DAFTAR PUSTAKA
Adams, M. R. 1997. Vinegar. Dalam: Wood, B. J.B. (eds). Microbiology of Fermented Food, Volume 1. Elsevier Applied Science Publishers Ltd. New York. Away, Yunfal. 1989. Evaluasi Pengaruh Beberapa Marga Mikroorganisme pada Proses Fermentasi Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Terhadap Mutu Citarasa dan Indeks Fermentasi. Tesis Pasca Sarjana Biologi. ITB. Bandung. Backer, C. A. & R. C. B. Van der Brink Jr. 1968. Flora of Java. WoltersMoondhoff N. V. Gronigen. Camargo, R., J. Leme Jr., and A. M. Filho. 1963. General Observation on the Microflora of Fermenting Cocoa Beans in Bahia. Food Tech. 17: 1328-1330 Chaerul, M. 2001. Kinetika Penyisihan Organik Konsentrasi Tinggi pada Sequencing Batch Reaktor Anaerob Tahap Methanogenesa dengan Parameter Rasio Waktu Pengisian terhadap Waktu Reaksi. Tesis Magister Teknik Lingkungan ITB. Bandung. Chatt, E. M. 1953. Cocoa Cultivation, Processing Analysis. Interscienci. New York. Cook, A.H. 1958. The Chemistry and Biology of Yeasts. Academic Press Inc. New York. De Witt, K. W. 1957. Nitrogen Metabolism in Fermenting Cacao. Rep Cacao Res. Trinidad. p: 54-57 Departeman Kesehatan. 2000. Farmakope Indonesia. Depertemen Kesehatan Republik Indonesia. Direktorat Jenderal Perkebunan (Ditjenbun). 2006. Road Map Kakao 2005-2025. Departemen Pertanian. Jakarta. Effendi, S. 1982. Pengaruh Kondisi Pengolahan terhadap Mutu Biji Cokelat di Perkebunan Bunisari. Fakultas Pasca Sarjana. IPB. Bogor. Fardiaz, S. 1992. Mikrobiologi Pangan I. PT. Gramedia Pustaka Utama, Jakarta. Forsyth, W. G. C. 1555. Cacao Polyphenolic Substances III, Separation, and Estimation on Paper Cromatograms.Biochem.
83
Frazier, W.C. 1958. Food Microbiology 2nd ed. Tata McGrow Hill Publishing Company Ltd, New Delhi. Frazier, C. W.& D. C. Westhoff. 1988. Food Microbiology. 4th ed. McGraw-Hill, Inc. New York. Ginting, S. P. Tantangan dan Peluang Pemanfaatan Pakan Lokal untuk Pengembangan Peternakan Kambing di Indonesia. Lokakarya Nasional Kambing Potong. Pusat Penelitian dan Pengembangan Peternakan. http://peternakan.litbang.deptan.go.id. Grady, C. P. dan Lim, Henry, C. 1980. Biological Wastewater Treatment, Theory, and Application. Mercel Dekker Inc. New York. Griffiths, L. A. 1960. The Significance of Current Research on Cacao Fermentation Production. XIII Inter American Cacao Conferention. Trinidad & Tobago. pp: 56-64. Guritno, P. dan B. Hardjosuwito. 1983. Pengaruh Suhu Pengeringan Biji Cokelat (Theobroma cacao L.) Terhadap Keasaman dan Kadar Lemak serta Asam Amino. Kumpulan Majalah Konperensi Cokelat Nasional II. 13-15 Oktober. Medan. Hardjosuwito, B. 1983. Mesin Cuci Cokelat Vertikal. Menara Perkebunan. 51 (5): 137-140. Bogor. Hariyum, A. 1986. Pembuatan Protein Sel Tunggal. PT. Waca Utama Pramesti, Jakarta. Irdawati. 1999. Produksi Asam Asetat dari Hidrolisat Ubi Kayu (Manihot esculenta Crantz) oleh Kultur Campuran Saccharomyces cerevisiae Hanson Strain A3 dan Acetobacter aceti Beijerinck Strain ITB X24 secara Fermentasi Bawah Permukaan. Tesis Magister Biologi ITB. Bandung. Jacobs, M. B. 1951. The Chemistry and Technology of Food Product. 2nd ed. vol II. Interscience Publishers Inc. New York. Jacobs, M. B. 1958. The Chemical Analysis of Food and Food Products. vol I. 3rd ed. D. Van. Nostrand Co. Inc. New York. Johnson, E. A., Zeikus, J. G. 1991. Mixed Cultures in Biotechnology. Environmental Biotechnology. McGraw-Hill, Inc. USA. Kamaruddin, Ramli dan Sudirman, A. N. I. 2006. Pemanfaatan Limbah Cairan Pulp Hasil Fermentasi Biji Kakao (Theobroma cacao L.) Sebagai Bahan Baku Pembuatan Cuka. Badan Penelitian dan Pengembangan Daerah.Sulawesi Selatan. www.litbangda-sulsel.go.id.htm.
84
Knapp, A. W. 1937. Cacao Fermentation. John Bale. London. Luthfiantho, A. 1995. Pengaruh Beberapa Konsentrasi Sukrosa dalam Fermentasi Cuka dari Limbah Kulit Nanas. Skripsi Biologi UI. Depok. Manurung, Z. M., A. Huyaranda, dan Muhajir. 1976. Pengeruh Penutup dan Lubang Peti Mini pada Fermentasi Cokelat. Menara Perkebunan. Bogor. 44 (6): 319-322 Martelli, H. L. & H. F. K. Dittmar. 1960. Yeast Isolated from Cacao Beans during the Curing Process. Cacao Fermentation. Escola N. de Quίmica. University of Brazil. Rio de Janeiro. Brazil. 9: 370-371. http://www.worldagroforestry.org McComber, K., Jennifer, R., Janet, F., Dalya, Kent., & Jialan Wang. 2007. Chocolate Testing. GSC HCA off-campus comitee. MIT. http://bostonchocolateguide. Metcalf & Eddy. 1991. Wastewater Engineering: Treatment, Disposal and Reuse, McGraw Hill Book and Co. Singapura Minifie, B. W. 1980. Chocolate, Cocoa and Confectionery. Science and Technology, 2nd ed. The AVI Publ. Co. Inc. Westport. Nasution, Z., W. Ciptadi, dan B. S. Laksmi. 1976. Pengolahan Cokelat. Dep. THP. Fateta. IPB. Bogor. Nurhidayat. 1984. Pengaruh Aerasi pada Proses Fermentasi Biji Cokelat Terhadap Mutu Biji Cokelat Kering. Tesis Sarjana IPB. Fakultas Teknik Pertanian. Bogor. Pelczar, M.J dan Chan, E.C.S. 1986. Dasar-Dasar Mikrobiologi. Penerbit Universitas Indonesia (UI-Press). Jakarta. Phoebe, A. Chocolate: Food of The Gods. William Randolf Hearst Foundation. Hearts Museum Antrophology. http:// heartsmuseum.berkeley.edu Poultney, S.V. 1949. Vinegar Products. Chapman & Hall Ltd. London. Prameswari, E. A. 2004. Optimasi Produksi Vinegar dari Limbah Cair Pulp Kakao (Theobroma cacao L.) menggunakan Ragi Saccharomyces cerevisiae dan Bakteri Acetobacter aceti dangan Metode “Quick Process”. ITB, Bandung Prescott. S. C. & C. G. Dunn. 1959. Industrial Microbiology. McGraw Hill Book Company Inc. New York.
85
Quesnel, V. C. 1967. Fermentation and Drying of Cacao. Lective Delivered to The Agricultural Society of Trinidad. Rahayu, Donor. 1986. Pengkajian Metoda Fermentasi Biji Cokelat (Theobroma cacao L.)Klon UAH dengan Menggunakan Biakan Murni Saccharomyces cerevisiae ITB A3 dan Acetobacter aceti ITB X24. Dep. Boilogi. ITB. Bandung. Reineccius, G. A. , D. A. Andersen, T. E. Kavanagh, dan P. G. Keeney. 1972. Identification and Quantification of Free Sugars in Cocoa Beans. J. Agriculture Food Chem. 20: 199-202. Roelofsen, P. A. 1958. Fermentation, Drying and Storage of Cocoa Beans. Avd. Food Res. 8:225-229 Rohan, T. A. 1963. Processing of Raw Cocoa for The Market. Food and Agricultural Organization of The United Nation. Rome. Rohan, T. A. dan T. Stewart 1967. The Precursors of Chocolate Aroma: Production of Free Amino Acids During Fermentation of Cocoa Beans. Journal Food Science. 32: 392-398. Salle, A. J. 1961. Fundamental Principles of Bacteriology. McGraw Hill Company Inc. New York. Schonberg, A. dan R. Moubasher. 1952. The Stecker Degradation of α Amino Acids. Chem. Revs.50: 267-269. Siagian, Albiner. 2002. Bahan Tambahan Makanan. Fakultas Kesehatan Masyarakat. USU. Library usu2.ac.id. Siregar, I. M. 1964. Catatan Mengenai Cokelat. MenaraPerkebunan 33 (3) : 55-65 Siregar, T. H. S., S. Riyadi dan L. Nuraeni. 1992. Budidaya Pengolahan dan Pemasaran Cokelat. Penebar Swadaya. Jakarta. Smith, N. J. H. 2005. Geography of Crop Plants. Lecture Notes. Department of Geography. University of Florida. Gainesville. Florida. www.geog.ufl.edu Soetiardjo dan S. Mangoensoekardjo. 1980. Pengaruh Fermentasi dan Pengeringan Terhadap Kualitas Biji Cokelat Bulk. Kumpulan Makalah Konperensi Cokelat Nasional. vol II 16-18 Sept. Medan. Speece, R. E. 1996. Anaerobic Biotechnology for Industrial Wastewaters. Archae Press. Tennesse. USA. Suriawiria, U. 1986. Pengantar Mikrobiologi Umum. Penerbit Angkasa Bandung.
86
Syafila, M. 1997. Proses Anaerob dalam Pengolahan Buangan Industri. ITB. Bandung. Tampubolon, M. 1984. Pengaruh Penambahan Ragi Terhadap Fermentasi dan Mutu Biji Kering Cokelat Bulk. Pusat Penelitian dan Pengembangan Perkebunan. Tanjung Muara. Taufik, S. 1996. Produksi Senyawa Aroma dari Lendir Biji Kakao oleh Trichoderma sp. pada variasi Waktu Fermentasi, pH dan Kecepatan Pengadukan. Fakultas teknologi Pertanian. IPB. Bogor Tri Panji, S. Effendi, R.S. Hadioetomo, D. Hadijaya, D. Mangunwijaya. 1995. Some Aromas Produced by Trichoderma spp. and Possible Production of Assosiated Flavoring Agent Using Cocoa Sweatings. Menara Perkebunan. 63 (1): 27-32. Waluyo, S. 1984. Beberapa Aspek Tentang Pengolahan Vinegar. Dewaruci Press. Jakarta. Wang, D. I., C. L. Cooney, A. L. Demain, P. Dunhil, A. E. Humprey,& Malcom D. L. 1979. Fermentation and Enzyme Technology. John Willey and Sons, Inc. New York. Widiata, I. G. M. 2006. Mendongkrak Pendapatan Petani dengan Sentuhan Teknologi Maju. Sinar Tani. http://www.litbang.deptan.go.id. http://www.agribisnis.net http://www.icco.org http://www.kadin-indonesia.or http://en.wikipedia.org.htm
87
Lampiran A
Data Hasil Penelitian Percobaan I
Tabel A-1. Reaktor A (tanpa flushing gas nitrogen) Hari VSS COD Alkohol TAV ke(mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 0 2.006,25 130.769,23 1.704,46 12.248,46 1 4.410,42 107.692,31 12.732,14 12.426,33 2 4.234,00 93.589,74 16.017,86 12.964,02 3 2.394,00 78.431,37 18.892,86 12.637,89 4 2.202,00 75.163,40 21.562,50 12.982,68 5 2.566,00 74.727,67 20.125,00 12.364,02 6 1.656,00 77.342,05 17.660,71 14.169,51 7 2.192,00 77.342,05 16.223,21 15.641,16 8 1.842,00 76.252,72 16.428,57 18.896,73 9 1.374,00 74.074,07 13.964,29 18.758,19 10 1.540,00 64.270,15 13.348,21 21.556,08 11 1.486,00 71.895,42 10.678,57 22.328,61 12 730,00 66.448,80 11.910,71 22.746,42 13 686,00 67.538,13 10.883,93 24.964,68 14 1.004,00 58.823,53 9.651,79 27.647,31 15 924,00 62.091,50 8.214,29 27.076,92 16 760,00 64.270,15 8.625,00 30.346,98 17 946,00 68.300,65 8.625,00 30.967,86 18 738,00 66.993,46 8.830,36 32.168,73 20 810,00 62.745,10 9.241,07 33.311,97
Asetat (mg/L) 11.489,36 11.773,05 11.773,05 11.914,89 11.914,89 12.056,74 13.191,49 13.333,33 14.751,77 15.319,15 16.879,43 17.659,57 17.872,34 20.141,84 20.851,06 21.631,21 22.411,35 23.546,10 25.106,38 27.517,73
pH 3,83 3,82 3,81 3,81 3,81 3,79 3,76 3,76 3,75 3,73 3,73 3,73 3,73 3,74 3,73 3,73 3,72 3,72 3,69 3,67
O2
H2
Turbiditas (%) 1.850 1.600 2.750 2.000 1.625 1.950 1.500 1.650 1.050 750 750 750 480 540 900 375 510 525 525 495
Tabel A-2. Komposisi Gas Reaktor Reaktor
Hari ke-
A
0 3 7 12 20 0 7 12 20
B
CO2
N2
28,4321 5,1778 2,335 0,9813 0,9984 10,7160 32,1748 7,6417 11,3639
57,3702 81,4188 87,6737 88,4671 89,3782 85,2592 65,5959 87,1641 85,8451
88
14,1975 13,4032 9,9904 10,5515 9,6232 4,0246 2,2291 5,1901 2,7908
0 0 0 0 0 0 0 0,0039 0
Total (%) 99,9998 99,9998 99,9991 99,9999 99,9998 99,9998 99,9998 99,9998 99,9998
Tabel A-3. Reaktor B (flushing gas nitrogen 10 menit) Hari VSS COD Alkohol TAV ke(mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 0 2.020,83 130.769,23 1.663,39 14.691,93 1 2.353,19 105.128,21 11.294,64 14.746,86 2 2.320,00 100.000,00 19.098,21 14.976,45 3 2.462,00 86.056,64 21.151,79 14.268,60 4 1.910,00 81.699,35 21.973,21 15.225,72 5 2.088,00 78.431,37 20.535,71 15.207,66 6 1.504,00 80.610,02 21.357,14 15.410,88 7 2.182,00 70.806,10 20.125,00 15.067,29 8 1.444,00 84.967,32 20.741,07 15.516,36 9 1.278,00 82.788,67 19.508,93 15.637,29 10 1.618,00 80.610,02 19.919,64 15.774,48 11 1.586,00 81.699,35 19.508,93 15.561,84 12 934,00 73.529,41 20.535,71 16.563,33 13 918,00 77.342,05 18.071,43 16.865,70 14 1.004,00 71.895,42 19.508,93 17.591,22 15 1.222,00 78.431,37 18.482,14 17.107,05 16 1.102,08 75.163,40 16.839,29 17.645,79 17 1.112,00 65.359,48 16.017,86 17.826,42 18 1.032,00 68.627,45 14.785,71 18.409,56 20 1.030,00 68.627,45 14.375,00 18.465,48
89
Asetat (mg/L) 11.631,21 11.702,13 11.914,89 11.914,89 11.914,89 11.773,05 11.773,05 11.773,05 12.624,11 12.765,96 12.907,80 13.475,18 13.475,18 13.829,79 13.900,71 13.900,71 14.326,24 14.751,77 14.751,77 15.035,46
pH 3,84 3,83 3,82 3,82 3,82 3,81 3,81 3,81 3,80 3,80 3,80 3,79 3,79 3,78 3,79 3,78 3,77 3,77 3,76 3,75
Turbiditas (%) 1.750 1.700 2.000 2.000 1.375 1.650 1.275 1.275 1.125 1.200 1.125 1.275 1.200 900 900 900 750 1.100 1.125 1.125
Lampiran B
Data Hasil Penelitian Percobaan II
Tabel B-1. Reaktor A (tanpa flushing gas nitrogen) Hari VSS COD Alkohol TAV Asetat ke(mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 0 2.660,00 130.718,95 1.421,52 12.078,66 11.489,36 1 2.570,37 123.093,68 9.857,14 13.264,02 11.347,52 2 3.089,29 113.289,76 12.732,14 14.474,01 12.056,74 3 3.142,86 111.111,11 15.401,79 15.738,42 13.475,18 4 3.417,86 112.200,44 15.812,50 17.764,71 15.177,30 5 3.442,86 108.932,46 16.839,29 18.396,45 16.028,37 6 3.789,29 106.209,15 20.125,00 18.672,36 17.021,28 7 4.300,00 105.392,16 17.866,07 20.352,30 17.304,96 8 3.164,29 104.575,16 17.455,36 19.313,94 17.588,65 9 3.009,09 99.128,54 14.785,71 20.764,68 18.965,03 10 3.359,09 93.681,92 11.294,64 22.840,71 19.300,70 11 2.737,50 104.575,16 9.446,43 21.964,62 19.804,20 12 3.058,33 104.575,16 10.473,21 22.280,58 20.139,86 13 2.679,17 101.307,19 10.678,57 22.674,39 20.643,36 14 2.262,50 100.217,86 9.241,07 21.977,64 20.811,19 15 2.100,00 98.039,22 7.392,86 22.691,37 21.146,85 16 2.218,18 98.039,22 6.571,43 21.739,59 21.146,85 17 2.118,18 98.039,22 7.187,50 22.315,35 21.146,85 18 2.263,64 95.860,57 5.750,00 22.956,99 21.314,69 19 2.281,82 84.967,32 4.517,86 23.377,41 21.482,52 20 1.681,82 81.699,35 4.415,18 23.529,21 21.482,52 Tabel B-2. Reaktor A
B
Komposisi Gas Reaktor Hari keCO2 N2 O2 0 0 73,1770 20,0265 6 17,1957 65,2768 17,5274 11 37,5342 60,7071 1,4594 15 22,3572 76,3601 1,2612 20 22,1378 76,8411 1,0162 0 0 93,4571 6,5428 6 0,8513 98,5898 0,5589 15 0 99,6991 0,3008 20 0 99,5674 0,4325
90
H2 0 0 0,0063 0,0214 0,0047 0 0 0 0
pH 3,81 3,84 3,82 3,82 3,77 3,73 3,73 3,72 3,61 3,59 3,58 3,57 3,57 3,57 3,56 3,55 3,54 3,54 3,55 3,54 3,53
Total 93,2035 99,9999 99,7069 99,9999 99,9998 99,9999 99,9999 99,9999 99,9999
Turbiditas (%) 2.640 2.790 2.955 3.360 3.570 3.945 3.855 3.630 3.780 5.400 4.880 2.745 2.480 2.580 2.360 2.380 2.300 2.320 2.260 2.180 2.100
Tabel B-3. Reaktor B (flushing gas nitrogen terus-menerus) Hari VSS COD Alkohol TAV Asetat ke- (mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) (mg/L) 0 2616,00 130718,95 1382,27 14778,48 11205,67 1 2546,43 128540,31 7803,57 15076,86 11347,52 2 2082,14 117647,06 10678,57 16569,36 11631,21 3 3538,46 115468,41 14991,07 16864,68 12765,96 4 3339,29 114379,08 17455,36 17143,17 14893,62 5 3257,14 114379,08 16017,86 17085,33 15744,68 6 3807,14 106753,81 14375,00 17798,46 16737,59 7 4075,00 119825,71 15812,50 19044,75 17021,28 8 3253,57 101307,19 14785,71 20586,36 17588,65 9 3027,27 101307,19 11705,36 20047,08 19132,87 10 2513,64 99128,54 11705,36 21558,24 19300,70 11 2712,50 98039,22 10678,57 22037,19 19804,20 12 3259,09 106209,15 10678,57 22572,30 20307,69 13 2050,00 93137,25 9035,71 21760,41 20979,02 14 2500,00 75163,40 6982,14 22277,55 21146,85 15 2245,00 81699,35 7803,57 22753,14 21146,85 16 1331,82 87145,97 4723,21 23235,69 21314,69 17 2118,18 88235,29 5544,64 22864,71 21314,69 18 2527,27 91503,27 4517,86 23337,42 21482,52 19 2145,45 71895,42 4107,14 24639,57 21650,35 20 1472,73 75163,40 4107,14 23620,02 21650,35
91
pH 3,81 3,85 3,84 3,84 3,75 3,72 3,7 3,68 3,57 3,54 3,54 3,53 3,53 3,53 3,51 3,51 3,5 3,5 3,49 3,48 3,48
Turbiditas (%) 1740 2850 2925 3495 3630 3960 4410 4080 2940 3150 2780 2955 2660 2420 2520 2040 1700 2320 2520 2100 1960
Lampiran C
Pemeriksaan Chemical Oxygen Demand (COD)
C-1. Metode Titrasi COD kromat
C-2. Prinsip Pada umumnya materi organik akan teroksidasi oleh larutan kromat dan asam sulfat yang mendidih. Sampel akan distabilkan pada larutan asam kuat dan kalium dikromat berlebih. Setelah penguraian kalium dikromat yang tersisa akan dititrasi dengan ferro aluminium sulfat (FAS) untuk menentukan jumlah kalium dikromat yang bereaksi dan materi organik yang teroksidasi akan dikalkulasi dalam bentuk ekivalensi oksigen. Waktu stabilisasi selama 2 jam namun dapat dikurangi jika dalam periode yang lebih pendek diperoleh hasil yang tetap sama.
C-3. Pereaksi C-3.1. Larutan standard kalium dikromat 0,25 N K2Cr2O7 yang telah dikeringkan pada suhu 103° C selama 2 jam ditambahkan sebanyak 4,193 gram pada 500 mL air destilasi. Kemudian ditambahkan 167 mL H2SO4 pekat dan 33,3 gram HgSO4, dilarutkan dan didinginkan sampai tempertur kamar kemudian diencerkan sampai 1000 mL. C-3.2.
Pereaksi asam sulfat
Ag2SO4 (padat atau reagen, kristal atau bubuk) ditambahkan pada H2SO4 pekat dengan perbandingan 5,5 gram Ag2SO4 per kg H2SO4. Biarkan selama 1 – 2 hari untuk melarutkan Ag2SO4. C-3.3.
Larutan indikator feroin
1,10 phenantrolin monohodrat sebanyak 1,485 gram dan 695 gram FeSO4.H2O dilarutkan dalam akuades. Kemudian ditambahkan 20 mL H2SO4 pekat dan didinginkan lalu diencerkan hingga volumenya 1000 mL. Larutan ini harus distandardisasi setiap hari dengan cara: Akuades sebanyak 2,5 mL, 3,5 mL H2SO4 pekat dan 1,5 kalium dikromat dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 125 mL. Didinginkan pada temperatur
92
kamar kemudian ditambahkan 0,05-0,1 mL (1-2 tetes) indikator ferroin dan dititrasi dengan larutan FAS. Molaritas FAS = (mL K2Cr2O7 x 0,1) / mL FAS
C-4. Cara Kerja Untuk menghindari kontaminasi pada penggunaan pertama kali, tabung COD dicuci dan direndam dalam H2SO4 20%. Pengukuran dilakukan dengan memasukkan 2 mL sampel, 2 mL kalium dikromat dan 3 mL asam sulfat ke dalam tabung COD, ditutup rapat, kemudian dikocok sampai tercampur sempurna. Blanko juga dibuat dengan menggunakan akuades sebagai pengganti sampel. Tabung dipanaskan pada temperatut pemanas 150° C selama 2 jam kemudian didinginkan dalam suhu kamar. Setelah dingin dimasukkan ke dalam Erlenmeyer 125 mL, ditambahkan indikator ferroin 1-2 tetes dan dititrasi dengan FAS 0,1 N. Titik akhir titrasi adalah perubahan warna dari biru kehijauan menjadi merah kecoklatan.
C-5. Perhitungan COD (mg O2/L) = (A – B) x N x w Eq O2 x 1000 x P, dimana: A = mL FAS yang digunakan dalam titrasi blanko B = mL FAS yang digunakan dalam titrasi sampel N = normalitas FAS w=8 P = faktor pengenceran
93
Lampiran D
Pemeriksaan Volatile Suspended Solid (VSS)
D-1. Metode Analisis berdasarkan penimbangan berat (gravimetri)
D-2. Prinsip Residu dari penyaringan sampel dikeringkan dengan oven pada suhu 103 105° C sampai mencapai berat konstan. Perbedaan berat antara cawan pijar kosong dengan cawan berisi padatan menunjukkan jumlah total suspended solid (padatan tersuspensi). Kemudian residu pada cawan dipanaskan pada 550 ± 50° C. Perbedaan berat sebelum dan sesudah pemanasanmenunjukkan ju,lah padatan tersuspensi volatil (VSS). Penentuan VSS akan memberikan perkiraan kasar jumlah materi organik yang terkandung di dalam limbah atau air buangan.
D-3. Cara Kerja Sampel disaring dengan kertas saring bebas abu (ashless) yang telah ditimbang terlebih dahulu (wks). Kertas saring yang mengandung endapan disimpan dalam cawan yang telah ditimbang (wcw), dikeringkan pada suhu 103 - 105° C selama 1 jam kemudian didinginkan dalam desikator sampai temperatur dan beratnya stabil. Cawan berisi endapan ditimbang (wA mg) lalu dipanaskan pada 550 ± 50° C selama 1 jam lalu didinginkan dalam desikator dan ditimbang beratnya (wB mg)
D-4. Perhitungan VSS (mg/L) = ((wA - wB) - wks ) x 1000 / volume sampel
94
Lampiran E
Pemeriksaan Kadar Alkohol
E-1. Metode specific gravity (Howrits et al., 1975)
E-2. Prinsip Penentuan kadar alkohol dilakukan dengan membandingkan berat jenis alkohol dalam sampel dengan berat jenis akuades.
E-3. Cara Kerja Sampel yang mengandung etanol kurang dari 30 %, dapat dilakukan dengan cara memipet 25 mL larutan sampel ke dalam labu destilasi sambil diatur suhunya sekitar 25° C. Kemudian ditambahkan akuades sebanyak kurang lebih 25 mL, dan didestilasi sampai diperoleh destilat yang 2 mL kurangnya dari volume sampel. Hasil destilasi didinginkan sampai suhu 20° C, lalu dimasukkan ke dalam piknometer 10 mL. Penimbangan dilakukan pada suhu yang sama denganpemipetan yaitu pada 25° C. Berat jenis alkohol dihitung kemudian kadar etanol dalam satuan % v/v ditentukan dengan menggunakan daftar bobot jenis dan kadar etanol.
E-4. Perhitungan BJ alkohol = (Berat piknometer + destilat) – berat piknometer kosong (Berat piknometer + akuades) – berat piknometer kosong
95
Lampiran F
Pemeriksaan Total Asam Volatil (TAV)
F-1. Metode Destilasi dan titrasi
F-2. Cara Kerja Sampel sebanyak 200 mL disentrifugasi selama 5 menit (volume sampel lebih kecil dapat digunakan dengan penambahan akuades sampai 100 mL). Supernatan yang diperoleh diambil sebanyak 100 mL, dimasukkan ke dalam labu destilasi 500 mL, ditambahkan 100 mL akuades dan 5 mL H2SO4 pekat kemudian diaduk dengan hati-hati. Kemudian destilasi dengan kecepatan 5 mL/menit, batu didih dapat ditambahkan agar panasnya merata. Destilat pertama sebanyak 15 mL dibuang, destilat selanjutnya ditampung secara tepat sebanyak 150 mL kemudian ditambahkan indikator phenantrolin dan dititrasi dengan NaOH 0,1 N sampai berwarna merah muda. Jika menggunakan pH meter dititrasi sampai nilai pH berkisar 8,3.
F-3. Perhitungan F-3.1. Faktor Koreksi (f) Sejumlah H2COOH stok dilarutkan dalam labu ukur dengan akuades hingga volumenya menjadi 250 mL, konsentrasi larutan dicatat (misal B) kemudian didestilasi. Destilat pertama sebanyak 15 mL dibuang untuk menghilangkan pengaruh CO2 dan H2S, destilat selanjutnya ditmpung hingga 150 mL kemudian dititrasi dengan NaOH 0,1 N, konsentrasi larutan dicatat (misal A). Faktor koreksi dapat dihitung dengan persamaan: f = A/B F-3.2. TAV sebagai asam asetat TAV = (mL NaOH x N x 60000) / (mL sampel x f)
96
Lampiran G
Pemeriksaan Kadar Asam Asetat
G-1. Metode Titrasi asam-basa Cox dan Pearson
G-2. Prinsip Metode titrasi ini sebenarnya dilakukan untuk mengukur kadar asam total dalam sampel, namun karena pada vinegar asam asetat merupakan produk yang dominan sehingga kadarnya paling tinggi, maka total asam dalam sampel dianggap sebagai total asam asetat
G-3. Cara Kerja Pengukuran kadar asam asetat ini dilakukan dengan mentitrasi 10 mL sampel yang telah diencerkan dengan akuades sampai volume 100 mL dengan NaOH 0,1 N. Sebagai indikator digunakan indikator Tashiro sebanyak 5 tetes sehingga warna larutan menjadi keunguan. Kemudian dititrasi hingga warnanya berubah menjadi kehijauan dan diukur volume NaOH yang digunakan.
G-4. Perhitungan % HOAc = N NaOH x Volume NaOH x BM HOAc x 100 % 1000 x mL sampel keterangan: HOAc = asam asetat, N NaOH = normalitas NaOH, Berat Molekul (BM) HOAc = 60
97
Lampiran H
Skema Pengolahan Buah Kakao Menjadi Biji Kakao Kering
Air sisa proses perendaman & - Kulit Buah (cocoa pod) - Pulp Kakao (cocoa
Pulp Kakao (cocoa
3. Perendaman dan Pencucian 1. Pemanenan & Pengupasan
2. Fermentasi
5. Sortasi
Biji Kakao Kering
4. Pengeringan
98
Lampiran I
Dokumentasi Peralatan yang Digunakan
I-1.
Reaktor yang Digunakan
I-2.
Peralatan untuk pemeriksaan COD
COD Reaktor
I-3.
Peralatan untuk pemeriksaan VSS
99
Sentrifugator
Furnace
Timbangan Analitik
Desikator
100
Oven I-4.
Peralatan untuk Pemeriksaan TAV dan Kadar Alkohol
Destilator
101
Lampiran J J-1.
Metabolisme Mikroorganisme
Jalur Degradasi Glukosa Embden Meyerhof Parnas (EMP)
sumber: http://de.wikimedia.org.png
102
J-2.
Jalur Pembentukan Asetat dari Glukosa
sumber: http://www.biochemj.org
103
J-3.
Jalur Pembentukan Asetat dari Etanol secara Aerob
sumber:Gotschalk, 1986
sumber:http://dwb.unl
104
J-4.
Jalur Pembentukan Asetat dari Butirat
sumber:Gotschalk, 1986
105
J-5.
Jalur Pembentukan Asetat dari Laktat dan Propionat
sumber:Gotschalk, 1986
106
J-6.
Jalur Pembentukan Etanol
sumber: http://www.textbookofbanteriology.net.
107
J-7.
Pembentukan Laktat
sumber: http://biotech.szeged.hu
108
Lampiran K
Beberapa Hasil Pengukuran Komposisi Gas dengan Gas Cromatography (GC)
K-1.
Reaktor A Percobaan I pada t0
K-2.
Reaktor B Percobaan I pada t0
109
K-3.
Reaktor A Percobaan I pada t20
K-4.
Reaktor B Percobaan I pada t20
110
K-5.
Reaktor A Percobaan II pada t20
K-6.
Reaktor B Percobaan II pada t20
111
