MODUL melakukan pemeliharaan larva udang air payau

2015

2015

TEKNOLOGI BUDIDAYA PERIKANAN

TEKNOLOGI BUDIDAYA PERIKANAN

A-PDF Watermark DEMO: Purchase from www.A-PDF.com to remove the watermark

e

n

a ik

t

P

sa u

P

e

n

d

id

K

MELAKUKAN PEMELIHARAAN LARVA UDANG AIR PAYAU

e

n

P

n

a k

ri

a

a

n

d

ta

u

la

MODUL

melakukan pemeliharaan larva udang air payau

Pusat Pendidikan Kelautan dan Perikanan Badan Pengembangan SDM dan Pemberdayaan Masyarakat Kelautan dan Perikanan Kementerian Kelautan dan Perikanan

n

KATA PENGANTAR

Puji dan syukur kami panjatkan kehadirat Tuhan Yang Maha Esa, dengan tersusunnya modul Pembenihan Larva Udang Air Payau ini. Modul ini merupakan modul pembelajaran yang dapat digunakan peserta didik program keahlian Nautika Perikanan Laut dalam mempersiapkan diri untuk uji kompetensi keahlian. Peserta didik dapat belajar secara individual dan mandiri dalam menyelesaikan suatu unit kompetensi secara utuh. Modul ini disusun berdasarkan silabus SUPM Edisi 2012 dan Standar

n

Kompetensi Kerja Nasional Indonesia (SKKNI). Pada setiap bab berisi a

n

tentang lembar informasi, lembar praktek unjuk kerja, penilaian/evaluasi kadan

ri

e

lembar kunci jawaban.

P

n Dengan mempelajari seluruh isi modul dan melaksanakan setiap a

praktek unjuk kerja diharapkan peserta didik dapatd lebih siap menghadapi uji

n

kompetensi keahlian.

la

i

t

sa u

e

P

d

n

id

n

ka

ta

u

e K

Jakarta,

Desember 2015

Pusat Pendidikan Kelautan dan Perikanan

P

Pembenihan Larva Udang Air Payau

i

DAFTAR ISI KATA PENGANTAR ...................................................................................... i DAFTAR ISI .................................................................................................. ii DAFTAR TABEL.......................................................................................... iv DAFTAR GAMBAR ...................................................................................... v BAB I. PENDAHULUAN .............................................................................. 1 A. Deskripsi .......................................................................................... 1 B. Peta Judul Modul, Unit Kompetensi dan Elemen Kompetensi ......... 3 C. Tujuan .............................................................................................. 3 D. Petunjuk Penggunaan Modul ........................................................... 4

n

E. Waktu ............................................................................................... ka 4

ri

e

P

n BAB II. MENGELOLA KUALITAS AIR PADA PEMELIHARAAN LARVA a

d UDANG AIR PAYAU. ..................................................................... 5 n

A. Lembar informasi ............................................................................... 5 ta

u

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja .............................................................12 a

l

e C. Penilaian/Evaluasi ............................................................................16 K n ....................................................................19 D. Lembar Kunci a Jawaban ik

id

d BAB III.n MEMBERI PAKAN LARVA UDANG AIR PAYAU .......................20 t

P

sa u

e PA. Lembar Informasi..............................................................................20 B. Lembar praktek unjuk kerja ..............................................................45 C. Penilaian/Evaluasi ............................................................................48 D. Lembar Kunci Jawaban ....................................................................51

ii


n

a

BAB IV.

MENGENDALIKAN KESEHATAN IKAN/LARVA UDANG. ......52

A. Lembar informasi ..............................................................................52 B. Lembar Praktek Unjuk Kerja .............................................................80 C. Penilaian/Evaluasi ............................................................................82 D. Lembar Kunci Jawaban ....................................................................86

BAB V PENUTUP. ......................................................................................87 DAFTAR PUSTAKA ...................................................................................88

ri

e

a

n

la

t

sa u

e

P

d

n

P

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

ka

P


iii

n

n

a

DAFTAR TABEL

Tabel 1. Perlakuan media pemeliharaan larva udang vannamei .................. 8 Tabel 2. Pemberian pakan alami .................................................................22 Tabel 3. Ukuran saringan pakan berdasarkan stadia larva .........................23 Tabel 4. Formula pupuk kultur skala laboraturium .................................... 26 Tabel 5. Komposisi trace metal solution dan vitamin ..................................27 Tabel 6. Formula pupuk fitoplankton skala semi massal .............................34

e

ri

a

n

la

ka

i

t

sa u

e

P

d

n

id

n

e K

P

iv


u

ta

d

n

P

ka

n

n

a

DAFTAR GAMBAR

Gambar 1. Pengukuran pH menggunakan pH meter ..................................10 Gambar 2. Pengukuran DO menggunakan DO meter.................................12 Gambar 3. Kultur Pakan Alam pada media agar .........................................28 Gambar 4. Kultur pakan alami pada media cair ....................................... 31 Gambar 5. Pengeringan tambak .................................................................56 Gambar 6. Melapisi tanggul dengan plastik ................................................56 Gambar 7. Penghalang burung menggunakan jaring ..................................58 Gambar 8. Hama labi-labi ...........................................................................59

n

Gambar 9. Hama kodok ..............................................................................59 ka

ri e Gambar 10. Hama ular ................................................................................60 P n Gambar 11. Hama biawak ...........................................................................60 a d Gambar 12. Hama liasang ..........................................................................61 n Gambar 13. Hama kepiting ...................................................................... 61 ta u Gambar 14. Hama belut ..............................................................................62 la e Gambar 15. Hama ikan gabus K....................................................................62 n Gambar 16. Hama kini-kini/larva capung ....................................................63 a k i Gambar 17. Hama id ucrit/larva cybister .........................................................64 dHama notonecta ......................................................................65 Gambarn 18. e Gambar P 19. Diagram venn interaksi triple ...................................................65 t

sa Gambar 20. Penyakit Early Mortality Syndrome (EMS)...............................76 u

P


v

n

a

e

ri

a

n

la

ka

i

t

sa u

e

P

d

n

id

n

e K

P

vi


u

ta

d

n

P

ka

n

n

a

BAB I PENDAHULUAN A. Deskripsi Modul Melakukan Pemeliharaan Larva Udang Air Payau ini berisi 3 (tiga) cakupan materi, yaitu: 1. Mengendalikan kualitas air pada wadah pemeliharaan larva udang air payau. Materi ini bertujuan agar peserta didik mengetahui tahapan standar dalam mengendalikan kualitas air pada wadah pemeliharaan larva udang air payau. Di dalam materi ini membahas: a). Tahapan n

a

ik proses penyediaan air budidaya udang air payau, dimanarsebelum e

air dimasukkan ke dalam bak pemeliharaan harus melalui P beberapa

n

treatment agar air yang digunakan dalam apemeliharaan larva

d

udang air payau sesuai dengan standar n hidup larva udang; b).

a

t air, karena air sebagai media Mengelola kualitas dan kuantitas u

la kualitas mutu yang mendukung hidup larva harus memiliki e

perkembangan larva.K Tujuan pengelolaan kualitas air adalah untuk

n

mempertahankan ka kualitas air tetap baik dan dapat ditolerir oleh

i

d Mengukur kualitas air dimaksudkan air yang digunakan larva; ic). t

P

sa u

e

P

d

n kegiatan pemeliharaan larva udang air payau dapat diketaui dalam kandungan fisika dan kimianya sehingga dapat disesuaikan dengan kebutuhan optimal larva udang untuk tumbuh; d). Melakukan pergantian air, dimaksudkan agar kualitas air tetap terjaga pada kisaran

optimal

terutama

apabila

kondisi

air

pada

wadah

pemeliharaan larva udang air payau sudah terlalu kotor dan miskin kandungan oksigennya.

Pemeliharaan Larva Udang Air Payau

1

n

a

2. Memberi pakan larva Pengelolaan pakan bertujuan agar pakan diberikan secara optimal, tidak berlebihan dan tidak kekurangan, dikarenakan pakan sangat menentukan perkembangan larva. Di dalam materi ini membahas: a). Mengkultur Fitoplankton Secara Murni; b).Mengkultur Zooplankton Secara Murni; c). Mengkultur Fitoplankton Secara Massal; d). Mengkultur Zooplankton Secara Massal; e). Menetaskan Artemia.

3. Mengendalikan kesehatan ikan

n

Dalam budidaya ikan, serangan hama penyakit adalah masalah ka

t

sa u

ri e dan aspek yang sangat penting, artinya penanggulangan penyakit P n penting bagi dan hama juga harus menjadi pengetahuan yang a petani ikan dan siapa saja yang hendakd membudidayakan ikan. n Sebab penyerangan penyakit maupun gangguan hama dapat ta u mengakibatkan kerugian ekonomis. la e Di dalam materi iniKmembahas: a).Mengidentifikasi Hama yang nb). Mengidentifikasi Penyebab Penyakit Ikan; c). Menyerang Ikan; a ik Mencegah d i Hama Yang Menyerang Ikan; d). Mengobati Ikan Sakit. d n e

P

P

2


n

a

B. Peta Judul Modul Unit Kompetensi dan Elemen Kompetensi

Mengendalikan kualitas air pada wadah pemeliharaan larva udang air payau Melakukan Pemeliharaan Larva Udang Air Payau

Memberi pakan larva

Mengendalikan kesehatan larva

a

C. Tujuan

n

d

n

ri

e

P

ka

n

Setelah mempelajari modul ini peserta diharapkan dapat: ta

u

1. Memahami kegiatan pengelolaan kualitas air pada pemeliharaan la

e

K larva udang air payau; n

2. Memahami teknik a memberi pakan larva udang air payau;

ik

3. Memahami id teknik dalam mengendalikan kesehatan larva udang air

t

sa u

e

P

d

payau. n

P


3

n

a

D. Petunjuk Penggunaan Modul 1. Bagi peserta: a. Baca petunjuk dan deskripsi modul dengan baik; b. Pelajari modul, baik teori, praktek, serta evaluasi dari awal hingga akhir; c. Siapkan alat dan bahan praktek sesuai dengan petunjuk di dalam modul; d. Diskusikan dengan guru pembimbing apabila ada hal-hal yang perlu didiskusikan lebih lanjut; e. Lakukan evaluasi mandiri yang ada di dalam modul ini sebelum n

a

melaksanakan praktek.

rik

e

2. Bagi Guru Pembimbing:

n

P

a. Lakukan penjelasan mengenai cara penggunaan a modul ini;

d

b. Lakukan evaluasi penguasaan n materi sebelum melakukan

ta

praktek;

u

la tugas-tugas pelatihan yang ada di c. Membimbing siswa melalui dalam modul;

n

e K

d. Membimbing kasiswa untuk menentukan sumber belajar lain selain

i

modul; id

t

sa u

e

P

d

nMencatat dan mendata kemajuan belajar siswa; e. f. Melakukan penilaian dan evaluasi; g. Memberi masukan dan saran dari hasil evaluasi yang dihasilkan.

P

E. Waktu Waktu yang dibutuhkan dalam mempelajari modul ini adalah disesuaikan dengan ketuntasan belajar, serta sesuai panduan dari guru/pembimbing.

4


n

a

BAB II MENGELOLA KUALITAS AIR PADA PEMELIHARAAN LARVA UDANG AIR PAYAU A. Lembar Informasi 1. Pendahuluan Pengelolaan kualitas air pada pemeliharaan larva menjadi bagian yang sangat penting karena dapat mempengaruhi perkembangan larva yang dipelihara. Kualitas air yang jelek dapat mempengaruhi respon

larva

terhadap

pakan

yang

diberikan,

serta

dapat

mengurangi kelangsungan hidup larva yang dipelihara. Apabila hal

n

tersebut terjadi, maka harus dicari solusi atau cara penanganannya. ka

t

P

sa u

ri e Pengelolaan kualitas air harus rutin dilakukan secara berkelanjutan. P n Perikanan pada Modul ini terkait dengan SKKNI Kelautan dan a dKode Unit: Kompetensi Inti Budidaya Air Payau dengan n a. PRK.AP02.006.01 dengan judulta unit: Menyediakan Air Budidaya; u b. PRK.AP02.007.01 dengan la judul unit: Mengelola Kualitas dan e Kuantitas Air; K n dengan judul unit: Mengukur Kualitas Air c. PRK.AP02.008.01 a ik Harian; d i d d. PRK.AP02.009.01 dengan judul unit: Melakukan Pergantian Air; n ee. PRK.AP02.010.01 dengan judul unit: Monitoring Kualitas dan

P

Kuantitas Air; 2. Menyediakan Air Budidaya Sebelum air laut digunakan sebagai media pemeliharaan larva udang, ada beberapa tahapan yang harus dilalui, yaitu:


5

n

a

a. Air laut diambil dari jarak 1 km dari bibir pantai disedot dengan menggunakan pompa melalui dua buah pipa besar dan menggunakan dua buah saringan; b. Air laut dimasukkan ke dalam bak penampungan/tandon A yang terdiri dari empat buah bak. Bak pertama untuk mengendapkan pasir dan lumpur yang terkandung dalam air laut; c. Air laut dialirkan ke dalam bak yang kedua melalui bagian bawah bak tandon yang pertama. Bak tandon yang kedua ini berisi batu kali pada lapisan paling bawah, dilanjutkan dengan lapisan arang batok, dan pasir laut. Bahan-bahan ini dimaksudkan sebagai filter alami. 1)

2)

3)

t

sa u

n

ri e Dari bak kedua, air laut masuk ke dalam bak ketiga melalui P n menggunakan bagian atas bak, disini air disaring kembali a d arang batok, dan pasir laut. n Setelah itu air laut masuk t kea dalam bak yang keempat yang u berfungsi sebagai tempat la penampungan air laut yang sudah e difiltrasi. K n selesai difilter di bak tandon A, maka air Setelahaair ik dimasukkan ke dalam tandon B yang juga terdiri dari empat d i

d bak penampungan.

n

e

P

ka

4) Setelah itu air dialirkan melalui alat ozonisasi yang didalamnya terdapat bahan bernama bromine yang berfungsi

P

untuk mematikan bakteri yang merugikan. 5) Kemudian air dimasukkan ke dalam tandon C untuk diendapkan selama 2 jam. Tandon C ini merupakan tandon terakhir yang menampung air laut yang telah siap digunakan dalam kegiatan produksi.

6


n

a

Sebelum dilakukan pengisian air laut ke dalam bak/wadah pemeliharaan larva, air laut disaring menggunakan filter bag, kain kasa, kapas, karet, dan pipa PVC ukuran 2 inchi. Tahapan penyaringan yaitu dengan membentangkan kain kasa kemudian di atasnya diberi lapisan kapas. Kedua lapisan tersebut digulungkan pada pipa PVC 2 inchi, kemudian diikat dengan karet. Gulungan ini kemudian dimasukkan ke dalam filter bag, ikat kembali. Proses pengisian air laut yang telah difilter ke dalam bak pemeliharaan larva masih memerlukan beberapa treatmen air dengan menggunakan beberapa bahan, yaitu:

ka

n

ri e a) Air ditreatmen menggunakan EDTA sebanyak 5 ppm yang P n selalu dalam bertujuan mengikat logam berat agar a d keadaan terlarut yang mungkin terdapat di dalam air laut n tersebut. ta u b) Selanjutnya mediaapemeliharaan diberi probiotik dengan l e dosis 1 ppm K sehari sebelum tebar nauplius, tujuannya n untuk mendominasi bakteri yang menguntungkan di media a k i idpemeliharaan.

t

P

sa u

d 3. Mengelola Kualitas dan Kuantitas Air n

e

P

Pengelolaan kualitas air laut pada media pemeliharaan larva

sangat penting, karena air sebagai media hidup larva harus memiliki kualitas mutu yang mendukung perkembangan larva. Tujuan pengelolaan kualitas air adalah untuk mempertahankan kualitas air tetap baik dan sesuai untuk kehidupan larva.


7

n

a

Pengelolaan kualitas air dilakukan melalui kegiatan perlakuan pada media

pemeliharaan

larva

udang

vannamei

di

tiap-tiap

fase

pertumbuhan larva, yang dapat dilihat pada Tabel 1. Perlakuan air ini telah diaplikasikan pada backyard di kampus Sekolah Tinggi Perikanan Jakarta dengan SR 50%.

Tabel 1. Perlakuan Media Pemeliharaan Larva Udang Vannamei HARI ke 0 1 2

Zoea 1

3

Zoea 1-2

4

Zoea 2

5

Zoea 3

6

Mysis 1

7

Mysis 2

8

Mysis 3 n

9

t

sa u

P

8

d

n10

e

P

Stadia Pra tebar Naupli

a

ik

idMysis-

Postlarva PL 1

11

PL 2

12 13 14

PL 3 PL 4 PL 5

15 16 17

PL 6 PL 7 PL 8

18

PL 9

Perlakuan Probiotik 1 ppm (07.00) probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm n (07,00) a n Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm a (jam 10,00) rik Probiotik 1 ppm (jam 07,00), e EDTA 5 ppm (07,00) P Probiotik 1 ppm (jam 07,00), n treflan 0,05 ppm a (jam 10,00) d Probiotik 1 ppm (jam 07,00), n EDTA 5 ppma (07,00) t Probiotiku 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jaml10,00) a Probiotik 1 ppm (jam 07,00), e KEDTA 5 ppm (07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00), treflan 0,05 ppm (jam 10,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00), EDTA 5 ppm (07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Ganti air 10 % (jam 06,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Ganti air 10 % (jam 06,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00)


HARI ke 19 20 21 22

Stadia PL 10 PL 11 PL 12 PL 13

Perlakuan Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Ganti air 10 % (jam 06,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00) Probiotik 1 ppm (jam 07,00)

4. Mengukur Kualitas Air Harian Untuk mengetahui kualitas air perlu dilakukan pengukuran kualitas air dua kali sehari dengan beberapa parameter kualitas air sebagai berikut:

ri

e

a. pH

P

ka

n

pH atau potensial hydrogen adalah derajatnkeasaman yang

a

terkandung dalam air. pH optimal untuk d pemeliharaan benur

n adalah 7,5-8,5. Pengukuran pH adapat dilakukan dengan dua t

u cara, yaitu menggunakan kertas lakmus dan pH meter. Cara la

penggunaan kertas e lakmus, yaitu dengan mencelupkan kertas

t

P

sa u

P

e

K n lakmus ke dalam air sampel, kemudian dilihat perubahan warna a ik pada ujung kertas lakmus. Kelemahan pengukuran yang terjadi id menggunakan kertas lakmus kurang akurat dan kurang efektif. d n Pengukuran menggunakan pH meter cukup sederhana, pertama

pH meter dikalibrasi menggunakan akuades, selanjutnya ujung pH meter dicelupkan ke dalam air sampel, aduk sedikit hingga pada layar pH meter menunjukkan angka pH air sampel. Pengukuran pH menggunakan pH meter dapat dilihat pada Gambar 1.


9

n

a

Gambar 1. Pengukuran pH menggunakan pH meter

ri

e

b. Suhu

P

ka

n

Suhu optimal untuk pertumbuhan larva udang n adalah 31 oC. Pada

a

stadia larva (zoea dan mysis) jika suhud kurang dari 28oC maka

n

larva tidak akan bisa molting a dan tidak bisa masuk stadia

t

u berikutnya sehingga pertumbuhan menjadi lambat. Jika suhu a l

o e media pemeliharaan K lebih tinggi dari 34 C maka larva atau post

larva menjadi n lemas karena terlalu panas. Untuk menaikan suhu

ka

i air pemeliharaan maka bisa dilakukan pemasangan heather. Jika t

sa u

n

e

P

id

d terlalu tinggi maka terpal penutup bak dan pintu ruangan suhu harus dibuka sehingga ada sirkulasi udara yang bagus.

c. Salinitas

P

Salinitas atau kadar garam adalah jumlah kandungan garam yang terlarut dalam air. Benur udang vanamei dapat hidup dalam kisaran sainitas yang cukup luas, yaitu 15-30 ppt. Pengukuran salinitas

dilakukan

menggunakan

menggunakan

refraktometer

cukup

refraktometer. sederhana,

Cara pertama

refraktometer dikalibrasi menggunakan akuades. Di dalam

10


n

a

refraktometer ada garis yang menunjukkan kadar garam dalam air. Pastikan batas antara warna putih dan biru berada di angka nol. Selanjutnya air sampel diambil menggunakan pipet dan diteteskan ke arah sensor refraktometer. Arahkan ke sumber cahaya yang cukup terang, misalnya ke arah datangnya sinar matahari, sehingga angka di dalam refraktometer terlihat jelas. Salinitas dapat dilihat dari batas antara warna putih dan biru. Jika pengukuran sudah selesai, bilas sensor refraktometer dengan akuades, lap dengan tisu atau kain halus hingga kering dan simpan pada tempatnya.

ka

d. Ammonia

t

P

sa u

n

ri e Di dalam air, ammonia terdapat dalam dua bentuk, yaitu NH 4+ P n3 (ammonia) yang (ammonium) yang tidak bersifat racun dan NH a d air disebabkan oleh bersifat racun. Keberadaannya di dalam n adanya kotoran larva udang tdan a hasil kegiatan jasad renik u didalam pembusukan bahan la organik yang kaya akan nitrogen e (protein) yang berasal K dari sisa pakan udang. Untuk mengukur n nilai ammonia dalam air dapat digunakan ammonia test kit sea a k i water. idKeberadaan ammonia dapat menurunkan pertumbuhan d nudang dan meningkatkan resiko infeksi bakteri.

ee. Oksigen terlarut (DO)

P

Berdasarkan penelitian para ahli, kandungan oksigen terlarut yang dapat menunjang kehidupan udang secara normal tidak boleh kurang dari 3,7 ppm. Kadar oksigen yang kurang dari 1,2 ppm dapat mematikan larva yang dipelihara. Untuk mengukur nilai oksigen terlarut menggunakan DO meter atau DO tes kit. Penggunaan DO meter dapat dlihat pada Gambar 2.


11

n

a

Gambar 2. Pengukuran DO menggunakan DO meter

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja

e

1. Judul : Mengukur kualitas air

a

2. Alat : - pH meter/ kertas lakmus - Termometer - Refraktometer

la

u

e

- Ammonia ka test kit salt water

t

sa u

n : 3. Bahan

e

P

d

i d i- Gelas ukur - akuades - tisu

P

- reagent - air sampel

12


n

ta

Ktes kit - DO meter/ DO n

ri

d

n

P

ka

n

n

a

4. Petunjuk : Gunakan pakaian kerja (Wear pack), harap berhati-hati dalam menggunakan alat dan kembalikan sesuai kondisi semula. 5. Langkah Kerja : a. Mengukur pH menggunakan pH meter 1. Siapkan pH meter dan sampel air 2. pH meter dikalibrasi menggunakan akuades 3. Ujung pH meter dicelupkan ke dalam air sampel 4. Aduk sedikit hingga pada layar pH meter menunjukkan angka pH air sampel. 5. Catat di dalam tabel pengamatan No

Sumber air sampel

a

n

la

b. Mengukur suhu

ri

e

pH

d

n

P

ka

ta

u

e

1) Alat pengukur disiapkan (Thermometer) K

n

2) Alat dikalibrasi a sebelum digunakan

ik

3) Thermometer dicelupkan 5 – 10 menit dan dicatat hasilnya id

t

P

sa u

P

e

d n4) Pengukuran

dilakukan di tiga sampai lima tempat yang

berbeda 5) Hasil pengukuran dirata-ratakan dan dicatat dalam tabel 6) Alat disimpan kembali No

Sumber air sampel

Suhu


13

n

n

a

c. Mengukur salinitas 1) Alat pengukur disiapkan (Hand Refractometer) 2) Alat dikalibrasi sebelum digunakan 3) Kaca prisma dibuka dan air sampel diteteskan diatasnya 4) Skala dilihat dengan mengarahkan ke sumber cahaya 5) Pengukuran dilakukan di tiga sampai lima tempat yang

berbeda 6) Kaca prisma dibersihkan dengan cara dibilas menggunakan

akuades dan dilap menggunakan tisu 7) Hasil pengukuran dicatat dalam tabel

No

Sumber air sampel

e

a

n a t ml masukkan u la

t

P

sa u

d

n

a) Ambil sampel 5 ke dalam botol suntik. e b) Tambahkan K 12 tetes reagent NH4-1, aduk n hingga rata. a c) Tambahkan 1 sendok takar NH4-2, tutup ik d i tabung dan kocok sampai semua reagen d larut n e d) Biarkan 5 menit P e) Masukkan 4 tetes NH4-3, aduk hingga rata f) Biarkan 7 menit g) Cocokkan warnanyawq h) Cek pH = 7,5 dikarenakan pH air merupakan faktor pembatas bagi ammoniak

14


P

ka

ri

Salinitas

n

n

a

d. Mengukur Kadar Ammonia Pengukuran kadar ammonia dengan menggunakan ammonia test kit salt water dilakukan dengan cara sebagai berikut: 1) Siapkan reagent yang ada di dalam ammonia test kit, yaitu larutan NH4-1, NH4-2, dan NH4-3. 2) Masukkan air sampel sebanyak 5 ml ke dalam botol suntik, tambahkan 12 tetes reagent NH4-1 aduk hingga rata 3) Masukkan 1 sendok takar NH4-2, tutup tabung dan kocok sampai semua reagent larut tunggu 5 menit. 4) Tambahkan 4 tetes larutan NH-3 aduk rata biarkan 7 menit.

n

5) Cocokkan warna larutan yang dihasilkan dengan indikator ka

ri

e

pengukur warna ammoniak

P

n faktor pembatas 6) Cek H= 7,5 dikarenakan pH air merupakan a

bagi ammoniak

n

d

7) Mencatat hasil pengukuran ke dalam tabel ta No

u

Sumber air sampel la

n

e K

Ammoniak

ka

t

P

sa u

P

i d i e. Mengukur Oksigen Terlarut (DO) d n Pengukuran oksigen terlarut dilakukan dengan menggunakan e DO meter dengan cara sebagai berikut : 1) Menekan tombol ON untuk menghidupkan alat DO meter 2) Setelah alat DO meter hidup sensor DO meter dianginanginkan selama 15-30 menit 3) Melakukan kalibrasi sampai menunjukkan angka 2,09 4) Kemudian tekan tombol Read


15

n

a

5) Memasukkan ujung sensor ke dalam bak sampai terendam air 6) Melihat angka yang ditunjukkan pada layar 7) Mencatat hasil yang terlihat pada layar ke dalam tabel No

Sumber air sampel

DO

C. Penilaian/Evaluasi 1. Air merupakan tempat hidup dan menyediakan ruang gerak bagi n

a

rik

organisme didalamnya adalah fungsi air dari segi …

e

A. Biologi B. Fisika

a

C. Kimia

n

D. Sifat optis air E. Sifat daya hantar listrik

n

la

d

n

P

ta

u

e K

2. Sifat air yanga dapat melarutkan berbagai jenis senyawa kimia,

ik

serta memungkinkan air sebagai pencuci yang baik dan sebagai id

t

sa u

d pengencer bahan pencemar (polutan) adalah sifat air sebagai … n

eA. Penyimpan panas yang baik.

P

B. Penguap (vaporization).

P

C. Pelarut yang baik. D. Tegangan permukaan yang tinggi. E. Senyawa yang dapat bertambah volumenya ketika membeku

16


n

a

3. Pernyataan berikut yang benar adalah ... A. Smakin tinggi suhu maka kadar oksigen terlarut semakin tinggi B. Semakin tinggi suhu maka kadar oksigen terlarut makin rendah C. Suhu tidak mempengaruhi kadar oksigen terlarut D. Suhu memberi pengaruh yang tidak nyata terhadap oksigen terlarut. E. Kenaikan suhu menyebabkan kenaikan jumlah oksigen terlarut.

4. Berikut ini yang termasuk ke dalam parameter biologi dalam kualitas air adalah ... A. Suhu

C. pH

a

D. Daya hantar listrik E. Oksigen terlarut

t

P

sa u

ri

e

B. Kelimpahan plankton

n

d

n

P

ka

ta

P

u a l 5. Berdasarkan keasamannya e perairan dengan pH 9,5 dikategorikan K sebagai perairann ... a A. Asam ik id B. Sedang d n eC. Basa D. Netral E. Sangat asam


17

n

n

a

6. Air sumur atau air tanah umumnya ber-pH rendah. Agar air tersebut aman untuk digunakan, sebaiknya diberi perlakuan ... A. Diberi kaporit B. Diberi tawas C. Diberi aerasi kuat D. Dilakukan filtrasi E. Air diinapkan terlebih dahulu 7. Sumber utama oksigen di perairan adalah proses ... A. Difusi B. Fotosintesis

D. Respirasi E. Reduksi

t

sa u

a

d

n a t 8. Berikut adalah tanda yang menunjukkan bahwa u la oksigen ... e A. Berenang terbalik K n a B. Ikan aktifkbergerak i C. Ikanid tidak mau makan d nIkan makan terus D. e

P

E. Sering muncul ke permukaan air

P

18


ri

e

C. Oksidasi

n

P

ka

ikan kekurangan

n

n

a

9. Berikut ini manakah yang termasuk kedalam faktor fisika air adalah… A. pH dan Dissolved Oxygen (DO) B. NH3 dan NH4 C. Kecerahan dan suhu D. NO2 dan NO3 E. CO2 dan H2S 10. Apakah

faktor

yang

berpengaruh

terhadap

salinitas

air

pemeliharaan? A. Ketinggian tempat lokasi budidaya

ri

e

B. Posisi geografi C. Awan

a

d

D. Kecerahan perairan

n

P

ka

E. Banyaknya sungai yang bermuara n ke pantai dan musim (hujan atau kemarau)

la

ta

u

e K

n D. Lembar Kunci a Jawaban ik

t

P

sa u

1. A d 2.nC e P 3. B 4. B 5. C 6. A 7. B 8. E 9. C 10. E

id


19

n

n

a

BAB III MEMBERI PAKAN LARVA UDANG AIR PAYAU

A. Lembar Informasi 1. Pendahuluan Kegiatan pengelolaan pakan merupakan kegiatan yang terkait dengan kualitas, jumlah, jenis, ukuran, waktu pemberian, frekuensi, dan cara memberikan pakan. Kebutuhan pakan merupakan membutuhkan kecermatan dan perhatian yang besar karena mengambil sebagian besar biaya produksi. Pengelolaan pakan

n

bertujuan agar pakan diberikan secara optimal, tidak berlebihan dan ka tidak

kekurangan,

dikarenakan

pakan

perkembangan larva.

ri e sangat menentukan P n a

d dan Perikanan pada Modul ini terkait dengan SKKNI Kelautan n

Kompetensi Inti Budidaya Air Payau dengan Kode Unit: ta

u

a. PDB.AP02.024.01 dengan a judul unit: Mengkultur Fitoplankton

l

Secara Murni

e K

n dengan judul unit: Mengkultur Zooplankton b. PDB.AP02.025.01 a k

i Secara d Murni i

t

sa u

d c. nPDB.AP02.026.01 dengan judul unit: Mengkultur Fitoplankton

e

P

Secara Massal

d. PRK.AP02.027.01 dengan judul unit: Mengkultur Zooplankton

P

Secara Murni e. PRK.AP02.028.01 dengan judul unit: Menetaskan Artemia

20


n

a

2. Kualitas Pakan Kualitas pakan yang baik akan mendukung pertumbuhan larva yang dipelihara. Pakan memiliki fungsi untuk mendukung pertumbuhan sel dan

mencegah ikan sakit. Pakan yang

berkualitas baik ditentukan oleh kandungan nutrisi terutama kadar protein yang tinggi. Pada pakan udang, kandungan prrotein minimal 35% dari total kandungan pakan. 3. Jenis Pakan Jenis pakan yang diberikan pada larva disesuaikan dengan kebiasaan makan dan bukaan mulut larva. Jenis pakan yang

n

a diberikan umumnya terdiri dari pakan alami dan buatan.kJenis

t

P

sa u

ri e pakan alami yang diberikan adalah Artemia sp., Skeletonema P costatum, dan Chaetoceros sp. Sedangkan n pakan buatan a d proses pemeliharaan merupakan pakan yang diberikan selama n mulai stadia Zoea hingga Posttlarva a yang bertujuan agar tidak u terjadi under feeding a l atau kekurangan pakan selama e pakan buatan pada pemeliharaan larva pemeliharaan. Pemberian K ndibandingkan pakan alami karena dari segi lebih dominan a ik gizi, pakan buatan memiliki nilai gizi yang lebih kandungan d i d yang dibutuhkan larva untuk pertumbuhan. lengkap n

e4. Jumlah Pakan

P

Jumlah pakan adalah banyaknya pakan yang diberikan pada larva yang disesuaikan dengan bukaan mulut dan umur larva. Jumlah pakan yang diberikan juga harus mempertimbangkan jumlah larva. Jumlah yang diberikan tidak boleh berlebihan atau kurang

karena

pertumbuhan

akan

larva.

berpengaruh Jumlah

pakan

secara

langsung

pada

yang

diberikan

juga

berpengaruh terhadap kualitas air. Pemberian pakan yang


21

n

a

berlebih akan membuat pakan tidak termakan sepenuhnya dan menurunkan kualitas air yang dapat mengakibatkan terjadinya penyakit. Kekurangan pemberian pakan akan berpengaruh pada terhambatnya

pertumbuhan

larva,

karena

asupan

nutrisi

berkurang, walaupun kualitas air tetap baik. Jumlah pemberian pakan alami pada larva dapat dilihat pada Tabel 2. Tabel 2. Pemberian pakan alami STANDAR KEPADATAN LARVA No

Stadia

Kepadatan alga

kepadatan artemia

(Chaetoceros sp.) 1

N

50.000 sel/ml

Z1

80.000 sel/ml

Z2

100.000 sel/ml

Z3

120.000 sel/ml

M1

100.000 sel/ml

M2

80.000 sel/ml la

M3

e K 80.000 sel/ml n 50.000 sel/ml a k

PL1 PL2

t

sa u

P

P

22

a

n

u

ta

d

n-

P

e

-

5 ind/ekor/pemberian pakan 15 ind/ekor/pemberian pakan

-

15 ind/ekor/pemberian pakan

-


PL4

-


PL5

-


PL6

-


PL7

-


PL8

-


PL9

-


PL10

-


d

n PL3

e

id

i

ri

-

ka


n

n

a

PL11

-


PL12

-


Pakan artemia hidup mulai diberikan pada stadia mysis 3, hal ini bertujuan untuk melatih larva dalam mengejar dan menangkap artemia. Artemia yang diberikan harus dalam keadaan hidup tidak mati, karena jika mati akan mengendap tidak termakan dan cepat sekali membusuk dan akan merusak kualitas air.Pada stada Zoea hingga Post larva 12 (PL12), larva udang sudah diberikan pakan buatan untuk menjaga kebutuhan nutrisi dan ketersediaan pakan n

a

rik

yang kontinyu.

e

5. Ukuran Pakan

P

Ukuran pakan adalah panjang atau besarnyan pakan yang dapat

a

dengan mudah masuk ke dalam mulut d larva, sehingga bukaan

n

mulut larva merupakan patoan untuk tamemilih ukuran pakan. Ukuran

u

pakan juga bisa diukur menggunakan ukran saringan yang biasa la

e

diistilahkan dengan mesh K size. Ukuran saringan harus lebih kecil

n

dari bukaan mulut a larva, sehingga pakan yang tersaring kan mudah

ik

masukid ke dalam mulut larva. Tabel 3 menunjukan ukuran saringan

t

P

sa u

d pakan n berdasarkan stadia larva.

e Tabel 3. Ukuran saringan pakan berdasarkan stadia larva

P

Stadia Zoea 1-2 Zoea 3- mysis 3 Mysis 4- PL 4 PL 4- PL 10

Ukuran saringan (mesh size) 200 mikron < 100 mikron 100 – 150 mikron 56 mikron


23

n

a

6. Frekuensi dan Waktu Pemberian Pakan Waktu dan ferkuensi pemberian pakan merupakan jadwal yang ditetapkan dalam memberikan pakan pada larva setiap harinya. Pemberian pakan biasanya dilakukan sebanyak 10 kali dalam sehari, yaitu pada pukul 01.00, 04.00, 07.00, 09.00, 11.00, 13.00, 15.00, 16.00, 19.00, dan 23.00. Frekuensi yang dilakukan dengan cukup sering pada larva fase zoea dimaksudkan agar tidak terjadi kanibalisme. 7. Mengkultur Fitoplankton dan Zooplankton Secara Murni Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan alami

n

air payau jenis fitoplankton yang dilakukan di bak kultur (baik bak ka

t

sa u

e

ri e semen atau bak fiber), yang terdiri dari: menyiapkan peralatan, P n pemupukan wadah dan media kultur pakan alami, melakukan a d terhadap media, menginokulasi bibit, melakukan sampling pakan n alami, melakukan pemanenan dan tamembuat laporan hasil kultur u pakan alami. la e atau kultur murni adalah suatu usaha Kultur skala laboratorium K n untuk mempertahankan kemurnian dan mutu yang merupakan a k i sumber id bibit dalam kultur semi massal/massal. Dengan d tersedianya stok murni secara terus menerus, jika terjadi kendala n

P

dalam kultur massal, maka kegiatan kultur pakan alami tidak akan terputus. Dalam kultur murni ada beberapa kegiatan yang umum

P

dilakukan antara lain:

24


n

a

a. Menyiapkan peralatan Peralatan kultur yang perlu disiapkan berupa gelas (cawan petri, tabung reaksi, erlenmeyer) dicuci bersih dengan air tawar, kemudian dikeringkan dan disterilisasi dengan menggunakan autoclave, oven, dan alohol 70% kemudian dikeringkan. Peralatan lain yang berupa perangkat aerasi disterilisasi dengan perebusan sampai mendidih ( suhu 100-150 oC) sekitar 15 menit. Ruangan dan tempat kultur juga disucihamakan dengan antiseptik. b. Menyiapkan media kultur

n

Sterilisasi air media kultur dapat dilakukan dengan cara ka

t

P

sa u

n

e

P

ri e perebusan dan penyinaran dengan sinar ultra violet. Metode P perebusan adalah dengan merebus air lautn sampai mendidih, a d sebelumnya salinitas diturunkan menjadi 25 ‰ dengan n menambahkan air tawar. Penyaringan air juga harus dilakukan ta u dengan saringan pasir dan la filter bag (kantong saring), kemudian air dimasukkan K keedalam ember steril dan ditutup untuk n mencegahatumbuhnya lumut dan masuknya kotoran. Untuk k i metode id sinar ultra violet adalah dengan mengalirkan air d melewati sinar UV dengan panjang gelombang 2000-3000 Å yang telah dilengkapi dengan catridge filter berukuran 50 µm, 10 µm, 5 µm dan 2 µm dan hasilnya ditampung dalam ember steril.


25

n

a

c. Melakukan pemupukan Pupuk yang digunakan pada skala laboratorium ini terbuat dari bahan kimia PA (pro analis) dengan dosis pemakaian 1 ml pupuk untuk 1 liter volume kultur. Jenis dan formula pupuk adalah yang sudah distandarkan dan umum digunakan adalah pupuk Conwy (Walne’s medium) dan Guillard & Rhyter Modifikasi F. Untuk memudahkan pemakaiannya, terlebih dahulu dibuat stok pupuk cair (Tabel 4 dan 5). Pupuk Conwy digunakan

untuk

fitoplankton

fitoplankton

yang

berwarna

jenis

Chlorophycea

hijau,

sedangkan

atau

Guillard

n

digunakan untuk fitoplankton dari jenis diatom atau fitoplankton ka yang berwarna kecoklatan, karena dalam

ri

e pupuk P

Guillard

n terdapat silikat yang dibutuhkan untuk pertumbuhan diatom. a

n

d

Tabel 4. Formula pupuk kultur taskala laboratorium No

1.

t

sa u

P

u

Nama pupuk

e K

EDTA a

Conwy/Walne

10 gram

20 gram

10 gram

FeCl3.6H2O

1,5 gram

2,9 gram

4.

H3BO3

33,6 gram

-

5.

MNCl2

0,36 gram

3,6 gram

6.

NaNO3

100 gram

100 gram

7.

Na2SiO3.9H2O

-

5 gram/30 ml

8.

Trace Metal Solution*

1 ml

1 ml

9.

Vitamin*

1 ml

1 ml

10.

Aquades sampai

1000 ml

1000 ml

*: Komposisi dapat dilhat pada Tabel 6.

26

Guillard

45 gram

d n3.

e

n

la

ik2PO4.2H2O NaH d i

2.

P

Bahan kimia


n

a

Tabel 5. Komposisi trace metal solution dan vitamin No

Bahan Kimia

Nama pupuk Conwy/Walne

A

Trace Metal: 1. ZnCl2

2,10 gram

-

2. CuSO4.5H2O

2,00 gram

1,96 gram

3. ZnSO4.7H2O

-

4,40 gram

4. CoCl2.6H2O

2,00 gram

2,00 gram

5. (NH4)6.Mo7O24.4H2O

0,9 gram

1,26 gram

6. Aquabides sampai

B

Guillard

100 m

Vitamin:

200 mg

1. B1

10 mg

2. B12

-

3. H (biotin) 4. Aquadest

n

la

n

100 ml

ka

a

d

n

ri e P0,2 gram

ta200 ml

n

10 gram 10 ml 1 lt

u

e K

d. Menginokulasi a bibit

ik

t

P

sa u

d 1)

n

e

P

Menginokulasi bibit dapat dilakukan dengan dua cara, yaitu: id Menggunakan media agar Kultur

pada

media

agar

dimaksudkan

untuk

mempertahankan fitoplankton tetap murni dan berkualitas baik, tahap awal kultur dimulai dengan kultur pada media agar. Kultur di media agar juga berfungsi dalam kemudahan transportasi dan penyimpanan. Cara kultur pada media agar

pertama-tama

dengan

melarutkan

bacto-agar

sebanyak 1,5 gram dalam 100 ml air laut kemudian dipanaskan sampai mendidih hingga larutan menjadi jernih.


27

n

a

Selama pemanasan, larutan selalu diaduk agar tidak menggumpal.

Setelah

mendidih,

larutan

bacto

agar

diangkat, dan setelah agak dingin ditambahkan pupuk sesuai jenis fitoplankton yang akan ditanam. Selanjutnya larutan dituangkan ke dalam cawan petri yang sudah steril dengan ketebalan 3-5 mm atau ke dalam tabung reaksi steril dengan posisi miring. Setelah media agar membeku, siap

digunakan

untuk

menanam

inokulum

(bibit

fitoplankton) dengan metode gores, metode tetes atau metode tuang. Penanaman pada meda agar dapat dilihat pada Gambar 3.

ri

e

a

n

la

n

d

n

P

ka

n

ta

u

e K

ka

t

sa u

e

P

d

n

i d iGambar 3. Kultur pakan alam pada media agar Metode gores menggunakan jarum ose yang sebelumnya telah dibakar menggunakan lampu bunsen agar steril. Bibit

P

fitoplankton digoreskan pada permukaan media agar dengan

menggunakan

jarum

ose.

Metode

tetes

menggunakan pipet tetes steril untuk mengambil dan meneteskan bibit fitoplankton pada permukaan media agar, dengan meneteskan setetes demi setetes secara terpisah.

28


n

a

Sedangkan pada metode tuang, bibit fitoplankton dituang dan diratakan pada permukaan media agar dengan gerakan memutar. Kegiatan tersebut dilakukan dalam ruangan yang steril (laminar). Untuk mencegah kontaminasi dengan mikroorganisme lain, cawan petri yang telah ditanami bibit fitoplankton disegel atau ditutup dengan selotip, kemudian diletakkan di rak kultur yang disinari dengan lampu neon TL. Cawan petri diletakkan

dalam

keadaan

terbalik

untuk

mencegah

terjadinya penetesan embun dari bagian tutup ke media agar,

t

P

sa u

tersebut

akan

mengganggu

n

pertumbuhan ka

ri e fitoplankton.Koloni dapat tumbuh setelah 4-7 hari P n penanaman. a d n 2) Menggunakan media cair ta u tahap selanjutnya setelah dari Kultur media cari merupakan la e yang telah tumbuh dan berkembang di media agar. K Koloni n dapat dipindahkan dengan menggunakan jarum mediaa agar ikke dalam tabung reaksi yang berisi air laut steril dan ose d i d telah diberi pupuk. Sebaiknya digunakan satu jarum ose

n

e

P

hal

untuk

satu

jenis

fitoplankton

untuk

menghindari

kontaminasi. Tabung-tabung reaksi yang telah berisi bibit fitoplankton ditempatkan dalam rak tabung reaksi dan diletakkan pada rak kultur yang dilengkapi dengan lampu neon TL sebagai sumber cahaya. Selama masa kultur, tabung reaksi dikocok sesering mungkin dengan tujuan untuk menghindari terjadinya pengendapan dan untuk difusi udara. Bibit fitoplankton


29

n

a

dalam tabung reaksi akan meningkat kepadatannya, setelah itu dapat dipindahkan sebagian ke wadah yang lebih besar volumenya (100-300 ml), sedangkan sebagian lagi

dipindahkan

mempertahankan

ke

tabung

kemurniannya

reaksi

lain

(sebagai

untuk stok).

Fitoplankton yang dikultur bisa diaerasi atau tanpa aerasi. Apabila menginginkan pertumbuhan yang cepat, maka sebaiknya diaerasi dan apabila tujuannya untuk stok tidak perlu diaerasi, namun cukup dikocok sewaktu-waktu. Setelah kepadatannya cukup (sekitar 1 minggu) dapat

n

dipindahkan ke volume yang lebih besar (500-1000 ml). ka

t

sa u

e

P

d

n

ri e Demikian seterusnya kultur dilakukan secara bertahap dari P volume kecil ke volume yang lebih besarn (sampai dengan 5 a d liter) dengan waktu kultur masing-masing 4-7 hari. Kultur n pakan alami pada media cair tadapat dilihat pada Gambar 4. u la e K n a ik d i

P

30


n

a

ri

e

a

n

d

n

P

ka

n

Gambar 4. Kultur pakan alami ta pada media cair

la

u

e

Penyaringan Kdilakukan untuk memisahkan kotoran atau

n

fitoplankton a

ik

t

sa u

e

P

d

n

yang

idmenggunakan tersebut

mati/menggumpal

dengan

kertas saring atau kertas tissu. Kegiatan

berlangsung

terus

berkesinambungan dari media agar ke

menerus

dan

media cair dan

dari volume kecil ke volume lebih besar secara bertahap.

P


31

n

a

e. Sampling dan panen Sampling atau penghitungan dfitoplankton ditujukan untuk mengetahui pertumbuhan fitoplankton yang ditandai dengan adanya pertambahan kepadatan fitoplankton yang dikultur. Untuk menghitung kepadatan umumnya menggunakan alat hitung haemocytometer dengan bantuan mikroskop. Kepadatan fitoplankton dihitung sejak dari awal kultur sampai akhir kultur setiap 24 jam. Dengan menghitung kepadatannya dapat diketahui masa puncak fitoplankton yang diultur. Waktu panen fitoplankton sebaiknya dilakukan pada saat menuju puncak kepadatan dan jangan melewati masa puncak.

e

ri

P

ka

n

nMassal 8. Mengkultur Fitoplankton dan Zooplankton Secara a

d Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan n

alami fitoplankton yang dilakukan di bak kultur (baik bak semen ta

u

atau bak fiber), yang terdiri a dari: menyiapkan peralatan, wadah

l

e dan media kultur pakan K alami, melakukan pemupukan, menanam

n bibit, melakukan a sampling pakan alami, memanen pakan alami, k

i melakukan d pemupukan susulan dan membuat laporan hasil kultur i

t

sa u

e

d alami. Kultur pakan alami ini hanya berlaku pada kegiatan pakan n

P

pembenihan ikan dan udang. a. Pendahuluan

P

Dalam mata rantai kegiatan kultur fitoplankton dan zoopankton, kultur massal merupakan rantai terakhir sebelum dilakukan pemanenan untuk dipergunakan pada kepentingan lain. Beberapa jenis fitoplankton dan zooplankton yang bermanfaat di dalam menunjang kegiatan pembenihan ikan terutama ikan laut telah berhasil dikembangkan hingga skala

32


n

a

massal. Keberhasilan dalam kultur massal fitoplankton dan zooplankton, merupakan salah satu kunci yang menentukan keberhasilan usaha pembenihan. hal ini dikarenakan dalam pemeliharaan organisme laut, terutama pada stadia awal masih tergantung pada pakan hidup yang berupa zooplankton. Bahkan ada beberapa jenis organisme laut sepanjang siklus hidupnya sangat bergantung pada fitoplankton, sebagai pakan seperti dari keluarga kekerangan dan teripang. b. Persiapan alat dan bahan Sebelum melakukan kultur, terlebih dahulu dilakukan

n

persiapan wadah dan peralatan yaitu dengan melakukan ka

t

P

sa u

n

e

P

ri e pencucian dan sterilisasi dengan menggunakan kaporit 10 P ndilakukan di bak ppm. Sterilisasi air laut sebagai media kultur a tandon dengan kaporit 15-20 ppm d dan kemudian dilakukan n pengadukan/pengudaraan selama ta 2-3 hari untuk menetralkan u kaporit. Selanjutnya a l air laut tersebut diendapkan dengan e menghentikan pengudaraannya. Chlorin tes dapat digunakan K n untuk mengetahui apakah air laut sudah bebas dari kaporit. a k i Saat id pengadukan harus terkena cahaya matahari dan kontak ddengan udara terbuka, untuk mempercepat air menjadi netral. Untuk menghilangkan kaporit tidak dianjurkan menggunakan penetral seperti Natrium Thiosufat, karena dapat meracuni larva ikan. Sterilisasi air mutlak diperlukan walaupun air terlihat bersih dan jernih. Karena disamping untuk menghilangkan organisme pathogen juga untuk menghindarkan terjadinya kontaminasi

fitoplankton

dan

zooplankton

yang


tidak

33

n

a

diinginkan yang terdapat diperairan tersebut. Dengan adanya kontaminan dapat menyebabkan kegagalan dalam kultur. c. Pemupukan Untuk skala massal, digunakan pupuk dari bahan kimia murni (PA: Pro Analis) dan atau pupuk teknis. Ada banyak jenis formula pupuk yang dapat digunakan, beberapa contoh nama formula yang sudah baku seperti: Conwy, Gillard’s, EDTA, dan TMRL. Pemupukkan dapat dilakukan di awal kultur atau bersamaan dengan masuknya bibit, dengan dosis 1 ml/lt media air kultur. Komposisi pupuk teknis skala semi massal

ka

dapat dilihat pada Tabel 6.

t

P

sa u

ri e Tabel 6. Formula Pupuk Fitoplankton Skala Semi Massal P n No Bahan kimia Nama Formula a d Conwy Guillard TMRL n NaNO3/KNO3 100/116 gr ta 84,2 gr 100 gr 1 Na2 EDTA 45 gr au 10 gr 2 l e FeCl3 2,9 gr 3,0 gr 3 K1,3 gr n 0,36 MnCl 0,36 gr 4 a H2 BO3 ik 33,6 gr 5 d i Na 20 gr 10 gr 10 gr 6 d2 HPO4 n 50 gr/(38,5 ml) 1 gr/(0,7 ml) 7 e Na2SiO3 P Trace Metal* 1 ml 1 ml 8 9

Vitamin*

1 ml

1 ml

-

10

Aquadest

1 lt

1 lt

1 lt

11

Urea

-

-

-

12

ZA

-

-

-

* Komposisi Trace metal dan vitamin dapat dilihat pada Tabel 6.

34


n

n

a

Bahan kimia trace metal masih menggunakan bahan kimia murni (PA), karena belum ada bahan teknisnya, dan kebutuhannya sangat sedikit. Untuk kultur dengan volume lebih dari 10 m3tidak mutlak ditambahkan, tergantung kondisi perairan. Trace metal adalah logam berat yang digolongkan sebagai mikronutrien, yang mutlak diperlukan dalam kadar yang rendah, bila berlebih justru akan mematikan fitoplankton. Pada kultur skala massal (volume 10-100 m3), jenis pupuk yang digunakan adalah pupuk pertanian seperti Urea, ZA, NPK dan KNO3 sebagai sumber nitrogen, dan TSP, SP3, NPK

n

a sebagai sumber phospat. Hasil sampingan dari k proses pembuatan gula (molase) atau bumbu masak

ri e (orgami) dapat P

n yang digunakan dijadikan sebagai sumber mikronutrien. Dosis a

dalam kultur skala massal adalahdkelas Diatomae perlu

n

ditambahkan unsur silikat ta sekitar 5-20 ppm, tergantung jenisnya.

la

u

e selalu sama dari waktu ke waktu dan Formula pupukK tidak n masing-masing a

t

sa u

kemungkinan

juga

berbeda

n

e

P

lokasi

ik komposisinya. Keadaan ini disebabkan setiap perairan secara d i dkimiawi mungkin berbeda dan dapat berubah setiap saat. Oleh karena itu, jika terjadi kegagalan dalamkultur salah satu yang perlu diperhatikan adalah formulasi pupuk yang digunakan.

P


35

n

a

d. Penanaman Bibit Kegiatan penanaman dimulai dengan kultur skala massal, dilakukan di ruang semi out door tanpa dinding, beratap transparan, untuk memanfaatkan cahaya matahari. Kekuatan cahaya sinar matahari mutlak diperhatikan, berkaitan dengan jenis bahan wadah dan volume kultur. Kultur dengan wadah akuarium/fiberglass transparan pada volume sekitar 100 liter, kekuatan cahaya yang dibutuhkan jauh lebih kecil daripada bila memakai bak beton atau fiberglass dengan volume lebih besar dan tidak transparan. Cahaya yang terlalu kuat dapat

n

a menghambat pertumbuhan, karena menyebabkan suhuk tinggi, sehingga kultur cenderung kurang berhasil.

ri

P

e

Bibit untuk kultur semi massal didapat darin hasil kultur murni

a

skala laboratorium. Bibit sebelum d dikultur perlu dilakukan

n

adaptasi lingkungan, minimalta satu hari. Untuk volume 100 liter

u

diperlukan bibit 5-10% a dari volume total. Di awal kultur

l

e diperlukan salinitas K 28-30‰, suhu air laut di bawah 31oC dan

n pH 7,9-8,3 a dengan intensitas cahaya pada kisaran 10.000k

i 50.000 d lux. Kekuatan cahaya yang tinggi akan berpengaruh

t

sa u

n

e

P

i dnegatif terhadap pertumbuhan.

Untuk mendapatkan kepadatan yang optimal diperlukan kultur antara 3-5 hari, tergantung jenis fitoplanktonnya, kepadatan

P

awal tebar dan kondisi lingkungan (musim). dari volume kultur 100 liter selanjutnya digunakan sebagai bibit untuk kultur volume 1000 liter (1m3). Pupuk yang dipakai dari bahan kimia teknis, atau dapat juga menngunakan kombinasi bahan teknis dengan pupuk pertanian.

36


n

a

Kultur selanjutnya, pada volume yang lebih besar yaitu 10-100 m3 yang dikenal dengan kultur skala massal. Jenis yang biasanya dikultur dalam volume besar untuk kegiatan pembenihan ikan laut adalah Nannochloropsis sp., Dunaliella sp. dan Tetraselmis sp. sebagai pakan Brachionus sp. dan untuk media pemeliharaan larva. Pemupukan dilakukan bersamaan dengan masuknya bibit fitoplankton dari hasil kultur

skala

semi

massal,

sekitar

10-20%

tergantung

kepadatannya. e. Melakukan sampling

n

Waktu kultur untuk mencapai kepadatan optimal dan ka

t

P

sa u

n

e

P

ri e aman digunakan sebagai pakan larva Brachionus sp. serta P n ikan umumnya sebagai media di bak pemeliharaan larva a d berkisar antara 4-6 hari. Faktor lingkungan alam sangat n dominan peranannya, seperti tacahaya matahari dan musim. u dengan kualitas baik sebagai Salah satu kriteria fitoplankton la e pakan hidup yaitu, K memiliki pola tumbuh yang normal. Untuk n itu perlua dilakukan pengamatan pertumbuhan dengan melihat k i perubahan warna secara visual dan mengukur kecerahannya id ddengan alat sechi disk. Bila memungkinkan, akan lebih baik dilakukan pengamatan dan penghitungan di bawah mikroskop dengan bantuan alat hitunh yaitu Haemocytometer. Pengamatan

dengan

mikroskop

memberi

beberapa

keuntungan antara lain, dapat mengetahui penambahan jumlah sel setiap harinya, mengamati bentuk sel dan kemungkinan adanya kontaminan mikroorganisme lainnya. Pengawasan yang disiplin memberi hasil yang lebih baik,


37

n

a

dengan

demikian

kemurnian

kultur

massal

dapat

dipertahankan lebih lama dan berkualitas. f.

Pemanenan Pada umumnya pemanenan hasil kultur fitoplankton adalah dengan cara langsung bersama air media kultur. Ukuran fitoplankton yang mkroskopis (2- <20 µm), sulit untuk dilakukan

penyaringan,

misalnya

Nannochloropsis

sp.,

Tetraselmis sp., Isochrysis sp., Pavlova sp., dan lain-lain. Fitoplankton yang mampu disaring adalah Skeletonema sp. dan Spirulina sp., selnya berbentuk benang dengan ukuran di

ka

atas 20 µm.

t

sa u

n

e

P

n

ri e Teknik pemanenan ada dua cara, yaitu panen total dan panen P n satu siklus dan parsial/harian. Panen total adalah kultur hanya a dipanen seluruhnya. kelebihan carad ini adalah kultur pakan n alami secara murni, tetapita memiliki kelemahan antar lain u pada tahap kultur awal karena sering mengalami kegagalan la e fitoplankton butuh K adaptasi lingkungan. Sistem panen harian n adalah a memanen fitoplankton sekitar 50-75% dari volume k i total, id kemudian diisi air laut sampai volume semula dan ddilakukan pemupukkan kembali. Kultur dengan cara ini dapat dilakukan berulang-ulang hingga maksimal 8 siklus atau dalam 2 bulan masa kultur. Sistem partial ini lebih baik, karena

P

fitoplankton lebih stabil, namun memiliki kelemahan yaitu kemungkinan terjadinya kontaminasi bila pelaksanaan tidak hati-hati dan tidak menjaga kesterilan media, wadah dan peralatan lainnya. Fitoplankton

skala

massal

umumnya

dapat

digunakan

langsung sebagai pakan larva ikan atau secara tidak langsung

38


n

a

yaitu diberikan terlebih dahulu dalam kultur zooplankton yang merupakan pakan larva ikan. Fitoplankton yang digunakan langsung sebagai pakan larva ikan adalah Skeletonema sp. dan Chaetoceros sp. yaitu untuk pakan larva udang. Di samping sebagai pakan larva udang, Chaetoceros sp. juga dapat digunakan sebagai pakan kopepoda yang merupakan pakan awal kuda laut. Sedangkan Isochrysis sp., Pavlova sp., Navicula sp., dan Nitzschia sp. dapat digunakan sebagai pakan larva teripang dan kekerangan. Nannochloropsis, Tetraselmis dan Dunaliella merupakan pakan dalam kultur

n

Brachionus sp., Diaphanosoma dan Acartia. Fungsi lain ka

t

P

sa u

n

e

P

ri e fitoplankton hijau adalah sebagai media pemeliharaan larva P n dari intensitas ikan yang berguna bagi larva sebagai pelindung a dberacun yang terdapat cahaya yang kuat dan menetralisir gas n dalam media pemeliharaan. ta u Pemanenan fitoplankton ladilakukan dengan cara memindahkan e bersama air media kultur ke bak langsung fitoplankton K n zooplankton. Demikian juga halnya, bila akan pemeliharaan a ik di bak pemeliharaan larva, namun terlebih dahulu digunakan d i dditampung dalam wadah khusus, diletakkan lebih tinggi dari bak larva, dan dialirkan secara gravitasi, perlahan sesuai kebutuhan.

Keuntungan

teknik

tersebut

adalah

jumlah

pemberian lebih tepat dan tidak mengganggu larva karena pemasukan

secara

perlahan-lahan,

jika

dibandingkan

penggunaan pompa. Pemanenan pakan alami jenis bentik mikroalga dapat dilakukan dengan dua cara, pertama memindahkan substrat yang telah ditumbuhi bentik mikroalga ke bak pemeliharaan


39

n

a

benih teripang atau kekerangan. Cara kedua pemanenan langsung yaitu mikroalga yang menempel di kerok atau digosok dan ditampung dalam wadah tersendiri, selanjutnya dimasukkan ke dalam bak pemeliharaan, terutama untuk larva teripang.

Pemeliharaan

kekerangan

dan

teripang

tidak

memerlukan fitoplankton dalam jumlah besar, sehingga kultur cukup dilakukan dalam ukuran semi massal (100-1000 lt). Fitoplankton yang

biasa digunakan sebagai pakan hidup

antara lain: Pavlova sp., Isochrysis sp., Chaetoceros sp., Phaeodactylum

sp.,

Navicula

sp.,

dan

Nitzschia

sp.

n

Pemanenan dengan cara panen langsung disesuaikan ka dengan

kebutuhan,

karena

ri e apabila berlebihan dan P pendingin,nmaka mikroalga a d n

penyimpanan tidak di lemari tersebut akan membusuk. 9. Menetaskan Kista Artemia

ta

u

Unit kompetensi ini berlaku untuk melakukan kultur pakan a

l

e alami artemia yangK dilakukan di bak fiber berbentuk bulat atau n kerucut, yang aterdiri dari: menyiapkan peralatan, media kultur dan k

i melakukan dekapsulasi artemia, mengontrol proses kista artemia, d i

t

sa u

e

d penetasan, n

P

mengontrol

kualitas

dan

kuantitas

air

media

pemeliharaan, memanen artemia dan membuat laporan hasil kultur artemia.

P

Makanan alami lain yang diperlukan oleh larva pada stadium mysis dan Post Larva (PL) adalah Artemia salina. Artemia yang dijual di pasaran umumnya berupa cyste atau telur, sehingga untuk mendapatkan naupli artemia yang siap diberikan pada larva sebagai makanan, cyste atau telur perlu didekapsulasi lebih dahulu kemudian baru ditetaskan atau dikultur.

40


n

a

a. Menyiapkan Peralatan penetasan Ada beberapa sarana yang diperlukan untuk proses dekapsulasi, salah satu yang paling penting adalah bak atau tempat penetasan artemia. Bak penetasan artemia bisa terbuat dari fiberglass, plastik atau dari bahan lainnya. Bak penetasan yang paling mudah dibuat dan murah harganya adalah ember plastik dengan kombinasi corong plastik pada bagian bawahnya. Bentuk spesifik yang harus dipenuhi oleh bak penetasan ini adalah kerucut. Dengan bentuk kerucut, maka hanya dengan

n

menggunakan satu batu aerasi yang diletakkan pada bagian ka

t

P

sa u

n

e

P

ri e tengah dasar bak sudah bisa mengaduk seluruh volume air P n semua cyste dalam bak secara merata. Dengan demikian a d baik, karena tidak atau telur artemia bisa menetas dengan n ada yang melekat atau mengendap ta di dasar bak. u artemia sangat mudah, hanya Cara membuat bak penetasan la e plastik volume 20 liter dan sebuah diperlukan satuKember n besar yang lebar bukaan mulutnya sama corong a plastik ik lebar bagian bawah yang digunakan. Pembuatannya dengan d i ddengan cara memotong bagian bawah ember kurang lebih 5 cm dari dasar ember, kemudian menyambungnya dengan corong plastik.

Bak penetasan dengan volume 20-25 liter ini sudah bisa untuk menetaskan artemia sebanyak 150-200 gram dan sudah cukup untuk memberi makan larva yang dipelihara selama 3-4 hari. Selain dari bahan plastik, bak penetasan artemia juga bisa dibuat dari bahan fiberglass, namun


41

n

a

harganya mahal sehingga kurang sesuai untuk pembenihan udang skala rumah tangga. b. menyiapkan Media Kultur Ada

enam

langkah

yang

harus

diikuti

untuk

memperhitungkan jumlah Artemia yang ditambahkan ke dalam bak pemeliharaan, yaitu: 1) Jumlah Artemia yang dibutuhkan =A 2) Kepadatan Artemia/ml yang ada dalam bak pemeliharaan larva = B 3) A-B = C 4) C x Volume bak pemeliharaan larva dalam ml = D

t

sa u

n

ri e 5) Jumlah Artemia/liter dalam wadah penetasan = E P 𝐷 n 6) 𝐸 𝑥 1000= ml Artemia yang harus ditambahkan pada bak a d pemeliharaan larva. n a sederhana, cepat dan teliti Saat ini sudah ada alat t yang u laudang dan naupli Artemia di pasaran. untuk menghitung larva e K n a c. Melakukan Dekapsulasi Artemia ik Dekapsulasi adalah penanganan Cyste Artemia untuk id d n meningkatkan kemampuan menetas dengan cara

e

P

ka

menghilangkan cangkang luar yang tebal sebelum menetas. Dekapsulasi dan penetasan dimulai 24 jam sebelum waktu

P

(saat) naupli depergunakan sebagai makanan larva. Proses dekapsulasi memerlukan waktu sekitar 30 menit dan cyst dapat mencapai kemampuan menetas 90-100% dalam waktu 24 jam. Cyst Artemia yang tidak menetas dibuang. Wadah penetasan Artemia biasanya berbentuk kerucut. Naupli

42


n

a

Artemia yang menetas akan tenggelam bila aerasi dimatikan, cyst Artemia yang tidak menetas mengapung sehingga naupli Artemia dapat dengan mudah dipisahkan. A\Setiap gram cyst Artema yang didekapsulasi dapat menghasilkan sekitar 200.000 naupli Artemia. Bahan-bahan larutan dekapsulasi: 1. 71,0 ml larutan hipoklorite 2. 2,25 gr NaCl 3. 137,0 ml air laut (yang sudah disterilkan) 4. 0,1 NHCl

n

Metode dekapsulasi untuk 15 gram kista Artemia adalah ka

ri

e

sebagai berikut:

P

n Kista Artemia 1. Timbang kista Artemia secara hati-hati. a

dihidrasi dengan cara direndam d dengan air tawar yang

n

telah dberi garam dapur (NaCl) ta dengan salinitas maksmal

u

35 permil pada botol aukuran 1 liter atau 2 liter yang diberi

l

e aerasi selama K2 jam.

n 2. Tuangkan a kista Artemia yang telah dihidrasi ke dalam

t

P

sa u

e

P

d

n

ik saringan d i

120 µ. Kista Artemia dicuci dengan air tawar

(selama 1 menit) dan dikeluarkan melalui pipa saluran di dasar wadahnya.

3. Buat larutkan hipoklorit bisa berupa natrium hipoklorit/klorin (NaOCl) dengan dosis 10 cc untuk satu gram kista atau berupa kalsium hipoklorit/kaporit (Ca(Ocl)2 dengan dosis 0,67 gram untuk satu gram kista. 4. Kista yang sudah disaring dimasukkan ke dalam larutan hipoklorit,

diaduk

serta

diberi

aerasi

kuat.

Suhu

dipertahankan di bawah 40 oC.


43

n

a

5. Proses ini dinamakan dekapsulasi yang memakan waktu 5-15 menit ditandai dengan adanya perubaan warna kista dari coklat gelap menjadi abu-abu lalu orange. Kista Artemia sudah selesai terdekapsulasi ketika sudah tidak ada lagi perubahan warna. 6. Kista Artemia (di atas yang tenggelam) disaring dengan saringan 120 µ kemudian dicelupkan ke dalam larutan 0,1 NHCl selama 30 detik. 7. Selanjutnya kista dicuci dengan air laut sebanyak 6 kali hingga bau klorin hilang. Pekerjaan ini harus dilakukan

n

karena sangat penting. Kista ini telah tak bercangkang ka

t

sa u

n

e

P

ri e namun masih diselimuti oleh selaput embrio sehingga P n masih perlu untuk ditetaskan. a d 8. Kista Artemia sekarang dimasukkan dalam wadah n penetasan berbentuk kerucut ta yang diisi dengan 8 liter air u laut. la e 9. Beri aerasiK dengan kecepatan 10-20 liter hawa/menit. n Suhu dipertahankan antara 25-30 oC dengan pH 8-9. a ik penetasan diberi cahaya dari lampu TL dengan 10. Media d i d intensitas minimum 1.000 lux dengan jarak lampu ke

wadah 20 cm. Penetasan akan berlangsung selama 2448 jam.

P

11. Setelah menetas kista Artemia siap dipanen.

44


n

a

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja 1. Judul : Mendekapsulasi Artemia

2. Alat

: -

Timbangan;

-

Wadah penetasan artemia;

-

Saringan 120 µ;

-

Aerasi;

-

Becker glass;

-

Botol ukuran 1-2 liter

d

t

P

sa u

e P 4. Petunjuk

P

71,0 ml larutan hypochlorite;

-

2,25 gr NaCl;

-

137,0 ml air lautt(yang a sudah disterilkan); 0,1 NHCl; a

l

a

n

d

n

u

-

e Kista KArtemia;

-

Air tawar

- n Air laut; a k

i

id

n

-

-

n

ri

e

3. Bahan :

ka

: Gunakan pakaian kerja (wear pack), harap berhati-hati dalam menggunakan alat dan kembalikan sesuai kondisi semula.


45

n

a

5. Langkah Kerja : a. Timbang kista Artemia secara hati-hati. Kista Artemia dihidrasi dengan cara direndam dengan air tawar yang telah dberi garam dapur (NaCl) dengan salinitas maksmal 35 permil pada botol ukuran 1 liter atau 2 liter yang diberi aerasi selama 2 jam; b. Tuangkan kista Artemia yang telah dihidrasi ke dalam saringan 120 µ. Kista Artemia dicuci dengan air tawar (selama 1 menit) dan dikeluarkan melalui pipa saluran di dasar wadahnya; c. Buat larutkan hipoklorit bisa berupa natrium hipoklorit/klorin (NaOCl) dengan dosis 10 cc untuk satu gram kista atau berupa

n

a kalsium hipoklorit/kaporit (Ca(Ocl)2 dengan dosis 0,67 k gram ri

e

untuk satu gram kista;

P

n dalam larutan d. Kista yang sudah disaring dimasukkan ke a

dSuhu dipertahankan di hipoklorit, diaduk serta diberi aerasi kuat. n

ta

bawah 40 Oc;

u

e. Proses ini dinamakan dekapsulasi yang memakan waktu 5-15 a

l

e menit ditandai dengan K adanya perubaan warna kista dari coklat

n gelap menjadi a abu-abu lalu orange. Kista Artemia sudah selesai k

i terdekapsulasi ketika sudah tidak ada lagi perubahan warna; d i

t

sa u

d f. nKista Artemia (di atas yang tenggelam) disaring dengan

e

P

saringan 120 µ kemudian dicelupkan ke dalam larutan 0,1 NHCl selama 30 detik;

P

g. Selanjutnya kista dicuci dengan air laut sebanyak 6 kali hingga bau klorin hilang. Pekerjaan ini harus dilakukan karena sangat penting. Kista ini telah tak bercangkang namun masih diselimuti oleh selaput embrio sehingga masih perlu untuk ditetaskan;

46


n

a

h. Kista Artemia sekarang dimasukkan dalam wadah penetasan berbentuk kerucut yang diisi dengan 8 liter air laut; i. Beri aerasi dengan kecepatan 10-20 liter hawa/menit. Suhu dipertahankan antara 25-30 oC dengan pH 8-9; j. Media penetasan diberi cahaya dari lampu TL dengan intensitas minimum 1.000 lux dengan jarak lampu ke wadah 20 cm. Penetasan akan berlangsung selama 24-48 jam; k. Setelah menetas kista Artemia siap dipanen.

ri

e

a

n

la

t

sa u

e

P

d

n

P

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

ka

P


47

n

n

a

C. Penilaian/Evaluasi 1. Makanan yang tumbuh sendiri dari

tempat pemeliharaan

ikan ... A. Pakan Alami B. Pakan buatan C. Pakan suppelmen D. Pakan Tambahan E. Pakan utama 2. Jenis pakan alami dapat berupa … A. Nabati

C. Nabati dan hewani

a

D. Nekton

n

E. Bentos 3. Organisme

t

sa u

E. Plankton

P

48

u

la renik yang berukuran

D. Zooplanton


d

n

P

ta

e K fotosintesa dapat melakukan proes n a A. Fitoplankton ik d B. Bentos i d n C. Nekton

e

P

ri

e

B. Hewani

ka

mengikuti

arah arus

mempunyai klorofil ...

dan

n

n

a

4. Kultur plankton

yang di lakukan di ruang

tertutup dengan

bertujuan mendapatkan spesies murni (Mono Spesis) adalah ... A. Kultur massal B. Kultur semi masal C. Kultur out door D. Kultur murni E. Kultur Indoor 5. Untuk

menyakinkan

alat

yang

akan

di gunakan

sudah

disterilisasi di keringkan kembali dengan suhu 100 oC selama a 10 - 15 menit dengan menggunakan alat … A. AC

a

B. Kulkas

n

C. Autoclave D. Panci

la

E. Oven

n

d

rik

n

e

n

P

ta

u

e K

6. Pada kultur skala massal (volume 10-100 m3), jenis pupuk yang ka

i

digunakan id sebagai sumber nitrogen dan phospat adalah pupuk

t

P

sa u

P

e

d n pertanian adalah ... A. TSP B. KNO3 C. ZA D. SP3 E. NPK


49

n

a

7. Salah satu cara untuk menetaskan kista Artemia dengan menggunakan metode ... A. Penggaraman B. Perendaman C. Dekonsentrasi D. Dekapsulasi E. Dekomposisi 8. Bentuk spesifik yang harus dipenuhi oleh bak penetasan ini adalah kerucut. Berikut keuntungan bak penetasan berbentuk kerucut, kecuali ...

ka

i

r A. Dengan menggunakan satu batu aerasi yang diletakkan e

P seluruh pada bagian tengah dasar bak sudah bisa mengaduk a

d

volume air dalam bak.

n

B. Semua cyste atau telur artemia n bisa menetas dengan baik,

ta

karena tidak ada yang melekat atau mengendap di dasar u

la

e K

bak.

C. Kemudahann dalam

ka

membeli

dan

membuat

peralatan

penetasan. i

t

sa u

n

e

P

id

D.dKemudahan dalam memanen Artemia karena yang memiliki keran pengeluaran dibagian bawah.

E. Memudahkan

dalam

memisahkan

menetas dan tidak menetas.

P

50


kista

Artemia

yang

n

n

a

9. Kista Artemia yang telah terdekapsulasi akan berubah warna menjadi ... A. Coklat gelap B. Abu-abu C. Orange D. Coklat susu E. Kuning terang 10. Cahaya yang terlalu kuat dapat menghambat pertumbuhan fitoplankton, karena menyebabkan ..., sehingga kultur cenderung kurang berhasil. A. Suhu rendah

ri

e

B. Suhu tinggi C. Salinitas tinggi

a

D. Salinitas rendah

n

E. Blooming plankton

la

d

n

P

ka

ta

u

e D. Lembar Kunci Jawaban K 1. A 2. C

d 3. A n

t

P

sa u

i

id

n

ka

e P4. D 5. C 6. E 7. D 8. C 9. C 10. B


51

n

n

a

BAB IV MENGENDALIKAN KESEHATAN IKAN/LARVA UDANG

A. Lembar Informasi 1. Melakukan Pengendalian Hama Ikan Dalam budidaya ikan, serangan hama penyakit adalah masalah dan aspek yang sangat penting, artinya penanggulangan penyakit dan hama juga harus menjadi pengetahuan yang penting bagi petani ikan dan siapa saja yang hendak membudidayakan ikan. Sebab penyerangan penyakit maupun gangguan hama dapat mengakibatkan kerugian ekonomis.

t

sa u

n

ri e Serangan penyakit dan gangguan hama dapat menyebabkan P pertumbuhan ikan menjadi lambat (kekerdilan), n padat tebar sangat a d pemeliharaan lebih rendah, konversi pakan sangat tinggi, periode n lama, yang berarti meningkatnyata biaya produksi. Dan pada tahap u tertentu, serangan penyakit la dan gangguan hama tidak hanya e hasil panen (produksi), tetapi pada menyebabkan menurunnya K njauh dapat menyebabkan kegagalan panen. tahap yang lebih a ikini terkait dengan SKKNI Kelautan dan Perikanan pada Modul d i d Kompetensi Inti Budidaya Air Payau dengan Kode Unit: n

e

P

ka

a. PRK.AP02.034.01 dengan judul unit: Mengidentifikasi Hama Yang Menyerang Ikan.

P

b. PRK.AP02.035.01 dengan judul unit: Mengidentifikasi Penyebab Penyakit Ikan. c. PRK.AP02.036.01 dengan judul unit: Mencegah Hama Yang Menyerang Ikan. d. PRK.AP02.037.01 dengan judul unit: Mengobati Ikan Sakit.

52


n

a

Agar para pembudidaya ikan mampu mencegah serta mengatasi serangan penyakit dan gangguan hama yang terjadi pada

ikan

pemeliharaannya,

maka

mereka

perlu

dibekali

pengetahuan mengenai sumber masuknya hama, penyebab, dan jenisnya serta teknik-teknik penanggulangan hama. a. Faktor-Faktor Timbulnya Hama Lingkungan budidaya yang tertata baik belumlah cukup untuk menjamin keberhasilan usaha budidaya, karena organisme hama dapat masuk melalui berbagai media seperti air, manusia dan peralatan budidaya. Sikap pelaku budidaya

n

untuk tidak membuang hama ikan yang sudah mati misalnya ka ke

lingkungan,

mensucihamakan

peralatan

ri e yang

P

akan

n dibuang ke digunakan serta mengolah limbah sebelum a

dsepenuhnya dilakukan lingkungan adalah hal-hal yang belum n

ta

secara benar.

u

Untuk itu perawatan ikan a yang meliputi pemeliharaan dengan

l

e atau kualitas air, penggunaan alatpengelolaan lingkungan K n alat budidaya a dengan baik dan hygienies, penanganan ikan k

i dengan d cermat hendaknya selalu dilakukan.

t

P

sa u

P

e

n

i dKeberadaan

hama ikan di areal budidaya dapat disebabkan

oleh faktor-faktor : 1) Persiapan Lahan Yang Kurang Baik Pada saat akan dilakukannya usaha budidaya ikan, baik pembenihan, pendederan, maupun pembesaran, akan dilakukan

tahapan

persiapan

kolam

(dekontaminasi

kolam) meliputi proses pengapuran, pemupukan dan pemberantasan hama penyakit ikan. Salah satu tujuan pengapuran adalah membunuh bakteri patogen dan


53

n

a

organisme hama (eradikasi). Jika tahapan pemberantasan hama dan penyakit ini tidak dilakukan, maka hama ikan akan bebas hidup dan tumbuh bersama benih ikan yang dibudidayakan, sehingga hama akan menyerang dan menimbulkan penyakit pada ikan. Akibatnya, dapat menimbulkan kematian pada ikan yang dibudidayakan. 2) Konstruksi Wadah Konstruksi wadah dapat memicu timbulnya hama ikan. Wadah budidaya yang bersifat terbuka (outdoor) seperti kolam memudahkan hama untuk masuk, seperti melalui

n

pematang, saluran air, pintu masuk air (inlet), atau melalui ka

t

sa u

n

e

P

ri e permukaan air atau tanaman yang ada di pinggir kolam. P nseperti akuarium Sedangkan wadah yang bersifat tertutup, a d dan hatchery cukup aman dari serangan hama, tetapi si n pemilik wadah budidayata itu harus senantiasa waspada u akan keberadaan hama la ikan. e 3) Letak WadahK Budidaya n Wadah budidaya yang berdekatan dengan tempat hidup a k i hama, seperti di luar ruangan, atau tanpa atap, dekat id d dengan sungai akan memudahkan masuknya hama ke dalam kolam/wadah budidaya. Contohnya linsang, hal ini dipicu oleh adanya sumber makanan yang lebih terjamin di

P

dalam kolam, sehingga mereka akan menyerang ikan budidaya. Keberadaan hama juga dapat masuk bersama-sama dengan tanaman air yang digunakan di wadah budidaya baik sebagai assesoris (hiasan) atau untuk keperluan budidaya lainnya. Untuk itu kebersihan tanaman air harus

54


n

a

selalu dijaga dengan mencucinya menggunakan air bersih atau direndam dalam PK (Kalium Permanganat) bila diperlukan. Hama ikan sering dikenal juga dengan hewan tingkat tinggi yang secara langsung maupun tidak langsung mengganggu kehidupan ikan dengan cara mengisap cairan atau memakan sebagian atau seluruh tubuh ikan budidaya. Serangan hama pada umumnya lebih banyak terjadi pada pendederan dan pembesaran ikan, karena biasanya kegiatan tersebut biasanya dilakukan di alam terbuka,

n

a sedangkan pembenihan ikan dilakukan di ruangan k / areal ri

e

tertutup.

P

n bagian penting Upaya pemberantasan hama merupakan a

d golongan predator, kegiatan budidaya terutama untuk kompetitor

dan

mengendalikan

n

segalata jenis

u

hama a

l

ikan

hewan dapat

perusak..Untuk dilakukan

epencegahan dan penanggulangan. pendekatan, K yaitu

dua

n 2. Pemberantasan a hama k

i Pemberantasan hama dapat dikelompokkan menjadi 3 (tiga) d i

t

P

sa u

P

e

d yaitu : cara n

a. Mekanis Merupakan pengendalian hama tanpa menggunakan bahan kimia, dengan cara memburu, menangkap, membunuh hama dengan menggunakan peralatan mekanis seperti jala, jaring, pancing, parang, tombak, dan cangkul. Dalam kondisi serangan hama yang sudah parah, tindakan yang dapat dilakukan adalah memindahkan ikan budidaya dan memisahkannya dari hama.


55

n

a

Sementara itu tindakan pengendalian hama khususnya pada tambak dilakukan dengan cara seperti : 1) Sebelum benur ditebar, usahakan agar tambak dikeringkan secara total agar semua organisme mati dan pengeringan dasar tambak dapat membantu memperbaiki struktur tanah (Gambar 4).

e

ri

a

d

n

P

ka

n

Gambar 5. Pengeringan ntambak

ta

t

sa u

n

e

P

u a l 2) Lubang-lubang pada pematang sebaiknya diperbaiki, jika e K terdapat lubang dapat dilakukan penyumbatan. Cara lain n a adalah ik dengan melapisi tanggul dengan plastik (Gambar ).6 id d

P

Gambar 6. Melapisi tanggul dengan plastik

56


n

a

3) Dilakukan dengan menangkapi udang liar, ikan, kepiting dan ular. Cara ini sangat efektif jika dilakukan teratur sehingga menghemat biaya pembelian pestisida. b. Kimia Merupakan metode pemberantasan hama menggunakan bahan kimia untuk meracuni hama sehingga hama terganggu, sakit dan mati. Bahan kimia yang disarankan adalah pestisida organik seperti saponin dan akar tuba. Dalam keadaan biasa, air garam dapat diberikan untuk membunuh hama atau hewan

n

kecil seperti lintah. Jika cara mekanis mengalami hambatan ka

t

sa u

P

e

ri e maka cara kimiawi dapat digunakan tetapi tetap harus hati-hati P dalam pemilihan jenis maupun dosis yangndigunakan. Cara a dtenaga dan waktu. kimiawi lebih menguntungkan dalam hal n c. Biologis ta u Pengendalian hama asecara biologis dilakukan dengan l e mengeliminasi hama K dengan dampak negatif bagi lingkungan n manusia yang sesedikit mungkin seperti dan kesehatan a ik menggunakan bakteri pengurai dan tanaman air. Pengendalian d i d n hama secara biologis menekankan pada upaya pemeliharaan benih yang tahan atau bisa terhindar dari serangan hama.

P


57

n

a

3. Secara detail, beberapa tehnik pengendalian hama-hama ikan diuraikan sebagai berikut : a) Pengendalian Burung Pengendalian

burung

dengan

melakukan

pengawasan

terhadap unit-unit usaha pembenihan (kolam pendederan atau bak benih). Atau dengan melakukan pengusiran jika melihat kehadiran burung, membuat penghalang dari bambu dan diberi rumbai/tali pada kolam sehingga burung tidak dapat menerkam ikan (Gambar 7). Atau dengan menyingkirkan ranting/dahan pohon mati di sekitar kolam sehingga tidak ada tempat bertengger burung predator ikan.

e

ri

a

n

d

n

P

ka

n

ta

t

sa u

u a l Gambar 7. Penghalang e burung menggunakan jaring K n a b) Pengendalian Labi-labi ik id mudah adalah dengan menangkap labi-labi dengan Cara d n serok/tangguk, memancing dengan umpan daging seperti anak

e

P

ayam/ikan, atau dengan secara rutin melakukan pembersihan kolam, tempat pembenihan dan sekitarnya seperti di lingkungan

P

luar kolam sebagai lokasi persembunyian labi-labi, walaupun tidak ada petunjuk yang jelas sebagai indikator keberadaan labi-labi di lingkungan budidaya. Beberapa petunjuk yang dapat dijadikan patokan untuk keberadaan labi-labi adalah tidak adanya bangkai ikan yang mati tetapi hasil sampling terhadap

58


n

a

populasi ikan mengalami penurunan, air kolam menjadi keruh karena labi-labi menyelam ke dalam lumpur (Gambar 8).

Gambar 8. Hama labi-labi

c) Pengendalian Kodok

ka

n

Ada 3 (tiga) cara yaitu dengan perbaikan sarana perkolaman, ri

e

P telur-telur pengontrolan kebersihan lokasi dan pembuangan a

kodok (Gambar 9).

n

la

t

P

sa u

e

P

d

n

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

Gambar 9. Hama Kodok

d) Pengendalian Ular Dengan

cara

menangkap

langsung

atau

dengan

cara

pemberian pagar sehingga ular tidak dapat masuk ke area perkolaman (Gambar 10).


59

n

a

Gambar 10. Hama Ular e) Pengendalian Biawak Dengan cara menangkap menggunakan jerat atau kail yang dipasang pada tempat-tempat yang biasa didatangi oleh biawak (Gambar 10).

e

ri

a

n

la

d

n

P

ka

n

ta

u

e K Gambar 11. Hama Biawak n

a

ik

id f) Pengendalian Lingsang/Sero

t

sa u

e

P

d

n

Dengan cara memasang rintangan berupa ranting bambu di kolam atau memasang jaring pengaman dari bahan tambang yang kuat. Pemagaran dan pemasangan lampu penerangan di

P

bagian-bagian tertentu sangat efektif juga untuk mencegah keberadaan lingsang (Gambar 12).

60


n

a

Gambar 12. Hama Linsang

g) Pengendalian Kepiting Dengan cara memberantas secara langsung yakni dengan membunuh atau menangkapi kepiting di luar dan di lubangn

a

k ke lubang tanggul. Atau dengan cara menaburkan sekamripadi e

dalam lubang-lubang kepiting sehingga akan keluar P dan pindah

a

ke tempat lain (Gambar 13).

n

la

t

P

sa u

e

P

d

n

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

Gambar 13. Hama Kepiting

h) Pengendalian Belut Dengan cara menangkap menggunakan tangan kosong atau alat khusus menangkap belut seperti pancing yang diberi umpan ikan kecil/anak kodok atau dengan bubu yang sudah diberi umpan dan dibenamkan ke dalam lumpur pada sore hari. Ada juga yang menggunakan racun/tuba untuk membunuh belut pada saat pengeringan kolam (Gambar 14).


61

n

a

Gambar 14. Hama belut i) Pengendalian Ikan Gabus Dengan cara memasang saringan dari ijuk pada saluran

n pemasukan air secara rapat sehingga telur, anak ikan dan ikan

t

sa u

n

e

P

P

a k i gabus dewasa tidak ikut masuk ke kolam bersama aliran air. r e Atau dengan cara menangkapnya menggunakanP pancing yang n sudah diberi umpan ikan kecil, cacing atau a anak kodok. Pada d saat pengolahan lahan untuk mencegah masuknya gabus ke n a t kolam, dasar kolam harusubenar-benar kering sampai retakretak karena kondisi inila e akan menyulitkan bagi ikan gabus untuk K dapat bertahan hidup (Gambar 15). n a ik d i d

Gambar 15. Hama Ikan Gabus

62


n

a

j) Pengendalian Kini-kini/Larva capung Dapat dilakukan secara mekanis, biologis dan kimiawi. Secara mekanis

adalah

dengan

cara

mengendalikan

perkembangbiakan induk, telur serta larva capung melalui kegiatan sanitasi/kebersihan pematang atau tanggul kolam baik dari rerumputan/semak ataupun perdu. Sedangkan secara biologis dititikberatkan pada upaya pemeliharaan terhadap benih yang tahan atau bisa terhindar dari serangan kini-kini artinya

dengan

memanfaatkan

kelemahan

kini-kini

dan

kelebihan jenis ikan tertentu. Pengendalian secara kimiawi umumnya

dilakukan

sebagai

alternatif

akhir

menggunakan pestisida/insektisida (Gambar 16).

a

n

la

d

n

ri

e

P

n

karena ka

ta

u

e K

n a Gambar 16. Hama Kini-kini/Larva capung ik id

t

P

sa u

d n k) Pengendalian Ucrit/Larva Cybister

e

P

Dengan cara menghindari bahan organik yang menumpuk di sekitar kolam, memasang saringan pada pintu air masuk kolam. Penangkapan dengan jumlah banyak dapat dilakukan dengan menggunakan alat tangkap seser. Pemberantasan ucrit dapat dilakukan dengan penyemprotan bahan kimia, walaupun ini merupakan solusi akhir jika populasi ucrit sulit diberantas secara mekanis. Bahan kimia yang umumnya digunakan


63

n

a

adalah minyak tanah, yang disemprotkan di permukaan air kolam sehingga ucrit yang ada di kolam tidak dapat mengambil oksigen dari udara bebas dan akhirnya mematikan ucrit (Gambar 17).

Gambar 17. Hama Ucrit/ Larva Cybister

ri

e

a

n

d

P

n

ka

n

l) Pengendalian Notonecta/Bebeasan a

t

u Dengan cara memasang a saringan berupa filter dari bahan l

e kawat halus atau Kkain kassa halus pada pintu masuknya air n telur dan benih Notonecta masuk ke air. untuk mencegah ka

i Pemberantasan t

sa u

d dengan

n

e

P

id

dianjurkan

menggunakan

minyak

tanah

cara memercikkan minyak tanah ke permukaan air

sebanyak 500 cc/100 m2 luas permukaan kolam. Notonecta akan mati karena stigma atau alat pernafasannya kemasukan

P

minyak tanah. Yang perlu diingat adalah pada saat pemberian minyak tanah, agar mendapatkan hasil yang efektif maka pintu air masuk dan keluar harus ditutup (Gambar 18).

64


n

a

Gambar 18. Hama Notonecta

4. Melakukan Pengendalian Penyakit Ikan Timbulnya serangan penyakit ikan di kolam merupakan hasil interaksi yang tidak serasi antara ikan, kondisi lingkungan dan n organisme penyakit.

a

Interaksi yang tidak serasi ini riktelah

e

menyebabkan stress pada ikan, sehingga mekanisme P pertahanan

n

diri yang dimilikinya menjadi lemah dan akhirnya a mudah diserang

n

oleh penyakit.

d

Hubungan antara parasit, ikanta (inang) dan faktor lingkungan

u

la (yang disebut Interaksi Tripel) terhadap terjadinya penyakit e

digambarkan dalamK diagram Venn pada Gambar 19.

i

t

sa u

e

P

d

n

id

n

ka

P

Gambar 19. Diagram Venn Interaksi Triple


65

n

a

Inang dapat berupa ikan atau hewan air lainnya dimana daya tahan tubuh inang terhadap serangan penyakit dipengaruhi oleh faktor-faktor antara lain : umur dan ukuran, jenis, daya tahan tubuh dan status kesehatan ikan. Menurut Sachlan dalam Afrianto (1992), penyakit ikan adalah segala sesuatu yang dapat menimbulkan gangguan pada ikan, baik secara langsung maupun tidak langsung. Penyakit ikan dapat dibedakan menjadi dua, yaitu : a. Penyakit

Parasiter/Infektif

(Infectious

disease)

adalah

penyakit yang disebabkan oleh aktivitas organisme parasit.

Organisme yang sering menyerang ikan peliharaan antara ka

t

sa u

e

P

n

ri e lain virus, bakteri, jamur, protozoa, golongan cacing dan P n udang renik. Bakteri dan virus akan menyebabkan infeksi a d disebabkan oleh pada ikan budidaya, sementara yang n parasit akan mengakibatkantinvestasi pada ikan budidaya. ; a u b. Penyakit Non Parasiter/Non la Infektif (Non Infectious disease) e disebabkan bukan oleh hama maupun adalah penyakitK yang n organisme parasit. Penyakit ini dapat dikelompokkan menjadi a k i tiga idberdasarkan faktor penyebabnya, yaitu: d n 1) Lingkungan

Penyakit non parasiter yang disebabkan oleh faktor lingkungan yang kurang menunjang bagi kehidupan ikan,

P

antara lain pH air terlalu tinggi/rendah, kandungan oksigen terlarut terlalu tinggi/rendah, perubahan temperatur air secara tiba-tiba, adanya gas beracun hasil penguraian bahan

organik

(gas

metan,

ammonia

atau

asam

belerang), adanya polusi dari pestisida (insektisida atau herbisida), limbah industri atau limbah rumah tangga.

66


n

a

Dalam budidaya laut khususnya, penyebab penyakit non parasiter (non infektif/infectious disease) akibat lingkungan dapat berupa : a) Faktor kimia dan fisika, antara lain: perubahan salinitas air secara mendadak; pH yang terlalu rendah (air asam), pH yang terlalu tinggi (air basa / alkalis); kekurangan oksigen dalam air; zat beracun, pestisida (insektisida, herbisida dan sebagainya); perubahan suhu air yang mendadak; kerusakan mekanis (luka-luka); perairan terkena polusi.

b) Stres : stres yang terjadi pada ikan berkaitan dengan ka

i

ri e timbulnya penyakit pada ikan tersebut. Stres P merupakan suatu rangsangan yangn menaikan batas a d diri ikan terhadap keseimbangan psikologi dalam n lingkungannya. Biasanya ta stres pada ikan diakibatkan u perubahan lingkungan akibat beberapa hal atau la e perlakuan akibat pengangkutan K misalnya n /transportasi ikan-ikan yang dimasukan kedalam a k

t

P

sa u

e

P

d

n

id

jaring apung di laut dari tempatpengangkutan

biasanya akan mengalami shock, berhenti makan dan mengalami pelemahan daya tahan terhadap penyakit.

c) Kepadatan ikanyang melebihi daya dukung perairan (carrying capacity) akan menimbulkan persaingan antar ikan tinggi, oksigen terlarut menjadi rendah dan sisa metabolisme seperti ammonia akan meningkat sehingga dapat menimbulkan stres dan merupakan penyebab timbulnya serangan penyakit.


67

n

n

a

2) Pakan/ Nutrisi Salah satu penyakit non parasiter akibat pakan adalah kelaparan. Kelaparan merupakan kekurangan nutrisi yang bersifat absolut. Kelaparan pada ikan menunjukkan gejala seperti anemia dan hambatan pertumbuhan. Contoh lainnya adalah penyakit yang disebabkan karena kualitas pakan yang diberikan kurang baik (malnutrition) antara lain karena kekurangan vitamin, gizinya rendah, bahan pakan yang digunakan telah busuk atau mengandung racun. 3) Turunan

t

sa u

e

P

d

n

ka

n

ri e Penyakit yang disebabkan oleh turunan, misalnya bentuk P fisik dan kelainan- kelainan tubuh yangnsudah ada sejak a dikan yang cacat, sisik lahir, seperti tubuh bengkok, larva n tidak lengkap atau sirip melengkung. Bentuk fisik dan ta u kelainan-kelainan a l tubuh yang disebabkan oleh keturunan, e dimana faktor K keturunan sangat berpengaruh langsung n penampilan fisik ikan. Untuk mencegahnya terhadap a ik dilakukan seleksi induk yang ketat pada saat harus d i melakukan breeding. Variasi genetika ini juga dapat menyebabkan terjadinya kanibalisme, tutup insang yang tidak dapat menutup sempurna, ikan menjadi kerdil dan

P

cacat. Secara garis besar kondisi ikan sakit atau penyakit digolongkan menjadi 2 (dua) kelompok penyebab penyakit ikan yang harus selalu diwaspadai oleh para petani ikan dan hobiis (kolektor) ikan, yaitu kelompok penyakit patogen dan kelompok penyakit non patogen. Kelompok

68


n

a

penyakit patogen diartikan sebagai kelompok penyakit yang disebabkan oleh jasad hidup berupa parasit, jamur, bakteri dan virus dan biasanya menyebabkan infeksi pada ikan

yang

diserangnya.

Sedangkan

kelompok

non

patogen adalah kelompok penyakit yang disebabkan oleh bukan

jasad

hidup,

antara

lain

disebabkan

oleh

perubahanlingkungan seperti kepadatan ikan terlalu tinggi, variasi lingkungan (oksigen, suhu, pH, salinitas, dsb.), biotoksin (toksin alga, toksin zooplankton, dsb.), polutan, rendahnya mutu pakan, dan lain-lain.

n

Berikut ini beberapa tanda udang yang dapat menjadi ka

t

P

sa u

e

P

d

n

ri e patokan akan adanya serangan penyakit yaitu : P a) Udang terlihat pasif, lemah dan n terjadi perubaan a d tingkah laku; n b) Nafsu makan menurun, ta bahkan pada udang yang u sangat lemah tidak la ada nafsu makan sama sekali. e Di kolam/tambak K di mana terdapat organisme predator nsulit dideteksi, karena tubuh ikan/udang yang umumnya a ik diserang akan habis dimangsa. Untuk mengetahui d i organisme predator perlu dilakukan pengamatan terhadap

jenis ikan atau organisme predator lainnya yang ada di kolam. Penyakit yang disebabkan oleh adanya senyawa beracun di dalam kolam umumnya sulit untuk diidentifikasi, sebab efek dari senyawa beracun ini terhadap ikan relatif cepat, sehingga petani sering terlambat untuk mengatasinya.


69

n

a

Untuk mencegah timbulnya penyakit pada ikan budidaya dapat dilakukan hal-hal sebagai berikut : a)

Melakukan persiapan lahan yang benar, yaitu pengeringan,

pengapuran

dan

pemupukan.

Pengeringan bertujuan untuk memutus siklus hidup penyakit, dilakukan kira-kira selama tiga minggu sampai

dasar

kolam

retak-retak.

Pengapuran

digunakan untuk menstabilkan pH tanah dan air serta

dapat

membunuh

bakteri

dan

parasit.

Pemupukan digunakan untuk menyuburkan kolam dan menumbuhkan fitoplankton

sebagai pakan ka

ri

e

alami.

P

n Menjaga kualitas air pada saat pemeliharaan. Hal ini

b)

a

dtreatment di tambak dapat dilakukan dengan cara n

menggunakan probiotik ta secara teratur setiap hari.

u

Probiotik akan amendegradasikan bahan organik,

l

e menguraikan K

t

sa u

e

P

d

n

gas

dan

ikpenyakit.

id c)

Meningkatkan ketahanan tubuh ikan/udang melalui kekebalan

non

spesifik secara

dengan


aplikasi

teratur seperti vitamin,

betaglukan dan lipopolisacaridae (LPS).

70

menekan

n pertumbuhan bakteri merugikan penyebab timbulnya a

immunostimulan

P

beracun

n

n

a

5. Jenis Obat dan Bahan Kimia Mencegah lebih baik dari mengobati adalah prinsip yang tepat untuk mengatasi setiap gangguan penyakit ikan. Mencegah penyakit akan jauh lebih baik dari mengobatinya. Namun, apabila ikan/udang kita sudah terlanjur terinfeksi penyakit, pengobatan dapat dilakukan dengan menggunakan berbagai jenis obat dan bahan kimia.Pada tahap awal, seorang petani ikan hendaknya memiliki kemampuan dan keterampilan untuk mengenal tandatanda awal dari ikan/udang yang terkena penyakit. Ini sangat diperlukan agar tindakan pencegahan dan pengendalian terhadap serangan penyakit tersebut juga dapat dilakukan secara dini.ka Pengobatan merupakan suatu usaha yang

ri e dilakukan P

n

oleh

n para pembudidaya ikan jika ikan yang dipelihara terserang a

d terhadap ikan/udang penyakit. Sebelum melakukan pengobatan n

yang sakit, terlebih dahulu harus tadiketahui jenis penyakit yang

u

menyebabkan ikan/udanga sakit agar dapat diketahui jenis obat

l

e yang akan digunakan K untuk menyembuhkan penyakit tersebut.

n harus diperhatikan oleh para pembudidaya ikan Ada tiga hala yang k

i melakukan pengobatan terhadap beberapa jenis yang d akan i

t

P

sa u

P

e

d infeksi yaitu: penyakit n

a. Jika penyakit ikan/udang disebabkan oleh virus maka tidak ada obat yang dapat memberantas virus tersebut. Yang bisa dilakukan adalah mengurangi hal-hal yang menyebabkan terjadinya penyakit. b. Jika penyakit disebabkan oleh bakteri maka obat yang dapat digunakan adalah bahan kimia sintetik atau alami atau antibiotika.


71

n

a

c. Jika penyakit disebabkan oleh jamur dan parasit maka obat yang digunakan adalah bahan kimia. Pengobatan ikan sakit dapat dilakukan beberapa metoda. Metoda yang dilakukan harus mempertimbangkan antara lain; ukuran ikan, ukuran wadah, bahan kimia atau obat yang diberikan dan sifat ikan. Beberapa metoda pengobatan adalah sebagai berikut : a. Melalui suntikan dengan antibiotika. Metoda penyuntikan dilakukan bila yang diberikan adalah sejenis obat seperti antibiotik atau vitamin. Penyuntikan

n

dilakukan pada daerah punggung ikan yang mempunyai ka jaringan otot lebih tebal. Penyuntikan hanya

ri e dilakukan P

pada

ikan yang berukuran besar terutama ukurann induk. Sedangkan

a

yang kecil tidak dapat dilakukan.

n

d

ta

b. Melalui makanan.

u

Obat atau vitamin dapat a diberikan melalui makanan. Akan

l

e tetapi bila makanan K yang diberikan tidak segera dimakan ikan

n maka konsentrasi obat atau vitamin pada makanan akan a k

i karena sebagian akan larut dalam air. Oleh karena menurun d

t

sa u

n

e

P

i ditu

metoda ini afektif diberikan pada ikan yang tidak

kehilangan nafsu makannya.

P

72


n

a

c. Perendaman Metoda perendaman dilakukan bila yang diberikan adalah bahan

kimia

untuk

membunuh

parasit

maupun

mikroorganisme dalam air atau untuk memutuskan siklus hidup

parasit.

Pengobatan

ikan

sakit dengan

metoda

perendaman adalah sebagai berikut: a. Pengolesan dengan bahan kimia atau obat, metoda ini dilakukan bila bahan kimia atau obat yang digunakan dapat membunuh ikan, bahan kimia atau obat dioleskan pada luka di tubuh ikan.

n

a b. Pencelupan; Ikan sakit dicelupkan pada larutan k bahan kimia atau obat selama 15 – 30 detik,

ri e metoda ini P

pun

ndigunakan dapat dilakukan bila bahan kimia atau obat yang a

meracuni ikan.

n

d

c. Perendaman; dilakukan bila tabahan kimia atau obat kurang

u

sifat racunnya ataua konsentrasi yang diberikan tidak akan

l

e perendaman jangka pendek (5 – 15 membunuh ikan.Pada K n menit)adapat diberikan konsentrasi yang lebih tinggi

t

P

sa u

e

P

d

n

ik pada perendaman dengan waktu yang lebih lama daripada d i (1 jam lebih sampai beberapa hari).

Jenis

bahan

kimia

dan

obat

yang

digunakan

dalam

pengobatan dan pencegahan harus mempertimbangkan antara lain: 1) Dalam dosis tertentu tidak membuat ikan stress maupun mati 2) Efektif dapat membunuh parasit 3) Sifat racun cepat menurun dalam waktu tertentu.


73

n

a

4) Mudah mengalami degradasi dalam waktu singkat. 6. PerhitunganDosis Obat dan Metode Pengobatan Dosis obat yang digunakan sangat tergantung pada penyebab penyakit, tingkat serangan penyakit, dan jenis obat yang digunakan. Penyakit patogen pada ikan dapat disebabkan oleh bakteri, virus dan jamur. Berikut adalah jenis dan dosis obat yang digunakan untuk tiap-tiap jenis serangan: 1. Virus patogen pada udang Ada

beberapa

jenis

virus

yang

sering

ditemukan

menyerang udang, yaitu : 1) Invefecttious Myonecrosis Virus (IMNV)

e

ri

P

ka

n

IMNV pertama kali dilaporkan di wilayahn Brazil pada tahun

a

2002 dan saat ini sudah tersebard luas di berbagai sentra budidaya

udang

di

n a tIndonesia

u

serta

menimnbulkan

kerugian yang cukup abesar.

l

e IMNV dapat Kmenyerang secara tunggal dan tergolong

n ganas akarena bisa mematikan udang berumur 60-80 hari

t

sa u

e

P

d

n

ik sekejap atau tingkat kematian antara 10-30%, dan dalam d i bahkan ada yang mencapai 60%. Jenis virus ini dapat

menyerang bersamaan dengan jenis virus lain (multi infection) terutama Taura Syndrome Virus (TSV) dan/atau

P

White Spot Syndrome Virus (WSSV) dengan tingkat kematian yang signifikan. Ancaman infeksi IMNV pada budidaya udang vanname belum dapat ditanggulangi secara optimal. Berbagai upaya penanggulangan telah dilakukan untuk mengatasi penyakit tersebut, salah satu strategi penanggulangan

74


n

a

yang masih terus dikaji oleh para praktisi adalah melalui penerapan “Good Management Practices” yang intinya berusaha meningkatkan status kesehatan udang dan meminimalisir sumber penyakit secara fisikal, kimia, biologs, dan ekologis. Namun hingga kini belum tersedia teknologi penanggulangan penyakit yang memiliki tingkat keberhasilan dan kesesuaian yang tinggi terhadap variasi kondisi pertambakan di Indonesia. Karakteristik serangan IMNV ditandai dengan adanya nekrosis berwarna keputihan pada jaringan otot atau

n

a daging terutapa pada daerah 2 ruas belakang di k depan

t

P

sa u

e

P

d

n

ri e ekor serta pada pangkal ekor. Beberapa gejala klinis P n serangan IMNV, yaitu: a d baik, pertumbuhan a) Awalnya udang makan dengan n fisiknya pun bagus. Namun, ta ketika mencapai umur 60u 80 hari, tiba-tiba lanafsu makannya turun drastis; e b) Dagingnya K berwarna putih keruh, kemudian tepi n udang bersemburat merah seperti udang pleura a ikrebus; d i c) Bentuk usus saat diamati berkelok-kelok dan terjadi pembengkakan pada kelenjar limpa; d) Perut udang kosong, dan bagian pangkal ekornya pucat; e) Otot-otot daging mengalami nekrosis, mengkerut di kepala, termasuk terjadi perubahan patologi pada jaringan hepatopankreas. Berdasarkan penelitian menunjukkan bahwa gejala klinis tersebut terjadi pada udang vanname, namun hal yang


75

n

a

sama tidak terjadi pada udang windu (Penaeus monodon) dikarenakan udang tersebut memiliki karapas yang cukup tebal. Setelah diinfeksi selama satu bulan tidak terjadi kematian pada udang windu. Hal tersebut menyimpulkan bahwa udang vanname merupakan spesies yang paling rentan terhadap IMNV. 2) Early Mortality Syndrome (EMS) Dikenal juga sebagai Acute Hepatopancreatic Necrosis Disease (AHPND) yang disebabkan oleh serangan bakteri Vibrio parahaemolyticus yang telah terinfeksi oleh virus

n

a yang diketahui sebagai fag sehingga bekteri k dapat

t

sa u

e

P

d

n

ri e melepaskan racun. Penyakit ini menyerang udang windu P n (P. monodon) dan udang vaname (L. vannamei) (gambar a 20). Gejala klinis serangan dapatd terlihat pada 10-30 hari n setelah masa tebar. Kematian ta dapat mencapai 40-100% u dalam waktu 4 hari. la e K n a ik d i

P

Gambar 20. Penyakit Early Mortality Syndrome (EMS)

76


n

a

Penanganan udang yang terinfeksi EMS dengan cara memusnahkan semua udang yang terinfeksi. Lakukan desinfeksi air tambak dengan chlorine 200 pppm selama 1 hari. Segera laporkan ke UPT Badan Karantina Ikan Pengendalian Mutu dan keamanan Hasil Perikanan setempat. Beberapa kegiatan berikut ini juga bermanfaat untuk mengendalikan serangan penyakit ikan/udang yaitu: a) Pengaliran Air Pengaliran air adalah salah satu cara untuk mengatasi serangan

t

P

sa u

e

P

d

n

ikan/udang

di

n

kolam/tambak, ka

ri e disebabkan oleh senyawa beracun atau kualitas air P n kolam yang kurang memenuhi syarat. Pengaliran a d senyawa beracun dimaksudkan untuk mengencerkan n atau menciptakan kondisi ta lingkungan kolam yang lebih u baik, sehinggaa l daya tahan tubuh ikan tetap baik. e air yang lancar akan menghanyutkan AdanyaK aliran npakan dan hasil ekskresi, sehingga tidak terdapat sisa a k

i

id

penyakit

senyawa beracun hasil dekomposisi bahan tersebut.

Aliran air juga dapat mempertahankan temperatur dan konsentrasi oksigen di tambak tetap menunjang kehidupan udang.

b) Pengeringan tambak Sering

dijumpai

kematian

udang

di

tambak

disebabkan masuknya senyawa racun ke dalam tambak, baik disengaja maupun tidak. Penggunaan insektisida untuk pertanian maupun buangan limbah industri yang tidak dilakukan secara hati-hati dapat


77

n

a

menyebabkan masuknya senyawa beracun tersebut ke dalam tambak dan menimbulkan masalah penyakit. Untuk mengatasi kematian udang secara masal karena keracunan sebaiknya dilakukan penutupan saluran pemasukan air dan memindahkan udang yang terkena racun secepat mungkin ke tambak lain atau saluran air yang tidak tercemar oleh racun atau limbah industri. Tindakan selanjutnya adalah mengeringkan tambak selama beberapa hari agar daya racun dari senyawa tersebut menjadi lemah.

n

a2 Penanganan terhadap ikan sakit dapat dibagi k atas (dua) langkah yaitu : a) Berdasarkan

ri

e

P

n yaitu budidaya

tehnik

a

berupa

d pemberian pakan tindakan-tindakan menghentikan n

pada udang, mengganti ta pakan dengan jenis lain,

u

mengelompokkan a udang menjadi kelompok yang

l

e kepadatan/densitasnya K

i

n memungkinkan a k

t

sa u

e

P

d

n

id

rendah,

dan

bila

tidak

lagi maka udang dapat dipanen

daripada menjadi wabah bagi udang lainnya;

b) Berdasarkan terapi kimia yaitu berupa pemeriksaan kepekaan dari masing-masing obat yang telah dan akan digunakan, pemeriksaan batas dosis yang

P

aman untuk masing-masing obat agar tidak terjadi over dosis, dan memperhatikan keterangan yang dikeluarkan oleh pabrik obat tersebut.

78


n

a

7. Propilaksis dan Terapi Ikan Propilaksis atau profilaksis merupakan prosedur pencegahan penyakit. Propilaksis terbagi menjadi dua, yaitu 1) mencegah munculnya serangan penyakit, 2) mencegah ikan/udang yang sudah tertular untuk tidak semakin memburuk dan masih bisa diselamatkan. Propilaksis dapat dilakukan dengan cara vaksinasi dan seleksi udang yang tahan terhadap infeksi penyakit serta dengan memberikan vaksin dan immunostimulan atau ikan diberikan vitamin untuk meningkatkan daya tahan tubuhnya. Terapi

ikan/udang

merupakan

tindakan

pengobatan

yang

n

a dilakukan terhadap ikan/udang yang terserang penyakit. k Terapi

t

sa u

ri e ikan/udang terbagi menjadi dua, yaitu: Terapi abortive adalah P n kondisi medis pengobatan yang dimaksudkan untuk menghentikan a d yang dilakukan pada dari perkembangan lebih lanjut. Pengobatan n tanda-tanda paling awal ta dari munculnya penyakit. u Terapi supportive adalahasuatu terapi untuk meningkatkan l e kenyamanan ikan yang K terserang penyakit untuk mempercepat nmisalnya dengan mengurangi kepadatan dan penyembuhan, a ik kualitas air. meningkatkan d i d n

e

P

P


79

n

a

B. Lembar Praktek Unjuk Kerja 1. Judul : Melakukan tindakan pengobatan ikan melalui Perendaman 2. Alat

: - Timbangan gantung; - Timbangan digital;;

3. Bahan

-

Serok/seser;

-

Ember;

-

Kayu pengaduk

: - Obat penghilang parasit;

ri

e

- Air tawar

P

ka

n

n harap berhatiGunakan pakaian kerja (Wear pack),

4. Petunjuk :

a

d alat dan kembalikan hati dalam menggunakan n

sesuai kondisi semula. ta

la

5. Langkah Kerja :

u

e bila bahan kimia atau obat kurang a. Perendaman; dilakukan K

n atau konsentrasi yang diberikan tidak akan sifat racunnya a k

i membunuh ikan; d i

t

sa u

e

d nb. Pada perendaman jangka pendek (5 – 15 menit) dapat

P

diberikan konsentrasi yang lebih tinggi daripada pada perendaman dengan waktu yang lebih lama (1 jam lebih

P

sampai beberapa hari); c. Jenis

bahan

kimia

dan

obat

yang

digunakan

dalam

pengobatan dan pencegahan harus mempertimbangkan antara lain:

80


n

a

1) Dalam dosis tertentu tidak membuat ikan stress maupun mati 2) Efektif dapat membunuh parasit 3) Sifat racun cepat menurun dalam waktu tertentu. 4) Mudah mengalami degradasi dalam waktu singkat. d. Timbang berat ikan yang akan ditreatmen perendaman menggunakan timbangan gantung. e. Lakukan perhitungan dosis obat yang disesuaikan dengan cara pemakaian yang ada dibrosur dan berdasarkan berat ikan. f. Timbang obat menggunakan timbangan digital.

t

sa u

ka

e

P

n

ri e g. Larutkan obat menggunakan air tawar sesuai dengan cara P penggunaan yang ada dibrosur ke dalam n ember yang telah a d disiapkan. n h. Masukkan ikan yang sudahtditimbang ke dalam larutan obat a u tingkat. selama 5-10 menit tergantung la e telah ditreatmen ke dalam wadah i. Masukkan ikanKyang n yang telah diisi air baru. pemeliharaan a ik d i d n

P


81

n

a

C. Penilaian/Evaluasi Soal-soal Latihan 1. Pemberantasan hama dapat dikelompokkan menjadi 3 (tiga) cara yaitu ... A. Fisika, kimia, dan biologi B. Mekanis, langsung, dan tak langsung C. Mekanis, kimia, dan fisika D. Mekanis, kimia, dan biologi E. Matematis, kimia, dan biologi

ka

n

ri dan 2. Pengendalian hama dengan cara memburu, menangkap, membunuh

merupakan

cara

a

pemberantasan hama secara ... A.

Mekanis

B.

Kimia

C.

Biologi

3. Pengendalian

n

la

e

P digunakan

yang

ta

u

e K hama dilakukan n

d

n

D.

Fisika

E.

Matematis

dengan

cara

dalam

menggunakan

a serok/tangguk, ik memancing dengan umpan daging seperti anak d

t

sa u

n kolam. Hal tersebut merupakan pengendalian hama jenis ...

e

P

i ayam/ikan, atau dengan secara rutin melakukan pembersihan d A. Ular B. Kodok

P

C. Burung D. Labi-labi E. Biawak

82


n

a

4. Apabila pengendalian hama secara mekanis tidak membuahkan hasil, maka dilakukan pengendalian secara kimia. Berikut pengendalian hama secara kimia menggunakan minyak tanah yang disemprotkan di permukaan air kolam. Hal tersebut dilakukan untuk mengendalikan hama jenis .... A. Belut B. Ikan gabus C. Kini-kini/Larva capung D. Ucrit/Larva Cybister E. Linsang/sero

t

sa u

ka

n

ri e 5. Pengendalian hama dengan cara mengeliminasi hama dengan P n dan kesehatan sesedikit mungkin dampak negatif bagi lingkungan a dhama secara ... manusia merupakan metode pengendalian n A. Mekanis ta u B. Kimia la e C. Biologi K n D. Fisika a ik E. Matematis d i d n e

P

P


83

n

a

6. Timbulnya serangan penyakit ikan di kolam merupakan hasil interaksi yang tidak serasi antara ikan, kondisi lingkungan dan ... A. Inang B. Organisme penyakit C. Suspect D. Perantara E. Lokasi kolam

7. Penyakit yang disebabkan oleh aktivitas organisme parasit disebut … A. Penyakit akut

e

B. Penyakit parasiter/infektif C. Penyakit non parasiter/non infektif

a

D. Penyakit menular

n

E. Penyakit turunan

la

ri

d

n

P

ka

n

ta

u

e 8. Faktor penyebab K penyakit Non Parasiter/Non Infektif dibagi n ... menjadi tiga,a yaitu k

i A. Lingkungan, pakan, dan daya tahan tubuh d i

t

sa u

e

B.dLingkungan, umur, dan ukuran n

P

C. Status kesehatan, jumlah, dan ukuran D. Lingkungan, pakan, dan turunan

P

E. Status kesehatan, pakan, dan ukuran

84


n

a

9. Ada 3 (tiga) jenis virus yang paling sering ditemukan menyerang ikan, yaitu ... A. Dactylogyrosis, Hervesvirus, Early MortalitySyndrome (EMS) B. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Epizootic Haematopoletic Necrosis (EHN) C. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Spring Viramea of Carp Virus(SVCV) D. Epithelioma papulasum, Hervesvirus, Early Mortality Syndrome (EMS) E. Viral Haemonhagic Septicaemia (VHS), Hervesvirus, Early

ka

Mortality Syndrome (EMS)

t

sa u

n

ri e 10. Penyakit yang ditunjukkan dengan gejala-gejala klinis antara lain P luka dan pendarahan pada kulit, mata menonjol,nbisul pada tubuh, a dpenyakit ... pendarahan pada pangkal sirip adalah jenis n A. Vibriosis ta u B. Furunculosis la e C. Aeromonas/ penyakit K merah n D. Columnaris a ik E. tuberculosis d i d n e

P

P


85

n

a

D. Lembar Kunci Jawaban 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10.

D A D D C B B D D E

e

ri

a

n

la

ka

i

t

sa u

e

P

d

n

id

n

e K

P

86


u

ta

d

n

P

ka

n

n

a

BAB V. PENUTUP Modul ini merupakan salah satu bagian dari kompetensi melakukan Pemeliharaan Larva Udang Air Payau. Untuk menguasai teknik Pemeliharaan Larva Udang Air Payau,modul – modul yangperlu anda kuasai adalah: 

Memilih dan memelihara induk.



Memijahkan induk



Memanen telur, dan



Melakukan penanganan telur.

Apabila nilai evaluasi tiap modul memenuhi persyaratan dengan nilai n

a

baik,maka pelajari modul selanjutnya. Tetapi apabila masih cukup, ikmaka

r

e sebaiknya di dipelajari lagi modul tersebut sebelum meningkat P ke modul selanjutnya.

a

n

la

t

sa u

e

P

d

n

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

P


87

n

a

DAFTAR PUSTAKA

Anindiastuti, Kadek, A.W., Rusyani, E., Warsito. 2007.

Budidaya

Fitoplankton dan Zooplankton Skala Massal. Balai besar Pengembangan Budidaya Laut. Lampung.

Anonim. 2010. Petunjuk teknis Pengendalian Penyakit IMNV Iinfectious Myonecrosis

Virus).

Direktorat

Jenderal

Perikanan

Budidaya.

Kementerian Kelautan dan Perikanan. Jakarta.

n

Anonim. 2012. Hama dan penyakit Ikan. Pusat Penyuluh Kelautan dan ka

t

sa u

ri e Perikanan. Badan Pengembangan SDM Kelautan dan Perikanan. P n Jakarta. a d n Novriadi, R., Purnomowati, R., Yunianto, taD. Santosa, J. 2014. Penyakit u Jenderal Perikanan Budidaya. Ikan Air Laut di Indonesia. Direktorat la e Kementerian Kelautan danK Perikanan. n a ik Nurdjana, M.L., Djunaidah, I.S., Sumartono, B. 1989. Paket Teknologi d i d Udang Skala Rumah Tangga. Direktorat Jenderal Pembenihan n e Perikanan bekerja sama dengan International Development Research P Centre. Jepara.

P

Rusyani, E., Sapta, AIM., M. Firdaus., dan Reynaldo. 2007. Budidaya Fitoplankton

dan

Zooplankton

Skala

Pengembangan Budidaya Laut. Lampung.

88


Laboratorium.

Balai

besar

n

a

Setiawan, A. 2004. Pemilihan dan Pemeliharaan Induk Udang. Direktorat Pendidikan

Menengah

Kejuruan.

Direktorat

Jenderal Dasar dan

Menengah. Departemen Pendidikan Nasional.

Treece, G.D. D. Diterjemahkan oleh Hastuti, W., Kokarkin, C., Nurdjana, M.L. 1992. Teknologi Pemeliharaan Larva. Jaringan Informasi Perikanan Indonesia.

Direktorat

Jenderal

Perikanan

bekerjasama

dengan

International Development Research Centre.

n

Sutaman. 2007. Petunjuk Praktis Pembenihan Udang Windu Skala a n Rumah Tangga. Kanisius. Yogyakarta a

rik

e

a

n

la

t

sa u

e

P

d

n

ta

u

e K

ka

i

id

n

d

n

P

P


89

MODUL melakukan pemeliharaan larva udang air payau

Recommend Documents