PENGARUH PENAMBAHAN PEMLASTIS DIMETIL FTALAT, DIETIL GLIKOL DAN POLIETILEN GLIKOL DALAM PROSES BIODEGRADASI

PENGARUH PENAMBAHAN PEMLASTIS DIMETIL FTALAT, DIETIL GLIKOL DAN POLIETILEN GLIKOL DALAM PROSES BIODEGRADASI POLI-β-HIDROKSIALKANOAT (PHA) PADA MEDIA AIR SECARA AEROBIK

oleh SAVITRI DINYATI F 34102095

2007 FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

PENGARUH PENAMBAHAN PEMLASTIS DIMETIL FTALAT, DIETIL GLIKOL DAN POLIETILEN GLIKOL DALAM PROSES BIODEGRADASI POLI-β-HIDROKSIALKANOAT (PHA) PADA MEDIA AIR SECARA AEROBIK

Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Memperoleh Gelar SARJANA TEKNOLOGI PERTANIAN Pada Departemen Teknologi Industri Pertanian Fakultas Teknologi Pertanian Institut Pertanian Bogor

oleh SAVITRI DINYATI F34102095

2007 FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR BOGOR

DEPARTEMEN TEKNOLOGI INDUSTRI PERTANIAN FAKULTAS TEKNOLOGI PERTANIAN INSTITUT PERTANIAN BOGOR

PENGARUH PENAMBAHAN PEMLASTIS DIMETIL FTALAT, DIETIL GLIKOL DAN POLIETILEN GLIKOL DALAM PROSES BIODEGRADASI POLI-β-HIDROKSIALKANOAT (PHA) PADA MEDIA AIR SECARA AEROBIK

Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Memperoleh Gelar SARJANA TEKNOLOGI PERTANIAN Pada Departemen Teknologi Industri Pertanian Fakultas Teknologi Pertanian Institut Pertanian Bogor Oleh SAVITRI DINYATI F34102095 Dilahirkan di Bogor pada tanggal 22 Juni 1984 Tanggal Lulus : Bogor, 5 Februari 2007 Menyetujui,

Prof. Dr. Ir. H. E. Gumbira Sa`id, MA. Dev Dosen Pembimbing I

Dr. Ir. Khaswar Syamsu, MSc Dosen Pembimbing II

i

Savitri Dinyati (F34102095). Pengaruh Penambahan Pemlastis Dimetil Ftalat, Dietil Glikol dan Polietilen Glikol dalam Proses Biodegradasi Poli-βhidroksialkamoat (PHA) pada Media Air Secara Aerobik. Dibawah bimbingan E. Gumbira Sa`id dan Khaswar Syamsu. 2007. RINGKASAN Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) merupakan poliester alami yang disintesa oleh sejumlah bakteri sebagai komponen simpanan energi dan karbon intraseluler dan diakumulasi sebagai granula dalam sitoplasma sel. Polihidroksibutirat (PHB) merupakan salah satu jenis PHA yang banyak diteliti karena karakteristiknya mirip dengan polipropilen (PP). PHB dapat dihasilkan melalui proses kultivasi menggunakan bakteri Ralstonia eutropha dengan glukosa sebagai sumber karbon. Penggunaan PHB sebagai bahan baku pembuatan bioplastik diharapkan dapat mengatasi masalah lingkungan yang timbul akibat penggunaan plastik berbasis minyak bumi. Bioplastik merupakan salah satu bentuk plastik yang berasal dari sumber daya hayati dan bersifat biodegradable. Bioplastik yang dibuat dari PHB mempunyai sifat lebih kaku dan rapuh. Penggunaan bahan tambahan pada proses pembuatan bioplastik dari PHB diharapkan dapat memperbaiki kekurangan tersebut. Penelitian tentang pembuatan lembaran bioplastik dari PHA hasil kultivasi Ralstonia eutropha dengan substrat hitrolisat pati sagu yang ditambahkan pemlastis dietil glikol (DEG), dimetil ftalat (DMF) dan polietilen glikol (PEG) telah dilakukan sebelumnya (Delvia, 2006; Juari, 2006 dan Rais, 2007). Pada penelitian ini dilakukan uji biodegradasi bioplastik yang dihasilkan pada penelitian tersebut. Metode biodegradasi yang digunakan adalah respirometri aerobik. Penelitian ini bertujuan untuk mendapatkan informasi mengenai sifat dan pola degradasi plastik film dari poliester yang dihasilkan oleh Ralstonia eutropha dengan substrat hidrolisat pati sagu pada media air secara aerobik. Parameter yang di analisa meliputi pengukuran laju produksi CO2, jumlah bakteri yang mendegradasi PHA, pH media degradasi, dan persen penurunan bobot bioplastik. Hasil penelitian menunjukkan laju akumulasi produksi karbondioksida (CO2) PHA, PHA + DMF, PHA + DEG, dan PHA + PEG berturut-turut adalah 8,65 mg/hari; 7,36 mg/hari; 6,03 mg/hari dan 4,93 mg/hari. Hasil pengukuran Total Plate Count (TPC) menunjukkan mikroorganisme yang mendegradasi PHA tanpa pemlastis lebih banyak, diikuti dengan PHA dengan penambahan pemlastis PEG, DMF dan DEG. Hasil perubahan pH pada media degradasi membuktikan bahwa selama degradasi bioplastik terjadi perubahan pH mendekati basa kemudian menjadi asam kembali. Nilai pH media degradasi bioplastik antara 3,24-8,40. Berdasarkan perhitungan persen kehilangan bobot bioplastik, PHA tanpa pemlastis memiliki persen bobot bioplastik yang hilang lebih besar diikuti dengan PHA dengan penambahan pemlastis DMF, DEG, dan PEG dengan nilai berturutturut sebesar 88,9%; 70,65%; 67,35% dan 42,1%. Hasil penelitian ini membuktikan bahwa penambahan pemlastis DEG, DMF dan PEG dapat mengurangi daya biodegradasi bioplastik yang direpresentasikan oleh produksi dan laju produksi CO2, kemampuan mikroorganisme mendegradasi bioplastik, perubahan pH, dan bobot bioplastik yang hilang selama biodegradasi.

ii

Savitri Dinyati (F34102095). Effect of plasticizer diethyl glycol, dimethyl Phthalate and polyethylen glycol in Biodegradation Process of Poly-βhydroxyalkanoates (PHA) at water under aerobic conditions. Supervised by E. Gumbira Sa`id and Khaswar Syamsu. 2007. SUMMARY Poly-β-hydroxyalkanoates (PHA) is natural polyester which synthesized by groups of bacteria as a carbon intercellular material and PHA is accumulated as granules in the cell cytoplasm. Polyhydroxybutirate (PHB) is one of PHA that is studied due to its characteristics that is similar with Polypropylene (PP). PHB can be produced by a cultivation process using Ralstonia eutropha (RE) with glucose as carbon source. The usage of PHB as a material of bioplastic production hopefully can overcome environmental problems that are occurring as a result of the usage of petroleum-based plastics. Bioplastic that is made from PHB has a stiff and brittle characteristic. The usage of additives hopefully can reduce the limitations of this kind of bioplastic. Study about bioplastic film made from cultivated Ralstonia eutropha on hydrolyzed sago starch with addition of diethyl glycol (DEG), dimethyl phthalate (DMF) and polyethylene glycol (PEG) plasticizer had been investigated. Biodegradable test of bioplastic has also been done in this study. Biodegradation method which used in this study was aerobic respirometric. The aim of this study was to get the information about degradation characteristics and pattern of plastic film from natural polyester produced by Ralstonia eutropha with hydrolyzed sago starch substrate at water medium under aerobic condition. Biodegradation test of the bioplastic was done on water medium under aerobic condition. The analysis is a measurement of the production of CO2, the amount of bacteria that degrades PHA, pH of degradation medium, and the percentage of bioplastic weight. The result of carbon dioxide (CO2) production of PHA, PHA + DMF, PHA + DEG, and PHA + PEG successively equal to 8,65 mgs/day; 7,36 mgs/day; 6,03 mgs/day and 4,93 mgs/day. The result of Total Plate Count (TPC) measurement showed that PHA without plasticizer additive has more microorganism which degrades it, followed with PHA with the addition of plasticizer PEG, DMF and DEG. Medium of degradation have acidity level (pH) around 3,24-8,38. The differences on the result of pH prove that during bioplastic degradation, pH level changes to base then return to acid. The weight loss calculation showed PHA without plasticizer has a larger weight loss, followed by PHA with the addition of DMF, DEG, and PEG plasticizer with value equal to 88,9%; 70,65%; 67,35% and 42,1%. The result on this study proves that plasticizer addition can influence the characteristic of bioplastic biodegradability which represented by the production and the level production of CO2, microorganism ability to degrades bioplastic, pH changes, and bioplastic weight loss during biodegradation.

iii

LEMBAR PERNYATAAN

Saya menyatakan dengan sebenar-benarnya bahwa skripsi yang berjudul “Pengaruh Penambahan Pemlastis Dimetil Ftalat, Dietil Glikol dan Polietilen Glikol dalam Proses Biodegradasi Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) pada Media Air Secara Aerobik” adalah hasil karya saya sendiri dengan arahan dosen pembimbing, kecuali yang dengan jelas ditunjukkan rujukannya.

Bogor, Februari 2007

Savitri Dinyati NRP : F34102095

iv

RIWAYAT HIDUP

Penulis dilahirkan di Bogor pada tanggal 22 Juni 1984 dari pasangan Bapak Gureys Shatrie dan Ibu Siti Komariah. Penulis adalah anak kedua dari tiga bersaudara. Penulis memulai jenjang pendidikannya di SDN Gunung Batu II Bogor, lalu melanjutkan ke SLTPN 6 Bogor serta SMUN 6 Bogor. Penulis melanjutkan pendidikannya ke Institut Pertanian Bogor melalui jalur USMI pada tahun 2002. Selama pendidikannnya di IPB, penulis pernah terlibat dalam beberapa organisasi diantaranya KOPMA (Koperasi Mahasiswa) dan menjadi staf Departemen Kewirausahaan HIMALOGIN (Himpunan Mahasiswa Teknologi Industri). Selain itu juga penulis pernah mengikuti seminar-seminar yang diadakan di IPB diantaranya Stadium General “ Succes Story Alumni Teknologi Industri Pertanian” (2003), Pemberdayaan Masyarakat I

(2004), Blue Ocean

Strategy (2006) dan lain-lain. Pada tahun 2005, penulis melaksanakan Praktek Lapang di PT. Indofood Sukses Makmur Bogasari dengan judul ‘Proses Produksi dan Pengemasan Pasta di PT. Indofood Sukses Makmur Bogasari Flour Mills Divisi Pasta’.

v

KATA PENGANTAR Puji syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT, karena hanya berkat kuasaNya skripsi ini dapat diselesaikan dengan baik. Skripsi ini disusun berdasarkan penelitian berjudul Pengaruh Penambahan Pemlastis Dimetil Ftalat, Dietil Glikol dan Polietilen Glikol dalam Proses Biodegradasi Poli-βhidroksialkanoat

(PHA)

pada

Media

Air

Secara

Aerobik.

Penulis

mengucapkan terima kasih kepada para personalia dibawah ini: 1. Prof. Dr. Ir. H. E. Gumbira Sa`id, MA. Dev sebagai dosen pembimbing I yang telah mengarahkan penulis selama menyelesaikan kuliah dan skripsi, 2. Dr. Ir. Khaswar Syamsu, MSc sebagai pembimbing II yang telah menyediakan sarana dan prasarana penelitian serta bimbingan, 3. Dr. Ir. Anas Miftah Fauzi, M. Eng yang telah membantu dalam penelitian ini, 4. Dr. Ir. Liesbetini Hartoto, MS sebagai dosen penguji atas evaluasi dan sarannya pada skripsi ini, 5. Ayah dan Ibu tercinta serta kakak dan adikku atas kesabaran, perhatian, dan saran-saran bijaknya, 6. Seluruh staf dan karyawan serta laboran FATETA IPB yang telah banyak membantu penulis dalam melakukan penelitian, 7. Seluruh pihak yang telah membantu dalam penelitian dan penyusunan skripsi ini. Penulis sadar bahwa skripsi ini kemungkinan besar masih belum sempurna. Oleh karena itu, kritik dan saran yang membangun sangat diharapkan demi perbaikan skripsi ini. Semoga skripsi ini bermafaat bagi pembaca.

Februari 2007

Penulis

vi

DAFTAR ISI Halaman KATA PENGANTAR................................................................................

vi

DAFTAR ISI...............................................................................................

vii

DAFTAR TABEL......................................................................................

ix

DAFTAR GAMBAR..................................................................................

x

DAFTAR LAMPIRAN..............................................................................

xi

I. PENDAHULUAN................................................................................

1

A. LATAR BELAKANG....................................................................

1

B. TUJUAN.........................................................................................

3

C. MANFAAT.....................................................................................

3

II. TINJAUAN PUSTAKA.......................................................................

4

A. POLI-β-HIDROKSIALKANOAT (PHA) ......................................

4

B. HIDROLISAT PATI SAGU...........................................................

6

C. BAKTERI Ralstonia eutropha........................................................

7

D. PEMBUATAN BIOPLASTIK DAN JENIS PEMLASTIS............

9

E. BIODEGRADASI............................................................................

11

F. PENGUJIAN BIODEGRADABILITAS........................................

15

III. METODA PENELITIAN....................................................................

17

A. BAHAN DAN ALAT......................................................................

17

B. TATA LAKSANA PENELITIAN...................................................

17

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN............................................................

24

A. PERSIAPAN BAHAN BAKU........................................................

24

1 Produksi PHA secara Fed Bacth................................................

24

2 Proses Hilir PHA........................................................................

24

B. BIODEGRADASI PHA...................................................................

26

1. Pengukuran CO2........................................................................

29

2. Total Plate Count (TPC)...........................................................

37

3. Nilai pH.....................................................................................

40

4. Persen Penurunan Bobot Bioplastik..........................................

43

vii

Halaman V. KESIMPULAN DAN SARAN.............................................................

45

A. KESIAMPULAN.............................................................................

45

B. SARAN............................................................................................

46

DAFTAR PUSTAKA...............................................................................

47

LAMPIRAN..............................................................................................

51

viii

DAFTAR TABEL Halaman Tabel 1.

Perbandingan Karakteristik Fisik antara P(3HB), P(3HB3HV) dan Polipropilen.............................................................

5

Tabel 2.

Aplikasi Praktis Poli-β-hidroksialkanoat (PHA)......................

6

Tabel 3.

Ciri dan Fase Pertumbuhan Mikroorganisme...........................

8

Tabel 4.

Mikroorganisme Pendegradasi Poli-β-hidroksialkanoat (PHA).......................................................................................

Tabel 5.

Faktor-faktor yang Mempengaruhi Kemampuan Plastik Terurai di Lingkungan.............................................................

Tabel 6.

14 15

Komposisi Media Propagasi R. eutropha dan Media Kultivasi Poli-β-hidroksialkanoat (PHA)................................

19

Tabel 7.

Karakteristik Awal Media Degradasi Bioplastik.....................

26

Tabel 8.

Persamaan Kurva dan Nilai Regresi Hasil Pengukuran

Tabel 9.

CO2..........................................................................................

36

Hasil TPC Media Degradasi (koloni/mL)...............................

38

ix

DAFTAR GAMBAR Halaman Gambar 1.

Struktur kimia PHA..............................................................

4

Gambar 2.

Struktur kimia dimetil glikol (a) dan dimetil ftalat (b)..........

10

Gambar 3.

Struktur molekul PEG...........................................................

10

Gambar 4.

Bioreaktor kapasitas 13 liter..................................................

20

Gambar 5.

Desain alat penguji biodegradasi..........................................

21

Gambar 6.

PHA hasil kultivasi..............................................................

25

Gambar 7.

PHA hasil ekstraksi dengan kloroform.................................

26

Gambar 8.

Kurva produksi CO2 selama biodegradasi PHA, PHA + DEG, PHA + DMF dan PHA + PEG...................................

Gambar 9.

Pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dengan PEG 400........................................................................................

Gambar 10.

Kurva

pertumbuhan

mikroorganisme

dalam

Gambar 16.

38

Kurva perubahan pH media degradasi PHA dan PHA dengan pemlastis DEG selama proses biodegradasi............

Gambar 15.

35

media

degradasi.............................................................................. Gambar 14.

33

Kurva pola regresi produksi CO2 PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG.......................................................

Gambar 13.

32

Proses pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dan dimetil ftalat (DMF).............................................................

Gambar 12.

32

Pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dan dietil glikol (DEG)...................................................................................

Gambar 11.

30

41

Kurva perubahan pH media degradasi PHA dengan pemlastis DMF dan PEG selama proses biodegradasi.........

41

Grafik penurunan bobot bioplastik......................................

43

x

DAFTAR LAMPIRAN Halaman Lampiran 1.

Diagram Alir Kultivasi PHA.............................................

51

Lampiran 2.

Diagram Alir Proses Hilir.................................................

52

Lampiran 3.

Bagan Klasifikasi Plastik Degradabel..............................

54

Lampiran 4.

Diagram Alir Pengujian Biodegradasi Bioplastik............

55

Lampiran 5.

Diagram Alir Pengukuran Kadar CO2..............................

56

Lampiran 6.

Contoh Penghitungan Selama Proses Penelitian..............

57

Lampiran 7.

Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG................................

Lampiran 8.

58

Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Piodegradasi Blanko Tanpa Polimer....................................................................

59

Lampiran 9.

Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA....

60

Lampiran 10.

Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG....................................................................................

Lampiran 11.

Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF..................................................................................

Lampiran 12.

63

Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA....................................................................................

Lampiran 14.

62

Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG....................................................................................

Lampiran 13.

61

64

Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG........................................................................ 65

Lampiran 15.

Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF.......................................................................

Lampiran 16.

66

Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG........................................................................

67

Lampiran 17.

Hasil Pengukuran pH Media Degradasi.............................

68

Lampiran 18.

Hasil Pengukuran Persen Penurunan Bobot Bioplastik.....

69

Lampiran 19.

Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA, Hasil Metode curve fitting.................

xi

70

Halaman Lampiran 20

Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting.....

Lampiran 21.

Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting.....

Lampiran 22.

Persamaan

Regresi

Kurva

Perubahan

pH

Persamaan

Regresi

Kurva

Perubahan

pH

Persamaan

Regresi

Kurva

Perubahan

pH

Persamaan

Regresi

Kurva

Perubahan

pH

82

Media

Degradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting...........

xii

80

Media

Degradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting.......... Lampiran 26.

78

Media

Degradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting.......... Lampiran 25.

76

Media

Degradasi PHA, Hasil Metode curve fitting....................... Lampiran 24.

74

Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting......

Lampiran 23.

72

84

I. PENDAHULUAN

A. LATAR BELAKANG Plastik merupakan material yang dikenal luas. Penggunaannya sangat beragam mencakup berbagai bidang kegiatan mulai dari kebutuhan manusia yang sederhana, hingga peralatan pesawat ruang angkasa yang serba rumit dan canggih. Penggunaan plastik terus meningkat sesuai kebutuhan, terlebih setelah fungsinya bertambah antara lain sebagai pengganti material gelas dan logam. Produksi bahan plastik mentah dan mengubahnya menjadi barang jadi merupakan bagian dari kegiatan industri polimer. Di Indonesia, terdapat sekitar 5.000 industri plastik, 80% diantaranya berada di Pulau Jawa. Pada tahun 2002, konsumsi plastik sudah mencapai angka 1,75 juta ton dengan laju pertumbuhan 10% per tahun (INAplas seperti dikutip Handayani, 2003). Peningkatan penggunaan plastik diiringi oleh timbulnya masalah lingkungan dikarenakan 50% dari produk plastik adalah kemasan sekali pakai dan 80% dari konsumsinya berpeluang sebagai limbah. Limbah plastik merupakan komponen ketiga terbanyak yang dibuang setelah limbah organik

dan

kertas.

Sifat

plastik

sukar

terdegradasi

baik

oleh

mikroorganisme dalam tanah maupun oleh cahaya matahari. Oleh karena itu, keberadaannya dapat berlangsung hingga ratusan tahun (Handayani, 2003). Untuk mengatasi hal tersebut, berbagai usaha penanganan limbah plastik sudah dilakukan, diantaranya dengan mendaur ulang plastik dan membakar

plastik.

Pembakaran

dan

daur

ulang

seringkali

tidak

menguntungkan. Proses pembakaran tidak membuat plastik menjadi terurai sempurna dalam tanah, melainkan menimbulkan masalah baru bagi lingkungan (polusi udara) dan kesehatan manusia, sedangkan upaya untuk

1

mendaur ulang plastik menghasilkan produk yang berkualitas rendah. Hingga saat ini limbah plastik belum dapat ditanggulangi dengan baik. Oleh karena itu, beberapa negara di dunia telah mengembangkan produk plastik yang ramah lingkungan yang disebut sebagai biodegradable plastic, atau yang dikenal dengan istilah biopol (Brandl,1995). Pembuatan plastik biodegradabel bertujuan untuk menghasilkan plastik yang ramah lingkungan. Hal ini dikarenakan plastik ini mampu terbiodegradasi secara alami sehingga tidak lagi menjadi limbah plastik yang merugikan. Pembuatan plastik biodegradabel pada dasarnya dapat ditempuh dengan cara mencampurkan polimer sintetik dengan polimer alam melalui teknik pencampuran fisik. Di Indonesia, penelitian tentang pencampuran polimer-polimer sintetik seperti polistirena, polietena, dan polipropilena dengan polimer alam seperti kanji, tepung tapioka, dan lainnya telah banyak dilakukan (Damayanthy, 2003 dan Handayani, 2003). Produk plastik yang dihasilkan ternyata masih memiliki kelemahan seperti mudah rapuh dan hanya terdegradasi secara parsial. Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) merupakan salah satu bioplastik yang masih terus diteliti dan dikembangkan sampai saat ini. Penelitian tentang pembuatan lembaran bioplastik dari PHA hasil kultivasi Ralstonia eutropha dengan substrat hitrolisat pati sagu yang ditambahkan pemlastis dietil glikol (DEG), dimetil ftalat (DMF) dan polietilen glikol (PEG) telah dilakukan oleh Delvia (2006), Juari (2006) dan Rais (2007). Pada penelitian ini dilakukan uji biodegradasi bioplastik yang dihasilkan pada penelitian tersebut. Anggraeni (2003) telah melakukan penelitian mengenai biodegradasi bioplastik Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) dengan penambahan pemlastis dietil glikol (DEG) dan dimetil ftalat (DMF) pada media cair buatan. Metode biodegradasi yang digunakan adalah respirometri anaerobik sehingga persediaan oksigen untuk pertumbuhan mikroorganisme terbatas. Pada penelitian Anggraeni (2003) hanya dilakukan pengukuran jumlah CO2 yang merupakan hasil akhir proses mineralisasi selama 60 hari. Laju produksi CO2 pada biodegradasi PHA, PHA + DEG dan PHA + DMF

2

berturut-turut adalah 0,6380 mg/hari, 0,6365 mg/hari dan 0,5185 mg/hari. Penelitian Anggraeni (2003) menunjukkan bahwa penambahan pemlastis menurunkan daya degradasi bioplastik yang ditunjukkan dengan jumlah karbon dioksida yang sedikit. Oleh karena itu, pada penelitian ini digunakan aerator yang bertujuan untuk menciptakan kondisi degradasi bioplastik yang sebenarnya pada saat dibuang ke lingkungan. Selain itu, pada penelitian ini juga dilakukan

penghitungan jumlah

mikroorganisme

pendegradasi

bioplastik, persen pengurangan bobot bioplastik dan pengukuran perubahan pH selama proses biodegradasi berlangsung.

B. TUJUAN PENELITIAN Tujuan penelitian ini adalah mendapatkan informasi mengenai sifat dan pola degradasi plastik film dari poliester yang dihasilkan oleh Ralstonia eutropha menggunakan substrat hidrolisat pati sagu pada media air secara aerobik. Selain itu penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh degradasi bioplastik terhadap perubahan pH media degradasi, penambahan pemlastis dalam degradasi bioplastik, total mikroorganisme pendegradasi bioplastik dan bobot bioplastik yang terdegradasi.

C. MANFAAT Hasil penelitian ini diharapkan dapat menambah informasi IPTEK mengenai proses degradasi PHA pada media cair secara aerobik.

3

II. TINJAUAN PUSTAKA

A. POLI-β-HIDROKSIALKANOAT (PHA) Poly-β-Hydroxyalkanoates (PHA) merupakan salah satu biodegradable plastic

yang sudah banyak dikembangkan di berbagai negara. PHA adalah

poliester linier yang diproduksi di alam oleh bakteri dengan menggunakan substrat gula atau lipid. Lebih dari 100 monomer yang berbeda dapat dikombinasikan kedalam famili ini untuk memberikan material dengan sifat yang berbeda secara ekstrim. PHB (Poly-β-Hydroxybutyrate) dan kopolimer Poly-βHydroxybutyrate dengan Poly-β-Hydroxyvalerate (PHB-co-PHV) merupakan dua tipe yang paling banyak diteliti secara intensif dan telah banyak dijumpai di pasaran. Struktur PHA dapat dilihat pada Gambar 1. Jenis mikroorganisme yang telah memproduksi PHA dengan konsentrasi atau modifikasi dari asetil-CoA yang dihasilkan dari gula meliputi Ralstonia eutropha, Alcaligenes, dan Pseudomonas sp (www.mbel.kaist.ac.kr/research/phas.htm).

Gambar 1. Struktur kimia PHA (Laferty et al., 1988) PHA dibentuk pada sitoplasma sel dalam bentuk granula yang sebagian dapat menjadi kristal dan sebagian lagi tidak. Granula tersebut mengandung PHA depolimerase yang terdapat dalam membran protein atau pada sitoplasma yang menyebabkan terjadinya degradasi polimer. PHA memiliki karakteristik kimia dan fisik yang dibutuhkan bagi penggunaannya sebagai termoplastik komersial. Polimer ini dapat digunakan lebih lanjut melalui pencetakan larutan maupun pelelehan untuk membentuk serat, film, plastik fleksibel, dan plastik kaku (Ojumu, 2003).

4

PHA dapat termasuk termoplastik atau material elastomerik dengan kisaran titik didih dari 40-180oC. Tipe yang paling umum dari PHA adalah PHB (poli-β-hidroksibutirat). PHB memiliki sifat yang sama dengan polipropilen, akan tetapi lebih rapuh dan lebih kaku. Suatu kopolimer PHB yang disebut PHBV (polihidroksibutirat-valerat) yang lebih kaku dan keras digunakan sebagai bahan pengemas (www.mbel.kaist.ac.kr/ research/phas.htm). Menurut Lafferty et al., (1988), PHA memiliki densitas yang berkisar antara 1.171 dan 1.260 g.cm-3. Nilai densitas yang lebih rendah berhubungan dengan densitas amorf sedangkan nilai densitas yang lebih tinggi berkenaan dengan densitas kristalin. Titik leleh PHA bervariasi dan biasanya berada diantara 157 oC dan 188 oC. Perbandingan karakteristik fisik antara P(3HB), P(3HB-3HV) dan polipropilen dapat dilihat pada Tabel 1. Tabel 1. Perbandingan Karakteristik Fisik antara P(3HB), P(3HB-3HV) dan Polipropilen Karakteristik P(3HB) P(3HB-3HV) Polipropilen Melting point, Tm (oC) Glass-transition temp, Tg (oC) Kristalinitas (%) Perpanjangan putus (%)

177

145

176

2

-1

-10

70

56

60

5

50

400

Sumber : Madison dan Huisman, (1999)

Secara umum aplikasi PHA terbagi menjadi tiga lingkup area, yaitu bidang medis dan farmasi, pertanian, dan kemasan (Lafferty et al., 1988; Lee, 1996). Beberapa contoh aplikasi praktis PHA yang telah dikembangkan saat ini tetapi belum masuk ke Indonesia dapat dilihat pada Tabel 2. Kemampuan PHA untuk diaplikasikan menjadi suatu produk dikarenakan sifat PHA itu sendiri. Sifat tersebut meliputi kemampuan didegradasi secara biologis, karakter termoplastik, sifat piezoelektrik, dan kemampuan depolimerisasi PHB menjadi monomer asam D(-)-3-hidroksibutirat (Lafferty et al., 1988).

5

Tabel 2. Aplikasi Praktis Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) Medis dan farmasi - Keperluan operasi bedah: benang jahit, pin, penyeka - Pembalut luka - Pemasangan pembuluh darah dan jaringan tubuh (karena kemampuan depolimerisasi PHB menjadi monomer asam D(-)-3-hidroksibutirat - Pemasangan tulang dan lempeng tulang - Stimulasi pertumbuhan tulang (karena PHA mempunyai sifat piezoelektrik) - Pembawa (biodegradable carrier) bahan aktif pada obat-obatan Pertanian - Pembawa (biodegradable carrier) bahan aktif pada herbisida, - fungisida, insektisida atau pupuk (karena kemampuan degradasi di - dalam tanah) - Kontainer semaian bibit - Matrik (biodegradable matrix) untuk obat pada bidang veteriner Kemasan dan komoditas lain - Kemasan kontainer, botol, pembungkus, kantong, dan film - Bahan-bahan sekali pakai seperti popok bayi dan pembalut wanita Sumber : Punrattanasin, (2001)

B. HIDROLISAT PATI SAGU Sagu merupakan tumbuhan monokotil dari keluarga Palmae, genus Metroxylon dari ordo Spadiciflorae. Di Indonesia tanaman utama penghasil pati sagu adalah Metroxylon yang tumbuh di lahan basah dan Arenga microcarpha (sagu baruk) yang tumbuh di lahan kering (Abner dan Miftahorrahman, 2002). Pati merupakan homopolimer glukosa dengan ikatan α-glikosidik yang terdiri dari dua fraksi yaitu amilosa dan amilopektin. Amilosa mempunyai struktur rantai lurus dengan ikatan α-(1,4)-D-glukosa sedangkan amilopektin selain mempunyai rantai lurus juga mempunyai cabang dengan ikatan α-(1,6)-D-glukosa sebanyak 4-5% dari bobot total (Winarno, 1997). Pati sagu merupakan hasil ekstraksi pati dari batang empulur tanaman sagu dan juga sumber daya alam yang dapat diperbaharui, murah dan mempunyai sifat yang mudah diuraikan (biodegradable). Penambahkan sifat plastik pada pati sagu dengan teknik esterifikasi, dapat dimanfaatkan untuk pembuatan biodegradable plastic. Pati sagu sebagai komponen merupakan bahan reaktif yang disalurkan ke dalam struktur polimer sintetik selama produksi, misalnya menjadi poliester,

6

fenolik resin, dan polimer cangkokan. Pati sagu juga dapat menjadi bahan pengisi, misalnya polietilen, polipropilen, poliester dan PVC. Biodegradable plastic yang sebagian merupakan campuran pati sagu ternyata dapat diuraikan oleh fungi Trichoderma sp, Mucor sp, dan streptomyces sp serta oleh beberapa bakteri (Hasjim, 1999). Hidrolisat pati merupakan cairan hasil proses hidrolisis pati yang sebagian besar terdiri dari glukosa. Proses hidrolisis dapat dilakukan baik dengan cara kimia dan enzimatik. Konversi pati secara enzimatis terdiri dari dua tahap, yaitu likuifikasi dan sakarifikasi. Likuifikasi terjadi setelah gelatinisasi dengan adanya aktivitas enzim α-amilase yang memecah ikatan α-1,4 di bagian dalam dari rantai polisakarida secara acak menghasilkan glukosa, maltosa, maltodekstrin, dan αlimit dekstrin. Sakarifikasi dengan enzim amiloglukosidase (AMG) selanjutnya mengubah maltodekstrin menjadi glukosa (Akyuni, 2003).

C. BAKTERI Ralstonia eutropha Menurut

York

(2003),

Ralstonia

eutropha

merupakan

bakteri

kemoautotrof fakultatif yang dapat mengakumulasi poli-β-hidroksialkanoat (PHA) sebagai cadangan energi dalam kondisi kultur yang mengandung sedikit mineral atau oksigen. Genus Ralstonia eutropha berbentuk batang, batang bulat atau bulat dengan diameter 0,5-1,0 mikrometer dan panjang 0,5-2,6 mikrometer. Ralstonia eutropha memiliki flagel berbentuk peritrichous dan bersifat aerob fakultatif. Ralstonia eutropha termasuk dalam bakteri gram negatif yang mampu mengakumulasi PHA (Poly-β-Hydroxyalkonoates) sebagai cadangan energi dibawah kondisi kultur yang mengandung sedikit mineral atau oksigen. Akumulasi PHA terjadi setelah kondisi

keterbatasan oksigen terjadi. Bobot

kering sel dan perolehan PHA lebih tinggi pada kondisi keterbatasan oksigen dibandingkan kondisi keterbatasan amonium. Ralstonia eutropha mampu mengakumulasi hingga 80 % polimer dalam bobot kering sel (Chakraborty, 2004). Pada awal pertumbuhannya, bakteri Ralstonia eutropha berada pada kondisi yang kaya glukosa. Glukosa yang merupakan sumber karbon disimpan di dalam sitoplasma sebagai cadangan makanan. R. eutropha tumbuh menggunakan nitrogen sebagai sumber nutrisi yang penting. Sebagian besar nitrogen digunakan

7

R. eutropha untuk memproduksi PHA. R. eutropha mampu mengakumulasi PHA selama fase stationer (Fiechter, 1990). Ciri dan fase pertumbuhan mikroorganisme secara umum dapat dilihat pada Tabel 3. Tabel 3. Ciri dan Fase Pertumbuhan Mikroorganisme Fase Pertumbuhan Ciri Lag (lambat) Tidak ada pertumbuhan populasi karena sel mengalami perubahan komposisi kimiawi dan ukuran serta bertambahnya substansi intraseluler sehingga siap untuk membelah diri. Logaritma atau eksponensial Sel membela diri dengan laju yang konstan, massa menjadi dua kali lipat, keadaan pertumbuhan seimbang. Stationary (stasioner/tetap) Terjadinya penumpukan racun akibat metabolisme sel dan kandungan nutrien mulai habis, akibatnya terjadi kompetisi nutrisi sehingga beberapa sel mati dan lainnya tetap tumbuh. Jumlah biomassa sel menjadi konstan. Death (kematian) Sel menjadi mati akibat penumpukan racun dan habisnya nutrisi, menyebabkan jumlah sel yang mati lebih banyak sehingga mengalami penurunan jumlah sel secara eksponensial. Sumber : Pleczar dan Chan, (1986)

Chakraborty

(2004)

menyatakan

bahwa

Alcaligenes

eutrophus

dikelompokkan ke dalam genus Ralstonia dengan nama baru Ralstonia eutropha. R. eutropha memiliki operon tunggal yang mengandung tiga jenis gen yang diperlukan untuk sintesa PHB, yaitu phaA, phbB dan phbC. Senyawa phbA (yaitu ketothiolase) bergabung dengan dua molekul asetil-KoA untuk menghasilkan asetoasetil-KoA yang kemudian direduksi menjadi R-β-hidroksibutiril-KoA oleh phbB (yaitu suatu reduktase asetosetil-CoA yang membutuhkan NADPH). Molekul R-β-hidroksibutiril-KoA membentuk unit monomer PHB, kemudian dipolimerisasi melalui ikatan ester oleh phbC (yaitu suatu PHB sintetase). Pada lingkungan yang kaya, PHB secara enzimatis didegradasi menjadi asetil-KoA yang masuk ke jalur primer metabolisme dan demineralisasi menjadi karbon dioksida. Degradasi dimulai oleh depolimerase yang diberi kode sebagai gen phbZ (Lafferty et al., 1988).

8

D. PEMBUATAN BIOPLASTIK DAN JENIS PEMLASTIS Menurut Cowd (1991) proses terbentuknya suatu polimer dikenal dengan istilah polimerisasi. Polimerisasi merupakan pembentukan molekul raksasa (polimer) melalui penggabungan molekul-molekul kecil dan sederhana yang disebut monomer. Pembentukan ikatan polimer menghasilkan ikatan kunci antar monomer yang disebut sebagai ikatan tulang punggung (backbone). Menurut Allcock dan Lampe (1981), film plastik dapat dibuat melalui dua teknik dasar yang berbeda, yaitu solution casting atau molten polymer. Teknik solution casting menjadi pilihan yang cepat dan mudah untuk dilakukan pada skala laboratorium. Pelarut yang digunakan pada proses pembuatan film plastik adalah kloroform. Lafferty (1988) menyatakan bahwa dengan metode pelarutan PHA seperti ekstraksi menggunakan kloroform dapat diperoleh kemurnian yang tinggi. Walaupun demikian, metode tersebut memerlukan sejumlah besar pelarut yang mudah menguap, bersifat toksik terhadap lingkungan dan meningkatkan total biaya produksi. Kloroform (CHCl3) memiliki sifat tidak mudah terbakar, sangat mudah menguap, memiliki rasa yang manis dan bau yang khas. Kloroform dapat digunakan sebagai pelarut untuk lemak, minyak, karet, alkaloid, lilin, resin dan sebagai cleansing agent. Kloroform berbahaya bila dihirup pada dosis tinggi karena dapat menyebabkan hipotensi, gangguan pernafasan dan miokardial dan bahkan kematian (www.encyclopedia.com). Polihiroksialkanoat (PHA) memiliki derajat kristalinitas yang tinggi sehingga mengakibatkan

PHA menjadi material yang kaku tetapi rapuh.

Penurunan derajat kristalinitas PHA dapat dilakukan dengan penambahan pemlastis. Cuq et al., (1997) mendefinisikan penambahan pemlastis pada bahan polimer mengakibatkan terjadinya modifikasi pada susunan tiga dimensi molekul, menurunkan gaya tarik intramolekul, meningkatkan mobilitas rantai dan menurunkan Tg (glass transition temperature) bahan amorf. Ditambahkan oleh Cowd (1991), bahwa penurunan Tg tersebut dikarenakan pengurangan gaya antarrantai sehingga gerakan bagian rantai lebih mudah. Dietil glokol (DEG) merupakan pemlastis dengan senyawa yang tidak berwarna, hampir tidak berbau, higroskopik, dan memiliki rasa manis yang tajam

9

dengan titik didih 244-245oC. Dietil glikol dapat bercampur dengan air, alkohol, eter, aseton, etilen glikol, dan tidak dapat bercampur dengan karbon tetraklorida, benzena, dan toluen (Merck, 1999). Menurut Allcock dan Lampe (1981), dimetil ftalat dapat larut dalam alkohol, eter, dan kloroform serta memiliki titik didih 134138oC. Selain itu dimetil ftalat tidak berwarna dan tidak berbau. Struktur kimia dietil glikol dan dimetil ftalat dapat dilihat pada Gambar 2.

(a)

(b)

Gambar 2. Struktur kimia dimetil glikol (a) dan dimetil ftalat (b) PEG atau polietilen glikol merupakan golongan senyawa polieter dari etilen oksida. Struktur molekul dari PEG dapat dilihat pada Gambar 3. Menurut Parra (2006) PEG larut dalam air dan pelarut organik, memiliki tingkat toksik rendah, hidrofilik dan tidak biodegradabel. Struktur kimia polietilen glikol dapat dilihat pada Gambar 3.

Gambar 3. Struktur molekul PEG

10

E. BIODEGRADASI Waktu yang dibutuhkan untuk polimer terdegradasi pada lingkungan pembuangan perlu diketahui untuk mendapatkan kesimpulan tentang potensi, akibat dan keuntungan pada lingkungan. Poliester terdegradasi dalam keadaan aerobik selama dua minggu sampai 1,5 bulan (Excelplas Australia, 2003). Sifat biodegradasi polimer tergantung dari karakter fisik dan kimianya. Plastik terdegradasi dapat dibagi menjadi dua kelompok berikut. 1. Berdasarkan cara mereka terdegradasi, misalnya dalam pendegradasiannya membutuhkan bantuan mikroorganisme (biodegradable), panas, sinar UV, gaya mekanik, atau air untuk memecah polimernya (Lampiran 3). 2. Berdasarkan material yang menyusunnya, misalnya terbuat dari polimer pati alami, polimer buatan, atau campuran dari polimer konvensional dengan zat aditif untuk memfasilitasi pendegradasian (Excelplas Australia, 2003). Plastik yang terbiodegradasi oleh alam berarti bahwa plastik tersebut mengalami fragmentasi, yakni kehilangan kandungan kimianya akibat aktivitas mikroorganisme. Tokiwa dan Calabia (2004) menjelaskan bahwa biodegradasi didefinisikan

sebagai

penurunan

sifat-sifat

oleh

aksi

mikroorganisme.

Mikroorganisme yang banyak berperan pada plastik adalah bakteri, jamur dan aktinomicetes. Ada tiga tipe penurunan sifat akibat biodegradasi oleh mikroorganisme, meliputi efek biofisik, efek biokimia, dan aksi enzimatik langsung. Proses biodegradasi yang menyebabkan efek biofisik terjadi apabila ada kerusakan mekanik akibat aktivitas mikroorganisme. Efek biokimia terjadi apabila terjadi reaksi kimia oleh substansi mikroorganisme di dalam polimer. Biodegradasi oleh pengaruh enzim terjadi apabila enzim yang dikeluarkan oleh mikroorganisme menyerang komponen plastik sehingga menyebabkan pemutusan rantai polimer (Jendrossek dan Rene, 2002). Jenis mikroorganisme pendegradasi PHA dapat dilihat pada Tabel 4.

11

Tabel 4. Mikroorganisme Pendegradasi Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) EKOSISTEM Tanah

ORGANISME Acidovorax delafieldii; Acremonium sp.; Acidovorax facilis; Arthrobacter

voscosus;

Aspergilus

fumigatus;

Bacillus

polymyxa; Cephalosporium sp.; Cladosporium sp.; Cytophaga johnsonae;

Eupenicillium

sp.;

Mucor

sp.;

Pacilomyces

marquqndii; Peniciliumadametzii; Penicilium chermisinun; Penecillium daleae; Penicillium funiculosum; Penicillium ochlochloron;

Penicillium

resrictum;

Poly

circinatus;

Pseudomonas lemoignet; Pseudomonas syringae; Xanthomonas manophilia; dan Zooglea ramigera. Tanah, Kompos

Acidovorax facillis; Aspergilus sp.; Aspergilus penecilloides; Bacillus

magaterium;

Penicillium

simplicissimum;

Pseudomonas sp.; Streptomyces sp.; dan Variovorax paradoxus. Lumpur Buangan

Alcaligenes faecalis

Sedimen Estuaria

Ilyobacter delafieldii

Air Danau

Comamonas acidovorans; Pseudomonas cepacia; Pseudomonas stutzeri dan Pseudomonas vesicularis

Air Laut

Comamonas testosteroni

Laboratorium

Pseudomonas pickettii

Kompos

Verticillium leptobactrum

Sumber: Brandl et al., (1995)

Mikroorganisme pendegradasi PHA menghasilkan enzim depolimerase ekstraseluler PHA yang dapat mendegradasi PHA. Depolimerase ekstraseluler dapat

bekerja

optimal

pada

pH

7,5-9,8

sehingga

pada

pertumbuhan

mikroorganisme terjadi peningkatan pH (Jendrossek dan Rene, 2002). Polimer dapat terdegradasi dalam beberapa cara, misalnya biodegradable, oxobiodegradable, photodegradable, atau larut-air. Menurut Excelplas Australia (2003), gambaran dari masing-masing tipe degradasi adalah sebagai berikut: 1. Biodegradable polymer adalah polimer yang mampu terdekomposisi menjadi karbondioksida, metan, air, komponen inorganik atau biomassa dimana

mekanisme

dominannya

melibatkan

aksi

enzimatis

dari

12

mikroorganisme, yang bisa terukur melalui tes standar, pada waktu tertentu, dan kondisi yang menyerupai lingkungan aslinya. 2. Compostable polymers adalah polimer yang terdekomposisi dalam kondisi pembuatan kompos. Pada dekomposisi ini, polimer terdegradasi oleh mikroorganisme (bakteri, fungi, alga), mencapai mineralisasi total (konversi menjadi CO2, metan, air, komponen inorganik atau biomass dalam kondisi aerobik) dan tingkat mineralisasi harus tinggi dan memenuhi proses pembuatan kompos. 3. Oxo-Biodegradable polymers adalah polimer yang mengalami degradasi terkontrol melalui bantuan dari aditif prodegradant (aditif yang memacu dan mempercepat proses degradasi). Polimer ini mengalami oksidatif yang dipercepat, yaitu degradasi langsung dengan sinar matahari, panas dan/atau gaya mekanik, dan menjadi rapuh pada ligkungan dan terkikis karena pengaruh cuaca. 4. Photodegradable Polymers adalah polimer yang terdegradasi karena pengaruh sinar UV, yang mendegradasi ikatan kimia pada polimer atau struktur kimia pada plastik. Proses ini bisa dibantu oleh keberadaan zat aditif yang sensitif terhadap UV pada polimer. 5. Water-Soluble Polymers adalah polimer yang larut dalam air tanpa ditandai oleh range suhu dan kemudian terbiodegradasi karena kontak dengan mikroorganisme. Mekanisme degradasi menurut Jendrossek dan Rene (2002) adalah melalui fragmentasi dan penambahan gugus khusus. Cara fragmentasi dimaksudkan sebagai usaha menurunkan bobot molekul polimer melalui pemutusan ikatan, sehingga memudahkan proses degradasi selanjutnya. Penambahan gugus khusus pada polimer dilakukan dengan cara kopolimerisasi sehingga gugus yang diinginkan akan masuk ke dalam matriks polimer. Excelplas Australia (2003) menyatakan bahwa terdapat empat mekanisme yang terlibat pada degradasi lingkungan dari polimer terdegradasi sebagai berikut: • Oksidasi dari polyolefin atau polimer lain • Pencernaan bahan alami seperti pati atau selulosa oleh mikroorganisme

13

• Pencernaan polimer terbiodegradasi seperti aliphtic polyesters oleh mikroorganisme • Pencernaan fragmen polimer oleh mikroorganisme. Pemecahan pada proses degradasi polimer dikategorikan menjadi dua bagian yang penting, dibawah ini: 1. Disintegrasi, dimana material plastik terdisintegrasi dan tidak lagi terlihat, namun rantai polimer tidak sepenuhnya hilang 2. Mineralisasi, dimana rantai polimer termetabolisme (biasanya setelah proses oksidasi awal) menjadi karbon dioksida, air, dan biomassa. Pemutusan rantai pada polimer selain mampu memperlemah material polimer juga dapat memperpendek rantai polimer. Hal tersebut menyebabkan berat

molekul

menurun sehingga polimer

mampu

dimetabolisme oleh

mikroorganisme. Mekanisme pemutusan rantai tersebut tergantung pada beberapa faktor, yakni kelembaban, mikroorganisme, temperatur, pH, keberadaan garam metal, jenis polimer, luas permukaan, dan ketebalan polimer. Kondisi biodegradasi yang meliputi pH, suhu, nutrien, mineral, oksigen, dan kelembaban disesuaikan dengan mikroorganisme yang digunakan (Excelplas Australia, 2003) Handayani

(2003)

menjelaskan

bahwa

struktur

rantai

polimer

mempengaruhi proses biodegradasi polimer. Polimer dengan struktur rantai lurus lebih mudah terdegradasi dibandingkan struktur bercabang. Dalam proses biodegradasi, mikroorganisme menyerang polimer untuk mengambil sumber karbon yang dibutuhkannya. Proses biodegradasi kemudian berlangsung dengan jalan memperluas permukaan melalui pengikisan dan perlubangan material polimer. Dengan adanya pengikisan dan pelubangan ini, kecepatan degradasi akan meningkat karena lubang yang terbentuk mempercepat difusi oksigen dan enzim ke dalam matriks polimer. Biodegradasi dalam lingkungan aerobik diperlihatkan oleh reaksi berikut. Polimer + O2

CO2 + H2O + Biomassa + Residu

Menurut Suriawiria (2003), penguraian secara biologis suatu senyawa ditentukan oleh sifat dan susunan bahan, dimana pada umumnya senyawa organik mempunyai sifat cepat terurai sedangkan senyawa anorganik mempunyai sifat yang sulit terurai, namun faktanya khusus dilingkungan alami, penguraian secara

14

biologi ditentukan oleh banyak faktor, baik yang bersifat biotik (bentuk dan sifat jasad) dan abiotik (bentuk, sifat, kadar air, susunan media, dan sebagainya) dari bahan. Faktor-faktor yang mempengaruhi kemampuan plastik terurai di lingkungan dapat dilihat pada Tabel 5. Tabel 5. Faktor-faktor yang Mempengaruhi Kemampuan Plastik Terurai di Lingkungan Parameter Faktor Sifat fisikokimia dari ekosistem

Suhu, pH, oksigen, air, sumber makanan, reaksi enzimatis, kehadiran penghambat, reaksi redoks.

Mikroorganisme yang ada di Jumlah ekosistem

mikroorganisme,

mikroorganisme,

aktivitas kemampuan

mikroorganisme

beradaptasi,

penyebaran

mikroorganisme Sifat

bahan

yang

didegradasi

akan Komposisi polimer, berat molekul, distribusi berat molekul, kristalinitas, hidrofobik, glass transition temperature (Tg), porositas

Proses pembuatan bahan

Tipe

proses,

karakteristik

ketebalan bahan,

permukaan,

zat tambahan, bahan

pengisi, bahan pelapis Sumber : Brandl et al., (1995)

F. PENGUJIAN BIODEGRADIBILITAS Pada tahap inisiasi biodegradasi polimer menghasilkan senyawa organik yang sederhana sedangkan biodegradasi sempurna melibatkan proses biooksidasi lanjut menjadi karbon dioksida dan air. Pengujian bioplastik pada media air secara aerobik dilakukan melalui pengukuran CO2 yang dihasilkan selama degradasi plastik oleh mikroorganisme. Pengujian dilakukan dengan menggunakan medium air dalam labu biometer yang dibuat dari erlenmeyer yang dimodifikasi (Andrary, 2000). Anas (1989) menjelaskan bahwa karbon dioksida (CO2) hasil metabolisme mikroorganisme akan terperangkap dalam larutan NaOH 0.1 N kemudian dititrasi

15

dengan HCl. Banyaknya HCl yang digunakan untuk mentitrasi NaOH berhubungan langsung dengan jumlah CO2 yang dihasilkan oleh mikroorganisme sebagai hasil proses mineralisasi. Reaksi yang terjadi pada proses titrasi adalah sebagai berikut. ™ Perubahan warna dari ungu

menjadi tidak berwarna (indikator

phenolphtalein) Na2CO3 + HCl

NaCl + NaHCO3

™ Perubahan warna dari kuning menjadi merah muda (indikator merah jingga) NaHCO3 + HCl

NaCl + H2O + CO2

Setelah itu dilakukan konversi ml HCl yang digunakan sebagai titran pada titrasi kedua menjadi mg CO2 dengan menggunakan mol ekivalen HCl = mol ekivalen CO2 menjadi 1 ml 0,1 N HCl = 4,4 mg CO2.

16

III. METODA PENELITIAN

A. BAHAN DAN ALAT Bahan-bahan untuk kultivasi bakteri dan isolasi PHA adalah nutrient broth,

(NH4)2HPO4,

K2HPO4,

KH2PO4,

MgSO4

0,1

M,

FeSO4.7H2O,

MnCl2.4H2O, CoSO4.7H20, CaCl2.7H2O, CuCl2.2H2O, ZnSO4.7H2O, buffer trishidroklorida, NaOH, NaOCl, NH4OH dan hidrolisat pati sagu. Proses kultivasi tersebut menggunakan strain Ralstonia eutropha IAM 12368 yang diperoleh dari IAM Culture Collection, Institute of Molecular and Cellular Bioscience, The University of Tokyo. Pengujian biodegradasi dilakukan terhadap polihidroksialkanoat (PHA) dengan penambahan pemlastis dietil glikol, dimetil ftalat dan polietilen glikol. Sebagai pembanding digunakan PHA murni. Media pendegradasi terdiri dari air Danau LSI IPB (150 mL), lumpur aktif dari limbah cair nata de coco (10 mL), urea (0,10% dari bobot bioplastik) dan K2HPO4 (0,05% dari bobot bioplastik) yang diberi perlakuan aerobik. Perbandingan antara bahan aktif berupa limbah nata de coco dengan air danau adalah 1:15. Untuk bahan analisis digunakan NaOH 0,1 N, HCl 0,1 N, nutrient agar (NA) dan akuades. Alat-alat utama yang digunakan untuk kultivasi PHA dan biodegradasi PHA adalah bioreaktor skala 13 liter dengan volume kerja 10 liter, erlenmeyer, penyaring vakum, oven, shaking waterbath, termometer, neraca analitik, rotary shaking inkubator, autoklaf, pH meter, sentrifuse kecepatan tinggi, homogenizer, refrigator, freezer, desikator, clean bench, aerator dan pipet mikro. Plat kaca untuk casting bioplastik dan penguapan pelarut dilakukan di dalam lemari asap.

B. TATA LAKSANA PENELITIAN Penelitian ini terdiri dari dua tahap, yaitu tahap persiapan bahan baku pembuatan bioplastik dan penelitian utama degradasi bioplastik.

17

1. Persiapan Bahan Baku Bioplastik Persiapan bahan baku bertujuan untuk memperoleh PHA murni sebagai bahan utama biodegradasi bioplastik. Persiapan bahan baku bioplastik terdiri dari dua tahap, yaitu produksi PHA secara fed batch dan proses hilir PHA. a. Produksi PHA secara Fed Batch Tahap awal dalam proses produksi PHA adalah persiapan media propagasi dan kultivasi. Media propagasi dan kultivasi mengandung berbagai komposisi yang dibutuhkan untuk pertumbuhan R. eutropha, salah satunya adalah hidrolisat pati sagu yang merupakan sumber karbon (C) bagi R. eutropha. Kebutuhan hidrolisat pati sagu pada media adalah 30 gram per liter (Atifah, 2006) atau sekitar 9,608 mL untuk media propagasi II setelah dikonversi dengan perhitungan yang dapat dilihat pada Lampiran 6. Kultur R. eutropha dipelihara dalam bentuk kering-beku dan disegarkan setiap dua minggu dengan menumbuhkannya pada media Nutrient Broth (inkubasi 34oC selama 24 jam). Untuk keperluan kultivasi, terlebih dahulu dilakukan propagasi kultur dengan menumbuhkan kultur segar R. eutropha ke dalam media steril (10% v/v) pada waterbath shaker 150 rpm, suhu 34 oC selama 24 jam. Komposisi media propagasi disesuaikan dengan media yang akan digunakan pada kultivasi, volume kultur propagasi 10% dari volume media kultivasi. Kultur hasil propagasi selanjutnya diinokulasikan ke dalam media kultivasi. Kondisi ini berdasarkan penelitian yang dilakukan Atifah (2006). Diagram alir kultivasi PHA dapat dilihat pada Lampiran 1. Rasio C/N pada media kultivasi adalah 10 : 1 (Wicaksono, 2003), konsentrasi awal fosfat (K2HPO4) 5,8 g/l (Atifah, 2006) dengan hidrolisat pati sagu sebagai sumber karbon, (NH4)2HPO4 sebagai sumber nitrogen serta (NH4)2HPO4 dan KH2PO4 sebagai sumber fosfat. Perhitungan jumlah (NH4)2HPO4 yang dibutuhkan dapat dilihat pada Lampiran 6. Komposisi media propagasi dan media fermentasi (Atifah, 2006) dapat dilihat pada Tabel 6.

18

Tabel 6. Komposisi Media Propagasi R. eutropha dan Media Kultivasi Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) Media Propagasi I

Propagasi II

Propagasi III

Kultivasi

(9 mL)

(90 mL)

(900 mL)

(9000 mL)

0,9608 mL

9,608 mL

96,085 mL

960,854 mL

(NH4)2HPO4

0,0566 g

0,566 g

5,658 g

56,577 g

K2HPO4

0,0522 g

0,522 g

5,22 g

52,2 g

KH2PO4

0,0342 g

0,342 g

3,42 g

34,2 g

MgSO4 0.1 M

0,09 mL

0,9 mL

9,0 mL

90 mL

Mikro Elemen

0,009 mL

0,09 mL

0,9 mL

9 mL

Bahan Hidrolisat pati sagu

Sumber : Atifah, 2006

Larutan mikroelemen (dalam g/l HCl 1 N) terdiri dari 2,78 g FeSO4.7H2O, 1,98 g MnCl2.4H2O, 2,81 g CoSO4.7H20, 1,67 g CaCl2.2H2O, 0,17 g CuCl2.2H2O, dan 0,29 g ZnSO4.7H2O. pH campuran garam dan gula kemudian ditepatkan menjadi 7 dengan menggunakan NaOH 4 M dan H3PO4 1,33 M. Pada wadah yang terpisah media kultivasi dan hidrolisat pati sagu disterilisasi pada suhu 121oC selama 15 menit. Selanjutnya media didinginkan (30oC) dan siap digunakan sebagai media propagasi maupun media kultivasi. Produksi PHA dengan cara kultivasi secara fed batch dengan R. eutropha dilakukan pada bioreaktor skala 13 liter, volume kerja 10 liter. Kultivasi dilakukan pada suhu 34oC, agitasi 150 rpm, pH 7 dan aerasi 0,2 vvm. Proses kultivasi dilakukan selama 96 jam dengan pengumpanan pada jam ke-48. Penampakan biorektor yang digunakan untuk kultivasi poli-βhidroksialkanoat (PHA) dapat dilihat pada Gambar 4.

19

Panel

Bioreaktor

Gambar 4. Bioreaktor kapasitas 13 liter b. Proses hilir PHA (modifikasi Van Wegen et al., 1998, Williamson, dan Wilkinson, 1958 di dalam Lafferty et al.,1988). Setelah proses kultivasi selesai, cairan kultivasi disentrifugasi sebanyak empat kali pada kecepatan 13.000 rpm selama sepuluh menit dengan suhu 4oC. Sentrifugasi pertama bertujuan untuk memisahkan biomassa dengan fase cair. Endapan yang diperoleh pada sentrifugasi pertama dibilas dengan aquades untuk pembersihan, kemudian dilakukan sentrifugasi kedua. Hasil bilasan ditambah NaOCl 0,2 %, kemudian dilakukan proses penghancuran sel selama satu jam untuk mengeluarkan PHA dari biomassa sel. Proses sentrifugasi ketiga dilakukan untuk memisahkan PHA dengan NaOCl. Hasil sentrifugasi ketiga dibilas dengan akuades, kemudian dilakukan sentrifugasi keempat. Endapan hasil sentrifugasi keempat dituangkan ke cawan petri, kemudian dioven pada suhu 50oC selama 24 jam (sampai kering). PHA yang dihasilkan merupakan serbuk kering hasil pengeringan pada oven. PHA kering yang telah dihasilkan kemudian direfluks dengan menggunakan kloroform sebagai pelarut. Proses refluks dilakukan dengan cara melarutkan PHA dalam kloroform. Perbandingan PHA : kloroform adalah 1 : 50 (b/v) dan proses refluks dilakukan dengan pengadukan selama 24 jam pada suhu ± 50oC. Pada akhir proses refluks, larutan disaring dengan sistem penyaringan vakum menggunakan kertas saring whatman 42. Filtrat hasil penyaringan diuapkan pada suhu ruang sehingga diperoleh lembaran PHA

20

yang siap digunakan untuk uji biodegradasi. Diagram alir proses hilir PHA dapat dilihat pada Lampiran 2.

2. Biodegradasi Bioplastik Pengujian biodegradasi plastik dilakukan menggunakan medium air yang diberi perlakuan aerobik dalam erlenmeyer 500 mL dan 250 mL yang dimodifikasi berdasarkan Andrady (2000). Desain alat pengujian biodegradasi dapat dilihat pada Gambar 5. Sampel plastik yang akan diuji masing-masing berbobot 0,10 g dimasukkan ke dalam media degradasi terdiri atas air Danau LSI (150 mL) dan lumpur aktif hasil limbah nata de coco (10 mL). Selama proses degradasi berlangsung dihasilkan CO2 yang terlarut dalam NaOH. Diagram alir pengujian biodegradasi bioplastik pada media air secara aerobik dapat dilihat pada Lampiran 4.

Aliran CO2

Aliran O2

Media degradasi dan bioplastik

NaOH

Gambar 5. Desain alat penguji biodegradasi (modifikasi dari Andrady, 2000)

21

3. Jenis-jenis Analisa Analisis – analisis yang dilakukan adalah sebagai berikut: a. Pengukuran CO2 (Anas, 1989) Jumlah CO2 yang bereaksi dapat ditentukan melalui titrasi dengan larutan asam hidroklorida (HCl) standar. Larutan NaOH yang telah mengandung CO2 terlarut ditetesi dengan indikator phenolphtalein (PP) dan dititrasi sampai larutan tidak berwarna. Titrasi ke dua dilanjutkan dengan menggunakan indikator metil jingga hingga larutan berwarna merah muda. Titrasi kedua berhubungan dengan jumlah CO2 yang terdapat dalam larutan NaOH (Anas, 1989). Diagram alir pengukuran kadar CO2 dapat dilihat pada Lampiran 5. b. Total Plate Count (TPC) (Suriawiria, 2003) Dilakukan uji Total Plate Count (TPC) untuk mengetahui jumlah bakteri yang terdapat pada media biodegradasi. Sebanyak 1 mL sampel dimasukkan ke dalam cawan petri, kemudian nutrient agar dituangkan ke dalam cawan petri yang sudah berisi sampel. Proses inkubasi berlangsung selama 2 x 24 jam pada suhu 36,5oC. Setelah proses inkubasi selesai dilakukan penghitungan jumlah koloni mikroorganisme. Berikut ini merupakan cara perhitungan jumlah mikroorganisme pada media degradasi (Suriawiria, 2003).

Jumlah mikroorganisme per mL biakan = jumlah koloni bakteri yang terhitung faktor pengencera n

c. Pengukuran pH (AOAC, 1995) Sampel sebanyak 10 mL diukur dengan menggunakan pH meter, dengan terlebih dahulu dilakukan standarisasi dengan buffer pH 4,0 dan 7,0. pengukuran sampel dilakukan dengan mencelupkan elektroda pH meter ke dalam sampel dan skala dibaca setelah angka konstan.

22

d. Pengukuran persen penurunan bobot bioplastik Perhitungan persen penurunan bobot bioplastik diperoleh dari hasil pengurangan bobot awal bioplastik dengan bobot akhir bioplastik kemudian dibagi dengan bobot awal bioplastik dan terakhir dikalikan 100%. % Bobot =

Bobot awal bioplastik − Bobot akhir bioplastik x 100% Bobot awal bioplastik

23

IV. HASIL DAN PEMBAHASAN

A. PERSIAPAN BAHAN BAKU Bahan utama yang digunakan pada uji biodegradasi adalah PHA murni dan PHA dengan penambahan pemlastis. Pemlastis yang digunakan pada penelitian ini adalah polietien glikol (PEG) dengan konsentrasi 30% (Rais, 2007), dimetil glikol (DEG) dengan konsentrasi 20% (Delvia, 2006) dan dimetil ftalat (DMF) dengan konsentrasi 25% (Juari, 2006). Tahapan pertama dalam penelitian ini adalah proses produksi PHA yang merupakan bahan utama dalam degradasi bioplastik. Pada tahap ini dilakukan proses produksi PHA secara fed batch dan proses hilir PHA.

1. Produksi PHA secara Fed Batch Kultivasi dilakukan secara fed batch (semi-sinambung) dimana media atau substrat dimasukkan ke dalam bioreaktor secara bertahap dan dibiarkan hingga waktu yang telah ditentukan selama empat hari. Sistem fed-batch mampu meningkatkan konsentrasi PHA dan rendemen PHA di dalam sel sebesar lebih dari dua kali lipat dibandingkan dengan kultivasi sistem curah. Produksi PHA dilakukan dengan menumbuhkan Ralstonia eutropha yang mampu mengakumulasi PHA didalam selnya pada substrat yang mengandung sumber karbon. Sumber karbon yang digunakan pada kultivasi ini adalah sirup glukosa (hidrolisat) pati sagu. Selama proses kultivasi berlangsung terjadi penurunan pH yang diakibatkan oleh pembentukan asam sebagai hasil samping proses metabolisme.

2. Proses Hilir PHA Bubuk PHA yang didapatkan sampai pada proses hilir masih merupakan PHA kotor. Pengotor yang ada dalam bubuk PHA dapat berupa protein, lemak, gula sisa, sisa media, maupun partikel padatan lainnya. Pengotor dapat mengganggu pembentukan lembaran plastik karena menghalangi pembentukan

24

ikatan antar rantai molekul PHA. Rendemen dari proses ekstraksi dengan NaOCl sebesar 4,04 g/l cairan kultivasi. PHA hasil ekstraksi NaOCl dapat dilihat pada Gambar 6.

(a) (b) Gambar 6. PHA hasil kultivasi: (a) hasil ekstraksi setelah dikeringkan dan (b) setelah dihaluskan Untuk memperoleh lembaran plastik PHA dilakukan proses pemurnian lanjutan dengan metode refluks dan kloroform sebagai pelarutnya. Perbandingan PHA kering dan kloroform yang digunakan adalah 1:50. Penggunaan kloroform sebanyak 50 kali bagian PHA dimaksudkan untuk lebih dapat mengekstrak PHA dari pengotornya (Juari, 2006). PHA yang telah dilarutkan dalam kloroform kemudian dipanaskan pada suhu 50oC dan diaduk selama 24 jam dengan menggunakan hot plate stirrer. Menurut Juari (2006), penggunaan suhu 50oC dimaksudkan untuk mempercepat proses pelarutan PHA dalam kloroform. Pada akhir proses pemurnian dilakukan penyaringan yang berfungsi untuk memisahkan PHA dengan komponen nonPHA. Filtrat yang merupakan hasil penyaringan merupakan PHA yang terlarut dalam kloroform sedangkan komponen non-PHA akan tertahan pada kertas saring. Penguapan kloroform dilakukan untuk mendapatkan lembaran PHA murni. Rendemen yang diperoleh dari pemurnian tahap dua adalah 10% dari bobot kering PHA hasil ekstraksi dengan NaOCl. Lembaran PHA murni dapat dilihat pada Gambar 7.

25

Gambar 7. PHA hasil ekstraksi dengan kloroform

B. BIODEGRADASI PHA Pada penelitian ini media pendegradasi yang digunakan adalah air Danau LSI IPB dengan penambahan lumpur aktif dari limbah cair nata de coco. Penambahan lumpur aktif diharapkan dapat mempercepat proses degradasi bioplastik karena banyak mikroorganisme yang terdapat pada lumpur aktif. Pada awal pengujian dilakukan karakterisasi terhadap media degradasi yang akan digunakan dengan cara mengukur suhu, pH dan total mikroorganisme. Hasil pengukuran tersebut dapat dilihat pada Tabel 7. Tabel 7. Karakteristik Awal Media Degradasi Bioplastik Air Lumpur Air Danau:Lumpur Aktif Sampel Danau Aktif (15:1) Parameter 27 oC 28oC 28oC Suhu pH

6,24

3,55

3.24

Total Plate Count (TPC)

83 x 103

31 x 105

25 x 105

Karakteristik

suhu

awal

media

degradasi

menunjukkan

bahwa

mikroorganisme yang tumbuh pada media air danau dan lumpur aktif merupakan mikroorganisme mesofilik. Hal ini dibuktikan dengan hasil pengukuran suhu air danau (28oC), lumpur aktif (27 oC) dan campuran air danau dengan lumpur aktif (28oC). Mikroorganisme mesofilik merupakan mikroorganisme yang dapat hidup pada suhu antara 25-40oC (Pelczar dan Chan, 1986). Limbah cair nata de coco mengandung

bakteri

dari

genus

Acetobacter

dan

merupakan

famili

Pseudomonadaceae (www.en.wikipedia.org). Menurut Fardiaz (1992), bakteri

26

famili Pseudomonadaceae memiliki kisaran suhu optimum pertumbuhan antara 20 oC – 30 oC. Hasil pengukuran pH awal media degradasi menunjukkan bahwa air danau lumpur aktif dan campuran air danau dengan lumpur aktif berada dalam kisaran pH optimum untuk pertumbuhan mikrooragnisme. Nilai pH awal media degradasi berada antara 3,24-6,24. Menurut Pelczar dan Chan (1986), mikrooganisme dapat tumbuh pada keadaan sangat asam atau sangat basa. Sifat asam media disebabkan oleh kandungan asam asetat dalam lumpur aktif yang dihasilkan oleh Acetobacter xylinum selama proses produksi nata de coco. Data karakteristik awal suhu dan pH media pendegradasi dapat menunjang pertumbuhan mikroorganisme yang akan mendegradasi bioplastik. Penghitungan jumlah mikroorganisme dilakukan untuk mengetahui bahwa dalam media degradasi terdapat sejumlah mikroorganisme yang diperkirakan dapat tumbuh sehingga dapat berlangsung proses degradasi. Hasil Total Plate Count (TPC) tahap awal menunjukkan jumlah mikroorganisme yang terdapat pada air danau adalah 83.000 koloni per mL sedangkan pada lumpur aktif terdapat 3.100.000 koloni per mL yang akan mendegradasi bioplastik. Pengujian bioplastik dilakukan dalam ruangan dengan suhu 25-30oC. Menurut Suriawira (2003), suhu rendah

menyebabkan gangguan proses

metabolisme. Kematiaan mikroorganisme pada suhu rendah disebabkan oleh perubahan keadaan koloid protoplasma yang tidak reversibel. Penurunan suhu yang tiba-tiba di atas titik beku dapat menyebabakan kematian, akan tetapi penurunan suhu secara bertingkat hanya menghentikan kegiatan metabolisme untuk sementara. Suhu tinggi mengakibatkan denaturasi protein dan enzim sehingga menghentikan proses metabolisme dan mikroorganisme akan mati. Media pendegradasi terdiri dari air danau, lumpur aktif, sumber nitrogen (urea) dan sumber fosfor (K2HPO4). Dilakukan homogenitas untuk penyeragaman suhu, kadar oksigen, dan penyebaran mikroorganisme yang berasal dari air danau dan lumpur aktif. Pada penelitian ini inokolum pengdegradasi diperoleh dari air danau dan lumpur aktif. Hasil pengukuran tahap awal total mikroorganisme yang terdapat pada campuran air danau dan lumpur aktif adalah 2.500.000 koloni per mL yang akan mendegradasi bioplastik. Uji biodegradasi dengan menggunakan

27

lumpur aktif dan air danau bertujuan untuk memberikan kondisi yang mendekati ekosistem

alam

dimana

bioplastik

akan

dibuang.

Keanekaragaman

mikroorganisme yang terdapat dalam lumpur aktif diharapkan dapat mempercepat laju biodegradasi bioplastik. Secara umum bakteri-bakteri yang terdapat dalam lumpur aktif adalah Pseudomonas,

Bacillus,

Achromobacter,

Enterococcus,

Acinetobacter,

Aeromonas, Alcaligenes, Arthrobacter, Escherichia, Salmonella, Proteus, Streptococcus, Staphylococcus, Micrococcus, Corynebacterium, Clostridium, Penicillium (Mehandjyska, 1995). Mikroorganisme tergantung pada persediaan air dan sumber makanan untuk dapat terus tumbuh dan berkembangbiak. Nitrogen (N) dan fosfor (P) sangat diperlukan oleh mikroorganisme untuk proses pembentukan protein dan tenaga dalam proses metabolisme. Oleh karena itu, keberadaan sumber nitrogen dan fosfor sangat dibutuhkan dalam proses biologis. Penggunaan sumber N dan P dengan jumlah yang tepat sangat efektif dalam meningkatkan laju biodegradasi. Sumber nitrogen yang digunakan pada penelitian ini adalah urea dengan jumlah 0,10% dari bobot bioplastik (Anggraeni, 2003). Beberapa mikroorganisme dapat menggunakan nitrogern dalam bentuk gas dari atmosfer, tetapi paling banyak mikroorganisme memerlukan nitrogen dalam bentuk terlarut dalam air. Garam-garam amonium yang berasal dari urea dikenal sebagai aktivator dalam pertumbuhan sel. Sumber fosfor yang digunakan pada penelitian ini adalah K2HPO4 dengan jumlah 0,05% dari bobot bioplastik (Anggraeni, 2003). Fosfor merupakan komponen utama asam nukleat dan lemak sel membran yang berperan dalam proses pemindahan energi secara biologis. Disamping penting untuk pertumbuhan mikroorganisme, fosfor juga berperan dalam pembentukan asam amino, transfer energi, dan pembentukan senyawa antara dalam metabolisme. Sumber fosfor yang utama adalah dikalium hidrogen fosfat (K2HPO4) dan kalium dihidrogen fosfat (KH2PO4) (Pelczar dan Chan, 1986). Pasokan oksigen pada pengujian ini diperoleh ketika biometer yang berisi larutan NaOH (50 mL) diganti setiap dua hari sekali untuk titrasi. Selain itu, pasokan oksigen diperoleh dari aerator yang digunakan pada saat pengujian.

28

Pengunaan aerator bertujuan untuk memberikan pasokan oksigen secara terus menerus selama proses degradasi berlangsung. Hal ini dilakukan untuk memberikan kondisi yang hampir sama dengan lingkungan dimana bioplastik akan di buang dalam kehidupan sehari-hari.

1. Pengukuran CO2 Pengamatan biodegradasi bioplastik dilakukan dengan pengukuran CO2 yang diproduksi sebagai hasil aktivitas mikroorganisme dalam mendegradasi bioplastik. PHA dapat secara sempurna terurai menjadi H2O dan CO2 dalam sistem aerobik. Proses biodegradasi terbagi menjadi dua tahap yaitu depolimerisasi dan mineralisasi. Pada tahapan pertama (depolimerisasi) biasanya terjadi di luar mikroorganisme (bakteri atau fungi) mengingat ukuran rantai polimer dan sifat

dari

banyak

polimer

yang

sulit

untuk

dipecah.

Enzim

ekstraseluler

bertanggungjawab atas tahapan ini, bertindak secara endo (pemecahan secara acak unit monomer terminal pada rantai polimer utama) ataupun ekso (pemecahan secara berurutan unit monomer terminal pada rantai polimer utama). Mineralisasi didefinisikan sebagai

proses pengubahan fragmen oligomer yang lebih sederhana menjadi biomassa, garam dan mineral, air dan gas seperti CO2, CH4, dan N2 (Brandl,1995). Karbon dioksida (CO2) yang dihasilkan dari proses metabolisme substrat bioplastik oleh mikroorganisme akan terperangkap dalam larutan NaOH 0,1 N kemudian dititrasi dengan HCl. Banyaknya HCl yang digunakan untuk mentitrasi NaOH berhubungan langsung dengan jumlah CO2 yang dihasilkan oleh mikroorganisme sebagai hasil proses mineralisasi. Untuk memperoleh data yang akurat maka diperlukan blanko yaitu media biodegradasi tanpa polimer. Blanko berfungsi sebagai faktor koreksi sehingga jumlah CO2 sebagai produk akhir biodegradasi substrat bioplastik oleh mikroorganisme dapat dibedakan dengan CO2 yang berasal dari sumber lain. Metode-metode pengujian untuk mengamati proses biodegradasi tidak hanya menghasilkan data yang bersifat kualitatif seperti kemampuan biodegradasi suatu bahan, tetapi juga menentukan laju selama proses biodegradasi berlangsung. Pengukuran jumlah produksi CO2 sebagai hasil akhir mineralisasi PHA dan PHA yang ditambahkan pemlastis dilakukan setiap dua hari sekali selama 50

29

hari periode pengujian. Pemlastis yang digunakan pada penelitian ini adalah polietien glikol (PEG) dengan konsentrasi 30% (Rais, 2007), dimetil glikol (DEG) dengan konsentrasi 20% (Delvia, 2006) dan dimetil ftalat (DMF) dengan konsentrasi 25% (Juari, 2006). Data akumulasi produksi CO2 pada penelitian ini dapat dilihat pada Lampiran 7-16. Produksi CO2 selama proses degradasi dapat

Akumulasi produksi CO2 (mg)

dilihat pada Gambar 8.

500 432,52

450 400

368,06

350

301,4

300

246,62

250 200 150 100 50 0 0

20

40

60

Hari kePHA

PHA + DEG

PHA + DMF

PHA + PEG

Gambar 8. Kurva produksi CO2 PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG Selama periode waktu yang telah ditentukan diketahui bahwa jumlah CO2 yang diproduksi oleh PHA lebih besar daripada CO2 yang dihasilkan PHA yang ditambahkan pemlastis.

Hal ini didukung dengan data laju produksi

karbondioksida (dY/dX) selama 50 hari. Laju produksi karbondioksida (CO2) PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG berturut-turut adalah 8,65 mg/hari; 7,36 mg/hari; 6,03 mg/hari dan 4,93 mg/hari. Contoh perhitungan laju produksi karbondioksida (dY/dX) adalah sebagai berikut:

Laju produksi CO2 PHA

=

Akumulasi produksi CO2 Lama waktu deg radasi

=

432,52 mg 50 hari

= 8,65 mg/hari

30

Laju produksi karbondioksida (CO2) PHA tebih besar bila dibandingkan dengan PHA yang ditambahkan pemlastis. Fakta tersebut membuktikan bahwa penambahan pemlastis memperlambat proses biodegradasi. PHA memiliki struktur kimia yang lebih sederhana sehingga mikroorganisme pendegradasi PHA hanya memproduksi enzim yang dapat memutuskan ikatan polimer PHA. Enzim yang berperan dalam pemutusan ikatan ester merupakan kelompok enzim hidrolase (Winarno, 1986). Enzim hidrolase merupakan kelompok enzim yang mengkatalisis reaksi hidrolisis suatu substrat atau pemecahan substrat dengan pertolongan molekul air. Salah satu enzim yang termasuk dalam kelompok hidrolase adalah esterase. Proses degradasi PHA terjadi karena mikroorganisme menghasilkan enzim depolimerase ekstraseluler PHA. Enzim ekstraseluler depolimerase mendegradasi sumber karbon (PHA) yang berada di lingkungan. Pada tahap pertama, PHA terdepolimerisasi menjadi monomer, dimer atau campuran oligomer tergantung pada jenis enzim depolimerasenya. Pada tahap dua, enzim jenis oligomer hidrolase membelah oligomer menjadi monomer melalui reaksi hidrolisis. Monomer-monomer tersebut dimanfaatkan dan dimetabolisme di dalam sel sehingga dihasilkan CO2 dan H2O pada kondisi aerobik dan CH4, CO2 dan H2O pada kondisi anaerobik (Jendrossek dan Handrick, 2002). Pada PHA yang ditambahkan pemlastis terdapat ikatan antara polimer PHA dengan pemlastis. Hasil penelitian Juari (2006), Delvia (2006) dan Rais (2007) menunjukkan bahwa pemlastis mengikat gugus OH yang terdapat pada rantai polimer PHA. Pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dengan pemlastis dimetif ftalat (DMF), dietil glikol (DEG) dan polietilen glikol (PEG) dapat dilihat pada Gambar 9-11. Ikatan antara polimer dengan molekul lain menyebabkan struktur kimia PHA + DEG, PHA + DMF dan PHA + PEG menjadi lebih kompleks dibandingkan dengan struktur kimia PHA sehingga lebih sulit didegradasi.

31

Gambar 9. Pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dengan PEG 400 (Rais, 2007)

Gambar 10. Pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dan dietil glikol (DEG) (Zahra, 2003 dalam Delvia, 2006).

32

DMF

Gambar 11. Proses pembentukan ikatan hidrogen antara PHA dan dimetil ftalat (DMF) (Juari, 2006) Bahan tambahan seperti pemlastis dapat menunjang atau menghambat proses degradasi. Bahan aditif juga dapat menjadi penghalang terhadap aliran gas seperti oksigen yang secara tidak langsung menghambat mikroorganisme yang membutuhkan oksigen untuk mendegradasi bioplastik. Agen pendegradasi adalah mikroorganisme yang memiliki enzim yang spesifik yang dapat memutuskan

33

ikatan antara PHA dengan pemlastis menjadi monomer. Struktur kimia suatu bahan polimer sangat mempengaruhi biodegradasi polimer. Semakin kompleks struktur kimia penyusun suatu bahan polimer maka tingkat kesukaran untuk memutuskan rantai polimer selakin tinggi. PHA memiliki struktur kimia yang lebih sederhana sehingga proses biodegradasi akan lebih cepat dibandingklan dengan PHA yang ditambahkan pemlastis dengan struktur kimia yang lebih kompleks. Selain itu, PHA memiliki sifat hidrofobik sehingga mudah terdegradsi. Menurut Jendrossek dan Handrick (2002),

enzim

depolimerase

ekstraseluler

PHA

memiliki

kemampuan

mendegradasi yang sangat besar pada bahan yang bersifat hidrofobik dibandingkan hidrofilik. PHA yang ditambahkan pemlastis DMF memiliki laju degradasi yang lebih cepat bila dibandingkan dengan PHA yang ditambahkan pemlastis DEG. Pemlastis DMF memiliki sifat hidrofobik yang dapat mempercepat proses degradasi bioplastik. Penambahan pemlastis menyebabkan peningkatan jumlah faksi amorf sehingga menurunkan suhu pelelehan dan derajat kristalinitas bioplastik. Degradasi bioplastik dipengaruhi oleh suhu pelelehan bioplastik dan derajat kristalinitas, semakin tinggi suhu pelelehan dan derajat kristalinitas bioplastik maka semakin sulit bioplastik terdegradasi. Tokiwa dan Calabia (2004) menyatakan bahwa degradasi enzimatik akan semakin cepat dengan suhu pelelehan polimer dan derajat kristalinitas yang rendah. Suhu pelelehan PHA yang ditambahkan pemlastis DMF dan DEG adalah 166,71 oC dan 167,51oC. Hal ini menunjukkan bahwa derajat kristalinitas PHA dengan penambahan pemlastis DEG lebih besar dibandingkan PHA dengan penambahan pemlastis DMF. Allcock dan Lampe (1981) menyatakan bahwa pada suhu pelelehan, polimer kristalin meleleh menjadi cairan viskous secara lebih tajam dari pada polimer amorf. Menurunnya derajat kristalinitas bioplastik yang ditambahkan pemlastis DMF mengakibatkan bioplastik menjadi amorf. Pada proses hidrolisis, bagian yang paling mudah terhidrolisis adalah bagian amorf karena memudahkan mikroorganisme

untuk

menyusup

ke

seluruh

matriks

polimer

dengan

memanfaatkan daerah-daerah amorf tersebut. Selain itu, aerasi yang diberikan

34

pada saat berlangsungnya proses degradasi dapat membantu memecahkan polimer menjadi polimer dengan ukuran lebih kecil sehingga mikroorganisme dapat dengan mudah mendegradasi bioplastik. Bioplastik yang ditambahkan pemlastis DEG memiliki laju biodegradasi yang lebih besar dibandingkan penambahan pemlastis PEG. Derajat kistalinitas PHA yang ditambahkan pemlastis DEG lebih rendah dibandingkan PEG yaitu 31,45% dan 44,58%. Derajat kristalinitas yang rendah mempercepat laju biodegradasi. Menurut Doi (1997), kerja enzim depolimerase akan menurun dengan meningkatnya derajat kristalinitas sehingga laju degrasi enzimatik akan semakin lama dibandingkan dengan struktur bioplastik yang armorf. Selain itu, sifat PEG yang tidak biodegradabel mengakibatkan PEG sulit terurai di alam. Perlu dilakukan pengkuantifikasian kurva menjadi suatu persamaan matematik sehingga dapat dengan mudah membandingkan antar sampel yang didegradasi. Proses pengkuantifikasian kurva menjadi persamaan matematik dilakukan dengan cara mencari persamaan regresi yang sesuai untuk masingmasing kurva produksi CO2. Penentuan persamaan regresi dengan metode curve fitting (Lampiran 19-22) dilakukan untuk mengetahui pola degradasi semua sampel yang diuji. Persamaan kurva dan nilai regresi hasil pengukuran CO2

Akumulasi produksi CO2 (mg)

dengan metode curve fitting dapat dilihat pada Gambar 12. 500 450 400 350 300 250 200 150 100 50 0

R2 = 0,9876 R2 = 0,9948 R2 = 0,9725 R2 = 0,9931

0

20

40

PHA

PHA + DEG

60

Hari kePHA + DMF

PHA + PEG

Gambar 12. Kurva pola regresi produksi CO2 PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG

35

Persamaan regresi hanya berlaku untuk periode pengujian yang telah dilakukan yaitu hingga hari ke-50 untuk sampel PHA, PHA + DMF, PHA + DEG, dan PHA + PEG. Nilai dan persamaan pola regresi pada dapat dilihat pada Tabel 8.

Tabel 8. Persamaan Kurva dan Nilai Regresi Hasil Pengukuran CO2 Sampel Persamaan kurva Nilai R2 2 2 PHA y = -0,0883x + 12,426x + 27,125 R = 0,9876 PHA + DEG y = 99,67Ln(x) - 62,686 R2 = 0,9725 PHA + DMF y = 106,31Ln(x) - 62,932 R2 = 0,9948 2 PHA + PEG y = -0,1779x + 13,527x + 5,5659 R2 = 0,9931 Kurva pola regresi produksi CO2 PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG menunjukkan bahwa sampel PHA dan PHA + PEG memiliki pola yang cenderung kuadratik sedangkan sampel PHA + DMF dan PHA + PEG memiliki pola yang cenderung logaritmik. Terdapat beberapa faktor yang perlu dipertimbangkan

dalam

menentukan

kurva

yang

paling

sesuai

untuk

menggambarkan pola persamaan produksi CO2. Faktor-faktor tersebut antara lain nilai koefisien determinasi (R2) yang tertinggi, nilai distribusi F yang tertinggi, dan nilai standard error yang terendah. Hasil curve fitting biodegradasi PHA (Lampiran 19) menunjukkan bahwa persamaan kurva regresi linier memiliki nilai R2, F hitung dan Standard error sebesar 0,96520, 499,20023 dan 20,71505, sedangkan kurva regresi kuadratik memiliki nilai R2, F hitung dan Standard error sebesar 0,98761, 677,30005 dan 12,72042. Untuk mendapatkan pola regresi yang paling sesuai dilakukan perbandingan nilai R2, F hitung dan standard error. Hasil perbandingan menunjukkan bahwa kurva regresi kuadratik dengan persamaan y = -0,0883x2 + 12,426x + 27,125 paling sesuai untuk menggambarkan pola biodegradasi PHA. Hal ini dikarenakan nilai R2 yang lebih besar, F hitung yang lebih besar dan standard error yang paling kecil. Metode yang sama dilakukan untuk menentukan pola regresi sampel PHA dengan penambahan pemlastis PEG, DMF dan DEG. Hasil membandingkan nilai R2, F hitung dan standard error pada Lampiran 21-23 menunjukkan bahwa penambahan pemlastis PEG memiliki pola biodegradasi kuadratik dengan

36

persamaan

y = -0,1779x2 + 13,527x + 5,5659, sedangkan PHA dengan

penambahan pemlastis DMF dan DEG memiliki pola biodegradasi logaritmik dengan persamaan y = 106,31Ln(x) - 62,932 dan y = 99,67Ln(x) - 62,686. Menurut Hines dan Montgomery (1990), nilai R2 memberikan pengertian sejauh mana jenis kurva yang dipilih sesuai dengan kurva sampel. Semakin nilai R2 mendekati angka satu maka korelasi antara kurva sampel dan jenis regresinya semakin tinggi pula. Standard error yang paling rendah menunjukkan penyimpangan data hasil persamaan regresi terhadap data hasil kurva produksi CO2 semakin kecil. Hasil curve fitting menunjukkan bahwa PHA dengan penambahan pemlastis DMF lebih baik dibandingkan dengan PHA dengan penambahan pemlastis DEG dan PEG.

2. Total Plate Count (TPC)

Analisis terhadap media pendegradasi dilakukan untuk kepentingan uji biodegradasi bioplastik. Pelaksanaan analisis dilakukan berdasarkan pemeriksaan mikroorganisme yang hidup dalam media degradasi dengan metode Total Plate Count (TPC). Suriawiria (2003) menyatakan bahwa Total Plate Count (TPC) merupakan perhitungan jumlah mikroorganisme tidak berdasarkan jenis mikroorganisme, tetapi secara kasar terhadap golongan atau kelompok besar mikroorganisme umum seperti bakteri, fungi, mikroalga atau terhadap kelompok bakteri tertentu. Total Plate Count (TPC) ditentukan berdasarkan penanaman sampel (mikroorganisme) dalam jumlah dan pengenceran tertentu ke dalam media kultivasi yang umum untuk bakteri. Pada penelitian ini media yang digunakan adalah nutrient agar (NA). Pengenceran yang dilakukan sampai pengenceran 10-8. Menurut Suriawiria (2003), pengenceran tertinggi umumnya sampai 10-10. Karena dengan pengenceran tertinggi penghitungan jumlah mikroorganisme berdasarkan koloni ataupun pewarnaan jauh lebih baik hasilnya dibandingkan dengan hasil pengenceran rendah (di bawah 10-3). Perhitungan dilakukan dengan rumus sebagai berikut. Jumlah mikroorganise per mL biakan =

jumlah koloni bakteri yang terhitung faktor pengencera n

37

Contoh perhitungan pada media degradasi PHA murni minggu ke satu adalah sebagai berikut. Jumlah mikroorganisme per mL biakan =

1 koloni 10 − 8

Jumlah mikroorganisme per mL biakan = 1 x 108 koloni/mL Hasil penghitungan TPC pada media degradasi dapat dilihat pada Tabel 9.

Tabel 9. Hasil TPC Media Degradasi (koloni/mL) PHA PHA + DMF PHA + DEG Sampel

PHA + PEG

Minggu

1 x 108 25,5 x 108 10,75 x 108 5 x 108

1 2 3 4

1 x 108 12,25 x 108 5,25 x 108 2 x 108

1 x 108 7,75 x 108 8 x 108 6,25 x 108

1 x 108 16,5 x 108 7,5 x 108 3,25 x 108

Setiap mikroorganisme akan tumbuh dengan baik di dalam lingkungannya selama

kondisinya

menguntungkan

bagi

pertumbuhannya

dan

untuk

mempertahankan dirinya. Begitu terjadi perubahan fisik atau kimiawi, seperti habisnya nutrien atau terjadinya perubahan radikal dalam suhu atau pH, yang membuat kondisi bagi pertumbuhan spesies lain lebih menguntungkan, maka mikroorganisme yang telah teradaptasi dengan baik di dalam keadaan lingkungan terdahulu terpaksa menyerahkan tempatnya kepada mikrooragnisme yang dapat beradaptasi dengan baik dengan lingkungan yang baru (Pelczar dan Chan, 1986). Kurva pertumbuhan mikroorganisme dalam media degradasi bioplastik dapat

Log jumlah bakteri hidup

dilihat pada Gambar 13.

10,00 9,50 PHA

9,00

PHA+DMF

8,50

PHA+DEG

8,00

PHA+PEG

7,50 7,00 1

2

3

4

Minggu ke-

Gambar 13. Kurva pertumbuhan mikroorganisme dalam media degradasi

38

Hasil Total Plate Count (TPC) selama uji biodegradasi menunjukkan bahwa mikroorganisme yang mendegradasi PHA tanpa polimer lebih banyak, diikuti dengan PHA dengan penambahan pemlastis PEG, DMF dan DEG. Jumlah mikroorganisme degradasi tidak memiliki kesesuaian dengan laju produksi CO2 dimana laju PHA tanpa pemlastis lebih tinggi diikuti dengan PHA dengan pemlastis DMF, DEG dan PEG. Hal ini dikarenakan media degradasi yang digunakan merupakan kultur campuran yang terdiri dari mikroorganisme aerobik dan anaerobik. Hasil total plate count (TPC) yang tinggi tetapi tidak diiringi dengan produksi CO2 yang tinggi diduga karena mikroorganisme anaerobik yang tidak memproduksi CO2 tetapi memproduksi gas metan lebih dominan pada media degradasi yang mengandung PHA dengan penambahan pemlastis PEG. Kurva pertumbuhan mikroorganisme pendegradasi PHA menunjukkan pola pertumbuhan normal yang terdiri dari empat fase pertumbuhan mikroorganisme, yaitu fase lamban, fase eksponensial atau logaritma, fase stasioner dan fase kematian atau penurunan. Pada saat penghitungan koloni dianggap bahwa tiap koloni berasal dari sebuah sel, jumlah koloni dapat diperhitungkan sebagai jumlah sel mewakili yang dapat di dalam sampel yang di analisis. Hasil TPC pada minggu ke nol dan pertama menunjukkan fase lamban yang diikuti dengan suatu periode pertumbuhan yang cepat (fase logaritma atau eksponensial) dan akhirnya pada minggu ketiga diikuti dengan fase kematian atau penurunan. Pada kurva pertumbuhan mikroorganisme dalam media degradasi tidak terlihat jelas pada hari keberapa fase stasioner terjadi karena jarak pengamatan terlalu panjang. Fase logaritma atau fase pertumbuhan cepat yang terjadi pada minggu pertama dipengaruhi oleh kondisi lingkungan yang sesuai untuk pertumbuhan mikroorganisme. Saat fase eksponensial bioplastik yang merupakan sumber karbon bagi mikroorganisme masih tersedia dalam jumlah yang banyak. Hal yang sama juga terjadi pada persediaan urea dan K2HPO4 yang merupakan sumber nitrogen dan fosfor. Sumber nutrien yang memadai untuk pertumbuhan mikroorganisme didukung pH, suhu, dan ketersediaan oksigen yang cukup maka proses pertumbuhan akan berlangsung dengan cepat. Fase stasioner terjadi karena

39

jumlah sel yang baru sama dengan jumlah sel yang mati karena persedian nutrien terbatas

sehingga

beberapa

mikroorganisme

mati

dan

hanya

sedikit

mikroorganisme yang masih dapat bertahan dan berkembangbiak. Fase kematiaan atau penurunan terjadi karena PHA bagi pertumbuhan mikroorganisme

sudah

mulai

terbatas.

Berkurangnya

suplai

nutrien

mengakibatkan terjadinya kompetisi antara mikroorganisme, sehingga bakteri yang mampu bertahan hidup dan berkembangbiak hanya sedikit. Dari kurva pertumbuhan mikroorganisme dalam media degradasi dapat disimpulkan bahwa dengan semakin lama waktu degradasi maka jumlah mikroorganisme akan berkurang. Kemampuan mikroorganisme mendegradasi PHA mempengaruhi jumlah CO2 yang dihasilkan selama proses degradasi berlangsung. Semakin mudah mikroorganisme mendegradasi bioplastik maka semakin besar bobot plastik yang hilang dan semakin besar CO2 yang dihasilkan dari proses mineralisasi.

3. Nilai pH

Nilai pH merupakan salah satu faktor yang mempengaruhi pertumbuhan mikroorganisme. Menurut Pelczar dan Chan (1986), pada umumnya pH optimum bagi kebanyakan mikroorganisme adalah 6,5-7,5, akan tetapi beberapa mikroorganisme dapat tumbuh dalam kondisi sangat asam atau sangat basa. Bagi beberapa spesies, pH minimum dan maksimum adalah 0,5 dan 9 (Pelczar dan Chan,1986). Pengukuran nilai pH dilakukan dengan menggunakan alat pH meter. Hasil pengukuran pH selama proses degradasi berlangsung dapat dilihat pada Lampiran 17. Nilai perubahan pH media pendegradasi PHA, PHA dengan penambahan pemlastis DEG, PEG dan DMF dapat dilihat pada Gambar 14 dan Gambar 15.

40

Perubahan pH

y = -0,004x 2 + 0,2898x + 3,3797 R2 = 0,958

10 9 8 7 6 5 4 3 2 1 0

y = -0,0046x 2 + 0,2464x + 4,3342 R2 = 0,7258

0

10

20

30

40

50

60

Hari kePHA

PHA + DEG

Gambar 14. Kurva perubahan pH media degradasi PHA dan PHA dengan pemlastis DEG selama proses biodegradasi y = -0,0038x 2 + 0,2428x + 4,338 R2 = 0,8469

9 8 Perubahan pH

7 6 5 4

y = -0,0042x 2 + 0,2644x + 4,1875 R2 = 0,8357

3 2 1 0 0

20

40

60

Hari kePHA + DMF

PHA + PEG

Gambar 15. Kurva perubahan pH media degradasi PHA dengan pemlastis DMF dan PEG selama proses biodegradasi Analisis regresi dilakukan untuk memprediksi seberapa jauh pengaruh satu atau beberapa variabel independen (hari) terhadap variabel dependen (perubahan pH). Metode curve fitting digunakan untuk menentukan pola dan nilai regresi perubahan pH media degradasi bioplastik. Hasil curve fitting (Lampiran 23-26) menunjukkan bahwa untuk masing-masing sampel PHA, PHA dengan pemlastis DEG, DMF dan PEG menunjukkan pola cenderung kuadratik. Kurva pola perubahan pH media degradasi bioplastik ditentukan berdasarkan perbandingan nilai R2 yang tertinggi, F hitung yang tertinggi dan standard error yang terendah. Nilai regresi PHA, PHA dengan penambahan pemlastis DMF, PEG dan DEG berturut-turut sebesar 0,7258; 0,8357; 0,8469 dan 0,9712. Nilai R2 PHA murni lebih kecil dibandingkan dengan PHA dengan

41

penambahan pemlastis. Hal ini membuktikan bahwa PHA murni memiliki standard error yang lebih besar. Standard error terjadi karena ada penyimpangan data hasil persamaan regresi terhadap data hasil kurva perubahan pH. Nilai regresi terbesar terdapat pada PHA dengan penambahan pemlastis DEG. Penambahan PHA dengan pemlastis DEG memiliki nilai regresi sebesar 0,9712. Nilai regresi yang mendekati angka satu menunjukkan bahwa tingkat kesalahan persamaan kurva dan data yang diplotkan semakin kecil. Dari analisis regresi dapat disimpulkan bahwa variasi perubahan pH dipengaruhi waktu pengujian. Kurva perubahan pH (Gambar 14-15) menunjukkan bahwa untuk masingmasing sampel PHA, PHA dengan pemlastis DEG, PHA dengan pemlastis DMF dan PHA dengan pemlastis PEG menghasilkan pH yang berbeda-beda. Perubahan pH cenderung mendekati pH netral kemudian menjadi basa dan kembali menjadi asam. Nilai pH media degradasi bioplastik antara 3,24-8,40. Perubahan pH diakibatkan

oleh

aktivitas

mikroorganisme

yang

mendegradasi

PHA

menghasilkan enzim, air dan karbon dioksida. Mikroorganisme pendegradasi bioplastik memproduksi enzim-enzim yang dapat mendegradasi PHA. Salah satu enzim yang diproduksi mikroorganisme adalah depolimerase ekstraseluler PHA. Menurut Jendrossek dan Handrick (2002), enzim depolimerase ekstraseluler PHA dapat bekerja optimum pada pH antara 7,5-9,8 sehingga selama pertumbuhan mikroorganisme terjadi peningkatan nilai pH akibat aktivitas mikroorganisme untuk mendukung kondisi optimum enzim dalam melakukan proses biodegradasi bioplastik. Juari (2006) menyatakan bahwa di dalam PHA masih terdapat zat pengotor seperti NH (amida protein) dan N=O yang berasal dari proses hilir yang tidak sempurna. Lafferty et al. (1988) menyatakan bahwa PHB dilapisi oleh satu lapisan membran yang mengandung protein sehingga dikatakan granula PHB terdiri dari 98% PHB dan 2% protein. Perubahan pH yang kembali menjadi asam karena terbentuk asam yang merupakan hasil samping metabolisme. Reaksi pembentukan asam sebagai berikut. CO2 + H2O

H2CO3

H2CO3

2H+ + CO32-

42

4. Persen penurunan bobot bioplastik

Pada awal pengujian semua bioplastik memiliki bobot yang seragam yaitu 0,10 gram. Sampel bioplastik dimasukkan ke dalam media pendegradasi dalam bentuk lembaran. Hal ini dilakukan untuk mempermudah proses pengukuran akhir. Aerator yang merupakan sumber oksigen pada media pendegradasi mempunyai pengaruh besar dalam membantu proses degradasi bioplastik. Hal ini dibuktikan dengan ukuran bioplastik menjadi lebih kecil, tekanan yang berasal dari aerator membantu pemutusan ikatan polimer bioplastk. Sifat bioplastik yang rapuh dan kaku menyebabkan bioplastik cepat hancur dengan sedikit tekanan dari aerator. Lembaran bioplastik yang berukuran kecil akan mempermudah mikroorganisme untuk mendegradasinya. Perhitungan persen penurunan bobot bioplastik selama proses degradasi dilakukan untuk memperjelas proses degradasi bioplastik. Persen penurunana bobot bioplastik dihitung berdasarkan selisih antara bobot awal dengan bobot akhir pengujian kemudian dibagi dengan bobot awal dan terakhir dikalikan 100%. Perhitungan persen penurunan bobot bioplastik dilakukan pada hari akhir uji biodegradasi bioplastik yaitu hari ke 50. Hasil perhitungan persen penurunan

% Penurunan Bobot Bioplastik

bobot bioplastik selama proses degradasi dapat dilihat pada Gambar 16.

100,00 90,00 80,00 70,00 60,00 50,00 40,00 30,00 20,00 10,00 0,00

88,90 70,60

67,30 42,10

PHA

PHA+ DMF

PHA + DEG

PHA + PEG

Jenis-jenis Bioplastik

Gambar 16. Grafik penurunan bobot bioplastik Hasil perhitungan persen penurunan bobot bioplastik (Lampiran 18) menunjukkan bahwa PHA tanpa penambahan pemlastis memiliki persen bobot

43

bioplastik yang hilang lebih besar dibandingkan dengan PHA yang ditambahkan pemlastis. Persen bobot yang besar diakibatkan oleh mikroorganisme lebih mudah menyerang PHA tanpa pemlastis yang memiliki struktur yang lebih sederhana. Hasil ini menunjukkan hubungan linier antara persen penurunan bobot bioplastik dengan akumulasi produksi CO2. Semakin banyak akumulasi CO2 maka semakin banyak bioplastik yang terdegradasi akibat aktivitas mikroorganisme. Mikroorganisme mengeluarkan depolimerase ekstraseluler PHA untuk menguraikan PHA di lingkungan. Doi (1997) menyatakan bahwa degradasi enzimatik terjadi pada permukaan film PHA sehingga terjadi penurunan bobot bioplastik. Selama proses degradasi PHA digunakan sebagai sumber karbon oleh mikroorganisme. PHA diuraikan oleh mikroorganisme yang terdapat pada berbagai kondisi lingkungan seperti dari tanah (Pseudomonas lemoignei), lumpur aktif (Alcaligenes faecalis), atmosfir (Pseudomonas pickettii), air laut (Comamonas testosteroni), dan air danau (Pseudomonas stutzeri).

44

V. KESIMPULAN DAN SARAN

A. KESIMPULAN Penambahan pemlastis dimetil ftalat (DMF), dietil glikol (DEG) dan polietilen glikol (PEG) dapat menurunkan daya degradasi bioplastik. Hasil pengukuran laju produksi CO2 pada biodegradasi bioplastik menunjukkan bahwa PHA tanpa penambahan pemlastis memiliki laju degradasi yang lebih besar dibandingkan dengan PHA dengan penambahan pemlastis DMF, DEG dan PEG. Laju produksi karbondioksida (CO2) pada biodegradasi PHA, PHA + DMF, PHA + DEG, dan PHA + PEG berturut-turut sebesar 8,65 mg/hari; 7,36 mg/hari; 6,03 mg/hari dan 4,93 mg/hari. Hasil pengukuran Total Plate Count (TPC) menunjukkan mikroorganisme yang mendegradasi PHA tanpa polimer lebih banyak, diikuti dengan PHA dengan penambahan pemlastis PEG, DMF dan DEG. Jumlah mikroorganisme pendegradasi PHA, PHA+PEG, PHA+DMF dan PHA+DEG berturut-turut pada minggu kedua adalah 25,5x108 koloni/mL; 16,5 x 108 koloni/mL; 12,25 x 108 koloni/mL dan 7,75 x 108 koloni/mL. Hasil perubahan pH pada media degradasi membuktikan bahwa selama degradasi bioplastik terjadi perubahan pH mendekati basa kemudian menjadi asam kembali. Berdasarkan perhitungan persen penurunan bobot bioplastik, PHA tanpa pemlastis memiliki persen penurunan bobot bioplastik yang lebih besar diikuti dengan PHA dengan penambahan pemlastis DMF, DEG, dan PEG dengan nilai sebesar 88,9%; 70,65%; 67,35% dan 42,1%. Hasil penelitian ini membuktikan bahwa penambahan pemlastis dapat memperlambat proses biodegradasi bioplastik yang direpresentasikan oleh produksi dan laju produksi CO2, jumlah mikroorganisme pendegradasi, perubahan pH media degradasi dan persen penurunan bobot bioplastik selama biodegradasi.

45

B. SARAN 1. Perlu dilakuan penelitian tentang pengujian biodegradasi bioplastik dengan analisis SEM (Scanning Electron Miscroscop) untuk memperjelas proses degradasi yang terjadi selama berlangsungnya proses biodegradasi. 2. Perlu dilakukan pengukuran gas metan (CH4) yang dihasilkan selama degradasi bioplastik untuk memperjelas ketidaksesuaian antara jumlah CO2 dengan hasil total plate count (TPC).

46

DAFTAR PUSTAKA

Abner, L. dan Miftahorrahman. 2002. Keragaman Industri Sagu Indonesia. Warta Penelitian dan Pengembangan Tanaman Industri. Vol 8 No. 1. Juni 2002. Allcock, H. R. dan F.W. Lampe. 1981. Contemporary Polymer Chemistry. Prentice-Hall, Inc., Englewood Cliffs, New Jersey 07632. Anas, I. 1989. Petunjuk Laboratorium Biologi Tanah dalam Praktek. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan. Dirjen Perguruan Tinggi, PAU, IPB. Bogor. Andrady, A.L. 2000. Assessment of Biodegradability in Organic Polymers. In: Hamid, S.H. (ed). Handbook of Polymer Degradation. 2nd ed., rev and expanded. Marcel Dekker, Inc., New York. Anggraeni, D. 2003. Kajian Biodegradasi Bioplastik Poli-β-Hidroksialkanoat dengan Penambahan Pemlastis Dietil Glikol dan Dimetil Ftalat pada Media Cair Buatan. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB. Bogor. Atifah, N. 2006. Pemanfaatan Hidrolisat Pati Sagu Sebagai Sumber Karbon Dalam Produksi Bioplastik Poli-(β-Hidroksialkanoat) Secara Fed-Batch Oleh Ralstronia eutropha. Tesis. Institut Pertanian Bogor. Bogor. Akyuni, D. 2003. Pemanfaatan Pati Sagu (Metroxylon sp.) Untuk Pembuatan Sirup Glukosa Menggunakan α-Amilase dan Amiloglukosidase. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, Institut Pertania Bogor. Bogor. Brandl, H., B. Reinhard, M. Jorg, dan W. Erich. 1995. Degradation and Aplication of Polyhydroxyalkanoates. Can. J. Microbial. 41 (suppl. 1) : 143-153. Chakraborty, P., W. Gibbons, K. Muthukumarappan dan J. Javers., ‘Production of Polyhydroxyalkanoates from cellulosic feedstocks using Ralstonia eutropha ‘www.umanitoba.ca/faculties/ gricultural_and _food_sciences/biosystems_engineering/2004%20regional%20conferenc e/mb04-302.pdf [18 Maret 2006] Cowd, M. A. 1991. Kimia Polimer. Terjemahan Harry Firman. Penerbit ITB, Bandung. Cuq, B., N. Gontard., J.L Cuq., dan S. Guilbert. 1997. Selected functional properties of fish myofibrillar protein based films as affected by hydrophilic plasticizers. J.Agric. Food Chem. 45:622-626.

47

Damayanthy, D. 2003. Teknologi Proses Pembuatan dan Karakterisasi Biodegradable Plastik dari Bahan Campuran Polipropilena dan Tapioka. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB, Bogor. Delvia, V. 2006. Kajian Pengaruh Penambahan Dietilen Glikol sebagai Pemlastis pada Karakteristik Bioplastik dari Poli-β-hidroksialkanoat (PHA) yang Dihasilkan Ralstronia eutropha pada Substrat Hidrolisat Pati Sagu. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB, Bogor. Doi, Y. 1997. Polyhydroxyalkanoates. In: Domb, A.J., J. Kost., dan D. M. Wiseman (eds). In: Handbook of Biodegradable Polymers. Amsterdam Publisher, Amsterdam. Encyclopedia, ‘Chloroform’ www.encyclopedia.com [27 September 2006] Excelplas Australia . 2003. The impacts of degradable plastic bags in Australia Final Report to Department of The Environment and Heritage, Centre for Design sustainability reseacrh solution. Australia. Fardiaz, S. 1987. Fisiologi Fermentasi. Pusat Antar Universitas Pangan dan Gizi, Institut Pertanian Bogor, Bogor. Fardiaz, S. 1992. Mikrobiologi Pangan 1. Jakarta: Gramedia Pustaka Utama. Fiechter, A. 1990. Plastics from bacteria and for bacteria: Poly (βhidroxyalkanoates) as natural, biocompatible, and biodegradable polyesters, 77-93, Springer-Verleg, New York. Handayani, 2003. Biodegradasi Blending Polipropilena dengan Aditif Elevated Culfree Microorganism. Skripsi. Fakultas Matematika dan Ilmu Pengetahuan Alam, IPB, Bogor. Hasjim, M. 1999. Pemberdayaan Tanaman Sagu sebagai Penghasil Bahan Pangan Alternatif dan Bahan Baku Agroindustri yang Potensial dalam Rangka Ketahanan Pangan Nasional. Orasi Ilmiah. Fakultas Pertanian, IPB. Bogor. Hines, W. W. dan D. C. Montgomery. 1990. Probabilita dan Statistik dalam Ilmu Rekayasa dan Manajemen, edisi kedua. Rudiansyah (penerjemah). Universitas Indonesia Press, Jakarta. Jendrossek, D. dan R. Handrick. 2002. Microbial Degradation Polyhydroxyalkanoates. Annu. Rev. Microbiol. 2002. 56:403–32.

of

48

Juari. 2006. Teknologi Proses Pembuatan dan Karakterisasi Bioplastik dari Poly3-Hidroksialkanoat (PHA) yang Dihasilkan Oleh Ralstonia Eutropha Pada Sirup Glukosa Pati Sagu Dengan Penambahan Dimetil Pthalat (Dmp) Sebagai Pemlastis. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB, Bogor. Lafferty, R. M., B. Korsatko dan W. Korsatko. 1988. Microbial production of poly-β-hydroxybutyric acid. Di dalam Rehm, H.J., dan G. Reed (Eds). Biotechnology: A Comprehensive Treatise in 8 Volumes. Vol.6b. VCH Weinheim, Germany. Lee, S.Y. 1996. Bacterial Polyhdroxyalkanoates. Biotechnol. Bioeng. 49:1-14 Madison, L. L dan Huisman G. W. 1999. Metabolic engineering of poly(3hydroxyalkanoates): from DNA to plastic. Microbiology and Molecular Biology Review 63(1):21-53. March 1999. Merck. 1999. Chemical Reagents. Merck and Co., Inc. USA Mehandjyska, L. 1995. Microbial Analysis of Activated Slidge in Municipal Wastewater Treatment Plant at “Kremikovtzi” Holding. Journal of Culture Collections. 1 (suppl) : 18-22. Ojumu, T. V., Yu J., dan Solomon B. O, ‘Production of Polyhydroxyalkanoates, a Bacterial Biodegradable Polymers’ www.academicjournals.org/ JanPDFs2004/Ojumu%20et.pdf [18 Maret 2006] Parra, D.F., J.Fusaro, F. Gaboardi, dan D.S.Rossa. 2006. Influence of Poly (ethylene glycol) on The Thermal, Mechanical, Morphological, Physicalechemical and Biodegradation Properties of Poly (3Hydroxybutyrate). Polym Degrad Stab. 20:1-6. Pelczar, M. J. dan E. C. S. Chan. 1986. Dasar-dasar Mikrobiologi 1. Terjemahan Ratna S. H., Teja I., Sutarmi dan Sri L. Penerbit Universitas Indonesia Press, Jakarta. Punrattanasin, W. 2001. The Utilization of Activated Sludge Polyhydroxyalkanoates for the Production of Biodegradable Plastics. Disertasi. Faculty of the Virginia Polytechnic Institute and State University. Rais, D. 2007. Pengaruh Konsentrasi PEG 400 terhadap Karakteristik Bioplastik Polihidroksialkanoat (PHA) yang Dihasilkan Ralstronia eutropha Menggunakan Substrat Hidrolisat Pati Sagu. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, IPB, Bogor. Song, A. J., J. P. Park, S. J. Park, dan S. H. Lee, ‘Polyhydroxyalkanoates(PHAs)’ http/www.mbel.kaist.ac.kr /research/ phas. Htm [18 Maret 2006]

49

Suriawiria, U. 2003. Mikrobiologi Air. PT. Alumni, Bandung. Tokiwa, Y. dan B. P. Calabia. 2004. Degradation of Microbial Polyester. Biotechnology Letters. 2004. 26: 1181-1189. Wicaksono, B. W. D. 2005. Optimasi Produksi dan Karakterisasi Poly-βhydroxyalkanoates (PHA) Hasil Kultivasi Ralstonia eutropha Menggunakan Hidrolisat Minyak Sawit. Tesis. Bogor: Sekolah Pascasarjana IPB. Winarno, F. G. 1986. Enzim Pangan. PT. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. Winarno, F.G. 1997. Kimia Pangan dan Gizi. PT. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta. Wikipedia, ‘ Acetobacter’ www.en.wikipedia.org/Acetobacter. [26 Oktober 2006] York, G. M., J. L. J. Tian, A. G. Lawrence, J. Stubbe, dan A. J. Sinskey. 2003. Ralstonia eutropha H16 Encodes Two and Possibly Three Intracellular Poly[D-(-)-3-Hydroxybutyrate] Depolymerase Genes. Vol 185. Juli 2003. Zahra, N. 2003. Pengaruh Konsentrasi Dietil Glikol Terhadap Karakteristik Bioplastik dari Poli-3-Hidroksialkanoat (PHA) Yang Dihasilkan Oleh Ralstronia eutropha Dengan Substrat Hidrolisat Minyak Sawit. Skripsi. Fakultas Teknologi Pertanian, Institut Pertanian Bogor. Bogor.

50

Lampiran 1. Diagram Alir Kultivasi PHA (Modifikasi Ayorinde et al., 1998 oleh Atifah, 2006)

Kultur Ralstonia eutopha

Media Kultivasi

Sterilisasi (121oC, 15’)

Propagasi kultur dalam Nutrien broth steril

Inokulasi Ralstonia eutopha pada media kultivasi

Kultivasi (Suhu 34oC, agitasi 150 rpm, pH 7, aerasi 0,2 vvm, 96 jam, pengumpanan pada jam ke-48)

Cairan Kultivasi

51

Lampiran 2. Diagram Alir Proses Hilir (Modifikasi Van Wegen et al., 1998 dan Williamson dan Wilkinson, 1958 di dalam Lafferty et al.,1988)

Cairan Kultivasi

Sentrifugasi (Tahap 1) (13000 rpm, 10’)

Supernatan

Presipitat Aquadest Sentrifugasi (Tahap 2) (13000 rpm, 10’)

Supernatan

Presipitat Lar. NaOCl 2% Digest (60’)

Sentrifugasi (Tahap 3) (13000 rpm, 10’)

Supernatan

Presipitat Aquadest Sentrifugasi (Tahap 4) (13000 rpm, 10’)

Supernatan

A

52

Lampiran 2. Lanjutan Diagram Alir Proses Hilir (Modifikasi Van Wegen et al., 1998 dan Williamson dan Wilkinson, 1958 di dalam Lafferty et al.,1988) A

Presipitat Methanol Sentrifugasi (Tahap 5) (13000 rpm, 10’)

Supernatan

Presipitat

Pengeringan dengan oven (50oC, 24 jam)

Presipitat Kering

Ekstraksi dengan kloroform (Refluks, 24 jam, 50oC)

Penyaringan dengan Pompa Vakum (Whatman no.42)

Sel Debris dan Pengotor lainnya

PHA+Kloroform

Penguapan Kloroform (suhu ruang)

Uap Kloroform

PHA 53

Lampiran 3. Bagan Klasifikasi Plastik Degradabel (Brandl et al., 1995)

54

Lampiran 4. Diagram Alir Pengujian Biodegradasi Bioplastik (Modifikasi Andrady, 2000)

55

Lampiran 5. Diagram Alir Pengukuran Kadar CO2 (Anas, 1989)

56

Lampiran 6. Contoh Penghitungan Selama Proses Penelitian

1. Contoh penghitungan konsentrasi karbon dan nitrogen Diketahui : Konsentrasi total gula stok hidrolisat sagu = 281 g/L Persentase C pada sirup sagu

= 40%

Persentase N pada (NH4)2HPO4

= 21,21%

Rasio C/N media yang diinginkan

= 10:1

Pada basis media 9 liter {karena 1 liter (0,1 v/v) merupakan kultur}, untuk mencapai konsentrasi gula 30 g/l maka: hidrolisat sagu yang dibutuhkan = (30 g/l) / (281 g/l) x 9000 ml = 960,854 ml dimana [C] pada sirup sagu

= 40% x 30 g/l = 12 g/l

Agar C/N 10:1 maka [N]

= 1,2 g/l

Jadi, (NH4)2HPO4 yang dibutuhkan = (100/21,21) x 1,2 g/l = 5,6577 g/l 2. Contoh penghitungan konsentrasi sirup glukosa untuk pengumpanan Diketahui : Konsentrasi total gula stok hidrolisat sagu = 281 g/l Persentase C pada sirup sagu

= 40%

Pada basis media 9 liter (karena 1 liter diambil sebagai sempling sebelum pengumpanan), untuk mencapai konsentrasi gula stok 20 g/l maka: Gula stok yang dibutuhkan = (20 g/l) / (281 g/l) x 9000 ml = 640,5694 ml Jadi, jumlah gula stok yang diumpankan ke dalam bioreaktor adalah sebesar 640,57 ml

3. Contoh perhitungan lama waktu pengumpanan Diketahui : Laju pengumpanan

= 16,6 ml/menit (Atifah, 2006)

Lama waktu pengumpanan

= Jumlah gula stok yang diumpankan Laju pengumpanan = 640,57 ml : 16,6 ml/menit = 38,59 menit ~ 39 menit

57

Lampiran 7. Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA, PHA + DMF, PHA + DEG dan PHA + PEG Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

PHA (mg) 28,82 71,94 103,62 128,92 153,56 176 188,1 202,18 224,18 244,64 262,68 274,56 287,76 302,06 311,08 323,62 327,36 346,06 402,38 432,52

PHA + DEG (mg) 21,56 78,1 98,56 119,68 146,08 177,76 201,74 217,36 240,68 251,46 260,48 266,2 273,9 278,96 282,7 286,66 288,42 291,5 286,66 301,4

PHA + PEG (mg) 20,24 60,5 83,82 105,38 124,74 145,64 155,1 176,88 187,66 207,68 220,44 232,32 242,66 248,38 253,88 255,86 255,42 256,3 246,4 246,62

PHA + DMF (mg) 26,4 81,84 128,48 152,24 175,34 195,8 211,42 226,6 240,46 255,2 264,66 273,9 282,48 291,94 299,86 308 316,36 323,4 317,24 368,06

58

Lampiran 8. Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Piodegradasi Blanko Tanpa Polimer

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Meniskus awal (mL) 40,4 33,3 39,7 39,2 42,4 43,3 53 35,5 44,4 53,8 43,8 46,4 45,1 45,1 45,6 45,7 44 44,8 46,6 36,8

Ulangan 1 Meniskus akhir (mL) 47,9 38,7 48,7 49,1 49,5 49 56,4 41,1 47,5 56,4 46,4 49,6 47,7 47,2 48,1 47,8 46,2 47,5 48,4 46,5

Selisih (mL) 7,5 5,4 9 9,9 7,1 5,7 3,4 5,6 3,1 2,6 2,6 3,2 2,6 2,1 2,5 2,1 2,2 2,7 1,8 9,7

Meniskus awal (mL) 46,6 46 46,8 45,3 46,7 48,2 49 42,1 46 56 44,3 47,4 46,8 46,3 46,1 47,6 44,5 46,7 43,2 44,6

Ulangan 2 Meniskus akhir (mL) 48,6 48 49 47,4 48,8 49,5 53,9 43,3 47,2 56,4 45,8 49,3 47,4 47,5 47,8 48,8 47,4 47,6 48,4 47,2

Selisih (mL) 2 2 2,2 2,1 2,1 1,3 4,9 1,2 1,2 0,4 1,5 1,9 0,6 1,2 1,7 1,2 2,9 0,9 5,2 2,6

Rata-rata (mL) 4,75 3,7 5,6 6 4,6 3,5 4,15 3,4 2,15 1,5 2,05 2,55 1,6 1,65 2,1 1,65 2,55 1,8 3,5 6,15

59

Lampiran 9. Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Meniskus awal (mL) 37 31,3 27,8 28,6 36,5 43,1 46,7 46,3 38,6 48,8 43,6 44,1 43 42,3 43,5 45,2 44,3 43,2 44,2 32,5

Ulangan 1 Meniskus akhir (mL) 47,2 48,3 48,4 44,4 48,2 49,6 52,5 53,4 47,1 56 51,8 50 47,2 47,6 49 48,2 47,5 49,5 48,4 47,3

Selisih (mL) 10,2 17 20,6 15,8 11,7 6,5 5,8 7,1 8,5 7,2 8,2 5,9 4,2 5,3 5,5 3 3,2 6,3 4,2 14,8

Meniskus awal (mL) 37 38,6 44,2 42,3 40,2 38,7 42 46 41,5 51,2 43 43,4 42,8 42,6 46,8 41,8 43,7 42 20 35,7

Ulangan 2 Meniskus akhir (mL) 49,4 48,6 49,2 50 48,9 49,4 50 52,1 47,3 56,3 47,1 48 47,8 47,1 49,6 47,8 47,3 47,8 48,4 46,9

Selisih (mL) 12,4 10 5 7,7 8,7 10,7 8 6,1 5,8 5,1 4,1 4,6 5 4,5 2,8 6 3,6 5,8 28,4 11,2

Rata-rata (mL) 11,3 13,5 12,8 11,75 10,2 8,6 6,9 6,6 7,15 6,15 6,15 5,25 4,6 4,9 4,15 4,5 3,4 6,05 16,3 13

60

Lampiran 10. Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Ulangan 1 Meniskus Meniskus awal akhir (mL) (mL) 37,8 47 31,3 47 37,9 48,2 31,6 43,7 38 49 38,5 48,9 46,3 56,2 40,2 47,8 35,3 41,5 39,7 43,8 42,7 46,9 41,7 45,2 44,2 48,2 50,6 53,9 45,7 48,9 43,8 46,4 40,3 42,2 46,6 48,3 45,3 48,1 38,3 47

Selisih (mL) 9,2 15,7 10,3 12,1 11 10,4 9,9 7,6 6,2 4,1 4,2 3,5 4 3,3 3,2 2,6 1,9 1,7 2,8 8,7

Ulangan 2 Meniskus Meniskus awal akhir (mL) (mL) 38,8 48,9 31,1 48,5 38 48,2 38,5 48 38,5 48,7 38 49 47,6 56,9 37,1 43,4 39 47,7 52,5 56,3 42,8 46,8 45,5 49,7 45 47,7 39,3 41,6 46,4 49,1 45,7 48,2 43,1 47,1 45 48,3 46,3 48,3 36,3 46,6

Selisih (mL) 10,1 17,4 10,2 9,5 10,2 11 9,3 6,3 8,7 3,8 4 4,2 2,7 2,3 2,7 2,5 4 3,3 2 10,3

Rata-rata (mL) 9,65 16,55 10,25 10,8 10,6 10,7 9,6 6,95 7,45 3,95 4,1 3,85 3,35 2,8 2,95 2,55 2,95 2,5 2,4 9,5

61

Lampiran 11. Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Meniskus awal (mL) 37,5 35,5 37,3 41,8 42,5 43,4 52 39,7 43,8 53,5 43 44,3 44,1 43,4 44,3 45,2 42,2 44,6 46,4 28,6

Ulangan 1 Meniskus akhir (mL) 48,2 48,8 48,5 52,8 50,7 49,6 56,6 46,2 47,5 57,4 46,4 48,3 47,5 46,7 48,2 48,3 47 48 48,5 46,9

Selisih (mL) 10,7 13,3 11,2 11 8,2 6,2 4,6 6,5 3,7 3,9 3,4 4 3,4 3,3 3,9 3,1 4,8 3,4 2,1 18,3

Meniskus awal (mL) 32,3 29,4 27,6 37,2 37,4 39,6 45,3 41,1 41,6 50,9 42,3 45,2 44 43,1 44,2 44,3 42,6 44,7 45,9 30,5

Ulangan 2 Meniskus akhir (mL) 43,1 48,7 48,8 49 48,9 49,7 56,1 48,3 48,5 56,7 47,3 50,5 47,7 47,4 48,1 48,2 46,7 48,3 48,4 47,6

Selisih (mL) 10,8 19,3 21,2 11,8 11,5 10,1 10,8 7,2 6,9 5,8 5 5,3 3,7 4,3 3,9 3,9 4,1 3,6 2,5 17,1

Rata-rata (mL) 10,75 16,3 16,2 11,4 9,85 8,15 7,7 6,85 5,3 4,85 4,2 4,65 3,55 3,8 3,9 3,5 4,45 3,5 2,3 17,7

62

Lampiran 12. Rekapitulasi Pengukuran CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Meniskus awal (mL) 39,2 32,1 38,9 38 46,3 44,8 41,8 27,3 43,6 51,1 42,1 41,8 44 44,3 46,5 45,6 44,1 46,1 47,2 41

Ulangan 1 Meniskus akhir (mL) 47,9 48,5 48,7 49,2 56,2 51 50,7 34,5 47,5 57 47,1 47,7 47,6 47,7 49,7 47,9 46,9 48,2 48,6 47,7

Selisih (mL) 8,7 16,4 9,8 11,2 9,9 6,2 8,9 7,2 3,9 5,9 5 5,9 3,6 3,4 3,2 2,3 2,8 2,1 1,4 6,7

Meniskus awal (mL) 37,2 44,3 36,6 40,5 41 39 44,8 38,6 34,5 50,5 41,7 44,3 44 44,9 44,1 44,1 45,7 46,4 47,4 41,6

Ulangan 2 Meniskus akhir (mL) 47,2 53,6 48,6 51,1 49,1 49,3 48,5 48,1 39,8 56,7 46,6 48,9 48,3 47,4 47,6 46 47,8 48,3 48,5 47,3

Selisih (mL) 10 9,3 12 10,6 8,1 10,3 3,7 9,5 5,3 6,2 4,9 4,6 4,3 2,5 3,5 1,9 2,1 1,9 1,1 5,7

Rata-rata (mL) 9,35 12,85 10,9 10,9 9 8,25 6,3 8,35 4,6 6,05 4,95 5,25 3,95 2,95 3,35 2,1 2,45 2 1,25 6,2

63

Lampiran 13. Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

PHA (mL) A 11,3 13,5 12,8 11,75 10,2 8,6 6,9 6,6 7,15 6,15 6,15 5,25 4,6 4,9 4,15 4,5 3,4 6,05 16,3 13

Blanko (mL) B 4,75 3,7 5,6 6 4,6 3,5 4,15 3,4 2,15 1,5 2,05 2,55 1,6 1,65 2,1 1,65 2,55 1,8 3,5 6,15

A-B (mL) 6,55 9,8 7,2 5,75 5,6 5,1 2,75 3,2 5 4,65 4,1 2,7 3 3,25 2,05 2,85 0,85 4,25 12,8 6,85

CO2 (mg) (A-B)*4,4 28,82 43,12 31,68 25,3 24,64 22,44 12,1 14,08 22 20,46 18,04 11,88 13,2 14,3 9,02 12,54 3,74 18,7 56,32 30,14

Akumulasi CO2 (mg) 28,82 71,94 103,62 128,92 153,56 176 188,1 202,18 224,18 244,64 262,68 274,56 287,76 302,06 311,08 323,62 327,36 346,06 402,38 432,52

64

Lampiran 14. Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

PHA + DEG (mL) A 9,65 16,55 10,25 10,8 10,6 10,7 9,6 6,95 7,45 3,95 4,1 3,85 3,35 2,8 2,95 2,55 2,95 2,5 2,4 9,5

Blanko (mL) B 4,75 3,7 5,6 6 4,6 3,5 4,15 3,4 2,15 1,5 2,05 2,55 1,6 1,65 2,1 1,65 2,55 1,8 3,5 6,15

A-B (mL) 4,9 12,85 4,65 4,8 6 7,2 5,45 3,55 5,3 2,45 2,05 1,3 1,75 1,15 0,85 0,9 0,4 0,7 -1,1 3,35

CO2 (mg) (A-B)*4,4 21,56 56,54 20,46 21,12 26,4 31,68 23,98 15,62 23,32 10,78 9,02 5,72 7,7 5,06 3,74 3,96 1,76 3,08 -4,84 14,74

Akumulasi CO2 (mg) 21,56 78,1 98,56 119,68 146,08 177,76 201,74 217,36 240,68 251,46 260,48 266,2 273,9 278,96 282,7 286,66 288,42 291,5 286,66 301,4

65

Lampiran 15. Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

PHA + DMF (mL) A 10,75 16,3 16,2 11,4 9,85 8,15 7,7 6,85 5,3 4,85 4,2 4,65 3,55 3,8 3,9 3,5 4,45 3,4 2,1 17,7

Blanko (mL) B 4,75 3,7 5,6 6 4,6 3,5 4,15 3,4 2,15 1,5 2,05 2,55 1,6 1,65 2,1 1,65 2,55 1,8 3,5 6,15

A-B (mL) 6 12,6 10,6 5,4 5,25 4,65 3,55 3,45 3,15 3,35 2,15 2,1 1,95 2,15 1,8 1,85 1,9 1,6 -1,4 11,55

CO2 (mg) (A-B)*4,4 26,4 55,44 46,64 23,76 23,1 20,46 15,62 15,18 13,86 14,74 9,46 9,24 8,58 9,46 7,92 8,14 8,36 7,04 -6,16 50,82

Akumulasi CO2 (mg) 26,4 81,84 128,48 152,24 175,34 195,8 211,42 226,6 240,46 255,2 264,66 273,9 282,48 291,94 299,86 308 316,36 323,4 317,24 368,06

66

Lampiran 16. Rekapitulasi Data Akumulasi CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG

Hari ke2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

PHA + PEG (mL) A 9,35 12,85 10,9 10,9 9 8,25 6,3 8,35 4,6 6,05 4,95 5,25 3,95 2,95 3,35 2,1 2,45 2 1,25 6,2

Blanko (mL) B 4,75 3,7 5,6 6 4,6 3,5 4,15 3,4 2,15 1,5 2,05 2,55 1,6 1,65 2,1 1,65 2,55 1,8 3,5 6,15

A-B (mL) 4,6 9,15 5,3 4,9 4,4 4,75 2,15 4,95 2,45 4,55 2,9 2,7 2,35 1,3 1,25 0,45 -0,1 0,2 -2,25 0,05

CO2 (mg) (A-B)*4,4 20,24 40,26 23,32 21,56 19,36 20,9 9,46 21,78 10,78 20,02 12,76 11,88 10,34 5,72 5,5 1,98 -0,44 0,88 -9,9 0,22

Akumulasi CO2 (mg) 20,24 60,5 83,82 105,38 124,74 145,64 155,1 176,88 187,66 207,68 220,44 232,32 242,66 248,38 253,88 255,86 255,42 256,3 246,4 246,62

67

68

68

Lampiran 17. Hasil Pengukuran pH Media Degradasi

Hari ke0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22 24 26 28 30 32 34 36 38 50

Ulangan 1 3,24 3,85 4,69 7,07 7,13 7,54 7,47 7,62 7,03 7,33 7,24 7,27 7,33 7,26 7,35 7,38 6,68 7,23 7,11 7,01 5,24

PHA Ulangan 2 3,24 3,84 4,52 6,57 6,55 6,99 7,2 7,48 7,31 7,48 7,41 7,49 7,55 7,97 7,26 6,96 7,25 6,28 6,69 6,9 6,73

Rata-rata 3,24 3,845 4,605 6,82 6,84 7,265 7,335 7,55 7,17 7,405 7,325 7,38 7,44 7,615 7,305 7,17 6,965 6,755 6,9 6,955 5,985

Ulangan 1 3,24 3,95 4,64 4,64 4,64 6,51 7,02 7,18 6,97 7,39 7,38 8,41 8,86 8,71 8,74 8,7 8,79 8,74 8,54 8,29 8,63

PHA + DEG Ulangan 2 Rata-rata 3,24 3,24 3,87 3,91 4,56 4,6 4,56 4,6 4,56 4,6 6,19 6,35 6,75 6,885 7,18 7,18 7,16 7,065 7,27 7,33 7,6 7,49 7,59 8 7,77 8,315 7,81 8,26 7,98 8,36 8 8,35 8,06 8,425 8,06 8,4 7,99 8,265 8,22 8,255 8,12 8,375

Ulangan 1 3,24 3,96 4,47 6,6 6,81 7,17 7,47 7,29 7,79 7,97 7,91 7,89 7,94 7,88 7,92 7,97 7,96 7,93 8 7,98 7,81

PHA + DMF Ulangan 2 Rata-rata 3,24 3,24 3,91 3,935 4,32 4,395 6,77 6,685 6,74 6,775 7,05 7,11 7,3 7,385 7,8 7,545 7,69 7,74 7,8 7,885 7,83 7,87 7,85 7,87 7,99 7,965 7,83 7,855 7,92 7,92 7,96 7,965 7,92 7,94 7,9 7,915 7,94 7,97 7,94 7,96 7,66 7,735

Ulangan 1 3,24 3,81 4,64 6,57 7,11 6,93 6,96 7,04 7,13 7,61 7,26 7,58 7,47 7,53 7,93 7,75 8,06 8,04 8,11 7,79 8,12

PHA + PEG Ulangan 2 Rata-rata 3,24 3,24 3,83 3,82 6,3 5,47 6,62 6,595 6,47 6,79 6,93 6,93 7,41 7,185 7,55 7,295 7,61 7,37 7,6 7,605 7,76 7,51 7,95 7,765 8,59 8,03 8,14 7,835 8,1 8,015 8,45 8,1 7,96 8,01 7,81 7,925 7,59 7,85 7,56 7,675 7,47 7,795

Lampiran 18. Hasil Pengukuran Persen Penurunan Bobot Bioplastik

Berikut ini adalah contoh perhitungan persen bobot bioplastik yang hilang. % Bobot =

Bobot awal bioplastik − Bobot akhir bioplastik x 100% Bobot awal bioplastik

Contoh perhitungan: % Bobot =

0,10 gram − 0,0111 gram x 100% 0,10 gram

% Bobot = 88,90% Bobot awal (gram) Bioplastik PHA PHA+ DMF PHA + PEG PHA + DEG

Ulangan 1 0,1 0,1 0,1 0,1

Ulangan 2 0,1 0,1 0,1 0,1

Bobot akhir (gram) Ulangan 1 0,0113 0,0334 0,0606 0,0486

Ulangan 2 0,0109 0,0254 0,0552 0,0168

Rata-rata (gram) 0,0111 0,0294 0,0579 0,0327

% Penurunan Bobot ratarata 88,9 70,60 42,1 67,30

69

Lampiran 19. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Dependent variable.. CO2

Method.. LINEAR

Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,98244 R Square ,96520 Adjusted R Square ,96326 Standard Error 20,71505 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 214213,47 214213,47 Residuals 18 7724,04 429,11 F = 499,20023 Signif F = ,0000

Dependent variable.. CO2

Method.. LOGARITH

Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,96702 R Square ,93513 Adjusted R Square ,93153 Standard Error 28,28127 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 207540,57 207540,57 Residuals 18 14396,95 799,83 F = 259,48074 Signif F = ,0000

Dependent variable.. CO2 Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,99378 R Square ,98761 Adjusted R Square ,98615 Standard Error 12,72042 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 219186,76 109593,38 Residuals 17 2750,76 161,81 F = 677,30005 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,86349

70

Lampiran 19. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

R Square ,74561 Adjusted R Square ,73148 Standard Error ,33791 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 6,0239161 6,0239161 Residuals 18 2,0552442 ,1141802 F= 52,75796 Signif F = ,0000

CO2 800

600

400

Observed

200

Linear Logarithmic

0

Quadratic Exponential

-200 0

10

20

30

40

50

60

HARI

71

Lampiran 20. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Dependent variable.. CO2 Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,89135 R Square ,79451 Adjusted R Square ,78309 Standard Error 38,91933 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 105414,19 105414,19 Residuals 18 27264,85 1514,71 F= 69,59347 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,98618 R Square ,97254 Adjusted R Square ,97102 Standard Error 14,22587 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 129036,29 129036,29 Residuals 18 3642,76 202,38 F = 637,60850 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,98904 R Square ,97819 Adjusted R Square ,97563 Standard Error 13,04535 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 129785,96 64892,982 Residuals 17 2893,08 170,181 F = 381,31714 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,75850 R Square ,57532 Adjusted R Square ,55173 Standard Error ,43338

72

Lampiran 20. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 4,5798284 4,5798284 Residuals 18 3,3806616 ,1878145 F= 24,38485 Signif F = ,0001

CO2 600

500

400

300 Observed 200

Linear Logarithmic

100 Quadratic 0

Exponential 0

10

20

30

40

50

60

HARI

73

Lampiran 21. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Dependent variable.. CO2

Method.. LINEAR

Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,93959 R Square ,88284 Adjusted R Square ,87633 Standard Error 30,99350 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 130286,23 130286,23 Residuals 18 17290,75 960,60 F = 135,63044 Signif F = ,0000

Dependent variable.. CO2 Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,99739 R Square ,99478 Adjusted R Square ,99449 Standard Error 6,54183 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 146806,66 146806,66 Residuals 18 770,32 42,80 F = 3430,42376 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,98491 R Square ,97005 Adjusted R Square ,96652 Standard Error 16,12481 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 143156,82 71578,411 Residuals 17 4420,16 260,009 F = 275,29157 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,77854 R Square ,60613

Method.. EXPONENT

74

Lampiran 21. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Adjusted R Square ,58425 Standard Error ,39322 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 4,2831717 4,2831717 Residuals 18 2,7832552 ,1546253 F= 27,70033 Signif F = ,0001

CO2 700

600

500

400

300

Observed Linear

200

Logarithmic 100

Quadratic Exponential

0 0

10

20

30

40

50

60

HARI

75

Lampiran 22. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Dependent variable.. CO2 Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,89400 R Square ,79924 Adjusted R Square ,78809 Standard Error 34,06809 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 83171,832 83171,832 Residuals 18 20891,420 1160,634 F= 71,66066 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,97879 R Square ,95803 Adjusted R Square ,95569 Standard Error 15,57779 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 99695,239 99695,239 Residuals 18 4368,013 242,667 F = 410,83078 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,99652 R Square ,99306 Adjusted R Square ,99224 Standard Error 6,51782 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 103341,06 51670,529 Residuals 17 722,19 42,482 F = 1216,29291 Signif F = ,0000 Dependent variable.. CO2 Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,78011 R Square ,60856 Adjusted R Square ,58682 Standard Error ,41289

76

Lampiran 22. Persamaan Regresi Kurva Akumulasi Produksi CO2 pada Biodegradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 4,7707578 4,7707578 Residuals 18 3,0686100 ,1704783 F= 27,98454 Signif F = ,0000

CO2 500

400

300

200 Observed 100

Linear Logarithmic

0 Quadratic -100

Exponential 0

10

20

30

40

50

60

HARI

77

Lampiran 23. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Independent Variable: HARI Minimum value: ,00 The independent variable contains non-positive values. Models LOGARITHMIC and POWER cannot be calculated.

Dependent variable.. PH Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,43120 R Square ,18593 Adjusted R Square ,14309 Standard Error 1,13732 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 5,613344 5,6133435 Residuals 19 24,576652 1,2935080 F= 4,33963 Signif F = ,0510 Dependent variable.. PH Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Notes: 12 Independent variable has non-positive values. Dependent variable.. PH Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,85193 R Square ,72579 Adjusted R Square ,69532 Standard Error ,67817 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 21,911551 10,955776 Residuals 18 8,278444 ,459914 F= 23,82138 Signif F = ,0000 Dependent variable.. PH Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,46184 R Square ,21330 Adjusted R Square ,17189 Standard Error ,21129 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 ,22996890 ,22996890

78

Lampiran 23. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Residuals 19 F= 5,15138

,84820146 ,04464218 Signif F = ,0351

Notes: 12 Independent variable has non-positive values.

PH 9

8

7

6

5

Observed Linear

4 Quadratic 3

Exponential

-10

0

10

20

30

40

50

60

HARI

79

Lampiran 24. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Independent Variable: HARI Minimum value: ,00 The independent variable contains non-positive values. Models LOGARITHMIC and POWER cannot be calculated.

Dependent variable.. PH Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,86664 R Square ,75106 Adjusted R Square ,73796 Standard Error ,87777 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 44,166765 44,166765 Residuals 19 14,639280 ,770488 F= 57,32307 Signif F = ,0000 Dependent variable.. PH Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Notes: 12 Independent variable has non-positive values. Dependent variable.. PH Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,97876 R Square ,95798 Adjusted R Square ,95331 Standard Error ,37051 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 56,335024 28,167512 Residuals 18 2,471021 ,137279 F = 205,18452 Signif F = ,0000 Dependent variable.. PH Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,83414 R Square ,69579 Adjusted R Square ,67978 Standard Error ,16663

80

Lampiran 24. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + DEG, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 1,2066208 1,2066208 Residuals 19 ,5275567 ,0277661 F= 43,45655 Signif F = ,0000 Notes: 12 Independent variable has non-positive values.

PH 12

10

8

6 Observed Linear

4

Quadratic Exponential

2 -10

0

10

20

30

40

50

60

HARI

81

Lampiran 25. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Independent Variable: HARI Minimum value: ,00 The independent variable contains non-positive values. Models LOGARITHMIC and POWER cannot be calculated.

Dependent variable.. PH Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,71150 R Square ,50623 Adjusted R Square ,48024 Standard Error 1,03219 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 20,753339 20,753339 Residuals 19 20,242828 1,065412 F= 19,47917 Signif F = ,0003 Dependent variable.. PH Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Notes: 12 Independent variable has non-positive values. Dependent variable.. PH Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,91416 R Square ,83569 Adjusted R Square ,81743 Standard Error ,61175 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 34,259972 17,129986 Residuals 18 6,736194 ,374233 F= 45,77358 Signif F = ,0000 Dependent variable.. PH Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,67923 R Square ,46135 Adjusted R Square ,43301 Standard Error ,19490

82

Lampiran 25. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + DMF, Hasil Metode curve fitting (Lanjuatan)

Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 ,61819605 ,61819605 Residuals 19 ,72176163 ,03798745 F= 16,27369 Signif F = ,0007 Notes: 12 Independent variable has non-positive values.

PH 11 10 9 8 7 6 Observed 5

Linear

4

Quadratic Exponential

3 -10

0

10

20

30

40

50

60

HARI

83

Lampiran 26. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting

Curve Fit Independent Variable: HARI Minimum value: ,00 The independent variable contains non-positive values. Models LOGARITHMIC and POWER cannot be calculated.

Dependent variable.. PH Method.. LINEAR Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,73639 R Square ,54227 Adjusted R Square ,51818 Standard Error ,92871 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 19,414139 19,414139 Residuals 19 16,387507 ,862500 F= 22,50914 Signif F = ,0001 Dependent variable.. PH Method.. LOGARITH Listwise Deletion of Missing Data Notes: 12 Independent variable has non-positive values. Dependent variable.. PH Method.. QUADRATI Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,92028 R Square ,84692 Adjusted R Square ,82991 Standard Error ,55179 Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 2 30,321205 15,160602 Residuals 18 5,480440 ,304469 F= 49,79360 Signif F = ,0000 Dependent variable.. PH Method.. EXPONENT Listwise Deletion of Missing Data Multiple R ,68869 R Square ,47429 Adjusted R Square ,44662 Standard Error ,18133

84

Lampiran 26. Persamaan Regresi Kurva Perubahan pH Media Degradasi PHA + PEG, Hasil Metode curve fitting (Lanjutan)

Analysis of Variance: DF Sum of Squares Mean Square Regression 1 ,56364657 ,56364657 Residuals 19 ,62474642 ,03288139 F= 17,14181 Signif F = ,0006 Notes: 12 Independent variable has non-positive values.

PH 11 10 9 8 7 6 Observed 5

Linear

4

Quadratic Exponential

3 -10

0

10

20

30

40

50

60

HARI

85