ISOLASI DAN IDENTIFIKASI MIKROALGA CYANOPHYTA DARI TANAH PERSAWAHAN KAMPUNG SAMPORA, CIBINONG, BOGOR

ISOLASI DAN IDENTIFIKASI MIKROALGA CYANOPHYTA DARI TANAH PERSAWAHAN KAMPUNG SAMPORA, CIBINONG, BOGOR

WULAN EMBUN SARI

PROGRAM STUDI BIOLOGI FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA 2011 M/1432 H

ISOLASI DAN IDENTIFIKASI MIKROALGA CYANOPHYTA DARI TANAH PERSAWAHAN KAMPUNG SAMPORA, CIBINONG, BOGOR

SKRIPSI Sebagai Salah Satu Syarat memperoleh gelar Sarjana Sains Pada Program Studi Biologi Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta

WULAN EMBUN SARI 105095003148

PROGRAM STUDI BIOLOGI FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA 2011 M/1432 H

PENGESAHAN UJIAN Skripsi berjudul “Isolasi dan Identifikasi Mikroalga Cyanophyta dari Tanah Persawahan Kampung Sampora, Cibinong, Bogor” yang ditulis oleh Wulan Embun Sari, NIM 105095003148 telah diuji dan dinyatakan LULUS dalam sidang Munaqosyah Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta pada tanggal 23 Agustus 2011. Skripsi ini telah dierima sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Strata Satu (S1) Program Studi Biologi. Menyetujui, Penguji 1,

Penguji 2,

Dini Fardila, M.Si NIP.19800330 20090 1 2009 Pembimbing 1,

Pembimbing 2,

Priyanti, M.Si NIP.19750526 200012 2 001

Mengetahui, Dekan Fakultas Sains dan Teknologi

Dr. Syopiansyah Jaya Putra, M. Sis NIP. 19680117 200112 1 001

Ketua Program Studi Biologi

PERNYATAAN

DENGAN INI SAYA MENYATAKAN KEASLIAN SKRIPSI INI BENARBENAR HASIL KARYA SENDIRI YANG BELUM PERNAH DIAJUKAN SEBAGAI SKRIPSI ATAU KARYA ILMIAH PADA PERGURUAN TINGGI ATAU LEMBAGA MANA PUN.

Jakarta, 23 Agustus 2011

Wulan Embun Sari 105095003148

ABSTRAK

Wulan Embun Sari. Isolasi dan Identifikasi Mikroalga Cyanophyta dari Tanah Persawahan Kampung Sampora, Cibinong, Bogor. Skripsi. Program Studi Biologi. Fakultas Sains dan Teknologi. Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta. Cyanophyta hadir berlimpah di sawah dan penting dalam membantu menjaga kesuburan padi melalui fiksasi nitrogen. Sebagian besar genus Cyanophyta yang ada di sawah adalah bentuk filamen heterokis. Sebanyak 144 sampel tanah diisolasi dari sawah Kampung Sampora, Cibinong, Bogor pada berbagai umur penanaman padi, yaitu padi dengan umur tanam 1 bulan, 2 bulan, dan 3 bulan. Sampel diambil secara purposive sampling, dan sampel analisis menggunakan metode kualitatif. Sampel tanah dikeringkan dan ditumbuhkan di laboratorium menggunakan dua media, BBM dan BG-11. Proses pertumbuhan dilakukan dalam 2 tahap, masing-masing tahap membutuhkan waktu tumbuh selama 3 bulan. Sampel tanah yang telah ditumbuhi oleh mikroalga ditandai dengan adanya perubahan warna dari cokelat menjadi hijau. Sampel yang telah tumbuh kemudian diamati di bawah mikroskop cahaya dan Cyanophyta yang ditemukan dipisahkan ke dalam cawan petri yang berbeda. Cyanophyta lalu diidentifikasi dan diklasifikasi menurut karakteristik morfologinya dengan menggunakan mikroskop cahaya. Hasil penelitian menunjukkan adanya 4 ordo Cyanophyta, yaitu Chroococcales, Oscillatoriales, Nostocales, dan Stigonematales. Genus dari Nostocales dan Stigonematales merupakan Cyanophyta yang memiliki heterokis dan berperan sebagai biofertilizer. Kata kunci : Cyanophyta, sawah, fiksasi nitrogen, heterokis, biofertilizer

ABSTRACT

Wulan Embun Sari. Isolation and Identification of Cyanophyta Microalgae from Rice Field Soils in Kampung Sampora, Cibinong, Bogor. Undergraduate Thesis. Biology Study Program. Faculty of Science and Technology. Syarif Hidayatullah State Islamic University of Jakarta. 2011. Cyanophyta is abundant in the rice fields and important to capture nitrogen from the air in fixation process. Most of Cyanophyta existed in the rice fields are in the form heterocystous of filament. 144 soil samples were isolated from the rice fields of Sampora Village, Cibinong, Bogor in various age of paddy cultivation, namely 1 month, 2 months, and 3 months. Samples were taken by using purposive sampling, and analyzed using qualitative methods. Soil samples were dried and growth in the laboratory in two medium (BBM and BG-11). The growth process was carried out in 2 stages, each stage took 3 months of period. The soil samples overgrown with microalgae characterized by a changing in color from brown to green. The samples were grown and then observed under microscope and separated into different petri dish. Cyanophyta then identified and classified based on morphological characters. The result shown 4 ordo Cyanophyta namely Chroococcales, Oscillatoriales, Nostocales, and Stigonematales. Genus of Cyanophyta Nostocales and Stigonematales is a genus that has heterocyst and can be use as biofertilizer. Keywords : Cyanophyta, rice fields, nitrogen fixation, heterocyst, biofertilizer

Sucikanlah nama Tuhanmu Yang Maha Tinggi. Yang menciptakan dan menyempurnakan (penciptaan-Nya). Yang menentukan kadar (masing-masing) dan memberi petunjuk. Yang menumbuhkan rumput-rumputan, lalu dijadikan-Nya rumput-rumput itu kering kehitam-hitaman. Akan Kami bacakan (Al Qur'an) kepadamu (Muhammad) maka kamu tidak akan lupa, kecuali apa yang dikehendaki Allah. Sesungguhnya Dia mengetahui apa yang terang dan apa yang tersembunyi. (QS. Al-A’la: 1-7)

Skripsi ini kupersembahkan untuk orang tua & suami ku tercinta; terimakasih atas kepercayaan, dukungan dan cinta kalian.

KATA PENGANTAR

Puji syukur kehadirat Allah SWT, Tuhan Semesta Alam yang telah memberikan nikmat, rahmat dan Hidayah-Nya kepada penulis sehingga dapat menyelesaikan skripsi ini. Tidak lupa shalawat serta salam semoga senantiasa dilimpahkan kepada Nabi dan Rasul mulia, Muhammad SAW yang diutus Allah sebagai rahmat bagi seluruh semesta alam, beserta keluarganya, para sahabatnya, dan orang-orang yang tegak di atas din-Nya hingga akhir zaman. Skripsi berjudul “Isolasi dan Identifikasi Mikroalga Cyanophyta dari Tanah Persawahan Kampung Sampora, Cibinong, Bogor” disusun untuk memenuhi syarat dalam meraih gelar S.Si. Pada kesempatan kali ini penulis ingin menyampaikan ucapan terima kasih yang tulus dan tak terhingga kepada : 1.

Dr. Syopiansyah Jaya Putra, M.Sis selaku Dekan Fakultas Sains dan Teknologi UIN Syarif Hidayatullah Jakarta beserta seluruh stafnya.

2.

Dr. Lily Surayya Eka Putri, M.Env.Stud selaku Ketua Program Studi Biologi FST UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.

3.

Dasumiati, M.Si selaku pembimbing I dan Priyanti, M.Si selaku pembimbing II atas kesabarannya dalam membimbing.

4.

Megga R. Pikoli, M. Si dan Dini Fardila, M. Si selaku penguji dalam sidang munaqosyah.

i

5.

Paskal Sukandar, M.Si dan Fahma Wijayanti, M.Si selaku penguji dalam seminar proposal dan seminar hasil yang telah memberikan saran dan kritiknya.

6.

Megga R. Pikoli selaku Kabid Laboratorium Biologi (PLT UIN) dan staf-staf laboran; Mba Puji, Mba Ida, dan Kak Bahri yang telah membantu penulis selama penelitian.

7.

Mama, Papa, kakak, adik, dan suami tercinta yang selalu memberikan motivasi, doa yang tulus, serta dukungan moril dan materil.

8.

Dini Damayanti, S.Si yang telah banyak membantu penulis dalam melaksanakan penelitian.

9.

Teman-teman seperjuangan khususnya Biologi angkatan 2005 (BioMa), Zahara, Diah, Nelly, Eci, Dita, Mia, dan Peni serta semua pihak yang tak lelah memberikan semangat, tausiyah dan saran kepada penulis. Penulis menyadari sepenuhnya bahwa skripsi ini masih memiliki

keterbatasan baik dari segi materi maupun tata bahasanya. Oleh karena itu penulis mengharapkan kritik serta saran dari semua pihak. Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi penulis khususnya dan dan bagi pembaca pada umumnya.

Jakarta, Agustus 2011

Penulis

ii

DAFTAR ISI

Halaman KATA PENGANTAR ……………………………………………………. i DAFTAR ISI ……………………………………………………………… iii DAFTAR TABEL ......................................................................................

v

DAFTAR GAMBAR …………………………………………………….

vi

DAFTAR LAMPIRAN .............................................................................

vii

BAB I PENDAHULUAN 1.1 Latar Belakang ………………………………………………….. 1 1.2 Perumusan Masalah …………………………………………….. 2 1.3 Hipotesis ………………………………………………………... 2 1.4 Tujuan …………………………………………………………... 3 1.5 Manfaat …………………………………………………………. 3 1.6 Kerangka Berpikir ………………………………………………. 3

BAB II TINJAUAN PUSTAKA 2.1 Deskripsi Cyanophyta …………………………………………… 4 2.2 Sistematika Cyanophyta ……………………………………….... 6 2.3 Distribusi Cyanophyta ……………..…………………………… 7 2.4 Kemampuan Fiksasi Nitrogen (N) oleh Cyanophyta ...…………. 7 2.5 Potensi Cyanophyta sebagai Biofertilizer ………………………. 8 2.6 Isolasi dan Identifikasi Cyanophyta ..…………………………… 10 2.7 Persawahan Kampung Sampora ………………………………… 11

BAB III METODOLOGI PENELITIAN 3.1 Waktu dan Tempat ……………………………………………… 13 3.2 Bahan dan Alat …………………………………………………. 13 3.3 Cara Kerja ………………………………………………………. 14

iii

3.3.1 Penentuan Titik Sampling …………………………………… 14 3.3.2 Isolasi Sampel Tanah …………………................................... 14 3.3.3 Pengayaan Mikroalga Tanah Di Laboratorium ..…………….. 15 3.3.4 Identifikasi Cyanophyta …...………………………………… 16 3.4 Analisis Data …………………………………………………… 17

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN 4.1 Hasil Identifikasi Cyanophyta ..…………………………………. 18 4.2 Deskripsi Genus Cyanophyta .….……………………………….. 23 4.3 Heterokis Cyanophyta …………..………………………………. 41

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN 5.1 Kesimpulan ……………………………………………………… 44 5.2 Saran ……………………………………………………………. 45

DAFTAR PUSTAKA …………………………………………………….. 46 LAMPIRAN ……………….……………………………………………… 49

iv

DAFTAR TABEL

Halaman Tabel 1. Genus Cyanophyta pada Sampel Permukaan Tanah …………… 18 Tabel 2. Genus Cyanophyta pada Sampel Dalam Tanah ………………… 19

v

DAFTAR GAMBAR

Halaman Gambar 1.

Aliran Kerangka Berpikir ……………………………………… 3

Gambar 2. Sel Heterokis dan Sel Akinet ………………………………….. 6 Gambar 3.

Persawahan Penduduk Kampung Sampora …………………… 12

Gambar 4.

Aphanocapsa dan Navicula ………………..…………………... 24

Gambar 5.

Aphanothece ………………………….………………………... 25

Gambar 6.

Gloeocapsa ……………………………………………………. 26

Gambar 7.

Chamaesiphon …………………………………………….…… 27

Gambar 8.

Chroococcus …..………………………………………………. 28

Gambar 9.

Pleurocapsa …..……………………………………………….. 29

Gambar 10. Oscillatoria ….………………………………………………… 31 Gambar 11. Sel hormogonium dan Sel Nekridium ..………………………… 32 Gambar 12. Arthrospira yang Tumbuh Berpilin dan Melingkar …..……….. 33 Gambar 13. Microcoleus …..……………………………………………….. 34 Gambar 14. Scytonema …..…..……………………………………………... 35 Gambar 15. Percabangan Scytonema ………..……..………………………. 36 Gambar 16. Anabaena…...…………………………………………………. 38 Gambar 17. Nostoc ………………………………………………………….. 39 Gambar 18. Calothrix …..………...………………………………………… 40 Gambar 19. Fischerella ….…………………………………………………. 41

vi

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman Lampiran 1.

Bagan Alir Penelitian ………………………………………... 49

Lampiran 2.

Komposisi Bahan-bahan Kimia yang Digunakan Sebagai Medium Pengayaan dan Pertumbuhan Mikroalga …………... 50

Lampiran 3.

Data Faktor-faktor Lingkungan pada Titik-titik Pengambilan Sampel ……………………………………………………….. 52

Lampiran 4.

Data Cyanophyta Hasil Pengayaan ………………………….. 55

Lampiran 5.

Sampel Tanah yang Ditumbuhi Mikroalga namun Tidak Terdapat Cyanophyta ……………...………………………… 59

Lampiran 6.

Denah Pengambilan Sampel Tanah …………………………. 60

Lampiran 7.

Lokasi Titik Pengambilan Sampel …………………………... 61

Lampiran 8.

Proses Pengayaan Sampel Tanah di Laboratorium ………….. 62

Lampiran 9.

Hasil Pengayaan Sampel Tanah dengan Medium Pertumbuhan 63

vii

BAB I PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang Keanekaragaman hayati memiliki potensi yang besar bagi kelangsungan hidup manusia serta menjadi sumber ilmu pengetahuan dan teknologi. Salah satu keanekaragaman hayati yang dimanfaatkan oleh manusia adalah dari kelompok mikroalga. Mikroalga dapat ditemukan di perairan, tanah maupun udara. Sesuai dengan habitatnya, berbagai jenis mikroalga memiliki karakteristik dan aktivitas yang berbeda (Ichimura, 1997). Mikroalga tanah memiliki sifat dan karakteristik khas, seperti kemampuannya untuk memfiksasi nitrogen dan mampu bertahan dalam kondisi kritis (Coleman, 2001). Mikroalga yang mampu memfiksasi N dapat dimanfaatkan di bidang pertanian sebagai biofertilizer atau pupuk hayati. Hal ini menyebabkan mikroalga mampu meningkatkan produksi pertanian bahkan beberapa negara telah menggunakan mikroalga tanah untuk menggemburkan tanah (Metting, 1981). Cyanophyta dapat tumbuh dengan baik di persawahan, baik di air maupun di tanahnya, karena persawahan menyediakan nutrisi yang diperlukan oleh mikroalga untuk hidup tanpa mengganggu tanaman yang tumbuh di sana. Saat ini persawahan umumnya menggunakan pupuk kimia dan pestisida, penggunaan bahan-bahan kimia tersebut dalam jangka panjang merupakan ancaman bagi penurunan keragaman hayati termasuk mikroalga tanah, mengurangi kesuburan tanah dan memberikan masalah bagi lingkungan (Nugraheni & Winata, 2003).

1

2

Dalam lingkungan alaminya Cyanophyta membutuhkan zat hara dari tanah berupa makronutrien dan mikronutrien. Dalam skala laboratorium, medium yang sering digunakan untuk pertumbuhan Cyanophyta adalah BBM (Basal Bold Medium) dan BG-11 (Blue Green Medium) karena kedua medium tersebut memiliki komponen unsur-unsur hara (bahan kimia) yang dibutuhkan Cyanophyta untuk dapat tumbuh, terutama unsur nitrogen (N) (Watanabe & Nozaki, 1994). Kampung Sampora merupakan kawasan pedesaan yang masih memiliki areal persawahan yang subur dan kehidupan penduduknya bergantung pada aktivitas pertanian tersebut. Sistem pertanian yang dijalankan oleh masyarakat Sampora umumnya adalah sawah tadah hujan selain itu mereka juga jarang sekali memakai pupuk kimia tetapi memakai kompos. Hal tersebut diduga merupakan tempat

yang

baik

untuk

ditemukannya

beranekaragam

mikroalga.

Keanekaragaman jenis mikroalga di daerah persawahan Kampung Sampora belum ada yang meneliti sehingga perlu dilakukan penelitian tersebut untuk mendapatkan jenis-jenis mikroalga yang berfungsi sebagai biofertilizer.

1.1 Perumusan Masalah Permasalahan yang dikaji dalam penelitian ini, yaitu berapa genus mikroalga khususnya Cyanophyta hasil isolasi tanah persawahan Kampung Sampora.

1.3 Hipotesis Diperoleh berbagai genus mikroalga khususnya Cyanophyta dari isolasi tanah persawahan Kampung Sampora.

3

1.4 Tujuan Tujuan yang ingin dicapai pada penelitian ini adalah untuk mengetahui genus-genus mikroalga Cyanophyta dari tanah persawahan di Kampung Sampora dan juga genus Cyanophyta yang berpotensi sebagai biofertilizer.

1.5 Manfaat Hasil penelitian ini diharapkan dapat memberikan informasi tentang mikroalga khususnya Cyanophyta yang hidup di tanah persawahan. Selanjutnya beberapa genus yang diperoleh ini dapat dikembangkan untuk memproduksi biofertilizer.

1.6 Kerangka Berpikir Keanekaragaman hayati

Mikroalga Cyanophyta yang berpotensi sebagai biofertilizer di tanah persawahan

Cyanophyta pemfiksasi nitrogen (N)

Persawahan Kampung Sampora masih relatif subur

Penggunaan pestisida dan pupuk kimia di persawahan

- Menurunkan keanekaragaman hayati - Menurunkan kesuburan tanah - Memberikan masalah bagi lingkungan

Diduga kaya akan Cyanophyta

Isolasi Cyanophyta dari tanah persawahan

Identifikasi genus Cyanophyta

Gambar 1. Diagram Alir Kerangka Berpikir

BAB II TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Deskripsi Cyanophyta Cyanophyta berasal dari bahasa Yunani, yaitu “Cyano” atau “Kyanỏs” yang artinya biru sedangkan “Phyta” artinya tumbuhan. Cyanophyta dikenal juga dengan Cyanobacteri, alga hijau-biru, atau Cyanophytes. Cyanophyta merupakan mikroalga prokariotik yang mendominasi kehidupan di bumi selama lebih dari 1,5 juta tahun (Graham & Wilcox, 2000). Nama Cyanophyta didasarkan atas pigmenpigmen yang terdapat di dalam sel Cyanophyta, yaitu klorofil-a, dan sejumlah pigmen seperti b-karotin, xantofil dan fikobilin. Pigmen fikobilin yang paling dikenal pada Cyanophyta adalah pigmen biru c-fikosianin dan pigmen merah cfikoeritrin. Dua pigmen unik Cyanophyta ini tidak ditemukan pada anggota alga lain (Vashista, 1999). Perbandingan macam-macam zat warna tersebut amat labil, oleh sebab itu warna alga tidak tetap (Tjitrosoepomo, 1998). Perubahan zat warna itu kemungkinan berhubungan dengan proses metabolisme Cyanophyta seperti jumlah sinar UV yang diterima, warna pigmen selubung (sheath) atau pertukaran gas di dalam sel (Graham & Wilcox, 2000). Cyanophyta merupakan mikroalga bersel tunggal atau berbentuk benang dengan struktur tubuh yang masih sederhana dan bersifat autotrof. Dinding selnya mengandung pektin, hemiselulosa dan selulosa yang kadang-kadang berupa lendir, oleh sebab itu Cyanophyta juga sering disebut sebagai alga lendir (Myxophyceae). Pada jenis-jenis yang berbentuk benang kadangkala terlihat dapat

4

5

melakukan gerakan seperti meluncur pada alas yang basah, tetapi sebenarnya Cyanophyta tidak dapat bergerak. Hal tersebut dikarenakan tidak adanya bulu cambuk yang menyebabkannya bergerak (Tjitrosoepomo, 1998). Cyanophyta memiliki kemampuan untuk berfotosintesis sehingga alga ini dianggap sebagai salah satu pelopor dari kehidupan yang penting di dunia ini. Cyanophyta mempunyai sifat-sifat yang khas, yang tidak dimiliki oleh tumbuhan lainnya, yaitu tahan kekeringan, tahan panas di dalam air, beberapa jenis dapat mengikat molekul N2 dari udara jika dalam tanah tidak ada nitrat, dapat tumbuh di lingkungan toksik, dan dapat tumbuh di perairan dengan salinitas tinggi (Thajuddin & Subramanian, 1992). Berdasarkan sifat-sifatnya tersebut di atas, Cyanophyta dapat dikatakan sebagai organisme yang sangat penting dalam memfiksasi nitrogen dari udara, memperkaya tanah, dan menghasilkan senyawasenyawa yang berguna bagi dunia kesehatan, seperti Spirulina sp. (Graham & Wilcox, 2000). Cyanophyta memiliki karakter morfologi yang sangat beragam, meliputi berbagai macam bentuk talus, yaitu uniseluler, koloni, filamen yang tidak bercabang, atau filamen yang bercabang (Vashishta, 1999). Cyanophyta

baik

yang uniseluler maupun yang berfilamen kadang-kadang membentuk struktur yang dapat dikenali dengan mata telanjang, tetapi biasanya memerlukan mikroskop untuk mengidentifikasi. Cyanophyta berukuran mulai dari 0,6 µm sampai 30 µm. Filamen Cyanophyta memiliki kisaran diameter tubuh mulai dari 0,4 µm sampai 45 µm bahkan ada yang melebihi 100 µm. Talus Cyanophyta, baik yang berbentuk uniseluler maupun filamen, diselubungi oleh suatu selubung

6

gelatin (sheath) yang memiliki ukuran bervariasi. Sejumlah sifat morfologi sel dan filamen Cyanophyta penting dalam identifikasi. Salah satu bentuk karakteristik dari sel filamen dikenal sebagai heterokis, yaitu sel yang terdiferensiasi dari sel vegetatif dan merupakan situs fiksasi nitrogen (Gambar 2). Pada beberapa genera seperti Anabaena, heterokisnya berkembang secara teratur sepanjang filamen. Berbeda dengan Calothrix yang hanya memiliki satu heterokis yaitu pada salah satu ujung filamen (Whitton dkk., 2002).

Gambar 2. Sel heterokis (h) dan sel akinet (a). (Sumber: http://www.ibvf.csic.es)

2.2 Sistematika Cyanophyta Divisi Cyanophyta masuk ke dalam kelas Cyanophyceae yang terbagi menjadi 4 ordo, yaitu Chroococcales, Oscillatoriales, Nostocales, dan

Stigonematales. Ordo Chroococcales memiliki 12 famili, 35 genus dan 98 spesies. Ordo Oscillatoriales memiliki 6 famili, 16 genus dan 139 spesies. Ordo Nostocales memiliki 7 famili, 16 genus dan 109 spesies. Ordo Stigonematales memiliki 3 famili, 6 genus dan 15 spesies (Whitton dkk., 2002).

7

2.3 Distribusi Cyanophyta Cyanophyta dapat ditemukan pada berbagai kondisi lingkungan baik akuatik maupun terestrial seperti laut, lumpur, rawa, air tawar, payau, tanah, dan bebatuan. Pada umumnya Cyanophyta banyak ditemukan pada perairan tawar dengan pH netral. Meskipun begitu, ada pula Cyanophyta yang hidup pada lingkungan yang ekstrim seperti sumber air panas, gunung berapi, kutub utara, perairan dengan salinitas yang tinggi dan gurun. Oleh karena itu Cyanophyta dikenal sebagai organisme yang kosmopolit (Graham & Wilcox, 2000). Beberapa penelitian menunjun suhu optimal untuk pertumbuhan Cyanophyta yaitu 15-35 °C, namun beberapa spesies Cyanophyta pernah ditemukan dapat bertahan hidup hingga suhu 72 °C di dalam kolam air panas di Taman Nasional Yellowstone (USA). Cyanophyta juga ditemukan pada saat musim dingin dimana suhu udara mencapai suhu 0 °C sampai -60 °C (Whitton dkk., 2002).

2.4 Kemampuan Fiksasi Nitrogen (N) oleh Cyanophyta Kemampuan memfiksasi nitrogen pada alga diketahui hanya pada Cyanophyta dan khususnya pada kelompok Cyanophyta yang memiliki sel heterokis. Heterokis merupakan sel yang khas pada Cyanophyta dan terdapat pada Cyanophyta dengan bentuk filamen kecuali Oscillatoriaceae. Mereka terbentuk dari perkembangan sel-sel vegetatif dan ditandai oleh kutub nodul, dinding sel tebal, dan isi yang homogen apabila diamati di bawah mikroskop cahaya (Nagasathya & Thajuddin, 2008). Jumlah heterokis dapat bertambah ketika nitrogen dalam lingkungan terbatas. Heterokis terletak di bagian terminal atau

8

interkalar pada trikom (sel terminal yang berbentuk seperti rambut) dan letaknya dapat pula merata di antara sel-sel vegetatif (Prihantini dkk., 2008). Faktor-faktor yang mengendalikan pembentukkan heterokis antara lain kemungkinan disebabkan rendahnya intensitas cahaya, bertambahnya jumlah fosfat, dan konsentrasi nitrogen dalam medium. Selain itu diferensiasi heterokis dapat pula dihambat oleh adanya sumber-sumber gabungan nitrogen (nitrat dan ammonium nitrogen) (Vashishta, 1999). Beberapa anggota dari Cyanophyta telah menunjukkan kemampuannya mengikat nitrogen udara dimana kondisi terbaik dilakukan oleh Cyanophyta umumnya pada pH 7,0-8,5. Pada tanaman padi sawah yang tergenang air, Cyanophyta membantu mempertahankan jumlah nitrogen dalam tanah dengan menggunakan nitrogen bebas dari udara (Hardjowigeno, 2007).

2.5 Potensi Cyanophyta Sebagai Biofertilizer Tuntutan pengadaan bahan pangan semakin besar karena jumlah penduduk yang selalu meningkat. Salah satu bahan pangan yang terpenting di Indonesia adalah beras. Budidaya padi perlu ditingkatkan untuk memenuhi kebutuhan pangan tersebut. Beberapa upaya yang dilakukan oleh para petani untuk meningkatkan produksi padi adalah dengan penggunaan pestisida dan pupuk kimia. Menurut Swaminathan (2003), pada umumnya penggunaan pupuk kimia meningkatkan unsur-unsur garam tanah, yaitu Na+, Mg2+, dan Ca2+. Peningkatan kadar garam dalam tanah pada akhirnya akan menurunkan produktivitas

9

pertanian. Menurut Roger dkk (1994), penggunaan pestisida yang berlebihan dapat menimbulkan efek berupa kerusakan lingkungan, ketidakseimbangan pada populasi organisme di tanah persawahan, dan perubahan efisiensi mikroorganisme dalam merombak bahan-bahan kimia di dalam pestisida. Cyanophyta adalah salah satu organisme yang berguna bagi manusia. Cyanophyta memiliki kemampuan sebagai biofertilizer untuk memerangi polusi tanah (Thajuddin & Subramanian, 2005). Kesuburan tanah sawah pada negara tropis disebabkan oleh adanya aktifitas Cyanophyta yang memfiksasi nitrogen sehingga Cyanophyta dan padi membentuk hubungan simbiosis (Chapman & Margulis, 1998). Semua Cyanophyta menggunakan nitrat, nitrit dan ammonium sebagai sumber pertumbuhan tanaman. Menurut Jeong-Dong & Lee (2006), Cyanophyta dapat dimanfaatkan sebagai biofertilizer karena memiliki potensi untuk memproduksi senyawa antimikroba. Berdasarkan penelitian di Iran, sawah merupakan tempat dengan kondisi yang menguntungkan untuk fiksasi nitrogen biologis dan perkembangan Cyanophyta (Soltani dkk., 2007). Berbagai Cyanophyta yang memiliki heterokis dapat memperbaiki nitrogen atmosfer. Beberapa spesies yang non-heterokis juga dapat memperbaiki nitrogen atmosfer di bawah kondisi mikroaerofilik (Thajuddin & Subramanian, 2005). Untuk itu, penggunaan biofertilizer diharapkan dapat mengurangi pemakaian pestisida dan pupuk kimia. Melalui penggunaan biofertilizer, tanaman dapat tumbuh sehat sekaligus meningkatkan kelestarian dan kesehatan tanah.

10

2.6 Isolasi dan Identifikasi Cyanophyta Pertumbuhan suatu jenis mikroalga sangat erat kaitannya dengan ketersediaan hara makro dan mikro serta kondisi lingkungan. Faktor-faktor lingkungan yang berpengaruh terhadap pertumbuan mikroalga antara lain cahaya, suhu dan pH air (Isnansetyo & Kurniastuty, 1995). Upaya untuk mengisolasi mikroalga baik pada habitat akuatik maupun terestial perlu memperhatikan musim karena beberapa mikroalga yang hidup bebas dapat bercampur dengan lumpur. Jika kondisi musim kurang baik pengambilan,

sampel menjadi kurang optimal. Mikroalga tanah dapat dilihat

dengan mata telanjang karena biasanya mereka membentuk lapisan kehijauan seperti lendir pada permukaan tanah. Hal tersebut memudahkan pengambilan sampel. Pengambilan sampel mikroalga tanah dilakukan dari permukaan tanah hingga kedalaman 5 cm karena kemungkinan mikroalga juga terdapat pada lapisan bawah tanah (Whitton dkk., 2002). Karakter morfologi adalah karakter yang paling mudah digunakan untuk mengidentifikasi

Cyanophyta.

Beberapa

karakter

morfologi

yang

perlu

diperhatikan dalam mengidentifikasi Cyanophyta adalah : 1) bentuk talus, dapat berupa uniseluler, koloni, filamen (bercabang atau tidak bercabang) (Whitton dkk., 2002); 2) ukuran panjang dan lebar talus; 3) keberadaan selubung gelatin; 4) bentuk ujung trikom; 5) septa pada filamen bergranula atau tidak; 6) keberadaan dinding pembatas pada filamen; 7) bentuk spiral pada talus; dan 8) keberadaan spora, akinet, dan heterokis (Geitler, 1985).

11

Sebagian besar Cyanophyta yang ditemukan di persawahan adalah Anabaena, Calothrix, Fischerella, Nostoc, dan Scytonema (Whitton dkk, 2002). Spesies pemfiksasi nitrogen dari Cyanophyta ini diunggulkan di negara-negara tropis untuk meningkatkan kesuburan padi di sawah (Vashista, 1999).

2.7 Persawahan Kampung Sampora Kampung Sampora terletak di daerah subur Gunung Sindur. Secara geologis, Kampung Sampora merupakan bagian dari Kelurahan Cibinong yang terletak di Kecamatan Cibinong, Kabupaten Bogor. Secara geografis wilayah Kelurahan Cibinong terletak di 6o 29' 27.79513" lintang selatan dan 106o 50' 56.07379" bujur timur. Dari aspek aksesibilitas dan mobilitas, Kampung Sampora dapat dikatakan sebagai kampung yang terisolasi dari pusat keramaian. Jalan yang menjadi akses satu-satunya keluar wilayah itu tertutup oleh Cibinong Science Center (CSC) atau Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI) Cibinong. Akses menuju pusat pemerintahan kota Kecamatan Cibinong berjarak sekitar 4 km, akses menuju pusat pemerintahan Kabupaten Bogor kurang lebih 4 km dan ke ibukota Provinsi Jawa Barat 120 km (www.kotabogor.go.id). Iklim di daerah Kampung Sampora mempunyai curah hujan yang cukup tinggi, hal ini tidak lain dikarenakan Kampung Sampora merupakan bagian dari Kabupaten dan Kota Bogor. Khusus untuk Kota Bogor sendiri diberi julukan sebagai Kota Hujan di Indonesia. Kondisi iklim di Kota Bogor mempunyai suhu rata-rata tiap bulan 26º C dengan suhu terendah 21,8º C dan suhu tertinggi 30,4º C. Kelembaban udara 70 % serta curah hujan rata-rata setiap tahun sekitar 3.500 –

12

4000 mm dengan curah hujan terbesar pada bulan Desember dan Januari dengan frekuensi rata-rata 191,2 hari hujan setahun (www.kotabogor.go.id). Hujan yang turun dalam sehari lebih sering terjadi pada sore hari (pukul 12.00-15.00) (Tatang,

2007). Kampung Sampora merupakan kawasan pedesaan yang bergantung pada aktivitas pertanian (Gambar 3). Kawasan Gunung Sindur saat ini telah mengalami banyak perubahan baik dari segi perekonomian maupun pembangunan, namun bertani merupakan mata pencaharian utama masyarakat di kampung kampung ini.

Gambar 3. Persawahan penduduk Kampung Sampora. (Sumber foto : Wulan, 2009)

Pada umumnya jenis padi yang ditanam penduduk Kampung Sampora adalah varietas lokal, yaitu Super, Pandan Wangi, Padi Merah, dan Bromo. Benih

padi yang didapat masyarakat Sampora mayoritas berasal dari benih padi di lahan milik LIPI Cibinong. Hal ini dikarenakan jenis-jenis benih padi tersebut memiliki masa panen yang lebih cepat, yaitu 3,5 bulan sehingga dalam setahun para petani di Kampung Sampora dapat panen sebanyak 3-4 kali. Selain itu bulirbulir padi yang dihasilkan lebih besar.

BAB III METODE PENELITIAN

3.1 Waktu dan Tempat Penelitian dilakukan dari September 2009 sampai dengan Mei 2010. Isolasi sampel tanah dilaksanakan di wilayah persawahan Kampung Sampora, Cibinong, Bogor mulai pukul 08.30-17.00 WIB sedangkan identifikasi sampel dilakukan di laboratorium Fisiologi Pusat Laboratorium Terpadu UIN Syarif Hidayatullah Jakarta.

3.2 Bahan dan Alat Bahan yang digunakan adalah sampel mikroalga yang diambil dari tanah sawah, Basal Bold Medium (BBM), Blue Green Medium (BG-11) dan A5 Solution (Lampiran 2). Peralatan yang digunakan adalah kape, tabung plastik/kantong plastik berkancing (sealed plastic-bag), kotak sampel, cawan petri (Normax), pipet Pasteur (Iwaki), pipet ukur (Iwaki), mikroskop cahaya (Olympus C011), pinset, bunsen/pembakar spiritus, lampu TL 36 W (Philips), thermometer (Boeco), pH indikator (Merck), labu Erlenmeyer (Schott Duran), vortex (Termolyne-Maxi Mix), timbangan analitik (Ohaus-Explorer Pro), LAFC, labu ukur (Iwaki), stirer (Mettler Toledo), Autoklaf (Omron ALP), Objeck Glass (Menzel-Glaser), Cover Glass (Menzel-Glaser), botol vial, aluminium foil, gunting/cutter, kapas, botol semprot, nampan, lemari pendingin, tisu, korek api, kertas label, dan alat tulis.

13

14

3.3 Cara Kerja Rangkaian kerja pada penelitian ini terangkum dalam bagan alir di lampiran 1. Tahapan-tahapan kerja penelitian adalah sebagai berikut: 3.3.1 Penentuan Titik Sampling Sampling tanah dilakukan dengan metode purposive sampling, yaitu penentuan titik sampling dilakukan atas dasar kriteria yang telah ditentukan oleh peneliti dan dianggap bahwa unsur-unsur yang dikehendaki telah ada dalam anggota sampel yang akan diambil sehingga memungkinkan peneliti menentukan titik-titik pengambilan tanah sesuai dengan kondisi/medan yang ada pada saat itu (Nasution, 2003). Penentuan titik-titik sampling didasarkan pada umur penanaman padi. Jumlah petak sawah yang digunakan sebagai tempat pengambilan sampel adalah 6 petak. Masing-masing petak diambil 4 titik sampling dengan pembagian 2 petak ditanami padi umur 1 bulan, 2 petak ditanami padi umur 2 bulan dan 2 petak ditanami padi umur 3 bulan (Lampiran 6 dan 7). 3.3.2 Isolasi Sampel Tanah Sampel tanah diambil pada bagian permukaan tanah dengan ketebalan 0-2 cm dan bagian dalam tanah dengan ketebalan 5-10 cm. Pengambilan tanah dilakukan dengan menggunakan kape. Jumlah sampel tanah yang diambil adalah sebanyak 144 sampel. Sampel tanah kemudian dimasukkan ke dalam tabung plastik atau kantung plastik berkancing (sealed plastic-bag). Masing-masing kantung plastik berisi sampel tanah kemudian diberi label yang berisi informasi tentang tempat dan tanggal pengambilan sampel serta diberi kode titik sampling. Data lingkungan berupa pH tanah dan suhu juga dicatat.

15

Seluruh sampel tanah yang telah ditempatkan di plastik berkancing kemudian disimpan di dalam kotak sampel yang tertutup rapat sehingga aman dibawa ke laboratorium. 3.3.3 Pengayaan Mikroalga Tanah di Laboratorium Cawan petri, pipet Pateur, pipet ukur, Erlenmeyer, tabung ukur, dan tabung reaksi yang akan digunakan dicuci, dikeringkan, dan dibungkus dengan kertas kemudian disterilisasi menggunakan autoclave dengan suhu 121°C selama 15 menit dengan tekanan 2 atm. Pada suhu dan tekanan yang sama, botol vial ukuran 500 ml yang berisi akuades ditutup dengan aluminium foil serta plastik tahan panas, diikat dengan karet kemudian disterilisasi menggunakan autoclave. Sebelum melakukan pengayaan sampel tanah, pertama-tama dibuat medium pertumbuhan yaitu BBM dan BG-11. Masing-masing medium terlebih dahulu dibuat larutan stok. Larutan stok medium pertumbuhan dibuat dengan cara melarutkan bahan kimia sesuai dengan komposisi medium yang ditetapkan (Lampiran 2). Pembuatan medium pertumbuhan dilakukan dengan cara menambahkan 10 ml dari setiap larutan stok ke dalam Erlenmeyer 1 liter kemudian ditambahkan akuades steril. Larutan yang telah dihomogenkan tersebut selanjutnya disterilisasi menggunakan autoclave pada suhu 121°C selama 15 menit dengan tekanan 2 atm. Pengayaan sampel tanah dilakukan dengan dua tahap menggunakan dua medium pertumbuhan, yaitu BBM dan BG-11. Tahap pertama pengayaan sampel dilakukan dari Oktober 2009 sampai Desember 2009. Tahap kedua pengayaan sampel tanah dilakukan dari Januari 2010 sampai Maret 2010.

16

Sampel tanah ditimbang sebanyak 5 g kemudian diletakkan di cawan petri (sterilized-plate) dan dibiarkan mengering selama 3-7 hari (Lampiran 8). Setelah kering, sampel tanah ditambahkan akuades steril atau medium inorganik secukupnya (tidak sampai membanjiri sampel) (Lampiran 9). Mikroalga baru tumbuh kurang lebih 2 atau 3 minggu setelah pemberian medium namun masih berupa spora mikroalga. Pengamatan sampel mikroalga yang telah tumbuh tersebut dilakukan setiap hari. Setelah kurang lebih 3 bulan sampel mikroalga baru dapat diidentifikasi karena pada tahap ini sel vegetatif masing-masing mikroalga sudah benar-benar terbentuk sehingga sudah dapat dibedakan satu sama lain dan memudahkan identifikasi. 3.3.4 Identifikasi Cyanophyta Identifikasi dilakukan dengan mengamati sampel alga yang telah tumbuh setiap hari. Sel mikroalga memiliki karakteristik khas yang digunakan sebagai pengenalan atau identifikasi jenis, yaitu meliputi bentuk talus (uniseluler, koloni, filamen), susunan sel dalam koloni, selubung gelatin dalam filamen, percabangan filamen, dan keberadaan akinet. Pada beberapa genus, pengukuran morfometri (panjang dan lebar sel atau suatu ornamen) harus dilakukan (Whitton dkk, 2002). Pada penelitian ini, identifikasi Cyanophyta dilakukan hingga tingkat genus karena perbesaran mikroskop yang digunakan terbatas yaitu 10 x 40 dan 10 x 100 sehingga identifikasi Cyanophyta berdasarkan pada morfologi. Buku identifikasi yang dijadikan acuan adalah Whitton dkk., (2002) dan Graham & Wilcox (2000).

17

3.4 Analisis Data Data hasil isolasi dan identifikasi dianalisis menggunakan metode kualitatif dengan membuat deskripsi ciri-ciri Cyanophyta yang telah diamati. Hasil deskripsi digunakan untuk menentukan nama-nama genus Cyanophyta.

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil Identifikasi Cyanophyta Berdasarkan hasil pengayaan sampel (288 sampel tanah), 227 sampel memperlihatkan pertumbuhan Cyanophyta. Tiga puluh satu sampel tidak ditumbuhi Cyanophyta (Lampiran 5). Hal tersebut kemungkinan disebabkan oleh adanya kompetisi antar mikroalga pada saat tumbuh. Berdasarkan data yang diperoleh dari hasil identifikasi diketahui bahwa terdapat 14 genus Cyanophyta, terdiri dari 12 famili yang ditemukan pada berbagai umur sawah. Berikut ini adalah data genus Cyanophyta yang telah diidentifikasi dari hasil pengayaan sampel tanah (Tabel 1 dan 2). Tabel 1. Genus Cyanophyta pada sampel permukaan tanah No.

1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14.

Genus

Aphanocapsa Aphanothece Gloeocapsa Chamaesiphon Chroococcus Pleurocapsa Oscillatoria Arthrospira Microcoleus Scytonema Anabaena Nostoc Calothrix Fischerella Jumlah

Padi Umur 1 Bulan Pagi Siang Sore √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ 6 4 4

Keterangan : √ : ada - : Tidak ada

Padi Umur 2 Bulan Pagi Siang Sore √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ 7 6 2

Padi Umur 3 Bulan Pagi Siang Sore √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ 8 6 4

18

19

Tabel 2. Genus Cyanophyta pada sampel dalam tanah No.

1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14.

Genus

Aphanocapsa Aphanothece Gloeocapsa Chamaesiphon Chroococcus Pleurocapsa Oscillatoria Arthrospira Microcoleus Scytonema Anabaena Nostoc Calothrix Fischerella Jumlah

Padi Umur 1 Bulan Pagi Siang Sore √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ 5 8 8

Keterangan : √ : ada - : Tidak ada

Padi Umur 2 Bulan Pagi Siang √ √ √ √ √ √ √ √ 4 5

Sore √ √ √ √ 4

Padi Umur 3 Bulan Pagi Siang Sore √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ √ 5 5 2

Berdasarkan data yang didapat, ada beberapa genus yang sering ditemukan pada berbagai umur sawah (1, 2 dan 3 bulan), yaitu Oscillatoria dari ordo Oscillatoriales dan Nostoc dari ordo Nostocales. Hal ini dikarenakan kedua genus ini dapat hidup bebas di berbagai kondisi lingkungan terutama pada tanah-tanah persawahan yang banyak mengandung mineral. Oscillatoria merupakan genus yang mampu beradaptasi dan bertahan pada berbagai kondisi lingkungan dikarenakan memiliki kemampuan metabolisme yang sangat baik, yaitu mampu menyesuaikan jumlah klorofil dan pigmen lain di dalam selnya. Nostoc mampu bertahan pada kondisi lingkungan yang sangat kering dengan cara melakukan diferensiasi sel vegetatif menjadi sel akinet yang berupa sel berdinding tebal dan berisi cadangan makanan. Hal ini menyebabkan kedua genus tersebut sering kali ditemukan di tanah persawahan Kampung Sampora pada berbagai umur sawah (1, 2 dan 3 bulan).

20

Chamaesiphon dan Pleurocapsa yang ditemukan di daerah persawahan Kampung Sampora merupakan catatan terbaru bagi mikroalga tanah persawahan karena pada penelitian-penelitian sebelumnya tidak pernah dilaporkan adanya kedua genus tersebut. Genus Cyanophyta yang hidupnya berkoloni

seperti

Merismopedia dan Microcystis atau yang berfilamen seperti Lyngbya dan Tolypothrix yang ditemukan pada penelitian di tanah persawahan Korea yang dilakukan oleh Jeong-Dong & Lee (2006) tidak ditemukan pada sampel tanah Kampung Sampora. Berdasarkan data yang didapat, pada sampel umur sawah 1 bulan ada 6 genu yang mendominasi pada sampel permukaan pagi hari, yaitu Aphanothece, Gloeocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Anabaena, dan Nostoc. Pada sampel bagian dalam tanah sawah genus yang ditemukan pada pagi hari lebih sedikit, yaitu Aphanothece, Gloeocapsa, Oscillatoria, Anabaena, dan Nostoc. Pada sampel permukaan siang genus yang ditemukan lebih sedikit, yaitu Gloeocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, dan Microcoleus sedangkan pada sore hari yaitu Gloeocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, dan Nostoc (Tabel 1 dan Lampiran 4). Pada sampel dalam tanah siang dan sore hari genus yang ditemukan cenderung lebih banyak, yaitu Aphanocapsa, Chroococcus, Pleurocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Scytonema, Anabaena, dan Nostoc untuk sampel siang hari sedangkan sore hari yaitu Aphanothece, Chroococcus, Pleurocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Anabaena, Nostoc, dan Fischerella (Tabel 2 dan Lampiran 4 ). Hal tersebut sangat mungkin disebabkan pada bulan pertama masa tanam, jarak tumbuh tanaman padi masih sangat jarang, sehingga dapat dikatakan Cyanophyta

21

masih mendapatkan cahaya matahari untuk melakukan fotosintesis. Oleh karena itu genus Cyanophyta yang ditemukan lebih banyak pada sampel permukaan tanah daripada sampel dalam tanah. Sedangkan pada sampel dalam tanah di siang hari jumlah genus Cyanophyta lebih banyak dibandingkan dengan sampel permukaan tanah di siang hari. Hal ini kemungkinan disebabkan pada siang hari mikroalga cenderung sensitif terhadap paparan cahaya matahari sehingga Cyanophyta cenderung bergerak menuju ke dalam tanah. Namun berbeda dengan kondisi pada sore hari dimana cahaya matahari sudah tidak ada sehingga menyebabkan aktivitas dan pertumbuhan mikroalga menjadi berkurang pula. Pada sampel tanah permukaan sawah umur 2 bulan genus yang ditemukan lebih banyak pada pagi hari, yaitu Aphanocapsa, Gloeocapsa, Chroococcus, Oscillatoria, Arthrospira, Scytonema, dan Nostoc sedangkan pada sampel dalam tanah pagi hari genus ditemukan hanya 3, yaitu Gloeocapsa, Oscillatoria, dan Fischerella. Pada sampel permukaan siang hari genus yang ditemukan yaitu Oscillatoria, Arthrospira, Microcoleus, Anabaena, Nostoc, dan Calothrix. Pada sampel permukaan sawah di sore hari hanya ditemukan 2 genus saja, yaitu Oscillatoria dan Arthrospira (Tabel 1 dan Lampiran 4). Jika dibandingkan dengan sampel dalam tanah sawah umur 1 bulan pada siang hari dan sore hari, sampel dalam tanah sawah umur 2 bulan pada siang hari genus yang ditemukan lebih sedikit, yaitu Gloeocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Nostoc, dan Calothrix. Sama halnya dengan sampel siang hari, genus yang ditemukan pada sampel sore hari lebih sedikit, yaitu Oscillatoria, Arthrospira, Scytonema, dan Nostoc (Tabel 2 dan Lampiran 4). Perbedaan yang sangat signifikan ini kemungkinan disebabkan

22

mulai merapatnya jarak tumbuh padi sehingga Cyanophyta yang berada di dalam tanah lebih banyak bergerak ke permukaan tanah untuk mendapatkan cahaya matahari untuk proses fotosintesis. Pada sampel tanah permukaan sawah umur 3 bulan Cyanophyta yang ditemukan pada pagi hari yaitu Aphanothece, Gloeocapsa, Chamaesiphon, Chroococcus, Oscillatoria, Arthrospira, Scytonema, dan Nostoc. Pada sampel dalam tanah pagi hari sebanyak 5 genus, yaitu Gloeocapsa, Chroococcus, Oscillatoria, Anabaena, dan Nostoc. Pada sampel permukaan siang hari genus yang ditemukan yaitu Chroococcus, Oscillatoria, Arthrospira, Microcoleus, Anabaena, Nostoc, dan Calothrix sedangkan sore hari genus yang ditemukan yaitu Oscillatoria, Arthrospira, Nostoc, dan Fischerella (Tabel 1 dan Lampiran 4). Pada sampel dalam tanah siang hari genus yang ditemukan yaitu Pleurocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Scytonema, dan Nostoc. Pada sore hari jumlah Cyanophyta yang ditemukan sangat sedikit, yaitu Oscillatoria dan Nostoc saja. Pada saat umur tanam padi mencapai 3 bulan, jarak tumbuh tanaman padi semakin rapat dan bulir-bulir yang telah matang akan semakin merunduk sehingga tanah tertutupi oleh kanopi tanaman. Keadaan demikian menyebabkan Cyanophyta lebih sering bergerak ke permukaan tanah baik pada pagi hari, siang hari maupun sore hari menuju sumber cahaya. Selain itu kemungkinan Cyanophyta bergerak ke permukaan untuk melakukan fiksasi nitrogen karena pada saat padi berumur 3 bulan merupakan saat dimana padi membutuhkan ammonia dalam jumlah banyak agar dapat tumbuh subur.

23

Penelitian

lain

menyebutkan

bahwa

pertumbuhan

mikroalga

dan

kebutuhannya terhadap cahaya memang dipengaruhi oleh adanya kanopi tanaman (dalam hal ini tanaman padi). Hal tersebut dikarenakan semakin rapatnya jarak pertumbuhan tanaman padi serta kanopi tanaman yang semakin menutupi tanah sehingga jumlah mikroalga di dalam tanah semakin menurun (Roger dkk., 1985). Dengan demikian pada bulan pertama masa tanam padi Cyanophyta cenderung berada di permukaan tanah di pagi hari dan berada di dalam tanah pada siang dan sore hari. Pada bulan kedua dan ketiga masa tanam padi, Cyanophyta cenderung berada di permukaan tanah. Hal tersebut dikarenakan kebutuhan Cyanophyta terhadap cahaya untuk berfotosintesis dan adanya kanopi tanaman yang semakin rapat.

4.2 Deskripsi Genus Cyanophyta Berikut deskripsi morfologi dari 14 genus Cyanophyta tersebut : 1. Aphanocapsa Aphanocapsa diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta, kelas Cyanophyceae, ordo Chroococcales, famili Merismopediaceae, dan genus Aphanocapsa. Warna koloni biru kehijauan, merupakan koloni non-filamen, bentuk koloni agak bulat dengan diameter koloni 20 µm Selubung gelatin (mucilago) tidak berwarna/tidak jelas, koloni terdiri dari beberapa sel kecil berbentuk bulat. Letak sel tidak beraturan, padat, tidak memiliki sel heterokis. Sel individu sangat kecil dengan diameter antara 1,5 – 3 µm.

24

A N

Gambar 4. Aphanocapsa (A) dan Navicula (N). (Sumber foto: Wulan, 2009)

2. Apanothece Aphanothece diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta, kelas Cyanophyceae, ordo Chroococcales, famili Synechococcaceae, dan genus Aphanothece. Warna koloni biru kehijauan atau biru pucat, dapat pula uniseluler (sel tunggal), merupakan koloni non-filamen, bentuk koloni bulat atau lonjong,

dengan diameter koloni lebih dari 100 µm. Musilago Musilago tidak berwarna/tidak jelas, koloni terdiri dari beberapa sel kecil berbentuk oval, elips atau seperti batang, lurus atau sedikit melengkung dengan ujung bulat, kadang tampak terjadi

pembelahan sel. Dari beberapa pengamatan jenis ini hidup menempel pada spesies Cyanophyta lain (Gambar 5). Aphanothece yang ditemukan tumbuh tidak beraturan bersama Oscillatoria dan ciri-ciri pertumbuhan ini sama dengan hasil penelitian dan identifikasi yang dilakukan oleh Graham dan Wilcox (2000).

25

Gambar 5. Aphanothece. Koloni Aphanothece menempel pada Oscillatoria (a) dan pembelahan sel pada Aphanothece (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

3. Gloeocapsa Gloeocapsa Cyanophyceae,

diklasifikasikan

ke

ordo Chroococcales,

dalam

famili

divisi

Cyanophyta,

Microcystaceae,

dan

kelas genus

Gloeocapsa. Warna koloni hijau, spesies ini merupakan koloni non-filamen, bentuk koloni tidak beraturan, diameter koloni 50 µm-100 µm. Genus ini mempunyai musilago besar karena gabungan gabungan dari beberapa sel, musilago induk tidak berwarna namun tampak jelas, begitu juga dengan musilago sel terkadang tampak jelas sehingga terlihat jarak antar sel dalam koloni berjauhan

karena masing-masing sel diselubungi oleh musilago. Koloni terdiri dari beberapa sel berbentuk bulat, oval atau elips, bentuk sel menjadi hemisperikal setiap setelah terjadi pembelahan sel, dan diameter sel 1 µm-3 µm (Gambar 6).

26

Gambar 6. Gloeocapsa. Dua sel dalam satu musilago yang tampak jelas (tanda panah) (a), Gloeocapsa dengan musilago induk (tanda panah) (b), sampel 2aPs1 (c), sel berbentuk hemisperikal setelah pembelahan (tanda lingkaran) (d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

4. Chamaesiphon Chamaesiphon diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta, kelas Cyanophyceae, ordo Chroococcales, famili Chamaesiphonaceae, dan genus Chamaesiphon. Sel menempel pada substrat (ditemukan pada Oscillatoria), bentuk sel heteropolar, yaitu agak memanjang dengan dengan bagian pangkal yang menempel pada subsrat agak menyempit dan ujung sel membulat. Genus ini merupakan spesies non-filamen dengan ujung sel yang membulat merupakan eksospora, uniseluler, bentuk sel oval memanjang, warna

sel biru-hijau pucat, sel diselubungi diselubungi oleh musilago yang memanjang dan terbuka pada ujungnya apabila terjadi pembelahan, musilago tidak berwarna, dan panjang

27

sel tanpa musilago yaitu 15 µm (Gambar 7). Menurut Whitton dkk (2002), sel

dewasa Chamaesiphon pada beberapa spesies dapat berbentuk makroskopis atau terlihat dengan mata telanjang dalam satu koloni besar.

15 µm

Gambar 7. Chamaesiphon. Sampel 5dPp3 (a) dan sampel 6bPp3 (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

5. Chroococcus Chroococcus diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta, kelas Cyanophyceae, ordo Chroococcales, famili Chroococcaceae, genus Chroococcus. Chroococcus termasuk ke dalam Cyanophyta non-filamen, uniseluler, warna sel hijau, hijau buah zaitun, hijau-biru, atau kekuningan seperti pada sampel 2dDr1 (Gambar 8b). Bentuk sel tidak teratur. Pada sampel 6aDp3 sel ada yang berbentuk bola namun tidak bulat benar (Gambar 8e), musilago jelas dan tidak berwarna, dalam satu koloni terdapat 2-4 sel, jarak antar sel adalam satu koloni agak berjauhan. Diameter sel 5 µm- 10 µm.

28

10 µm

5 µm

Gambar 8. Chroococcus. Sampel 1bDs1 (a), sampel 2dDr1 (b), sampel 6cPs3 (c), sampel 3dPp2 (d), sampel 6aDp3 (e), dan sampel 1cDs1 (f). (Sumber foto: Wulan, 2009)

6. Pleurocapsa Pleurocapsa diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta,

kelas

Cyanophyceae, ordo Chroococcales, famili Hyellaceae, dan genus Pleurocapsa. Pleurocapsa merupakan jenis uniseluler non-filamen, dalam penelitian jenis ini

29

ditemukan menempel pada Chlorophyta sebagai substratnya. Jenis ini terdiri dari beberapa kelompok sel yang tumbuh membentuk baris yang tidak teratur dan saling menempel. Selain itu ada pula beberapa sel yang ditemukan bercabang (ditemukan pada sampel 1cDs1 dan 6bDs3). Ukuran sel bervariasi, agak memanjang atau membulat dengan isi sel yang tampak jelas berupa butiranbutiran berwarna hijau, hijau, kekuningan, atau kemerahan. Sel diselubungi oleh musilago berwarna kecoklatan dan sangat tipis. Lebar sel 10 µm-20 µm sedangkan diameter sel 3 µm-9 µm (Gambar 9). Ciri khas dari Pleurocapsa

adalah adanya baeocytes, yaitu sel yang terbentuk pada saat terjadi pembesaran sel yang berada pada bagian ujung percabangan sel.

20 µm

Gambar 9. Pleurocapsa. Sampel 1bDr1 (a), sampel 1cDs1 (b), dan baeocytes (tanda panah) pada sampel 6bDs3 (c dan d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

30

7. Oscillatoria Oscillatoria

diklasifikasikan

ke

dalam

divisi

Cyanophyta,

kelas

Cyanophyceae, ordo Oscillatoriales, famili Oscillatoriaceae, dan genus Oscillatoria. Oscillatoria memiliki bentuk tubuh berupa koloni filamen (trikom), trikom lurus, berlapis-lapis, tidak bercabang, musilago tipis dan tidak berwarna. Pada beberapa sampel ditemukan Oscillatoria dengan musilago agak tebal, hal ini kemungkinan disebabkan kondisi lingkungan yang kurang baik sebagai tempat tumbuhnya, karena menurut Komarek (2005), musilago pada Oscillatoria pada umumnya sangat tipis bahkan tidak ada, namun musilago akan tampak apabila Oscillatoria berada pada kondisi lingkungan yang ekstrim. Warna koloni biru-hijau atau hijau, tebal trikom berbeda-beda, diameter dapat mencapai 3 µm-10 µm, panjang trikom dapat lebih dari 100 µm, ujung trikom membulat (pada pengamatan tidak ditemukan adanya kaliptra), tidak memiliki sel heterokis, pada beberapa sampel ditemukan Oscillatoria dengan vakuola gas. Hasil pengamatan beberapa jenis ini dapat dilihat pada Gambar 10.

31

40 µm

>100 µm

H

5 µm

N

6 µm

3 µm Gambar 10. Oscillatoria. (a-g). Sampel 1aDr1 (a), sampel 4dPp2 (b), sampel 1aDs1 (c), formasi pembentukan hormogonium (H) dan sel nekridium (N) pada sampel 4dPs2 (d), sampel 5dPs3 (e dan f), dan vakuola gas (lingkaran) pada sampel 4cDr2 (f). (Sumber foto: Wulan, 2009)

32

8. Arthrospira Arthrospira Cyanophyceae,

diklasifikasikan

ordo

ke

Oscillatoriales,

dalam

famili

divisi

Cyanophyta,

Phormidiaceae,

dan

kelas genus

Arthrospira. Arthrospira merupakan salah satu koloni Cyanophyta berfilamen. Ciri yang ditemukan selama pengamatan yaitu sel multiseluler, warna koloni biru kehijauan, trikom spiral dan tidak bercabang dengan rasio lebar lekukan 5 µm-20 µm, bentuk trikom silindris, musilago tidak jelas, tidak memiliki heterokis,

diameter trikom 1 µm- 10 µm. Beberapa Arthrospira yang diamati tumbuh berpilin (melingkar). Berbeda dengan penelitian Whitton dkk (2002) dimana Arthrospira yang ditemukan memiliki vakuola gas, sedangkan Arthrospira yang diidentifikasi peneliti tidak

ditemukan adanya vakuola gas. Vakuola gas kemungkinan akan dapat ditemukan apabila peneliti juga menggunakan mikroskop elektron. Hasil pengamatan dapat dilihat pada Gambar 11 dan Gambar 12.

H

N

4 µm Gambar 11. Sel hormogonium (H) dan sel nekridium (N). (Sumber foto: Wulan, 2009)

33

2 µm

10 µm

Gambar 12. Arthrospira yang tumbuh berpilin atau melingkar. Sampel 5dDs3 (a), sampel 5aDs3 (b), sampel 5cPp3 (c), dan sampel 1dPr1 (d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

9. Microcoleus Microcoleus diklasifikasikan ke Cyanophyceae,

ordo

Oscillatoriales,

dalam divisi

famili

Cyanophyta,

Phormidiaceae,

dan

kelas genus

Microcoleus. Dari hasil pengamatan Microcoleus yang ditemukan lebih beragam. Microcoleus pada sampel 1dPs1 dan sampel 4aPs2 merupakan koloni yang tebal seperti tikar dengan bentuk trikom lurus, silindris, tak bercabang, masing-masing sel trikom dilapisi oleh musilagonya sendiri, musilago jelas namun tidak berwarna dan tidak terlalu tebal, tidak tidak memiliki heterokis, dinding antar trikom sempit,

34

warna koloni hijau-biru, diameter koloni 10 µm-20 µm, diameter trikom 3 µm-4 µm, dan ujung trikom berbentuk bulat kerucut. Jika pada sampel 1dPs1 dan sampel 4aPs2 Microcoleus yang ditemukan

merupakan koloni dengan trikom lurus dan tak bercabang, lain halnya dengan Microcoleus yang ditemukan pada sampel 4cPs2 dimana trikom ada yang berkoloni dan ada pula yang tak berkoloni. Pada sampel ini dalam satu koloni terdapat trikom yang bercabang, bentuk trikom trikom lurus dan silindris, musilago tebal, sangat jelas, dan kecoklatan, warna koloni hijau gelap kecoklatan, dinding antar trikom tidak sempit, diameter koloni 7,5 µm-18 µm, diameter trikom 1,5 µm-2,5 µm, dan lebar jarak musilago dengan trikom 1 µm-1,5 µm (Gambar 13).

Gambar 13. Microcoleus. Sampel 1dPs1 (a & b), sampel 4aPs2 (c), dan sampel 4cPs2 (d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

35

10. Scytonema Scytonema

diklasifikasikan

ke

dalam

divisi

Cyanophyta,

kelas

Cyanophyceae, ordo Nostocales, famili Scytonemataceae, dan genus Scytonema. Genus Scytonema merupakan Cyanophyta yang memiliki filamen dengan percabangan semu. Disebut percabangan semu dikarenakan cabang yang terbentuk berasal dari pembengkokkan sel vegetatif yang telah mati dan bukan dari sel aksis (Gambar 14 dan Gambar 15).

Scytonema yang telah diamati memiliki memiliki bentuk trikom silindris, berwarna hijau-biru pucat. Sel heterokis tidak tampak karena kemungkinan masih merupakan sel muda, musilago tidak jelas, ujung sel membulat, sekat antar filamen tampak jelas, dan diameter filamen 2 µm-2,5 µm.

2 µm

Gambar 14. Scytonema. Sampel 3cPp2 (a) salah satu trikom memulai percabangan (bentuk melengkung), dan double branch pada sampel 5bPp3 (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

36

Gambar 15. Percabangan Scytonema. Salah satu percabangan yang telah berkembang pada sampel 6dPs3 (a), double branch telah berkembang luas pada sampel 2dDs1, 4cDr2, dan 4dDr2 (b, c, & d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

11. Anabaena Anabaena

diklasifikasikan

ke

dalam

divisi

Cyanophyta,

kelas

Cyanophyceae, ordo Nostocales, famili Nostocaceae, dan genus Anabaena. Anabaena merupakan Cyanophyta dengan bentuk filamen, tidak bercabang, filamen dapat soliter atau berkoloni, warna koloni hijau-biru, musilago tidak jelas atau sangat tipis dan tidak berwarna, trikom kebanyakan kebanyakan lurus atau ada beberapa yang agak melengkung, agregasi antar sel vegetatif tidak kuat, sel vegetatif berbentuk seperti tong dan beberapa agak lonjong atau silinder. Dari hasil pengamatan diketahui bahwa diameter sel vegetatif Anabaena 3-4 µm dengan

37

panjang 3-4µm, sedangkan diameter sel heterokisnya 5 µm dengan panjang 5-6 µm. Sel heterokis yang ditemukan pada umumnya interkalar dengan warna hijau kekuningan atau hijau muda transparan, selain itu pada salah satu sampel juga ditemukan adanya akinet, yaitu sampel 2aDr1 (Gambar 16). Beberapa ciri khas dari Anabaena yaitu letak heterokis yang selalu interkalar, koloni tidak terikat dalam satu musilago besar, musilago yang dimiliki oleh satu filamen sangat tipis bahkan hampir tidak terlihat, agregasi atau pemisahan antar sel vegetatif tidak terlalu kuat atau dapat dikatakan terdapat jarak yang sangat jelas terlihat jika diamati dengan seksama, vakuola gas tampak jelas, bentuk filament yang tidak meruncing, dan memiliki sel akinet. Sel akinet merupakan sel yang dibentuk pada saat Anabaena kekurangan zat nitrogen. Sel akinet berbentuk lebih besar dan lebih lonjong daripada sel vegetatif dan sel heterokis. Warna sel akinet lebih gelap, hijau tua atau cokelat. Keberadaan sel akinet sangat penting untuk membedakan Anabaena dengan Nostoc. Perbedaan tersebut terletak pada letak sel akinet. Pada Anabaena sel akinet terletak bersebelahan dengan sel heterokis sedangkan pada Nostoc letak sel akinet yaitu diantara sel heterokis atau mengapit sel heterokis. Walaupun begitu, sel akinet hanya akan terbentuk apabila Anabaena atau Nostoc berada pada kondisi ekstrim sehingga apabila sel akinet ini tidak tampak pada identifikasi, maka alternatif lain untuk membedakan kedua genus ini yaitu dengan memperhatikan morfologi musilago dan habitatnya.

38

Gambar 16. Anabaena. Sampel 1aPp1 (a) dan sel akinet (tanda panah) pada sampel 2aDr1 (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

12. Nostoc Nostoc diklasifikasikan ke dalam divisi Cyanophyta, kelas Cyanophyceae, ordo Nostocales, famili Nostocaceae, dan genus Nostoc. Dari hasil pengamatan Nostoc yang ditemukan memiliki bentuk filamen, trikom mengular, tidak tumbuh lurus dan tidak bercabang, berkoloni, berpencar-pencar membentuk koloni kecil,

warna koloni hijau-biru atau kelabu dengan sel heterokis kuning atau seperti buah zaitun, koloni berada dalam satu musilago yang besar, musilago sangat jelas telihat, tebal dan agak keruh. Beberapa sampel menunjukkan bentuk sel yang sangat jelas, namun ada juga beberapa sampel yang kurang jelas karena dari hasil

pengamatan diketahui bahwa sel Nostoc yang terbentuk masih muda dan tetutup oleh musilago yang cukup tebal (Gambar 17). Bentuk sel vegetatif bulat, dalam beberapa sampel cawan petri koloni

Nostoc dapat terlihat jelas walau tanpa menggunakan mikroskop. Koloni yang tampak tersebut tebal, kelabu atau kehitaman, warna dan bentuk koloni berbeda dengan sekelilingnya, mengkilap, dan musilago tampak seperti gel atau lendir.

39

Namun hal tersebut tidak berhasil didokumentasikan karena hasil gambar kurang jelas. Diameter sel vegetatif yaitu 3-6 µm dan panjang sel 3-7 µm, sedangkan sel heterokisnya memiliki diameter 5-9 µm dan panjang sel 5-10 µm.

Gambar 17. Nostoc. Sampel 6aPp3 (a), musilago (tanda panah) pada sampel 6cPr3 (b), sel heterokis (tanda panah) pada sampel 6cDs3 (f), dan sampel 2cPp1 (d). (Sumber foto: Wulan, 2009)

13. Calothrix Calothrix

diklasifikasikan

ke

dalam

divisi

Cyanophyta,

kelas

Cyanophyceae, ordo Nostocales, famili Rivulariaceae, dan genus Calothrix. Dari hasil pengamatan jenis Calothrix yang ditemukan berbentuk filamen yang menyerupai rambut (Gambar 18). Pada satu sampel ditemukan sel yang

40

membentuk percabangan semu yang dapat lepas dari trikom trikom induk seperti pada sampel 4bPs2, soliter atau ada pula yang berkoloni, trikom lurus dengan ujung meruncing dan dasar melebar, dan letak heterokis interkalar pada bagian dasar trikom. Sel vegetatif berbentuk lonjong, agregasi tidak jelas, hijau biru atau kelabu dengan musilago yang nampak jelas.

Gambar 18. Calothrix. Sel heterokis (tanda panah) Calothrix pada sampel 3aDs2 (a), dan percabangan semu yang terputus (tanda panah) pada sampel 4bPs2 (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

14. Fischerella Fischerella Cyanophyceae,

diklasifikasikan

ke

dalam

divisi

Cyanophyta,

kelas

ordo Stigonematales, famili Fischerellaceae, dan genus

Fischerella. Fischerella yang ditemukan memiliki ciri-ciri berkoloni dengan filamen seperti rambut, menempel pada substrat yaitu mikroalga lain, warna sel

hijau-biru. Sel vegetatif ada yang berbentuk bulat ada pula yang silinder dengan musilago yang sangat tipis. Terdapat per percabangan cabangan yang tegak pada hampir setiap trikom induk, trikom cabang meruncing dengan sel basal agak melebar sehingga seperti hutuf “T”, sedangkan heterokis dan akinetnya tidak terlihat (Gambar 19).

41

Gambar 19. Fischerella. Cabang yang baru tumbuh (tanda panah) dari sel basal pada sampel 1aDr1 (a) dan sampel 4aDp2 (b). (Sumber foto: Wulan, 2009)

4.3 Heterokis Cyanophyta Berdasarkan hasil identifikasi, ditemukan 5 genus Cyanophyta yang memiliki sel heterokis, yaitu Scytonema, Anabaena, Nostoc, Calothrix, dan

Fischerella. Dari kelima genus tersebut hanya 2 genus saja yang telah dicoba untuk diisolasi, yaitu Anabaena dan Nostoc. Keduanya merupakan genus yang paling mudah untuk diisolasi dan cukup banyak ditemukan pada sampel. Selain itu sel heterokis pada keduanya sudah tampak jelas. Tetapi isolasi yang dilakukan hanya sampai pada dua kali pencucian sehingga genus Cyanophyta yang diisolasi belum murni dan masih terdapat mikroalga lain seperti Chlorophyta. Hal tersebut

dikarenakan untuk mendapatkan isolat murni dibutuhkan pencucian hingga berkali-kali dan dalam jangka waktu yang cukup lama. Anabaena dan Nostoc merupakan genus yang umumnya ditemukan pada tanah persawahan. Pada beberapa penelitian dilaporkan bahwa kedua genus tersebut kadang menjadi organisme yang dominan di persawahan (VenKataraman,

1993).

42

Scytonema Genus ini ditemukan pada sampel permukaan tanah dan sampel dalam tanah di bulan pertama, kedua dan ketiga umur tanam padi. Sama halnya dengan Microcoleus, Scytonema pada tanah persawahan juga berperan dalam menjaga kesuburan dan stabilitas tanah. Ditemukannya Scytonema pada pagi, siang dan sore hari pada sampel penelitian kemungkinan karena faktor kebutuhannya terhadap cahaya untuk melakukan fotosintesis.

Anabaena Dari hasil pengamatan, Anabaena ditemukan hampir pada setiap titik sampel, yaitu pada bulan pertama, kedua dan ketiga umur tanam padi baik pada pagi, siang maupun sore hari. Karena adanya sel heterokis pada genus ini menjadikan Anabaena salah satu agen yang sangat penting dalam memfiksasi nitrogen dan meningkatkan jumlah nutrisi tanah untuk pertumbuhan tanaman padi. Sehingga dapat dikatakan keberadaan genus ini pada setiap titik sampel menunjukkan tingginya tingkat kesuburan pada tanah persawahan Kampung Sampora.

Nostoc Dari hasil pengamatan, Nostoc ditemukan pada setiap titik sampel. Hal ini disebabkan kemampuannya untuk mempertahankan diri dari radiasi sinar UV dan dapat memproduksi senyawa antimikroba sehingga genus ini dapat hidup pada berbagai kondisi lingkungan. Sel heterokis pada Nostoc selain sebagai tempat pemfiksasi nitrogen, juga berfungsi sebagai pusat fotosintesis. Hasil fotosintesis

43

tersebut kemudian disalurkan ke sel-sel vegetatif. Berdasarkan penelitian ElSheekh dkk (2000), kandungan total karbohidrat dan protein yang dimiliki sel vegetatif dan heterokis Nostoc sangat tinggi sehingga genus ini sangat baik jika dijadikan biofertilizer.

Calothrix Dari hasil pengamatan Calothrix ditemukan pada bulan kedua dan ketiga, yaitu hanya di siang hari. Hal ini kemungkinan disebabkan tingginya kebutuhan Calothrix akan cahaya untuk fotosintesis karena Calothrix merupakan Cyanophyta yang bersifat heterotrof.

Fischerella Dari hasil pengamatan Fischerella ditemukan pada sampel permukaan tanah yaitu hanya di bulan ketiga di sore hari. Sedangkan pada sampel dalam tanah Fischerella ditemukan pada bulan pertama dan kedua, masing-masing di sore dan pagi hari. Keberadaan Fischerella pada titik-titik sampel tersebut dapat menjadi petunjuk tingginya kadar nitrogen pada tanah. Tomaselli dan Giovannetti (1993) mengungkapkan

bahwa

tanah

yang

diinokulasikan

dengan

Fischerella

menunjukkan kadar Nitrogen yang lebih tinggi dibandingkan dengan tanah yang tidak terdapat Fischerella.

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN

5.1

Kesimpulan Berdasarkan hasil penelitian isolasi dan identifikasi mikroalga Cyanophyta

dari tanah persawahan Kampung Sampora, Cibinong, Bogor dapat disimpulkan bahwa : 1. Ada 14 jenis Cyanophyta yang berhasil diidentifikasi dari hasil pengayaan

sampel

tanah,

yaitu

Aphanocapsa,

Aphanothece,

Gloeocapsa, Chamaesiphon, Chroococcus, Pleurocapsa, Oscillatoria, Arthrospira, Microcoleus, Scytonema, Anabaena, Nostoc, Calothrix, dan Fischerella. 2. Pada sampel permukaan tanah Cyanophyta paling banyak ditemukan yaitu pada pagi hari di bulan ketiga umur tanam padi. 3. Pada sampel dalam tanah Cyanophyta paling banyak ditemukan yaitu pada siang dan sore hari di bulan pertama umur tanam padi. 4.

Heterokis Cyanophyta yang berpotensi sebagai biofertilizer adalah Scytonema, Anabaena, Nostoc, Calothrix, dan Fischerella.

44

45

5.2

Saran Dari hasil penelitian dapat disarankan untuk : 1. Dilakukan

penelitian

mengenai

distribusi

dan

kelimpahan

Cyanophyta serta perbandingan jenis Cyanophyta pada tanah persawahan. 2. Dilakukan

identifikasi

sampai

tingkat

spesies

dengan

menggunakan metode molekuler. 3. Memperhatikan

faktor-faktor

pengambilan sampel di lapangan.

fisik

lingkungan

pada

saat

DAFTAR PUSTAKA

Chapman, M.J. & L. Margulis. 1998. Morphogenesis by symbiogenesis. International Microbiol. 1: 319-326. Coleman, A.W. 2001. Biogeography and speciation in the Pandorina/Volvulina (Chlorophyta) superclade. Journal of Phycology. 37: 836-851. El-Sheekh, M., M. Osman, M. Dyab, & M. Amer. 2006. Production and characterization of antimicrobial active substance from the cyanobacterium Nostoc muscorum. Enviromental Toxicology and Pharmacology. Geitler, L. 1985. Cyanophyceae. Koeltz Scientific Books. Koenigstein. Graham, L.E & L.W. Wilcox. 2000. Algae. Prentice Hall Inc. New Jersey. Hardjowigeno, H. S. 2007. Ilmu Tanah. Akademik Pressindo. Jakarta. Ichimura, T. 1997. Natural population of the Closterium ehrenbergii (Desmidiales, Chlorophyta) species complex in Nepal. Phycological Research. 45: 47-54. Isnansetyo, A. & Kurniastuty. 1995. Teknik Kultur Phytoplankton Dan Zooplankton. Kanisius. Yogyakarta. Jeong-Dong, K. & C-G. Lee. 2006. Diversity of Heterocystous Filamentous Cyanobacteria (Blue-Green Algae) from Rice Paddy Fields and Their Differential Succeptibility to Ten Fungicides used in Korea. J. Microbiol. Biotechnol. 2(16): 240-246. Komarek, J. 2005. The Modern Classification of Cyanoprokaryotes (Cyanobacteria). Oceanological and Hydrobiological Studies, Supplement. 34(3): 5-17. Metting, B. 1981. The systematic and ecology of soil algae. Journal Botanical Review. 47: 195-321. Nagasathya, A. & N. Thajuddin. 2008. Cyanobacterial Diversity in the Hypersaline Environment of the Saltpans of Southeastearn Coast of India. Asian Journal of Plant Science. 7(5): 473-478. Nasution, R. 2003. Teknik Sampling. Fakultas Kesehatan Masyarakat Universitas Sumatera Utara. Sumatera Utara.

46

47

Nugraheni, A. & A. Winata. 2003. Konservasi lingkungan dan plasma nutfah menurut kearifan tradisional masyarakat Kasepuhan Gunung Halimun. Jurnal Studi Indonesia. 13(2): 126-143. Pemerintah Kota Bogor. 2010. Letak Geografis Kota Bogor. http://kotabogor.go.id/index.php?option=com_content&task=view&id=1118 &Itemid=148. Akses 20 Juli 2010 pukul 15.55. Prihantini, N. B., W. Wardhana, D. Hendrayanti, A. Widyawan, Y. Ariyani, & R. Rianto. 2008. Biodiversitas Cyanobacteria dari Beberapa Situ/Danau di Kawasan Jakarta-Depok-Bogor, Indonesia. Makara, Seri Sains. 12(1): 4454. Roger.P.A., I.F. Grant, & P.M. Reddy. 1985. Blue-green algae in India: a trip report. International Rice Research Institute. Manila. Dalam: Whitton, B.A. & P.A. Roger. 1989. Use of blue-green algae and Azollae in rice culture. Society for General Microbiology: Microbial inoculation of crop plants. 25: 89-100. Roger, P.A., I. Simpson, R. Oficial, S. Ardales, & R. Jimenez. 1994. Effects of pesticides on soil and water microflora and mesofauna in wetland ricefields: A summary of current knowledge and extrapolation to temperate environment. Australian Journal of Experimental Agriculture. 34(7): 10571068. Soltani, N., R.A. Khavari-Nejad, M. Tabatabaei Yazdi, & S. Shokravi. 2007. Growth and Some Metabolic Features of Cyanobacterium Fischerella Sp. FS18 in Different Combined Nitrogen Sources. Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran. 18(2): 123-128. Swaminathan, M.S. 2003. Bio-diversity: an effective safety net against environmental pollution. Environmental Pollution. 126: 287-291. Tatang, S. 2008. Produksi Tanaman Karet (Hevea Brasiliensis) Di Daerah Bercurah Hujan Tinggi Di Kabupaten Bogor. Inovasi Online. 10(20): headline. Thajuddin, N. & G. Subramanian. 1992. Survey of Cyanobacterial Flora of the Southern East Coast of India. Botanica Marina. 35(4): 305-314. Thajuddin, N. & G. Subramanian. 2005. Cyanobacterial diversity and potential applications in biotechnology. Current Science. 89(1): 47-57. Tjitrosoepomo, G. 1998. Taksonomi Tumbuhan (Schizophyta, Thallophyta, Bryophyta, Pteridophyta). UGM Press. Yogyakarta.

48

Tomaselli, L. & L. Giovanneti. 1993. Survival of Diazotrophic Cyanobacteria in Soil. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 9(1): 113-116. Vashishta, B.R. 1999. Algae Part I. Eight Revised Ed. S. Chand & Company LTD. New Delhi. VenKataraman, G.S. 1993. Blue-green algae (Cyanobacteria) Dalam: S.N. Tata, A.M. Wadhwani and M.S. Mehdi (eds.), Biological nitrogen fixation. Indian Council of Agric.Res. New Delhi. Watanabe, M.M. & H. Nozaki. 1994. NIES-Collection. List of strains, microalgae and protozoa. 4th ed. The National Institute for Environmental Studies (NIES). Japan. Watanabe, M.M., F. Kasai, M. Kawachi, & M. Erata. 2004. NIES-Collection List of Strains. 7th ed. Microalgae and protozoa. National Institute for Environmental Studies (NIES). Japan Whitton, B.A. 2002. Phylum Cyanophyta (Cyanobacteria). Dalam: Jhon, D.M., B.A. Whitton & A.J. Brook (eds.). The Freshwater Algal Flora of The British Isles: An Identification Guide to Freshwater and Terrestrial Algae. Cambridge university Press. Cambridge.

49

Lampiran 1. Bagan Alir Penelitian

- Permukaan tanah:02cm - Dalam tanah:0-5 cm

Isolasi sampel tanah

Dicatat titik sampling, pH tanah, & suhu

Pengayaan sampel tanah

Pengukuran pH medium

Pengukuran Kondisi Fisik ruang kultur

Pemberian medium tumbuh BBM & BG-11

Pemeriksaan sampel mikroalga yang tumbuh

Isolasi mikroalga Cyanophyta

Identifikasi

50

Lampiran 2. Komposisi Bahan-Bahan Kimia yang Digunakan Sebagai Medium Pengayaan dan Pertumbuhan Mikroalga

Basal Bold Medium (BBM) NaNO3 CaCl2 . H2O MgSO4 . 7H2O K2HPO4 KH2PO4 NaCl KOH FeSO4 . 7H2O H3BO3 ZnSO4 . 7H2O MnCl2 . 7H2O MoO3 CuSO4 . 5H2O Na2EDTA Ca(NO3)2 . 6H2O

25 mg 2,5 mg 7,5 mg 10 mg 17,5 mg 2,5 mg 3,1 mg 0,498 mg 1,142 mg 0,882 mg 0,144 mg 0,071 mg 0,157 mg 5 mg 0,049 mg

Akuades pH = 6,6

100 ml

Blue-Green Medium (BG-11) NaNO3 K2HPO4 MgSO4 . 7H2O CaCl2 . 2H2O Citric acid Ferric ammonium citrate EDTA Na2CO3 A5 Solution

1,5 g 0,04 g 0,075 g 0,036 g 0,0006 g 0,0006 g 0,001 g 0,02 g 1 ml

Akuades pH = 7,2

990 ml

A5 Solution

51

H3BO3 MnCl2 . 4H2O ZnSO4 . 7H2O Na2MoO4 . 2H2O CuSO4. 5H2O Co(NO3)2 Akuades

*Sumber : Watanabe dkk., 2004

0,286 g 0,181 g 0,0222 g 0,039 g 0,0079 g 0,00494 g 100 ml

52

Lampiran 3. Data faktor-faktor lingkungan pada titik-titik pengambilan sampel No. Sampel 1aPp1 1bPp1 1cPp1 1dPp1 2aPp1 2bPp1 2cPp1 2dPp1 3aPp2 3bPp2 3cPp2 3dPp2 4aPp2 4bPp2 4cPp2 4dPp2 5aPp3 5bPp3 5cPp3 5dPp3 6aPp3 6bPp3 6cPp3 6dPp3 1aDp1 1bDp1 1cDp1 1dDp1 2aDp1 2bDp1 2cDp1 2dDp1 3aDp2 3bDp2 3cDp2 3dDp2 4aDp2 4bDp2 4cDp2 4dDp2 5aDp3 5bDp3 5cDp3 5dDp3 6aDp3 6bDp3 6cDp3 6dDp3 1aPs1

Waktu (WIB) 08.30 08.31 08.33 08.33 08.34 08.34 08.36 08.38 08.38 08.41 08.42 08.43 08.45 08.46 08.48 08.48 08.50 08.52 08.52 08.53 08.55 08.57 08.58 09.01 08.30 08.31 08.33 08.33 08.34 08.34 08.36 08.38 08.38 08.41 08.42 08.43 08.45 08.46 08.48 08.48 08.50 08.52 08.52 08.53 08.55 08.57 08.58 09.01 11.30

Cuaca

pH

Suhu (°C)

Keterangan

Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Cerah Berawan

6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 - 7

28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28

Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air

53

No. Sampel 1bPs1 1cPs1 1dPs1 2aPs1 2bPs1 2cPs1 2dPs1 3aPs2 3bPs2 3cPs2 3dPs2 4aPs2 4bPs2 4cPs2 4dPs2 5aPs3 5bPs3 5cPs3 5dPs3 6aPs3 6bPs3 6cPs3 6dPs3 1aDs1 1bDs1 1cDs1 1dDs1 2aDs1 2bDs1 2cDs1 2dDs1 3aDs2 3bDs2 3cDs2 3dDs2 4aDs2 4bDs2 4cDs2 4dDs2 5aDs3 5bDs3 5cDs3 5dDs3 6aDs3 6bDs3 6cDs3 6dDs3 1aPr1 1bPr1 1cPr1 1dPr1

Waktu (WIB) 11.32 11.33 11.34 11.40 11.43 11.44 11.45 11.47 11.49 11.56 11.58 11.59 12.05 12.08 12.10 12.14 12.15 12.17 12.19 12.23 12.25 12.27 12.29 11.30 11.32 11.33 11.34 11.40 11.43 11.44 11.45 11.47 11.49 11.56 11.58 11.59 12.05 12.08 12.10 12.14 12.15 12.17 12.19 12.23 12.25 12.27 12.29 15.05 15.08 15.09 15.11

Cuaca

pH

Suhu (°C)

Keterangan

Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan

6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7

28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 28 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27 27

Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air

54

No. Sampel 2aPr1 2bPr1 2cPr1 2dPr1 3aPr2 3bPr2 3cPr2 3dPr2 4aPr2 4bPr2 4cPr2 4dPr2 5aPr3 5bPr3 5cPr3 5dPr3 6aPr3 6bPr3 6cPr3 6dPr3 1aDr1 1bDr1 1cDr1 1dDr1 2aDr1 2bDr1 2cDr1 2dDr1 3aDr2 3bDr2 3cDr2 3dDr2 4aDr2 4bDr2 4cDr2 4dDr2 5aDr3 5bDr3 5cDr3 5dDr3 6aDr3 6bDr3 6cDr3 6dDr3

Waktu (WIB) 15.13 15.14 15.14 15.15 15.18 15.19 15.21 15.21 15.23 15.25 15.26 15.28 15.29 15.30 15.32 15.35 15.35 15.36 15.38 15.40 15.43 15.44 15.48 15.51 15.53 15.53 15.57 15.59 16.03 16.10 16.14 16.15 16.18 16.19 16.22 16.24 16.25 16.27 16.29 16.30 16.32 16.35 16.38 16.41

Cuaca

pH

Suhu (°C)

Keterangan

Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Berawan Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung Mendung

6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 - 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7 6,8 – 7

27 27 27 27 27 27 27 27 27 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26 26

Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air Tergenang air

55

Lampiran 4. Data Cyanophyta hasil pengayaan No. 1. 2. 3. 4. 5. 6.

Titik Sampling 1aPp1 1bPp1 1cPp1 1dPp1 2aPp1 2bPp1

BBM Oscillatoria, Anabaena, Nostoc Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria Oscillatoria, Gloeocapsa Nostoc, Oscillatoria

BG-11 Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria, Aphanothece

7. 8. 9. 10. 11. 12.

2cPp1 2dPp1 3aPp2 3bPp2 3cPp2 3dPp2

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Chroococcus Oscillatoria Oscillatoria, Aphanocapsa --

13. 14. 15.

4aPp2 4bPp2 4cPp2

16.

4dPp2

17. 18.

5aPp3 5bPp3

19. 20. 21.

5cPp3 5dPp3 6aPp3

Nostoc, Oscillatoria Nostoc, Oscillatoria Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria Oscillatoria, Nostoc, Scytonema Oscillatoria, Nostoc, Chroococcus Oscillatoria, Chroococcus Oscillatoria Oscillatoria, Gloeocapsa, Nostoc Oscillatoria, Gloeocapsa, Chroococcus Oscillatoria, Gloeocapsa Oscillatoria, Arthrospira, Nostoc Oscillatoria Oscillatoria, Nostoc Nostoc

22.

6bPp3

Gloeocapsa

Oscillatoria, Chamaesiphon

23.

6cPp3

Oscillatoria, Nostoc

Oscillatoria

24. 25.

6dPp3 1aDp1

Oscillatoria, Nostoc Gloeocapsa

26. 27. 28. 29. 30.

1bDp1 1cDp1 1dDp1 2aDp1 2bDp1

Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira, Aphanothece Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria

31. 32. 33. 34. 35.

2cDp1 2dDp1 3aDp2 3bDp2 3cDp2

Oscillatoria

36.

3dDp2

Nostoc, Oscillatoria

Oscillatoria

37.

4aDp2

Nostoc

Oscillatoria, Fischerella

38.

4bDp2

Oscillatoria

Oscillatoria

-Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria -----

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria, Aphanothece Oscillatoria Oscillatoria, Scytonema Oscillatoria, Arthrospira, Nostoc Oscillatoria, Chamaesiphon Oscillatoria

-Oscillatoria Oscillatoria

---

56

No.

Titik Sampling

BBM

BG-11

39.

4cDp2

Oscillatoria, Gloeocapsa

Oscillatoria, Nostoc

40.

4dDp2

Oscillatoria

Oscillatoria

41.

5aDp3

Oscillatoria

Oscillatoria

42.

5bDp3

--

--

43.

5cDp3

--

--

44.

5dDp3

--

--

45.

6aDp3

46.

6bDp3

Oscillatoria, Nostoc, Chroococcus, Gloeocapsa Anabaena, Oscillatoria

Oscillatoria

47.

6cDp3

Nostoc, Anabaena

Oscillatoria

48.

6dDp3

Nostoc

Oscillatoria

49. 50. 51. 52. 53.

1aPs1 1bPs1 1cPs1 1dPs1 2aPs1

Oscillatoria Oscillatoria, Microcoleus Oscillatoria, Gloeocapsa

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria

54.

2bPs1

Oscillatoria

Oscillatoria

55. 56. 57. 58. 59.

2cPs1 2dPs1 3aPs2 3bPs2 3cPs2

Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria, Arthrospira -Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira

Oscillatoria, Arthrospira -Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira --

60.

3dPs2

Oscillatoria

61.

4aPs2

Oscillatoria, Microcoleus

62.

4bPs2

63.

4cPs2

Oscillatoria, Nostoc, Calothrix, Anabaena Oscillatoria, Microcoleus

Arthrospira

64.

4dPs2

Oscillatoria, Nostoc, Calothrix

Oscillatoria

65.

5aPs3

Oscillatori, Nostoc

Oscillatoria

66.

5bPs3

Oscillatoria

Oscillatoria, Arthrospira

67.

5cPs3

Oscillatoria

68.

5dPs3

Oscillatoria

Oscillatoria

69.

6aPs3

Oscillatoria

70.

6bPs3

Oscillatoria, Calothrix, Nostoc, Anabaena Oscillatoria

71.

6cPs3

Oscillatoria, Nostoc

Oscillatoria, Arthrospira, Chroococcus

---

--

-Oscillatoria

--

--

Oscillatoria

57

No.

Titik Sampling

BBM

72.

6dPs3

Nostoc

Oscillatoria, Scytonema

73. 74. 75.

1aDs1 1bDs1 1cDs1

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Nostoc, Anabaena

76. 77. 78.

1dDs1 2aDs1 2bDs1

Oscillatoria Oscillatoria

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria,Pleurocapsa, Chroococcus Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria Oscillatoria

79. 80. 81.

2cDs1 2dDs1 3aDs2

82. 83. 84. 85.

--

BG-11

Oscillatoria, Aphanocapsa Oscillatoria, Nostoc, Scytonema Oscillatoria

3bDs2 3cDs2 3dDs2 4aDs2

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Calothrix, Gloeocapsa Nostoc Oscillatoria -Oscillatoria

86.

4bDs2

Oscillatoria, Calothrix

Oscillatoria

87.

4cDs2

88.

4dDs2

Oscillatoria, Calothrix

Oscillatoria

89.

5aDs3

Oscillatoria

Oscillatoria, Arthrospira

90.

5bDs3

91.

5cDs3

Oscillatoria

92.

5dDs3

Oscillatoria

Oscillatoria, Arthrospira

93.

6aDs3

Oscillatoria

Oscillatoria

94.

6bDs3

Nostoc

95.

6cDs3

Nostoc

Oscillatoria, Scytonema, Pleurocapsa Oscillatoria

96.

6dDs3

Nostoc

97. 98. 99. 100. 101. 102.

1aPr1 1bPr1 1cPr1 1dPr1 2aPr1 2bPr1

Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria Oscillatoria, Gloeocapsa Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria. Oscillatoria.

-Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira Oscillatoria ---

103. 104. 105. 106. 107.

2cPr1 2dPr1 3aPr2 3bPr2 3cPr2

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria

----Oscillatoria, Arthrospira

108.

3dPr2

Oscillatoria

--

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria

Oscillatoria, Arthrospira

--

---

--

--

58

No. 109.

Titik Sampling 4aPr2

BBM

110. 111. 112. 113. 114. 115.

4bPr2 4cPr2 4dPr2 5aPr3 5bPr3 5cPr3

Oscillatoria

116.

5dPr3

Nostoc

117.

6aPr3

Oscillatoria

118. 119. 120. 121.

6bPr3 6cPr3 6dPr3 1aDr1

Oscillatoria Nostoc Oscillatoria Oscillatoria, Fischerella

122. 123. 124. 125. 126. 127. 128. 129. 130. 131.

1bDr1 1cDr1 1dDr1 2aDr1 2bDr1 2cDr1 2dDr1 3aDr2 3bDr2 3cDr2

Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Nostoc Oscillatoria, Arthrospira Chroococcus --Oscillatoria Nostoc Oscillatoria

132.

3dDr2

Oscillatoria

133.

4aDr2

Oscillatoria, Nostoc

Oscillatoria, Nostoc

134. 135.

4bDr2 4cDr2

-Oscillatoria, Scytonema

Oscillatoria

136.

4dDr2

137.

5aDr3

Oscillatoria, Scytonema, Arthrospira --

138.

5bDr3

Oscillatoria, Nostoc

139.

5cDr3

140.

5dDr3

Oscillatoria

141.

6aDr3

Oscillatoria, Nostoc

142.

6bDr3

Oscillatoria

--

143.

6cDr3

Nostoc

--

144.

6dDr3

Oscillatoria

--

Oscillatoria

BG-11 Oscillatoria

-Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria

--

-Oscillatoria Oscillatoria Oscillatoria, Arthrospira ---

Oscillatoria, Arthrospira, Fischerella Oscillatoria -Oscillatoria -Oscillatoria, Arthrospira, Anabaena Oscillatoria, Pleurocapsa Aphanothece Oscillatoria Oscillatoria, Anabaena Oscillatoria -Oscillatoria Nostoc Oscillatoria Oscillatoria ---

Oscillatoria ---

--

--Oscillatoria

59

Lampiran 5. Sampel tanah yang ditumbuhi mikroalga namun tidak terdapat Cyanophyta

Nomor Sampel BBM

BG-11

5bDp3, 1aPs1, 1dDs1, 3dDs2, 1aPr1,

3cDp2, 5bDp3, 6aDp3, 2dPs1, 3cPs2,

2dDr1

3dPs2, 4bPs2, 5cPs3, 5cDs3, 6dDs3, 2aPr1, 2bPr1, 2cPr1, 2dPr1, 3aPr2, 3bPr2, 3dPr2, 4bPr2, 5bPr3, 6dPr3, 3dDr2, 5bDr3, 5dDr3, 6bDr3, 6cDr3

60

Lampiran 6. Denah pengambilan sampel tanah

a

b

a

Petak 1 c

b

a

Petak 2 d

c

b

a

Petak 3 d

c

b

Petak 4 d

c

d

Irigasi a

b

a

Petak 5 c

b

Petak 6 d

c

d

Titik-titik pengambilan sampel tanah pada tiap petak sawah

Keterangan : Petak 1 dan 2 = Padi umur 1 bulan Petak 3 dan 4 = Padi umur 2 bulan Petak 5 dan 6 = Padi umur 3 bulan

Keterangan Kode Sampling : Contoh : 1aPp1 = 1 – Petak ke-1 (petak selanjutnya 2, 3, 4, 5, dan 6) a – Titik pertama pengambilan sampel tanah pada petak sawah (titik selanjutnya adalah b, c, dan d) P – Letak sampel tanah yang diambil (P : permukaan tanah; D : dalam tanah) p – waktu pengambilan sampel tanah (p : pagi; s: siang; r : sore) 1 – Umur tanam padi (1 untuk umur 1 bulan, 2 untuk umur bulan, dan 3 untuk umur bulan)

61

Lampiran 7. Lokasi titik pengambilan sampel

a

b

c

d

Titik Pengambilan sampel. a. Padi umur 1 bulan; b. Padi umur 2 bulan; c. padi umur 3 bulan; d. Aliran irigasi sawah. (Sumber foto: Wulan, 2009)

62

Lampiran 8. Proses pengayaan sampel tanah di laboratorium

Sampel tanah yang telah kering. (Sumber foto: Wulan, 2009)

Pengayaan sampel tanah pada rak kultur. (Sumber foto: Wulan, 2009)

63

Lampiran 9. Hasil pengayaan sampel tanah dengan medium pertumbuhan

a

c

b

Sampel tanah yang telah diberi medium. a. Sampel tanah setelah 1 minggu; b. Sampel tanah setelah 2 minggu; c. Sampel tanah setelah 3 minggu. (Sumber foto: Wulan, 2009)

a

b

Sampel Cyanophyta yang telah diidentifikasi. a. Sampel Cyanophyta dengan satu kali pencucian dengan medium pertumbuhan; b. Sampel Cyanophyta setelah dua kali pencucian dengan medium pertumbuhan. (Sumber foto: Wulan, 2009)