CanAg SCC EIA Prod. No. 800-10
Návod k použití 2007-02
Enzymoimunometrická souprava Pro 96 stanovení
DŮLEŽITÁ INFORMACE PRO UŽIVATELE Antigen SCC je obsažen v kůži, potu a slinách a snadno se šíří prostřednictvím aerosolů (například při kýchání). Abyste zabránili falešně zvýšeným hodnotám, způsobeným kontaminací, po otevření krabice se soupravou a během provádění stanovení, když manipulujete s lahvičkami reagencií, mikrodestičkami, špičkami k pipetám apod., vždy používejte rukavice. Všechny zvýšené hodnoty musí být potvrzeny opakovaným stanovením.
POUŽITÍ Souprava CanAg SCC EIA je určena pro kvantitativní stanovení antigenu rakoviny skvamózních buněk (SCC) v séru jako vodítko při léčení pacientů s rakovinou skvamózních buněk.
Shrnutí a vysvětlení testu Antigen karcinomu dlaždicových buněk (SCCA) je skupina glykoproteinů s molekulovou hmotností ~45 kDa, patřící do rodiny inhibitorů serin/cysteinových proteas (1). Na začátku byl protein izolován Katoem a jeho spolupracovníky z lidské tkáně karcinomu dlaždicových buněk a bylo nalezeno, že se skládá nejméně z 10 frakcí s různým isoelektrickým bodem (2). Poslední studie ukázaly, že antigen SCC je složen ze dvou odlišných, ale vysoce homologních genových produktů, SCCA1 a SCCA2, s různou inhibiční specificitou (3). Antigen SCC je sérologický marker karcinomu dlaždicových buněk krčku dělohy, vulvy, plic, hlavy a krku, a jícnu (4-6). U karcinomu dlaždicových buněk krčku dělohy může být SCCA použit na začátku před zahájením léčby jako prognostický marker (7). Před zahájením léčby bylo navrženo použití SCCA za účelem oddělit vysoce rizikové pacienty pro adjuvantní terapii (4). Dále u pacientů se zvýšenou hladinou SCCA před začátkem léčby profil SCC koreluje s odpovědí na radio- a chemoterapii, a měření SCCA může proto být použito na sledování účinku terapie a pro včasnou detekci vracející se nemoci.
PRINCIP STANOVENÍ CanAg SCC EIA je nekompetitivní imunoanalytické stanovení na pevné fázi, založené na přímé sendvičové technice. Kalibrátory a pacientské vzorky jsou inkubovány společně s biotinylovanou monoklonální protilátkou proti SCC a monoklonální protilátkou protiSCC, značenou křenovou peroxidázou (HRP), v mikroproužcích, potažených streptavidinem. Po
promytí se do každé jamky přidá chromogenní substrát (peroxid vodíku a 3, 3’, 5, 5’ tetramethylbenzidin) v tlumivém roztoku a nechá se proběhnout enzymatická reakce. Je-li přítomen antigen, během enzymatické reakce dojde k modrému zabarvení roztoku v jamce. Intenzita zabarvení je úměrná množství SCC, přítomnému ve vzorcích. Intenzita zabarvení se stanoví spektrofotometrem pro mikrodestičky při 620 nm (nebo případně po přidání stop roztoku při 405 nm). Kalibrační křivky jsou sestrojeny pro každé stanovení vynesením hodnoty absorbance proti koncentraci každého kalibrátoru. Koncentrace SCC v pacientských vzorcích se pak odečítají z kalibrační křivky.
REAGENCIE • • • • • •
Každá souprava CanAg SCC EIA obsahuje reagencie na 96 stanovení. Exspirační datum soupravy je uvedeno na vnějším štítku na krabici soupravy. Po uplynutí exspirační doby soupravu již nepoužívejte. Nemíchejte reagencie z různých výrobních šarží soupravy. Soupravu skladujte při 2 – 8°C. Nezamrazujte. Stabilitu otevřených reagencií naleznete v tabulce, uvedené níže. Reagencie jsou stabilní po uvedenou dobu, pokud nejsou kontaminovány, jsou skladovány v dobře uzavřených originálních lahvičkách a zachází se s nimi předepsaným způsobem. Okamžitě po použití je opět uskladněte při 2 – 8°C.
Složka
Množství
Skladování a stabilita po prvním otevření
Mikrodestička
1 destička
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na destičce
12 x 8 jamek potažených streptavidinem. Nepoužité proužky po otevření okamžitě vraťte do hliníkového sáčku, obsahujícího vysoušedlo. Pečlivě uzavřete, aby byly proužky uchovávány v suchu. Kalibrátory SCC
5 lahviček, lyofilizované
4 týdny při 2 – 8°C 3 měsíce při –20°C
1 x 0.75 ml 1 x 0.75 ml 1 x 0.75 ml 1 x 0.75 ml 1 x 0.75 ml Lyofilizované kalibrátory obsahují lidský SCC v tlumivém Tris-HCl roztoku, obsahujícím hovězí sérový albumin, vehikulum, inertní žlutou barvu a 0,01% methyl-izothiazolon (MIT) jako konzervační prostředek. Před použitím rozpustit ve vodě. POZNÁMKA: Přesná koncentrace SCC je specifická pro každou šarži a je vyznačena na každé lahvičce.
2
Složka
Množství
Skladování a stabilita po prvním otevření
Biotin Anti-SCC
1 x 15 ml
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na lahvičce Biotinylovaná myší monoklonální protilátka proti SCC, přibližně 1 μg/mL. Obsahuje fosfátový tlumivý solný roztok (pH 7,2), hovězí sérový albumin, hovězí imunoglobulin, blokovací činidla, detergent, inertní modrou barvu a 0,01% methyl-izothiazolon (MIT) jako konzervační prostředek. Před použitím smíchat s indikátorem, HRP anti-SCC.
Indikátor, HRP Anti-SCC
1 X 0,75 ml
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na lahvičce
Zásobní roztok myší monoklonálníprotilátky, konjugované s HRP, přibližně 40 μg/mL. Obsahuje konzervační látky. Před použitím smíchat s biotin Anti-SCC.
Substrát TMB HRP
1 x 12 ml
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na lahvičce
Obsahuje tlumivý roztok peroxidu vodíku a 3, 3’, 5, 5’ tetramethylbenzidinu (TMB). Připraven k použití.
Stop roztok
1 x 15 ml
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na lahvičce
Obsahuje 0,12M kyselinu chlorovodíkovou. Připraven k použití.
Koncentrát promývacího roztoku
1 x 50 ml
2 – 8°C do data exspirace, uvedeného na lahvičce
Tlumivý solný roztok Tris-HCl s Tweenem 20. Obsahuje Germall II jako konzervační činidlo. Před použitím naředit 25krát vodou. Známky nestability Substrát TMB HRP by měl být bezbarvý nebo slabě namodralý. Modrá barva znamená, že reagencie byla kontaminována a měla by být zlikvidována.
UPOZORNĚNÍ A BEZPEČNOSTNÍ OPATŘENÍ Pouze pro diagnostické použití in vitro • Pouze pro profesionální použití • Dodržujte příslušná bezpečnostní opatření pro práci v laboratoři a všechny další místní a národní bezpečnostní předpisy. • Se všemi pacientskými vzorky zacházejte jako s potenciálně infekčními. • Při likvidaci odpadu postupujte podle místních bezpečnostních předpisů.
3
ODBĚR A SKLADOVÁNÍ VZORKŮ Souprava CanAg SCC EIA je určena pro použití sérových vzorků. Krev odeberte ze žíly a obvyklým postupem oddělte sérum. Vzorky mohou být skladovány 24 hodin při 2 – 8°C. Pro delší skladování se doporučuje uchovávat vzorky při teplotě -70°C nebo nižší. Vyhněte se opakovanému zamrazování a rozmrazování vzorků. Zmrzlé vzorky ponechte pozvolna rozmrzat, nejlépe při 2 – 8°C přes noc a pak je před analýzou vytemperujte na laboratorní teplotu.
POSTUP Potřebné materiály nedodávané se soupravou 1. Třepačka pro mikrodestičky Třepání by mělo být střední až silné. Podélné třepání přibližně 200 kmitů/min., oscilační 700 – 900/min.
2. Promývací zařízení pro mikrodestičky Automatická promývačka destiček, která umožní nastavit 1 a 6 promývacích cyklů, nebo poloautomatické zařízení na promývání destiček, připojené na vakuovou pumpu nebo vývěvu a zásobník na odsátou kapalinu. Pokud není k dispozici automatická promývačka na mikrodestičky, doporučujeme ruční promývačku pásků Nunc Immuno-8.
3. Spektrofotometr pro mikrodestičky S vlnovou délkou 620 nm a/nebo 405 nm a rozsahem absorbance od 0 do 3,0.
4. Přesné pipety S plastovými špičkami na jedno použití, schopné dávkovat mikrolitrové a mililitrové objemy. Užitečná, ale ne nezbytná je i 8-kanálová pipeta nebo opakovací pipeta s plastovými špičkami na jedno použití pro dávkování 100 μl.
5. Destilovaná nebo deionizovaná voda Na rozpuštění kalibrátorů SCC a pro přípravu promývacího roztoku. Poznámky k postupu stanovení
1. Aby bylo zajištěno správné používání soupravy CanAg SCC EIA, je třeba důkladně porozumět obsahu tohoto příbalového letáku. Reagencie dodávané se soupravou jsou nedílnou součástí při jejím použití. Nemíchejte identické reagencie z této soupravy, které mají různá výrobní čísla. Nepoužívejte reagencie ze soupravy po uplynutí data exspirace, vytištěného na vnější straně krabice soupravy. 2. Před použitím je třeba reagencie vytemperovat na laboratorní teplotu (20 – 25°C). Abyste získali správné výsledky, pracujte pouze při teplotě mezi 20 a 25°C. Zmrazené vzorky nechte rozmrzat pomalu a po roztátí je jemně, ale důkladně promíchejte. 3. Před započetím pipetování kalibrátorů a pacientských vzorků vám doporučujeme označit si jednotlivé proužky, abyste byli schopni během stanovení i po jeho skončení jednoznačně identifikovat všechny vzorky. 4. Důkladné promývání proužků je velmi důležité. Zajistěte, aby každá jamka byla úplně naplněna až ke svému okraji a aby jamky mezi jednotlivými promývacími cykly i po skončení promývání byly dokonale odsáty a byly suché. Jestliže v jamkách zbyla nějaká kapalina, jamky obraťte a pečlivě je vyklepejte. Automatické promývání proužků: Postupujte podle pokynů výrobce pro údržbu a promývejte požadovaným počtem promývacích cyklů před a po každém inkubačním kroku. V odsávacím/promývacím zařízení by promývací roztok neměl zůstávat po delší dobu, protože by se jehly mohly ucpat a špatně dávkovat kapalinu nebo odsávat. 5. Substrát TMB HRP je velmi citlivý na kontaminaci. Abyste zachovali jeho optimální stabilitu a zabránili kontaminaci, odlijte požadované množství z lahvičky do pečlivě vymyté nádobky nebo nejlépe do plastové nádobky na jedno použití. Používejte pouze čisté plastové špičky na jedno použití.
4
6. Při manipulaci se vzorky a reagenciemi používejte pouze čisté plastové špičky na jedno použití a správnou techniku pipetování. Špičku pipety držte kousek nad okrajem jamky a nedotýkejte se plastového proužku ani hladiny kapaliny v jamce, abyste zabránili vzájemnému přenosu vzorku a reagencií. Správná technika pipetování je zvlášť důležitá při manipulaci se substrátem TMB HRP.
Příprava reagencií
Stabilita připravené reagencie
Kalibrátory SCC
4 týdny při 2 – 8°C 5 měsíců při –20°C nebo níže
Do každé lahvičky přidejte přesně 0,75 ml destilované vody a jemně promíchejte. Ponechte alespoň 15 minut stát, aby se obsah dokonale rozpustil. POZNÁMKA: Koncentrace kalibrátorů je uvedena na štítcích a musí být použita při výpočtu výsledků. 2 týdny při 2 – 25°C v uzavřeném zásobníku
Promývací roztok
Do čisté zásobní lahve nalijte 50 ml koncentrátu promývacího roztoku a nařeďte 25 x přidáním 1200 ml destilované nebo deionizované vody, abyste získali tlumivý promývací roztok. 3 týdny při 2 – 8°C
Roztok protilátky
Připravte požadované množství roztoku protilátky smícháním 50 μl indikátoru HRP Anti-SCC s 1 ml Biotin Anti-SCC pro jeden proužek (viz níže uvedená tabulka a Tabulka s protokolem): Po et proužk
Indikátor, HRP Anti-SCC
Biotin Anti-SCC
(μl)
(ml)
1 2
50 100
1 2
3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
150 200 250 300 350 400 450 500 550 600
3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
Pro přípravu roztoku protilátky použijte čistou plastovou nebo skleněnou lahvičku. Další možnost: Nalijte obsah lahvičky s indikátorem HRP Anti-SCC do lahvičky s Biotin AntiSCC a jemně promíchejte. Přesvědčte se, že jste opravdu všechen indikátor přenesli do lahvičky s Biotin Anti-SCC. POZNÁMKA: Roztok protilátky je stabilní po dobu tří týdnů při 2 - 8°C. Nepřipravujte větší množství roztoku protilátky, než jaké bude použito během této doby a zajistěte, aby byl řádně skladován.
5
Postup stanovení Stanovení kalibrátorů a pacientských vzorků provádějte v duplikátech. Pro každé stanovení sestrojte novou kalibrační křivku. Všechny reagencie a vzorky musí být před použitím vytemperovány na laboratorní teplotu (20 – 28°C). 1. Začněte připravovat kalibrátory SCC, promývací roztok a roztok protilátky. Je důležité používat čisté nádobí. Postupujte přesně podle návodu. 2. Do rámečku na proužky vložte požadovaný počet proužků s mikrojamkami. (Zbývající proužky okamžitě vraťte do hliníkového sáčku s vysoušedlem a pečlivě ho uzavřete.) Všechny proužky jedenkrát promyjte promývacím roztokem. Promyjte pouze tolik proužků, kolik jich bude zpracováno během následujících 30 minut. 3. Do jamek napipetujte 25 μl kalibrátorů SCC (KAL A,B,C,D,E) a pacientských vzorků (neznámé Nez) podle následujícího schematu:
A B C D E F G H
1 Kal A Kal A Kal B Kal B Kal C Kal C Kal D Kal D
2 Kal E Kal E Nez.1
3
4
5
6
7 atd.
Nez.1 Nez.2 Nez.2 Atd.
4. Pomocí přesné pipety na 100 μl (nebo přesné 8-kanálové pipety na 100 μl ) přidejte do všech jamek 100 μl roztoku protilátky. Pipetu držte kousek nad horním okrajem jamky a nedotýkejte se plastového proužku ani hladiny kapaliny, aby nedocházelo k vzájemné kontaminaci v jamkách. 5. Rámeček s proužky inkubujte za stálého třepání po dobu 1 hodiny (± 5 min.) při laboratorní teplotě (20 – 25°C) v třepačce pro mikrodestičky. 6. Po první inkubaci všechny proužky šestkrát odsajte a promyjte podle promývacího postupu, popsaného v Poznámkách k postupu stanovení, bod 4. 7. Do všech jamek přidejte 100 μl substrátu TMB HRP. Použijte stejný postup pipetování, jak je popsán výše v bodě 4. Substrát pipetujte co nejrychleji, doba mezi napipetováním první a poslední jamky nesmí přesáhnout 5 minut. 8. Inkubujte po dobu 30 minut (± 5 min.) při laboratorní teplotě za stálého třepání. Zabraňte působení přímého slunečního světla. 9. Okamžitě změřte absorbanci při 620 nm ve spektrofotometru pro mikrodestičky. Další možnost Pokud v laboratoři není spektrofotometr na mikrodestičky, schopný měřit při 620 nm, můžete stanovit absorbanci následovně:
6
Alt. 9.
Přidejte 100 μl Stop roztoku. Promíchejte a během 15 minut od přidání Stop roztoku odečtěte absorbanci ve spektrofotometru pro mikrodestičky při 405 nm.
Rozsah měření Soupravou CanAg SCC EIA lze měřit koncentrace mezi 0,3 a 50 μg/l. Jestliže očekáváte koncentrace SCC nad tímto rozsahem měření, doporučujeme vzorky před stanovením naředit normálním lidským sérem. POZNÁMKA: Sérum, použité pro ředění, musí být rovněž analyzováno, aby byla stanovena endogenní koncentrace SCC (viz „Výpočet výsledků“).
Kontrola kvality Pro validaci série stanovení se doporučuje použít kontrolní séra pro tumor markery Can Check s hladinami 1 a 2 (jsou dodávána zvlášť, REF 107-20). Jestliže se získají hodnoty mimo hranice specifikovaného rozsahu, je nutno provést důkladnou kontrolu všech reagencií a účinnosti měřícího deklarováno a analýzu zopakovat.
Referenční materiál Protože žádné obecné referenční materiály pro antigen SCC nejsou k dispozici, hodnoty kalibrátorů CanAg SCC byly stanoveny ve srovnání se sadou referenčních standardů výrobce.
VÝPOČET VÝSLEDKŮ Používá-li se spektrofotometr na mikrodestičky s vestavěným výpočetním programem, řiďte se návodem ke spektrofotometru a vytvořte program, ve kterém použijete koncentrace, uvedené na štítcích každého z kalibrátorů SCC. Pro automatický výpočet výsledků SCC doporučujeme použít některou z následujících metod: 1. Aproximaci křivky „kubický spline“. Do křivky je nutno zahrnout kalibrátor 0 s hodnotou 0 μg/l. 2. Aproximaci křivky „vyhlazený spline“. Kalibrátor 0 se použije jako pozadí destičky. 3. Interpolaci proložením od bodu k bodu. Do křivky je nutno zahrnout kalibrátor 0 s hodnotou 0 μg/l..Metodu kvadratické aproximace křivky. Do křivky je nutno zahrnout kalibrátor 0 s hodnotou 0 μg/l. POZNÁMKA: Nepoužívejte 4-parametrovou nebo lineární regresi. Při manuálním vyhodnocení se kalibrační křivka získá vynesením hodnot absorbance (A), získaných pro každý kalibrátor SCC, proti odpovídající koncentraci SCC (v μg/l), viz obrázek níže. Neznámé koncentrace SCC se potom odečtou z kalibrační křivky na základě průměrné hodnoty absorbance každého pacientského vzorku. Jestliže při prvním stanovení vzorky vykazují hodnoty SCC vyšší než 50 μg/l, musí být naředěny normálním lidským sérem v poměru 1/10 a znovu analyzovány, aby se získala přesná koncentrace SCC. POZNÁMKA: Vzorek použitý pro ředění musí být také změřen, aby bylo možno stanovit endogenní koncentraci SCC. Koncentrace SCC neředěného vzorku se vypočte následovně: Ředění 1/10:
10 x ([SCC]naředěný vzorek – (0,9 x [SCC]normální sérum))
7
Příklad výsledků Vzorek
Hodnota
kalibrátoru Calibrator Calibrator Calibrator Calibrator Calibrator
A B C D E
0 µg/l 1 µg/l 5 µg/l 24 µg/l 50 µg/l
Vzorek A Vzorek B
Průměrná hodnota absorbance (A) 0.043 0.119 0.437 1.715 2.818
SCC (μg/l)
0.245 1.363
2.6 18.3
Příklad (nepoužívejte tuto křivku ani výše uvedenou tabulku ke stanovení aktuálních výsledků stanovení).
LIMITACE METODY Antigen SCC je přítomen v normálních dlaždicových buňkách epitelia a zvýšené hodnoty SCCA můžou být zjištěny při kožních poruchách s hyperkeratinezací (např. psoriasa, ekzém). Zvýšené hodnoty se vyskytují také u benigních stavů jako je zánětlivá plicní onemocnění a jaterní nebo ledvinová nedostatečnost (4,9). Hladiny SCC nemohou být považovány za absolutní důkaz existence nebo neexistence maligního onemocnění a stanovení SCC nemůže být použito ke screeningu rakoviny. Při stanovení diagnózy onemocnění a léčení pacientů musí být výsledky stanovení interpretovány pouze v souvislosti s dalšími vyšetřeními a diagnostickými postupy a stanovení SCC nemůže nahrazovat jakákoliv používaná klinická vyšetření. Antigen SCC je přítomen v pokožce, potu a slinách a je jednoduše přenášen aerosoly (např. jako výsledek kýchání). Proto, aby se zamezilo falešnému zvýšení hodnot kvůli kontaminaci, měly by se používat ochranné rukavice během analýzy při manipulaci s reagenčními lahvičkami, mikrotitrační destičkou, špičkami pipet, atd. Navíc všechny zvýšené hodnoty by měly být potvrzeny opakovaným měřením. Protilátky proti reagenciím (lidská protilátka proti myši (HAMA) nebo heterofilní protilátky) v pacientském vzorku mohou příležitostně interferovat se stanovením, i když v tlumivém roztoku jsou obsažena speciální blokující činidla.
OČEKÁVANÉ HODNOTY Soupravou CanAg SCC EIA bylo změřeno SCCA u 175 zdravých dárců krve. Dolní a horní extremní hodnoty mimo normální rozsah byly vyřazeny pomocí IFCC doporučeného neparametrického statistického zpracování. Referenční interval obsahuje střední 95% pás referenční distribuce. Horní referenční limit byl určen jako 97,5% horní podíl.
Zdraví dárci krve n=175
Průměr (μg/l) 0,58
SD (μg/l) 0,24
Medián (μg/l) 0,54
Rozsah (μg/l) 0,16 – 1,5
Horní referenční limit (μg/l) 1,2 μg/l
Doporučuje se, aby si každá laboratoř stanovila vlastní normální rozmezí podle jednotlivých faktorů, jakými jsou dieta, podnebí, životní podmínky, stav pacienta, atd. Také by se nemělo zapomínat, že individuální počátečný výsledek pacienta poskytuje nejdůležitější referenční hodnotu pro interpretaci výsledku.
8
Průměr (μg/l) 2,62
SD (μg/l) na stanovení 0,05
VK % na stanovení
SCC 1
Počet opakování 80
SCC 2
80
7,77
SCC 3
80
SCC 4
80
Vzorek
1,9
SD (μg/l) mezi denní 0,04
VK % mezi denní 1,3
0,16
2,0
0,15
1,9
17,7
0,34
1,9
0,20
1,1
30,2
0,71
2,4
0,38
1,3
CHARAKTERISTIKY SOUPRAVY Kalibrační křivka a profil přesnosti Níže je uvedena typická kalibrační křivka a profil přesnosti získané se soupravou CanAg SCC EIA. Profil přesnosti je založen na náhodném pipetování kalibratorů na jednu mikrotitrační destičku, n=10.
Preciznost Celková preciznost byla vypočítána podle doporučení NCCLS EP5-A (10) použitím čtyř hladin zamrazených směsných lidských sér obsahujících přídavek SCC a 18 různých kombinací reagencií CanAg SCC EIA. Každý vzorek byl náhodně pipetován (n=2/stanovení) a analyzován dvakrát denně po dobu 20 dní. Detekční limit Detekční limit soupravy CanAg SCC EIA je ≤ 0,3 μg/l, definovaný jako koncentrace odpovídající průměrné koncentraci nulového kalibrátoru SCC plus dvě standardní odchylky vypočítaný podle vzorce:
2 × SD CAL A × [CAL B ] ng/l OD CAL B − OD CAL A
Výtěžnost Do normálních vzorků séra byl přidán lidský antigen SCC. Výtěžnost přídavku antigenu byla v rozmezí 90 – 110 %. POZNÁMKA: na zjišťování výtěžnosti by neměly být použity kalibrátory ze soupravy.
9
Hook efekt Žádný Hookův efekt nebyl pozorován u vzorků až do koncentrace 50 000 μg/l. POZNÁMKA: u velmi vysokých hodnot se zabarvení substrátu změní z modré na odstín zelené (při extrémně vysokých hodnotách až i případně do žluté). To povede k falešně nízkým hodnotám absorbance u 620 nm, a v extrémních případech může absorbance klesnout až na rozsah kalibrační křivky a být postřehnutelná jako Hookův efekt. Linearita Pacientské vzorky byly postupně ředěny normálním lidským sérem a pak analyzovány. Získané hodnoty byly v rozmezí 90-110% očekávaných hodnot. Specificita Souprava CanAg SCC EIA je postavena na dvou myších monoklonálních protilátkách, zachytné MAb SCC140 a detekční MAb SCC 107 (11). Doporučení NCCLS EP7-P (12) bylo dodrženo kvůli odhalení možných zdrojů interferencí. Následující látky byly testovány v daných koncentracích a bylo zjištěno, že nedošlo k žádné zkřížené reakci.
Lipémie (Intralipid®)
Koncentrace bez žádné významné interference (± 10%) 10 mg/ml
Bilirubin, nekonjugovaný
0,6 mg/ml
Hemoglobin
5 mg/ml
Porovnání metod Souprava CanAg SCC EIA byla porovnána se soupravou Imx SCC MEIA. Bylo změřeno 72 vzorků lidských sér s rozsahem hodnot 0 - 4 μg/l a vyhodnoceno lineární regresí. CanAg SCC = 1,02 x Imx SCC + 0,03 r=0,86 Bylo změřeno 138 vzorků lidských sér s rozsahem hodnot 0 - 50 μg/l a vyhodnoceno lineární regresí. CanAg SCC = 0,82 x Imx SCC + 0,06 r=0,98 Záruka Uvedené výsledky byly získány použitím doporučeného pracovního postupu. Jakákoliv změna nebo úprava pracovního postupu nedoporučená firmou Fujirebio Diagnostics může ovlivnit výsledky. V tomto případě firma Fujirebio Diagnostics neuzná žádný reklamační požadavek v záruční lhůtě, vyplývající ze zákona, na užitnost nebo vhodnost použití.
10
Literatura 1. Suminami Y., Kishi F., Sekiguchi K., Kato H. (1991) Squamous cell carcinoma antigen is a new member of the serine protease inhibitors. Biochem Biophys Res Commun 181, 51-58. 2. Kato H. and Torigoe T. (1977) Radioimmunoassay for tumor antigen of human cervical squamous cell carcinoma. Cancer 40, 1621-1628. 3. Schneider S.S., Schick C., Fish K.E., Miller E., Pena J.C., Treter S.D., Hui S.M., Silverman G.A. (1995) A serine protease inhibitor locus at 18q21.3 contains a tandem duplication of the human squamous cell carcinoma antigen gene. Proc Natl Acad Sci USA, 92, 3147-3151. 4. de Bruijn H.W.A., Duk J.M., van der Zee A.G.J., Pras E., Willemse P.H.B., Boonstra H., Hollema H., Mourits M.J.E., de Vries E.G.E., Aalders J.G. (1998) The Clinical Value of Squamous cell Carcinoma Antigen in Cancer of the Sterine Cervix. Tumor Biol 19, 505-516. 5. Vassiliakopoulos T., Troupis T., Sotiropoulou C., Zacharatos P., Katsaounou P., Parthenis D., Noussia O., Troupis G., Papiris S., Kittas C., Roussos C., Zakynthinos S., Gorgoulis V. (2001) Diagnostic and prognostic significance of squamous cell carcinoma antigen in non-small cell lung cancer. Lung Cancer 32, 137-144 . 6. Snyderman C.H., Dámico F., Wagner R., Eibling D.E. (1995) A Reappraisal of the Squamous Cell Carcinoma Antigen as a Tumor Marker in Head and Neck Cancer. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 121, 1294-1297. 7. Duk J.M., Groenier K.H., de Bruijn H.W.A., Hollema H., ten Hoor K.A., van der Zee A.G.J., Aalders J.G. (1996) Pretreatment Serum Squamous cell Carcinoma Antigen: A Newwly Identified Prognostic Factor in Early-Stage Cervical Carcinoma. J Clin Oncol 14, 11-118. 1997 8. Fleisher M. et al. (2002) Practice guidelines and recommendations for use of tumor markers in the clinic. National Academy of Clinical Biochemistry 15: p.19. 9. Yuyama N., et al., (2002) Analysis of novel disease-related genes in bronchial asthma. Cytokine 19(6), 287-296. 10. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Evaluation of Precision Performance of Clinical Chemistry Devices. Approved Guideline EP5-A (1999). 11. Röijer E., Nilsson K., Oskarsson M., Dahlén U., Andersson I., Nilsson O. (2003) Development of Monoclonal Antibodies and Immunoassays against different forms of Squamous Cell Carcinoma Antigens (SCCA). Tumor Biol 24, p. 83. 12. National Committee for Clinical Laboratory Standards, National Evaluation Protocols for Interference Testing, Evaluation protocol Number 7, Vol. 6, No 13 , August (1986).
11
CanAg Diagnostics AB Majnabbe Terminal SE-414 55 Gothenburg Sweden Phone + 46 31-85 70 30 Fax + 46 31-85 70 40
[email protected] www.fdi.com
CanAg SCC EIA Prod. No. 800-10, CZ, 2007-02. F5940, r0
CanAg ® is a registered trademark of Fujirebio Diagnostics AB
