PENGARUH PERLAKUAN PANJANG HARI DAN SUHU TERHADAP PEMBUNGAAN Gomphrena leontopiodes DAN Ptilotus axillaris

PENGARUH PERLAKUAN PANJANG HARI DAN SUHU TERHADAP PEMBUNGAAN Gomphrena leontopiodes DAN Ptilotus axillaris

Oleh Chiqa Naida Graciosa A34304056

PROGRAM STUDI HORTIKULTURA FAKULTAS PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2009

2

PENGARUH PERLAKUAN PANJANG HARI DAN SUHU TERHADAP PEMBUNGAAN Gomphrena leontopiodes DAN Ptilotus axillaris

Skripsi sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Pertanian pada Fakultas Pertanian Institut Pertanian Bogor

Oleh Chiqa Naida Graciosa A34304056

PROGRAM STUDI HORTIKULTURA FAKULTAS PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR 2009

3

RINGKASAN CHIQA NAIDA GRACIOSA. Pengaruh Perlakuan Panjang Hari dan Suhu terhadap Pembungaan Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris. Dibimbing oleh KRISANTINI dan DEWI SUKMA. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui panjang hari dan suhu yang sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris yang merupakan flora endemik Australia. G. leontopiodes dan P. axillaris memiliki potensi untuk dibudidayakan menjadi tanaman hias pot dan tanaman hias bedengan. Informasi budidaya kedua spesies tersebut masih terbatas karena tanaman belum pernah dibudidayakan dan masih belum banyak penelitian yang dilakukan. Penelitian ini adalah sebagai salah satu usaha mengembangkan tanaman G. leontopiodes dan P. axillaris agar dapat menjadi tanaman hias komersial. Hipotesis yang diajukan adalah dari kisaran perlakuan yang diberikan terdapat perlakuan panjang hari dan suhu yang sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan G. leontopiodes dan P. axillaris. Penelitian dilaksanakan pada bulan Maret hingga Agustus 2008 di The University of Queensland Gatton Campus, Australia. Penelitian dilakukan di dalam Research Greenhouse yang memiliki pengatur cahaya dan suhu. Rancangan yang digunakan adalah rancangan acak lengkap (RAL) satu faktor (kombinasi panjang hari dan suhu) yang terdiri dari 16 perlakuan. Masing – masing spesies yaitu G. leontopiodes dan P. axillaris memiliki enam ulangan. Data diolah dengan sidik ragam (uji F) apabila berbeda nyata maka dilakukan uji lanjut dengan duncan multiple range test (DMRT) pada taraf 5%. Panjang hari yang digunakan adalah hari pendek (SD) 11 jam dan hari panjang (LD) 16 jam. Suhu yang digunakan adalah suhu rendah (LT) 25/10˚C (suhu siang/malam) dan suhu tinggi (HT) 35/20˚C. Seluruh kemungkinan kombinasi panjang hari dan suhu dilaksanakan termasuk transfer kondisi, yaitu perlakuan yang diikuti dengan perubahan suhu dan/atau panjang hari setelah minggu ke-8 dan dilakukan selama 4 minggu. Penelitian selesai dilakukan pada minggu ke-12. Hasil penelitian menunjukkan bahwa perlakuan tidak nyata mempercepat inisiasi kuncup bunga dan tidak nyata mempercepat mekarnya bunga

4 G. leontopiodes. Perlakuan juga tidak mempengaruhi persentase tanaman G. leontopidoes yang memiliki bunga mekar di tiap perlakuan, namun perlakuan nyata mempengaruhi total bunga yang dimiliki tanaman dan penampakan tanaman. Perlakuan P8 (25/10˚C LDSD), P4 (35/20˚C LDSD) dan P1 (35/20˚C SD) adalah perlakuan yang memiliki total bunga lebih banyak dari perlakuan yang lain, sedangkan penampakan tanaman terlihat lebih baik pada perlakuan yang memiliki suhu 25/10˚C. Pada suhu 25/10˚C batang tanaman tumbuh tegak, penampakan tanaman tampak lebih kompak dan warna bunga lebih kuat. Perlakuan yang dinilai sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan dan disarankan sebagai perlakuan untuk budidaya G. leontopiodes adalah perlakuan dengan suhu 25/10˚C. Hasil penelitian menunjukkan perlakuan tidak nyata mempercepat inisiasi kuncup bunga dan tidak nyata mempercepat mekarnya bunga P. axillaris, namun perlakuan nyata meningkatkan persentase jumlah tanaman yang memiliki bunga mekar pada tiap perlakuan. Seluruh tanaman pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C dan 25/10˚C → 35/20˚C memiliki bunga mekar, sedangkan penampakan tanaman pada suhu 25/10˚C dan 25/10˚C → 35/20˚C dinilai lebih baik dari penampakan tanaman pada suhu lainnya. Perlakuan yang dinilai sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan dan disarankan sebagai perlakuan untuk budidaya P. axillaris adalah perlakuan dengan suhu 25/10˚C dan suhu 25/10˚C → 35/20˚C.

5 Judul

: PENGARUH PERLAKUAN PANJANG HARI DAN SUHU TERHADAP PEMBUNGAAN Gomphrena leontopiodes DAN Ptilotus axillaris

Nama

: Chiqa Naida Graciosa

NRP

: A34304056

Menyetujui, Dosen Pembimbing Pembimbing I

Pembimbing II

Dr. Ir. Krisantini, MSc. NIP 131 476 604

Dr. Dewi Sukma, SP.MSi. NIP 132 166 488

Mengetahui. Dekan Fakultas Pertanian

Prof. Dr. Ir. Didy Sopandie, MAgr. NIP 131 124 019

Tanggal Lulus:

6 RIWAYAT HIDUP Penulis dilahirkan di Jakarta pada tanggal 31 Januari 1987. Penulis adalah anak pertama dari dua bersaudara dari Bapak Hudiarto Sukarman dan Ibu Evi Indrayani. Pada tahun 1998 penulis lulus SD Islam Al–Azhar Bumi Serpong Damai (BSD), kemudian melanjutkan sekolah di SLTP Islam Al–Azhar BSD dan lulus pada tahun 2001. Penulis kemudian melanjutkan sekolah di SMU Plus Pembangunan Jaya, Bintaro Jaya dan lulus pada tahun 2004. Pada tahun yang sama penulis diterima di IPB melalui jalur Seleksi Penerimaan Mahasiswa Baru (SPMB) sebagai mahasiswa Program Studi Hortikultura, Departemen Agronomi dan Hortikultura, Fakultas Pertanian. Selama masa perkuliahan penulis pernah menjadi anggota Dewan Perwakilan Mahasiswa Fakultas Pertanian masa kepengurusan 2005-2006. Penulis adalah anggota dan pernah menjadi bendahara IAAS (International Association of Student in Agricultural and Related Sciences) Local Committee IPB periode 2005-2006 dan 2006-2007. Penulis pernah ikut serta sebagai panitia dalam berbagai kegiatan dan juga pernah ikut serta sebagai peserta dalam berbagai pelatihan.

7

KATA PENGANTAR Puji syukur penulis panjatkan kehadirat Allah SWT yang telah melimpahkan rahmat dan karunia-Nya sehingga penelitian dan penulisan skripsi dengan judul “Pengaruh Perlakuan Panjang Hari dan Suhu terhadap Pembungaan Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris” dapat diselesaikan. Shalawat serta salam senantiasa penulis curahkan kepada suri tauladan Rasullulah Muhammad SAW. Penelitian ini dapat terlaksana dengan adanya kerjasama antara CNF (Centre for Native Floriculture) The University of Queensland, Australia dan Institut Pertanian Bogor. Penulis ingin menyampaikan terima kasih antara lain, kepada: 1. Dr. Ir. Krisantini, MSc dan Dr. Ir. Dewi Sukma, MSi, sebagai pembimbing skripsi yang telah memberi bimbingan, pengarahan dan bantuan selama masa penelitian dan penulisan skripsi. 2. Dr. Margaret E. Johnston, sebagai pembimbing dari The University of Queensland yang telah memberi kesempatan penelitian, bimbingan, pengarahan dan bantuan. 3. Dr. Ir. Endah R. Palupi, MSc, sebagai penguji skripsi yang telah memberi saran dan masukan untuk perbaikan skripsi. 4. Ir. Megayani Sri Rahayu, MS, sebagai pembimbing akademik yang telah memberi arahan dan nasehat akademik. 5. Kedua orang tua, Hudiarto Sukarman dan Evi Indrayani, serta adik, Bryna Melina Elvia yang selalu mendukung, membantu, menyemangati dan mendoakan. 6. Irvan Setya Adjie dan Diajeng Peni Purnamasari yang telah memberi perhatian, bantuan dan doa. 7. Ade Damayanti dan Sri Wahyuni yang telah menyemangati dan memberi bantuan selama masa penelitian dan penulisan skripsi. 8. Bradley Pearce, Brigitte Pruess dan Chris George yang telah banyak membantu. 9. Teman–teman kelas horti 41 (hortifamily) 10. Teman–teman IAAS LC IPB

8 11. Teman–teman di Wisma Mega I dan teman–teman di Pondok Putri Rahmah 12. Pihak-pihak yang telah membantu dan tidak dapat disebutkan satu per satu. Semoga penelitian ini dapat bermanfaat bagi pengembangan florikultura Indonesia dan semua pihak yang memerlukannya.

Bogor, Januari 2009

Penulis

9

DAFTAR ISI Halaman DAFTAR TABEL ................................................................................... x DAFTAR GAMBAR ............................................................................... xi BAB I. PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang ...................................................................... 1 1.2. Tujuan.................................................................................... 3 1.3. Hipotesis ................................................................................ 3 BAB II. TINJAUAN PUSTAKA 2.1. Botani Tanaman Gomphrena leontopiodes ............................. 2.2. Botani Tanaman Ptilotus axillaris ........................................... 2.3. Fisiologi Pembungaan ............................................................ 2.4. Panjang Hari dan Pembungaan................................................ 2.5. Interaksi Suhu dan Panjang Hari serta Pengaruhnya terhadap Pembungaan ........................................................................... 2.6. Media dan Pupuk ................................................................... BAB III. BAHAN DAN METODE 3.1. Waktu dan Tempat Penelitian ................................................. 3.2. Bahan dan Alat ...................................................................... 3.3. Metode Penelitian .................................................................. 3.4. Pelaksanaan ........................................................................... 3.5. Pengamatan ........................................................................... BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1. Kondisi Umum ...................................................................... 4.2. Daya Berkecambah ................................................................ 4.3. Pembungaan Tanaman ............................................................ 4.4. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar dan Total Bunga .......... 4.5. Jumlah Daun pada Berbagai Waktu Pengamatan..................... 4.6. Penampakan Tanaman ........................................................... 4.7. Perlakuan yang Diduga Sesuai untuk Pertumbuhan dan Pembungaan......................................................................... 4.8. Daerah di Indonesia yang Diduga Sesuai untuk Budidaya.......

4 6 8 10 11 13 16 16 18 21 25 26 27 28 35 38 41 43 45

BAB V. KESIMPULAN DAN SARAN 5.1. Kesimpulan ............................................................................ 47 5.2. Saran ...................................................................................... 48 DAFTAR PUSTAKA............................................................................... 46 LAMPIRAN............................................................................................. 48

10

DAFTAR TABEL Nomor

Halaman Teks

1.

Persentase Daya Berkecambah (DB) Benih pada Penyemaian Pertama dan Kedua........................................................................ 27

2.

Rekapitulasi Sidik Ragam Hasil Percobaan Gomphrenaleontopiodes dan Ptilotus axillaris................................................ 29

3.

Saat Muncul Kuncup Bunga Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris............................................................................ 31

4.

Persentase Tanaman Gomphrena leontopiodes yang Memiliki Bunga Mekar pada Setiap Perlakuan ............................................. 32

5.

Persentase Tanaman Ptilotus axillaris yang Memiliki Bunga Mekar pada Setiap Perlakuan ........................................................ 33

6.

Saat Mekar Bunga Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris 35

7.

Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar, dan Total Bunga Gomphrena leontopiodes .............................................................. 37

8.

Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar, dan Total Bunga Ptilotusaxillaris......................................................................................... 38

9.

Jumlah Daun Gomphrena leontopiodes pada Berbagai Waktu Pengamatan................................................................................... 40

10.

Jumlah Daun Ptilotus axillaris pada Berbagai Waktu Pengamatan 41 Lampiran

1.

Suhu Harian Gatton Tanggal 1-14 April 2008................................ 49

2.

Suhu Bulan Januari-Desember Longreach Tahun 1966-2008......... 49

3.

Analisis Sidik Ragam Pembungaan Gomphrena leontopiodes ....... 50

4.

Transformasi Hasil Sidik Ragam Pembungaan Gomphrenaleontopiodes ................................................................................. 51

5.

Analisis Sidik Ragam Pembungaan Ptilotus axillaris..................... 52 6.

Transformasi Hasil Sidik Ragam Pembungaan Ptilotus axillaris.... 53

11

DAFTAR GAMBAR Nomor

Halaman Teks

1.

a. Bunga Gomphrena leontopiodes Warna Putih; b. Bunga Gomphrena leontopiodes Warna Ungu Kemerahmudaan .............. 4

2.

a. Gomphrena globosa (www.mobot.org); b. Celosia plumosa (www.amigadasflores.blogspot.com); c. Celosia argentea cv. Cristata (www.botanik.uni-karlsruhe.de) ....................................... 5

3.

Ptilotus axillaris Koleksi Nurseri UQ Gatton Campus ................... 6

4.

a. Ptilotus exaltatus cv. Joey (www.tmato.com) b. Ptilotus macrocephalus (www.pinkertonforest.com)................................... 7

5.

Model Sederhana Empat Jalur Kontrol Pembungaan pada Arabidopsis thaliana (Corbesier dan Coupland 2006) ................... 9

6.

a. Mikroskop; b. Kaca Pembesar; c. Pot-pot Kecil yang Sudah Diisi Media Pembibitan .......................................................................... 16

7.

a. Colour Tag; b. Mesin Label; c. LI-400 Data Logger untuk Mengukur Intensitas Cahaya ......................................................... 18

8.

a Benih Gomphrena leontopiodes; b. Benih Ptilotus axillaris ........ 21

9.

a. Perendaman Benih dalam Sterilan Klorin pada Sterilisasi; b. Penanaman Benih .................................................................... 23

10.

Penanaman Tanaman ke dalam Pot................................................ 25

11.

a. Kuncup Bunga Ptilotus axillaris; b. Kuncup Bunga Gomphrena leontopiodes .................................................................................. 29

12.

a. Bunga Ptilotus axillaris mekar; b. Bunga Gomphrena leontopiodes mekar ....................................................................... 34

13.

Tanaman Gomphrena leontopiodes: a. P8 (25/10˚C LDSD); b. P4 (35/20˚C LDSD); c. P1 (35/20˚C SD)................................... 36

14.

Tanaman Ptilotus axillaris perlakuan: a. P8 (25/10˚C SDLD); b. P14 (25/10˚C  35/20˚C LD); c. P13 (25/10˚C  35/20˚C SD) 39

12

Lampiran 1.

a. Bangunan Research Greenhouse Tampak Kanan; b. Bangunan Research Greenhouse tampak kiri ................................................. 53

2.

Layout Percobaan Sebelum Transfer Dilakukan ............................ 54

3.

Layout Percobaan Setelah Transfer Dilakukan .............................. 55

4.

Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a.25/10°C SDLD; b. 25/10°C SD; c. 25/10°C LD; d. 25/10°C LDSD............. 56

5.

Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 35/20°C SDLD; b. 35/20°C SD; c. 35/20°C LD; d. 35/20°C LDSD ............ 56

6.

Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 25/10°C→ 35/20°C SDLD; b. 25/10°C→35/20°C SD; c. 25/10°C→35/20°C LD; d. 25/10°C→35/20°C LDSD................................................... 57

7.

Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 35/20°C→ 25/10°C SDLD; b. 35/20→25/10°C LD; c. 35/20→25/10°C SD; d. 35/20→25/10°C °C LDSD......................................................... 57

8.

Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 25/10°C SD; b. 25°C LDSD; c. 25/10°C LD; d. 25/10°C SDLD ..................................... 58

9.

Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 25/10°C →35/20°C SDLD; b. 25/10°C →35/20°C SD; c. 25/10°C →35/20°C LD; d. 25/10°C →35/20°C LDSD......................................................... 58

10.

Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 35/20°C SDLD; b. 35/20°C SD; c. 35/20°C LD; d. 35/20°C LDSD ......................... 59

11.

Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 35/20°C → 25/10°C SDLD; b. 35/20°C → 25/10°C SD; c. 35/20°C → 25/10°C LD; d. 35/20°C → 25/10°C LDSD........................................................ 59

12.

Tanaman Gomphrena leontopiodes yang berada di luar greenhouse 60

13.

Peta Topografi Indonesia dan Australia.......................................... 60

14.

Peta Iklim Indonesia dan Australia................................................. 61

15.

a. Peta Suhu pada Bulan Januari di Indonesia dan Australia; b. Peta

13 Suhu pada Bulan Juli di Indonesia dan Australia............................ 62

14

BAB I PENDAHULUAN 1.1. Latar Belakang Tanaman hias merupakan komoditas hortikultura yang memiliki keindahan estetika pada bunga, daun, batang maupun bonggol akarnya. Dunia tanaman hias senantiasa memerlukan jenis dan kultivar tanaman hias baru untuk diperkenalkan, karenanya diperlukan usaha untuk menambah keragaman pilihan dan variasi tanaman hias yang ada. Salah satu hal yang dapat dilakukan untuk mendapatkan jenis tanaman hias baru adalah mengembangkan spesies tanaman lokal atau endemik yang memiliki potensi dengan cara memperbaiki sifat dan membudidayakannya yang dikenal dengan domestikasi. Domestikasi diharapkan dapat menambah nilai tanaman dan memungkinkan tanaman untuk dirilis menjadi tanaman hias baru. Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris merupakan flora endemik Australia yang memiliki potensi menjadi tanaman hias pot dan tanaman hias bedengan. Kedua spesies ini termasuk ke dalam anggota famili Amaranthaceae. Saat ini belum terdapat informasi yang memadai tentang budidaya dan syarat tumbuh G. leontopiodes dan P. axillaris karena tanaman belum pernah dibudidayakan dan belum banyak penelitian yang dilakukan, sehingga perlu dilakukan penelitian untuk mempelajari fisiologi pembungaan G. leontopiodes dan P. axillaris. Tanaman merespon keadaan lingkungan yang diterimanya yaitu suhu dan cahaya sebagai sinyal untuk berbunga. Sebagai contoh, penelitian yang dilakukan oleh Porat et al. (1995) pada Celosia plumosa (Amaranthaceae) menunjukkan bahwa hari panjang (16 jam) dapat menghambat pembungaan C. plumosa, sedangkan peningkatan suhu lingkungan dari 17/12°C menjadi 27/22°C dapat meningkatkan laju pertumbuhan, panjang batang, panjang bunga majemuk tanaman serta dapat mempercepat waktu pembungaan. C. plumosa kemudian diklasifikasikan menjadi tanaman hari pendek kualitatif. Menurut Hopkins (2004), tanaman dapat diklasifikasikan menjadi tiga kelompok berdasarkan kebutuhan panjang hari untuk berbunga, yaitu tanaman

15 hari panjang, tanaman hari pendek dan tanaman hari netral. Kebutuhan panjang hari dapat bersifat obligat (kualitatif) apabila tanaman tersebut hanya akan memiliki bunga dibawah kondisi panjang hari tersebut dan fakultatif (kuantitatif) apabila tanaman memiliki bunga lebih cepat di salah satu kondisi panjang hari. Belum diketahui panjang hari yang dibutuhkan oleh G. leontopiodes dan P. axillaris untuk berbunga. Di alam bebas, tanaman G. leontopiodes dapat ditemukan di daerah yang dekat dengan daerah yang bernama Longreach sedangkan tanaman dari genus Ptilotus dapat ditemukan di daerah yang dekat dengan Longreach, di daerah yang bernama Cunnamulla dan Winton, Queensland, Australia. Tanaman G. leontopiodes yang digunakan pada penelitian memiliki bunga berwarna

ungu

kemerahmudaan.

G.

leontopiodes

dinilai

sesuai

untuk

dikembangkan sebagai tanaman hias pot dan tanaman hias bedengan. G. leontopiodes tumbuh di daerah agak kering hingga kering benua Australia sehingga memiliki sifat toleran kering. Anggota genus Gomphrena yang telah umum dikenal adalah Gomphrena globosa, yang bernama lokal bunga kancing atau bachelor’s button. Hopkins (2004) menyebutkan, spesies G. globosa merupakan tanaman hari netral yang artinya tanaman yang pembungaannya tidak dipengaruhi oleh panjang hari. Williams et al. (1989) menyebutkan Ptilotus terdiri dari sekitar 100 spesies tanaman yang sebagian besarnya adalah spesies endemik Australia. Ptilotus tumbuh di wilayah agak kering hingga kering sehingga memiliki sifat toleran kering seperti G. leontopiodes. Harrison et al. (2007) menyatakan P. axillaris adalah tanaman yang memiliki bunga majemuk yang banyak dan bertekstur lembut, berwarna putih atau merah muda, memiliki batang yang tumbuh mendatar di permukaan tanah yang dinilai sesuai menjadi tanaman hias pot gantung. Menurut Johnston dan Joyce (2006) sifat toleran kering yang dimiliki kedua spesies tersebut menjadi nilai tambah karena tanaman tidak memerlukan banyak air dalam hal konsumsi air. Hal tersebut selaras dengan kebijakan pemerintah

negara

bagian

Queensland

yang

memberlakukan

peraturan

penghematan penggunaan air tanah termasuk penggunaan air untuk menyiram di

16 pekarangan. Kedua spesies tersebut dapat dipromosikan sebagai tanaman hias yang disarankan untuk ditanam atau sebagai susbstitusi tanaman hias di pekarangan. Informasi mengenai suhu lingkungan dan kebutuhan panjang hari yang sesuai untuk pembungaan tanaman akan sangat bermanfaat pada saat tanaman diproduksi secara komersial. Informasi tersebut dapat membantu produsen menghasilkan produksi berkelanjutan dalam rangka memenuhi permintaan pasar.

1.2. Tujuan Mengetahui panjang hari dan suhu yang sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan G. leontopiodes dan P. axillaris.

1.3. Hipotesis Dari kisaran perlakuan yang diuji, terdapat perlakuan panjang hari dan suhu yang sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan G. leontopiodes dan P. axillaris.

17 BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1. Botani Tanaman Gomphrena leontopiodes Tanaman Gomphrena leontopiodes termasuk ke dalam: Kingdom

: Plantae

Divisi

: Magnoliophyta

Kelas

: Magnoliopsida

Ordo

: Caryopyllales

Famili

: Amaranthaceae

Genus

: Gomphrena

Spesies

: Gomphrena leontopiodes Pustaka mengenai tanaman G. leontopiodes masih terbatas karena tanaman

G. leontopiodes belum pernah dibudidayakan dan belum banyak diteliti. Nurseri UQ Gatton Campus memiliki tanaman G. leontopiodes dengan bunga berwarna putih dan berwarna ungu kemerahmudaan (Gambar 1). Tanaman G. leontopiodes yang berwarna ungu kemerahmudaan adalah yang digunakan pada penelitian ini. Habitat tanaman G. leontopiodes di alam Australia adalah daerah dengan iklim yang panas dan kering. Menurut Johnston dan Joyce (2006) tanaman G. leontopidoes adalah tanaman yang tidak membutuhkan banyak air.

a

b

Gambar 1. a. Bunga Gomphrena leontopiodes Warna Putih; b. Bunga Gomphrenaleontopiodes Warna Ungu Kemerahmudaan

18 Spesies dari genus Gomphrena yang telah lebih dikenal di Australia adalah Gomphrena globosa (Gambar 2a). Ratnasari (2007) menyebutkan

G.

globosa adalah tanaman hias yang ada di Indonesia dan memiliki nama lokal bunga kancing atau bachelor’s button. Menurut Gilman dan Howe (1999) G. globosa adalah tanaman yang memiliki bunga berbentuk globular yang relatif kecil dan memiliki kultivar dengan bunga berwarna ungu, merah muda, kuning atau putih. Tanaman G. globosa adalah tanaman hias yang biasa digunakan sebagai tanaman bedengan, tanaman dalam pot dan tanaman sela. Keunggulan bunga tanaman G. globosa adalah meskipun kering warna bunga tidak akan pudar sehinga dapat dijadikan hiasan bunga kering di dalam rumah. Tanaman G. globosa dapat tumbuh tinggi mencapai 18 inch (± 46 cm). Tanaman membutuhkan sinar matahari penuh dan media yang tidak terlalu lembab. Perbanyakan tanaman G. globosa dapat dilakukan dengan cara menanam benih langsung ke media. Umumnya, tanaman G. globosa toleran terhadap serangan hama dan penyakit.

a

b

c

Gambar 2. a. Gomphrena globosa (www.mobot.org); b. Celosia plumosa (www.amigadasflores.blogspot.com); c. Celosia argentea cv. Cristata (www.botanik.uni-karlsruhe.de). Menurut Ratnasari (2007) tanaman hias dari famili Amaranthaceae yang terdapat di Indonesia selain G. globosa adalah Celosia plumosa (Gambar 2b) dan Celosia argentea cv. Cristata (Gambar 2c), ketiga tanaman hias tersebut biasa digunakan sebagai tanaman hias bedengan. Tanaman G. globosa dan tanaman C. argentea cv. Cristata juga memiliki kegunaan lain sebagai tanaman obat.

19 2.2. Botani Tanaman Ptilotus axillaris Tanaman Ptilotus axillaris termasuk kedalam: Divisi

: Magnoliophyta

Kelas

: Magnoliopsida

Ordo

: Caryophyllales

Famili

: Amaranthaceae

Genus

: Ptilotus

Spesies

: Ptilotus axillaris

Gambar 3. Ptilotus axillaris Koleksi Nurseri UQ Gatton Campus Ptilotus spp. terdiri dari sekitar 100 spesies tanaman yang sebagian besar adalah spesies endemik Australia yang hidup di kawasan agak kering hingga kering (Williams et al., 1989). Sebagian kecil spesies dari Ptilotus spp. ditemukan di kawasan Tasmania dan Malaysia (Anonim, 2008). Pada umumnya Ptilotus spp. merupakan tanaman herba semusim atau dwimusiman (Bennel dan Williams, 1992), namun juga terdapat Ptilotus spp. yang merupakan tanaman tahunan (Williams dan Jones, 1994). Ptilotus spp. memiliki nama lokal mulla-mulla atau pussy tails karena bentuk bunganya yang menyerupai buntut kucing (Anonim, 2008). Ptilotus spp. memiliki ciri morfologi yang beragam, ada yang memiliki batang tumbuh mendatar di atas permukaan tanah (P. axillaris, Gambar 3), memiliki batang tumbuh tegak (P. exaltatus, Gambar 4a) atau merupakan tanaman semak pendek berkayu (Kok Kiong et al., 2007).

20 Tanaman P. axillaris umumnya berbunga pada saat musim dingin hingga musim semi (Wrigley dan Fagg, 1979 dan Galbraith, 1977 dalam Williams, 1995). Tanaman P. axillaris adalah tanaman yang memproduksi banyak bunga majemuk yang bertekstur lembut, berwarna putih atau merah muda, memiliki batang yang tumbuh mendatar di permukaan tanah dan dinilai potensial untuk dijadikan tanaman hias pot gantung (Harrison et al., 2007). Beberapa spesies Ptilotus spp. memiliki bunga majemuk berukuran besar dan berbulu dinilai menarik sebagai tanaman hias dalam bentuk segar maupun tanaman hias kering (Williams, 1989). Salah satu keunggulan Ptilotus spp. adalah vase life yang panjang dan toleransi sebagian besar Ptilotus spp. pada kondisi lingkungan yang kering (Harrison et al., 2007). P. exaltatus dapat tumbuh dan berbunga dengan baik dibawah suhu harian minimum 20°C dan sinar matahari penuh (Bennel, 1984 tidak dipublikasikan dalam Williams, 1992). Sebuah riset pasar yang dilakukan oleh CNF (Centre for Native Floriculture) diketahui bahwa pasar tanaman hias di Jepang menyukai bentuk dan warna bunga tanaman P. macrocephalus (Gambar 4b) yang berwarna kehijauan (Johnston dan Joyce, 2006).

a

b

Gambar 4. a. Ptilotus exaltatus cv. Joey (www.tmato.com); b. Ptilotus macrocephalus (www.pinkertonforest.com).

Melalui penelitian reproduksi biologi dan kecocokan silang antarspesies Ptilotus spp yang sudah dilakukan, diketahui P. nobilis, P. exaltatus, P. macrocephalus dan P. schwartzii potensial untuk dijadikan bunga potong. P. nobilis dan P. exaltatus juga potensial dijadikan tanaman hias pot seperti

21 halnya P. helipteoides, P. latifolius, P. spicatus dan P. axillaris (Harrison et al., 2007). Selanjutnya melalui penelitian tingkat molekuler yang telah dilakukan, diajukan usulan untuk merubah nama P. exaltatus menjadi P. nobilis karena dinilai merupakan spesies yang sama namun memiliki warna yang berbeda (Kok Kiong et al., 2007). Baru terdapat sejumlah kecil kultivar Ptilotus spp. yang sudah dibudidayakan secara komersial sebagai bunga potong, yaitu P. exaltatus cv. Pink feather dan P. obovatus cv. Cobtus yang merupakan hasil seleksi The University of Sydney Plant Breeding Institute. Kultivar P. exaltatus cv. Musk sticks sudah diperkenalkan kepada usaha nurseri di Australia, namun produksi komersial Ptilotus spp. masih terbatas meskipun budidayanya relatif mudah dilakukan dan bunga yang dihasilkan banyak (Harrison et al., 2007).

2.3. Fisiologi Pembungaan Corbesier dan Coupland (2006) menyebutkan sedikitnya terdapat empat faktor yang mempengaruhi pembungaan. Dua faktor bersifat endogen yaitu giberelin dan autonomous. Dua faktor lain bersifat eksogen yaitu fotoperiode (panjang hari) dan vernalisasi. Empat faktor pembungaan tersebut dapat mengaktifkan gen FLOWERING LOCUS T (FT) dan gen SUPRESSOR OF OVEREXPRESSION OF CO1 (SOC1) atau yang disebut floral integrator. SOC1 dan FT akan bekerja mendorong ekspresi gen APETALA1 (AP1) dan LEAFY (LFY) yang berfungsi dalam pembentukan primordia bunga (Gambar 5). Thomas dan Vince-Prue (1997) dalam Thomas (2006) menyatakan vernalisasi memungkinkan tanaman berbunga setelah tanaman mendapatkan perlakuan suhu rendah, sedangkan fotoperiode memungkinkan terjadinya induksi pembungaan karena adanya sinyal perbedaan panjang hari yang diterima tanaman. Thomas (2006) menyebutkan Arabidopsis thaliana merupakan tanaman hari panjang dan adalah salah satu contoh yang jelas bahwa tanaman merespon perbedaan panjang hari. Menurut Vince-Prue (2002) respon tanaman terhadap panjang hari adalah adanya sinyal pembungaan oleh floral stimulus yang ditranslokasi dari daun ke meristem apikal. Floral stimulus menginduksi

22 pembungaan dan merubah meristem apikal yang vegetatif menjadi generatif. Tanaman kemudian akan membentuk kuncup bunga.

Photoperiodic pathway

Autonomous pathway

Vernalization pathway

Gibberellin pathway

Light quality Circadian clock

FLC GI

CO FT FD Ambient temperature FD

SOC1

AP1 LFY Flower morphogenesis

Gambar 5. Model Sederhana Empat Jalur Kontrol Pembungaan pada Arabidopsisthaliana (Corbesier dan Coupland, 2006). Salisbury (1992) menyebutkan florigen adalah stimulus berupa senyawa kimia yang dapat menginduksi pembungaan tanaman. Konsep florigen pertama kali diperkenalkan oleh seorang peneliti Rusia bernama Chailakhyan pada tahun 1937. Chailakhyan melakukan percobaan menyambung tanaman terinduksi pembungaan pada tanaman tanpa-induksi pembungaan dan diletakkan di bawah kondisi hari panjang non induktif, hasilnya tanaman tanpa-induksi berbunga. Pengamatan yang dilakukan Chailakhyan menunjukkan terdapat senyawa kimia pembawa sinyal induksi pembungaan yang melintasi sambungan yang diduga adalah florigen. Penelitian yang bertujuan untuk mengekstrak florigen dari tanaman sudah banyak dilakukan namun hingga kini belum berhasil. Menurut Corbesier and Coupland (2006) perkembangan lebih lanjut dari banyak penelitian dan tinjauan dalam jurnal mengenai pembungaan dan florigen menduga gen FT adalah florigen yang selama ini dicari oleh para peneliti. Menurut Bernier (1988) dalam Corbesier and Coupland (2006) sinyal induksi pembungaan oleh suhu rendah diterima pucuk tanaman, sedangkan sinyal induksi pembungaan oleh perbedaan panjang hari diterima oleh daun tanaman

23 yang sudah mencapai kompetensi atau kematangan untuk tanggap. Erwin (2005) menambahkan stimulus pembungaan dari daun ke meristem pucuk juga akan diterima setelah meristem pucuk mencapai kompetensi. Salisbury (1992) menyatakan waktu tanaman untuk mencapai kompetensi bergantung pada spesies tanaman tersebut. Sebagai contoh yaitu, tanaman henbane akan dapat tanggap terhadap perlakuan hari panjang setelah tanaman berumur 10 sampai 30 hari, sedangkan Motum dan Goodwin (1986) mengemukakan tanaman kangaroo paw akan dapat berbunga setelah umbi tanaman mencapai ukuran tertentu.

2.4. Panjang Hari dan Pembungaan Iannucci (2008) menyebutkan fotoperiodisme adalah suatu mekanisme merespon durasi, kualitas dan energi radiasi cahaya. Fotoperiodisme membuat tanaman dapat merespon perubahan panjang hari dan berbunga di waktu tertentu dalam setahun. Menurut Hopkins (2004) tanaman hari pendek adalah tanaman yang berbunga lebih awal (bersifat kuantitatif) atau hanya akan berbunga (bersifat kualitatif) apabila periode terang kurang dari titik kritis. Tanaman hari panjang adalah tanaman yang berbunga lebih awal (bersifat kuantitatif) atau hanya akan berbunga (bersifat kualitatif) jika periode terang yang diterima melebihi titik kritis. Tanaman netral adalah tanaman yang pembungaannya tidak dipengaruhi oleh panjang hari. Hempel et al. (1998) dalam Jaeger et al. (2006) menyebutkan meristem pucuk tanaman yang pada awalnya vegetatif dapat berubah menjadi generatif setelah adanya sinyal induksi pembungaan dari hari panjang. Sebagai contoh yaitu, Islam et al. (2005) menyatakan tanaman Lisianthus (Eustoma grandiflorum) akan lebih cepat berbunga pada perlakuan hari panjang, Halevy (2001) menyatakan pembungaan tanaman Rice flower (Ozothamnus diosmofolius) akan diinduksi dan diinisiasi oleh perlakuan hari panjang dan Verheul et al. (2006) menyatakan jumlah bunga majemuk tanaman Stroberi (Fragaria x ananasa) lebih banyak pada perlakuan hari panjang, sedangkan menurut Dawson dan King (1993) tanaman Geraldton wax (Chamelaucium uncinatum) adalah tanaman yang akan terinduksi untuk berbunga pada perlakuan hari pendek.

24 2.4.1. Proses Pembungaan pada Tanaman Hari Panjang Peningkatan ekspresi gen CONSTANS (CO) akan mendorong pembungaan pada tanaman hari panjang. Ekspresi gen CO akan meningkat seiring menuju akhir dari hari panjang dan puncaknya akan dicapai sekitar 12 jam setelah waktu terang dimulai. CO akan tetap tinggi selama waktu gelap hingga waktu terang berikutnya. Rangsangan cahaya kemudian membuat CO mengaktifasi transkripsi gen FLOWERING LOCUS T (FT). FT diregulasi di dalam daun, dimana lalu FT mRNA akan ditranslokasi menuju pucuk dan berinteraksi dengan FLOWERING LOCUS D (FD) menghasilkan inisiasi pembungaan (Thomas, 2006).

2.4.2. Proses Pembungaan pada Tanaman Hari Pendek Pada spesies tanaman hari pendek terdapat komponen umum yang juga terdapat pada A. thaliana (spesies tanaman hari panjang). Komponen ini ikut berperan dalam merespon panjang hari. Gen Hd1 adalah ortholog gen CO dan gen Hd3a adalah ortholog gen FT, keduanya dibutuhkan dalam proses pembungaan spesies hari pendek. Hubungan kerja antara gen Hd1 dan gen Hd3a berkebalikan dengan kerja gen CO dan gen FT yang ditemukan pada A. thaliana. Gen Hd1 diakumulasi hingga akhir dari hari panjang. Rangsangan cahaya pada hari panjang akan menekan transkripsi Hd3a sehingga menghambat pembungaan pada tanaman hari panjang, namun pada hari pendek respon yang akan terjadi adalah sebaliknya, Hd1 akan mendorong transkripsi Hd3a sehingga pembungaan dapat terjadi (Thomas, 2006).

2. 5. Interaksi Suhu dan Panjang Hari serta Pengaruhnya Terhadap Pembungaan Suhu berinteraksi dengan panjang hari dalam mempengaruhi pembungaan tanaman (Salisbury, 1992). Suhu mempengaruhi hampir seluruh reaksi biokimia dalam tubuh tanaman. Pada umumnya suhu yang lebih tinggi akan membuat laju reaksi di dalam tanaman meningkat (Parker, 1999). Selain cahaya dan air, suhu merupakan faktor penting dalam lingkungan yang menentukan pertumbuhan dan perkembangan tanaman (Hopkins, 2004). Fotoperiodisme merupakan mekanisme

25 yang memungkinkan tanaman merespon panjang hari dan berbunga pada waktu yang spesifik akan tetapi karena adanya pengaruh suhu, tahap perkembangan tanaman tidak selalu akan terjadi pada waktu yang sama (Iannucci, 2008). Sejumlah spesies tanaman membutuhkan suhu tertentu untuk berbunga. Beberapa kultivar tanaman krisan memerlukan suhu minimum untuk membentuk kuncup bunga yang normal dan seragam, sedangkan tanaman cineraria (Pericallis x hybrida) membutuhkan suhu dibawah titik kritis untuk dapat berbunga (VincePrue, 2002). Suhu tumbuh yang sesuai untuk tanaman kurang lebih akan sama dengan suhu daerah asal tanaman tersebut. Umumnya, spesies tanaman yang berasal dari daerah subtropis memerlukan perlakuan suhu rendah untuk dapat berbunga yang disebut dengan vernalisasi (Hopkins, 2004). Respon pertumbuhan tanaman dapat berbeda karena dipengaruhi oleh suhu yang diterima tanaman (Salisbury, 1992). Menambah panjang hari atau mengurangi suhu harian rata-rata dapat menghambat pembungaan tanaman kacang hijau (Vigna radiata L.) (Aggarwar dan Poehlman, 1977). Perlakuan suhu 25˚C akan mendorong munculnya kuncup bunga tanaman geraldton wax (Chamelaucium uncinatum), akan tetapi perlakuan suhu 12-15˚C selama 3-6 minggu beserta hari pendek akan menekan induksi pembungaan tanaman (Dawson dan King, 1993). Suhu berpengaruh lebih dominan dibandingkan dengan panjang hari pada pembungaan tanaman rice flower (Ozothamnus diosmifolius). Pada suhu 26/18˚C (suhu siang/suhu malam) tanaman tidak berbunga pada panjang hari apapun, pada suhu 20/12˚C dan 23/15˚C tanaman berbunga hanya di hari panjang namun pada suhu 17/9˚C tanaman berbunga di seluruh panjang hari (Halevy et al., 2001). Panjang hari pada suhu 12,2-17,8˚C dapat membuat jumlah floret per umbel bawang bombay lebih banyak, sebaliknya panjang hari pada suhu 23-24,4˚C mengurangi jumlah floret per umbel (Khokhar, 2007). Suhu tinggi dan panjang hari dapat mempercepat pembungaan tiga spesies legume yaitu sainfolin (Onobrychis viciifolia Scop.), sulla (Hedysarum coronarium L.) dan berseem clover (Trifolium resupinatum L.) (Iannucci, 2008). Tanaman dapat mengalami pertumbuhan maksimum ketika suhu siang hari yang diterima 10-15˚C lebih tinggi dari suhu malam hari. Pada suhu siang hari yang optimum tanaman berfotosintesis dan melakukan respirasi, sedangkan di

26 malam hari tanaman melakukan respirasi dengan laju yang lebih lambat pada suhu yang lebih rendah. Pertumbuhan tanaman dapat terjadi jika laju fotosintesis lebih besar dari laju respirasi (Parker, 2004). Tanaman tomat yang diberi suhu lebih rendah di malam hari tumbuh lebih cepat dan memproduksi buah secara maksimum (Went et al., 1961 dalam Parker, 2004).

2.6. Media dan Pupuk Tanaman hias komersial yang ditumbuhkan di dalam greenhouse menggunakan media yang terdiri dari campuran tanah, peat moss, perlit, pasir, vermikulit, serbuk gergaji, cacahan kayu dan lainnya. Salah satu fungsi utama media adalah menyokong tanaman agar berdiri tegak (sokongan mekanis) (Boodley, 1998). Media terbaik untuk menanam benih adalah yang berpori, mudah diairi, tekstur baik, minimal nutrisi, bebas dari fungi penyebab penyakit, bakteri dan benih tak diinginkan (Parker, 2004). 2.6.1. Peat moss Peat moss adalah hasil bahan tanaman yang tertimbun dalam lapisan tanah selama ratusan tahun (Boodley, 1998). Bobot peat moss relatif ringan, bersifat porus, aerasi dan drainase baik serta dapat dicampur dengan komponen media lain. Peat moss perlu dilembabkan sebelum dipakai karena peat moss yang kering akan sulit dibasahi kembali. Derajat kemasaman peat moss bisa rendah sebesar 4,0-4,5. Campuran media tanam yang menggunakan peat moss disarankan ditambah dengan kapur untuk mengurangi pengaruh pH peat moss yang rendah. Kekurangan dari media peat moss yaitu harga yang relatif mahal dan merupakan sumber daya yang tak terbarukan. Sekarang ini sabut kelapa mulai umum digunakan sebagai alternatif pengganti peat moss (Mason, 2004).

2.6.2. Kulit Kayu Cemara (Pinebark) Media kulit kayu cemara disukai karena kandungan asam organiknya lebih sedikit dibandingkan dengan hardwood bark. Kulit kayu (bark) yang digunakan adalah yang sudah tua atau yang sudah dikompos. Kulit kayu cemara dicacah

27 menjadi ukuran yang berbeda dan dikelompokkan ke dalam grade sesuai dengan ukuran (Mason, 2004).

2.6.3. Vermikulit Vermikulit adalah mineral mika yang merupakan materi tambang dari Afrika Selatan dan Amerika. Vermikulit lembut dan mudah ditekan menjadi tipis. Vermikulit yang digunakan pada budidaya tanaman hortikultura adalah yang telah diproses dan mengembang, vermikulit kemudian akan berbentuk seperti akordion. Vermikulit steril dan sangat ringan. Vermikulit menahan air, udara dan nutrisi dengan sangat baik sehingga ideal untuk hidroponik. Vermikulit dikelompokkan berdasarkan ukuran, semakin besar grade semakin kecil ukurannya. Grade nomor 1 adalah vermikulit yang paling kasar sedangkan grade nomor 4 adalah vermikulit yang paling halus dan umumnya digunakan dalam penyemaian. Dua kegunaan vermikulit yaitu kapasitas tukar kation dalam penyerapan nutrisi dan kemampuannya sebagai buffer. Vermikulit mengandung kalium, magnesium dan kalsium dalam bentuk yang tersedia untuk tanaman (Boodley, 1998 dan Mason, 2004).

2.6.4. Perlit Perlit merupakan media tanam dari mineral tambang yang telah diproses sama seperti vermikulit. Perlit yang sudah diproses kemudian akan mengembang seperti berondong jagung. Perlit yang mengembang berbobot 95-145 kg/m3. Perlit bebas dari organisme pembawa penyakit, serangga, benih gulma dan makhluk hidup lainnya. Perlit berwarna putih dan permukannya kasar. Perlit memiliki pH netral sekitar 7,0–7,5. Di dalam perlit terkandung sejumlah kecil sodium, alumunium dan fluorin yang dapat di serap oleh tanaman. Perlit memiliki kemampuan menahan air lebih baik dari vermikulit akan tetapi perlit juga lebih cepat kering dari vermikulit. Perlit adalah bahan yang relatif keras dan tidak mudah rusak (Boodley, 1998 dan Mason, 2004).

28 2.6.5. Sekam Sekam ber-pH netral, ringan dan berguna meningkatkan drainase dan aerasi. Derajat kemasaman sekam yang dikompos akan menjadi sedikit masam (pH 5,7-6,2). Sekam yang sudah dikompos memiliki kemampuan menahan air lebih baik dibandingkan sekam yang belum dikompos (Mason, 2004). Meski harga media bukan tanah seperti perlit dan vermikulit relatif murah untuk nurseri skala besar, akan tetapi media bukan tanah tersebut kurang populer di Indonesia. Media bukan tanah yang umumnya digunakan di Indonesia adalah arang sekam. Selain harga arang sekam yang lebih murah, arang sekam mudah didapat, mudah dibuat, steril dan inert. Di Indonesia media arang sekam digunakan mulai dari usaha tanaman hias kecil hingga besar.

2.6.6. Pupuk Slow Release Pupuk slow release yang digunakan pada penelitian ini adalah Osmocote®. Osmocote® merupakan pupuk lengkap (N-P-K) yang dilapis dengan lapisan berbahan dasar kacang kedelai. Ketebalan lapisan dan suhu lingkungan mempengaruhi jangka waktu pelepasan unsur hara sampai habis, yang bervariasi mulai dari 3-4 bulan hingga 16-18 bulan (Boodley, 1998 dan Scotts Australia, 2008). Kecepatan pelepasan unsur hara di dalam Osmocote® tergantung pada suhu lingkungan (semakin panas suhu lingkungan, semakin cepat unsur hara dilepas). Osmocote® juga bisa digunakan untuk memupuk tanaman air. Osmocote® memiliki nisbah N-P-K yang beragam. Osmocote® juga memiliki varian dengan formulasi yang sesuaikan untuk kebutuhan tanaman tertentu seperti tanaman bedengan, tanaman air, tanaman pot, tanaman sayur dan tanaman lainnya (Scotts Australia, 2008).

29 BAB III BAHAN DAN METODE 3.1. Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian dilaksanakan pada bulan Maret sampai dengan Agustus 2008. Lokasi penelitian adalah Research Greenhouse, The University of Queensland (UQ) Gatton Campus, Australia, ketinggian 104 m dpl.

3.2. Bahan dan Alat Tanaman berasal dari benih yang dipanen dari tanaman koleksi nurseri UQ Gatton Campus. Benih merupakan hasil penyerbukan terbuka. Peralatan yang digunakan pada saat skarifikasi dan sterilisasi yaitu: amplas, mikroskop (Gambar 6a), kaca pembesar (Gambar 6b), kuas, cawan petri, pinset, sterilan klorin dan air destilata. Peralatan dan bahan yang digunakan pada penyemaian pertama yaitu: pot kecil diameter 50 mm (0,125 l; Gambar 6c), tray, pinset, kuas dan media yang terdiri dari campuran 50% media perlit dan 50% media pembibitan nurseri (peat: perlit: vermikulit 1:1:1) disertai 2 kg pupuk slow release Osmocote mini exact (N:P:K 13:6:16)/m3 atau setara dengan 0,3 g Osmocote mini exact/pot kecil. Benih ditanam di dalam greenhouse tanpa pengatur suhu dan cahaya.

a

b

c

Gambar 6. a. Mikroskop; b. Kaca Pembesar; c. Pot-pot Kecil yang Sudah Diisi Media Pembibitan Peralatan yang digunakan pada saat penyemaian kedua yaitu: kertas saring, cawan petri, 200 mg/l GA3 (67645-1G, Sigma-Aldrich Inc., USA) untuk P. axillaris, alumunium foil dan greenhouse berpengatur cahaya dan suhu (Gambar

30 Lampiran 1). Peralatan dan bahan yang digunakan pada saat menanam benih yang berkecambah yaitu: tray, pinset, kuas, pot kecil diameter 50 mm (0,125 l) dan media pembibitan yang sama dengan penyemaian pertama. Karakterisasi (characterizing) sesuai perlakuan menggunakan: penggaris, colour tag (Gambar 7a), tray dan mesin label (Gambar 7b). Peralatan dan bahan yang digunakan untuk pindah tanam tanaman adalah pot berdiameter 100 mm (0,5 l) dan media pembesaran berupa kompos kulit kayu pinus (composted pine bark) dan cacahan kayu (woodchip). Media pembesaran disertai dengan pupuk dan bahan tambahan (/m3): 1 kg Osmocote Exact (N:P:K 16:5:9,2), habis dilepas 3-4 bulan, 2 kg Osmocote Plus (N:P:K 15:3,9:9,1), habis dilepas 8-9 bulan, 2 kg Nutricote (N:P:K 16:4,4:8,3), habis dilepas 7 bulan, 1,3 kg Osmoform (N:P:K 18:2,2:11), habis dilepas 4 bulan, 1,3 kg Coated Iron: 28% Iron dan 17% Sulphur, 1,2 kg Saturaid dan 1,3 kg Dolomite atau setara dengan jumlah pupuk dan bahan tambahan per volume pot (0,5 l): 0,5 g Osmocote Exact, 1,0 g Osmocote Plus, 1,0 g Nutricote, 0,7 g Osmoform, 0,7 g Coated Iron, 0,6 g Saturaid dan 0,7 g Dolomite. Komposisi media tersebut dibuat oleh nurseri. Media juga digunakan untuk tanaman penelitian lain dan tanaman yang dibudidayakan oleh nurseri. Satu minggu setelah pindah tanam dilakukan penyemprotan fungisida Banrot 1 g/l (bahan aktif Terrazole 3 % dan Thiophanate-methyl 5%). Pengukuran intensitas cahaya dilakukan dengan mengukur photosyntetically active radiation (PAR) menggunakan LI-400 Data Logger (LI-COR® Biosciences, USA, Gambar 7c).

31

a

b

c

Gambar 7. a. Colour Tag; b. Mesin Label; c. LI-400 Data Logger untuk Mengukur Intensitas Cahaya.

3.3. Metode Penelitian Penelitian ini terdiri dari dua percobaan terpisah antara spesies G. leontopiodes dan P. axillaris. Rancangan percobaan pada masing-masing spesies menggunakan rancangan acak lengkap (RAL) satu faktor (kombinasi panjang hari dan suhu). Masing- masing spesies yaitu G. leontopiodes dan P. axillaris memiliki enam ulangan. Panjang hari yang digunakan yaitu, hari pendek (SD) 11 jam dan hari panjang (LD) 16 jam (11 jam cahaya matahari + 5 jam lampu incandescent). Tirai hitam sebagai pengatur panjang hari digunakan untuk menutup ruang tumbuh pada pukul 17.00-06.00. Periode night break pada hari panjang adalah pukul 21.00-02.00 (lima jam) menggunakan lampu incandescent 100W (Sylvania, Indonesia). Suhu yang digunakan yaitu, suhu rendah (LT) 25/10˚C (suhu siang/malam) dan suhu tinggi (HT) 35/20˚C. Pada percobaan terdapat perlakuan yang diikuti dengan transfer perubahan suhu dan/atau panjang hari. Transfer tersebut dilakukan 8 minggu setelah perlakuan dimulai. Terdapat dua layout percobaan, yaitu layout sebelum transfer dilakukan (Gambar Lampiran 1) dan layout percobaan setelah transfer dilakukan (Gambar Lampiran 2). Total perlakuan terdapat 16 perlakuan yaitu sebagai berikut: P1 : HT SD (suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P2 : HT LD (suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P3 : HT SD→LD (suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan

32 8 jam waktu gelap) P4 : HT LD→SD (suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P5 : LT SD (suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P6 : LT LD (suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P7 : LT SD→LD (suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P8 : LT LD→SD (suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P9 : HT→LT SD (suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P10 : HT→LT LD (suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P11 : HT→LT SD→LD (suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P12 : HT→LT LD→SD (suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P13 : LT→HT SD (suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) P14 : LT→HT LD (suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P15 : LT→HT SD→LD (suhu 25/10˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu

33 gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap) P16 : LT→HT LD→SD (suhu 25/10˚C, 16 jam waktu terang dan 8 jam waktu gelap kemudian dipindahkan ke suhu 35/20˚C, 11 jam waktu terang dan 13 jam waktu gelap) Pada masing – masing percobaan, spesies G. leontopiodes dan P. axillaris memiliki 96 satuan percobaan. Model linear rancangan yang digunakan dalam percobaan dengan spesies G. leontopiodes dan spesies P. axillaris adalah: Yi = µ + Μi + εi Yi = Pengamatan perlakuan panjang hari dan suhu ke-i µ = rataan umum Μi = Pengaruh perlakuan panjang hari dan suhu ke-i εi = Pengaruh galat percobaan Untuk mengetahui pengaruh perlakuan, data pengamatan dianalisis dengan sidik ragam (uji F). Jika hasil sidik ragam menunjukkan perbedaan nyata maka dilakukan uji lanjut duncan multiple range test (DMRT) pada taraf 5%.

3.4. Pelaksanaan 3.4.1. Penyiapan Benih 3.4.1.1. Skarifikasi Benih G. leontopiodes (Gambar 8a) sebanyak 320 benih dan P. axillaris (Gambar 8b) sebanyak 480 benih disiapkan. Benih dibersihkan dari perianth (bagian bunga yang terdiri dari sepal dan petal) lalu dilakukan skarifikasi yaitu melukai sedikit lapisan pelindung benih (testa) dengan cara menggosokkan amplas perlahan ke lapisan pelindung benih. Bagian embrio benih dijaga agar tidak rusak karena gesekan. Skarifikasi dilakukan untuk mempermudah terjadinya

34 imbibisi dan perkecambahan. Kaca pembesar atau mikroskop digunakan untuk memastikan testa sudah terkelupas.

a

b

Gambar 8. a Benih Gomphrena leontopiodes; b. Benih Ptilotus axillaris.

3.4.1.2. Sterilisasi

Setelah skarifikasi selesai, benih ditempatkan di dalam cawan petri kemudian direndam dengan larutan klorin 2000 ppm selama 7 menit (Gambar 9a). Cawan petri sesekali digoyangkan untuk memastikan benih secara merata terbilas klorin. Setelah selesai benih ditiriskan kemudian dibilas dengan air destilata sebanyak lima kali.

3.4.1.3. Penyiapan Media Pembibitan Media pembibitan yang terdiri dari peat, perlit dan vermikulit (1:1:1) yang ditambah dengan 2 kg pupuk slow release Osmocote mini exact (N:P:K 13:6:16)/m3 dicampur sedemikian rupa menggunakan mesin. Pot kecil diameter 50 mm (0,125 l) diisi media kemudian dibasahi sampai air keluar dari lubang pot.

3.4.1.4. Penyemaian Pertama Benih G. leontopiodes ditanam dua benih per pot sedangkan benih P. axillaris ditanam tiga benih per pot, menggunakan pinset dan kuas (Gambar 9b).

35 Setelah semua benih selesai ditanam, permukaan media dalam pot dilapis tipis media vermikulit lalu dilembabkan dengan air.

3.4.1.4.1. Pemeliharaan Pot kecil berisi benih disimpan di dalam propagation house sampai berkecambah, penyiraman dilakukan dengan sistem fogging otomatis. Benih yang sudah berkecambah dipindah ke dalam birkdale house (greenhouse tanpa pengatur suhu dan cahaya). Penyiraman selanjutnya dilakukan dengan hand sprayer dan dilaksanakan sesuai kebutuhan berdasarkan pengamatan visual terhadap kelembaban media. Pengendalian hama dilakukan dengan memasang perangkap serangga dan melakukan penyemprotan insektisida satu minggu sekali oleh pekerja nurseri. Karena bibit hasil penyemaian pertama kali tidak mencukupi, sehingga harus dilakukan penyemaian kedua.

3.4.1.6. Penyemaian Kedua Benih G. leontopiodes sejumlah 70 benih dan P. axillaris sejumlah 115 benih disiapkan. Lapisan pelindung benih dikelupas sedikit dengan amplas kemudian disterilisasi. Cawan petri diisi tiga lembar kertas saring kemudian dilembabkan dengan air. Benih diletakkan diatas kertas saring menggunakan pinset dan kuas. Satu cawan petri diisi 20-25 benih. Untuk benih G. leontopiodes digunakan empat cawan petri sedangkan untuk benih P. axillaris digunakan lima cawan petri. Cawan petri ditutup kemudian dibungkus dengan alumunium foil (Gambar 9c) lalu disimpan dalam ruang tumbuh greenhouse kondisi SD 35/20˚C.

a

b

c

Gambar 9. a. Perendaman Benih dalam Sterilan Klorin pada Sterilisasi; b. Penanaman benih; c. Penyemaian Benih dalam Cawan Petri.

36

Satu minggu setelah semai, kertas saring untuk penyemaian P. axillaris diganti dengan yang baru kemudian pada kertas saring dituangkan 2 ml GA3 kosentrasi 200 mg/l untuk membantu perkecambahan. Benih kemudian ditempatkan kembali ke dalam cawan petri berisi kertas saring yang sudah diberi GA3. Kertas saring yang sudah diberi GA3 dibiarkan semalam setelah itu keesokan harinya kertas saring diganti kembali dengan yang baru kemudian dilembabkan dengan air. Selama penyemaian kelembaban kertas saring dipertahankan dengan penyiraman menggunakan hand sprayer.

3.4.1.6.1 Penanaman Bibit Benih yang berkecambah ditanam di dalam pot kecil berisi media yang sama dengan penanaman bibit sebelumnya. Penanaman menggunakan pinset dan kuas kemudian bibit disimpan di dalam ruang tumbuh greenhouse dengan kondisi LD 25/10˚C. 3.4.1.6.2. Pemeliharaan Penyiraman bibit dilakukan menggunakan hand sprayer sesuai kebutuhan berdasarkan kelembaban media. Pengendalian hama dilakukan dengan memasang perangkap serangga dan penyemprotan insektisida satu minggu sekali oleh pekerja nurseri.

3.4.1.7. Perlakuan Perlakuan dilaksanakan pada tanggal 7 Mei 2008 untuk P. axillaris dan 8 Mei 2008 untuk G. leontopiodes. Tanaman ditempatkan di dalam ruang tumbuh yang dilengkapi pengatur suhu dan cahaya sesuai kondisi perlakuan. Pemindahan tanaman ke suhu dan/atau panjang hari lain sesuai perlakuan yang terdapat transfer dilaksanakan 8 minggu setelah perlakuan. Tanaman berada selama empat minggu di dalam kondisi ke-dua. Total lama perlakuan adalah 12 minggu.

37 3.4.1.8. Pindah Tanam 3.4.1.8.1. Penyiapan media dan wadah tanam Media pembesaran yang terdiri dari kompos kulit kayu pinus (composted pine bark), cacahan kulit kayu (woodchip) dan pupuk slow release beserta bahan tambahan lainnya yang sudah disebutkan sebelumnya dicampur sedemikian rupa dengan menggunakan mesin. Wadah tanam yang digunakan adalah pot berdiameter 100 mm (0,5 l).

3.4.1.8.2. Penanaman Tanaman dipindah-tanamkan 14 hari setelah perlakuan panjang hari dan suhu dimulai (HSP). Sepertiga bagian pot diisi media kemudian tanaman dikeluarkan perlahan dari pot kecil, media yang menempel pada akar tidak dibersihkan. Tanaman diposisikan sedemikian rupa berada di tengah pot kemudian ditambahkan media sampai media memenuhi batas atas pot atau kurang lebih sejajar dengan ruas terbawah tanaman (Gambar 11).

Gambar 10. Penanaman Tanaman ke dalam Pot

3.4.1.8.3. Pemeliharaan Tanaman Penyiraman tanaman dilakukan dua hari sekali atau jika media terlihat kurang lembab. Penyiraman dilakukan menggunakan selang air. Pemupukan tanaman dilakukan pada saat 70 HSP dengan Basacote Plus 3M (N:P:K: 16:8:12) 2 g/pot.

38

3.5. Pengamatan Peubah yang diamati meliputi: daya berkecambah benih, tinggi tanaman (cm), jumlah daun, dan lebar tajuk (cm) pada saat satu hari sebelum perlakuan dimulai, saat muncul kuncup bunga beserta jumlah daun tanaman, saat mekar bunga beserta jumlah daun tanaman, tinggi tanaman (cm), jumlah kuncup bunga, jumlah bunga mekar dan jumlah total bunga per tanaman setelah masa percobaan selesai. Pengukuran intensitas cahaya dilakukan satu kali setiap bulan dan rentang waktu dilakukannya pengukuran adalah pukul 11.30-13.00 siang hari.

39 BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Kondisi Umum Penelitian dilakukan saat musim gugur sampai dengan musim dingin pada bulan Maret sampai dengan Agustus 2008. Selama penelitian berlangsung tanaman berada di dalam greenhouse mulai dari berupa kecambah sampai saat penelitian selesai. Rentang intensitas cahaya matahari di dalam greenhouse adalah 111 hingga 1500 µmol/sec.m2 pada saat dilakukannya pengukuran yaitu pada pukul 11.30 – 13.00. Penyemaian benih pertama kali mengalami kesulitan karena daya berkecambah benih yang rendah, diduga salah satu yang mengakibatkan daya berkecambah benih menjadi rendah adalah suhu lingkungan yang rendah karena sudah memasuki waktu musim gugur. Pada saat penyemaian (1-14 April 2008) di dalam birkdale house (greenhouse tanpa pengatur cahaya dan suhu), rata-rata suhu minimum lingkungan adalah 11,3°C dan rata-rata suhu maksimum lingkungan adalah 27,3°C (Tabel 1 Lampiran). Secara umum kondisi tanaman selama penelitian cukup baik, sehat dan tidak terserang hama dan penyakit yang berarti. Serangga yang ada di lingkungan nurseri bukan hama yang merugikan tanaman. Nurseri tetap melaksanakan pengendalian hama dengan melakukan penyemprotan insektisida secara rutin satu kali seminggu baik untuk tanaman di luar maupun di dalam greenhouse. Pengendalian lain yang dilakukan adalah dengan memasang perangkap serangga di dalam greenhouse. Selama masa penyemaian dan pembesaran tanaman, serangga yang ditemukan di dalam greenhouse adalah thrips (famili Thripidae, ordo Thysanoptera) dan shore fly (famili Ephydridae, ordo Diptera). Beberapa saat setelah tanaman G. leontopiodes pada perlakuan P10 dan P12 (dipindahkan dari suhu 35/20˚C ke suhu 25/10˚C) daun tanaman dewasa berubah warna menjadi kekuningan, sedangkan tanaman G. leontopiodes pada perlakuan P9 (dipindahkan dari suhu 35/20˚C ke suhu 25/10˚C), beberapa daun tanaman ujungnya menjadi berwarna merah gelap. Perubahan warna pada daun diduga terjadi karena tanaman mengalami stres dan perkembangan akar yang

40 terganggu akibat perubahan suhu lingkungan. Pada tanaman jagung, warna daun dapat berubah menjadi kekuningan ataupun keunguan karena perkembangan akar yang terganggu oleh faktor suhu udara dan suhu tanah yang lebih rendah serta musim hujan yang membuat tanah menjadi lebih lembab (Elmore dan Abendroth, 2007).

4.2. Daya berkecambah Ralph (2003) menyebutkan testa (lapisan pelindung benih) pada benih Ptilotus spp. dapat menghambat terjadinya imbibisi sehingga perkecambahan benih ikut terhambat. Untuk meningkatkan jumlah benih yang berkecambah, benih terlebih dahulu dibersihkan dari perianth (sepal dan petal). Testa kemudian dikelupas

sedikit

dengan

cara

skarifikasi

menggunakan

amplas

untuk

memudahkan terjadinya imbibisi. Menurut Williams et al (1989), skarifikasi yang dilakukan pada P. exaltatus dapat meningkatkan DB benih menjadi 60-80%.

Tabel 1. Persentase Daya Berkecambah (DB) Benih pada Penyemaian Pertama dan Kedua Penyemaian 1 Spesies Kondisi • Wadah pot kecil • Media 50% perlit dan G. leontopiodes 50% media pembibitan • Dalam propagation house • Setelah berkecambah disimpan dalam greenhouse tanpa P. axillaris pengatur suhu dan cahaya

Penyemaian 2 DB (%)

Kondisi

• Wadah cawan petri • Media Kertas saring 19,7 tiga lapis • Dalam greenhouse SD 35/20˚C • Setelah berkecambah dipindah-tanamkan ke pot kecil disimpan 4,4 dalam greenhouse LD 25/10˚C

DB (%) 78,3

75,7

DB benih pada penyemaian pertama kali yang rendah (Tabel 1) diduga dipengaruhi oleh suhu lingkungan yang rendah (Tabel 1 Lampiran) karena musim sudah memasuki waktu musim gugur. DB benih pada penyemaian kedua kali lebih tinggi yaitu 78,3% (G. leontopiodes) dan 75,7% (P. axillaris) (Tabel 1)

41 diduga dipengaruhi oleh suhu tinggi greenhouse (kondisi SD 35/20˚C) dan oleh pemberian GA3 untuk benih P. axillaris. Penyemaian benih opium poppy (Papaver somniferum) pada suhu yang lebih tinggi dapat mempercepat benih untuk berkecambah. Lisson (2007) menyatakan pada suhu 34˚C benih opium poppy dapat berkecambah lebih cepat dibandingkan benih pada suhu lainnya yaitu kurang dari lima hari. Menurut Hopkins (2004) suhu merupakan faktor yang mempengaruhi pertumbuhan tanaman dengan cara mempengaruhi berbagai reaksi biokimia di dalam tanaman dan pada umumnya peningkatan suhu akan meningkatkan laju pertumbuhan tanaman. Penyemaian kedua menggunakan lot benih yang berbeda dengan lot benih yang digunakan pada penyemaian pertama. Pada penyemaian kedua, tiga lapis kertas saring di dalam wadah cawan petri digunakan sebagai media penyemaian. Benih di dalam cawan petri disemai di dalam ruang tumbuh dengan kondisi SD (11 jam) suhu 35/20˚C. Satu minggu setelah penyemaian kedua dimulai, kertas saring pada cawan petri P. axillaris diganti dengan kertas saring baru kemudian dilembabkan dengan 2 ml zat pengatur tumbuh GA3 kosentrasi 200 mg/l. Kertas saring yang sudah dilembabkan dengan GA3 kemudian digunakan selama semalam untuk meningkatkan DB benih. Menurut Ralph (2003) setelah melakukan skarifikasi daya berkecambah benih dapat ditingkatkan lebih lanjut dengan menambahkan GA3 atau GA4.

4.3. Pembungaan Tanaman Perlakuan

tidak

nyata

mempercepat

inisiasi

kuncup

bunga

G. leontopiodes, tidak nyata mempercepat perkembangan kuncup bunga sampai bunga G. leontopiodes mekar dan juga tidak nyata mempengaruhi persentase jumlah tanaman yang berbunga pada setiap perlakuan. Perlakuan nyata meningkatkan jumlah bunga mekar, meningkatkan jumlah total bunga G. leontopiodes dan perlakuan sangat nyata meningkatkan jumlah daun saat muncul kuncup bunga, meningkatkan jumlah daun saat mekar bunga dan meningkatkan jumlah kuncup bunga G. leontopiodes (Tabel 2).

42 Perlakuan tidak nyata mempercepat inisiasi kuncup bunga P. axillaris dan tidak nyata mempercepat perkembangan kuncup bunga sampai bunga P. axillaris mekar. Perlakuan nyata meningkatkan jumlah daun saat muncul kuncup bunga dan juga nyata meningkatkan jumlah daun saat bunga P. axillaris mekar. Perlakuan sangat nyata mempengaruhi persentase jumlah tanaman yang berbunga pada setiap perlakuan, sangat nyata meningkatkan jumlah bunga mekar, sangat nyata meningkatkan jumlah kuncup bunga dan sangat nyata meningkatkan jumlah total bunga P. axillaris (Tabel 2).

Tabel 2. Rekapitulasi Sidik Ragam Hasil Percobaan Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris Peubah Saat muncul kuncup bunga Jumlah kuncup bunga Jumlah daun saat muncul kuncup bunga Saat mekar bunga Persentase jumlah tanaman berbunga Jumlah bunga mekar Jumlah daun saat bunga mekar Jumlah total bunga

Spesies G. leontopiodes P. axillaris tn tn ** * ** tn tn tn tn ** * ** * tn * **

Keterangan : tn : tidak berbeda nyata pada uji F 5% * : berbeda nyata pada uji F 5 % ** : berbeda sangat nyata pada uji F 1%

4.3.1. Saat Muncul Kuncup Bunga 4.3.1.1. Saat Muncul Kuncup Bunga Gomphrena leontopiodes Saat muncul kuncup bunga adalah peubah pengamatan yang menunjukkan jumlah hari yang dibutuhkan tanaman untuk membentuk kuncup bunga G. leontopiodes pertama yang dapat terlihat (Gambar 11a). Tanggal ketika kuncup bunga G. leontopiodes yang pertama dapat dilihat dicatat lalu jumlah hari dihitung sejak tanggal benih ditanam sampai tanggal kuncup bunga pertama terlihat, sehingga didapatkan jumlah hari yang dibutuhkan tanaman sampai kuncup bunga pertama dapat terlihat. Hasil pengamatan menunjukkan perlakuan tidak nyata mempercepat saat muncul kuncup bunga G. leontopiodes (Tabel 3). Diduga

43 panjang hari dan suhu sebagai perlakuan tidak mempengaruhi lama waktu tanaman G. leontopiodes membentuk kuncup bunga yang pertama, sehingga tanaman dapat menghasilkan kuncup bunga dalam waktu yang tidak berbeda.

4.3.1.2. Saat Muncul Kuncup Bunga Ptilotus axillaris Pengamatan peubah saat muncul kuncup bunga pada tanaman P. axillaris, menggunakan metode yang sama dengan pengamatan peubah saat muncul kuncup bunga pada tanaman G. leontopiodes. Tanggal ketika kuncup bunga P. axillaris pertama terlihat (Gambar 11b) dicatat dan kemudian jumlah hari yang dibutuhkan tanaman sampai kuncup pertama terlihat didapatkan dari menghitung tanggal benih ditanam sampai pada tanggal kuncup bunga muncul yang tercatat. Hasil pengamatan menunjukkan perlakuan tidak nyata mempercepat saat munculnya kuncup bunga P. axillaris (Tabel 3). Diduga panjang hari dan suhu yang merupakan perlakuan tidak mempengaruhi tanaman P. axillaris dalam mempercepat kemunculan kuncup bunga pertama yang terlihat, sehingga tanaman pada perlakuan yang berbeda dapat menghasilkan kuncup bunga dalam waktu yang tidak berbeda.

b Gambar 11. a. Kuncup Bunga Gomphrena leontopiodes; b. Kuncup Bunga Ptilotus axillaris

44 Tabel 3. Saat Muncul Kuncup Bunga Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris Perlakuan Panjang hari Suhu (˚C) (jam)

Kode Perlakuan

(25/10 (25/10 (25/10 (25/10

P5 P6 P7 P8 P13 P14 P15 P16 P1 P2 P3 P4 P9 P10 P11 P12

SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata (25/10  35/20 SD) (25/10  35/20 LD) (25/10  35/20 SDLD) (25/10  35/20 LDSD) Rata-rata (35/20 SD) (35/20 LD) (35/20 SDLD) (35/20 LDSD) Rata-rata (35/20  25/10 SD) (35/20  25/10 LD) (35/20  25/10 SDLD) (35/20  25/10 LDSD) Rata-rata

Saat muncul Saat muncul kuncup bunga kuncup bunga P. axillaris G. leontopiodes HST 108,3 a 46,5 a 104,3 a 45,2 a 89,0 a 47,5 a 91,8 a 47,8 98,4 46,8 98,8 a 47,2 a 97,2 a 48,3 a 90,3 a 47,2 a 105,3 a 44,7 a 97,9 46,9 89,8 a 48,5 a 103,7 a 51,0 a 96,5 a 47,5 a 93,4 a 52,0 a 95,9 49,8 91,5 a 53,8 a 94,4 a 52,7 a 109,5 a 50,8 a 97,2 a 47,7 a 98,2 51,3

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%. HST: hari setelah tanam.

4.3.2. Persentase Tanaman yang Memiliki Bunga Mekar 4.3.2.1. Persentase Tanaman Gomphrena leontopiodes yang Memiliki Bunga Mekar Banyak tanaman yang memiliki bunga yang mekar di setiap perlakuan dihitung pada saat pengamatan terakhir kemudian ditampilkan dalam bentuk peubah persentase tanaman yang memiliki bunga mekar. Perlakuan tidak nyata mempengaruhi persentase jumlah tanaman G. leontopiodes yang memiliki bunga

45 mekar pada tiap perlakuan (Tabel 4). Terdapat satu perlakuan dengan persentase jumlah tanaman yang memiliki bunga mekar sebanyak 100% yaitu perlakuan P1.

Tabel 4. Persentase Tanaman Gomphrena leontopiodes yang Memiliki Bunga Mekar pada Setiap Perlakuan Kode perlakuan

Perlakuan Suhu (˚C)

Panjang Hari (jam)

P5 P6 P7 P8

(25/10 (25/10 (25/10 (25/10

SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata

P13 P14 P15 P16

(25/10  35/20 (25/10  35/20

SD) LD)

(25/10  35/20 (25/10  35/20

SDLD) LDSD)

Persentase tanaman berbunga (%)

P1 P2 P3 P4

(35/20 (35/20 (35/20 (35/20

SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata

66,6 a 16,6 a 33,3 a 66,6 a 45,8 33,3 a 66,6 a 50 a 16,6 a 41,6 100,0 a 66,6 a 16,6 a 50,0 a 58,3

P9 P10 P11 P12

(35/20  25/10 (35/20  25/10 (35/20  25/10 (35/20  25/10

SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata

33,3 a 66,6 a 66,6 a 50,0 a 54,1

Rata-rata

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%.

4.3.2.2. Persentase Tanaman Ptilotus axillaris yang Memiliki Bunga Mekar Persentase jumlah tanaman P. axillaris yang memiliki bunga mekar pada tiap perlakuan sangat nyata dipengaruhi oleh perlakuan. Tanaman P. axillaris pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C yaitu P5, P6, P7 dan P8 serta tanaman P. axillaris pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C  35/20˚C yaitu P13, P14, P15 dan P16 memiliki persentase tanaman dengan bunga mekar lebih tinggi dari perlakuan lain yaitu sebesar 100% (Tabel 5). Diduga perlakuan dengan suhu yang

46 yang lebih rendah (25/10˚C) lebih sesuai untuk perkembangan kuncup bunga tanaman P. axillaris.

Tabel 5. Persentase Tanaman Ptilotus axillaris yang Memiliki Bunga Mekar pada Setiap Perlakuan Kode perlakuan P5 P6 P7 P8 P13 P14 P15 P16 P1 P2 P3 P4 P9 P10 P11 P12

Perlakuan Suhu (˚C) Panjang Hari (Jam) (25/10 SD) (25/10 LD) (25/10 SDLD) (25/10 LDSD) Rata-rata (25/10  35/20 SD) (25/10  35/20 LD) (25/10  35/20 SDLD) (25/10  35/20 LDSD) Rata-rata (35/20 SD) (35/20 LD) (35/20 SDLD) (35/20 LDSD) Rata-rata (35/20  25/10 SD) (35/20  25/10 LD) (35/20  25/10 SDLD) (35/20  25/10 LDSD) Rata-rata

Persentase berbunga (%) 100 a 100 a 100 a 100 a 100 100 a 100 a 100 a 100 a 100 50 abc 75 ab 100 a 66,7 abc 72,9 50 bc 50 bc 33,3 c 66,8 abc 50,0

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%.

Menurut Wrigley dan Fagg (1979) dan Galbraith (1977) dalam Williams (1995), bunga tanaman P. axillaris umumnya mekar pada saat musim dingin hingga musim semi. Pada saat musim dingin, suhu lingkungan di tempat tanaman P. axillaris berasal (Longreach) berkisar antara 23,7˚C di siang hari dan antara 8,2˚C di malam hari, kemudian suhu berangsur-angsur akan menjadi hangat pada musim semi. Suhu akan menjadi berkisar antara 36,1˚C pada siang hari dan berkisar antara 19,9˚C pada malam hari (Tabel Lampiran 2). Kondisi suhu 25/10˚C pada perlakuan, menyerupai kondisi suhu lingkungan pada saat musim dingin, sedangkan kondisi suhu 25/10˚C  35/20˚C

47 menyerupai kondisi suhu lingkungan pada saat musim semi. Menurut Hopkins (2004) suhu tumbuh yang sesuai untuk tanaman kurang lebih akan sama dengan suhu lingkungan di tempat tanaman berasal.

4.3.3. Saat Mekar Bunga 4.3.3.1. Saat Mekar Bunga Gomphrena leontopiodes Saat mekar bunga adalah peubah pengamatan untuk menunjukkan jumlah hari yang dibutuhkan tanaman untuk menghasilkan bunga mekar pertama. Pengamatan peubah saat mekar bunga dilakukan dengan cara mencatat tanggal pada saat minimal terdapat satu bunga majemuk yang sudah mekar, pengamatan dilakukan untuk setiap tanaman. Jumlah hari sejak benih tanaman tersebut ditanam sampai bunga pertama mekar dihitung kemudian menjadi jumlah hari yang dibutuhkan tanaman untuk mengahasilkan bunga mekar pertama. Hasil pengamatam menunjukkan perlakuan tidak nyata mempercepat saat mekarnya bunga tanaman G. leontopiodes (Tabel 6).

Gambar 12. a. Bunga Gomphrena leontopiodes mekar; b. Bunga Ptilotus axillaris mekar.

4.3.3.2. Saat Mekar Bunga Ptilotus axillaris Pengamatan peubah saat mekar bunga pada tanaman P. axillaris sama dengan pengamatan peubah saat mekar bunga pada tanaman G. leontopiodes. Tanggal pada saat terdapat minimal satu bunga majemuk P. axillaris yang sudah

48 mekar dicatat, kemudian dihitung jumlah hari sejak benih tanaman ditanam sampai terlihat bunga pertama yang mekar, sehingga didapatkan jumlah hari yang dibutuhkan tanaman P. axillaris untuk memiliki bunga mekar atau saat mekar bunga P. axillaris. Hasil pengamatan menunjukkan perlakuan tidak nyata mempercepat saat mekarnya bunga tanaman P. axillaris (Tabel 6).

Tabel 6. Saat Mekar Bunga Gomphrena leontopiodes dan Ptilotus axillaris Perlakuan Kode Perlakuan

Suhu (˚C)

P2 P4 P7 P8

(25/10 (25/10 (25/10 (25/10

P10 P12 P14 P15

(25/10  35/20 (25/10  35/20 (25/10  35/20 (25/10  35/20

P1 P3 P5 P6

(35/20 (35/20 (35/20 (35/20

P9 P11 P13 P16

(35/20  25/10 (35/20  25/10 (35/20  25/10 (35/20  25/10

Panjang hari (Jam) SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata SD) LD) SDLD) LDSD) Rata-rata

Saat mekar bunga G. leontopiodes (HST) 115,5 a 106,0 a 111,5 a 115,0 a 112,0 121,0 a 107,0 a 112,5 a 109,0 a 112,4 106,2 a 113,0 a 124,8 a 110,0 a 113,5 121,0 a 120,5 a 114,0 a 121,0 a 119,1

Saat mekar bunga P. axillaris (HST) 96,6 a 89,0 a 98,3 a 97,0 a 95,2 80,3 a 80,5 a 89,8 a 94,5 a 86,3 86,5 a 94,7 a 97,7 a 96,3 a 93,8 87,7 a 85,5 a 93,7 a 90,0 a 89,2

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%. HST: hari setelah tanam

4.4. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar dan Total Bunga 4.4.1. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar dan Total Bunga Gomphrena leontopiodes Perlakuan

sangat

nyata

meningkatkan

jumlah

kuncup

bunga

tanaman G. leontopiodes (Tabel 7). Tanaman G. leontopiodes pada perlakuan P8 (25/10˚C LDSD) menghasilkan jumlah kuncup bunga paling banyak yaitu

49 sebanyak 7,7 kuncup bunga per tanaman. Secara umum, tanaman G. leontopiodes pada suhu 25/10˚C memiliki jumlah kuncup paling banyak dengan rata-rata 3,9 kuncup bunga per tanaman. Perlakuan nyata meningkatkan jumlah bunga tanaman G. leontopiodes yang mekar (Gambar 12a, Tabel 7). Tanaman G. leontopiodes pada perlakuan P1 (35/20˚C SD) memiliki jumlah bunga mekar paling banyak yaitu sebanyak 3,0 bunga per tanaman. Secara umum, tanaman G. leontopiodes pada suhu 35/20˚C memiliki jumlah bunga mekar paling banyak dengan rata-rata 1,7 bunga per tanaman.

Gambar 13. Tanaman Gomphrena leontopiodes: a. P8 (25/10˚C LDSD); b. P4 (35/20˚C LDSD); c. P1 (35/20˚C SD). Perlakuan nyata meningkatkan jumlah total bunga G. leontopiodes (Tabel 7). Tanaman pada perlakuan P8 (25/10˚C LDSD) menghasilkan total bunga per tanaman paling banyak yaitu 7,8 bunga per tanaman. Terdapat tiga kondisi perlakuan yang memiliki jumlah total bunga lebih banyak dari perlakuan yang lain yaitu P8 (25/10˚C LDSD, Gambar 14a), P4 (35/20˚C LDSD, Gambar 14b) dan P1 (35/20˚C SD, Gambar 14c). Pada perlakuan P8 jumlah kuncup bunga lebih banyak dari jumlah bunga mekar, sedangkan pada perlakuan P4 dan P1 jumlah bunga yang mekar lebih banyak dari perlakuan P8. Suhu yang lebih tinggi diduga dapat menginduksi mekarnya kuncup bunga G. leontopiodes. Julien Von Sachs dalam Salisbury (1992) menyebutkan perlakuan suhu yang lebih tinggi (10-17°C) dapat menginduksi mekarnya bunga tulip sedangkan suhu yang lebih rendah (37°C) dapat menyebabkan bunga menutup.

50 Tabel 7. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar, dan Total Bunga Gomphrena leontopiodes Kode Perlakuan P5 P6 P7 P8 P13 P14 P15 P16 P1 P2 P3 P4 P9 P10 P11 P12

Perlakuan Suhu (˚C) Panjang hari (Jam) (25/10 SD) (25/10 LD) (25/10 SDLD) (25/10 LDSD) Rata-rata (25/10  35/20 SD) (25/10  35/20 LD) (25/10  35/20 SDLD) (25/10  35/20 LDSD) Rata-rata (35/20 SD) (35/20 LD) (35/20 SDLD) (35/20 LDSD) Rata-rata (35/20  25/10 SD) (35/20  25/10 LD) (35/20  25/10 SDLD) (35/20  25/10 LDSD) Rata-rata

Jumlah bunga Kuncup Mekar Total 3,8 bc 0,2 b 4,0 abc 1,2 bc 0,2 b 1,3 c 2,8 bc 0,3 b 3,2 abc 7,7 a 0,2 b 7,8 a 3,9 0,2 4,1 1,8 bc 0b 1,8 bc 4,0 bc 1,3 ab 5,3 abc 2,5 bc 2,0 ab 4,5 abc 3,7 bc 0b 3,7 abc 3,9 1,3 3,8 4,0 bc 3,0 a 7,3 a 1,7 bc 1,8 ab 3,8 abc 0,7 c 0b 0,7 c 5,0 ab 2,0 ab 7,0 ab 2,9 1,7 4,7 1,3 bc 0,3 b 1,7 c 3,2 bc 1,2 ab 4,3 abc 1,0 c 0,2 b 1,2 c 2,2 bc 0,7 b 2,8 abc 1,9 0,6 2,5

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%.

4.4.2. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar dan Total Bunga Ptilotus axillaris Perlakuan nyata mempengaruhi jumlah kuncup bunga P. axillaris (Tabel 8). Tanaman pada perlakuan suhu P12 (35/20˚C  25/10˚C LDSD, Gambar 15a) memiliki jumlah kuncup bunga paling banyak yaitu 102,3 kuncup bunga per tanaman. Secara umum tanaman pada perlakuan dengan suhu 35/20˚C memiliki jumlah kuncup bunga lebih banyak dari perlakuan dengan suhu lain, rata-rata jumlah kuncup bunga pada perlakuan dengan suhu 35/20˚C adalah 74,9 kuncup bunga per tanaman. Perlakuan nyata menambah jumlah bunga P. axillaris yang mekar (Gambar 12b, Tabel 8). Jumlah bunga mekar paling banyak terdapat pada tanaman perlakuan P13 (25/10˚C  35/20˚C SD, Gambar 15b) yaitu 45,2 bunga mekar per tanaman. Secara umum tanaman pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C

51  35/20˚C memiliki jumlah bunga mekar lebih banyak dari perlakuan lain, rataratanya adalah 17,9 bunga mekar per tanaman.

Tabel 8. Jumlah Kuncup Bunga, Bunga Mekar, dan Total bunga Ptilotus axillaris Kode Perlakuan P5 P6 P7 P8 P13 P14 P15 P16 P1 P2 P3 P4 P9 P10 P11 P12

Perlakuan Panjang hari Suhu (˚C) (Jam) (25/10 SD) (25/10 LD) (25/10 SDLD) (25/10 LDSD) Rata-rata (25/10  35/20 SD) (25/10  35/20 LD) (25/10  35/20 SDLD) (25/10  35/20 LDSD) Rata-rata (35/20 SD) (35/20 LD) (35/20 SDLD) (35/20 LDSD) Rata-rata (35/20  25/10 SD) (35/20  25/10 LD) (35/20  25/10 SDLD) (35/20  25/10 LDSD) Rata-rata

Jumlah bunga Kuncup 58,3 abc 38,3 c 92,7 ab 57,7 abc 61,8 56,5 abc 75,7 abc 80,2 abc 40,3 c 63,2 52,5 bc 85,3 abc 95,3 ab 66,3 abc 74,9 65,0 abc 53,3 bc 52,5 bc 102,3 a 68,3

Mekar

Total

3,8 c 2,5 c 23,5 bc 36,7 ab 16,6 45,2 a 8,3 c 14,0 bc 4,2 c 17,9 21,7 bc 17,6 bc 8,0 c 4,3 c 12,9 10,8 c 17,3 bc 5,3 c 9,5 c 10,7

103,0 abcd 101,3 abcd 117,7 a 101,3 abcd 105,8 113,7 ab 90,7 abcd 89,7 abcd 109,0 abc 100,8 62,5 cde 66,2 bcde 82,2 abcd 30,5 e 60,4 58,3 de 78,5 abcd 72,8 abcde 78,2 abcd 72,0

Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%.

Jumlah bunga mekar yang lebih banyak diduga disebabkan pengaruh dari faktor suhu pada perlakuan yang mungkin sesuai untuk perkembangan bunga P. axillaris, sehingga jumlah bunga yang dihasilkan pada suhu 25/10˚C  35/20˚C lebih banyak. Jumlah bunga mekar yang lebih sedikit secara umum terdapat pada tanaman di perlakuan dengan suhu 35/20˚C  25/10˚C, rata-rata jumlah bunga mekar pada suhu 35/20˚C  25/10˚C adalah 10,7 bunga per tanaman. Sedikitnya jumlah bunga yang mekar diduga disebabkan oleh yang suhu tinggi pada perlakuan, suhu tinggi dapat membuat proses mekarnya bunga terhambat karena tanaman mempertahankan bunga untuk tidak membuka dengan tujuan agar air di dalam tanaman tidak cepat hilang karena transpirasi.

52 Perlakuan nyata meningkatkan jumlah total bunga P. axillaris per tanaman. Tanaman pada perlakuan P7 (25/10˚C SDLD, Gambar 15c) menghasilkan jumlah total bunga paling banyak yaitu 138,3 bunga per tanaman. Secara umum tanaman pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C memiliki jumlah total bunga yang lebih banyak dibandingkan dengan tanaman pada perlakuan suhu lainnya, rata-ratanya adalah 105,8 bunga per tanaman.

a

b

c

Gambar 14. Tanaman Ptilotus axillaris perlakuan: a. P12 (35/20˚C  25/10˚C LDSD); b. P13 (25/10˚C  35/20˚C SD); c. P7 (25/10˚C SDLD).

4.5. Jumlah Daun pada Berbagai Waktu Pengamatan 4.5.1. Jumlah Daun Gomphrena leontopiodes pada Berbagai Waktu Pengamatan Perlakuan

sangat

nyata

meningkatkan

jumlah

daun

tanaman

G. leontopiodes pada saat kuncup bunga muncul (Tabel 9). Tanaman G. leontopiodes pada perlakuan P2 (35/20˚C LD) memiliki jumlah daun saat muncul kuncup bunga paling banyak yaitu 173,2 helai daun per tanaman, sedangkan, tanaman pada perlakuan P9 (35/20˚C  25/10˚C SD) memiliki jumlah daun saat muncul kuncup bunga paling sedikit yaitu 30,8 helai daun per tanaman. Perlakuan

sangat

nyata

meningkatkan

jumlah

daun

tanaman

G. leontopiodes pada saat bunga mekar (Tabel 9). Tanaman pada perlakuan P1 (35/20˚C SD) memiliki jumlah daun saat bunga mekar paling banyak yaitu 190,0 helai daun per tanaman, sedangkan tanaman pada perlakuan P3 (35/20˚C SDLD) memiliki jumlah daun saat bunga mekar paling sedikit yaitu 17,5 helai daun per tanaman. Tidak terdapat korelasi antara jumlah daun dengan jumlah bunga G. leontopiodes (nilai P = 0,79).

53 Tabel 9. Jumlah Daun Gomphrena leontopiodes pada Berbagai Waktu Pengamatan Perlakuan Kode Perlakuan

P5

(25/10

Panjang hari (jam) SD)

P6

(25/10

P7 P8

Suhu (˚C)

Jumlah daun saat awal percobaan

Jumlah daun saat muncul kuncup bunga

Jumlah daun saat bunga mekar

Jumlah daun saat akhir percobaan

6,2

87,5 bcd

78,0

bc

109,2

LD)

6,2

54,3 d

19,0

c

86

(25/10

SDLD)

6,5

34,5 c

36,8

bc

86,8

(25/10

LDSD)

6,7

59,7 d

73,0

bc

104,8

Rata-rata

6,4

59,0

51,7

96,7

P13

(25/10  35/20

SD)

5,7

43,6 d

61,5

bc

128,3

P14

(25/10  35/20

LD)

6,3

68,5 cd

88,0 abc

101,2

P15

(25/10  35/20

SDLD)

5,8

57,3 d

66,0

bc

127

P16

(25/10  35/20

LDSD)

6,7

67,2 cd

37,0

bc

127,3

Rata-rata

6,1

59,2

63,1

121,0

P1

(35/20

SD)

7,5

144,5 ab

190,0 a

236,8

P2

(35/20

LD)

5,7

173,2 a

121,8 abc

183,8

P3

(35/20

SDLD)

6,2

40,3

17,5

c

227,7

P4

(35/20

LDSD)

7

Rata-rata

d

139,3 abc

122,3 abc

223,2

6,6

124,3

113,0

217,9

30,8

P9

(35/20  25/10

SD)

7

bc

127,5

P10

(35/20  25/10

LD)

7,2

139,3 abc

150,0 ab

193,7

P11

(35/20  25/10

SDLD)

6

143,5 ab

119,7 abc

166

P12

(35/20  25/10

LDSD)

6

86,5 cbd

74,5

154,2

125,0

99,2

Rata-rata

6,6

d

52,7

bc

160,2

Keterangan: angka yang diberi huruf berbeda pada kolom yang sama menunjukkan berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%.

4.5.2. Jumlah Daun Ptilotus axillaris pada Berbagai Waktu Pengamatan Perlakuan nyata meningkatkan jumlah daun tanaman P. axillaris pada saat muncul kuncup bunga dan saat bunga mekar. Tanaman perlakuan P6 (25/10˚C LD) memiliki jumlah daun saat muncul kuncup bunga paling banyak yaitu 17,7 helai daun per tanaman. Tanaman perlakuan P15 (25/10˚C  35/20˚C SDLD) memiliki jumlah daun saat mekar bunga paling banyak yaitu 217,3 helai daun per tanaman. Tidak terdapat korelasi antara jumlah daun dengan jumlah bunga P. axillaris (nilai P = 0,25).

54 Tabel 10. Jumlah Daun Ptilotus axillaris pada Berbagai Waktu Pengamatan Kode Perlakuan

Perlakuan Suhu (˚C)

Panjang hari (Jam)

Jumlah daun saat awal percobaan

Jumlah daun saat muncul kuncup bunga

Jumlah daun saat mekar bunga

Jumlah daun saat akhir percobaan

SD) 3,8 14,3 abc 159,5 ab 170,3 LD) 3,7 17,7 a 159,8 ab 182,7 SDLD) 4,8 12,7 abc 151,7 ab 188,5 LDSD) 3,7 186,8 14,5 abc 157,0 ab Rata-rata 4 14,8 132 182,1 (25/10  35/20 SD) 4,5 P13 10,3 bc 145,2 ab 232,3 (25/10  35/20 LD) 4,3 P14 15,3 abc 101,5 ab 185,8 (25/10  35/20 SDLD) 4,7 P15 16,2 ab 217,3 a 208,7 (25/10  35/20 LDSD) 4,2 P16 267,7 14,7 abc 103,7 ab 14,1 141,9 Rata-rata 4,4 223,6 (35/20 SD) 4,7 P1 15,8 abc 114,8 ab 238,2 (35/20 LD) 4,2 P2 12,7 abc 164,8 ab 225,8 (35/20 SDLD) 3,8 P3 10,0 bc 144,3 ab 366 (35/20 LDSD) 3,7 P4 182 13,3 abc 74,0 b Rata-rata 4,1 13,0 124,5 253 (35/20  25/10 SD) 3,7 P9 13,8 abc 93,0 b 172,7 (35/20  25/10 LD) 4 P10 17,5 a 103,2 ab 237,3 (35/20  25/10 SDLD) 4 P11 13,8 abc 149,3 ab 219,3 (35/20  25/10 LDSD) 4 P12 247,8 9,5 c 135,8 ab Rata-rata 3,9 13,7 120,3 219,3 Keterangan: angka yang diberi huruf yang sama pada kolom yang sama menunjukkan tidak berbeda nyata pada uji DMRT pada taraf 5%. P5 P6 P7 P8

(25/10 (25/10 (25/10 (25/10

4.6. Penampakan Tanaman 4.6.1. Penampakan Tanaman Gomphrena leontopiodes Perlakuan mempengaruhi penampakan tanaman G. leontopiodes dinilai berdasarkan pengamatan visual terhadap tanaman. Penampakan tanaman diduga lebih dipengaruhi oleh suhu dibandingkan dengan panjang hari. Secara umum, G. leontopiodes pada suhu 25/10°C memiliki batang tanaman yang tumbuh tinggi dan tegak serta penampakan yang kompak (Gambar Lampiran 4), sedangkan G. leontopiodes pada suhu 35/20°C memiliki batang yang lebih panjang, lemas dan tanaman tampak keluar dari pot sehingga penampakan tanaman terlihat kurang baik (Gambar Lampiran 5). Pengaruh suhu juga terlihat pada tanaman dengan perlakuan transfer suhu, pada transfer suhu 25/10°C → 35/20°C (Gambar Lampiran 6) batang tanaman lemas dan menekuk sedangkan transfer suhu 35/20°C → 25/10°C (Gambar Lampiran 7) batang tanaman terlihat tumbuh tidak tegak. Warna bunga yang

55 terdapat pada perlakuan dengan suhu 25/10°C lebih kuat dibandingkan dengan warna bunga yang terdapat pada perlakuan dengan suhu 35/20°C. Penampakan tanaman G. leontopiodes yang dinilai paling baik dari keseluruhan perlakuan adalah tanaman pada suhu 25/10°C. Pada saat pelaksanaan penelitian, pernah dilakukan pemangkasan pada tanaman G. leontopiodes milik nurseri, batang tanaman G. leontopiodes yang memiliki bunga kemudian dijadikan hiasan di dalam vas dan ternyata warna bunga G. leontopiodes tidak pudar meski batang tanaman sudah kering, hal ini menjadi potensi lain G. leontopiodes yaitu dapat dijadikan bunga hias kering.

4.6.2. Penampakan Tanaman Ptilotus axillaris Sama halnya dengan G. leontopiodes, perlakuan juga mempengaruhi penampakan tanaman P. axillaris. Secara umum, tanaman P. axillaris pada suhu 25/10°C (Gambar Lampiran 8) memiliki jumlah daun lebih sedikit dan batang lebih pendek yang membuat jarak antar bunga dekat sehingga penampakan tanaman terlihat kompak. Tanaman pada suhu 25/10°C → 35/20°C (Gambar Lampiran 9) memiliki batang yang juga pendek, jumlah bunga tanaman lebih banyak dari tanaman pada suhu 25/10°C (Tabel 8) sehingga bunga tampak bergerombol membuat tanaman terlihat menarik dan kompak. Kebalikan dengan tanaman P. axillaris pada suhu 25/10°C, tanaman P. axillaris yang berada pada suhu 35/20°C (Gambar Lampiran 10) dan tanaman P. axillaris pada transfer suhu 35/20°C → 25/10°C (Gambar Lampiran 11) memiliki batang yang lebih tebal dan lebih panjang, daun lebih tebal serta jumlah bunga yang lebih sedikit. Batang tanaman yang lebih panjang diduga disebabkan suhu yang lebih tinggi yang dapat mendorong pertumbuhan vegetatif tanaman. Daun tanaman yang lebih tebal diduga sebagai bentuk adaptasi tanaman terhadap suhu tinggi untuk mencegah transpirasi yang berlebih. Penampakan tanaman P. axillaris yang dinilai paling baik adalah tanaman yang terdapat pada suhu 25/10°C dan 25/10°C → 35/20°C. Pengaruh kebalikan dari perlakuan suhu dan panjang hari juga ditemui pada spesies Poa bulbosa. Ofir dan Kigel (2006) menyebutkan pada hari panjang

56 hanya sejumlah kecil P. bulbosa yang berhasil berbunga, sedangkan pada hari pendek sebagian besar P. bulbosa berbunga meski bergantung pada suhu yang diberikan. Suhu tinggi menekan inisiasi pembungaan P. bulbosa dan sebaliknya suhu rendah dinilai sebagai suhu yang dapat mendorong inisiasi pembungaan P. bulbosa.

4.7. Perlakuan yang Diduga Sesuai untuk Pembungaan dan Pertumbuhan Tanaman 4.7.1. Perlakuan yang Diduga Sesuai untuk Pembungaan dan Pertumbuhan Gomphrena leontopiodes Saat muncul kuncup bunga tanaman G. leontopiodes tidak dipengaruhi oleh perlakuan (Tabel 3), begitu pula halnya dengan saat mekar bunga tanaman G. leontopiodes (Tabel 6), namun jumlah total bunga tanaman G. leontopiodes nyata dipengaruhi oleh perlakuan. Diduga inisiasi pembungaan G. leontopiodes dipengaruhi oleh perlakuan pada jumlah bunga yang dihasilkan per tanaman. Jumlah total bunga untuk tanaman pada perlakuan P8 (LDSD 25/10°C), P1 (35/20°C SD) dan P4 (25/10°C LD) (Tabel 7) lebih banyak jika dibandingkan dengan tanaman pada perlakuan yang lain. Persentase jumlah tanaman G. leontopiodes yang berbunga per perlakuan tidak berbeda nyata (Tabel 4), namun terdapat satu perlakuan yang memiliki persentase berbunga 100% yaitu P1. Jumlah total bunga per tanaman, lebih banyak terdapat pada tanaman di perlakuan P8, P1 dan P4 (Tabel 7). Tanaman pada perlakuan P4 dan P1 memiliki jumlah bunga mekar lebih banyak dari P8, namun warna bunga tanaman kurang kuat dan penampakan tanaman terlihat kurang kompak. Tanaman G. leontopiodes koleksi nurseri yang berada di luar greenhouse (Gambar Lampiran 12) tetap dapat berbunga meski suhu lingkungan rendah karena sudah memasuki musim dingin, hal ini menandakan bahwa suhu rendah dapat sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan G. leontopiodes. Pada penelitian, tanaman G. leontopiodes yang berada pada suhu 25/10°C juga dapat tumbuh dengan baik. Penampakan tanaman G. leontopiodes pada suhu 25/10°C

57 juga lebih baik dari penampakan tanaman pada suhu 35/20°C dan suhu 35/20°C → 25/10°C, yaitu memiliki warna bunga yang lebih kuat, batang yang tumbuh tegak dan terlihat kompak. G. leontopiodes dapat tumbuh dan berbunga pada kisaran suhu yang diberikan dalam perlakuan, akan tetapi kualitas bunga dan penampakan tanaman akan menurun pada suhu yang lebih tinggi. Suhu 25/10°C pada perlakuan P5, P6, P7 dan P8 diduga adalah suhu yang lebih sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan tanaman G. leontopiodes. Diantara perlakuan P5, P6, P7 dan P8, perlakuan P5 (25/10°C SD) atau P6 (25/10°C LD) adalah perlakuan yang lebih mudah untuk diterapkan karena tidak memerlukan transfer suhu atau panjang hari.

4.7.2. Perlakuan yang Diduga Sesuai untuk Pembungaan dan Pertumbuhan Ptilotus axillaris Saat muncul kuncup bunga P. axillaris tidak dipengaruhi oleh perlakuan (Tabel 3), begitu pula halnya dengan saat mekar bunga P. axillaris (Tabel 6), namun perlakuan nyata mempengaruhi jumlah total bunga per tanaman P. axillaris, diduga perlakuan mempengaruhi inisiasi pembungaan P. axillaris dalam hal meningkatkan jumlah bunga yang dihasilkan oleh tanaman. Persentase jumlah tanaman P. axillaris yang memiliki bunga mekar, jumlah bunga mekar dan total bunga P. axillaris lebih banyak terdapat pada tanaman dengan perlakuan dengan suhu 25/10°C dan 25/10°C → 35/20°C (Tabel 5 dan Tabel 8), sedangkan penampakan tanaman pada suhu 25/10°C dan 25/10°C → 35/20°C juga terlihat lebih menarik dan kompak dibandingkan dengan tanaman pada perlakuan dengan suhu 35/20°C dan 35/20°C → 25/10°C (Gambar Lampiran 8 dan Gambar Lampiran 9). Tanaman P. axillaris dapat tumbuh dan berbunga pada kisaran suhu yang diberikan dalam perlakuan, akan tetapi penampakan tanaman akan kurang menarik jika tanaman berada pada suhu yang lebih tinggi. Suhu 25/10°C dan 25/10°C → 35/20°C diduga sebagai suhu yang sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan P. axillaris, namun jumlah bunga mekar dapat lebih banyak apabila tanaman diberikan suhu 25/10°C → 35/20°C. Suhu rendah diduga melambatkan

58 laju respirasi dan meningkatkan timbunan fotosintat sehingga pada saat suhu menjadi hangat pembungaan dapat terjadi serempak. Pemberian perlakuan suhu rendah juga diperlukan untuk pembungaan tanaman azalea. Pettersen dan Kristoffersen (1969) menyebutkan azalea membutuhkan suhu rendah selama beberapa saat sebelum kemudian diberikan suhu yang lebih tinggi untuk mendapatkan mekarnya bunga yang lebih cepat dan serempak. Perlakuan yang diduga sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan P. axillaris adalah perlakuan P5, P6, P7, P8, P13, P14, P15 dan P16, diantara perlakuan tersebut perlakuan tanpa adanya transfer seperti P5 (25/10°C SD) dan P6 (25/10°C LD).

4.8. Daerah di Indonesia yang Diduga Sesuai untuk Budidaya Benih G. leontopiodes dan P. axillaris yang digunakan pada penelitian ini berasal dari tanaman koleksi nurseri UQ Gatton Campus. Nurseri UQ Gatton Campus menyeleksi kedua spesies tersebut dari tanaman yang ada di alam yaitu dari daerah bernama Longreach, daerah di sebelah barat Queensland. Longreach memiliki ketinggian 192 m dpl dan tempat pelaksanaan penelitian yaitu Gatton memiliki ketinggian 104 m dpl. lewat peta topografi (Gambar Lampiran 13) diketahui daerah tanaman berasal dan sekitarnya memiliki ketinggian antara 50 – 200 m dpl. Di Indonesia ketinggian 50 – 200 m dpl terdapat disepanjang sebelah utara Pulau Jawa, sepanjang bagian tengah Pulau Sumatra, sebelah selatan Pulau Kalimantan dan sebelah selatan Propinsi Papua. Lewat peta iklim (Gambar Lampiran 14), diketahui iklim tempat benih tanaman penelitian berasal adalah iklim yang kering dan panas, sedangkan Indonesia memiliki iklim tropis dengan dua musim yaitu musim hujan dan musim kemarau. Lewat peta suhu di bulan Januari (Gambar Lampiran 15a) suhu di daerah benih tanaman berasal berkisar lebih dari 26,8°C, tidak berbeda jauh dengan Indonesia yang sebagian besar wilayahnya pada bulan Januari memiliki kisaran suhu lebih dari 26,8°C dan terdapat sedikit daerah memiliki suhu 14,2°C 26,7°C yaitu didaerah dataran tinggi yang dekat ataupun merupakan daerah pegunungan. Lewat peta suhu di bulan Juni (Gambar Lampiran 15b), suhu bulan Juni di Australia sudah memasuki musim dingin, suhu di daerah benih berasal

59 turun menjadi antara 14,2°C -18,9°C, sedangkan suhu di sebagian besar wilayah Indonesia saat bulan Juni juga turun menjadi 23,9-26,7°C di dataran rendah dan 14,2°C -23,8°C untuk dataran yang lebih tinggi. Gomphrena globosa terdapat di Indonesia dan sudah dimanfaatkan sebagai tanaman hias, umumnya G. globosa digunakan sebagai tanaman bedengan. G. globosa dapat ditanam dan tumbuh pada dataran rendah seperti Jakarta hingga dataran tinggi seperti puncak. Tanaman G. leontopiodes pada penelitian ini dapat tumbuh baik pada suhu yang sejuk (25°C) dan di alam terdapat pada wilayah dengan ketinggian 50 – 200 m dpl. G. leontopiodes diduga mampu untuk tumbuh pada daerah dataran rendah hingga dataran tinggi seperti halnya G. globosa, sehingga diduga dapat dibudidayakan di Indonesia pada daerah dataran rendah sampai dataran tinggi. P. axillaris pada penelitian dapat tumbuh baik pada suhu yang lebih rendah 25°C dan suhu transfer 25°C → 35°C, di alam P. axillaris terdapat pada wilayah dengan ketinggian 50 – 200 m dpl. P. axillaris diduga dapat dibudidayakan di Indonesia pada ketinggian 50 – 200 m dpl dan dengan suhu lingkungan yang sejuk. Pada penelitian ini P. axillaris dapat lebih banyak menghasilkan bunga mekar apabila diberi perlakuan suhu yang lebih rendah (± 8 minggu) kemudian dipindah ke suhu yang lebih hangat (± 4 minggu). Penerapan perlakuan transfer suhu dapat dilakukan dengan membudidayakan tanaman di dalam greenhouse dengan suhu terkontrol, suhu transfer ke suhu yang lebih hangat dapat membuat mekar bunga lebih serempak.

60

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN 5.1. Kesimpulan Panjang hari 11 jam dan 16 jam serta suhu 35/20˚C dan 25/10˚C tidak nyata

mempercepat

inisiasi

kuncup

bunga

dan

perkembangan

bunga

G. leontopiodes sampai bunga mekar. Panjang hari 11 jam dan 16 jam serta suhu 35/20˚C dan 25/10˚C juga tidak mempengaruhi secara nyata persentase jumlah tanaman G. leontopiodes yang memiliki bunga mekar pada tiap perlakuan, namun mempengaruhi inisiasi bunga dalam hal jumlah bunga yang dihasilkan yang ditunjukkan dengan jumlah total bunga per tanaman yang secara nyata dipengaruhi oleh perlakuan. Perlakuan P8 (25/10˚C LDSD), P4 (35/20˚C LDSD) dan P1 (35/20˚C SD) memiliki total bunga lebih banyak dari perlakuan yang lain. Tanaman G. leontopiodes pada P8 memiliki batang yang tumbuh tegak dan penampakan kompak serta warna bunga yang lebih kuat. Perlakuan dengan suhu 25/10˚C dinilai lebih sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan tanaman G. leontopiodes, perlakuan dengan suhu 25/10˚C adalah P5 (25/10˚C SD), P6 (25/10˚C LD), P7 (25/10˚C SDLD) dan P8 (25/10˚C LDSD). Panjang hari 11 jam dan 16 jam serta suhu 35/20˚C dan 25/10˚C tidak nyata mempercepat inisiasi kuncup bunga dan mekarnya bunga P. axillaris, namun nyata meningkatkan persentase tanaman P. axillaris yang memiliki bunga mekar pada tiap perlakuan dan mempengaruhi inisiasi bunga dalam hal mempengaruhi jumlah bunga yang dihasilkan. Tanaman P. axillaris memiliki persentase jumlah bunga mekar paling tinggi 100% pada perlakuan dengan suhu 25/10˚C yaitu P5 (25/10˚C SD), P6 (25/10˚C LD), P7 (25/10˚C SDLD), dan P8 (25/10˚C LDSD) dan perlakuan dengan suhu 25/10˚C → 35/20˚C yaitu P13 (25/10˚C → 35/20˚C SD), P14 (25/10˚C → 35/20˚C LD), P15 (25/10˚C → 35/20˚C SDLD) dan P16 (25/10˚C → 35/20˚C LDSD). Penampakan tanaman pada perlakuan dengan suhu 25/10°C dan 25/10°C → 35/20°C terlihat lebih kompak dan rata-rata total bunga tanaman lebih besar dibandingkan dengan perlakuan dengan suhu lainnya. Perlakuan dengan suhu 25/10°C dan suhu

61 25/10°C → 35/20°C (perlakuan P5, P6, P7, P8, P13, P14, P15 dan P16) dinilai lebih sesuai untuk pertumbuhan dan pembungaan tanaman P. axillaris.

5.2. Saran Budidaya G. leontopiodes memerlukan suhu harian yang sejuk (25/10˚C) seperti pada perlakuan. Panjang hari tidak mempengaruhi inisiasi pembungaan G. leontopiodes, sehingga perlakuan suhu 25/10°C tanpa transfer panjang hari seperti P5 (25/10°C SD) atau P6 (25/10°C LD) dapat diterapkan pada budidaya G. leontopiodes. Budidaya P. axillaris dapat dilakukan pada suhu yang sejuk (25/10˚C) atau dengan menerapkan pemberian suhu yang sejuk (25/10˚C, selama 8 minggu) kemudian diikuti dengan pemberian suhu yang lebih hangat (35/20˚C, selama 4 minggu), memberikan suhu yang lebih hangat dapat menambah jumlah bunga P. axillaris yang mekar. Panjang hari tidak mempengaruhi inisiasi pembungaan P. axillaris, sehingga perlakuan tanpa transfer panjang hari seperti P5 (25/10°C SD), P6 (25/10°C LD), P13 (25/10°C  35/20°C SD) atau P14 (25/10°C  35/20°C LD) dapat diterapkan untuk budidaya P. axillaris.

62

DAFTAR PUSTAKA Anonim. 2008. Ptilotus. http://en.wikipedia.org [29 April 2008]. Australian Government Bureau of Metereology. 2008. Gatton, Qld – April 2008 – Daily Weather Observations. http://www.bom.gov.au [22 Desember 2008]. Australian Government Bureau of Metereology. 2008. Climate statistics for Australian locations Long Reach. http://www.bom.gov.au [22 Desember 2008]. Bennell, M. R. and R. R. Williams. 1992. Cultivation of the pink mulla-mulla, Ptilotus exaltatus Nees. 2. Nutrition and growth regulation. Scientia Horticulturae 51: 107-110. Bernier, G. 1988. The control of floral evocation and morphogenesis. In L. Corbesier and G. Coupland. 2006. The quest for florigen: a review of recent progress. Journal of Experimental Botany 57: 3395-3403 Boodley, J.W. 1998. The Commercial Greenhouse 2nd edition. Delmar Publishers: New York. 624 p. Corbesier, L and G. Coupland. 2006. The quest for florigen: a review of recent progress. Journal of Experimental Botany 57: 3395-3403. Dawson, I. A and R. W. King. 1993. Effect of environment and applied chemicals on the flowering and form of Geraldton Wax (Chamelaucium uncinatum Schauer). Scientia Horticulturae 54: 223- 246. Elmore, R. and L. Abendroth. 2007. Plant coloring differences based on management and weather. http://www.ipm.iastate.edu [27 Desember 2008]. Erwin, J. 2005. Factors Affecting Flowering in Ornamental Plants, p. 87-115. In M. B. McDonald and F. Y. Kwong (Eds). Flower Seeds: Biology and Technology. CAB International. Cambridge. 372 p. Galbraith, J. 1977. A Field Guide to the Wild Flower at South-East Australia. In R. R. Williams. 1995. Australian Native Flower. The University of Queensland. Gilman, E. F and T. Howe. 1999. Gomphrena globosa Globe Amarantha. http://edis.ifas.ufl.edu [26 December 2008]. Halevy, A. H., E. Shlomo and M. Shvartz. 2001. Environmental factors affecting flowering of rice flowers (Ozothamus diosmifolius Vent.). Scientia Horticulturae 87: 303-309.

63 Harrison, D., K. K. Lee, M. Perkins, S. Orzek, R. R. Williams and M. Johnston. 2006. Domestication of the Australian native flower Ptilotus spp. for cutflower and potted colour. In: C. F. Mercer (Ed.). Proceedings of the 13th Australasian Plant Breeding Conference; Christchurch, 18-21 April 2006. New Zealand: NZ Grasslands Association. Hempel, F. D., D. C. Zambryski and L. J. Feldman. 1998. Photoinduction of flower identity in vegetatively biased primordial. In K. E. Jaeger, A. Graf and P.A. Wiege. 2006. The control of flowering in time and space. Journal of Experimental Botany 57: 3415-3418. Hopkins, W. G. and N. P. A. Hüner. 2004. Introduction to Plant Physiology 3rd edition. John Wiley & Sons Inc. New Jersey. 560 p. Iannucci, A., M. R. Terribile and P. Martiniello. 2008. Effects of temperature and photoperiod on flowering time of forage legumes in a Mediteranian environment. Field Crops Research 106: 156-162. Islam, N., G. G. Patil and H. R GislerØd. 2005. Effect of photoperiod and light integral on flowering and growth of Eustoma grandiflorum (Raf.) Shinn. Scientia Horticulturae 103: 441–451. Jonhston, M. and D. Joyce. 2006. The untapped potential of native plant. Australasian Science. November/December 2006: 30-33. Kok Kiong, L., D. K. Harrison, M. E. Johnston and R. R Williams. 2007. Molecular taxonomic clarification of Ptilotus exaltatus and Ptilotus nobilis (Amaranthaceae). Australian Systematic Botany 20: 72-81. Lisson, S. N. 2007. Temperature and photoperiod effects on the growth and development of opium poppy (Papaver somniferum). Australian Journal of Experimental Agriculture 47: 742-748. Mason, J. 2004. Nursery Management Second Edition. Landlinks Press: Collingwood, Australia. 320 p. Motum, G. J and P. B. Goodwin. 1987. The control of flowering in kangaroo paw (Anigozanthos spp.). Scientia Horticulturae 32: 123-133. Ofir, M. and J. Kigel. 2006. Opposite effect of daylength and temperature on flowering and summer dormancy of Poa bulbosa. Annals of Botany 97: 659-666. Parker, R. 2004. Introduction to Plant Science-Revised. Delmar Publishers. New York. 752 p. Pettersen, H. and T. Kristoffersen. 1969. The effect of daylength and temperature

64 on flowering in the Azalea cultivars ‘Red Wing’ and ‘Reinhold Ambrosius’. In: E. Stromme (Ed). ISHS Acta Horticulturae 14: Symposium on Flower Regulation in Florists Crops. Norway: ISHS. 1969. Porat, R., E. Shlomo and A. H. Halevy. 1995. Horticultural techniques to improve Celosia plumosa growth for cut flowers. Scientia Horticulturae 63: 209214. Ralph, R. 2003. Growing Australian Native Plant from Seed. Murray Ralph/ Bushland Horticulture. Fitzroy, Australia. 156 p. Ratnasari, J. 2007. Galeri Bunga Tanaman Hias. Penebar Swadaya. Jakarta. 216 p. Salisbury, F. B and C. W Ross. 1992. Fisiologi Tumbuhan Jilid 3. Penerbit ITB. Bandung. 343 p. Thomas, B and D. Vince-Prue. 1997. Photoperiodism in Plants. In B. Thomas. 2006. Light signal and flowering. Journal of Experimental Botany 57: 3387-3393. Thomas, B. 2006. Light signal and flowering. Journal of Experimental Botany 57: 3387-3393. Vince-Prue, D. 2002. Seasons and Weather, p. 181-201. In D. S. Ingram, D. Vince-Prue and P. J Gregory (Eds). Science and The Garden. WileyBlackwell Publishing. UK. 290 pp Verheul, M. J., A. SØnsteby and S. O. Grimstad. 2006. Interaction of photoperiod, temperature, duration of short-day treatment and plant age of flowering of Fragaria x ananassa Duch. cvs. Korona. Scientia Horticulturae107: 164170. Williams, R. R., K. C. Holliday and M. R. Bennel. 1989. Cultivation of the pink mulla mulla, Ptilotus exaltatus Nees. 1. Seed germination and dormancy. Scientia Horticulturae 40: 267-274. Williams, R. R. and N. Jones. 1994. Progress with propagation and floral biology of Ptilotus species. Third National Workshop for Australian Native Flowers; University of Queensland Gatton College. Gatton: University of Queensland. Wrigley, J. W and M. Fagg. 1979. Australian Native Plant. In R. R. Williams. 1995. Australian Native Flower. The University of Queensland. Williams, R. R. 1995. Australian Native Flower. The University of Queensland.

65

LAMPIRAN

66 Tabel 1. Suhu Harian Gatton Tanggal 1-14 April 2008 April 2008 Suhu Maksimum (°C) Suhu Minimum (°C) Tanggal 1 28,2 9,1 2 28,5 13,1 3 29,0 9,8 4 26,6 10,9 5 26,1 10,8 6 24,8 11,5 7 26,3 10,2 8 25,2 10,0 9 22,6 12,7 10 26,6 10,3 11 28,5 12,2 12 29,5 11,7 13 29,4 12,5 14 30,8 13,9 Rata-rata 27,3 11,3 Sumber: Australian Government Bureau of Metereology http://www.bom.gov.au [20 Desember 2008].

Tabel 2. Rata-rata Suhu pada Bulan Januari-Desember di Longreach (1966-2008) Musim Panas Gugur Dingin Semi

Bulan Desember Januari Februari Maret April Mei Juni Juli Agustus September Oktober November

Rata-rata Suhu (°C) Minimum Maksimum 22,0 37,4 23,1 37,1 22,6 35,9 16,4 34,7 16,4 31,4 12,0 27,0 8,2 23,7 7,0 23,5 8,5 25,9 12,4 30,2 17,0 34,0 19,9 36,1

Sumber: Australian Government Bureau of Metereology http://www.bom.gov.au [20 Desember 2008]

67 Tabel 3. Analisis Sidik Ragam Pembungaan Gomphrena leontopiodes Variabel

SK

DB

JK

KT

F hitung

Pr

Saat Muncul Kuncup Bunga

Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total

15 56 71 15 32 47 15 80 95

3479.99 8311.78 11613.77 1807.39 3063.08 4870.47 5.00 19.00 24.00

231.99 145.24

1.60

0.10

KK (%) 12.30

120.49 95.72

1.26

0.28

8.57

0.33 0.23

1.40

0.17

97.46

Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total

15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95

196607.40 265264.83 461872.24 209036.32 592502.16 801538.48 290.98 641.16 932.15 79.00 230.33 309.33 448.57 1165.83 1614.40

13107.16 3315.81

3.95

0.0001

67.24

13935.75 7406.27

1.88

0.03

105.28

19.39 8.01

2.42

0.0059

97.41

5.26 2.87

1.83

0.04

203.61

29.90 14.57

2.05

0.02

100.95

Saat Mekar Bunga Presentase Jumlah Tanaman Berbunga Jumlah Daun Saat Muncul Kuncup Bunga Jumlah Daun Saat Bunga Mekar Jumlah Kuncup Bunga Jumlah Bunga mekar Jumlah Total Bunga

68 Tabel 4. Transformasi Hasil Sidik Ragam Pembungaan Gomphrena leontopiodes Variabel Persentase Jumlah Tanaman Berbunga Jumlah Daun Saat Muncul Kuncup Bunga Jumlah Daun Saat Bunga Mekar Jumlah Kuncup Bunga Jumlah Bunga Mekar Jumlah Total Bunga

SK Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total

DB 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95

JK 1.09 4.14 5.2 858.24 1547.54 2405.78 952.02 3083.78 4035.80 30.39 71.78 102.17 17.67 39.35 57.03 38.68 92.96 131.64

KT 0.07 0.05

F hitung 1.40

Pr 0.16

KK (%) 19.12

57.21 19.34

2.96

0.0009

56.62

63.46 38.54

1.65

0.07

98.79

2.02 0.89

2.26

0.01

70.93

1.17 0.49

2.40

0.0065

148.63

2.57 1.16

2.22

0.01

70.35

69 Tabel 5. Analisis Sidik Ragam Pembungaan Ptilotus axilaris Variabel Saat Muncul Kuncup Bunga Saat Mekar Bunga Persentase Jumlah Tanaman Berbunga Jumlah Daun Saat Muncul Kuncup Bunga Jumlah Daun Saat Bunga Mekar Jumlah Kuncup Bunga Jumlah Bunga Mekar Jumlah Total Bunga

SK Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total

DB 15 80 95 15 63 78 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95

JK 635.62 4994.33 5629.95 2177.40 6706.03 8883.44 4.82 9.16 13.98 539.23 1694.50 2233.73 114234.95 588240.66 70247.62 34269.95 97080.00 131349.95 13518.57 26165.16 38683.73 48974.23 102279.16 151253.40

KT 42.37 62.42

F hitung 0.68

Pr 0.79

KK (%) 16.24

145.16 106.44

1.36

0.19

11.17

0.32 0.11

2.81

0.0015

41.13

35.94 21.18

1.7

0.06

33.14

7615.66 7353.00

1.04

0.42

63.08

2284.66 1213.50

1.88

0.03

51.97

901.23 314.56

2.87

0.0012

121.87

3264.94 1278.48

2.55

0.0037

42.20

70 Tabel 6. Transformasi Hasil Sidik Ragam Pembungaan Ptilotus axillaris Variabel Persentase Jumlah Tanaman Berbunga Jumlah Daun Saat Muncul Kuncup Bunga Jumlah Daun Saat Bunga Mekar Jumlah Kuncup Bunga Jumlah Bunga Mekar Jumlah Total Bunga

a

SK Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total Perlakuan Galat Total

DB 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95 15 80 95

JK 1.08 4.14 5.23 9.65 28.98 38.63 443.27 2469.76 2913.03 144.68 423.50 568.18 207.46 389.32 596.78 185.46 366.46 551.93

KT 0.07 0.05

F hitung 1.40

Pr 0.16

KK (%) 19.12

0.64 0.36

1.78

0.05

16.39

29.55 30.87

0.96

0.50

54.09

9.64 5.29

1.82

0.04

29.47

13.83 4.86

2.84

0.0014

76.34

12.36 4.58

2.70

0.0022

24.08

b

Gambar 1. a. Bangunan Research Greenhouse Tampak Kanan; b. Bangunan Research Greenhouse tampak kiri

71

SD 35/20°C

LD 25/10°C

LD 35/20°C

SD 25/10°C

Gambar 2. Layout Percobaan Sebelum Transfer Dilakukan. Keterangan: : P1 (SD 35/20°C)

: P9

: P2 (LD 35/20°C)

: P10 (LD 35/20°C  25/10°C)

: P3

: P11

(SDLD 35/20°C)

: P4 (LDSD : P5

35/20°C)

(SD 25/10°C)

( SD 35/20  25/10)

(SDLD 35/20°C  25/10°C)

: P12 (LDSD 35/20°C  25/10°C) : P13

(SD 25/10°C  35/20°C)

: P6 (LD 25/10°C)

: P14 (LD 25/10°C  35/20°C)

: P7

: P15

(SDLD 25/10°C)

: P8 (LDSD 25/10°C)

(SDLD 25/10°C  35/20°C)

: P16 (LDSD 25/10°C  35/20°C)

72

SD 35/20°C

LD 25/10°C

LD 35/20°C

SD 25/10°C

Gambar 3. Layout Percobaan Setelah Transfer Dilakukan. Keterangan: : P1 (SD 35/20°C) : P11

(SDLD 35/20°C  25/10°C)

: P2 (LD 35/20°C) : P3

(SDLD 35/20°C)

: P4 (LDSD : P5

35/20°C)

(SD 25/10°C)

: P6 (LD 25/10°C) : P7

(SDLD 25/10°C)

: P8 (LDSD 25/10°C) : P9

( SD 35/20  25/10)

: P10 (LD 35/20°C  25/10°C)

: P12 (LDSD 35/20°C  25/10°C) : P13

(SD 25/10°C  35/20°C)

: P14 (LD 25/10°C  35/20°C) : P15

(SDLD 25/10°C  35/20°C)

: P16 (LDSD 25/10°C  35/20°C)

73

Gambar 4. Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a.25/10°C SDLD; b. 25/10°C SD; c. 25/10°C LD; d. 25/10°C LDSD

Gambar 5. Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 35/20°C SDLD; b. 35/20°C SD; c. 35/20°C LD; d. 35/20°C LDSD.

74

Gambar 6. Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 25/10°C→35/20°C SDLD; b. 25/10°C→35/20°C SD; c. 25/10°C→35/20°C LD; d. 25/10°C→35/20°C LDSD.

Gambar 7. Tanaman Gomphrena leontopiodes pada Perlakuan: a. 35/20°C→25/10°C SDLD; b. 35/20→25/10°C LD; c. 35/20→25/10°C SD; d. 35/20→25/10°C °C LDSD

75

Gambar 8. Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 25/10°C SD; b.25°C LDSD; c. 25/10°C LD; d. 25/10°C SDLD.

Gambar 9. Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 25/10°C →35/20°C SDLD; b. 25/10°C →35/20°C SD; c. 25/10°C →35/20°C LD; d. 25/10°C →35/20°C LDSD

76

Gambar 10. Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 35/20°C SDLD; b. 35/20°C SD; c. 35/20°C LD; d. 35/20°C LDSD

Gambar 11. Tanaman Ptilotus axillaris pada Perlakuan: a. 35/20°C → 25/10°C SDLD; b. 35/20°C → 25/10°C SD; c. 35/20°C → 25/10°C LD; d. 35/20°C → 25/10°C LDSD.

77

Gambar 12. Tanaman Gomphrena leontopiodes yang berada di luar greenhouse.

Gambar 13. Peta Topografi Indonesia dan Australia

78

Gambar 14. Peta Iklim Indonesia dan Australia

79

a

b Gambar 15. a. Peta Suhu pada Bulan Januari di Indonesia dan Australia; b. Peta Suhu pada Bulan Juli di Indonesia dan Australia