1
Penurunan produksi enzim eksoprotease aeromonas hydrophila oleh ekstrak buah tomat (lycopersicon esculentum mill.)
Skripsi Untuk memenuhi sebagian persyaratan guna mencapai derajat Sarjana Sains
Oleh : Nur Aini NIM. M.0402040
JURUSAN BIOLOGI FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM UNIVERSITAS SEBELAS MARET SURAKARTA 2006
1
2
PENGESAHAN SKRIPSI PENURUNAN PRODUKSI ENZIM EKSOPROTEASE Aeromonas hydrophila OLEH EKSTRAK BUAH TOMAT (Lycopersicon esculentum Mill.) Oleh : Nur Aini NIM. M0402040
telah dipertahankan di depan Tim Penguji pada tanggal 24 Agustus 2006 dan dinyatakan telah memenuhi syarat
Surakarta,
Penguji III/Pembimbing I
Penguji I
Prof. Drs. Sutarno, M.Sc.Ph.D NIP. 131 649 948
Dra. Ratna Setyaningsih, M. Si. NIP. 132 240 377
Penguji IV/Pembimbing II
Penguji II
Ari Susilowati, M. Si. NIP. 132 169 255
Solichatun, M. Si. NIP. 132 162 554
Mengesahkan : Dekan F MIPA
Ketua Jurusan Biologi
Drs. Marsusi, M. S. NIP. 130 906 776
Drs. Wiryanto, M. Si. NIP. 131 124 613
2
3
PERNYATAAN
Dengan ini saya menyatakan bahwa skripsi ini adalah hasil penelitian saya sendiri dan tidak terdapat karya yang pernah diajukan untuk memperoleh gelar kesarjanaan di suatu perguruan tinggi, serta tidak terdapat karya atau pendapat yang pernah ditulis atau diterbitkan oleh orang lain, kecuali yang secara tertulis diacu dalam naskah ini dan disebutkan dalam daftar pustaka. Apabila di kemudian hari dapat ditemukan adanya unsur penjiplakan maka gelar kesarjanaan yang diperoleh dapat ditinjau dan atau dicabut.
Surakarta,
Agustus 2006
Nur Aini NIM. M0402040
3
4
ABSTRAK Nur Aini. 2006. PENURUNAN PRODUKSI ENZIM EKSOPROTEASE Aeromonas hydrophila OLEH EKSTRAK BUAH TOMAT (Lycopersicon esculentum Mill.). Jurusan Biologi. F.MIPA. UNS Aeromonas hydrophila bersifat patogen pada ikan. Salah satu faktor virulensinya adalah enzim eksoprotease. Produksi enzim eksoprotease diatur oleh sistem quorum sensing. Sistem quorum sensing ini merupakan sistem komunikasi interseluler bakteri dengan menggunakan molekul sinyal C4-HSL. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dapat dihambat dengan menggunakan senyawa penghambat sistem quorum sensing. Penghambatan quorum sensing A. hydrophila dapat dilakukan oleh senyawa yang analog dengan molekul sinyal C4-HSL. Pada penelitian ini, senyawa yang diduga mampu menghambat quorum sensing sebagai analog molekul sinyal C4-HSL adalah senyawa furanon dari buah tomat. Penghambatan quorum sensing dapat diketahui dengan menurunnya produksi enzim eksoprotease A. hydrophila, sehingga penelitian ini bertujuan untuk mengetahui adanya penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah perlakuan ekstrak n heksan, etil asetat, dan metanol buah tomat dengan variasi konsentrasi 0%, 2%, 4%, 6% dan 8%. Hasil pengujian produksi enzim eksoprotease secara kualitatif menunjukkan bahwa ektrak n-hexan buah tomat tidak menghambat pertumbuhan dan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila. Ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4% menghambat produksi enzim eksoprotease tetapi mempengaruhi pertumbuhannya. Sedangkan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% menghambat produksi enzim eksoprotease tanpa mempengaruhi pertumbuhannya. Secara kuantitatif ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% mampu menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila sebesar 71,68% tanpa menghambat pertumbuhannya.
Kata Kunci : penurunan, produksi enzim eksoprotease, Aeromonas hydrophila, quorum sensing, buah tomat
4
5
ABSTRACT Nur Aini. 2006. REDUCTION OF EXOPROTEASE PRODUCTION IN Aeromonas hydrophila by TOMATO FRUITS EXTRACT (Lycopersicon esculentum Mill.). Department of Biology. Faculty of Mathematic and Natural Science. Sebelas Maret University Aeromonas hydrophila is pathogenic bacteria in fish. One of it’s virulence factors is exoprotease. The production of exoprotease is controlled by quorum sensing system. Quorum sensing is an intercelluler communication of bacteria that use signal molecules C4-HSL. The A. hydrophila exoprotease production can be blocked using quorum sensing inhibitors. The inhibition of A. hydrophila quorum sensing can be done by C4-HSL analogs molecules. In this research, molecules that was predicted as quorum sensing inhibitors that act as C4-HSL analog molecules was furanon from tomato fruits. The inhibition of A. hydrophila quorum sensing could be shown by reduction of exoprotease production. The aim of this research was to know the reduction of A. hydrophila exoprotease production by extract n heksan, etil asetat, and metanol of tomato fruits with concentration 0%, 2%, 4%, 6%, and 8% respectively. The qualitative exoprotease assay result showed that the n-hexan extract of tomato had no effect on growth and exoprotease production of A. hydrophila. 4% ethyl acetate extract of tomato could inhibit exoprotease production, but affecting A. hydrophilla growth. While 4% methanol extract of tomato could inhibit exoprotease production, without affecting A. hydrophilla growth. Quantitative exoprotease assay showed that the 4% of methanol extract could inhibit exoprotease production 71,68% without affect growth of A. hydrophila. Keywords
:
reduction, exoprotease production, quorum sensing, tomato fruits
5
Aeromonas
hydrophila,
6
MOTTO
“Jarak antara masalah dan solusi adalah sejauh jarak antara lutut dengan lantai untuk bersujud” ****
“Perhatikanlah orang yang mendapat nikmat lebih rendah daripada selalu memperhatikan orang yang mendapat nikmat lebih tinggi dari kalian, maka demikian itu sungguh akan membuat kalian tidak meremehkan karunia nikmat Alloh atas kalian” (Hadists) ****
PERSEMBAHAN
Karya ini kupersembahkan kepada :
6
7
v Kedua orang tuaku, hanyalah Alloh yang mampu membalas semua pengorbananmu v Adik beserta keluargaku v Teman dan Saudara yang selalu menyertai langkah-langkahku v Almamaterku
KATA PENGANTAR
7
8
Aeromonas hydrophila menyebabkan penyakit Motile Aeromonads Septicemia (MAS) pada ikan. Pada umumnya penanggulangan penyakit MAS ini masih bertumpu pada penggunaan antibiotik yang akan membunuh bakteri A. hydrophila, namun ternyata timbul dampak negatif yaitu meluasnya resistensi bakteri terhadap senyawa antibiotik, sehingga penggunaan antibiotik ini menjadi kurang efektif. Adanya penemuan bahwa faktor virulensi bakteri ternyata diatur oleh sistem quorum sensing memberikan alternatif baru untuk mengatasi penyakit infeksi bakteri yaitu dengan cara menghambat sistem quorum sensing bakteri ini. Faktor virulensi A. hydrophila yang berupa produksi enzim eksoprotease juga diatur oleh quorum sensing dengan molekul sinyal C4-HSL (N-Butanoyl-LHomoserine Lactones), sehingga penghambatan produksi enzim eksoprotease dapat dilakukan dengan menghambat sistem quorum sensing_nya. Penghambatan sistem quorum sensing dapat dilakukan oleh senyawa yang analog dengan molekul sinyal C4-HSL. Salah satunya adalah senyawa furanon dalam buah tomat. Penelitian ini berjudul Penurunan Produksi Enzim Eksoprotease Aeromonas hydrophila Oleh Ekstrak Buah Tomat (L. esculentum Mill.). Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui adanya penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila oleh ekstrak buah tomat.
DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL ...................................................................................... i HALAMAN PERSETUJUAN ....................................................................... ii
8
9
HALAMAN PERNYATAAN ....................................................................... iii ABSTRAK ..................................................................................................... iv ABSTRACT ................................................................................................... v MOTTO ......................................................................................................... vi HALAMAN PERSEMBAHAN .................................................................... vii KATA PENGANTAR ................................................................................... viii DAFTAR ISI .................................................................................................. ix DAFTAR TABEL .......................................................................................... xi DAFTAR GAMBAR ..................................................................................... xii DAFTAR LAMPIRAN .................................................................................. xiii BAB I. PENDAHULUAN ............................................................................. 1 A. Latar Belakang Masalah ............................................................... 1 B. Perumusan Masalah ..................................................................... 3 C. Tujuan Penelitian .......................................................................... 3 D. Manfaat Penelitian ....................................................................... 4 BAB II. LANDASAN TEORI A. Tinjauan Pustaka .......................................................................... 5 B. Kerangka Pemikiran .................................................................... 18 C. Hipotesis ....................................................................................... 20 BAB III. METODE PENELITIAN A. Waktu dan Tempat Penelitian ................................................... 21 B. Alat dan Bahan .......................................................................... 21 C. Cara Kerja ................................................................................. 22 D. Analisis Data ............................................................................. 27 BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN A. Kepadatan A. hydrophila yang Memenuhi Quorum Sensing..... 28 B. Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Secara Kualitatif. 29 C. Pertumbuhan A. hydrophila Pada Perlakuan Ekstrak Buah Tomat (L. esculentum Mill.).................................................................. 43 D. Penurunan Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Secara Kuantitatif .................................................................................. 45
9
10
BABV. KESIMPULAN DAN SARAN A. Kesimpulan .................................................................................. 50 B. Saran ............................................................................................. 50 DAFTAR PUSTAKA .................................................................................... 51 LAMPIRAN ................................................................................................... 56 HALAMAN UCAPAN TERIMA KASIH .................................................... 57 RIWAYAT HIDUP PENULIS ...................................................................... 59
DAFTAR TABEL
Tabel 1. Nilai OD dan jumlah bakteri A. hydrophila pada hitungan cawan………………………………………………………
10
28
11
Tabel 2. Diameter koloni dan luas zona bening pada perlakuan ekstrak n-heksan buah tomat (L. esculentum Mill.) …………………
33
Tabel 3. Diameter koloni dan luas zona bening pada perlakuan ekstrak etil asetat buah tomat (L. esculentum Mill.) ………………….
36
Tabel 4. Diameter koloni dan luas zona bening pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) …………………
41
DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 1.
Sistem quorum sensing oligopeptida pada bakteri gram positif ………………………………………………………….
11
9
12
Gambar 2.
Sistem quorum-sensing Lux IR pada bakteri gram negatif………………………………………………………….. 10
Gambar 3.
Struktur furaneol……………………………………………….
16
Gambar 4.
Struktur C4-HSL……………………………………………….
17
Gambar 5.
Struktur halogen furanon dari Delisea pulchra ………………
17
Gambar 6.
Kerangka pemikiran…………………………………………..
19
Gambar 7.
Kurva standar A. hydrophila…………….………………….
29
Gambar 8.
Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak
n
heksan
buah
tomat
(L.
esculentum
Mill.)…………………………………………………………. Gambar 9.
Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak
etil
asetat
buah
tomat
(L.
esculentum
Mill.)…………………………………………………………. Gambar10.
32
35
Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan 39
ekstrak metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) Gambar 11. Kurva pertumbuhan A. hydrophila……………………………
44
Gambar 12. Kurva produksi enzim eksoprotease A. hydrophila .................
47
Gambar 13. Histogram produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada jam ke-4……………………………………………………..
48
DAFTAR LAMPIRAN Halaman Lampiran 1.
Komposisi Media…………………………………………..
12
56
13
BAB I PENDAHULUAN
13
14
A. Latar Belakang Masalah Aeromonas hydrophila yang ditemukan paling banyak di perairan air tawar bersifat patogen terhadap ikan, dan hampir semua ikan air tawar rentan terhadap serangan bakteri ini (Noga, 1995). Aeromonas hydrophila menyebabkan penyakit Motile Aeromonad Septicemia (MAS) (Fryer and Bartholomew, 1996). Di Jawa bakteri ini secara luas menyebabkan kematian ikan budidaya, yang dilaporkan pertama kali tahun 1980 dan mengakibatkan kerugian sangat besar dalam perikanan air tawar (Afrianto dan Liviawati, 1992). Oleh sebab itu, perlu adanya tindakan penanganan yang efektif untuk mengatasi patogenisitas dari A. hydrophila. Aeromonas
hydrophila mampu menghasilkan endotoksin dan produk
ekstraseluler seperti hemolisin, sitotoksin, enterotoksin, leukosidin, dan protease (Allan dan Stevenson, 1981). Enzim eksoprotease merupakan faktor virulensi utama
yang bersifat proteolitik, dapat mendegradasi jaringan otot, sehingga
merusak jaringan tubuh inang dan akan menimbulkan infeksi pada jaringan inang tersebut (Secades and Guijarro, 1999). Produksi eksoprotease A. hydrophila diatur oleh suatu molekul sinyal NButanoyl-L-Homoserine Lactone (C4-HSL). Molekul sinyal ini juga berfungsi sebagai alat komunikasi antar sel pada suatu populasi bakteri sehingga disebut sistem quorum sensing (Swift et al., 1997). Dengan adanya molekul sinyal, bakteri mampu mengetahui kehadiran bakteri lain di lingkungannya. Konsentrasi molekul sinyal sebanding dengan jumlah bakteri yang ada. Semakin banyak populasi bakteri, semakin tinggi konsentrasi C4-HSL di lingkungan, dan apabila
14
15
telah mencapai kepadatan tertentu C4-HSL ini akan mengaktifkan gen penyandi enzim eksoprotease (Taga and Bassler, 2003). Dengan demikian sistem quorum sensing tersebut merupakan target utama dalam upaya pengendalian infeksi A. hydrophila, yaitu dengan merusak sistem quorum sensingnya sehingga produksi enzim eksoprotease menurun dan patogenisitas A. hydrophila menurun tanpa harus membunuh bakteri tersebut. Perusakan sistem quorum sensing dapat dilakukan oleh senyawa kemo terapeutik yaitu dengan menghambat molekul sinyal C4-HSL (Hentzer and Givskov, 2003). Dengan terhambatnya C4-HSL, maka produksi enzim eksoprotease menurun sehingga patogenisitas A. hydrophila dapat diturunkan (Lynch, 2002). Berdasarkan penelitian Rasmussen et al. (2000), halogen furanon yang merupakan metabolit sekunder dari makroalga laut Delisea pulchra mampu menghambat molekul sinyal N-Butanoyl-L–Homoserine Lactone pada Serratia liquefaciens sehingga menghambat motilitas Serratia liquefaciens. Furanon juga dapat menghambat Acyl Homoserine Lactone yang mengontrol produksi faktor virulensi dan patogenisitas Pseudomonas aeruginosa (Hentzer and Givskov, 2003). Selain sebagai metabolit sekunder pada D. pulchra, senyawa furanon ini juga terdapat secara alami sebagai senyawa cita rasa (flavour compound) pada tomat (Lycopersicon esculentum Mill.) (Martinelli et al., 2004; Buttery et al., 2001). Hal ini menjadi dasar untuk melakukan penelitian tentang pengaruh ekstrak buah tomat terhadap produksi C4-HSL A. hydrophila. Penghambatan C4-HSL pada A. hydrophila dapat dibuktikan dengan penurunan produksi enzim
15
16
eksoprotease yang dihasilkan. Produksi enzim eksoprotease diketahui dengan cara mengukur aktivitasnya. Oleh karena itu, perlu dilakukan penelitian untuk mengukur aktivitas enzim eksoprotease dari A. hydrophila setelah pemberian ekstrak buah tomat dengan pelarut n heksan, etil asetat, dan metanol.
B. Perumusan Masalah Berdasarkan latar belakang di atas, maka dapat dirumuskan permasalahan sebagai berikut : 1. Apakah terdapat penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah pemberian ekstrak n heksan, etil asetat, dan metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) dengan variasi konsentrasi 0%, 2%, 4%, 6%, dan 8% ? 2. Jenis ekstrak dan konsentrasi ekstrak buah tomat (L. esculentum Mill.) mana yang tepat untuk menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila ?
C. Tujuan Penelitian 1. Mengetahui adanya penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah pemberian ekstrak n heksan, etil asetat, dan metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) dengan variasi konsentrasi 0%, 2%, 4%, 6%, dan 8% 2. Mengetahui jenis dan konsentrasi ekstrak buah tomat (L. esculentum Mill.) yang tepat untuk menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila D. Manfaat Penelitian Penelitian ini dapat digunakan sebagai dasar penggunaan ekstrak buah tomat (L. esculentum Mill.) sebagai pencegah infeksi pada ikan yang disebabkan bakteri
16
17
A. hydrophila dengan cara menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila.
BAB II LANDASAN TEORI
17
18
A. Tinjauan Pustaka 1. Aeromonas hydrophila Aeromonas hydrophila termasuk dalam familia Vibrionaceae. Aeromonas hydrophila tersebar di lingkungan akuatik, bersifat positif oksidatif, fakultatif anaerob, dapat memfermentasi glukosa, dan merupakan bakteri gram negatif (Janda and Abbott, 1998).
Aeromonas hydrophila berbentuk batang, bersifat
motil dengan diameter 0,3-1,0 µm dan panjang 1,0-3,5 µm, tidak berspora, tidak berkapsula, tumbuh optimum pada suhu 28oC (Bottarelli and Ossiprandi, 1999). Aeromonas hydrophila ditemukan di perairan air tawar terutama yang mengandung bahan organik tinggi, dapat diisolasi dari air payau, perairan pantai dan perairan terklorinasi (Alavandi et al., 1998). Aeromonas hydrophila juga terdapat pada air minum mineral (Bottarelli and Ossiprandi, 1999). Selain itu, Aeromonas hydrophila juga dapat diisolasi dari produk makanan dingin, produk susu, produk ternak ruminansia, dan produk unggas (Ibrahim and Mac Rae, 1991). Di daerah iklim sedang, bakteri ini dapat mencapai populasi tertinggi pada akhir musim panas atau awal musim gugur saat temperatur 20-25°C dan jarang ditemukan pada musim dingin (Gavriel et al., 1998). Pada media air laut steril yang miskin nutrien, populasi A. hydrophila menurun 0,1 CFU/ml setelah 3-5 minggu (Maalej et al., 2004). Sedangkan pada media air destilasi steril yang miskin nutrien, populasi A. hydrophila menurun 0,1 CFU/ml dalam jangka waktu 7 minggu pada suhu pertumbuhan 4°C (Mary et al., 2002). Berdasarkan penelitian Sautor et al. (2003), pertumbuhan maksimum A. hydrophila terjadi pada suhu
18
19
30°C, pH 7, dan aw (water activity) 0,99, sedangkan pada suhu 10°C, pH 7, dan aw 0,95 pertumbuhan A. hydrophila berjalan lambat.
2. Patogenisitas dan Penyakit yang Disebabkan oleh A. hydrophila Aeromonas hydrophila yang tersebar luas di lingkungan akuatik mudah melakukan kontak dengan hewan akuatik khususnya ikan dan amfibi. Kontak antara bakteri dan hewan ini dapat menyebabkan infeksi bahkan dapat mengancam kelangsungan hidup hewan akuatik (Hayes, 2000). Aeromonas sering menyerang luka pada permukaan tubuh, umumnya bersamaan dengan jamur air atau parasit. Penyakit ikan yang disebabkan A. hydrophila disebut Motile Aeromonad Septicemia (MAS) atau Hemorrhagic Septicemia yang ditandai dengan luka-luka pada permukaan tubuh, pengelupasan sisik, pendarahan pada insang dan anus (Noga, 1995). Selain itu juga dikenal dengan ulcer disease (borok bernanah) dan red sore disease (bercak merah). Sedangkan Hayes (2000) menyebutkan bahwa A. hydrophila menimbulkan penyakit infectious abdominal dropsy yang ditandai dengan adanya cairan dalam rongga peritoneal, anemia, pembengkakan hati dan ginjal serta pendarahan pada usus, otot, dan hati. Ikan yang terinfeksi A. hydrophila biasanya memperlihatkan gejala-gejala seperti warna tubuh ikan menjadi gelap, kemampuan berenang menurun, mata rusak dan agak menonjol, sisik terkuak, seluruh siripnya rusak, insangnya rusak dan berwarna merah keputihan, kulit menjadi kasat dan timbul pendarahan, luka
19
20
borok, perut kembung (dropsy), dan apabila dilakukan pembedahan maka akan kelihatan pendarahan pada hati, ginjal dan limpa (Kordi, 2004). Patogenisitas A. hydrophila ini disebabkan oleh adanya faktor virulensi yang berupa: a. Komponen permukaan sel berupa : pili, S-layer dan lipopolisakarida (LPS). b. Faktor
ekstraseluler,
berupa
siderofor,
enterotoksin,
Glysero-
phospholipid Cholesterol Acetyltransferase (GCAT), hemolisin, lipase, dan protease (Swift et al., 1999). Berdasarkan penelitian Merino et al. (1992), A. hydrophila yang ditumbuhkan pada suhu 20°C lebih virulen pada ikan dibandingkan suhu 37°C karena pada suhu 20°C terjadi peningkatan aktivitas ekstraseluler. Aktivitas hemolitik A. hydrophila maksimum pada suhu 35°C selama 30 jam, sedangkan aktivitas proteolitiknya maksimal pada suhu 30°C dalam jangka waktu 36 jam (Khalil, 1997). 3. Sistem Quorum Sensing Sistem quorum sensing ditemukan pertama kali dalam mengontrol ekspresi bioluminescen pada Vibrio fischeri (Parsek and Greenberg, 1997). Sistem quorum sensing merupakan kemampuan bakteri untuk berkomunikasi dan mengatur tingkah lakunya melalui molekul sinyal. Dengan sistem quorum sensing, bakteri mampu memonitor kehadiran bakteri lain di sekitarnya dengan memproduksi dan merespon molekul sinyal yang dikenal dengan autoinducer. Konsentrasi autoinducer sebanding dengan jumlah bakteri yang ada. Jadi dengan
20
21
mendeteksi autoinducer, bakteri mampu mengetahui keberadaan bakteri di sekitarnya. Autoinducer direspon melalui perubahan ekspresi gen sehingga membentuk tingkah laku tertentu, misalnya : produksi enzim ekstraseluler pada Pseudomonas aeruginosa dan Erwinia carotovora, bioluminescen pada Vibrio fishceri dan Vibrio harveyi (Bassler et al., 1993), produksi antibiotik pada E. carotovora dan pembentukan biofilm pada P. aeruginosa (Taga and Bassler, 2003). Menurut Eberl (1999) molekul sinyal Acyl Homoserine Lactone (AHL) berfungsi ekologis yaitu untuk berinteraksi dengan populasi bakteri lain atau dengan inang eukariotik. Sistem quorum sensing pada bakteri dibedakan menjadi 2 macam yaitu: gram positif oligopeptida dan gram negatif lux IR. a. Gram positif oligopeptida Bakteri gram positif menggunakan oligopeptida sebagai molekul sinyalnya. Prekursor peptida disintesis, diproses dan dimodifikasi menjadi molekul oligopeptida yang matang, kemudian dikeluarkan melalui kompleks transport ATP binding cassette. Konsentrasi autoinducer meningkat sejalan dengan pertambahan jumlah sel. Pada konsentrasi tinggi, autoinducer dapat dideteksi oleh sensor kinase.
Informasi ini dikirim ke dalam sel melalui
fosforilasi, dan berhenti pada perubahan yang sesuai untuk ekspresi gen (Gambar 1) ( Taga and Bassler, 2003).
21
22
dimodifikasi
Prekursor peptida
Gen target
(Schauder and Bassler, 2001) Gambar 1. Sistem quorum sensing oligopeptida pada bakteri gram positif. Prekursor spesifik oligopeptida diproduksi, lalu dimodifikasi dan diproses. ATP binding cassete (ABC) mengeluarkan autoinducer oligopeptida yang matang keluar membran sel. Bila konsentrasi autoinducer tinggi, autoinducer dapat dideteksi oleh dua komponen sinyal transduksi. Secara spesifik sensor protein kinase mengenali autoinducer dan melakukan autofosforilasi pada histidin (H) residu, lalu bergabung dengan protein regulator dan mengadakan fosforilasi pada residu aspartat (D). Protein regulator yang terfosforilasi ini berikatan dengan gen target dan menyebabkan terekspresinya gen target. b. Gram negatif Lux IR LuxI merupakan protein yang mengkatalis pembentukan autoinducer AHL (Acyl Homoserine Lactone) yang tersebar ke dalam dan keluar sel. LuxR adalah tipe protein yang berikatan dengan autoinducer yang spesifik ketika konsentrasi autoinducer mencapai tingkat tertentu. Ikatan antara LuxR dengan AHL akan mengenali sekuen DNA tertentu sehingga mengaktifkan transkripsi dari sekuen gen tersebut (Gambar 2) (Taga and Bassler, 2003). Masing-masing bakteri
22
23
mempunyai molekul sinyal dan protein regulator yang spesifik (Hentzer and Givskov, 2003). Pada bakteri gram negatif, sistem quorum sensing berkaitan dengan asosiasinya dengan inang, termasuk metabolit sekunder dan produksi faktor virulen (Finch et al., 1998).
Gen target
(Schauder and Bassler, 2001). Gambar 2. Sistem quorum sensing Lux IR pada bakteri gram negatif. Protein Lux I mengkatalis pembentukan molekul autoinducer (pentagon hijau). Autoinducer berdifusi secara bebas melewati membran sel dan berakumulasi. Pada konsentrasi autoinducer tinggi, protein Lux R akan berikatan dengan autoinducer. Ikatan antara autoinducer dengan Lux R ini akan mengaktifkan transkripsi gen target.
23
24
4. Enzim Eksoprotease Aeromonas hydrophila menghasilkan enzim eksoprotease yang merupakan penyebab virulensi. Protease yang bersifat proteolitik mampu mengambil persediaan nutrien dan melawan pertahanan tubuh inang sehingga berfungsi untuk berkembangnya penyakit pada inang. Enzim protease pada suatu bakteri berperan memecah ikatan peptida protein sehingga dihasilkan komponen asam amino dalam bentuk bebas yang merupakan sumber nutrien
bagi bakteri. Protease
mampu menghidrolisis kasein dan elastin (Cascon et al., 2000). Enzim eksoprotease ini juga dapat merusak atau mendegradasi jaringan konektif atau jaringan otot seperti kolagen, gelatin, dan sebagainya sehingga dapat merusak jaringan tubuh inang. Enzim eksoprotease merupakan faktor virulensi utama bakteri patogen, berperan dalam perusakan jaringan inang yang akan menimbulkan infeksi pada jaringan inang tersebut (Secades and Guijarro, 1999). Enzim eksoprotease A. hydrophila tahan terhadap pemanasan 56°C dan pada penyimpanan 4°C atau -20°C (Nieto and Ellis, 1986). Berdasarkan penelitian McMahon (2004), ekspresi enzim eksoprotease A. hydrophila tergantung pada suhu inkubasi dan kondisi udara. Pada kondisi udara yang berbeda-beda, A. hydrophila
mengeluarkan enzim protease yang sama, namun aktivitasnya
bervariasi sesuai kondisinya. Enzim eksoprotease pada A. hydrophila ada 2 macam yaitu : serin protease dan metaloprotease. Serin protease merupakan enzim protease yang mempunyai residu serin dalam lokasi aktifnya, sedangkan metalloprotease adalah enzim protease yang keaktifannya tergantung pada adanya metal. Pada A. hydrophila ini,
24
25
Serin protease, memiliki berat molekul 22 kD, stabil pada suhu 56°C selama 10 menit, memiliki aktivitas sitotoksik dan memiliki nilai LD50 sebesar 50 ng/g ikan. Sedangkan metalloprotease, memiliki berat molekul 38 kD, stabil pada suhu 56°C selama 10 menit, tidak memiliki aktivitas sitotoksik dan memiliki nilai LD50 sebesar 150 ng/g ikan ( Rodrigues et al., 1992). Produksi enzim serin protease dan metalloprotease A. hydrophila diatur oleh sistem quorum sensing yang homolog dengan tipe Lux IR dengan molekul sinyal N-Butanoyl-L-Homoserine Lactone (C4-HSL) (Swift et al., 1997). Molekul sinyal ini juga berfungsi sebagai perantara komunikasi antar sel dalam populasi bakteri sehingga disebut sistem quorum sensing. Sintesis C4-HSL diatur oleh protein regulator AhyI yang diekspresikan gen AhyI. Selanjutnya molekul sinyal ini akan disekresikan ke lingkungan. Apabila konsentrasi C4-HSL dalam lingkungan tinggi, senyawa ini akan masuk kembali ke dalam sel dan berinteraksi dengan reseptor protein regulator AhyR yang diekspresikan gen AhyR, kemudian AhyR akan mengikat rangkaian promoter pada gen penyandi eksoprotease dan mengaktifkan faktor transkripsi RNA polymerase untuk mengadakan proses transkripsi (Swift et al., 1999). Berdasarkan penelitian Swift et al.(1997), produksi C4-HSL A. hydrophila terdeteksi pada nilai OD600 sebesar 1. Hal ini sebanding dengan populasi bakteri 107-108 CFU/ml (Gram et al., 1999).
25
26
5. Jumlah dan Satuan Enzim Keaktifan suatu enzim dapat ditentukan secara kualitatif dengan reaksi kimia yaitu dengan substrat yang dapat dikatalisis oleh enzim tersebut, dan secara kuantitatif ditentukan dengan mengukur laju reaksi tersebut. Jumlah enzim lebih banyak dinyatakan dalam bentuk keaktifan enzim dan dinyatakan dalam satuan atau unit enzim. Secara umum, satuan enzim berhubungan dengan laju reaksi yang dikatalisis. Jumlah satuan enzim dapat ditentukan dengan menentukan jumlah satuan enzim yang mampu mendegradasi substrat pada kondisi tertentu (Winarno, 1986). Satu unit aktivitas enzim didefinisikan sebagai jumlah enzim yang dapat menghasilkan kenaikan pengukuran absorbansi sebesar 0,01 setiap jam pada kondisi pengukuran (Hanlon and Hodges, 1981) 6. Mekanisme Penghambatan Quorum Sensing Banyak bakteri yang menggunakan quorum sensing dalam mengontrol virulensinya terhadap organisme lain, sehingga quorum sensing merupakan target baru untuk agen kemoterapeutik (Rasch et al., 2004). Menurut Keivit and Iglewski (2000), bakteri gram negatif yang virulen dapat dijadikan nonpatogen dengan cara menghambat sistem quorum sensingnya. Hal ini dapat dijadikan sebagai cara pencegahan infeksi kronis yang merusak tanpa menggunakan agen yang menghambat pertumbuhan seperti antibiotik dan desinfektan yang dapat menyebabkan resistensi organisme.
26
27
Pada bakteri gram negatif, sistem quorum sensingnya menggunakan molekul sinyal AHL, maka beberapa cara yang dapat mengganggu sistem quorum sensing adalah : a. Penghambatan Pembentukan Sinyal AHL Pembentukan AHL dikatalis oleh protein LuxI. Prosesnya meliputi mekanisme reaksi yang berurutan yang menggunakan S-Adenosyl Methionine (SAM) sebagai donor asam amino untuk pembentukan cincin homoserine lactone, dan Acyl Carrier Protein (ACP) sebagai prekursor untuk rantai acyl dari molekul sinyal AHL. Beberapa analog SAM seperti S-adenosylhomosistein, Sadenosylcysteine, dan sinefungin dapat digunakan sebagai inhibitor pembentukan AHL yang dikatalis oleh protein RhlI pada Pseudomonas aeruginosa (Hentzer and Givskov, 2003). Antibiotik yang termasuk dalam macrolide antibiotic mampu menekan sintesis AHL pada P. aeruginosa ketika diberikan pada konsentrasi penghambatan di bawah minimal (Hentzer and Givskov, 2003). b. Penghambatan Penyebaran Sinyal AHL Komunikasi antar sel bakteri dapat dihambat oleh adanya penurunan konsentrasi molekul sinyal yang aktif di lingkungan. Kerusakan AHL dapat terjadi secara non enzimatik, misalnya molekul sinyal AHL dapat dihidrolisis pada pH tinggi. Beberapa bakteri mampu mendegradasi molekul sinyal AHL secara spesifik. Dong et al. (2002) menemukan bahwa AiiA, enzim yang diproduksi oleh bakteri Bacillus sp dapat mempercepat reaksi hidrolisis molekul AHL. Ekspresi dari gen AiiA pada Erwinia carotovora, bakteri patogen pada tanaman menunjukkan penurunan pelepasan sinyal AHL, menurunkan aktivitas
27
28
enzim pektolitik ekstraseluler dan melemahkan gejala infeksinya pada tanaman (Hentzer and Givskov, 2003). c. Penghambatan Penerimaan Sinyal AHL Penghambatan penghantaran molekul sinyal quorum sensing dapat dilakukan oleh molekul antagonis yang mampu bersaing atau bercampur dengan sinyal AHL asli untuk berikatan dengan reseptor LuxR. Inhibitor kompetitif strukturnya mirip dengan molekul sinyal AHL sehingga berikatan dan mengambil tempat berikatan AHL tetapi gagal untuk mengaktifkan LuxR. Inhibitor nonkompetitif mempunyai struktur kurang mirip atau tidak mirip dengan molekul sinyal AHL, molekul ini mengikat pada sisi yang berbeda pada protein reseptor (Hentzer and Givskov, 2003). 6. Tomat (Lycopersicon esculentum Mill.) Tomat (Lycopersicon esculentum Mill.) termasuk famili Solanaceae (Tjitrosoepomo, 2002). Taanaman ini merupakan tanaman perdu, berakar tunggang dengan akar samping yang banyak dan dangkal; batang bersegi dan berbulu halus. Bunganya berbentuk terompet kecil dengan benang sari yang bersatu membentuk tabung, warna bunga umumnya kuning. Buahnya berbentuk bulat, pipih, berdaging dan banyak mengandung air, tersusun dalam tandan. Daunnya bercelah dengan tulang daun menyirip dan tersusun dalam sebuah tangkai bersama (Sunarjono, 2004; Steenis, 1997). Buah tomat mengandung gula (glukosa, fruktosa, sukrosa), asam organik (asam sitrat, asam malat), mineral, volatil, asam askorbat, vitamin, dan polifenil,
28
29
protein, selulosa, hemiselulosa, dan asam amino lain (Atherton and Rudich, 1996). Buah tomat mempunyai senyawa cita rasa (flavouring compound) yang disebut furaneol (2,5 dimetil, 4-hidroksi-3(2H)-furanon). Furaneol ini dapat larut dalam air (Buttery et al., 2001).
(Buttery et al., 2001) Gambar 3. Struktur furaneol
7. Senyawa furanon Furanon terdapat di alam sebagai pheromone, flavour compound , dan metabolit sekunder (Martinelli et al., 2004). Butenolids (2(5H)-Furanon) telah diisolasi dari Streptomyces sp. atau dari Hortonia sp. Furanon juga diproduksi oleh alga hijau, alga merah, dan alga coklat, sponge, fungi,dan ascidian. Pada kecoa jantan , furanon digunakan sebagai sex pheromone. Furanon ini terdapat secara alami pada nanas atau strawberry dan membuat senyawa cita rasa pada keju dan wine (Martinelli et al., 2004). Pada alga laut Delisea pulchra, furanon dihasilkan sebagai metabolit sekunder dengan nama (Z)-5(bromomethylene) furan-2(5H)-one (furanon) (Lonn, 2005). Halogen furanon ini dapat menghambat sistem quorum sensing (Givskov et al., 1996; Manefield et al., 1999).
29
30
Beberapa furanon mempunyai struktur kimia mirip dengan N-Acyl Homoserine Lactone (AHL) yang merupakan molekul sinyal dalam sistem quorum sensing bakteri gram negatif, sehingga senyawa furanon ini bersaing dengan AHL untuk berikatan dengan reseptor LuxR. Beberapa penelitian telah menunjukkan bahwa furanon : (1). Menghambat AHL-faktor pengatur virulensi dan patogenisitas pada Pseudomonas aeruginosa, (2). Menghambat quorum sensing yang mengatur luminescen dan virulensi dari Vibrio harveyi yang patogen pada udang, dan (3). Menghambat quorum sensing yang mengontrol virulensi dari Erwinia carotovora (Hentzer and Gisvskov, 2003).
(Hentzer and Givskov, 2003) Gambar 4. Struktur C4-HSL
(Hentzer and Givskov, 2003) Gambar 5. Struktur halogen furanon dari Delisea pulchra
30
31
B. Kerangka Pemikiran Aeromonas hydrophila bersifat patogen pada ikan. Faktor patogenisitasnya adalah enzim eksoproteasenya. Produksi enzim eksoprotease pada A. hydrophila diatur oleh sistem quorum sensing dengan C4-HSL sebagai molekul sinyalnya. C4HSL ini akan disekresikan ke lingkungan, bila konsentrasi C4-HSL di lingkungan tinggi, C4-HSL akan masuk kembali ke dalam sel dan mengaktifkan faktor transkripsi gen penyandi enzim eksoprotease. Ekstrak buah Lycopersicon esculentum Mill. yang mengandung furanon diharapkan akan menyebabkan penghambatan sistem quorum sensing A. hydrophila sehingga ekspresi gen penyandi enzim eksoprotease menurun. Penurunan ekspresi gen penyandi enzim eksoprotease akan menyebabkan menurunnya produksi enzim eksoprotease. Dengan menurunnya produksi enzim eksoprotease, maka patogenisitas A. hydrophila juga menurun. Kerangka pemikiran secara skematis adalah sebagai berikut (Gambar 6)
31
32
Aeromonas hydrophila
Sistem quorum sensing
Enzim Eksoprotease
Patogen pada ikan
Ekstrak buah L. esculentum Mill.
Menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila
Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila menurun
Patogenisitas A. hydrophila menurun
Gambar 6. Kerangka pemikiran
32
33
C. Hipotesis 1. Ada penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah pemberian ekstrak n heksan, etil asetat, dan metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) dengan variasi konsentrasi 0 %, 2 %, 4 %, 6 %, dan 8 %. 2. Ekstrak metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) dengan konsentrasi 4 % menunjukkan penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila yang terbesar.
33
34
BAB III METODE PENELITAN A.
Waktu dan Tempat Penelitian
Penelitian dilaksanakan pada bulan Februari sampai Juli 2006 di Sub Laboratorium Biologi, Laboratorium Pusat MIPA Universitas Sebelas Maret, Surakarta. B.
Alat dan Bahan 1. Alat
Alat yang digunakan dalam penelitian ini meliputi: a. Alat untuk ekstraksi : timbangan elektrik, blender, pisau (cutter), erlenmeyer, freezer, gelas beker, gelas ukur, alumunium foil, kertas saring, dan rotary evaporator. b. Alat untuk pemeliharaan kultur A. hydrophila : tabung reaksi, inkubator, hot plate. c. Alat untuk pengujian kualitatif aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila : cawan petri, jarum ose, laminar air flow, bunshen buchner, tabung reaksi, vortek, hot plate. d. Alat untuk pengukuran pertumbuhan, dan pengukuran aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila : spektrofotometer, kuvet, shaker, mikropipet dan tip, laminar air flow, gelas ukur, erlenmeyer, hot plate, dan sentrifus. e.
Alat sterilisasi : autoklaf
34
35
2. Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian ini meliputi: a. Buah tomat (Lycopersicon esculentum Mill.) var commune b. Kultur murni A. hydrophila yang diperoleh dari Laboratorium Penyakit Ikan (Fish disease) Jurusan Teknologi Perikanan Universitas Gajah Mada, Yogyakarta. c. Medium Luria Bertani (LB) Agar (Lampiran 1), Luria Bertani (LB) Broth (Lampiran 1), azocasein (Sigma), susu skim, trichloroacetic acid (TCA), NaOH 0,5 M, dan buffer fosfat pH 8 d. Pelarut : n heksan , etil asetat, metanol C. Cara Kerja 1. Pembuatan ekstrak n-heksan, ekstrak etil asetat, dan ekstrak metanol buah Tomat (L. esculentum Mill.) Buah tomat yang masak dicuci bersih, kemudian diiris tipis dan dikeringkan dalam oven dengan suhu 80°C. Irisan yang sudah kering diblender menjadi serbuk dan disimpan dalam wadah tertutup. Serbuk dilarutkan dalam nheksan (100 mg serbuk/100ml n-heksan), dikocok dan dibiarkan selama 24 jam. Ekstrak disaring dan diambil filtratnya. Filtrat dipekatkan dalam rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak n heksan buah tomat. Selanjutnya ampas yang diperoleh dari penyaringan dilarutkan dalam etil asetat, dikocok dan dibiarkan selama 24 jam. Ekstrak disaring dan diambil filtratnya. Filtrat dipekatkan dalam rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak etil asetat buah
35
36
tomat, sedangkan ampasnya dilarutkan dalam metanol, dikocok dan dibiarkan selama 24 jam. filtrat dipekatkan dalam rotary evaporator hingga diperoleh ekstrak metanol buah tomat (Wardhani, 2005) 2. Pemeliharaan Kultur A. hydrophila Kultur A. hydrophila ditumbuhkan pada agar miring NA pada suhu 30oC. 3. Penentuan Kurva Standar A. hydrophila Penentuan kurva standar dilakukan untuk mengetahui waktu yang tepat A. hydrophila mencapai kepadatan 107-108 CFU/ml. Penentuan kurva standar bakteri dilakukan dengan cara memindahkan isolat bakteri berumur 24 jam ke dalam 200 ml medium LB broth, kemudian diinkubasi pada suhu 30°C, dan dikocok dengan shaker. Pengukuran pertumbuhan bakteri dilakukan setiap 2 jam sekali mulai jam ke-0 dan selanjutnya setiap 2 jam selama 24 jam, 10 ml suspensi bakteri diambil dan diukur pertumbuhannya menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 600 nm sehingga diketahui nilai OD (Optical Density). Hubungan antara nilai OD dengan jumlah bakteri per ml didapatkan melalui pembuatan kurva standar dengan menentukan plot antara nilai OD dengan jumlah sel bakteri per ml pada hitungan cawan. Dari kurva standar ini dapat diketahui nilai OD A. hydrophila yang memenuhi kepadatan 107-108 CFU/ml.
36
37
4. Pengujian Kualitatif Aktivitas Enzim Eksoprotease Uji ini dilakukan untuk mengetahui aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila secara kualitatif setelah perlakuan ekstrak buah tomat. Medium yang digunakan adalah Luria-Bertani (LB) agar yang ditambah dengan 2% susu skim. Sterilisasi medium dengan autoklaf pada suhu 121°C selama 15 menit, sedangkan sterilisasi susu skim pada suhu 110°C selama 30 menit. Cawan petri diisi dengan 12 ml medium dengan penambahan ekstrak n heksan, etil asetat, dan metanol buah tomat dengan konsentrasi 0% (sebagai kontrol), 2%; 4%; 6% dan 8% . Isolat A. hydrophila yang telah ditumbuhkan dalam media LB Broth diinokulasikan pada cawan petri yang berisi medium LB agar padat dengan menggunakan metode titik (spot plate) dan diinkubasi pada suhu 30°C selama 24 jam. Masing-masing dilakukan dengan tiga kali ulangan Aktivitas enzim eksoprotease dapat dilihat dengan adanya zona bening pada medium (Swift et al., 1999). Luas zona bening pada masing-masing perlakuan dihitung, kemudian dibandingkan dengan luas zona bening pada kontrol. Luas zona bening : π R2- π r2
Keterangan : R : jari-jari lingkaran total (koloni bakteri + zona bening) (dalam cm) R : jari-jari lingkaran koloni bakteri (dalam cm) π: 3,14 Luas zona bening dalam cm2
37
38
5. Pengukuran Pertumbuhan A. hydrophila Uji ini dilakukan untuk mengetahui pertumbuhan A. hydrophila pada perlakuan ekstrak buah tomat. Isolat A. hydrophila berumur 24 jam ditumbuhkan pada 200 ml LB broth yang telah diberi ekstrak buah tomat, selanjutnya diinkubasi pada suhu 30°C dan dikocok dengan shaker. Pengukuran pertumbuhan bakteri dilakukan setiap 2 jam sekali mulai jam ke-0 dan selanjutnya setiap 2 jam selama 24 jam, 10 ml suspensi bakteri diambil dan diukur pertumbuhannya menggunakan spektrofotometer pada panjang gelombang 600 nm sehingga diketahui nilai OD (Optical Density). Sebagai kontrol, dilakukan pengukuran pertumbuhan A. hydrophila dalam medium LB Broth yang tidak diberi perlakuan ekstrak buah tomat. 6. Pengujian Kuantitatif Aktivitas Enzim Eksoprotease A. hydrophila Pengujian ini dilakukan untuk mengetahui aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila secara kuantitatif pada perlakuan ekstrak buah tomat. Prinsip pengujian aktivitas enzim eksoprotease berdasarkan metode Hanlon dan Hodges (1981) yaitu kemampuan enzim protease untuk menghidrolisis azocasein. Residu azocasein yang tidak dapat terhidrolisis oleh enzim eksoprotease akan diendapkan oleh tricloro acetic acid (TCA). Endapan dipisahkan dengan filtrat. Filtrat akan membentuk warna bila direaksikan dengan NaOH. Intensitas warna yang terbentuk diukur dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 440 nm. Pengujian secara kuantitatif hanya dilakukan pada ekstrak yang menunjukkan pengurangan aktivitas proteolitik terbesar yang ditunjukkan dengan luas zona
38
39
bening paling kecil dibandingkan kontrol pada pengujian kualitatif aktivitas enzim eksoprotease. Sepuluh ml suspensi bakteri yang telah diukur pertumbuhannya disentrifugasi dengan kecepatan 10.000 g selama 10 menit. Filtratnya diambil sebanyak 1 ml, lalu dimasukkan dalam tabung reaksi yang telah berisi 3 ml larutan buffer fosfat (pH 8). Campuran ini kemudian diletakkan di atas penangas air hingga suhunya mencapai 37°C. Setelah itu, ditambahkan 2 ml azocasein yang sebelumnya telah dipanaskan pada penangas air hingga suhunya mencapai 37°C, lalu diinkubasi selama 30 menit pada suhu 37°C. Selanjutnya ditambahkan 4 ml trichloro acetic acid (TCA) 10% sehingga terbentuk endapan kuning yang dipisahkan dengan disentrifugasi. Filtrat sebanyak 5 ml diambil, lalu ditambah dengan 5 ml larutan NaOH 0,5 M kemudian diukur absorbansinya pada panjang gelombang 440 nm. Pengukuran aktivitas enzim dilakukan setiap 2 jam sekali selama 24 jam sebanyak 3 kali ulangan. Satu unit aktivitas enzim eksoprotease didefinisikan sebagai jumlah enzim yang dapat menghasilkan kenaikan pengukuran absorbansi sebesar 0.01 setiap jam pada kondisi pengukuran. Unit aktivitas enzim eksoprotease yang digunakan dalam penelitian ini dinyatakan dalam U/ml, dan ditetapkan dengan rumus : Unit aktivitas/ml sampel (U/ml) = (absorbansi : 0,01) X 2 (Hanlon and Hodges, 1981)
39
40
D. Analisis Data Penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dapat dilihat dari aktivitas enzim eksoprotease secara kualitatif dan kuantitatif. Hasil pengujian kualitatif aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila yang dinyatakan dalam luas zona bening (dalam cm2) pada masing-masing perlakuan dibandingkan dengan luas zona bening pada kontrol. Perlakuan yang mempunyai luas zona bening terkecil akan dilanjutkan pada pengujian kuantitatif aktivitas enzim eksoprotease. Hasil pengukuran aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila berupa unit aktivitas enzim/ml sampel (U/ml) pada perlakuan yang menunjukkan aktivitas enzim eksoprotease terendah dibandingkan dengan aktivitas enzim eksoprotease pada kontrol dan penurunannya dinyatakan dalam persentase.
40
41
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Kepadatan A. hydrophila yang Memenuhi Quorum Sensing Aeromonas hydrophila mempunyai faktor virulensi utama berupa produksi enzim eksoprotease yang diatur oleh sistem quorum sensing. Dengan demikian untuk mendeteksi adanya produksi enzim eksoprotease, sistem quorum sensing A. hydrophila harus berjalan terlebih dahulu. Sistem quorum sensing dapat berjalan apabila bakteri telah mencapai kepadatan tertentu. Pada A. hydrophila ini, mulai kepadatan 107-108 CFU/ml sistem quorum sensing mulai berjalan (Gram et al., 1999). Dengan bekerjanya sistem quorum sensing, maka A. hydrophila telah mampu memproduksi enzim eksoprotease. Dalam penelitian ini, penentuan kepadatan A. hydrophila yang mampu mencapai quorum dilakukan dengan cara membuat kurva standar A. hydrophila. Suspensi A. hydrophila diukur absorbansinya pada panjang gelombang 600 nm sehingga dihasilkan nilai OD yang kemudian dikorelasikan dengan jumlah bakteri pada hitungan cawan. Nilai OD dan jumlah bakteri dalam hitungan cawan dapat diikuti dalam Tabel 1. Tabel 1. Nilai OD dan jumlah bakteri A. hydrophila pada hitungan cawan Jam ke 4 6 8 10
OD 0,0697 0,5310 0,9040 1,1930
Jumlah bakteri/ml Log Jml Bakteri 3,1 . 105 5,49136 8 1,6. 10 8,21085 8 2,3. 10 8,36173 9,9. 108 8,99564
41
42
Dari nilai OD dan jumlah bakteri hasil hitungan cawan dibuat kurva standar A. hydrophila sehingga didapatkan persamaan Y=2,947X + 5,7774 yang
log Jumlah Bakteri/ml
diperoleh melalui analisis regresi linier sederhana (Gambar 7).
10 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0 0
0,2
y = 2,947x + 5,7774 R2 = 0,8493
0,4
0,6
0,8
1
1,2
1,4
OD
Gambar 7. Kurva standar A. hydrophila Berdasarkan kurva standar tersebut, kepadatan A. hydrophila sebesar 107108 CFU/ml dicapai pada nilai OD lebih besar atau sama dengan 0,415. Dari hasil tersebut, maka inokulum yang digunakan untuk perlakuan adalah inokulum yang mempunyai nilai OD lebih besar atau sama dengan 0,415.
B. Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Secara Kualitatif Enzim eksoprotease merupakan enzim protease yang disekresikan oleh A. hydrophila ke dalam lingkungannya. Enzim eksoprotease ini merupakan faktor virulensi utama pada bakteri patogen sehingga perlu diturunkan produksinya. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dikontrol oleh suatu sistem komunikasi bakteri yang disebut sistem quorum sensing, dengan molekul sinyal
42
43
adalah C4-HSL. Untuk menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dapat dilakukan dengan cara menghambat sistem quorum sensingnya. Dalam penelitian ini, senyawa yang diduga mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila
adalah senyawa furanon dalam buah tomat.
Senyawa furanon mempunyai struktur mirip dengan molekul sinyal C4-HSL sehingga berperan sebagai C4-HSL analog dan mampu mengganggu quorum sensing. Untuk mendapatkan senyawa yang terkandung dalam buah tomat, maka dalam penelitian ini dilakukan ekstraksi bertingkat buah tomat menggunakan pelarut non polar, semi polar, dan polar yaitu : n heksan, etil asetat, dan metanol. Uji kualitatif produksi enzim A. hydrophila dilakukan dengan metode titik (spot plate) pada media Luria Bertani (LB) Agar yang ditambah 2% susu skim dan pada perlakuan ditambah dengan ekstrak buah tomat dengan berbagai variasi konsentrasi. Inokulum yang digunakan adalah inokulum A. hydrophila yang telah mencapai kepadatan 107 dari hasil pembuatan kurva standar A. hydrophila (Gambar 7). Media Luria Bertani digunakan dalam uji kualitatif produksi enzim eksoprotease karena Luria Bertani ini mengandung tripton (asam amino triptofan) sehingga bisa memacu aktivitas enzim proteolitik. Penambahan susu skim dimaksudkan untuk menunjukkan adanya produksi enzim eksoprotease melalui terbentuknya zona bening di sekitar koloni bakteri A. hydrophila. Zona bening ini menunjukkan adanya aktivitas enzim eksoprotease yang menghidrolisis ikatan peptida protein susu skim menjadi asam amino (Poernomo dan Purwanto, 2005). Penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila secara kualitatif dapat
43
44
diketahui dengan tidak adanya zona bening atau terjadinya pengurangan luas zona bening di sekitar koloni A. hydrophila. Apabila produksi enzim eksoprotease secara kualitatif terhambat oleh salah satu jenis ekstrak tanpa menghambat pertumbuhan bakteri, maka akan dilanjutkan dengan uji kuantitatif produksi enzim eksoprotease untuk mengetahui persentase penurunan produksi enzim eksoprotease.
1). Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Pada Perlakuan Ekstrak n heksan Buah Tomat (L. esculentum Mill.) n heksan merupakan pelarut non polar yang akan melarutkan senyawa non polar dalam buah tomat. Kandungan non polar dalam buah tomat antara lain adalah likopen yang termasuk golongan karotenoid (Sauriasari, 2006). Ekstrak n heksan buah tomat ditambahkan pada media Luria Bertani Agar dengan variasi konsentrasi 0%; 2%; 4%; 6% dan 8%. Pada semua konsentrasi masih terdapat produksi enzim eksoprotease A. hydrophila. Hal ini ditunjukkan dengan adanya zona bening di sekitar koloni A. hydrophila yang menunjukkan adanya aktivitas enzim eksoprotease menghidrolisis ikatan peptida susu skim. Berkurangnya zona bening diikuti pula oleh pengurangan koloni bakteri yang tumbuh (Gambar 8a,b,c,d,e).
44
45
2 1
2
1
a
b
2 1 1 2
c
d 2 1
e Gambar 8. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak n heksan buah tomat (L. esculentum Mill.) Keterangan : 1. koloni bakteri. 2. zona bening. (Zona bening di sekitar koloni bakteri menunjukkan adanya produksi enzim eksoprotease A. hydrophila) a. Kontrol (media LB Agar) b. LB Agar ditambah ekstrak n heksan buah tomat 2% c. LB Agar ditambah ekstrak n heksan buah tomat 4% d. LB Agar ditambah ekstrak n heksan buah tomat 6% e. LB Agar ditambah ekstrak n heksan buah tomat 8%
45
46
Bakteri tetap tumbuh yang ditunjukkan dengan diameter koloni A. hydrophila yang cukup besar dan mampu memproduksi enzim eksoprotease terbukti dengan terukurnya luas zona bening di sekitar koloni A. hydrophila. Diameter koloni A. hydrophila dan luas zona bening setelah perlakuan dengan ekstrak n heksan buah tomat dapat diikuti pada Tabel 2. Tabel 2. Diameter koloni A. hydrophila dan luas zona bening pada perlakuan dengan ekstrak n heksan tomat (L. esculentum Mill.) Konsentrasi
Rata-rata diameter
Rata-rata luas zona
koloni (cm)
bening (cm2)
Kontrol (0%)
0,467
0,429
2%
0,380
0,110
4%
0,425
0,149
6%
0,316
0,081
8%
0,250
0,077
Pertumbuhan dan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila mengalami penurunan, namun penurunan produksi enzim eksoprotease dan pertumbuhannya relatif kecil. Hal ini diduga karena senyawa-senyawa aktif non polar yang terkandung dalam ekstrak buah tomat tidak mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila. Ekstrak yang bersifat non polar menyebabkan ekstrak tersebut kurang larut dalam media LB agar yang mempunyai pelarut air yang bersifat polar. Dalam ekstrak n heksan buah tomat ini diduga senyawa furanon tidak terekstrak sehingga tidak mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila sehingga perlakuan ekstrak n heksan buah tomat ini tidak dilanjutkan
46
47
pada pengukuran pertumbuhan bakteri dan pengujian kuantitatif aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila.
2). Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Pada Perlakuan Ekstrak Etil Asetat Buah Tomat (L. esculentum Mill.) Etil asetat merupakan pelarut semi polar yang akan melarutkan senyawa non polar dalam buah tomat. Ekstrak etil asetat buah tomat ditambahkan pada media Luria Bertani Agar dengan variasi konsentrasi 0%; 2%; 4%; 6% dan 8%. Produksi enzim eksoprotease setelah penambahan ekstrak etil asetat buah tomat ini mengalami penghambatan sejalan dengan meningkatnya konsentrasi ekstrak yang diberikan. Hal ini dapat terlihat dari terbentuknya zona bening yang ada di sekitar koloni bakteri. Demikian pula dengan pertumbuhan bakterinya, semakin tinggi konsentrasi ekstrak, pertumbuhan A. hydrophila semakin terhambat. Adapun produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah penambahan ekstrak etil asetat buah tomat dapat dilihat pada Gambar 9.
47
48
1
1
2
2
a
b
1
1
c
d
1
e Gambar 9. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak etil asetat buah tomat (L. esculentum Mill.) Keterangan : 1. koloni bakteri. 2. zona bening (Zona bening di sekitar koloni bakteri menunjukkan adanya produksi enzim eksoprotease A. hydrophila) a. Kontrol (pada media LB Agar) b. LB Agar ditambah ekstrak etil asetat buah tomat 2% c. LB Agar ditambah ekstrak etil asetat buah tomat 4% d. LB Agar ditambah ekstrak etil asetat buah tomat 6% e. LB Agar ditambah ekstrak etil asetat buah tomat 8%
48
49
Berdasarkan Gambar 9b, dilihat dari koloni bakteri yang tumbuh dan zona bening yang ada dapat dikatakan bahwa pertumbuhan dan produksi enzim eksoprotease pada konsentrasi 2% relatif sama dengan pertumbuhan dan produksi enzim eksoprotease pada kontrol A. hydrophila. Hal ini menunjukkan bahwa konsentrasi tersebut belum mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila. Pada konsentrasi 4% (Gambar 9c) menunjukkan penghambatan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila yang ditunjukkan dengan tidak adanya zona bening di sekitar koloni A. hydrophila, walaupun hanya terjadi sedikit penurunan pertumbuhan bakteri A. hydrophila. Sedangkan pada konsentrasi 6% (Gambar 9d) dan 8% (Gambar 9e) tidak memperlihatkan adanya zona bening di sekitar koloni A. hydrophila yang menunjukkan tidak terdapatnya produksi enzim eksoprotease. Adanya penghambatan pertumbuhan dan produksi enzim eksoprotease secara rinci dapat diketahui dari hasil pengukuran diameter koloni dan luas zona bening yang dapat dilihat pada Tabel 3. Tabel 3. Diameter koloni A. hydrophila dan luas zona bening pada perlakuan dengan ekstrak etil asetat buah Tomat (L. esculentum Mill.) Konsentrasi
Rata-rata diameter
Rata-rata luas zona
koloni (cm)
bening (cm2)
Kontrol (0%)
0,467
0,429
2%
0,483
0,322
4%
0,320
-
6%
0,233
-
8%
0,225
-
Keterangan : tanda (-) menunjukkan tidak adanya zona bening di sekitar koloni bakteri
49
50
Pada Tabel 3 terlihat bahwa pada kontrol dan perlakuan ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 2%, diameter koloni cukup besar yaitu 0,467 dan 0,483 dengan diameter zona bening yang cukup besar pula. Lain halnya pada konsentrasi 4%, meskipun diameter koloninya relatif besar ternyata tidak terdapat zona bening di sekitar koloni bakteri. Hal ini menunjukkan bahwa ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4% mampu menghambat produksi enzim eksoprotease A. hydrophila. Terhambatnya produksi enzim eksoprotease pada pemberian ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4% ini diduga disebabkan oleh kandungan semi polar buah tomat mampu menghambat quorum sensing A. hydrophila. Semakin besar konsentrasi ekstrak, semakin kecil diameter bakteri yang terbentuk. Hal ini terlihat pada konsentrasi ekstrak 6% dan 8% yang mempunyai diameter relatif kecil. Diameter koloni yang kecil ini menunjukkan adanya penghambatan pertumbuhan A. hydrophila. Dengan demikian terjadinya penurunan produksi enzim eksoprotease disebabkan oleh adanya penghambatan pertumbuhan A. hydrophila. Senyawa semi polar buah tomat diduga bersifat sebagai antibakteri yang mampu menghambat pertumbuhan A. hydrophila sehingga menghambat produksi enzim eksoprotease A. hydrophila. Pada perlakuan ekstrak etil asetat buah tomat ini, yang dilanjutkan pada uji pertumbuhan bakteri A. hydrophila adalah ekstrak etil asetat buah tomat dengan konsentrasi 4%.
50
51
3). Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Pada Perlakuan Ekstrak Metanol Buah Tomat (L. esculentum Mill.) Metanol merupakan pelarut polar, sehingga mampu melarutkan senyawa furanon dalam tomat. Ekstrak metanol buah tomat diduga mengandung senyawa furanon yang mempunyai aktivitas sebagai penghambat sistem quorum sensing (quorum sensing inhibitor) sehingga mampu menghambat produksi enzim eksoprotease yang merupakan faktor virulensi A. hydrophila. Ekstrak metanol buah tomat ditambahkan pada media Luria Bertani Agar dengan variasi konsentrasi 0%; 2%; 4%; 6% dan 8%. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat ini juga menunjukkan adanya penurunan. Semakin besar konsentrasi ekstrak yang ditambahkan, semakin kecil produksi enzim eksoproteasenya. Adapun produksi enzim eksoprotease A. hydrophila setelah penambahan ekstrak metanol buah tomat dapat dilihat pada Gambar 10.
51
52
1 2
2
1
a
b
2 1
1
c
d
1
e Gambar 10. Produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) Keterangan : 1. koloni bakteri. 2. zona bening (Zona bening di sekitar koloni bakteri menunjukkan adanya produksi enzim eksoprotease A. hydrophila) a. Kontrol (media LB Agar) b. LB Agar ditambah ekstrak metanol buah tomat 2% c. LB Agar ditambah ekstrak metanol buah tomat 4% d. LB Agar ditambah ekstrak metanol buah tomat 6% e. LB Agar ditambah ekstrak metanol buah tomat 8%
52
53
Pada Gambar 10a tampak bahwa pada kontrol terjadi produksi enzim eksoprotease yang cukup besar yang terlihat dari zona bening yang ada di sekitar koloni A. hydrophila. Pada konsentrasi 2% (Gambar 10b) masih menunjukkan adanya produksi enzim eksoprotease terlihat dengan adanya zona bening di sekitar koloni A. hydrophila. Hal ini menunjukkan bahwa konsentrasi tersebut belum mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila. Pada konsentrasi ekstrak 4% (Gambar 10c) memang masih menunjukkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila, namun hanya kecil sekali apabila dibandingkan dengan kontrol. Pada konsentrasi ini tidak tampak adanya penghambatan pertumbuhan bakteri. Sedangkan pada konsentrasi 6% (Gambar 10d) dan 8% (Gambar 10e) tidak terlihat adanya zona bening di sekitar koloni bakteri yang menunjukkan tidak terjadi produksi enzim eksoprotease. Koloni bakteri yang tumbuh relatif kecil yang menunjukkan terjadinya penghambatan pertumbuhan A. hydrophila. Berdasarkan hasil pengukuran diameter koloni bakteri dan luas zona bening yang tersaji pada Tabel 4, dapat dilihat bahwa pada konsentrasi 4%, produksi enzim eksoproteasenya memang relatif kecil yaitu sebesar 0,048 cm2 apabila dibandingkan dengan kontrol yang mempunyai luas zona bening 0,429 cm2. Adanya penurunan produksi enzim eksoprotease ini tidak disertai penghambatan pertumbuhan, terlihat dari dimeter zona bening yang relatif besar. Hal ini menunjukkan bahwa konsentrasi ini mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila.
53
54
Tabel 4. Diameter koloni A. hydrophila dan luas zona bening pada perlakuan dengan ekstrak metanol buah tomat (L. esculentum Mill.) Konsentrasi
Rata-rata diameter
Rata-rata luas zona
koloni (cm)
bening (cm2)
Kontrol (0%)
0,467
0,429
2%
0,367
0,264
4%
0,308
0,048
6%
0,236
-
8%
0,216
-
Keterangan : tanda (-) menunjukkan tidak adanya zona bening di sekitar koloni bakteri
Pada Tabel 4 juga menunjukkan bahwa pada konsentrasi 6% dan 8% tidak menunjukan adanya produksi enzim eksoprotease A. hydrophila, namun disertai penghambatan pertumbuhan A. hydrophila terlihat dari diameter koloni A. hydrophila yang kecil, sehingga terjadinya penghambatan produksi enzim diduga disebakan oleh terhambatnya pertumbuhan bakteri A. hydrophila. Penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila ini disebabkan oleh adanya penghambatan sistem quorum sensing A. hydrophila. Berdasarkan penelitian Swift et al. (1999) penghambatan quorum sensing dapat dilakukan dengan menambahkan senyawa analog C4-HSL pada kultur A. hydrophila. Penghambatan quorum sensing dapat dilakukan oleh senyawa yang mirip dengan molekul sinyal sebagai quorum sensing inhibitors (QSI). Pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat ini,
senyawa yang diduga mampu menghambat sistem
quorum sensing A. hydrophila sehingga mampu menghambat produksi enzim eksoprotease A. hydrophila adalah senyawa furanon dalam ekstrak buah tomat.
54
55
Dalam buah tomat ini, furanon terdapat dalam bentuk furaneol (2,5 dimetil, 4hidroksi-3(2H)-furanon) (Buttery et al., 2001). Berdasarkan penelitian Rasmussen et al. (2000), halogen furanon yang merupakan metabolit sekunder dari makroalga laut Delisea pulchra mampu menghambat molekul sinyal N-Butanoyl-L– Homoserine Lactone pada Serratia liquefaciens sehingga menghambat motilitas Serratia liquefaciens. Senyawa yang bertindak sebagai QSI mampu menghambat quorum sensing dalam konsentrasi yang relatif kecil (Hentzer and Givskov, 1999). Apabila diberikan dalam konsentrasi yang lebih besar, senyawa QSI akan bersifat sebagai antibakteri yang menghambat pertumbuhan bakteri (Rasch et al., 2004). Dalam penelitian ini terbukti bahwa pada konsentrasi 4%, senyawa dalam ekstrak metanol buah tomat mampu menurunkan produksi enzim eksoprotease tanpa menghambat pertumbuhan A. hydrophila. Pada saat ekstrak metanol buah tomat diberikan pada konsentrasi lebih besar yaitu 6% dan 8% terjadi penghambatan produksi enzim eksoprotease, namun disertai penghambatan pertumbuhan A. hydrophila, sehingga berdasarkan prinsip quorum sensing inhibitors (QSI) yang mampu menghambat faktor virulensi bakteri (dalam penelitian ini adalah produksi enzim eksoprotease A. hydrophila) tanpa menghambat pertumbuhan bakteri itu sendiri maka yang dilanjutkan ke tahap pengujian produksi enzim eksoprotease A. hydrophila secara kuantitatif adalah ekstrak metanol buah tomat dengan konsentrasi 4%. Penelitian ini terfokus pada senyawa QSI bukan pada antibakteri karena pada umumnya senyawa antibakteri mempunyai dampak negatif yaitu
55
56
munculnya resistensi bakteri dan timbulnya strain bakteri yang baru sehingga penggunaan senyawa antibakteri menjadi kurang efektif.
C. Pertumbuhan A. hydrophila Pada Perlakuan Ekstrak Buah Tomat (L. esculentum Mill.) Pertumbuhan bakteri A. hydrophila setelah pemberian ekstrak buah tomat diketahui dengan membuat kurva pertumbuhan. Pengukuran pertumbuhan digunakan untuk mengetahui bahwa penghambatan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila tidak disebabkan oleh terhambatnya pertumbuhan A. hydrophila, namun disebabkan oleh terhambatnya sistem quorum sensing yang mengontrol sintesis enzim eksoprotease tersebut. Pengukuran pertumbuhan A. hydrophila hanya dilakukan pada perlakuan yang menunjukkan penurunan produksi enzim eksoprotease secara kualitatif tanpa terhambat pertumbuhannya yaitu pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% dan ekstrak etil asetat tomat sebesar 4%. Gambar 11 menunjukkan pertumbuhan A. hydrophila setelah perlakuan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% dan ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4%. Selain itu, dilakukan pula pengukuran pertumbuhan A. hydrophila dengan penambahan pelarut etil asetat dan metanol dalam media LB cair untuk mengetahui pengaruh pelarut yang digunakan untuk mengekstrak buah tomat terhadap pertumbuhan A. hydrophila. Secara umum kurva pertumbuhan menunjukkan pertumbuhan bakteri yang terdiri dari fase lag, fase eksponensial, dan fase stasioner.
56
57
1,2 1
nilai OD
0,8 0,6 0,4 0,2 0 0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
22
24
Waktu pengukuran (jam) A
B
C
D
E
Gambar 11. Kurva pertumbuhan A. hydrophila Keterangan :
A : Kontrol negatif (media LB broth) B : Kontrol positif (media LB broth + pelarut etil asetat 4%) C : Kontrol positif (media LB broth + pelarut metanol 4%) D : Media LB broth + ekstrak etil asetat buah tomat 4% E : Media LB broth + ekstrak metanol buah tomat 4%
Berdasarkan Gambar 11, fase lag tidak begitu kelihatan. Hal ini diduga disebabkan bakteri sudah mampu beradaptasi dengan media cair yang digunakan. Pada fase lag, sel bakteri mengalami perubahan dalam komposisi kimiawi dan bertambah ukurannya, namun belum ada penambahan populasi bakteri (Pelzar and Chan, 1992). Pada fase eksponensial terjadi penambahan massa sel dengan cepat (Pelzar and Chan, 1992). Fase eksponensial A. hydrophila pada penelitian ini berlangsung pada jam ke-0 sampai jam ke-10. Pada fase stasioner, terjadi penumpukan produk beracun dan terjadi kekurangan nutrien sehingga beberapa sel mati sedangkan yang lain tetap tumbuh sehingga jumlah sel hidup menjadi
57
58
tetap (Pelzar and Chan, 1992). Pada penelitian ini fase stasioner berlangsung pada jam ke-12 sampai jam ke-24. Pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% dan kontrol positif yang ditambah pelarut metanol, pertumbuhan A. hydrophila berlangsung dengan normal, tidak terjadi penghambatan pertumbuhan A. hydrophila, terlihat dengan nilai Optical density (OD) yang relatif sama dengan kontrol. Sedangkan pada kontrol yang ditambah pelarut etil asetat, menunjukkan penghambatan pertumbuhan A. hydrophila. Etil asetat mengandung asam asetat. Asam mampu menyebabkan denaturasi protein sel bakteri, sehingga terjadi koagulasi protein sel bakteri dan akhirnya bakteri mati kemudian sel bakteri menjadi menggumpal dan cenderung turun ke bawah dasar erlenmeyer saat pengukuran pertumbuhan A. hydrophila. Pada perlakuan ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4% terjadi penghambatan pertumbuhan bakteri A. hydrophila. Hal ini dimungkinkan akibat adanya kandungan senyawa semi polar dalam tomat yang mampu menghambat pertumbuhan
bakteri
A.
hydrophila.
Sehubungan
dengan
terhambatnya
pertumbuhan A. hydrophila setelah penambahan ekstrak etil asetat buah tomat sebesar 4%, maka perlakuan ini tidak dilanjutkan pada tahap uji kuantitatif aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila.
D. Penurunan Produksi Enzim Eksoprotease A. hydrophila Secara Kuantitatif Di dalam sel, jumlah enzim yang ada hanya kecil sehingga pengukuran kadar enzim dalam ekstrak jaringan akan menjadi sangat sulit. Oleh karena itu,
58
59
pengukuran produksi enzim dalam sebuah ekstrak jaringan atau cairan biologik lain dilakukan dengan mengukur aktivitas katalisis enzim. Jumlah molekul atau massa enzim yang ada sukar ditentukan sehingga hasil pengukurannya dinyatakan dalam bentuk unit aktivitas enzim (Murray et al., 1996). Pengukuran produksi enzim eksoprotease A. hydrophila secara kuantitatif hanya dilakukan pada perlakuan yang menunjukkan penurunan aktivitas proteolitik pada uji kualitatif dan yang tidak menghambat pertumbuhan A. hydrophila. Hal ini sesuai dengan prinsip quorum sensing inhibitors yang mampu menghambat ekspresi gen penyandi faktor virulen, tanpa menghambat pertumbuhan dari bakteri itu sendiri. Pada penelitian ini, hanya ekstrak metanol buah tomat sebesar 4 % yang diuji kuantitatif aktivitas enzim eksoprotease. Uji aktivitas enzim eksoprotease A. hydrophila secara kuantitatif dilakukan dengan menggunakan azocasein sebagai substratnya. Azocasein akan dihidrolisis oleh enzim eksoprotease menjadi peptida dan asam amino yang akan membentuk warna apabila ditambah dengan NaOH. Intensitas warna yang terbentuk dapat diukur nilai absorbansinya dengan spektrofotometer pada panjang gelombang 440 nm. Produksi enzim eksoprotease setelah pemberian ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% dibandingkan dengan kontrol untuk mengetahui persentase penurunan produksi enzim eksoprotease. Untuk memastikan bahwa penurunan produksi enzim eksoprotease itu disebabkan oleh senyawa dalam tomat dan bukan pelarut metanolnya, maka dilakukan pula uji aktivitas enzim eksoprotease kuantitatif pada media LB broth dengan penambahan pelarut metanol sebesar 4%.
59
60
Adapun produksi enzim eksoprotease A. hydrophila selama 24 jam dapat dilihat pada Gambar 12.
14
unit aktivitas enzim/ml
12 10 8 6 4 2 0 0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
22
24
WAKTU (JAM)
A
B
C
Gambar 12 . Kurva produksi enzim eksoprotease A. hydrophila Keterangan : A : Kontrol ditambah pelarut metanol sebesar 4% B : Perlakuan dengan penambahan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% C : Kontrol
Berdasarkan Gambar 12. produksi enzim eksoprotease sudah terdeteksi sejak jam ke-0. Hal ini terjadi karena kepadatan bakteri pada jam ini telah memenuhi quorum untuk berjalannya quorum sensing A. hydrophila (Gambar 11) Produksi enzim eksoprotease cenderung stabil setelah jam ke-12 (pada fase stasioner). Pada kontrol yang ditambah pelarut metanol tidak menunjukkan adanya penghambatan produksi enzim eksoprotease. Pelarut metanol tidak menghambat produksi enzim eksoprotease A. hydrophila karena metanol tidak
60
61
mampu menghambat sistem quorum sensing A. hydrophila. Pada penelitian Rasmussen et al. (2005) pelarut metanol memang tidak menunjukkan aktivitas sebagai quorum sensing inhibitors. Pada pemberian ekstrak metanol buah tomat menunjukkan adanya penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila (Gambar 12). Produksi enzim eksoprotease pada perlakuan ekstrak metanol buah tomat ini dibandingkan dengan kontrol untuk memperoleh persentase penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila. Pada kontrol, produksi enzim eksoprotease terbesar terjadi pada jam ke-4 dan ini dianggap 100%, sehingga penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dihitung dengan membandingkan produksi enzim eksoprotease setelah pemberian ekstrak metanol buah tomat dengan kontrol pada jam ke-4. Histogram persentase produksi enzim eksoprotease A. hydrophila dapat
% produksi enzim eksoprotease
dilihat pada Gambar 13.
100 80 60 40 20 0 A
B perlakuan
Gambar 13. Histogram produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada jam Ke-4 Keterangan : A : Perlakuan ekstrak metanol buah tomat sebesar 4% B : Kontrol
61
62
Penurunan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila pada pemberian ekstrak metanol buah tomat 4% adalah sebesar 71,68%. Adanya penurunan produksi enzim eksoprotease ini diduga disebabkan oleh adanya aktivitas senyawa furanon dalam ekstrak metanol buah tomat yang bertindak sebagai C4-HSL analog. Senyawa furanon mempunyai struktur mirip dengan C4-HSL sehingga berkompetisi dengan C4-HSL untuk berikatan dengan protein Lux R dan akhirnya menghambat terjadinya induksi gen penyandi enzim eksoprotease (Manifield et al., 1999). Gao et al. (2003) dan Bauer and Robinson (2002) menyebutkan bahwa tanaman tomat mengeluarkan senyawa yang mampu menirukan aktivitas molekul sinyal AHL pada sistem quorum sensing bakteri, dan mempunyai efek yang spesifik terhadap quorum sensing bakteri.
62
63
BAB V KESIMPULAN DAN SARAN
A. 1.
Kesimpulan
Terjadi penurunan produksi enzim eksoprotease setelah pemberian ekstrak metanol buah tomat (L. esulentum Mill.) sebesar 4%
2.
Ekstrak metanol buah tomat (L. esulentum Mill.) mampu menurunkan produksi enzim eksoprotease A. hydrophila sebesar 71,68%, tanpa menghambat pertumbuhan A. hydrophila.
B.
Saran
Perlu penelitian lebih lanjut untuk mengetahui produksi enzim eksoprotease A. hydrophila menggunakan senyawa furanon murni yang diisolasi dari buah tomat (L. esculentum Mill.) beserta analisis ekspresi gen untuk mengetahui pengaruh senyawa furanon tersebut terhadap gen penyandi enzim eksoprotease A. hydrophila.
63
64
DAFTAR PUSTAKA Afrianto, E.A dan Liviawaty, E. 1992. Pengendalian Hama dan Penyakit Ikan Yogyakarta : Kanisius. Alavandi, A., S. A. Anathan., and G. Kang. 1998. Prevelance in Vitro Secretory Activity and Cytotoxicity of Aeromonas species Associated With Chilhood Gastroenterisis in Chennai (Madras) India. Jpn.J.Med.Sci.Biol (51):1-12 Allan, B.J. and R.M. Stevenson. 1981. Extracelluler Virulence Factors of A. hydrophila in Fish infection. Can J. Microbiol, 27: 1114-1122. Atherton, J.G. and J. Rudich. 1996. The Tomato Crop. London : Chapman and Hall. Bassler, B.L., M. Wright., R.C. Showalter., and M.R. Silverman. 1993. Intercelluler Signalling In Vibrio harveyi : Sequence and Function Of Gene Regulating Expression Of Luminescence. Mol microbiol, 2 : 773786. Bauer, W.D. and J.B. Robinson. 2002. Disruption of Bacterial Quorum Sensing by Other Organism. Current Opinion Biotechnology. 13 : 234-237 Bottarelli, E., and M.C. Ossiprandi. 1999. Aeromonas Infections : An Update. http://www.unipr.it/arpa/facvet/annali/1999/bottarelli2/bottarelli.htm. Buttery, R.G., G.R. Takeda., M. Naim., H. Rabinowitch., and Y. Nam. 2001. Analysis of Furaneol in Tomato Using Dynamic headspace sampling with Sodium Sulfate. J. agric food chem, 49 : 4349-4351. Cascon, A., J. Yugueros., A. Temprano., M. Sanchez., C. Hernanz., J.M. Luengo., and G. Maharro. 2000. A Major Secreted Elastase Is Essential for Pathogenicity Of Aeromonas hydrophila. Infect and Immun, 86(6) : 32333241. Dong, Y.H., A.R. Gusti., Q. Zhang., J.L. Xu., and L.H. Zhang. 2002. Identification of Quorum Quenching N-Acyl Homoserine Lactonases from Bacillus Species. Appl and Environ Microbiol. 64 (4) : 1754-1759 Eberl, L. 1999. N-Acyl Homoserine lactone. Mediated Genes Regulation in Gram Negative Bacteria. Syst.Appl. Microbiol, 22(4) : 493-506. Finch, R.G., D.I. Pritchard., B.W.P. Williams., and G.S.A.B. Stewart. 1998. Quorum Sensing : A Novel Target For Anti Infective Therapy. Jurnal of Antimicrob. Chemotherapy, 42 : 569-571.
64
65
Fardiaz, S. 1993. Analisis Mikrobiologi Pangan. Jakarta : PT Grafinddo Persada Fryer, J.L and J.L. Bartholomew. 1996. Established and Emerging Infectious Disease of Fish. ASM News, 62 : 592-594. Gavriel, A.A., J.P. Landre., and A.J. Lamb. 1998. Incidence of Mesophilic Aeromonas Within A public Drinking Water Supply in North East Schotland. J. Appl. Microbiol (84) : 383-392. Gao, M., M. Teplitski., J.B. Robinson., and W.D. Bauer. 2003. Production of Substances by Medicago truncatula That Affect Bacterial Quorum Sensing. MPMI. 16 (9) : 827-834 Givskov, M., R. de Nys., .M. Manefield, L. Gram., R. Maximilein., L. Eberl., S. Molin., P.D. Steinberg., and S. Kjelleberg. 1996. Eukaryotic Interference with Homoserine Lactone Mediated Prokariotic Signalling. J. Bacteriol . 179 : 6618-6622. Gram, L., A.B. Christensen., L. Ravn., S . Molin., and M. Givskov. 1999. Production of Acylated Homoserine Lactones by Psichrotrophic Members of The Enterobacteriaceae Isolated From Food. Appl. And Environ. Microbiol. 65(8) : 3458-3463 Hanlon, G. and N.A. Hodges. 1981. Bacitracin and Protease Production In Relation to Sporulation During Exponensial Growth Of Bacillus licheniformis On Poorly Utilized Carbon and Nitrogen Sources. J. Bacteriol, 162(2) : 427-431. Hayes, J. 2000. Aeromonas hydrophila. Oregon State University : Disease of Fish spring Term Project 2000 (on line). http://www.. Hmsc.orst.edu/classes/hydrophila hayes. Hentzer, M. and M. Givskov. 2003. Pharmacological Inhibition of Quorum Sensing for The treatment of Chronic Bacterial Infection. J. Clint. Invest (112): 1300-1307. Ibrahim, A. and I.C. Mac Rae. 1991. Incidence of Aeromonas and Listeria sp. In Red Meat and Milk Sample in Brisbane, Australia. Int.J. Food microbiol (12): 263. Janda, J.M and S.L. Abbot. 1998. Evolving Concepts Regarding The Genus Aeromonas : An Expanding Panorama of Species, Disease Presentation and Unanswered Question. Clin.infect.Dis, 27 : 332-344. Khalil. 1997. Toxicity of Crude Extracelluler Products of Aeromonas hydrophila in Tilapia, Tilapia nilotica. Lett. Appl.Microbiol. 25(4): 269-273
65
66
Kievit, T.R and B.H. Igleweski. 2000. Bacterial Quorum Sensing in Phatogenic Relationship. Infect and Immun. September 2000. p.4839-4849 Kordi, M.G.H. 2004. Penanggulangan Hama dan Penyakit Ikan . Jakarta : Rineka Cipta dan Bina Aksara. Lonn, J. 2005. May We Fight Bacteria by Inhibitting Cell-Cell Signaling UsingFuranon?. Institute of Oral Biology. Dental Faculty, Universitas Of Oslo Norway. www.odont.uio.no/forsking/uldanning Lynch, M.J. 2002. The Regulation of Biofilm Development by Quorum Sensing in Aeromonas hydrophila. Environ Microbiol, 4: 18-28. Maalej, S., M. Denis., and S. Dukan. 2004. Temperature and Growth Phase Effect on Aeromonas hydrophila Survival in Natural Sea Water Microcosm : Role of Protein Synthesis and Nucleic Acid Content on Viable But Temporarily non Culturable response. Microbiol, 150 : 181-187. Manefield, M., R. de Nys., N. Kumar, R. Read., M. Givskov., P. Steinberg., and S. Kjelleberg,. 1999. Evidence That Halogenated Furanones From Delisea Pulchra Inhibit Acylated Homoserine Lactone (AHL) Mediated Gene Expression By Displacing the AHL Signal From Its Receptor Protein. Microibol. 145 : 283-291. Martinelli, D., G.U. Sequin., H. Brandl., R. Bachosen. 2004. Effect of Natural and Chemichally Synthesised Furanones on Quorum sensing in Chromobacterium violaceum. BMC Microbiol. 4:25. Mary, P., N.E. Chihib., O. Charafeddine., C. Defives., and J.P. Hornez. 2002. Starvation Survival and Viables But Nonculturable States in Aeromonas hydrophila. Microb. Ecology, 43(2) : 250-258. McMahon, M.A.S. 2004. The Effect of Modified Atmosphere on Growth and Extracelluler Protein Production in Aeromonas hydrophila. www.science.ulst.ac.uk/food/Aeromonas.htm Merino, S., S. Camprubi., and J.M. Thomas. 1992. The Effect of Growth Temperature on Outer Membrane Components and Virulence of Aeromonas hydrophila Strain of Serotype 0 : 34. Infect Immun, 60 (10) : 4343-4349. Murray, R.K., D.k. Granner., P.A. Mayes., and V.W. Rodwell. 1996. Biokimia Harper.edisi 24. Jakarta : EGC : 68 Nieto, T.P. and A.E. Ellis. 1986. Characterisation Of Extracelluler Metallo and Serine Proteases Of Aeromonas hydrophila Strain B51. J.Gen Microbiol. 132(70 ; 1975-1979.
66
67
Noga, E.J. 1995. Fish Desease : Diagnosis and Treatment. The C.V Mosbi Company Missoury. Parsek, M.R., and E.P. Greenberg. 1997. Acyl Homoserine Lactone Quorum Sensing In Gram Negative Bacteria : A Signalling Mechanism Involved Association With Higher Organism: http://www.pnas.org/cgi/content/full/96/16/8789=fn152. Pelzar, J.M. and E.C.S. Chan. 1992. Dasar-dasar Mikrobiologi. Jakarta : UI Press Purnomo, A.T. dan Purwanto, D.A. 2001. Karakterisasi Enzim Proteolitik Bacillus Subtilis FNCC 0059. Surabaya : Fakultas Farmasi Universitas Airlangga Rasch, M., C. Buch., B. Austin., W.J. Slierendrecht., K.S. Ekmann., J.L.Larsen., C. Johansen., K. Riedel., L. Eberl., M. Givskov., and L. Gram. 2004. An Inhibitor Of Bacterial Quorum Sensing Reduces Mortality Caused By Vibriosis in Rainbow Trout ( Oncorhynchus mykiss, wal baum). Systematic and Appl microb, 24(3) : 350-359. Rasmussen, T.B., M. Manefield., J.B. Anderson., L. Eberl., U. Anthoni., C. Christophersen., P. Steinberg., S. Kjelleberg., and M. Givskov. 2000. How Delisea pulchra Furanones Affect Quorum Sensing and Swarming Motility in Serratia liquefaciens MGJ. Microbiol (146) : 3237-3244. Rasmussen, T.B; T. Bjarnsholt; M.E. Skindersoe; M. Hentzer; P. Kristoffersen.; M. Kote; J. Nielson; L. Eberl; and M. Givskov. 2005. Screening for Quorum Sensing Inhibitors by Use of A Novel Genetic System The Quorum Sensing Selector. J. Bacteriol. 185(5): 1755-1814 Rodrigues, L.A., A.E. Ellis and T.P. Nieto. 1992. Purification and Characterization of an Extracellular Metalloprotease, Serine Protease, and Hemolisin of Aeromonas hydrophila I strain B32: All are lethal for Fish. Microbpathogen (13) : 17-24. Sautor, M., P. Mary., N.E. Chihib., and J.P. Hornez. 2003. The Effect Of Temperature, Water Activity and pH on The Growth of Aeromonas hydrophila and on its Subsequent Survival in Microscosm Water. Appl.microbiol. 95(4) : 807-813. Sauriasari, R. 2006. Mengenaal dan Menangkal Radikal Bebas. Berita iptek. 22 Januari 2006.www.beritaiptek.com. Schauder, S.,and B.L.Bassler. 2001. The Language Of Bacteria. J. Microbiol. 15(12) : 1468-1480.
67
68
Secades, D. and J.A. Guijarro. 1999. Purification and Characterization of an Extracelluler Proteases from Fish Pathogen Yersinia ruckeri and Effect of Cultures Condition and Production. Applied and Environmental Microbiol. 65 (9), : 3969-3975. Steenis, C.G.G.J.V. 1997. Flora Untuk Sekolah di Indonesia. Jakarta : PT. Pradnya Paramita. Sunarjono, H. 2004. Bertanam 30 Jenis Sayur. Jakarta : Penerbit Swadaya. Swift, S., A.V. Karlyshev., L. Fish., El Durant., M.K Winson., S.R. Chhabra., P. Williams., S. Macintyre., and G.S. Stewart. 1997. Quorum Sensing In Aeromonas hydrophila and Aeromonas salmonicida Identification Of The LuxRI Homologs and Asa RI and Their Cognate N-acylhomoserine Lactone Signal Molecules. J.Bacteriol. 179(17) : 5271-5281. Swift, S., M.J. Lynch., L. Fish., D.F. Leink., J.M. Thomas., C.J. A.B. Stewart., P. Williams. 1999. Quorum Sensing –Dependent Regulation and Blokade of Eksoprotease Production in Aeromonas hydrophila . Infection and imunity. 4 : 18-28. Taga, M.E. and B.L. Bassler. 2003. Chemical Communication among Bacteria. Pnas Vol. 100 (2) : 14549-14554 Tjitrosoepomo, G. 2002. Taksonomi Tumbuhan (Spermatophyta). Yogyakarta : Gadjah Mada University Press. Wardhani, S.Z. 2005. Pemantauan Aktivitas Penangkapan Radikal Bebas Secara Kromatografi Lapis Tipis Pada Lalapan. [Tesis]. Departemen farmasi JBPTPTBFA. Winarno, F.G. 1986. Enzim Pangan. Jakarta : PT Gramedia : 11
68
69
Lampiran 1. Komposisi Medium 1. Nutrient Agar dalam 1 liter aquades (Fardiaz, 1993) Agar………………………………………………………………….
15,0 g
Pepton………………………………………………………………
5,0 g
NaCl……………………………………………………………….
5,0 g
Yeast Extract………………………………………………………
2,0 g
Beef Extract………………………………………………………
1,0 g
2. Luria Bertani (LB) Agar dalam 1 liter aquades Tryptone……………………………………………………………
10,0 g
Yeast Extract……………………………………………………….
5,0 g
NaCl………………………………………………………………..
10,0 g
Agar………………………………………………………………..
15,0 g
3. Luria Bertani (LB) Broth dalam 1 liter aquades Tryptone……………………………………………………………
10,0 g
Yeast Extract……………………………………………………….
5,0 g
NaCl………………………………………………………………..
10,0 g
Glukosa……………………………………………………………
5,0 g
69
70
UCAPAN TERIMA KASIH Segala puji bagi Allah SWT yang telah memberikan rahmat-Nya sehingga penulis dapat menyelesaikan naskah skripsi yang berjudul “PENURUNAN PRODUKSI ENZIM EKSOPROTEASE Aeromonas hydrophila OLEH EKSTRAK BUAH TOMAT (Lycopersicon esculentum Mill. )”. Penyusunan naskah skripsi ini tidak terlepas dari bantuan berbagai pihak, oleh karena itu penulis mengucapkan terima kasih kepada : 1. Bapak dan Ibu serta keluarga di rumah yang telah memberikan seluruh kasih sayang kepada penulis. 2. Bapak Drs. Marsusi, M. S selaku Dekan Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Sebelas Maret Surakarta. 3. Bapak Drs. Wiryanto, M. Si selaku Ketua Jurusan Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam Universitas Sebelas Maret Surakarta. 4. Bapak Prof. Drs. Sutarno, M.Sc., Ph.D selaku pembimbing I yang telah membimbing dan mengarahkan dalam pelaksanaan penelitian dan penyusunan skripsi. 5. Ibu Ari Susilowati, M. Si selaku pembimbing II yang telah membimbing dan mengarahkan dalam pelaksanaan penelitian dan penyusunan skripsi. 6. Ibu Dra. Ratna Setyaningsih M. Si,
selaku penguji I yang telah
memberikan masukan pada skripsi ini 7. Ibu Solichatun, M. Si selaku penguji II yang telah memberikan masukan pada skripsi ini.
70
71
8. Ibu Artini Pangastuti, M. Si atas segala masukan dan bantuan pada skripsi ini 9. Bapak Tjahjadi Purwoko, M.Si selaku pembimbing akademik yang telah mengarahkan selama menempuh studi. 10. Kepala Sub Laboratorium Biologi, Laboratorium Pusat MIPA Universitas Sebelas Maret Surakarta yang telah memberikan izin penelitian, beserta seluruh staff yang telah membantu penulis dalam pelaksanaan penelitian di laboratorium. 11. Umi Lestari, S.Si atas semua ilmu yang ditularkan padaku, atas semua bantuan dan dorongannya mulai dari awal pembuatan proposal sampai tersusunnya naskah skripsi ini . 12. Dian Ratnasih, Irmawati, Wiwin Undari, Slamet Mardiyanto, Feri Lina, Isnaini N.H, Sevi Sawestri, Ana Fitri, Ana N.C dan teman-teman biologi angkatan 2002 atas bantuan dan dorongan semangat selama penelitian 13. Teman-teman Kost Bu Husein atas persaudaraan dan persahabatan yang kita jalin dan support yang diberikan. 14. Teman-teman seperjuangan di sub Lab. Biologi terima kasih atas segala kerjasamanya 15. Rekan-rekan Biologi angkatan 2001, 2003, dan 2004. 16. Teman-teman remaja masjid Sabilarrosyad Sekarpace 17. Semua pihak yang tidak dapat disebutkan satu-persatu.
71
72
RIWAYAT HIDUP PENULIS
Penulis dilahirkan di Klaten pada tanggal 22 Mei 1984. Tahun 1996 penulis menyelesaikan pendidikan dasar di SD Gondangsari II. Selanjutnya, penulis menyelesaikan pendidikan menengah di SLTPN I Juwiring pada tahun 1999 dan SMUN 1 Wonosari Klaten pada tahun 2002. Penulis diterima sebagai mahasiswa di Jurusan Biologi FMIPA UNS melalui jalur UMPTN pada tahun 2002. Selama menempuh pendidikan di Jurusan Biologi FMIPA UNS, penulis pernah Magang di Pusat Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Biodiversitas Lembaga Penelitian dan Pengabdian Masyarakat (LPPM) UNS, pernah menjadi asisten praktikum mata kuliah Mikrobiologi, Genetika, Biologi Molekuler, Limnologi, Struktur Perkembangan Tumbuhan I, II, dan III, Taksonomi Tumbuhan I, dan Biologi umum. Tahun 2006 Penulis menjadi juara pertama pada Lomba Karya Tulis mahasiswa tingkat Universitas Sebelas Maret, dan termasuk sepuluh besar dalam Lomba Karya Tulis Mahasiswa tingkat Wilayah B dengan judul karya tulis “ Penghambatan Faktor Virulensi Aeromonas hydrophila Oleh Bawang Putih (Allium sativum Linn.) Sebagai Upaya Pencegahan Penyakit Motile Aeromonads Septicemia Pada Ikan”. Pada tahun yang sama Penulis juga terpilih sebagai Mahasiswa Berprestasi Tingkat Jurusan Biologi Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, serta juara kedua lomba Mahasiswa Berprestasi
Tingkat
Fakultas
Matematika dan
Ilmu
Pengetahuan Alam. Penulis pernah menjabat sebagai staff Bidang Kaderisasi dan
72
73
Pengembangan Organisasi HIMABIO pada periode 2003/2004, staff Bidang Kaderisasi dan Pengembangan Organisasi HIMABIO pada periode 2004/2005, staf Departemen Kemuslimahan SKI FMIPA pada periode 2003/2004, Koordinator Keilmiahan Kelompok Studi Jamur dan Tanaman Obat (MUTANT), serta Dewan Perwakilan Angkatan HIMABIO pada periode 2005/2006.
73
