UJI VIABILITAS ENKAPSULASI Lactobacillus casei MENGGUNAKAN MATRIKS KAPPA KARAGENAN TERHADAP SIMULASI CAIRAN ASAM LAMBUNG

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

UJI VIABILITAS ENKAPSULASI Lactobacillus casei MENGGUNAKAN MATRIKS KAPPA KARAGENAN TERHADAP SIMULASI CAIRAN ASAM LAMBUNG

SKRIPSI

GINA KHOLISOH NIM : 1111102000123

FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN PROGRAM STUDI FARMASI JAKARTA JANUARI 2016

UIN SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA

UJI VIABILITAS ENKAPSULASI Lactobacillus casei MENGGUNAKAN MATRIKS KAPPA KARAGENAN TERHADAP SIMULASI CAIRAN ASAM LAMBUNG

SKRIPSI Diajukan sebagai salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi

GINA KHOLISOH NIM : 1111102000123

FAKULTAS KEDOKTERAN DAN ILMU KESEHATAN PROGRAM STUDI FARMASI JAKARTA JANUARI 2016

HALAMAN PERNYATAAN ORISINALITAS

Skripsi ini adalah benar hasil karya saya sendiri, dan semua sumber baik yang dikutip maupun dirujuk telah saya nyatakan dengan benar

iii

UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

HALAMAN PERSETUJUAN PEMBIMBING

Nama NIM Program Studi Judul Skripsi

: : : :

Gina Kholisoh 1111102000123 Farmasi Uji Viabilitas Enkapsulasi Lactobacillus casei Menggunakan Matriks Kappa Karagenan terhadap Simulasi Cairan Asam Lambung

iv


HALAMAN PENGESAHAN SKRIPSI

Skripsi ini diajukan oleh : Nama : Gina Kholisoh NIM : 1111102000123 Program Studi : Farmasi Judul Skripsi : Uji Viabilitas Enkapsulasi Lactobacillus casei Menggunakan Matriks Kappa Karagenan terhadap Simulasi Cairan Asam Lambung

Telah berhasil dipertahankan di hadapan Dewan penguji dan diterima sebagai bagian persyaratan yang diperlukan untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi pada Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta

Ditetapkan di : Ciputat Tanggal : 11 Desember 2015

v


ABSTRAK

Nama Program Studi Judul Skripsi

: Gina Kholisoh : Farmasi : Uji Viabilitas Enkapsulasi Lactobacillus casei Menggunakan Matriks Kappa Karagenan terhadap Simulasi Cairan Asam Lambung

Kappa karagenan merupakan polisakarida yang dapat digunakan sebagai matriks pada enkapsulasi protein dan bakteri probiotik. Proses enkapsulasi bakteri dengan polimer kappa karagenan dilakukan untuk melindungi bakteri Lactobacillus casei yang tidak dapat bertahan lama pada lingkungan yang sangat asam agar tetap dapat bertahan hidup saat terpapar kondisi asam lambung dan dapat hidup di usus. Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh konsentrasi kappa karagenan sebagai enkapsulator terhadap viabilitas bakteri Lactobacillus casei setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung. Proses enkapsulasi pada penelitian ini dilakukan dengan metode ekstrusi menggunakan matriks kappa karagenan konsentrasi 2%; 1,75% dan 1,5%. Mikrokapsul yang dihasilkan diukur diameter, dievaluasi jumlah sel Lactobacillus casei yang terenkapsulasi dalam matriks kappa karagenan dan dievaluasi viabilitasnya terhadap simulasi cairan asam lambung (0,2% NaCl; HCl 0,08 M; pH 1,598) selama 60 menit dengan suhu 37°C. Diameter mikrokapsul yang terbetuk beragam dan berada pada rentang 1,474 mm sampai 2,551 mm. Jumlah sel Lactobacillus casei yang terenkapsulasi dalam matriks kappa karagenan konsentrasi 2%; 1,75% dan 1,5% berturut-turut yaitu 3,8075 x 108 koloni/gram; 3,58165 x 108 koloni/gram dan 2,83 x 108 koloni/gram. Setelah dilakukan uji dalam simulasi cairan asam lambung, hasil yang didapatkan menunjukkan bahwa mikrokapsul kappa karagenan konsentrasi 2% dapat mempertahankan viabilitas bakteri yang terjerap di dalamnya sebesar 2,3373 x 108 koloni/gram. Sedangkan mikrokapsul kappa karagenan konsentrasi 1,5% dan 1,75% belum dapat mempertahankan viabilitas bakteri yang terjerap, dimana jumlah bakteri yang hidup < 30 koloni/gram. Dari data hasil penelitian tersebut menunjukkan bahwa kappa karagenan dengan konsentrasi 2% dapat mempertahankan viabilitas bakteri Lactobacillus casei sebesar 61,388% dari jumlah sel yang terenkapsulasi setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung.

Kata Kunci

: Lactobacillus casei, kappa karagenan, enkapsulasi, asam lambung, simulasi cairan asam lambung.

vi


ABSTRACT

Name Major Title

: Gina Kholisoh : Pharmacy : Viability Test of Lactobacillus casei Encapsulation Using Kappa Carrageenan as a Matrix Against Simulated Gastric Juice

Kappa carrageenan is a polysaccharide that can be used as the encapsulation matrix of protein and probiotic bacteria. Bacteria encapsulation process using polymer kappa carrageenan is done to protect the Lactobacillus casei bacteria that can not survive long in the highly acidic environment in order to remain able to survive when exposed to acidic conditions of the stomach and can live in the intestines. The purpose of this research is to determine the effect of the concentration of kappa carrageenan as encapsulator on the viability of Lactobacillus casei bacteria after incubation in the simulated gastric juice. The encapsulation process in this research is done by extrusion method using kappa carrageenan concentration 2%; 1,75% and 1,5%. The resulting microcapsules were measured the diameter, evaluated the amount of Lactobacillus casei cells are encapsulated in a kappa carrageenan matrix and evaluated viability of the simulated gastric juice (0.2% NaCl; 0.08 M HCl; pH 1,598) for 60 minutes at temperature 37° C. Diameter of microcapsules are diverse and they are in the range 1,474 mm to 2,551 mm. The number of Lactobacillus casei cells encapsulated in 2%; 1,75% and 1,5% kappa carrageenan matrix respectively are 3,8075 x 108 colonies/gram; 3.58165 x 108 colonies/gram and 2.83 x 108 colonies/gram. After being tested in simulated gastric juice, the results obtained showed that 2% kappa carrageenan microcapsules can maintain the viability of the bacteria are entrapped in it amounted to 2,3373 x 108 colonies/gram. Whereas 1,5% and 1,75% kappa carrageenan microcapsules have not been able to maintain the viability of the bacteria that are entrapped, which the amount of bacteria that live < 30 colonies/gram. From the research data showed that concentration of kappa carrageenan 2% can maintain the viability of the Lactobacillus casei bacteria amounted to 61,388% of the encapsulated cells total after incubation in simulated gastric juice. Keywords

: Lactobacillus casei, kappa carrageenan, encapsulation, stomach acid, Simulated Gastric Juice (SGJ).

vii


KATA PENGANTAR Puji dan syukur kepada Allah SWT, atas segala limpahan rahmat dan karunia yang telah diberikan kepada saya sehingga dapat menyelesaikan penyusunan skripsi ini dengan baik. Shalawat dan salam kepada Nabi Muhammad SAW beserta keluarga, para sahabat serta umatnya. Penulisan skripsi dengan judul ―Uji Viabilitas Enkapsulasi Lactobacillus casei Menggunakan Matriks Kappa Karagenan terhadap Simulasi Cairan Asam Lambung‖ dilakukan dalam rangka memenuhi salah satu syarat untuk memperoleh gelar Sarjana Farmasi Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta. Dalam proses menyelesaikan skripsi ini, banyak pihak yang telah berperan memberikan bantuan, dukungan serta bimbingan kepada penulis. Oleh karena itu, ucapan terima kasih penulis sampaikan kepada : 1.

Ibu Ofa Suzanti Betha, M. Si., Apt. dan Ibu Nelly Suryani, Ph. D., Apt. sebagai dosen pembimbing, yang dengan sabar memberikan ilmu, bimbingan, waktu, saran, serta dukungan kepada penulis.

2.

Kementrian Agama, Kementrian Pendidikan dan Kebudayaan dan Pemerintah Kabupaten Musi Banyuasin selaku pemberi beasiswa, sehingga penulis dapat menempuh pendidikan di Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta.

3.

Bapak Dr. Arief Soemantri, S.K.M., M. Kes, selaku Dekan Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta.

4.

Bapak Yardi, Ph.D.,Apt, selaku Ketua Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta.

5.

Seluruh dosen Program Studi Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan UIN Syarif Hidayatullah Jakarta atas ilmu yang telah diberikan selama penulis menempuh pendidikan.

viii


6.

Laboran-laboran Farmasi Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta atas dukungan dan kerjasama selama kegiatan penelitian.

7.

Kedua orang tua, Ibunda Wastri Kimarna, S. Ag., Ayahanda Drs. Subhan, adik-adik saya Fatih Fadhil, Nailah Afifah, Amirah Sonia, dan seluruh keluarga besar yang selalu memberikan kasih sayang, semangat, doa yang tidak pernah putus, serta dukungan baik moril maupun materil.

8.

Sahabat-sahabatku Muhammad Reza, Meri Rahmawati dan Fitria Ulfa yang telah meluangkan waktu untuk memberikan ilmu, ide dan saran dalam penulisan skripsi.

9.

Sahabat-sahabat dan teman satu perjuangan Henny Pradikaningrum dan Qurry Mawaddana atas ide dan saran dalam penulisan dan penyusunan skripsi. Khoirunnisa Robbani, Ayu Diah Gunardi, Nicky Annisiana Fortunita, Wina Oktaviana, Muhamad Syahid Ali, Hana Nuryana, Isnaini Kholifatur Rodliyah atas kebersamaan, bantuan, semangat dan motivasi sejak awal perkuliahan sampai saat ini.

10. Sahabat-sahabat Farmasi angkatan 2011 yang tidak bisa disebutkan satu persatu, atas persaudaraan dan kebersamaan kita selama menuntut ilmu di bangku perkuliahan. Mudah-mudahan Allah SWT., senantiasa membalas segala bantuan segala kebaikan dan bantuan yang telah diberikan dalam menyelesaikan studi dan penyusunan skripsi ini. Penulis berharap semoga penyusunan skripsi ini dapat diterima. Saran dan kritik membangun sangat diharapkan dalam rangka penyempurnaan. Semoga skripsi ini memberikan manfaat bagi perkembangan ilmu pengetahuan.

Ciputat, 28 Desember 2015

Penulis

ix


HALAMAN PERNYATAAN PERSETUJUAN PUBLIKASI TUGAS AKHIR UNTUK KEPENTINGAN AKADEMIK

x


DAFTAR ISI Halaman HALAMAN JUDUL .................................................................................... ii HALAMAN PERNYATAAN ORISINALITAS ....................................... iii HALAMAN PERSETUJUAN PEMBIMBING ....................................... iv HALAMAN PENGESAHAN SKRIPSI ..................................................... v ABSTRAK .................................................................................................... vi ABSTRACT ................................................................................................... vii KATA PENGANTAR .................................................................................. viii HALAMAN PERSETUJUAN PUBLIKASI KARYA ILMIAH ............. x DAFTAR ISI ................................................................................................ xi DAFTAR TABEL ........................................................................................ xiii DAFTAR GAMBAR ................................................................................... xiv DAFTAR LAMPIRAN ............................................................................... xv DAFTAR SINGKATAN .............................................................................. xvi BAB 1 PENDAHULUAN ............................................................................ 1 1.1. Latar Belakang.............................................................................. 1 1.2. Batasan Penelitian dan Rumusan Masalah ................................... 4 1.2.1. Batasan Penelitian .............................................................. 4 1.2.2. Rumusan Masalah .............................................................. 4 1.3. Tujuan Penelitian .......................................................................... 4 1.4. Manfaat Penelitian ........................................................................ 4 BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA ................................................................... 5 2.1. Bakteri Asam Laktat ..................................................................... 5 2.2. Lactobacillus casei ....................................................................... 8 2.3. Probiotik ....................................................................................... 10 2.4. Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme ................................. 13 2.4.1 Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme secara Langsung ............................................................................ 13 2.4.2.Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme secara tidak Langsung ................................................................... 15 2.5. Teknik Enkapsulasi ...................................................................... 16 2.5.1 Definisi ............................................................................... 16 2.5.2 Komponen Enkapsulasi ...................................................... 18 2.5.3 Teknik Enkapsulasi ............................................................ 19 2.6. Kappa Karrageenan ...................................................................... 23 BAB 3 METODE PENELITIAN ................................................................ 28 3.1. Waktu dan Tempat Penelitian ...................................................... 28 3.2. Alat ............................................................................................... 28 3.3. Bahan ............................................................................................ 28 3.4. Prosedur Kerja .............................................................................. 29 3.4.1. Preparasi Alat ..................................................................... 29 3.4.2. Preparasi Bakteri Lactobacillus casei................................. 29 3.4.2.1. Pembuatan Medium MRS Broth (DeMan Rogosa Sharpe) ..................................................... 29

xi


3.4.2.2. Pembuatan Medium MRS Agar (DeMan Rogosa Sharpe) .................................................................. 29 3.4.2.3. Peremajaan Biakan Murni Bakteri Lactobacillus casei) ..................................................................... 29 3.4.2.4. Pewarnaan Bakteri ................................................ 30 3.4.3.Preparasi Proses Enkapsulasi ............................................. 31 3.4.3.1. Pembuatan Suspensi Bakteri .................................. 31 3.4.3.2. Pembuatan Larutan Matriks Kappa Karagenan ..... 31 3.4.4. Proses Enkapsulasi Bakteri ............................................... 32 3.4.5. Perhitungan Sel Bakteri dalam Mikrokapsul .................... 32 3.4.6. Pengukuran Viskositas dan Diameter Mikrokapsul .......... 33 3.4.7. Uji Viabilitas terhadap Keadaan pH Lambung ................. 33 BAB 4 HASIL DAN PEMBAHASAN ........................................................ 35 4.1. Pewarnaan Bakteri Lactobacillus casei....................................... 35 4.2. Pengukuran Viskositas dan Diameter Mikrokapsul .................... 36 4.3. Viabilitas Lactobacillus casei setelah Dilakukan Proses Enkapsulasi.................................................................................. 40 4.4. Viabilitas Lactobacillus casei setelah Diinkubasi dalam Simulasi Cairan Asam Lambung (Simulated Gastric Juice)....... 42 BAB 5 KESIMPULAN DAN SARAN ........................................................ 47 5.1. Kesimpulan.................................................................................. 47 5.2. Saran ............................................................................................ 47 DAFTAR PUSTAKA ................................................................................... 48 LAMPIRAN .................................................................................................. 56

xii


DAFTAR TABEL Halaman Tabel 2.1 Morfologi Bakteri Lactobacillus casei ............................................ 10 Tabel 2.2 Mikroba yang sering digunakan sebagai Probiotik ......................... 12 Tabel 2.3 Kelarutan dan Kandungan Gelatin dari Iota, Kappa dan Lambda Karagenan .......................................................................... 26 Tabel 2.4 Stabilitas Masing – Masing Karagenan ........................................... 27 Tabel 4.1 Viskositas Larutan Kappa Karagenan ............................................. 37 Tabel 4.2 Diameter Mikrokapsul Kappa Karagenan ....................................... 39 Tabel 4.3 Hasil Perhitungan Bakteri Awal dan Bakteri setalah Dilakukan Proses Enkapsulasi .......................................................................... 41 Tabel 4.4 Jumlah Bakteri setelah Proses Enkapsulasi dan Bakteri Setelah Proses Diinkubasi dalam Simulasi Cairna Asam Lambung ........... 43

xiii


DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 2.1 Jalur Metabolisme Homofermentatif .......................................... Gambar 2.2 Struktur Kimia Kappa Karagenan .............................................. Gambar 4.1 Bentuk Koloni Bakteri Lactobacillus casei secara Visual ......... Gambar 4.2 Hasil Pewarnaan Bakteri Lactobacillus casei............................. Gamber 4.3 Grafik Nilai Viskositas Larutan Kappa Karagenan .................... Gambar 4.4 Bentuk Mikrokapsul Kappa Karagenan......................................

xiv

6 25 35 36 37 38


DAFTAR LAMPIRAN Halaman Lampiran 1. Lampiran 2. Lampiran 3.

Lampiran 4. Lampiran 5.

Lampiran 6.

Lampiran 7.

Lampiran 8. Lampiran 9. Lampiran 10. Lampiran 11. Lampiran 12. Lampiran 13. Lampiran 14. Lampiran 15. Lampiran 16. Lampiran 17.

Alur Penelitian ........................................................................ 56 Proses Sterilisasi Alat dan Bahan ........................................... 57 Hasil Analisa Hubungan Antara Konsentrasi dan Jumlah Bakteri Setelah Proses SGJ dengan Menggunakan Uji Korelasi Bivariat ..................................................................... 58 Hasil Analisa Data dengan Uji Normalitas ............................. 58 Hasil Analisa T-Test dan Frequencies (Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 2%) ..................................................................... 60 Hasil Analisa T-Test dan Frequencies (Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 1,75%) ................................................................ 61 Hasil Analisa T-Test dan Frequencies (Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 1,5%) .................................................................. 62 Hasil Perhitungan Persen Efisiensi Enkapsulasi Lactobacillus casei dengan Matriks Kappa Karagenan ......... 63 Hasil Perhitungan Persen Penurunan Jumlah Bakteri ............ 63 Kadar Air ................................................................................ 64 Contoh Perhitungan Koloni Bakteri ....................................... 64 Hasil TPC Bakteri Lactobacillus casei ................................... 65 Hasil TPC setelah Proses Enkapsulasi .................................... 66 Hasil TPC setelah Diinkubasi dalam Simulasi Cairan Asam Lambung ....................................................................... 67 Gambar Alat dan Bahan Penelitian......................................... 68 Sertifikat Analisa Bakteri Lactobacillus casei ....................... 70 Sertifikat Analisa Kappa Karagenan....................................... 71

xv


DAFTAR SINGKATAN 1. Cfu : Colony Forming Units 2. MRS : de Man Rogosa Sharpe

xvi


BAB 1 PENDAHULUAN

1.1

Latar Belakang Bakteri Asam Laktat (BAL) dikenal juga sebagai bakteri probiotik, karena penggunaanya secara umum untuk probiotik. Diantara strain bakteri asam laktat adalah bakteri Lactobacillus sp. Lactobacillus sp. tidak memiliki kemampuan untuk bertahan hidup pada tingkat keasaman dan konsentrasi empedu yang tinggi pada GIT dan juga suhu yang tinggi pada proses pengolahan susu. (Conway, Gorbach, & Goldin, 1987; Gardiner dkk, 2000; Hood & Zottola, 1988; Lankaputhra & Shah, 1995; Shah & Jelen, 1990; Silva, Carvahlo, Teixeira, & Gibbs, 2002 dalam Mandal, S., A. K. Puniya, K. Singh, 2006). Lactobacillus casei merupakan salah satu strain bakteri asam laktat dengan tingkat aplikasi dan penggunaan yang cukup banyak, baik di dalam makanan,

minuman

dan

pengobatan.

Lactobacillus

casei

dapat

mengurangi keparahan dan durasi diare, menstimulasi sistem imun pada usus dan memiliki sifat antimikroba yang kuat (Figueroa-Gonzales, Ivonne, Guillermo Quijano, Gerardo Ramirez, 2011), serta dapat mengaktivasi sistem kekebalan mukosa (Perdigon, G, dkk, 1999 dalam Islam dkk, 2010). pH optimum yang dapat ditoleransi oleh Lactobacillus casei berada pada kisaran pH 3-5 (Broadbent dkk, 2010). Viabilitas bakteri probiotik merupakan hal penting yang harus diperhatikan agar bakteri probiotik dapat memberikan efek terapetik pada tubuh. Untuk dapat bermanfaat pada manusia, probiotik harus dapat bertahan hidup saat melewati lambung dan harus dapat berkoloni di usus (Del Piano, 2011). Secara umum nilai minimum yang harus dipenuhi sekitar 106-107 cfu (colony forming units)/gram bakteri dalam sediaan probiotik

(FAO/WHO,

2001

dalam

M,

Firdaus,

Setijawati

D,

Kartikaningsih, 2014). Salah satu cara untuk mencegah kerusakan dan berkurangnya jumlah bakteri asam laktat dalam probiotik adalah dengan melakukan

1


2

proses enkapsulasi. Proses enkapsulasi telah banyak digunakan dalam industri kimia, farmasi dan makanan dalam tujuan untuk melindungi senyawa aktif dari kondisi lingkungan (oksigen, air, asam, interaksi dengan bahan-bahan lain), yang dapat mempengaruhi stabilitas selama pemrosesan, untuk memberikan pelepasan terkontrol atau untuk mengubah sifat fisik, mengurangi kekakuan selama penyimpanan atau transportasi (Boonyai, Bhandhari, & Howes, 2004; Palzer, 2005; Fuchs dkk, 2006; Werner, Jones, Paterson, Archer, & Pearce, 2007 dalam Carranza, Paola Hernández, dkk, 2013). Selain itu, probiotik yang beredar di pasaran dalam bentuk cairan, kurang efisien dalam hal stabilitas saat penyimpanan maupun dalam pengemasan dan kemungkinan untuk ditumbuhi bakteri lain lebih besar dibandingkan dalam bentuk serbuk (Tamime, 1989). Sehingga probiotik dalam bentuk cairan perlu dibuat dalam bentuk sediaan padat (Yulinery, 2012). Teknik dalam proses enkapsulasi meliputi metode ekstrusi, spray drying, freeze drying dan teknik emulsi. Dalam penelitian ini digunakan metode ekstrusi untuk menghindari suhu dan tekanan yang ekstrim saat proses spray drying (Selmer-Olsen, Sorhaug, Birkeland, & Pehrson, 1999; Teixeira, 1979 dalam Anal, K. A. dan Harjinder Singh, 2007) dan dari lingkungan yang tidak menguntungkan seperti temperatur yang rendah saat freeze drying, yang dapat mengakibatkan berkurangnya viabilitas bakteri (Desmond C, Stanton C, dkk, 2001). Beragam polimer telah digunakan dalam proses enkapsulasi sebagai enkapsulator untuk melindungi mikroorganisme probiotik. Matriks enkapsulasi yang digunakan dalam penelitian ini adalah kappa karagenan. Penelitian sebelumnya oleh Tosa, Tetsuya, dkk (1979) menunjukkan bahwa polimer kappa karagenan efektif dan dapat digunakan sebagai matriks dalam proses imobilisasi beragam enzim dan sel bakteri. Secara umum, kappa karagenan digunakan sebagai zat pengemulsi, basis gel, agen penstabil, agen pensuspensi, agen lepas lambat, agen peningkat viskositas. Kappa karagenan telah digunakan untuk mikroenkapsulasi protein dan bakteri probiotik. Beads hidrogel kappa karagenan juga telah


3

digunakan

dalam

sistem

pelepasan

terkontrol.

Kappa

karagenan

merupakan polimer pembentuk gel yang kuat. Umumnya kappa karagenan yang digunakan dalam enkapsulasi pada konsentrasi 0,02-2,0% (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Penambahan ion kalium menginduksi pembentukan struktur tiga dimensi dari sruktur heliks yang terbentuk dengan adanya air sehingga dihasilkan cairan kental dan tidak dapat dituang (Krasaekoopt dkk, 2003). Hasil penelitian Tsen, Jen-Horng, dkk (2003) melaporkan bahwa imobilisasi sel bakteri Lactobacillus acidophillus dengan matriks kappa karagenan menggunakan metode ekstrusi dapat melindungi sel bakteri pada media pisang dari kondisi yang merugikan dengan menghasilkan fermentasi yang lebih baik dan lebih efisien (108 cfu (colony forming units)/mL) dibandingkan dengan sel bebas tanpa proses enkapsulasi (106 cfu (colony forming units)/ml). Penelitian selanjutnya menjelaskan pengaruh penggunaan kappa karagenan dengan metode SRC dan RC pada kondisi pH 2 dan pH 7 terhadap viabilitas bakteri Lactobacillus acidophiluus. Didapatkan rata-rata viabilitas tertinggi Lactobacillus acidophilus pada metode RC dengan konsentrasi polimer 1%, kondisi pH 7 dan viabilitas sebesar 3,476 cfu (colony forming units)/ml (log). Berdasarkan hasil tersebut, untuk mendapatkan viabilitas terbaik dan mencapai standar viabilitas 107 cfu (colony forming units)/ml, maka perlu ditingkatkan konsentrasi polimer yang digunakan (Setijawati, Dwi, dkk, 2012). Penelitian ini melakukan proses enkapsulasi bakteri Lactobacillus casei menggunakan polimer kappa karagenan dengan metode ekstrusi. Proses enkapsulasi yang diterapkan pada bakteri diharapkan dapat membantu menjaga viabilitas yang sesuai dengan standar WHO 107 cfu (colony forming units)/gram ketika melewati asam lambung dan mencapai usus (FAO/WHO, 2001 dalam M, Firdaus, Setijawati D, Kartikaningsih, 2014). Tujuan dari penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh konsentrasi kappa karagenan terhadap viabilitas bakteri Lactobacillus casei setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung.


4

1.2

Batasan Penelitian dan Rumusan Masalah 1.2.1 Batasan Penelitian Batasan penelitian yang dilakukan yaitu untuk menguji kemampuan polimer

kappa

karagenan

sebagai

matriks

tunggal

dalam

mempertahankan viabilitas bakteri Lactobacillus casei setelah dilakukan pengujian terhadap simulasi cairan asam lambung.

1.2.2 Rumusan Masalah Penelitian Dari penulusuran literatur, keadaan pH lambung menjadi salah satu faktor penting yang akan mempengaruhi kemampuan hidup bakteri asam

laktat.

Untuk

meminimalkan

kerusakan

bakteri

dan

memperbaiki viabilitasnya, maka dilakukan proses enkapsulasi. Sehingga penelitian ini dimaksudkan untuk menguji pengaruh konsentrasi

kappa

karagenan

terhadap

viabilitas

bakteri

Lactobacillus casei setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung.

1.3

Tujuan Penelitian Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh konsentrasi kappa karagenan terhadap viabilitas bakteri Lactobacillus casei setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung.

1.4

Manfaat Penelitian Penelitian ini diharapkan mampu memberikan data ilmiah dan informasi mengenai konsentrasi optimal kappa karagenan yang dapat mempertahankan viabilitas bakteri Lactobacillus casei yang terenkapsulasi dalam matriks kappa karagenan setelah dilakukan pengujian terhadap simulasi cairan asam lambung.


BAB 2 TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Bakteri Asam Laktat Bakteri asam laktat (BAL) adalah kelompok bakteri gram positif berbentuk kokus atau batang, tidak membentuk spora, pada umumnya tidak motil, bersifat anaerob, katalase negatif dan oksidase positif, dengan asam laktat sebagai produk utama fermentasi karbohidrat. Sifat-sifat khusus bakteri asam laktat adalah mampu tumbuh pada kadar gula, alkohol, dan garam yang tinggi, mampu memfermentasikan monosakarida dan disakarida (Syahrurahman, 1994). Bakteri asam laktat merupakan bakteri yang biasa digunakan sebagai probiotik. Bakteri ini bersifat nonpatogenik, nontoksikogenik, gram positif, anaerobik, tidak menghasilkan spora, bakteri penghasil asam laktat yang diproduksi dari fermentasi karbohidrat (Desai, 2008). Klasifikasi bakteri asam laktat dalam genus yang berbeda sebagian besar didasarkan pada perbedaan morfologi, cara fermentasi glukosa, pertumbuhan pada suhu yang berbeda, dan konfigurasi dari asam laktat yang dihasilkan, kemampuan untuk tumbuh pada konsentrasi garam tinggi, dan toleransi terhadap asam atau basa (Desai, 2008). Karakteristik penting yang digunakan untuk membedakan genus bakteri asam laktat yaitu dengan cara fermentasi glukosa yaitu pada saat keterbatasan konsentrasi glukosa dan faktor pertumbuhan (asam amino, vitamin dan prekursor asam nukleat) serta terbatasnya ketersediaan oksigen. Dengan kondisi tersebut, bakteri asam laktat dapat dibagi menjadi dua kelompok yaitu bersifat homofermentatif (yang mengubah glukosa hampir seluruhnya menjadi asam laktat) dan heterofermentatif (yang mengubah glukosa fermentasi menjadi asam laktat, etanol/asam asetat, dan CO2) (Sharpe, 1979 dalam Desai, 2008).

5


6

Bakteri asam laktat dapat dibedakan atas 2 kelompok berdasarkan hasil fermentasinya, yaitu : 1. Bakteri homofermentatif : glukosa difermentasi menghasilkan asam laktat sebagai satu-satunya produk. Bakteri dalam kelompok ini akan mengubah heksosa menjadi asam laktat dalam jalur Embden-Meyerhof (EM) dan tidak dapat memfermentasikan pentosa atau glukonat, asam laktat menjadi satu-satunya produk. (Prescott dkk, 2002 dalam Kusuma, Sri Agung Fitri, 2009) Contoh : Streptococcus, Pediococcus, dan beberapa Lactobacillus.

Gambar 2.1 Jalur Metabolisme Homofermentatif [Sumber : Prescott dkk, 2002 dalam Kusuma, Sri Agung Fitri, 2009]

2. Bakteri

heterofermentatif:

glukosa

difermentasikan

selain

menghasilkan asam laktat juga memproduksi senyawa-senyawa lainnya yaitu etanol, asam asetat dan CO2. Heksosa difermentasikan menjadi asam laktat, karbon dioksida, dan etanol (atau asam asetat sebagai akseptor elektron alternatif). Pentosa lalu diubah menjadi laktat dan asam asetat. Contoh : Leuconostoc dan beberapa spesies Lactobacillus (Prescott dkk, 2002 dalam Kusuma, Sri Agung Fitri, 2009).


7

Mikroorganisme mengalami fase pertumbuhan. Terdapat empat macam fase pertumubuhan mikroorganisme (Pratiwi, 2008) : a. Fase lag (fase adaptasi) : fase penyesuaian mikroorganisme pada suatu lingkungan baru. Ciri fase lag adalah tidak adanya peningkatan jumlah sel, namun terdapat peningkatan ukuran sel. Durasi fase lag tergantung pada kondisi dan jumlah awal mikroorganisme dan media pertumbuhan. b. Fase log (fase eksponensial) : fase mikroorganisme tumbuh dan membelah pada kecepatan maksimum, tergantung pada genetika mikroorganisme, sifat media, dan kondisi pertumbuhan. Hal yang dapat menghambat laju pertumbuhan adalah bila satu atau lebih nutrisi dalam kultur habis, sehingga hasil metabolisme yang bersifat racun akan tertimbun dan menghambat pertumbuhan. c. Fase stasioner : pertumbuhan mikroorganisme berhenti dan terjadi keseimbangan antara jumlah sel yang membelah dengan jumlah sel yang mati. Pada fase ini terjadi akumulasi produk buangan yang toksik. Pada sebagian besar kasus, pergantian sel terjadi dalam fase toksik. d. Fase kematian : Jumlah sel mati meningkat. Faktor penyebabnya adalah ketidaktersediaan nutrisi dan akumulasi produk buangan yang toksik. Anguirre dan Colins (1993) menyatakan bahwa bakteri asam laktat terdiri atas 4 genus, yaitu Lactobacillus, Streptococcus, Leuconostoc, dan Pediococcus. Genus Lactobacillus mempunyai ciri-ciri : bakteri berbentuk batang/rod, gram positif, dan uji katalase negatif (Hardianingsih, Riani, dkk, 2006). Berikut merupakan beberapa jenis bakteri asam laktat antara lain sebagai berikut (Sumanti, 2008 dalam Nasution, Fatimah Sari, 2012) :

1. Streptococcus thermophilus, Streptococcus lactis dan Streptococcus cremoris. Semuanya ini adalah bakteri gram positif, berbentuk bulat (coccus).


8

2. Pediococcus cerevisae. Bakteri ini adalah gram positif berbentuk bulat, khususnya terdapat berpasangan atau berempat (tetrads). Bakteri ini berperan penting dalam fermentasi daging dan sayuran.

3. Leuconostoc mesenteroides dan Leuconostoc dextranicum. Bakteri ini adalah gram positif berbentuk bulat yang terdapat secara berpasangan atau rantai pendek.

4. Lactobacillus

lactis,

Lactobacillus

bulgaricus, Lactobacillus

acidophilus,

plantarum, Lactobacillus

Lactobacillus delbrueckii.

Organisme-organisme ini adalah bakteri gram positif, berbentuk batang dan sering berbentuk pasangan dan rantai dari sel-selnya.

2.2 Lactobacillus casei Lactobacillus termasuk golongan bakteri asam laktat yang sering dijumpai pada makanan fermentasi, produk olahan ikan, daging, susu, dan buah-buahan (Napitupulu dkk., 1997 dalam Hardianingsih, Riani dkk, 2006). Strain Lactobacillus penting bagi banyak fermentasi makanan dan normal mikroflora usus. Beberapa strain

Lactobacillus memiliki

karakteristik yang diharapkan dan fungsional (Saxelin dkk, 1996 dalam Desai, 2008). Lactobacillus merupakan bakteri gram positif, tidak berspora, tidak motil, anaerob fakultatif , kadang-kadang mikroaerofilik, sedikit tumbuh di udara tapi bagus pada keadaan di bawah tekanan oksigen rendah, dan beberapa anaerob pada isolasi (Holt, dkk, 1994 dalam Suryani, Yoni, Astuti, Bernadeta Oktavia, Siti Umniyati, 2010). Anaerob fakultatif menggunakan oksigen sebagai pernapasan, dan akseptor terminal elektron (Pratiwi, 2008). Bakteri yang termasuk dalam anggota Lactobacillus casei merupakan bakteri gram-positif, anaerobik fakultatif, katalase-negatif, heterofermentatif fakultatif, berbentuk batang dan tidak membentuk spora dan dapat diisolasi dari banyak habitat (misalnya, daging, susu, produk susu, makanan atau minuman asam dan limbah) (Saxelin dkk, 1996 dalam Desai, 2008). Koloni pada media agar biasanya 2-5 mm, cembung, entire, buram (opaque) dan tanpa pigmen. Tumbuh optimum pada suhu 30-40⁰C


9

(Stamer, 1979 dalam Suryani, Yoni, Astuti, Bernadeta Oktavia, Siti Umniyati, 2010) . Lactobacillus tersebar luas di lingkungan, terutama pada hewan, produk makanan dan sayur-sayuran. Bakteri Lactobacillus biasanya dapat hidup di saluran usus burung dan mamalia, vagina mamalia serta tidak bersifat patogen (Desai, 2008). Lactobacillus plantarum dan Lactobacillus casei dapat aktif pada pH rendah dan menghasilkan asam laktat dalam jumlah banyak sehingga pada makanan ternak dapat membantu menyimpan energi. Media pemeliharaan isolat Lactobacillus adalah media MRS (de Man Rogosa Sharpe) agar (Oxoid), sedangkan media preculture dan pertumbuhan bakteri uji adalah media MRS Broth (Oxoid) (Hardianingsih, Riani dkk, 2006). Lactobacillus mempunyai potensi yang besar sebagai produk probiotik karena keunggulannya dibanding bakteri asam laktat lainnya (Davis dan Gasson. 1981; Muriana dan Klaenhammer, 1987 dalam Hardianingsih, Riani, dkk, 2006). Sifat yang menguntungkan dari bakteri Lactobacillus dalam bentuk probiotik adalah dapat digunakan untuk mendukung peningkatan kesehatan. Bakteri tersebut berperan sebagai flora normal dalam sistem pencernaan. Fungsinya adalah untuk menjaga keseimbangan asam dan basa sehingga pH dalam kolon konstan (Hardianingsih, Riani dkk, 2006). Contoh bakteri golongan Lactobacillus yang digunakan sebagai probiotik yaitu Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus plantarum Lactobacillus reuteri, Lactobacillus gasseri, Lactobacillus johnsonoo, Lactobacillus

paracasei,

Lactobacillus

plantarum,

Lactobacillus

rhamnosus, dan lain-lain (Ma¨kinen & Bigret, 1993 dalam Anal, Kumar Anil dan Harjinder Singh, 2007). Cartney (1997) melaporkan bahwa bakteri probiotik menjaga kesehatan usus, membantu penyerapan makanan, produksi vitamin, dan mencegah pertumbuhan bakteri patogen. Selain itu dapat meningkatkan fungsi sistem kekebalan tubuh, metabolisme kolesterol, karsinogenesis, dan menghambat penuaan (Hardianingsih, Riani dkk, 2006). Heprer, G.


10

Fried, R. St Jean (1979) menyatakan bahwa pemberian suplemen yoghurt selama satu minggu, dapat menurunkan serum kolesterol pada manusia. Yoghurt

dan

susu

menurunkan

kolesterol

setelah

menginduksi

hiperkolesterolemia kelinci. Yoghurt lebih besar memberi pengaruh dari pada susu (Hardianingsih, Riani dkk, 2006).

Tabel 2.1 Morfologi Bakteri Lactobacillus casei Bentuk sel Sensitivitas

Medium Kondisi pertumbuhan bakteri Suhu penyimpanan

Batang dengan ukuran 0,7-1,1 μm x 2,0-4,0 μm SO2 : Ya pH : 4-5 (Pratiwi, 2008) Pemanasan : tidak dapat ditoleransi pada suhu di atas 45oC. Etanol : Ya. Pertumbuhan bakteri dan metabolisme gula menurun karena etanol meningkat. MRS agar/broth. Suhu 37oC dan 5% CO2 untuk keadaan lingkungan. -80oC atau di bawahnya (keadaan beku), dan 2oC8oC (keadaan dingin)

[Sumber : University of California, 2014; Anonim, 2014]

2.3 Probiotik Bakteri Asam Laktat dikenal juga sebagai bakteri probiotik, karena penggunaanya secara umum untuk probiotik. Secara umum probiotik didefinisikan sebagai mikroba hidup yang digunakan sebagai suplemen makanan dan dapat menguntungkan inangnya dengan meningkatkan keseimbangan mikrobial pencernaan (Fuller, 1989 dalam Desai, 2008). Probiotik dirancang untuk mempertahankan kelangsungan hidup sel, dan pelarut yang digunakan dalam proses mikroenkapsulasi harus tidak beracun (Gbassi, Gildas K dan Thierry Vandamme : 2012).

Bakteri

probiotik diakui sebagai bakteri baik dan ramah, bermanfaat untuk mengurangi potensi bakteri berbahaya dari usus (Gillian, Y. 2008). Salah satu syarat bakteri probiotik dapat memberikan manfaat kesehatan yaitu jumlah bakteri harus tersedia minimum 106 cfu/gram UIN Syarif Hidayatullah Jakarta

11

dalam produk makanan (Doleyres dan Lacroix, 2005 dalam Chávarri, M., dkk 2010) atau 107 cfu/gram (Lee dan Salminen, 1995 dalam Chávarri, M., dkk 2010) atau dimakan dalam jumlah yang cukup untuk menghasilkan asupan harian 108 cfu/ml (Lopez-Rubio dkk, 2006 dalam Chávarri, M., dkk 2010). Pada dasarnya konsumsi sel bakteri hidup dapat diperoleh dari tiga sumber yaitu (1) produk-produk susu fermentasi seperti yogurt yang mengandung sel Lactobacillus bulgaricus dan Streptococcus termophilus serta susu acidophilus yang mengandung Lactobacillus acidophilus; (2) suplemen makanan dan minuman dengan satu atau beberapa macam mikroba yang bermanfaat seperti Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus reuteri, Lactobacillus casei dan Bifidobacteria serta (3) sebagai produk farmasi yaitu konsentrat sel dalam bentuk tablet, kapsul atau granula. Probiotik ini dapat memberikan manfaat kesehatan seperti meningkatkan resistensi terhadap penyakit infeksi seperti diare, menurunkan tekanan darah dan kolesterol, mereduksi alergi, intoleransi glukosa, meningkatkan sistem imun tubuh dan manfaat lainnya (Harmayani dkk, 2001). Viabilitas merupakan jumlah sel hidup yang diperkirakan sebagai ukuran konsentrasi sel yang ada dalam produk (Yulinery dkk, 2009). Viabilitas menunjukkan ketahanan yang baik terhadap pengaruh lingkungan. Probiotik harus dapat mempertahankan kelangsungan hidupnya selama tiga tahap kritis yaitu : (1) pada saat penyimpanan; (2) pada saat proses pembuatan menjadi makanan yang fungsional dan (3) saat transit melalui lambung dan usus kecil (Figueroa-Gonzales, Ivonne, Guillermo Quijano, Gerardo Ramirez, 2011). Faktor-faktor yang mempengaruhi pertumbuhan dan viabilitas bakteri probiotik diantaranya kondisi fisiologis, suhu, pH, aktivitas air dan oksigen (Neha dkk, 2012 dalam Utami, 2013). Viabilitas probiotik dalam produk dipengaruhi oleh beberapa faktor seperti pH, pasca-pengasaman (selama penyimpanan) dalam produk fermentasi, produksi hidrogen peroksida, toksisitas oksigen (perembesan

oksigen

melalui

kemasan)

dan

suhu

penyimpanan

(Kailasapathy, 2002 dalam Martin, M.J., dkk, 2013). Sejumlah faktor-


12

faktor tersebut perlu diperhatikan untuk mendapat efek maksimal dari probiotik yang dikonsumsi (Neha dkk, 2012 dalam Utami, 2013).

Tabel 2.2 Mikroba yang Sering Digunakan sebagai Probiotik BAL (Bakteri Asam Laktat) Lactobacillus Bifidobacterium Spesies BAL yang lain Lactobacillus Bifidobacterium Enterococcus acidophilus adolescentis faecalis Lactobacillus Bifidobacterium Enterococcus casei animalis faecium Lactobacillus Bifidobacterium Lactococcus lactis amylovorus bifidum Lactobacillus Bifidobacterium Leuconostoc delbrueckii breve mesenteroides subsp bulgaricus Lactobacillus Bifidobacterium Pediococcus reuteri infantis acidilactici Lactobacillus Bifidobacterium Streptococcus paracasei lactis thermophilus Lactobacillus Bifidobacterium Sporolactobacillus gallinarum longum inulimus Lactobacillus johnsonii Lactobacillus gasseri Lactobacillus rhamnosus Lactobacillus plantarum

Selain Spesies BAL Bacillus cereus var.toyoi Escherichia coli strain nissle Proptonibacterium freudenreichii Saccharomyces cerevisiae

Saccharomyces boulardii

[Sumber : Holzapfel, dkk, 2001]

Menurut Food and Agriculture Organization/World Health Organization (FAO/WHO) (2001 dalam Utami, 2013), idealnya strain probiotik seharusnya memiliki sifat sebagai berikut : 1.

Tidak kehilangan sifat aslinya selama masa penyimpanan.

2.

Secara normal berada di saluran pencernaan manusia.

3.

Harus dapat bertahan hidup, dapat melawan pertahanan barrier lambung, tahan terhadap kerja pencernaan dari getah lambung, enzim pencernaan dan garam empedu dan berkoloni di usus. Untuk


13

alasan inilah, dosis efektif minimal yang sangat indikatif karena sangat bergantung pada biakan dan preparat yang digunakan, yakni 107 cfu/hari. 4.

Harus bisa melekat dan berkoloni dengan sel intestinal. Struktur membran bakteri berperan dalam mekanisme perlekatan dan berpasangan langsung dengan mukosa, pemukaan protein dan mungkin saja dengan yang beberapa lainnya yang berlendir.

5.

Harus menimbulkan fungsi metabolik pada level pencernaan, yang bermanfaat bagi kesehatan manusia dan antagonis mikroorganisme patogen dengan memproduksi zat anti mikrobial.

6.

Tidak menimbulkan reaksi berbahaya (tidak patogen) terhadap sistem imun atau bahaya lainnya dan juga dinyatakan aman (melalui status GRAS tertulis ―dinyatakan aman‖).

7.

Resistensi terhadap antibiotik.

8.

Harus dikelola dalam dosis yang adekuat dan dan memiliki rasio efikasi biaya yang tepat dan seimbang (Malago dkk, 2011 dalam Utami, 2013).

9.

Syarat lainnya adalah tidak bersifat patogen dan aman jika dikonsumsi. Strain probiotik juga harus tahan dan tetap hidup selama proses pengolahan makanan dan penyimpanan, mudah diaplikasikan pada produk makanan dan tahan terhadap proses psikokimia pada makanan (Prado dkk, 2008 dalam Utami, 2013).

2.4 Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme Pertumbuhan

mikroorganisme

dapat

diukur

berdasarkan

konsentrasi sel (jumlah sel per satuan isi kultur) ataupun densitas sel (berat kering dari sel-sel per satuan isi kultur). Pertumbuhan mikroorganisme dapat diukur dengan dua cara, yaitu secara langsung dan tidak langsung (Pratiwi, 2008).


14

2.4.1

Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme secara Langsung

2.4.1.1 Pengukuran Menggunakan Bilik Hitung (Counting Chamber). Pada pengukuran ini, untuk bakteri digunakan bilik hitung Petroff-Hausser, sedangkan untuk mikroorganisme eukariot digunakan hemositometer. Keuntungan menggunakan metode ini adalah mudah, murah, cepat, dan dapat diperoleh informasi tentang ukuran dan morfologi mikroorganisme. Kerugiannya adalah populasi mikroorganisme yang digunakan harus banyak (minimum berkisar 106 cfu/ml), karena pengukuran dengan volume dalam jumlah sedikit tidak dapat membedakan antara sel hidup dan sel mati, serta kesulitan menghitung sel yang motil (Pratiwi, 2008).

2.4.1.2 Pengukuran Menggunakan Electric Counter. Pada pengukuran ini suspensi mikroorganisme dialirkan melalui lubang kecil (orifice) dengan bantuan aliran listrik. Elektroda yang ditempatkan pada dua sisi orifice untuk mengukur tahanan listrik pada saat bakteri melalui orifice. Pada saat inilah sel terhitung. Keuntungan: hasil dapat diperoleh dengan lebih cepat dan lebih akurat, serta dapat menghitung sel dengan ukuran lebih besar. Kerugian: metode ini tidak bisa digunakan untuk menghitung bakteri karena adanya gangguan debris, filamen, dan sebagainya, serta tidak dapat membedakan antara sel hidup dan sel mati (Pratiwi, 2008).

2.4.1.3 Pengukuran Menggunakan Plating Technique. Metode perhitungan jumlah sel tampak dan didasarkan pada asumsi bahwa bakteri hidup akan tumbuh, membelah, dan memproduksi satu koloni tunggal. Satuan perhitungan yang digunakan adalah cfu (colony forming unit) dengan cara membuat seri pengenceran sampel dan menumbuhkan sampel pada media padat. Pengukuran dilakukan pada plate dengan


15

jumlah koloni berkisar 25-250 atau 30-300. Keuntungan: sederhana, mudah, dan sensitif karena menggunakan colony counter sebagai alat hitung dan dapat digunakan untuk menghitung mikroorganisme pada sampel makanan, air, ataupun tanah. Kerugian : harus digunakan media yang sesuai dan perhitungannya yang kurang akurat karena satu koloni tidak selalu berasal dari satu individu sel (Pratiwi, 2008).

2.4.1.4 Pengukuran Menggunakan Teknik Filtrasi Membran (Membrane Filtration Technique) Sampel akan dialirkan pada suatu sistem penyaring membran dengan bantuan vacum. Bakteri yang terperangkap selanjutnya ditumbuhkan pada media yang sesuai dan jumlah koloni dihitung. Keuntungan teknik filtrasi dapat menghitung sel hidup dan sistem penghitungannya langsung. Kerugian teknik filtrasi tidak ekonomis (Pratiwi, 2008).

2.4.2

Pengukuran Pertumbuhan Mikroorganisme secara tidak Langsung 2.4.2.1 Pengukuran Kekeruhan/Turbidity Bakteri yang bermultifikasi pada media cair akan menyebabkan media menjadi keruh. Alat yang digunakan untuk pengukuran adalah spektrofotometer atau kolorimeter dengan cara membandingkan densitas optik (optical density) antara media tanpa pertumbuhan bakteri dan media dengan pertumbuhan bakteri (Pratiwi, 2008). 2.4.2.2 Pengukuran Aktivitas Metabolik Metode ini berdasarkan pada asumsi bahwa jumlah produk

metabolik

tertentu,

misalnya

asam

atau

CO2,

menunjukkan jumlah mikroorganisme yang terdapat di dalam media. Misalnya pengukuran produksi asam untuk menentukan jumlah vitamin yang dihasilkan mikroorganisme (Pratiwi, 2008).


16

2.4.2.3 Pengukuran Berat Sel Kering (BSK) Biasanya digunakan untuk mengukur pertumbuhan fungi berfilamen. Miselium fungi dipisahkan dari media dan dihitung sebagai berat kotor. Miselium selanjutnya dicuci dan dikeringkan dengan alat pengering (desikator) dan ditimbang beberapa kali hingga mencapai berat konstan yang dihitung sebagai berat sel kering (BSK) (Pratiwi, 2008).

2.5 Teknik Enkapsulasi 2.5.1

Definisi Enkapsulasi adalah proses mengelilingi senyawa aktif dengan matriks dalam bentuk partikel untuk mencapai efek tertentu yang diinginkan, seperti imobilisasi atau isolasi, perlindungan atau stabilisasi, pelepasan terkontrol, dan perubahan sifat fisik (Chan, Lee, Ravindra, & Poncelet 2009 dalam Chan, Eng-Seng, dkk, 2010).

Enkapsulasi

dipertahankan Enkapsulasi

adalah

suatu

dalam

matriks

probiotik

telah

proses

enkapsulasi diteliti

dimana atau

untuk

sel-sel

membran.

meningkatkan

kelangsungan hidup mereka dalam produk makanan dan saluran usus (Rao, Shiwnarain, & Maharaj, 1989 dalam Krasaekoopt, W., Bhandari, B., & Deeth, H., 2004). Enkapsulasi ditujukan untuk menstabilkan sel, berpotensi meningkatkan

kelangsungan

dan

stabilitas

mereka

selama

produksi, penyimpanan dan penanganan. (Vidhyalakshmi, dkk, 2009 dalam Gbassi, Gildas K dan Thierry Vandamme, 2012). Enkapsulasi dapat melindungi materi dari pengaruh lingkungan, mencegah degradasi karena radiasi cahaya atau oksigen dan juga memperlambat terjadinya evaporasi (Risch,1995). Senyawa yang dienkapsulasi disebut bahan inti yang berupa zat aktif. Senyawa yang meliputi bahan inti bisa berfungsi sebagai pelapis maupun membran. Produk dari proses mikroenkapsulasi dinamakan mikrokapsul (Poshadri, A. dan Aparna Kuna, 2010).


17

Agar probiotik dapat memberikan manfaat pada manusia, probiotik harus dapat bertahan hidup saat melewati lambung dan harus dapat berkoloni di usus (Del Piano, 2011). Probiotik harus dapat bertahan selama perjalanan melalui perut, kemudian hancur di dalam usus untuk melepaskan sel. Untuk itu, pemilihan teknik enkapsulasi dan biometrial enkapsulasi sangat penting untuk menentukan efektivitas bagian pelindung probiotik. Hal yang perlu dipertimbangkan dalam memilih biomaterial untuk enkapsulasi probiotik adalah: (a) sifat fisikokimia (komposisi kimia, morfologi, kekuatan mekanik, stabilitas dalam cairan lambung dan usus; (b) uji toksikologi; (c) manufaktur dan sterilisasi proses (Gbassi, Gildas K dan Thierry Vandamme, 2012). Keuntungan dari teknik enkapsulasi (Lachman, 1994 dalam Hasan, Nurhasni, 2012) yaitu: 1. Dengan adanya lapisan dinding polimer, bahan inti

akan

terlindung dari pengaruh lingkungan luar. 2. Dapat mencegah perubahan warna dan bau serta dapat menjaga stabilitas bahan inti yang dipertahankan dalam jangka waktu yang lama. 3. Dapat dicampur dengan komponen lain yang

berinteraksi

dengan bahan inti. Kerugian dari teknik enkapsulasi (Lachman,1994 dalam Hasan, Nurhasni, 2012), yaitu : 1. Biasanya penyalutan bahan inti oleh polimer kurang sempurna atau tidak merata sehingga akan mempengaruhi pelepasan bahan inti dari mikrokapsul. 2. Dibutuhkan teknologi mikroenkapsulasi. 3. Harus dilakukan pemilihan polimer penyalut dan pelarut yang sesuai dengan bahan inti agar diperoleh hasil mikrokapsul yang baik. Faktor–faktor yang mempengaruhi keberhasilan proses enkapsulasi adalah sifat fisiko kimia bahan inti dan bahan penyalut,


18

tahap enkapsulasi, sifat dan struktur dinding mikrokapsul serta kondisi pembentukan mikrokapsul. Ukuran diameter partikel yang terbentuk tergantung pada ukuran bahan inti, jenis dan konsentrasi yang digunakan (Marzuki, Ismail, 2012).

2.5.2

Komponen Enkapsulasi Bahan–bahan yang digunakan pada proses enkapsulasi pada prinsipnya ada tiga jenis, yaitu : 1. Bahan Inti Bahan inti dapat didefinisikan sebagai bahan spesifik yang akan disalut, dapat berupa padatan maupun cairan. Komposisi bahan inti dapat bervariasi, biasanya mengandung (10–95)% berat inti (Benita, 1996 dalam Marzuki, Ismail, 2012). Bahan– bahan yang digunakan sebagai inti adalah obat, enzim aktif, sel hidup, agrokimia, zat pemberi rasa, pewangi, dan tinta. Bahan inti yang tersalut dapat mencapai 99% (Benita, 1996 dalam Marzuki, Ismail, 2012). Tingkat pelepasan bahan inti, terutama ditentukan oleh struktur kimia, ketebalan film kapsul dan ukuran mikrokapsul tersebut. Kecepatan pelepasan isi kapsul dapat dikontrol dengan mengontrol konsentrasi bahan penyalut yang dipakai (Lee, dkk, 1999 dalam Marzuki, Ismail, 2012).

2. Bahan Penyalut Bahan penyalut yang digunakan untuk enkapsulasi harus mampu memberikan suatu lapisan tipis yang kohesif dengan bahan inti, dapat bercampur secara kimia dan tidak bereaksi dengan bahan inti. Memberikan sifat penyalutan yang diinginkan, seperti kekuatan, fleksibilitas, impermeabilitas, sifat–sifat optik, dan stabilitas (Benita, 1996 dalam Marzuki, Ismail, 2012). Contoh bahan penyalut yang biasa digunakan adalah golongan polimer, resin larut air, resin tidak larut air, resin enterik, serta lilin. Ketebalan penyalutan efektif bervariasi


19

dari beberapa mikron, tergantung perbandingan penyalut terhadap inti dan ukuran partikel (luas permukaan) dari bahan inti (Benita, 1996 dalam Marzuki, Ismail, 2012).

3. Pelarut Bahan penyalut perlu dilarutkan terlebih dahulu dalam suatu pelarut sebelum dilakukan proses penyalutan, kecuali untuk metode penyemprotan beku yang menggunakan lelehan penyalut. Pelarut yang digunakan dapat berupa pelarut tunggal maupun campuran (Lachman, 1986 dalam Marzuki, Ismail, 2012).

2.5.3

Teknik Enkapsulasi Parameter

dalam

merancang

suatu

sediaan

yang

terenkapsulasi yaitu : Sifat fisika dan kimia zat aktif, polimer penyalut, medium enkapsulasi, tahap proses enkapsulasi, dan sifat dinding kapsul. Teknik chilling, extrusion,

enkapsulasi

diantaranya

spray-drying,

spray-cooling,

fluidized

coating,

bed

emulsifikasi, ekstrusi,

liposomal

spray

centrifugal entrapment,

lyophilization, coacervation, centrifugal suspension separation, cocrystallization dan inclusion complexation (Gibbs, dkk, 1999 dalam Poshadri, A. dan Aparna Kuna, 2010). 1. Teknik Emulsifikasi Dalam metode emulsifikasi terdapat sedikitnya dua fase yang yang tidak bercampur, menyebabkan salah satu fase terdispersi dalam fase lainnya (Hasan, Nurhasni, 2012). Emulsifikasi lebih mahal karena memerlukan bahan baku tambahan

seperti

fase

minyak

dan

emulsifier

untuk

menstabilkan emulsi. Kesulitan teknik emulsifikasi dalam pelaksanaannya

yaitu

ketidakstabilan emulsi,

diperlukan

pengadukan yang kuat yang dapat merugikan sel-sel hidup,


20

penggabungan acak sel ke dalam kapsul dan ketidakmampuan untuk mensterilkan fase minyak jika harus bekerja pada kondisi asepsis (Gbassi, Gildas K dan Thierry Vandamme : 2012).

2.

Teknik Coacervation Teknik coacervation merupakan proses pembuatan mikrokapsul yang melibatkan pencampuran 2 fase polimer yang bermuatan di dalam pelarut. Proses ini dibagi menjadi 3 tahap utama: (1) Preparasi dari fase terdispersi, yaitu bahan inti didispersikan ke dalam larutan polimer yang bersifat kationik. (2) Enkapsulasi dari material inti, yaitu larutan polimer kedua yang bersifat anionik dimasukkan ke dalam larutan pertama. (3) Stabilitas dari partikel yang telah dienkapsulasi, yaitu endapan polimer kedua terbentuk pada bahan inti akibat adanya perbedaan muatan. Mikrokapsul yang terbentuk mengalami stabilisasi dengan perlakuan panas dan terjadi sambung silang (Hasan, Nurhasni, 2012).

3. Teknik Spray Drying Merupakan proses mikroenkapsulasi yang murah dan awalnya digunakan untuk mengenkapsulasi fragrance atau perasa. Bahan inti yang terdispersi dalam larutan polimer dilewatkan melalui nozzle. Cairan yang keluar dari nozzle membentuk tetesan dan mengalami proses solidifikasi akibat udara panas yang dilewatkan (Hasan, Nurhasni, 2012) Teknik ini melibatkan atomisasi emulsi atau suspensi probiotik dan bahan pembawa dengan gas kering yang dihasilkan oleh penguapan air yang cepat. Hasilnya akan berupa serbuk kering. Proses spray drying dikontrol oleh aliran gas, suhu dan produk itu sendiri (O‘Riordan K, dkk, 2001; Vega C, Roos YH, 2006; dalam Rokka, 2010). Keuntungan dari

proses

spray

drying

adalah

pengoperasiannya


21

menggunakan alat canggih. Kekurangannya adalah suhu tinggi yang digunakan saat proses spray drying akan mengganggu kultur bakteri probiotik yang dienkapsulasi. Proses spray drying

memerlukan

pengkontrolan

ketepatan

kondisi,

seperti

saat

penambahan

suhu

inlet

dan

dan outlet

(Kailasapathy, 2002).

4. Teknik Freeze Drying Teknik freeze drying termasuk teknik kering pada metode mikroenkapsulasi probiotik. Pada umumnya, freeze drying memiliki keuntungan, diantaranya dapat menurunkan rusaknya sel probiotik dibandingkan dengan teknik lainnya. Namun, metode ini relatif lebih mahal, dan sulit digunakan pada tingkat industri (Mortazavian dkk, 2007). Teknik freeze drying terdiri atas 3 langkah, yaitu : a) Pembekuan Probiotik bakteri akan dibekukan pada suhu -196oC dalam cairan

nitrogen.

Es

kemudian

disublimasikan

dan

selanjutnya proses pengeringan primer. b) Pengeringan primer Proses sublimasi es dengan vakum tinggi dan suhu tinggi. Sublimasi merupakan fase transisi, dari wujud padat menjadi gas, yang menyebabkan suhu dan tekanan di bawah titik nol mutlak (0,01). Sekitar 95% air dihilangkan pada langkah ini. c) Pengeringan sekunder. Penghilangan air sampai di bawah 4%, meningkatkan penyimpanan jangka panjang, dan mencegah kerusakan produk (Charalampopoulos, dkk, 2009).


22

5. Teknik Spray Chilling Material yang akan dikemas dicampur dengan carrier dan diatomisasi dengan cara didinginkan atau dengan udara dingin yang berbeda dengan spray drying (Risch, 1995 dalam Poshadri, A. dan Aparna Kuna, 2010).

6. Teknik Ekstrusi Dalam teknik ekstrusi, hidrokoloid dicampur dengan probiotik. Campuran yang dihasilkan dimasukkan ke dalam ekstruder, biasanya jarum suntik. Tekanan yang diberikan pada plunger jarum suntik sehingga terbentuk tetesan dari isi jarum suntik dan dimasukkan ke dalam larutan pembentuk gel, dengan pengadukan yang perlahan. Teknik ekstrusi jauh lebih mudah dilakukan jika dibandingkan dengan emulsifikasi. Emulsifikasi memerlukan biaya yang lebih mahal karena memerlukan bahan baku tambahan seperti fase minyak dan agen pengemulsi untuk menstabilkan emulsi (Gbassi, Gildas K dan Thierry Vandamme : 2012). Teknik ekstrusi akan menghasilkan mikrokapsul yang lebih beragam daripada teknik emulsifikasi. Umumnya, diameter yang terbentuk antara 2-5 mm lebih besar dari yang dibentuk

dalam

metode

emulsi.

Ukuran

dan

bentuk

mikrokapsul dipengaruhi oleh konsentrasi dan viskositas larutan polimer, jarak antara jarum suntik dan larutan pembentuk mikrokapsul serta ukuran diameter ekstruder yang digunakan (Solanki, Himansu K, dkk, 2013). Kelebihan

metode

ekstrusi

adalah

metode

yang

digunakan sederhana dan murah, tidak ada kerusakan pada sel probiotik, menjaga viabilitas probiotik tetap tinggi, tidak melibatkan pelarut yang dapat merusak dan dapat dilakukan dalam kondisi aerob dan anaerob (Solanki, Himansu K, dkk, 2013).


23

Kekurangan dari metode ekstrusi diantaranya sulit digunakan untuk produksi skala besar karena pembentukan lambat

dalam

pembentukan

mikrokapsul,

kerentanan

karbohidrat terhadap kerusakan dan cacat struktural, distribusi ukuran yang lebih besar (Solanki, Himansu K, dkk, 2013) serta terbatas dalam pemilihan polimer penyalut (S. Gouin, 2004; Y. Zhou, dkk, 1998 dalam Solanki, Himansu K, dkk, 2013).

2.6 Kappa Karagenan Karagenan adalah polisakarida alami

yang diekstrak dari

makroalga laut dan umumnya digunakan sebagai makanan aditif. Karagenan banyak digunakan dalam berbagai aplikasi makanan dan semakin banyak digunakan dalam formulasi farmasi. Karagenan umumnya dianggap sebagai bahan yang relatif tidak beracun dan tidak menyebabkan iritasi bila digunakan dalam formulasi farmasi nonparenteral. Karagenan dapat menginduksi respon inflamasi pada hewan laboratorium dan untuk alasan ini sering digunakan dalam percobaan untuk meneliti obat antiinflamasi (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Secara umum, karagenan digunakan sebagai zat pengemulsi, basis gel, agen penstabil, agen pensuspensi, agen lepas lambat, agen peningkat viskositas. Karagenan digunakan dalam berbagai bentuk sediaan nonparenteral, termasuk suspensi (basah dan rekonstitusi), emulsi, gel, krim, lotion, obat tetes mata, supossitoria, tablet, dan kapsul. Jenis-jenis karagenan yaitu kappa karagenan, iota karagenan, dan lamda karagenan. Kappa karagenan merupakan agen pembentuk gel yang lebih kuat dibandingkan iota karageenan, sedangkan lamda karagenan tidak bersifat agen pembentuk gel (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Karagenan banyak digunakan dalam berbagai aplikasi makanan dan semakin banyak digunakan dalam formulasi farmasi. Karagenan umumnya dianggap sebagai bahan yang relatif tidak beracun dan tidak menyebabkan

iritasi

bila

digunakan

dalam

formulasi

farmasi


24

nonparenteral. Karagenan dapat menginduksi respon inflamasi pada hewan laboratorium, dan untuk alasan ini sering digunakan dalam percobaan untuk meneliti obat anti-inflamasi (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Karagenan merupakan polisakarida yang dihasilkan dari ekstraksi alga merah (Rhodophyceae), digunakan sebagai bahan tambahan untuk memperbaiki tekstur makanan (FTP UGM : 2002 dalam Febriani, Dian, Sukenda, Sri Nuryati, 2013). Karagenan telah digunakan untuk mikroenkapsulasi protein dan bakteri probiotik. Hidrogel terbentuk karena sambung silang gelatin dan kappa karagenan untuk penghantaran bakteri probiotik secara oral. Gel kompleks yang terbentuk menunjukkan kemampuan pelindung tinggi terhadap asam lambung pada Lactobacillus dan Lactococcus selama ± 1 skala log dibandingkan hidrogel. Hidrogel lebih stabil selama penyimpanan 4°C. Beads hidrogel kappa karagenan juga telah digunakan dalam sistem pelepasan terkontrol. Beads Hidrogel kappa karagenan dan natrium alginat/kitosan digunakan sebagai pembawa untuk loading obat dan sistem penghantaran terkendali (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Karagenan ketika diambil dari sumber rumput laut yang tepat, berwarna kuning-coklat sampai putih, bubuk kasar sampai halus yang tidak berbau dan tidak berasa. Karagenan bersifat

stabil, meskipun

higroskopis, polisakarida dan harus disimpan di tempat yang sejuk dan kering. Karagenan dalam larutan memiliki stabilitas maksimum pada pH 9 dan tidak boleh dilakukan proses pemanasan pada pH di bawah 3,5. Asam dan oksidator dapat menghidrolisis karagenan dalam larutan, yang menyebabkan hilangnya sifat fisik melalui pembelahan obligasi glikosidik. Hidrolisis asam tergantung pada pH, suhu dan waktu (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Kappa Karagenan mengandung ester sulfat 25% dan 3,6 anhidrogalaktosa sekitar

35%. Kappa Karagenan terdiri dari α-1,3-D-

galaktosa-4-sulfat dan β-1,4-3,6-anhidro-D-galaktosa (Glicksman, 1982


25

dalam Apriani T, 2011). Struktur kimia kappa karagenan seperti tertera pada gambar 2.2.

Gambar 2.2 Struktur Kimia Kappa Karagenan [Sumber : Glicksman, 1982 dalam Apriani T, 2011]

Iota karagenan dan kappa karagenan telah terbukti bermanfaat bagi penurunan kadar gula darah pada tikus hiperglikemia yang mengalami kerusakan pankreas akibat induksi aloksan (Wikanta, 2005). Telah diketahui bahwa polisakarida dinding sel tanaman dan lignin tidak dapat dicerna oleh enzim pencernaan mamalia, termasuk manusia, sehingga keuntungan mengkonsumsi makanan berserat terutama yang larut air, diantaranya dapat mengurangi atau menghambat laju kenaikan kadar glukosa darah secara mendadak (Mayer, 1995; Dalimartha, 2002dalam Wikanta, 2005). Kappa karagenan dikenal sebagai agen pembentuk pelet yang baru dalam pembentukan pelet dengan ekstrusi/sferonisasi dan memiliki sifat pembentuk

pellet

terbaik.

Kappa

karagenan

merupakan

polimer

pembentuk gel yang kuat dan memiliki struktur tersier heliks sehingga memungkinkan pembentukan gel. Umumnya kappa karagenan yang digunakan dalam enkapsulasi pada konsentrasi 0,02-2,0% (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Gelasi kappa karagenan umumnya tergantung pada perubahan suhu. Larutan karagenan dipanaskan pada suhu 40-45⁰C dan gelasi terjadi dengan pendinginan sampai suhu kamar. Mikrokapsul terbentuk setelah menjatuhkan campuran polimer dan sel bakteri ke dalam larutan kalium klorida (KCl) (Anal, Kumar Anil dan Harjinder Singh, 2007).


26

Diperlukan suhu yang tinggi berkisar antara (60-80⁰C) agar kappa karagenan dapat larut dalam air. Beads mikrokapsul dapat terbentuk dengan cara menjatuhkan campuran polimer dan sel ke dalam larutan KCl atau CaCl2 (Klein & Vorlop, 1985 dalam Anal, Kumar Anil dan Harjinder Singh, 2007). Penambahan ion kalium menginduksi pembentukan struktur tiga dimensi dari sruktur heliks yang terbentuk dengan adanya air sehingga dihasilkan cairan kental dan tidak dapat dituang. Penambahan ion monovalen seperti

kalium

dalam bentuk KCl

dapat

membantu

pembentukan mikrokapsul gel karagenan (Krasaekoopt dkk, 2003 dalam Mortazavian Amir, Seyed Hadi Razavi, Mohammad Reza Ehsani, Sara Sohrabvandi, 2007). Tabel 2.3 Kelarutan dan Kandungan Gelatin dari Iota, Kappa, dan Lambda Karagenan Kappa

Iota

Hanya garam Na Larut

Hanya Na Larut

K+

Ca2+

Tekstur

Rapuh

Elastis

Gelatin kembali setelah shear Stabilitas Asam Sineresis Freeze/Thaw stability Sinergisme dengan gum lainnya

Tidak

Ya

Tidak membentuk gel Tidak membentuk gel Tidak

> pH 3,8

> pH 3,8

-

Ya Tidak Ya

Tidak Ya Tidak

Tidak Ya Tidak

Kelarutan dalam air 20⁰C 80⁰C Gelatin Kebutuhan Ion

Lambda garam Larut Larut

[Sumber : Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009]


27

Tabel 2.4 Stabilitas Masing-Masing Karagenan Grade Kappa

Stabilitas dalam pH alkali dan netral Stabil

Iota

Stabil

Lambda

Stabil

Stabilitas pada pH asam Terhidrolisis pada larutan ketika dipanaskan. Stabil dalam bentuk gel Terhidrolisis pada larutan. Stabil dalam bentuk gel Terhidrolisis

[Sumber : Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009]


BAB 3 METODE PENELITIAN

3.1 Waktu dan Tempat Penelitian Penelitian

ini

dilakukan

di

Laboratorium

Sediaan

Steril,

Laboratorium Penelitian II, Laboratorium Farmakognosi dan Fitokimia, Laboratorium Sediaan Padat dan Laboratorium Kimia Obat Fakultas Kedokteran dan Ilmu Kesehatan Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta pada bulan Mei sampai Oktober 2015.

3.2 Alat Alat yang digunakan dalam penelitian sebagai berikut : Petri dish, ose, gelas ukur 10 ml, 100 ml, erlemeyer 50 ml, erlemeyer 250 ml, beaker glass 250 ml dan beaker glass 100 ml, spuit, syringe no. 22, pipet tetes, tabung reaksi, batang pengaduk, pipet volumetrik, spatula, mikropipet 100200 μl dan 100-1000 μl, kaca arloji, cawan penguap, corong, tip, tabung sentrifugasi, pinset, vortex, neraca analitik, mikroskop, oven, shaker inkubator, inkubator, autoklaf, termometer, moisture balance, colony counter, hot plate, stirrer, magnetik stirer, kaca obyek, lemari pendingin, bunsen, Laminar Air Flow (LAF), pH meter, viskometer HAAKE Visco Tester, kertas saring dan digimatic mikrometer sekrup Mitutoyo.

3.3 Bahan Bahan yang digunakan dalam penelitian sebagai berikut : Bakteri yang berisi Lactobacillus casei ATCC 393 diperoleh dari perusahaan DIPA Puspa Labsains, Media MRSA dan MRS Broth (Oxoid), Polimer Refined KCarrageenan Powder KR 1000 dari PT Java Biocolloid, KCl 0,3 M, NaCl fisiologis 0,9%, aquadest steril, simulated gastric juice (0,08 M HCl dalam 0,2% NaCl dengan pH 1,598 tanpa pepsin), CaCO3, alkohol, reagen pewarnaan gram (gentian violet, lugol, alkohol 96% dan safranin).

28


29

3.4 Prosedur Kerja Prosedur kerja yang akan dilakukan adalah sebagai berikut: 3.4.1 Preparasi Alat Semua peralatan gelas yang akan digunakan dalam penelitian disterilkan. Proses sterilisasi terlampir (lampiran 2).

3.4.2 Preparasi Bakteri Lactobacillus casei 3.4.2.1 Pembuatan Medium MRS Broth (DeMan Rogosa Sharpe) Sejumlah 52 gram serbuk MRS ditimbang dan kemudian dilarutkan dalam 1 liter air destilasi dan dipanaskan sampai melarut pada suhu 60⁰C. Lalu media disterilkan menggunakan autoklaf pada suhu 121⁰C, tekanan 1 atm selama 15 menit. Setelah dikeluarkan dari autoklaf, media didiamkan beberapa saat (Oxoid, 1998).

3.4.2.2 Pembuatan Medium Agar MRS (DeMan Rogosa Sharpe) Sejumlah 62 gram serbuk MRS ditimbang dan kemudian dilarutkan dalam 1 liter air destilasi dan dipanaskan sampai melarut. Lalu media disterilkan menggunakan autoklaf pada suhu 121⁰C, tekanan 1 atm selama 15 menit. Setelah dikeluarkan dari autoklaf, media didiamkan beberapa saat (Oxoid, 1998).

3.4.2.3 Peremajaan Biakan Murni Bakteri Lactobacillus casei Peremajaan biakan murni bakteri Lactobacillus casei pada media agar MRS yaitu dilakukan dengan menggoreskan satu ose yang telah mengandung bakteri Lactobacillus casei secara zigzag pada media agar MRS, kemudian tabung media ditutup

dengan

kapas.

Selanjutnya,

biakan

bakteri

Lactobacillus casei diinkubasi pada suhu 37⁰C dalam inkubator selama 24 - 48 jam sehingga didapatkan bakteri stock.


30

3.4.2.4 Pewarnaan Bakteri Bakteri Lactobacillus casei merupakan bakteri gram positif, maka untuk melakukan pewarnaan bakteri gram positif dilakukan dengan cara sebagai berikut : a. Sediaan yang sudah dikerat diwarnai dengan karbol kristal ungu selama satu menit. Bakteri akan berwarna ungu, karena zat warna diserap dalam sel dan protoplasma. b. Zat warna dibuang dan diganti dengan larutan lugol (larutan I2+KI) dibiarkan selama 45-60 detik. Pemberian lugol menyebabkan terbentuknya komplek ungu kristaliodium yang berwarna ungu tengguli kotor. c. Larutan lugol dibuang dan sediaan dicuci dengan alkohol 96% selama 30 detik atau digoyang-goyangkan sampai tidak ada zat warna yang mengalir lagi. Pencucian dengan alkohol menyebabkan terjadinya diferensiasi dari dua macam kuman : a) Kuman tetap berwarna ungu. b) Kuman

tidak

berwarna,

sebab

zat

warna

dilarutkan oleh alkohol dan keluar dari sel kuman. d. Sediaan dicuci dengan air dan diwarnai dengan airfukhsin selama 1-2 menit. Sediaan dicuci, dikeringkan dan diperiksa di bawah mikroskop. Fukhsin sebagai pewarna kontras (counter-stain) mewarnai kuman yang tidak berwarna menjadi warna merah. e. Hasil dapat dibaca sebagai berikut : a) Kuman gram positif berwarna ungu. b) Kuman gram negatif berwarna merah (Staf Pengajar FKUI, 1994).


31

3.4.3 Preparasi Proses Enkapsulasi 3.4.3.1

Pembuatan Suspensi Bakteri Diambil satu ose kultur stock Lactobacillus casei diinokulasi pada 10 mL medium MRS Broth. Bakteri diinkubasi dalam medium MRS Broth selama 24 jam pada suhu 37⁰C. Setelah itu, bakteri tersebut dipindahkan dalam 100 mL MRS Broth dan diinkubasi kembali pada kondisi yang sama (Betha, 2014 ―dengan modifikasi‖). Kemudian

bakteri

dipanen

dengan

cara

disentrifugasi pada 4400 rpm selama 10 menit pada suhu 4⁰C. Kemudian, supernatan dibuang dan endapan sel dicuci dua kali dengan larutan NaCl fisiologis steril 0,9%, sehingga didapatkan suspensi bakteri L.casei (Mandal, S., A. K. Puniya, K. Singh, 2006). Perhitungan sel bakteri menggunakan metode plate count. Bakteri yang telah dicuci dua kali dengan NaCl fisiologis, kemudian diambil sebanyak 100 μL dan disebarkan pada media MRS agar. Setelah itu, diinkubasi selama 48 jam pada suhu 37⁰C (Woraharn, Sasimar dkk, 2010). Jumlah bakteri dihitung dengan rumus : Cfu/ml =

3.4.3.2

rata-rata total koloni volume yang disebar ke cawan petri x faktor pengenceran

Pembuatan Larutan Matriks Kappa Karagenan Untuk membuat larutan kappa karagenan, ditimbang kappa karagenan sebanyak 1 gram; 0,875 gram dan 0,75 gram. Setelah itu, ditambahkan NaCl fisiologis 0,9% sebanyak 40 mL ke dalam kappa karagenan yang telah ditimbang, kemudian dipanaskan pada suhu 37⁰-60⁰C sampai didapatkan larutan gel kappa karagenan. (Tsen, Jen-Horng, Yeu-Pyng Lin, V. An-Erl King, 2003; Dinakar P, Mistry VV dan J Dairy, 1994).


32

3.4.4 Proses Enkapsulasi Bakteri Sebanyak 10 mL suspensi sel L.casei dan 40 mL larutan kappa karagenan dicampurkan pada suhu ± 40⁰C, sehingga didapatkan suspensi kappa karagenan dengan konsentrasi akhir 2%, 1,75% dan 1,5%. Kemudian suspensi dimasukkan ke dalam syringe dan ditekan untuk membentuk mikrokapsul. Mikrokapsul ditampung dalam larutan KCl steril 0,3 M (King dan Zall, 1983; Cassidy dkk, 1997 dalam Tsen Jen-Horng, Yeu-Pyng Lin, V. An-Erl King, 2003). Mikrokapsul disimpan dalam larutan KCl 0,3 M pada suhu 10⁰C selama 2 jam (Tsen Jen-Horng, dkk, 2003). Mikrokapsul yang terbentuk kemudian disaring dan dibilas dengan NaCl steril 0,9%.

3.4.5 Perhitungan Sel Bakteri dalam Mikrokapsul Sebanyak 1 gram mikrokapsul (setiap konsentrasi 2%, 1,75% dan 1,5%) disuspensikan kembali dalam 9 mL NaCl fisiologis dengan distirer selama 20–25 menit hingga polimer mikrokapsul pecah dan campuran berwarna kekeruhan, kemudian divortex sampai

homogen.

Campuran

homogen

dibuat

beberapa

pengenceran yang tepat, menggunakan NaCl 0,9%. Kemudian

enumerasi

bakteri

dilakukan

dengan

cara

mengambil 100 μL hasil pengenceran disebarkan pada media MRS agar (Sohail, Asma dkk, 2010). Setelah itu, diinkubasi selama 48 jam pada suhu 37⁰C (Woraharn, Sasimar dkk, 2010). Sampel dilakukan triplo. Total koloni dihitung dengan metode plate count dan kepadatan bakteri setiap 1 gram mikrokapsul yang terbentuk (cfu/gram) (M.J. Martin, 2013) dihitung dengan rumus : Cfu/gram=



33

Efisiensi persen penjerapan bakteri dari matriks kappa karagenan dapat diperkirakan dengan rumus (Ardianto, Ari, 2011) :

P = populasi L.casei per gram mikrokapsul (cfu/gram mikrokapsul) Q = massa mikrokapsul yang dihasilkan dari total suspensi biopolimer-sel yang digunakan (gram) R = total L.casei didalam suspensi biopolimer-sel (cfu) 3.4.6 Pengukuran Viskositas dan Diameter Mikrokapsul NaCl fisiologis 0,9% sebanyak 250 mL ditambahkan ke dalam serbuk kappa karagenan yang telah steril masing-masing sebanyak 5 gram; 4,375 gram dan 3,75 gram. Kemudian dipanaskan pada suhu 37⁰-60⁰C, sehingga didapatkan larutan gel kappa karagenan. Pengukuran viskositas larutan kappa karagenan dengan konsentrasi 2%; 1,75% dan 1,5% dilakukan pada suhu 40⁰C menggunakan alat viskometer HAAKE Visco Tester. Mikrokapsul kappa karagenan dan mikrokapsul tanpa bakteri yang telah terbentuk perlu diketahui diameternya. Sebanyak masing–masing 15 mikrokapsul kappa karagenan dan mikrokapsul tanpa

bakteri

diambil

secara

simple

random,

kemudian

diameternya diukur menggunakan digimatic mikrometer sekrup Mitutoyo.

3.4.7 Uji Viabilitas terhadap Keadaan pH Lambung Simulasi cairan asam lambung (Simulated Gastric Juice) : terdiri dari 0,2% natrium klorida dengan pH 1,598 (adjust pH dengan asam klorida 0,08 M) (Rao, Shiwnarain dan Maharaj, 1989 dalam Mokarram, R. R. : 2009). 1 gram mikrokapsul (setiap konsentrasi 2% ; 1,75% dan 1,5%) dimasukkan dalam 10 ml SGJ, kemudian diinkubasi selama


34

60 menit pada suhu 37°C (Charteris, Kelly, Morelli, & Collins, 1998 dalam Mandal, S. A. K. Puniya, K. Singh, 2006). Setelah 60 menit, mikrokapsul dicuci dengan NaCl fisiologis dan disuspensikan kembali. Campuran homogen dibuat beberapa pengenceran yang tepat, menggunakan NaCl 0,9%. Kemudian enumerasi bakteri dilakukan dengan cara mengambil 100 μL hasil pengenceran disebarkan pada media MRS agar (Sohail, Asma, dkk, 2010). Setelah itu, diinkubasi selama 48 jam pada suhu 37⁰C (Woraharn, Sasimar dkk, 2010). Total koloni dihitung dengan metode Plate Count dan kepadatan bakteri setiap 1 gram mikrokapsul yang telah diuji dengan SGJ (cfu/gram) (M. J. Martin, 2013) dihitung dengan rumus :

Cfu/gram=



BAB 4 HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Pewarnaan Bakteri Lactobacillus casei Pengamatan secara visual terhadap bentuk koloni bakteri Lactobacillus casei yaitu berbentuk bulat merata, halus dan berwarna putih keruh (Gambar 4.1). Pewarnaan bakteri dilakukan untuk memastikan bahwa koloni yang terbentuk merupakan bakteri Lactobacillus casei. Bakteri Lactobacillus casei merupakan bakteri gram-positif, anaerobik fakultatif, katalase-negatif, heterofermentatif fakultatif, berbentuk batang dan tidak membentuk spora, dapat diisolasi dari banyak habitat (misalnya, daging, susu, produk susu, makanan atau minuman asam dan limbah) (Saxelin dkk, 1996 Desai, 2008) dan sedikit tumbuh di udara tapi bagus pada keadaan di bawah tekanan oksigen rendah (Holt dkk, 1994 dalam Suryani, Yoni, dkk, 2010). Koloni pada media agar biasanya 2-5 mm, cembung, entire, buram (opaque) dan tanpa pigmen. (Stamer, 1979 dalam Suryani, Yoni, dkk, 2010). Hasil pengamatan pewarnaan bakteri Lactobaciluus casei dengan mikroskop pada gambar 4.2 menunjukkan warna biru – ungu karena merupakan bakteri gram positif dengan bentuk basil, namun ada beberapa yang berbentuk cocobacilli.

Gambar 4.1 Bentuk Koloni Bakteri Lactobaciluus casei secara Visual [Sumber : Koleksi Pribadi]

35


36

Gambar 4.2 Hasil Pewarnaan Bakteri Lactobaciluus casei [Sumber : Koleksi Pribadi]

4.2 Pengukuran Viskositas dan Diameter Mikrokapsul Kappa karagenan disterilkan secara terpisah dengan NaCl fisiologis dengan menggunakan autoklaf pada suhu 121⁰C selama 15 menit. Konsentrasi kappa karagenan yang digunakan yaitu 2%, 1,75% dan 1,5%. Untuk membentuk larutan, kappa karagenan yang digunakan dilarutkan pada suhu ± 40⁰-80⁰C, larutan akan membentuk gel dan mengeras jika berada pada suhu di bawah 40⁰C. Pada saat proses pencampuran suspensi bakteri dan larutan kappa karagenan digunakan suhu 40⁰C dimana suhu tersebut masih dapat ditoleransi bakteri Lactobacillus casei untuk bertahan hidup. Larutan

polimer

kappa

karagenan

diukur

viskositasnya

menggunakan viskometer HAAKE Visco Tester, dengan nomor spindel 2 dan pada kecepatan 200 rpm, didapatkan nilai viskositas seperti pada tabel 4.1. Konsentrasi 1,5% memiliki nilai viskositas 100,5; Konsentrasi 1,75% memiliki nilai viskositas 108,5 dan Konsentrasi 2% memiliki nilai viskositas 135. Viskositas setiap konsentrasi dari larutan kappa karagenan berbeda. Berdasarkan grafik pada gambar 4.3, viskositas larutan kappa karagenan meningkat seiring dengan meningkatnya konsentrasi. Konsentrasi Semakin tinggi konsentrasi kappa karagenan yang digunakan, maka nilai viskositas juga semakin meningkat.


37

Tabel 4.1 Viskositas Larutan Kappa Karagenan Konsentrasi

rpm 200 200 200

1,5% 1,75% 2%

No. Spindel R2 R2 R2

Nilai Viskositas (cps) 100,5 108,5 135

[Sumber : Koleksi Pribadi]

Nilai Viskositas (cps)

Nilai Viskositas Larutan Kappa Karagenan 160 140 120 100 80 60 40 20 0

Nilai Viskositas

0

1

2

3

Konsentrasi (%)

Gambar 4.3 Grafik Nilai Viskositas Larutan Kappa Karagenan [Sumber : Koleksi Pribadi]

Proses terbentuknya mikrokapsul gel kappa karagenan terjadi setelah campuran polimer dan sel ke dalam larutan KCl atau CaCl2. (Klein & Vorlop, 1985 dalam Anal, Kumar Anil dan Harjinder Singh, 2007). Berdasarkan hasil yang didapat pada penelitian ini, mikrokapsul yang terbentuk tidak mudah hancur, cukup kuat, sedikit buram sampai transparan.

Bentuk

mikrokapsul

kappa

karagenan

(uji)

dan

mikrokapsul tanpa bakteri (kontrol) sebagian besar sangat tidak beraturan, ada yang berbentuk gepeng dan sebagian besar berbentuk bulat dengan ukuran yang berbeda. Bentuk mikrokapsul kappa karagenan dapat dilihat pada gambar 4.4.


38

Gambar 4.4 Bentuk Mikrokapsul Kappa Karagenan (Uji) dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri (Kontrol) [Sumber : Koleksi Pribadi]

Dengan adanya ion K+, mikrokapsul gel kappa karagenan yang terbentuk kuat, gel bersifat rapuh, tahan lama, meningkatkan suhu pelelehan dan pembentukan gel, serta membentuk gel yang opaque dan semakin jernih dengan penambahan gula (FMC Biopolymer, 2007). Penambahan ion kalium menginduksi pembentukan struktur tiga dimensi dari sruktur heliks yang terbentuk dengan adanya air sehingga dihasilkan cairan kental dan tidak dapat dituang (Krasaekoopt dkk, 2003). Gel yang dihasilkan oleh kappa karagenan memiliki tekstur yang solid. Kappa karagenan hanya memiliki satu gugus sulfat yang berikatan dengan gugus galaktosa. Adanya gugus sulfat membuat kappa karagenan menjadi bersifat anionik (bermuatan negatif). Penambahan kation dapat membantu pembentukan gel karagenan. Penambahan ion kalium (K+) pada kappa karagenan akan menetralkan muatan dari karagenan tersebut. Kation tersebut akan berikatan dengan sulfat. Hal ini menyebabkan dua rantai panjang karagenan bergerak mendekat dan membentuk ikatan hidrogen dan akhirnya membentuk double helix (Bubnis, 2000 dalam Santi Dwi Astuti dan Friska Citra Agustia, 2011). Mikrokapsul kappa karagenan (uji) dan mikrokapsul tanpa bakteri (kontrol) yang terbentuk kemudian diukur diameter menggunakan digimatic mikrometer sekrup Mitutoyo. Mikrokapsul yang diukur berjumlah lima belas untuk masing

masing kelompok. Ukuran


39

mikrokapsul

uji

dan

mikrokapsul

kontrol

beragam.

Ukuran

mikrokapsul kontrol yang diukur didapatkan berada pada rentang 1,474 mm sampai 1,887 mm, sedangkan mikrokapsul uji yang telah diukur berada pada rentang 1,889 mm sampai 2,551 mm. Hasil pengukuran diameter mikrokapsul masing – masing konsentrasi tertera dalam tabel 4.2.

Tabel 4.2 Diameter Mikrokapsul Kappa Karagenan (Uji) dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri (Kontrol) 2% Diameter Diameter Kontrol Uji 1,544 mm 1,933 mm 1,576 mm 1,961 mm 1,612 mm 1,981 mm 1,618 mm 1,984 mm 1,620 mm 1,994 mm 1,639 mm 2,024 mm 1,663 mm 2,033 mm 1,680 mm 2,036 mm 1,684 mm 2,069 mm 1,701 mm 2,079 mm 1,724 mm 2,096 mm 1,742 mm 2,129 mm 1,751 mm 2,171 mm 1,883 mm 2,130 mm 1,887 mm 2,118 mm

1,75% Diameter Diameter Kontrol Uji 1,597 mm 1,889 mm 1,681 mm 1,901 mm 1,720 mm 1,905 mm 1,736 mm 1,927 mm 1,762 mm 1,927 mm 1,793 mm 1,940 mm 1,808 mm 1,995 mm 1,827 mm 1,963 mm 1,832 mm 2,038 mm 1,859 mm 2,053 mm 1,861 mm 2,072 mm 1,869 mm 2,081 mm 1,869 mm 2,096 mm 1,879 mm 2,144 mm 1,882 mm 2,551 mm

1,5% Diameter Diameter Kontrol Uji 1,474 mm 1,988 mm 1,614 mm 1,997 mm 1,627 mm 1,998 mm 1,745 mm 2,009 mm 1,756 mm 2,012 mm 1,829 mm 2,012 mm 1,832 mm 2,029 mm 1,832 mm 2,037 mm 1,838 mm 2,049 mm 1,842 mm 2,055 mm 1,864 mm 2,074 mm 1,869 mm 2,086 mm 1,869 mm 2,101 mm 1,874 mm 2,118 mm 1,875 mm 2,128 mm


Analisa diameter mikrokapsul kappa karagenan menggunakan SPSS dengan metode One Sample T-Test. Hasil analisa diameter mikrokapsul uji dan mikrokapsul kontrol masing–masing konsentrasi dapat dilihat pada lampiran 5, 6 dan 7. Berdasarkan data tersebut, didapatkan nilai signifikansi 0,000 dimana hal tersebut menunjukkan bahwa diameter mikrokapsul kontrol dan mikrokapsul uji yang terbentuk tidak seragam. Terjadi perbedaan ukuran diameter


40

mikrokapsul kontrol dan mikrokapsul uji untuk setiap konsentrasinya. Hal tersebut dapat dlihat melalui nilai perbedaan mean ketiga konsentrasi. Konsentrasi 1,5% terjadi kenaikan ukuran diameter mikrokapsul 1,782 menjadi 2,046; konsentrasi 1,75% terjadi kenaikan ukuran diameter mikrokapsul 1,798 menjadi 2,032; konsentrasi 2% terjadi kenaikan ukuran diameter mikrokapsul 1,688 menjadi 2,049. Ukuran mikrokapsul yang beragam dipengaruhi oleh banyak faktor, diantaranya yaitu: konsentrasi dan viskositas larutan polimer, jarak antara jarum suntik dan larutan pembentuk mikrokapsul, perbedaan tekanan saat pembentukan mikrokapsul melalui syringe, tinggi rendahnya posisi syringe saat menjatuhkan mikrokapsul ke dalam KCl, maupun ukuran diameter syringe yang digunakan dalam proses ekstrusi (Jankowski, T., M. Zielinska, dan A.Wysakowska, 1997 dalam Solanki, Himansu K, dkk, 2013). Semakin besar nomor syringe yang digunakan, semakin kecil ukuran mikrokapsul yang akan dihasilkan. Bentuk mikrokapsul dapat terbentuk homogen jika digunakan alat seperti peristaltic pump sehingga memudahkan dalam pengerjaan proses enkapsulasi dengan metode ekstrusi. 4.3 Viabilitas Lactobacillus Enkapsulasi

casei

setelah

Dilakukan

Proses

Salah satu cara meningkatkan viabilitas bakteri probiotik adalah dengan proses enkapsulasi. Metode enkapsulasi yang digunakan adalah metode ekstrusi untuk menghindari suhu ekstrim saat proses enkapsulasi yang dapat mengurangi jumlah maupun viabilitas bakteri. Jumlah sel bakteri awal sebelum dilakukan proses enkapsulasi adalah 2,03 x 109 koloni/ml untuk setiap konsentrasi. Untuk mengetahui jumlah bakteri setelah proses enkapsulasi, mikrokapsul yang telah terbentuk disuspensikan kembali untuk dapat dihitung. Setelah dilakukan perhitungan, didapatkan jumlah bakteri setelah dienkapsulasi yaitu berturut–turut dari konsentrasi 2%; 1,75%; dan 1,5% adalah 3,8075 x 108 koloni/gram; 3,58165 x 108 koloni/gram dan


41

2,83 x 108 koloni/gram. Jumlah hasil perhitungan bakteri tertera di tabel 4.3. Dari hasil tersebut dapat dilihat bahwa terjadi penurunan jumlah bakteri setelah dilakukan proses enkapsulasi. Jumlah bakteri dari free cell yang digunakan dalam proses enkapsulasi akan sangat mempengaruhi jumlah bakteri yang akan terjerap ke dalam polimer. Semakin tinggi jumlah bakteri awal yang digunakan, maka akan semakin tinggi jumlah bakteri yang akan terjerap ke dalam polimer. Sehingga viabilitas bakteri setelah proses enkapsulasi akan tetap terjaga sesuai dengan standar WHO 106-107 cfu/gram atau 7 cfu/gram (log) (FAO/WHO, 2001 dalam M, Firdaus, Setijawati D, Kartikaningsih, 2014). Tabel 4.3 Hasil Perhitungan Bakteri Awal dan Bakteri setelah Dilakukan Proses Enkapsulasi Konsentrasi Jumlah Mikrokapsul Bakteri L.CaseiAwal Kappa (Koloni/ml) 2% 2,03 x 109 1,75% 2,03 x 109 1,5% 2,03 x 109

Jumlah Bakteri Setelah Enkapsulasi (Koloni/gram) 3,8075 x 108 3,58165 x 108 2,83 x 108

Persen Efisiensi Enkapsulasi (%) 60,49 51,38 48,10


Penjerapan jumlah bakteri saat proses enkapsulasi akan berbeda antara masing-masing konsentrasi. Untuk melihat maksimum bakteri yang seharusnya dapat terjerap ke dalam matriks, maka diperlukan perhitungan efisiensi enkapsulasi. Berdasarkan hasil perhitungan persen efisiensi enkapsulasi didapatkan hasil seperti yang tertera dalam tabel 4.3. Maksimum bakteri yang dapat terjerap dalam masing-masing konsentrasi memeliki

mikrokapsul berbeda. Mikrokapsul efisiensi

penjerapan

sebesar

konsentrasi 2%

60,49%,

mikrokapsul

konsentrasi 1,75% sebesar 51,38%, dan mikrokapsul 1,5% sebesar 48,10%. Pemilihan konsentrasi matriks kappa karagenan akan sangat mempengaruhi efisiensi penjerapan. Semakin tinggi konsentrasi


42

matriks kappa karagenan, maka semakin tinggi juga jumlah bakteri yang dapat terjerap dalam matriks kappa karagenan. Selama proses enkapsulasi berlangsung, banyak hal yang dapat mempengaruhi penurunan viabilitas bakteri. Jumlah bakteri yang terjerap ke dalam matriks kappa karagenan belum optimum dan tidak semua bakteri dari free cell terjerap seluruhnya ke dalam matriks. Suspensi bakteri dapat saja tertinggal di wadah maupun syringe saat proses pembentukan mikrokapsul berlangsung. Sehingga tidak semua bakteri dari awal proses enkapsulasi terjerap di dalam polimer kappa karagenan. Viabilitas bakteri saat proses enkapsulasi juga dipengaruhi oleh suhu. Suhu pada saat pencampuran larutan polimer dan suspensi bakteri harus sangat diperhatikan karena akan mempengaruhi viabilitas bakteri dan jumlah bakteri yang dapat terjerap ke dalam matriks. Suhu yang dapat ditoleransi oleh bakteri Lactobacillus casei untuk tumbuh optimum yaitu pada suhu 30 - 40⁰C. Meskipun pada saat pencampuran larutan polimer dan suspensi bakteri dilakukan pada suhu 40⁰C, masih belum dapat dipastikan apakah semua bakteri Lactobacillus casei tetap bertahan hidup suhu tersebut.

4.4 Viabilitas Lactobacillus casei setelah Diinkubasi dalam Simulasi Cairan Asam Lambung (Simulated Gastric Juice) Probiotik harus dapat bertahan hidup saat melewati lambung dan harus dapat berkoloni di usus agar dapat memberikan efek terapetik pada tubuh (Del Piano, 2011). Secara umum nilai minimum yang harus dipenuhi sekitar 106-107 cfu/ml bakteri dalam sediaan (FAO/WHO, 2001 dalam M, Firdaus, Setijawati D, Kartikaningsih, 2014). Lactobacillus spp. tidak memiliki kemampuan untuk bertahan hidup pada konsentrasi asam dan empedu yang tinggi dimana biasa ditemui di GIT dan juga suhu yang ekstrem saat pengolahan susu (Conway, Gorbach, & Goldin, 1987;. Gardiner et al, 2000; Hood & Zottola, 1988; Lankaputhra & Shah, 1995; Shah & Jelen, 1990; Silva,


43

Carvalho, Teixeira, & Gibbs, 2002 dalam Mandal, S., A. K. Puniya, K. Singh, 2006). Dengan keadaan tersebut, dikhawatirkan viabilitas bakteri probiotik akan menurun sehingga tidak dapat memberikan efek terapetik pada tubuh secara optimal dan tidak mencapai jumlah yang seharusnya ketika mencapai usus. Namun, stabilitas probiotik dapat ditingkatkan

menggunakan

carrier

sehingga

meningkatkan

kelangsungan hidup bakteri probiotik dalam produk, baik selama proses dan ketika melewati GIT transit (Goderska, Zybals, & Czarnecki, 2003 dalam Mandal, S., A. K. Puniya, K. Singh, 2006). Pengujian viabilitas bakteri Lactobacillus casei terhadap simulasi cairan asam lambung (simulated gastric juice) dilakukan selama satu jam. Mikrokapsul diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung dengan

pH

1,596

selama

60

menit.

Kemudian

mikrokapsul

disuspensikan kembali untuk dihitung dengan jumlah koloni bakteri dengan metode Plate Count. Bakteri yang tumbuh dan memenuhi rentang (30-300) hanya pada mikrokapsul dengan konsentrasi 2% dengan jumlah kepadatan koloni 2,3373475 x 108 koloni/gram dan persen penurunan yang terjadi sebesar 38,612%. Sedangkan pada mikrokapsul dengan konsentrasi 1,5% dan 1,75% bakteri yang tumbuh sangat sedikit dan tidak memenuhi syarat untuk dapat dilakukan perhitungan secara mikrobiologi.

Tabel 4.4 Jumlah Bakteri setelah Proses Enkapsulasi dan Bakteri setelah Diinkubasi dalam Simulasi Cairan Asam lambung Konsentrasi Jumlah Bakteri Mikrokapsul Setelah L.CaseiEnkapsulasi Kappa (Koloni/gram) 2% 3,8075 x 108 1,75% 3,58165 x 108 1,5% 2,83 x 108

Jumlah Bakteri Setelah Dilakukan Uji Simulasi Cairan Lambung (Koloni/gram) 2,3373475 x 108 Tidak dapat dihitung Tidak dapat dihitung

Persen Penurunan Jumlah Bakteri (%) 38,612 -



44

Penurunan jumlah bakteri yang terjadi pada simulasi cairan asam lambung dikarenakan pH lambung yang sangat asam (1,596) yang akan mempengaruhi kekuatan polimer kappa karagenan sebagai matriks enkapsulasi bakteri Lactobacillus casei dan bentuk mikrosfer kappa karagenan. Menurut Vidhyalakshmi, dkk (2009) dalam Ardianto, Ari, (2011), material yang dienkapsulasi dapat dilepaskan dengan beberapa cara seperti pemecahan dinding bahan pengkapsul, pelarutan bahan pengkapsul, dan difusi melewati bahan pengkapsul. Polimer kappa karagenan dalam larutan memiliki stabilitas maksimum pada pH 9 dan tidak boleh dilakukan proses pemanasan pada pH di bawah 3,5. Asam dan oksidator dapat menghidrolisis karagenan dalam larutan, yang menyebabkan hilangnya sifat fisik melalui pembelahan obligasi glikosidik. (Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn, 2009). Polimer kappa karagenan yang dapat terhidrolisis dalam keadaan asam mengakibatkan pemecahan dinding polimer sebagai matriks enkapsulasi bakteri. Jika dinding matriks pecah, maka bakteri dapat dapat keluar dari matriks, sehingga menyebabkan bakteri berkontak langsung dengan asam lambung. Semakin banyak bakteri yang berkontak lansung dengan asam lambung, maka viabiltas bakteri juga semakin berkurang. Larutan karagenan akan kehilangan viskositas dan kekuatan gel dalam sistem pH dibawah 4,3. Efek ini disebabkan karena autohidrolisa yang terjadi pada pH rendah, dimana karagenan pada suasana asam akan memutuskan ikatan 3,6 Anhydro-Galaktosa (Hoffman, Russel and Gidley, 1996 dalam Setijawati, Dwi, Susinggih Wijana, Aulani‘am, Imam Santosa, 2012.). Jika kekuatan gel kappa karagenan menurun, secara perlahan dapat merusak kemampuan polimer dalam melindungi sel bakteri di dalamnya. Jika matriks tidak dapat mempertahankan kekuatan gelnya, maka bakteri Lactobacillus casei dapat keluar dari matriks, sehingga menyebabkan dapat bakteri berkontak langsung dengan asam lambung. Kontak langsung bakteri dengan asam lambung


45

tersebut, dapat menurunkan viabilitas bakteri Lactobacillus casei yang tidak tahan asam. Bentuk matriks dari polimer kappa karagenan juga mempengaruhi kekuatan polimer dalam menjaga viabilitas sel yang terjerap. Bentuk mikrosfer polimer kappa karagenan sebagai bahan penyalut jika menggunakan metode ekstrusi adalah tipe matriks (Solanki, Himansu K, dkk, 2013). Dimana ketika mikrosfer penyalut berbentuk matriks, maka sel ataupun obat yang terjerap di dalam polimer tersebar merata, baik di dalam polimer maupun tersebar di permukaan polimer. Sel bakteri yang tersebar di permukaan polimer dapat berkontak langsung dengan asam lambung sehingga viabilitas bakteri Lactobacillus casei yang tidak tahan asam dapat menurun. Setijawati, Dwi, Susinggih Wijana, Aulani‘am, Imam santosa, melaporkan dalam Jurnal Teknologi Pangan Vol.3 No.1, Juni 2012, Penggunaan Caragenan dengan Metode Proses Berbeda (Semi Refined Carrageenan dan Refined Carrageenan) sebagai Bahan Pengenkapsulat Lactobacillus acidophilus terhadap Viabilitas dan Struktur Mikrokapsul secara In Vitro) bahwa metode proses Semi Refined Carrageenan dan Refined Carrageenan memberikan pengaruh berbeda nyata terhadap viabilitas Lactobacillus acidophilus, tertinggi pada perlakuan Refined Carrageenan sebesar 3,348 koloni/ml (log). Interaksi perlakuan memberikan pengaruh berbeda nyata terhadap viabilitas Lactobacillus acidophilus, tertinggi didapatkan pada perlakuan Refined Carrageenan pada kondisi pH 7 sebesar 3,476 koloni/ml (log). Disarankan menggunakan caragenan jenis Eucheuma cottonii dengan metode proses Refined Carrageenan, tetapi konsentrasi perlu ditingkatkan untuk mencapai standar viabilitas 107 koloni/ml atau 7 koloni/ml (log). Dapat disimpulkan bahwa penurunan pH akan diikuti dengan penurunan viabilitas bakteri Lactobacillus casei, terutama pada pH dibawah 1,5. Berdasarkan hasil penelitian di atas, semakin tinggi konsentrasi matriks, semakin optimal kekuatan matriks dalam mempertahankan kekuatan


46

gelnya untuk melindungi sel bakteri selama melewati cairan asam lambung. Hubungan antara konsentrasi dan viabilitas bakteri setelah proses SGJ dalam penelitian ini dianalisa menggunakan Metode uji korelasi (bivariat). Data antara konsentrasi dan data jumlah bakteri setelah diinkubasi dalam media simulasi cairan asam lambung diuji normalitasnya untuk melihat normal atau tidaknya data yang akan digunakan. Berdasarkan hasil analisa dari uji normalitas (tertera pada lampiran 4) disimpulkan bahwa data yang didapatkan terdistribusi secara normal. Berdasarkan nilai r atau pearson correlation (0,886 > 0,76) maka derajat hubungan yang terjadi antara konsentrasi dan viabilitas bakeri setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung sangat kuat. Sedangkan arah hubungan adalah positif karena nilai r positif, artinya semakin tinggi konsentrasi maka semakin meningkat viabilitas bakeri setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung. Sesuai dengan kriteria p-value pengujian dua arah (uji 2-arah) yaitu jika Nilai Sig. 0,333 > 0,05, maka H0 diterima.dan dapat pada populasi (dari mana sampel tersebut diambil) secara statistik tidak ada hubungan yang bermakna antara konsentrasi dan viabilitas bakeri setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung. Dari penelitian ini dapat disimpulkan bahwa konsentrasi tidak berhubungan terhadap viabilitas bakeri setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung, meskipun derajat hubungan yang terjadi sangat kuat dan arah hubungan positif.


BAB 5 KESIMPULAN DAN SARAN

5.1 Kesimpulan 1. Kappa karagenan dengan konsentrasi 1,5%; 1,75% dan 2% efektif dapat digunakan sebagai matriks dalam proses enkapsulasi bakteri Lactobacillus casei dengan nilai viablitas masing-masing 3,8075 x 108 koloni/gram; 3,58165 x 108 koloni/gram dan 2,83 x 108 koloni/gram. 2. Setelah diinkubasi dalam simulasi cairan asam lambung, kappa karagenan dengan konsentrasi 2% dapat mempertahankan viabilitas bakteri Lactobacillus casei pada media simulasi cairan asam lambung sebesar 2,3373 x 108 koloni/g dengan penurunan viabilitas sebesar 38,612%.

5.2 Saran 1. Dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai jumlah optimum bakteri sebelum dilakukan proses enkapsulasi sehingga memenuhi jumlah minimum standar probiotik sebesar 107-108 koloni/ml ketika mencapai usus. 2. Dilakukan penelitian lebih lanjut mengenai alat yang dapat digunakan dalam teknik ekstrusi sehingga didapatkan diameter mikrokapsul yang lebih seragam. 3. Dilakukan

penelitian

lebih

lanjut

mengenai

teknik

pengeringan

mikrokapsul sehingga dapat memperkecil diameter dan mengurangi kadar air dari mikrokapsul tersebut.

47


48

DAFTAR PUSTAKA

Ali, Laila Nuraini dan Ita Fauziah Ningsih. Produktivitas Etanol dari Molases Menggunakan Bakteri Zymomonas mobilis dan Zymomonas mobilis Termutasi dengan Teknik Immobilisasi Sel K-Karaginan. Laboratorium Teknologi Biokimia. Teknik Kimia, FTI-ITS. Anal, Kumar Anil dan Harjinder Singh. 2007. Recent Advances in Microencapsulation of Probiotics for Industrial Applications and Targeted Delivery. Trends Food Science and Technology 18 (5): 240–251. Anonim. 2014. Lactobacillus casei. US: American Type Culture Collection. Anguirre, M and M. Colins. 1993. Lactic Acid Bacteria and Human Clinical Infection. Journal of Applied Bacteriology 75: 95-107. Apriani. T, Sonya. 2011. Immobilized Growing Lactic Acid Bacteria with KCarrageenan-Locust Bean Gum Gel. Skripsi. Universitas Indonesia. Ardianto, Ari. 2011. Enkapsulasi Lactobacillus casei Dengan Teknik Ekstrusi Sebagai Starter Untuk Pembuatan Dadih Susu Sapi. Institute Pertanian Bogor. Audet, Pascal, Celine Paquin dan Christophe Lacroix. Immobilized Growing Lactic Acid Bacteria with K-Carrageenan-Locust Bean Gum Gel. Appl Microbiol Biotechnol (1988)29:11-18. Benita, S., B. Magenheim, and P. Wehrl. 1996. The Use of Factorial Design in the Development of Nanoparticulate Dosage Forms. Microencapsulation, Methods and Industrial Applications. Mercel Ed. S. Benita. Marcel Dekker Inc. New York. Chap. 5, pp. 93-132. Betha, Ofa Suzanti. 2014. Uji Aktivitas Enzim Protease dari Bakteri Amobil Bacillus licheniformis F11.4. JML Vol. 11 No.1: 98-101. Broadbent, Jeff R, Rebecca L. Larsen, Virginia Deibel, James L. Steele. 2010. Physiological and Transcriptional Response of Lactobacillus casei ATCC 334 to Acid Stress. J. Bacteriology Vol. 192: 2445-2458. Bubnis, W.A. 2000. Carrageenan [terhubung http://www.fmcbiopolymer.com [12 April 2009].

berkala].

Carranza, Paola Hernández, Aurelio López-Malo dan María-Teresa JiménezMunguía. 2013. Microencapsulation Quality and Efficiency of Lactobacillus casei by Spray Drying Using Maltodextrin and Vegetable Extracts. Journal of Food Research; Vol. 3, No. 1; 2014. ISSN 1927-0887 E-ISSN 1927-0895.


49

Cartney, M.M. 1997. Enzymes, Probiotics and Antioksidan. New York: Mediterranean Synergy TM. Awarenness Corporation.USA. Cassidy, M.B., Lee, H., Trevors, J.T., 1997. Survival and Activity of Lac-Lux Marked Pseudomonas aeruginosa UG2Lr Cells Encapsulated in KCarrageenan over Four Years at 4°C. Journal of Microbiological Methods 30, 167–170. Chan, Eng-Seng, dkk. 2010. Effects of Starch Filler on the Physical Properties of Lyophilized Calcium–Alginate Beads and the Viability of Encapsulated Cells. Carbohydrate Polymers 83 (2011) 225–232. © 2010 Elsevier Ltd. All rights reserved. Doi :10.1016/j.carbpol. 2010.07.044. Chávarri, M., Marañón, I., Ares, R., Ibáñez, F.C., Marzo, F., Villarán, M.D.C., 2010. Microencapsulation of a Probiotic and Prebiotic in Alginate– Chitosan Capsules Improves Survival in Simulated Gastro-Intestinal Conditions. International Journal of Food Microbiology 142 (1–2): 185– 189. Conway, P. L., Gorbach, S. L., & Goldin, B. R. 1987. Survival of Lactic Acid Bacteria in the Human Stomach and Adhesion to Intestinal Cells. Journal of Dairy Science, 70, 1–12. Charalampopoulos, Dimitris, dan Robert A. Rastall. 2009. Prebiotics and Probiotics Science and Technology. USA: Springer. Del Piano, Mario, dkk. 2011. Is Microencapsulation The Future of Probiotic Preparations? The Increased Efficacy of Gastro-Protected Probiotics. Gut Microbes 2:2, 120-123; March/April 2011; © 2011 Landes Bioscience. Desai, Ankur. 2008 . Strain Identification, Viability and Probiotics Properties of Lactobacillus casei. School of Biomedical and Health Science Victoria University, Werribee Campus Victoria Australia hal 3. Desmond, C., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., Collins, K., dan Ross, R. P. 2001. Environmental Adaptation of Probiotic Lactobacilli Towards Improvement of Performance During Spray Drying. International Dairy Journal, 11, 801-808. http://dx.doi.org/10.1016/S0958-6946(01)00121-2. Dinakar, P., Mistry, V.V., 1994. Growth and Viability of Bifidobacterium bifidum in Cheddar Cheese. J. Dairy Sci. 77, 2854–2864. Donthidi, A. R., R. F. Tester dan K. E. Aidoo. 2010. Effect of Lecithin and Starch on Alginate Encapsulated Probiotic Bacteria. Journal of Microencapsulation, 2010; 27(1): 67–77. Febriani, Dian, Sukenda, Sri Nuryati. 2013. Kappa-Karagenan sebagai Imunostimulan untuk Pengendalian Penyakit Infectious Myonecrosis (IMN) pada Udang Vaname Litopenaeus vannamei. Jurnal Akuakultural Indonesia 12 (1), 77-85 (2013).


50

Figueroa-Gonzales, Ivonne, Guillermo Quijano, Gerardo Ramirez. 2011. Probiotics and Prebiotics-Perspective and Challenges. J. Sci Food Agric Vol. 91: 1341-1348. Food and Agriculture Organisation of the United Nations and World Health Organization. 2001. Health and Nutrition Properties of Probiotics in Food including Powder Milk with Live Lactic Acid Bacteria. Report of a joint FAO/WHO Expert Concultation on Evaluation of Health and Nutrition Properties of Probiotics in Food including Powder Milk with Live Lactic Acid Bacteria. Fuller R. 1989. J Appl Bacteriol 66:365–378. Gbassi, Gildas K. dan Thierry Vandamme. 2012. Probiotic Encapsulation Technology: From Microencapsulation to Release into the Gut. Pharmaceutics 2012, 4, 149-163; doi: 10.3390/pharmaceutics4010149. ISSN 1999-4923. www.mdpi.com/journal/pharmaceutics Gillian, Y. 2008. Symbiosis : The Bacteria Diet. Nat. Rev. Microbiol. 6: 174-175. Hardiningsih, Riani, Rostiati Nonta Refina Napitupulu, Titin Yulinery. 2006. Isolasi dan Uji Resistensi Beberapa Isolat Lactobacillus pada pH Rendah. Jurusan Biologi FMIPA UNS Surakarta. Biodiversitas ISSN: 1412-033X. Volume 7, Nomor 1, Halaman 15-17. Harmayani. Ngatirah. Rahayu, Endang. Utami, Tyas. 2001. Ketahanan dan Viabilitas Probiotik Bakteri Asam Laktat Selama Proses Pembuatan Kulture Kering dengan Metode Freeze Drying dan Spray Drying. Jurnal Teknologi Pangan Vol XII Universitas Gajah Mada hal 126. Hasan, Nurhasni. 2012. Studi Formulasi dan Karakterisasi Sediaan Gel Bioadhesi Vagina dari Mikrokapsul Ekstrak Etanol Propolis Trigona sp. Tesis. Universitas Hasanuddin. Heprer, G. Fried, R. St Jean. 1979. Hypocholesterolemic effect of yoghurt and milk. American Journals of Clinical Nutrition 32:19-24. Holzapfel, W.H., Haberer, P., Geisen, R., Björkroth, J., Schillinger, U. 2001. Taxonomy and Important Features of Probiotic Microorganisms in food and Nutrition. American Journal of Clinical Nutrition Vol. 73 (2 Suppl.): 365S–373S. Islam, Mohammad Ariful, Cheol-Heui Yun, Yun-Jaie Choi, Chong-Su Cho. 2010. Microencapsulation of Live Probiotic Bacteria. J. Microbiol. Biotechnol. Vol. 20 (10): 1367-1377. Jankowski, T., M. Zielinska, dan A.Wysakowska. 1997. ―Encapsulation of Lactic Acid Bacteria with Alginate/Starch Capsules” Biotechnology Techniques. Vol. 11, no. 1, pp. 31–34, 1997.


51

Kailasapaty, Kaila. 2002. Microencapsulation of Probiotic Bacteria: Technology and Potential Applications. Curr. Issues Intest. Microbiol. Vol 3: 39-48. Kailasapathy, K. 2006. Survival of Free and Encapsulated Probiotic Bacteria and Their Effect on the Sensory Properties of Yoghurt. LWT e Food Science Technology, 39, 1221e1227. King, V.A.-E., Zall, R.R., 1983. Ethanol Fermentation of Whey Using Polyacrylamide and K-Carrageenan Entrapped Yeasts. Journal of General and Applied Microbiology 29, 379– 393. Krasaekoopt, W., Bhandari, B., & Deeth, H. The Influence of Coating Materials on Some Properties of Alginate Beads and Survivability of Microencapsulated Probiotic Bacteria. International Dairy Journal 14 (2004) 737–743. Krasaekoopt W, Bhandari B, Deeth H. 2003. Evaluation of Encapsulation Techniques of Probiotics for Yoghurt. Int Dairy J. 13: 3-13. Kusuma, Sri Agung Fitri. 2009. Bakteri Asam Laktat. Universitas Padjadjaran. Lachman L., H.A. Lieberman & J.L. Kanig. 1986. The Theory and Practice of Industrial Pharmacy. Lea & Febringer. Philadelphia : Marcell Dekker, Inc. 860-892. Lankaputhra, W. E. V., & Shah, N. P. 1995. Survival of Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium spp. in the Presence of Acid and Bile Salts. Cultured Dairy Products Journal, 30, 2–7. Li, X. Y., Chen, X. G., Cha, D. S., Park, H. J., & Liu, C. S. 2009. Microencapsulation of a Probiotic Bacteria with Alginate-Gelatin and its Properties. Journal of Microencapsulation, 26: 315-324. Lopez-Rubio, A., Gavara, R., Lagaron, J.M., 2006. Bioactive Packaging: Turning Foods into Healthier Foods through Biomaterials. Trends Food Sci. Technol. 17, 567–575. M, Firdaus, Setijawati D, Kartikaningsih. 2014. The Effect of Lactobacillus Acidophilus Microcapsule which Encapsulated by Kappa Caragenan Toward In Vivo Functional Test. Research Journal of Life Science EISSN: 2355-9926. Agustus-2014 Volume 01 No. 01 http://rjls.ub.ac.id Malago, J.J. 2011. Probiotic Bacteria and Enteric Infections-Cytoprotection by Probiotic Bacteria. New York: Springer. Mandal, S., A.K. Puniya, K. Singh. 2006. Effect of Alginate Concentration on Survival of Microencapsulated Lactobacillus casei NCDC-298. International Dairy Journal volume 16: 1190-1195.


52

Martin, M.J., F. Lara-Villoslada, M.A. Ruiz a, M.E. Morales, 2013. Effect of Unmodified Starch on Viability of Alginate-Encapsulated Lactobacillus fermentum CECT5716. LWT - Food Science and Technology 53 (2013) 480e486. Marzuki, Ismail. 2012. Pelepasan Terkendali Kalium Klorida dalam Mikrosfer Kitosan dengan Metode Tautan Silang. Skripsi. Universitas Indonesia. Mokarram, R.R., S.A. Mortazavi, M.B. Habibi Najafi, F. Shahidi. The Influence of Multi Stage Alginate Coating on Survivability of Potential Probiotic Bacteria in Simulated Gastric and Intestinal Juice. Food Research International 42 (2009) 1040–1045. Mortazavian Amir, Seyed Hadi Razavi, Mohammad Reza Ehsani, Sara Sohrabvandi. 2007. Principles and Methods of Microencapsulation of Probiotic Microorganisms. Department of Food Science and Engineering, Faculty of Biosystem Engineering, Campus of Agriculture. University of Tehran, Iranian Journal of Biotechnology (IJB) 2007;5(1):1-18. Napitupulu N.R., A. Kanti, T. Yulinery, R. Hardiningsih, dan Julistiono, H. 1997. DNA Plasmid Lactobacillus Asal Makanan Fermentasi Tradisional yang Berpotensi dalam Pengembangan Sistem Inang Vektor untuk Bioteknologi Pangan. Jurnal Mikrobiologi Tropis 1: 91-96. Nasution, Fatimah Sari. 2012. Identifikasi dan Karakterisasi Bakteri Asam Laktat pada Kotoran Ayam Broiler sebagai Agensi Probiotik. Skripsi. Universitas Negeri Medan. Neha, Arora. Kamaljit, Singh. Ajay, Bilandi. Tarung, Garg. 2012. Probiotic as Effective Treatment of Disease. International Research Journal Of Pharmacy : India ISSN : 2230-8407 hal 98. Neish, A.S., Gewirtz, A.T., Zeng, H., Young, A.N., Hobert, M.E., Karmali, V., dkk. 2000. Prokaryotic Regulation of Epithelial Responses by Inhibition of Ikappa B-alpha Ubiquitination. Science 289: 1560-1563. Nilsson, Kjell, dkk. 1983. A General Method for the Immobilization of Cells with Preserved Viability. Pure and Applied Biochemistry, University of Lund, Chemical Center,. P.O. Box 740, S-22007 Lund, Sweden. Eur J Appl Microbiol Biotechnol (1983) 17:319-326. Nuraini Ali, Laila dan Ita Fauziah Ningsih. Produktivitas Etanol Dari Molases Menggunakan Bakteri Zymomonas mobilis Dan Zymomonas mobilis Termutasi dengan Teknik Immobilisasi Sel K-Karaginan. http://digilib.its.ac.id/public/ITS-Undergraduate-10567 Paper.pdf


53

O‘Riordan, K., Andrews, D., Buckle, K., and Conway, P. 2001. Evaluation of Microencapsulation of a Bifidobacterium Strain with Starch as an Approach to Prolonging Viability during Storage. J. Appl. Microbiol. 91: 1059-1066. Poshadri, A. dan Aparna Kuna. Microencapsulation Technology: A Review. J.Res. Angrau 38(1)86-102, 2010. Prado, F. C., J. L. Parada, A. Pandey, and C. R. Soccol. 2008. Trends in NonDairy Probiotic Beverages. Food Res. Int. 41: 111-123. Pratiwi, Sylvia T. 2008. Mikrobiologi Farmasi. Jakarta: Erlangga. Prescott LM, Harley JP, and Kelin DA. 2002. Microbiology, Bacteria: The Low G+C Gram Positives 5th Edition. Boston: McGraw Hill: 529-530. Rao, A. V., Shiwnarain, N., & Maharaj, I. 1989. Survival of Microencapsulated Bifidobacterium pseudolongum in Simulated Gastric and Intestinal Juices. Canadian Institute of Food Science and Technology Journal, 22(4), 345– 349. Risch, S.J. 1995. Encapsulation: Overview of Uses and Techniques. In Encapsulation and Controlled Release of Food Ingredient. ACS Symposium Series 590. Washington, DC: American Chemical Society. pp. 1-7. Rokka, Susanna dan Pirjo Rantamaki. 2010. Protecting Probiotic Bacteria by Microencapsulation: Challenges for Industrial Applications. Eur Food Res Technol Vol. 231:1-12. Rowe, Raymond C., Paul J. Sheskey, Marian E. Quinn. 2009. Handbook of Pharmaceutical Excipient 6th Edition. USA: Pharmaceutical Press. Santi Dwi Astuti dan Friska Citra Agustia. 2011. Produksi Selai Kecipir : Pengaruh Kappa Karagenan, Konjak Glukomanan dan Pati Jagung terhadap Sifat Fisikokima Produk. Universitas Jenderal Soedirman. Sato, Tadashi, Yutaka Nishida, Tetsuya Tosa and Ichiro Chibata. February, 1979. Aspartase Activity with K-Carrageenan Enzymic Properties And Application For L-Aspartic Acid Production. Department of Biochemistry, Research Laboratory of Applied Biochemistry. Tanabe Seiyaku Co. Ltd., 16-89, Kashima-3-Chome, Yodogawa-ku, Osaka (Japan). Biochimica et Biophysica Acta, 570 (1979) 179—186. © Elsevier/North-Holland Biomedical Press. Setijawati, Dwi, Susinggih Wijana, Aulani‘am, Imam Santosa. Juni, 2012. Penggunaan Caragenan dengan Metode Proses Berbeda (SRC dan RC) sebagai Bahan Pengenkapsulat Lactobacillus acidophilus terhadap Viabilitas dan Struktur Mikrokapsul secara in Vitro. Jurnal Teknologi Pangan Vol.3 No.1. Universitas Brawijaya, Malang.


54

Shah, N. P., & Jelen, P. 1990. Survival of Lactic Acid Bacteria and Their Lactases under Acidic Conditions. Journal of Food Science, 55, 506–509. Sohail, Asma, Mark S. Turner, Allan Coombes, Thor Bostrom, Bhesh Bhandari. 2010. Survivability of Probiotics Encapsulated in Alginate Gel Microbeads using a Novel Impinging Aerosols Method. International Journal of Food Microbiology vol. 145: 162-168. Solanki, Himansu K, dkk. 2013. Development of Microencapsulation Delivery System for Long-term Preservation of probiotics as Biotherapeutics Agent. Hindawi Publishing Corporation. BioMed Research International. Volume 2013, Article ID 620719, 21 pages. http://dx.doi.org/10.1155/2013/620719. Staf Pengajar Fakultas Kedokteran Universitas Indonesia.1994. Buku Ajar Mikrobiologi Kedoteran Edisi Revisi. Bagian Mikrobiologi FKUI. Jakarta : Binarupa Aksara. ISBN 979-583-424-X. Starling, Shane. 2014. Data Eater: EU Probiotic Yoghurt Market to Drop 4.5% by 2018; Supplements on the up. http://www.nutraingredients.com/Marketsand-Trends/Data-eater-EU-probiotic-yoghurt-market-to-drop-4.5-by-2018supplements-on-the-up. Diakses pada tanggal 14 Februari 2015. Suryani, Yoni, Astuti, Bernadeta Oktavia, Siti Umniyati. Isolasi dan Karakterisasi Bakteri Asam Laktat dari Limbah Kotoran Ayam sebagai Agensi Probiotik dan Enzim Kolesterol Reduktase. Prosiding Seminar Nasional Biologi 3 Juli 2010. ‗Biologi dan Pengembangan Profesi Pendidik Biologi‘. ISBN : 978-602-97298-0-1. Syahrurahman, Agus. 1994. Buku Ajar Mikrobiologi Kedokteran. Jakarta: Penerbit Binarupa Aksara. Tamime, AY dan Robinson NK. 1989. Yoghurt Science and Technology. Oxford: Pergamon Press. Tosa, Tetsuya, dkk. 1979. Immobilization of Enzymes and Microbial Cells Using Carrageenan as Matrix. Biotechnology and Bioengineering, Vol. XXI, Pp. 1697- 1709 (1979) @1979 John Wiley & Sons, Inc. Tsen, Jen-Horng, Yeu-Pyng Lin, V. An-Erl King. June, 2003. Fermentation of Banana Media by Using K-Carrageenan Immobilized Lactobacillus acidophilus. International Journal of Food Microbiology 91 (2004) 215– 220. www.elsevier.com/locate/ijfoodmicro. University of California, 2014. Lactobacillus casei. Error! Hyperlink reference not valid.enology/winemicro/winebacteria/lactobacillus_casei.html. Utami, Fauziah. 2013. Pengaruh Suhu Terhadap Daya Tahan Hidup Bakteri pada Sediaan Probiotik. Skripsi: Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah.


55

Wikanta, Thamrin, Rahma Damayanti, Lestari Rahayu. 2008. Pengaruh Pemberian Κ-Karagenan dan ί-Karagenan Terhadap Penurunan Kadar Glukosa Darah Tikus Hiperglikemia. Jurnal Pascapanen dan Bioteknologi Kelautan dan Perikanan Vol. 3 No. 2, Desember 2008. Woraharn, Sasimar, Chaiyavat Chaiyasut, Busabun Sirithunyalug, Jakkapan Sirithunyalug. April, 2010. Survival Enhancement of Probiotic Lactobacillus plantarum CMU-FP002 by Granulation and Encapsulation Techniques. African Journal of Microbiology Research Vol. 4(20) pp. 2086-2093, 18 October, 2010. ISSN 1996-0808 ©2010 Academic Journals. http://www.academicjournals.org/ajmr. Yulinery, Titin. Yulianto, Eko. Nurhidayat, Novik. 2006. Uji Fisiologis Probiotik Lactobacillus sp. Mar 8 yang Telah Dienkapsulasi dengan Menggunakan Spray Dryer untuk Menurunkan Kolesterol. Bidang Mikrobiologi, Pusat Penelitian Biologi, Lembaga Ilmu Pengetahuan Indonesia (LIPI). ISSN: 1412-033X. Biodiversitas 7 (2) : 118 – 122. Yulinery, Titin dan N. Nurhidayat. 2012. Analisis Viabilitas probiotik Lactobacillus Terenkapsulasi dalam Penyalut Dekstrin dan Jus Markisa (Passiflora edulis). Bidang Mikrobiologi: LIPI J. Tek. Ling Vol. 13: 109121.


56

Lampiran 1. Alur Penelitian PROSEDUR KERJA

Preparasi Alat

Proses Sterilisasi Alat dan Bahan

Preparasi Bakteri

Preparasi Proses

Lactobacillus casei

Enkapsulasi

Proses Enkapsulasi Bakteri

Perhitungan Sel Bakteri Pembuatan Medium

Pembuatan Larutan

MRS Broth (DeMan

Matriks kappa

Rogosa Sharpe)

karagenan

dalam Mikrokapsul

Pembuatan Medium Agar

Pembuatan Suspensi

Pengukuran Viskositas dan

MRS (DeMan Rogosa

Bakteri

Diameter Mikrokapsul

Sharpe)

Peremajaan Biakan Murni Bakteri Lactobacillus casei

Uji Viabilitas terhadap Simulasi Cairan Asam Lambung

Pewarnaan Bakteri


57

Lampiran 2. Proses Sterilisasi Alat dan Bahan

Peralatan gelas non-presisi seperti petri dish, batang pengaduk, spatula, erlemeyer, beaker glass, tabung reaksi, kaca arloji, pinset logam, batang pengaduk, cawan penguap, corong, dibungkus dengan kertas roti dan kemudian disterilkan dengan oven pada suhu 170⁰C selama 2 jam. Peralatan gelas presisi seperti gelas ukur, pipet, corong beserta kertas saring, spuit, syringe, tip, tabung sentrifugasi, pipet tetes tanpa karet, pipet volumetrik, magnetik stirer, dan kertas saring, dibungkus dengan kertas roti kemudian disterilkan dengan autoklaf pada suhu 121°C selama 15 menit. Peralatan yang disterilisasi dengan cara direbus adalah : karet pipet tetes. Sedangkan ose disterilisasi dengan nyala api bunsen. Bahan – bahan seperti Media MRSA dan MRS Broth (Oxoid), Polimer Refined K-Carrageenan Powder KR 1000 dari PT Java Biocolloid, KCl 0,3 M, NaCl fisiologis 0,9%, aquadest steril, simulated gastric juice (0,08 M HCl dalam 0,2% NaCl dengan pH 1,5 tanpa pepsin), disterilkan dengan autoklaf pada suhu 121°C selama 15 menit.


58

Lampiran 3. Hasil Analisa Hubungan Antara Konsentrasi dan Jumlah Bakteri Setelah Proses SGJ dengan Menggunakan Metode Uji Korelasi (Bivariat) [DataSet1] E:\\SPSS\Data TPC.sav Correlations Konsentrasi Konsentrasi

Pearson Correlation

Bakterisetelah SGJ

1

.866

Sig. (2-tailed)

.333

N Bakterisetelah Pearson Correlation SGJ Sig. (2-tailed) N

3 .866 .333 3

3 1 3

Lampiran 4. Hasil Analisa Data dengan Uji Normalitas [DataSet1] E:\\SPSS\Data TPC.sav Case Processing Summary Valid N Percent Konsentrasi BakterisetelahSGJ

3 3

Cases Missing N Percent

100.0% 100.0%

0 0

.0% .0%

Total N Percent 3 3

100.0% 100.0%

Tests of Normality Kolmogorov-Smirnova Statistic df Sig. Konsentrasi .175 3 BakterisetelahSGJ .385 3 a. Lilliefors Significance Correction

Shapiro-Wilk Statistic df Sig. . .

1.000 .750

3 3

1.000 .000


59

(Lanjutan Hasil Analisa Data dengan Uji Normalitas)

Descriptives Statistic Konsentrasi

Mean

Std. Error

1.7500

95% Confidence Interval for Mean

Lower Bound

1.1290

Upper Bound

2.3710

5% Trimmed Mean

.14434

.

Median

1.7500

Variance

.062

Std. Deviation

.25000

Minimum

1.50

Maximum

2.00

Range

.50

Interquartile Range

.

Skewness Kurtosis

.000

1.225

.

.

7.79E7 -2.57E8 4.13E8 . .00 1.821E16 1.349E8 0 2.E8 2.E8 . 1.732 .

7.791E7

Descriptives Bakterisetelah Mean SGJ 95% Confidence Interval for Mean 5% Trimmed Mean Median Variance Std. Deviation Minimum Maximum Range Interquartile Range Skewness Kurtosis

Lower Bound Upper Bound

1.225 .


60

Lampiran 5. Hasil Analisa T-Test dan Frekuensi (Diameter Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 2%)

[DataSet1] F:\SPSS\Data Diameter 2%.sav One-Sample Statistics N Mean Std. Deviation Std. Error Mean 15 1.68827 .099161 .025603 15 2.04920 .070831 .018288

DKontrol Duji

One-Sample Test Test Value = T 0 Df Sig. (2-tailed) Mean Difference 95% Confidence Interval of the Difference

DKontrol DUji 65.939 112.049 14 14 .000 .000 1.688267 2.049200 1.63335 2.00998 1.74318 2.08842

Lower Upper

[DataSet1] F:\SPSS\Data Diameter 2%.sav Frekuensi

N

Valid Missing

Mean Std. Error of Mean Median Std. Deviation Variance Range Minimum Maximum

Statistics DKontrol 15 0 1.68827 .025603 1.68000 .099161 .010 .343 1.544 1.887

DUji 15 0 2.04920 .018288 2.03600 .070831 .005 .238 1.933 2.171


61

Lampiran 6. Hasil Analisa T-Test dan Frekuensi (Diameter Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 1,75%)

[DataSet2] F:\SPSS\Data Diameter 1,75%.sav One-Sample Statistics N Mean Std. Deviation Std. Error Mean 15 1.79833 .084017 .021693 15 2.03213 .164938 .042587

DKontrol DUji

One-Sample Test Test Value = 0 t df Sig. (2-tailed) Mean Difference 95% Confidence Interval of the Difference

DKontrol DUji 82.899 47.718 14 14 .000 .000 1.798333 2.032133 1.75181 1.94079 1.84486 2.12347

Lower Upper

[DataSet2] F: \SPSS\Data Diameter 1,75%.sav Frekuensi

N

Valid Missing



DUji 15 0 2.03213 .042587 1.99500 .164938 .027 .662 1.889 2.551


62

Lampiran 7. Hasil Analisa T-Test dan Frekuensi (Diameter Mikrokapsul Kappa Karagenan dan Mikrokapsul Tanpa Bakteri Konsentrasi 1,5%)

[DataSet2] F:\SPSS\Data Diameter 1,5%.sav

One-Sample Statistics N Mean Std. Deviation Std. Error Mean 15 1.78267 .120140 .031020 15 2.04620 .045924 .011858

DKontrol Duji

One-Sample Test Test Value = 0 t df Sig. (2-tailed) Mean Difference 95% Confidence Interval of the Difference

DKontrol DUji 57.468 172.565 14 14 .000 .000 1.782667 2.046200 1.71614 2.02077 1.84920 2.07163

Lower Upper

[DataSet2] F: \SPSS\Data Diameter 1,5%.sav Frekuensi

N

Valid Missing



DUji 15 0 2.04620 .011858 2.03700 .045924 .002 .140 1.988 2.128


63

Lampiran 8. Hasil Perhitungan Persen Efisiensi Enkapsulasi Lactobacillus casei dengan Matriks Kappa Karagenan Konsentrasi

Volume Suspensi Bakteri yang ditambahkan

Jumlah koloni/ml Suspensi Bakteri

2% 1,75% 1,5%

10 ml 10 ml 10 ml

2,03 x 109 2,03 x 109 2,03 x 109

Jumlah Total Sel dalam Suspensi Biopolimer (cfu) = (R) 2,03 x 1010 2,03 x 1010 2,03 x 1010

Populasi Sel Setelah Enkapsulasi (koloni/gram) = (P) 38,075 x 108 35,8165 x 108 28,3 x 108

Massa Mikrokapsul yang Dihasilkan (gram) = (Q) 32,251 gram 29,125 gram 34,505 gram

Efisiensi Enkapsulasi

60,49% 51,38% 48,10%

Lampiran 9. Hasil Perhitungan Persen Penurunan Jumlah Bakteri Konsentrasi Mikrokapsul L.Casei-Kappa

Jumlah Bakteri Setelah Enkapsulasi (Koloni/gram) = A

Jumlah Bakteri Setelah Dilakukan Uji Simulasi Cairan Lambung (Koloni/gram) = B

2%

3,8075 x 108

2,3373475 x 108

%P =

A−B A

Persen Penurunan Jumlah Bakteri (%) 38,612

x 100%

Keterangan : %P = Penurunan (%)


64

Lampiran 10. Kadar Air Konsentrasi

% Kadar Air 94,08 94,34 94,11 93,98 94,59 94,85

2% 1,75% 1,5%

Rata-Rata % Kadar Air 94,21 94,045 94,72

Lampiran 11. Contoh Perhitungan Koloni Bakteri Diketahui

: Jumlah koloni dalam suspensi bakteri Lactobacillus casei pada pengenceran 10-6 yaitu 92 koloni dan 80 koloni.

Penyelesaian : Cfu/ml =


Jumlah koloni pada pengenceran 10-6 =

Jumlah koloni pada pengenceran 10-6 =

92 + 80 = 172 = 86 koloni 2 2 86 = 86 = 86 x 107 koloni/ml 10-1 x 10-6 10-7


65

Lampiran 12. Hasil TPC Bakteri Lactobacillus casei

Pengenceran 10-2

Pengenceran 10-3

Pengenceran 10-4

Pengenceran 10-5

Pengenceran 10-6

Pengenceran 10-7


66

Lampiran 13. Hasil TPC setelah Proses Enkapsulasi

Konsentrasi 2% Pengenceran 10-5


Konsentrasi 1,75% Pengenceran 10-5





67

Lampiran 14. Hasil TPC setelah Diinkubasi dalam Simulasi Cairan Asam Lambung








68

Lampiran 15. Gambar Alat dan Bahan Penelitian

pH meter

Timbangan Analitik

Hot Plate Stirer

Moisture Balance

Mikroskop Optik

Oven

Spuit dan Syringe

Autoklaf

Inkubator


69

Lanjutan (Gambar Alat dan Bahan Penelitian )

Laminar Air Flow (LAF)

MRS Agar

Colony Counter

MRS Agar Steril

Mikrokapsul Kappa Karagenan

Mikropipet

Hasil Resuspensi

Hasil Pewarnaan  Bakteri gram positif, berwarna ungu kebiruan, dan berbentuk basil


70

Lampiran 16. Sertifikat Analisa Bakteri

3941 Ryan Street. Lake Charles, LA 70605, 800-255-6730, 913-888-0939. www.remel.com www.remel.com


71

Lampiran 17. Sertifikat Analisa Kappa Karagenan


72

(Lanjutan Sertifikat Analisa Kappa Karagenan)


UJI VIABILITAS ENKAPSULASI Lactobacillus casei MENGGUNAKAN MATRIKS KAPPA KARAGENAN TERHADAP SIMULASI CAIRAN ASAM LAMBUNG

Recommend Documents