UJI NEMATISIDAL JAMUR ENDOFIT TANAMAN PADI (Oryza sativa L.) TERHADAP NEMATODA PURU AKAR (Meloidogyne SPP.) SKRIPSI RAHMAD LINGGA

UJI NEMATISIDAL JAMUR ENDOFIT TANAMAN PADI (Oryza sativa L.) TERHADAP NEMATODA PURU AKAR (Meloidogyne SPP.) SKRIPSI

Diajukan untuk melengkapi tugas dan memenuhi syarat mencapai gelar sarjana sains

RAHMAD LINGGA 050805010

DEPARTEMEN BIOLOGI FAKULTAS MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM UNIVERSITAS SUMATERA UTARA MEDAN 2009 Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

PERSETUJUAN

Judul

: UJI NEMATISIDAL JAMUR ENDOFIT TANAMAN

PADI (Oryza sativa L.) TERHADAP NEMATODA PURU AKAR (Meloidogyne spp.) Kategori Nama Nomor Induk Mahasiswa Program Studi Departemen Fakultas

: SKRIPSI : RAHMAD LINGGA : 050805010 : SARJANA (S1) BIOLOGI : BIOLOGI : MATEMATIKA DAN ILMU PENGETAHUAN ALAM (FMIPA) UNIVERSITAS SUMATERA UTARA Diluluskan di Medan, Desember 2009

Komisi Pembimbing Pembimbing II

:

Dr. Lisnawita, SP, M.Si NIP . 132 086 736

Pembimbing I

Yurnaliza, S.Si, M.Si NIP. 132 240 2155

Diketahui/Disetujui oleh Departemen Biologi FMIPA USU Ketua,

Prof. Dr. Dwi Suryanto, M.Sc. NIP. 19640409 19940 3100 Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

PERNYATAAN

UJI NEMATISIDAL JAMUR ENDOFIT TANAMAN PADI (Oryza sativa L.) TERHADAP NEMATODA PURU AKAR (Meloidogyne sp.)

SKRIPSI

Saya mengakui bahwa skripsi ini adalah hasil kerja saya sendiri, kecuali beberapa kutipan dan ringkasan yang masing-masing disebutkan sumbernya.

Medan, Desember 2009

Rahmad Lingga 050805010

Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne spp.)

ABSTRAK

Penelitian tentang “Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne spp.)” telah dilakukan di Laboratorium Mikrobiologi FMIPA USU dan Laboratorium Penyakit Tumbuhan FP USU dari bulan April sampai Agustus 2009. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kemampuan nematisidal jamur endofit dari tanaman padi terhadap Meloidogyne spp. Isolat jamur endofit yang diperoleh sebanyak 10 isolat yang terdiri dari 5 genus yaitu Aspergillus, Monascus, Cochliobolus, Mucor, dan Penicillium. Hasil pengujian nematisidal In vitro dalam melihat mortalitas juvenil Meloidogyne spp menunjukkan 2 isolat yang paling potensial yaitu Monascus sp. sebesar 45% dan Aspergillus sp1 sebesar 39,33%. Sedangkan untuk uji nematisidal In vivo menunjukkan perlakuan Monascus sp.dan Mucor sp. sebagai perlakuan yang paling potensial dalam menekan jumlah puru akar. Perlakuan yang paling potensial dalam menekan jumlah populasi akhir dan faktor reproduksi Meloidogyne spp. adalah perlakuan Monascus sp. dan Aspergillus sp1. Untuk parameter pertumbuhan tanaman, perlakuan yang paling potensial adalah perlakuan Aspergillus sp6 untuk berat tajuk tanaman dan panjang akar tanaman dan Aspergillus sp2 untuk tinggi tanaman. Mekanisme penghambatan perkembangan Meloidogyne spp. diduga adalah kemampuan jamur endofit dalam menghasilkan senyawa toksin bagi nematoda serta membentuk hifa yang menjerat juvenil nematoda tersebut.

Kata Kunci : Meloidogyne spp., Nematisidal, Oryza sativa


Nematicidal Test of Endophyte Fungi of Rice (Oryza sativa l.) against Root-Knote Nematode (Meloidogyne spp.)

ABSTRACT

A Study on “Nematicidal Test of Endophyte Fungi of Rice (Oryza sativa L.) Against Root-knote Nematode (Meloidogyne spp.) has been conducted in Microbiology Laboratory, Biology Department, Mathematic and Natural Science Faculty and Phytopathology Laboratory, Agriculture Faculty, North Sumatera University, from April until August 2009. Ten endophyte fungi were succesfully cultured on Potato Dextrose Agar (PDA) medium. They consisted of five genera, such as, Aspergillus, Monascus, Penicillium, Cochliobolus, and Mucor. On In vitro test result showed that two potential endophyte fungi to killed juvenile of Meloidogyne spp., that were J1 Monascus sp. about 45% and Aspergillus sp1 about 39,33%. But on In vivo test result showed the potential endophyte fungi to reduced the number of root-knote were Monascus sp. and Mucor sp. In parametre of the number of final population and reproduction factor, Monascus sp. and Aspergillus sp1 were the most potential. On parametre of plant growth the most potential endophyte fungi were Aspergillus sp6 on weight of plant and length of root, and J3 Aspergillus sp2 on posture of plants. The ability of endophyte fungi suspected by the effect of toxin metabolites and by trapped mechanism of endophytes fungi hiphae.

Keywords : Meloidogyne spp., Nematisidal, Monascus sp.


DAFTAR ISI

Halaman Persetujuan Pernyataan Penghargaan Daftar Isi Daftar Gambar Daftar Lampiran Daftar Tabel

ii iii vii ix x xi

Bab 1

Pendahuluan 1.1 Latar belakang 1.2 Permasalahan 1.3 Tujuan Penelitian 1.4 Hipotesis 1.5 Manfaat Penelitian

1 1 2 3 3 3

Bab 2

Tinjauan Pustaka 2.1 Tanaman Padi 2.2 Nematoda Parasit Padi 2.3 Mekanisme dan Gejala Serangan Meloidogyne spp. 2.4 Jamur Endofit 2.5 Pengendalian Hayati Nematoda Dengan Endofit

4 4 5 6 7 9

Bab 3

Bahan dan Metoda 3.1 Waktu dan Tempat 3.2 Bahan 3.3 Isolasi dan Perbanyakan Nematoda 3.4 Isolasi dan Perbanyakan Endofit 3.5 Uji Aktifitas Nematisidal secara In Vitro 3.6 Uji Nematisidal secara In Vivo 3.6.1 Inokulasi Jamur Endofit dan Nematoda Puru Akar 3.6.2 Evaluasi Ketahanan terhadap Nematoda Puru Akar 3.6.3 Pengamatan Pertumbuhan Tanaman 3.7 Rancangan Penelitian

10 10 10 10 11 12 12 12 12 13 13

Bab 4

4.1

14

Isolasi Jamur Endofit


4.2 4.3

4.4

Kemampuan Nematisidal secara In vitro Kemampuan Nematisidal secara In vivo 4.3.1 Jumlah Puru Akar (Root Gall) 4.3.2. Indeks Reproduksi Meloidogyne spp Pengaruh Terhadap Pertumbuhan Tanaman

Bab 5 Kesimpulan dan Saran Daftar Pustaka

17 19 19 20 22 25 26


DAFTAR GAMBAR

Gambar 2.1 4.1

Judul

Halaman

Juvenil Meloidogyne spp. Persentase kehadiran genus yang diisolasi dari tanaman padi


11 15

DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran

Judul

A B

29 32

D

Foto Penelitian Uji Nematisidal Jamur Endofit Output Perhitungan Uji Non Parametric Test dengan Software SPSS Version 15.00 Output Perhitungan Uji Anova dengan Software SPSS Version 15.00 Gambaran Koloni dan Hifa Jamur Endofit yang Diisolasi

E

Contoh Perhitungan Populasi Akhir

37

C

Halaman


33 36

DAFTAR TABEL

Tabel 4.1 4.2 4.3 4.4 4.5 4.6

Judul

Halaman

Isolat Jamur Endofit yang diperoleh dari tanaman padi Karakteristik Isolat Jamur Endofit yang diperoleh dari tanaman padi. Mortalitas juvenil Meloidogyne spp. akibat pengaruh pemberian ekstrak jamur endofit. Jumlah Puru Akar Tanaman Padi setelah diinokulasi 100 juvenil Meloidogyne spp. selama 40 hari. Faktor Reproduksi Meloidogyne spp. Pengamatan pengaruh Inokulasi jamur endofit terhadap pertumbuhan tanaman.


14 16 18 19 21 22

BAB 1

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Indonesia sebagai negara yang sedang berkembang dengan jumlah penduduk yang banyak, sangat membutuhkan usaha penyediaan pangan terutama beras, karena beras merupakan makanan pokok bagi hampir 200 juta rakyat Indonesia (Sudarmo, 1991). Berbagai program untuk meningkatkan hasil tanaman padi telah dilakukan. Program tersebut antara lain meliputi pemilihan bibit unggul, pengolahan tanah, penanaman, pengairan dan pengendalian hama penyakit.

Keberadaan serangan penyakit pada tanaman padi merupakan faktor pembatas pertumbuhan dan hasil. Hama dan penyakit tanaman padi merupakan salah satu faktor penting yang ikut menentukan berhasil atau tidaknya usaha pertanian kita. Kerusakan tanaman padi karena hama dan penyakit pada umumnya berkisar antara 5-10%, tetapi dapat pula kerusakan terjadi sampai 100%. Oleh karena itu pemberantasan hama dan Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

penyakit bertujuan untuk mengamankan produksi atau membatasi kehilangan hasil (Anonimus, 1973).

Salah satu jenis penyakit yang umum menyerang tanaman padi adalah nematoda. Banyak genus nematoda parasitik tumbuhan yang ditemukan berasosiasi dengan tanaman padi, tetapi tidak semua memberikan pengaruh yang merugikan secara ekonomi. Mereka mempunyai sifat parasitik yang berbeda-beda, tetapi semua dapat menyebabkan kerusakan mekanis dan atau diikuti perubahan fungsi fisiologi selama masa pertumbuhan tanaman. Hal ini mengakibatkan hambatan pertumbuhan dan kehilangan hasil ( Luc et al., 1995). Gejala serangan nematoda yang sering muncul adalah tanaman yang terinfeksi menjadi kerdil, menguning dan kehilangan ketahanan, pertumbuhan tidak normal, timbul pembengkakan dan puru pada sistem perakaran (Luc et al., 1995), kerdil dan cenderung layu pada hari-hari panas (Sudarmo, 1991).

Beberapa teknik pengendalian nematoda telah dilakukan seperti penggunaan nematisida kimia, bahan organik, kultur teknis dan kultivar yang resisten, tetapi belum memberikan hasil yang memuaskan. Pengendalian biologi dengan menggunakan fungi endofit merupakan salah satu alternatif pengendalian nematoda parasit tanaman. Keunggulan jamur ini sebagai agen pengendali hayati yaitu mampu meningkatkan ketersediaan nutrisi, menghasilkan hormon pertumbuhan dan mengendalikan penyakit tumbuhan (Kloepper et al., 1992) serta menginduksi ketahanan tanaman (Hallmann, 2001).

Beberapa hasil penelitian menunjukkan bahwa penggunaan bakteri endofit yang diisolasi dari mentimun dan kapas seperti Aerococus viridans, Bacillus megaterium, B. Subtilis,

Pseudomonas shlororaphis,

P.

vasicularis,

Serratia

marcescens

dan


Spingomonas pancimobilis dapat mengurangi populasi Meloidogyne incognita pada mentimun sampai 50% (Hallman et al., 1995). Selanjutnya menurut Sarbini (1993) bahwa beberapa jamur memperlihatkan prospek dalam mengendalikan nematoda Meloidogyne spp. seperti spesies-spesies dari Kelas Basidiomycetes dan Kelas Deutromycetes antara lain Genus Gliocladium dan Paecilomyces. Akan tetapi informasi tentang pemanfaatan jamur endofit masih sangat sedikit, sehingga perlu dilakukan penelitian terhadap pemanfaatan jamur sebagai agen pengendali hayati nematoda. 1.2 Permasalahan

Beberapa jenis jamur memperlihatkan prospek yang baik dalam mengendalikan Meloidogyne spp. seperti dari Kelas Basidiomycetes dan Deuteromycetes (Sarbini, 1993). Akan tetapi belum diketahui bagaimana kemampuan jamur endofit pada akar padi dalam mengendalikan nematoda puru akar padi.

1.3 Tujuan

Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui jenis dan kemampuan nematisidal jamur endofit dari tanaman padi dalam mengendalikan nematoda puru akar.

1.4 Hipotesis


Jamur endofit pada tanaman padi memiliki kemampuan dalam mengendalikan nematoda puru akar tanaman padi.

1.5 Manfaat

Penelitian ini memberikan informasi mengenai kemampuan jamur endofit akar padi sebagai pengendali nematoda puru akar tanaman padi.

BAB 2

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Tanaman padi

Padi merupakan tanaman pangan yang amat penting di dunia, menjadi makanan pokok bagi lebih dari separuh penduduk dunia, terutama di Asia yang lebih dari 90 % tanaman padi dunia ditanam dan dikonsumsi. Padi merupakan tanaman yang sangat luwes, dan banyak varietas padi yang mudah menyesuaikan diri pada berbagai lingkungan dan cara tanam ( Luc et al., 1995).


Padi termasuk Genus Oryza yang meliputi lebih kurang 25 spesies, tersebar di daerah tropik dan daerah subtropik seperti Asia, Afrika, Amerika dan Australia. Padi berasal dari dua benua, yaitu Asia dan Afrika. Oryza fatua Koenig dan Oryza sativa L berasal dari benua Asia, sedangkan jenis padi lainnya yaitu Oryza stapfii Roschev dan Oryza glaberima Steund berasal dari Afrika barat. Padi yang ada sekarang ini merupakan persilangan antara Oryza officinalis dan Oryza sativa Spontania (Dinas Pertanian dan Kehutanan Kabupaten Bantul, 2009)

Tanaman padi dapat hidup baik di daerah yang berhawa panas dan banyak mengandung uap air. Curah hujan yang baik rata-rata 200 mm per bulan atau lebih, dengan distribusi selama 4 bulan. Curah hujan yang dikehendaki per tahun sekitar 15002000 mm. Suhu yang baik untuk pertumbuhan tanaman padi 230C. Tinggi tempat yang cocok untuk tanaman padi berkisar antara 0-1500 mdpl (Dinas Pertanian dan Kehutanan Kabupaten Bantul, 2009).

2.2 Nematoda parasit padi

Nematoda adalah binatang yang bergerak aktif, lentur dan berbentuk seperti pipa, hidup pada permukaan yang lembab atau lingkungan yang berair. Mereka mempunyai sistem organ yang lengkap sebagaimana binatang mempunyai organ kompleks, tetapi mereka tidak memiliki sistem peredaran darah (Dropkin, 1989).

Nematoda tanaman padi dapat dibagi menjadi dua kelompok tergantung sifat parasitasinya yaitu: parasit daun, nematoda yang menyerang batang, daun dan malai, serta nematoda parasit akar (Luc et al., 1995). Nematoda puru akar yang memparasiti tanaman padi Oryza sativa L, pertama kali dilaporkan oleh Tullis pada tahun 1934 di Stutgart, Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Arkansas. Sebelumnya nematoda tersebut diidentifikasi oleh Steiner sebagai Heterodera marioni Cornu pada tahun 1979. Pada tahun 1934, Steiner melaporkan bahwa nematoda puru akar pada Oryza sativa dan dua tanaman sayuran yang berassosiasi pada lahan padi, Amaranthus spinosus L. dan Echinochloa crusgalli (L.) Beauv. Beberapa spesies nematoda diketahui dapat menyebabkan kerusakan pada semua lingkungan tanaman padi, sedangkan informasi mengenai yang lain masih jarang diketahui.

Nematoda puru akar, Meloidogyne sp. telah dijumpai pada tanaman padi di banyak negara. M. graminicola banyak tersebar di Asia Tenggara, Myanmar, Bangladesh, Laos, Tahiland, Vietnam, India dan mungkin juga terdapat di negara-negara di sekitar kawasan tersebut (Luc et al., 1995).

Meloidogyne graminicola memiliki siklus hidup 23-27 hari (dari telur ke telur) pada suhu 260C dan terjadi pada banyak daerah pertumbuhan meliputi Laos, India, Thailand dan bagian selatan Amerika Serikat. Golden dan Birchfield melaporkan ada tujuh varietas asing dan 23 varietas lokal padi yang kebal terhadap nematoda puru akar. Penelitian mereka bertujuan mengetahui persebaran inang dari M. graminicola serta keragaman genotip beberapa kultivar padi yang mungkin memiliki bibit penyakit untuk penyeleksian resistensi terhadap nematoda tersebut (Yik and Birchfield, 1978).

2.3 Mekanisme dan Gejala Serangan Meloidogyne spp.

Mekanisme penyerangan oleh Meloidogyne spp dimulai dengan masuknya nematoda ke dalam akar tumbuhan melalui bagian - bagian epidermis yang terletak dekat tudung akar. Nematoda ini mengeluarkan enzim yang dapat menguraikan dinding sel tumbuhan Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

terutama terdiri dari protein, polisakarida seperti pektin selulase dan hemiselulose serta pati sukrosa dan glikosid menjadi bahan-bahan lain. Meloidogyne spp. mengeluarkan enzim selulase yang dapat menghidrolisis selulosa enzim endopektin metil transeliminase yang dapat menguraikan pektin. Dengan terurainya bahan-bahan penyusun dinding sel ini maka dinding sel akan rusak dan terjadilah luka. Selanjutnya nematoda ini bergerak diantara sel-sel atau menembus sel-sel menuju jaringan sel yang terdapat cukup cairan makanan, kemudian menetap dan berkembangbiak kemudian nematoda tersebut masih mengeluarkan enzim proteolitik dengan melepaskan IAA ( Asam Indol Asetat ) yang merupakan heteroauksin tritopan yang diduga membantu terbentuknya puru (Bird,1972).

Menurut Dropkin (1991) bahwa apabila akar terinfeksi oleh Meloidogyne spp. maka diferensiasi xilem dan floem pada akar tanaman terganggu yang mengakibatkan pengangkutan zat hara ke bagian tanaman di atas permukaan tanaman makin berkurang, dengan demikian tanaman yang terinfeksi memerlukan lebih banyak energi untuk pertumbuhan tanaman di atas permukaan tanah. Ditambahkan lagi oleh Lambert (1979) bahwa infeksi oleh Meloidogyne spp. menyebabkan terjadi proliferasi dan hipertropi selsel korteks, sehingga menyebabkan terjadinya pembengkakan dan abnormalitas sel-sel terjadi karena dirangsang oleh sekresi yang dikeluarkan melalui stiletnya sehingga terbentuk sel-sel raksasa. Puru akar merupakan pembesaran dari akar yang disebabkan karena nematoda mengambil nutrisi dari akar tersebut menyebabkan pembentukan sel-sel raksasa pada jaringan inang dan pertumbuhan sel itu terangsang menyebabkan pembentukan puru.

Puru akar yang terbentuk pada setiap tanaman tidak selalu menunjukkan gejala yang sama. Sastrahidayat (1990) menyatakan puru akar yang terbentuk tergantung pada spesies tanaman. Pada tanaman sukulen seperti tomat puru berbentuk bulat yang ukurannya dapat mencapai diameter 1,2 cm atau lebih dan kebanyakan terjadi pada akar Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

tunggang tanaman. Meskipun pada beberapa spesies nematoda puru akar akan membentuk tipe puru akar yang sama,sehingga sulit dibedakan antara satu dengan yang lainnya.

Nematoda bengkak akar (Meloidogyne spp.) dikenal sebagai parasit akar pada berbagai jenis tanaman, terutama di daerah tropik dan subtropik. Interaksinya dengan tanaman inang menimbulkan gejala yang khas pada bagian akar di bawah permukaan tanah (Sudarmo, 1991). Tanaman yang terinfeksi menjadi kerdil dan menguning dan kehilangan ketahanan, pertumbuhan tidak normal, timbul pembengkakan dan puru pada sistem perakaran (Luc et al., 1995), kerdil dan cenderung layu pada hari-hari panas (Sudarmo, 1991). Ujung akar yang terserang membengkak dan membengkok, merupakan gejala yang khas oleh M. graminicola dan M. oryzae. Pada lahan kering dan lahan yang kadangkala tergenang air dangkal, semua spesies mampu menyebabkan hambatan pertumbuhan yang parah, gabah yang tidak berisi, anakan berkurang, klorosis, layu dan hasilnya rendah (Luc et al., 1995).

2.4 Jamur endofit

Jamur endofit adalah jamur yang terdapat di dalam sistem jaringan tumbuhan, seperti daun, bunga, ranting ataupun akar tumbuhan (Clay, 1988). Jamur ini menginfeksi tumbuhan sehat pada jaringan tertentu dan mampu menghasilkan mikotoksin, enzim serta antibiotika (Carrol, 1988; Clay, 1988).


Ditinjau dari sisi taksonomi dan ekologi, jamur ini merupakan organisme yang sangat heterogen. Petrini et al. (1992) menggolongkan jamur endofit dalam kelompok Ascomycotina dan Deuteromycotina. Keragaman pada jasad ini cukup besar seperti pada Loculoascomycetes, Discomycetes, dan Pyrenomycetes. Strobell et al. (1996) , mengemukan

bahwa

jamur

endofit

meliputi

genus

Pestalotia,

Pestalotiopsis,

Monochaetia, dan lain-lain. Sedangkan Clay (1988) melaporkan, bahwa jamur endofit dimasukkan dalam famili Balansiae yang terdiri dari 5 genus yaitu Atkinsonella, Balansiae, Balansiopsis, Epichloe dan Myriogenospora. Genus Balansiopsis umumnya dapat menginfeksi tumbuhan tahunan dan hidup secara simbiosis mutualistik dengan tanaman inangnya. Dalam simbiosis ini, jamur dapat membantu proses penyerapan unsur hara yang dibutuhkan oleh tanaman untuk proses fotosintesis serta melindungi tanaman inang dari serangan penyakit, dan hasil dari fotosintesis dapat digunakan oleh jamur untuk mempertahankan hidupnya (Bacon, 1991 ; Petrini et al., 1992 ;

Rao,

1994).

Assosiasi jamur endofit dengan tumbuhan inangnya, oleh Carrol (1988) digolongkan dalam dua kelompok, yaitu mutualisme konstitutif dan induktif. Mutualisme konstitutif merupakan assosiasi yang erat antara jamur dengan tumbuhan terutama rumput-rumputan. Mutualisme induktif adalah assosiasi antara jamur dengan tumbuhan inang, yang penyebarannya terjadi secara bebas melalui air dan udara. Jenis ini hanya menginfeksi bagian vegetatif inang dan seringkali berada dalam keadaan metabolisme inaktif pada periode yang cukup lama.

Endofit merupakan mikroorganisme yang berasosiasi dengan jaringan tanaman sehat yang bersifat netral atau menguntungkan. Hampir setiap tanaman tingkat tinggi memiliki beberapa mikroorganisme endofit yang mampu menghasilkan senyawa biologi atau metabolit sekunder. Bahan aktif yang dihasilkan mikroorganisme endofit ini Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

diperkirakan memiliki kemampuan yang sama dengan bahan aktif yang dihasilkan oleh tanaman induknya. Telah banyak penelitian yang dilakukan untuk mengisolasi mikroorganisme endofit pada beberapa tanaman, misalnya pada tanaman obat (Tan and Zhou, 2001), Tanaman budidaya seperti padi (Ziniel et al, 2002).

2.5 Pengendalian Hayati Nematoda Dengan Endofit

Mikroorganisme endofit merupakan salah satu agen pengendali hayati. Menurut FAO (1988) faktor awal yang sangat menentukan keberhasilan pengembangan agens hayati untuk pengendalian patogen tanaman adalah ketepatan dalam pemilihan jenis dan sumber agen hayati yang akan dikembangkan. Pada umumnya jenis agen hayati yang dikembangkan adalah mikroba alami, baik yang hidup sebagai saprofit di tanah, air dan bahan organik, maupun yang hidup dalam jaringan tanaman (endofit) yang bersifat menghambat pertumbuhan dan berkompetisi dalam ruang dan nutrisi dengan patogen sasaran, dan bersifat menginduksi ketahanan tanaman.

Pengendalian biologi dengan menggunakan mikroorganisme endofit merupakan salah satu alternatif pengendalian nematoda parasit tanaman. Aplikasi bakteri endofit melalui perlakuan benih dapat mengurangi 30-50% jumlah bengkak (puru) M. Incognita pada tanaman kapas. Perlakuan P. chlororaphis strain Sm3 pada strawberri dapat mengurangi populasi nematoda peluka akar Pratylenchus penetrans sebesar 41-61% serta mampu meningkatkan pertumbuhan tanaman (Hackenberg et al., 2000). Dengan perlakuan Bacillus sp. dengan metode perendaman akar mempunyai kemampuan yang tinggi dalam menekan P. brachyurus pada akar nilam sebesar 60-75% (Harni et al., 2006).


Mikroorganisme lain yang efektif sebagai musuh alami Meloidogyne spp. yaitu Dactilella sp., Dactylaria sp., Artrobotrys sp., dan Botrytis sp. Semua spesies jamur tersebut mampu membentuk hifa perangkap yang dapat menangkap larva nematoda setiap saat di daerah rhizosfer. Akhir-akhir ini banyak penelitian ditujukan pada jamur oportunistik untuk mengendalikan nematoda. Jamur tersebut antara lain Fusarium, Verticillium, Aspergillus, Penicillium dan Paecilomyces, yang mudah ditemukan di dalam tanah dengan kandungan bahan organik yang cukup tinggi. Sejauh ini keefektifan jamur oportunistik dalam mengendalikan nematoda telah banyak dilaporkan. Mekanisme pengendalian diduga akibat pengaruh toksin yang dihasilkan jamur yang berpengaruh negatif terhadap kehidupan nematoda parasit. Namun peneliti lain membuktikan bahwa jamur oportunistik dapat mengkolonisasi nematoda betina sebelum nematoda tersebut bertelur (Sayre, 1971).

BAB 3

BAHAN DAN METODE Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

3.1 Waktu dan Tempat

Penelitian ini dilakukan pada bulan April 2009 sampai September di Laboratorium Mikrobiologi FMIPA USU dan Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas Pertanian USU, Medan.

3.2 Bahan

Bahan-bahan yang digunakan adalah akar padi (Oryza sativa L.), natrium hipoklorit 1,5 %, natrium hipoklorit 5,3 %, akuadest, HgCl2 0,01 %, streptomisin sulfat 0,1 %, potato dextrose agar (PDA), etanol, methanol, dan streptomisin sulfat, gliserin, HCl pekat, acid fuksin.

3.3 Isolasi dan Perbanyakan Nematoda

Isolasi nematoda puru akar padi dilakukan dengan modifikasi teknik corong Bearmann (Southey, 1985). Akar tanaman padi yang menunjukkan gejala terserang nematoda puru akar dipotong-potong kecil, lalu diletakkan di atas kertas saring dan dibiarkan selama 2 x 24 jam. Setelah itu, air di dasar corong ditampung dalam beaker glass dan diamati di bawah mikroskop stereo. Nematoda puru akar padi stadium 2

(

Gambar 2.2.1) yang diisolasi dari akar tanaman padi, kemudian diperbanyak untuk memperoleh jumlah yang diinginkan. Perbanyakan dilakukan pada tanaman padi muda Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

yang berumur satu minggu. Isolat nematoda dituangkan ke bagian akar muda yang ditanam pada tanah yang steril. Selanjutnya, nematoda diekstraksi kembali setelah satu bulan.

Gambar 2.2.1. Juvenil Stadium 2 Meloidogyne spp.

3.4 Isolasi dan Perbanyakan Endofit

Isolasi fungi endofit dari akar padi dilakukan dengan metode Radu and Kqueen (2002) dengan modifikasi. Akar dan batang padi dicuci dengan air mengalir selama 20 menit, dikeringkan dengan tissu, disterilisasi dengan etanol 2 menit, natrium hipoklorit 5,3 % selama 5 menit. Terakhir dibilas dengan akuades steril sebanyak 2 kali, dan dikeringkan dengan kertas saring steril. Batang padi dipotong 4 bagian dan sedangkan bagian akar dihaluskan terlebih dahulu kemudian diambil ekstraknya, diletakkan pada media PDA. Jamur endofit yang diperoleh diinkubasi pada suhu ruang selama 5 hari. Koloni jamur yang diperoleh dibuat biakan murninya untuk diidentifikasi berdasarkan ukuran, bentuk, pinggir, warna permukaan bawah koloni, serta pengamatan mikroskopik hifa.

3.5 Uji Aktifitas Nematisidal Jamur Endofit secara In Vitro Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Uji nematisidal jamur endofit dilakukan terhadap ekstrak jamur endofit. Koloni biakan murni jamur endofit yang berumur 6 hari ditambahkan dengan 0,2 ml streptomisin sulfat 0,1%, digerus dengan jarum ose yang ujungnya dibengkokkan dan ditampung ekstraknya. Ekstrak jamur dituangkan ke dalam microwhell, diinokulasikan sebanyak 100 juvenil nematoda puru akar (Lampiran A), diinkubasi pada suhu ruang. pengamatan mortalitas juvenil nematoda puru akar

(Lampiran A) dilakukan setelah 24 jam dengan

mempergunakan mikroskop cahaya.

Nematoda dapat dianggap mati apabila tidak

menunjukkan pergerakan setelah disentuh dengan jarum. Uji nematisidal In vitro ini dilakukan dengan Rancangan Acak Lengkap (RAL) Non Faktorial. Perlakuan terdiri dari jamur endofit, air, dan ekstrak agar. Setiap perlakuan dibuat dengan 3 kali ulangan.

3.6 Uji Nematisidal Jamur Endofit secara In Vivo 3.6.1 Inokulasi Jamur Endofit dan Nematoda Puru Akar

Uji Nematisidal Jamur Endofit secara In vivo dilakukan pada tanaman padi yang berumur 1 minggu. Bibit tanaman padi dicabut dan direndam dalam suspensi spora jamur endofit dengan kerapatan 107 selama satu jam. Pada minggu selanjutnya diinroduksikan juvenil nematoda puru akar dengan cara penuangan pada bagian akar. Selanjutnya, enam minggu setelah infeksi akar padi tersebut dicabut untuk menentukan kemampuan aktifitas nematisidal jamur endofit tersebut. Kemampuan aktivitas nematisidal jamur endofit ditentukan dari jumlah puru akar yang ditemukan pada akar tanaman padi perlakuan.


3.6.2 Evaluasi Ketahanan terhadap Nematoda Puru Akar

Evaluasi ketahanan ditentukan dengan menggunakan Metode Sasser et al. (1984), yaitu dengan menentukan indeks puru dan faktor reproduksi. Indeks puru akar ditentukan dengan Metode Canto-Saenz (1985), yaitu dengan menghitung jumlah puru (Lampiran A), selanjutnya diskoring sebagai berikut :

1. Skala 0

: tidak ada puru akar

2. Skala 1

: terdapat 1-15 puru

3. Skala 2


4. Skala 3


5. Skala 4


6. Skala 5

: terdapat lebih dari 100 puru

Populasi akhir nematoda dihitung dengan menjumlahkan jumlah populasi nematoda di akar dan populasi di tanah. Akar tanaman akan diekstraksi dengan metode Corong Bearman yang dimodifikasi serta dihitung jumlah individu yang diperoleh. Selanjutnya tanah bekas media pertumbuhan tanaman dalam polibag juga diekstraksi dengan metode yang sama untuk memperoleh jumlah populasi yang terdapat dalam tanah. Sebanyak 100 gram tanah perlakuan diekstraksi dan dihitung jumlah individu nematoda, dilakukan sebanyak 3 ulangan. Jumlah populasi tersebut dihitung rata-ratanya, dikonversikan dengan volume total tanah perlakuan (Lampiran E).


Faktor reproduksi (pf) ditentukan dengan membandingkan jumlah populasi awal dengan jumlah populasi akhir, dengan rumus: pf

= p0/pi

dimana : pf =

faktor reproduksi

pi =

populasi akhir total

p0 =

populasi awal yang diinokluasi

3.6.3 Pengamatan Pertumbuhan Tanaman

Pengamatan pengaruh jamur endofit terhadap pertumbuhan tanaman dilakukan dengan mengukur adalah berat tajuk (gram), tinggi tanaman (cm), serta panjang akar (cm). Tanaman perlakuan dicabut dan dipisahkan bagian akarnya. Berat tajuk tanaman diukur dengan menimbang bagian atas tanaman. Sedangkan untuk parameter tinggi tanaman diukur dari bagian pangkal akar sampai ujung daun tertinggi (Lampiran A). Sedangkan panjang akar diukur mulai dari pangkal akar sampai bagian ujung akar tanaman.


BAB 4

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Isolasi Jamur Endofit

Hasil isolasi jamur endofit dari tanaman padi diperoleh sebanyak 10 isolat yang terdiri dari 5 genus, 3 famili dan 3 ordo serta berasal dari 2 kelas yaitu Ascomycetes dan Zigomycetes. Kelima genus isolat tersebut adalah Aspegillus, Cochliobolus, Mucor, Penicillium dan Monascus (Tabel 4.1). Kelas Ascomycetes merupakan kelas yang paling banyak diisolasi yaitu sebanyak 9 isolat, sedangkan Kelas Zigomycetes yang diisolasi hanya 1 genus.

Tabel 4.1 Isolat Jamur Endofit yang diperoleh dari tanaman padi Genus/Spesies

Famili

Ordo

Kelas

Aspergillus sp 1 Aspergillus sp 2 Aspergillus sp 3 Aspergillus sp 4 Aspergillus sp 5 Aspergillus sp 6 Cochliobolus lunatus

Eurotiaceae Eurotiaceae Eurotiaceae Eurotiaceae Eurotiaceae Eurotiaceae Pleosporaceae

Eurotiales Eurotiales Eurotiales Eurotiales Eurotiales Eurotiales Pleosporales

Ascomycetes Ascomycetes Ascomycetes Ascomycetes Ascomycetes Ascomycetes Ascomycetes


Monascus sp. Mucor sp. Penicillium sp.

Monascaceae Mucoraceae Eurotiales

Eurotiales Mucorales Eurotiales

Ascomycetes Zygomycetes Ascomycetes

Aspergillus merupakan genus yang paling banyak ditemukan dengan persentase kehadiran sebesar 60%. Sedangkan genus lainnya hanya ditemukan masing-masing 1 isolat dengan persentase kehadiran 10% ( Gambar 4.1). Hal ini mungkin dikarenakan Aspergillus merupakan jamur yang bersifat kosmopolitan (tersebar di seluruh permukaan bumi).

Gambar 4.1 Persentase kehadiran genus yang diisolasi dari tanaman padi

Genus Aspergillus hasil isolasi memiliki karakteristik yang berbeda untuk masingmasing isolat. Perbedaan tersebut dapat dilihat dari warna permukaan atas koloni, warna permukaan bawah koloni, tekstur permukaan koloni, serta bentuk konidianya (Tabel 4.1.2). Genus ini memiliki ciri mikroskopis yang mudah dibedakan dengan jamur lain, yaitu memiliki konidiofor yang tegak, tidak bersepta, tidak bercabang dan ujungnya membengkak membentuk vesikel. Pada permukaaan vesikel terbentuk phialid yang Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

menghasilkan konidia. Aspergillus merupakan jamur yang memiliki keragaman jenis yang cukup tinggi, terdapat sekitar 180 jenis anamorf dan 70 jenis teleomorf (Samsons et al., 1995). Genus ini memiliki kemampuan dalam mengikat N bebas dan melarutkan pospat dalam tanah (Goenadi et al., 1995). Genus ini juga memiliki fungsi yang sangat penting bagi tanaman, karena dapat melarutkan pospat dan mengikat nitrogen (Rao, 1982).

Tabel 4.2 Karakteristik Isolat Jamur Endofit yang diperoleh dari tanaman padi Jenis

Warna Koloni

Permukaan Koloni

Konidia

Atas

Bawah

Aspergillus Sp.1

Hijau krem

Hijau

Kasar

Ovate

Aspergillus Sp.2

Cokelat kekuningan Kuning kecokelatan

Krem

Halus

Ovate

Cokelat

Halus

Ovate

Aspergillus Sp.4

Hijau kecokelatan

Abu-abu

Kasar

Ovate

Aspergillus sp.5 Aspergillus sp.6 Cochliobolus lunatus

Hijau Hitam Hitam abu-abu

Hijau Hitam Hitam

Halus Kasar Halus

Globose Ovate Geniculate

Monascus sp.

Putih

Kuning kemerahan

Halus

Ovate

Mucor sp.

Krem kekuningan

Krem

Kasar

Ovate

Penicillium sp.

Hijau

Hijau krem

Kasar

Globose

Aspergillus Sp.3

Isolat Cochliobolus lunatus yang diperoleh memiliki ciri koloni yang berwarna hitam abu-abu, konidia geniculate (Tabel 4.2). Menurut Gandjar et al.(2000) spesies ini Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

bersifat heterotalik. Askomata terbentuk sesudah perkawinan dari hifa pada stromata berbentuk kolumnar, dan pematangan setelah 20 hari. Spesies ini banyak sekali ditemukan di daerah tropis, terutama pada tumbuh-tumbuhan, dan telah diisolasi dari sawah, perkebunan, kacang-kacangan, rhizosfer padi. Spesies ini memiliki suhu pertumbuhan optimum 240C-300C. Spesies ini dapat bertahan hidup selama 2 tahun dalam tanah dalam bentuk sklerotia.

Isolat Penicillium sp. yang diperoleh memiliki ciri koloni yang berwarna hijau krem, permukaan kasar (Tabel 4.2) Menurut Gilman (1971) Genus Penicillium memiliki hifa vegetatif yang menjalar, bersekat, dan pada bagian apeks memiliki vertisilia yang muncul dari percabangan primer yang tegak lurus, dan masing-masing vertisilia memilki percabangan sekunder (metula) dan terkadang memiliki percabangan tersier (phialid). Konidianya berbentuk globose, bulat telur (oval) atau elips, halus ataupun kasar Genus ini merupakan jamur yang kosmopolit yang bersifat saprofit dan parasit pada tanaman tingkat tinggi. Penicillium digitatum misalnya telah berhasil diisolasi dari tanaman padi dan jagung (Samsons et al., 1995).

Monascus sp. yang diisolasi memiliki karakter warna koloni putih dengan warna sebalik koloni berwarna kuning kemerahan, konidia ovate (Tabel 4.2), memiliki khlamidospora dan hifa yang bersekat. Menurut Hawksworth dan Pitt (1983), Monascus adalah sejenis kapang yang tidak banyak ditemukan di alam dan umumnya ditemukan dalam produk makanan misalnya beras. Beras yang difermentasi dengan jamur ini akan berwarna merah yang biasanya dikenal dengan nama angkak. Komponen utama dari pigmen ini adalah rubropunktatin berwarna merah, monaskorubin juga berwarna merah, monaskin berwarna kuning, ankaflavin juga berwarna kuning, rubropunktamin berwarna ungu dan monaskorubramin yang juga berwarna ungu (Suwanto, 1985). Monascus juga menghasilkan produk metabolit sekunder yang dihasilkan oleh setelah fase stasioner pada pertumbuhan yaitu Lovastatin (Brown dan Goldstein, 1991). Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Mucor sp. yang diisolasi memiliki karakteristik warna koloni berwarna krem, tekstur permukaan kasar, dan konidia bentuk ovate(Tabel 4.2). Menurut Gilman (1971), miselium Mucor tersebar luas di dalam atau diluar substrat, tanpa rhizoid, dan umumnya memiliki banyak percabangan. Sporangia biasanya tegak lurus pada simpodial sporangiospor, dan memiliki banyak warna. Memiliki kolumela, dengan variasi bentuk dan tipe, ada yang berwarna dan ada yang tidak. Raymond and Poitcelot (1978) dalam Hidayati (2005) menyatakan Mucor termasuk kelompok jamur termofilik dan hidup dalam kondisi asam serta mampu mendegradasi senyawa kompleks menjadi senyawa organik sederhana.

4.2 Kemampuan Nematisidal secara In vitro Uji nematisidal jamur endofit terhadap Meloidogyne spp. secara in vitro menunjukkan bahwa isolat Monascus sp. dan Aspergillus sp1 memiliki kemampuan tertinggi dalam membunuh juvenil Meloidogyne spp. adalah perlakuan isolat Monascus sp. menyebabkan mortalitas juvenil Meloidogyne spp. sebesar 45% dan Aspergillus sp1 sebesar 39,33 % (Tabel 4.3). Hal ini menunjukkan bahwa isolat Monascus sp. dan Aspergillus sp1 memiliki kemampuan dalam membunuh juvenil Meloidogyne spp. Hal ini kemungkinan disebabkan oleh toksin yang dihasilkan jamur tersebut. Sesuai dengan pernyataan Sayre (1971) menyatakan bahwa mekanisme pengendalian nematoda oleh jamur diduga akibat pengaruh toksin yang dihasilkan jamur yang berpengaruh negatif terhadap kehidupan nematoda parasit. Selanjutnya Hawksworth dan Pitt (1983) menyatakan Monascus sp. merupakan jamur yang banyak menghasilkan metabolit sekunder, seperti Lovastatin yang diaplikasikan untuk menurunkan kadar kolesterol darah, menghasilkan antibiotik (Brown dan Goldstein, 1991). Selanjutnya Gronvold et al. (1993) menyatakan bahwa beberapa jenis jamur dapat membuat perangkap atau penjerat pada saat larva bergerak mengenai hifa. Jamur tersebut juga mampu mengeluarkan zat kemoatraktan dan enzim Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

pengurai kutikula, sehingga larva melekat dan selanjutnya terjadi penguraian lapisan kutikula yang menyebabkan kematian larva nematoda tersebut. Peneliti lain membuktikan bahwa jamur oportunistik dapat mengkolonisasi nematoda betina sebelum nematoda tersebut bertelur (Sayre, 1971).

Tabel 4.3

Mortalitas juvenil Meloidogyne spp. akibat pengaruh pemberian ekstrak jamur endofit. 24 Jam Perlakuan Mortalitas (%) Air 11.00 d Monascus sp. 45.00 a Aspergillus sp1 39.33 a Aspergillus sp2 21.00 c Aspergillus sp3 23.00 b Aspergillus sp4 15.33 c Aspergillus sp5 17.33 c Aspergillus sp6 22.67 bc Cochliobolus lunatus 22.33 bc Mucor sp. 16.00 c Penicillium sp. 21.67 bc Keterangan: Huruf yang berbeda menunjukkan nilai yang berbeda nyata berdasarkan uji Duncan, α = 0, 05. 4.3 Kemampuan Nematisidal Jamur Endofit terhadap Meloidogyne spp. In vivo 4.3.1 Jumlah Puru Akar (Root Gall)

secara

Berdasarkan pengamatan jumlah puru akar, perlakuan isolat Mucor sp. menunjukkan jumlah yang terendah yaitu sebanyak 20 puru dengan indeks puru akar skala 2 , diikuti Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

oleh perlakuan isolat Monascus sp. sebanyak 27 puru dengan indeks puru akar skala 2 (Tabel 4.4). Sedikitnya jumlah puru akar ini kemungkinan disebabkan kemampuan jamur endofit dalam menghambat pertumbuhan nematoda puru akar sehingga tidak dapat berkembang membentuk puru akar. Sedangkan perlakuan isolat Penicillium sp. memperlihatkan jumlah puru akar tertinggi yaitu sebanyak 56,33 puru dengan indeks puru akar skala 4. Jumlah puru akar pada perlakuan isolat Penicillium sp. lebih tinggi daripada perlakuan kontrol (tanpa inokulasi jamur endofit). Hal kemungkinan disebabkan karena Penicillium sp. tidak memiliki kemampuan dalam menghambat perkembangan nematoda puru akar.

Tabel 4.4 Jumlah Bengkak Akar Tanaman Padi setelah diinokulasi 100 juvenil Meloidogyne spp. selama 40 hari. Perlakuan

Rata-Rata (Puru)

Indeks Puru Akar bcde

Kontrol 35.67 3 a Monascus sp. 27.00 2 bc Aspergillus sp1 28.67 2 bdef Aspergillus sp2 37.33 3 dghi Aspergillus sp3 48.99 3 defgh Aspergillus sp4 47.67 3 bcd Aspergillus sp5 32.00 2 defg Aspergillus sp6 45.67 3 Cochliobolus lunatus 53.67 ghij 4 a Mucor sp. 20.00 2 Penicillium sp. 56.33 ghij 4 Keterangan : Huruf yang berbeda menunjukkan nilai berbeda nyata antar berdasarkan uji Duncan, α = 0, 05.

perlakuan

. Jatala et al. (1980) menguji efektifitas jamur P. lilacinus dengan nematisida dalam mengendalikan Meloidogyne spp. pada kentang. Hasilnya menunjukkan bahwa jumlah puru

akar yang terbentuk

pada pemberian jamur P. lilacinus lebih rendah


dibandingkan dengan pemberian nematisida Temik 10% G pada dosis 25 kg/ha, Nemacur 5% G pada dosis 50 kg/ha dan Furadan 5% G pada dosis 50 kg/ha serta pemberian bahan organik pada dosis 10 ton/ha. Sarbini (1993) mengemukakan bahwa jamur yang memparasiti telur Meloidogyne spp. terutama berasal dari genus Gliocladium dan Paecilomyces mempunyai prospek untuk dikembangkan sebagai agen pengendali secara hayati untuk mengendalikan Meloidogyne spp. Morgan-Jones et al. (1984) mempelajari mekanisme paratisitisme P. lilacinus terhadap telur dan larva Meloidogyne arnearia . Hifa cendawan P. lilacinus masuk ke dalam kulit telur melalui lubang kecil. Cendawan kemudian tumbuh dan menghancurkan khitin dan lipid dari lapisan kulit serta menghancurkan isi telur. Cara yang sama terjadi pada larva stadium kedua. Menurut Jatala (1985) telur Meloidogyne spp. yang terletak di dalam matrik gelatin sangat mudah diserang oleh P. lilacinus. Jamur yang menginfeksi massa telur, tumbuh sangat cepat dan akhirnya memparasit semua telur yang ada di dalam massa telur tersebut.

4.3.2. Faktor Reproduksi Meloidogyne spp.

Hasil dari perhitungan jumlah populasi akhir Meloidogyne spp. menunjukkan bahwa ada perbedaan nilai yang nyata antara masing-masing perlakuan (Lampiran C). Perlakuan isolat Monascus sp. merupakan perlakuan yang paling efektif dalam menekan jumlah populasi akhir nematoda. Hal itu terlihat dengan rendahnya jumlah populasi akhir yang ditemukan yaitu sebanyak 956,67 individu dengan nilai faktor reproduksi 0,10 dan diikuti oleh perlakuan isolat Aspergillus sp1 dengan populasi akhir sebanyak 1334,33 individu dengan nilai faktor reproduksi 0,07. Rendahnya jumlah populasi akhir nematoda puru akar ini kemungkinan disebabkan oleh aktifitas nematisidal jamur endofit yang diinokulasikan. Sesuai dengan penelitian yang telah dilakukan oleh Silvana dalam Fahri (1996) bahwa ada pengaruh dari penggunaan jamur terhadap nematoda yang

dapat

menekan jumlah populasi akhir nematoda. Sedangkan perlakuan kontrol memperlihatkan


jumlah populasi akhir nematoda terbesar yaitu sebanyak 3329 individu dengan nilai faktor reproduksi 0,03.

Table. 4.5 Faktor Reproduksi Meloidogyne spp. Jumlah Populasi akhir (Individu) Akar Tanah ghi 1396.67 1932.33 j 508.33 a 448.33 a 680.00 a 654.33 ab 1100.33 bcd 1356.33 fgh 1150.00 bcdefg 1311.33 ef 1130.67 bcdef 1034.00 cd 1101.67 bcde 1172.67 de 1079.00 bc 1394.00 efg

Faktor Total(Individu) Reproduksi 3329.00 i 0.03 a 956.67 0.10 b 1334.33 0.07 ef 2456.67 0.04 efg 2461.33 0.04 d 2164.67 0.05 de 2274.33 0.04 efg 2473.00 0.04

Perlakuan Kontrol Monascus sp. Aspergillus sp1 Aspergillus sp2 Aspergillus sp3 Aspergillus sp4 Aspergillus sp5 Aspergillus sp6 Cochliobolus lunatus 1151.67 bcdefgh 1648.33 i 2800.00 h 0.04 b b c Mucor sp. 1034.67 824.67 1859.33 0.05 cdefghi ij i Penicillium sp. 1318.33 1864.00 3182.33 0.03 Keterangan: Faktor reproduksi dengan membandingkan populasi total dengan populasi awal yaitu 100 ekor/perlakuan (Huruf yang berbeda menunjukkan nilai berbeda nyata antar perlakuan berdasarkan uji Duncan, α = 0, 05.). Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Mekanisme nematisidal jamur endofit yang diperlakukan dapat berupa pembentukan hifa yang mampu menjerat juvenil, membunuh dengan toksin yang dihasilkan jamur tersebut. Hal ini sesuai dengan pernyataan Bills et al. (2002) dalam Strobel and Daysi (2003) bahwa endofit yang terdapat di daerah tropis menghasilkan senyawa metabolit sekunder dalam jumlah yang cukup banyak. Nematoda Meloidogyne spp. biasanya menembus jaringan epidermis akar dan bergerak ke jaringan korteks untuk mengambil makanan tidak mampu bertahan akibat adanya metabolit yang bersifat toksin tersebut. Hal ini sesuai dengan pernyataan Sayre (1971) bahwa selain dengan mekanisme pembunuhan akibat toksin yang dihasilkan sebagian jamur opotunistik dapat mengkolonisasi nematoda betina sebelum bertelur.

Jumlah puru akar berbanding lurus dengan jumlah populasi akhir nematoda. Tetapi pada penelitian ini ada sedikit penyimpangan, dimana jumlah puru akar terbanyak adalah perlakuan isolat Penicillium sp. sedangkan jumlah populasi akhir nematoda puru akar terbanyak adalah perlakuan kontrol. Hal ini kemungkinan disebabkan perbedaan jumlah populasi nematoda yang terdapat dalam puru akar yang berbeda-beda. Sehingga ada kemungkinan jumlah puru akar yang sedikit memiliki jumlah populasi yang lebih besar.

4.4 Pengaruh Inokulasi Jamur Endofit terhadap Pertumbuhan Tanaman Pengaruh jamur endofit terhadap pertumbuhan tanaman memperlihatkan pengaruh yang tidak berbeda nyata antara masing-masing perlakuan (Lampiran C). Berat tajuk tanaman tertinggi ditemukan pada perlakuan isolat Aspergillus sp6 dengan berat 6,30 gram, diikuti oleh perlakuan Monascus sp. dan Cochliobolus lunatus dengan berat 5,63 dan 4,93 gram. Tinggi tanaman tertinggi ditemukan pada perlakuan Aspergillus sp2 (Lampiran A) dengan tinggi 66,33, diikuti oleh perlakuan Aspergillus sp6 dan Cochliobolus lunatus dengan tinggi 65,67 dan 64,67 cm. Sedangkan untuk panjang akar perlakuan Aspergillus sp6 menunjukkan nilai tertinggi yaitu 23,67, diikuti oleh perlakuan Monascus sp. dengan Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

tinggi 23 cm. Hal ini kemungkinan akibat adanya pengaruh yang diberikan jamur endofit dalam meningkatkan kemampuan tanaman dalam menyerap unsur hara sehingga mempengaruhi pertumbuhan tanaman. Thakiura et al. (2004) menyatakan jamur endofit memiliki kemampuan

dalam menginduksi tanaman untuk menghasilkan hormon

pertumbuahn auksin. Tabel 4.6 Pengamatan pengaruh jenis jamur endofit terhadap pertumbuhan tanaman. Parameter Pertumbuhan Tanaman Perlakuan

Berat Tajuk (gr)

Tinggi Tanaman (cm)

Panjang Akar (cm)

Kontrol 1.93 41.00 10.33 Monascus sp. 5.63 61.67 23.00 Aspergillus sp1 3.03 56.67 15.67 Aspergillus sp2 4.37 66.33 20.00 Aspergillus sp3 3.63 58.67 15.67 Aspergillus sp4 4.17 58.33 18.00 Aspergillus sp5 1.97 57.67 19.00 Aspergillus sp6 6.30 65.67 23.67 Cochliobolus lunatus 4.93 63.67 20.00 Mucor sp. 3.30 53.00 16.33 Penicillium sp. 3.53 58.67 21.67 Keterangan : Keseluruhan data yang ditampilkan tidak berbeda nyata berdasarkan uji Duncan , α = 0,05

Berat tajuk tanaman terendah ditemukan perlakuan kontrol dengan berat 1,93 gram. Tinggi tanaman terendah ditemukan pada perlakuan kontrol (Lampiran A) dengan tinggi 41cm. Sedangkan panjang akar terendah ditunjukkan oleh perlakuan kontrol dengan panjang 1,53 cm. Hal lain yang diduga adalah kemampuan berbagai jamur endofit untuk menghasilkan hormon pertumbuhan pertumbuhan yang dapat meningkatkan pertahanan tanaman. Sebagaimana adanya laporan Silvana (1996) dalam Fahri (2009) bahwa ada pengaruh infeksi G. fasciculatus yang dapat meningkatkan pertambahan tinggi tanaman, hal ini tampak pada perlakuan G. fasciculatus lebih tinggi bila dibandingkan Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

dengan perlakuan yang hanya menggunakan Meloidogyne spp. selanjutnya ditambahkan oleh Gaspard (1986) yang menyatakan bahwa jamur P. lilacinus memberikan efek pengendalian yang baik terhadap Meloidogyne spp.

Mekanisme jamur endofit dalam meningkatkan pertumbuhan tanaman adalah dengan melarutkan fosfat, fiksasi nitrogen (Thakiura et al. , 2004). Menurut Rao (1982), mikroorganisme yang dapat mengubah fosfat tidak larut dalam tanah menjadi bentuk yang dapat larut dengan jalan mensekresikan asam organik tertentu. Contoh asam organik tersebut antara lain asam format, asetat, propionat, laktat dan suksinat. Jenis jamur yang umum dikelompokkan kedalam kelompok ini adalah jamur berfilamen seperti Aspergillus dan Penicillium. Selanjutnya Bacon (1991) dan Petrini et al. (1992) menambahkan fungi endofit dapat membantu proses penyerapan unsur hara yang dibutuhkan oleh tanaman untuk proses fotosintesis serta melindungi tanaman inang dari serangan penyakit, dan hasil fotosintesis dapat digunakan oleh fungi untuk mempertahankan kelangsungan hidupnya.

Pada tanaman perlakuan yang menunjukkan gejala pertumbuhan yang terganggu kemungkinan disebabkan oleh pengaruh serangan nematoda pada jaringan akar tanaman tersebut. Hal ini didukung oleh Dropkin (1991) bahwa apabila akar terinfeksi oleh Meloidogyne spp. maka diferensiasi xilem dan floem pada akar tanaman terganggu yang mengakibatkan pengangkutan zat hara kebagian tanaman diatas permukaan tanaman makin berkurang, dengan demikian tanaman yang terinfeksi memerlukan lebih banyak energi untuk pertumbuhan tanaman diatas permukaan tanah.

Hasil penelitian menunjukkan bahwa jumlah puru akar tanaman yang banyak tidak selalu menyebabkan pengaruh yang nyata terhadap pertumbuhan tanaman. Hal ini dapat dilihat pada perlakuan Penicillium sp. memiliki jumlah rata-rata puru akar terbanyak yaitu 56,33 puru tetapi pada kondisi pertumbuhan tanaman (berat tajuk, tinggi Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

tanaman, panjang akar) nilai terendah adalah perlakuan kontrol (Tabel 4.6). Sedangkan perlakuan yang paling efektif dalam meningkatkan pertumbuhan tanaman adalah perlakuan Aspergillus sp6 dan Aspergillus sp2. Hal ini menunjukkan bahwa Aspergillus sp. memiliki kemampuan dalam meningkatkan pertumbuhan tanaman.

BAB 5

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan


1. Hasil isolasi yang diperoleh dari tanaman padi sebanyak 10 isolat jamur endofit yang terdiri dari 5 genus yaitu Penicillium, Monascus, Mucor Cochliobolus lunatus, dan Aspergillus 2. Isolat Monascus sp. memperlihatkan kemampuan nematisidal tertinggi dilihat dari persentase mortalitas Meloidogyne sp. dan

rendahnya jumlah puru akar dan

populasi akhir nematoda pada tanaman padi perlakuan 3. Isolat J7 Aspergillus sp3 memperlihatkan pengaruh terbaik terhadap pertumbuhan tanaman , meliputi berat tajuk, panjang akar, tinggi tanaman.

5.2 Saran Perlu dilakukan penelitian tentang mekanisme nematisidal jamur endofit tehadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne spp.) maupun isolasi bahan aktif yang dikandung jamur endofit tanaman padi tersebut.

DAFTAR PUSTAKA

Anonimus. 1973. Bercocok Tanam Padi Sawah. Jakarta.: Departemen Pertanian. Badan Pengendalian BIMAS.


Bacon, C. 1991. Isolation, Culture and Maintenance of Endophytic Fungi and Grasses. In Hand Book of Mycology ( D.K. Aurora, D. Rai, K.G. Mukeri, dan G.R. Knudsen, Vol.I). Athens. Georgia.

Blog Fahri, 2009. Pengendalian Nematoda Puru Akar (Meloidogyne spp.) dengan Cendawan Rhizosfer dan Glomus fasciculatus.

Brown, M.S. and J.L. Goldstein. 1991. Drugs Used in The Treatment of Hiperlipoproteinemia . Pharmacological Basis of Therapeutics. 8th edition. New York: Mc.Graw Hill Book.

Carrol, G.C. 1988. Fungal endophytes in stems and leaves. From latent pathogens to mutualistic symbiont. Ecology. 69: 2-9

Clay, K. 1988. Fungal endophytes of grasses : A Devensive Mutualism Between Plants and Fungi. Ecology 69 (1) : 10-16

Dinas Pertanian dan Kehutanan Kabupaten Bantul. 2009

Dropkin, H.V. 1989. Pengantar Nematologi Tumbuhan. Penerjemah Ir. Supratoyo. Yogyakarta: Gadjah mada University Press.

Gandjar, I., R.A. Samsons, K van den Tweel-Vermeulen, A. Oetari and I. Santoso. 1999. Pengenalan Kapang Tropik Umum. Jakarta: Yayasan Obor Indonesia.

Gilman, J.C. 1971. A manual of soil fungi. Second Edition. Fourth Printing. U.S.A. The Iowa State University Press,11-13.


Goenadi, D.H., R. Saraswati., N. N. Nganro, & J.A. S. Adiningsih. 1995. Nutrient solubilizing and aggregate-stabilizing microbes isolated from selected humic tropical soil. Menara Perkebunan. 63(2) : 60-66.

Hallmann J, Kloepper JW, Rodriguez-Kabana R, Sikorara. 1995. Endophytic rhizobacteria as antagonists of Meloidogyne incognita on Cucumber.

Harni, R., Supramana, A. Munif, I. Mustika. 2006. Pengaruh Metode Aplikasi Bakteri Endofit Terhadap Perkembangan Nematoda Peluka Akar (Pratylenchus. Brachyurus) Pada Tanaman Nilam. Departemen Proteksi Tanaman. Bogor: ITB.

Hackenberg, G., A.Muehlchen, T. Forge, T. Vrain. 2000. Pseudomonas chlororaphis strain Sm3, bacterial antagonist of Pratylenchus penetrans. J of Nematol. 32: 183-189.

Hawksworth, L.D. and J.D. Pitt. 1983. A New Taxonomy for Monascus sp. Based on Cultural and Microscopical Characters. Australian Journal of Botany 34: 51.

Hidayati, Y.A., E. Harlia, T. Benito, A. Kurnani. 2005.Identifikasi Jamur dan Bakteri pada Proses Pengomposan Kotoran Domba sebagai Penunjang Sanitasi Lingkungan. UNPAD Press. 4.

Jatala, P., R. Kaltenbach, and M. Bocangel. 1980. Field Aplication of Paecilomyces lilacinus for Controlling Meloidogyne incognita on Potato. J. Nematol. 12, 226227.

Lamberti, F and C.E Taylor,1979. Root Knot Nematodes Biology and Control. Academic Press,London.pp 173-375

Luc, M., Sikora, R.A., Bridge, J., 1995. Nematoda Parasitik Tumbuhan di Pertanian Tropik dan Subtropik. . Penerjemah Ir. Supratoyo. Yogyakarta: Gadjah mada University Press. Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Morgan-Jones, G., J.F. White and R. Rodriguez-Kabana. 1984. Phytonematode Phatology: Ultra-structure Studies. Parasitism of Meloidogyene arenaria eggs and larvae by Paecilomyces lilacinus. Nematropica 14, 57-71

Petrini,O., T.N. Sieber, L. Toti dan O. Viret., 1992. Ecology Metabolite Production and Substrate Utilization in Endophytic Fungi. Natural Toxins. 1:185-196.

Rao, S. N. S. 1994. Mikroorganisme Tanah dan Pertumbuhan Tanaman. Edisi Kedua. Jakarta: Penerbit Universitas Indonesia.

Samsons, R.A., E.S. Hoekstra, J.C. Prisvad and O. Filtenborg. 1995. Introduction to Food Borne Fungi. 4rth Edition. Netherland :Ponsen & Looyen.

Sarbini,G.,1993. Prospek Beberapa Cendawan Parasit Telur Meloidogyne spp. Sebagai Agen Pengendali secara Hayati. Buletin Unhas No. 20 – 21. Vol VIII. hlm. 2024

Sastrahidayat, I.R, 1985. Ilmu Penyakit Tumbuhan. Usaha Nasional.Surabaya. hlm. 218219

Sayre, 1971. Biotic Influences in Soil Environment. Chap. 9 pp. 235-256. In B.M. Zuckerman, W.F. Mai and R.A. Rohde. (Eds) Plant Paracitic Nematodes. Vol.I. 345 pp. Academic Press, New York

Steiner, G. 1934. Root-knot and other Nematodes Attacking Rices and Some Weeds. Phytopatology 24:916-928.

Strobel, G. A., W. M. Hess, E. Ford, R. S. Sidhu, and X. Yang., 1996. Taxol from Fungal Endophytes and The Issue of Biodiversity. Journal of Industrial Microbiology. 17: 417-425. Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

Sudarmo. 1991. Pengendalian hama penyakit dan gulma padi. Yogyakarta: Kanisius.

Suwanto, A. 1985. Produksi Angkak sebagai Zat Pewarna Makanan. Media Teknologi dan Pangan. 11: 8-14.

Tan, R.X, and W.X.Zou. 2001. Endophytes: A Rich of functional metabolites. Nat. Prod. Rep. 18: 448-459.

Tullis, E.C. 1934. The root-knote nematode n rice. Phytopatology. 24: 938-942.

Yik, C.P and Birchfield, W. 1978. Host studies and reaction of rice cultivars to Meloidogyne graminicola. Loussiana State university. Los Angeles

Ziniel, D.K, P. Lambrecht, N. B Haris, Z. Feng, D. Kuczmarski, P, Higley, C.A. Himaru, A. Arunakumari, R.G. Barletta, and A.K. Viadder. 2002. Isolation and characterization of endophytic colonizing bacteria from agronomics crops and prairie plants. Applied and Environmental Microbiology. 68 (5) : 2198-2208

LAMPIRAN Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

LAMPIRAN A. Foto Penelitian Uji Nematisidal Jamur Endofit

A. Prosedur inokulasi nematoda

B. Pengamatan Mortalitas Meloidogyne spp.

C. Jantan Dewasa Hasil Dari Kontrol Uji In Vivo Rahmad Lingga : Uji Nematisidal Jamur Endofit Tanaman Padi (Oryza sativa L.) Terhadap Nematoda Puru Akar (Meloidogyne SPP.), 2010.

E. Tanaman Perlakuan

F. Perlakuan J3

Puru akar


G. Perlakuan Kontrol

H. Akar Tanaman Kontrol

J. Cara menghitung Puru Akar

K. Cara mengukur panjang tanaman


L. Akar perlakuan J1 Lampiran B. Output Perhitungan Uji Non Parametric Test dengan Software SPSS Version 15.00

Multiple Comparisons

Ranks TRANS1

PURU J0 J1 J2 J3 J4 J5 J6 J7 J8 J9 J10 Total

N 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 3 33

Mean Rank 14.33 8.00 8.67 15.83 24.50 21.50 11.67 22.67 28.00 2.83 29.00


Test Statistics a,b TRANS1 24.492 10 .006

Chi-Square df As ymp. Sig.

a. Kruskal Wallis Test b. Grouping Variable: PURU

Ranks TRANS1

PURU J0 J1 Total

N 3 3 6

Mean Rank 4.67 2.33

Sum of Ranks 14.00 7.00

Lampiran C. Output Perhitungan Uji Anova dengan Software SPSS Version 15.00

Bonferroni

(I) popul

J0

Mean Difference (I-J)

Std. Error

Sig.

Lower Bound

Upper Bound

Lower Bound

J1

2372.33333(*)

76.26138

.000

2080.1459

2664.5207

J2

1994.66667(*)

76.26138

.000

1702.4793

2286.8541

J3

872.33333(*)

76.26138

.000

580.1459

1164.5207

J4

867.66667(*)

76.26138

.000

575.4793

1159.8541

J5

1164.33333(*)

76.26138

.000

872.1459

1456.5207

(J) popul

95% Confidence Interval

Upper Bound

Lower Bound


J1

J2

J3

J6

1054.66667(*)

76.26138

.000

762.4793

1346.8541

J7

856.00000(*)

76.26138

.000

563.8126

1148.1874

J8

529.00000(*)

76.26138

.000

236.8126

821.1874

J9

1469.66667(*)

76.26138

.000

1177.4793

1761.8541

J10

146.66667

76.26138

1.000

-145.5207

438.8541

J0

-2372.33333(*)

76.26138

.000

-2664.5207

-2080.1459

J2

-377.66667(*)

76.26138

.003

-669.8541

-85.4793

J3

-1500.00000(*)

76.26138

.000

-1792.1874

-1207.8126

J4

-1504.66667(*)

76.26138

.000

-1796.8541

-1212.4793

J5

-1208.00000(*)

76.26138

.000

-1500.1874

-915.8126

J6

-1317.66667(*)

76.26138

.000

-1609.8541

-1025.4793

J7

-1516.33333(*)

76.26138

.000

-1808.5207

-1224.1459

J8

-1843.33333(*)

76.26138

.000

-2135.5207

-1551.1459

J9

-902.66667(*)

76.26138

.000

-1194.8541

-610.4793

J10

-2225.66667(*)

76.26138

.000

-2517.8541

-1933.4793

J0

-1994.66667(*)

76.26138

.000

-2286.8541

-1702.4793

J1

377.66667(*)

76.26138

.003

85.4793

669.8541

J3

-1122.33333(*)

76.26138

.000

-1414.5207

-830.1459

J4

-1127.00000(*)

76.26138

.000

-1419.1874

-834.8126

J5

-830.33333(*)

76.26138

.000

-1122.5207

-538.1459

J6

-940.00000(*)

76.26138

.000

-1232.1874

-647.8126

J7

-1138.66667(*)

76.26138

.000

-1430.8541

-846.4793

J8

-1465.66667(*)

76.26138

.000

-1757.8541

-1173.4793

J9

-525.00000(*)

76.26138

.000

-817.1874

-232.8126

J10

-1848.00000(*)

76.26138

.000

-2140.1874

-1555.8126

J0

-872.33333(*)

76.26138

.000

-1164.5207

-580.1459


J4

J5

J1

1500.00000(*)

76.26138

.000

1207.8126

1792.1874

J2

1122.33333(*)

76.26138

.000

830.1459

1414.5207

J4

-4.66667

76.26138

1.000

-296.8541

287.5207

J5

292.00000

76.26138

.050

-.1874

584.1874

J6

182.33333

76.26138

1.000

-109.8541

474.5207

J7

-16.33333

76.26138

1.000

-308.5207

275.8541

J8

-343.33333(*)

76.26138

.010

-635.5207

-51.1459

J9

597.33333(*)

76.26138

.000

305.1459

889.5207

J10

-725.66667(*)

76.26138

.000

-1017.8541

-433.4793

J0

-867.66667(*)

76.26138

.000

-1159.8541

-575.4793

J1

1504.66667(*)

76.26138

.000

1212.4793

1796.8541

J2

1127.00000(*)

76.26138

.000

834.8126

1419.1874

J3

4.66667

76.26138

1.000

-287.5207

296.8541

J5

296.66667(*)

76.26138

.043

4.4793

588.8541

J6

187.00000

76.26138

1.000

-105.1874

479.1874

J7

-11.66667

76.26138

1.000

-303.8541

280.5207

J8

-338.66667(*)

76.26138

.011

-630.8541

-46.4793

J9

602.00000(*)

76.26138

.000

309.8126

894.1874

J10

-721.00000(*)

76.26138

.000

-1013.1874

-428.8126

J0

-1164.33333(*)

76.26138

.000

-1456.5207

-872.1459

J1

1208.00000(*)

76.26138

.000

915.8126

1500.1874

J2

830.33333(*)

76.26138

.000

538.1459

1122.5207

J3

-292.00000

76.26138

.050

-584.1874

.1874

J4

-296.66667(*)

76.26138

.043

-588.8541

-4.4793


J6

J7

J6

-109.66667

76.26138

1.000

-401.8541

182.5207

J7

-308.33333(*)

76.26138

.030

-600.5207

-16.1459

J8

-635.33333(*)

76.26138

.000

-927.5207

-343.1459

J9

305.33333(*)

76.26138

.033

13.1459

597.5207

J10

-1017.66667(*)

76.26138

.000

-1309.8541

-725.4793

J0

-1054.66667(*)

76.26138

.000

-1346.8541

-762.4793

J1

1317.66667(*)

76.26138

.000

1025.4793

1609.8541

J2

940.00000(*)

76.26138

.000

647.8126

1232.1874

J3

-182.33333

76.26138

1.000

-474.5207

109.8541

J4

-187.00000

76.26138

1.000

-479.1874

105.1874

J5

109.66667

76.26138

1.000

-182.5207

401.8541

J7

-198.66667

76.26138

.889

-490.8541

93.5207

J8

-525.66667(*)

76.26138

.000

-817.8541

-233.4793

J9

415.00000(*)

76.26138

.001

122.8126

707.1874

J10

-908.00000(*)

76.26138

.000

-1200.1874

-615.8126

J0

-856.00000(*)

76.26138

.000

-1148.1874

-563.8126

J1

1516.33333(*)

76.26138

.000

1224.1459

1808.5207

J2

1138.66667(*)

76.26138

.000

846.4793

1430.8541

J3

16.33333

76.26138

1.000

-275.8541

308.5207

J4

11.66667

76.26138

1.000

-280.5207

303.8541

J5

308.33333(*)

76.26138

.030

16.1459

600.5207

J6

198.66667

76.26138

.889

-93.5207

490.8541

J8

-327.00000(*)

76.26138

.016

-619.1874

-34.8126

J9

613.66667(*)

76.26138

.000

321.4793

905.8541


J8

J9

J10

J10

-709.33333(*)

76.26138

.000

-1001.5207

-417.1459

J0

-529.00000(*)

76.26138

.000

-821.1874

-236.8126

J1

1843.33333(*)

76.26138

.000

1551.1459

2135.5207

J2

1465.66667(*)

76.26138

.000

1173.4793

1757.8541

J3

343.33333(*)

76.26138

.010

51.1459

635.5207

J4

338.66667(*)

76.26138

.011

46.4793

630.8541

J5

635.33333(*)

76.26138

.000

343.1459

927.5207

J6

525.66667(*)

76.26138

.000

233.4793

817.8541

J7

327.00000(*)

76.26138

.016

34.8126

619.1874

J9

940.66667(*)

76.26138

.000

648.4793

1232.8541

J10

-382.33333(*)

76.26138

.003

-674.5207

-90.1459

J0

-1469.66667(*)

76.26138

.000

-1761.8541

-1177.4793

J1

902.66667(*)

76.26138

.000

610.4793

1194.8541

J2

525.00000(*)

76.26138

.000

232.8126

817.1874

J3

-597.33333(*)

76.26138

.000

-889.5207

-305.1459

J4

-602.00000(*)

76.26138

.000

-894.1874

-309.8126

J5

-305.33333(*)

76.26138

.033

-597.5207

-13.1459

J6

-415.00000(*)

76.26138

.001

-707.1874

-122.8126

J7

-613.66667(*)

76.26138

.000

-905.8541

-321.4793

J8

-940.66667(*)

76.26138

.000

-1232.8541

-648.4793

J10

-1323.00000(*)

76.26138

.000

-1615.1874

-1030.8126

J0

-146.66667

76.26138

1.000

-438.8541

145.5207

J1

2225.66667(*)

76.26138

.000

1933.4793

2517.8541

J2

1848.00000(*)

76.26138

.000

1555.8126

2140.1874

J3

725.66667(*)

76.26138

.000

433.4793

1017.8541


J4

721.00000(*)

76.26138

.000

428.8126

1013.1874

J5

1017.66667(*)

76.26138

.000

725.4793

1309.8541

J6

908.00000(*)

76.26138

.000

615.8126

1200.1874

J7

709.33333(*)

76.26138

.000

417.1459

1001.5207

J8

382.33333(*)

76.26138

.003

90.1459

674.5207

J9

1323.00000(*)

76.26138

.000

1030.8126

1615.1874

* The mean difference is significant at the .05 level

Lampiran D. Gambaran Koloni dan Hifa Jamur Endofit yang Diisolasi


Aspergillus sp.1

Aspergillus sp.4

Aspergillus sp.2

Aspergillus sp.6

Aspergillus sp.

Aspergillus sp.5


Penicillium sp.

Cochliobolus lunatus

Mucor sp.

Hifa Monascus sp.

Monascus sp.

Hifa Mucor sp.


Hifa Penicillium sp.

Hifa Cochliobolus lunatus

Lampiran E. Contoh perhitungan populasi akhir

Volume tanah

=

1000 gram

Ulangan 1(/100 gram)

=

112


=

100


=

73

Total

=

285

Rata-rata(/100 gram)

=

95 individu

Populasi total

=

rata-rata x 10

=

95x10

=

9500 individu



UJI NEMATISIDAL JAMUR ENDOFIT TANAMAN PADI (Oryza sativa L.) TERHADAP NEMATODA PURU AKAR (Meloidogyne SPP.) SKRIPSI RAHMAD LINGGA

Recommend Documents