QUANTA Lite® Jo-1
708585
In Vitro diagnosztikai alkalmazásra CLIA Bonyolultság: magas
Javasolt alkalmazás QUANTA Lite® Jo-1 egy enzimmel kapcsolt immunoszorbens assay (ELISA) a Jo-1 antitestek szemikvantitatív kimutatására humán szérumban. A Jo-1 antitesteknek a jelenléte felhasználható a klinikai adatokkal és más laboratóriumi vizsgálatok eredményével együtt kiegészítő adatként a polymyositis és a rokon kötőszöveti betegségek diagnózisának felállítása során.
A teszt összegzése és magyarázata
Antinuclearis antitestek (ANA) a kötőszöveti betegségek széles körében megtalálhatók, és mint ilyenek, szenzitív szűrőmódszerként szolgának.1 Míg az ANA teszt kiváló szűrő módszer SLE esetében (a negatív eredmény gyakorlatilag kizárja az aktív SLE diagnózisát)2, specifikusnak semmiféle értelemben nem nevezhető. A Jo-1 antigén, más néven histidyl-tRNA szintetáz ellenes autoantitestek a kötőszöveti betegségben szenvedő páciensek olyan alcsoportjában mutathatók ki, akiknél tisztán polymyositis, tisztán dermatomyositis vagy más rheumatikus betegséggel asszociált myositis áll fenn 3 A Jo-1 ellenes antitestek a myositis kritériumainak megfelelő betegek 18-36%ában megtalálhatók.3-6 Az antitest pozitivitás gyakoribb polymyositisben mint dermatomyositisben, és csak ritkán fordul elő más kórképekben.5-7 A Jo-1 ellenes antitestek jelenléte szoros kapcsolatban van az interstitialis tüdőbetegséggel7,8 csaknem minden Jo-1 pozitív beteg esetében bizonyítható a tüdő érintettsége. A Jo-1 antitest titer és a betegség aktivitása közötti összefüggést is kimutatták.9 A Jo-1 ellenes antitestek kimutatására a vizsgáló módszerek széles skáláját alkalmazták, többek között az Ouchterlony kettős immundiffúziós eljárást és a passzív agglutinációt. Kifejlesztettek klinikailag jól használható ELISA módszert is a Jo-1 autoantitestek detektálására. Az ezekben a tesztekben alkalmazott ELISA technika objektív, szemi-kvantitatív, és kényelmesen használható nagy számú minta vizsgálatára.
A módszer elve
Tisztított Jo-1 antigént kötöttek mikrotiter lemez mérőedénykéinek falához olyan körülmények között, ami képes az antigén natív állapotát megőrizni. Az előhígított kontrollokat és a hígított beteg-mintákat az egyes különálló mélyedésekbe töltjük, ahol a mintában esetleg jelen lévő Jo-1 antitestek kikötődnek az edény falához rögzített antigénhez. A nem kötődött mintát mosással eltávolítjuk, és minden egyes mélyedésbe enzimmel kapcsolt anti-humán IgG konjugátumot adunk. A második inkubáció lehetővé teszi az enzimmel jelzett anti-humán IgG számára, hogy a vizsgált mintából származó, az első inkubáció során lekötött antitesthez kapcsolódjon, ha volt ilyen. Miután az enzimmel jelölt anti-humán IgG felesleget mosással eltávolítottuk, a rögzítve maradt enzim aktivitását kromogén szubsztrát hozzáadásával és a kialakult szín intenzitásának mérésével határozzuk meg. A tesztet spektrofotometriás módszerrel lehet értékelni úgy, a betegek mintáival kapott szín intenzitását lemérjük, és a kontrollokéhoz hasonlítjuk.
Reagensek 1. 2. 3.
Polisztirén mikrotiter ELISA lemez, tisztított Jo-1 antigénnel fedve (12-1 x 8 mérőhely), tartókerettel, szárítóbetétet tartalmazó fóliatasakba csomagolva. ELISA Negatív Kontroll, 1 üveg puffer, tartósító anyagokat és humán szérumot tartalmaz, amelyben nincsenek humán Jo-1 antigén ellenes antitestek, előhígítva, 1.2mL Jo-1 ELISA Low Positive (mérsékelten pozitív kontroll), 1 üveg puffer, benne tartósító anyagok és humán szérum Jo-1 ellenes antitestekkel, előhígítva, 1.2mL 1
4. 5. 6.
7. 8. 9.
Jo-1 ELISA High Positive (erősen pozitív kontroll), 1 üveg puffer, benne tartósító anyagok és humán szérum Jo-1 ellenes antitestekkel, előhígítva, 1.2mL HRP Minta Diluens, 1 üveg – rózsaszínre festve, tartalma: konyhasó TRIS pufferrel, Tween 20, protein stabilizátorok és tartósító anyagok, 50mL HRP mosó koncentrátum, 1 üveg 40x-es koncentrátum – pirosra színezett, tartalma: konyhasó TRIS pufferrel és Tween 20, 25mL. A hígítási javaslatok a “Módszer” szakaszban találhatók. HRP IgG Konjugátum, (kecske), anti-humán IgG, 1 üveg – kék színűre színezett, puffert, protein stabilizátorokat és tartósító anyagokat tartalmaz, 10mL TMB Kromogén, 1 üveg, stabilizátorokat tartalmaz, 10mL HRP Stop (leállító) oldat, 0.344M kénsav, 1 üveg – színtelen, 10mL
Veszélyforrások 1.
2.
3.
4.
5.
6.
7. 8.
FIGYELEM: Ez a termék olyan kémiai anyagot (0.02% chloramphenicol) tartalmaz a mintahígítóban, kontrollokban és a konjugátumban, amelyet California államban rákkeltőként tartanak nyilván. Az összes humán eredetű anyagot, amelyeket a kontrollok előállítása során felhasználtak ehhez a termékhez, ellenőrizték és negatívnak találták HIV, HBsAg, és HCV ellenes antitestekre nézve az FDA által jóváhagyott módszerekkel. Semmilyen teszt módszer nem tud azonban tökéletes biztonságot nyújtani arra nézve, hogy a termék mentes HIV, HBV, HCV vírusoktól, vagy más fertőző ágensektől. Éppen ezért, a Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll, a Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll és az ELISA Negatív Kontroll potenciálisan fertőző anyagként kezelendő.10 Nátrium azidot alkalmaztak az oldatok stabilizálására. A nátrium azid méreg, és lenyelve, vagy szemen, bőrön keresztül felszívódva toxikus lehet. A nátrium azid ezen kívül ólom vagy réztartalmú vízvezeték csövekkel reakcióba léphet, robbanásveszélyes fém-azid komplexet képezve. Ha a reagensek maradványait a vízvezeték rendszeren keresztül távolítja el, öblítse a medencét nagy mennyiségű vízzel az azid lerakódás megakadályozása céljából. A HRP konjugátum egy híg mérgező/korrozív vegyszert tartalmaz, ami nagy mennyiségben elfogyasztva toxikus lehet. Az esetleges vegyi égési sérülés megelőzése érdekében vigyázzon, hogy az anyag bőrre, szembe ne kerülhessen. A TMB Kromogén irritáló anyagot tartalmaz, ami belélegezve, lenyelve, vagy a bőrön keresztül felszívódva veszélyes lehet. A sérülések megelőzése érdekében kerülje az anyag belélegzését, elfogyasztását illetve a bőrre, szembe jutását. A HRP Stop oldat hígított kénsav oldat. Ne tegye ki bázisok, fémek vagy más olyan anyagok hatásának, amelyek savakkal reakcióba lépnek. A kénsav mérgező és maró anyag, lenyelve toxikus lehet. Az esetleges vegyi égési sérülés megelőzése érdekében vigyázzon , hogy az anyag bőrre, szembe ne kerülhessen. Használjon megfelelő személyi védőeszközöket a kitben található reagensekkel végzett műveletek során. A kicsöppenő reagenseket azonnal fel kell takarítani. A hulladékok eltávolítása folyamán tartsa be az összes szövetségi, állami és helyi környezetvédelmi előírást.
Az analitikai hibák megelőzését célzó figyelmeztetések 1. 2. 3.
Ez a termék in vitro diagnosztikai alkalmazásra készült. A rendszer egyes elemeinek helyettesítése más termékekkel az eredményeket meghamisíthatja. Nem tökéletes vagy hatástalan mosás, és a folyadék elégtelen eltávolítása az ELISA csíkok edénykéiből nem megfelelő reprodukálhatóságot és/vagy magas hátteret okozhat.
2
4.
5.
6. 7. 8.
9.
Ennek a tesztnek az adaptációja automatikus mintakezelési rendszerek és más folyadékkezelő eszközök használatához, teljes egészében vagy részleteiben, a teszt eredményeinek eltérését okozhatja attól, amit manuális módszerrel nyertek. Minden laboratóriumnak a saját felelőssége az általa alkalmazott automatizált rendszer validálása annak érdekében, hogy az eredmények elfogadható tartományon belül legyenek. A teszt működését változatos tényezők befolyásolhatják. Ilyenek lehetnek a reagensek induló hőmérséklete, a környezeti hőmérséklet, a pipettázási technika pontossága és reprodukálhatósága, a mosás és a folyadék-maradványoknak az ELISA lemez edénykéiből történő eltávolításának az alapossága, az eredmények mérésére használt fotométer, és az assay kivitelezése során alkalmazott inkubációs idők tartama. Nagy gondot kell fordítani a következetességre annak érdekében, hogy a kapott eredmények megbízhatóak és reprodukálhatóak legyenek. Javasoljuk, hogy a vizsgálat kivitelezése során szigorúan kövesse a protokollt. A mikrotiter csíkokat és a szárító betéteket tartalmazó visszazárható tasakok tökéletlen lezárása az antigén degradációját és a teszt precizitásának romlását okozza. A HRP konjugátumnak bizonyos idő-intervallumban két vagy több alkalommal történő használata ugyanabból az üvegből, elfogadhatatlanul alacsony abszorbancia értékeket eredményezhet. Fontos a HRP konjugátum kezelésére vonatkozó előírások pontos betartása az ilyen problémák megelőzése érdekében. A HRP konjugátum kémiai szennyeződése következhet be az eszközök és műszerek nem megfelelő tisztítása miatt. Általánosan használt laboratóriumi vegyszerek, mint például a formalin, fehérítő szerek, alkohol vagy detergensek maradványai a HRP konjugátum lebomlását okozzák bizonyos idő után. Kémiai tisztítószerek vagy fertőtlenítő szerek használata után a készülékeket és eszközöket alaposan le kell öblíteni.
Tárolási körülmények 1.
2. 3.
A kit valamennyi reagensét tárolja 2-8°C között. Nem szabad fagyasztani a terméket. A reagensek az előírásoknak megfelelően kezelve és tárolva a feltüntetett lejárati időn belül stabilak. A fel nem használt, antigénnel bevont mikrotiter csíkokat a szárítóbetéttel együtt biztonságosan vissza kell zárni a fóliatasakba, és 2-8°C között kell tárolni. A hígított mosópuffer 2-8°C között tartva 1 hétig használható.
A minta vétele és kezelése Ez az eljárás szérum minták vizsgálatára alkalmas. A vizsgálndó mintákhoz azidot vagy más tartósító anyagokat adni nem ajánlott, mert ezek torzíthatják az eredményeket. Mikrobiológiai szempontból szennyezett, hőkezelt, vagy látható csapadékot, szilárd részecskéket tartalmazó minta nem használható. Kerülje az erősen hemolizált vagy lipémiás minták használatát. Levétel után a szérumot az alvadéktól el kell választani. Az CLSI (NCCLS) Document H18-A3 a minták tárolására a következő körülményeket javasolja: 1) Ne tartsa a mintákat 8 óránál hosszabb ideig szobahőmérsékleten. 2) Ha a vizsgálat nem végezhető el 8 órán belül, tartsa a mintákat hűtve, 2-8°C között. 3) Ha a teszt nem végezhető el 48 órán belül, vagy a minták szállítására van szükség, fagyassza és tárolja a mintákat -20°C-on vagy ennél alacsonyabb hőmérsékleten. A fagyasztott mintákat a kiolvasztás után és vizsgálat előtt alaposan fel kell keverni.
3
A teszt kivitelezése A kitben rendelkezésre álló anyagok 1 1 1 1 1 1 1 1 1
Jo-1 ELISA mikrotiter lemez, (12-1 x 8 mérőhely), tartókerettel 1.2mL ELISA Negatív Kontroll, előhígítva 1.2mL Jo-1 ELISA Low Positive (mérsékelten pozitív kontroll) előhígítva 1.2mL Jo-1 ELISA High Positive (erősen pozitív kontroll) előhígítva 50mL HRP Minta Diluens 25mL HRP Wash (mosó) Koncentrátum, 40x –es koncentráció 10mL HS HRP IgG Konjugátum, (kecske), anti-humán IgG 10mL TMB Kromogén 10mL HRP Stop Oldat, 0.344M Kénsav
További szükséges anyagok a kiten kívül
Mikropipetták 5, 100, 200-300, és 500µL beméréséhez Egyszer használatos mikropipetta-hegyek Tesztcsövek a betegek mintáinak hígításához, 4mL térfogattal Desztillált vagy ionmentesített víz 1L-es edény a HRP mosó koncentrátum hígításához Mikrotiter lemez leolvasó az OD mérésére 450nm-en (és 620nm-en a két hullámhosszon történő leolvasáshoz)
Módszer
Mielőtt hozzákezd: 1. 2.
3.
4.
Várjon, míg a minták és a reagensek elérik a szobahőmérsékletet (20-26oC) és mindegyiket jól keverje meg. Hígítsa a HRP mosó koncentrátumot 1:40 arányban, úgy, hogy a HRP mosó koncentrátumos üveg tartalmát 975 mL desztillált vagy ionmentesített vízhez adja. Ha nem kerül a teljes lemez egyszerre feldolgozásra, kisebb mennyiséget is lehet hígítani: minden 16 felhasználandó mérőhely számára adjon 2 mL koncentrátumot 78 mL desztillált vagy ionmentesített vízhez. A hígított puffer egy hétig stabil 2 – 8°C között tartva. Készítsen minden egyes beteg-mintából 1:101 arányú hígítást a következő módon: adjon 5µL mintát 500µL HRP minta diluenshez. A hígított mintákat 8 órán belül fel kell használni. NE HÍGÍTSA a Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontrollt, a Jo-1 ELISA erősen pozitív kontrollt , és az ELISA negatív kontrollt. A Jo-1 antitestek jelenlétének vagy hiányának tapasztalati egységekben történő meghatározása céljából használjon mind a három kontroll teszteléséhez két-két mérőhelyet, és a betegek mintának lemérésére egy vagy két mérőhelyet. Javasoljuk a betegek mintáiból is a párhuzamos (duplikált) meghatározásokat.
A módszer kivitelezése 1.
2.
VALAMENNYI REAGENSNEK EL KELL ÉRNIE A SZOBA HŐMÉRSÉKLETÉT (20-26°C) A VIZSGÁLAT MEGKEZDÉSE ELŐTT. Helyezze a szükséges számú mérőedénykét/csíkot a keretbe. A fel nem használt csíkokat haladéktalanul tegye vissza a szárítóbetétet tartalmazó fóliatasakba, és zárja vissza a tasakot biztonságosan, hogy a mérőhelyek minimális ideig legyenek kitéve a párásodás veszélyének. Pipettázzon 100µL-t az előhígított Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontrollból, a Jo-1 ELISA erősen pozitív kontrollból, az ELISA negatív kontrollból és a hígított beteg-mintákból a mérőedénykékbe. Fedje be a lemezeket, és inkubálja 30 percig szobahőmérsékleten, sima vízszintes felületen. Az inkubációs idő az utolsó minta bemérése után kezdődik.
4
3.
4.
5. 6. 7.
8.
Mosás: Gondosan szívja le minden egyes mérőedényke tartalmát. Adjon 200-300µL hígított HRP mosó puffert minden egyes mérőhelyhez, majd ezt is szivassa ki. Ismételje az eljárást még kétszer, így végezzen el összesen három mosást. Fordítsa a lemezt nyílásokkal lefelé, és egy nedvszívó felületen finoman ütögetve távolítsa el tökéletesen az utolsó mosás után visszamaradt nedvesség nyomait az edénykékből. Nagyon fontos, hogy az edénykék minden egyes mosási lépés után tökéletesen ki legyenek ürítve. A leszíváskor tartsa be a minta felvitelekor alkalmazott sorrendet. Adjon 100µL HRP IgG Konjugátumot minden egyes mérőhelyhez. A konjugátumot az eredeti reagens üvegből aszeptikus körülmények között és a helyes laboratóriumi eljárásnak megfelelően kell kivenni. Csak annyi konjugátumot vegyen ki az üvegből, amennyire a teszt kivitelezéséhez szüksége van. A POTENCIÁLIS MIKROBIOLÓGIAI ÉS/VAGY KÉMIAI SZENNYEZŐDÉS ELKERÜLÉSE ÉRDEKÉBEN SOHA NE TÖLTSE VISSZA A FEL NEM HASZNÁLT KONJUGÁTUMOT AZ ÜVEGBE. Inkubálja a lemezt 30 percig, mint a 2-ik lépésben. Mosás: Ismételje a 3 lépést. Adjon 100µL TMB kromogént minden egyes edénykébe, és inkubálja sötét helyen 30 percig szobahőmérsékleten. Adjon 100µL HRP Stop oldatot minden mérőhelyre. Tartsa be a HRP Stop oldat adagolása alkalmával ugyanazt a tempót és sorrendet, amit a TMB kromogén bemérésekor használt. Óvatosan ütögesse meg ujjával a lemez oldalát, az edénykék tartalmának alapos összekeverése céljából. Olvassa le minden egyes mérőhely abszorbancia (OD) értékét a reakció leállítását követő egy órán belül, 450 nm-en. Ha bikromatikus leolvasást igényel, referencia hullámhossznak a 620nm használható.
Minőség-ellenőrzés 1.
2.
3.
4.
A Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll, a Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll és az ELISA negatív kontroll minden egyes beteg-minta sorozattal együtt kell fusson, hogy ellenőrizhető legyen, hogy az összes reagens és az eljárás végrehajtása is kifogástalan volt a teszt kivitelezése folyamán. Ne feledje, hogy mivel a Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll, a Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll és az ELISA negatív kontroll előhígítva kerülnek forgalomba, ezek nem kontrollálják a minta hígításával kapcsolatos előkészítési folyamatot. Kiegészítő kontrollok vizsgálata is végezhető a helyi, állami és/vagy szövetségi rendelkezések, vagy az akkreditációs testületek ajánlásainak vagy elvárásainak megfelelően. Alkalmas kiegészítő kontroll szérum készíthető kevert humán szérum minták szétosztásával, és < -20°C-on történő tárolásával. Annak érdekében, hogy a teszt eredményeit érvényesnek tekinthessük, valamennyi, alább felsorolt kritériumnak teljesülnie kell. Ha ezek közül bármelyik nem teljesül, a tesztet érvénytelennek kell tekinteni, és az eljárást meg kell ismételni. a. Az előhígított Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll abszorbanciája nagyobb kell, hogy legyen, mint az előhígított Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll abszorbanciája, és ez nagyobb kell legyen, mint az előhígított ELISA negatív kontroll abszorbanciája. b. Az előhígított Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll abszorbanciája 1.0-nél nagyobb kell legyen, míg az előhígított ELISA negatív kontroll abszorbanciája nem lehet nagyobb 0.2-nél. c. A Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll abszorbanciája több, mint kétszerese kell legyen az ELISA negatív kontroll abszorbanciájának, vagy legyen nagyobb, mint 0.25.
5
d.
e.
Az ELISA negatív kontroll és az Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll a reagensek minőségének lényeges eltérését kontrollálja. A Jo-1 ELISA erősen pozitív kontroll használata nem garantálja a precizitást a teszt küszöbértékének közelében. A megfelelő QC eljárásokra vonatkozó további információkat az CLSI (NCCLS) Document C24-A2 tartalmazza, ennek tanulmányozása ajánlott.
Az eredmények kiszámítása
Először határozza meg a párhuzamos minták OD értékeinek átlagát. Ezután minden egyes minta reaktivitása kiszámítható olyan módon, hogy a minta OD átlagát elosztjuk a Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontroll OD átlagával. A kapott eredményt szorozzuk a Jo-1 ELISA mérsékelten pozitív kontrollt tartalmazó üveg címkéjén feltüntetett egység mérőszámával. Minta OD Minta eredménye = __________________________ x Jo-1 ELISA mérs. Poz. Kontr. (egység) Jo-1 ELISA mérs. Poz. Kontr. OD (egység) A reaktivitás és a mintában lévő antitestek mennyisége között nem-lineáris kapcsolat van. Miközben a beteg antitest koncentrációjának növekedése és csökkenése a reaktivitás ezzel összefüggő növekedésében és csökkenésében mutatkozik meg, a változás nem lesz arányos (azaz, például a koncentráció kétszeresére nő, de a reaktivitás nem lesz kétszeres). Ha a beteg antitest koncentrációjának ennél pontosabb meghatározására van szükség, a beteg mintájának sorozatos hígítását kell tesztelni, és azt az utolsó hígítást tekintjük a beteg antitest titer értékének, ami még a tesztben pozitív eredményt adott.
Az eredmények értelmezése
Az ELISA assay a kivitelezési technikára nagyon érzékeny módszer, és képes a beteg-populációk között lévő igen kis különbségek érzékelésére. Az alábbi adatok csak tájékoztatásra szolgálnak. Minden laboratóriumban meg kell határozni a saját referencia tartományokat, az aktuálisan használt technikával, kontrollokkal, eszközökkel, és a vizsgált beteg populációra jellemző módon, a helyi eljárási szabályoknak megfelelően. A minta besorolása lehet negatív, gyengén pozitív, mérsékelten pozitív vagy erősen pozitív az alábbi táblázat szerint: Egység < 20 20 – 39 40 – 80 > 80
Negatív Gyengén pozitív Mérsékelten pozitív Erősen pozitív 1. 2. 3.
A pozitív eredmény arra utal, hogy a mintában Jo-1 antitestek vannak, és felveti a polymyositis vagy más hasonló kötőszöveti betegség fennállásának lehetőségét. A negatív eredmény arra utal, hogy a betegnek nincs Jo-1 antitestje, vagy annak koncentrációja nem éri el a teszt kimutathatósági küszöbét. Javasoljuk, hogy a laboratórium által kiadott értékelés tartalmazza az alábbi megállapítást: “Az itt következő eredmény az INOVA QUANTA Lite® Jo-1 ELISA kit használatával keletkezett. Más gyártók tesztjével kapott Jo-1 eredmények ettől eltérőek lehetnek, váltakozva nem használhatók. A közölt IgG érték nagyságrendje nem vethető össze egy végpont-titer értékkel.”
6
A módszer korlátai 1. 2. 3. 4.
Immunkomplexek és más immunglobulin aggregátumok jelenléte a mintában a nemspecifikus kötődés mértékét növelheti, és a teszt téves pozitivitását okozhatja. Nem minden polymyositisben szenvedő páciens mintája pozitív Jo-1 antitestekre. Az eredményeket a klinikai adatok és más szerológiai tesztek eredményével együtt kell értékelni. Az assay működési jellemzői a szérumtól eltérő anyagok vizsgálatára nincsenek meghatározva.
Várható értékek A QUANTA Lite® Jo-1 ELISA teszt alkalmasságát a Jo-1 antitestek detektálására kettős immundiffúziós módszerrel történt összehasonlítás segítségével határozták meg, amelyet az INOVA Diagnostics, Inc. forgalmaz. Az Ouchterlony teszt eredményét pozitívnak tekintették, ha a precipitin csík azonosságot jelzett, és negatívnak, ha nem volt észlelhető precipitáció, vagy a vizsgálat nem azonos antigént jelzett. Referencia tartomány Száznyolc random szérum mintát választottak ki, és teszteltek a Jo-1 ELISA assay használatával. A minta-populáció átlagértéke 2.0 egység volt, a standard deviáció 0.5 egység. A populáció eredményei 3.5 től 1.2 egységig terjedő tartományba estek. Ez a kísérlet azt mutatja, hogy egy átlagos normál minta eredménye több, mint 36 standard deviációnak megfelelő egységgel van a küszöbérték alatt.
Relatív szenzitivitás és specificitás A teszt relatív szenzitivitásának és specificitásának meghatározása céljából 235 ANA pozitív beteg mintáját vizsgálták, amelyek a nucleáris antigének változatos formái ellen tartalmaztak ellenanyagokat. A mintákat párhuzamosan analizálták az Ouchterlony és az ELISA módszerrel. A tesztelt 235 mintából 12 volt pozitív és 223 volt negatív mindkét eljárással. A Jo-1 ELISA assay eredményeinek összefoglalása az alábbi táblázatban látható. INOVA +
+ 12
0
-
0
223
OT
Relatív Szenzitivitás Relatív Specificitás Relatív Hatékonyság
100% 100% 100%
Precizitás és reprodukálhatóság Az assay precizitását és reprodukálhatóságát egy mérsékelten pozitív és egy gyengén pozitív minta hat paralell vzsgálatával határozták meg, hat különálló sorozatban megismételve. Az átlagos reaktivitás a mérsékelten pozitív mintában 47.3 egység volt, a gyengén pozitív minta átlaga 24.0 egység volt. Az alábbiakban összefoglalva láthatók a sorozatok standard deviációi és variációs együtthatói az egyes minták esetében.
Általános Sorozaton belül Sorozatok között
Mérsékelten pozitív SD CV 2.5 5.3% 2.6 5.6% 0.6 1.4%
7
Gyengén pozitív SD CV 1.0 4.2% 0.5 2.0% 1.0 4.3%
Hivatkozások 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. 9.
10.
Tan EM: Autoantibodies to nuclear antigens(ANA): Their immunobiology and medicine. Advances in Immunology 33: 167-239, 1982. Tan EM, et al.: The 1982 Revised Criteria for the Classification of Systemic Lupus Erythematosus. Arthritis and Rheumatism 25: 1271-1277, 1982. Biwas T, et al.: An enzyme-linked immunosorbent assay for the detection and quantitation of anti-Jo1 antibody in human serum. J Immunol Methods 98: 243, 1987. Nishikai M and Reichlin M: Heterogeneity of precipitating antibodies in polymyositis and dermatositis: characterization of the Jo-1 antibody system. Arthritis and Rheumatism 23: 881, 1980. Arnett J, et al.: The Jo-1 antibody system in myositis: relationships to clinical features and HLA. J Rheumatol 8: 925, 1981. Reichlin M, et al.: Antibodies to a nuclear/nucleolar antigen in patients with polymyositis overlap syndrome. J Clin Immunol 4: 40, 1984. Bernstein R, et al.: Anti-Jo-1 antibody: a marker for myositis with interstitial lung disease. Br Med J 289: 151, 1984. Hochberg M, et al.: Antibody to Jo-1 in polymyositis/dermatomyositis: association with interstitial pulmonary lung disease. J Rheumatol 11: 663, 1984. Yoshida S, et al.: The precipitation antibody to an acidic nuclear protein antigen, the Jo-1 in connective tissue diseases: a marker to a subset of polymyositis with interstitial pulmonary fibrosis. Arthritis and Rheumatism 26: 604, 1983. Biosafety in Microbiological and Biomedical Laboratories: Centers for Disease Control/National Institutes of Health, Fifth Edition, 2007.
A terméket előállítja: I INOVA Diagnostics, Inc. 9900 Old Grove Road San Diego, CA 92131 United States of America Technical Service (U.S. & Canada Only) : 877-829-4745 Technical Service (Outside the U.S.) : 00+ 1 858-805-7950
[email protected] Forgalmazásra jogosult az EU területén: Medical Technology Promedt Consulting GmbH Altenhofstrasse 80 D-66386 St. Ingbert, Germany Tel.: +49-6894-581020 Fax.: +49-6894-581021 www.mt-procons.com 628585HUN
November 2011 Mod. 1
QUANTA Lite és INOVA Diagnostics bejegyzett védjegyek. Copyright 2011 Minden jog fenntartva
8
