DAFTAR PUSTAKA
Akiyama, D.M. 1991. Future consideration for the aquaculture feed industri. In Procceding of The aquaculture feed processing and nutrition workshop. Edited by D.M. Akiyam~ and R.K.H.Than. American Soybean Association. Singapore 0923. Rep. of Singapore. p. 5-9. Akiyama, D.M., W.G. Dominy and A. Lawrence. 1991. Penaeid shrimp nutrition for the commercial feed industri: Revised. In Procceding of The aquaculture feed processing and nutrition workshop. Edited by D.M. Akiyama and R.K.H.Than. American Soybean Association. Singapore 0923. Rep. of Singapore. p. 80-98. Alihddin, M. 1996. Mikroteknik ikan (preparasi sediaan histologik ikan). Laboratorium Kesehatan Ikm. Jumsan Budidaya Perairan. Fakultas Perikanan IPB. Aronof, S. 1967. Techniques of radbobiochemistry. Hafner Publishing Company, Inc. New York, N.Y. 2 14 p. Barrett, S.M., J.K. Volkman, G.A. Dunstan and J.M. LeRoi. 1995. Sterol of 14 species of marine diatoms (B:icillariophyta). J. Phycol. 3 1 :360-369. Baurn, N.A., D.E. Conklin and E.S. Chang. 1990. Effect of dietary lecithin in combination with casein oir crab protein on cholesterol uptake and transport in the lobster Hornarus americanus. Journal of The World Aquaculture Society. Vol21, No. 4:277-287. Bell, A.T. and D.V. Lightner. 1988. A handbook of normal penaeid shrimp histology. World Aquacultun: Society, Hawaii. 1 14p. Brigg, M.R.P., K. Jauncey and J.H. Brown. 1988. The cholesterol and lecithine requirement of juvenile prawn (Macrobranchium rosenbergii) fed semi purified diet. Aquaculture, 70: 121-129. Castell, J.D., E.C. Mason and S.D. Budson,. 1974. Lobster nutrition : The effect of dietary protein - levels or1 Humarus americanus. J. Fish. Res. Board Canada, 31., 1163-1170 Chen, H. and J. Jem. 1991. Combined effects of dietary phosphatidylcholine and cholesterol on the growth, survival and body lipid composition of marine shrimp, Penaeus penicillatus. Aquaculture, 96: 167-178.
Chen, Houng-Yung. 1993. Requirt:ments of marine shrimp, Penaeus monodon, juvenile for phosphatidilcholine and cholesterol. Aquculture, 109:165-
176. D'Abramo, L.R.,C.F. Bordner and D.E. Conklin. 1982. Relationship between dietary phophatidylcholine and serum cholesterol in the lobster Humarus sp. Marine Biology, 67.,231-235. FAO. 1989. Review of development in aquculture. Infofish International, 4:3440. Harper, H.A., V. Rodwell, and P.A. Mayer. 1979. Review of physiological chemistry. Lange Medical Publication. Terjemahan dr. Martin Muliawan. Penerbit buku kedokteran EGC. 743 hal. Harris, E. 1989. Pengaruh salinitas terhadap bioenergenetika benih udang windu, Penaeus monodon Fab. bendasarkan inkorporasi radiokarbon dari I4cArtemia sebagai pakan. Tesis M.S. Fakultas Pascasarjana, Institut Pertanian Bogor. 58 ha]. Hertrampf, J.W. 1991. Feeding aquatic animals with phospholipids. Crustaceans. Lucas Meyer Publ. 8. Hamburg-Germany. 3 1 p.
I.
Huisman, E. A. 1987. The principl~zsof fish culture production. Department of Aquaculture, Wageningen University. The Netherland. 100 p. Kanazawa, A. 1985. Nutrition of penaeid prawns and shrimps. Proceeding of The First International Conference of Penaeid Prawns/Shrimps. IIoilo City, Philipines. p: 123-130. Kanazawa, A., S.I. Teshirna and S&.arnoto. 1985. Effect of dietary lipids fatty acids, and phopholipids on growth and survival of prawn (Penaeus japonicus) larvae. Aquaculture 50 : 39-49. Khayat, M., 0.Shenker, B. Funkenstt:in, M. Tom, E. Lubzens and A. Tietz. 1994. Fat transport in the penaeid shrimp Penaeus sernisulcatus (De Haan). Bamidgeh, 46(1):22-32. Leary, C., and A.D. Matthews. 1990. Lipid class distribution and fatty acid composition of wild and farmed prawn Penaeus monodon Fab. Aquaqulture, 89:65-8 I . Lehninger, A.L. 1982. Principles of biochemistry. Worth publication Inc. Terjemahan Dr. Ir. Maggy Thenawidjaja. Penerbit Erlangga. 263 hal. Mac Lean and D. Penman. 1990. The application of gene manipulation to aquaculture. Aquaculture, 85: 1-20.
Mashur, A. 1988. Pengaruh penggunaan kolesterol dengan tingkat yang berbeda dalam makanan buatan terhadap perhmbuhan juwana udang windu, Penaeus monodon. Skripsi. Fakultas Perikanan IPB. New, M.B. 1976. A review oj' dietary studies with shrimp and prawns. Aquaculture, 9: 101-144. Pasano, L.M. 1960. Moulting and it:; control. In Physiology of cmstaceae. Edited by T.H. Waterman. Academic Press N.Y., San Francisco. London. p : 473-536. Riis, P.M. 1983. Dynamic biochemistry in animal production. Amsterdam-Oxford-New York-Tokyo. 501p.
Elsevier,
Sheen Shyu-Shin, Ping-Chung Lin, Shiu-Nan Chen and Jiann-Chu Chen. 1994. Cholesterol requirement of juvenile tiger shrimp Penaeus rnonodon. Aquaculture, 125:131-137. Shieh, H.S. 1969. The biosynthe:iis of phospholipid in the lobster, Homarus americanus. Comp. Biochem. Physiol., 30:679-684. Steel, G.D. and Torrie, J.H.R. 1980. Principles and Procedure of Statistic. Me. Grow-Hill, Inc. Tokyo. 363 :pp. Takeuchi, T. 1988. Laboratory work --- Chemical evaluation of dietary nutrients in Fish Nutrition and Maricuiture. JICA Textbook. 279-289. Tave, D. 1988. Genetic engineering Aquaculture Magazine, 14(2):63-65. Teshima, S. and A. Kanazawa. 198tia. Transport of dietary lipids and the role of serum lipo-proteins in prawn. Bull. Japanes Soc. Sci. Fish., 46., (1) 51-55. Teshima, S. and A. Kanazawa. 1986b. Nutritive value of sterols for the jevenile prawan. Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 52. Teshima, S., and Kanazawa. 1988. Necessity of dietary sterol and phospholipid for growth of prawn, Penatus japonicus Bate. Tech. Rep. NMFS70, ScotIe, WA 981 15. p:15-20 Teshima, S., A. Kanazawa, H. Saada, and M. Kawazaki. 1982. Requirement of larval prawn, Penaeus japonic:us for cholesterol and soybean phospholipid. Mem. Fac. Fish., Kagoshima IJniv. 3 1: 193-199. Teshima, S., A. Kanazawa, and H. Saada. 1983. Nutritional value of dietary cholesterol and other sterol to larva prawn, Penaeus japonicus Bate. Aquaculture 3 1:159-167.
Teshima, S., A. Kanazawa, and Y. Bakuta. 1986. Effect of dietary phospholipid on lipid transport in the juvenil prawn. Bull. Jap. Soc. Sci. Fish., 52(1):159-163. Tim PeneIiti Pakan Udang, Faperikan IPB. 1991. Penunusan penggunaan bahan baku dan pakan udang d a l i m rangka standarisasi. Ditjen Perikanan, Deptan, Jakarta, 86 hal. Van den Oord, A. 1964. The absence of choIestero1 synthesis in the crab, Cancer pagurus L. Comp. Bichem. Physiol., 13:461-467. Vogt, G., V. Storch, E. Quinito, and 1F.P. Pascual. 1985. Midgut gland as monitor organ for the nutritional value of diets in Penaeus monodon. Aquaculture, 48: 1-12. Vonk, H.J.
1960. Digestion anti metabolism. In Physiology of crustaceae. Edited by T.H. Waterman. Academic Press N.Y., San Francisco. London. p : 291-316.
Vournakis, J.N. 1984. Application of recombinant DNA technology to the domestication of marine plants. In biotechnology in the marine science. John Wiley & Sons. p:81-103. Zandee, D.I. 1967. Absence of c:holesterol synthesis as contrasted with the presence of fatty acid syntht:sis in some arthropods. Comp. Biochem. Physiol, 20:811-822.
Lampiran 1.
Prosedur analisis kadar air
1.
Cawan dipanaskan pada suhu 105°C selama 3 jam.
2.
Bahan seberat A g dimasukkan ke dalam cawan dan ditimbang (X g).
3.
Cawan yang sudah berisi bahan dimasukkan dalam oven pada suhu 105OC selama 3 jam, selanjutnya didinginkan dalam eksikator dan ditirnbang (Y g).
4.
Prosedur nomor tiga diulang kambali jika sudah tidak ada perubahan bobot pakan dan pengukuran selesai.
5.
% kadar air = (X-YIA) x 1 00%
Lampiran 2. Analisis kadar protein (semi micro kjeldahl method) 1.
0.5-1.0 g sampel ditimbang dan dimasukkan ke dalam labu kjeldahl, dan salah satu labu digunakan sebagai blanko, di mana pada labu itu tidak dimasukkan sampel.
2.
Ke dalam labu no. I ditambahkan 3 g katakis (&SO4 + CuS04. SH20 dengan rasio 9 : 1 (w/w), dan 10 ml Hz1304 pekat.
3.
Labu no. 2 dipanaskan 3-4 jam, sampai cairan dalam labu berwama hijau, setelah itu pemanasan diperpanjang 30 menit lagi.
4.
Larutan didinginkan, lalu ditannbah air destilata 30 ml. Kemudian larutan no.
2 dimasukkan ke labu takar, tambahkan larutan destilata sarnpai volume larutan menjadi 100 ml.
5. Selanjutnya dilakukan proses destilasi untuk rnembebaskan kembali NH3 yang berasal dari proses destruksi pada no. 4. 6.
Labu elenmeyer diisi 10 ml HzS04
0.05 N dan ditambahkan 2-3 tetes
indikator (methyl red/methylen blue) dari labu no. 4 .
7. Labu destilasi diisi 5 ml larutan no. 4, lalu ditambahkan larutan sodium hydroxide 30%. 8.
Pemanasan dengan uap terhadap labu destilasi (no. 7) terlihat pada kondensor.
9
Larutan dalam labu elemeyer dititrasi dengan 0.05 N larutan natrium hidroksida.
10. % protein
=
0.0007*x (Vb - Vs) x F x 6.25* * x 20 S
Keterangan : Vs = m10.05 N titar NaOH untuk sampel Vb = ml 0,05N titar Na.OH untuk blanko F = faktor koreksi dari 0.05 larutan NaOH S = bobot sampel (g) . * = setiap ml 0.05 N NaOH equivalent dengan 0.0007g nitrogen ** = faktor nitrogen
Lampiran 3. Analisis kadar lema k 1.
Labu ekstraksi dipanaskan pada suhu 1 10°C selama 1 jam.
Kemudian
didinginkan selama 30 menit ddarn eksikator. Panaskan kembali selama 30 menit, lalu didinginkan, kemudian ditimbang. Proses tersebut didang sampai tidak ada perbedaan bobot labu lebih dari 0.3 rng. Bobot labu ekstraksi = A. 2.
1 - 2 g. sarnpel dimasukkan ke dalam tabung filter, lalut dipanaskan pada
suhu 90 - I OOOC selama 2-3 jam. 3.
Tempatkan tabung filter pada no. 2 ke dalarn ekstraksi dari alat Soxhlet. Kemudian sambungkan kondensor dengan labu ekstraksi pada no. 1 yang telah diisi 100 ml petrolium ether.
4.
Panaskan ether pada labu ekstraksi dengan rnenggunakan water bath, suhu 70°C selama 16jam.
5.
Panaskan labu ekstraksi pada silhu 100°C, kemudian ditirnbang (= 3).
6.
%Lipid= B - A X 100% bobot sampel
Lampiran 4. 1.
Analisis kadar abu
Cawan porselen dipanaskan pada suhu 600°C selama 1 jam dengan menggunakan muffle fiunace, kemudian dibiarkan sampai suhu muMe furnace turun sampai 11O°C, l d u cawan porselen dikeluarkan dan disimpan dalam eksikator selama 30 menit, lalu timbang (A g).
2.
Masukan sampel lalu ditimbang;(B) penimbangan sampai empat desimal.
3.
Panaskan dalam muffle furnace pada suhu 600°C selama semalam.
4.
Cawan porselen dikeluarkan llalu dianginkan dalam eksikator selama 30 menit, lalu ditimbang (C).
5.
% kadar abu =
C-A x looc% B - B
Lampiran 5. Analisis serat kasar.
1.
Kertas filter dipanaskan dalam oven selama 1 jam pada suhu llO°C, didinginkan dalam eksikator lalu &timbang (A).
2.
Demikian juga cawan porselerl dipanaskan seperti pada prosedur no. 1 dari Larnpiran 4, lalu ditimbang.
3.
Sampel sebanyak 1-2 g ditimbang lalu dimasukkan ke dalam elenmeyer. Ditambahkan H2S04 0.3 N, lalu dipanaskan selama 30 menit. Setelah itu ditambahkan lagi NaOH 1.5 N :sebanyak 25 ml lalu panaskan Iagi 30 menit.
4.
Larutan pada no. 3 disaring, lal-u dicuci berturut-turut dengan 50 ml air panas,
50 rnl H2S04 0.3 N, 50 ml air panas, dan 25 ml aceton. 5.
Kertas saring d m isinya dimasukkan ke dalam cawan porselen, lalu dikeringkan selama 1 jam, laIu ditimbang dalam eksikator dan ditimbang (Y). Kernudian dipijarkan, didinginh~anlalu ditmbang (Z).
6.
% serat kasar = Y - Z
X
-A
x 100%
Lampiran 6. Hasil analisis proksimat bahan penyusun pakan
Lampiran 7. Prosedur pembuatan pakan percobaan I.
Bahan-bahan pakan dianalisis proksimat terlebih dahulu, kernudian bahanbahan tersebut ditirnbang sesua:l dengan komposisi pakan yang dibutuhkan.
2.
Semua bahan pakan dicampur menjadi satu, dimulai dengan rnencampurkan bahan pakan yang kornposisinya terkecil sampai dengan bahan pakan yang komposisi terbesar.
Pencarnpuran dilakukan sampai merata dengan
rnenggunakan mixer.
3.
Setelah bahan pakan benar-benar tercarnpur merata, tambahkan air panas secukupnya hingga campuran tersebut membentuk sebuah adonan seperti pasta.
4.
Pakan yang telah jadi dibungkus dalam plastik dan disimpan dalam lemari es supaya tahan lama.
Lampiran 8. Komposisi vitamin mix dan mineral mix
Vitamin Mix 1 P-Aminobenzole Acid 2 Biotin 3 Inositol 4. Niacin 5 Ca-Pantotenat 6 Piridoksin-HCl 7 Ribovlavin 8 Tiamin-HC1 9 Cyanokobalamin 10 Na-ascorbat 11 Folic Acid 12 Cholin chloride 13 Menadione 14 P-Karotin 15 a-Tokoferol 16 CalciferoI
1
Mineral mix 1
IKHIPO~
2.924
Lampiran 9. Radioaktivitas hepatopankreas daa haemolim (cpm) , kolesterol pakan dan haemolim (pg), serta absorbsi kolesterol ( d . 1 5 menlt) mulai dari 0 . 5 sampai 3 jam, untuk setiap perlakuan.
Lampiran 9. Lanjutan
Keterangan : a = Radioaktivitas Hepatopankreas b = Absorbsi Kolesterol c = Kolesterol Pakan d = Radioaktivitas Haernolim = Kolesterol Haemolim e
Lampiran 10. Analisis ragam absorbsi dan iterasi nilai laju absorbsi kolesterol.
Koefisien Regresi untuk absorbsi Konstan = -0.0403049 AB = -85.2266 AA = 113.76 BB = -13.739 BB = -13.739 AA = 113.76 AB = -85.2266 A:Kolesterol = 228.452 B:Fosfolipid = 35.8599 Y= 0.04 + 228.452Kol+ 35.86 Fos- 85.23 KolFos + 113.76 ~ o l -*1379 FOS'
Lampiran 11. Analisis ragam distribusi dan iterasi nilai laju distribusi
Analisis ragam distribusi Sumber Jumlah Kuadrat 80.154150 39.526667 0.970225 98.420450 13.624200 190.696108 423.391800
A:Kolesterol B:Fosfolipid AB AA
DB 1 1 1 1
Rata-rata
Kvadrat 80.154150 39.526667 0.970225 98.420450 13.624200 63.565369
F-ratio 1.26 0.62 0.02 1.55
0.21 1 BB 3 Kesalahan total 8 Jumlah R ' = 0.549599 Koefisien Regresi untuk absorbsi : Konstan = -8.99292 A:Kolesterol = 104.564 B:Fosfolipid = 1.69678 I = 1.53906 AA = -112.24 BB = -1.59302 Y = -8.99 + 104.56Kol+ 1.70Fos + 1.54 KolFos - 112 ~ o l -' 1.59Fos Fosfolipid 0.3 0.3
0.9
12.93 12.85
P 0.34 0.49 0.91 0.30 0.67 d
Keterangan *
= berbeda nyata
Lampiran 1 3.
Analisis lanjutan laju perhunbuhan
Lampiran 14.
Bobot udang awal, akhir, bobot udang mati dan jurnlah pakan yang diberikan (mg) pada setiap perlakuan dan ulangannya
Lampiran 15. Analisis ragarn efisiensi pakan
Fosfolipid Interaksi Sisa Total
2 4 18 26
Keterangan * = berbeda nyata
248.4 3.9 416.4 958.2
124.2 1 .O 23.1
5.38* 0.04
2.93 3.55
2.29 2.62
Lampiran 16. Analisis lanjutan efisiensi pemberian pakan
Lampiran 17.
Perkembangan kelangsungan hidup udang (%) setiap perlakuan dan ulangannya selama masa percobaan
99
Lampiran 18. Andisis ragam kelangsungim hidup
Lampiran 19. Analisis lanjutan kelangsungan hidup
Lampiran 20. Perhitungan retensi protein aetiap perlakuan d m ulangannya
Ket : U
=
Ulangan; *) = Termasuk bobot udang mati
Lampiran 2 1 . Analisis ragam retensi protein
Ket. :
*
= Beda
Nyata
Lampiran 22. Analisis lanjutan retensi protein.
Kesalahan Total
I
1
I
18 26
45.90 100.40
2.55
Lampiran 23. Perhitungan retensi lemak setiap perlakuan dan ulangannya
Ket : U = Ulangan;
*) = Termasuk bobot udang mat1
105
Lampiran 24. Analisis ragam retensi lemak
Ket. :
* = Beda Nyata
Lampiran 25. Analisis lanjutan retensi lemak
I
Sumber
1
DB
I
JK
I
ILT
1
Fhit
1
