gambar 2.3. Spirulina (dikutip dari Tsukii. Y, 2003)
30
Tabel 2.1 Kandungan Vitamin pada Spirulina. Dikutip dari Belay, 2002 Vitamin Provitamin A
mg 100 g-1 2.330.000 IU kg –1
β-carotene
140
Vitamin E
100 a-tocopherol equiv.
Thiamin / B1
3.5
Riboflavin / B2
4.0
Niacin / B3
14.0
Vitamin B6
0.8
Vitamin B12
0.32
Folic acid
0.01
Biotin
0.005
Phantothenic acid
0.1
Vitamin K
2.2
Tabel 2.2 Jenis Pigmen pada Spirulina Powder Dikutip dari Belay, 2002 Pigment
mg 100g-1
Carotenoids
370
Chlorophyll a
1000
Phycocyanin
14000
Studi di Mexico menunjukkan bahwa S. platensis tidak embriogenik pada fetus mencit (Chamorro, dkk., 1986; Chamorro and Salazar, 1990. dikutip dari Sanchez, dkk., 2003). Hal ini diperkuat dengan pemberian 30 - 120 mg/kg spirulina kering selama 12 minggu pada tikus tidak menunjukkan efek toksik pada
31
fungsi hati dan ginjal (Hutadilok-Towatana, dkk., 2008). Spirulina tidak mengandung
phycotoxins sehingga tidak menyebabkan alergi atau gangguan
gastrointestinal pada manusia (Chamorro, dkk., 1996). Studi tentang efek toksik kronik dan sub-kronik tidak menunjukkan efek toksik pada spirulina (Chamorro, dkk., 1996; Switzer, 1980. dikutip dari Sanchez, dkk., 2003). Tahun 2003, FDA mengkatagorikan spirulina sebagai Substances Generally Recognized as Safe (GRAS).
2.2.1
Spirulina sebagai antioksidan Saat ini diketahui bahwa bilirubin bebas pada spirulina yaitu Chromophore
phycocyanobilin
(PCB)
atau
c-phycocyanin
(C-PC)
berpotensi
sebagai
antioksidan. C-phycocyanin adalah antioksidan alami atau primer dari kelompok phytochemical, golongan flavonoid (Hamid, dkk., 2010) dan larut dalam air (Eriksen, 2008). Struktur kimia pada c-phycocyanin, dapat menghilangkan radikal peroksida dengan menambahkan satu atom hidrogen. Hal ini diperkuat oleh Estrada, dkk (2001) yang menemukan bahwa kemampuan menghambat radikal hidroksil tergantung dari kadar phycocyanin. Phycobiliprotein phycocyanin adalah komponen yang mempunyai efek antioksidan pada spirulina (Estrada, dkk., 2001). Lima belas gram spirulina mengandung 100 mg PCB (0,66%). Dosis spirulina yang diperlukan antara 150 – 1000 mg /hari /kg berat badan tikus (McCarty, 2007). Penelitian pada rodent menunjukkan bahwa pemberian secara oral spirulina atau C- phycocyanin (holoprotein Spirulina yang mengandung PCB) mempunyai
32
efek anti oksidan dengan menghambat aktivitas NADPH oksidase (gambar.2.4). C-Phycocyanin 170,3 + 1,62 mg/kg berat badan tikus (spirulina 300 mg/kg BB) juga mengurangi ROS dengan cara menghambat pembentukan ROS pada phagosit (NADPH oksidase dan mieloperoksidase) atau mencegah metabolisme asam arachcidonat (Romay, dkk., 1998). C-phycocyanin mampu bertindak sebagai selective COX-2 inhibitory dan menginhibisi Bcl2 sehingga terjadi apoptosis terhadap sel tumor (Pardhasaradhi, dkk., 2003). Spirulina 800 mg/kg berat badan yang diberikan pada tikus 7 hari sebelum dipaparkan dengan gamma radiation (8 Gy) didapatkan peningkatkan glutathione (GSH) dan penurunan malondialdehyde (MDA) hati (Verma, dkk., 2006). Phycocyanin signifikan menghambat overproduksi ROS intracelular dan malondialdehyde (MDA), juga meningkatkan aktivitas enzim superoxide dismutase (SOD) dan glutathione peroxidase pada human islet amyloid polypeptide (hIAPP) yang mengalami sitotoksik (Li, dkk., 2009). Selain phycocyanin sebagai antioksidan, kompenen phenolic (tocopherol) yang terkandung pada ekstrak Spirulina platensis juga mempunyai kemampuan antioksidan. Jenis tocopherol yang terbanyak adalah α-tocopherol (73% dari total tocopherol) dan sisanya adalah γ-tocopherol (27%). Aktivitas antiokidan αtocopherol paling efisien dibandingkan β-tocopherol (25–50% dari aktivitas αtocopherol) dan γ-tocopherol (10–35% dari α-tocopherol) (Shanmugapriya dan Ramanathan, 2012). Pada kultur Spirulina platensis yang ditambahkan H2O2, menunjukkan peningkatan kadar β-carotene dan α-tocopherol yang linier
33
signifikan terhadap aktivitas antioksidan katalase, peroksidase, and superoxide dismutase (SOD) (El-Baky, dkk., 2007). Spirulina akan meningkatkan apoptosis pada sel yang memang memerlukan radikal bebas untuk dieliminasi tetapi tidak pada sel yang sehat (Chu, dkk., 2010).
Gambar 2.4 Jalur Produksi Reactive Oxygen Species (ROS) dan Pembersihan dengan GSH, glutathione; GSSG, glutathione disulfide. (Dikutip dari: Dro¨ ge, 2002).
2.2.2
Spirulina dan pengaruh pada sistem hematopoiesis tikus Pada anjing yang diberikan
sinar γ 100 Gy/menit dan tikus yang
dikemoterapi dengan cyclophosphamide 100 mg/kg mencit dimana sebelum perlakuan kedua binatang ini diberikan spirulina yang dilarutkan dalam akua destilata dengan dosis 15 mg/kg, 30 mg/kg, 60 mg/kg selama 5 hari. Dari penelitian ini ditemukan bahwa spirulina mempunyai efek radioproteksi dan kemoproteksi terbaik pada dosis 60 mg/kg/hari selama total 12 hari dibanding kelompok
cyclophosphamide-Berbamine
hydrochlorida.
Pada
kelompok
cyclophosphamide-spirulina ditemukan peningkatan DNA dan sel berinti, peningkatan leukosit dan hemoglobin pada fase supresi (Zhang, dkk., 2001).
34
Penelitian lainnya dilakukan pada tikus putih albino yang diradiasi 8 Gy sehingga mengalami depresi sumsum tulang. Pada kelompok yang mengkonsumsi spirulina 800 mg/kg/hari yang dilarutkan dalam akua destilata selama tujuh hari sebelum radiasi gamma (8Gy) didapatkan peningkatan kadar hemoglobin, total leukosit dan total eritrosit. Pada hari ke-5 setelah radiasi gamma didapatkan penurunan kadar hemoglobin, total leukosit dan total eritrosit pada semua kelompok tetapi pada kelompok spirulina didapatkan penurunan yang lebih rendah dibandingkan kelompok kontrol (Verma, dkk., 2006). Pemberian spirulina platensis yang dilarutkan dalam air dengan dosis 300 mg/kg/hari pada tikus didapatkan peningkatan hemoglobin, eritrosit, trombosit, leukosit dan hitung jenis sejak hari ke-15 dan semakin meningkat pada akhir penelitian (hari ke-30) (Simsek, dkk., 2007). Suatu studi in vitro dengan pemberian ekstrak Spirulina platensis selama 5 minggu terbukti meningkatkan proliferasi formasi koloni sel sumsum tulang mencit, Rasio neutrofil dan limfosit di sumsum tulang dan darah perifer, meningkatkan granulosit macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) dan Interleukin-3 (IL-3) pada kultur supernatan sel lien (Hayashi, dkk., 2006).
2.3
Hematopoesis manusia Hematopoesis ialah proses pembentukan darah. Pada orang dewasa dalam
keadaan fisiologis semua hematopoesis terjadi di sumsum tulang. Untuk kelangsungan hematopoesis diperlukan lingkungan mikro sumsum tulang, sel induk hematopoesis (hematopoeitik stem cell), bahan pembentuk darah, dan mekanisme regulasi (Leung dan Verfaillie, 2005; Fauci, dkk., 2012).
35
Sel induk hemopoetik (SIH) / hematopoietic stem cell (HSC) adalah selsel yang berkembang menjadi sel-sel darah termasuk eritrosit, leukosit dan trombosit. SIH mempunyai kemampuan self renewal (mampu memperbaiki diri sendiri) dan berdeferensiasi menjadi semua sel matang sel darah. Pertama, SIH dirangsang oleh Interleukin-7 (IL-7) sehingga berdeferensiasi menjadi turunan limphoid (lymphoid progenitors) dan mieloid (mieloid progenitors) akibat rangsangan trombopoitin (TPO) dan stem cell factor (SCF) (Gambar 2.5). Common lymphoid progenitors berdeferensiasi menjadi prekursor limphocyte T/NK cell (natural killer) dan prekursor limfosit B akibat rangsangan IL-7 dan oleh FLT-3 Ligand, common lymphoid progenitor menjadi sel plasma. Prekursor limfosit B berdiferensiasi menjadi sel B setelah distimulasi oleh interleukin-4. Prekursor limfosit T/NK sel distimulasi oleh interleukin-7 menjadi prekursor sel T dan prekursor NK sel. Interleukin-2 akan merangsang diferensiasi prekursor sel T menjadi sel T. Interleukin-15 merubah prekursor NK-cell menjadi NK-cell. Common mieloid progenitors (CMP) berdeferensiasi menjadi prekursor granulosit-monosit, prekursor eritrosit-megakariosit dan monosit. Prekursor granulosit-monosit dengan dirangsang oleh granulocyte-monocyte colony stimulating factor (GM-CSF) berdeferensiasi menjadi prekusor granulosit dan prekusor monosit. Prekusor monosit distimulus oleh monocyte colony stimulating factor (M-CSF) menjadi monosit. Prekusor granulosit dirangsang oleh granulocyte colony stimulating factor (G-CSF) berdiferensiasi granulosit, interleukin-5 menjadi eosinofil, dan oleh interleukin-3 dan stem cell factor
36
menjadi sel basofil dan sel mast. Prekursor eritrosit-megakariosit berkembang dari CMP akibat perangsangan interleukin-3, stem cell factor, dan trombopoitin (TPO). Oleh pengaruh eritropoitin (EPO), prekusor eritrosit-megakariosit menjadi eritrosit dan TPO menjadi trombosit (Fauci, dkk., 2012).
Gambar 2.5 Diagram Sistem Hirarki Sel Induk Hematopoeitik Manusia dan regulasi. IL2: Interleukin 2; IL 3: Interleukin 3; IL 4: Interleukin 4; IL 5: Interleukin 5; IL 7: Interleukin 7; IL 15: Interleukin 15; SCF: Stem Cell Factor; TPO: Thrombopoetin; EPO: Eritopoitin; GM-SCF: Granulocyte MacrophageColony Stimulating Factor; G-CSF: Granulocyte-Colony Stimulating Factor ; MCSF: Monocyte-Colony Stimulating Factor; FLT-3 Ligand: Fms-related Tyrosine Kinase (dikutip dari Fauci dkk., 2012)
Pada dewasa muda yang sehat, SIH predominan berada di dalam sumsum tulang berupa sel darah yang tidak aktif. Di dalam sumsum tulang, sel - sel ini mempunyai hubungan dengan lingkungan mikro. Apabila ada stressor, sistem
37
lingkungan mikro mengeluarkan faktor ekstrinsik yang mengatur hematopoeitik sehingga mengaktifkan SIH. Eritrosit, leukosit dan trombosit akan dikeluarkan dari sumsum tulang ke perifer sesuai dengan kebutuhan tubuh. Eritropoisis dipicu oleh kondisis anemia atau hipoksia. Hormon Eritropoitin akan dilepaskan oleh sel peritubulus sel ginjal. Hormon ini akan mengikatkan diri pada reseptor di progenirator di eritroblast dan eritroid sehingga memicu proliferasi dan diferensiasi di sumsum tulang. Setelah dikeluarkan dari sumsum tulang ke sirkulasi, usia eritrosit adalah 120 hari dan kemudian dihancurkan. Kadar hemoglobin pria dewasa 13,5-17,5 gram/dL dan pada wanita dewasa 12-16 gram/dL. Leukosit juga diproduksi di sumsum tulang dan produksi akan meningkat akibat respon adanya inflamasi dan infeksi. Normal, jumlah leukosit adalah 4.3– 10.8 x 109/L, dengan neutrophils 45–74% , batang 0–4%, limfosit 16–45%, monosit 4–10%, eosinofil 0–7%, dan basofil 0–2%. Umur granulosit setelah dilepaskan dari sumsum tulang ke sirkulasi normalnya adalah 4-8 jam dan bisa 45 hari di jaringan. Monosit juga mempunyai waktu yang pendek di darah yaitu 1020 jam. Monosit yang berada di jaringan dapat hidup berbulan-bulan sampai melakukan fagositosit kemudian hancur. Limfosit memasuki sirkulasi secara kontinu dari aliran limfe dari jaringan limphoid dan kelenjar getah bening, berputar terus menerus. Hidup limfosit bisa mingguan sampai bulanan (Leung dan Verfaillie, 2005 ; Sieff dan Nathan, 2003; Guiton dan Hall, 2006; Fauci, dkk., 2012).
38
Hormon Thrombopoietin (TPO) adalah hormon yang mengendalikan produksi platelet. Hormon ini diproduksi di hati dan diinduksi oleh inflamasi. Penurunan megakariosit dan platelet akan merangsang produksi TPO. Platelet di sirkulasi hanya berumur 7-10 hari (Leung dan Verfaillie, 2005 ; Sieff dan Nathan, 2003; Guyton dan Hall, 2006; Fauci, dkk., 2012).
2.4 Tikus Wistar (Rattus norvegicus) Tikus wistar (Rattus norvegicus), di Indonesia sering juga disebut tikus besar dan sering digunakan sebagai hewan percobaan di laboratorium. Tikus wistar berukuran lebih besar dari famili tikus umumnya dimana tikus ini dapat mencapai 40 cm diukur dari hidung sampai ekor dengan berat 140-500 gram. Tikus wistar tidak dapat muntah karena struktur anatomi yang berbeda di tempat esophagus bermuara ke lambung, selain itu tikus wistar tidak mempunyai kandung empedu. Berikut adalah data biologis Tikus wistar dengan lama hidup: 2 - 3 tahun (dapat sampai 4 tahun), berat dewasa: 300 – 400 gram (Jantan), 250-300 gram (betina), dan volume darah: 57 – 70 ml/kg (Smith dan Mangkoewidjojo, 1988). Kualitas makanan merupakan faktor yang penting dimana mempengaruhi kemampuan tikus untuk mencapai potensi genetik untuk tumbuh, berkembang biak, hidup lama dan bereaksi terhadap pengobatan atau tindakan. Tikus wistar membutuhkan minum air lebih banyak karena itu air minum harus tersedia secara terus menerus. Tiap tikus dewasa membutuhkan minum 20 – 45 ml / hari (Smith dan Mangkoewidjojo, 1988).
39
2.4.1 Hematopoiesis Rattus norvegicus Hematopoiesis Rattus norvegicus adalah proses pembentukan sel darah. Pada tikus hematopoiesis dibagi menjadi 2 yaitu primitive hematopoiesis dan definitive hematopoiesis. Primitive hematopoiesis dimulai saat awal kehamilan, saat di yolk sack. Definitive hematopoiesis pada kehamilan lebih lanjut atau saat awal post natal dan terjadi di hati dan kemudian di lien dan timus terakhir di sumsum tulang. Saat dewasa, hematopoiesis tikus terjadi pada sumsum tulang pipih seperti sternum, iga, pelvis, vertebra, tengkorak, dan epifisis tulang panjang. Pada sumsum tulang selain sel darah juga terdapat prekusor darah, sel retikular, dan serat retikulin, sistem sinusoid, dan sel lemak. Sumsum tulang adalah organ yang dinamik dimana fungsi dan strukturnya dipengaruhi oleh faktor nutrisi, signal endokrin dan kebutuhan terhadap sel darah merah, sel darah putih dan trombosit (Welman, 2010). Sumsum tulang mengandung sel induk hemopoetik (SIH) yang akan berdiferensiasi,
bermultiplikasi
dan
menjadi
dewasa
untuk
merespon
keseimbangan tubuh. SIH mempunyai kemampuan memperbaharui diri sendiri (self-renewal) dan berdiferensiasi menjadi oligopotensial SIH kemudian unipoten SIH dan jalur sel khusus (Gambar 2.6).
40
CFU- MEG
CFU- E
MYELOID STEM CELL
PLURIPOTENT HEMATOPOIETIC STEM CELL
MEGAKARIOSIT
PLATELETS
RUBIBLAST
ERYTHROCYTES
MONOBLAST
MONOCYTESMACROPHAGES
MYELOBLAST
NEUTROPHILS
CFU- GM
CFU- EOS
MYELOBLAST
CFU- BAS
MYELOBLAST
T-CELLS PRECURSORS
LYMPHOBLAST
B-CELLS PRECURSORS
LYMPHOBLAST
EOSINOPHILS
BASOPHILS
TLYMPHOCYTES
. LYMPHOID STEM CELL
BLYMPHOCYTES
Gambar 2.6 Skema diferensiasi hematopoiesis sel darah tikus Dikutip dari Schalm’s Veterinary Hematology., 1986 dari Jain., 1993
Beberapa faktor endogen dan eksogen mempengaruhi hematopoeisis termasuk lingkungan mikro sumsum tulang dan faktor humoral lokal. Beberapa faktor pertumbuhan hematopoeisis akan memicu diferensiasi jalur sel. Mereka meliputi interleukin, colony-stimulating factor granulocyte - macrophage colony – stimulating factor (GM - CSF), dan beberapa poietin spesifik (eritropoitin (EPO), eosinophilopoietin, trombopoietin, granulocytopoietin, dan monocytopoietin). Limphokin tertentu seperti lymphocyte mitogenic factor dan T-cell growth factor, IL-7 dan IL-2 untuk T-cell, IL-4 untuk B-cell, mempunyai peran dalam
41
mengatur limfopoiesis (Jain, 1993; Welman, 2012). Pada tikus dikenal Specific GM - lymphoid precursors yang mana akan berkembang menjadi prekusor limfoid, eritrosit-megakariosit dan granulosit. Specific GM - lymphoid precursors tidak ditemukan pada spesies yang lebih tinggi seperti manusia (Welman, 2012). Pada hewan normal, jumlah eritrosit, leukosit dan tipe leukosit dan platelet dalam jumlah normal. Proses hematopoiesis akan meningkat apabila kebutuhan atau destruksi yang meningkat seperti penurunan jumlah eritrosit (pendarahan akut atau anemia hemolitik), peningkatan kebutuhan leukosit saat infeksi atau inflamasi, dan peningkatan penghancuran trombosit (penyakit autoimun). Hal ini terjadi agar keseimbangan dan kebutuhan tubuh tetapi terjaga (Jain,1993).
2.4.2 Nilai Normal Darah Perifer Table 2.3 Nilai Normal Darah Perifer Tikus. Dikutip dari: Campbell., 2012 Eritrosit x 106/µL
Hb g/dL
660-9.000
13,2- 16,4
Trombosit x103/µL 840- 1.240
Leukosit x103/µL
Neutrofil x103/µL
7,3–12,6
1,25-3,71
42
BAB III KERANGKA BERPIKIR, KONSEP DAN HIPOTESIS PENELITIAN
3.1 Kerangka Berpikir Proses hematopoisis adalah proses normal pembentukan darah di sumsum tulang guna mencukupi kebutuhan tubuh. Proses hematopoiesis adalah suatu proses yang kompleks dimana memerlukan beberapa faktor seperti (1) bahan pembentuk darah, (2) sel hematopoiesis, (3) mekanisme regulasi dan (4) lingkungan mikro sumsum tulang. Proses hematopoiesis akan berfungsi normal bila keempat faktor tadi tersedia dan berfungsi normal. Bahan baku (zat besi, vitamin B12 dan asam folat) yang bisa didapatkan dari makan bila berkurang akan mengganggu proses hematopoiesis. Proses hematopoiesis sumsum tulang yang normal tercermin dari produksi eritrosit, hemoglobin, jenis leukosit, dan trombosit di darah perifer yang normal juga. Apabila salah satu faktor tersebut terganggu atau rusak akan kadar eritrosit, hemoglobin, jenis leukosit, dan trombosit juga akan terganggu. Kadar hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit darah perifer juga dipengaruhi oleh infeksi, pendarahan, dan lingkungan. Salah satu faktor yang bisa merusak proses hematopoiesis disebabkan oleh cyclophospamide. Cyclophospamide adalah salah satu golongan Alkylating agent yang bersifat sitotoksik dengan cara merusak sintesis DNA dan pembelahan sel. Cyclophospamide mampu merusak sel hematopoiesis dan lingkungan mikro (sel
25
43
stromal) di sumsum tulang sehingga bisa terjadi mielosupresi / depresi fungsi sumsum tulang. Akibat dari mielosupresi bisa mengakibatkan anemia, leukopenia, neutropenia dan trombositopenia. Anemia akan mengganggu penghantaran nutrisi dan oksigen, trombositopenia bisa mengakibatkan pendarahan dan neutropenia bisa mengakibatkan infeksi berat. Semuanya itu bisa berakibat fatal sampai mengancam nyawa. Anemia, leukopenia, dan trombositopenia diakui dapat diatasi oleh spirulina yang sudah banyak beredar di masyarakat. Spirulina adalah mikroalga hijau biru berbentuk filament spiral yang mampu berfotosintesis. Beberapa penelitian menunjukkan bahwa Spirulina platensis yang mengandung antioksidan mampu meningkatkan produksi eritrosit, hemoglobin, jenis leukosit, dan trombosit oleh sumsum tulang dengan meningkatkan proliferasi formasi koloni sel sumsum
tulang
mencit
dan
meningkatkan
sistem
regulasi
(granulosit
macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) dan Interleukin-3 (IL-3)) pada kultur supernatan sel lien. Berdasarkan penelitian di atas, peneliti ingin membuktikan efek spirulina terhadap proses hematopoisis tikus yang dimielosupresi oleh cyclophospamide terutama pada fase supresi (pada hari ke-4) yaitu mencegah penurunan eritrosit, hemoglobin, leukosit dan trombosit pada tikus .
44
3.2 Konsep Penelitian Berdasarkan perumusan masalah dan kajian pustaka maka disusun kerangka konsep sebagai berikut: SPIRULINA
1. 2. 3. 4.
FAKTOR EKSTERNAL
FAKTOR INTERNAL
Nutrisi (kurang) Minuman (kurang) Lingkungan Obat / Cyclophospamide
1. Perdarahan 2. Infeksi berat
TIKUS YANG DIBERIKAN CYCLOPHOSPAMIDE 1. Hemoglobin 2. Leukosit 3. Neutrofil
4. Eritrosit 5. Trombosit
Bagan 3.1 Konsep Penelitian Keterangan: = Tidak diteliti
45
3.3 Hipotesis Penelitian Berdasarkan kerangka konsep, maka hipotesis yang dapat diajukan adalah: 1. Pemberian spirulina dapat mencegah penurunan hemoglobin pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 2.
Pemberian spirulina dapat mencegah penurunan eritrosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide.
3.
Pemberian spirulina mencegah penurunan leukosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide.
4.
Pemberian spirulina dapat mencegah penurunan trombosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide.
5.
Pemberian spirulina dapat mencegah penurunan neutrofil pada tikus yang diberi cyclophospamide.
46
BAB IV METODE PENELITIAN
4.1 Rancangan penelitian Penelitian ini adalah penelitian eksperimental, dengan rancangan penelitian yang digunakan adalah Randomized Post Test Only Control Group Design (Federer, 1991)
P
S
R
P0
O1
O2
P1
O3
O4
P2
O5
O6
Bagan 4.1 Skema Rancangan Penelitian
Keterangan: P
= Populasi
S
= Sampel
R
= Randomisasi
P0 = Perlakuan pada Kelompok Kontrol yang diberikan akuabidest 2cc perhari selama penelitian (14 hari) dan penyuntikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal pada hari ke 7. O1 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Kontrol pada hari ke 11.
29
47
O2 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Kontrol pada hari ke 14. P1 = Perlakuan pada Kelompok Perlakuan 1 yang diberikan mg/kg
berat
badan
perhari
selama
penelitian
Spirulina 250
(14
hari)
dan
cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal pada hari ke 7. O3 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Perlakuan 1 pada hari ke 11. O4 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Perlakuan 1 pada hari ke 14. P2 = Perlakuan pada Kelompok Perlakuan 2 diberikan Spirulina 500 mg/kg berat badan perhari selama penelitian (14 hari) dan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal pada hari ke 7. O5 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Perlakuan 2 pada hari ke 11. O6 = Observasi darah perifer tikus (Hb, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil) pada Kelompok Perlakuan 2 pada hari ke 14.
4.2 Subjek dan sampel a. Kriteria subjek Sampel pada penelitian ini adalah tikus wistar dengan kriteria sebagai berikut: -
Tikus wistar jantan, berumur 2,5 – 3 bulan, berat badan jantan 175-200 gram dengan kondisi sehat
48
b. Kriteria inklusi a. Tikus putih jantan sehat dewasa galur wistar b. Berumur 2,5-3 bulan c. Berat 175-200 gram c. Kriteria drop out: apabila tikus mati pada saat penelitian berlangsung
4.2.1 Besaran sampel Pada penelitian ini perhitungan jumlah sample dihitung dengan rumus (Federer, 1991) Rumus:
( r – 1 ) ( t – 1 ) > 15
r = jumlah sample t = jumlah kelompok Dari rancangan penelitian : ( r – 1) ( 3 – 1 ) > 15 r > 8,5 = 8,5
dibulatkan menjadi 9
Dari rumus (Federer, 1991), jumlah sampel (n) minimal yang diperoleh = 9 per kelompok. Penelitian terdiri dari 3 kelompok yaitu kelompok kontrol (1), kelompok (2) dan kelompok (3). Masing-masing kelompok diputuskan terdiri dari 10 ekor (1 ekor cadangan) yang dipilih secara Simple randomized, sehingga yang dibutuhkan pada penelitian ini adalah 30 ekor.
49
4.2.1.1 Teknik Penentuan Sampel Teknik penentuan sampel dilakukan dengan cara sebagai berikut: a. Dari populasi tikus putih (Rattus norvegicus) diadakan pemilihan sampel berdasarkan kriteria inklusi: tikus wistar jantan sehat, berumur 2,5-3 bulan, berat 175-200 gram. b. Dari sampel yang memenuhi syarat, tikus diambil secara simple random dan dibagi menjadi 3 kelompok. Masing-masing kelompok 10 ekor.
4.3 Variabel 4.3.1 Klasifikasi variable Variable dalam penelitian ini adalah: a. Variabel bebas: a) Spirulina b. Variabel tergantung: a) Hemoglobin b) Leukosit c) Trombosit d) Eritrosit e) Neutrofil c. Variabel kontrol: a) Jenis tikus b) Jenis kelamin c) Umur hewan coba
50
d) Berat badan e) Perdarahan f) Infeksi g) Kehamilan tempat penelitian h) Lingkungan i) Makanan
Variabel Bebas
Spirulina Variabel Tergantung # Hb # Trombosit # Neutrofil
# Leukosit # Eritrosit
Variabel Kontrol # Jenis tikus
# Umur
# Jenis kelamin
# Berat badan
# Infeksi
# Kehamilan
# Perdarahan
# Lingkungan
# Makanan
Bagan 4.2 Skema Hubungan antar Variabel Penelitian
4.3.2 Definisi operasional variabel 1. Komponen darah perifer Kadar hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit yang diambil beberapa kali selama penelitan.
51
2. Hemoglobin (Hb) Pigment eritrosit yang membawa oksigen, dibentuk bersamaan dengan eritrosit di sumsum tulang. Hemoglobin dari darah tepi akan diukur pada hari ke-11 dan ke-14 dengan menggunakan alat Hematologyc Analizer Siemen Advia 2120. Kadar hemoglobin pada tikus dewasa 13,2 – 16,4 g/dL. 3. Leukosit Sel darah yang tidak mempunyai warna dan mempunyai kemampuan amuboid. Darah perifer diambil dan leukosit akan diukur pada hari ke-11, ke-14 dengan menggunakan alat Hematologi Analizer Siemen Advia 2120. Kadar leukosit pada tikus dewasa 7,3-12,6 x 103/ µL. 4. Trombosit Sel darah yang berperan dalam proses koagulasi dan berasal dari sel megakariosit di sumsum tulang. Trombosit pada darah perifer akan diukur pada hari ke-11dan ke-14 dengan menggunakan alat Hematologyc Analizer Siemen Advia 2120. Kadar trombosit pada tikus dewasa 840 – 1,240 x 103/ µL. 5. Eritrosit Sel darah merah yang dibentuk di sumsum tulang yang mengandung hemoglobin. Eritrosit dari darah perifer diukur pada hari ke-11dan ke-14 dengan menggunakan Hematologyc Analizer Siemen Advia 2120. Kadar eritrosit pada tikus dewasa 660 – 9.000 x 103/ µL.
52
6. Neutrofil Salah satu jenis leukosit polimorfonuklear dengan nilai normal 1,253,71 x103/µL
yang
dihitung
pada
hari
ke-11
dan
ke-14dengan
menggunakan alat Hematologyc Analizer Siemen Advia 2120. 7. Spirulina platensis a. Jenis ganggang hijau-biru yang diproduksi oleh Dongtai City Spirulina Bio-Engineering Co., Ltd, China disertai Certificate of Analysis dan NOP Certificate USDA Organic no.5647 serta Food Safety Management System GB/ T 22000-2006/ ISO22000: 2005. b. Spirulina berupa bubuk, pada kelompok perlakuan 1 diberikan selama penelitian sebanyak 250 mg/kg/hari yang dilarutkan dalam 2 ml air hangat. c. Spirulina berupa bubuk, pada kelompok perlakuan 2 diberikan selama penelitian sebanyak 500 mg/kg/hari yang dilarutkan dalam 2 ml air hangat. 8. Cyclophospamide Obat yang mampu mendepresi sumsum tulang, diberikan pada kedua kelompok dengan dosis 50 mg/kg/hari per intra peritoneal satu kali pada hari ke 7. Satu vial cyclophospamide 1000 mg dicampur dengan 100 cc NaCl 0,9% sehingga 1 cc mengandung cyclophospamide 10 mg. 9. Umur Dipilih kisaran kelompok umur yang sama pada semua tikus percobaan dengan membandingkan dengan berat badan maka dipakai tikus berumur 2,5 - 3 bulan, berat 175-200 gram.
53
10. Mencegah penurunan Penurunan eritrosit, hemoglobin, leukosit, trombosit, dan neutrofil lebih sedikit daripada kelompok kontrol. 11. Perdarahan Keluarnya darah dari saluran cerna bagian atas maupun bawah dan saluran kemih setelah pemberian cyclophospamide. 12. Nutrisi dan Lingkungan kandang Kandang pemeliharaan yang terbuat dari plastik dan berukuran 23 cm x 17 cm x 9,5 cm. Kandang beralas sekam padi dan ditutup dengan ayaman kawat, dilengkapi dengan tempat makan dan minum. Makanan dan minuman diberikan tak terbatas (ad libitum). Kandang ditempatkan dalam ruangan berventilasi dan udara alami.
4.4 Bahan dan instrumen penelitian 4.4.1 Bahan penelitian 1) Tikus wistar jantan (Rattus norvegicus) berusia 2,5 - 3 bulan, berat 175-200 gram. 2) Pakan tikus, minuman, dan kandang tikus. 3) Cyclophospamide 4) Spirulina 5) Iodium 6) Metil alkohol 70% 7) Kapas
54
4.4.2 Alat penelitian 1) Timbangan gram 2) Pipet kapiler 3) Spuit 3 cc 4) Tabung EDTA 5) Kandang tikus, tempat makanan dan minuman 6) Hematoanalizer Siemen Advia 2120
55
4.5 Protokol penelitian 1. Persiapan hewan coba a. Tikus wistar yang didapatkan dari Laboratory Animal unit bagian Farmakologi Kedokteran / Fakultas Kedokteran Udayana, Denpasar Bali. b. Tikus wistar sebanyak 30 ekor yang sudah memenuhi kriteria inklusi diadaptasikan selama 1 minggu. c. Tikus wistar dibagi menjadi 3 kelompok dengan simple random dan masing-masing kelompok adalah 10 ekor. d. Tikus wistar ditempatkan pada wadah plastik. Satu wadah plastik ditempati oleh 2 ekor tikus. Tikus akan diberikan makanan dan minuman ad libitum. 2. Pemberian perlakuan a. Pada awal penelitian, setelah mengadaptasikan tikus pada ketiga kelompok, masing-masing kelompok diberikan perlakuan sebagai berikut: i. Kelompok Kontrol akan diberikan akuabides 2 cc personde mulai dari awal penelitian sampai akhir penelitian (14 hari) dan diberikan Spirulina Platensis 250 mg/Kg berat badan setelah penelitian. ii. Kelompok Perlakuan 1 diberikan Spirulina platensis 250 mg/kg berat badan selama penelitian setiap hari per sonde (14 hari). iii. Kelompok Perlakuan 2 diberikan Spirulina platensis 500 mg/kg berat badan selama penelitian setiap hari per sonde (14 hari).
56
b. Pada hari ke-7, ketiga kelompok disuntikan dengan cyclophospamide 50 mg/kg berat badan, intraperitoneal, satu kali. c. Pada hari ke 11 dan 14, pada ketiga kelompok, dilakukan pengambilan darah perifer ulangan di medial kantus pada plexus venosus retroorbitalis untuk pemeriksaan kadar eritrosit, hemoglobin, leukosit, neutrofil dan trombosit. d. Setelah selesai penelitian, tikus akan dibius dengan kloroform sampai meninggal. 3. Sedian spirulina a. Serbuk Spirulina platensis b. Tiap tikus pada Kelompok Perlakuan 1 dan 2 diberikan Spirulina platensis yang sudah dilarutkan dengan air hangat 2 cc dan diberikan dengan sonde, dimulai pada hari ke-0 sampai hari ke-14 sesuai dosis dan berat badan masing-masing tikus. 4. Cyclophospamide a. Sediaan: Satu vial cyclophospamide 1000 mg dicampur dengan 100 cc NaCl 0,9% sehingga 1 cc mengandung cyclophospamide 100 mg. b. Cyclophospamide akan disuntikkan intraperitoneal satu kali saja pada hari ke-7 penelitian . Dosis sesuai dengan berat badan masing-masing tikus. 5. Hewan Percobaan a. Dalam penelitian ini digunakan tikus wistar Jantan. Tikus berumur 2,5 3 bulan, berat 175-200 gram.
57
b. Tikus dipelihara dalam kandang di Laboratorium Farmakologi Fakultas Kedokteran Universitas Udayana Denpasar. Selama masa percobaan, tikus ditempatkan di dalam kandang yang terbuat dari plastik dengan ukuran 23 cm x 17 cm x 9,5 cm dengan tutup kawat. c. Kandang ditempatkan di dalam ruangan dengan suhu 20ºC - 25ºC, berventilasi dan udara alami. Tiap kandang memuat 2 ekor tikus. d. Kandang beralas sekam padi dan ditutup dengan ayaman kawat, dilengkapi dengan tempat makan dan minum. e. Makanan dan minuman diberikan tak terbatas (ad libitum). 6. Injeksi intraperitoneal a. Tikus diregangkan dengan kepala lebih rendah. b. Area injeksi intraperitoneal dilakukan di area perut kanan bawah. Area tersebut didesinfeksi dengan alkohol 70% c. Dilakukan penyuntikan dengan spuit 3 cc. d. Setelah jarum menembus dinding peritoneum, lakukan aspirasi untuk memastikan jarum tidak menebus kandung kemih atau usus (tidak ada material yang keluar) dan bila tidak ada maka suntikan perlahan campuran cyclophospamide. 7. Pengambilan Darah Perifer Tikus Wistar a. Melakukan fiksasi dengan tangan kiri pada kepala tikus sehingga kepala tidak bisa bergerak. b. Darah diambil di medial kantus pada plexus venosus retroorbitalis dengan menggunakan pipet mikrokapiler.
58
c. Darah yang keluar diambil 0,5 ml dan ditampung pada wadah yang sudah mengandung EDTA. 8. Pemeriksaan Hb, Ht, leukosit, eritrosit, trombosit, dan neutrofil Darah dari medial kantus sinus retroorbita + 0.5 ml dimasukkan ke dalam tabung EDTA dan dianalisis dengan mesin Hematologic Analyzer Siemen Advia 2120
59
Secara singkat alur penelitian dapat digambarkan sebagai berikut: Tikus Wistar 30 ekor
Kriteria Inklusi / eksklusi
KLP Kontrol 10 ekor
KLP Perlakuan 1 10 ekor
KLP Perlakuan 2 10 ekor
Pada hari ke-0
Pada hari ke-0
Pada hari ke-0
Pemberian aquabidest 2 cc per hari/ sonde sampai akhir penelitian.
Pemberian Spirulina platensis 250 mg/kg/BB per hari / sonde sampai akhir penelitian.
Pemberian Spirulina platensis 500 mg/kg/BB per hari / sonde sampai akhir penelitian.
Pada hari ke-7 Pemberian dosis cyclophospamide 50 mg/kg/hari, intraperitoneal, satu kali
Pada hari ke-11 Dilakukan pengambilan darah lengkap perifer
Pada hari ke-14 Dilakukan pengambilan darah lengkap perifer
Pengumpulan Data dan Analisis
Bagan 4.3 Skema Alur Penelitian Keterangan: Klp = Kelompok
60
4.6 Analisis data Data yang diperoleh dianalisis dengan langkah-langkah sebagai berikut: a. Analisis deskriptif b. Uji normalitas dengan Saphiro-Wilk test. Data berdistribusi normal karena p > 0.05. c. Uji homogenitas antar kelompok perlakuan dengan Levene’s test. Variasi data adalah homogen karena p > 0,05 d. Uji komparasi antar kelompok perlakuan karena data normal dan homogen maka dipakai analisis One-way Anova dan dilanjutkan dengan analisis Post Hoc – Least significant difference test (LSD) e. Pada penelitian ini derajat kemaknaan ditetapkan α= 0,05
61
BAB V HASIL PENELITIAN
Dalam penelitian ini digunakan tikus wistar jantan sebanyak 30 ekor, berumur 2,5 – 3 bulan, berat badan jantan 175-200 gram dengan kondisi sehat, yang terbagi menjadi 3 (tiga) kelompok masing-masing berjumlah 10 ekor tikus, yaitu Kelompok Kontrol (aquabides), Kelompok Perlakuan 1 (Spirulina 250 mg/kg BB), dan Kelompok Perlakuan 2 (Spirulina 500 mg/kg BB). Dalam bab ini diuraikan uji normalitas data, uji homogenitas data, uji komparabilitas, dan uji efek perlakuan.
5.1 Uji Normalitas Data Data hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit, dan neutrofil baik sebelum perlakuan maupun sesudah perlakuan pada masing-masing kelompok diuji normalitasnya dengan menggunakan uji Shapiro-Wilk. Hasilnya menunjukkan bahwa semua data berdistribusi normal (p>0,05), dan hasil analisis disajikan pada Tabel 5.1 berikut.
44
62
Tabel 5.1 Uji Normalitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil Shapiro-wilk Data
Hemoglobin
Eritrosit
Leukosit
Trombosit
Neutrofil
Hari ke
p Kontrol
Perlakuan 1
Perlakuan 2
11
0,382
0,230
0,179
14
0,430
0,773
0,383
11
0,313
0,801
0,295
14
0,466
0,262
0,239
11
0,213
0,796
0,188
14
0,133
0,443
0,159
11
0,486
0,499
0,685
14
0,337
0,075
0,101
11
0,284
0,474
0,208
14
0,226
0,503
0,459
5.2 Uji Homogenitas Data antar Kelompok Data hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit, dan neutrofil antar kelompok
baik
sebelum
perlakuan
maupun
sesudah
perlakuan
diuji
homogenitasnya dengan menggunakan uji Levene’s test. Hasilnya menunjukkan bahwa data homogen (p>0,05), disajikan pada Tabel 5.2 berikut.
63
Tabel 5.2 Uji Homogenitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil dengan Levene’s Test p Data
Hari ke 11
Hari ke 14
Hemoglobin
0,283
0,580
Eritrosit
0,061
0,580
Leukosit
0,201
0,132
Trombosit
0,389
0,386
Neutrofil
0,053
0,490
5.3 Hemoglobin 5.3.1 Efek perlakuan antar kelompok di hari ke 11 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata hemoglobin pada hari ke 11 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan perlakuan pada masing-masing kelompok. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.3 berikut.
Tabel 5.3 Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Hemoglobin (g/dL)
SB
Kontrol
10
12,01
0,57
Perlakuan 1
10
13,02
0,67
Perlakuan 2
10
12,42
0,48
Kelompok Subjek
F
p
7,55
0,002
64
Tabel 5.3 di atas, menunjukkan bahwa rerata hemoglobin kelompok kontrol adalah 12,010,57 g/dL, rerata kelompok perlakuan 1 adalah 13,020,67 g/dL, dan kelompok perlakuan 2 adalah 12,420,48 g/dL. Analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F = 7,55 dan nilai p = 0,002. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, rerata hemoglobinnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan kelompok kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.4.
Tabel 5.4 Analisis Komparasi Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 11 Beda Rerata Hemoglobin (g/dL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-1,01
0,001
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,41
0,127
Tidak bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
0,59
0,03
Bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata hemoglobin Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata hemoglobin Kelompok Kontrol adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
65
3. Rerata hemoglobin Kelompok Perlakuan 1 adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
5.3.2 Efek perlakuan antar kelompok hari ke 14 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata hemoglobin pada hari ke 14 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan perlakuan pada masing-masing kelompok. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.5 berikut.
Tabel 5.5 Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan Kelompok Subjek
n
Rerata Hemoglobin (g/dL)
SB
Kontrol
10
11,72
1,37
Perlakuan 1
10
13,45
1,14
Perlakuan 2
10
12,86
0,92
F
p
5,72
0,008
Tabel 5.5 di atas, menunjukkan bahwa rerata hemoglobin Kelompok Kontrol adalah 11,721,37 g/dL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 13,451,14 g/dL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 12,860,92 g/dL. Analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F = 5,72 dan nilai p = 0,008. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan bermakna (p < 0,05).
spirulina, rerata hemoglobinnya adalah berbeda secara
66
Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan kelompok kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.6
Tabel 5.6 Analisis Komparasi Hemoglobin antar Kelompok pada Hari ke 14 Beda Rerata Hemoglobin (g/dL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-1,73
0,003
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-1,14
0,037
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
0,59
0,267
Tidak bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata hemoglobin Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan kelompok perlakuan 1. 2. Rerata hemoglobin Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan kelompok perlakuan 2. 3. Rerata hemoglobin Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan kelompok perlakuan 2.
67
14 13,45
13,5
13,03
12,86
13 12,5
12,42 12,01
12
11,72
11,5 11 10,5 Akuabides
Spirulina 250 mg/Kg BB Spirulina 500 mg/Kg BB Hari ke 11
Hari ke 14
Gambar 5.1 Rerata Hemoglobin antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14
5.4 Eritrosit 5.4.1 Efek perlakuan hari ke 11 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata eritrosit pada hari ke 11 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.7 berikut. Tabel 5.7 Rerata Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Eritrosit ( x 106/μL)
SB
Kontrol
10
7,47
0,87
Perlakuan 1
10
8,26
0,23
Perlakuan 2
10
8,17
0,57
Kelompok Subjek
F
P
4,98
0,014
68
Tabel 5.7 di atas, menunjukkan bahwa rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah 7,470,87 x 106/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 8,260,23 x 106/μL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 8,170,57 x 106/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 4,98 dan nilai p = 0,014. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan
spirulina, dan ditemukan rerata
eritrositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.8.
Tabel 5.8 Analisis Komparasi Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Beda Rerata Eritrosit (x 106 /μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-0,796
0,008
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,708
0,016
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
0,088
0,753
Tidak bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan
69
Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata eritrosit Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
5.4.2 Efek perlakuan hari ke 14 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata eritrosit pada hari ke 14 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.9 berikut. Tabel 5.9 Rerata Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Eritrosit (x 106 /μL)
SB
Kontrol
10
7,35
0,97
Perlakuan 1
10
8,38
0,72
Perlakuan 2
10
8,30
0,64
Kelompok Subjek
F
P
5,18
0,012
Tabel 5.9 di atas, menunjukkan bahwa rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah 7,350,97 x 106/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 8,380,72 x 106/μL, dan Kelompok Perlakuan
2 adalah 8,300,64 x 106/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 5,18 dan nilai p = 0,012. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan
70
perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, ditemukan rerata eritrositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.10.
Tabel 5.10 Analisis Komparasi Eritrosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Beda Rerata Eritrosit (x 106/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-1,023
0,007
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,941
0,013
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
0,082
0,818
Tidak bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan . 1 2. Rerata eritrosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata eritrosit Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
71
8,6 8,4
8,26
8,38
8,3 8,17
8,2 8 7,8
7,6 7,4
7,47
7,35
7,2
7 6,8 Akuabides
Spirulina 250 mg/Kg Spirulina 500 mg/Kg BB BB
Hari Ke 11
Hari ke 14
Gambar 5.2 Rerata Eritrosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14 5.5 Leukosit 5.5.1 Efek perlakuan hari ke 11 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata leukosit pada hari ke 11 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.11 berikut. Tabel 5.11 Rerata Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Leukosit (x 106/μL)
SB
Kontrol
10
2,01
0,59
Perlakuan 1
10
2,63
0,57
Perlakuan 2
10
2,79
0,79
Kelompok Subjek
F
p
3,88
0,033
72
Tabel 5.11 di atas, menunjukkan bahwa rerata leukosit Kelompok Kontrol adalah 2,010,59 x 106/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 2,630,57 x 106/μL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 2,790,79 x 106/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 3,88 dan nilai p = 0,033. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, ditemukan rerata leukositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.12.
Tabel 5.12 Analisis Komparasi Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Beda Rerata Leukosit (x 106/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-0,621
0,046
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,782
0,014
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
-0,161
0,591
Tidak bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata leukosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata leukosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan
73
Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata leukosit Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
5.5.2 Efek perlakuan hari ke 14 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata leukosit pada hari ke 14 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.13 berikut.
Tabel 5.13 Rerata Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan N
Rerata Leukosit (x 106/μL)
SB
Kontrol
10
7,88
2,62
Perlakuan 1
10
7,92
3,05
Perlakuan 2
10
10,83
1,51
Kelompok Subjek
F
p
4,66
0,018
Tabel 5.13 di atas, menunjukkan bahwa rerata leukosit Kelompok Kontrol adalah 7,882,62 x 106/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 7,923,05 x 106/μL, dan Kelompok Perlakuan
2 adalah 10,831,51 x 106/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 4,66 dan nilai p = 0,018. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan
74
perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, ditemukan rerata leukositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada tabel 5.14.
Tabel 5.14 Analisis Komparasi Leukosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Beda Rerata Leukosit (x 106/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-0,039
0,972
Tidak Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-2,953
0,013
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
-2,914
0,014
Bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata leukosit Kelompok Kontrol perlakuan adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata leukosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata leukosit Kelompok Perlakuan 1 adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
75
12 10 8 6 4 2 0
10,83 7,92
7,88
2,79
2,63
2,01
Akuabides
Spirulina 250 mg/Kg Spirulina 500 mg/Kg BB BB
Hari 11
hari 14
Gambar 5.3 Rerata Leukosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14
5.6 Trombosit 5.6.1 Efek perlakuan hari ke 11 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata trombosit pada hari ke 11 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.15 berikut.
Tabel 5.15 Rerata Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Trombosit (x 103/μL)
SB
Kontrol
10
791,70
109,59
Perlakuan 1
10
909,10
91,49
Perlakuan 2
10
920,00
147,89
Kelompok Subjek
F
p
3,59
0,041
76
Tabel 5.15 di atas, menunjukkan bahwa rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah 791,70109,59 x 103/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 909,1091,49 x 103/μL , dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 920,00147,89 x 103/μL. Analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 3,59 dan nilai p = 0,041. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan
spirulina, ditemukan rerata
trombositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.16.
Tabel 5.16 Analisis Komparasi Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 11 Beda Rerata Trombosit (x 103/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-117,400
0,036
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-128,300
0,023
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
-10,900
0,839
Tidak Bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
77
3. Rerata trombosit Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
5.6.2 Efek perlakuan hari ke 14 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata trombosit pada hari ke 14 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.17 berikut.
Tabel 5.17 Rerata Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Trombosit (x 103/μL)
SB
Kontrol
10
760,90
180,68
Perlakuan 1
10
950,90
113,75
Perlakuan 2
10
930,40
161,94
Kelompok Subjek
F
p
4,54
0,020
Tabel 5.17 di atas, menunjukkan bahwa rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah 760,90180,68 x 103/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 950,90113,75 x 103/μL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 930,40161,94 x 103/μL. Analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 4,54 dan nilai p = 0,020. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan
spirulina, ditemukan rerata
trombositnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05).
78
Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.18.
Tabel 5.18 Analisis Komparasi Trombosit antar Kelompok pada Hari ke 14 Beda Rerata Trombosit (x 103/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-190,000
0,011
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-169,500
0,021
Bermakna
20,500
0,769
Tidak Bermakna
Kelompok Subjek
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata trombosit Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata trombosit Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
79
909,1
1000 800
791,7
950,9
920
930,4
760,9
600 400 200 0 Akuabides
Spirulina 250 mg/Kg BB Hari ke 11
spirulina 500 mg/Kg BB
Hari ke 14
Gambar 5.4 Rerata Trombosit antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14 5.7 Neutrofil 5.7.1 Efek perlakuan hari ke 11 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata neutrofil pada hari ke 11 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.19 berikut.
Tabel 5.19 Rerata Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 11 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Neutrofil (x 103/μL)
SB
Kontrol
10
0,25
0,11
Perlakuan 1
10
0,44
0,21
Perlakuan 2
10
0,46
0,20
Kelompok Subjek
F
p
3,91
0,032
80
Tabel 5.19 di atas, menunjukkan bahwa rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah 0,250,11 x 103/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 0,440,21 x 103/μL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 0,460,20 x 103/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 3,91 dan nilai p = 0,032. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, ditemukan rerata neutrofilnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05). Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan Kelompok Kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.20.
Tabel 5.20 Analisis Komparasi Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 11 Beda Rerata Neutrofil (x 103/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-0,181
0,037
Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,215
0,015
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
-0,034
0,684
Tidak Bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
81
3. Rerata neutrofil Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
5.7.2 Efek perlakuan hari ke 14 Uji efek perlakuan diuji berdasarkan rerata neutrofil pada hari ke 14 antar kelompok sesudah diberikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal dan spirulina. Hasil analisis kemaknaan dengan uji One Way Anova disajikan pada Tabel 5.21 berikut.
Tabel 5.21
Rerata Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 14 Sesudah Diberikan Perlakuan n
Rerata Neutrofil (x 103/μL)
SB
Kontrol
10
0,63
0,25
Perlakuan 1
10
0,93
0,36
Perlakuan 2
10
1,06
0,38
Kelompok Subjek
F
p
4,19
0,026
Tabel 5.21 di atas, menunjukkan bahwa rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah 0,630,25 x 103/μL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 0,930,36 x 103/μL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 1,060,38 x 103/μL.
Analisis
kemaknaan dengan uji One Way Anova menunjukkan bahwa nilai F= 4,19 dan nilai p = 0,026. Hal ini berarti bahwa ketiga kelompok sesudah diberikan perlakuan berupa cyclophospamide dan spirulina, ditemukan rerata neutrofilnya adalah berbeda secara bermakna (p < 0,05).
82
Untuk mengetahui kelompok yang berbeda dengan kelompok kontrol, dilakukan uji lanjutan dengan Post Hoc – Least significant difference test (LSD). Hasilnya ditampilkan pada Tabel 5.22.
Tabel 5.22 Analisis Komparasi Neutrofil antar Kelompok pada Hari ke 14 Beda Rerata Neutrofil (x 103/μL)
p
Interpretasi
Kontrol dan Perlakuan 1
-0,308
0,053
Tidak Bermakna
Kontrol dan Perlakuan 2
-0,426
0,009
Bermakna
Perlakuan 1 dan Perlakuan 2
-0,118
0,444
Tidak Bermakna
Kelompok Subjek
Hasil uji LSD di atas menunjukan sebagai berikut: 1. Rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 1. 2. Rerata neutrofil Kelompok Kontrol adalah berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2. 3. Rerata neutrofil Kelompok Perlakuan 1 adalah tidak berbeda bermakna dengan Kelompok Perlakuan 2.
83
1,2
1,06 0,93
1 0,8
0,63 0,6 0,4
0,46
0,44
0,25
0,2
0 Akuabides
Spirulina 250 mg/Kg BB Hari ke 11
Gambar 5.5
Spirulina 500 mg/Kg BB
Hari ke 14
Rerata Neutrofil antar Kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14
84
BAB VI PEMBAHASAN HASIL PENELITIAN
Untuk melihat pengaruh pemberian spirulina dalam mencegah penurunan hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit, dan neutrofil dalam darah tikus wistar, maka dilakukan penelitian pada tikus wistar jantan sehat yang diberikan cyclophospamide. Sebagai hewan coba digunakan tikus wistar jantan sehat. Penelitian ini menggunakan tikus karena sistem hematopoietik dengan manusia. Pemilihan jenis kelamin jantan adalah untuk mengontrol pendarahan dan kehamilan dimana kedua hal ini bisa mempengaruhi hasil penelitian. Penelitian menggunakan 30 ekor tikus wistar jantan yang dibagi menjadi 3 kelompok yaitu Kelompok Kontrol (aquabides), Kelompok perlakuan 1 (spirulina 250 mg/kg BB tikus), dan Kelompok Perlakuan 2 (spirulina 500 mg/kg BB tikus). Penelitian dilakukan selama 2 minggu.
6.1 Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Hemoglobin Hasil penelitian dan analisis data hemoglobin darah pada ketiga kelompok didapatkan uji normalitas (Uji Shapiro Wilk) dan homogenitas (Levene’s test) adalah berdistribusi normal (p > 0,05). Hal ini berarti data pada ketiga kelompok adalah sama. Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova didapatkan perbedaan yang bermakna menemukan bahwa rerata hemoglobin hari ke 11 Kelompok 67
85
Kontrol adalah 12,010,57 g/dL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 13,020,67 g/dL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 12,420,48 g/dL, dengan F = 7,55 dan nilai p = 0,002. Dari data di atas menunjukkan bahwa rerata hemoglobin pada Kelompok Kontrol lebih rendah dibandingkan Kelompok Perlakuan 1 dan 2 setelah 4 hari penyuntikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal. Dengan uji One Way Anova, didapatkan perbedaan yang bermakna antara kelompok kontrol dan perlakuan. Post Hoc-LSD ditemukan perbedaan yang bermakna itu antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -1,01, p = 0,001) serta Kelompok Perlakuan 1 dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata 0,59, p = 0,03). Peneliti melihat bahwa spirulina mampu mencegah penurunan hemoglobin darah pada hari ke 11 (4 hari setelah penyuntikan cyclophospamide 50 mg/kg intraperitoneal) pada dosis 250 mg / Kg BB tikus. Perbedaan tidak bermakna ditemukan antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok perlakuan 2 (beda rerata 0,41, p = 0,127). Hal ini berarti dengan pemberian spirulina 500 mg / Kg BB tidak berbeda dengan kontrol. Hasil analisis deskriptif rerata hemoglobin pada hari ke 14 Kelompok Kontrol adalah 11,721,37 g/dL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 13,451,14 g/dL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 12,860,92 g/dL. Pada hasil deskriptif terlihat bahwa rerata hemoglobin pada Kelompok Kontrol lebih rendah daripada kelompok lainnya. Pada uji One Way Anova didapatkan nilai F = 5,72 dan nilai p = 0,008 yang berarti terdapat perbedaan yang bermakna. Dari hasil uji lanjutan dengan Post Hoc – LSD ditemukan kelompok yang bermakna adalah Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -1,73, p = 0,003) serta
86
Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -1,14, p = 0,037). Dari data yang ada disimpulkan bahwa dengan pemberian spirulina 250 mg / Kg BB dan 500 mg / Kg BB mampu mencegah penurunan hemoglobin pada hari ke 14 dibandingkan kontrol. Pada uji Post Hoc-LSD juga ditemukan bahwa tidak ada perbedaan antara Kelompok Perlakuan 1 dan 2. Ini berarti bahwa pemberian dosis 250 mg /Kg BB dan 500 mg / Kg BB memberikan dampak yang sama terhadap hemoglobin pada hari ke 14. Oleh karena itu pada penelitian ini, peneliti mengganggap dosis spirulina 250 mg / Kg BB adalah cukup untuk mencegah penurunan hemoglobin pada hari ke 14. Pada uji Post Hoc-LSD hari ke 11 menemukan bahwa spirulina 500 mg / Kg BB tidak mampu mencegah penurunan hemoglobin. Pada hari ke 11 dan 14 menunjukkan bahwa dosis spirulina yang efektif adalah 250 - 500 mg /Kg BB tikus. Hasil penelitian ini menunjukan bahwa dengan dosis 250 mg / Kg BB sudah cukup untuk mencegah penurunan hemoglobin pada tikus yang diberikan Cyclophospamid. Peneliti beranggapan bahwa spirulina dengan dosis 500 mg / Kb BB pada hari ke 11 yang diharapkan berfungsi sebagai anti oksidan sebaliknya menjadi pro-oksidan dan pada hari ke 14, spirulina 500 mg / Kg BB kembali menjadi antioksidan. Antioksidan yang terkandung pada spirulina adalah β-carotene, vitamin E, Chlorophyll a, dan Phycocyanin. Beberapa anti oksidan bisa berubah menjadi prooksidan yang mempunyai sifat seperti radikal bebas. Anti oksidan tersebut adalah β-carotene (Silvia dkk, 2004), kelompok phenolic seperti vitamin E (α-Tocopherol) dan Phycocyanin (golongan flavonoid) (Finaud, dkk., 2006). β-
87
carotene bertindak sebagai pro oksidan bila berada pada lingkungan dengan tekanan oksigen tinggi yang membentuk hidroksil radikal (Young dan Lowe, 2001, Palozza, dkk., 2003). α-Tocopherol dosis tinggi akan berubah menjadi pro oksidan bila tidak terdapat vitamin C yang cukup (Cillard, dkk., 1980, Vertuani, dkk., 2004) dan berada di sistem yang mengandung logam aktif redoks (besi dan tembaga) dimana akan membentuk ROS dan radikal phenoxyl yang mana akan merusak DNA dan lipid (Galati dan O’Brien, 2004). Flavonoid dapat bertindak sebagai pro oksidan bila berinteraksi dengan logam Fe2+, Fe3+ dan Cu2+. Vitamin E bekerja sama dengan β-carotene, GSH, vitamin C atau asam lipoik untuk mengendalikan lipid peroksidase (Finaud, dkk., 2006). Berdasarkan teori di atas dan mengingat bahwa hemoglobin mengandung besi dan membawa oksigen maka kandungan antioksidan yang terkandung dalam spirulina dengan dosis 500 mg / Kg BB berubah menjadi pro oksidan. Peneliti melihat bahwa perubahan ini bersifat sementara karena pada hari ke 14, kelompok perlakuan 2 (spirulina 500 mg / kg BB) kembali menjadi anti oksidan. Hal ini dikarenakan oleh adanya proses recycling radikal α-Tocopheroxyl yang merugikan menjadi α-Tocopheroxyl kembali. Proses ini bisa terjadi karena adanya co-oksidan seperti vitamin c atau bilirubin (Kontus, dkk., 1996). Bilirubin sendiri adalah antioksidan di cairan tubuh dan akan meningkat bila terjadi stress oksidatif (Finaud, dkk., 2006). Pada hemoglobin terkandung bilirubin yang pada kondisi seperti ini bisa bersifat sebagai co-oksidan dan mendukung terjadinya proses radical recycling.
88
6.2. Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Leukosit dan Neutrofil Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova rerata leukosit pada hari ke 11 Kelompok Kontrol adalah 2,010,59 x 103/µL, Kelompok Perakuan 1 adalah 2,630,57 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 2,790,79 x 103/µL dengan nilai F= 3,88 dan nilai p = 0,033. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -0,621, p = 0,046) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -0,782, p = 0,014). Pada hari ke 11, ditemukan bahwa rerata leukosit pada Kelompok Kontrol lebih rendah daripada kelompok perlakuan lainnya. Jadi spirulina mampu mencegah penurunan leukosit dibandingkan kontrol. Pada Post hoc-LSD antar kelompok 1 dan 2 tidak berbeda maka disimpulkan bahwa pemberian spirulina dosis 250 mg / Kg BB dan 500 mg / Kg BB tidak berbeda sehingga dengan dosis 250 mg / Kg BB sudah bisa mencegah penurunan leukosit. Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova leukosit pada hari ke 14 kelompok Kelompok Kontrol adalah 7,882,62 x 103/µL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 7,923,05 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 10,831,51 x 103/µL, dengan nilai F= 4,66 dan nilai p = 0,018. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -2,953, p = 0,013) serta Kelompok Per1akuan 1 dan 2 (beda rerata -2,914, p = 0,014) sedangkan antara Kelompok
89
Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 tidak bermakna ( beda rerata -0,039, p = 0,972). Dari data di atas disimpulkan bahwa pada hari ke 14, spirulina mampu mencegah penurunan leukosit dibandingkan kontrol terjadi dengan dosis 500 mg /Kg BB. Dosis spirulina 250 mg / Kg BB tidak bisa mencegah penurunan leukosit pada hari ke 14. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa diperlukan kenaikan dosis spirulina untuk mencegah penurunan leukosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova rerata neutrofil pada hari ke 11 Kelompok Kontrol adalah 0,250,11 x 103/µL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 0,440,21 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 0,460,20 x 103/µL dengan nilai F= 3,91 dan nilai p = 0,032. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -0,181, p = 0,037) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -0,215, p = 0,015). Pada hari ke 11 ditemukan
penurunan
neutrofil
pada
Kelompok
Kontrol
lebih
banyak
dibandingkan kelompok yang lain. Perbedaan tidak bermakna ditemukan antara Kelompok Perlakuan 1 dan 2. Hal ini menunjukkan bahwa dosis 250 mg/Kg BB sudah bisa mencegah penurunan neutrofil pada tikus
yang diberikan
cyclophospamide. Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova rerata neutrofil pada hari ke 14 Kelompok Kontrol adalah 0,630,25 x 103/µL , rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 0,930,36 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 1,060,38 x 103/µL, dengan nilai F= 4,19 dan nilai p = 0,026. Dengan analisis Post Hoc –
90
LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -0,426, p = 0,009). Pada hari ke 14, spirulina 500 mg / Kg BB tikus diperlukan untuk mencegah penurunan neutrofil tikus yang diberikan cyclophospamide. Pada hasil analisis One Way Anova dan Post ad Hoc kelompok leukosit dan neutrofil, pada hari ke 11 ditemukan perbandingan yang bermakna (p < 0,05) pada kelompok kontrol dengan kelompok perlakuan 1 dan 2, sedangkan pada hari ke 14 ditemukan perbandingan yang bermakna hanya antara kelompok kontrol dan perlakuan 2. Pada penelitian ini tampak bahwa terjadi kenaikkan kebutuhan dosis spirulina 250 mg / kg BB menjadi 500 mg / Kg BB di hari ke 14. Dartsch. (2008) menemukan bahwa kebutuhan antioksidan dari spirulina pada neutrofil dan leukosit saat terjadi imflamasi bersifat dose-dependent. Literatur lain juga menunjukkan bahwa pada kultur Spirulina platensis yang ditambahkan H2O2, menunjukkan peningkatan kadar β-carotene dan α-tocopherol yang linier signifikan terhadap aktivitas antioksidan katalase, peroksidase, and superoxide dismutase (SOD) (El-Baky, dkk., 2007).
6.3. Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Eritrosit Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova, rerata eritrosit pada hari ke 11 Kelompok Kontrol adalah 7,470,87 x 106/µL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 8,260,23 x 106/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 8,170,57 x 106/µL dengan kemaknaan nilai F= 4,98 dan nilai p = 0,014. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol
91
dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -0,796, p = 0,008) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -0,708, p = 0,016). Hasil analisis di atas ditemukan bahwa spirulina mencegah penurunan eritrosit dibandingkan kontrol sudah terjadi pada dosis 250 mg /Kg BB. Hasil analisis deskriptif rerata eritrosit pada hari ke 14 Kelompok Kontrol adalah 7,350,97 x 106/µL, rerata Kelompok Perlakuan 1 adalah 8,380,72 x 106/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 8,300,64 dengan nilai F= 5,18 dan nilai p = 0,012. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Perlakuan 1 (beda rerata -1,023, p = 0,007) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata 0,941, p = 0,013) tetapi tidak pada Kelompok Perlakuan 1 dengan 2 ( beda rerata 0,082, p = 0,818). Hasil analisis di atas ditemukan bahwa spirulina mencegah penurunan eritrosit dibandingkan kontrol sudah terjadi dengan dosis 250 mg /Kg BB. Dari data antar kelompok pada hari ke 11 dan hari ke 14 ditemukan bahwa spirulina mampu mencegah penurunan eritrosit darah. Dosis pencegahan sudah terlihat pada hari ke 11 pada kelompok spirulina 250 mg/Kg BB berlanjut terus sampai hari ke 14. Jadi bisa disimpulkan bahwa dengan dosis 250 mg bisa mencegah penurunan eritrosit.
6.4 Pengaruh Spirulina terhadap Pencegahan Penurunan Trombosit Hasil analisis deskriptif dan uji One Way Anova rerata trombosit pada hari ke 11 Kelompok Kontrol adalah 791,70109,59 x 103/µL, rerata Kelompok
92
Perlakuan 1 adalah 909,1091,49 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 920,00147,89 x 103/µL dengan nilai F= 3,59 dan nilai p = 0,041. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -117,400, p = 0,036) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata -128,30, p = 0,023). Pada hari ke 11, spirulina mencegah penurunan trombosit dibandingkan kontrol terjadi dengan dosis 250 mg /Kg BB dan 500 mg / Kg BB. Pada analisis Post Hoc-LSD antara Kelompok Perlakuan 1 dan 2 tidak didapatkan perbedaan (p = 0,839) maka peneliti pada penelitian ini menyarankan agar dosis 250 mg / Kg BB digunakan untuk pencegahan penurunan trombosit akibat pemberian cyclophospamide. Rerata trombosit pada hari ke 14 Kelompok Kontrol adalah 760,90180,68 x 103/µL, Kelompok Perlakuan 1 adalah 950,90113,75 x 103/µL, dan Kelompok Perlakuan 2 adalah 930,40161,94 x 103/µL, dengan nilai F= 4,54 dan nilai p = 0,020. Dengan analisis Post Hoc – LSD didapatkan perbedaan yang bermakna antara Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 1 (beda rerata -190,00, p = 0,011) serta Kelompok Kontrol dengan Kelompok Perlakuan 2 (beda rerata 169,50, p = 0,021) tetapi tidak pada Kelompok Perlakuan 1 dengan 2. Hasil penelitian menunjukkan bahwa spirulina dosis 250 mg /Kg BB bisa mencegah penurunan trombosit dibandingkan kontrol. Pada penelitian ini ditemukan bahwa spirulina dapat mencegah penurunan hemoglobin, eritrosit, leukosit, trombosit, dan neutrofil yang diberikan
93
cyclophospamide. Beberapa penelitian lain juga menunjukkan bahwa spirulina mampu mencegah penurunan kadar hemoglobin, leukosit, eritrosit, trombosit dan neutrofil (Zhang, dkk., 2001, Verma, dkk., 2006; Simsek, dkk., 2007). Hal ini disebabkan karena Spirulina platensis mengandung vitamin seperti vitamin B, vitamin E, Vitamin K, phenolic acids, tocopherols, g-linolenic acid, asam folat, pigmen seperti b-carotenes, chlorophyll a dan phycocyanin, dan mineral terutama zat besi (Sánchez dkk, 2003). Kandungan vitamin B12, Asam folat dan zat besi pada Spirulina platensis mampu meningkatkan produksi hemoglobin, leukosit dan hitung jenis darah perifer. Kandungan vitamin E dan Phenolic acids (Shukla dkk, 2009; Shanmugapriya dan Ramanathan, 2012), bcarotenes dan chlorophyll a (Mohammed, 2011) dan C-phycocyanin (Estrada, dkk, 2001) memberikan kemampuan antioksidan pada Spirulina platensis. Hal ini dibuktikan dengan penurunan produksi ROS (reactive oxygen species) dan menurunkan kadar menurunkan malondialdehyde (MDA) hati (Verma, dkk., 2006; Li dkk., 2009.), meningkatkan aktivitas enzim NADPH oxidase (Romay, 1998), enzim superoxide dismutase (SOD) (Li, dkk., 2009) dan glutathione peroxidase (Verma, dkk., 2006; Li, dkk., 2009). Penelitian lainnya yang mendukung adalah Pada kultur Spirulina platensis yang ditambahkan H2O2, menunjukkan peningkatan kadar β-carotene dan α-tocopherol yang
linier
signifikan terhadap aktivitas antioksidan katalase, peroksidase, and superoxide dismutase (SOD) (El-Baky, dkk., 2007). Selain sebagai antioksidan, pigmen Phycocyanin yang terkandung pada Spirulina platensis mampu meningkatkan proliferasi sel - sel sumsum tulang akibat menstimulasi Granulocyte macrophage-
94
colony stimulating factor (GM-CSF) dan interleukin-3 (IL-3) dan menginduksi aktivitas pembentukan koloni (colony- forming) pada kultur sel lien tikus, serta meningkatkan rasio neutrofil dan limfosit pada darah perifer tikus (Hayashi, dkk., 2006). Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa spirulina mampu mencegah penurunan hemoglobin, eritrosit, leukosit, neutrofil dan trombosit darah perifer akibat pemberian cyclophospamide. Hal ini dikarenakan Spirulina platensis mampu meningkatkan produksi sumsum tulang dengan memperbaiki lingkungan mikro dan meningkatkan mekanisme regulasi sistem hematopoisis.
95
BAB VII SIMPULAN DAN SARAN
7.1 Simpulan Berdasarkan hasil penelitian pemberian spirulina pada tikus wistar jantan yang diberikan cyclophospamide, didapatkan simpulan sebagai berikut: 1. Pemberian spirulina dengan dosis 250 / Kg BB dapat mencegah penurunan hemoglobin pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 2. Pemberian spirulina dengan dosis 250 mg / Kg BB dapat mencegah penurunan eritrosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 3. Pemberian spirulina dengan dosis 500 mg/ Kg BB dapat mencegah penurunan leukosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 4. Pemberian spirulina dengan dosis 250 mg / Kg BB dapat mencegah penurunan trombosit pada tikus yang diberikan cyclophospamide. 5. Pemberian spirulina dengan dosis 500 mg / Kg BB dapat mencegah penurunan neutrofil pada tikus yang diberi cyclophospamide.
96
7.2 Saran Sebagai saran dalam penelitian ini adalah: 1. Diperlukan penelitian lebih lanjut untuk mencari dosis spirulina yang lebih tepat antara rentang 250 – 500 mg / Kg BB tikus untuk menghindari efek pro oksidan pada hemoglobin sekaligus bisa memenuhi peningkatan kebutuhan anti oksidan pada kelompok leukosit dan neutrofil. 2. Diperlukan penelitian uji klinik dengan menggunakan spirulina pada pasien yang mendapatkan cyclophospamid.
97
DAFTAR PUSTAKA
Anton, E. 1997, Liver After Cyclophospamide Treatment In Mice. Tissue and Cell. Vol 29, Issue 1:1-9. Belay, A. 2002. The Potential Application of Spirulina (Arthrospira) As A Nutritional And Therapeutic Supplement In Health Management. The Journal of The American Nutraceutical Association Vol. 5, No. 2, p.27-48. Blankenberg, F.G., Naumovski, L., Tait, J.F., Post, A.M., Strauss H.W. 2001. Imaging Cyclophosphamide-Induced Intramedullary Apoptosis In Rats Using 99mtc-Radiolabeled Annexin V. The Journal of Nuclear Medicine; 42:309–316. Brown, C.I., Carbone, P.P. 1971. Effects of Chemotherapeutic Agents on Normal Mouse Bone Marrow Grown In Vitro. Cancer Research; 31:185 -190. Brunton, L.L. 2008. Antineoplastik Agents in Goodman & Gilman's The Pharmacological Basis of Therapeutics 11th Ed. Chapter 51. San Francisco. McGraw-Hill. Campbell, T.W. 2012. Veterinary Hematology and Clinical Chemistry ed 2nd. Oxford. John Willey & Son. Chakraborty, P., Ugir, H.S., Murmu, N., Kumar, D. J., Smarajit, P. and Bhattacharya S. 2009. Modulation of Cyclophosphamide-Induced Cellular Toxicity by Diphenylmethyl Selenocyanate In Vivo, an Enzymatic Study. Journal of Cancer Molecules 4(6):183-189. Chu, W.L., Lim, Y.W., Radhakrishnan, A.K., Lim, P.K. 2010. Protective Effect of Aqueous Extract from Spirulina platensis against Cell Death Induced by Free Radicals. BMC Complementary and Alternative Medicine,; 10; 53:18. Cillard, J., Cillard, P., Cormier, M., Girre, L. 1980. α–Tocopherol Prooxidants Effect in Aqueous Media: Increased Autoxidation Rate of Linoleic Acid. J. Am. Oil Chem; 57: 252-255. Dartsch, P.C., 2008. Antioxidant Potential of Selected Spirulina platensis Preparations. Phytotherapy Research: 22; 5, p. 627–633. Dro¨ ge, W. 2002. Free Radicals in the Physiological Kontrol of Cell Function. Physiol Rev.82. p. 47–95.
98
El-Baky, H.H.A., El Baz, F.K., El-Baroty. G.S. 2007. Enhancement of Antioxidant Production in Spirulina Plantensis Under Oxidative Stress. American-Eurasian Journal of Scientific Research 2 (2): 170-179. Eriksen, N.T. 2008. Production of Phycocyanin—a Pigment with Applications in Biology, Biotechnology, Foods and Medicine. Appl Microbiol Biotechnol 80:1–14. Estrada, J.E.P., Bescos, P.B., fresno, A.M.V. 2001. Antioxidant Activity of Different Fractions of Spirulina platensis Proteant Extract. Il Farmaco vol. 56, issue 5-7. 497-500. Fauci, A.S., Kasper, D.L., Longo, D.L., Braunwald, E., Hauser, S.L., Jameson, J.L., Loscalzo, J. 2012. Hematopoiesis and the Physiologic Basis of Red Cell Production in Harrison's Principles of Internal Medicine 18th ed. San Francisco. McGraw-Hill. FDA. Agency Response Letter GRAS Notice No. GRN 000127, 2003, available from http://www.fda.gov/Food/Food Ingredients Packaging/ Generally RecognizedasSafeGRAS /GRASListings/ucm153944.htm. Accessed: May, 4th, 2010 Federer, W. 1991. Statistic and Society: Data Colecction and Interpretation 2nd ed. New York. Marcrl Dekker. Finaud, J., Lac, G.,Filaire, E. 2006. Oxidative Stress Relationship with Exercise and Training. Sports Med; 36 (4): 327-358. Galati, G., O’Brien, P.J. 2004. Potential Toxicity of Flavonoids and Other Dietary Phenolics: Significance for Their Chemopreventive and Anticancer Properties. Free Radic. Biol. Med; 37: 287-303. Glaspy. J, 2008. Hematologic Problems in Abeloff’s Clinical Oncology 4th Ed. New York. Elsevier. p. 675-682. Guyton, A.C., Hall, J.E. 2006. Blood Cells, Immunity, and Blood Clotting in Textbook Of Medical Physiology 11th Ed. Philadelphia. Elsevier. p. 417429. Hamid, A.A., Aiyelaagbe, O.O., Usman, L.A., Ameen, O.M., Lawal, A. 2010. Antioxidants: Its Medicinal and Pharmacological Applications, African Journal Of Pure And Applied Chemistry Vol. 4(8); 142-151
99
Hayashi, O., Ono, S., Ishii, K., Shi, Y.H., Hirahashi, T., Katoh, T. 2006. Enhancement of Proliferation and Differentiation in Bone Marrow Hematopoietic Cells by Spirulina (Arthrospira) platensis in Mice, Springer. Journal of Applied Phycology; 18: 47–56. Hutadilok-Towatana, N., Reanmongkol, W., Satitit, S., Panichayupakaranant, P., Ritthisunthorn P. 2008. A Subchronic Toxicity Study Of Spirulina Platensis. Food Sci. Technol. Res. 14 (4): p.351 – 358. Jain, N.C. 1993. Essential of Veterinary Hematology. Philadelphia. Williams & Wilkins. p.72-76. Katzung, B.G. 2006. Cancer Chemotherapy in Basic and Clinical Pharmacology 10th Ed. Chapter 55. San Francisco. McGraw-Hill. Kontush, A., Finckh, B., Karten, B., kohlschutte, A., Beisiege, U. 1996. Antioxidant And Prooxidant Activity Of A-Tocopherol In Human Plasma and Low Density Lipoprotein. Journal of Lipid Research; Volume 37:1436-1448. Leung, A.J.H., Verfaillie, C.M. 2005. Stem Cell Model of Hematopoiesis in Hoffman: Hematology: Basic Principles and Practice, 4th ed., Philadelphia. Churchill Livingstone. Li, X.L., Xu, G., Chen, T., Wong, Y.S., Zhao, H.L., Fan, R.R., Gu, X.M., Tong, P.C., Chan, J.C. 2009. Phycocyanin protects INS-1E pancreatic beta cells against human islet amyloid polypeptide-induced apoptosis through attenuating oxidative stress and modulating JNK and p38 mitogenactivated protein kinase pathways. Int J Biochem Cell Biol. 41(7):1526-35. McCarty, M.F. 2007. Clinical Potential of Spirulina as a Source of Phycocyanobilin. J Med Food 10 (4): 566–570 Mohammed, M.K., 2011. Production of Carotenoids (Antioxidants/ Colourant) In Spirulina Platensis in Response to Indole Acetic Acid (IAA). International Journal of Engineering Science and Technology. Vol. 3 No. 6; 4973-4979. Molyneux, G., Andrews, M., Sones, W., York, W., Barnett, A., Quirk, E., Yeung, W., Turton, J. 2011. Haemotoxicity of Busulphan, Doxorubicin, Cisplatin and Cyclophosphamide in the Female BALB/c Mouse Using A Brief Regimen Of Drug Administration. Cell Biol Toxicology: 27; 13–40. Murata, M., Suzuki, T., Midorikawa, K., Oikawa, S., Kawanishi, S. 2004. Oxidative DNA Damage Induced By A Hydroperoxide Derivative Of Cyclophosphamide. Free Radic Biol Med. 15;37(6):793-802.
100
Palozza, P., Serini, S., Nicuolo, F.D., Piccioni, E., Calviello. 2003. Prooxidant Effects of B-Carotene In Cultured Cells. Molecular Aspects of Medicine, 24:353–362. Pardhasaradhi, B.V.V., Mubarak,A. A., Kumari, A.L., Reddanna, P., Khar, A. 2003. Phycocyanin-Mediated Apoptosis In AK-5 Tumor Cells Involves Down-Regulation Of Bcl-2 And Generation of ROS. Molecular Cancer Therapeutics (2):1165–1170. Ratna, S.D., 2013. Laporan Penelitian Pendahuluan: Spirulina Menghambat Penurunan Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit, dan Hitung Jenis Darah Perifer Tikus (Rattus norvegicus) yang Diberikan Cyclophospamide. Belum dipublikasikan. Ritter, J.M., Lewis, L.D., Mant, T.Gk., Ferro, A. 2010. Cancer Chemotherapy in A Textbook Of Clinical Pharmacology and Therapeutics 5th Ed. London. Hodder Arnold. p. 267-385. Romay, C., Armesto, J., Remirez, D., Gonza´lez, R., Ledon, N., Garcı´a, I. 1998. Antioxidant and Anti-Inflammatory Properties of C-phycocyanin from Blue-Green Algae. Inflammation Research:47; 36–41. Sánchez, M., Castillo B,J., Rozo, C., Rodríguez, I. 2003. . Spirulina (arthrospira): A Review: An Edible Microorganism, available from: http://www.javeriana.edu.co/universitas_scientiarum/universitas_docs/vol 8n1/J_bernal.htm. accessed July,2011 Shanmugapriya, R., Ramanathan, T. 2012. Antioxidant and Radical Scavenging Effect of Blue-Green Alga Spirulina platensis. International Journal of Pharmaceutical & Biological Archives. 3(5):1086-1090. Shukla, V., Vashistha, M., Singh, S.N., 2009. Evaluation Of Antioxidant Profile And Activity Of Amalaki (Emblica Officinalis), Spirulina And Wheat Grass. Indian Journal Of Clinical Biochemistry: 24; 70-75. Sieff, C.A., Nathan, D.G. 2003. Stem cells and Haemopoiesis in Oxford Textbook of Medicine, 4th Ed. Oxford . Oxford University Press. P. 505-515. Simsek, N., Karadeniz, N., Karaca, T. 2007. Effects of The Spirulina platensis and Panax Ginseng Oral Supplementation on Peripheral Blood cells in Rats, Revue Méd. Vét:10; 483-488. Sladek, N. E. 1972. Therapeutic Efficacy of Cyclophosphamide as A Function of Inhibition of Its Metabolism. Cancer Research: 32; 1848-1854.
101
Smith, J.B dan Mangkoewidjojo, S. 1988. Pemeliharaan, Pembiakan dan Pengunaan Hewan Percobaan di Daerah Tropis: Tikus. Universitas Indonesia. hal. 37-57. Strauss, G., Westhoff, M.A., Fischer-Posovszky, P., Fulda, S., Schanbache, M., Eckhoff, S.M., Stahnke, K., Vahsen, N., Kroemer, G., Debatin, K.M. 2008. 4-Hydroperoxy-Cyclophosphamide Mediates Caspasein dependent T-Cell Apoptosis Involving Oxidative Stress-Induced Nuclear Relocation Of Mitochondrial Apoptogenic Factors AIF and Endo G. Cell Death and Differentiation 15; 332–343. Tobias, J. Hochhauser, D. 2010. Systemic Treatment For Cancer in Cancer and Its Management 6th ed. London. Willey-Blackwell. p.104-124. Tsai-Turton, M., Luong, B.T., Tan, Y., Luderer. U. 2007. CyclophosphamideInduced Apoptosis in COV434 Human Granulosa Cells Involves Oxidative Stress and Glutathione Depletion. Toxicological Sciences 98(1); 216–230. Tsukii. Y., 2003. Gambar Spirulina. available from http:/ /protist.i.hosei.ac.jp/ PDB4/PCD3229/ PCD3229.html. Accessed July, 2011 Verma, S., Samarth, R., Panwar, M. 2006. Evaluation of Radioprotective Effects of Spirulina in Swiss Albino Mice. Asian J. Exp. Sci; Vol. 20. No. 1:121126. Vertuani, S., Angusti, A., Manfredini, S. 2004. The Antioxidants and ProAntioxidants Network: An Overview. Current Pharmaceutical Design; 10, 1677-1694. Welman, M.L. 2010. Hematopoiesis in Schalm’s Veterinary Hematology, 6th ed. Singapore. Blackwell Publishing. p. 27-64. Young, A.J., Lowe, G.M. 2001. Antioxidant and Prooxidant Properties of Carotenoids. Arch. Biochem. Biophys; 382: 20-27. Zhang, H.Q., Lin, A.P., Sun, Y., Deng, A.M. 2001. Chemo- and Radio-Protective Effect of Polysaccharida of Spirulina platensis on Hemopoietic System of Mice and Dogs. Acta Pharmacol Sin: 1121-1124.
102
Lampiran 1
TEMPAT DAN WAKTU PENELITIAN Penelitian dilaksanakan di: 2. Laboratorium Animal unit bagian Farmakologi Kedokteran. Denpasar Bali. 3. Laboratorium Daerah Denpasar, Bali Jadwal Penelitian Percobaan dan Pengumpulan data Analisa Data Pelaporan
Juli 2013
Agustus 2013
Februari 2014
Lampiran 2 103
ETIKAL KLIREN (Difoto kopi)
104
Lampiran 3 KANDUNGAN SPIRULINA YANG DIPAKAI PADA PENELITIAN per 10 gram VITAMIN Vitamin A
23000 IU
Vitamin B1
0.35 mg
Beta Caroten
14 mg
Vitamin B2
0.40 mg
Vitamin C
0
Vitamin B3
1.4 mg
Vitamin D
1200 IU
Vitamin B6
80 mcg
Vitamin E
1 mg
Asam Folat
1 mcg
Vitamin K
200 mcg
Vitamin B12
20 mcg
Biotin
0.5 mcg
As.Pantotenat
10 mcg
Inositol
6.4 mcg
MINERAL 70 mg
Posphat
80 mg
Kalsium Besi
15 mg
Magnesium
40 mg
Natrium
90 mg
Selenium
10 mcg
Kalium
140 mg
Mangan
0.5 mg
Krom
25 mcg
Seng
0.3 mg
Germanium
60 mcg
Tembaga
120 mcg
14 %
Klorofil Hijau
1.0 %
PIGMEN Phycocyanin Biru Karotenoid Orange
0.47 %
105
KAROTENOID Beta karoten
0.25 %
Xanthophyll lain
0.03 %
Myxoxanthophyll
0.09 %
Zeaxanthin
0.08 %
Cryptoxanthin
0.01 %
Echinenone
0.01 %
Karoten lain
0.21 %
ASAM AMINO ESSENSIAL Isoleusin 5.6 %
Leusin
8.7 %
Lisin
4.7 %
Metionin
2.3 %
Fenilalanin
4.5 %
Treonin
5.2 %
Triptofan
1.4 %
Valin
6.5 %
Arginin
6.9 %
Sistin
1.0 %
ASAM AMINO NON ESSENSIAL 7.6 % Alanin Asam Aspartat 9.8 % Asam Glutamat
14.6 %
Glisin
5.2 %
Histidin
1.5 %
Prolin
4.3 %
Serin
5.2 %
Tirosin
4.8 %
106
Lampiran 4. Pengujian Kenormalan Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil Tests of Normality Kolmogorov-Smirnova Kelompok Hemoglobin Hari 11
Hemoglobin Hari 14
Eritrosit Hari 11
Eritrosit Hari 14
Leukosit Hari 11
Leukosit Hari 14
Statistik
df
Sig.
Shapiro-Wilk Statistik
df
Sig.
Kontrol
.157
10
.200*
.923
10
.382
Perlakuan 1
.187
10
.200*
.902
10
.230
Perlakuan 2
.201
10
.200*
.892
10
.179
Kontrol
.140
10
.200*
.928
10
.430
Perlakuan 1
.148
10
.200*
.959
10
.773
Perlakuan 2
.222
10
.175
.923
10
.383
Kontrol
.217
10
.198
.915
10
.313
Perlakuan 1
.169
10
.200*
.961
10
.801
Perlakuan 2
.219
10
.191
.912
10
.295
Kontrol
.141
10
.200*
.932
10
.466
Perlakuan 1
.214
10
.200*
.907
10
.262
Perlakuan 2
.190
10
.200*
.903
10
.239
Kontrol
.197
10
.200*
.899
10
.213
Perlakuan 1
.175
10
.200*
.961
10
.796
Perlakuan 2
.182
10
.200*
.894
10
.188
Kontrol
.245
10
.091
.881
10
.133
Perlakuan 1
.172
10
.200*
.930
10
.443
107
Trombosit Hari 11
Trombosit Hari 14
Neutrofil Hari 11
Neutrofil Hari 14
Perlakuan 2
.208
10
.200*
.888
10
.159
Kontrol
.183
10
.200*
.934
10
.486
Perlakuan 1
.157
10
.200*
.935
10
.499
Perlakuan 2
.144
10
.200*
.951
10
.685
Kontrol
.170
10
.200*
.918
10
.337
Perlakuan 1
.214
10
.200*
.859
10
.075
Perlakuan 2
.206
10
.200*
.871
10
.101
Kontrol
.178
10
.200*
.910
10
.284
Perlakuan 1
.158
10
.200*
.933
10
.474
Perlakuan 2
.195
10
.200*
.898
10
.208
Kontrol
.197
10
.200*
.901
10
.226
Perlakuan 1
.155
10
.200*
.935
10
.503
Perlakuan 2
.156
10
.200*
.931
10
.459
a. Lilliefors Significance Correction *. This is a lower bound of the true significance.
108
Lampiran 5 Pengujian Homogenitas Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil Test of Homogeneity of Variances Levene Statistic
df1
df2
Sig.
Hemoglobin hari ke 11
1.321
2
27
.283
Hemoglobin hari ke 14
.556
2
27
.580
Eritrosit hari ke 11
3.051
2
27
.061
Eritrosit hari ke 14
.556
2
27
.580
Leukosit hari ke 11
1.703
2
27
.201
Leukosit hari ke 14
2.187
2
27
.132
Trombosit hari ke 11
.977
2
27
.389
Trombosit hari ke 14
.987
2
27
.386
Neutrofil hari ke 11
3.283
2
27
.053
Neutrofil hari ke 14
.732
2
27
.490
109
Lampiran 6. Pengujian Deskriptif Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil Descriptives 95% Confidence Interval for Mean Std. Deviation Std. Error
Lower
Upper
Bound
Bound
N
Mean
Minimum Maximum
Hemoglobin Kontrol
10
12.0100
.57436
.18163
11.5991
12.4209
11.00
12.70
Hari 11
Perlakuan 1
10
13.0200
.67791
.21437
12.5351
13.5049
12.20
14.00
Perlakuan 2
10
12.4212
.48567
.15358
12.0738
12.7686
11.40
13.00
Total
30
12.4837
.70435
.12860
12.2207
12.7467
11.00
14.00
Hemoglobin Kontrol
10
11.7200 1.37016
.43328
10.7398
12.7002
9.00
13.20
Hari 14
Perlakuan 1
10
13.4500 1.14625
.36248
12.6300
14.2700
11.70
15.20
Perlakuan 2
10
12.8600
.92999
.29409
12.1947
13.5253
11.70
14.40
Total
30
12.6767 1.33873
.24442
12.1768
13.1766
9.00
15.20
Eritrosit
Kontrol
10
7.4700
.87041
.27525
6.8473
8.0927
5.72
8.53
Hari 11
Perlakuan 1
10
8.2660
.23908
.07560
8.0950
8.4370
7.94
8.71
Perlakuan 2
10
8.1780
.57727
.18255
7.7650
8.5910
7.12
8.88
Total
30
7.9713
.69830
.12749
7.7106
8.2321
5.72
8.88
Eritrosit
Kontrol
10
7.3590
.96797
.30610
6.6666
8.0514
5.39
8.55
Hari 14
Perlakuan 1
10
8.3820
.72142
.22813
7.8659
8.8981
7.11
9.24
Perlakuan 2
10
8.3000
.64389
.20362
7.8394
8.7606
7.29
9.07
Total
30
8.0137
.89655
.16369
7.6789
8.3484
5.39
9.24
Leukosit
Kontrol
10
2.0150
.59268
.18742
1.5910
2.4390
1.32
2.98
Hari 11
Perlakuan 1
10
2.6360
.57924
.18317
2.2216
3.0504
1.55
3.56
110
Perlakuan 2
10
2.7970
.79434
.25119
2.2288
3.3652
1.79
3.85
Total
30
2.4827
.72564
.13248
2.2117
2.7536
1.32
3.85
Leukosit
Kontrol
10
7.8780 2.61643
.82739
6.0063
9.7497
3.47
11.32
Hari 14
Perlakuan 1
10
7.9170 3.05785
.96698
5.7295
10.1045
4.32
14.18
Perlakuan 2
10
10.8310 1.51135
.47793
9.7498
11.9122
9.14
13.67
Total
30
8.8753 2.77737
.50708
7.8382
9.9124
3.47
14.18
Trombosit
Kontrol
10
791.70 109.5922
34.656
713.3024
870.0976
650.00
960.00
Hari 11
Perlakuan 1
10
909.10 91.49554
28.933
843.6480
974.5520
728.00
1024.00
Perlakuan 2
10
920.00 147.8918
46.767
814.2045 1025.7955
684.00
1123.00
Total
30
873.60 128.8534
23.525
825.4853
921.7147
650.00
1123.00
Trombosit
Kontrol
10
760.90 180.6761
57.134
631.6521
890.1479
349.00
998.00
Hari 14
Perlakuan 1
10
950.90 113.7457
35.969
869.5312 1032.2688
805.00
1224.00
Perlakuan 2
10
930.40 161.9418
51.210
814.5538 1046.2462
701.00
1121.00
Total
30
880.73 172.5834
31.509
816.2896
945.1770
349.00
1224.00
Neutrofil
Kontrol
10
.2540
.10997
.03478
.1753
.3327
.12
.41
Hari 11
Perlakuan 1
10
.4350
.20754
.06563
.2865
.5835
.16
.76
Perlakuan 2
10
.4690
.21769
.06884
.3133
.6247
.15
.73
Total
30
.3860
.20258
.03699
.3104
.4616
.12
.76
Neutrofil
Kontrol
10
.6310
.24772
.07834
.4538
.8082
.33
1.02
Hari 14
Perlakuan 1
10
.9390
.36410
.11514
.6785
1.1995
.50
1.70
Perlakuan 2
10
1.0570
.38993
.12331
.7781
1.3359
.55
1.65
Total
30
.8757
.37515
.06849
.7356
1.0157
.33
1.70
111
Lampiran 7 Pengujian One Way Anova pada Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit dan Neutrofil ANOVA Sum of Squares Hemoglobin Hari11
5.159
2
2.580
Within Groups
9.228
27
.342
14.387
29
15.469
2
7.734
Within Groups
36.505
27
1.352
Total
51.974
29
3.809
2
1.904
Within Groups
10.332
27
.383
Total
14.141
29
6.462
2
3.231
Within Groups
16.848
27
.624
Total
23.310
29
3.410
2
1.705
Within Groups
11.860
27
.439
Total
15.270
29
Between Groups
57.377
2
28.689
Within Groups
166.323
27
6.160
Total
223.700
29
Between Groups
101208.200
2
50604.100
Within Groups
380285.000
27
14084.630
Hemoglobin Hari 14 Between Groups
Eritrosit Hari 14
Leukosit Hari D11
Leukosit Hari 14
Trombosit Hari 11
Mean Square
Between Groups
Total
Eritrosit Hari 11
Df
Between Groups
Between Groups
Between Groups
F
Sig.
7.548
.002
5.721
.008
4.976
.014
5.178
.012
3.882
.033
4.657
.018
3.593
.041
112
Trombosit Hari 14
Neutrofil Hari 11
Total
481493.200
29
Between Groups
217501.667
2
108750.833
Within Groups
646264.200
27
23935.711
Total
863765.867
29
Between Groups
.267
2
.134
Within Groups
.923
27
.034
1.190
29
.968
2
.484
Within Groups
3.114
27
.115
Total
4.081
29
Total Neutrofil Hari 14
Between Groups
4.543
.020
3.907
.032
4.195
.026
113
Lampiran 8 Pengujian Multipel Komparasi pada Data Hemoglobin, Eritrosit, Leukosit, Trombosit, dan Neutrofil
Multiple Comparisons LSD 95% Confidence Interval
Mean Dependent Variable
Difference (I(I) Kelompok
(J) Kelompok
J)
Lower Std. Error
Sig.
Bound
Upper Bound
Hemoglobin Kontrol
Perlakuan 1
-1.01000*
.26145
.001
-1.5464
-.4736
Hari 11
Perlakuan 2
-.41120
.26145
.127
-.9476
.1252
1.01000*
.26145
.001
.4736
1.5464
.59880*
.26145
.030
.0624
1.1352
.41120
.26145
.127
-.1252
.9476
Perlakuan 1
-.59880*
.26145
.030
-1.1352
-.0624
Hemoglobin Kontrol
Perlakuan 1
-1.73000*
.52001
.003
-2.7970
-.6630
Hari 14
Perlakuan 2
-1.14000*
.52001
.037
-2.2070
-.0730
1.73000*
.52001
.003
.6630
2.7970
.59000
.52001
.267
-.4770
1.6570
1.14000*
.52001
.037
.0730
2.2070
Perlakuan 1
-.59000
.52001
.267
-1.6570
.4770
Eritrosit Hari Kontrol
Perlakuan 1
-.79600*
.27665
.008
-1.3636
-.2284
11
Perlakuan 2
-.70800*
.27665
.016
-1.2756
-.1404
.79600*
.27665
.008
.2284
1.3636
.08800
.27665
.753
-.4796
.6556
Perlakuan 1
Kontrol Perlakuan 2
Perlakuan 2
Perlakuan 1
Kontrol
Kontrol Perlakuan 2
Perlakuan 2
Perlakuan 1
Kontrol
Kontrol Perlakuan 2
114
Kontrol
.70800*
.27665
.016
.1404
1.2756
Perlakuan 1
-.08800
.27665
.753
-.6556
.4796
Eritrosit Hari Kontrol
Perlakuan 1
-1.02300*
.35327
.007
-1.7479
-.2981
14
Perlakuan 2
-.94100*
.35327
.013
-1.6659
-.2161
Kontrol
1.02300*
.35327
.007
.2981
1.7479
.08200
.35327
.818
-.6429
.8069
Kontrol
.94100*
.35327
.013
.2161
1.6659
Perlakuan 1
-.08200
.35327
.818
-.8069
.6429
Leukosit Hari Kontrol
Perlakuan 1
-.62100*
.29640
.046
-1.2292
-.0128
11
Perlakuan 2
-.78200*
.29640
.014
-1.3902
-.1738
Kontrol
.62100*
.29640
.046
.0128
1.2292
Perlakuan 2
-.16100
.29640
.591
-.7692
.4472
Kontrol
.78200*
.29640
.014
.1738
1.3902
Perlakuan 1
.16100
.29640
.591
-.4472
.7692
Leukosit Hari Kontrol
Perlakuan 1
-.03900
1.10997
.972
-2.3165
2.2385
14
Perlakuan 2
-2.95300*
1.10997
.013
-5.2305
-.6755
.03900
1.10997
.972
-2.2385
2.3165
-2.91400*
1.10997
.014
-5.1915
-.6365
Kontrol
2.95300*
1.10997
.013
.6755
5.2305
Perlakuan 1
2.91400*
1.10997
.014
.6365
5.1915
Perlakuan 1
-117.40000* 53.07472
.036
-226.3003
-8.4997
Perlakuan 2
-128.30000* 53.07472
.023
-237.2003
-19.3997
117.40000* 53.07472
.036
8.4997
226.3003
-10.90000 53.07472
.839
-119.8003
98.0003
Perlakuan 2
Perlakuan 1
Perlakuan 2 Perlakuan 2
Perlakuan 1
Perlakuan 2
Perlakuan 1
Kontrol Perlakuan 2
Perlakuan 2
Trombosit
Kontrol
Hari 11
Perlakuan 1
Kontrol Perlakuan 2
115
Perlakuan 2
Trombosit
Kontrol
Hari 14
Perlakuan 1
128.30000* 53.07472
.023
19.3997
237.2003
Perlakuan 1
10.90000 53.07472
.839
-98.0003
119.8003
Perlakuan 1
-190.00000* 69.18918
.011
-331.9645
-48.0355
Perlakuan 2
-169.50000* 69.18918
.021
-311.4645
-27.5355
190.00000* 69.18918
.011
48.0355
331.9645
20.50000 69.18918
.769
-121.4645
162.4645
169.50000* 69.18918
.021
27.5355
311.4645
-20.50000 69.18918
.769
-162.4645
121.4645
Kontrol
Kontrol Perlakuan 2
Perlakuan 2
Kontrol Perlakuan 1
Neutrofil Hari Kontrol
Perlakuan 1
-.18100*
.08269
.037
-.3507
-.0113
11
Perlakuan 2
-.21500*
.08269
.015
-.3847
-.0453
Kontrol
.18100*
.08269
.037
.0113
.3507
Perlakuan 2
-.03400
.08269
.684
-.2037
.1357
Kontrol
.21500*
.08269
.015
.0453
.3847
Perlakuan 1
.03400
.08269
.684
-.1357
.2037
Neutrofil Hari Kontrol
Perlakuan 1
-.30800
.15187
.053
-.6196
.0036
14
Perlakuan 2
-.42600*
.15187
.009
-.7376
-.1144
.30800
.15187
.053
-.0036
.6196
Perlakuan 2
-.11800
.15187
.444
-.4296
.1936
Kontrol
.42600*
.15187
.009
.1144
.7376
.11800
.15187
.444
-.1936
.4296
Perlakuan 1
Perlakuan 2
Perlakuan 1
Perlakuan 2
Kontrol
Perlakuan 1 *. The mean difference is significant at the 0.05 level.