BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA. Berdasarkan taksonomi tanaman,bunga kemangi termasuk dalam :

BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Bunga kemangi (Ocimum basilicum L)

Berdasarkan taksonomi tanaman,bunga kemangi termasuk dalam : Kingdom

: Plantae

Divisi

: Spermathophyta

Class

: Dicotyledoneae

Ordo

: Lamiales

Famili

: Lamiaciae

Genus

: Ocimum

Spesies

: Ocimum basilicum L

Nama Lokal

: Kemangi

Morfologi dari bunga kemangi yaitu: a. Tanaman Tanaman kemangi merupakan tanaman aromatik,tumbuh tegak,tanaman tahunan atau berumur pendek,tumbuh hingga mencapai tinggi 1 meter. Batang quadrangular atau bersegi empat,tebal sekitar 6 mm, bercabang banyak halus atau berbulu ketika muda,berwarna hijau muda hingga ungu tua. b. Daun Daun tunggal,berhadapan. Berbentuk bulat telur hingga elips agak meruncing di bagian ujung, Panjang sekitar 5 cm berwarna hijau muda hingga hijau keunguan,halus hingga sedikit berbulu. c. Bunga Majemuk mahkota tubular,dua lapis 5-8 mm berbulu di bagian luar berwarna putih keunguan putih atau kuning krem.

Universitas Sumatera Utara

d. Buah Buah terdiri dari 4 nutlet-buah kecil yang memiliki cangkang tersendiri dan satu buah biji yang berbeda tertutup dalam tabung di kelompok. Nutlet berbentuk bulat telur, 1-2 mm x 1 mm berwarna hitam hingga coklat tua. e. Biji Berwarna hitam (Ismawan, 2013). Dengan morfologi bunga kemangi diatas dapat dilihat tanaman bunga kemangi pada gambar 2.1

Gambar 2.1. Bunga Kemangi (Ocimum basilicum L) 2.1.1. Ciri khas tanaman penghasil eugenol dan tymol Kemangi penghasil eugenol atau tymol yang cukup tinggi sebagai penolak serangga : Ocimum basilicum memiliki ciri khas tanaman ini daunnya berwarna hijau dan bentuk batang persegi empat dengan warna hijau hingga keunguan. Kemangi jenis ini memiliki tinggi 50-100 cm. Batang muda berwarna hijau muda,ungu batangnya tidak berkayu. Mahkota bunga berwarna putih dan muncul dari ketiak daun. Bentuk daun oval dan bergerigi tajam. Jika daunnya diremas sedikit berbau mint. Rendemen minyaknya bervariasi 0,25-0,46% (Kardinan, 2005).


Kandungan eugenol kemangi jenis ini bisa mencapai 46%. Optimalnya tanaman ini bisa dipanen sebanyak tiga kali selama masa produksinya, yaitu selama kurun waktu satu tahun. Setelah itu tanaman sudah mulai kurang produktif untuk menghasilkan daun sehingga perlu diremajakan (Kardinan, 2005).

2.1.2. Manfaat Bunga Kemangi

Kemangi merupakan tanaman bumbu penting dalam kuliner Italia, Thailand, Vietnam, dan Laos, termasuk Indonesia. Daun segar dan kering digunakan untuk memberikan rasa harum,hangat, dan manis yang tajam menyerupai cengkih. Digunakan baik untuk makanan maupun minuman. Daunnya banyak digunakan untuk pelengkap sup, salad, masakan sayuran. Daun basilica commun nama lain kemangi merupakan sumber minyak atsiri dan oleoresin terutama diterapkan dalam industri pangan, sebagai penyedap rasa bahan panggangan, saus, acar, Ekstraksi digunakan sebagai stimulant dan kaminatif (agen yang mencegah atau

mengurangi

perut

kembung

atau

flatulen)

serta

untuk

mengobati

muntah,batuk,disentri kronis dan diare. Di Vietnam kemangi digunakan untuk mengobati demam dan malaria. Bijinya digunakan sebagai bahan minuman nonalkohol dan obat-obatan (Ismawan ,2013). Efek farmakologis dari hasil penelitian -

Vasorelaksan (pelancar peredaran darah): Hasil menunjukkan ekstrak Ocinum

basilicum menghasilkan efek vaksorelaksan signifikan pada 10−5 M-molar-(Ρ < 0,0). Ekstrak tanaman juga cenderung menekan kontraksi kenaikan yang diiduksi HCD

(High Cholesterol diet) (Ρ = 0,05). Ekstrak menghambat agregasi platelet induksi ADP (Adhenosine diposphate). Ocinum basilicum sebagai tanaman obat dapat bermanfaat untuk system kordiovaskuler. -

Ocinum basilicum secara tradisioanl digunakan sebagai obat tradisional untuk

mengatasi kecemasan,diabetes,penyakit kardiovaskular, sakit kepala, sakit saraf


sebagai antiinflamasi, serta digunakan pada masalah neurogeneratif. Penelitian dilakukan untuk mengidetifikasi etil asetat (Ismawan, 2013).

2.2. Minyak atsiri

Minyak yang terdapat di alam terbagi menjadi 3 golongan yaitu minyak mineral (mineral oil), miyak nabati dan hewani yang dapat dimakan (edible fat) dan minyak atsiri (essential oil). Dalam tanaman,minyak atsiri mempunyai 3 fungsi, yaitu: 1) membuat proses penyerbukan dengan menarik jenis serangga atau hewan, 2) mencegah kerusakan tanaman oleh serangga atau hewan dan 3) sebagai cadangan makanan dalam tanaman. Minyak atsiri dalam industri digunakan untuk pembuatan kosmetik, parfum, antiseptik, obat-obatan “flavoring agent”dalam bahan pangan atau minuman dan sebagai pencampur rokok kretek (Ketaren, 1985). Minyak atsiri dihasilkan dari bagian jaringan tanaman tertentu seperti akar, batang, kulit, daun, bunga, buah, biji. Sifat minyak atsiri yang menonjol antara lain mudah menguap pada suhu kamar, mempunyai rasa getir, berbau wangi sesuai dengan aroma tanaman yang menghasilkannya, dan umumnya larut dalam pelarut organik. Banyak istlah yang digunakan untuk menyebut minyak atisri misalnya dalam bahaa inggris disebut essential oil, ethereal oils dan volatile oil. Dalam bahasa Indonesia ada yang menyebutnya minyak terbang, bahkan ada pula yang menyebutnya minyak kabur,hal ini disebabkan karena minyak atsiri mudah menguap apabila dibiarkan begitu saja dalam keadaan terbuka (Luntony, 2002) Minyak atsiri dihasilkan di dalam tanaman dan kemudian disimpan dalam berbagai organ. Penelitian menunjukkan bahwa minyak atsiri di buat dalam kelenjar minyak atsiri. Kelenjar minyak atsiri ada yang terdapat di dalam tanaman disebut “kelenjar

internal”)

dan

diluar

tanaman

(disebut

“kelenjar

eksternal”)

(Koensoemardiyah, 2010).


Ditinjau dari sumber alami minyak atsiri, substansi mudah menguap ini dapat dijadikan sebagai ciri khas dari suatu jenis tumbuhan karena setiap tumbuhan menghasilkan minyak atsiri dengan aroma yang berbeda. Dengan kata lain, setiap jenis tumbuhan menghasilkan minyak atsiri dengan aroma yang spesifik. Memang ada beberapa jenis minyak atsiri yang memiliki aroma yang mirip,tetapi tidak persis sama, dan sangat bergantung pada komponen kimia penyusun minyak tersebut (Agusta 2000).

2.2.1. Isolasi Minyak Atsiri Dengan Destilasi

Dalam tanaman minyak atsiri, terdapat dalam kelenjar minyak atau pada bulu - bulu kelenjar. Minyak atsiri hanya akan keluar setelah uap menerobos jaringan - jaringan tanaman yang terdapat dalam permukaan. Biasanya proses difusi berlangsung sangat lambat, maka untuk mempercepat proses difusi sebelum melakukan penyulingan terlebih dahulu bahan tanaman harus diperkecil dengan cara dipotong - potong atau digerus. Pemotongan atau penggerusan merupakan upaya untuk mengurangi ketebalan bahan hingga difusi terjadi. Peningkatan difusi akan mempercepat penguapan dan penyulingan minyak atsiri. Peristiwa terpenting yang terjadi dalam proses penyulingan dengan metode hidrodestilasi ini adalah terjadinya difusi minyak atsiri dan air panas melalui membran bahan yang disuling, terjadinya hidrolisa terhadap beberapa komponen minyak atsiri dan terjadinya dekomposisi yang disebabkan oleh panas (Guenther, 1987). Penyulingan dapat didefenisikan sebagai pemisahan komponen - komponen suatu campuran dari dua jenis cairan atau lebih berdasarkan perbedaan tekanan uap dari masing - masing zat tersebut. Dalam industri minyak atsiri dikenal 3 macam metode penyulingan, yaitu : 1.Penyulingan Air Bila cara ini digunakan maka bahan yang akan disuling berhubungan langsung dengan air mendidh. Bahan yang akan disuling kemungkinan mengapung diatas air atau terendam seluruhnya (Sastrohamidjojo, 2004). Minyak atsiri dari beberapa jenis


bahan seperti bunga mawar cocok diproduksi dengan cara ini sebab seluruh bagian bahan harus tercelup dan dapat bergerak dalam air mendidih (Luntony, 2002). 2. Penyulingan uap dan air Dalam metode penyulingan ini digunakan alat serupa dandang yang di dalamnya mempunyai penyangga berupa lempengan yang berlubang-lubang seperti halnya dandang untuk menanak nasi. Diatas lubang-lubang ini ditempatkan bahan tanaman yang akan disuling. Bila dandang tersebut dipanaskan maka air akan mendidh dan uap air akan keluar lewat lubang-lubang itu kemudian keluar lewat pendingin, setelah melewati bahan yang akan disuling (Koensoemardiyah, 2010) 3. Penyulingan uap Penyulingan uap disebut juga penyulingan tak langsung. Dalam proses penyulingan dengan uap ini, uap dialirkan melalui pipa uap berlingkar yang berpori dan berada di bawah bahan tanaman yang akan disuling. Kemudian uap akan bergerk menuju ke bagian atas melalui bahan yang disimpan di atas saringan (Luntony, 2002). Sistem penyulingan ini baik digunakan untuk mengekstraksi minyak dari bijibijian,akar dan kayu-kayuan yang umumnya mengandung komponen minyak yang bertitik didih tinggi dan tidak baik dilakukan terhadap bahan yang mengandung minyak atsiri yang mudah rusak oleh pemanasan dan air (Ketaren, 1985).

2.2.2. Komposisi Kimia Minyak Atsiri

Pada umumnya variasi komposisi minyak atsiri disebabkan oleh perbedaan jenis tanaman penghasil,kondisi iklim,tanah tempat tumbuh,umur

panenan,metode

ekstraksi yang dipergunakan dan cara penyimpanan minyak (Ketaren, 1985). Minyak atsiri umumnya terdiri dari berbagai campuran persenyawaan kimia yang terbentuk dari unsur carbon (C) , hidrogen (H), oksigen (O) serta beberapa persenyawaan kimia yang mengandung unsur nitrogen (N) dan belerang (S). Pada umumnya komponen kimia dalam minyak atsiri dibagi 2 golongan yaitu : 1.

Golongan hidrokarbon


Persenyawaan yang termasuk golongan hidrokarbon terbentuk dari unsur hidrogen (H) dan carbon (C). Jenis hidrokarbon yang terdapat dalam alam dan minyak atsiri sebagian besar terdiri dari monoterpen (2 unit isoprene) sesquiterpen (3 unit isoprene), diterpen (4 unit isoprene) dan politerpen serta paraffin,olefin dan hidrokarbon aromatic. 2.

Oxygenated hydrocarbon

Komposisi kimia dari golangan persenyawaan ini termasuk dari unsur carbon (C), hidrogen (H) dan oksigen (O). Persenyawaan yang termasuk dalam golongan ini adalah persenyawaan alkohol,aldehid,keton, dalam ester dan eter. Ikatan atom karbon yang terdapat dalam molekulnya dapat terdiri dari ikatan jenuh dan ikatam tidak jenuh umumnya tersusun dari terpen. Komponen lainnya terdiri dari persenyawaan fenol, asam organik yang terikat dalam bentuk ester misalnya lakton,kumarin dan turunan furan misalnya quinines. Pada umumnya sebagian besar minyak atsiri terdiri dari campuran persenyawaan golongan hidrokarbon dan oxygenated hidrocarbon. Disamping itu minyak atsiri mengandung resin dan lilin dalam jumlah kecil yang merupakan komponen tidak dapat menguap (Ketaren, 1985).

2.2.3. Biosintesis minyak atsiri

Berdasarkan proses biosintesinya atau pembentukan komponen minyak atsiri di dalam tumbuhan,minyak atsiri dapat dibedakan menjadi dua golongan, Golongan pertama adalah turunan terpena yang terbentuk dari asam asetat melalui jalur biosintesis asam mevalonat. Golongan kedua adalah senyawa aromatic yang terbentuk dari biosintesis asam siklamat melalui jalur fenil propanoid (Agusta, 2000). Mekanisme dari tahap-tahap reaksi biosintesis terpenoid yaitu asam asetat yang telah diaktifkan oleh koenzim A melakukan kondensasi jenis Clasein menghasilkan asam asetoasetat. Senyawa yang dihasilkan ini dengan asetil koenzim A melakukan kondensasi jenis aldol menghasilkan rantai karbon bercabang sebagaimana ditemukan pada asam


mevalonat. Reaksi-reaksi berikutnya ialah Fosforilasi,eliminasi asam fosfat dan dekarboksolasi

menghasilkan IPP

(isopentenil pirofosfat)

yang

selanjutnya

berisomerisasi menjadi DMAPP oleh enzim isomerase. IPP sebagai unit merupakan langkah pertama dari polimerisasi isoterpen untuk menghasilkan terpenoid. Penggabungan ini terjadi karena serangan electron diikuti oleh penyingkiran ion pirofosfat. Serangan ini menghasilkan geranil pirofosfat (GPP) yakni senyawa antara bagi semua senyawa monoterpen. Sintesa terpenoid sangat sederhana sifatnya. Ditinjau dari segi teori reaksi organik sintesa ini hanya menggunakan beberapa jenis reaksi dasar. Reaksi-reaksi selanjutnya dari senyawa antara GPP,FPP,GGPP untuk menghasilkn senyawasenyawa terpenoid satu per satu hanya melibatkan beberapa jenis reaksi sekunder pula. Reaksi-reaksi sekunder ini lazimnya adalah hidrolisa,siklisasi,oksidasi,reduksi, dan reaksi-reaksi spontan yang dapat berlangsung dengan mudah dalam suasana netral dan pada suhu kamar, seperti isomerisasi,dehidrasi,dekarbosilasi dan sebagainya,dapat dilihat pada gambar 2.2 Untuk menjelaskan dapat diambil beberapa contoh monoterpen. Dari segi biogenetik, perubahan geraniol, nerol dan linalool dari yang satu menjadi yang lain berlangsung sebagai akibat reaksi isomerisasi. Ketiga alkohol ini, yang berasal dari hidrolisa geranil pirofosfat (GPP) dapat menjalani reaksi-reaksi sekunder berikut, misalnya Dehidrasi menghasilkan miresena, oksidasi menjadi sitral dan ksidasi reduksi menghasilkan

sitronelal.

Berikut

ini

adalah

contoh

perubahan

senyaawa

monoterpen,dapat dilihat pada gambar 2.3


Gambar 2.3. Perubahan Senyawa Monoterpen (Achmad, 1986)


Gambar 2.2 Biosintesisa Terpenoid (Achmad, 1986) Senyawa- senyawa seskuiterpen diturunkan dari cis-farnesil pirofosfat dan trans- farnesil pirofosfat melalui reaksi siklisasi dan reaksi sekunder lainnya. Kedua isomer farnesil pirofosfat ini dihasilkan in vivo melalui mekanisme yang sama seperti isomerisasi antara geraniol dan nerol. Perubahan farnesil pirofosfat menjadi seskuiterpen terlihat pada gambar 2.4


Gambar 2.4. Reaksi Biogenetik Beberapa Seskuiterpena (Achmad, 1986)

Metabolisme sekunder yang terkandung dalam Alliums pp membentuk suatu system kimia yang kompleks serta mekanisme pertahanan dari kerusakan akibat mikroorganisme pertahanan diri dari kerusakan akibat mikroorganisme dan factor eksternal lainnya. Sebagaimana kebanyakan tumbuhan lain, Allium mengandung lebih dari 100 metabolit sekunder secara biologi sangat berguna. Senyawa ini kebanyakan mengandung belerang yang bertanggung jawab atas rasa, aroma dan sifat- sifat farmakologi Alliums pp (Hermawan dan Setyawan, 2003). Gambar 2.5. merangkum biosintesis dari beberapa Allium spp. Peptida “Asam Amino” dan prekursor aroma dilakukan berdasarkan hasil label percobaan, dimana SO42- diumpankan ketanaman bawang. Dengan singkat akan bercampur dengan tumbuhan yang terdiri dari alkohol yang mengandung jumlah air enzim allinase yang terbatas, sehingga memungkinkan analisis peptida dengan HPLC. Sulfat direduksi dan diasimilasi ke dalam sistem dalam kloroplas dan kemudian masuk ke dalam siklus glutatin, perubahan Michael dari γ-glutamilsintein dengan penambahan


asam metakrilat (dari valin) akan mengahasilkan γ-glutamil-S-2-carbosipropilsintein dimana dalam bawang mengalami dekarboksilasi berurutan untuk menghasilkan γglutamil-S-1-propenlsintein. Dengan adanya oksidasi maka akan terbentuk γ-glutamil propenilsintein, selanjutnya pelepasan peptida dengan enzim transpeptidase akan mengahasilkan γ-glutamil-S-1-propenilsitein. Percobaan telah menetapkan bahwa prekursor diubah dari γ-glutamil-S-2 karbosipropilsintein menjadi S-1-propenilsintein S-oksida dengan hilangnya atom 3-pro-R hidrogen. Proses paralel ditemukan oleh Michael,

penambahan

glutatin

untuk

asam

metakrilat

memberikan

S-2-

karbosipropilglutatin yang diikuti dengan konversi kedua menjadi γ-glutamil-S-2carboxypropylcysteine dan metalasi glutatin menghasilkan S-metilglutatin diikuti oleh konversi yang terakhir menjadi γ-glutamil-S-metilsintein. γ-Glutamil-S-2propenilsintein dibentuk dari γ-glutamil-S-2 karbosipropilsintein atau lebih dari serin dan 2-propenethiol oleh suatu proses tidak baik dikonversi menjadi γ-glutamil-S-2propenylcysteine S-oksida, dengan adanya oksingen akan terbentuk γ-glutamil-S-2propenylcysteine

S-oksida

selanjutnya

pelepasan

peptide

dengan

enzim

transpeptidase akan menghasilkan S-2-Propenilsintein S-oksida (Block, 1992).


H

NH2 H 2N

SO42-

SH COOH

Sintein

N

C

HO2C

Asam glutamat

Glisin SH

Glisin

COOH

C

HO2C

Glutatin

N

COOH

S COOH

OC

O

NH

S-2-karbosipropilglutatin

COOH

H

NH2 C

HO2C

OC NH

H

NH2

SH

O

COOH

γ- Glutamil sintein

N

C

HO2C

COOH

O

H

NH2

H

NH2

N

N

C

HO2C

S

O

COOH

O

COOH

Me

S OC NH

S-metilglutatin

γ-Glutamil-S-2-carbosipropilsintein

COOH

Glisin H

NH2

N

C

HO2C

H

NH2 S

COOH O γ-glutamil-S-2-propilsintein

H

S COOH

O

γ-glutamil-S-2-propenilsintein S-oksida

H

NH2

N

C

HO2C

H2N

HOOC

H2N

O

S-2-Propenylsintein S-oksida

O S

HOOC

S

O

S-Propilsintein S-oksida

H

NH2

O

Oxidase

S

HO2C

γ-glutamil-S-1-propenilsintein S-oksida

HOOC

HOOC

S-1-Propenylsintein S-oksida

O

N

S

Me

COOH

γ-Glutamil transpeptidase H2N

O

H

γ-glutamil-S-metilsintein S-oksida

γ-Glutamil transpeptidase

S

C O

COOH

O

H2N

COOH

O

N

Me

S

γ-glutamil-S-metilsintein

NH2

C

HO2C

N

C

HO2C

COOH O γ-glutamil-S-1-propenilsintein


S

S

Oxidase

COOH O γ-glutamil-S-propilsintein S-oksida


N

C

HO2C

H

NH2

Oxidase

O

N

C

HO2C

S

COOH O γ-glutamil-S-propilsintein

Oxidase

NH2

N

C

HO2C

H

NH2

S

Me

O

S-Metilsintein S-oksida

Gambar 2.5. Biosintesis Organo sulfur Allium

2.3. Analisa Komponen Kimia Minyak Atsiri dengan GC-MS

Analisa komponen minyak atsiri merupakan masalah yang cukup rumit karena minyak atsiri mengandung campuran senyawa dan sifatnya yang mudah menguap pada suhu kamar. Setelah ditemukan Kromatografi Gas( GC), kendala dalam analisis


komponen minyak atsiri mulai dapat diatasi. Pada penggunaan GC, efek penguapan dapat dihindari bahkan dihilangkan sama sekali. Perkembangan teknologi instrumentasi yang pesat akhirnya dapat menghasilkan suatu alat yang merupakan gabungan dua sistem dengan prinsip dasar yang berbeda satu sama lain tetapi saling melengkapi, yaitu gabungan antara kromatografi gas dan spektrometer massa. Kromatografi gas berfungsi sebagai alat pemisah berbagai campuran komponen dalam sampel sedangkan spektrometer massa berfungsi untuk mendeteksi masingmasing komponen yang telah dipisahkan pada kromatografi gas (Agusta, 2000).

2.3.1. Kromatografi Gas

Kromatografi adalah cara pemisahan campuran yang didasarkan atas perbedaan distribusi dari komponen campuran tersebut diantara dua fase, yaitu fase diam (stationary) dan fase bergerak (Yazid, 2005). Dalam kromatografi gas, fase bergeraknya adalah gas dan zat terlarut terpisah sebagai uap. Pemisahan tercapai dengan partisi sampel antara fase gas bergerak dan fase diam berupa cairan dengan titik didih tinggi (tidak mudah menguap) yang terikat pada zat padat penunjangnya (Khopkar, 2003). Kromatografi gas digunakan untuk memisahkan komponen campuran kimia dalam suatu bahan berdasarkan perbedaan polaritas campuran. Fase gerak akan membawa campuran sampel menuju kolom. Campuran dalam fase gerak akan berinteraksi dengan kecepatan yang berbeda dimana interaksi komponen dengan fase diam dengan waktu yang paling akhir (Eaton, 1989). Waktu yang menunjukkan berapa lama suatu senyawa dapat bertahan di kolom disebut waktu tambat (waktu retensi) yang diukur mulai saat penyuntikan sampai saat elusi terjadi (Gritter et al, 1991). Kromatografi gas (GC) merupakan jenis kromatografi yang digunakan dalam kimia organik untuk pemisahan dan analisis. Kromatografi Gas dapat digunakan untuk menguji kemurniaan dari bahan tertentu, atau memisahkan berbagai komponen


dari

campuran.

Dalam

beberapa

situasi,

GC

dapat

membantu

dalam

mengindentifikasi sebuah senyawa kompleks. Dalam kromatografi gas, fase yang bergerak atau mobile phase adalah sebuah operator gas, yang biasanya gas murni seperti helium atau yang tidak reaktif seperti gas nitrogen. Fasa diam atau stationary phase merupakan tahap mikroskopis lapisan cair atau polimer yang mendukung gas murni, di dalam bagian dari sistem pipa-pipa kaca atau logam yang disebut kolom. Instrumen yang digunakan untuk melakukan kromatografi gas disebut gas chromatograph (Fowlis, 1998).

2.3.2. Gas Pembawa

Gas pembawa yang paling sering dipakai adalah helium (He), argon (Ar), nitrogen (N2), hidrogen (H2), dan karbondioksida (CO2). Keuntungannya adalah karena semua gas ini tidak reaktif dan dapat dibeli dalam keadaan murni dan kering yang dikemas dalam tangki tekanan tinggi. Pemilihan gas pembawa tergantung pada detektor yang dipakai. Gas pembawa harus memenuhi sejumlah persyaratan, antara lain harus inert (tidak bereaksi dengan sampel, pelarut sampel, material dalam kolom), murni, dan mudah diperoleh (Agusta, 2000).

2.3.3. Sistem Injeksi

Lubang injeksi didesain untuk memasukkan sampel secara cepat dan efesien. Pada dasarnya, ada 4 jenis injektor pada kromatografi gas, yaitu : a. Injeksi langsung (direct injection), yang mana sampel yang diinjeksikan akan diuapkan dalam injektor yang panas dan 100% masuk menuju kolom. b. Injeksi terpecah (split injection), yang mana sampel yang diinjeksikan diuapkan dalam injektor yang panas dan selanjutnya dilakukan pemecahan. c. Injeksi tanpa pemecahan (splitness injection), yang mana hampir semua sampel diuapkan dalam injektor yang panas dan dibawa ke dalam kolom karena katup pemecah ditutup; dan


d. Injeksi langsung ke kolom (on coloum injection), yang mana ujung split dimasukkan langsung ke dalam kolom. Teknik injeksi langsung ke dalam kolom digunakan untuk senyawa-senyawa yang mudah menguap, karena kalau penyuntikkannya melalui lubang suntik, dikawatirkan akan terjadi peruraian senyawa tersebut karena suhu yang tinggi (Rohman, 2009).

2.3.4. Kolom

Ada 2 jenis kolom dalam kromatografi gas adalah kolom kemas dan kolom kapiler. Kolom kemas terdiri atas fase cair (sekurang-kurangnya pada suhu kromatografi) yang tersebar pada permukaan penyangga yang lembam yang terdapat dalam tabung nisbi besar (diameter 1 - 3 mm). Fase diam dapat hanya dilapiskan saja pada penyangga atau terikat secara kovalen pada penyangga yang menghasilkan fase terikat. Kolom kapiler jauh lebih kecil (0,02 - 0.2 mm) dan dinding kapiler bertindak sebagai penyangga lembam untuk fase diam cair. Fase ini dilapiskan pada dinding kolom dan bahkan dapat dicampur dengan sedikit penyangga lembam yang sangat halus untuk memperbesar luas permukaan efektif (Gritter, 1991).

2.3.5. Fase Diam

Fase diam disapukan pada permukaan dalam medium, seperti tanah diatome dalam kolom atau dilapiskan pada dinding kapiler. Berdasarkan bentuk fisiknya, fase diam yang umum digunakan pada kolom adalah fase diam padat dan fase diam cair. Berdasarkan sifatnya fase diam dibedakan berdasarkan kepolarannya, yaitu nonpolar, sedikit polar, setengah polar (semi polar), dan sangat polar. Berdasarkan sifat minyak atsiri yang non polar sampai sedikit polar, untuk keperluan analisis sebaiknya digunakan kolom dalam fase diam yang bersifat sedikit polar. Jika dalam analisis minyak atsiri digunakan kolom yang lebih polar, sejumlah puncak yang dihasilkan menjadi lebar (lebih tajam) dan sebagai puncak tersebut juga membentuk


ekor. Begitu juga dengan garis dasarnya tidak rata dan terlihat bergelombang. Bahkan kemungkinan besar komponen yang bersifat nonpolar tidak akan terdeteksi sama sekali (Agusta, 2000).

2.3.6. Suhu

Suhu merupakan salah satu faktor utama yang menentukan hasil analisis kromatografi gas dan spektrometri massa. Umumnya yang sangat menentukan adalah pengaturan suhu injektor dan kolom. Kondisi analisis yang cocok sangat bergantung pada komponen minyak atsiri yang akan dianalisis (Agusta, 2000).

2.3.7. Detektor

Detektor merupakan perangkat yang diletakkan pada ujung kolom tempat keluar fase gerak (gas pembawa) yang membawa komponen hasil pemisahan. Detektor pada kromatografi adalah suatu sensor elektronik yang berfungsi mengubah sinyal gas pembawa

komponen-komponen di dalamnya menjadi sinyal elektronik. Sinyal

elektronik detektor akan sangat berguna untuk analisis kualitatif maupun kuantitatif terhadap komponen-komponen yang terpisah di antara fase diam dan fase gerak (Rohman, 2009).

2.3.8. Spektrometri Massa

Prinsip spektrometri massa (MS) ialah molekul senyawa organik (sampel) ditembak dengan berkas elektron dan menghasilkan ion bermuatan positif yang mempunyai energi yang tinggi karena lepasnya elektron dari molekul yang dapat pecah menjadi ion positif yang lebih kecil (ion fragmen). Spektrum massa merupakan grafik antara limpahan relatif lawan perbandingan massa/muatan (m/z) (Sastrohamidjojo, 2004). Spektrometer massa menembaki bahan yang sedang diteliti dengan berkas elektron dan serta kuantitatif mencatat hasilnya sebagai suatu spektrum fragmen ion


positif. Terpisah fragmen ion positif didasarkan pada massanya. Spektrometer massa biasa diambil pada energi berkas elektron sebesar 70 elektron volt. Kejadian tersederhana adalah tercampaknya satu elektron dari molekul dalam fasa gas oleh sebuah elektron dalam berkas elektron dan membentuk suatu kation radikal ( M • ) M••

+

e

M•

+

2e

Satu proses yang disebabkan oleh tabrakan elektron pada kamar pengion spektrometer massa adalah ionisasi dari molekul yang berupa uap dengan kehilangan satu elektron dan terbentuk ion molekul bermuatan positif, karena molekul senyawa organik mempunyai elektron berjumlah genap maka proses pelepasan satu elektron menghasilkan ion radikal yang mengandung satu elektron tidak berpasangan. M

M

Proses lain molekul yang berupa uap tersebut menangkap sebuah elektron membentuk ion radikal bermuatan negatif dengan kemudian terjadi jauh lebih kecil (10-2) dari pada ion radikal bermuatan positif (Sudjadi, 1983).

Gambar 2.6. Skema Alat Spektroskopi Massa

Pada sistem GC-MS ini, yang berfungsi sebagai detektor adalah spektrometer massa itu sendiri yang terdiri dari sistem analisis dan sistem ionisasi, dimana Electron Impact ionization (EI) adalah metode ionisasi yang umum digunakan (Agusta, 2000). Spektrometer massa pada umumnya digunakan untuk : 1. Menentukan massa suatu molekul


2. Menentukan rumus molekul dengan menggunakan Spektrum Massa Beresolusi Tinggi (High Resolution Mass Spectra) 3. Mengetahui informasi dari struktur dengan melihat pola frakmentasinya Ketika uap suatu senyawa dilewatkan dalam ruang ionisasi spektrometer massa, maka zat ini dibombardir atau ditembak dengan elektron. Elektron ini mempunyai energi yang cukup untuk melemparkan elektron dalam senyawa sehingga akan memberikan ion positif, ion ini disebut dengan ion molekul (M+). Ion molekul cendrung tidak stabil dan terpecah menjadi frakmen-frakmen yang lebih kecil. Frakmen-frakmen ini yang akan menghasilkan diagram batang (Dachriyanus, 2004). Spektrometer mampu menganalisis cuplikan yang jumlahnya sangat kecil dan menghasilkan data yang berguna mengenai struktur dan indentitas senyawa organik. Jika eluen dari kromatografi gas diarahkan ke spektrometer massa, maka informasi mengenai struktur untuk masing-masing puncak pada kromatogram dapat diperoleh. Karena laju aliran yang rendah dan ukuran cuplikan yang kecil, cara ini paling mudah diterapkan pada kolom kromatografi gas kapiler. Cuplikan disuntikkan ke dalam kromatografi gas dan terkromatografi sehingga semua komponenya terpisah. Spektrum massa diukur secara otomatis pada selang waktu tertentu atau pada maksimum atau tengah-tengah puncak ketika keluar dari kolom. Kemudian data disimpan di dalam komputer, dan dari padanya dapat diperoleh hasil kromatogram disertai integrasi semua puncak. Disamping itu, kita dapat memperoleh spektrum massa masing-masing komponen. Spektrum ini dapat dipakai pada identifikasi senyawa yang pernah diketahui dan sebagai sumber informasi struktur dan bobot molekul senyawa baru (Gritter, 1991). Peningkatan penggunaan GC-MS banyak digunakan yang dihubungkan dengan komputer dimana dapat merekam dan menyimpan data dari sebuah analisis akan berkembang pada pemisah yang lebih efisien. Karena komputer dapat diprogram untuk mencari spektra library yang langka, membuat identifikasi dan menunjukkan analisis dari campuran gas tersebut (Willett, 1987).


2.4. Antioksidan

Antioksidan merupakan senyawa pemberi elektron (electron donor) atau reduktan. Senyawa

ini

memiliki

berat

molekul

kecil,

tetapi

mampu

mengaktivasi

berkembangnya reaksi oksidasi, dengan cara mencegah terbentuknya radikal. Antioksidan dapat diperoleh, 1. Dari luar tubuh (eksogen) dengan cara melalui makanan dan minuman yang mengandung vitamin C, E, atau betakaroten. 2. Dari dalam tubuh (endogen), yakni dengan enzim superoksida dismutase (SOD), gluthatione, perxidasi, dan katalase yang diproduksi oleh tubuh sebagai antioksidan (Kosasih et al, 2006). Sebenarnya tubuh sendiri mempunyai sistem antioksidan termasuk superoksid dismutase, katalase, dan glutation, akan tetapi jika terjadi paparan oksidan yang berlebihan, antioksidan tubuh ini tidak akan mampu untuk mengatasinya. Sehingga tubuh memerlukan pasokan antioksidan dari luar (Nordmann, 1993). Antioksidan dikelompokkan menjadi tiga, yaitu : 1. Antioksidan primer berfungsi untuk mencegah pembentukan senyawa radikal bebas baru. Antioksidan primer mengubah radikal bebas yang ada menjadi molekul yang berkurang dampak negatifnya sebelum radikal bebas ini sempat bereaksi. contoh : enzim SOD yang berfungsi sebagai pelindung hancurnya sel - sel dalam tubuh serta mencegah proses peradangan karena radikal bebas. Enzim SOD sebenarnya sudah ada dalam tubuh kita. Namun, bekerjanya membutuhkan bantuan zat - zat gizi mineral seperti mangan, seng,dan tembaga. Selenium juga berperan sebagai antioksidan. Jadi, jika ingin menghambat gejala dan penyakit degeneratif, mineral - mineral tersebut hendaknya tersedia cukup dalam makanan yang dikonsumsi tiap hari 2. Antioksidan sekunder berfungsi menangkap senyawa serta mencegah terjadinya reaksi berantai. contoh : Vitamin E, Vitamin C, beta karoten, asam urat, bilirubin dan albumin


3. Antioksidan tersier berfungsi memperbaiki kerusakan sel - sel dan jaringan yang disebabkan radikal bebas. Contoh : enzim yang memperbaiki DNA pada inti sel adalah metionin sulfoksidan reduktase. Adanya enzim - enzim perbaikan DNA ini berguna untuk mencegah penyakit kanker. Untuk mencegah atau memperlambat kerusakan oksidatif makanan, antioksidan banyak digunakan sebagai aditif dalam lemak dan minyak, dan dalam pengolahan makanan. Jenis antioksidan yang dapat digunakan antara lain : antioksidan sintetis dan antioksidan alami (Ensofas, 2010).

2.4.1. Antioksidan Sintetik

Antioksidan sintetik adalah antioksidan yang diperoleh dari hasil sintesis reaksi kimia. Senyawa fenol sintetis seperti Butil hidroksianisol (BHA) dan Butil hidroksitoluen (BHT) bukan antioksidan yang baik, sebab pada pemaparan yang lama dapat menyebabkan efek negatif terhadap kesehatan serta meningkatkan terjadinya karsinogenesis (Rohman, 2007). Antioksidan alami adalah antioksidan hasil ekstraksi bahan alam. Antioksidan alami seperti α - tokoferol dan asam askorbat, memiliki efek samping merugikan yang lebih kecil, tetapi aktivitasnya lebih tinggi daripada antioksidan sintetik (Rohman, 2007). Beberapa contoh antioksidan sintetik yang diijinkan penggunaanya untuk makanan dan penggunaannya telah sering digunakan, yaitu butil hidroksi anisol (BHA), butil hidroksi toluen (BHT), propil galat (PG), tert-butil hidoksi quinon (TBHQ) dan tokoferol. Antioksidan - antioksidan tersebut merupakan antioksidan alami yang telah diproduksi secara sintetis untuk tujuan komersial. Senyawa antioksidan yang diisolasi dari sumber alami dan ditambahkan ke makanan sebagai bahan tambahan pangan (Pratt et al, 1992).


2.4.2. Antioksidan Alami

Senyawa antioksidan yang diisolasi dari sumber alami adalah yang berasal dari tumbuhan yaitu tokoferol, vitamin C, betakaroten, flavonoid,dan senyawa fenolik. Isolasi antioksidan alami telah dilakukan dari tumbuhan yang dapat dimakan, tetapi tidak selalu dari bagian yang dapat dimakan. Antioksidan alami tersebar di beberapa bagian tanaman, seperti pada kayu, kulit kayu, akar, daun, buah, bunga, biji dan serbuk sari (Pratt et al, 1992). Senyawa antioksidan alami tumbuhan umumnya adalah senyawa fenolik atau polifenolik yang dapat berupa golongan flavonoid, turunan asam sinamat, kumarin, tokoferol dan asam - asam organik polifungsional. Golongan flavonoid yang memiliki aktivitas antioksidan meliputi flavon, flavonol, isoflavon, kateksin, flavonol dan kalkon. Sementara turunan asam sinamat meliputi asam kafeat, asam ferulat, asam klorogenat, dan lain - lain.

2.4.3. Pengaruh Antioksidan

Antioksidan dalam makanan dapat didefinisikan sebagai zat yang mampu menunda, memperlambat atau mencegah pengembangan ketengikan dan rasa dalam makanan atau kerusakan lainnya akibat oksidasi. Antioksidan menunda pergembangan aromatak sedap dengan memperpanjang periode induksi. Penambahan antioksidan setelah akhir periode ini cenderung tidak efektif dalam memperlambat pengembangan ketengikan. Antioksidan dapat menghambat atau memperlambat oksidasi dalam dua cara: baik dengan peredaman radikal bebas, dalam hal ini senyawa tersebut digambarkan sebagai antioksidan primer,atau dengan mekanisme yang tidak melibatkan peredaman radikal bebas langsung, dalam hal ini senyawa tersebut adalah antioksidan sekunder. Antioksidan primer termasuk senyawa fenolik. Komponen ini dikonsumsi selama periode induksi. Antioksidan sekunder beroperasi dengan berbagai mekanisme


termasuk mengikat ion logam, peredaman oksigen, mengubah hidroperoksida untuk spesi non-radikal, menyerap radiasi UV atau menonaktifkan oksigen singlet. Biasanya, antioksidan sekunder hanya menunjukkan aktivitas antioksidan ketika komponen minor keduanya ada. Hal ini dapat dilihat dalam kasus eksekusi agen seperti asam sitrat yang efektif hanya di hadapan ion logam, dan mengurangi agen seperti asam askorbat yang efektif dalam kehadiran tokoferol atau antioksidan primer lainnya (Pokorny, 2001).

2.4.4. 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazil (DPPH)

DPPH merupakan singkatan umum untuk senyawa kimia organik yaitu 2,2-diphenyl1-picrylhydrazil. DPPH adalah bubuk kristal berwarna gelap terdiri dari molekul radikal bebas yang stabil. Penyimpanan dalam wadah tertutup baik pada suhu -20°C DPPH mempunyai berat molekul 394.32 dengan rumus molekul C18H12N5O6, larut dalam air dan rumus molekul pada gambar 2.6 (Molyneux, 2004).

Gambar 2.7. Rumus Bangun DPPH Pengukuran aktivitas antioksidan dapat dilakukan beberapa cara. Salah satu metode pengukuran yang sering digunakan adalah metode DPPH. DPPH merupakan suatu radikal bebas yang stabil kerena mekanisme delokalisasi elektron bebas oleh molekulnya, sehingga molekul ini tidak mengalami reaksi dimerisasi yang sering terjadi pada sebagian besar radikal bebas lainnya. Delokalisasi juga memberikan efek warna ungu yang dalam pada panjang gelombang 517 nm dalam pelarut etanol. Zat ini berperan sebagai penangkap elektron atau penangkap radikal hidrogen bebas. Hasilnya adalah molekul yang bersifat stabil. Jika suatu senyawa antioksidan


direaksikan dengan zat ini maka senyawa antioksidan tersebut akan menetralkan radikal bebas dari DPPH (Bintang, 2010). Pengukuran aktivitas antioksidan dilakukan dengan inkubasi DPPH dengan minyak atsiri antioksidan selama 30 menit sehingga menghasilkan larutan ungu yang lebih memudar kemudian dilakukan pengukuran panjang gelombang pada 517 nm. Aktivitas antioksidan diperoleh dari nilai absorbansi yang selanjutnya akan digunakan untuk menghitung persentase inhibis 50% (IC50) yang menyatakan konsentrasi senyawa antioksidan yang menyebabkan 50% dari DPPH kehilangan karakter radikal bebasnya. Semakin tinggi kadar senyawa antioksidan dalam sampel maka akan semakin rendah nilai IC50. Hasil yang dituliskan berupa IC50, yang merupakan suatu konsentrasi sampel antioksidan yang diuji mampu melakukan peredaman 50% terhadap radikal DPPH dalam jangka waktu tertentu (Mosquera, 2007).

2.5. Antibakteri

Antibakteri merupakan bahan atau senyawa yang khusus digunakan untuk kelompok bakteri. Antibakteri dapat dibedakan berdasarkan mekanisme kerjanya, yaitu antibakteri

yang

mengakibatkan

menghambat perubahan

pertumbuhan

permeabilitas

dinding

membran

sel, sel

antibakteri atau

yang

menghambat

pengangkutan aktif melalui membran sel, antibakteri yang menghambat sintesis protein, dan antibakteri yang menghambat sintesis asam nukleat sel.

Aktivitas

antibakteri dibagi menjadi 2 macam yaitu aktivitas bakteriostatik (menghambat pertumbuhan tetapi tidak membunuh patogen) dan aktivitas bakterisidal (dapat membunuh patogen dalam kisaran luas (Brookset et al, 2005). Aktivitas (potensi) antibakteri dapat ditunjukkan pada kondisi yang sesuai dengan efek daya hambatnya terhadap bakteri. Ada dua metode umum yang dapat digunakan yaitu penetapan dengan lempeng silinder atau ”lempeng” dan penetapan dengan cara ”tabung” atau turbidimetri. Metode pertama berdasarkan difusi antibiotik dari silinder yang dipasang tegak lurus pada lapisan agar padat dalam cawan petri,


sehingga bakteri yang ditambahkan dihambat pertumbuhannya pada daerah berupa lingkaran atau ”zona” disekeliling silinder yang berisi larutan antibiotik. Metode turbidimetri berdasarkan atas hambatan pertumbuhan biakan mikroba dalam larutan serba sama antibiotik dalam media cair yang dapat menumbuhkan mikroba dengan cepat bila tidak terdapat antibiotik (Ditjen POM, 1995). Pengujian antimikroba dilakukan untuk mengukur respon pertumbuhan populasi mikroorganisme terhadap agen antimikroba. Kegunaan uji antimikroba adalah diperolehnya suatu sistem pengobatan yang efektif dan efesien. Ada dua metode utama dalam pengujian antimikroba, yaitu:

a.

Metode Difusi

Metode difusi merupakan salah satu metode yang sering digunakan, metode difusi dapat dilakukan dalam 5 cara menurut Pratiwi (2005), yaitu metode disc diffusion (tes Kirby & Bauer), e-test, disc-plate technique, cup-pate technique, gradient-palte technique. Penentuan aktivitas antimikroba dapat dilakukan dengan metode difusi agar, diantaranya dimana menggunakan piringan yang berisi agen antimikroba, kemudian diletakkan pada media agar yang sebelumnya telah ditanami mikroorganisme sehingga agen antimikroba dapat berdifusi pada media agar tersebut. Area jernih mengindikasi adanya hambatan pertumbuhan mikroorganisme oleh agen antimikroba pada permukaan agar (Aziz, 2010).

b.

Metode Dilusi

Metode dilusi (metode pengenceran) merupakan metode yang dilakukan dengan mengencerkan zat antimikroba dan dimasukkan kedalam tabung-tabung reaksi steril.Masing-masing tabung tersebut ditambahkan sejumlah mikroba uji yang telah diketahui jumlahnya. Pada interval tertentu, dilakukan pemindahan dari tabung reaksi ke

dalam

tabung-tabung

berisi

media

steril

kemudian

diinkubasi

dan


diamatipenghambatan pertumbuhan (Kusmiyati dan Agustini, 2007). Menurut Pratiwi (2008), metode dilusi dibedakan menjadi dua, yaitu dilusi cair (bruch dilution)dan dilusi padat (solid dilution).

2.6. Bakteri

Bakteri merupakan penghasil bermacam-macam zat organik dan obat-obatan antibiotik. Mikroorganisme memang peranan penting dalam menganalisis sistem enzim dan dalam mengalisis komposisi suatu makanan. Bakteri merupakan organisme yang sangat kecil (berukuran mikroskopis). Bakteri rata-rata berukuran lebar 0,5 – 1 mikron dan panjang hingga 10 mikron (1 mikron - 103 mm). Untuk melihat bakteri dengan jelas, tubuhnya perlu diisi dengan zat warna, pewarna ini disebut pengecatan bakteri (Irianto, 2006) Ada kalanya suatu bakteri perlu diwarnai dua kali. Setelah zat warna yang pertama (ungu) terserap, maka bakteri dicuci dengan alkohol, kemudian ditumpangi dengan zat warna berlainan, yaitu dengan zat warna merah. Zat warna tambahan terhapus, sehingga yang nampak adalah zat asli (ungu). Dalam hal ini bakteri disebut Gram Positif. Jika zat warna tambahan merah yang bertahan sehingga zat warna asli tidak tampak, dalam hal ini bakteri disebut Gram Negatif. Beberapa bakteri Gram positif dan bakteri Gram negatif yang penting dan diketahui dapat menyebabkan kerusakan pangan dan keracunan pangan dan perbedaan gram positif dan gram negative dilihat pada table 2.1 (Irianto, 2006).


Tabel 2.1. Perbedaan relatif sifat bakteri gram positif dan bakteri gram negatif dapat dilihat sebagai berikut (Fardiaz, 1992)

No.

1.

2.

Sifat

Perbedaan relatif Bakteri gram (+)

Bakteri gram (-)

Komposisi

Kandungan lipid

Kandungan lipid

dinding sel

rendah(1-4%)

(11-22%)

Lebih sensitif

Lebih tahan

Lebih dihambat

Kurang dihambat

Kebutuhan

Kebanyakan

Relatif sederhana

nutrien

spesies relative kompleks

Ketahanan terhadap penisilin

3.

Penghambatan oleh pewarna basa (misalnya violet Kristal)

4.

5.

Ketahanan terhadap perlakuan

Lebih tahan

Kurang tahan

2.6.1. Bakteri Gram Positif Streptococcus Mutans

S. mutans pertama kali diisolasi dari plak gigi oleh Clark pada tahun 1924. Klasifikasi bakteri tersebut adalah sebagai berikut : Kingdom

: Monera

Divisi

: Firmicutes

Class

: Bacilli

Ordo

: Lactobacillales

Family

: Streptococcaceae


Genus

: Streptococcus

Species

: Streptococcus mutans (Anonim, 2012)

S. mutans tumbuh pada suhu 18-400C dalam suasana fakultatif anaerob, sehingga bakteri ini dapat tumbuh dengan atau tanpa oksigen. Ketika oksigen sudah tidak tersedia, maka respirasi bakteri ini yang mulanya aerob akan berubah menjadi anaerob, sehingga terjadi fermentasi fruktosa menjadi asam laktat yang mampu merusak gigi dan penyakit yang disebabkan adalah karies gigi, beberapa hal yang menyebabkan karies gigi bertambah parah adalah seperti gula, air liur, dan juga bakteri pembusuknya. Setelah memakan sesuatu yang mengandung gula, terutama adalah sukrosa, dan bahkan setelah beberapa menit penyikatan gigi dilakukan, glikoprotein yang lengket ( kombinasi molekul protein dan karbohidrat) bertahan pada gigi untuk mulai pembentukan plak pada gigi bakteri S.mutans dapat dilihat pada gambar 2.7 (Gani, AB, 2006)

Gambar 2.8. Streptococcus Mutans

2.6.2. Bakteri Gram Negatif Pseudomonas aeruginosa

Berikut sistematika bakteri Pseudomonas aeruginosa (Dwidjoseputro, 1988) adalah sebagai berikut : Divisi

: Protophyta

Kelas

: Schizomycetes

Bangsa

: Pseudomonadales

Suku

: Pseudomonadaceae


Marga

: Pseudomonas

Jenis

: Pseudomonas aeruginosa

bakteri Pseudomonas aeruginosa dapat dilihat pada gambar 2.9.

Gambar 2.9. Pseudomonas aeruginosa Pseudomonas aeruginosa dapat menginfeksi seseorang yang mengalami gangguan pada sistem pertahanan tubuhnya, misalnya pada orang yang menderita luka bakar, pada orang yang mengalami gangguan metabolisme dan pada penderita yang mendapat pengobatan radiasi.Bakteri ini dapat menginfeksi hampir seluruh jaringan tubuh yang masuk melalui lesi lokal yang ada di permukaan tubuh. Selanjutnya akan memasuki pembuluh darah dan menyebar pada jaringan tubuh yang lain. Bakteri ini adalah bakteri gram negatif aerob obligat, berkapsul, mempunyai flagella polar sehingga bakteri ini bersifat motil, berukuran sekitar 0,5-1,0 μm, tidak menghasilkan spora dan tidak dapat menfermentasikan karbohidrat. Pada uji biokimia, bakteri ini menghasilkan hasil negatif pada uji indol, merah metil, dan voges - proskauer. Bakteri ini secara luas dapat ditemukan di alam, contohnya di tanah, air, tanaman, dan hewan. Pseudomonas aeruginosa adalah patogen oportunistik. Bakteri ini merupakan penyebab utama infeksi pneumonia nosokomial. Meskipun begitu, bakteri ini dapat berkolonisasi pada manusia normal tanpa menyebabkan penyakit. Ketika bakteri ini ditumbuhkan pada media yang sesuai, bakteri ini akan menghasilkan pigmen nonfluoresen berwarna kebiruan, piosianin. Pseudomonas aeruginosa memproduksi katalase, oksidase, dan amonia dari arginin (Pelczar, 1988).


BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA. Berdasarkan taksonomi tanaman,bunga kemangi termasuk dalam :

Recommend Documents