1
POLA DEFEKASI DAN KAJIAN JENIS TELUR CACING PADA TINJA LANDAK JAWA (Hystrix javanica)
MUHNI
FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR 2011
3
ABSTRACT MUHNI. Defecation Pattern and Study of the Types of Worm’s Eggs on Javan Porcupine’s (Hystrix javanica) Feces. Under direction of RISA TIURIA and SUPRATIKNO Javan porcupine (Hystrix javanica) is an unique mammal with quills which cover it’s body. Javan porcupine has high potention as wildlife expectation, because it has many benefit both meat and quills. Unfortunately, it’s potention is not supported by sufficient information, especially about helminthiasis. Because of that, the aim of this research was to know the type of parasitic worm’s egg which can infect the Javan porcupine. This research also conducted to know the defecation pattern and morphology of Javan porcupine feces. The methods that used were identification and observation. Identification of helminthiasis on Javan porcupines was done by used a qualitative method (natif method, floatation method, and sedimentation method) and quantitative method (McMaster method). The observation was done on porcupines to know the defecation pattern and morphology of feces. Total samples of feces that used in this research were 10 samples. The feces which used on this research was picked up for about 3 hours after the porcupines defecation. The result showed that parasitic worms which identified in Javan porcupine’s feces were from strongyloid eggs (Strongyloides and Strongylus) and trichurid eggs (Trichuris). This helminthiasis may be caused by dietary contamination, cleaness of cages and individuals behavior. Defecation pattern of Javan porcupines were occurs in the morning, afternoon, and evening. Javan porcupine’s feces have a cylindrical shape, yellowish to dark green colour, and there was undigested food. Key words : The worm’s eggs, feces, Javan porcupines
4
ABSTRAK MUHNI. Pola Defekasi dan Kajian Jenis Telur Cacing pada Tinja Landak Jawa (Hystrix javanica) dibimbing oleh RISA TIURIA dan SUPRATIKNO Landak Jawa (Hystrix javanica) adalah salah satu mamalia yang unik dengan duri-duri yang menutupi tubuhnya. Landak Jawa memiliki potensi yang tinggi sebagai ternak harapan, karena memiliki banyak manfaat baik daging maupun durinya. Tingginya potensi tersebut belum ditunjang dengan informasi yang memadai terutama mengenai kecacingan. Oleh karena itu penelitian ini bertujuan mengetahui jenis telur cacing yang dapat menginfeksi Landak Jawa. Selain itu, penelitian ini juga bertujuan mengetahui pola defekasi dan morfologi tinja Landak Jawa. Penelitian ini melakukan identifikasi dan pengamatan terhadap tinja Landak Jawa. Identifikasi dilakukan untuk mengetahui jenis telur cacing yang dilakukan dengan menggunakan metode kualitatif (metode natif, metode apung, dan metode sedimentasi) dan metode kuantitatif (metode McMaster). Pengamatan dilakukan untuk mengetahui pola defekasi dan morfologi tinja pada Landak Jawa. Total sampel tinja yang diperiksa adalah 10 sampel dari lima ekor Landak Jawa yang berada di kandang Unit Rehabilitas dan Reproduksi, Departemen Klinik, Reproduksi, dan Patologi, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor. Tinja yang digunakan adalah tinja yang berumur tidak lebih dari 3 jam setelah landak defekasi. Cacing parasitik yang teridentifikasi dari tinja Landak Jawa berasal dari jenis telur strongyloid (Strongyloides dan Stongylus) dan trichurid (Trichuris). Kecacingan ini kemungkinan disebabkan oleh kontaminasi pakan, kebersihan kandang, dan juga perilaku individu. Pola defekasi Landak Jawa terjadi pada pagi hari, siang hari, dan malam hari. Tinja Landak Jawa berbentuk silinder, berwarna kekuningan hingga hijau tua, dan masih terdapat sisa makanan yang belum tercerna secara sempurna. Kata kunci : Telur cacing, tinja, Landak Jawa
6
POLA DEFEKASI DAN KAJIAN JENIS TELUR CACING PADA TINJA LANDAK JAWA (Hystrix javanica)
MUHNI
Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Kedokteran Hewan pada Fakultas Kedokteran Hewan
FAKULTAS KEDOKTERAN HEWAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2011
2
PERNYATAAN MENGENAI SKRIPSI DAN SUMBER INFORMASI Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi Pola Defekasi dan Kajian Jenis Telur Cacing pada Tinja Landak Jawa (Hystrix javanica) adalah karya saya dengan arahan dari Dosen Pembimbing dan belum pernah diajukan dalam bentuk apapun kepada Perguruan Tinggi mana pun. Sumber informasi yang berasal atau dikutip dari karya yang diterbitkan maupun tidak diterbitkan dari Penulis lain telah disebutkan dalan teks dan dicantumkan dalam Daftar Pustaka di bagian akhir skripsi ini.
Bogor, Oktober
Muhni B04070033
5
© Hak Cipta milik IPB, tahun 2011 Hak Cipta dilindungi Undang-Undang Dilarang mengutip sebagian atau seluruh karya tulis ini tanpa mencantumkan atau menyebutkan sumbernya. Pengutipan hanya untuk kepentingan pendidikan, penelitian, penulisan karya ilmiah, penyusunan laporan, penulisan kritik, atau tinjauan suatu masalah, dan pengutipan tersebut tidak merugikan kepentingan yang wajar IPB Dilarang mengumumkan dan memperbanyak sebagian atau seluruh karya tulis dalam bentuk apa pun tanpa izin IPB
7
HALAMAN PENGESAHAN Judul Tugas Akhir
: Pola Defekasi dan Kajian Jenis Telur Cacing pada
Tinja Landak Jawa (Hystrix javanica) Nama Mahasiswa
: Muhni
NRP
: B04070033
Disetujui
Pembimbing I
drh. Risa Tiuria, MS. Ph.D NIP. 19630430 198703 2 001
Pembimbing II
drh. Supratikno, MSi. PAVet NIP. 19800510 200501 1 001
Diketahui, Wakil Dekan Fakultas Kedokteran Hewan Institut Pertanian Bogor
Dr. Nastiti Kusumorini NIP. 19621205 198703 2 001
Tanggal Lulus :
8
PRAKATA Puji dan syukur Penulis panjatkan kepada Allah SWT atas segala karunia-Nya sehingga karya ilmiah ini berhasil diselesaikan. Judul yang dipilih dalam penelitian yang dilaksanakan sejak bulan April 2010 ini ialah Pola Defekasi dan Kajian Jenis Telur Cacing pada Tinja Landak Jawa (Hystrix javanica). Terima kasih Penulis ucapkan kepada drh. Risa Tiuria, MS. Ph.D dan drh. Supratikno, MSi. PAVet. selaku Dosen Pembimbing.
Penulis juga
mengucapkan terima kasih kepada drh. Srihadi Agungpriyono, Ph.D. PAVet. (K) selaku pemilik proyek penelitian. Disamping itu, ucapan terima kasih kepada Faizza Maililla Wulansari selaku teman penelitian dan teman-teman Gianuzy serta Pak Bayu dan Pak Eman yang telah membantu selama penelitian. Ungkapan terima kasih juga kepada Bapak, Mama, serta seluruh keluarga atas segala doa dan kasih sayangnya. Penulis mengharapkan kritik dan saran yang membangun untuk kesempurnaan penelitian ini. Semoga penelitian ini bermanfaat untuk menjadi referensi baru dalam ilmu kedokteran hewan.
Bogor, Oktober
Penulis
9
RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Muna pada tanggal 19 September 1989 dari ayah La Sajia, SP dan ibu Wa Damia. Penulis merupakan putri pertama dari dua bersaudara. Tahun 1995 Penulis masuk ke SDN 2 Fongkaniwa dan lulus pada tahun 2001. Kemudian Penulis melanjutkan ke SLTPN 1 Tongkuno dan lulus pada tahun 2004. Pendidikan menengah ditempuh Penulis di SMAN 1 Tongkuno dan mendapatkan kelulusan pada tahun 2007. Pada Tahun yang sama Penulis lulus seleksi masuk IPB melalui jalur Undangan Seleksi Masuk IPB. Penulis memilih Fakultas Kedokteran Hewan (FKH). Selama mengikuti pendidikan di IPB, Penulis aktif di Himpunan Profesi Satwa Liar FKH. Tahun 2009 Penulis memenangkan lomba Karikatur Tingkat IPB sebagai juara III. Tahun 2010 memenangkan lomba Karikatur Tingkat IPB sebagai juara I dan pada Tahun 2011 Penulis memenangkan lomba Karya Komik Sejarah Tingkat Nasional sebagai juara harapan II.
10
DAFTAR ISI Hal DAFTAR GAMBAR........................................................................................
i
PENDAHULUAN ............................................................................................
1
Latar Belakang ........................................................................................ Tujuan ................................................................................................... Manfaat ...................................................................................................
1 2 2
TINJAUAN PUSTAKA ...................................................................................
3
Landak Jawa (Hystrix javanica) ............................................................. Helminthologi ......................................................................................... 1. Nemathelminthes ................................................................................ 2. Paltyhelminthes ...................................................................................
3 4 5 7
METODOLOGI PENELITIAN ......................................................................
10
Waktu dan Tempat .................................................................................. Pengambilan Sampel ............................................................................... Bahan dan Alat ........................................................................................ Identifikasi Telur Cacing ........................................................................ Penghitungan Jumlah Telur Cacing dengan Metode McMaster ............. Pemupukan .............................................................................................. Pengamatan Pola Defekasi ...................................................................... Analisis Data ...........................................................................................
10 10 10 11 12 12 13 13
HASIL DAN PEMBAHASAN ........................................................................
14
Telur dan Larva Cacing Parasitik ........................................................... Strongyloides sp ...................................................................................... Strongylus sp ........................................................................................... Trichuris sp ............................................................................................. Kecacingan pada Landak Jawa ............................................................... Pola Defekasi Landak Jawa .................................................................... Morfologi Tinja Landak Jawa .................................................................
14 14 16 17 18 21 22
KESIMPULAN DAN SARAN ........................................................................
24
Kesimpulan ............................................................................................. Saran .......................................................................................................
24 24
DAFTAR PUSTAKA ......................................................................................
25
11
DAFTAR GAMBAR
Hal 1. Landak Jawa (Hystrix javanica) ...............................................
4
2. Telur cacing genus Strongyloides.............................................. 16 3. Cacing genus Strongyloides...................................................... 16 4. Telur cacing genus Strongylus.................................................. 17 5. Larva cacing Strongylus........................................................... 18 6. Telur cacing Trichuris.............................................................. 18 7. Berbagai bentuk dan warna tinja Landak Jawa................................ 22
12
PENDAHULUAN Latar Belakang Landak Jawa merupakan satwa endemik Indonesia yang tersebar di beberapa provinsi seperti Jawa Tengah, Bali, dan Nusa Tenggara. Tubuhnya tertutup oleh rambut-rambut yang keras dan tajam berwarna hitam kecoklatan dan coklat putih (Suyanto, 2002). Landak Jawa memiliki potensi yang tinggi sebagai ternak harapan untuk didomestikasikan oleh masyarakat Indonesia khususnya masyarakat Jawa Tengah, Bali, dan Nusa Tenggara. Potensi Landak Jawa sebagai ternak harapan dapat dilihat dari tingkat reproduksi yang cepat dan tinggi. Masa kebuntingan Landak Jawa adalah 2 bulan dengan jumlah anak 1 sampai 4 ekor, sehingga mudah untuk diternakkan (Grzimek, 1975). Selain itu, kandungan gizi dalam daging landak sangat baik untuk kesehatan manusia. Daging Landak Jawa memiliki kadar kolesterol yang rendah dan memiliki kandungan gizi yang dipercaya dapat menguatkan stamina dan menyembuhkan penyakit asma.
Selain daging Landak Jawa, masyarakat
Jawa Tengah memanfaatkan duri landak sebagai obat yang dipercaya dapat menyembuhkan sakit gigi. Duri Landak Jawa juga dimanfaatkan oleh masyarakat Jawa Tengah sebagai bahan dekorasi alat rumah tangga (Sulistya, 2007). Potensi yang tinggi dari Landak Jawa sebagai ternak harapan, belum ditunjang dengan data biologis yang memadai mengenai Landak Jawa terutama mengenai kecacingan. Informasi mengenai kecacingan pada Landak Jawa sangat diperlukan untuk menjaga kesehatan landak dan mencegah kejadian penyakit pada landak terutama yang bersifat zoonosis (penyakit yang dapat menular pada hewan dan manusia).
Adanya informasi ini, sangat bermanfaat dalam melakukan
pengobatan untuk mengurangi dan membasmi cacing yang menginfeksi Landak Jawa. Cacing
parasitik
merupakan
organisme
endoparasit
yang
dapat
menimbulkan masalah kesehatan bagi inang seperti diare, hipoproteinemia, anoreksia, bahkan kematian. Cacing parasitik mencemari pakan dapat melalui tanah atau pun air.
Diagnosa keberadaan cacing dalam tubuh landak dapat
dilakukan dengan pemeriksaan tinja untuk mencari keberadaan telur cacing.
13
Tujuan Penelitian ini bertujuan untuk mendeteksi dan mengidentifikasi jenis telur cacing berdasarkan genus cacing yang ditemukan pada tinja Landak Jawa (Hystrix javanica). Selain itu, penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pola defekasi dan morfologi tinja Landak Jawa.
Manfaat Penelitian ini bermanfaat untuk menambah pengetahuan dan informasi awal tentang jenis cacing parasit yang menginfeksi Landak Jawa. Selain itu, hasil penelitian juga dapat menambah referensi tentang cacing parasitik yang dapat menginfeksi Landak Jawa, pola defekasi Landak Jawa, dan morfologi tinja Landak Jawa yang saat ini belum diketahui.
14
TINJAUAN PUSTAKA Landak Jawa (Hystrix javanica) Klasifikasi Landak Jawa menurut Duff dan Lawson (2004) adalah sebagai berikut : Kingdom
: Animalia
Filum
: Chordata
Kelas
: Mammalia
Ordo
: Rodentia
Famili
: Hystricidae (Old World Porcupine)
Genus
: Hystryx
Subgenus
: Acanthion
Spesies
: Hystrix javanica
Landak Jawa (Gambar 1) merupakan
rodensia berukuran besar yang
seluruh permukaan tubuhnya ditutupi oleh rambut keras yang disebut duri. Duri-duri tersebut tersebar di seluruh permukaan kulit dengan ukuran yang berbeda. Setengah bagian tubuh Landak Jawa pada daerah punggung hingga ekor memiliki duri yang lebih panjang dibandingkan dengan bagian tubuh yang lain. Landak Jawa memiliki ukuran panjang tubuh 455 mm sampai 644 mm, panjang ekor 92 mm sampai 140 mm, panjang kaki belakang 82 mm sampai 94 mm, panjang telinga 32 mm sampai 57 mm dan bobot badan mencapai 5.900 gram sampai 10.760 gram (Suyanto, 2002). Landak merupakan hewan soliter dan nokturnal. Landak Jawa hidup dalam liang yang dibuat dalam naungan rimbunan semak atau lubang-lubang batu yang dibuat sendiri. Pakan yang biasa dimakan oleh landak ini adalah akar-akaran, ubiubian, kulit kayu, dan buah-buahan yang ada di perkebunan. Hewan ini giat mencari makanan pada malam hari. Indra penglihatannya kurang tajam, tetapi indra pendengaran dan penciumannya sangat tajam. Selain itu, Landak mampu berlari mundur atau ke samping dengan cepat (LIPI, 1980).
15
Gambar 1 Landak Jawa (Hystrix javanica).
Helminthologi Levine (1990) mengemukakan bahwa helminthologi adalah ilmu yang mempelajari parasit berupa cacing.
Berdasarkan taksonomi, helminth terbagi
menjadi 3 kelas, yaitu nemathelminthes, platyhelminthes, dan acantocephala. Nemathelminthes terbagi dalam kelas nematoda yang berbentuk bulat memanjang dan terdiri dari cacing jantan dan cacing betina. Nematoda terdiri dari nematoda usus yang hidup di rongga usus dan nematoda jaringan yang hidup di jaringan berbagai organ tubuh (Gandahusada, 2000). Platyhelminthes mempunyai badan yang pipih, tidak mempunyai rongga badan, dan biasanya bersifat hermaprodit. Platyhelminthes terbagi dalam kelas trematoda dan kelas cestoda. Cacing trematoda mempunyai bentuk seperti daun, badannya tidak bersegmen, dan mempunyai alat pencernaan. Cacing cestoda mempunyai badan yang berbentuk pita dan terdiri dari skoleks, leher, dan badan (strobila) yang bersegmen (proglotid) (Gandahusada, 2000). Acantocephala disebut cacing kepala berduri karena memiliki banyak kait yang mirip dengan duri yang terletak pada probosisnya. Ukuran tubuh cacing ini berkisar 1.5 mm sampai 500 mm, tetapi pada umumnya berukuran kecil. Bentuk tubuhnya silinder dan memiliki dua alat kelamin, yaitu alat kelamin jantan dan alat kelamin betina. Endoparasit ini pada stadium dewasa menyerang saluran pencernaan jenis burung dan ikan (Lyons, 1978).
16
1. Nemathelminthes Nematoda Nematoda mempunyai jumlah spesies terbesar di antara cacing-cacing yang hidup sebagai parasit. Cacing-cacing nematoda memiliki ukuran, habitat, daur hidup, dan hubungan hospes parasit yang berbeda.
Panjang nematoda dapat
mencapai beberapa milimeter hingga melebihi satu meter.
Terdapat sekitar
10.000 jenis nematoda yang hidup dalam segala jenis habitat mulai dari tanah, air tawar, dan air asin sampai tanaman dan hewan (Gandahusada, 2000). Secara umum nematoda memiliki bentuk silinder, lonjong pada kedua ujung tubuh, tidak memiliki warna, tembus pandang, dan memiliki lapisan kutikula. Sistem pencernaan nematoda berupa tabung sederhana.
Mulut nematoda
dikelilingi oleh dua atau tiga bibir dan selanjutnya menuju esofagus. Sistem ekskretori nematoda sangat primitif, terdiri dari kanal dalam setiap lateral cord bergabung pada lubang ekskretori di bagian esofagus (Taylor et al., 2007). Nematoda terdiri dari nematoda jantan dan nematoda betina. Secara umum ukuran nematoda jantan lebih kecil dibandingkan dengan nematoda betina. Selama perkembangan, nematoda melakukan moulting pada interval tertentu dengan menanggalkan kutikula. Nematoda melakukan lima kali moulting dalam siklus hidupnya, yaitu L-1, L-2, L-3, L-4, dan L-5 sebagai cacing dewasa (Taylor et al., 2007). Siklus hidup nematoda dimulai dari telur, empat stadium larva, dan dewasa. Telur kadang-kadang menetas pada saat larva berkembang di dalamnya. Oleh karena itu, stadium infektif dapat berupa telur infektif atau larva infektif tergantung jenis nematoda. Apabila stadium infektif adalah larva, biasanya larva tersebut dalam stadium ketiga (L-3). Jika stadium infektif adalah telur, larva yang dikandung di dalamnya adalah larva stadium kedua (L-2). Larva yang infektif tidak dapat makan, tetapi hidup dari cadangan makanan di dalam sel-sel ususnya. Larva infektif dapat menginfeksi inang definitif dengan cara termakan atau aktif menembus melalui kulit. Apabila sudah berada di dalam inang definitif, cacing muda akan menetap di dalam habitatnya dan berkembang menjadi dewasa. (Gandahusada, 2000).
17
Telur nematoda sangat berbeda baik ukuran dan bentuknya. Ketebalan kulit telur nematoda bervariasi dan terdiri dari tiga lapisan. Lapisan dari kulit telur nematoda yaitu inner membran yang tipis, memiliki struktur lipid, dan impermeable. Lapisan berikutnya adalah middle layer yang memiliki struktur kuat, mengandung kitin yang kaku, dan memberikan warna kekuningan pada telur. Lapisan ketiga adalah outer membran yang berisi protein yang sangat kental dan lengket (Taylor et al., 2007).
Strongyloides spp. Genus cacing ini berasal dari ordo Rhabditida dan famili Strongylidae yang terdiri dari beberapa spesies dan termasuk parasit pada hewan domestik. Produksi telur cacing sedikit tetapi memiliki ukuran yang besar dan kerabang yang tipis. Bagian esofagus dari cacing infektif tidak berbentuk rhabditiform tetapi berbentuk silinder. Strongyloides dapat berpenetrasi melalui kulit inang kemudian melewati darah ke paru-paru menuju trakea. Selanjutnya dari trakea Strongyloides menuju faring lalu berakhir di usus. Cacing yang bersifat parasit adalah cacing betina dewasa dan dicirikan dengan esofagus yang relatif panjang (Soulsby, 1986). Chitwood
dan
Chitwood
(1977)
mengemukakan
bahwa
larva
Strongyloides memiliki karakteristik tubuh sebagai berikut: 1. Tidak memiliki selubung ekor 2. Ekor larva pendek dan berbentuk kerucut 3. Memiliki tubuh yang kecil dan tipis 4. Kepala berbentuk bulat 5. Memiliki rongga tunggal bagian kranial yang mengelilingi kapsul bukal sementara.
Strongylus spp. Strongylus merupakan nematoda yang berasal dari ordo Strongylida dan famili Strongyloidea. Cacing ini memiliki enam, tiga, atau bahkan tidak memiliki bibir. Ukuran cacing ini relatif besar, yaitu 14 mm sampai 47 mm tergantung spesies.
Sistem reproduksi betina berkembang dengan baik.
Cacing jantan
18
memiliki bursa yang berkembang dengan baik (Soulsby, 1986). Rongga bukal Strongylus spp. berukuran besar dan terletak di bagian kranial tubuh. Mulut dikelilingi oleh satu atau dua baris yang berbentuk seperti daun yang disebut dengan korona radiata (mahkota daun). Mahkota daun tersebut terdapat pada bagian eksternal yang mengelilingi mulut dan bagian internal yang terdapat pada dinding bagian dalam kapsul bukal (Bowman, 2003).
Trichuris spp. Trichuris merupakan cacing yang berasal dari ordo Trichinellida dan famili Trichuridae yang pada masa dewasa memiliki bentuk tubuh seperti cambuk. Bagian kaudal cacing Trichuris mirip rambut dan melekat pada dinding usus besar, sedangkan bagian kranial cacing ini gemuk dan berbaring bebas di usus (Bowman, 2003). Chitwood dan Chitwood (1977) mengemukakan bahwa
jenis telur
trichurid memiliki karakteristik sebagai berikut: 1. Mempunyai tiga membran, yaitu: lapisan protein bagian luar (mengandung pigmen yang memberikan warna kecoklatan), kerabang sejati bagian tengah (memiliki warna transparan), dan membran vitelin bagian dalam (memiliki granula). 2. Beberapa spesies memiliki operkulum yang sangat menonjol, baik di luar mantel protein bagian eksternal telur maupun di dalam rongga internal telur (Trichuris ovis). 3. Operkulum pada spesies lain memiliki panjang yang sesuai dengan ketebalan kutub dari amplop telur, sehingga memberi bentuk telur di bagian eksternal dan internal (Trichuris vulvis). 4. Bagian kulit kutikula di sepanjang sisi dari operkulum membentuk kerah. 2. Platyhelminthes a. Trematoda Semua spesies trematoda yang merupakan parasit dalam peternakan adalah berasal dari subkelas digenea. Secara umum, trematoda tersebut berbentuk seperti daun dan pipih dorsoventral. Semua organ berada di dalam jaringan parenkim
19
dan tidak mempunyai rongga tubuh.
Trematoda memiliki sistem pencernaan
sederhana, yaitu batil hisap kranial, pharinx, esofagus, dan sepasang usus buntu yang bercabang. Sistem ekskresi terdiri dari sejumlah besar sel api silia yang mendorong sisa produk metabolik di sepanjang sistem saluran. Sistem ekskresi terdiri dari sebuah kandung kemih bagian kaudal, sebuah sistem percabangan dari saluran pengumpul yang masuk ke dalam kandung kemih, dan sebuah sistem ekskresi yang terbuka ke dalam saluran pengumpul tersebut. Trematoda memiliki sistem syaraf sederhana dan tidak memiliki sistem peredaran darah.
Sistem
reproduksinya hermaprodit, kecuali famili Schistosomatidae (Taylor et al., 2007). Cacing dewasa biasanya ovipar dan meletakkan telurnya pada uterus. Saat perkembangan telur, embrio cacing terdapat dalam suatu pyriform (memiliki bentuk seperti buah pir), bersilia yang disebut mirasidium. Mirasidium didorong oleh silia sampai ke air. Kemudian mirasidium menemukan siput yang cocok dalam waktu beberapa jam untuk melakukan perkembangan selanjutnya. Mirasidium berkembang menjadi sporosit dalam jaringan lunak siput. Sporosit mengandung sejumlah sel germinal. Sel-sel tersebut berkembang menjadi redia dan bermigrasi ke hepato-pankreas siput. Redia berkembang dari sel germinal pada tahap terakhir yaitu serkaria. Serkaria menghasilkan cacing pipih yang muda dengan ekor yang panjang.
Serkaria keluar dari tubuh siput yang mati dan
berenang ke air dalam beberapa waktu. Kemudian serkaria berkembang menjadi metaserkaria dengan melepaskan ekornya dalam waktu satu jam.
Kista
metaserkaria memiliki potensi yang besar untuk memperpanjang kelangsungan hidupnya.
Sewaktu diingesti oleh inang definitif, bagian luar dinding kista
dipecah secara mekanik selama inang mengunyah. Pecahnya kista bagian dalam terjadi di usus dan tergantung pada mekanisme penetasan, reaksi enzimatik, reaksi oksidasi-reduksi yang potensial, dan karbondioksida yang disediakan oleh lingkungan usus. Pecahnya kista menghasilkan larva dan langsung berpenetrasi pada usus dan bermigrasi pada tempat yang disukainya kemudian menjadi dewasa dalam beberapa minggu (Taylor et al., 2007).
20
b. Cestoda Cestoda atau cacing pita merupakan subfilum lain di dalam filum Plathyhelminthes. Cestoda tidak mempunyai rongga badan dan semua organ tersimpan di dalam jaringan parenkim (Levin, 1990). Selain itu, cestoda tidak memiliki saluran pencernaan, sehingga makanannya akan langsung diserap oleh dinding tubuhnya. Cestoda memiliki bentuk tubuh seperti pita dan panjang tubuh mencapai beberapa sentimeter sampai beberapa meter. Tubuhnya bersegmen dan setiap segmen berisi satu dan kadang-kadang dua set organ reproduksi jantan dan betina. Tubuhnya panjang, pipih, dan terdiri dari tiga daerah, yaitu skolex, leher, dan badan yang bersegmen (strobila) (Taylor et al., 2007). Kepala (skoleks) memiliki 2 sampai 4 alat penghisap yang memiliki rostelum. Rostelum merupakan penonjolan yang berada pada kepala dan dilengkapi kait untuk menempel pada dinding usus inang. Tepat di belakang skoleks terdapat leher pendek dari jaringan yang tidak mengalami diferensiasi, kemudian diikuti badan atau strobila yang bersegmen (Levin, 1990).
21
METODOLOGI PENELITIAN Waktu dan Tempat Penelitian dilakukan di Unit Rehabilitas dan Reproduksi (URR), Departemen Klinik, Reproduksi, dan Patologi. Selain itu, penelitian ini juga dilakukan di Laboratorium Helminthologi, bagian Parasitologi dan Entomologi Kesehatan, Departemen Ilmu Penyakit Hewan dan Kesehatan Masyarakat Veteriner, Fakultas Kedokteran Hewan, Institut Pertanian Bogor. Pengambilan sampel dan pemeriksaan tinja dilakukan mulai bulan Agustus 2010 sampai Januari 2011 di URR dan Laboratorium Helminthologi. Pengamatan pola defekasi dilakukan selama tiga minggu yaitu mulai tanggal 2 sampai 22 Agustus 2010 di URR. Pengambilan Sampel Penelitian ini menggunakan sampel tinja dari lima ekor Landak Jawa yang terdiri dari 1 ekor betina dan 4 ekor jantan. Sampel tinja untuk setiap landak diambil 2 kali dalam lima bulan, sehingga total sampel yang diambil adalah 10 sampel. Sampel diperoleh dengan mengambil tinja yang berumur tidak lebih dari tiga jam setelah landak defekasi.
Sampel tinja juga diperoleh dengan cara
mengambil langsung tinja segar dari rektum pada landak yang telah terbius. Sampel tinja yang diambil dimasukkan ke dalam kantung plastik transparan. Setiap sampel tinja diberi identitas berupa nama atau kode setiap landak, kondisi tinja, tempat, dan tanggal pengambilan.
Sampel-sampel tinja diolah dengan
pendekatan kualitatif yaitu metode natif, pengapungan, sedimentasi, dan pendekatan kuantitatif yaitu metode McMaster. Bahan dan Alat Bahan yang digunakan dalam pemeriksaan tinja adalah tinja Landak Jawa, aquades, methylen blue, vermi kulit, dan larutan pengapung/garam jenuh. Alat yang digunakan adalah lidi, gelas plastik, sendok plastik, saringan dengan ukuran lubang 750-900 x 600-675 µm, gelas ukur, alat hitung McMaster, tabung reaksi, gelas Baerman, gelas obyek, gelas penutup, cawan petri, mortar, anak mortar, gelas plastik, kain penyaring, mikroskop cahaya, mikroskop stereo, video mikrometer, lemari es, timbangan, pipet gelas, lembar pencatatan, dan kamera digital.
22
Identifikasi Telur Cacing a. Metode Natif Metode ini dipergunakan untuk pemeriksaan secara cepat dan baik untuk infeksi berat, tetapi untuk infeksi ringan sulit ditemukan telur-telurnya. Metode ini dilakukan dengan mengambil sedikit tinja dengan lidi, kemudian diletakkan pada gelas obyek yang sudah diteteskan air. Tinja diratakan dengan lidi kemudian ditutup dengan gelas penutup. Selanjutnya dilakukan pemeriksaan mikroskopik dengan perbesaran 100 kali dan 400 kali (Natadisastra dan Agus, 2009). b. Metode Pengapungan Metode ini bertujuan untuk menentukan keberadaan telur cacing nematoda atau cestoda yang tidak ditemukan pada metode natif. Tinja ditimbang
2 gram
kemudian dimasukkan ke dalam gelas. Tinja di dalam gelas ditambahkan
58 ml
larutan pengapung, lalu diaduk dan disaring. Campuran tinja yang telah homogen dimasukkan ke dalam tabung reaksi sampai terbentuk meniskus cembung di atas permukaan tabung kemudian ditutup dengan gelas penutup tepat di atas meniskus dan dibiarkan 10 sampai 15 menit. Gelas penutup diangkat dan diletakkan di atas gelas obyek kemudian diperiksa di bawah mikroskop dengan perbesaran obyektif 100 kali dan 400 kali (Taylor et al., 2007). c. Metode Sedimentasi Metode ini digunakan untuk pemeriksaan telur cacing trematoda. Tinja sebanyak
4 gram dimasukkan ke dalam gelas dan ditambahkan
50 ml air.
Setelah itu dihomogenkan lalu disaring sebanyak 3 kali. Campuran tinja yang telah homogen dimasukkan ke dalam gelas Baerman dan ditambahkan air hingga penuh lalu dibiarkan selama 10 sampai 15 menit. Supernatan dibuang dengan hati-hati agar endapan tidak ikut terbawa.
Endapan dalam gelas Baerman
ditambahkan air hingga penuh, lalu dibiarkan selama 10 sampai 15 menit kemudian dibuang lagi dengan menyisakan endapannya. Hal tersebut dilakukan secara berulang hingga air supernatan menjadi bersih.
Sedimen yang tersisa
disaring dan dituang ke dalam cawan petri lalu diteteskan methylen blue. Setelah itu dilakukan pemeriksaan di bawah mikroskop dengan perbesaran 100 kali dan 400 kali (Hendrix dan Robinson, 2006).
23
Penghitungan Jumlah Telur Cacing dengan Metode McMaster Telur cacing yang terlihat pada perbesaran obyektif 100 kali dihitung dengan menggunakan alat hitung McMaster.
Campuran tinja dengan larutan
pengapung yang telah homogen diambil beberapa tetes sampai memenuhi kamar hitung, kemudian dibiarkan selama ± 3 sampai 5 menit lalu dihitung jumlah telur setiap jenis telur di bawah mikroskop dengan perbesaran 100 kali. Penghitungan jumlah telur dalam tiap gram tinja (TTGT): TTGT = n/bt x Vtotal/Vhitung Keterangan : n
: Jumlah telur yang ditemukan dalam kamar hitung
bt
: Berat telur (gram)
Vtotal
: Volume larutan pengapung + tinja (ml)
Vhitung
: Volume campuran yang dimasukkan dalam kamar hitung (ml)
Pemupukan Pemupukan telur dilakukan untuk mengetahui genus cacing yang berasal dari jenis telur strongyloid.
Tinja diaduk perlahan dengan mortar hingga
homogen, kemudian dicampurkan vermi kulit dan beberapa tetes air untuk menjaga kelembaban tinja. Campuran tersebut dimasukkan ke dalam cawan petri yang besar lalu ditutup dengan penutup cawan petri. Setelah itu pemupukan ditunggu selama 7 hari pada suhu ruang. Pemupukan ini dikontrol setiap hari untuk menjaga kelembaban tinja. Apabila tinja mengering maka ditambahkan beberapa tetes air agar tinja tetap basah dan lembab. Setelah 7 hari, hasil pemupukan dimasukkan ke dalam gelas plastik yang telah dibagi menjadi dua. Selanjutnya gelas ditutup dengan kain penyaring.
Sisa gelas plastik yang
terpotong diselipkan pada gelas plastik yang mengandung tinja kemudian disaring dan dijepitkan pada mulut gelas Baerman yang berisi air. Setelah itu ditunggu selama beberapa jam sampai larva turun pada dasar gelas. Larva diambil dengan pipet pada dasar gelas lalu diteteskan pada gelas obyek, kemudian diperiksa di bawah mikroskop cahaya dengan perbesaran 400 kali untuk mengetahui genus cacing (Kusumamihardja, 1995).
24
Pengamatan Pola Defekasi Pengamatan pola defekasi Landak Jawa dilakukan selama tiga minggu. Pengamatan ini dilakukan setiap tiga jam dalam sehari mulai pukul 06.00 sampai 21.00 WIB. Setiap landak defekasi dilakukan pengamatan terhadap morfologi tinja. Aspek yang diamati pada morfologi tinja adalah warna dan bentuk tinja.
Analisa Data Analisis data dilakukan secara deskriptif dari hasil identifikasi dan hasil penghitungan telur cacing. Telur cacing yang ditemukan dibandingkan dengan morfologi telur cacing dari literatur.
25
HASIL DAN PEMBAHASAN Telur dan Larva Cacing Parasitik Hasil penelitian menunjukkan adanya telur cacing nematoda pada tinja Landak Jawa.
Tabel 1 memperlihatkan kasus kecacingan tidak terjadi pada
landak A dan B, akan tetapi kasus kecacingan terjadi pada landak C, D, dan E. Terdapat dua jenis telur yang teridentifikasi pada tinja Landak Jawa, yaitu jenis telur strongyloid dan trichurid. Jenis telur strongyloid ditemukan pada landak C, D, dan E, sedangkan jenis telur trichurid ditemukan pada landak C dan D. Setelah dilakukan pemupukan pada jenis telur strongyloid, teridentifikasi 2 genus cacing, yaitu Strongyloides dan Strongylus. Tabel 1 Hasil pengukuran dan penghitungan telur cacing Landak
Genus Cacing
Ukuran rata-rata (µm) Panjang
A B C
D
E
Strongyloides Strongylus Trichuris Strongyloides Strongylus Trichuris Strongyloides
69.87 80.36 54.62 69.87 80.36 54.62 69.87
Ukuran rata-rata * (µm)
Lebar
panjang
41.32 35.45 24.44 41.32 35.45 24.44 41.32
45-55 75-92 60-70 45-55 75-92 60-70 45-55
Lebar
26-35 41-54 31-34 26-35 41-54 31-34 26-35
TTGT 1 600 15.000 1.700 200 600 100 100
2 700 200 400 -
* Ukuran telur cacing pada hewan ruminansia dan kuda (Taylor et al., 2007).
Strongyloides sp. Hasil pemeriksaan telur cacing Strongyloides memperlihatkan bentuk telur yang oval, memiliki selubung yang tipis, mengandung larva stadium satu, dan memiliki ukuran panjang rata-rata 69.87 µm dan lebar rata-rata 41.32 µm (Gambar 2A). Ukuran telur cacing Strongyloides yang ditemukan pada tinja Landak Jawa lebih besar dibandingkan dengan ukuran telur cacing Strongyloides sp. pada literatur (Tabel 1). Hal ini diduga telur tersebut merupakan jenis telur Strongyloides yang spesifik pada Landak Jawa. Karakteristik telur cacing ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh Kassai (1999) bahwa jenis telur cacing Strongyloides spp. mempunyai kulit yang tipis, berbentuk oval, dan mengandung larva.
26
i
ii
15 µm
A Gambar 2
B
(A) Telur cacing Strongyloides dari tinja Landak Jawa, (B) Telur Strongyloides papillosus pada hewan ruminansia (FAO, 2011a). (i) Perkembangan larva stadium satu, (ii) Kerabang telur.
Hasil pemeriksaan larva stadium tiga Strongyloides sp. memperlihatkan ukuran larva yang kecil, memiliki tubuh yang langsing dengan panjang tubuh 597 µm sampai 730.5 µm, dan memiliki panjang esofagus mencapai setengah dari total panjang tubuhnya (Gambar 3).
Bagian kaudal tubuh terbentuk notched
(percabangan) yang merupakan salah satu ciri khas dari Strongyloides spp.
i
100 µm
A
ii
B
Gambar 3 (A) Cacing Strongyloides dari hasil pemupukan tinja Landak Jawa, (B) Cacing Strongyloides (FAO, 2011b). (i) Esofagus, (ii) Percabangan ekor (notched).
27
Berdasarkan ukuran dan karakteristik larva cacing Strongyloides yang teridentifikasi, sesuai dengan yang dijelaskan oleh Zajac dan Gary (2006) yaitu panjang dari esofagus setengah dari panjang tubuhnya, ujung ekor larva berbentuk kerucut yang terpotong pada bagian atasnya (Gambar 3ii), dan memiliki ukuran panjang 574 µm sampai 710 µm dan 524 µm sampai 678 µm.
Strongylus sp. Hasil pemeriksaan telur cacing Strongylus memperlihatkan bentuk telur yang elips, mempunyai selubung yang tipis, mempunyai blastomer yang jelas dengan jumlah yang banyak, dan mempunyai ukuran panjang rata-rata 80.36 µm dan lebar rata-rata 35.45 µm (Gambar 4A). Hal ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh Kassai (1999) kecuali pada bentuknya, yaitu berbentuk oval. Hal ini diduga telur tersebut merupakan jenis telur yang khas dari Landak Jawa.
i
ii 16µm
A
B
Gambar 4 (A) Telur cacing Strongylus dari tinja Landak Jawa, (B) Telur cacing Strongylus sp. pada kuda (Bowman, 2003). (i) Blastomer, (ii) Kerabang telur. Larva Strongylus merupakan larva yang memiliki ukuran besar yaitu 980 µm, memiliki esofagus yang pendek, memiliki 16 sampai 32 sel usus tergantung spesies, dan sel usus berbentuk kubus (Zajac dan Gary, 2006). Hasil pemeriksaan larva cacing Strongylus memperlihatkan ukuran tubuh yang besar dengan rata-rata panjang tubuh mencapai 1.234 µm. Selain memiliki ukuran
28
tubuh yang besar dan panjang, cacing ini memiliki sel usus yang berbentuk kubus (Gambar 5ii).
Karakteristik dari genus cacing ini pun sesuai dengan yang
dijelaskan oleh Zajac dan Gary (2006). Ukuran tubuh larva yang teridentifikasi pada tinja landak lebih besar dibandingkan dengan literatur. Hal ini diduga larva Strongylus yang teridentifikasi pada tinja Landak Jawa merupakan spesies khas dari Landak Jawa.
i
ii
iii 100µm
B
A
Gambar 5 (A) Larva cacing Strongylus dari hasil pemupukan tinja Landak Jawa, (B) Larva Strongylus edentatus (kiri) dan Strongylus vulgaris (kanan) pada kuda (Bowman, 2003). (i) Bagian kepala larva Strongylus, (ii) Sel usus larva Strongylus yang berbentuk kubus, (iii) Bagian ekor dan selubung ekor larva Strongylus.
Trichuris sp. Hasil pemeriksaan telur cacing Trichuris memperlihatkan bentuk telur yang oval, dinding yang tebal, mempunyai operkulum, dan tidak mempunyai blastomer (Gambar 6). Hal ini sesuai dengan yang dijelaskan oleh Kassai (1999) bahwa jenis telur trichurid mempunyai bentuk seperti lemon dengan dinding yang tebal dan mempunyai operkulum di kedua ujungnya. Telur Trichuris pada Landak Jawa memiliki ukuran panjang rata-rata 54.62 µm dan lebar rata-rata 24.44 µm. Ukuran
ini
lebih
kecil
dibandingkan
Taylor et al. (2007) pada Tabel 1.
dengan
yang
dijelaskan
oleh
Hal ini diduga larva Trichuris yang
terindentifikasi pada tinja Landak Jawa merupakan karakteristik khas dari parasit yang menginfeksi Landak Jawa.
29
Operculum Kerabang
10µm
A Gambar 6
B
Telur cacing Trichuris. (A) Telur cacing genus Trichuris dari tinja Landak Jawa, (B) Telur Trichuris vulvis pada anjing (Blugburn, 1999), skala 1:10.
Kecacingan pada Landak Jawa Faktor-faktor yang mempengaruhi kecacingan pada Landak Jawa dapat berupa umur, kondisi kandang, perlakuan kandang, perilaku individu, dan pakan (Noble dan Noble, 1989; Taylor et al., 2007).
Semakin muda umur hewan
semakin tinggi resiko hewan tersebut terinfeksi cacing. Hal ini disebabkan sistem kekebalan dari hewan muda belum optimal, sehingga sistem kekebalan tidak dapat melindungi tubuh dari infeksi cacing. Hewan tua memiliki tingkat resistensi atau kekebalan yang tinggi terhadap infeksi cacing. Hal ini terjadi akibat tubuh membentuk respon kekebalan setiap ada infeksi cacing yang masuk ke dalam tubuh inang (Noble dan Noble, 1989). Kondisi kandang juga mempengaruhi faktor kecacingan. Kandang yang terkontaminasi dengan tinja yang mengandung telur cacing atau larva cacing infektif dapat menjadi sumber kecacingan utama. Hal ini terkait dengan perilaku atau kebiasaan Landak Jawa seperti menggigitgigit besi kandang. Besi-besi kandang tersebut bisa saja terkontaminasi telur cacing atau larva cacing yang berasal dari tinja. Selain kondisi kandang, perlakuan kandang juga mempengaruhi kasus kecacingan. Landak dikandangkan secara individual sehingga memungkinkan tidak terjadi kontaminasi silang melalui tinja antara landak yang terinfeksi dan landak yang tidak terinfeksi. Pakan juga dapat mempengaruhi munculnya kasus kecacingan. Pakan yang diberikan pada landak terdiri dari sayur-sayuran dan buah-buahan. Pakan tersebut diduga telah terkontaminasi telur cacing atau larva melalui tanah saat di perkebunan.
Tanah merupakan sumber infeksi utama
30
penyebab kasus kecacingan. Sudardjat (2010) mengemukakan bahwa tanah yang mengandung larva infektif atau telur cacing infektif akan mencapai tumbuhtumbuhan kemudian diingesti oleh inang dan akan menyebabkan inang terinfeksi. Tabel 1 memperlihatkan bahwa sebanyak 5 ekor Landak Jawa hanya 3 ekor landak yang terinfeksi cacing, yaitu landak C, D, dan E.
Landak C dan D
terinfeksi cacing genus Strongyloides, Strongylus, dan Trichuris, sedangkan landak E hanya terinfeksi oleh cacing genus Strongyloides.
Berdasarkan
pengamatan dalam penelitian, landak C, D, dan E tidak ditemukan gejala klinis seperti diare, nafsu makan menurun, dan anoreksia. Jumlah TTGT sangat bervariasi pada Landak Jawa.
Hal ini dipengaruhi
oleh beberapa faktor, antara lain produksi telur tiap jenis cacing berbeda, banyaknya tinja yang dikeluarkan tiap hari oleh hewan selalu berbeda, dan produksi cacing tua dan cacing muda berbeda. Selain itu, jumlah TTGT juga dipengaruhi oleh rendahnya variasi jenis cacing yang ditemukan pada tinja. Rendahnya variasi jenis cacing disebabkan oleh cara pengambilan tinja yang tidak menyeluruh pada seluruh bagian tinja. Satu bolus tinja terdiri dari bagian kulit, tengah, dan dalam. Telur cacing yang ditemukan pada ketiga bagian tersebut dapat saja berbeda jenis satu sama lain. Pengaruh lain juga disebabkan oleh produksi telur harian tiap jenis cacing berbeda dan produksi telur dari satu jenis cacing pun berbeda antara pagi, siang, sore, dan malam (Kusumamihardja, 1995). Beberapa spesies Strongyloides dapat menyebabkan strongyloidosis yang bersifat zoonosis.
Penyebab penyakit ini adalah
Strongyloides stercoralis.
Patologi klinis dari penyakit zoonosa ini adalah inflamasi kataral pada usus halus dan nekrosa pada mukosa.
Hewan yang terinfeksi akan mengalami diare
berdarah, dehidrasi, hingga kematian. Penyakit zoonosa ini dapat menular ke manusia melalui kontak langsung dengan tinja yang mengandung larva infektif Stongloides stercoralis (Koplan, 1996). Mekanisme penularan jenis cacing ini diawali dengan perkembangan larva infektif dalam tinja atau tanah lembab yang terkontaminasi oleh tinja menembus kulit dan masuk ke dalam vena. Larva dari vena dibawa ke paru-paru kemudian menembus dinding kapiler pada paru-paru dan masuk ke dalam alveoli. Larva bergerak naik menuju trakea lalu mencapai epiglotis, selanjutnya larva turun dan
31
masuk ke dalam saluran pencernaan mencapai bagian atas dari intestinum, di tempat ini cacing betina menjadi dewasa. Cacing dewasa yaitu cacing betina hidup menempel pada sel-sel epitelium mukosa intestinum dan meletakkan telurnya terutama pada duodenum. Telur kemudian menetas melepaskan larva non infektif rhabditiform. Larva rhabditiform ini bergerak masuk ke dalam lumen usus, keluar dari inang melalui tinja dan berkembang menjadi larva infektif filariform yang dapat menginfeksi inang yang sama atau inang yang berbeda. Larva rhabditiform ini dapat berkembang menjadi cacing dewasa jantan dan cacing dewasa betina setelah mencapai tanah. Cacing dewasa betina yang hidup bebas mengeluarkan telur dan melepaskan larva non infektif rhabditiform, kemudian dalam waktu 24-36 jam berubah menjadi larva infektif filariform. Kadangkala pada orang-orang tertentu, larva rhabditiform dapat langsung berubah menjadi larva filariform sebelum meninggalkan tubuh orang itu. Setelah itu, larva menembus dinding usus atau menembus kulit di daerah perianal yang menyebabkan autoinfeksi (Koplan, 1996). Infeksi oleh jenis cacing Strongyloides jarang terjadi kecuali pada kondisi lingkungan yang hangat dan lembab. Larva infektif dari jenis cacing ini rentan terhadap kondisi iklim yang ekstrim. Larva yang hidup pada kondisi lingkungan yang hangat dan lembab akan menghasilkan perkembangan larva infektif dalam jumlah yang besar (Cheng, 1973). Kandang Landak Jawa berada dalam suatu ruangan tertutup namun cahaya dapat masuk ke dalam ruangan tersebut melalui jendela yang terbuat dari kawat. Kondisi lingkungan dalam kandang Landak Jawa hangat dan cukup lembab sehingga cocok untuk daur hidup cacing Strongyloides. Telur Strongylus dalam daur hidupnya jatuh ke tanah bersama tinja inang. Telur akan menetas dalam waktu satu sampai dua hari menjadi L1 dan akan berkembang menjadi L2, kemudian dalam beberapa hari larva tersebut akan berkembang menjadi L3 yang infektif. Larva ini akan bertahan selama beberapa bulan walaupun tidak makan. Larva ini pun mampu bertahan pada suhu dingin. Larva dari tanah akan naik ke tumbuh-tumbuhan atau sayur-sayuran dan akan dimakan oleh inang sehingga inang terinfeksi (Noble dan Noble, 1989). Trichuris spp. menyebar di daerah-daerah subtropis dan tropis seperti Indonesia. Telur Trichuris spp. dalam daur hidupnya keluar bersama tinja dari
32
tubuh inang ke tanah. Telur ini dapat tetap hidup di luar tubuh inang dalam beberapa bulan apabila terdapat pada tempat yang lembab dan akan mati pada kondisi tempat yang kering. Landak dapat terinfeksi karena memakan sayuran yang terkontaminasi oleh cacing Trichuris. Spesies cacing Trichuris pernah teridentifikasi pada landak
bristle-spined (Chaetomys subspinosus) yaitu
Trichuris opaca (Kuniy dan Brasileiro, 2004). Soulsby (1986) mengemukakan bahwa infeksi Trichuris spp. tidak memperlihatkan gejala klinis yang jelas atau sama sekali tanpa gejala.
Hewan yang berumur di atas 8 bulan akan
memperlihatkan resistensi terhadap infeksi dan resistensi terhadap reinfeksi 2 sampai 3 minggu setelah infeksi pertama. Infeksi berat dan menahun terutama pada hewan muda dapat menimbulkan gejala seperti diare, disentri, anemia, dan kehilangan berat badan.
Pola Defekasi Landak Jawa Pola defekasi Landak Jawa terjadi pada pagi hari, siang hari, dan malam hari. Pola defekasi yang paling sering terjadi adalah malam hari antara pukul 21.00 sampai 06.00. Interval defekasi landak adalah 1 hari sampai 14 hari. Pola defekasi landak dipengaruhi oleh diet, cairan, aktivitas, faktor psikologis, dan kondisi patologis. Serat yang cukup dalam diet diperlukan untuk memberikan volume pada tinja. Banyaknya volume tinja dalam usus mempermudah aktifitas peristaltik dalam usus besar (kolon) sehingga tinja mudah dikeluarkan. Tinja yang disimpan terlalu lama dalam usus besar menyebabkan banyaknya reabsobsi cairan dalam tinja. Hal ini mengakibatkan tinja menjadi keras dan kering. Kerasnya tinja menyebabkan sulitnya pergerakan peristaltik untuk mendorong tinja ke luar tubuh. Aktifitas landak akan menstimulasi peristaltik sehingga memfasilitasi pergerakan tinja di sepanjang kolon, akibatnya tinja dapat dengan mudah dikeluarkan. Faktor psikologis hewan dapat mempengaruhi pola defekasi. Hewan yang cemas atau marah dapat meningkatkan aktivitas peristaltik sehingga menimbulkan diare, sedangkan hewan yang stress dapat menurunkan motilitas usus sehingga terjadi konstipasi.
Faktor selanjutnya adalah kondisi patologis hewan,
misalnya
33
gangguan sphingter anal. Kondisi ini dapat menyebabkan inkontinensia fekal (ketidakmampuan menahan fungsi pembuangan tinja) (Berman et al., 2009).
Morfologi Tinja Landak Jawa Tinja Landak Jawa memiliki struktur yang mirip dengan tinja manusia (Gambar 7), yaitu berbentuk silinder, berwarna kuning kecoklatan hingga hijau tua, dan bertekstur kasar. Selain itu, dalam tinja landak masih ditemukan sisa makanan yang tidak tercerna secara sempurna.
B
A Gambar 7
C
Berbagai bentuk dan warna tinja Landak Jawa. (A) Tinja berbentuk silinder dengan warna hijau tua, (B) Tinja berbentuk silinder-silinder kecil yang saling menyatu dan berwarna kuning kecoklatan, (C) Tinja dengan bentuk silinder berwarna kekuningan.
Warna tinja dipengaruhi oleh adanya bilirubin dalam empedu. Bilirubin yang berasal dari hati dibawa ke kantung empedu, sehingga terjadi percampuran antara bilirubin dan cairan empedu.
Hasil pencampuran tersebut kemudian
dikeluarkan ke duodenum dan bercampur dengan bakteri.
Warna bilirubin
bervariasi tergantung keasaman lingkungannya. Bilirubin akan berwarna kuning atau oranye kecoklatan pada lingkungan yang asam. Jika kondisi lingkungan basa maka bilirubin akan berwarna coklat kehijauan hingga hitam. Warna inilah yang akan mendominasi warna tinja. Bilirubin yang dikeluarkan ke duodenum akan diubah terlebih dahulu menjadi sterkobilin. Sterkobilinlah yang akan membuat tinja berwarna kuning kecoklatan (Tapan, 2005). Selain itu, warna tinja juga dipengaruhi oleh jenis makanan yang dikonsumsi landak.
Asmadi (2008)
34
mengemukakan bahwa hewan yang memakan sayur-saruyan akan memberi warna hijau tua pada tinja, sedangkan hewan yang memakan wortel akan memberi warna coklat pada tinja. Bentuk tinja pada hewan dipengaruhi oleh komposisi jenis pakan. Hewan yang mengkonsumsi pakan yang mengandung banyak serat akan menghasilkan tinja yang besar dan lunak, sedangkan hewan yang mengkonsumsi pakan yang sedikit mengandung serat akan menghasilkan tinja yang kecil dan keras. Penyerapan cairan dalam usus besar juga memberi bentuk pada tinja. Penyerapan cairan isi usus yang baik akan menghasilkan tinja yang lunak, sedangkan penyerapan air yang kurang baik menyebabkan tinja menjadi keras dan kering (Berman et al., 2009). Setiap hewan memiliki bentuk tinja yang berbeda-beda. dipengaruhi oleh proses segmentasi dari usus halus.
Hal ini
Bila bagian usus halus
mengalami distensi oleh makanan, dinding usus halus akan berkontraksi secara lokal. Pada saat suatu segmen usus halus yang berkontraksi mengalami relaksasi, segmen lainnya segera berkontraksi, sehingga makanan bercampur dengan enzim pencernaan dan mengadakan hubungan dengan mukosa usus halus lalu terjadi absorbsi. Proses segmentasi ini akan menyebabkan terbentuknya bentuk tinja seperti bentuk silinder atau bentuk lain tergantung panjang segmen usus (Tortora dan Derrickson, 2006).
35
SIMPULAN DAN SARAN Simpulan Jenis telur cacing yang ditemukan pada tinja Landak Jawa adalah jenis telur trichurid yang berasal dari genus cacing Trichuris dan jenis telur strongyloid yang berasal dari genus cacing Strongyloides dan Strongylus. Pola defekasi Landak Jawa terjadi pada pagi hari, siang hari, dan malam hari dengan waktu yang paling sering terjadi defekasi adalah pada malam hari. Tinja Landak Jawa berbentuk silinder memiliki struktur yang kasar, berwarna coklat kekuningan hingga hijau tua, dan mengandung sisa tumbuhan yang belum tercerna secara sempurna.
Saran 1. Penelitian lebih lanjut sangat diperlukan untuk menentukan spesies cacing yang menginfeksi Landak Jawa. 2. Penelitian lebih lanjut tentang parasit-parasit lain seperti ektoparasit yang ada pada Landak Jawa.
36
DAFTAR PUSTAKA Asmadi. 2008. Teknik Prosedural Konsep dan Aplikasi Kebutuhan Dasar Klien. Jakarta: Salemba Medika Jakarta. Berman A, Snyder S, Kozier B, Erb G. 2009. Kozier dan Erb: Buku Praktik Keperawatan Klinis. Ed. Ke-5. Meiliya E, Wahyuningsih E, Yulianti D, penerjemah; Damayanti R, editor. Jakarta: Buku Kedokteran EGC. Terjemahan dari: Kozier and Erb’s Techniques in Clinical Nursing, 5thEdition. Blugburn BL. 1999. Pfizer Atlas of Veterinary Clinical Parasitology. Wilmington: The Gloyd Group. Bowman DD. 2003. Georgi’s Parasitology for Veterinary. 8th Edition. United States of America: Saunders. Cheng TM. 1973. General Parasitology. London: Academic Press. Chitwood B, Chitwood MB. 1977. Introduction to Nematology. London: University Park Press. Duff A, Lawson A. 2004. Mammals of the World A Checlist. London: Yale University Press. [FAO] Food and Agricultural Organisation. 2011a. The Rvc/Fao Guide to Veterinary Diagnostic Parasitology [terhubung berkala] http://www.rvc. ac.uk/review/parasitology/RuminantEggs/Strongyloides.htm [30 April 2011]. [FAO] Food and Agricultural Organisation. 2011b. The Rvc/Fao Guide to Veterinary Diagnostic Parasitology[terhubung berkala] http://www.rvc. ac.uk/review/parasitology/RuminantL3/Strongyloides.htm [30 April 2011]. Gandahusada S, Ilahuda HD, Pribadi W. 2000. Parasitologi Kedokteran. Jakarta: Balai Penerbit FKUI. Grzimek B. 1975. Grzimek’s Animal Life Ecyclopedia Vol. III: Mammals II. New York: Van Nostrand Reinhold Company. Hendrix CM, Robinson E. 2006. Diagnostic Parasitology for Veterinary Technicians. 3rd Edition. China: Mosby Elsevier. Kassai T. 1999. Veterinary Helminthology. Great Britain: Bath Pres Koplan JP. 1996. Centers for Disease Control and Preventation. Atlanta: Unaids Press. Kuniy, Brasileiro. 2006. Occurrence of helminths in bristle-spinedporcupine (Chaetomys subspinosus) [Abstrak]. Braz. J. Biol. 66(1B): 379 Kusumamihardja S. 1995. Parasit dan Parasitosis pada Hewan Ternak dan Hewan Peliharaan. Bogor: Pusat Antar Universitas (PAU) Bioteknologi IPB.
37
Levin ND. 1990. Buku Pelajaran Parasitologi Veteriner. Gatot Ashadi, penerjemah; Wardiarto, editor. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press. Terjemahan dari: Textbook Veterinery Parasitology. Lyons KM. 1978. The Biology of Helminth Parasites. London: Edward Arnold. Natadisarta D, Agus R. 2009. Parasitologi Kedokteran Ditinjau dari Organ Tubuh yang Diserang. Jakarta: Buku Kedokteran EGC. Noble ER, Noble GA. 1989. Parasitologi: Biologi parasit Hewan. Ed. Ke-5. Wardiarto, penerjemah. Yogyakarta: Gadja Mada University Press. Terjemahan dari: Parasitology: The Biology of Animal Parasites. 5th Edition. [LIPI] Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia. 1980. Binatang Hama. Jakarta: Balai Pustaka. Soulsby EJL. 1986. Helminths, Arthropods and Protozoa of Domesticated Animals. Great Britain: Bailliere Tindall. Sudardjat S. 2010. Epizootiologi Parasit Cacing dan Kausa Bakteria. Jakarta: Gita Pustaka. Sulistya SJ. 2007. Ingin tambah stamina, cobalah sate landak. [terhubung berkala]. http://www.suaramerdeka.com/cybernews/harian/0703/15/dar9. htm [14 Agustus 2011]. Suyanto A. 2002. Mamalia di Taman Nasional Gunung Halimun Jawa Barat. Jakarta: Biodiversity Conservation Project. Tapan E. 2005. Kanker, Antioksidan, dan Terapi Komplementer. Jakarta: Elex Media Komputindo. Taylor MA, Coop RL, Wall RL. 2007. Veterinary Parasitilogy. 3rd Edition. Australia: Blackwell Publishing. Tortora GJ, Derrickson B. 2006. Principles of Anatomy and Phisiology. 11th Edition. USA: Wiley. Zajac M, Gary AC. 2006 Veterinary Clinical Parasitology. 7th Edition. USA: Blackwell Publishing.
