Akutní test toxicity na žábronožkách Artemia salina

Laboratoř ekotoxikologie Laboratorní návod č. 6

Laboratoř ekotoxikologie a LCA Ústav chemie ochrany prostředí, VŠCHT v Praze

Akutní test toxicity na žábronožkách Artemia salina

1.

Testovací organismus 1.1. Charakteristika organismu

Vajíčka žábronožky slaniskové se k nám dováží v konzervách, téměř výhradně vyráběných v USA, například firmou Ocean Star International, Inc. Vajíčka žábronožek jsou sbírána ve Velkém solném jezeře v Utahu. Jsou omyta sladkou vodou, usušena a vakuově plněna do konzerv. Běžně jsou používána jako krmivo pro akvarijní ryby. Ač se jedná o organismus žijící ve slaných vodách, nachází se pouze v jezerech, ne v mořích. Výhodou testu jsou značně homogenní vlastnosti vajíček a tedy i čerstvě narozených jedinců. Tím, že jsou čerstvě vylíhnutí jedinci ihned použiti pro test, odpadá náročný chov.

a) Obr. 1 a) Vylíhlé nauplium Artemie

b) Obr. 1 b) Cysty Artemie

1.2. Skladování Neotevřená konzerva vajíček má být uložena v chladu a suchu. Líhnivost zárodků v cystách1 je zaručena zhruba jeden rok. Dají se však dobře použít i až 4 roky staré cysty. Otevřená konzerva musí být uchovávána v neporušeném igelitovém sáčku dobře uzavřeném gumičkou a uložena v ledničce. K cystám se nesmí dostat voda ani vzdušná vlhkost.

1

Cysty jsou opouzdřená embrya v klidovém stavu. Jsou velice odolné – vydrží krátkodobě jak zamražení, tak i teplotu varu vody.

1



1.3. Líhnutí vajíček / cyst Do laboratorní mořské vody, zpravidla o salinitě 1,2-3,0 % NaCl odebere malé množství cyst. Vodu je dobré udržovat v mírném pohybu, nejlépe provzdušňováním slabým proudem vzduchu, čímž se zajistí i aerace. Je třeba nastavit proudění vzduchu tak, aby cysty vířily ve vodním sloupci a neležely na dně nebo na hladině. Líhnivost kvalitních cyst se obvykle blíží 100 %. Optimální teplota pro líhnutí je 27-29 °C, kdy k vylíhnutí dochází přibližně do 18 hodin. Snížením teploty na 25 °C nedojde ke změně v citlivosti nauplií, ale k prodloužení doby líhnutí; při této teplotě se líhnou za 24 hodin a to je pro provozní podmínky v laboratořích často příznivější. Nevylíhlá vajíčka obvykle leží na dně, prázdné skořápky plavou na hladině. Živé žábronožky jsou přitahovány světlem a lze je tedy pomocí bodového světelného zdroje dobře shromáždit na jednom místě a pak odlovit.

2.

Materiál Zřeďovací mořská voda Tab. 1: složení laboratorní mořské vody (g/l)

Krystalické soli

NaCl MgSO4.7H2O Zásobní roztok ZR1 (20 ml/l) MgCl2.6H2O NaBr KCl Zásobní roztok ZR2 (10 ml/l) CaCl2 NaHCO3 SrCl2.6H2O H3BO3 NaF

3.

23,960 10,346 325,0 51,45 29,80 29,98 20,10 2,70 0,60 0,42

Pracovní postup

Pro testování se používají čerstvě vylíhnutí jedinci, tzv. nauplia. Z kádinky jsou vylíhnutí jedinci přeneseni pipetou do misek s testovanými koncentracemi zkoumaného vzorku. Během testu se žábronožky nekrmí. Testovaný roztok se neprovzdušňuje. Zaznamenává se úmrtnost nauplií. Nejčastěji se za dobu testu volí 24 hodin. Doporučuje se však odečítat úhyn i po delší době.

3.1. Základní test

Touto zkouškou se stanoví procento uhynulých nauplií Artemia salina v různých koncentracích k určení hodnoty EC50. Cílem zkoušky by mělo být rovněž určení dalších hodnot (NOEC, LOEC, LC).

2



Připraví se testované koncentrace zkoumaného vzorku ředěné laboratorní mořskou vodou. Volí se obvyklým způsobem podle hodnot OC0 a OC100. Do Petriho misek o průměru 60 mm se odměří 5 ml zkoumaného roztoku. Podle uvážení se volí 2-3 paralelní nasazení. Do každé Petriho misky, se odloví 10 nauplií žábronožek. Vzhledem k velké ploše hladiny a tudíž dostatečnému přestupu kyslíku lze misku zakrýt víčkem. Aerace se neprovádí. Teplota roztoků by se měla pohybovat v rozmezí 22-25 °C. Zaznamenává se úmrtnost nauplií po 24, a po 48, 72, případně i po 96 a 120 hodinách. Jedná se tedy o závislost úmrtnosti žábronožek v závislosti na koncentraci toxikantu a na čase. Po 120 hodinách již zpravidla všechny žábronožky umírají na nedostatek potravy. S testem se nasazuje minimálně jedna kontrola. Po stanovené době se spočítají uhynulé žábronožky. 3.2. Pracovní postup při laboratorní práci •

Líhnutí vajíček (provede pedagog den předem) o vysoká kádinka se asi ze 2/3 naplní mořskou vodou ze zásobní láhve v laboratoři o přidá se přibližně malá čajová lžička zamrazených suchých vajíček žábronožek o kádinka s vajíčky se na 24 hodin umístí do inkubátoru, proud vzduchu zajistí promíchávání

•

Nasazení organismu o vodný výluh se naředí mořskou zřeďovací vodou podle Tab. 3. o pomocí mikropipety se nauplia zbaví prázdných cyst a přemístí se do testovacích misek po 10 jedincích o 2 koncentrační řady, včetně 2 kontrol, se převedou do testovacích misek o misky se umístí v inkubátoru o test probíhá za světla (zářivka v inkubátoru)

•

Odečtení a vyhodnocení po 24 a 48 hodinách o vizuální odečtení mrtvých žábronožek (leží na dně)

. Tab. 2: Podmínky testu na Artemia salina Testovací organismus: Barva: Velikost: Líhnivost: Počet jedinců v jedné testovací misce: Sledovaná odezva: Podmínky testu: Opakování: Objem testované koncentrace: Teplota: Doba expozice: Osvětlení: Chemikálie: Pomůcky a zařízení:

Artemia salina světlá až 0,5 mm minimálně 90% 10 mortalita stálá teplota, světlo (inkubátor) 2 5 ml v 1 Petriho misce 25 – 28 °C 48 hodin (pro účely laboratoře případně jinak) stálé světlo výchozí roztok testované látky, laboratorní zřeďovací mořská voda Petriho misky, kádinky, mikropipety, inkubátor

Pro potřeby laboratoří bude z důvodu úspory času a prostředků prováděn pouze základní test.

3



Před vlastním stanovením se změří pomocí elektrod pH, vodivost a obsah kyslíku vodního výluhu. Vodní výluh zeminy se naředí zřeďovací vodou v poměru 1:10, 1:20, 1:40, 1:80 (viz Tab. 3). Vlastní test se bude skládat ze dvou paralelních nasazení včetně dvou kontrolních nasazení. Tab. 3: Příprava koncentrační řady vzorku

Ředění 1:10 1:20 1:40 1:80

Dávkování výluhu [ml] 0,45 0,24 0,12 0,06

4

Dávkování vody [ml] 4,55 4,76 4,88 4,94



4. Vyhodnocení výsledků Ze zaznamenané mortality organismů se sestrojí grafická závislost procentuelní mortality na logaritmu koncentrace testované látky. Z hodnot počtu uhynulých jedinců v jednotlivých koncentracích spočítejte procentuální mortalitu podle následujícího vzorce:

Mmct = Kde: Mmct NMm N0

N Mm × 100 N0

je mortalita jedinců v čase t [%] je průměrný počet uhynulých jedinců [ks] je počet živých jedinců vložených do každé koncentrace [ks]

Hodnoty EC10, EC50, EC90 zjistěte nelineární regresí, kdy se mortalita dá do závislosti na dekadickém logaritmu koncentrace. Jednotlivé hodnoty EC se vyhodnocují pro každé paralelní stanovení zvlášť a z nich se vypočítává průměrná hodnota. Hodnoty EC50 se nesmí lišit o více než 30 %.

5.

Použitá literatura

DVOŘÁK, P., ŠUCMAN, E., ČERVENÁKOVÁ, D., KOŘÍNEK, K., BLECHOVÁ, R. (1999): Využití biotestu s Artemia salina pro farmakotoxikologii. In: Sborník referátů z 9. konference Toxicita a biodegradabilita odpadů a látek významných ve vodním prostředí. Soláň, 13.- 15.9.1999. DVOŘÁK, P. (1995): Modifikovaný test s A. salina pro sledování vlivu interakcí cizorodých látek. In: Sborník referátů ze 7. konference Toxicita a biodegradabilita odpadů a látek významných ve vodním prostředí. Milenovice.

5

Akutní test toxicity na žábronožkách Artemia salina

Recommend Documents