BULETIN KEBUN RAYA Volume 19, No. 2, Juli 2016

Buletin Kebun Raya

jurnal.krbogor.lipi.go.id

p-ISSN: 0125-961X

e-ISSN: 2460-1519

BULETIN KEBUN RAYA Volume 19, No. 2, Juli 2016

LIST OF CONTENT REVIEW (Review Article) A REVIEW OF THE BIOLOGY OF RAFFLESIA: WHAT DO WE KNOW AND WHAT'S NEXT? Review Biologi Rafflesia: Apa yang sudah kita ketahui dan bagaimana selanjutnya? Siti Nur Hidayati and Jeffrey L. Walck .......................................................................... 67–78 HASIL PENELITIAN (Research Article) MORFOLOGI DAN VIABILITAS POLEN PADA DUA SPESIES BELIMBING HUTAN (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala) Pollen morphology and viability of two wild starfruit species (Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala) Kapsah, Dorly dan Inggit Puji Astuti ............................................................................. 79–90 MUSIM BERBUNGA DAN BERBUAH JENIS-JENIS TANAMAN KOLEKSI SUKU ANNONACEAE DI KEBUN RAYA BOGOR Flowering and Fruiting Time of Annonaceae Species in Bogor Botanic Gardens Tri Handayani.......................................................................................................... 91–104 RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park Asvic Helida, Ervizal AM. Zuhud, Hardjanto, Yohanes Purwanto, Agus Hikmat ..... 105–116 KONSERVASI Paphiopedilum supardii Braem & Loeb DENGAN METODE PENYIMPANAN BIJI DAN PERBANYAKAN SECARA IN VITRO Conservation of Paphiopedilum supardii Braem & Loeb by Seed Storage and In Vitro Propagation Elizabeth Handini, D.M. Puspitaningtyas dan R. Vitri Garvita .................................. 117–128 AKLIMATISASI DINI MASSA PROTALUS TUMBUHAN PAKU BAHAN OBAT (Cibotium barometz (L.) J. Sm.) HASIL KULTUR SPORA SECARA IN VITRO Prothalli Rapid Acclimatization of the Medicinal Fern Cibotium barometz (L.) J. Sm. obtained from In Vitro Culture of Spores Yupi Isnaini dan Titien Ngatinem Praptosuwiryo ....................................................... 129–138

|i

Buletin Kebun Raya


p-ISSN: 0125-961X

e-ISSN: 2460-1519

BULETIN KEBUN RAYA Volume 19, 2016 AUTHORS INDEX Agung Karuniawan “PERSILANGAN INTERSPESIFIK Ipomoea batatas (L.) Lam. DENGAN I. trifida (H.B.K.) G. Don. BERUMBI ASAL CITATAH, JAWA BARAT” “Interspecific Crossing between Ipomoea batatas (L.) Lam. and The Tubered-Bearing I. trifida (H.B.K.) G. Don. Originated from Citatah, West Java” 19(1): 11–20 Agus Hikmat “KOMPOSISI VEGETASI, POLA SEBARAN DAN FAKTOR HABITAT Ficus magnoliifolia (NUNU PISANG) DI HUTAN PANGALE, DESA TORO, SULAWESI TENGAH” “Vegetation composition, distribution patterns, and habitat factors of Ficus magnoliifolia (Nunu Pisang) in Pangale Forest of Toro village, Central Sulawesi” 19(1): 33–46 Agus Hikmat “RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT” “Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park” 19(2): 105– 116 Agus Priyono Kartono “KOMPOSISI VEGETASI, POLA SEBARAN DAN FAKTOR HABITAT Ficus magnoliifolia (NUNU PISANG) DI HUTAN PANGALE, DESA TORO, SULAWESI TENGAH” “Vegetation composition, distribution patterns, and habitat factors of Ficus

ii

|

magnoliifolia (Nunu Pisang) in Pangale Forest of Toro village, Central Sulawesi” 19(1): 33–46 Andes H. Rozak “POPULATION SIZE OF TWO ENDANGERED VIREYA RHODODENDRON SPECIES AND THEIR SURROUNDING VEGETATION ON THE TOP OF MT. RANTEMARIO, SULAWESI” “Ukuran Populasi Dua Spesies Vireya Rhododendron dan Vegetasi Sekitarnya di Puncak Gunung Rantemario, Sulawesi” 19(1): 57–66 Asvic Helida “RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT” “Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park” 19(2): 105– 116 Dorly “PERKEMBANGAN BUNGA DAN UJI VIABILITAS SERBUK SARI BUNGA LIPSTIK Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' DI KEBUN RAYA BOGOR” “Flower development and pollen viability of Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' at Bogor Botanic Gardens” 19(1): 21–32 Dorly “MORFOLOGI DAN VIABILITAS POLEN PADA DUA SPESIES BELIMBING HUTAN

(Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala)” “Pollen morphology and viability of two wild starfruit species (Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala)” 19(2): 79–90 D.M. Puspitaningtyas “KONSERVASI Paphiopedilum supardii Braem & Loeb DENGAN METODE PENYIMPANAN BIJI DAN PERBANYAKAN SECARA IN VITRO” “Conservation of Paphiopedilum supardii Braem & Loeb by Seed Storage and In Vitro Propagation” 19(2): 117–128 Elizabeth Handini “KONSERVASI Paphiopedilum supardii Braem & Loeb DENGAN METODE PENYIMPANAN BIJI DAN PERBANYAKAN SECARA IN VITRO” “Conservation of Paphiopedilum supardii Braem & Loeb by Seed Storage and In Vitro Propagation” 19(2): 117–128 Ervizal AM. Zuhud “RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT” “Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park” 19(2): 105– 116 Hardjanto “RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT” “Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park” 19(2): 105– 116

Hariany Siappa “KOMPOSISI VEGETASI, POLA SEBARAN DAN FAKTOR HABITAT Ficus magnoliifolia (NUNU PISANG) DI HUTAN PANGALE, DESA TORO, SULAWESI TENGAH” “Vegetation composition, distribution patterns, and habitat factors of Ficus magnoliifolia (Nunu Pisang) in Pangale Forest of Toro village, Central Sulawesi” 19(1): 33–46 Inggit Puji Astuti “MORFOLOGI DAN VIABILITAS POLEN PADA DUA SPESIES BELIMBING HUTAN (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala)” “Pollen morphology and viability of two wild starfruit species (Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala)” 19(2): 79–90 Iswari Saraswati Dewi “ORGANOGENESIS TUNAS SECARA LANGSUNG PADA PAMELO (Citrus maxima (Burm.) Merr.)” “Pummelo (Citrus maxima (Burm.) Merr.) Direct Shoot Organogenesis” 19 (1): 01–10 Jeffrey L. Walck “A REVIEW OF THE BIOLOGY OF RAFFLESIA: WHAT DO WE KNOW AND WHAT’S NEXT?” “Review Biologi Rafflesia: Apa yang kita tahu dan selanjutnya?” 19(2): 67–78 Kapsah “MORFOLOGI DAN VIABILITAS POLEN PADA DUA SPESIES BELIMBING HUTAN (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala)” “Pollen morphology and viability of two wild starfruit species (Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala)” 19(2): 79–90

| iii

Buletin Kebun Raya p-ISSN: 0125-961X

Kartika Ning Tyas “ORGANOGENESIS TUNAS SECARA LANGSUNG PADA PAMELO (Citrus maxima (Burm.) Merr.)” “Pummelo (Citrus maxima (Burm.) Merr.) Direct Shoot Organogenesis” 19 (1): 01–10 Karyono “PERSILANGAN INTERSPESIFIK Ipomoea batatas (L.) Lam. DENGAN I. trifida (H.B.K.) G. Don. BERUMBI ASAL CITATAH, JAWA BARAT” “Interspecific Crossing between Ipomoea batatas (L.) Lam. and The Tubered-Bearing I. trifida (H.B.K.) G. Don. Originated from Citatah, West Java” 19(1): 11–20 Kusumadewi Sri Yulita “PHENETIC AND PHYLOGENETIC ANALYSES OF TENGKAWANG (Shorea spp., DIPTEROCARPACEAE) BASED ON MORPHOLOGICAL AND MOLECULAR DATA” “Analisis fenetik dan filogenetik Tengkawang (Shorea spp., Dipterocarpaceae) berdasarkan data morfologi dan molekuler” 19(1): 47–56 Nurul Khumaida “ORGANOGENESIS TUNAS SECARA LANGSUNG PADA PAMELO (Citrus maxima (Burm.) Merr.)” “Pummelo (Citrus maxima (Burm.) Merr.) Direct Shoot Organogenesis” 19 (1): 01–10 R. Vitri Garvita “KONSERVASI Paphiopedilum supardii Braem & Loeb DENGAN METODE PENYIMPANAN BIJI DAN PERBANYAKAN SECARA IN VITRO” “Conservation of Paphiopedilum supardii Braem & Loeb by Seed Storage and In Vitro Propagation” 19(2): 117–128

iv

|

jurnal.krbogor.lipi.go.id e-ISSN: 2460-1519

Siti Maria Ulfah “PERKEMBANGAN BUNGA DAN UJI VIABILITAS SERBUK SARI BUNGA LIPSTIK Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' DI KEBUN RAYA BOGOR” “Flower development and pollen viability of Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' at Bogor Botanic Gardens” 19(1): 21–32 Siti Nur Hidayati “A REVIEW OF THE BIOLOGY OF RAFFLESIA: WHAT DO WE KNOW AND WHAT’S NEXT?” “Review Biologi Rafflesia: Apa yang kita tahu dan selanjutnya?” 19(2): 67–78 Slamet Susanto “ORGANOGENESIS TUNAS SECARA LANGSUNG PADA PAMELO (Citrus maxima (Burm.) Merr.)” “Pummelo (Citrus maxima (Burm.) Merr.) Direct Shoot Organogenesis” 19 (1): 01–10 Sri Rahayu “PERKEMBANGAN BUNGA DAN UJI VIABILITAS SERBUK SARI BUNGA LIPSTIK Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' DI KEBUN RAYA BOGOR” “Flower development and pollen viability of Aeschynanthus radicans var. 'Monalisa' at Bogor Botanic Gardens” 19(1): 21–32 Tia Setiawati “PERSILANGAN INTERSPESIFIK Ipomoea batatas (L.) Lam. DENGAN I. trifida (H.B.K.) G. Don. BERUMBI ASAL CITATAH, JAWA BARAT” “Interspecific Crossing between Ipomoea batatas (L.) Lam. and The Tubered-Bearing I. trifida (H.B.K.) G. Don. Originated from Citatah, West Java” 19(1): 11–20

Titien Ngatinem Praptosuwiryo “AKLIMATISASI DINI MASSA PROTALUS TUMBUHAN PAKU BAHAN OBAT (Cibotium barometz (L.) J. Sm.) HASIL KULTUR SPORA SECARA IN VITRO” “Prothalli Rapid Acclimatization of the Medicinal Fern Cibotium barometz (L.) J. Sm. obtained from In Vitro Culture of Spores” 19(2): 129–138 Titin Supriatun “PERSILANGAN INTERSPESIFIK Ipomoea batatas (L.) Lam. DENGAN I. trifida (H.B.K.) G. Don. BERUMBI ASAL CITATAH, JAWA BARAT” “Interspecific Crossing between Ipomoea batatas (L.) Lam. and The Tubered-Bearing I. trifida (H.B.K.) G. Don. Originated from Citatah, West Java” 19(1): 11–20 Tri Handayani “MUSIM BERBUNGA DAN BERBUAH JENISJENIS TANAMAN KOLEKSI SUKU ANNONACEAE DI KEBUN RAYA BOGOR” “Flowering and Fruiting Time of Annonaceae Species in Bogor Botanic Gardens” 19(2): 91–104

Wiguna Rahman “POPULATION SIZE OF TWO ENDANGERED VIREYA RHODODENDRON SPECIES AND THEIR SURROUNDING VEGETATION ON THE TOP OF MT. RANTEMARIO, SULAWESI” “Ukuran Populasi Dua Spesies Vireya Rhododendron dan Vegetasi Sekitarnya di Puncak Gunung Rantemario, Sulawesi” 19(1): 57–66 Yohanes Purwanto “RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT” “Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park” 19(2): 105– 116 Yupi Isnaini “AKLIMATISASI DINI MASSA PROTALUS TUMBUHAN PAKU BAHAN OBAT (Cibotium barometz (L.) J. Sm.) HASIL KULTUR SPORA SECARA IN VITRO” “Prothalli Rapid Acclimatization of the Medicinal Fern Cibotium barometz (L.) J. Sm. obtained from In Vitro Culture of Spores” 19(2): 129–138

|v


Buletin Kebun Raya Vol. 19 No. 2, July 2016 [67–78] e-ISSN: 2460-1519 | p-ISSN: 0125-961X Review Article

A REVIEW OF THE BIOLOGY OF RAFFLESIA: WHAT DO WE KNOW AND WHAT’S NEXT? Review Biologi Rafflesia: Apa yang sudah kita ketahui dan bagaimana selanjutnya? Siti Nur Hidayati* and Jeffrey L. Walck Department of Biology, Middle Tennessee State University, Murfreesboro, TN 37132, USA *Email: [email protected] Diterima/Received: 29 Desember 2015; Disetujui/Accepted: 8 Juni 2016

Abstrak Telah dilakukan tinjauan literatur untuk meringkas informasi, terutama karya ilmiah yg baru diterbitkan, pada biologi Rafflesia. Sebagian besar publikasi terkini adalah pemberian nama species baru pada Rafflesia. Sejak tahun 2002, sepuluh spesies telah ditemukan di Filipina dibandingkan dengan tiga spesies di Indonesia. Karya terbaru filogenetik juga telah dieksplorasi (misalnya sejarah evolusi genus Rafflesia dan gigantisme, transfer horizontal gen dan hilangnya genom kloroplas) dan anatomi (misalnya endofit, pengembangan bunga); studi terbaru lainnya berfokus pada biokimia. Sayangnya, masih banyak informasi yang belum diketahui misalnya tentang siklus hidup, biologi dan hubungan ekologi pada Rafflesia. Kebanyakan informasi yang tersedia berasal dari hasil pengamatan. Misalnya penurunan populasi telah diketahui secara umum yang kadang kadang dikaitkan dengan kerusakan habitat atau gangguan alam tapi penyebab-penyebab yang lain tidak diketahui dengan pasti. Pertanyaan yang belum terjawab antara lain pada biologi reproduksi, struktur genetik populasi dan keragaman. Dengan adanya perubahan iklim secara global, kita amat membutuhkan studi populasi jangka panjang dalam kaitannya dengan parameter lingkungan untuk membantu konservasi Rafflesia. Keywords: Rafflesia, Indonesia, Biologi, konservation, review

Abstract A literature review was conducted to summarize information, particularly recently published, on the biology of Rafflesia. By far most of the recent papers on Rafflesia have named new species. Since 2002, ten species have been discovered in the Philippines compared to three species in Indonesia. Recent work also has explored phylogenetics (e.g. evolutionary history of the genus and of floral gigantism, horizontal transfer of genes and loss of the chloroplast genome) and anatomy (e.g. endophyte, flower development); other recent studies have focused on biochemistry. Unfortunately, we still know very little about the life cycle, biology and ecological relations of Rafflesia. Much of what we know comes from observations and not from experimental evidence. Population declines have been noted which are sometimes related to habitat destruction or natural

| 67

K. N. Tyas et al. Organogenesis Tunas Secara Langsung Pada Pamelo {Citrus maxima (Burm.) Merr.}

disturbances but other times the cause(s) are unknown. Questions remain unanswered on its reproductive biology and on its population genetic structure and diversity. With changing climates, we vitally need long-term population studies in relation to environmental parameters. Keywords: Rafflesia, Indonesia, Biology, conservation, review

INTRODUCTION Within the obligate holoparasitic plant family Rafflesiaceae, the genus Rafflesia attracts the most attention (Kupicha 1993; Meijer 1993; Nais 2001). This genus is restricted to tropical Southeast Asia – mostly Indonesia, Malaysia, and the Philippines. Its unusual growth habit – with no leaves, stems, or true roots and only a flower seen outside its host – produces the world’s largest flower, up to 1 m wide in R. arnoldii. Moreover, a single genus of plant – the vine Tetrastigma – serves as its host. Although the biology of Rafflesia has always fascinated scientists, there has been renewed interest in the genus over the past few years. New species have been discovered. Studies addressing issues such as the evolution of floral gigantism and endophyte anatomy have been published. All of this interest comes at a time when efforts for the conservation of Rafflesia are vitally important, with the pressing issues of climate change and tropical forest destruction. The purpose of this paper is to review the biology of Rafflesia, paying special attention to recent studies. We briefly summarize the literature that has been published on taxonomy, phylogenetics, morphology and anatomy, biochemistry, ecology and conservation biology for species in the genus. To this end, we highlight aspects of the biology of Rafflesia that critically need to be addressed and make recommendations for future studies.

TAXONOMY Meijer (1997) provided a comprehensive treatment of Rafflesia in Flora Malesiana. He listed 14 species: R. arnoldii R. Br. (R. arnoldii var. arnoldii), R. atjehensis Koord. [R. arnoldii var. atjehensis

|

68

(Koord.) Meijer], R. cantleyi Solms-Laubach, R. gadutensis Meijer, R. hasseltii Suringar, R. keithii Meijer, R. kerrii Meijer, R. manillana Teschemaker, R. micropylora Meijer, R. patma Blume, R. pricei Meijer, R. rochussenii Teijsm. & Binn., R. schadenbergiana Göpp., and R. tengku-adlinii Salleh & Latiff. Rafflesia zollingeriana Koord. was considered a form of R. patma by Meijer (1997), even though Koorders described the species in 1919 as distinct. In the treatment, Meijer (1997) also included five “incompletely known species”: R. borneensis Koord., R. ciliata Koord., R. titan Jack, R. tuan-mudae Becc., and R. witkampii Koord. These five species were considered to be incomplete due to the lack of wellpreserved specimens or a convincing type specimen, to a poor description, or to a description based on an immature bud. Nais (2001) re-instated R. tuanmudae, R. witkampii, and R. zollingeriana in his account on Rafflesia. Since Meijer’s (1997) treatment, many new species have been described from Indonesia, Malaysia, and the Philippines. Only one species is known from Thailand and one from Brunei (Meijer 1997), with no additional species having been found in these countries. Three species have been discovered in Indonesia, all from Sumatra: R. bengkuluensis Susatya, Arianto & Mat-Salleh (Susatya et al. 2005); R. meijeri Wiriadinata & Sari (Wiriadinata and Sari 2009); and R. lawangensis Mat-Saleh, Mahyuni & Susatya (Mat-Salleh et al. 2010). With Meijer (1997) and Nais (2001) assessments and the addition of these three new species, the total number of Rafflesia species in Indonesia is 14. In Malaysia, Meijer (1997) recognized six species: R. keithii, R. pricei, and R. tengku-adlinii found in Sabah and Sarawak and R. cantleyi, R. hasseltii, and R. kerrii in Peninsular Malaysia. Rafflesia hasseltii was regarded as endemic to

Buletin Kebun Raya Vol. 19 No.2, July 2016 [67–78]

Sumatra, Indonesia, until 1993 when it was discovered in Peninsular Malaysia (Wong and Latiff 1994). However, it would remain until 2002 for suitable specimens to be collected and studied. Upon further observation, Latiff and Wong (2003) distinguished R. azlanii Latiff & M. Wong with comparisons made to R. cantleyi and R. hasseltii. Due to flower similarity among these three species, they stated “…indeed Meijer in 2001 had hinted that the examples of the new species might be a natural hybrid between R. cantleyi and R. hasseltii.” Sofiyanti et al. (2007) examined eleven R. hasseltii flowers from Indonesia and Malaysia and found that the flower diameter, ratio of aperture to diaphragm, and coverage and density of warts (blotches) were very diverse. The most recent discoveries of Rafflesia from Malaysia are R. lima-lidah Wong & Gan (Wong and Gan 2008); R. su-meiae Wong, Nais & Gan (Wong et al. 2009); R. sharifah-hipsahiae Adam, Mohammed, Aizat-Juhari & Wan (Adam et al. 2013); and R. parvimaculata Sofiyanti, Mat-Salleh, Khairil, Zuhailah, Mohd. Ros & Burslem (Sofiyanti et al. 2016), bringing the total of number of species in Malaysia to 12. However, R. lima-lidah has not been formally described. Barcelona et al.’s (2002) discovery of R. speciosa Barcelona & Fernando from Panay Island was a historic event in the Philippines since the last Rafflesia identified from there was R. schadenbegiana in 1885 (Lays 2006) and until 2002 only two species were known (R. manillana, R. schadenbergiana) (Meijer 1997). The finding of R. speciosa was a turning point for Rafflesia discovery in the Philippines since several new species were recorded afterwards (Barcelona et al. 2009a). Rafflesia manillana was used to describe plants from Luzon and Samar by Meijer (1997), Nais (2001), and Fernando and Ong (2005). However, Madulid and Agoo (2007) re-examined these plants and concluded that the species in Samar was R. manillana while that in Luzon was new, R. panchoana Madulid, Buot & Agoo. Later, Pelser et al. (2013) resurrected and neotypified R. lagascae Blanco for the Luzon population named as R. panchoana. Rafflesia schadenbergiana was rediscovered by Lays (2006),

with no collections made, and then by Barcelona et al. (2008a), with a collection of a newly opened flower. Fernando and Ong (2005) revealed R. mira Fernando & Ong (syn. R. magnifica Madulid, Tandang & Agoo) from Mindanao. In 2006, Barcelona et al. reported a new species from southern Luzon naming it R. baletei Barcelona & Cajano and Galang and Madulid found R. lobata Galang & Madulid from Panay Island. In 2007, two separate teams (Barcelona et al. 2007; Madulid et al. 2007) identified R. philippensis Blanco (syn. R. banahawensis Madulid, Villariba & Agoo; R. banahaw Barcelona, Pelser & Cajano) from Luzon. Other new species have been recognized from northern Luzon by Barcelona et al. (2008b, 2009b), R. leonardi Barcelona & Pelser and R. aurantia Barcelona, Co & Balete, and from Mindanao, R. verrucosa Balete, Pelser, Nickrent & Barcelona (Balete et al. 2010) and R. mixta Barcelona, Manting, Arbolonio, Caballero & Pelser (Barcelona et al. 2014). Most notable, Galindon et al. (2016) described R. consueloae, the world’s smallest Rafflesia, on Luzon Island. The total number of species in the Philippines is 13. The total number of Rafflesia worldwide is about 36 taxa, with the highest number from Indonesia (14) and a nearly equal number from the Philippines (13) and Malaysia (12). The Philippines is leading the way in the most number of new species being described (11) since 2002. However, a small number of the 36 species are known from very poor specimens (e.g. only a bud), the taxonomic validity of a few species have been questioned, and some species have not been recorded for many years and might be extinct. Clearly, a current assessment of the known distribution and taxonomy of all species, particularly little known species, is urgently needed.

PHYLOGENETICS Based on mitochondrial DNA, recent studies place Rafflesiaceae as a member of Malpighiales (Barkman et al. 2004, 2007; Wurdack and Davis 2009). Phylogenetic studies have revealed that floral gigantism in Rafflesia was relatively recent and was rapid with floral diameter increasing an average of 20

| 69


cm/million years (Davis et al. 2007; Barkman et al. 2008; Davis 2008); that genes in Rafflesia may possibly have been horizontally transferred from the host Tetrastigma (Davis and Wurdack 2004; Molina et al. 2014; Krause 2015); the potential loss of the chloroplast genome (Molina et al. 2014); that the Indonesian, Bornean, Peninsular Malaysian and Philippine species are monophyletic (Bendiksby et al. 2010); and that a dramatic increase in diversification may be explained by Mid-Miocene to Pliocene rainforest experiencing favorable conditions as well as natural selection promoting character displacement in flower size (Bendiksby et al. 2010).

MORPHOLOGY AND ANATOMY Many studies have been carried out on the morphology and anatomy of Rafflesia (Justesen 1922; Olah 1960; Meijer 1958; Bouman and Meijer 1994; Bänziger 2004; Sofiyanti et al. 2007; Mursidawati 2012). Recent studies have illuminated fascinating aspects of the flower anatomy as well as the endophyte of Rafflesia. Using comparative studies of development and gene-expression patterns, Nikolov et al. (2013) showed that flowers of Rafflesia and Sapria are constructed very differently despite being morphologically very similar and are not homologous. Nikolov et al. (2014a) concluded that the endophyte develops from a proembryo and that the flowering shoot arises from the undifferentiated endophyte. The host does not react to the parasite except when the flower forms. In fact, they also suggested the possibility that the endophyte could be a commensal or mutually beneficial partner to its host. In addition, the surfaces of the floral apex and of the ovarial clefts are exposed secondarily during an extraordinary process of cell separation, which has not been documented in any other angiosperm (Nikolov et al. 2014b). Bouman and Meijer (1994) suggested that flower diameter and size of ovules were positively related among species. In contrast, Sofiyanti and Yen (2012) found no pattern between these variables for R. azlanii, R. cantleyi, R. hasseltii, and R. kerrii. In

|

70

their study, R. kerrii which has the largest flower among the four species had a smaller ovule than R. azlanii and R. cantleyi. Rafflesia seeds are usually chestnut-shaped and brown when fresh and about 500-1500 µm in size (Mursidawati 2012; Sofiyanti and Yen 2012).

BIOCHEMISTRY Only over the past eight years has the biochemistry and natural product chemistry of Rafflesia been explored. Plants of R. kerrii have been found to be rich in tannin (Kanchanapoom et al. 2007). Alkaloid (nicotine and caffeine) and phenolic (catechin, proanthocyanidin, phenolic acid) compounds have been detected in R. hasseltii (Sofiyanti et al. 2008; Zulkffle et al. 2014), and an antioxidant compound was detected from R. kerrii flower extract (Puttipan and Okonogi 2014). Extracts from R. hasseltii have been reported to be effective in accelerating wound healing (Abdulla et al. 2009). Furthermore, anti-microbial activity against Candida albicans was detected in an isolate of an endophytic fungus from R. cantleyi (Refaei et al. 2011).

ECOLOGY Buds and flowering High mortality rate is common in Rafflesia especially for buds that are less than 5 cm diameter and that grow on the ground (Meijer 1984; Hidayati et al. 2000; Galang 2007; Susatya 2007). The mortality can be due to natural disasters, human disturbances, high humidity/precipitation, insect infestations, trampling, predation, or resource limitation (Meijer 1985, 1997; Emmons et al. 1991; Zuhud et al. 1994; Hidayati et al. 2000; Nadia et al. 2012; Nikolov et al. 2014a). Justesen (1922) noted termites inside a dead bud of R. arnoldii; however, these buds may have already been dead before termites attacked them since he stated that termites would not attack healthy buds or immature fruits. Most flowers of Rafflesia are found on the ground attached to the vine Tetrastigma; however,


sometimes they are observed on a vine up in a tree. For instance, Galang (2007) recorded five flowers of R. lobata at 5 m, two at 7 m, and one at 10 m above the ground. In general, there is no distinct flowering season for Rafflesia. For example, R. arnoldii and R. patma have been observed flowering at any time of the year (Hidayati and Susatya, pers. obs.; Mursidawati et al. 2014). In contrast, flowering appears to be seasonal, coinciding with the hottest and driest time of the year for R. kerri as open flowers have been reported from January to March (Meijer and Elliott 1990). The ratio of male:female flowers in populations is high: 22:8 (27% female flowers) in R. keithii, 89:2 (36% female flowers) in R. pricei, 7:2 (50% female flowers) in R. tengku-adlinii (Nais 2001), 6:1 (14%) in R. Lobata (Galang 2007), and 15:1 (6%) in R. manillana (Yahya et al. 2010). Susatya (pers. comm.) observed seven locations of R. arnoldii for 3 years and found only two female flowers.

Pollination biology Typically, more buds than flowers are observed in populations of Rafflesia, wherein flowering is also asynchronous (Justesen 1922; Meijer 1958; Olah 1960; Beaman et al. 1988; Bänziger 1991). Being a dioecious plant, Rafflesia needs pollinators for fertilization to occur. There is strong evidence that in Rafflesia both olfactory and visual cues are necessary to attract and hold pollinators long enough to carry or to transfer the pollen (Beaman et al. 1988). Moreover, Patiño et al. (2002) found that R. tuan-mudae is an endothermic flower which plays a role in the mimicry of the flower to attract blowflies. Flies were seen visiting both male and female flowers (Justesen 1922; Meijer 1958; Beaman et al. 1988; Bänziger 1991). In addition, Beaman et al. (1988) stated that the size and color of a Rafflesia flower that contrasts with the environment is an “…adaptation that increases the likelihood that the flower will be discovered by pollinators.” Bänziger (1991) mentioned that pollination may occur between remote flowers that are blooming many days or weeks apart since flypollinators can travel a great distance in a few days. However, Nais (2001) found that pollen viability in R.

kerrii lasted only 72 hours. Nais (2001; see also Meijer 1997, Bänziger 2004) suggested that Rafflesia can produce seeds without fertilization, i.e. agamospermy, which is an issue that needs further study. Lucilia and Chrysomia were reported to be pollinators for R. pricei (Beaman et al. 1988), while Chrysomya, Lucilia, and Sarcophaga were found visiting R. kerrii (Bänziger 1991, 2004) and R. patma (Hidayati et al. 2000). Kahono et al. (2010) reported an additional five genera of flies visiting a female flower of R. patma. Seed dispersal and host infection The small seeds of Rafflesia are thought to have many possible dispersal agents like wild pigs, ground squirrels (Meijer 1958; Bouman and Meijer 1994; Zuhud et al. 1999; Nais 2001), ants, termites, pangolin (Justesen 1922; Kuijt 1969) and elephants (Kuijt 1969). Emmons et al. (1991) suggested that most likely it is small mammals that are the effective dispersal agents for Rafflesia seeds. They observed adult tree shrew (Tupaia tana) and adult plantain squirrel (Callosciurus notatus) feeding on a fruit of R. keithii. In contrast, Pelser et al. (2013) found numerous ants (Technomyrmex sp., Pheidologeton sp.) inside the fruit wall of R. philippensis. They suggested that ants might be attracted to an elaiosome on the Rafflesia seed and carry seeds away from the fruit to their nest. Here, the seed germinates and infects the root of nearby Tetrastigma. Justesen (1922) believed that infection most likely took place on the underground part of the vine host. Likewise, Bänziger (1991) suspected that soil fauna, mainly arthropods and nematodes, serve as the main agents for new host infection. Life cycle length Meijer (1997) estimated that the length of the life cycle of Rafflesia is 3-4.5 years. More detailed studies have shown that the life cycle length (from seed to seed) for R. patma spans ca. 3-4 years (Hidayati et al. 2000) and for R. arnoldii is 3.5-5 years (Susatya 2007). The development of R. rochussenii from visible bud to ripe fruit was ca. 2.5 years (Zuhud et al. 1994). Due to this prolonged nature of bud

| 71


development and low incidence of flowering study of the life cycle of Rafflesia is difficult.

CONSERVATION BIOLOGY Rarity Due to its parasitic mode of life and its dependence on a limited number of species of the vine Tetrastigma (Chen et al. 2011; Zakaria et al. 2016), Rafflesia is rare and prone to extinction. Other aspects of its biology also leads to its rarity and potential for extirpation: high flower bud mortality, rare pollination events (flowers not opening simultaneously, populations having one sex or having a large sex ratio imbalance), unsuccessful pollination and seed dispersal, long flower development (3-4 years), and highly fragmented populations (Justesen 1922; Meijer 1958; Olah 1960; Hidayati et al. 2000; Hikmat 2006; Galang 2007; Yahya et al. 2010; Nadia et al. 2012). Threats Populations of some Rafflesia, along with the host, are declining in protected and unprotected forests due to natural disasters, flower collection, logging, and shifting cultivation (Nais and Wilcock 1998; Zuhud et al. 1999; Hikmat 2006; Suwartini et al. 2008; Mursidawati et al. 2014). The main threat for Rafflesia populations is loss of habitat due to logging or to collection of firewood and to conversion of forests into housing or into plantation monocultures of rubber, palm oil, and fruit gardens (Meijer 1985; Hikmat 1988; Ismail 1988; Meijer and Elliot 1990; Bänziger 1991; Nais and Wilcock 1998). In fact, populations of some recently discovered species (e.g. R. lobata, R. manillana, R. philippensis) have been found in severely degraded or fragmented forests (Barcelona et al. 2009a). Direct human exploitation also is a contributing factor for Rafflesia rarity. Due to the conspicuous flowers that attract attention, people often cut them out of curiosity and in doing so also damage the host plants. People also collect buds or flowers because Rafflesia is believed to have medicinal properties and is used as a general tonic,

|

72

as a cure for fever or back ache, and for childbirth recuperation (Ismail 1988; Meijer and Elliott 1990; Hikmat 2006) or to increase women fertility (Zuhud et al. 1999). However, this last practice has not been used for a long time. Population declines Population declines have been noted for several species of Rafflesia, but the cause(s) of these declines are sometimes unknown. A site of R. kerri in Khao Sok Nature Reserve, Thailand visited in 1983 was not present in 1989 (Meijer and Elliott 1990). Three sites of R. arnoldii in Taba Penanjung, Bengkulu, Indonesia visited in 2003 did not contain plants in 2014 (Susatya, pers. comm.). Hikmat (2006) reported a rapid decline in populations of R. zollingeriana in East Java, Indonesia. In 1988, he recorded eight sites of this species along the coast of the Indian Ocean in Meru Betiri National Park. By 2003, only three sites contained plants: one site from the original eight and two new sites. Besides habitat destruction caused by a tsunami in 1994, Hikmat (2006) also noted harvesting of flower buds by local people. Suwartini et al. (2008) recorded 256 flower buds from five sites of R. patma in Pangandaran Nature Reserve, West Java, Indonesia in 1989 but only 96 from the same sites in 2007. Ex situ conservation Attempts to propagate Rafflesia for cultivation are certainly appealing, especially for conservation and for tourism attraction. However, there is little knowledge about how to inoculate host plants and germinate Rafflesia seeds. Attempts at germinating seeds in the laboratory or by placing them on living host plants and at tissue culture techniques have not been successful (Nais and Wilcock 1999; Mursidawati et al. 2014; Wicaksono et al. 2016). However, other attempts at inoculation have been successful (see Meijer et al. 1997; Vieldkamp 2007). Rafflesia patma and R. rochussenii growing on a host plant were successfully relocated to Bogor Botanical Garden in 1850, followed by R. arnoldii in 1856 (Meijer 1997; Vieldkamp 2007); recent relocations have not been successful for R. patma (Mursidawati et al. 2014). Recently, using grafting techniques R. patma flowered at the Bogor Botanical Garden (Mursidawati


et al. 2014; Wicaksono et al. 2016). Although pollination was not observed for the grafted plants at Bogor, manual pollination might be tried in the future (Bänziger 2004). In situ conservation Habitat preservation is an essential part of the conservation of Rafflesia. However, many politicians and community leaders believe that conservation actions for Rafflesia are impediments to economic development (Ismail 1988). Collaboration, in mutual trust and respect, between local stakeholders, community leaders, agency heads, and scientists, as well as emphasis on the importance of conservation via social networking and mass media will greatly strengthen initiatives (Lestari et al. 2014). For example, an information network employing village heads and local people was set up in Sabah to report discoveries of new populations of Rafflesia to researchers at the University Kebangsaan Malaysia Sabah Campus. After a few years, at least eleven new sites of Rafflesia were found as compared to three sites known before the network. Many Rafflesia populations occur outside of protected areas or designated parks, and thus, eco-tourism is used in conservation efforts to relieve visitation pressure in protected areas. Ecotourism is a viable option that provides an economic return to landowners (e.g. entrance fees) and does not destroy habitat (e.g. for farming) (Nais and Wilcock 1998; Yulian 2002) as long as it fits within the cultural norms of community access to forest resources (Doolittle 2005). However, establishing ecotourism has to be carefully planned (e.g. from landowner hospitality and travel agency participation, to souvenir manufacturing) and monitored since sites can be over-used to the detriment of Rafflesia (Barcelona et al. 2009a; Lestari et al. 2014).

CONCLUSIONS Progress has been made on the taxonomy, phylogenetics, morphology and anatomy, and biochemistry of Rafflesia; however, other aspects of

its biology remain poorly studied. Questions remain unanswered on its reproductive biology (such as agamospermy, seed dispersal and germination, and mode of host inoculation) and on its population genetic structure and diversity. Long-term monitoring of population dynamics as well as data on past and current distributions and status of populations are vitally needed. Preserving populations of Rafflesia and its host plant both outside (with eco-tourism) and inside of parks may become increasingly difficult with climate change. Yet, we know very little about the environmental conditions required for survival, growth, and reproduction of Rafflesia and its host. Efforts to involve local people in conservation strategies need to be continued as well as logistical and funding support for carefully planned ecotourism (e.g. construction of elevated walkways to reduce trampling). An education campaign (in schools and to the general public) on Rafflesia and its host would greatly help in conservation initiatives.

REFERENCES Abdulla, M.A., Ahmed, K.A., Ali, H.M., Noor, S.N., and S. Ismail. (2009). Wound healing activities of Rafflesia hasseltii extract in rats. Journal of Clinical Biochemistry and Nutrition 45: 304308. Adam, H.J., Mohamed, R., Jauhari, M.A.A., Nik Ariff, N.N.F., and Wan, K.L. (2013). Rafflesia sharifah-hapsahiae (Rafflesiaceae), a new species from Peninsular Malaysia. Turkish Journal of Botany 37: 1038-1044. Balete, D.S., Pelser, P.B., Nickrent, D.L., and Barcelona, J.F. (2010). Rafflesia verrucosa (Rafflesiaceae), a new species of smallflowered Rafflesia from eastern Mindanao, Philippines. Phytotaxa 10: 49-57. Bänziger, H. (1991). Stench and fragrance: unique pollination lure of Thailand's largest flower, Rafflesia kerrii Meijer. Natural History Bulletin of Siam Society 39: 19-52.

| 73


Bänziger, H. (2004). Studies on hitherto unknown fruits and seeds of some Rafflesiaceae, and a method to manually pollinate their flowers for research and conservation. Linzer Biologische Beitraege 36: 1175-1198. Barcelona, J.F. and Fernando, E.S. (2002) A new species of Rafflesia (Rafflesiaceae) from Panay Island, Philippines. Kew Bulletin 57: 647-651. Barcelona, J.F., Cajano, M.A.O., and Hadsall, A.S. (2006). Rafflesia baletei, another new Rafflesia (Rafflesiaceae) from the Philippines. Kew Bulletin 61: 231-237. Barcelona, J.F., Pelser, P.B., and Cajano, M.O. (2007). Rafflesia banahaw (Rafflesiaceae), a new species from Luzon, Philippines. Blumea 52: 345-350. Barcelona, J.F., Pelser, P.B., Tagtag, A.M., Dahonog, R.G., and Lilangan, A.P. (2008a). The rediscovery of Rafflesia schadenbergiana (Rafflesiaceae). Flora Malesiana Bulletin 14: 162-165. Barcelona, J.F., Pelser, P.B., Cabutaje, E.M. and Bartolome, N.A. (2008b). Another new species of Rafflesia (Rafflesiaceae) from Luzon, Philippines: R. leonardi. Blumea 53: 223-228. Barcelona, J.F., Pelser, P.B., Balete, D.S., and Co, L.L. (2009a). Taxonomy, ecology and conservation status of Philippine Rafflesia (Rafflesiaceae). Blumea 54: 77-93. Barcelona, J.F., Co, L.L., Balete, D.S., and Bartolome, N.A. (2009b). Rafflesia aurantia (Rafflesiaceae): A new species from northern Luzon, Philippines. Garden Bulletin of Singapore 61: 17-28. Barcelona, J.F., Manting, M.M.E., Arbolonio, R.B., Caballero, R.B., and Pelser, P.B. (2014). Rafflesia mixta (Rafflesiaceae), a new species from Surigao del Norte, Mindanao, Philippines. Phytotaxa 174: 272-278. Barkman, T.J., Lim, S.H., Mat Salleh, K., and Nais, J. (2004). Mithochondrial DNA sequences reveal the photosynthetic relatives of Rafflesia, the world’s largest flower. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 101: 787792.

|

74

Barkman, T., McNeal, J.R., Lim, S.H., Coat, G., Croom, H.B., Young, N.D., and de Pamphilis, C.W. (2007). Mitochondrial DNA suggest at least 11 origins of parasitism in angiosperms and reveals genomic chimerism in parasitic plants. BMC Evolutionary Biology 7: 248. Barkman, T.J., Bendiskby, M., Lim, S.H., Mat Salleh, K., Nais, J., Madulid, D., and Schumacher, T. (2008). Accelerated rates of floral evolution at the upper size limit for flowers. Current Biology 18: 1508-1513. Beaman, R.S., Decker, P.J., and Beaman, J.H. (1988). Pollination of Rafflesia (Rafflesiaceae). American Journal of Botany 75: 1148-1162. Bendiksby, M., Schumacker, T., Gussarova, G., Nais, J., Mat Salleh, K., Sofiyanti, N., Madulid, D., Smith, S.A., and Barkman, T. (2010). Elucidating the evolutionary history of the Southeast Asian, holoparasitic, giant-flowered Rafflesiaceae: pliocene vicariance, morphological convergence and character displacement. Molecular Phylogenetics and Evolution 57: 620-633. Bouman, F. and Meijer, W. (1994). Comparative structure of ovules and seeds in Rafflesiaceae. Plant Systematic and Evolution 193: 187-212. Chen, P., Chen, L., and Wen, J. (2011). The first phylogenetic analysis of Tetrastigma (Miq.) Planch., the host of Rafflesiaceae. Taxon 60: 499-512. Davis, C.C. (2008). Floral evolution: dramatic size change was recent and rapid in the world’s largest flowers. Current Biology 18: R1102R1104. Davis, C.C., and Wurdack, K.J. (2004). Host-toparasite gene transfer in flowering plants: phylogenetic evidence from Malpighiales. Science 305: 676-678. Davis, C.C., Latvis, M., Nickrent, D.L., Wurdack, D.J., and Baum, D.A. (2007). Floral gigantism in Rafflesiaceae. Science 315: 1812. Doolittle, A.A. (2005). Property and politics in Sabah, Malaysia: native struggles over land rights. University of Washington Press, Seattle.


Emmons, L.H., Nais, J., and Briun, A. (1991). The fruit and consumers of Rafflesia keithii (Rafflesiaceae). Biotropica 23: 197-199. Fernando, E.S. and Ong, P.S. (2005). The genus Rafflesia R.Br. (Rafflesiaceae) in the Philippines. Asia Life Sciences 14: 263-270. Galang, R. (2007). Population study of Rafflesia lobata in the northern section of the central Panay Island mountain ranges, Philippines. Folia Malaysiana 8: 87-98. Galindon J.M.M., Ong, P.S., and Fernando, E.S. (2016). Rafflesia consueloae (Rafflesiaceae), the smallest among giants; a new species from Luzon Island, Philippines. PhytoKeys 61: 37-46. Hidayati, S.N., Meijer, W., Baskin, J.M., and Walck, J.L. (2000). A contribution to the life history of the rare Indonesian holoparasite Rafflesia patma (Rafflesiaceae). Biotropica 32: 404-414. Hikmat, A. (2006). Kecenderungan populasi Rafflesia zolingeriana Kds. di Taman Nasional Meru Betiri, Jawa Timur (Population trend of Rafflesia zolingeriana Kds. in Meru Betiri National Park, East Java). Media Konservasi 11: 105-108. Ismail, G. (1988). Conservation of the giant Rafflesia in Sabah, Malaysia. Trends in Ecology and Evolution 3: 316-317. Justesen, P.T. (1922). Morphological and biological notes on Rafflesia flowers, observed in the highlands of mid-Sumatra. Annales du Jardin Botanique de Buitenzorg 32: 64-87. Kahono, S., Mursidawati, S., and Erniwati. (2010). Komunitas serangga pada bunga Rafflesia patma Blume (Rafflesiaceae) di luar habitat aslinya Kebun Raya Bogor Kota Bogor Provinsi Jawa Barat Indonesia. (Insects community on the flower of Rafflesia patma Blume (Rafflesiaceae) in its non-native habitat of Bogor Botanical Gardens, Bogor City, Province of West Java, Indonesia.) Jurnal Biologi Indonesia 6: 429-442.

Kanchanapoom, T., Kamel, M.S., Picheansoonthon, C., Luecha, P., Kasai, R., and Yamasaki, K. (2007). Hydrolyzable tannins and phenylpropanoid from Rafflesia kerrii Meijer (Rafflesiaceae). Journal of Natural Medicines 61: 478-479. Krause, K. (2015). Grand-scale theft: kleptoplasty in parasitic plants? Trends in Plant Science 20: 196-198. Kuijt, J. (1969). The Biology of Parasitic Flowering Plants. University of California Press, Berkeley. Kupicha, K.K. (1993). Rafflesiaceae. Pages 177-178 In: V.H. Heywood (ed.). Flowering Plants of the World. Updated edition. Oxford University Press, New York. Latiff, A. and Wong, M. (2003). A new species of Rafflesia from Peninsular Malaysia. Folia Malaysiana 4: 135-146. Lays, P. (2006). Rediscovery of floral jewel in the Philippines archipelago: Rafflesia schadenbergiana Göppert, 1885 (Rafflesiaceae). Lejeunia Revue de Botanique 182: 1-6. Lestari, D., Hikamat, A., and Zuhud, E.A.M. (2014). Conservation strategy of Rafflesia zollingeriana Koord. in Meru Betiri National Park, East Java. Jurnal Manajemen Hutan Tropika 20: 9-16. Madulid, D.A., Tandang, D.N., and Agoo, E.M.G. (2005). Rafflesia magnifica (Rafflesiaceae), a new species from Mindanao, Philippines. Acta Manilana 53:1-6. Madulid, D.A., Tolentino, C.V.C, and Agoo, E.M.G. (2006). Rafflesia banahawensis (Rafflesiaceae), a new species from Luzon, Philippines. Philippine Science 43: 43-51. Madulid, D.A. and Agoo, E.M.G. (2007). On the identity of Rafflesia manillana Teschem. (Rafflesiaceae). Philippine Scientist 44: 57-70. Madulid, D.A., Buot Jr., I.E.B., and Agoo, E.M.G. (2007). Rafflesia panchoana (Rafflesiaceae), a new species from Luzon Island, Philippines. Acta Manilana 55: 43-37.

| 75


Mat Salleh, K., Mahyuni, R., Susatya, A., and Veldkamp, J.F. (2010). Rafflesia lawangensis (Rafflesiaceae), a new species from Bukit Lawang, Gunung Leuser National Park, North Sumatra, Indonesia. Reinwardtia 13: 159-165. Meijer, W. (1958). A contribution to the taxonomy and biology of Rafflesia arnoldii in West Sumatra. Annales Bogorienses 3: 33-44. Meijer, W. (1984). New species of Rafflesia (Rafflesiaceae). Blumea 30: 209-215. Meijer, W. (1985). Saving the world's largest flower. National Geographic Magazine 168 (1): 136139. Meijer, W. (1993). Rafflesiaceae. Pages 557-563. In: K. Kubitzki (ed.). The Families and Genera of Vascular Plants. Springer, Berlin. Meijer, W. (1997). Rafflesiaceae. Flora Malesiana, Series I, Vol. 13: 1-42. Meijer, W., and Elliott, S. (1990). Taxonomy, ecology and conservation of Rafflesia kerrii Meijer in southern Thailand. Natural History Bulletin of Siam Society 38: 117-133. Molina, J., Hazzouri, K.M., Nickrent, D.L., Geisler, M., Meyer, R.S., Pentony, M.M., Flowers, J.M., Pelser, P.B., Barcelona, J.F., Inovejas, S.A., Uy, I., Yuan, W., Wilkins, O., Claire-Iphanise, M., Locklear, S., Concepcion, G.P., and Purugganan, M.D. (2014). Possible loss of the chloroplast genome in the parasitic flowering plant Rafflesia lagascae (Rafflesiaceae). Molecular Biology and Evolution 31: 793-805. Mursidawati, S. (2012). Morfologi buah dan biji Rafflesia patma dan R. arnoldii (Fruit and seed morphology of Rafflesia patma and R. arnoldii). Buletin Kebun Raya 15: 20-29. Mursidawati, S., Irawati, and Ngatari. (2014). Rafflesia patma (Rafflesiaceae): catatan tentang studi lapangan, budidaya, perkecambahan biji dan anatominya. (Rafflesia patma (Rafflesiaceae): notes on its field study, cultivation, seed germination and anatomy.) Buletin Kebun Raya 17: 9-14.

|

76

Nadia, W.A.Q., Siti-Munirah, M.Y., Zulhazman, H., and Razak, W. (2012). A preliminary study on the mortality rates of Rafflesia kerrii in the Lojing Highlands, Gua Musang, Kelantan, Malaysia. Proceedings of the Universiti Malaysia Terengganu11th International Annual Symposium on Sustainability Science and Management, 9-11 July 2012, Terengganu, Malaysia. Pp. 456-459. Nais, J. (2001). Rafflesia of the World. Sabah Park in association with Natural History Publications (Borneo), Kota Kinabalu. Nais, J. and C.C. Wilcock. (1998). The Rafflesia Conservation Incentive Scheme in Sabah, Malaysian Borneo. Sabah Parks Nature Journal 1: 9-17. Nais, J. and Wilcock, C.C. (1999). The propagation of Rafflesia and its host plant: prospect for ex-situ conservation. Sabah Park Nature Journal 2: 111-120. Nikolov, L.A., Endress, P.K., Sugumaran, M., Sasirat, S., Vessbutr, S., and Kramer, E. (2013). Developmental origins of the world’s largest flowers, Rafflesiaceae. Proceedings of the National Academy of Sciences, USA 110: 18578-18583. Nikolov, L.A., Tomlison, P.B., Manickam, S., Endress, P.K., Kramer, E.M., and Davis, C.C. (2014a). Holoparasitic Rafflesiaceae possess the most reduced endophytes and yet give rise to the world’s largest flowers. Annals of Botany 114: 233-242. Nikolov, L.A., Staedler, Y.M., Manickam, S., Schonenberger, J., Endress, P.K., Kramer, E.M., and Davis, C.C. (2014b). Floral structure and development in Rafflesiaceae with emphasis on their exceptional gynoecia. American Journal of Botany 101: 225-243. Olah, L.V. (1960). Cytological and morphological investigations in Rafflesia arnoldii R. Br. Bulletin of the Torrey Botanical Club 87: 406416.


Pelser, P.B., Nickrent, D.L., Callado, J.R.C., and Barcelona, J.F. (2013). Mt. Banahaw reveals: the resurrection and neotypification of the name Rafflesia lagascae (Rafflesiaceae) and clues to the dispersal of Rafflesia seeds. Phytotaxa 131: 35-40. Patiño, S., Aalto, T., Edwards, A.A., and Grace, J. (2002). Is Rafflesia an endothermic flower? New Phytologist 154: 429-437. Puttipan, R. and Okonogi, S. (2014). Antioxidant activity of Rafflesia kerrii flower extract. Drug Discovery and Therapeutics Journal 8: 18-24. Refaei, J., Jones, E.B.G., Sakayaroj, J., and Santhanam, J. (2011). Endophytic fungi from Raffleia cantleyi: species diversity and antimicrobial activity. Mycosphere 2: 429-447. Sofiyanti, N., and Yen, C.C. (2012). Morphology of ovule, seed and pollen of Rafflesia R.Br. (Rafflesiaceae). Bangladesh Journal of Plant Taxonomy 19: 109-117. Sofiyanti, N., Mat-Salleh, K., Purwanto, D., and Syahputra, E. (2007). The note on morphology of Rafflesia hasseltii Suringar from Bukit Tiga Puluh National Park, Riau. Biodiversitas 9: 257261. Sofiyanti, N., Wahibah, N.H., Purwanto, D., and Syahputra, E., and Mat-Salleh, K. (2008). Alkaloid and phenolic compound of Rafflesia hasseltii Suringar and its host Tetrastigma leucostaphyllum (Dennst.) Alston ex Mabb. in Bukit Tigapuluh National Park, Riau: a preliminary study. Biodiversitas 9: 17-20. Sofiyanti, N., Mat-Salleh, K., Mahmud, K., Mazlan, N., Hasein, M., and Burslem, D. (2016). Rafflesia parvimaculata (Rafflesiaceae), a new species of Rafflesia from Peninsular Malaysia. Phytotaxa 253: 207-213. Susatya, A. (2007). Taxonomy and ecology of Rafflesia in Bengkulu, Indonesia. PhD thesis, Universiti Kebangsaan, Malaysia. Susatya, A., Arianto, W., and Mat Salleh, K. (2005). Rafflesia bengkuluensis (Rafflesiaceae), a new species from south Sumatra, Indonesia. Folia Malaysiana 6: 139-152.

Suwartini, R., Hikmat, A., and Zuhud, E.A.M. (2008). Kondisi vegetasi dan populasi Raflesia patma Blume di Cagar Alam Leuweung Sancang. (Conditions of vegetation and population of Rafflesia patma Blume in Leuweng Sancang Nature Preserve.) Media Konservasi 13: 1-8. Vieldkamp, J.F. (2007). Some notes on the cultivation of Rafflesia. Flora Malesiana Bulletin 14: 50-53. Wicaksono, A., Mursidawati, S., Sukamto, L.A., and da Silva, J.A.T. (2016). Rafflesia spp.: propagation and conservation. Planta 244: 289-296. Wiriadinata, H., and Sari, R. (2010). A new species of Rafflesia (Rafflesiaceae) from north Sumatra. Reinwardtia 13: 95-100. Wong, M., and Latiff, A. (1994). Rafflesias of Peninsular Malaysia. Nature Malaysiana 19: 84-88. Wong, M., and Gan, F. (2008). Lima-lidah, a potentially new species of Rafflesia. Malayan Naturalist 62: 40-42. Wong, M., Nais, J., and Gan, F. (2009). Rafflesia sumeiae (Rafflesiaceae). Folia Malaysiana 10: 8998. Wurdack, K.J. and Davis, C.C. (2009). Malpighiales phylogenetics: gaining ground on one of the most recalcitrant clades in the Angiosperm tree of life. American Journal of Botany 96: 1551-1570. Yahya, A.F., Hyun, J.O., Lee, J.H., Sun, B.Y., and Lapitan, P.G. (2010). Distribution pattern, reproductive biology, cytotaxonomic study and conservation of Rafflesia manillana in Mt. Makiling, Laguna, Philippines. Journal of Tropical Forest Science 22: 118-126. Yulian, Hermawan, B., Okuda, N., and Fujime, Y. (2002). Studies on Rafflesia flower in Bengkulu, Indonesia. Technical Bulletin of the Faculty of Agriculture, Kagawa University 54: 35-40.

| 77


Zuhud, E.A.M., Hikmat, A., and Nugroho, Y.A.F. (1994). Eksplorasi ekologi R. rochussenii T. et Binn. Untuk kegiatan konservasi dan penangkarannya di Gunung Salak. (Exploration on the ecological characteristics of Rafflesia rochussenii T. et Binn. for its conservation and cultivation in Gunung Salak.) Media Konservasi 14: 9-22. Zuhud, E.A.M., Hernidiah, N., and Hikmat, A. (1999). Pelestarian Rafflesia hasseltii Suringar di Taman Nasional Bukit Tigapuluh Riau-Jambi (Conservation of Rafflesia hasseltii Suringar in Bukit Tiga National Park, Riau-Jambi.) Media Konservasi 6: 23-26.

|

78

Zakaria, W.N.F.W., Puad, A.S.A., Geri, C., Zainudin, R., and Latiff, A. (2016). Tetrastigma diepenhorstii (Miq.) Latiff (Vitaceae), a new host of Rafflesia tuan-mudae Becc. (Rafflesiaceae) in Borneo. Journal of Botany Article ID 3952323. Zulkffle, M.A., Osman, N.S., Yusoff, Z., Kamal, M.L., and Tajam, J. (2014). Identification of alkaloid compound and antioxidant activity of Rafflesia cantleyi and its host, Tetrastigma tuberculatum. The Open Conference Proceeding Journal 5: 18-20.


Buletin Kebun Raya Vol. 19 No. 2, Juli 2016 [79–90] e-ISSN: 2460-1519 | p-ISSN: 0125-961X Research Article

MORFOLOGI DAN VIABILITAS POLEN PADA DUA SPESIES BELIMBING HUTAN (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala) Pollen morphology and viability of two wild starfruit species (Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala) Kapsah1, Dorly2 dan Inggit Puji Astuti1* 1

Departemen Biologi, Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB Jalan Agatis, Gedung Fapet, Wing 1, Lantai 5, Kampus IPB Bogor 16680 2 Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya Bogor, LIPI Jl. Ir. H. Juanda 13, Bogor 16003 *Email: [email protected] Diterima/Received: 9 Maret 2015; Disetujui/Accepted: 16 Juni 2016

Abstract Wild starfruit Averrhoa dolichocarpa and A. leucopetala belong to Oxidaceae family. Both of these species are known as wild startfruit. Usage these species as a fruit or medicine are not discover yet. A number of flowers aborted during pre and at anthesis. As a result the flower failed to produce a fruit. The aims of the research were to study the pollen morphology and viability at a day before anthesis (H-1) and at anthesis (H0) stadia by the method of germination in the Brewbaker and Kwack (BK) and 10% sucrose media. The pollen shape of the wild starfruit (A. dolichocarpa and A. leucopetala) is globose with three aperture or tricolpate. Polen with smooth surfaces is A. leucopetala and polen with rogh surfaces is A. dolicocarpha, also included into the group of medium-type pollen. Preliminary study showed that the optimum incubation time of pollen germination test was 16 hours. BK medium showed a better result for germination test instead of 10% sucrose with viability 68.4% and 54.6%, respectively. Pollen viability of wild starfruit at H0 stadia (65.29%) was higher than pollen viability at H-1 stadia (57.68%) except on A. dolichocarpa that grow in the slopes on long filaments in both of BK and 10% sucrose media. Pollen viability of wild starfruit on long filaments were higher than on the short filaments i.e. 62.5% and 60.5%, respectively. Keywords: starfruit, pollen viability, in vitro germination

Abstrak Belimbing hutan Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala merupakan jenis belimbing yang termasuk ke dalam famili Oxalidaceae. Kedua jenis belimbing ini diketahui sebagai belimbing liar. Pemanfaat jenis ini sebagai buah dan obat belum diketahui. Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari morfologi dan viabilitas polen pada bunga sehari sebelum mekar (H-1) dan bunga mekar (H0) dengan metode pengecambahan dalam media Brewbaker and Kwack (BK) dan sukrosa 10%. Bentuk polen pada belimbing hutan adalah bulat dengnan

| 79

K. Kapsah, et al. Morfologi dan Viabilitas Polen pada Dua Spesies Belimbing Hutan (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala)

memiliki tiga aperture atau trikolpata. Polen dengan permukaan halus pada A. leucopetala dan tidak rata pada A. dolicocarpa serta termasuk ke dalam kelompok polen tipe medium. Hasil penelitian pendahuluan diperoleh bahwa waktu inkubasi optimum untuk uji perkecambahan polen adalah 16 jam. Viabilitas polen dalam media BK lebih tinggi dibanding dengan media sukrosa 10% yaitu masing-masing 68,4% and 54,6%. Nilai viabilitas polen belimbing hutan stadia H0 (65,29%) lebih tinggi dibandingkan viabilitas polen belimbing hutan stadia H-1 (57,68%) kecuali pada A. dolichocarpa yang di tanam di lereng pada filamen panjang, baik pada media BK maupun media sukrosa 10%. Viabilitas polen belimbing hutan pada filamen panjang lebih tinggi dibandingkan dengan filamen pendek yaitu berturut-turut 62,5% dan 60,5%. Kata kunci : belimbing hutan, pengecambahan in vitro, viabilitas polen

PENDAHULUAN Belimbing (Averrhoa spp) merupakan salah satu marga dari suku Oxalidaceae. Corner (1940) melaporkan bahwa marga ini berasal dari kawasan Malaya yang kemudian tersebar luas ke seluruh daerah tropika. Sampai tahun 2007, marga ini hanya diketahui mempunyai anggota dua jenis saja yaitu Averrhoa bilimbi L. dan A. carambola L. (Payal et al., 2012). A. bilimbi atau dikenal dengan beberapa sebutan nama lokal seperti belimbing buluh, belimbing wuluh, calincing, dan belimbing asem mempunyai buah yang asam rasanya. Corner (1940) melaporkan belimbing wuluh/buluh ini berasal dari Malaysia. Namun, Roy et al. (2011) menginformasikan bahwa belimbing wuluh/buluh ini berasal dari Indonesia dan Malaysia. Belimbing wuluh yang berada di kawasan wilayah Amerika Selatan, kemungkinan berasal dari Maluku yang selanjutnya dibawa ke Jamaica melalui Pulau Timor pada tahun 1793 (Roy et al., 2011). A. carambola atau yang dikenal dengan sebutan belimbing manis dilaporkan berasal dari Sri Lanka dan Maluku (Indonesia) yang kemudian tersebar luas ke daratan Asia Selatan dan Malaysia serta ke beberapa Negara lainnya (Dasgupta et al., 2013). Hal ini menunjukkan bahwa Indonesia sebagai daerah asal tanaman ini. Tahun 1985, Tim gabungan Peneliti Pusat Penelitian Biologi dan Kebun Raya LIPI menemukan belimbing hutan dari Cycloops Papua dengan nomor koleksi MR 259. Tanaman ini selanjutnya dikoleksi dan ditanam di Kebun Raya

80

|

Bogor tahun 1988 dengan nama Averrhoa sp. Tahun 1997, tanaman ini diidentifikasi oleh Dr. Max van Balgoy dengan nama A. bilimbi. Tahun 2002, Tim Eksplorasi Kebun Raya Bogor berhasil mengoleksi belimbing (Averrhoa sp.) di kawasan hutan konservasi Cagar Alam Panua Kabupaten Boalemo, Provinsi Gorontalo dengan nomor koleksi IP 398 dan ditanam sebagai tanaman koleksi tahun 2007 di Kebun Raya Bogor. Kedua jenis belimbing dari Papua dan Gorontalo tersebut kemudian dipublikasikan sebagai jenis baru oleh Rugayah dan Sunarti (2008). Jenis yang berasal dari Papua diberi nama A. dolicocarpa Rugayah & Sunarti, sedangkan yang berasal dari Gorontalo diberi nama A. leucopetala Rugayah & Sunarti. A. bilimbi dan A. carambola sudah dikenal dan banyak dimanfaatkan oleh masyarakat, sebagai buah segar, diolah atau sebagai obat. Buah A. bilimbi merupakan obat anti diabetes, anti bakteri dan anti kolesterol (Roy et al., 2011). Ekstrak buah belimbing manis (A. carambola) merupakan obat anti bakteri, analgetik (penghilang rasa sakit) dan anti kanker (Singh et al., 2014; Das & Ahmed, 2012; Das & Ahmed 2012). Biologi dan kegunaan kedua jenis belimbing hutan A. dolicocarpa dan A. leucopetala belum banyak diketahui. Berdasarkan morfologi buahnya yang mirip A. bilimbi adalah A. dolichocarpa serta peralihan antara A. bilimbi dan A. carambola adalah A. Leucopetala (Rugayah & Sunarti 2008) serta buah memiliki rasa asam, berpotensi untuk dimanfaatkan sebagai substitusi maupun komplemen A. bilimbi. Dengan demikian, kajian yang terkait dengan fenologi perbungaan dan pembuahannya perlu diteliti.

Buletin Kebun Raya Vol. 19 No.2, Juli 2016 [79–90]

Penelitian tentang fenologi pembungaan A. dolichocarpa dan A. leucopetala telah dilaporkan oleh Mangunah et al. (2013), sehingga ciri morfologi bunga stadia satu hari sebelum bunga mekar atau antesis (H-1) dan bunga stadia saat antesis (H0) sudah diketahui. Stadia H-1 dijumpai ujung petal mulai tampak keluar dari sepalnya, sedangkan stadia H0 petal sudah terlihat jelas keluar dari sepalnya. Bunga A. dolichocarpa memiliki petal yang berwarna merah muda dengan bagian putih di tepi dan pangkalnya, sepal berwarna hijau dengan garis merah muda di tepi, selain itu juga filamen sudah dipenuhi serbuk sari berwarna putih. Bunga A. leucopetala memiliki petal yang berwarna putih, filamen dipenuhi serbuk sari berwarna kuning. Tingkat kerontokan bunga A. dolichocarpa dan A. leucopetala pada fase pra antesis (sebelum bunga mekar) dan fase antesis cukup tinggi, sehingga tingkat keberhasilan perkembangan bunga sampai menjadi buah relatif kecil. Tingkat keberhasilan perkembangan bunga sampai menjadi buah dipengaruhi oleh banyak faktor, diantaranya adalah sistem penyerbukan dan fertilitas polen (Rahman et al., 2011). Menurut Safitri et al. (2011), Oxalidaceae memiliki bunga heterostili dengan tipe distili yaitu memiliki filamen panjang dan filamen pendek. Rahmah (2007) melaporkan bahwa tipe distili ditemukan pada juga bunga A. bilimbi dan A. carambola. Tanaman dengan bunga yang memiliki tipe distili menurut Ornelas et al. (2004) hanya dapat menghasilkan buah jika penyerbukannya terjadi dari bunga yang lain. Hal ini berhubungan dengan tingkat fertilitas polen dan strategi penyerbukan (Naiki & Kato, 1999). Namun demikian, hubungan antara fertilitas polen dengan masa antesis kedua jenis belimbing hutan tersebut belum dilakukan. Penelitian ini bertujuan untuk mempelajari morfologi dan viabilitas polen A. dolichocarpa dan A. leucopetala sekitar waktu antesis dengan uji perkecambahan menggunakan media Brewbaker and Kwack (BK) dan sukrosa 10%.

BAHAN DAN METODE Penelitian ini dilaksanakan pada bulan Februari hingga Juni 2014. Pengambilan sampel dilakukan di Kebun Raya Bogor. Uji perkecambahan

polen dilakukan di Laboratorium Treub Kebun Raya LIPI (Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia). Bahan tanaman yang digunakan adalah bunga dan polen dari belimbing hutan koleksi Kebun Raya Bogor. Bunga yang diambil adalah bunga sehari sebelum mekar (H-1) dan saat mekar (H0). Sebanyak 10 cluster bunga diambil dari dua individu pohon A. dolichocarpa yang ditanam di pembibitan dan dua individu pohon A. dolichocarpa yang ditanam di kebun koleksi asal Papua serta dua individu pohon A. leucopetala asal Gorontalo. Pengamatan Morfologi Bunga Morfologi bunga belimbing hutan diamati berdasarkan posisi pistil terhadap filamen yang belum dilaporkan pada penelitian Mangunah et al. (2013). Pengamatan bunga dilakukan menggunakan mikroskop stereo. Pengamatan Morfologi Polen dengan SEM Struktur polen belimbing hutan diamati dengan menggunakan mikroskop SEM. Polen dikeringkan secara alami lalu direkatkan pada specimen stub menggunakan selotape karbon. Permukaan polen kemudian dilapisi (coating) dengan emas, kemudian diamati dengan SEM Variabel yang diamati yaitu struktur eksternal, bentuk, tipe dan jumlah apertur pada polen. Pengamatan Diameter Polen dengan Mikroskop Cahaya Pengukuran diameter polen dilakukan dengan menggunakan mikroskop cahaya yang dilengkapi dengan mikrometer pada lima bidang pandang dari setiap gelas obyek. Pengukuran pada tiap bidang pandang dilakukan terhadap 35 polen secara acak yang mengacu pada penelitian Wahyudin (1999). Pengamatan Viabilitas Polen Pengamatan viabilitas polen berupa uji perkecambahan in vitro menggunakan dua media yaitu sukrosa 10% dan media Brewbaker & Kwack (BK) yang terdiri atas sukrosa 10%, H3BO4 100 ppm, Ca(NO3)2.4H2O 300 ppm, MgSO4.7H2O 200 ppm, dan KNO3 100 ppm dalam 1000 mL akuades. Media perkecambahan terlebih dahulu diadaptasi dengan

| 81


suhu AC 24oC. Pengambilan polen dilakukan pada pukul 07.00-08.00. Sampel bunga untuk masingmasing individu pohon adalah 10 perbungaan, kemudian diambil satu bunga stadia H-1 dan satu bunga stadia H0. Masing-masing bunga ditempatkan di dalam cawan petri yang telah dilapisi tisu basah. Berdasarkan pengamatan pada bagian bunga, stamen A. dolichocarpa dan A. leucopetala terdiri atas lima filamen panjang dan lima filamen pendek. Polen bunga A. dolichocarpa dan A. leucopetala stadia H-1 dan H0 dari tiap bunga dibedakan antara sumber polen dari filamen panjang dan filamen pendek. Polen yang bersumber dari lima filamen panjang dicampur menjadi satu preparat amatan, demikian juga dengan polen yang bersumber dari filamen pendek. Polen yang akan dikecambahkan dimasukkan ke dalam media BK, atau sukrosa 10% yang telah diteteskan pada gelas obyek. Gelas obyek kemudian diletakkan di dalam cawan petri yang telah dilapisi tisu basah yang ditetesi akuades sekitar 1 ml, sehingga tercipta kondisi yang lembab. Cawan petri kemudian ditutup dan diinkubasi selama 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 16 dan 17 jam hingga diperoleh waktu optimum bagi polen untuk berkecambah. Perkecambahan polen diamati dibawah mikroskop cahaya yang dilengkapi dengan mikrometer dan Optika Vision Lite 2.1. Pengamatan untuk menentukan waktu optimum dan pengukuran tabung polen dilakukan secara acak pada lima bidang pandang. Polen dikategorikan normal berkecambah apabila panjang tabung polen sudah mencapai minimal sama dengan diameter polen tersebut. Pengukuran tabung polen untuk masing-masing bidang pandang dilakukan terhadap 10 polen secara acak. Persentase viabilitas polen mengacu pada rumus yang digunakan oleh Dafni (1992): Viabilitas =

(1)

Uji Perkecambahan Polen Secara In Vitro Pengambilan sampel polen yang digunakan untuk perkecambahan in vitro pada percobaan

82

|

utama sama seperti pada percobaan pendahuluan. Pengamatan viabilitas polen dan pengukuran panjang tabung polen dilakukan di lima bidang pandang secara acak pada saat optimum setelah 16 jam polen dikecambahkan. Persentase perkecambahan dihitung pada saat waktu optimum perkecambahan polen A. dolichocarpa dan A. Leucopetala dengan mengacu kepada penelitian Wahyudin (1999).

HASIL DAN PEMBAHASAN Morfologi Bunga Bunga A. dolicocarpa merupakan bunga majemuk dengan susunan bunga yang rapat penuh terdiri lebih dari 10 bunga (kluster) muncul di batang utama atau percabangan (Astuti & Rugayah, 2009). Bunganya memiliki kelopak berwarna coklat kekuningan dan mahkota bunganya berwarna putih di bagian tepi dan berwarna merah muda dengan pola garis-garis ungu di bagian tengahnya (Rugayah & Sunarti, 2008). Bunga A. leucopetala adalah bunga majemuk yang terdiri dari beberapa bunga (kluster) yang muncul di batang utama, percabangan dan kadang-kadang diketiak daun (Astuti & Rugayah, 2009). Bunganya memiliki kelopak berwarna hijau pucat dan mahkota bunga berwarna putih (Rugayah & Sunarti, 2008). Pengamatan morfologi pada semua sampel bunga menunjukkan bahwa bunga belimbing hutan memiliki bunga sempurna dan berumah satu. Semua bunga A. dolichocarpa dan A. leucopetala memiliki lima filamen panjang dan lima filamen pendek. Berdasarkan posisi pistil terhadap filamen, pada bunga A. dolichocarpa ditemukan tipe pistil yang berbeda (tipe distili) yaitu pistil panjang yang ditemukan pada bunga A. dolichocarpa di pembibitan dan pistil pendek ditemukan pada A. dolichocarpa yang ditanam di kebun koleksi, sedangkan A. leucopetala memiliki pistil pendek (Gambar 1).


c

a

a b

a

c

c

b

b

(b)

(a)

(c)

Gambar 1. Variasi letak pistil dan stamen pada belimbing hutan yang ditanam di Kebun Raya Bogor (a) Averrhoa dolichocarpa pembibitan (b) A. dolichocarpa lereng (c) A. leucopetala (Keterangan : a = filamen panjang, b = filamen pendek, c = stigma) Hasil pengamatan pada anter bunga belimbing hutan, menunjukkan bahwa sebagian anter pada stadia bunga H-1 sudah mengalami antesis. Anter stadia bunga H0 sekitar pukul 07.00 sudah pecah, baik anter pada filamen panjang maupun filamen pendek. Ini disebabkan karena aktivitas bunga mekar terjadi sekitar pukul 04.00 sampai 06.00 pagi. Kondisi ini menginformasikan bahwa bunga Averrhoa mempunyai sensitifitas pada kondisi suhu rendah dan kelembaban malam hari menjelang pagi untuk menstimulus aktivitas mekarnya bunga (Mangunah, 2013). Kondisi ini sesuai dengan pernyataa van Doorn, W.G. & U. van Meeteren (2003) yang menginformasikan bahwa mekarnya bunga dimalam hari itu berkaitan dengan berkurangnya temperature dan intensitas cahaya serta meningkatnya kelembaban udara. Morfologi Polen Hasil pengamatan pada polen dengan SEM menunjukkan bahwa polen pada belimbing hutan

berbentuk bulat, memiliki tiga aperture (trikolpata) dan permukaan halus pada A. leucopetala dan tidak rata pada A. dolicocarpa (Tabel 1, Gambar 2). Erdtman (1972) menjelaskan bahwa suku Oxalidaceae memiliki tipe polen trikolpata yang memiliki tiga kerutan memanjang dengan sudut tegak lurus terhadap bidang ekuator. A. dolichocarpa di pembibitan memiliki diameter polen rata-rata untuk filamen panjang 34,75 ± 3,88 μm, sedangkan diameter rata-rata dari filamen pendek adalah 27,70 ± 1,21 μm. Kisaran ukuran diameter polen belimbing hutan ini menurut Fahn (1982) termasuk kelompok polen tipe medium (25-50 μm). Hal ini menunjukkan bahwa diameter polen pada filamen panjang memiliki ukuran rata-rata lebih besar jika dibandingkan dengan polen pada filamen pendek. Pola tersebut juga dimiliki oleh belimbing buluh (A. bilimbi) yang diameter polen dari filamen panjang lebih besar dibandingkan diameter pada polen filamen pendek yaitu masing-masing 27, 7 μm dan 24,9 μm (Safitri et al., 2011).

Tabel 1. Morfologi polen belimbing hutan dengan SEM Spesies

Bentuk

Bentuk apertur

Jumlah apertur

Permukaan polen

A. dolichocarpa

Bulat

Kolpata

3

Tidak rata

A. leucopetala

Bulat

Kolpata

3

Halus

| 83


a

b

c

d

Gambar 2. Morfologi polen hasil SEM : (a) A. dolichocarpa tunggal (b) Kumpulan polen A. dolichocarpa (c) A. leucopetala tunggal (d) Kumpulan polen A. leucopetala. bar = 10 µm

Uji Viabilitas Polen dengan perkecambahan In Vitro Hasil pengamatan perkecambahan polen belimbing hutan yang dikecambahkan pada media BK dan sukrosa 10% dari stadia bunga H-1 dan H0 menunjukkan bahwa tabung polen tumbuh semakin memanjang setiap jamnya, dan mencapai maksimum setelah diinkubasi selama 16 jam (Gambar 3 dan 4). Setelah polen diinkubasi selama 17 jam terlihat tabung polen mengalami lisis atau hancur karena selaput plasmanya rusak. Terjadinya lisis pada tabung polen belimbing hutan karena waktu inkubasinya kelamaan serta kondisi dalam massa tabung polen tidak sama dengan kondisi massa dari media kecambah sehingga tabung polennya pecah, atau rusak (Perveen, 2007). Oleh karena itu, waktu optimum yang digunakan untuk inkubasi pada penelitian berikutnya adalah selama 16 jam. Waktu optimum ditentukan ketika sebagian besar polen dalam gelas obyek telah berkecambah dan sebelum tabung polen mengalami lisis. Waktu optimum 16 jam tersebut dikarenakan suhu dan kelembaban disekitar polen saat itu sebagai faktor utama perilaku polen pada kondisi optimal dan tabung polen belum pecah (Perveen, 2007). Pertumbuhan panjang tabung

84

|

tiap jam pada media BK menunjukkan panjang tabung yang lebih panjang dibandingkan dengan polen yang dikecambahkan pada media sukrosa 10%. Setelah 16 jam diinkubasi panjang tabung polen pada media BK berkisar antara 300-400 µm, sedangkan pada media sukrosa 10% berkisar antara 100-200 µm Hal ini terkait dengan komposisi media BK yang lebih komplek, karena disamping mengandung sukrosa 10% juga mengandung kalsium nitrat, magnesium sulfat dan kalium nitrat yang berperan memacu pertumbuhan tabung polen menjadi lebih panjang (Kavand et al., 2014) Pertumbuhan panjang tabung polen belimbing hutan stadia bunga H0 tiap jam lebih panjang bila dibandingkan dengan polen stadia bunga H-1 (Gambar 5 dan 6). Hal ini kemungkinan disebabkan polen pada stadia H-1 tersebut belum matang atau dewasa dibanding polen yang diambil saat bunga mekar (H0). Hal yang sama dijumpai pada polen Aesynanthus radicans var ‘Monalisa’ (Ulfah et al., 2016). Polen A. dolichocarpa yang ditanam di kebun koleksi menghasilkan panjang tabung tertinggi pada stadia bunga H0 maupun H-1 baik dalam media BK maupun sukrosa 10% dibandingkan polen dari tanaman lainnya yang diuji dalam penelitian ini.


Gambar 3.

Panjang tabung polen belimbing hutan (Averrhoa spp) pada stadia H-1 pada media BK, (D1 = A. dolichocarpa di pembibitan, D2 = A. dolichocarpa di kebun koleksi, L = A. leucopetala, H-1 = bunga sehari sebelum mekar, PJG = Filamen panjang, PDK = Filamen pendek. Pengamatan dilakukan pada jam 1-7 dan jam ke 16).

Gambar 4.

Panjang tabung polen belimbing hutan (Averrhoa spp) pada stadia bunga H-1 di media sukrosa 10%. (D1 = A. dolichocarpa di pembibitan, D2 = A. dolichocarpa di kebun koleksi, L = A. leucopetala, H-1 = bunga sehari sebelum mekar, PJG = Filamen panjang, PDK = Filamen pendek. Pengamatan dilakukan pada jam 1-7 dan jam ke 16).

| 85


Gambar 5. Panjang tabung polen belimbing hutan (Averrhoa spp) pada stadia bunga H0 di media BK, (D1 = A. dolichocarpa di pembibitan, D2 = A. dolichocarpa di kebun koleksi, L = A. leucopetala, H0 = bunga antesis, PJG = Filamen panjang, PDK = Filamen pendek. Pengamatan dilakukan pada jam 1-7 dan jam ke 16).

Gambar 6. Panjang tabung polen belimbing hutan (Averrhoa spp) pada stadia bunga H-1 pada media sukrosa 10% (D1 = A. dolichocarpa di pembibitan, D2 = A. Dolichocarpa di kebun koleksi, L = A. leucopetala, H0 = bunga antesis, PJG = Filamen panjang, PDK = Filamen pendek. Pengamatan dilakukan pada jam 1-7 dan jam ke 16). Viabilitas polen belimbing hutan, pada media Brewbaker dan Kwack lebih tinggi dibanding media sukrosa 10%. Nilai persentase perkecambahan belimbing hutan tertinggi didapati pada polen A. dolichocarpa yang tumbuh di kebun koleksi pada filamen pendek stadia H0 menggunakan media BK dengan persentase viabilitas sebesar 75,12%, sedangkan nilai persentase viabilitas belimbing hutan terendah dijumpai pada polen A. dolichocarpa di kebun koleksi filamen pendek H-1 menggunakan media sukrosa 10% dengan persentase viabilitas sebesar 36,12%. Viabilitas polen belimbing hutan

86

|

pada stadia H0 lebih tinggi dibandingkan viabilitas polen pada stadia H-1 kecuali pada A. dolichocarpa di kebun koleksi filamen panjang (Gambar 7). Hal yang sama juga dijumpai pada tanaman melon (Agustin et al., 2014), Citrullus lanatus (Khan & Perveen, 2010), Aeschynanthus radicans var” Monalisa” (Ulfah et al., 2016) dan Praecitrullus fistulosus (Perveen & Ali, 2011). Viabilitas polen yang lebih rendah pada bunga sehari sebelum mekar kemungkinan disebabkan polen tersebut belum matang dan tingkat kematangan polennya masih tendah sehingga polen yang berkecambah sedikit


Perkecambahan polen belimbing hutan menggunakan media BK yang mengandung asam borat sebanyak 100 ppm, menunjukkan adanya peningkatan perkecambahan polen secara in vitro. Boron berperan memacu penyerapan gula, meningkatkan pengambilan oksigen dan berperan dalam sintesis pektat sebagai komponen dinding tabung polen sehingga dapat memacu perkecambahan dan pertumbuhan tabung polen (Ahmad et al., 2012). Boron dan kalsium nitrat merupakan elemen yang penting dalam perkecambahan polen (Mortazavi et al., 2010). Dey et al. (2016), melaporkan bahwa penambahan 50 ppm garam kalsium nitrat dalam media campuran sukrosa dan asam borat dapat meningkatkan perkecambahan polen pada tanaman Mitragyna parvifolia (Roxb.) Korth sampai 90%. Ion Ca berperan dalam metabolisme sel dan juga berperan penting dalam menjaga integritas dan

permeabilitas membran (Brewbaker & Kwack, 1964). Selain Ca, asam borat dan sukrosa 10%, media BK juga mengandung MgSO4.7H2O sebanyak 200 ppm, KNO3 sebanyak 100 ppm. Brewbaker dan Kwack (1964) melaporkan bahwa ion magnesium dan kalium juga berperan dalam memacu perkecambahan polen dan pemanjangan tabung polen. Viabilitas polen belimbing hutan pada filamen panjang lebih tinggi dibandingkan dengan filamen pendeknya. Safitri et al. (2011) melaporkan hal yang sama pada belimbing buluh (A. bilimbi). Tingginya viabilitas polen belimbing hutan pada filamen panjang kemungkinan disebabkan oleh tingginya tingkat kematangan polenmya. Hal ini didukung oleh pendapat Bhojwani dan Bathnagar (1999) yang menyatakan bahwa semakin tinggi tingkat kematangan polen maka persentase perkecambahannya semakin tinggi.

Gambar 7. Viabilitas polen belimbing hutan (Keterangan : D1 = A. dolichocarpadi pembibitan, D2 = A. dolichocarpa di lereng, L = A. leucopetala, H0 = bunga antesis, H-1 = bunga satu hari sebelum antesis, BK = Media brewbaker dan Kwack, S = Sukrosa 10%, PJG = Filamen panjang, PDK = Filamen pendek)). Tingginya viabilitas polen belimbing hutan pada filament panjang belum tentu terkait dengan ukuran polen. Pada A. bilimbi ukuran polen dari filamen panjang umumnya memiliki diameter lebih besar dibandingkan diameter pada polen filamen pendek, namun fetilitas polennya tidak berbeda signifikan, antara polen pada filamen panjang yang

berukuran lebih besar dan polen pada filamen pendek yang berukuran lebih kecil. Dugaan bahwa ukuran polen tidak terkait dengan tingginya viabilitas polen pada blimbing hutan ini didukung oleh pernyataan Gammon (2009) yang melaporkan bahwa tidak ada hubungan antara ukuran polen dengan presentase viabilitas pada Fallopia japonica.

| 87


KESIMPULAN Bunga belimbing hutan A. dolicocarpa di pembibitan mempunyai tipe distili sedangkan A. dolicocarpa yang di tanam di kebun koleksi dan A. leucopetala hanya memiliki pistil yang lebih pendek dibandingkan dengan filamennya. Polen belimbing hutan berbentuk bulat, trikolpata dan termasuk ke dalam kelompok polen tipe medium. Ukuran polen pada filamen panjang lebih besar dibandingkan dengan filamen pendek taitu masing-masing 34,75±3,88 µm dan 27,70±1,21 µm. Waktu inkubasi optimum perkecambahan belimbing hutan dalam media BK dan sucrose 10% adalah 16 jam, dengan panjang tabung polen 300-400 µm pada media BK dan 100-200 µm pada media sukrose 10%. Persentase perkecambahan polen pada media BK (68,4%) lebih tinggi dibanding media sukrosa 10% (54,6%). Persentase perkecambahan polen belimbing hutan pada filamen panjang lebih tinggi dibandingkan dengan filamen pendek yaitu berturutturut 62.5% dan 60.5%. Persilangan pada pemuliaan tanaman belimbing hutan sebaiknya menggunakan polen dari bunga stadia H0 dari benang sari berfilamen panjang.

DAFTAR PUSTAKA Ahmad, S., A. Rana, R. Sharma, R.K. Agnihotri. 2012. Effect of different media and boric acid on pollen germination and tube growth of Tribulus terrestris - a traditional medicinal plant. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research 13(2): 77–79. Agustin, H., E.R. Palupi, M.R. Suhartanto. 2014. Pengelolaan polen untuk produksi benih melon hibrida sunrise meta dan orange meta. Jurnal of Horticultura 24(1): 32–41. Astuti, I.P. dan Rugayah. 2009. Averrhoa spp. di Kebun Raya Bogor dan Upaya Konservasinya. Dalam Kurniawan S, N.K.E. Undaharta, I.P.A.H. Wibawa, I.G. Tirta dan W. Sudjarwo (eds) Prosiding Peranan Konservasi Flora Indonesia dalam Mengatasi Dampak Pemanasan Global. P 261–264.

88

|

Bhojwani, S.S. dan S.P. Bhatnagar. 1999. The Embryology of Angiosperm. Fourth Resived Edition. Vikas Publishing House PVT.LTD. Delhi Brewbaker J.L., B.H. Kwack. 1964. The Calcium Ion and Substances Influencing Pollen Growth. In: H. F. Linskens (Ed). Pollen Physiology and Fertilization. Amsterdam. North-Holland Publishing Company. P 143–151. Corbesier, L. and G. Coupland. 2006. The Guest fpr Florigen: A review of recent progress. Journal of Experimental Botany 57:3395–3403 Corner, E.J.H, 1940. Averrhoa (Oxalidaceae). In Wayside Trees of Malaya. 1: 516–517. Dafni, A.1992. Pollination Ecology, A Practical Approach. Oxford University Press. Dasgupta, P., P. Chakraborty, N.N. Bala. 2013. Averrhoa carambola An Updated Review. International Journal of Pharmaceutical Research and Review 2: 4–60. Das, B.N and M Ahmed. 2012. Analgesic Activity of the Fruit Extract Averrhoa carambola. International Journal Life Scieces Biotechnology and Pharma Research.1 (3). 22– 26. ISSN 2259-3137 Das, B.N. and M. Ahmed. 2012. Antibacterial and Cytotoxic Activities of the Fruit Extract Averrhoa carambola. Interbational Research Journal of Pharmaceuticals. 02 (3). 58-61 ISSN 2048–4143. Dey, K., S. Mondal, S. Mandal. 2016. Studies on in vitro pollen germination of Mitragyna parvifolia (Roxb.) Korth. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences 5(1): 768–777. Erdtman, G. 1972. Pollen Morphology and Plant Taxonomy – Angiosperms (An Introduction to Polynology I). Hafner Publishing Company. New York. Fahn, A. 1982. Anatomi Tumbuhan. Gadjah Mada Press. Yogyakarta. Gammon M.A. 2009. The Diversity Growth and Fitness of the Invasive plants Fallopia japonica (Japanese knotweed) and Fallopia x bohemica in the United States (Polygonaceae) Disertasi Universitas of Massachuset Boston, Boston USA.


Kavand, A., A. Ebdi, Shuraki Y.D. and V. Abdosi. 2014. Effect of Calsium nitrate and Boric acid on Pollen Germination of some date Palm male cultivars. European Journal of Experimental Biology 4(3): 10–14. Khan, S.A., A. Perveen. 2010. In vitro pollen germination capacity of Citrullus lanatus L., (Cucurbitaceae). Pakistan Journal of Botany 42: 681–684 Khan, S.A., A. Perveen. 2011. Pollen germination capacity and viability in Lagenaria siceraria (molina) standley (Cucurbitaceae). Pakistan Journal of Botany 43: 827–830 Mangunah, I. Qayim, I.P. Astuti. 2013. Fenologi dan dinamika kandungan klorofil pada pembungaan dua jenis belimbing hutan (Averrhoa dolichocarpa dan A. leucopetala). Buletin Kebun Raya 16(2): 101–112. Mortazavi, S. M. H., K. Arzani, and A. Moieni. 2010. Optimizing Storage and In vitro Germination of Date Palm (Phoenix dactylifera) Pollen. Journal Agriculture Sciences Tecnology 12:181–189. Naiki, A. and M. Kato. 1999. Pollination System and Evolution of Dioecy from Dystyly in Mussaenda parviflora (Rubiaceae). Journal Plant Species Biology 14(3): 217–227. Payal, G., P. Kalaria, M. Chakraborty, K.V. Jagadish. 2012. Phytochemical and Phytopharmacological Profile of Averrhoa carambola: An Overview. International Research Journal of Pharmacy 3(1): 88–92. Perveen, A. 2007. Pollen germination capacity, viability and Maintanence of Pisum sativum L. (Papilionaceae). Middle-East Journal of Scientific Research 2: 79–81. Perveen A., G.R. Sarwar. 2011. Pollen germination capacity of two cultivated species Jasminum sambac (L.) Ait and Nycanthes arbor-tristis L. of family Oleaceae. Pakistan Journal of Botany 43: 2109–2112. Perveen A., S. Ali. 2011. Pollen germination capacity and maintenance of pollen in Praecitrullus fistulosus (stocks) pangola (Cucurbitaceae). Pakistan Journal of Botany 43: 47–50.

Rahmah, Z. 2007. Studi Perbungaan pada Beberapa Jenis Averrhoa dan Oxalis (Oxalidaceae) Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam. Universitas Andalas, Padang. Rahman, E. dan E.F. Tihurua. 2011. Pertumbuhan in vivo Buluh Serbuk Sari dalam Stigma Ginseng Jawa (Talinum triangulare) Pasca Penyerbukan Buatan: Efek Donor Serbuk Sari. Jurnal Teknologi Indonesia vol 34: 1–23 (edisi Khusus). LIPI Press. Rihova, L., E. Hrabetova, J. Tupy.1996. Optimization of conditions for in vitro pollen in potatoes. International Journal of Plant Sciences 157(5): 561–566. Roy, A., R.V. Geetha, T. Lakshmi. 2011. Averrhoa bilimbi Linn. International Journal of Drug & Development & Research 3: 101–106. Rugayah, S. Sunarti 2008. Two New Wild Species of Averrhoa (Oxalidaceae) from Indonesia. Reinwardtia 12(4): 325–331. Safitri, E., D. Sjahridal, Mansyurdin. 2011. Tingkat keberhasilan polinasi pada Averrhoa bilimbi L. (belimbing wuluh) tipe distili. Jurnal Pembangunan dan Alam Lestari 2(1): 2–5. Thomas, B. 2006. Light Signal and Flowering. Journal of Experimental Botany 57: 3387–3393 Ulfah, S.M., Dorly, S. Rahayu. 2016. Perkembangan Bunga dan Uji Viabilitas Serbuk Sari Bunga Lipstik Aeschynanthus radicans var. ‘Monalisa’ di Kebun Raya Bogor. Buletin Kebun Raya 19(1): 21–32. Wahyudin, D.S. 1999. Daya simpan serbuk sari salak (Salacca sp.) pada tingkat kemasakan yang berbeda. Skripsi. Institut Pertanian Bogor. Bogor. van Doorn, W, G, and U. van Meeteren. 2003. Flowering opening and Closure: a review. Journal of Experimental Botany 54 (389): 1801–1812. DOI: 10.1093/jxb/erg213

| 89


90

|



MUSIM BERBUNGA DAN BERBUAH JENIS-JENIS TANAMAN KOLEKSI SUKU ANNONACEAE DI KEBUN RAYA BOGOR Flowering and Fruiting Time of Annonaceae Species in Bogor Botanic Gardens Tri Handayani Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya–LIPI, Jl. Ir. H. Juanda 13, Bogor 16003 Email: [email protected] Diterima/Received: 18 Desember 2015; Disetujui/Accepted: 28 April 2016

Abstract Annonaceae has various potential as ornamental plant, roadside plant, cosmetics and perfume ingredients, traditional medicines and insecticides. The information about the time of flowering and fruiting of Annonaceae will be usefull to support utilization of each species. A research on flowering and fruiting time of Annonaceae in Bogor Botanic Gardens was undertaken in 2012-2014. A total of 40 species of the Bogor Botanic Gardens collection has been observed. The observed parameters were: flowering and fruiting time, type of flowering, flowering pattern, fruiting pattern, flowering and fruiting calendar as well. The number of flowering and fruiting species were fluctuated each month ranging from 29–35 species and 21-28 species respectively. Meanwhile, the peak of flowering time occurred in Oktober-November (35 species). The peak of fruiting time occurred in Desember with 28 species. Flowering type determined by flushing or non flushing phase. The flowering type by flushing phase are found in 16 species and without flushing phase are found in 24 species. The flowering pattern among the species determined by the time of flowering in a year. There were 1 times, 2 times, 3 times, 4 times and ever blooming. The pattern of fruiting was no fruiting, 2 times, 3 times, 4 times and continuously. Keywords: Flushing, flowering and fruiting calendar, flowering pattern, fruiting pattern, flowering type.

Abstrak Annonaceae mempunyai potensi sebagai tanaman hias, tanaman pinggir jalan, bahan kosmetik dan parfum, obat tradisional serta insektisida. Informasi tentang waktu berbunga dan berbuah suku Annonaceae diperlukan untuk mengetahui karakter pembungaan dan pembuahannya, sehingga berguna untuk menunjang pemanfaatannya. Penelitian waktu berbunga dan berbuah tanaman suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor telah dilakukan pada tahun 2012-2014. Pengamatan telah dilakukan terhadap 40 jenis tanaman suku Annonaceae koleksi Kebun Raya Bogor. Parameter yang diamati meliputi waktu berbunga dan berbuah, tipe pembungaan, pola pembungaan, pola pembuahan serta kalender berbunga dan berbuah. Jumlah jenis yang berbunga dan berbuah setiap bulan mengalami fluktuasi, dimana jumlah jenis yang berbunga berkisar 29-35, sedangkan yang berbuah berkisar 21-28 jenis. Puncak pembungaan terjadi pada bulan Oktober-November, sebanyak 35 jenis berbunga. Puncak pembuahan terjadi pada bulan Desember, sebanyak 28 jenis berbuah. Tanaman yang berbunga melalui fase semi ada 16 jenis dan tanpa fase semi ada 24 jenis. Pola pembungaan ada yang 1 kali, 2 kali, 3 kal , 4 kali atau berbunga terus menerus dalam setahun. Pola pembuahan ada yang 2 kali, 3 kali, 4 kali, berbuah terus menerus atau tidak pernah berbuah dalam setahun. Kata kunci: Semi, kalender berbunga dan berbuah, pola berbuah, pola berbunga, tipe berbunga.

| 91

T. Handayani. Musim Berbunga dan Berbuah Jenis-Jenis Tanaman Koleksi Suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor

PENDAHULUAN Annonaceae merupakan salah satu kelompok tumbuhan yang memiliki anggota cukup besar dengan perawakan pohon, perdu dan liana. Secara morfologi, suku ini memiliki keragaman yang tinggi, baik dalam jumlah jenis maupun individunya (Xu & Craene, 2010). Mols dan Kessler (2000), memperkirakan di dunia terdapat sekitar 2300 jenis tergolong dalam 130 marga. Couvreur et al. (2012), mengelompokkan Annonaceae ke dalam 109 marga dan 2440 jenis. Pusat persebaran suku Annonaceae terdapat di negara-negara yang beriklim tropis, termasuk Indonesia (Turner, 2012). Anggota suku Annonaceae banyak dikenal sebagai tanaman penghasil buah, tanaman biofarmaka (Heywood, 1993), bio-pestisida (Cheng et al., 2012)., sumber kayu, tanaman hias, dan penghasil rempah (Heyne, 1987; Burkill, 1966; Bele, et al., 2011). Struktur bunga Annonaceae sangat bervariasi dan setiap marga memiliki karakter khusus. Umumnya, kelopak dan petal berkelipatan tiga, kelopak satu lingkaran, petal dua lingkaran, benangsari dan bakal buahnya bervariasi jumlah dan bentuknya. Kepala putiknya seringkali mengeluarkan cairan kental yang disebut compitum yang sangat membantu dalam penyerbukannya (Xu & Craene, 2010; Saunders, 2012). Putik dan benangsari masaknya tidak bersamaan waktunya, sehingga bunga membutuhkan polinator untuk membantu penyerbukannya (Saunders, 2012). Bunga juga menjadi sumber makanan bagi serangga tersebut (Endress, 2010; Goodrich, 2012; Saunders, 2012). Pembungaan yang tidak serempak dan masa anthesis yang tidak bersamaan antara bunga jantan dan bunga betina merupakan faktor utama yang mempengaruhi reproduksi Annonaceae. Oleh sebab itu musim berbunga dan berbuah merupakan informasi yang penting untuk dikaji. Informasi tentang musim berbunga dan berbuah sangat penting untuk memperkirakan keberhasilan reproduksi, yang dapat diprediksi dengan mengetahui beberapa faktor yang berpengaruh

92

|

seperti musim, waktu, dan periode/intensitas dari pembungaan dan pembuahan suatu jenis (Inouye et al., 2003; Baskorowati et al., 2008; Sulistyawati et al., 2012). Waktu, frekuensi dan intensitas pembungaan bervariasi menurut jenis, yang disebabkan oleh perbedaan genetik antar induk, faktor-faktor biotik dan abiotik (Opler et al., 1976; Baskorowati et al., 2008; Bustamante & Burquez, 2008; Kameyama & Kudo, 2009). Menurut Eleuterius & Caldwell (1984), informasi musim berbunga dan berbuah dimanfaatkan untuk berbagai kepentingan, misalnya untuk mengetahui musim puncak berbunga dan berbuah, waktu anthesis, fruit-set atau polinator suatu jenis. Titik kritis pembuahan tumbuhan berbunga (angiosperm) terletak pada proses pembungaan. Pembentukan buah dipengaruhi oleh berbagai faktor diantaranya jumlah dan sinkronisasi kematangan bunga jantan dan bunga betina, efektivitas polinator, faktor endogen dan faktor lingkungan (Anderson et al., 2005; Nurtjahjaningsih et al., 2012). Faktor endogen yang berpengaruh misalnya kandungan karbohidrat, air, mineral, status nutrisi dan hormon tumbuh. Faktor lingkungan yang berpengaruh misalnya: suhu udara, kelembaban udara, curah hujan, intensitas cahaya dan posisi tajuk (Nanda et al., 2011; Nurtjahjaningsih et al., 2012). Mengingat manfaat jenis-jenis suku Annonaceae yang sangat banyak, waktu pembungaan dan pembuahan yang tidak serempak, tipe dan pola berbunga berbeda, pola berbuah yang bervariasi, keterbatasan jumlah dan jenis polinator menjadi alasan penting penelitian ini dilakukan. Tujuannya untuk mengetahui waktu berbunga dan berbuah, tipe pembungaan, pola pembungaan, pola pembuahan, puncak musim berbunga dan berbuah, kalender berbunga dan berbuah serta serangga pengunjung. Hasilnya diharapkan dapat dimanfaatkan dalam berbagai kepentingan, misalnya mengetahui potensinya, pemuliaan suku Annonaceae, perencanaan eksplorasi, pengumpulan benih, mengetahui sistem penyerbukan dan polinatornya serta konservasi jenis-jenis suku Annonaceae.

Buletin Kebun Raya Vol. 19 No.2, Juli 2016 [91-104]

BAHAN DAN METODE Penelitian dilakukan di Kebun Raya Bogor, pada tahun 2012–2014. Pengamatan dilakukan terhadap 40 jenis tanaman koleksi suku Annonaceae (Tabel 1.). Jenis-jenis yang diamati meliputi perdu dan pohon. Pengamatan dilakukan setiap bulan pada minggu ke-2 dan ke-4, selama 3 tahun (2012–2014). Pengamatan dilakukan secara visual. Parameter yang diamati meliputi waktu berbunga dan berbuah, tipe pembungaan, pola pembungaan, pola pembuahan, kalender berbunga dan berbuah, serangga pengunjung serta potensi suatu jenis. Waktu berbunga dan berbuah dilakukan dengan mencatat bulan-bulan dimana suatu jenis sedang berbunga atau berbuah. Penentuan tanaman berbunga dan berbuah mengacu pada penelitian Anderson et al. (2005). Tanaman dianggap berbunga jika pada saat pengamatan, tanaman tersebut diketahui sedang ada bunganya baik yang masih berupa kuncup bunga, bunga mekar maupun bunga lewat mekar. Tanaman dianggap berbuah jika pada saat pengamatan diketahui sedang ada buahnya baik buah muda, buah masak maupun lewat masak. Tipe pembungaan yaitu mengkategorikan apakah suatu jenis mengalami fase semi (flushing atau munculnya daun baru pada sebagian besar/seluruh bagian individu tanaman) atau tidak pada saat berbunga. Menurut Anderson et al. (2005), jika 25% atau lebih ranting atau cabang mengeluarkan pucuk baru atau muncul daun muda secara serempak maka tanaman dianggap sedang berada pada fase semi atau flushing. Pengamatan terhadap puncak flushing dilakukan terhadap bulan dimana terdapat jumlah jenis yang mengeluarkan pucuk muda paling banyak. Pola pembungaan merupakan intensitas berbunganya suatu jenis selama satu tahun, misalnya 1 kali setahun, 2 kali setahun, 3 kali setahun, 4 kali setahun atau berbunga terus menerus. Pengamatan pembuahan dilakukan terhadap pola pembuahan,

yaitu intensitas berbuahnya suatu jenis selama setahun. Jumlah jenis yang berbunga dikelompokkan menjadi empat, yaitu: 1. sangat rendah (SR) = jumlah jenis berbunga yang diamati dalam satu bulan sebanyak <25%; 2. rendah (R) = jumlah jenis berbunga yang diamati dalam satu bulan sebanyak 25%–50%; 3. sedang (S) = jumlah jenis berbunga yang diamati dalam satu bulan sebanyak 50%–75% dan 4. tinggi (T) = jumlah jenis berbunga yang diamati dalam satu bulan sebanyak >75%. Pengamatan terhadap puncak pembungaan dilakukan terhadap bulan dimana terdapat jumlah jenis yang berbunga paling banyak. Pola pembuahan dikelompokkan menjadi 1 kali setahun, 2 kali setahun, 3 kali setahun, 4 kali setahun, berbuah terus menerus atau tidak pernah menghasilkan buah. Jumlah jenis yang berbuah dikelompokkan menjadi 4, yaitu: 1. sangat rendah (SR) = jumlah jenis berbuah yang diamati dalam satu bulan sebanyak <25%; 2. rendah (R)= jumlah jenis berbuah yang diamati dalam satu bulan sebanyak 25%–50%; 3. sedang (S)=jumlah jenis berbuah yang diamati dalam satu bulan sebanyak 50%–75% dan 4. tinggi (T) = jumlah jenis berbuah yang diamati dalam satu bulan sebanyak >75%. Pengamatan terhadap puncak pembuahan dilakukan terhadap bulan dimana terdapat jumlah jenis berbuah paling banyak. Pengamatan terhadap serangga pengunjung dilakukan terhadap 15 jenis sebagai sampel, yaitu Annona glabra, Anomianthus auritus, Artabotrys hexapetalus, Dasymaschalon blumei, Enicosanthum paradoxum, Goniothalamus macrophyllus, Goniothalamus malayanus, Melodorum fruticosum, Monodora angolensis, Monodora tenuifolia, Orophea megallophylla, Polyalthia glauca, Polyalthia littoralis, Polyalthia suberosa dan Popowia pisocarpa. Pengamatan dilakukan selama bunga mekar pada jam 07.00–17.00. Serangga hanya dikategorikan dalam kelompok besarnya saja yaitu kumbang, lebah, lalat, semut, atau tungau.

| 93

94

|

Keterangan: * = bunga O= buah **=bunga banyak (>75% tajuk berbunga) OO=buah banyak (>50% bunga jadi buah). ΨΨ=pucuk muda banyak (>75% pucuk muda).

Tabel 1. Waktu Berbunga dan Berbuah 40 jenis suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor.



Lanjutan Tabel 1. Waktu Berbunga dan Berbuah 40 jenis suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor.


| 95

96

|







| 97


Penelitian ini juga menggunakan data pendukung yaitu data curah hujan pada tahun 2012–2014. Data curah hujan diambil dari Subbidang Registrasi dan pembibitan Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun RayaLIPI Bogor. Data tersebut digunakan untuk mengetahui pengaruh curah hujan terhadap jumlah jenis yang berbunga dan berbuah setiap bulan selama pengamatan berlangsung. Curah hujan dibagi dalam tiga golongan, yaitu: 1. rendah jika curah hujan <100 mm per bulan; 2: sedang jika curah hujan 100– 200 mm per bulan; 3: tinggi jika curah hujan >200 mm per bulan, hal ini untuk memudahkan dalam mengelompokkan curah hujan per bulan termasuk rendah, sedang atau tinggi.

HASIL DAN PEMBAHASAN Flushing dan Non-Flushing pada Suku Annonaceae Di Kebun Raya Bogor Pembungaan suku Annonaceae selama kurun waktu tiga tahun terjadi setiap bulan dari bulan Januari sampai Desember. Tipe pembungaan suatu jenis ada yang didahului oleh fase flushing (semi) dan ada yang tidak. Enam belas jenis menunjukkan tipe pembungaan yang didahului dengan flushing dan 24 jenis tipe pembungaan non flushing (Tabel 1 dan 2.). Tipe pembungaan jenis-jenis tersebut diduga dipengaruhi oleh faktor genetik. Hasil penelitian

tidak menunjukkan adanya pengaruh curah hujan terhadap flushing. Diketahui bahwa bulan Agustus dan September merupakan puncak flushing, karena jumlah jenis yang mengalami fase flushing paling banyak (6 dan 7 jenis) (Gambar 1). Meskipun terjadi fluktuasi curah hujan pada bulan Agustus dan September selama 3 tahun pengamatan, namun jumlah jenis yang flushing pada 2 bulan tersebut tetap paling banyak. Hal ini membuktikan bahwa curah hujan tidak berpengaruh terhadap fase flushing. Hasil penelitian Nanda et al. (2011), pada tahun 2004–2006 juga membuktikan bahwa curah hujan tidak berpengaruh terhadap leaf flushing pada tumbuhan hutan di India bagian Selatan. Flushing lebih sensitif terhadap curah hujan musiman dari pada jangka pendek. Fase flushing juga tidak dipengaruhi oleh asal tanaman. Tanaman yang berasal dari luar negeri tidak semuanya mengalami flushing setelah ditanam di kebun raya. Sebaliknya tanaman yang berasal dari Indonesia asli ternyata banyak yang mengalami flushing. Fase flushing sebenarnya merupakan kebutuhan suatu individu tanaman atau strategi tanaman dalam mendapatkan cahaya matahari serta karbon yang lebih banyak (Kikuzawa, 1995). Opler (1976) melaporkan bahwa fase flushing dimanfaatkan suatu tanaman untuk mengurangi kompetisi fisiologis pada fase vegetatif dan generatif.

Tabel 2. Tipe dan pola pembungaan 40 jenis suku Annonaceae yang tumbuh di Kebun Raya Bogor. Tipe Berbunga

Flushing

Nonflushing

98

|

Pola Berbunga per Tahun 1 kali 2 kali 3 kali 4 kali Terus menerus 1 kali 2 kali 3 kali 4 kali Terus menerus

Nama Jenis

Jumlah Jenis

Alphonsea ventricosa, Monodora tenuifolia. Meiogyne virgata, Mitrephora teisjmannii, Monodora myristica. Polyalthia lateriflora, Monodora angolensis, Melodorum aberans. Polyalthia glauca, Saccopetallum horsfieldii. Alphonsea teisjmannii, Melodorum fruticosum, Orophea anceps, Orophea creaghii, Polyalthia rumphii, Stelechocarpus burahol. Alphonsea javanica, Platymitra macrocarpa. Annona glabra, Mezzettia parviflora, Mitrephora celebica, Mitrephora polypirena. Anaxagorea javanica, Anomianthus auritus, Artbotrys hexapetalus, Cananga odorata, Cyathocalyx martabanicus, Cyathocalyx sumatranus, Dasymaschalon blumei, Enicosanthum paradoxum, Goniothalamus macrophyllus, Goniothalamus malayanus, Neo-uvaria acuminatissima, Orophea hexandra, Orophea megallophyla, Polyalthia celebica, Polyalthia littoralis, Polyalthia suberosa, Popowia pisocarpa, Xylopia aethiopica.

2 3 3 2 6 0 2 3 1 18


Gambar 1. Curah hujan dan jumlah jenis yang mengalami flushing pada suku Annonaceae tahun 2012–2014.

Gambar 2. Curah hujan dan jenis yang berbunga pada suku Annonaceae tahun 2012–2014. Pembungaan suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor Jenis yang berbeda memiliki waktu dan intensitas berbunga yang berbeda-beda. Waktu dan intensitas berbunga suatu tanaman dipengaruhi oleh jenis tanaman dan lingkungan (Baskorowati et al., 2008; Bustamante dan Burquez, 2008; Kameyama & Kudo, 2009). Faktor lingkungan yang mempengaruhi pembungaan menurut Sulistyawati et al., (2012) adalah curah hujan, kelembaban, suhu, panjang hari, cahaya matahari dan unsur hara. Kecukupan cahaya matahari berhubungan dengan tingkat fotosintesis sebagai sumber energi bagi proses pembungaan. Curah hujan yang tinggi di kebun raya Bogor cenderung merangsang suatu jenis annonaceae untuk berbunga. Secara umum, pada bulan-bulan yang curah hujannya tinggi (>200 mm per bulan) maka jumlah jenis yang berbunga juga banyak (Gambar 2.). Persentase jumlah jenis yang berbunga

pada bulan yang curah hujannya tinggi ternyata lebih besar jika dibandingkan dengan bulan lainnya. Tahun 2012, persentase jenis berbunga tinggi (T) mencapai 50%, sedangkan jika curah hujannya sangat rendah, jenis yang berbunga hanya 8,3%. Tahun 2013, jika curah hujan tinggi maka persentase jenis berbunga tinggi (T) sebanyak 66,7%. Tahun 2014, terdapat 50% jenis berbunga tinggi (T) pada bulan dengan curah hujan tinggi, hanya 8,3% pada bulan yang curah hujannya rendah. Puncak pembungaan dalam kurun waktu 3 tahun terjadi pada bulan Oktober dan Nopember, masing-masing terdapat 35 jenis berbunga. Hal ini sesuai dengan pendapat Anderson et al. (2005) bahwa di daerah tropis puncak musim berbunga terjadi pada periode basah. Pada bulan Juli (2012), Juni (2013) dan September (2014), meskipun curah hujan sangat tinggi namun jumlah jenis yang berbunga tetap tinggi (Gambar 2). Hal ini menunjukkan bahwa curah hujan rendah dalam periode pendek kurang bepengaruh terhadap jumlah

| 99


jenis yang berbunga. Anderson et al. (2005) melaporkan bahwa persentase jenis berbunga terendah ditemukan pada saat musim kemarau panjang, sedangkan di musim kemarau pendek tidak ditemukan persentase jenis berbunga yang rendah. Ini menunjukkan bahwa pembungaan dihambat oleh stress air yang besar dalam waktu berkepanjangan. Pembuahan Suku Annonaceae Pola berbuah jenis-jenis suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor bervariasi (Tabel 3.). Meskipun tanaman dapat berbunga, namun tidak selalu dapat menjadi buah. Bahkan terdapat suatu jenis yang berbunga terus menerus, namun tidak satupun bunga yang berhasil menjadi buah. Hasil pengamatan ditemukan 25 jenis yang setiap kali berbunga selalu diikuti oleh pembuahannya. Lima jenis berbunga lebih dari satu kali dalam setahun, namun hanya satu kali musim berbunga saja yang berhasil menjadi buah. Sembilan jenis tidak pernah menghasilkan buah, meskipun ada yang berbunga terus menerus. Kegagalan bunga menjadi buah dipengaruhi oleh faktor genetik dan faktor lingkungan. Faktor genetik yang berpengaruh terutama adanya perbedaan waktu anthesis putik dan benangsari. Nurtjahjaningsih et al., (2012) melaporkan bahwa pembentukan buah dipengaruhi oleh jumlah dan sinkronisasi kematangan bunga jantan dan bunga betina, efektivitas polinator, faktor endogen dan faktor lingkungan. Hampir semua jenis yang diamati ternyata masaknya putik dan benangsari berbeda waktunya. Masa reseptif putik terjadi lebih dahulu dibandingkan dengan masa reseptif benangsari. Sehingga pada saat benangsari masak, putik sudah layu, kering atau rontok. Hal ini sesuai dengan pendapat Goodrich (2012) dan Saunders (2012) bahwa sebagian besar bunga suku Annonaceae memiliki 2 hari masa anthesis. Masa reseptif putik terjadi pada hari pertama, sedangkan masa reseptif benangsari pada hari kedua. Ketika ada serbuk sari yang siap menyerbuki, putik sudah kering bahkan rontok, sehingga bunga gagal menjadi buah. Perbedaan masa reseptif seringkali diikuti oleh pergerakan organ atau rontoknya bagian organ

100

|

reproduksi (Endress, 2010). Selain faktor genetik, faktor lingkungan juga dianggap sebagai faktor pemicu gagalnya pembuahan, misalnya polinator dan curah hujan yang tinggi. Adanya perbedaan masa reseptif antara bunga jantan dan bunga betina menyebabkan proses penyerbukan bunga suku Annonaceae membutuhkan bantuan polinator. Penyerbukan bunga Annonaceae berkaitan erat dengan angin, kumbang, lalat dan tungau (Endress, 2010). Menurut Goodrich (2012) dan Saunders (2012) terdapat lima kelompok polinator bunga Annonaceae yaitu kumbang, lebah, lalat, tungau dan kecoak. Hasil pengamatan terhadap bunga suku Annonaceae sebelum dan saat bunga mekar ditemukan beberapa serangga yang sering mengunjungi bunga, antara lain kumbang kecil berwarna hitam, lebah (Trigona sp), lalat buah (Drosophila sp), semut hitam kecil, semut merah kecil dan semut rang-rang. Meskipun belum pasti serangga tersebut sebagai polinator, tetapi seringkali ditemukan adanya serbuksari yang menempel pada kakinya. Mereka berjalan dari satu bunga ke bunga yang lainnya, sehingga secara tidak sengaja akan membantu proses penyerbukan. Koloni semut merah ditemukan mengerumuni dan bersarang diantara bunga pada pangkal batang Goniothallamus ridleyi. Lalu lalang semut diantara bunga yang mekar dapat membantu proses penyerbukan bunga. Menurut Saunders (2012), polinator utama pada Goniothallamus ridleyi adalah semut (Formicidae). Semut rangrang membuat sarang diantara petal bagian luar dan petal bagian dalam bunga Goniothallamus macrophylus. Kumbang hitam mengunjungi bunga Annona glabra. Lalat buah (Drosophylla sp.) dan semut hitam kecil berkunjung ke bunga Popowia pisocarpa. Serangga pengunjung jumlahnya sangat sedikit sehingga tidak mencukupi untuk menyerbuki bunga yang banyak. Apalagi jika banyak jenis yang berbunga dalam waktu yang bersamaan. Keterbatasan jumlah serangga pengunjung berakibat pada terbatasnya jumlah bunga yang diserbuki. Polyalthia rumphii misalnya, menghasilkan bunga hampir di seluruh bagian cabang dan ranting, namun hanya 1-5 bunga saja yang berhasil menjadi buah. Hal ini juga terjadi pada


Orophea creaghii, Polyalthia lateriflora, Polyalthia celebica dan Monodora tenuifolia. Faktor curah hujan secara umum tidak berpengaruh nyata terhadap pembuahan suatu jenis (Gambar 3.). Secara umum jika curah hujan tinggi maka persentase jumlah jenis yang berbuah hanya pada kisaran sedang, yaitu 50%–75%. Pada bulan dengan curah hujan tinggi tahun 2012, terdapat lebih banyak (75%) dari jumlah jenis yang berbuah pada kisaran sedang. Pada bulan dengan curah hujan tinggi tahun 2013, persentase jumlah jenis yang berbuah pada kisaran sedang lebih banyak lagi (91,7%). Tahun 2014, persentase jumlah jenis yang berbuah pada kisaran sedang sebanyak 91,7%. Puncak musim berbuah dalam kurun waktu 3 tahun terjadi pada bulan Desember karena terdapat 28 jenis yang berbuah. Hal ini menunjukkan bahwa meskipun curah hujan diperlukan dalam proses berbuah namun tidak mutlak dalam menentukan keberhasilan bunga menjadi buah. Bahkan puncak musim berbuah tidak

berada pada bulan yang curah hujannya tertinggi. Penurunan jenis yang berbuah pada saat curah hujan tinggi diduga karena adanya penurunan aktivitas polinator dan jumlah polinator yang berkunjung ke bunga. Berdasarkan pengamatan pada bulan Peburari dan Oktober (2012), bulan April dan Juli (2013) dan bulan Januari (2014), jumlah serangga yang berkunjung ke bunga berkurang, kadang-kadang dalam satu hari tidak ada serangga yang datang. Ketika curah hujan turun, jumlah serangga yang berkunjung ke bunga menjadi lebih banyak. Kalender pembungaan Annonaceae

dan

pembuahan

suku

Sejak bulan Januari sampai Desember selalu ada jenis yang berbunga dan berbuah, tetapi jumlahnya tidak selalu sama (Gambar 4). Terjadinya fluktuasi jenis-jenis yang berbunga dan berbuah disebabkan karena faktor genetik, keterbatasan jumlah dan aktifitas polinator dan

Tabel 3. Pola berbunga dan berbuah 40 jenis suku Annonaceae di Kebun Raya Bogor. No.

Pola Berbunga per tahun

1

1 kali

2

2 kali

3.

4.

5.

Pola Berbuah per tahun 1 kali

Nama Jenis

Jumlah Jenis

Alphonsea ventricosa, Monodora tenuifolia.

2

1 kali 2 kali Tidak berbuah

Meiogyne virgata, Mitrephora teisjmanii. Alphonsea javanica, Platymitra macrocarpa. Monodora myristica.

2 2 1

3 kali

1 kali 3 kali Tidak berbuah

Saccopetallum horsfieldii, Monodora angolensis Annona glabra, Mezzettia parviflora, Polyalthia lateriflora Melodorum aberans, Mitrephora celebica

2 3 2

4 kali

4 kali

Mitrephora polypirena, Polyalthia glauca.

2

1 kali 2 kali Terus menerus

Goniothalamus macrophyllus. Polyalthia rumphii. Alphonsea teisjmanii, Anaxagorea javanica , Artabotrys hexapetalus, Cananga odorata, Cyathocalyx sumatranus, Dasymaschalon blumei, Enicosanthum paradoxum, Melodorum fruticosum, Orophea anceps, Orophea creaghii Orophea hexandra, Orophea megalophylla, Polyalthia littoralis, Polyalthia suberosa, Popowia pisocarpa, Stelecocharpus burahol. Anomianthus auritus, Cyathocalyx martabanicus, Goniothalamus malayanus, Neo-uvaria acuminatissima, Polyalthia celebica, Xylopia aethiopica.

1 1

Terus menerus

Tidak berbuah

16

6

| 101


curah hujan. Jumlah tanaman yang berbunga setiap bulan sebanyak 29–35 jenis, sedangkan yang berbuah sebanyak 21–28 jenis tanaman. Jumlah jenis berbunga paling sedikit pada bulan April, Juni dan Agustus (masing-masing 29 jenis). Dari bulan Januari sampai Agustus terjadi fluktuasi jumlah jenis yang berbunga. Jumlah jenis yang berbunga bulan Januari cenderung tinggi, diikuti oleh penurunan pada bulan Februari. Bulan berikutnya terjadi kenaikan lagi, yang diikuti oleh penurunan jumlah jenis yang berbunga bulan berikutnya. Adanya penambahan jumlah jenis

berbunga diikuti oleh penurunan di bulan berikutnya terus berlangsung sampai bulan Agustus. Dari bulan Agustus sampai November jenis yang berbunga jumlahnya terus bertambah, tetapi pada bulan Desember terjadi penurunan lagi. Sebanyak 21–28 jenis ditemukan berbuah setiap bulan. Sejak bulan Januari jumlah jenis yang berbuah cenderung meningkat sampai bulan Agustus, kemudian turun lagi sampai bulan September. Bulan Oktober jenis yang berbuah cenderung meningkat lagi sampai bulan Desember.

Gambar 3. Curah hujan dan jumlah jenis suku Annonaceae yang berbuah pada tahun 2012–2014.

Gambar 4. Jenis berbunga dan berbuah suku Annonaceae pada tahun 2012–2014

102

|


KESIMPULAN DAN SARAN KESIMPULAN Tipe pembungaan, pola pembungaan, pola pembuahan pada jenis-jenis suku Annonaceae DI Kebun Raya Bogor bervariasi. Sejak bulan Januari sampai Desember selalu ada jenis yang berbunga atau berbuah, namun jumlahnya tidak sama. Tipe berbunga ada yang melalui fase flushing atau nonflushing. Dalam waktu setahun tanaman dapat berbunga 1 kali, 2 kali, 3 kal, 4 kali atau terus menerus. Pola pembuahan dalam setahun ada yang 2 kali, 3 kali, 4 kali, berbuah terus menerus atau tidak pernah berbuah. Perbedaan tipe dan pola berbunga serta berbuah dipengaruhi oleh faktor genetik tanaman, polinator dan curah hujan. Puncak musim berbunga terjadi pada bulan Oktober-November, sebanyak 35 jenis berbunga. Puncak musim berbuah terjadi pada bulan Desember, sebanyak 28 jenis. Serangga pengunjung yang ditemukan dari golongan kumbang, lebah, lalat dan semut.

SARAN Perlu penelitian lebih lanjut untuk mengetahui faktor-faktor penyebab gagalnya pembentukan buah pada jenis-jenis yang setiap tahun menghasilkan bunga tetapi tidak menghasilkan buah (tabel 3). Kegiatan eksplorasi Annonaceae sebaiknya dilakukan pada bulan Nopember-Desember, karena pada bulan-bulan tersebut banyak jenis Annonaceae yang berbuah sehingga kemungkinan untuk mendapatkan buah dan biji dari berbagai jenis menjadi lebih besar.

DAFTAR PUSTAKA Anderson, D.P.; E.V. nordheim; T.C. Moermond; Z.B.G. Bi and C. Christophe. 2005. Factors influencing tree phenology in Ta¨ı National Park, Cˆ ote d’Ivoire. BIOTROPICA 37(4): 631– 640.

Baskorowati, L.; R. Umiyati; N. Kartikawati; A. Rimbawanto dan M. Susanto. 2008. Pembungaan dan pembuahan Melaleuca cajuputi Subsp. Cajuputi Powell di Kebun Benih Bemai Paliyan Gunung Kidul, Yogyakarta. Jurnal pemuliaan Tanaman Hutan 2(2): 1–13. Bele, M.Y.; D.A. Focho; E.A. Egbe and B.G. Chuyong. 2011. Etnobotanical of survey of the uses of Annonaceae around Mount Cameroon. African Journal of Plant Science 5(4): 237–247. Biba, V.S; A. Amily; S. Sangeetha and P. Remani. 2014. Anticancer, antioxidant and antimicrobial activity of Annonaceae family. World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences 3(3): 1595–1604. Burkill, I.H. 1966. A dictionary of the economic product of the Malay Peninsula. Agriculture Ministry of Co-operatives, Kuala Lumpur. Malaysia. Bustamante, E. and A. Burquez. 2008. Effects of plant size and weather on the flowering phenology of the organ pipe cactus (Stenocereus thurberi). Annals of Botany 102: 1019–1030. Cheng, J; K. Yang; N. N. Zhao; X.G. Wang, S.Y. Wang and Z.L. Liu. 2012. Composition and insecticidal activity of the essential oil of Cananga odorata leaves against Sitophilus zeamais Motschulsky (Coleoptera: Curculionidae). Journal of Medicinal Plants Research 6(18): 3482–3486. Cochrane, C.B, P.K.R. Nair and S.J. Melnick. and S.J. Melnick. 2008. Anticancer effects of Annona glabra plant extracts in human Leukemia cell lines. Anticancer research 28: 965–972. Couvreur, T.L.P., P.J.M. Maas, S. Meike, D.M. Johnson and P.J.A. Kessler. 2012. Keys to the genera of Annoceae. Botanical Journal of the Linnean Society 169: 74–83. Eleuterius, L.N. and D. Caldwell. 1984. Flowering phenology of Tidal Marsh Plants in Mississippi. CASTANEA 49(4): 172–179. Endress, P.K. 2010. The evolution of floral biology in basal Angiosperms. Philosophical Transactions of the Royal Society B 365: 411–421.

| 103


Goodrich, K.R. 2012. Floral scent in Annonaceae. Botanical Journal of the Linnean Society 169: 262–279. Heyne, K. 1987. Tumbuhan Berguna Indonesia. Terjemahan Badan Litbang Departemen Kehutanan. Jakarta. Heywood. 1993. Flowering plants of the World. Oxford University Press. New York. Inouye, D.W., F. Saavendra and W. Lee-Yang. 2003. Environmental influences on the phenology and abundance of flowering by Androsace septentrionalis (primulaceae). American Journal of Botany 90(6): 905–910. Kameyama, Y. and G. Kudo. 2009. Flowering phenology influences seed production and outcrossing rate in populations of an alpine snowbed shrub, Phyllodoce aleutica: effects of pollinators and self-incompatibility. Annals of Botany 103: 1385–1394. Kikuzawa, K. 1995. Leaf phenology as an optimal strategy for carbon gain in plants. Canadian Journal of Botany 73: 158–163. Mols, J.B. and P.J.A. Kessler. 2000. Revision of the Genus Phaeanthus (Annonaceae). Blumea 45 (1): 205–233. Nanda, A., H.M. Prakasha, Y.L. Krishna Murthy and H.S. Suresh. 2011. Phenology of leaf flushing, flower initiation and fruit maturation in dry deciduous and evergreen forest of Bhadra Wildlife Sanctuary, Karnataka, Southern India. Our Nature 9: 89–99. Nurtjahjaningsih, G., P. Sulistyawati, A.Y.P.B.C. Widyatmoko dan A. Rimbawanto. 2012. Karakteristik pembungaan dan sistem perkawinan nyamplung (Calophyllum inophyllum) pada Hutan Tanaman di Watusipat, Gunung Kidul. Jurnal Pemuliaan Tanaman Hutan 6(2): 65–80.

104

|

Opler, P.A., G.W. Frankie and H.G. Baker. 1976. Rainfall as a factor in the release, timing, and synchronization of anthesis by tropical trees and shrubs. Journal of Biogeography 3: 231– 236. Saunders, R.M.K. 2012. The diversity and evolution of polination systems in Annonaceae. Botanical Journal of the Linnean Society 169: 222–244. Sawjanya, K.M., J. Swathi, K. Narendra, C.H. Padmavathi and A.K. Satya. 2013. Extraction and Antimicrobial Potential of Secondary Plant Metabolites from Artabotrys hexapetalus (L.F) Bhandhari. International Journal of Research in Ayurveda and Pharmacy 4(5): 764–768. Sulistyawati, E., N. Mashita, N.N. Setiawan, D.N. Choesin and P. Suryana. 2012. Flowering and fruiting phenology of tree species in Mount Papandayan Nature Reserve, West Java, Indonesia. Tropical Life Sciences Research 23(2): 81–95. Turner, I.M. 2012. Annonaceae of Borneo: a review of the climbing species. Garden’s Bulletin Singapore 64 (2): 371–460. Uyoh, E.A., P.N. Chukwurah, R.C. Akarika and V.A. Antia. 2013. Potentials of Two Nigerian Spices—Piper nigrum and Monodora myristica as Sources for Cheap Natural Antioxidants. American Journal of Plant Sciences 4: 1105– 1115. Xu, F. and L.R.D. Craene. 2010. Floral ontogeny of Annonaceae: evidence for high variability in floral form. Annals of Botany 106: 591–605. Zhu, Y.Z.H. L., L. Bing, Ping-tao and M.G. Gilbert. 2011. Artabotrys R. Flora China 19: 701–703.



RETENSI DAN PERUBAHAN PENGETAHUAN ETNOBOTANI MASYARAKAT KERINCI DI TAMAN NASIONAL KERINCI SEBLAT Retention and Change of Ethnobotanical Knowledge at Kerinci Community in Kerinci Seblat National Park Asvic Helida 1*, Ervizal AM. Zuhud 1, Hardjanto 2, Yohanes Purwanto 3, Agus Hikmat 1 1

Program Studi Kehutanan Fakultas Pertanian, Universitas Muhammadiyah Palembang Jalan A Yani Plaju 30263 Palembang 2 Program Studi Ilmu Pengelolaan Hutan, Fakultas Kehutanan Institut Pertanian Bogor, Jalan Ulin Kampus Darmaga IPB 16680 Bogor 3 Pusat Penelitian Biologi, Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI), JL. Raya Jakarta - Bogor Km.46 Cibinong 16911 Bogor *Email: [email protected] Diterima/Received: 29 Desember 2015; Disetujui/Accepted: 8 Juni 2016

Abstract Ethnobotany is required to study the concepts of local knowledge about the plants which are the result of the development of the culture of a community, while conservation is an effort to maintain the sustainability of natural resources through protection, preservation and wise use. Ethnobotany can be used as an indicator for successful forest resources management. The objectives of this study are to identify the local knowledge of Kerinci community associated to the plant and to analyze the level of knowledge and retention in ethnobotany. The study was conducted in three locations i.e. Dusun Lempur Baru, Dusun Ulu Jernih and Dusun Lama Tamiai in Kerinci Regency, Jambi Province. The research was conducted between October 2013 and October 2014. Qualitative research approach with participant observation and quantitative methods using questionnaires with 30 respondents in each location. The results showed that the level of knowledge Kerinci community in ethnobotany is at the medium level (MGJ = 0.625 ). There are differences in the level of knowledge among the three study sites. There is a decline of the knowledge with the annual average annual change is CA < 0.1. Keywords: ethnobotany knowledge, Kerinci community, ethnobotany retention, Kerinci Seblat National Park

Abstrak Studi etnobotani diperlukan untuk mempelajari konsep pengetahuan masyarakat mengenai tumbuhan yang merupakan hasil perkembangan kebudayaan sedangkan konservasi adalah suatu upaya untuk tetap mempertahankan keberlanjutan sumber daya alam melalui pelestarian, pengawetan dan pemanfaatan secara bijaksana.Pengetahuan etnobotani dapat menjadi indikator keberhasilan pengelolaan sumber daya

| 105

A. Helida et al. Retensi dan Perubahan Pengetahuan Etnobotani Masyarakat Kerinci .....

hutan.Tujuan penelitian adalah mengidentifikasi pengetahuan lokal masyarakat Kerinci tentang tumbuhan dan menganalisis tingkat pengatahuan dan retensi etnobotani Penelitian dilakukan pada masayrakat Kerinci di 3 lokasi penelitian yaitu Dusun Baru Lempur, Dusun Ulu Jernih dan Dusun Lama Tamiai di Kabupaten Kerinci Provinsi Jambi. Penelitian dilaksanakan dari bulan Oktober 2014 hingga Oktober 2014. Pendekatan penelitian secara kualitatif dengan metode observasi partisipatif dan kuantitatif menggunakan quesioner terhadap 30 responden pada setiap lokasi. Hasil penelitian menunjukan bahwa tingkat pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci berada pada level sedang (Mgj = 0,625), terdapat perbedaan tingkat pengetahuan antara ketiga lokasi penelitian, terjadi penurunan pengetahuan dengan rata-rata perubahan tahunan CA<0,1. Tingkat pengetahuan etnobotani yang berbeda dapat dijadikan sebagai indikator pengelolaan sumber daya hutan oleh masyarakat di ketiga lokasi Kata kunci : pengetahuan etnobotani, masyarakat Kerinci, retensi etnobotani, Taman Nasional Kerinci Seblat

PENDAHULUAN Masyarakat Kerinci adalah salah satu masyarakat asli Indonesia yang berdiam di Kabupaten Kerinci Provinsi Jambi. Sebagai masyarakat tradisional, mereka sudah melakukan interaksi erat dengan sumber daya alam hayati dan ekosistemnya. Hal ini ditunjukkan oleh adanya hubungan antara masyarakat Kerinci dengan hutan yang sudah terjalin sejak lama. Kesuburan tanah yang ada di lembah Kerinci menyebabkan nenek moyang masyarakat Kerinci mengembangkan peradaban mereka, terutama dalam budaya bertani dan mengelola sumber daya alam terutama tumbuhan. Pengelolaan sumber daya tumbuhan yang mereka lakukan telah terjadi dari generasi ke generasi. Masyarakat Kerinci telah mampu mengelompokan tumbuhan dengan sistem klasifikasi yang merupakan representasi simbolik dari lingkungan, yaitu tumbuhan panas dan tumbuhan dingin (Aumeeruddy dan Bakels, 1994). Namun telah terjadi perubahan ekosistem dan sosial yang berdampak kepada perubahan pengetahuan masyarakat terhadap sumber daya yang mereka miliki. Menurut Watson (1984) telah terjadi perubahan sistem kekerabatan dan sosial pada masyarakat Kerinci. Perubahan demografis, penggabungan ekonomi regional ke internasional, ekonomi pasar, pendidikan formal masyarakat Kerinci, pengaruh gerakan keagamaan dan inovasi

106

|

pertanian telah membawa perubahan pada masyarakat dalam memperlakukan sumberdaya alamnya. Perubahan lainnya adalah terjadinya perubahan status kawasan hutan sekitar menjadi kawasan konservasi Taman Nasional Kerinci Seblat (TNKS). Penetapan kawasan konservasi TNKS menyebabkan lebih dari sebagian wilayah Kabupaten Kerinci (51,2%) berada di dalam kawasan taman nasional, menjadi zona ekslusif TNKS. Hal ini menyebabkan sebanyak 24 desa dari 209 desa di Kabupaten Kerinci termasuk di dalam kawasan TNKS yang konsekuensinya berkurang atau terbatasnya akses masyarakat terhadap hutan karena perubahan status kawasan. Sisa dari luas Kabupaten Kerinci (48,8%) merupakan kawasan budidaya kehidupan sosial dan pemukiman masyarakat. Terjadinya perubahan ekosistem, sistem sosial dan kebijakan penetapan hutan sebagai Taman Nasional Kerinci Seblat diduga telah mempengaruhi pengetahuan masyarakat Kerinci terhadap pengelolaan sumber daya tumbuhan. Hal ini mendasari dilakukannya penelitian etnobotani masyarakat Kerinci ini, sehingga yang menjadi tujuan penelitian adalah (1) Mengungkapkan pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci meliputi identifikasi keanekaragaman tumbuhan, pemanfaatan dan pengelolaan sumber daya tumbuhan dan (2) Menganalisis tingkat pengetahuan dan retensi etnobotani masyarakat Kerinci sebagai indikator keberlanjutan pengelolaan sumber daya tumbuhan.


BAHAN DAN METODE Waktu dan Lokasi Penelitian Waktu penelitian adalah selama satu tahun (bulan Oktober 2013–Oktober 2014). Penelitian dilakukan pada masyarakat Kerinci di kawasan penyangga Taman Nasional Kerinci Seblat yaitu masyarakat Dusun Baru Lempur, Dusun Lama Tamiai dan Dusun Ulu Jernih (Gambar 1). Ketiga lokasi dipilih secara purposive karena memiliki karakterisitik sosiobudaya meliputi aksesibilitas, suku/etnik dan tingkat kesejahteraan yang berbeda (Tabel 1). Selain perbedaan karakteristik sosio-budaya juga terdapat perbedaan kondisi geomorfologi sebagaimana disajikan pada Tabel 2. Jenis dan Teknik Pengumpulan Data Data yang dikumpulkan terdiri dari data botani yaitu nama lokal dan nama ilmiah tumbuhan, data pengetahuan sosio-budaya masyarakat Kerinci yang berkembang meliputi material, struktur sosial dan supersturktur ideologis. Pengumpulan data dilakukan dengan pendekatan kuantitatif dengan membagikan kuesioner kepada 30 responden pada setiap lokasi penelitian yang dibedakan menurut kelas umur dan jenis kelamin (Tabel 3).

Pembagian kelas umur (KU) menggunakan interval 15 tahun dikarenakan interval tersebut merupakan perkiraan batas maksimal untuk melihat perubahan pengetahuan (Zent, 2009). Sedangkan pembagian menurut jenis kelamin karena diduga adanya perbedaan peran gender dalam pengelolaan sumber daya alam hayati dan ekosistem oleh masyarakat Kerinci (Efrison, 2009). Analisis Tingkat Pengetahuan Etnobotani Pengukuran tingkat pengetahuan etnobotani yaitu dengan membagi responden berdasarkan kelas umur (KU) dan jenis kelamin. Pengukuran indeks pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci menggunakan persamaan yang dirancang oleh Phillips & Gentry (1993). Persamaan indeks pengetahuan etnobotani sebagai berikut : Mgj = ∑Vi Keterangan : Rata-rata tingkat pengetahuan etnobotani yang dimiliki oleh anggota kelompok j

Mgj

=

n

=

Vi

=

Jumlah anggota dalam kelompok j Jumlah pengetahuan tradisional yang dimiliki oleh anggota i dari kelompok j

j

=

Kelas umur atau jenis kelamin atau tempat tinggal

Gambar 1. Lokasi Penelitian

| 107


Tabel 1. Karakteristik Sosio Budaya Lokasi Penelitian Karakteristik Dusun Baru Lempur Aksesibilitas Rendah Tingkat kesejahteraan Tinggi Etnik/suku Tribe Kerinci

Dusun Lama Tamiai

Dusun Ulu Jernih

Sedang Rendah Campuran tinggi

Tinggi Sedang Campuran sedang

Tabel 2. Kondisi fisik lokasi penelitian (Sumber: Aumeeruddy, 1992) Aspek Biofisik Dusun Ulu Jernih Dusun Lama Tamiai Geomorfologi

Perbukitan dan gunung

Ketinggian

Dusun Baru Lempur Dataran rendah dan daerah berbukit

>1000 m d.p.l

Perbukitan hingga lembah bukit yang rata dan curam 500 – 1000 m d.p.l

Curah hujan

1500–2000 mm/thn

≤ 1500 mm/tahun

2000 – 5000 mm/thn

Jenis tanah

Andosol, latosol

Pertanian

Sayuran, agroforestry kayumanis, lahan sawah terbatas

Andosol, latosol, podsolic, alluvial Padi sawah, lahan ladang di sisi perbukitan terbatas

Andosol, latosol, podsolic, litosol tanaman budidaya, ladang, agroforestry kayumanis

Penggolongan kawasan

Dataran tinggi Kayu Aro

Bagian tengah Lembah Kerinci

Areal Lolo-Lempur

Tabel 3. Pemilihan responden penelitian Lokasi Kelas Umur (KU) penelitian Jenis Kelamin Dusun Baru Lempur Dusun Lama Tamiai Dusun Ulu Jernih Jumlah

Laki-laki Perempuan Laki-laki Perempuan Laki-laki Perempuan

KU I

3 3 3 3 3 3 18

KU II

3 3 3 3 3 3 18

100 - ≥ 1000 m d.p.l

KU III

KU IV

KU V

3 3 3 3 3 3 18

3 3 3 3 3 3 18

3 3 3 3 3 3 18

Jumlah

15 15 15 15 15 15 90

(KU = KU, KU I < 24 tahun, KU II 25 =–39 tahun, KU III 40–54, KU IV 55–69, KU V >70; Zent, 2009) Selanjutnya untuk mengetahui signifikansi dari faktor-faktor yang mempengaruhi tingkat pengetahuan masyarakat dilakukan pengolahan data menggunakan SPSS 20.0 pada taraf nyata 0.05. Analisis yang digunakan adalah statistika non parametrik (Zent 2009), yaitu uji statistik yang kesahihannya tidak bergantung kepada asumsiasumsi yang kaku. Uji non parametrik yang digunakan: a. Kruskal Wallis Test yaitu pengujian hipotesis komparatif dengan k sampel independen dari populasi yang sama. Test ini diperlukan untuk menguji perbedaan dari setiap KU

108

|

b. Man Whitney Test yaitu pengujian hipotesis komparatif dengan dua sampel independen dari populasi yang sama. Test ini digunakan untuk menguji perbedaan dari setiap jenis kelamin dan tempat tinggal. Analisis Retensi Pengetahuan Etnobotani Retensi etnobotani adalah kemampuan masyarakat lokal untuk menyimpan, menjaga dan mempertahankan pengetahuan yang dimiliki. Analisis retensi ini diperlukan untuk mengetahui apakah pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci ini memiliki kecendrungan keberlanjutan atau tidak


terhadap generasi sekarang.Penilaian terhadap perubahan pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci ini menggunakan persamaan yang dikembangkan oleh Zent (2009), yakni dengan mengelompokan nilai Mgj berdasarkan KU dengan interval 15 tahun.Menurut Zent 2009) pengelompokan dengan interval 15 tahun dianggap sesuai dalam mewakili 5 kelas umur, untuk melihat perubahan tingkat pengetahuan seseorang. Beberapa aspek yang dinilai adalah tingkat retensi (RG), tingkat retensi komulatif (RC) dan tingkat perubahan tahunan (CA). a.

Rgt =

Keterangan: Rgt = Tingkat retensi KU t terhadap KU t+1 Mgt = Rata-rata pengetahuan KU t Mgr = Rata-rata pengetahuan KU t +1

b.

RCt = RCr 10 log(Rgt)

Keterangan: RCt = Tingkat retensi komulatif KU t RCr = Tingkat retensi komulatif KU t +1

c.

CAt =

Keterangan: CAt = Tingkat perubahan tahunan KU t ygt = Interval waktu KU

HASIL DAN PEMBAHASAN Identifikasi dan Kategori Pemanfaatan Tumbuhan Masyarakat Kerinci Berdasarkan hasil penelitian tercatat sebanyak 234 jenis tumbuhan dari 75 famili Zingiberaceae merupakan famili dengan jumlah terbanyak (15 spesies) antara lain jahe (Zingiber officinale Roxb), kencur (Kaempfria galanga Linn.), kunyit (Curcuma domestica), temulawak/temu ireng (Curcuma xanthorrhiza Roxb), spadeh (Zingiber sp) dan lengkuas (Alpinia galanga(L). Willd). Berdasarkan habitus, terna merupakan yang terbanyak yakni 62 spesies antara lain alang-alang (Imperata cylindria), asam pipi (Begonia tuberosaLamk), bawang merah (Allium cepaLinn), bawang putih (Allium sativumLinn) dan cerai (Andopogon citriodorusDesf). Organ daun adalah yang paling banyak digunakan yakni sebanyak

104 spesies (44,4%). Menurut kategori pemanfaatan (Turner 1988), dapat digolongkan ke dalam 15 kategori pemanfaatan (Tabel 4). Tabel 4 menunjukan bahwa terdapat spesies dengan kategori pemanfaatan yang beragam. Pei et al. (2009) menyatakan bahwa jika suatu spesies tumbuhan memiliki beberapa bagian yang dapat dimanfaatkan, maka dapat menjamin spesies tersebut bertahan dan tetap pada kondisi baik sehingga keberadaannya akan lestari. Tabel 3 juga menunjukan bahwa masyarakat Kerinci memanfaatkan beraneka ragam tumbuhan pada berbagai habitat, (liar dan budidaya). Garibaldi dan Turner (2004) juga menyebutkan bahwa pemanfaatan tumbuhan yang beragam yang dilakukan oleh masyarakat lokal dapat mengurangi tekanan pada satu tumbuhan tertentu sehingga menghalangi kelangkaan terhadap satu jenis tumbuhan. Kategori pemanfaatan terbanyak adalah tumbuhan untuk bahan obat yaitu sebanyak 200 spesies (70,4%) terdiri dari 143 spesies (71,5%) masih bersifat liar. Penggunaan tumbuhan sebagai bahan obat untuk penyakit-penyakit ringan yang biasa diderita oleh masyarakat seperti menurunkan panas badan/demam, diare, menurunkan tensi dan menghilangkan bengkak/bisul. Spesies tumbuhan obat tersebut antara lain akar kuning (Coscinium fenestratum), bungo cino (Gardenia jasminoidesEllis) dan bungo rayo putih (Hibiscus rosa-sinensisLinn). Hasil analisis terhadap kategori kegunaan tumbuhan ini menunjukan bahwa masyarakat Kerinci memiliki kemandirian dalam kesehatan, yang ditandai dengan pengetahuan terhadap pengobatan berbagai jenis penyakit dengan bahan tumbuhan obat. Waluyo (2009) menyebutkan bahwa bagi masyarakat Indonesia di daerah perdesaan, terpencil dan bertempat tinggal di sekitar hutan maka pemanfaatan tumbuhan obat untuk kepentingan kesehatannya bukanlah hal baru, melainkan sudah berlangsung cukup lama.Setiap suku bangsa mempunyai kekhususan dalam meramu dan

| 109


Tabel 4. Kategori pemanfaatan tumbuhan masyarakat Kerinci % Status Jenis Jumlah spesies Spesies pemanfaatan L B Makanan utama 1 4,0 0 1 Oryza sativa(59) Makanan sekunder Buah 21 7,4 1 20 Carica papaya (48),Annona muricata (32) Sayur 22 7,4 7 15 Daucus carota (48), Manihot utilisima (32), 1,4 Manihot utilisima (32), Solanum tuberasum Karbohidrat 4 0 4 (25) 7,0 Coffea arabica (21), Cinnamomun burmanii Minuman 2 0 2 (57) Bahan pangan lainnya Flavoring/perasa 12 4,2 1 11 Tamarindus indica, Garcinia sizygiifolia 1,1 Syzgium aromaticum (27), Pandanus Aroma/Stimulan 3 0 3 immersius(27) Pewarna 2 7,0 0 2 Piper betle (21), Pandanus immersius (27) Pembungkus 1,1 makanan 3 2 1 Nephentes sp. (27) Bahan materi utama Kayu bahan 2,1 bangunan 6 6 0 Toona sureni (30), Harpulia arborea (24) Kayu bahan 4,0 bakar 1 0 1 Cinnamomun burmanii (57) Bah an materi sekunder Penyubur 4,0 rambut 1 0 1 Aloe vera (15) Bahan 1,4 kosmetika 4 2 2 Arthocarpus interger (6) Bahan obat70,4 obatan 200 143 57 Taxus sumatrana (24) ( Annona muricata (32) , Ritual dan 1,1 Desmodium cayanifolium (6), Styrax benzoin spiritual 3 3 0 (12) Keterangan: L = liar, B = budidaya

memanfaatkan tumbuhan sebagai bahan obat dan jamu, tergantung tingkat budaya dan lingkungan sumber daya alam di sekitarnya. Zuhud (2013) menyatakan bahwa Indonesia berpotensi menjadi bangsa yang mandiri dalam kesehatan dengan sumber daya tumbuhan yang tersedia di hutan tropisnya. Pada berbagai belahan dunia, penyakit dan cara pengobatannya sudah memiliki sistem yang khas, berbeda satu sama lain, sifat dan penilaiannya sesuai dengan keanekaragaman tempat (sumber daya alam dan budaya manusia), waktu dan keadaannya. Dalam suasana tersebut penyakit dan

110

|

pengobatannya telah menjadi budi pekerti bangsa yang bersangkutan Bahan pangan lainnya sebagai pembungkus makanan antara lain kantong semar (Nephentes sp), bambu (Bambussa sp) dan daun pisang (Musa sp). Bagian bunga dari Nephentes sp yang berbentuk kantong digunakan sebagai pembungkus lemang yang disebut dengan istilah ‘kancung beruk’, disajikan hanya pada hari-hari tertentu seperti pesta adat ‘kenduri sko.’(Gambar 2). Morgan (1996), aroma dan rasa yang diberikan dari kantong semar membuat


Diisi ketan, dikukus

Nepenthes sp.

Kancung beruk

Gambar 2. Nephentes sp. sebagai pembungkus makanan Tabel 5. Tingkat pengetahuan etnobotani berdasarkan kelas umur (Mg) Kelas Dusun Baru Lempur Dusun Lama Tamiai Dusun Ulu Jernih umur V IV III II I Q1

0,983 0,900 0,767 0,650 0,333 0,726

jenis makanan ini disukai karena kantong semar mengandum enzim protease. Berdasarkan penghitungan nilai penting budaya tumbuhan (Index of Cultural Significance), yang mengacu kepada Turner (1988) dimodifikasi Purwanto (2002), untuk tanaman budidaya, padi (Oryza sativa) dan kayu manis (Cinnamomun burmanii) merupakan jenis tumbuhan penting secara budaya masyarakat Kerinci dengan ICS tertinggi 59 dan 57. Sedangkan untuk jenis tumbuhan liar, rotan (Calamus caesius), gambir (Uncaria gambir), kina (Chinchona succirubra) dan kayu suhin atau surian (Toona sureni) adalah jenis tumbuhan dengan nilai penting budaya yang tinggi, masing-masing 36, 36 , 33, dan 30. Tingkat Pengetahuan Etnobotani Masyarakat Kerinci Berdasarkan hasil pengukuran tingkat pengetahuan etnobotani pada ketiga lokasi penelitian menunjukan bahwa rata-rata indeks tingkat pengetahuan etnobotani (Mg) masyarakat Kerinci berada pada level sedang yaitu 0,625 yang nilainya lebih besar daripada nilai kuartil satu (Q1) yaitu 0,600. Namun secara spesifik lokasi penelitian,

0,850 0,867 0,750 0,600 0,300 0,667

0,550 0,650 0,550 0,483 0,216 0,560

Rata-rata 0,794 0,806 0,689 0,578 0,283 0,630

hanya Dusun Baru Lempur dan Dusun Lama Tamiai berada pada level sedang, sedangkan untuk Dusun Ulu Jernih tingkat pengetahuan etnobotani berada pada level rendah (Q1>Mg) (Tabel 5). Tabel 5 menunjukan bahwa responden KU V Dusun Baru Lempur memiliki tingkat pengetahuan etnobotani paling tinggi, kemudian semakin menurun terhadap KU dibawahnya. Sedangkan dua dusun lainnya yaitu Dusun Lama Tamiai dan Dusun Ulu Jernih, tingkat pengetahuan etnobotani tertinggi berada pada KU IV sedikit diatas tingkat pengetahuan etnobotani KU V. Secara rata-rata tingkat pengetahuan KU IV lebih tinggi dibandingkan dengan KU lainnya. Hal ini dapat terjadi karena faktor usia menyebabkan seseorang/responden pada KU V menjadi lupa. Sesuatu yang pernah diketahuinya pada masa lampau, tapi pada saat diadakan penelitian ini menjadi lupa sehingga tidak dapat menjawab pertanyaan penelitian (Zent, 2009). Berdasarkan pada tabel 5, juga menunjukan bahwa pada kelas umur yang sama, terdapat perbedaan tingkat pengetahuan etnobotani di ketiga lokasi penelitian (Gambar 3). Gambar 3 menunjukan bahwa pada kelas umur yang sama terdapat

| 111


Gambar 3. Perbandingan tingkat pengetahuan etnobotani menurut kelas umur pada ketiga lokasi penelitian perbedaan tingkat pengetahuan etnobotani masyarakatnya. Dusun Baru Lempur dengan karakteristik masyarakat yang 95% nya adalah berasal dari suku Kerinci, memiliki tingkat pengetahuan etnobotani yang paling tinggi pada setiap kelas umur. Hasil ini membuktikan bahwa perbedaan karakteristik sosial budaya masyarakat mempengaruhi tingkat pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci. Masyarakat di Dusun Baru Lempur merupakan masyarakat asli yang sudah ‘bertungkus lumus’ dengan alam lingkungannya, sedangkan masyarakat asli yang berada di Dusun Lama Tamiai dan Dusun Ulu Jernih sudah menerima banyak pengaruh luar karena banyaknya pendatang dari luar. Oliver (2013), perpindahan masyarakat lokal ke tempat lain telah menghilangkan pengetahuan pengobatan pada generasi mudanya. Parrota et al. (2009), berbagai faktor seperti perluasan globalisasi, pengembangan infrastruktur, pertanian, pariwisata, intervensi pembangunan pasar serta kebijakan dan peraturan pemerintah yang telah menyebabkan menurunnya minat kearifan tradisional, pengetahuan lokal dan gaya hidup pada

generasi muda. Alfredo et al. (2013), terjadinya perubahan budaya pada masyarakat juga berpengaruh nyata terhadap tingkat pengetahuan etnobotani masyarakatnya. Retensi Pengetahuan Etnobotani Masyarakat Kerinci Retensi pengetahuan etnobotani adalah kemampuan masyarakat untuk menyimpan pengetahuan etnobotani yang dimilikinya (Zent, 2009). Penurunan retensi lambat laun dapat menyebabkan pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci berkurang. Jika hal tersebut terjadi secara cepat dan dalam intensitas yang besar maka pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci akan punah. Hasil analisis data menunjukan bahwa berdasarkan nilai indeks rata-rata perubahan pengetahuan etnobotani (CA) pada ketiga lokasi penelitian, responden yang paling baik dalam menyimpan pengetahuan adalah responden yang berada pada KU IV. Hal ini dapat dilihat dari nilai Mg pada KU IV yang lebih tinggi daripada KU lainnya yaitu sebesar 0,806 (Tabel 6).

Tabel 6. Perubahan pengetahuan etnobotani rata-rata masyarakat Kerinci KU

log RG

RC

CA

0,794

1,000

0,000

1,000

0,000

IV

0,806

1,015

0,007

1,015

0,001

III

0,667

0,828

-0,082

0,828

-0,011

II

0,578

0,867

-0,062

0,867

-0,009

0,283

0,490

-0,310

0,490

-0,034

I

|

RG

V

Keterangan:

112

MG

Mg (indeks pengetahuan etnobotani), RG (tingkat retensi), RC (tingkat retensi komulatif), CA (perubahan pengetahuan setiap tahun)


Tabel 6 menunjukan bahwa rata-rata perubahan pengetahuan tahunan (CA) pada KU IV sebesar 0,001. Nilai positif menunjukan terjadinya peningkatan pengetahuan dari KU V ke KU IV. Hasil ini menunjukan bahwa KU IV memiliki kemampuan menyimpan yang paling tinggi dibandingkan dengan KU lainnya. Hal ini disebabkan karena responden pada kelas umur IV adalah orang-orang yang masih sehat, kuat dan pada umumnya aktif menduduki jabatan dalam masyarakat. Hasil ini sama dengan Zent (2009) yang menyebutkan bahwa KU IV memiliki daya ingat yang masih kuat, aktif bekerja dan memiliki intensitas bekerja yang tinggi sedangkan KU V karena faktor usia menjadi lupa sehingga tidak dapat menyebutkan pengetahuan tersebut. Berdasarkan RG rata-rata dari ketiga lokasi menunjukan bahwa KU IV memiliki tingkat retensi yang paling tinggi dibanding KU lainnya. Hal ini disebabkan karena KU IV merupakan usia dimana anggotanya masih aktif bekerja dan memiliki pengalaman yang cukup banyak. Hal ini sebagaimana dinyatakan Berk (2006) bahwa perkembangan dan pengetahuan itu bersifat dinamis dan akan bertambah seiring dengan pengalaman yang dijalani. (Gambar 4 dan Tabel 7). Gambar 4 menunjukan bahwa terjadi penurunan dalam proses menyimpan pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci. Kecendrungan negatif yang ditunjukan oleh perubahan pengetahuan etnobotani antar KU yang terjadi pada

masyarakat Kerinci mengindikasikan bahwa proses pewarisan pengetahuan masih terjadi secara baik (CA<0,1). Adanya pengaruh dari dalam diri individu dan dari luar dapat menyebabkan penurunan retensi pengetahuan etnobotani yang pada akhirnya akan mengakibatkan perubahan tingkat pengetahuan (Zent, 2009). Selain itu berkurangnya luas kawasan hutan (Liu, 2007), penjajahan dan perpindahan masyarakat lokal ke tempat lain juga dapat mempengaruhi tingkat pengetahuan dan retensi etnobotani (Oliver, 2013). Secara umum perubahan pengetahuan yang terjadi masih berada pada tingkat yang rendah (CA < 0,1) kecuali di Dusun Ulu Jernih dimana nilai CA > 0,1 yaitu 0,12. Tingginya perubahan pengetahuan mengindikasikan bahwa sistem pewarisan pengetahuan tradisional tidak berlangsung baik dan dikhawatirkan akan hilang. Sedangkan perubahan pengetahuan tahunan di Dusun Baru Lempur dan Dusun Lama Tamiai memiliki CA < 0,1. Rendahnya nilai perubahan pengetahuan pada masing-masing KU mengindikasikan bahwa sistem pewarisan pengetahuan tradisional masih berlangsung dengan baik sistem pewarisan pengetahuan tradisional dinilai baik karena dilakukan oleh orang tua kepada anaknya sejak dini. Selain masih adanya proses pewarisan pengetahuan dari generasi tua kepada generasi muda juga disebabkan karena pendidikan formal yang diperoleh di sekolah-sekolah dan pendidikan non formal lainnya.

Gambar 4. Perubahan pengetahuan etnobotani tahunan masyarakat Kerinci berdasarkan kelas umur

| 113


Tabel 7. Perubahan pengetahuan etnobotani di ketiga lokasi penelitian Dusun Baru Lempur Kelas umur/ Age class MG RG log RG RC CA V 0,983 1,000 0,000 1,000 0,000 IV 0,900 0,915 -0,038 0,915 -0,006 III 0,767 0,852 -0,069 0,780 -0,015 II 0,650 0,847 -0,072 0,661 -0,023 I 0,333 0,513 -0,290 0,339 -0,044 Dusun Lama Tamiai Kelas umur/ Age class MG RG log RG RC CA V 0,850 1,000 0,000 1,000 0,000 IV 0,830 0,976 -0,010 0,976 -0,002 III 0,750 0,904 -0,044 0,882 -0,008 II 0,600 0,800 -0,097 0,706 -0,020 I 0,300 0,500 -0,301 0,353 -0,043 Desa Ulu Jernih Kelas umur/ age class MG RG log RG RC CA V 0,550 1,000 0,000 1,000 0,000 IV 0,650 1,182 0,073 1,182 0,012 III 0,550 0,846 -0,073 1,000 0,000 II 0,483 0,878 -0,056 0,878 -0,008 I 0,217 0,449 -0,347 0,395 -0,040 Keterangan: Mg (tingkat pengetahuan etnobotani), RG (tingkat retensi), RC (tingkat retensi komulatif), CA (perubahan tahunan)

Gambar 5. Perubahan pengetahuan etnobotani pada kelas umur yang sama di ketiga lokasi penelitian Berdasarkan hasil analisis data terhadap perubahan pengetahuan masyarakat Kerinci pada kelas umur yang sama di ketiga lokasi menunjukan bahwa pada setiap kelas umur, Dusun Baru Lempur memiliki tingkat retensi (Mg) tertinggi (Gambar 5). Pengetahuan etnobotani yang dimiliki oleh masyarakat Kerinci bersifat kecil, unik, kompak dan berproses secara turun temurun. Penurunan tingkat

114

|

pengetahuan etnobotani dapat menyebabkan hilangnya pengetahuan pada generasi mendatang oleh karena itu diperlukan upaya peningkatan pendidikan masyarakat berbasis pengetahuan lokal. Hal ini sejalan dengan cita-cita pembangunan nasional ‘nawacita’ (sembilan cita-cita) bangsa dalam mewujudkan dan meningkatkan kesejahteraan manusia Indonesia.


KESIMPULAN Pengetahuan etnobotani yang dimiliki oleh masyarakat Kerinci ditunjukkan oleh kemampuan mereka untuk mengenal dan memanfaatkan berbagai spesies tumbuhan yang terdapat di sekitar mereka tinggal. Tercatat 234 spesies tumbuhan berguna dari 75 famili yang terdiri dari bahan makanan pokok dan sumber karbohidrat (9); buahbuahan (24), sayuran (29), bahan perasa (5), bahan stimulan (6), bahan bangunan dan konstruksi (15), bahan peralatan (12) dan bahan obatan (200). Pemanfaaatan untuk keperluan bahan pangan (makanan pokok, buah-buahan, sayuran, perasa, bahan stimulan, bahan minuman) menunjukkan bahwa masyarakat Kerinci telah memiliki kemandirian dalam pemenuhan kebutuhan bahan pangan, sedangkan pemanfaatan 200 spesies tumbuhan sebagai bahan obat-obatan menunjukkan bahwa mereka juga telah mampu memenuhi kebutuhan pengobatan secara tradisional. Saat ini tingkat pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci berada pada level sedang (Mg = 0.625) dengan tingkat retensi tertinggi berada pada kelas umur empat (RG = 1.024) dan terjadi perubahan tahunan rata-rata yang cendrung menurun. Hal ini dapat menyebabkan hilangnya pengetahuan etnobotani masyarakat Kerinci, sehingga perlu dilakukan upaya peningkatan pendidikan bagi generasi mudanya.

UCAPAN TERIMA KASIH Terima kasih disampaikan kepada Dirjen Pendidikan Tinggi (Dikti) yang telah memberikan bantuan biaya penelitian melalui Hibah Disertasi Doktor sesuai Surat Perjanjian Pelaksanaan Penugasan Penelitian Hibah Disertasi Doktor Nomor: 505/H-5/LPPM/UMP/VI/2014 sehingga penelitian ini dapat dilaksanakan.

DAFTAR PUSTAKA

Aumeeruddy, Y. and J. Bakels. 1994. Management of Sacred Forest in the Kerinci Valley Central Sumatra: An Example of Conservation of Biological Diversity and Its Cultural Basis. Journal d'agriculture traditionnelle et de botanique appliquée 36(2): 39–65. Doi: 10.3406/jatba.1994.3545 Berk, LE. 2006. Child Development (7th ed). Boston, MA: Allyn & Bacon Cotton, C.M. 1996. Ethnobotany: Principles and Applications. New York. John Wiley & Sons Eken, G., L. Bennun, T.M. Brooks, W. Darwall, L.D. Fishpool, M. Foster, . . . and A. Tordoff. 2004. Key biodiversity areas as site conservation targets. BioScience 54(12): 1110–1118. Garibaldi, A. and N. Turner. 2004. Culturally Keystone Species: Implications for Ecological Conservation and Restoration. Ecology and Society 9(3): 1–18. Garcia, V.R., V. Vadez, S. Tanner, T. Huanca, W.R. Leonard, T. McDade. 2007. Ethnobotanical Skills and Clearance of Tropical Rain Forest for Agricultur: A Case Study in the Lowland of Bolivia. AMBIO: A Journal of the Human Environment 36(5): 406–408. Llambí, L. D., Smith, J. K., Pereira, N., Pereira, A. C., Valero, F., Monasterio, M., and Dávila, M. V. 2005. Participatory planning for biodiversity conservation in the high tropical Andes: Are farmers interested?. Mountain Research and Development 25(3), 200-205. Martin, G.J 1995. Ethnobotany People and Plants Conservation Manual. Chapman & Hall London – Weinheim - New York – Tokyo – Melbourne - Madras Oliver, J.S. 2013. The role of traditional medicine practice in primary health care within Aboriginal Australia: a review of the literature. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine 9:46. Doi:10.1186/1746-4269-9-46

Anderson, E.N., D. M. Pearsall, E. S. Hunn, and N.J. Turner. 2011. Ethnobiology. Published by John Wiley & Sons, Inc., Hoboken, New Jersey

| 115


Parrota, J.A., L.H. Fui, L. Jinlong, P.S. Ramakhrisnan, Y.Y Chang. 2009. Traditional forest-related knowlwdge and sustainable forest management Asia. Forest Ecology and Management 257(10): 1987–1988 Pei, S., G. Zhang, H. Huai. 2009. Application of Traditional Knowledge ini forest Management: Etnobotanical Indicators of Sustainable Forest Use. Forest Ecology and Management 257(10): 2017–2021 Phillips, O and Gentry, AH. 1993.The Useful Plants of Tambopota. Peru I. Statistical Hypothesis Tests with a New Quantitative Technique. Economic Botany 47 (1):15-32. Saynes-Vásquez, A., Caballero, J., Meave, J. A., and Chiang, F. 2013. Cultural change and loss of ethnoecological knowledge among the Isthmus Zapotecs of Mexico. Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine 9:40. Doi:10.1186/1746-4269-9-40. Shell, D., R. Puri, M. Wan, I. Basuki, M. van Heist, N. Lisnawati, . . . and I., Samsoedin. 2006. Recognizing Local People's priorities for Tropical Forest Biodiversity. AMBIO: A Journal of the Human Environment 35(1): 17–24. Doi: 10.1579/0044-7447-35.1.17 Turner, N.J. 1988. The Importance of a Rose: Evaluating the Cultural Significant of Plants in Thompson and Lilloet Interior Salish. American Antropologist 90(2): 272-290.

116

|

Turner, W. R., Brandon, K., Brooks, T. M., Costanza, R., Da Fonseca, G. A. B., & Portela, R. 2007. Global Conservation of Biodiversity and Ecosystem Services. BioScience 57(10), 868– 873. Doi:10.1641/B571009 Waluyo, E.B. 2009. Etnobotani: Memfasilitasi penghayatan, pemutakhiran pengetahuan dan kearifan local dengan menggunakan prinsippirinsip dasar ilmu pengetahuan. Purwanto Y. dan Waluyo E. B (Ed.). Prosiding Seminar Nasional etnobotani IV, Cibinong Science Center LIPI. Zent, S. 2009. Methodology for Developing a Vitality Index of Traditional Environmental Knowledge (VITEK) for the Project “Global Indicators of The Status and Trends of Linguistic Diversity and Traditional Knowledge” Principal Investigator Centro de Antropologia Instituso Venezolano de Investigaciones Cientificas (IVIC). Caracas Venezuela Zuhud, EAM. 2013. Kedaulatan Kampung Konservasi Biodiversitas Hutan dan Kesehatan Manusia Indonesia. Dalam buku Pembangunan Kehutanan Indonesia Baru Refleksi dan Inovasi Pemikiran. Soehardjito D., Haryanto R.P. (ed.). Bogor (ID): IPB Press.


Buletin Kebun Raya Vol. 19 No. 1, Januari 2016 [117–128] e-ISSN: 2460-1519 | p-ISSN: 0125-961X Research Article

KONSERVASI Paphiopedilum supardii Braem & Loeb DENGAN METODE PENYIMPANAN BIJI DAN PERBANYAKAN SECARA IN VITRO Conservation of Paphiopedilum supardii Braem & Loeb by Seed Storage and In Vitro Propagation Elizabeth Handini *, D.M. Puspitaningtyas dan R. Vitri Garvita Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya Bogor, LIPI Jl. Ir. H. Juanda 13, Bogor 16003 *Email: [email protected] Diterima/Received: 9 Maret 2016; Disetujui/Accepted: 2 Juni 2016

Abstract Paphiopedilum supardii Braem & Loeb is one of Slipper Orchids from Kalimantan, which is included in Appendix I of CITES. It is a critically endangered orchid with restricted habitat endemic to Kalimantan, found growing at altitude of 600-900 m above sea level. In Indonesia, this species is categorized as the priority species for conservation. The aim of this research was to conserve this orchid species through seed storage method in deep freezer (-20 oC) then evaluate the seed germination and growth on some medium composition. Four different media composition were used to test the germination i.e. Knudson C with micro nutrient (KCA), modified Knudson C (KC), modified Vacin & Went (VW) and modified leaf fertilizer (HS). Seed viability test was carried out in 0, 1, 2, 3, 6, 9 and 12 months after storage. The result showed that the seeds of Paphiopedilum supardii were able to germinate in four different germination medium after 12 months of storage. The germination test showed that Knudson C medium with micronutrient (KCA) resulted on the best performance of green protocorm, while the other media tend to produce brown protocorm. Unfortunately, KCA gave the lowest percentage of germination. Furthermore, subculture of protocorm for multiplication and rooting phase was the best in Knudson C medium with addition of both micronutrient and organic materials. Keywords: in vitro medium, orchid, Paphiopedilum supardii, protocorm, seed storage.

Abstrak Paphiopedilum supardii Braem & Loeb adalah salah satu anggrek sepatu atau anggrek kantong semar endemik Kalimantan. Anggrek langka yang terancam punah ini termasuk dalam Appendix I CITES. Anggrek ini tumbuh pada ketinggian 600-900 m di atas permukaan laut. Di Indonesia, anggrek ini dikategorikan sebagai spesies prioritas untuk konservasi. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk melestarikan spesies anggrek P. supardii Braem & Loeb melalui penyimpanan biji pada suhu -20 oC. Percobaan dilakukan pada pengujian viabilitas biji setelah penyimpanan pada empat media. Media yang digunakan untuk menguji perkecambahan yaitu Knudson C dengan mikro nutrisi (KCA), modifikasi Knudson C (KC), modifikasi Vacin & Went (VW) dan

| 117

E. Handini et al. Konservasi Paphiopedilum supardii Braem& Loeb dengan Metode Penyimpanan Biji .....

modifikasi pupuk daun (HS). Uji viabilitas biji dilakukan dengan interval waktu 0, 1, 2, 3, 6, 9 dan 12 bulan setelah penyimpanan. Hasil penelitian menunjukkan bahwa biji P. supardii mampu berkecambah pada empat media yang diujikan sampai jangka waktu penyimpanan 12 bulan. Media perkecambahan terbaik adalah Knudson C dengan penambahan mikronutrien (KCA) dengan protocorm yang tumbuh sempurna berwarna hijau, sedangkan media lain menghasilkan protocorm yang berwarna coklat. Namun di sisi lain, KCA memberikan persentase perkecambahan terendah. Media terbaik subkultur protocorm untuk fase perbanyakan dan pengakaran adalah media Knudson C dengan penambahan mikronutrien dan bahan organik (air kelapa dan ekstrak taoge). Kata Kunci : anggrek, media in vitro, Paphiopedilum supardii, penyimpanan benih, protocorm,

PENDAHULUAN Paphiopedilum merupakan salah satu marga anggrek yang sangat berharga di bidang hortikultura. Anggrek Paphiopedilum dalam bidang perdagangan internasional, masuk dalam Appendix 1 CITES (Risna et al., 2010). Anggrek dari marga ini telah banyak dibudidayakan dan bahkan sudah banyak hibrida atau silangan yang dihasilkan. Anggrek ini tumbuh tersebar di India, China, Asia Tenggara, Papua New Guinea dan Kepulauan Salomon. Spesies baru dari marga ini banyak ditemukan di daerah Kalimantan (Indonesia) dan China (Banks, 2004). Eksploitasi anggrek yang berlebihan oleh para pemburu anggrek, serta kerusakan habitat karena kegiatan lainnya, menyebabkan jenis-jenis anggrek ini menjadi langka dan terancam punah (Rankou dan O'Sullivan, 2015). Perbanyakan anggrek langka Paphiopedilum sudah merupakan tugas prioritas Kebun Raya sebagai lembaga konservasi. Perbanyakan beberapa spesies Paphiopedilum yang telah dikembangkan oleh Laboratorium Kultur Jaringan Kebun Raya Bogor sudah pernah dilaporkan oleh Handini dan Mursidawati (2008) antara lain: P. glaucophyllum, P. primulinum, P. superbiens, dan P. limeanum. Anggrek kasut P. supardii merupakan salah satu anggrek endemik Kalimantan yang menarik sebagai tanaman hias, sehingga sangat penting untuk dikonservasi. P. supardii dikategorikan sebagai spesies prioritas untuk konservasi di Indonesia (Risna et al., 2010). Bentuk bunga yang unik dan rangkaian bunganya dalam satu tandan dapat mencapai enam

118

|

kuntum merupakan kelebihan anggrek ini (Gambar 1). Habitat hidupnya menempel pada batu-batu yang ditumbuhi lumut (Banks, 2004). Upaya yang telah dilakukan oleh Laboratorium Kultur Jaringan Kebun Raya Bogor untuk mengkonservasi anggrek-anggrek langka selain dengan perbanyakan secara in vitro juga dengan metode penyimpanan biji. Penyimpanan biji anggrek pada suhu kamar sangat tidak disarankan karena viabilitas biji dapat menurun dengan cepat (dalam kurun waktu 6 bulan) (Handini dan Puspitaningtyas, 2009). Penyimpanan biji dengan mengurangi kadar air hingga 13% sebelum disimpan dalam freezer (-20 o C) dapat memperpanjang masa simpan biji. Biji Anggrek Dendrobium stratiotes yang disimpan dalam freezer -20oC mampu bertahan hingga 12 bulan (Puspitaningtyas dan Handini, 2011). Teknologi yang secara umum sudah banyak digunakan di bank biji adalah penyimpanan biji anggrek dengan menurunkan kadar airnya hingga 5% dan disimpan pada suhu beku -20oC (Seaton et al., 2013). Kadar air yang rendah dapat mengurangi kerusakan pada biji karena kontaminasi jamur atau bakteri dan suhu rendah mampu menghambat perkembangan mikrobia Uji viabilitas biji anggrek yang disimpan dilakukan dengan metode langsung yaitu dengan mengecambahkan biji-biji anggrek pada media buatan dan menghitung jumlah biji-biji yang berkecambah maupun yang tidak berkecambah (Puspitaningtyas dan Handini, 2014). Keberhasilan perkecambahan biji anggrek tergantung terutama pada viabilitasnya dan media yang digunakan untuk


Gambar 1. Bunga Paphiopedilum supardii perkecambahan. Media kultur seperti Knudson C (KC), Vacin and Went (VW) atau modifikasinya telah banyak digunakan untuk perkecambahan maupun pembesaran pertumbuhan semai biji anggrek (Arditti, 1967). Laboratorium Kultur Jaringan Kebun Raya Bogor mencoba menggunakan empat jenis media (Knudson C ditambah unsur mikro, modifikasi Knudson C, pupuk daun 25:5:20, Vacin and Went dengan penambahan bahan organik untuk perkecambahan anggrek Paphiopedilum. Keempat media semai tersebut secara rutin sudah digunakan dalam penyemaian biji-biji anggrek di Kebun Raya (Puspitaningtyas dan Handini, 2014; Puspitaningtyas dan Handini, 2011; Handini dan Puspitaningtyas, 2009; Handini dan Mursidawati, 2008). Namun, masing-masing spesies anggrek mempunyai kesesuaian media tumbuh yang berbeda-beda. Banyak jenis anggrek yang bijinya mudah dikecambahkan pada sejumlah jenis media kultur (Withner, 1959; Arditti, 1979), tetapi ada beberapa marga anggrek yang tergolong sulit berkecambah (Stimart dan Ascher, 1981), seperti Cypripedium, Paphiopedilum, Phragmipedilum dan Selenipedium (Arditti dan Harrison, 1977). Banyak penelitian tentang media yang dilakukan khusus untuk perkecambahan marga anggrek tersebut (Thompson, 1974; Flamee, 1978; Ernst, 1980; Thomale, 1954). Anggrek Paphiopedilum memiliki masalah perkecambahan dengan tingkat kesulitan yang tinggi dibanding jenis anggrek lainnya seperti Dendrobium, Phalaenopsis, dan Vanda karena adanya hambatan impermeabilitas pada kulit bijinya (Arditti, 1967). Hal ini disebabkan karena dinding testa (kulit biji)

Paphiopedilum lebih tebal dan bersifat impermeabel (Has-von Schmude et al., 1986). Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh penyimpanan biji anggrek pada suhu -20oC terhadap daya tumbuhnya dan multiplikasi tunas pada beberapa komposisi media.

BAHAN DAN METODE Penelitian dilakukan di Laboratorium Kultur Jaringan Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun RayaLIPI, di Bogor. Penyimpanan biji dilakukan pada bulan November 2009 sampai dengan Maret 2011. Penelitian lanjutan untuk pembesaran eksplan protocorm P. supardii dilakukan pada bulan Mei 2012 sampai dengan Oktober 2013. Bahan tanaman yang digunakan adalah biji anggrek P. supardii yang berasal dari satu buah yang telah masak fisiologis. Biji diambil dari satu buah yang memiliki warna kulit buah yang menghitam, dan bila dipencet tekstur buah agak lunak atau dari buah yang merekah rusuk buahnya. Satu buah diperkirakan mengandung sekitar 12.000–24.000 biji berembrio maupun biji hampa ( belum ada pustaka yang menyatakan secara pasti jumlah biji dari satu buah anggrek jenis ini ). Penelitian disusun dalam Rancangan Acak Lengkap satu faktor, yaitu perlakuan media perkecambahan. Empat komposisi media yang diuji adalah:  KC yaitu media dasar Knudson C dengan penambahan bahan organik (air kelapa 150 ml L-1

| 119


dan ekstrak taoge 150 g L-1), gula 20 g L-1 dan arang aktif 1 g L-1  KCA putih yaitu media dasar Knudson C murni dengan penambahan gula 20 g L-1, dan unsur mikro (H3BO3 2,8 mg L-1, MoO3 3,12 mg L-1, ZnSO4 0,8 mg L-1, dan CuSO4 16,55 mg L-1).  HS (Pupuk daun 25:5:20 dengan penambahan gula 15 g L-1, pepton 2 g L-1, ekstrak kentang 40 g L-1, dan arang aktif 1 g L-1. VW yaitu Vacin and Went dengan penambahan bahan organik (air kelapa 150 ml L-1, ekstrak taoge 100 g L-1, ekstrak tomat 100 g L-1), gula 20 g L-1, arang aktif 1 g L-1 dan NAA 10 ppm. Pengujian viabilitas biji dilakukan pada biji yang telah disimpan dalam freezer dengan suhu -20 o C bulan ke 0, 1, 2, 3, 6, 9, dan 12 setelah penyimpanan. Pengamatan dilakukan dengan menghitung jumlah kecambah hijau, kecambah coklat dan biji yang tidak berkecambah (mati). Setiap media perlakuan diulang tiga kali dengan tiga petri per ulangan dan >100 benih per petri. Data dianalisis dengan menggunakan ANOVA, bila terdapat beda nyata maka dilanjutkan dengan uji Tukey HSD (Beda Nyata Jujur) . Metode Penyimpanan Biji dikeluarkan dari dalam buah, disaring dengan saringan teh dan dimasukkan dalam cawan petri, kemudian diletakkan dalam desikator yang berisi silica gel selama 5 hari untuk mengurangi kadar air. Selanjutnya biji yang berasal dari satu buah tersebut dimasukkan dalam satu botol yang tertutup rapat dan dimasukkan dalam freezer dengan suhu -20 °C.

dibilas dengan aquadest steril tiga kali. Setelah itu, biji didistribusikan dalam media semai (KC, KCA, HS dan VW). Penghitungan kecambah biji dilakukan pada jumlah biji yang berkecambah menjadi protocorm, yaitu embrio biji yang mengalami pembengkakan (swollen) setelah proses imbibisi air hingga merobek testa biji (Seaton dan Ramsay, 2005). Metode Multiplikasi Tahap selanjutnya setelah biji berkecambah adalah multiplikasi protocorm atau tunas yang dilakukan dengan cara subkultur atau pindah tanam. Media transplanting adalah salah satu dari empat media semai (KC, KCA, HS dan VW) yang memberikan hasil terbaik, diharapkan media ini juga sesuai untuk mendukung terjadinya multiplikasi tunas dan merangsang percepatan pertumbuhan daun serta akar. Berdasarkan hasil uji semai sebelumnya media terbaik untuk perkecambahan P. supardii adalah media dasar Knudson C. Media ini dimodifikasi untuk mendukung pertumbuhan eksplan selanjutnya dengan variasi sebagai berikut: a.

b.

c. Uji Perkecambahan/viabilitas biji anggrek Uji perkecambahan dilakukan pada biji yang disimpan 0, 1, 2, 3, 6, 9, 12 bulan. Sterilisasi biji dilakukan sebelum biji disemai untuk uji viabilitas. Sampel biji dimasukkan dalam botol yang berisi aquadest steril dan ditambah 3 tetes tween, kemudian divakum selama 1 jam (sampai biji tenggelam). Setelah itu, kegiatan dilakukan di dalam laminar air flow. Biji dicuci dengan larutan clorox 10% selama 10 menit, kemudian biji dicuci lagi dengan larutan clorox 5% selama 5 menit. Biji kemudian

120

|

KC yaitu Knudson C dengan penambahan arang aktif 1 g L-1 dan bahan organik (air kelapa 150 ml L-1, ekstrak taoge 150 g L-1). KCA hitam yaitu Knudson C dengan penambahan arang aktif 1 g L-1; bahan organik (air kelapa 150 ml L-1, ekstrak taoge 150 g L-1); dan unsur mikro (H3BO3 2,8 mg L-1, MoO3 3,12 mg L-1, ZnSO4 0,8 mg L-1, dan CuSO4 16,55 mg L1 ). Media ini merupakan modifikasi Knudson C dengan menggabungkan penambahan bahan organik dan unsur mikro. KCA putih yaitu Knudson C dengan penambahan unsur mikro (H3BO3 2,8 mg L-1, MoO3 3,12 mg L1 , ZnSO4 0,8 mg L-1, dan CuSO4 16,55 mg L-1).

Metode Pembesaran Protocorm Tujuan pengamatan dari fase ini adalah untuk mendapatkan media yang dapat menghasilkan bibit yang memiliki ukuran daun dan akarnya besar. Media yang dipakai adalah media transplanting tersebut di atas yang terseleksi dan sudah dicoba sebelumnya, yang dapat menginduksi pertambahan tunas dan dapat mempercepat pertumbuhan daun dan akar.


Data dianalisis dengan menggunakan ANOVA, bila terdapat beda nyata maka dilanjutkan dengan uji Tukey HSD.

HASIL DAN PEMBAHASAN Karakteristik morfologi dan sifat simpan biji Paphiopedilum supardii Bentuk biji anggrek marga P. supardii umumnya bulat lonjong dengan kedua ujung menyempit. Ukuran biji P. supardii panjangnya 0,5-1 mm dan lebar ±0,2 mm (Gambar 2-A). Embrio terletak pada bagian tengah biji. Hasil pengamatan ini menunjukkan bahwa biji P. supardii tidak memiliki endosperm yang berfungsi sebagai tempat cadangan makanan yang diperlukan dalam proses perkecambahan biji (Gambar 2). Biji P. supardii memiliki testa (kulit biji) yang tebal. Menurut Has-

A. Ukuran Biji Paphiopedilum supardii (perbesaran 4x10; skala 1:10 mm)

B.

von Schmude et al. (1986) testa biji Paphiopedilum mempunyai lapisan kedap air yang dapat menurunkan permeabilitasnya dan menghambat perkecambahan. Upaya peningkatan permeabilitas testa dan merangsang perkecambahan biji anggrek dapat dilakukan dengan cara merendam biji dalam larutan sodium atau calcium hypochlorite selama 510 menit, sehingga embrio akan tampak jelas di tengah-tengah bijinya (Gambar 2-C). Biji P. supardii memerlukan substrat yang dapat menginduksi proses perkecambahan dan mendukung pertumbuhannya untuk menjadi individu baru, sehingga diperlukan media perkecambahan dengan komposisi tertentu untuk mendukung proses tersebut. Berdasarkan hasil pengamatan biji anggrek P. supardii berkecambah 2,5-3 bulan setelah semai.

Biji Paphiopedilum supardii (perbesaran 10x10; skala 1:10 mm)

C. Embrio Biji Paphiopedilum supardii (perbesaran 10x10; skala 1:10 mm)

Gambar 2. Biji Anggrek Paphiopedilum supardii Uji perkecambahan Paphiopedilum supardii Fase semai Hasil uji viabilitas biji P. supardii pada 0, 1, 2, 3, 6, 9 dan 12 bulan setelah penyimpanan menunjukkan perbedaan daya tumbuh (vigor) dari biji yang ditumbuhkan pada keempat media. Media Knudson C murni ditambah unsur mikro (KCA) menghasilkan penampilan protocorm paling baik dilihat dari keragaan bentuk protocorm yang tumbuh normal dan berwarna hijau. Media pupuk daun (HS), Vacin & Went (VW) maupun Knudson C dengan penambahan bahan organik tanpa unsur mikro (KC) memberikan hasil persentase protocorm yang tinggi tetapi warna dari protocorm yang tumbuh banyak

yang berwarna coklat atau coklat kehijauan dan tidak dapat tumbuh normal (Gambar 3; Tabel 1). Protocorm hijau akan menghasilkan planlet yang tumbuh besar sempurna lengkap dengan tunas dan akar, sedangkan protocorm coklat tidak dapat tumbuh sempurna, daun dan akar tidak terbentuk dan akhirnya mati. Hal ini menunjukkan bahwa unsur mikro sangat dibutuhkan dalam perkecambahan biji anggrek P. supardii. Ukuran Protocorm yang tumbuh semakin mengecil seiring dengan semakin lamanya penyimpanan biji karena viabilitas biji yang makin rendah, sehingga pertumbuhan kecambah juga makin lambat.

| 121


Umur simpan biji

MEDIA PERKECAMBAHAN BIJI Paphiopedilum supardii VW

HS

KC

KCA

0 Bulan (biji segar)

1 Bulan

2 Bulan

3 Bulan

6 Bulan

9 Bulan

12 Bulan

Gambar 3. Protocorm hasil perkecambahan biji anggrek Paphiopedilum supardii umur 3 bulan setelah semai pada empat media dan waktu simpan yang berbeda (VW=modifikasi Vacin dan Went, KC = modifikasi Knudson C, KCA= Knudson C murni ditambah unsur mikro, HS=modifikasi pupuk daun).

122

|


Tabel 1. Persentase perkecambahan biji Paphiopedilum supardii yang ditumbuhkan pada empat macam media dengan waktu simpan yang berbeda Media

Waktu Simpan Biji (bulan) 0

1

2

3

6

9

12

0,0 b 0,0 b 46,7 a 0,0 b

0,0 b 0,0 b 29,3 a 0,0 b

0,0 b 0,0 b 26,7 a 0,0 b

89,4 a 88,5 a 0,0 b 94,3 a

79,5 b 89,6 a 4,1 c 91,6ab

73,5 b 75,3 b 0,0 c 83,7 a

Persentase Kecambah (protocorm) Hijau (%) VW KC KCA HS VW KC KCA HS

0,0 b 0,0 b 77,7 a 0,0 b

0,0 b 0,0 b 0,0 b 0,0 b 0,0 b 0,0 b 50,5 a 48,3 a 48,2 a 0,0 b 0,0 b 0,0 b Persentase Kecambah (protocorm) coklat (%) 88,8 a 89,7 a 78,9 b 88,4 a 86,4 a 87,7 ab 81,9 ab 88,0 a 1,3 b 0,0 c 0,8 c 0,0 b 91,2 a 82,2 b 85,6 a 90,1 a Persentase Biji tidak berkecambah (%)

VW 11,2 10,3 21,1 11,6 10,5 20,5 26,5 KC 13,6 12,3 18,1 12,0 11,5 10,4 24,7 KCA 21,0 49,5 51,0 51,8 53,3 66,6 73,2 HS 8,7 17,8 14,4 9,8 5,7 8,4 16,3 Keterangan: Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak menunjukkan beda nyata pada taraf 5% (P<0,05) dalam uji Tukey HSD. VW=modifikasi Vacin dan Went, KC = modifikasi Knudson C, KCA= Knudson C murni ditambah unsur mikro, HS=modifikasi pupuk daun. Jumlah kecambah hijau maupun kecambah coklat pada media KCA berbeda nyata dengan ketiga media lainnya pada semua hasil uji (Tabel 1). Persentase kecambah hijau 77,74% dan menurun secara gradual dengan bertambahnya umur simpan biji hingga 12 bulan menjadi 26,75%. Media KCA mengandung unsur mikro antara lain Cuprum (Cu), Seng (Zn), unsur besi (Fe), Boron (B) dan Molibdenum (Mo). Unsur-unsur mikro ini berperan penting dalam pertumbuhan dan pembentukan klorofil yang memberi warna hijau pada protocorm. Menurut Marschner (1995), Cu dan Zn berperan dalam pengaturan sistem enzim tanaman dan Fe berperan dalam pembentukan klorofil, B berperan sebagai kofaktor dalam sintesis klorofil, terlibat dalam transport karbohidrat dan sintesis asam nukleat, sedangkan Mo essensial untuk fiksasi nitrogen serta kofaktor dalam reduksi nitrat (Marschner, 1995). Persentase biji tidak berkecambah pada media KCA makin meningkat dengan semakin lamanya masa

penyimpanan biji (Tabel 1), karena biji semakin tidak viable. Protocorm P. supardii pada media KCA dapat tumbuh menjadi planlet yang sempurna. Media pupuk daun dan Vacin & Went tidak sesuai untuk perkecambahan biji anggrek P. supardii yang ditunjukkan dengan protocorm yang berwarna coklat dan terhentinya perkembangan protocorm menjadi planlet yang sempurna karena tanpa penambahan unsur mikro, (Handini dan Mursidawati, 2008). Fase Multiplikasi Tunas Setelah 2 bulan induksi dan hasil subkultur protocorm pada media Knoudson C yang telah dimodifikasi menunjukkan rerata jumlah tunas per botol pada media KCA hitam adalah 28,44 tunas, media KC 24,86 tunas dan pada media KCA putih 0,5 tunas (Gambar 4). Media KCA putih menumbuhkan tunas paling sedikit dengan kondisi tunas yang tidak baik, pertumbuhan yang lambat dan daunnya makin lama makin mencoklat kemudian tunas mati (Gambar 4-B). Media KCA putih (tanpa bahan organik air kelapa dan ekstrak taoge) yang memberikan hasil paling baik untuk perkecambahan biji P. supardii

| 123


tetapi ternyata tidak cocok sebagai media pembesaran untuk pertumbuhan lanjut protocorm anggrek P. supardii. Sementara itu, media KC dan KCA hitam menghasilkan tunas relatif banyak, sehingga dapat dipakai untuk bahan perbandingan. Penambahan bahan organik dibutuhkan dalam multiplikasi dan pembentukan warna daun planlet. Kebanyakan media anggrek menggunakan gula sebagai sumber karbon (C). Gula yang digunakan dalam kultur jaringan anggrek berbeda-beda tingkatnya tetapi secara umum 2 – 5%. Zeatin dan zeatin ribose terkandung dalam air kelapa. Kedua hormon ini termasuk dalam golongan sitokinin yang berguna untuk menginduksi tunas (Arditti dan Ernst, 1993).

A

Fase Pembesaran Tunas Eksplan yang berupa tunas ditumbuhkan pada media KCA putih (Knudson C dengan penambahan unsur mikro) banyak yang mati karena komposisi media tidak mendukung pertumbuhan eksplan. Hal ini menyebabkan data pada media KCA tidak dapat dianalisis. Eksplan yang tidak tumbuh tanpa BO membuktikan bahwa penambahan bahan organik sangat dibutuhkan pada tahap pembesaran eksplan tunas P. supardii. Hasil pengamatan (Gambar 5) menunjukkan bahwa pada fase pembesaran tunas, media dasar Knudson C dengan penambahan bahan organik yaitu

B

C Gambar 4. Pertumbuhan protocorm anggrek Paphiopedilum supardii pada media Knoudson C yang dimodifikasi pada 2 bulan setelah kultur, (A) media KC, (B) media KCA putih, dan (C) KCA hitam. Planlet berasal dari biji yang telah disimpan selama 12 bulan

124

|


air kelapa (150 ml L-1) dan ekstrak taoge (150 g L-1), merupakan kombinasi yang terbaik untuk tahap multiplikasi dan pengakaran. Semua parameter yang diamati pada planlet yang tumbuh di media KC lebih tinggi dibandingkan planlet yang tumbuh di media KCA hitam. Namun hanya jumlah akar dari planlet

anggrek P. supardii yang ditumbuhkan pada media KC dan KCA hitam yang berbeda nyata, sedangkan parameter jumlah daun dan panjang tunas pada kedua macam media tersebut tidak menunjukkan beda nyata (Tabel 2).

Tabel 2. Pertambahan jumlah daun, panjang tunas, dan jumlah akar kultur anggrek Pahiopedilum supardii setelah 8 bulan subkultur pada dua macam media. Parameter yang diamati Media KC KCA hitam Keterangan

Jumlah daun 10,90 a

Panjang tunas 0,95 a

Jumlah akar 13,75 a

9,35 a

0,55 a

11,05 b

= Angka-angka yang diikuti oleh huruf yang sama pada kolom yang sama tidak menunjukkan beda nyata pada taraf 5% (P<0,05) dalam uji Tukey (HSD). KC= modifikasi Knudson C+ arang aktif+air kelapa + ekstrak taoge; KCA hitam= modifikasi Knudson C+arang aktif+air kelapa+ ekstrak taoge+ unsur mikro.

Air kelapa dan ekstrak taoge merupakan senyawa organik yang sering digunakan dalam aplikasi teknik kultur jaringan. Hal ini disebabkan air kelapa mangandung zat/bahan-bahan seperti unsur hara, vitamin, asam amino, asam nukleat dan zat tumbuh seperti auksin dan asam giberelat yang berfungsi sebagai penstimulir proliferasi jaringan, memperlancar metabolisme dan respirasi Tulecke et al., (1961). Kandungan fitohormon auksin antara lain dalam bentuk indole-3-acetic acid, sedangkan sitokinin antara lain dalam bentuk zeatin, kinetin, zeatin ribosida, dan lain-lain (Yong et al., 2009; Staden dan Drews, 1974) dengan komposisi ZPT Kinetin (sitokinin) 41,13 mg L-1, Zeatin (sitokinin) 34,16 mg L-1 dan IAA (auksin) 38,57 mg L-1 (Kristina dan Syahid, 2012).

jaringan tanaman pada media kultur. Jenis dan konsentrasi ZPT tergantung jenis tanaman, jaringan atau organ yang dikultur dan tujuan dari penelitian. Konsentrasi tinggi untuk auksin biasanya untuk merangsang pertumbuhan akar, sedangkan konsentrasi sitokinin yang tinggi mendukung pembentukan tunas. Jika diberi perlakuan yang seimbang antara auksin dan sitokinin maka akan membentuk massa sel yang tidak terdiferensiasi yang disebut kalus (Semiarti et al., 2014)

KESIMPULAN Biji anggrek P. supardii dapat disimpan hingga 12 bulan pada suhu -20 oC, namun viabilitas biji menurun menjadi 26,75% setelah 12 bulan penyimpanan.

Bahan organik dan hara diperlukan untuk pembesaran planlet. Secara umum media kultur jaringan tanaman mengandung beberapa atau semua komponen berikut: unsur makro, unsur mikro, vitamin, asam amino atau suplemen nitrogen (N), sumber karbon (C), bahan organic, ZPT dan zat pemadat (agar-agar). Konsentrasi masing-masing nutrisi perlu dipertimbangkan untuk memaksimumkan rerata pertumbuhan tanaman berbeda tiap jenisnya (Saad dan Elshahed, 2012). Zat pengatur tumbuh mempunyai peran yang penting dalam menentukan jalur perkembangan sel dan

Media

Semai yang terbaik untuk perkecambahan biji anggrek P. supardii adalah KCA putih (Knudson C dengan penambahan unsur mikro). Media terbaik untuk multiplikasi eksplan protokorm adalah, media Knudson C +arang aktif+air kelapa+ ekstrak taoge+ unsur mikro(KCA hitam), sedangkan media terbaik pada fase

pertumbuhan adalah, media

Knudson C + arang aktif+air kelapa + ekstrak taoge (KC). Penelitian lanjutan perlu dilakukan untuk melihat daya simpan biji anggrek P. supardii sampai biji yang disimpan tidak mampu berkecambah. Uji perkecambahan juga perlu dilakukan dengan media semai Knudson C

| 125


dengan berbagai perlakuan bahan organik, unsur mikro atau perlakuan cahaya terhadap perkecambahannya.

DAFTAR PUSTAKA Arditti, J. 1967. Factors affecting the germination of orchid seeds. Botanical Review 33:1–97. Arditti, J. 1979. Aspects of the physiology of orchid. Advances in Botanical Research 7: 421–655. Arditti, J. and C.R. Harrison. 1977. Vitamin requirements and metabolism in orchids. In: Orchid Biology. (J. Arditti, ed.). Corneal University Press. New York. Pp. 159–175. Arditti, J, and Robert Ernst. 1993. Micropropagation of Orchids. A Willey-Interscience publication. Canada. Pp. 612–614. Banks, D.J., 2004. Handy Pocket Guide to The Orchids of Indonesia. Periplus Editions (HK). Ltd. Singapore. pp. 42–48. Ernst, R. 1980. Seed germination of Paphiopedilums. The Orchid Review, 88:235–236. Flamee, M. 1978. Influence of selected media and supplements on the germination and growth of Paphiopedilum seedlings. American Orchid Society Bulletin, 47:419–423. Handini, E. dan D.M. Puspitaningtyas. 2009. Studi penyimpanan biji anggrek Cymbidium finlaysonianum. In: Kurniawan, A., N.K.E. Undaharta, I.P.A.H. Wibawa, I.G. Tirta, W. Sujarwo (Eds.). Prosiding Konservasi Flora Indonesia dalam Mengatasi Dampak Pemanasan Global, UPT Balai Konservasi Tumbuhan Kebun Raya ‘Eka Karya’ Bali – LIPI. Hal: 183–190 Handini, E. dan S. Mursidawati., 2008. Perbanyakan Anggrek Kantong (Paphiopedilum spp.) di Laboratorium Kultur Jaringan Kebun Raya Bogor. Warta Kebun Raya 8(2):89–92. Has-von Schmude, N.F., E. Lucke, R. Ernst and J. Arditti. 1986. Paphiopedilum rothschildianum. American Orchid Society Bulletin, 55:579–584. Kristina, N.N. dan S.F. Syahid. 2012. Pengaruh Air Kelapa Terhadap Multiplikasi Tunas In Vitro, Produksi Rimpang, dan Kandungan Xanthorrhizol Temulawak di Lapangan. Jurnal Littri 18(3):125–134.

126

|

Marschner, H. 1995. Mineral Nutrition of Higher Plants. Second edition. Functions of Mineral Nutrients: Micronutrients. Academic Press Limited, Harcourt Brace & Company, Publishers. London. pp: 313–404. Puspitaningtyas, D.M. dan E. Handini. 2011. Uji Daya Simpan Biji Anggrek Dendrobium stratiotes Rchb.f. In: Widyatmoko, D., D.M. Puspitaningtyas, R. Hendrian, Irawati, I. A. Fijridiyanto, J.R. Witono, R.A. Risna, S.R. Ariati, S. Rahayu, T. Ng. Praptosuwiryo (eds.). Prosiding Seminar Nasional Konservasi Tumbuhan Tropika: Kondisi Terikini dan Tantangan ke Depan. Hal: 60–65. Puspitaningtyas, D.M. dan E. Handini. 2014. Penyimpanan Biji Anggrek Coelogyne spp. untuk Konservasi Ex Situ. Buletin Kebun Raya, 17(2):101–111. Rankou, H. and R. O'Sullivan. 2015. Paphiopedilum supardii. The IUCN Red List of Threatened Species 2015. http://www.iucnredlist.org/ details/43322279/0. Diunduh 13 Juni 2016. Risna, R.A., Y.W.C. Kusuma, D. Widyatmoko, R. Hendrian, dan D.O. Pribadi. 2010. Species Prioritas untuk Konservasi Tumbuhan Indonesia. Seri I. Arecaceae, Cyatheaceae, Nepenthaceae, Orchidaceae. Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya Bogor – LIPI. Bogor. Saad AIM dan AM Elshahed, 2012. Plant Tissue Culture Media. Intech open science. Doi: 10.5772/50569

Seaton, P.T., J.P. Kendon, H.W. Pritchard, D.M. Puspitaningtyas, and T.R. Marks. 2013. Orchid Conservation: the next ten years. Lankesteriana 13(1-2): 93–101. Seaton, P. and M. Ramsay. 2005. Growing Orchids from Seed. Royal Botanic Gardens, Kew. Semiarti E, A Purwantoro, dan A. Indrianto. 2014. In vitro Culture of Orchids: The Roles of Class-1 KNOXX Gene in Shoot Development. A Review. Journal of Biological Researches 20: 18–27. Stimart, D.P. and P.D. Ascher. 1981. In Vitro germination of Paphiopedilum seed or a completely defined medium. Scientia Horticulturae 14:165–170.


Thomale, H. 1954. Die orchideen. Eugen Ulmer Verlag. Stuttgart. Thompson, P.A. 1974. Orchids from seed: A new basal medium. The Orchid Review 82: 179– 183. Tulecke, W., L. H. Weinstein, A. Rutner and H. J. Laurencot. 1961. The Biochemical Composition of Coconut Water (Coconut Milk) as Related to its use in Plant Tissue Culture. Plant Res.Inc. Yonkers 3. New York.

Withner, C.L. 1959. Orchid Physiology. In: Withner, C.L. (ed). The orchids: a scientific survey. Ronald Press, New York. Yong J. W. H., Liya Ge, Yan Fei Ng and Swee Ngin Tan. 2009. The Chemical Composition and Biological Properties of Coconut (Cocos nucifera L.) Water. Molecules 14(12): 5144– 5164. Doi: 10.3390/molecules14125144. Diakses tanggal 15 Juni 2016.

| 127


128

|


Buletin Kebun Raya Vol. 19 No. 2, Juli 2016 [129–138] e-ISSN: 2460-1519 | p-ISSN: 0125-961X Scientific Article

AKLIMATISASI DINI MASSA PROTALUS TUMBUHAN PAKU BAHAN OBAT (Cibotium barometz (L.) J. Sm.) HASIL KULTUR SPORA SECARA IN VITRO Prothalli Rapid Acclimatization of the Medicinal Fern Cibotium barometz (L.) J. Sm. obtained from In Vitro Culture of Spores Yupi Isnaini* dan Titien Ngatinem Praptosuwiryo Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya-LIPI Jl. Ir. H. Juanda 13, Bogor 16003 *Email: [email protected] Diterima/Received: 31 Maret 2016; Disetujui/Accepted: 11 Mei 2016

Abstract The golden chicken fern, Cibotium barometz (L.) J. Sm (Cibotiaceae), is an important export commodity used in both traditional and modern medicines. The population of C. barometz in some countries has declined rapidly due to over-exploitation. Therefore, this species has been included in Appendix II of CITES (Convention on International Trade in Endangered Species) since 1976. The Center for Plant Conservation – Bogor Botanic Gardens-LIPI, is striving to conserve this species ex situ, and has started propagating it through in vitro spore culture. However, C. barometz sporophyte formation from in vitro cultured spores takes a long time. Thus, we sought to acclimatize prothalli masses (gametophytes) that had not yet developed sporophytes, in an attempt to accelerate sporophyte formation. Acclimatization experiments were carried out in two stages. The first experiment used prothalli masses aged 8 months after sowing, and tested 14 kinds of acclimatization media in a transparant plastic box. The second experiment tested prothalli masses aged 15 months with the four best media selected from the first experiment, namely: (1) minced roots of the tree fern Cyathea contaminans (APC); (2) APC: charcolaled rice husk (ASP) in a 1: 1 ratio; (3) APC: cocopeat (CP) in a 1:1 ratio, and (4) APC: ASP:CP (1:1:1), using a plastic box with a translucent plastic lid. Results of the second experiment showed that the best medium for acclimatization is a mixed media composed of minced roots of the tree fern Cyathea contaminans, charcoaled rice husk, and cocopeat (1:1:1). Up to 80% of the prothalli masses grew on the three ingredient mixed media, resulting in the formation of as many as 574 sporophytes. Keywords: Cibotium barometz, early acclimatization, in vitro spore culture, medicinal fern, prothallus

Abstrak Pakis emas, Cibotium barometz (L.) J. Sm (Cibotiaceae), merupakan salah satu komoditi ekspor penting untuk bahan obat tradisional maupun modern. Populasi C. barometz di beberapa negara telah menurun secara cepat karena eksploitasi berlebihan. Oleh karena itu, jenis ini telah dimasukkan dalam Appendix II CITES (Convention on International Trade in Endangered Species) sejak tahun 1976. Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya-LIPI berusaha keras untuk melestarikan jenis ini secara ex situ dan memperbanyak jenis ini melalui kultur spora

| 129

Y. Isnaini & T. N. Praptosuwiryo. Aklimatisasi Dini Massa Protalus Tumbuhan Paku Bahan Obat (Cibotium barometz (L.) J. Sm.) .....

secara in vitro. Pembentukan sporofit C. barometz dari kultur spora dalam kondisi in vitro membutuhkan waktu cukup lama. Kultur yang masih berupa massa protalus (gametofit) dan belum menghasilkan sporofit dicoba diaklimatisasi untuk mempercepat pembentukan sporofit. Percobaan aklimatisasi dilakukan dalam dua tahap. Percobaan tahap pertama menggunakan massa protalus berumur 8 bulan setelah semai dan 14 jenis media aklimatisasi dalam kotak plastik tembus cahaya. Percobaan tahap kedua menggunakan massa protalus berumur 15 bulan setelah semai dan empat jenis media yang terbaik dari percobaan pertama, yaitu: (1) cacahan akar pakis Cyathea contaminans (APC); (2) APC: arang sekam padi (ASP) (1:1); (3) APC : cocopeat (CP) (1:1) dan (4) APC : ASP : CP (1:1:1), dalam sungkup kotak plastik bertutup plastik tembus cahaya. Hasil percobaan kedua menunjukkan bahwa media terbaik untuk aklimatisasi adalah media campuran cacahan akar pakis Cyathea contaminans, arang sekam padi dan cocopeat (1:1:1). Persentase massa protalus yang tumbuh dan berkembang pada media campuran ketiga bahan tersebut mencapai 80% dengan jumlah total sporofit yang terbentuk sebanyak 574. Kata kunci : Aklimatisasi dini, Cibotium barometz, kultur spora in vitro, protalus, tumbuhan paku bahan obat

PENDAHULUAN Cibotium barometz dikenal dengan beberapa nama daerah, seperti pakis simpei, pakis emas, pakis monyet, gou ji (Chinese) dan Golden Chicken Fern (Rugayah et al., 2009). Cibotium barometz dilaporkan tumbuh di tanah yang asam (Zhang et al., 2008; Praptosuwiryo et al., 2011), di hutan primer dan sekunder di lereng-lereng bukit atau gunung pada ketinggian 600–800 m dpl (van Steenis and Holttum, 1982; Praptosuwiryo et al., 2011) dan di area hutan terbuka pada ketinggian sampai 1600 m dpl (Nguyen et al., 2009; Praptosuwiryo et al., 2011). Jenis ini tersebar di Cina, India, bagian barat Semenanjung Malaya, Indonesia (Jawa dan Sumatra), Myanmar, Thailand, Vietnam, Jepang (Zhang et al., 2008), Taiwan (van Steenis and Holttum, 1982), Laos dan Philipina (Nguyen et al., 2009). Cibotium barometz telah lama digunakan di Asia untuk bahan obat tradisional (Praptosuwiryo, 2003). Rimpang dari tumbuhan ini dipanen dari alam untuk bahan obat rematik dan typus (Puri, 1970; May, 1978; Praptosuwiryo 2003; Nguyen et al., 2009). Bulu yang menyelimuti rimpang dan tangkai daunnya digunakan untuk mempercepat pembekuan darah (Praptosuwiryo, 2003). Selain dimanfaatkan sebagai bahan obat atau herbal, C. barometz juga dimanfaatkan untuk berbagai keperluan. Rimpangnya yang mengandung 130

|

tepung digunakan sebagai sumber makanan (Lemmens et al., 1989). Bulunya juga dimanfaatkan untuk isi bantal (Chandra, 1970; van Steenis and Holttum, 1982) atau sebagai bahan pengepakan (May, 1978). Di pasar hortikultura, paku pohon ini juga digunakan sebagai tanaman hias dalam pot atau hiasan luar ruangan, sebagai pengisi taman, dan akarnya digunakan untuk media tumbuh anggrek (Oldfield, 1995). Banyaknya manfaat C. barometz sebagai bahan obat memicu maraknya pencarian bulu atau rimpangnya di hutan untuk diperdagangkan. Tumbuhan ini di Indonesia pada tahun 2005-2007 juga sempat marak diperdagangkan sebagai tanaman hias dalam pot. Walau demikian, tumbuhan paku ini masih berstatus sebagai tumbuhan liar, usaha-usaha budidaya belum dilakukan secara intensif. Sementara itu kebutuhan eksport nasional pili cibotii (bulu C. barometz) di Indonesia masih mengandalkan hasil eksploitasi dari alam. Oleh karena itu, sejak tahun 1976 jenis ini dimasukkan dalam APPENDIX II CITES sehingga pemanfaatan C. barometz ditentukan berdasarkan sistem kuota. Saat ini populasi-populasi lokal C. barometz, termasuk di Sumatera, mengalami tekanan keterancaman disebabkan oleh maraknya pengalihan fungsi lahan dan eksploitasi yang berlebihan untuk perdagangan. Oleh karena itu, kajian aspek-aspek budidaya C. barometz sangat diperlukan untuk


mengantisipasi kepunahan jenis ini dan memenuhi keperluan bibit untuk keperluan domestikasi dan reintroduksi. Teknologi kultur in vitro dapat digunakan sebagai salah satu metode pilihan untuk perbanyakan dan konservasi C. barometz.

berbentuk talus-menjantung simetris (Chen, 2007; Praptosuwiryo et al., 2015).

Paku ini dapat diperbanyak secara vegetatif dari rimpang atau secara generatif dari sporanya. Usaha perbanyakan vegetatif dari rimpang dan perbanyakan konvensional dengan semai spora pada media alami telah dilakukan di Kebun Raya Bogor sejak tahun 2011, tetapi jumlah bibit hasil perbanyakannya yang telah siap dipindah semai (hardening) masih jauh dari yang diharapkan dan hal ini membutuhkan waktu cukup lama (lebih dari 12 bulan). Perbanyakan C. barometz dengan teknik kultur spora in vitro telah dilakukan menggunakan media dasar Murashige & Skoog dengan modifikasi setengah konsentrasi (½MS). Perkecambahan spora pada media perlakuan ½MS dengan penambahan zat pengatur tumbuh 2 mg/l BAP dan 0,01 mg/l NAA menunjukkan hasil yang baik, tetapi dalam perkembangannya untuk menghasilkan sporofit masih membutuhkan waktu lebih lama (minimal 17 bulan). Selanjutnya untuk menghasilkan bibit yang siap tanam di lapangan masih membutuhkan tahapan aklimatisasi. Oleh karena itu, percobaan aklimatisasi hasil kultur spora yang masih berupa protalus dilakukan agar proses perubahan dari fase protalus menjadi fase sporofit lebih cepat sehingga bibit C. barometz pun lebih cepat diperoleh.

Aklimatisasi dini protalus adalah perpindahan dan penyesuaian hidup dari protalus dalam botol gelas kultur in vitro menuju kultur ex vitro dalam rumah kaca atau rumah paranet. Kebanyakan aklimatisasi pada perbanyakan tumbuhan paku melalui kultur spora in vitro atau hasil kultur dari bagian jaringan lainnya dari tumbuhan paku dilakukan pada saat gametofit-gametofit dalam botol kultur telah menghasilkan sporofit muda yang memiliki dua atau lebih daun primer dan akar (Goller & Rybczynski, 2007; Sara & Manickam, 2007; Winarto & Silva, 2012; Bharati et al., 2013; Khan et al., 2008; Rogers & Banistar, 1992; Liao & Wu, 2011). Sebenarnya media terbaik untuk aklimatisasi sporofit beberapa paku telah diketahui. Media aklimatisasi untuk sporofit tumbuhan paku lainnya seperti paku sarang burung (Asplenium nidus) diantaranya adalah pasir, pupuk kandang, arang dan kombinasi ketiganya (Khan et al., 2008), untuk sporofit paku tanduk rusa hasil perbanyakan in vitro adalah sphagnum, vermikulit, sabut dan campuran antara vermikulit dan sabut (Liao & Wu, 2011), sedangkan untuk aklimatisasi paku berpotensi obat lainnya seperti Pronephrium triphyllum dan Sphaerostephanos unitus hasil kultur spora, digunakan media campuran tanah steril: pasir: pupuk kandang dengan perbandingan tertentu (Marimuthu & Manickam, 2011).

Protalus merupakan bentuk fase siklus kehidupan dari tumbuhan paku dan lumut yang akan menghasilkan organ reproduksi (gametofit). Protalus paku dapat hidup bebas, bentuknya kecil dan tipis, umumnya memiliki tebal satu sel. Gametofit pada tumbuhan paku terutama berbentuk talusmenjantung, namun pada beberapa takson berbentuk seperti umbi, seperti sabuk, pita atau seperti membenang (Nayar & Kaur 1971; Imaichi 2013). Bentuk gametofit yang bervariasi kemungkinan merupakan hasil adaptasi evolusi terhadap habitat-habitat tempat gametofit tumbuh (Imaichi, 2013). Gametofit C. barometz dewasa, telah terbentuk anteridium dan arkegonium, biasanya

Pembentukan embrio pada kultur spora in vitro biasanya terjadi 30 hari atau lebih setelah gametofit dewasa terbentuk, selanjutnya proses ini diikuti oleh pembentukan sporofit muda berdaun primer 1-2 yang lengkap dengan perakarannya (Sara & Manickam, 2007; Marimuthu & Manickam, 2011). Aklimatisasi C. barometz hasil kultur in vitro yang masih dalam bentuk protalus belum pernah dilaporkan, sehingga media untuk aklimatisasinya juga belum diketahui. Penelitian ini bermaksud untuk memahami salah satu tahap dari siklus hidup C. barometz dengan melakukan uji coba aklimatisasi dini protalus dengan kombinasi beberapa media alami. Hasil yang diperoleh diharapkan dapat

| 131


memberi informasi dan acuan yang berguna untuk usaha-usaha percepatan budidaya, pengelolaan dan penyelamatan C. barometz. Tujuan khusus dari penelitian ini adalah untuk mengetahui kemampuan protalus hasil kultur spora in vitro untuk beradaptasi di lingkungan luar laboratorium dan mendapatkan media terbaik untuk aklimatisasi calon bibit C. barometz.

BAHAN DAN METODE Penelitian dilakukan pada bulan Maret 2013 sampai Maret 2014 di dalam rumah paranet aklimatisasi di Laboratorium Kultur Jaringan, Kebun Raya Bogor (Lab. KULJAR-KRB). Penelitian ini dibagi menjadi dua tahap percobaan. Percobaan pertama merupakan aklimatisasi protalus yang berumur 8 bulan pada 14 macam media aklimatisasi. Percobaan pertama dilakukan dari tanggal 13 Maret 2013 sampai 4 Maret 2014. Percobaan tahap kedua merupakan aklimatisasi protalus yang berumur 15 bulan pada empat media terbaik pada percobaan pertama. Percobaan kedua dilakukan dari tanggal 18 Oktober 2013 sampai dengan 7 Maret 2014. Bahan tanaman yang digunakan adalah massa protalus hasil kultur spora C. barometz. Spora diambil dari tanaman koleksi Kebun Raya Bogor dengan nomor koleksi Titien Ng. Praptosuwiryo 2509 yang ditanam di Vak XIX.C. Spora disemai secara in vitro dengan media ½MS. Percobaan pertama menggunakan protalus yang berumur 8 bulan (Gambar 1.A) dan percobaan kedua menggunakan

protalus berumur 15 bulan setelah semai (Gambar 1.B.). Kumpulan atau massa protalus hasil kultur spora in vitro C. barometz dikeluarkan dari botol kultur kemudian dibersihkan bagian bawahnya dari sisa-sisa media agar yang menempel dengan air mengalir. Rancangan percobaan yang digunakan adalah Rancangan Acak Lengkap (RAL). Bahan yang digunakan untuk perlakuan adalah media aklimatisasi, berupa arang sekam, cocopeat, cacahan batang pakis dan kompos bioposca produk Kebun Raya Bogor dan hasil campurannya. Komposisi media aklimatisasi yang digunakan pada percobaan tahap pertama ada 14 macam (Tabel 1). Percobaan tahap kedua menggunakan empat media terbaik dari percobaan pertama, yaitu media yang memberikan respon baik, yaitu pakis (sabut akar pakis Cyathea spp.), arang sekam:cocopeat (1:1), pakis:cocopeat (1:1), dan kombinasi arang sekam:cocopeat:pakis (1:1:1). Sebelum digunakan, semua media direndam dengan air mendidih untuk memperkecil terjadinya kontaminasi. Media dibiarkan sampai dingin sebelum digunakan. Percobaan pertama dilakukan dengan menanam protalus yang telah bersih pada media aklimatisasi yang telah disiapkan di kotak plastik mika bening. Setiap perlakuan terdiri dari tiga kotak plastik mika sebagai ulangan dan setiap ulangan berisi 16 kumpulan protalus (masing-masing memiliki tebal ± 0,5 cm dan diameter ± 2-3 cm). Kotak plastik yang telah ditanami protalus C. barometz selanjutnya ditutup dan dirapatkan dengan selotip untuk menjaga kelembabannya.

Gambar 1. Massa protalus Cibotium barometz hasil kultur spora in vitro. A. 8 bulan setelah semai; B. 15 bulan setelah semai.

132

|


Tabel 1. Komposisi media yang digunakan untuk aklimatisasi protalus Cibotium barometz Kode Komposisi Media Kode Komposisi Media 1 2 3 4 5 6 7

Arang sekam (AS) Cocopeat (C) Pakis (P) Bioposca (B) AS : C (1:1) AS : P (1:1) AS : B (1:1)

Percobaan kedua dilakukan dengan menanam protalus yang telah bersih pada media perlakuan dalam bak plastik dan kemudian disungkup dengan plastik bening untuk mempertahankan kelembabannya. Selanjutnya, bak disimpan di dalam rumah kaca. Setiap perlakuan terdiri dari lima bak plastik sebagai ulangan yang berisi 30 potongan massa protalus. Pengamatan dilakukan setiap minggu untuk percobaan tahap pertama. Pengamatan pertama dilakukan setelah satu bulan aklimatisasi dengan bantuan lup 10x. Pengamatan percobaan tahap kedua dilakukan sebulan sekali selama lima bulan dihitung dari hari pertama aklimatisasi. Parameter yang diamati pada percobaan tahap pertama yaitu: (1) Persentase jumlah massa protalus hidup; (2) Jumlah gametofit raksasa; (3) Jumlah gametofit besar dan (4) Jumlah gametofit kecil. Gametofit raksasa adalah gametofit berukuran lebih dari 10 x 9 mm2, berbentuk hati normal atau hati memanjang atau abnormal, bercuping-cuping, tebal lebih dari 1 sel dan gemiferus (menghasilkan tunas-tunas yang dapat membentuk protalus baru) (Gambar 2.A-B). Gametofit besar adalah gametofit berukuran 5-10 x 5-9 mm2, berbentuk hati normal atau hati memanjang dan telah menghasilkan organ kelamin jantan (anteridium) dan organ kelamin betina (arkegonium) (Gambar 2.C). Gametofit kecil berukuran kurang dari 5 x 5 mm2, berbentuk seperti

8 9 10 11 12 13 14

C : P (1:1) C : B (1:1) P : B (1:1) AS : C : P (1:1:1) AS : C : B (1:1:1) C : P : B (1:1:1) AS : C: P: B (1:1:1:1)

sendok (spatula) atau hati normal, namun belum menghasilkan organ kelamin (Gambar 2.D) Parameter yang diamati pada percobaan tahap kedua adalah jumlah sporofit yang muncul dan persentase sporofit yang hidup. Fase sporofit ditandai dengan munculnya daun muda pertama pada gametofit (Gambar 2.E). Data kuantitatif diuji dengan ANOVA. Jika ada perbedaan yang nyata maka perbedaan reratanya diuji dengan Uji Duncan.

HASIL DAN PEMBAHASAN Hasil pengamatan pada percobaan aklimatisasi menggunakan protalus yang berumur 8 bulan menunjukkan jumlah massa protalus yang hidup di media aklimatisasi hanya berkisar antara 2,08% sampai 27,77% (Tabel 2). Hasil aklimatisasi ini masih sangat rendah mungkin karena media aklimatisasinya yang tidak sesuai. Penelitian mengenai aklimatisasi dini protalus Dicksonia sellowiana Hook (Dicksoniaceae) pada media alami memperlihatkan bahwa jenis media berpengaruh nyata terhadap produksi sporofit. Gametofit D. sellowiana menghasilkan 84,67% sporofit setelah berumur 245 hari pada media tanah merah dengan penambahan kompos; pada media tanah steril hapludult (distroferric red nitosoil) tanpa penambahan kompos pembentukan sporofit lebih lambat (Christina et al., 2009).

| 133


Gambar 2. Fase gametofit dan sporofit Cibotium barometz. A-B. Gametofit raksasa. A (15 x 16 mm 2); B (10 x 11mm2); C. Gametofit besar (5 x 5 mm2); D. Gametofit kecil (4 x 2 mm2). E-F. Gametofit yang telah menghasilkan sporofit dengan satu daun pertama (5 x 5 mm2). Media yang paling baik untuk aklimatisasi kultur C. barometz yang masih dalam fase protalus muda umur 8 bulan adalah media pakis atau berupa campuran dengan cocopeat atau arang sekam atau keduanya. Media campuran pakis dan arang sekam (1:1) terbukti cukup baik sebagai media untuk kultur spora konvensional atau ex vitro, perkecambahan spora menjadi gametofit sampai sporofit muda terbentuk pada pakis sarang burung (Asplenium nidus) (Praptosuwiryo, 2010). Pembentukan sporofit dari gametofit membutuhkan ketersediaan air pada

134

|

media untuk sarana perjalanan spermatozoid dari anteridium menuju sel telur yang terdapat dalam arkegonium. Media campuran akar pakis dan arang sekam padi mampu menyimpan air yang cukup untuk kebutuhan gametofit. Hal-hal penting yang harus dipertimbangkan ketika menyiapkan media aklimatisasi tumbuhan paku selain kandungan nutrisi, adalah kemampuan media menahan air, tidak terkontaminasi, serta drainase dan aerasinya baik (Mazunder et al., 2011).


Tabel 2. Jumlah tanaman hidup dan jumlah gametofit yang terbentuk 1 bulan setelah aklimatisasi dari protalus Cibotium barometz yang berumur 8 bulan setelah semai Media Aklimatisasi Jumlah Jumlah Jumlah Jumlah gametofit tanaman gametofit gametofit Kecil hidup (%) Raksasa Besar Arang sekam (AS) 11,81d 1,33b 8,33j 3,33cd d b fg Cocopeat (C) 20,83 1,83 4,72 11,50h d b ij Pakis (P) 27,77 2,25 6,97 21,94h d b bc Bioposca (B) 13,19 1,33 2,28 2,33ab d b cd AS : C 17,35 1,25 3,00 4,83ef A:P 11,10cd 1,50b 5,00gh 3,5de AS : B 2,08a 0,00a 0,00a 0,00a C:P 27,77d 1,56b 17,25j 25,75h cd ab cd C:B 8,33 1,00 3,00 7,00gh d b de P :B 10,42 1,33 3,83 5,42fg d b de AS:C:P 19,44 1,83 3,33 9,08h a a ab AS:C:B 2,08 0,00 1,00 0,00a bc a a C:P :B 4,17 0,00 0,00 3,00bc d b hi A S : C: P: B 13,90 1,17 5,42 10,04h Keterangan: Angka yang diikuti oleh huruf yang berbeda pada kolom yang sama menunjukkan perbedaan yang nyata pada uji Duncan pada taraf 5%.

Massa protalus yang diaklimatisasi pada percobaan kedua berumur lebih tua dibandingkan protalus yang digunakan pada percobaan pertama sehingga kemampuan tumbuh protalus C. baromets pada percobaan kedua jauh lebih baik dibandingkan hasil percobaan pertama. Hasil percobaan kedua menunjukkan perkembangan yang cukup baik dibandingkan hasil percobaan sebelumnya. Jumlah tanaman atau protalus yang tumbuh setelah aklimatisasi berkisar antara 28,6%-80,6% dan jumlah sporofit yang terbentuk di setiap media perlakuan berkisar antara 16 - 574 protalus (Gambar 3). Media terbaik untuk aklimatisasi protalus C. barometz yang berumur 15 bulan adalah media campuran pakis, arang sekam dan cocopeat (1:1:1). Persentase tanaman yang tumbuh pada media campuran ketiga bahan tersebut mencapai 80,6% dengan jumlah sporofit yang terbentuk sebanyak 574 sporofit. Campuran ketiga jenis media tersebut dapat mempertahankan keberadaan air dengan dengan drainase dan aerasi yang sesuai dengan kebutuhan tumbuhan paku pada umumnya (Mazunder et al., 2011). Jumlah protalus yang tumbuh pada penelitian ini masih lebih rendah dibandingkan persentase hidup hasil aklimatisasi paku tanduk rusa Platycerium

bifurcatum hasil kultur in vitro yang telah berbentuk sporofit atau tanaman sempurna di media sphagnum (95%), vermikulit (88%), peat (90%), dan campuran vermikulit dan peat (95%) (Liao & Wu, 2011), tetapi hasil penelitian ini lebih baik dibandingkan hasil aklimatisasi sporofit paku Pronophrinum triphyllum dan Sphaerostephanus unitus hasil kultur spora in vitro yang telah berbentuk sporofit muda (Marimuthu & Manickam, 2011). Hasil penelitian tersebut menunjukkan hanya 73,5% Pronophrinum triphyllum dan 78% Sphaerostephanus unitus hasil kultur spora yang bertahan hidup setelah aklimatisasi di media campuran pasir: tanah: pupuk kandang (1:2:1). Hasil penelitian ini mengindikasikan bahwa hasil kultur spora in vitro C. barometz yang masih berbentuk protalus dapat diaklimatisasi tanpa harus menunggu semua organ kelaminnya terbentuk. Walaupun demikian, usaha aklimatisasi ini membutuhkan media yang tepat untuk menunjang keberhasilannya. Media yang cocok untuk aklimatisasi protalus hasil kultur spora C. barometz adalah media yang mampu memberikan ruang untuk pertumbuhan akar. Media yang terlalu padat seperti kompos bioposka dan campurannya dengan cocopeat maupun arang sekam tidak cukup baik untuk mendukung keberhasilan aklimatisasi protalus C. barometz.

| 135


Media yang paling mendukung pertumbuhan protalus C. barometz adalah media yang mengandung pakis secara tunggal atau kombinasi dengan media lainnya. Sporofit yang terbentuk selama proses aklimatisasi selanjutnya dipindahkan ke gelas plastik

Gambar 3.

dan dimasukkan ke dalam tabung melamin bening untuk tetap menjaga kelembabannya. Bibit C. barometz yang telah membentuk sporofit ini selanjutnya mengalami pertumbuhan yang sangat pesat dan telah siap untuk dipindah ke pot atau polibag untuk pembesaran bibit (Gambar 4).

Persentase jumlah kultur yang tumbuh dan jumlah sporofit Cibotium barometz yang terbentuk setelah aklimatisasi selama 5 bulan.

Gambar 4. Sporofit Cibotium barometz yang terbentuk 5 bulan pasca aklimatisasi dari protalus umur 15 bulan.

136

|


KESIMPULAN Protalus hasil kultur in vitro spora C. barometz dapat diaklimatisasi dengan media tunggal dari akar pakis atau media campuran akar pakis + arang sekam atau pakis + cocopeat + arang sekam, dengan media terbaik berupa campuran pakis, arang sekam dan cocopeat (1:1:1). Hasil aklimatisasi menggunakan protalus yang berumur 8 bulan menunjukkan 2,08%27,77% jumlah massa protalus yang hidup. Aklimatisasi dari protalus umur 15 bulan menunjukkan 28,6%-80,6% hidup dengan jumlah sporofit yang terbentuk di setiap media perlakuan berkisar antara 16-574 protalus.

UCAPAN TERIMA KASIH Penelitian ini merupakan bagian dari Kegiatan Kompetitif/Program Unggulan LIPI 2013–2015 yang berjudul “Valuasi Varian Pakis Simpei (Cibotium barometz) sebagai Tumbuhan Penghasil Bahan Obat”. Penulis mengucapkan terima kasih kepada staf teknisi Laboratorium Kultur Jaringan PKT Kebun Raya–LIPI dan mahasiswa magang dari UGM, POLINELA, UNILA dan IPB yang telah membantu teknis pelaksanaan kegiatan penelitian ini. Kami juga mengucapkan banyak terimakasih kepada Dr. Graham Eagleton (Australian Volunteer International) atas kesediaannya dalam memberi masukan untuk perbaikan naskah ini.

DAFTAR PUSTAKA Bharati, S.K., D.C. Manobendra dan M.P. Behari 2013. In vitro propagation in Pterydophytes: A Review. International Journal of Research of Ayurveda and Pharmacy 4(2): 297–303. Chandra, S. 1970. Vascular organization of the rhizome of Cibotium barometz. American Fern Journal 60 (2): 68–72. Chen, S.M., H.P. Deng, G.H. Liu and M. Han. 2007. Gametophyte development and its diversity in Cibotium barometz. Xibei Zhiwu Xuebao 27(3): 460–463.

Christina, C., L. Fiori, M. Santos and A.M. Randi. 2009. Aspects of gametophyte development of Dicksonia sellowiana Hook (Dicksoniaceae): an endangered tree fern indigenous to South and Central America. American Fern Journal 99(3): 207–216. Goller K., and J.J. Rybczynsky. 2007. Gametophyte and Sporophyte of tree ferns in vitro culture. Acta Sociatatis Botanicorum Poloniae 76(3): 193–199. Imaichi, R. 2013. A new classification of the gametophyte development of homosporous ferns, focusing on meristem behaviour. Fern Gazette 19: 141–156 Marimuthu, J., and V.S. Manickam. 2011. Ex situ conservation of two threatened ferns of the Western Ghats through in vitro spore culture. Journal of Threatened Taxa 3(7): 1919–1928. Khan, S., M. Raziq, and H.A. Kayani. 2008. In vitro propagation of bird’s nest fern (Asplenium nidus) from spore. Pakistan Journal of Botany 40(1): 91–97 Lemmens, R. H. M. J., P.C.M, Jansen, J.S. Siemonsma, and F.M. Stavast. 1989. Plant resources of South-East Asia. Basic list of species and commodity grouping. PROSEA Project, Wageningen, the Netherlands. Liao, Y.K., and Y.H. Wu. 2011. In vitro propagation of Platycerium bifurcatum (Cau) C. Chr via green globular body initiation. Botanical studies 53: 455–463. May, L.W. 1978. The economic uses and associated folklore of ferns and fern allies. Botanical Review 44(4): 491–528. Mazumder, P.B., B. Mazumder, M.D. Choudhury and G.D. Sharma. 2011. In Vitro Propagation of Drynaria quercifolia (L.) J. Sm., a Medicinal Fern. Assam University Journal of Science & Technology 7(1): 79–83. Nayar, B.K. dan S. Kaur. 1971. Gametophytes of homosporous ferns. Botanic Review 37: 295– 396. Nguyen, T., T.S. Le, D.P. Ngo, Q.N. Nguyen, T.H. Pham, and T.H. Nguyen. 2009. Non-detriment finding for Cibotium barometz in Viet Nam. SC58 Doc. 21.1. Annex 2.

| 137


Oldfield, S. 1995. Significant trade in CITES Appendix II plants. Tree ferns. Prepared for the CITES Secretariat by the World Conservation Monitoring Centre, Cambridge, UK. Praptosuwiryo, T.Ng. 2003. Cibotium barometz. (L.) J. Smith. In W.P. de Winter and V.B. Amoroso (Eds.) Cryptogams: Ferns and Ferns Allies. Plant Resources of South-East Asia 15 (2): 79– 82. Praptosuwiryo, T.Ng. 2010. Gametophytes of the bird nest ferns Asplenium nidus (Aspleniaceae) from West Kalimantan. Buletin Kebun Raya 13(1): 1–7. Praptosuwiryo, T.Ng., D.O. Pribadi, D.M. Puspitaningtyas, and S. Hartini. 2011. Inventorying of the tree fern genus Cibotium of Sumatra: Ecology, population size and distribution in North Sumatra. Journal Biodiversitas 12(4): 204–211. Praptosuwiryo, T.Ng., D.O. Pribadi, and Rugayah. 2015. Growth, Development and Morphology of Gametophytes of Golden Chicken Fern (Cibotium barometz) in Natural Media. Biodiversitas 16(2): 303–310.

138

|

Puri, H. S. 1970. Indian Pteridophytes used in folk remedies. American Fern Journal 60(4): 137– 143. Rogers, S.M.D., and S. Banistar. 1992. Micropropagation of Notholaena “Sun-Tuff Fern”. Hortscience 27(11):1224–1225 Rugayah, T.Ng. Praptosuwiryo, D.M. Puspitaningtyas. 2009. Morphological Variation of Cibotium barometz from West Sumatra. Proceedings on The International Conference on Biological Science. Faculty of Biology, Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta. 329 – 401pp. Sara, C.T., and V.S. Manickam. 2007. In vitro development ontogeny and life cycle of rare fern species -Thelypteris confluens (Thunb.) Morton. Indian Journal of Biotechnology 6: 372–380. Van Steenis, C.G.G.J and R.E. Holtum. 1982. Flora Malesiana Seies II, Ferns and Ferns Allies. Zhang, X.C., J.S. Jia and G.M. Zhang. 2008. Nondetriment finding for Cibotium barometz in China. NDF Workshop Case Studies. WG 2 – Perennials. Case Study 1: Cibotium barometz. Pp. 1–8.

BULETIN KEBUN RAYA Buletin Kebun Raya adalah publikasi ilmiah resmi dari Pusat Konservasi Tumbuhan Kebun Raya –LIPI. Jurnal ini terbit 2 kali setiap tahun, 2 nomor setiap volume, berisi tulisan ilmiah hasil penelitian, ulasan, atau gagasan asli tentang konservasi tumbuhan, biologi tumbuhan dan pengembangan perkebunrayaan di Indonesia dan daerah tropis lainnya.

Pengiriman Naskah: Redaksi menerima naskah yang sesuai untuk dipublikasikan dalam jurnal ini. Naskah hendaknya dikirim dalam bentuk elektronik melalui e-mail attachment ke: [email protected] dan di unggah melalui sistem daring (on line) pada laman: http://jurnal.krbogor.lipi.go.id/ . Berdasarkan Peraturan Kepala LIPI No. 06/E/2013 dan Nomor 5 Tahun 2014 tentang Kode Etika Publikasi Ilmiah, yang pada intinya Kode Etika Publikasi Ilmiah ini menjunjung tiga nilai etik dalam publikasi, yaitu (i) Kenetralan, yakni bebas dari pertentangan kepentingan dalam pengelolaan publikasi; (ii) Keadilan, yakni memberikan hak kepengarangan kepada yang berhak sebagai pengarang; dan (iii) Kejujuran, yakni bebas dari duplikasi, fabrikasi, falsifikasi, dan plagiarisme (DF2P) dalam publikasi. Penulis wajib mengisi dan melengkapi pernyataan klirens etik agar naskahnya dapat segera diproses. Formulir klirens etik dapat disalin pada lembar terakhir jurnal ini. Beberapa ketentuan yang perlu diperhatikan dalam penulisan naskah antara lain: Format Penulisan: Naskah ditulis dalam Bahasa Indonesia atau Bahasa Inggris. Naskah diketik dalam Microsoft Office Word (dalam file .doc atau .docx) dengan satu kolom, font Times New Roman ukuran 12, spasi ganda, batas margin 3 cm untuk semua sisi. Panjang naskah tidak melebihi 20 halaman, termasuk tabel dan gambar. Naskah dapat juga ditulis pada template yang telah disediakan pada laman: http://jurnal.krbogor.lipi.go.id/ index.php/buletin/pages/view/template. Judul dibuat ringkas tetapi dapat mencerminkan isi naskah dan ditulis dengan huruf capital. Terjemahan judul ditulis dengan huruf kecil dalam bahasa Inggris, di bawah judul yang berbahasa Indonesia atau sebaliknya. Abstrak ditulis dalam 2 bahasa yaitu: bahasa Indonesia maupun bahasa Inggris, disusun secara akurat dan informatif dalam satu paragraf yang utuh, tidak lebih dari 250 kata, satu spasi. Keywords terdiri atas tiga sampai lima kata, disusun menurut abjad dan dicetak tebal.

Pendahuluan Isi pada pendahuluan memuat latar belakang dan tujuan penelitian. Bahan dan Metode harus menekankan pada prosedur/cara kerja dan analisis data. Untuk studi lapangan, lebih baik jika lokasi penelitian disertakan. Keberadaan peralatan tertentu yang penting cukup disebutkan dalam cara kerja. Hasil dan Pembahasan ditulis sebagai suatu rangkaian, namun, untuk naskah dengan pembahasan yang panjang dapat dibagi dalam beberapa sub judul. Hasil harus jelas dan ringkas menjawab pertanyaan mengapa dan bagaimana hasil terjadi, tidak sekedar mengungkapkan hasil dengan kata-kata. Penyertaan foto-foto orisinal hasil penelitian sangat dihargai. Pembahasan harus merujuk pada pustaka-pustaka penelitian terdahulu, tidak hanya opini penulis. Tabel dibuat ringkas dengan hanya menyajikan data yang esensial, serta mudah dipahami. Judul tabel ditulis singkat namun lengkap. Judul dan kepala tabel menggunakan huruf kapital pada awal kalimat. Garis vertikal tidak boleh digunakan. Catatan kaki menggunakan angka dengan kurung tutup dan diketik superscript. Tabel dimuat setelah daftar pustaka untuk keperluan penempatan oleh Layout Editor. Tabel 1. Klasifikasi ketahanan kayu terhadap penggerek kayu di laut Table 1. Wood resistance class againts marine borers Kelas Intensitas serangan (Class) (Attack intensity) % I < 7,3 II 7,3 – 27,1 III 27,1 – 54,8 IV 54,8 – 79,1 V > 79,1 Sumber (source) : Gambar, Grafik dan Foto Seluruh gambar harus dirujuk dalam teks. Resolusi minimal untuk foto adalah 300 dpi (dot per inch), sedangkan untuk grafik dan line art adalah 600 dpi. Diberi judul dan keterangan yang jelas dalam bahasa Indonesia dan Inggris serta menggunakan 1 Spasi. Kesimpulan dan Saran tidak perlu dibuat tersendiri, namun menjadi bagian akhir pembahasan sebagai kalimat penutup.

Ucapan Terimakasih disajikan secara singkat; semua sumber dana penelitian dan setiap potensi konflik kepentingan perlu disebutkan. Penyebutan nama orang perlu nama lengkap; penyebutan nama institusi perlu disertai nama kota dan/atau negara. Daftar Pustaka hendaknya berasal dari sumber yang jelas dan terpercaya. Pustaka yang dirujuk diusahakan dari terbitan sepuluh tahun terakhir, dengan jumlah pustaka primer paling sedikit sepuluh pustaka. Sumber dituliskan dengan mengikuti tatacara (style) yang dikeluarkan oleh APA (American Psychological Association). Daftar pustaka yang dirujuk harus disusun menurut abjad berdasarkan nama belakang penulis (untuk penulis pertama), untuk penulis berikutnya dengan hanya menuliskan huruf pertama diikuti dengan tanda titik dan nama belakang ditulis lengkap, tahun terbit, judul pustaka, terbitan (Vol., No., Hlm.), kota penerbit dan penerbit, spasi 1 dan 6 pt setelahnya. Apabila ada lebih dari satu pustaka yang ditulis penulis maupun kelompok penulis yang sama dan pada tahun yang sama, maka huruf ‘a’, ‘b’, dan seterusnya ditambahkan setelah tahun terbit. Untuk jangkauan halaman harap menggunakan tanda En dash “–” bukan kata sambung “-”. Beberapa penulisan daftar pustaka seperti contoh berikut: Jurnal Peterson, R.L., Y. Uetake & C. Zelmer. 1998. Fungal symbioses with orchid protocorms. Symbiosis 25: 29–55. Kim, Y.S. 2006. Conservation of plant diversity in Korea. Lanscape and Ecological Enginering 2: 163–170. doi:10.1007/s11355-006-0004-x Buku Sastrapradja, S., R.E. Nasution, Irawati, L. Soerojo, M. Imelda, S. Idris, S. Soerohaldoko & W. Roedjito. 1976. Anggrek Indonesia. Lembaga Biologi Nasional LIPI, Bogor. Berjak, P., J.M. Farrant, D.J. Mycock & N.W. Pammenter. 1989. The basis of recalcitrant seed behavior. In: Taylorson, R.B. (ed.) Recent advances in the development and germination of seeds. Plenum Press, New York.

Batty,

A.L., K.W. Dixon, M.C. Brundrett & K. Sivasithamparam. 2002. Orchid conservation and mycorriozal association. In: Sivasithamparam, K., K.W. Dixon and R.L. Barrett (eds.) Mycroorganism in plant conservation and biodiversity. Kluwer Academic Publication Dordrecht.

Prosiding Argent, G. 1989. Vireya taxonomy in field and laboratory. Proceedings of the forth international Rhododendron conference. Wollongong, NSW. Phillips, M. & L.G. Paleg. 1970. The isolated aleurone layer. In Carr, D.J. (ed.) Proceedings of the seventh international conference on plant growth substances. Springer–Verlag, Berlin. Skripsi/Thesis/Disertasi Mo, B. 2004. Plant 'integrin-like' protein in pea (Pisum sativum L.) embryonic axes. PhD Dissertation, Department of Biology, University of South Dakota. Publikasi elektronik Royal Botanic Gardens. 2011. Kew's Millennium Seed bank–Orchid Seed Stores Project. http://www.kew.org/science-conservation/saveseed-prosper/millenium-seed-bank/projectspartners/more-seed-projects/orchid-seedstores/index.htm. (accessed 20 June 2011). Prendergast, J.R., R.M. Quinn, J.H. Lawton, B.C. Eversham & D.W. Gibbons. 1993. Rare species, the coincidence of diversity hotspots and conservation strategies. Nature 365: 335–337. Doi:10.1038/365335a0. (diakses 18 Oktober 2012). Pence, V.C. 2010. Evaluating costs for the in vitro propagation and preservation of endangered plants. In Vitro Cellular & Developmental Biology– Plant (published online: 25 November 2010).

BULETIN KEBUN RAYA The Botanic Gardens Bulletin PUSAT KONSERVASI TUMBUHAN KEBUN RAYA ̶ LIPI

Jl. Ir. H. Juanda 13, Bogor 16003, Indonesia

SURAT PERNYATAAN KLIRENS ETIK PUBLIKASI ILMIAH Sehubungan dengan pengajuan karya tulis ilmiah atas nama saya untuk dimuat pada Buletin Kebun Raya, dengan ini saya: Nama : .................................................................................. Jabatan : .................................................................................. Unit/Lembaga : .................................................................................. Alamat Kantor : .................................................................................. Alamat Rumah : .................................................................................. Email : .................................................................................. No. HP/Telp.

: ..................................................................................

Menyatakan bahwa Karya Tulis Ilmiah dengan : Judul : Penulis : 1. ................................. 2. ................................. 3. ................................. Kategori Naskah (pilih salah satu): a. Hasil penelitian (full paper) b. Ulasan (review) c. Catatan Penelitian (research note) d. Komunikasi Pendek (Brief/Short Communication) Adalah hasil karya sendiri atau bersama tim, yang: √ Isinya asli atau bebas dari: a) fabrikasi; b) falsifikasi; c) plagiasi; d) duplikasi; e) fragmentasi/salami; dan f) pelanggaran hak cipta data/isi. √ Belum pernah dimuat atau tidak sedang diproses untuk diajukan pada media publikasi yang lainnya. Demikianlah pernyataan ini saya buat dengan jujur dan bertanggung jawab sesuai Peraturan Kepala LIPI No. 06/E/2013 tentang Kode Etika Peneliti dan Peraturan Kepala LIPI No. 5 Tahun 2015 tentang Kode Etika Publikasi Ilmiah. ................,Tanggal, ....................................... Penulis Utama,

Nama: ...................................................... NIP. ..........................................................

Formulir Klirens dapat juga diunduh pada tautan berikut: http://bit.ly/1MVkPrN

Keterangan : a) Fabrikasi adalah tindakan membuat data dari yang tidak ada menjadi seolah-olah ada (pemalsuan hasil penelitian) yaitu mengarang, mencatat dan/atau mengumumkan hasil penelitian tanpa pembuktian telah melakukan proses penelitian; b) Falsifikasi adalah mengubah data dengan maksud agar sesuai yang dikehendaki peneliti (pemalsuan data penelitian) yaitu memanipulasi bahan penelitian, peralatan atau proses, mengubah atau tidak mencantumkan data atau hasil sedemikian rupa, sehingga penelitian itu tidak disajikan secara akurat dalam catatan penelitian; c) Plagiasiadalah pencurian gagasan, pemikiran, proses, objek dan hasil penelitian, baik dalam bentuk data atau kata-kata, termasuk bahan yang diperoleh melalui penelitian terbatas (bersifat rahasia), usulan rencana penelitian dan naskah orang lain tanpa menyatakan penghargaan; d) Duplikasi adalah pemublikasian temuan-temuan sebagai asli dalam lebih dari 1 (satu) saluran tanpa ada penyempurnaan, pembaruan isi, data, dan/atau tidak merujuk publikasi sebelumnya; e) Fragmentasi/salami adalahpemublikasian pecahan-pecahan dari 1 (satu) temuan yang bukan merupakan hasil penelitian inkremental, multi-disiplin dan berbeda-perpektif. (Rujukan Utama Peraturan ka LIPI No.06/E/2013 tentang Kode Etika Peneliti)

BULETIN KEBUN RAYA Volume 19, No. 2, Juli 2016

Recommend Documents