PEDOMAN PENGUMPULAN DATA RESERVOIR (KELELAWAR) DI LAPANGAN

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan

PEDOMAN PENGUMPULAN DATA RESERVOIR (KELELAWAR) DI LAPANGAN RISET KHUSUS VEKTOR DAN RESERVOIR PENYAKIT

Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan Kementerian Kesehatan R.I. 2015 i


ISBN 978-602-373-011-7 Pedoman Pengumpulan Data Reserrvoir (kelelawar) di Lapangan Ukuran 210 x 297 mm, 177 hal

Cetakan Pertama: 2015 Hak Cipta dilindungi Undang Undang Diterbitkan oleh: Lembaga Penerbit Badan Penelitan dan Pengembangan Kesehatan Kementerian Kesehatan RI Anggota IKAPI No. 468/DKXI/2013 Jl. Percetakan Negara No. 29, Jakarta 10560 Kotak Pos 1226 Telp: 021 4261008 ext. 223; Fax. 021 4243933 Email: [email protected]; Website: www.litbang.depkes.go.id

Didistribusikan oleh: Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan Copyright @ 2015 pada Lembaga Penerbit Balitbangkes, Jakarta Sanksi Pelanggaran Undang Undang Hak Cipta 2002 1. Barang siapa dengan sengaja mengumumkan atau memperbanyak suatu ciptaan atau memberi izin untuk itu dipidana dengan pidana penjara paling lama 7 (tujuh) tahun dan atau denda paling banyak Rp. 100.000.000,00 (seratus juta rupiah) 2. Barang siapa dengan sengaja menyiarkan, memamerkan, menedarkan atau menjual kepada umum suatu ciptaan atau barang hasil pelanggaran Hak Cipta sebagaimana dimaksud dalam ayat 1 (satu) dipidana paling lama 5 (lima) tahun dan atau denda paling banyak RP. 50.000.000,00 (lima puluh juta rupiah)

ii


TIM PENYUSUN Pengarah: Kepala Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan Penanggung jawab: Kepala Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit Tim Teknis Reservoir: Dr. Ristiyanto, M.Kes Prof.dr. Tjandra Yoga Aditama, Sp.P(K), MARS, DTM&H, DTCE DR. Vivi Lisdawati, M. Si, A.pt Arief Mulyono, S.Si, M.Sc Farida Dwi Handayani, S.Si, MS. drh. Tika Fiona Sari, M.Sc drh. Dimas Bagus Wicaksono Putro drh. Ayu Pradipta Pratiwi drh.Aryo Ardanto Arum Sih Joharina, S.Si Esti Rahardianingtyas, S.Si Bernadus Yuliadi Muhidin, SKM Ika Martiningsih, S.Pd Siska Indriyani Nurhidayati Aprilia Safitri Restu Khoirul S

Kontributor: Ir. Maharadatun Kamsi, M.Sc (LIPI) Sigit Wiantoro, S.Si, M.Sc (LIPI) drh. Indrawati Sendow, M.Sc (Balitvet Bogor) Dr. drh. Joko Pamungkas, M.Sc (IPB)

iii


iv


KATA PENGANTAR Riset khusus vektor dan reservoir penyakit (Rikhus Vektora) merupakan bagian dari Riset Kesehatan Nasional (Riskesnas) dengan tujuan untuk pemutakhiran data dasar vektor dan reservoir penyakit sebagai dasar pengendalian penyakit tular vektor dan reservoir, baik yang baru ataupun muncul kembali, di Indonesia. Langkah utama penelitian adalah pengumpulan data dan spesimen di lapangan secara teliti, akurat, valid dan reliabel, serta pengelolaan spesimen koleksi dengan standar baku. Pengumpulan spesimen vektor dan reservoir penyakit merupakan representasi dari jenis vektor dan reservoir penyakit yang terdapat di wilayah Indonesia. Diharapkan data spesimen hasil riset dapat berguna untuk pemutakhiran kajian taksonomi, zoogeografi, evolusi dan filogenetik, serta ekologi dan genetiknya. Selain itu dapat pula digunakan untuk memahami biologi serangga vektor dan hewan reservoir penyakit yang bermanfaat dalam pencegahan penularan penyakit bersumber binatang (zoonosis). Oleh karena itu diperlukan buku pedoman kerja untuk memberikan gambaran tentang teknik pelaksanaan pengumpulan data dan spesimen vektor dan reservoir penyakit di lapangan. Dalam rangka pelaksanaan Rikhus Vektora, maka telah disusun buku pedoman teknis untuk koleksi data dan spesimen vektor dan reservoir di lapangan. Pedoman ini dimaksudkan untuk dapat digunakan oleh para tenaga pengumpul data agar memperoleh hasil sesuai yang diharapkan. Buku pedoman bertujuan agar pengumpulan data serta spesimen vektor dan reservoir penyakit dilakukan secara baik dan benar sesuai standar baku sehingga dapat menjadi informasi yang bermanfaat dan dapat dipertanggungjawwabkan secara ilmiah.

v


vi


DAFTAR ISI tim Penyusun ............................................................................................................................... III Kata Pengantar ............................................................................................................................ V Daftar Isi ..................................................................................................................................... VII Daftar Tabel .............................................................................................................................. VIII Daftar Gambar ............................................................................................................................ IX Daftar Lampiran .......................................................................................................................... XI Bab I.

Pendahuluan ................................................................................................................ 1

Bab II.

Pengorganisasian Lapangan ........................................................................................ 5

Bab IV,

Panduan Penggunaan Gps (Global Positioning System) .......................................... 13

Bab V.

Pengumpulan Data Reservoir (Kelelawar) ................................................................. 27

Bab VI.

Pengenalan Alat Dan Bahan ...................................................................................... 30

Bab VII.

Laboratorium Lapangan ............................................................................................. 48

Bab VIII. Keselamatan Hayati ................................................................................................... 52 Bab IX.

Prosedur Penangkapan Kelelawar ............................................................................. 57

Bab X.

Prosedur Pengukuran Parameter Lingkungan ........................................................... 68

Bab XI.

Prosedur Anestesi Kelelawar ..................................................................................... 70

Bab XII.

Prosedur Koleksi Ektoparasit ..................................................................................... 74

Bab XIII. Prosedur Dokumentasi Sampel ................................................................................. 76 Bab XIV. Prosedur Identifikasi Kelelawar ................................................................................. 80 Bab XV.

Prosedur Swab Trakhea ............................................................................................ 86

Bab XVI. Prosedur Pengambilan Punch Sayap ........................................................................ 88 Bab XVII. Prosedur Pelepasan Kelelawar ................................................................................. 90 Bab XVIII. Prosedur Koleksi Darah Dan Serum Kelelawar ......................................................... 92 Bab XIX. Prosedur Pembuatan Awetan Basah .......................................................................... 96 Bab XX. Prosedur Penanganan Limbah ................................................................................... 87 Bab XXI. Prosedur Pengepakan Dan Pengiriman Spesimen .................................................... 91 Bab XXII. Pedoman Pengisian Formulir ..................................................................................... 99 Daftar Pustaka .......................................................................................................................... 121

vii


DAFTAR TABEL

Tabel 1. Rangkuman kegiatan pengumpulan data kelelawar ........................................ 27 Tabel 2. Alat dan bahan pengumpulan data kelelawar ................................................. 29 Tabel 3.. Pengelompokan paket rikhus reservoir kelelawar ........................................ 111

viii


DAFTAR GAMBAR

Gambar 1

Kelengkapan perangkat GPS ................... Error! Bookmark not defined.

Gambar 2.

Bagian : GPS............................................ Error! Bookmark not defined.

Gambar 3:

Jenis baterai. ............................................ Error! Bookmark not defined.

Gambar 4: Bagian penutup baterai. ............................ Error! Bookmark not defined. Gambar 5: Bagian penutup baterai ............................. Error! Bookmark not defined. Gambar 6: Pengoperasian GPS.................................. Error! Bookmark not defined. Gambar 7: Pengaturan GPS ....................................... Error! Bookmark not defined. Gambar 8: Pengoperasian pengaturan GPS............... Error! Bookmark not defined. Gambar 9:

Deteksi sinyal satelit ................................. Error! Bookmark not defined.

Gambar 10: Menyimpan koordinat dan dokumentasi foto pada GPS . Error! Bookmark not defined. Gambar 11: Form TK.02. .............................................. Error! Bookmark not defined. Gambar 12: Tampilan software basecamp. .................. Error! Bookmark not defined. Gambar 13: Tampilan menu receive from device.......... Error! Bookmark not defined. Gambar 14: Tampilan select device montera. ............... Error! Bookmark not defined. Gambar 15: Tampilan titik koordinat GPS di basecamp. Error! Bookmark not defined. Gambar 16: Tampilan export data di basecamp. .......... Error! Bookmark not defined. Gambar 17: Tampilan penyimpanan data GPS............. Error! Bookmark not defined. Gambar 18. Alur Pengumpulan Data Reservoir .......................................................... 28 Gambar 19. Persiapan laboratorium lapangan............................................................ 49 Gambar 20 . Bagan penataan nampan di meja pada laboratorium lapangan untuk pemrosesan kelelawar ........................................................................... 50 Gambar 21. Cara menutup syringe yang telah digunakan ......................................... 53 Gambar 22. Cara memasang mist net dengan tiang bambu ....................................... 60 Gambar 23. Cara memasang mist net pada pohon disekitar lintasan kelelawar ......... 61 Gambar 24. Cara memasang perangkap harpa (harp trap) ........................................ 62 Gambar 25. Pelepasan Kelelawar dari Jaring Kabut................................................... 64 ix


Gambar 26. Cara melepas mist net ............................................................................ 65 Gambar 27. Tea ball (A) dan kelelawar microcheroptera dalam kantong zipper (B) .. 71 Gambar 28. Pembiusan kelelawar dengan ketamine dan xylazine ............................. 72 Gambar 29. Koleksi ektoparasit pada kelelawar ......................................................... 75 Gambar 30 Dokumentasi foto bagian bagian kelelawar .............................................. 77 Gambar 31. Dokumentasi habitat kelelawar ............................................................... 78 Gambar 32. Morfologi microchiroptera ........................................................................ 80 Gambar 33 Morfologi megachiroptera ........................................................................ 81 Gambar 34. Morfologi ekor hidung dan telinga microchiroptera .................................. 82 Gambar 35. Pengambilan Swab Trakea 11 .................................................................. 87 Gambar 36. Pengambilan Wing Punch ....................................................................... 89 Gambar 37. Pelepasan kelelawar ............................................................................... 91 Gambar 38. Pengambilan darah pada kelelawar dengan berat badan > 100 gram .... 94 Gambar 39. Pengambilan darah pada kelelawar terpilih sebagai awetan basah (intracardial). .......................................................................................... 95 Gambar 40. Pelabelan spesimen awetan basah ......................................................... 85 Gambar 41. Kantong plastik hitam, biohazard bag, dan sharp safety box ............ Error! Bookmark not defined. Gambar 42. Contoh penanganan limbah benda tajam.. Error! Bookmark not defined.

x


DAFTAR LAMPIRAN

Lampiran1. . Form Ekositem ...................................................................................... 123 Lampiran 2. Form Koordinat GPS Perangkap ........................................................... 124 Lampiran 3. Form Lokasi Penangkapan Kelelawar ................................................... 125 Lampiran 4. Form Koleksi Kelelawar ......................................................................... 127 Lampiran 5. Form Pengiriman Spesimen .................................................................. 129 Lampiran 6. Form Check list Kegiatan ...................................................................... 130 Lampiran 7. Form Check list Alat dan Bahan ............................................................ 131 Lampiran 8. Form Berita cara Serah Terima Limbah ................................................ 135 Lampiran 9. Form Berita Acara Pemusnahan Limbah............................................... 136 Lampiran 10. Berita Acara Serah Terima Spesimen ................................................... 137 Lampiran 11. Form Spesimen ..................................................................................... 138 Lampiran 12. Kunci Identifikasi Kelelawar……………………………………………….. 151

xi


xii


BAB I. PENDAHULUAN Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit (Rikhus Vektora) merupakan salah satu riset nasional yang diselenggarakan oleh Badan Penelitian dan Pengembangan Kementerian Kesehatan dengan tanggung jawab pelaksana oleh Unit Pelaksana Teknis (UPT) Badan Litbangkes di Salatiga, yaitu Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit (B2P2VRP). Rikhus Vektora adalah suatu kegiatan riset yang diarahkan untuk mengetahui gambaran vektor dan reservoir penyakit, termasuk di dalamnya adalah data nyamuk, tikus dan kelelawar dengan menggunakan hasil observasi bionomik, uji identifikasi dan pemeriksaan laboratorium. 1. Latar belakang: a. Ancaman risiko penyakit tular vektor dan reservoir secara global dan nasional sangat tinggi; b. Data bio-diversitas fauna di Indonesia yang kompleks akibat kondisi bio-geografis (pertemuan wilayah Oriental dan Australia) belum terbaharukan dengan baik; c. Data penelitian terkait vektor dan reservoir penyakit belum terwakili secara nasional; d. Data model penanggulangan secara lokal spesifik belum lengkap Rikhus Vektora dilaksanakan di sejumlah wilayah kabupaten/kota di Indonesia secara berkesinambungan yang dirancang untuk dilaksanakan selama tiga tahun, mulai tahun 2015 sampai dengan 2018. 2. Tujuan Umum riset khusus vektor dan reservoir penyakit adalah: melakukan pemuktahiran data vektor dan reservoir penyakit secara nasional sebagai dasar pengendalian penyakit tular vektor dan reservoir (baik jenis penyakit infeksi baru maupun yang muncul kembali) di Indonesia 3. Tujuan khusus riset adalah: a. Inkriminasi (penentuan vektor) dan konfirmasi spesies vektor dan reservoir penyakit; b. Memperoleh peta sebaran vektor dan reservoir penyakit;

1

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan c. Mencari kemungkinan munculnya vektor dan reservoir penyakit baru/belum terlaporkan yang berasal dari hasil koleksi sampel nyamuk, tikus dan kelelawar; d. Mencari kemungkinan munculnya patogen penyakit tular vektor dan reservoir baru/belum terlaporkan; e. Mengembangkan spesimen koleksi referensi vektor dan reservoir penyakit; f.

Memperoleh data sekunder penanggulangan penyakit tular vektor dan reservoir berbasis ekosistem

4. Manfaat riset adalah : a. Bagi para pemangku kebijakan, dapat memanfaatkan dan menggunakan data yang diperoleh sebagai dasar perencanaan dan evaluasi program pengendalian penyakit tular vektor dan reservoir (zoonosis) di Indonesia; b. Bagi masyarakat, dapat memanfaatkan dan menggunakan data yang diperoleh sebagai dasar pemahaman tentang vektor dan reservoir penyakit serta meningkatkan peran sertanya pada kegiatan penanggulangan/pengendalian di lingkungan; c. Bagi kalangan ilmiah, dapat memanfaatkan dan menggunakan data koleksi spesimen (sampel tersimpan maupun informasi biodiversitas terbaharukan), sebagai dasar penelitian dan pengembangan berbagai produk inovasi (misal: kit diagnostik, vaksin dan obat) terkait penanggulangan penyakit tular vektor dan reservoir (penyakit infeksi baru maupun yang muncul kembali) di Indonesia. 5. Prinsip Rikhus Vektora: a. Merupakan survei bertaraf nasional b. Menggunakan unit pengumpulan data berupa ekosistem per provinsi c. Mencakup data spesies dan patogen untuk penyakit tular vektor dan reservoir (baik yang lama maupun yang baru ditemukan), peta sebarannya serta model dan metode penanggulangan penyakit tular vektor dan reservoir berbasis ekosistem lokal d. Besar sampel mencakup data primer (penangkapan nyamuk1, penangkapan tikus dan penangkapan kelelawar2; sebagian sampel dijadikan spesimen koleksi referensi/awetan) dan data sekunder (endemisitas penyakit di lokasi riset berikut data pengendalian penyakit tular vektor dan reservoir, baik program nasional maupun metode pengendalian lokal) 6. Pengumpulan Data 2

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Pengumpulan data vektor (nyamuk), reservoir (tikus dan kelelawar) serta data sekunder pada Rikhus Vektora 2015 – 2018 bertujuan untuk melengkapi data primer terkait penanggulangan penyakit tular vektor dan reservoir di Indonesia. Pemeriksaan laboratorium juga dilakukan untuk memperkuat hasil analisis data di lapangan, yang akan mewakili tingkat provinsi secara nasional pada akhirnya, serta mencakup ekosistem hutan, non-hutan serta pantai di lokasi

yang dekat dengan pemukiman serta yang jauh dari

pemukiman penduduk. Data reservoir (kelelawar) dikumpulkan meliputi (a) data spesies dan habitat kelelawar; (b) peta sebaran, potensi reservoir penyakit (kelelawar) baru/belum terlaporkan beserta jenis patogen; (c) sampel tersimpan; serta (d) data sekunder penanggulangan penyakit tular reservoir (kelelawar).

Data reservoir yang akan dikumpulkan ini sangat

penting karena merupakan pemuktahiran data yang sahih untuk dikaitkan dengan data penanggulangan penyakit tular reservoir (kelelawar) di masyarakat yang akan diperoleh dengan metode observasional diskriptif menggunakan rancangan studi potong lintang (cross sectional study). Berdasarkan hal tersebut di atas maka sangat perlu disusun Pedoman dengan tujuan membantu tenaga pengumpul data memahami : a. Mekanisme

pengambilan sampel kelelawar sesuai Pedoman Operasional Baku

(POB)/Standard Operational Procedure (SOP) yang telah ditetapkan; b. Mekanisme

identifikasi sampel kelelawar sesuai Pedoman Operasional Baku

(POB)/Standard Operational Procedure (SOP) yang telah ditetapkan; c. Mekanisme pengambilan spesimen serum, swab trakhea, ektoparasit, punch sayap, serta pemilihan spesimen untuk pembuatan awetan basah kelelawar sesuai Pedoman Operasional Baku (POB)/Standard Operational Procedure (SOP) yang telah ditetapkan. d. Cara-cara penyimpanan spesimen serum, swab trakhea, ektoparasit, punch sayap, serta pemilihan spesimen untuk pembuatan awetan basah kelelawar sesuai Pedoman Operasional Baku (POB)/Standard Operational Procedure (SOP) yang telah ditetapkan. e. Cara-cara pengemasan sampel dan spesimen kelelawar sesuai POB yang telah ditetapkan; f.

Cara-cara pengiriman sampel dan spesimen kelelawar sesuai POB yang telah ditetapkan.

3

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Jenis sampel dan spesimen untuk data kelelawar pada Rikhus Vektora 20152018 berupa: serum, swab trakhea, ektoparasit, punch sayap, serta pemilihan spesimen untuk pembuatan awetan basah kelelawar. Identifikasi sampel dan pemeriksaan spesimen dilaksanakan di laboratorium lapangan di daerah, yaitu sarana dan prasarana yang memungkinkan untuk dijadikan laboratorium lapangan di Pusat Kesehatan Masyarakat (Puskesmas), desa atau wilayah dusun setempat. Pemeriksaan yang langsung dilaksanakan pada tahun 2015-2018 di laboratorium lapangan adalah identifikasi spesimen kelelawar. Pemeriksaan yang akan dilaksanakan di laboratorium B2P2VRP, Badan Litbangkes, pada tahun berjalan adalah pemeriksaan Nipahvirus, Lyssavirus dan Japanese enchepalitis. Sementara untuk pemeriksaan analisis lanjut akan dilaksanakan pada tahun selanjutnya setelah pelaksanaan riset di suatu provinsi selesai dilaksanakan. Secara lebih rinci, metode koleksi dan jenis pemeriksaan laboratorium untuk sampel kelelawar yang dilakukan di laboratorium lapangan meliputi: a. Koleksi kelelawar menurut CDC (1995)1; b. Identifikasi spesies kelelawar secara morfologis; c. Pembuatan spesimen kelelawar untuk koleksi referensi reservoir penyakit .

4


BAB II. PENGORGANISASIAN LAPANGAN Kegiatan riset khusus vektor dan reservoir penyakit memerlukan pengorganisasian lapangan pada saat melakukan survei di lapangan. Pengorganisasian perlu dilakukan agar pelaksanaan kegiatan mulai survei pendahuluan, koordinasi, perijinan dan pengumpulan data dapat terlaksana dengan baik dan dapat diperoleh data sesuai dengan yang diharapkan. Setiap anggota tim perlu memiliki kompetensi yang sesuai dengan persyaratan yang ditentukan. Kompetensi tersebut antara lain kemampuan bekerjasama dalam kelompok, saling memahami dan menghargai tugas pokok masing-masing dalam tim. Pengorganisasian

dalam

riset

khusus

vektor

dan

reservoir

penyakit

disusun

berdasarkan objek yang disurvei, yaitu tim vektor, tim reservoir dan tim data sekunder. A. Tim survei Tim survey terdiri atas: 1. Koordinator Provinsi Koordinator provinsi adalah Kepala Dinas Kesehatan di provinsi setempat. 2. Koordinator Lapangan Provinsi Koordinator lapangan provinsi adalah Kepala Balai/Loka Litbangkes. 3. Penanggung Jawab Operasional Kabupaten Penanggung jawab operasional (PJO) Kabupaten adalah petugas yang ditunjuk oleh Kepala Dinas Kesehatan Kab/Kota yang menangani bidang pencegahan dan pengendalian penyakit.

B. Tim koleksi data reservoir

1. Tim koleksi data reservoir terdiri dari : a. Koordinator teknis : 1 orang senior mamalogis/B2P2VRP/Balai/Loka Litbangkes b. Satu (1) orang staf teknis dari B2P2VRP/Balai/Loka Litbangkes c. Satu (1) orang staf teknis Bidang Pengendalian Penyakit Dinkes setempat d. Lima (5) orang tenaga pengumpul data lainnya (S1 dokter hewan/S1 biologi/S1 Kesling/S1 Kesmas/S1 Kehutanan/S1 Peternakan/DIII Kesehatan Lingkungan/DIII Kesehatan Hewan dan/atau memiliki kemampuan di bidang survei tikus dan kelelawar) e. Enam (6) orang terdiri dari 5 tenaga lokal penangkap tikus dan kelelawar, dan 1 orang dari puskesmas.

5


2. Tugas dan tanggung jawab dari masing-masing anggota adalah sebagai berikut : a. Koordinator teknis Tugas dari koordinator teknis adalah mengkoordinir seluruh anggota tim dalam melakukan koleksi tikus dan kelelawar, pengambilan spesimen, handling spesimen dari lapangan ke B2P2VRP, serta berkoordinasi dengan PJO untuk pemusnahan limbah. Koordinator teknis dipilih dari tenaga mamalogis yang berasal dari Balai/Loka Litbangkes maupun tenaga independen yang telah berpengalaman dan menguasai survei tikus dan kelelawar. Koordinator teknis juga diharapkan telah berpengalaman di dalam penanganan sampel dan spesimen, serta analisis habitat. b. Tenaga teknis dari Balai/Loka Litbangkes Tenaga teknis dari Balai/Loka Litbangkes bertugas untuk mendukung tugas koordinator teknis dalam pelaksanaan survei tikus dan kelelawar, pengambilan spesimen dan analisis habitat. Tenaga teknis adalah seseorang yang telah menguasai survei tikus dan kelelawar, pengambilan spesimen dan manajemen rantai dingin. c. Tenaga teknis dari Bidang Pengendalian Penyakit Dinkes Kabupaten/Kota Tugas dari tenaga teknis Bidang Pengendalian Penyakit Dinkes Kabupaten/Kota adalah membantu tim reservoir dalam melakukan seluruh kegiatan teknis di lapangan dan sebagai tenaga yang membantu perijinan dan pendekatan ke masyarakat di lokasi studi. d. Lima (5) orang tenaga pengumpul data lainnya (S1 dokter hewan/S1 biologi/S1 Kesling/S1 Kesmas/S1 Kehutanan/S1 Peternakan/DIII Kesehatan Lingkungan/DIII Kesehatan Hewan dan/atau memiliki kemampuan di bidang survei tikus dan kelelawar) Tugas dan tanggung jawabnya adalah bertugas secara penuh dalam koleksi tikus dan kelelawar, pengambilan spesimen, manajemen rantai dingin, dan identifikasi. Tenaga tenaga pengumpul data adalah tenaga yang direkrut dari mahasiswa tingkat akhir atau mahasiswa yang baru lulus berasal dari bidang ilmu Biologi, Kedokteran Hewan, Kesehatan Lingkungan. Tenaga tenaga pengumpul data dapat juga berasal dari bidang ilmu lain yang memiliki kemampuan di bidang mamalogi.

6

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan e. Lima (5) orang tenaga penangkap tikus dan kelelawar Tugas dan tanggung jawabnya adalah membantu pemasangan perangkap dan pemanenan tikus maupun kelelawar.

f.

Satu (1) orang tenaga Puskesmas Tugas dan tanggung jawabnya adalah membawa dan menitipkan sampel dari lapangan ke fasilitas kesehatan yang memiliki lemari pendingin serta membantu pemasangan perangkap dan pemanenan tikus maupun kelelawar.

7


8

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan BAB III. PENENTUAN LOKASI PENGUMPULAN DATA A. Definisi Ekologi, Ekosistem dan Habitat 1. Ekologi merupakan ilmu tentang hubungan timbal-balik antara makhluk hidup (organisme dan sesamanya) dengan lingkungannya16,17 2. Ekosistem merupakan unit fungsional dasar dalam ekologi (satuan sistem ekologi) yang terbentuk oleh hubungan timbal balik antara makhluk hidup dengan lingkungannya17,18 3. Habitat merupakan tempat hidup suatu makhluk hidup18. 4. Pantai merupakan tepi laut (shore) yang meluas kearah daratan hingga batas pengaruh laut masih dirasakan.6 Definisi pantai yang dimaksud dalam Rikhus Vektora adalah batas pantai yang diambil berdasarkan data dari Land System of Indonesia and New Guinea yang dikeluarkan oleh RePPProT (The Regional Physical Planning Programme for

Transmigration)

Badan

Informasi

Geospasial.

(http://databasin.org/datasets/

eb74fe29b6fb49d0a6831498b0121c99). 5. Hutan merupakan: (1) suatu kesatuan ekosistem berupa hamparan lahan berisi sumber daya alam hayati yang didominasi pepohonan dalam persekutuan alam lingkungannya yang satu dengan lainnya tidak dapat dipisahkan19; (2) Luas lebih dari 0,5 hektar dengan pepohonan yang tingginya lebih dari 5 meter dan tutupan tajuk lebih dari 10 persen, atau pohon dapat mencapai ambang batas ini di lapangan. Tidak termasuk lahan yang sebagian besar digunakan untuk pertanian atau pemukiman20.

B. Kriteria Lokasi Pengambilan Sampel Lokasi pengambilan sampel atau sampling area, dalam riset khusus vektor dan reservoir penyakit, diharapkan dapat mewakili beberapa ekosistem dengan beberapa tipe habitat nyamuk, tikus dan kelelawar di daerah studi. Pemilihan lokasi diharapkan juga dapat mewakili endemisitas penyakit tular vektor dan reservoir. Kawasan yang mewakili tiga kelompok ekosistem adalah: 1. Ekosistem hutan Ekosistem hutan memiliki keanekaragaman hayati paling tinggi di daratan. Hutan merupakan tempat tinggal bagi tumbuhan dan juga hewan. Di wilayah ekosistem hutan, beberapa penduduk yang mata pencahariannya di wilayah tersebut umumnya membuat pemukiman di pinggir atau di sekitar hutan. Namun demikian ada pula wilayah yang jarang di akses oleh manusia, ditunjukkan oleh posisinya yang jauh dari pemukiman.

9

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Hutan jauh pemukiman ini menjadi salah satu kriteria pula dalam rikhus vektora 2016. Dalam riset ini, kriteria hutan jauh pemukiman apabila berjarak 3-5 km dari pemukiman. 2. Ekosistem non-hutan Ekosistem

non-hutan

merupakan

kelompok

ekosistem

di

antara

hutan

dan

pantai/pesisir. Ekosistem ini dapat berupa perkebunan, pekarangan rumah/ pemukiman, sawah, ladang, belukar, maupun kebun monokultur, dsb. Di wilayah ekosistem nonhutan, beberapa penduduk yang mata pencahariannya di wilayah tersebut umumnya membuat pemukiman di pinggir atau di sekitar ekosistem non-hutan, misalnya petani kebun. Mereka rata-rata membuat perkampungan terletak di sekitar kebun tempat mereka mencari nafkah. Namun demikian ada pula wilayah yang jarang di akses oleh manusia, ditunjukkan oleh posisinya yang jauh dari pemukiman. Kawasan non-hutan jauh pemukiman ini menjadi salah satu kriteria pula dalam rikhus vektora 2016. Dalam riset ini, kriteria non-hutan jauh pemukiman apabila berjarak 3-5 km dari pemukiman. 3. Ekosistem pantai/pesisir Ekosistem pantai atau pesisir merupakan ekosistem yang ada di wilayah perbatasan antara air laut dan daratan.Ekosistem ini memiliki dua macam komponen, yaitu komponen biotik dan abiotik. Komponen biotik pantai terdiri dari tumbuhan dan hewan yang hidup di daerah pantai, sedangkan komponen abiotik pantai terdiri dari gelombang, arus, angin, pasir, batuan dan komponen selain makhluk hidup lainnya. Salah satu contoh ekosistem ini adalah hutan bakau (mangrove) dengan berbagai macam hewan yang hidup di dalamnya. Apabila tidak memungkinkan melakukan pengumpulan data di salah satu ekosistem, maka dapat digantikan oleh ekosistem lain yang mewakili keberadaan penyakit tular vektor/reservoir. Seperti hanya ekosistem hutan dan non-hutan, di wilayah ekosistem pantai penduduk di wilayah tersebut membuat pemukiman di pinggir atau di sekitar pantai. Namun demikian ada pula wilayah yang jarang di akses oleh manusia, ditunjukkan oleh posisinya yang jauh dari pemukiman. Kawasan pantai jauh pemukiman ini menjadi salah satu kriteria pula dalam rikhus vektora 2016. Dalam riset ini, kriteria pantai jauh pemukiman apabila berjarak 3-5 km dari pemukiman.

10

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan C. Cara Pengambilan Sampel Teknik pengambilan sampel dengan purposive sampling dilakukan berdasarkan stratifikasi geografis dan ekosistem. Pengambilan sampel dilakukan di titik terpilih yang mewakili 3 tipe ekosistem (hutan, non-hutan dan pantai), baik yang jauh maupun dekat dengan pemukiman. Pengambilan sampel akan dilakukan di 6 titik di setiap kabupaten terpilih yaitu : 1. Hutan yang dekat dengan pemukiman (HDP) 2. Hutan yang jauh dari pemukiman (HJP) 3. Non-hutan yang dekat dengan pemukiman (NHDP) 4. Non-hutan yang jauh dari pemukiman (NHJP) 5. Pantai yang dekat dengan pemukiman (PDP) 6. Pantai yang jauh dari pemukiman (PJP) Selain dasar stratifikasi geografis dan ekosistem, dasar penentuan titik tersebut adalah sebagai berikut : 1. Wilayah (provinsi/kabupaten) tersebut memiliki informasi yang cukup atau memiliki dugaan kuat sebagai sumber penularan penyakit bersumber vektor dan reservoir 2. Memiliki kondisi lingkungan yang potensial untuk perkembangbiakan nyamuk, seperti adanya rawa, kolam ikan tidak digunakan lagi, lagun dan sebagainya. 3. Lokasi relatif mudah diakses dan terdapat cukup fasilitas yang dibutuhkan 4. Lokasi harus dapat dikunjungi dan tidak memiliki risiko tinggi di luar kepentingan riset (bencana, keamanan, dsb)

11


12


BAB IV, PANDUAN PENGGUNAAN GPS (GLOBAL POSITIONING SYSTEM) Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami pengoperasionalan dan penggunaan GPS Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat mengoperasikan GPS dengan benar 2. Peserta dapat mengambil titik koordinat dengan benar 3. Peserta dapat mengambil foto dan video dengan benar 4. Peserta dapat mentransfer data dari GPS dengan benar GPS (Global Positioning System) merupakan alat survei yang dapat digunakan dalam berbagai bidang termasuk bidang kesehatan. Pada riset khusus vektora ini dilakukan pemetaan persebaran vektor dan reservoir daerah penelitian. Pengambilan koordinat dilakukan pada habitat sampel vektor dan reservoir diambil. GPS yang digunakan adalah Garmin Monterra. GPS Monterra merupakan bagian dari pengembangan GPS Montana dan Sistem Operasi perangkat mobile Android. Monterra dapat digunakan sebagai GPS navigator maupun sebagai GPS survei lapangan untuk plot waypoint maupun tracking. Memiliki desain kokoh dan tahan cuaca (weather sealed) serta didukung fitur beragam membuat GPS ini sangat cocok untuk untuk kegiatan lapangan di negara tropis seperti Indonesia. Fitur Garmin Monterra antara lain Penggabungan Pemetaan 3D, kamera digital 8 megapixel autofocus, sistem baterai ganda state-of-the-art, kompas elektronik built-in 3-axis accelerometer dan dengan gyro, sensor UV built-in, Wi-Fi, Bluetooth dan NFC, Memuat peta dan jutaan geocaches, Radio dan lain-lain. Seluruh fitur dikemas dalam sistem operasi android versi 4.0.4 yang universal untuk digunakan oleh pemula maupun surveyor berpengalaman. Berdasarkan penilaian tersebut, GPS ini sangat tepat digunakan untuk rikhus vektora. Metode dalam pemetaan ini adalah metode Stop and Go, pengambilan koordinat dilakukan dengan cara pengambil koordinat berhenti sejenak di lokasi survei kemudian menunggu GPS mendapatkan sinyal stabil. Koordinat dapat disimpan di GPS ataupun ditulis dalam form GPS. Setelah pencatatan koordinat selesai kemudian dilanjutkan untuk lokasi berikutnya. Semoga pedoman singkat ini bermanfaat bagi kita semua

13

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan A. PENJELASAN UMUM 1. Kelengkapan1 Unit GPS Monterra

Gambar 1: Kelengkapan perangkat GPS 2.

Bagian – Bagian GPS

Tampilan Bagian Depan:

Tampilan Bagian Belakang: Gambar 2: Bagian GPS

14

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Baterai GPS Garmin Monterra memiliki sistem baterai ganda state-of-the-art. GPS ini dapat menggunakan baterai rechargable lithium-ion atau menggunakan baterai AA.

Baterai Alkaline

Baterai rechargable lithium-ion

Gambar 3: Jenis baterai. a.

Cara memasang baterai rechargable lithium-ion: 1)

Putar ring berlawanan arah jarum jam, dan tarik ke atas untuk melepaskan penutup (Gambar 5).

2)

Cari kontak logam baterai lithium – ion.

3)

Masukkan baterai ke dalam kompartemen.

4)

Tekan baterai ke tempatnya.

5)

Tutup kembali penutup baterai (ring) dan putar searah jarum jam.

6)

Catatan baterai rechargeble lithium dapat di-charge pada kisaran suhu 0oC-50oC.

A

B

Gambar 4: Bagian penutup baterai. b.

Cara memasang baterai AA: 1) Putar ring berlawanan arah jarum jam dan tarik ke atas untuk melepaskan penutup (Gambar 6). 2) Pasang tiga baterai AA perhatikan arah baterai yang ditunjukkan pada gambar di belakang alat, dan jangan sampai terbalik.

Gambar 5: Bagian penutup baterai.

15

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan 3. Langkah Pengoperasian Setelah selesai memasang baterai maka kita dapat mengoperasikan GPS. Langkah mengoperasikan GPS Garmin Monterra adalah sebagai berikut:

a. Tekan tombol power. b. Tunggu beberapa saat sampai GPS stabil. c. Gerakkan jari di layar sentuh untuk menggeser atau menutup tampilan.

d. Memperbesar

atau

memperkecil

tampilan

dengan

menggunakan kedua jari tangan.

e. Sentuh

icon untuk kembali kehalaman sebelumnya.

f. Sentuh

icon untuk kembali ke layar awal.

g. Sentuh

icon untuk mengatur sistem.

Gambar 6: Pengoperasian GPS. 4. Langkah pengaturan pada GPS (Langkah ini HARUS dilakukan pertama kali sebelum GPS dioperasikan dan hanya dilakukan SATU KALI saja dalam penggunaan GPS) a. Nyalakan GPS dengan menekan tombol power pada bagian samping kanan atas. b. Pilih icon setting aplikasi, kemudian pilih more (gambar 7)

Gambar 7: Pengoperasian pengaturan GPS. c. Pilih icon unit. 1)

Ubah bagian unit GPS dibawah ini:

2)

Distance and speed

: metric

3)

Elevation

: meters

4)

Depth

: meters

5)

Temperatur

: celcius

6)

Pressure

: millimeters (Hg)

7)

Vertical speed

: meters (m/sc)

8)

Klik tombol

1x (satu kali) untuk kembali ke menu setting.

16

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan d. Pilih position format. 1)

Ubah positin format

: hddd°mm’ss.s’’

2)

Map Datum

: WGS 84

e. Pilih Location services, lalu centang semua pilihan yang ada

Gambar 8: Location services. f.

Kembali ke menu utama.

g. Pilih

icon satelit.

5. Langkah kalibrasi GPS Kalibrasi GPS dilakukan setiap pergantian ekosistem agar koordinat yang diambil lebih akurat. a. Pilih icon setting aplikasi, kemudian pilih more (gambar 7) b. Pilih Heading. c. Pada menu Compass Mode pilih on untuk mengaktifkan menu heading. d. Pilih Calibrate compass, kemudian klik. start. e. Gerakkan GPS sesuai dengan gerakkan di layar GPS. f.

GPS akan memberikan respon apakah kalibrasi berhasil atau tidak. Jika tidak anda perlu mengulangi putaran dengan sedikit lebih pelan lagi.

B. TEKNIS PENGAMBILAN TITIK KOORDINAT DI LOKASI PERANGKAP KELELAWAR 1. Pasang semua Jaring Kabut (6 Jaring Kabut). 2. Jika pemasangan jaring kabut tanpa jarak diambil satu ( 1 ) koordinat. 3. Jika pemasangan jaring kabut dengan jarak diambil lebih dari satu ( 1 ) koordinat.

17


Gambar 9: Pengambilan titik koordinat di lokasi perangkap kelelawar 4. Pengambilan titik pada HAND NET dilakukan ketika mendapatkan kelelawar Catatan: Pengambilan titik koordinat pada HAND NET ketika HAND NET mendapatkan kelelawar pada lokasi tersebut. C. LANGKAH MENENTUKAN TITIK KOORDINAT DI LOKASI PERANGKAP TIKUS (Sebelum penentuan titik koordinat, pastikan langkah pengaturan setting seperti butir A.5 sudah dilakukan) 1. Hidupkan GPS, tunggu sampai terdeteksi minimal 5 satelit dalam kondisi stabil. Semakin banyak satelit terdeteksi maka semakin tinggi tingkat akurasi lokasi pegambilan koordinat.

Gambar 10: Deteksi sinyal satelit. 2. GPS dinyalakan pada saat akan berangkat ke lokasi pemasangan jaring kelelawar. GPS dimatikan setelah pemasangan jaring kelelawar pada hari itu sudah selesai. 3. Pasang jaring kelelawar pada lokasi yang sudah ditentukan kemudian sentuh icon mark waypoint pada GPS

18

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Catatan: Sebelum

pengambilan

titik

koordinat,

WAJIB

berhenti

sejenak

untuk

mendapatkan koordinat yang lebih akurat (Metode Stop and Go). 4. Pilih menu edit: a.

Simbol

Waypoint

dibedakan

berdasarkan

kode

ekosistem/site

(cth:

HDP,HJP,NHDP dll). Simbol untuk kode ekosistem sebagai berikut : HDP HJP NHDP NHJP PDP PJP

( Hutan Dekat Pemukiman ) ( Hutan Jauh Pemukiman ) ( Non Hutan Dekat Pemukiman) ( Non Hutan Jauh Pemukiman ) ( Pantai Dekat Pemukiman ) ( Pantai Jauh Pemukiman )

Contoh pemakaian simbol:

Gambar 11: Pemakaian simbol di GPS b.

Ganti nama yang ada di GPS dengan nomor jaring/perangkap kelelawar (contoh: HDP-001, arti kode: HDP = Kode Ekosistem, 001 = Jaring Kabut 1). Jika Jaring Kabut dipasang seri atau paralel maka penamaan sebagai berikut: ( Contoh: HDP-001&002 )

c.

Pilih menu edit : •

Pada note diisi kode lokasi ekosistem

•

contoh: 33163-P/N, arti kode: 33

= Provinsi,

16

= Kabupaten, 19

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan 3

= Ekosistem,

P

= Positif tertangkap kelelawar / ada kelelawar,

N

= Negatif kelelawar / tidak ada kelelawar.

Catatan : P (Positif)/ N (Negatif): Menggambarkan perangkap yang pernah mendapatkan kelelawar. •

Kode jaring :  Jaring kabut 1 dengan Kode“001”,  Jaring kabut 2 dengan Kode “002”,  Jaring kabut 3 dengan Kode “003”,  Jaring kabut 4 dengan Kode “004”,  Jaring kabut 5 dengan Kode “005”,  Jaring kabut 6 dengan Kode “006”,  Jaring harpa dengan Kode “007”,  Handnet dengan Kode “008”

5. Ambil foto pemasangan jaring kabut atau perangkap harpa dengan cara sentuh icon gambar foto.

HDP-001&002

33161-P

Pemberian nama. Kode lokasi ekosistem

Lokasi pengambilan titik koordinat

Gambar 12: Editing mark waypoint dan pengambilan foto 6. Sebelum titik koordinat disimpan pada GPS, JANGAN LUPA mencatat nomor jaring/perangkap, titik koordinat dan nilai elevasi (ketinggian) pada form TK.02 GPS. 7. Kemudian pilih DONE.

20


Pengambilan

foto

pada

Mark

Waypoint

BOLEH

dilakukan dan BOLEH TIDAK dilakukan, KARENA foto hanya

berfungsi

untuk

membantu

enum

dalam

mengingat lokasi titik koordinat.

HDP-001&002

33161-P

Gambar 13: Menu done pada jendela mark waypoint 8. Pengambilan foto diharuskan tidak hanya lewat mark waypoint saja. Namun, juga melalui menu Camera pada GPS dengan Icon a. Untuk mengambil gambar pilih menu camera pada aplikasi b. Pilih Icon c. Kemudian pilih icon

untuk mulai mengambil gambar

CATATAN: 1. Pengambilan FOTO dilakukan pada tiap Jaring perangkap 2. Pengambilan FOTO untuk Jaring Kabut seri atau paralel hanya dilakukan pengambilan satu (1) kali foto 3. Pada Hand net pengambilan FOTO dilakukan ketika mendapatkan kelelawar d.

Lakukan pengambilan gambar di setiap ekosistem lokasi survei

e.

Pengambilan gambar di habitat lokasi survei kelelawar

CATATAN: Pengambilan gambar HARUS DILAKUKAN dan dalam kondisi GPS menangkap sinyal satelit setidaknya 5 satelit untuk memberikan akurasi letak pengambilan foto ( Geo Tagging ) 9. Setelah titik koordinat diambil kemudian dilakukan pengambilan video pada lokasi penangkapan kelelawar. Langkah pengambilan video adalah sebagai berikut: a. Pilih menu camera pada aplikasi b. Pilih

icon.

c. Kemudian pilih icon

untuk memulai merekam.

d. Jika sudah selesai maka pilih

icon. 21

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Keterangan: setiap ekosistem hanya diambil satu video, durasi 20-30 detik. 10. Setelah hasil penangkapan selesai diidentikasi, kemudian pada form TK.02 diisi kode spesimen pada kolom KODE SPESIMEN, contoh 33161K005. Keterangan 33161 merupakan keterangan tempat pengambilan sampel yang terdiri dari kode Provinsi, kode Kabupaten, dan kode ekosistem, untuk K005 merupakan no urut spesimen. Contoh pengisian form ada pada gambar berikut:

Keterangan: N/S: (North (utara)/South (selatan); D: Degere (derajat); M: Minutes (Menit); S: Second (detik); m: meter. Gambar 14: Form TK.02. KETERANGAN TAMBAHAN

1. Apabila ingin mencari waypoint yang sudah dibuat maka dapat dilakukan langkah sebagai berikut: a. Pilih waypoint manager. b. Pilih icon

untuk mencari nama waypoint.

c. Pilih all dan pilih type symbol untuk mencari symbol yang akan digunakan untuk waypoint. d. Pilih icon

search near untuk lokasi atau titik koordinat yang ada pada peta.

e. Pilih titik koordinat yang ada pada daftar. 2. Cara mengedit (memperbaiki informasi) waypoint a. Pilih waypoint manager b. Pilih titik waypoint yang akan diperbaiki. c. Perbaiki informasi dengan menekan informasi yang diperbaiki. d. Tekan DONE. 3. Langkah untuk menghapus waypoint a. Pilih waypoint manager. b. Pilih dan tekan waypoint sampai muncul c. Tekan

icon untuk hapus data.

d. 22

icon.

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan D. Langkah untuk mentransfer data dari GPS ke basecamp Setelah survei selesai di satu ekosistem maka selanjutnya tim melakukan transfer data dari GPS ke software basecamp. 1. Download software basecamp-nya yang terbaru disini: https://www8.garmin.com/support/download_details.jsp?id=4435 2. Setelah di download kemudian di extract dan lakukan install program. 3. Setelah basecamp diinstall kemudian sambungkan GPS yang sudah diaktifkan ke komputer menggunakan kabel data yang terdapat pada GPS. 4. Mengaktifkan program basecamp.

Gambar 15: Tampilan software basecamp. 5. Pilih menu transfer, pilih receive from device.

Gambar 16: Tampilan menu receive from device.

23

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan 6. Setting receive from device akan muncul devices dan GPS akan terekam nama

secara

devices

otomatis. yang

akan

Klik di

download kemudian klik OK.

Gambar 17: Tampilan select device montera.

7. Kemudian akan muncul tampilan seperti ini, pilih titik koordinat yang akan di download.

Gambar 18: Tampilan titik koordinat akan di download. 8. Pembuatan List Folder dan New List untuk menempatkan data pengambilan titik koordinat di lapangan dengan sofware basecamp. a.

Pilih My Collection > Pilih File > Pilih New > Pilih List Folder (List Folder akan muncul di dalam

link

My

Collection

dengan nama New Folder).

Gambar 19: Tampilan pembuatan List Folder.

24

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan b.

Pilih New Folder > klik kanan pilih rename dan ganti nama New

dengan

Folder

Kabupaten_kode

nama

wilayah

dan kode hewan. Contoh: Pati_3311K (arti kode: Pati = Kabupaten Pati, 33 = Kode Provinsi,

11

=

Kode

Kabupaten, K = Kelelawar). Gambar 20: Tampilan pembuatan New List. c.

Pilih folder Pati_3311K (folder yang telah kita buat) > klik kanan > pilh New List > Pilih New List yang sudah muncul > klik kanan pilih rename dan ganti nama New List dengan nama ekosistem (singkatan saja). Contoh: HDP (Hutan Dekat Pemukiman).

Gambar 21: Tampilan list data titik koordinat dan data gambar 9. Pilih data pengambilan titik koordinat beserta data pengambilan gambar dilapangan sesuai ekosistem dengan cara: klik datanya sambil menekan tombol ctrl > klik kanan pilih copy > pilih list HDP (New List yang telah dibuat) > klik kanan paste. Data GPS sesuai ekosistem (yang kita pilih) otomatis terduplikasi di list yang kita buat. Data ini akan di kirim via email tiap ekosistem dalam bentuk *.gpx. 10. Pilih list yang dibuat > Pilih file > Export > Export list ‘Nama List’

Gambar 22: Tampilan export list data 25

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Apabila muncul warning maka klik OK. 11. Pilih folder penyimpanan > Pilih format penyimpanan dalam bentuk *.gpx > kemudian beri nama file yang akan disimpan > Save. Penamaan file dilakukan dengan cara

menuliskan

kode

propinsi_kode

kabupaten_kode

ekosistem_jenis

survei.

Contoh

adalah

33116K.

kode

tersebut

penamaan

file

Pengertian

dari

adalah 33=kode propinsi, 11=kode kabupaten,

6=kode

ekosistem

Gambar 23: Tampilan penyimpanan data GPS. Pantai Jauh Pemukiman, K=Kelelawar. 12. Setelah file dipindahkan dari GPS ke komputer lalu dikirim ke email: [email protected] dengan format subyek: kode provinsi_kode kabupaten_kode ekosistem_jenis survai. Contoh penamaan file adalah 33116K. Pengertian dari kode tersebut adalah 33 = Kode Provinsi, 11 = Kode Kabupaten, 6 = Kode Ekosistem Pantai Jauh Pemukiman, K = Kelelawar. 13. Pengiriman email ini dilakukan setiap satu ekosistem yang sudah selesai.

26


BAB V. PENGUMPULAN DATA RESERVOIR (Kelelawar) Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami pengorganisasian lapangan dan pengumpulan data reservoir Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat menerapkan pengorganisasian lapangan dengan benar 2. Peserta dapat menerapkan alur pengambilan data dengan benar Pengumpulan data dilaksanakan selama ± 30 hari dengan rincian: 5 hari pengumpulan data pada tiap ekosistem. Jadwal pengumpulan data pada masing masing ekosistem terbagi menjadi koleksi pengumpulan data tikus pada hari 1 sampai 3 diteruskan pengumpulan data kelelawar pada hari 3 – 4 dan diteruskan penyelesaian administrasi serta persiapan pindah lokasi. Pengorganisasian tim menjadi sangat penting dalam memanajemen semua kegiatan pengumpulan data yang dilaksanakan selama 30 hari di 6 titik terpilih pada ekosistem hutan, non hutan dan pantai.

27

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan A. ALUR PENGUMPULAN DATA

Gambar 24. Alur Pengumpulan Data Kelelawar

28

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan B. PELAKSANAAN KEGIATAN PENGUMPULAN DATA Pengumpuan data oleh masing-masing tim dilaksanakan selama ± 30 hari dengan rincian: 5 hari pengumpulan data pada tiap ekosistem. Pengumpulan data diutamakan dimulai pada ekosistem hutan dekat pemukiman (5 hari), kemudian berturut-turut dilanjutkan pada ekosistem hutan jauh pemukiman, non-hutan dekat pemukiman, non-hutan jauh pemukiman, pantai dekat pemukiman, dan pantai jauh pemukiman. Rincian kegiatan pada masing-masing ekosistem dijelaskan sebagai berikut Hari Ke-1 Observasi tempat pemasangan jaring kabut, perangkap harpa dan tempat kelelawar bersarang/istirahat (roosting), jalur terbang dan tempat mencari makan. Hari Ke-2 Observasi tempat pemasangan jaring kabut, perangkap harpa dan tempat kelelawar bersarang/istirahat (roosting), jalur terbang dan tempat mencari makan. Hari Ke-3 1.

Penangkapan Kelelawar a. Pukul 13.00-17.00 (waktu setempat) ketua dan 6 orang anggota tim dibantu seluruh tenaga lokal melakukan pemasangan jaring kelelawar menggunakan jaring kabut (mist net), perangkap harpa (harp trap), dan jaring tangan (hand net), kemudian melakukan pengambilan titik koordinat pemasangan jaring sesuai dengan Prosedur Penggunaan GPS (Form TK.02). b. Ketua tim melakukan koordinasi untuk pengambilan gel pack dan menyiapkan laboratorium lapangan c. Pukul 19.00-22.00 (waktu setempat) setiap anggota tim dan tenaga lokal bergiliran melakukan pengambilan sampel kelelawar yang terjerat setiap satu jam. d. Satu orang anggota tim lainnya melakukan pengambilan/pengukuran parameter lingkungan (suhu dan kelembaban) di setiap lokasi pemasangan jaring setiap satu jam sesuai dengan Prosedur Pengukuran Parameter Lingkungan (Form K.3) e. Pukul 20.00 pemrosesan kelelawar mulai dilakukan di laboratorium lapangan dimulai hasil ekstraksi kelelawar jam 19.00. f.

Pemrosesan Kelelawar 1) Satu orang anggota tim mempersiapkan pelabelan kelelawar (Label Lapangan: lampiran)

29

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan 2) Dua orang anggota tim melakukan penimbangan dan anestesi kelelawar sesuai Prosedur Anestesi 3) Satu

orang

anggota

tim

melakukan

koleksi

ektoparasit

sesuai

Prosedur

Pengambilan Koleksi Ektoparasit (Form K.04 bagian A koleksi spesimen I) dan Form TK. 11 4) Dua orang anggota tim dengan arahan ketua tim melakukan pengambilan foto sesuai Prosedur Dokumentasi, (Form K.04 bagian C pengambilan dokumentasi spesimen) dan Form TK. 11 serta identifikasi kelelawar sesuai Prosedur Identifikasi (Form K.04 bagian B identifikasi dan morfometri) dan Form TK. 11. 5) Satu orang anggota tim pengambilan swab trakea sesuai dengan Prosedur Swab Trakhea (Form K.04 bagian D koleksi spesimen II) dan Form TK. 11 serta menyiapkan pengambilan spesimen bedah: punch sayap (Prosedur Pengambilan Punch Sayap, Form K.04 bagian D koleksi spesimen II) dan Form TK. 11. 6) Dilakukan pemilihan spesimen untuk membuat awetan basah bagi kelelawar yang telah teridentifikasi sesuai Prosedur Pembuatan Awetan Basah (Form K.04 bagian D koleksi spesimen II) oleh anggota tim yang bertugas melabel (Form K.04) dan (Form TK. 11) 7) Satu orang anggota tim melakukan pengambilan darah Prosedur Pengambilan Darah dan Serum (Form K.04 bagian A koleksi spesimen I) dan (Form TK. 11) 8) Semua kelelawar yang belum bisa diidentifikasi dibuat awetan basah tanpa dipilih sesuai Prosedur Pembuatan Awetan Basah (Form K.04 bagian D koleksi spesimen II) dan (Form TK. 11) Ketua tim mengkoordinasikan penyimpanan boks serum dan swab trakhea kelelawar yang terkumpul didalam styrofoam yang telah berisi gel pack beku.

Hari ke-4 1. Melanjutkan pemrosesan kelelawar dari hasil penangkapan terakhir yaitu pukul 06.00. 2. Pengemasan jaring kabut dan perangkap harpa 3. Pengepakan spesimen tikus dan kelelawar Spesimen tikus dan kelelawar dikemas sesuai Prosedur Pengepakan Spesimen, Form Rekap dan Pengiriman Spesimen 4. Melakukan entry data, yaitu memindahkan data di formulir ke program entri. 5. Melakukan validasi internal yaitu mengisi checklist kegiatan serta checklist alat dan bahan.

30

Riset Khusus Vektor dan Reservoir Penyakit – Badan Litbang Kesehatan Hari Ke-5 1.

Ketua tim melakukan koordinasi penyelesaian administrasi

2. Ketua tim melakukan serah terima paket spesimen tikus dan kelelawar non awetan basah kepada PJO Kabupaten untuk disimpan pada tempat penyimpanan sementara sesuai prosedur cold chain (Prosedur Pengepakan Spesimen) 3. Perpindahan lokasi

31

Observasi

A.

A.

Penangkapan kelelawar

Hari ke‐3

A. Observasi

Hari ke 2

Nama Kegiatan Hari ke‐1

No

Rujukan Pedoman

V.3.F

V.3.H ‐ V.3.Q

6. Pukul 19.00 prosesing kelelawar mulai dilakukan di laboratorium lapangan

Form TK.02 Form K.03

V.3.F V.3.G

V.3.E

Form K.01

Kebutuhan Form

IV

1. Melakukan pemasangan jaring kabut dan perangkap harpa 2. Pengambilan titik koordinat tempat pemasangan jaring kabut dan perangkap harpa 3. Pengambilan data lingkungan 4. Melakukan koordinasi untuk pengambilan gel pack dan menyiapkan laboratorium lapangan 5. Melakukan pengambilan sampel kelelawar yang terjerat setiap jam

Observasi lapangan untuk pemasangan jaring kabut, perangkap harpa dan tempat kelelawar bersarang V.3.F

Observasi lapangan untuk pemasangan jaring kabut, perangkap harpa dan tempat kelelawar bersarang V.3.F

Rincian Kegiatan

27

Stiker wilayah, stiker koleksi, label kelelawar

Label lapangan

Stiker wilayah

Kebutuhan Stiker


C. RANGKUMAN KEGIATAN Tabel 1. Rangkuman Kegiatan Pengumpulan Data

28

Pengemasan alat survei Enti data

Validasi internal

B. C.

D.

Serah terima paket

Perpindahan lokasi

B.

C.

A. Penyelesaian administrasi

Hari ke‐5

Prosesing kelelawar

Hari ke‐4

Prosesing kelelawar

A.

B.

Form K.04 dan TK.11 Form K.04 dan TK.11

4. Morfometri dan identifikasi spesimen V.3.K 5. Pengambilan dokumentasi dan identifikasi kelelawar V.3.J V.3.L V.3.M

6. Pengambilan swab trakhea 7. Pengambilan spesimen punch sayap

V.3.H ‐ V.3.Q

Ketua tim melakukan koordinasi penyelesaian administrasi Ketua tim melakukan serah terima paket spesimen tikus non awetan basah kepada PJO Kab. V.3.R

Mengemas jaring kabut dan perangkap harpa Melakukan input data Mengecek kelengkapan kegiatan dan alat bahan

Melanjutkan prosesing kelelawar

8. Pengambilan darah V.3.O 9. Pemilahan spesimen awetan basah dan pelepasan kelelawar V.3.N dan V.3.P 10. Penyimpanan serum dan swab trakhea di lemari pendingin sementara

Form K.04 dan TK.11

V.3.I

3. Pengambilan ektoparasit

Form TK.10

Form TK.06 dan TK.07

Pedoman mandat

Form K.04 dan TK.11

Form K.04 dan TK.11

Form K.04 dan TK.11

Form K.04 dan TK.11

Form K.04 dan TK.11

V.3.K dan V.3.H V.3.P

1. Penimbangan dan anestesi kelelawar 2. Pelabelan kelelawar

Stiker wilayah, stiker koleksi, label kelelawar

Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi Stiker wilayah, stiker koleksi



29


BAB VI. PENGENALAN ALAT DAN BAHAN Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta mengetahui alat dan bahan yang digunakan saat pengumpulan data Tujuan Pembelajaran Khusus: Peserta dapat menggunakan alat dan bahan yang dipakai saat pengumpulan data Dalam proses pengumpulan data reservoir didukung alat dan bahan, tabel 2 berisi alat dan bahan serta fungsi/kegunaannya. Pengenalan alat dan bahan pengumpulan data reservoir menjadi pendukung penegakkan SOP sehingga data dikoleksi dapat dipertanggungjawabkan. Tabel 2. Alat dan bahan pengumpulan data kelelawar No.

Alat

Bentuk kemasan

1

Alkohol 70%

Larutan untuk desinfeksi (meja, alat dan tangan), merendam ginjal dan ektoparasit

2

Aquadest

Larutan untuk pengenceran formalin

3

Baterai Alkaline A3

Pengganti baterai head lamp

Benang kasur

Benang untuk mengikat label lapangan pada kain blacu, label kertas kalkir dan pita dymo.

4

30

Kegunaan


5

Bendera Bakti Husada

Tanda kegiatan Riset khusus Vektor dan Reservoir Penyakit

6

Biopsy Punches

Alat untuk mengambil sampel jaringan sayap kelelawar

7

Canoe drum 30 liter

Penyimpanan awetan basah kelelawar berisi formalin 10%

8

Cardboard cryokardus 81 well (untuk serum)

Digunakan untuk menampung sampel serum

9

Cool box 30 liter

Alat untuk membawa bahan laboratorium

10

Cool box 72 liter

Alat untuk membawa bahan laboratorium

11

Cryovial tube

Tabung untuk menampung serum

12

Cutter

Memotong bahan

31


13

Dissecting kits

Digunakan untuk membedah kelelawar sebelum disuntik formalin

14

ember plastik (20lt)

Untuk menampung rendaman awetan kelelawar yang sudah disuntik formalin

15

Etanol absolut 2.5 liter

Etanol untuk merendam jaringan punch sayap

16

Forceps 30 cm

Untuk membantu pencelupan awetan basak kelelawar ke dalam ember berisi larutan formalin 10%

17

Formalin 37%

Larutan untuk pengawetan kelelawar

Gel pack

Sebagai pendingin spesimen serum dan swab, diletakkan di dalam kardus Styrofoam

GPS

alat untuk melakukan penentuan koordinat titik di enam ekosistem

18

19

32


HT

Sebagai alat komunikasi anggota tim dengan basecamp saat pengambilan kelelawar dari jaring kabut/harpa

21

Head lamp

Sebagai alat penerangan saat pengambilan kelelawar dari jaring kabut/harpa

22

Isoflurane

Anestesi inhalasi untuk kelelawar kecil.

23

Jangka sorong digital

Alat untuk pengukuran bagian tubuh kelelawar.

Jaring harpa

Alat yang digunakan untuk menangkap kelelawar microchiroptera

Jaring Kabut

Alat yang digunakan untuk menangkap kelelawar megachiroptera

20

24

25

33


26

27

28

Jaring Tangan (Handnet)

Alat yang digunakan untuk menangkap kelelawar microchiroptera dan megachiroptera

Jarum 18G

Jarum yang dipasang pada syringe 20 ml untuk menyuntik formalin pada awetan kelelawar.

Jarum 26G

Untuk menusuk vena bracial pada saat pengambilan darah kelelawar dengan berat badan ≤ 100 gram Jas sebagai alat pelindung diri yang digunakan pengumpul data pada saat pemrosesan kelelawar di laboratorium lapangan.

Jas lab 29

Kacamata (goggles)

Alat pelindung mata dari bahan infeksius dan bahan kimia saat bekerja di laboratorium lapangan

Kain kasa

Digunakan sebagai pembungkus awetan basah kelelawar ketika akan dikirim menggunakan canoe drum.

32

Kamera DSLR

Untuk memotret bagian-bagian tubuh kelelawar, habitat dan membuat video

33

Kantong plastik hitam

Kantong untuk menampung sampah non infeksius

30

31

34


34

Kantong sebagai penampungan sementara kelelawar yang tertangkap sebelum dilakukan pemrosesan di laboratorium lapangan

Kantung kain (blacu)

35

Kapas bulat

Kapas untuk anestesi (diberi isoflurane) dan desinfeksi meja prosesing (dibasahi dengan alkohol 70%)

36

Kardus packing bersekat (untuk ektoparasit dan punch sayap)

Kardus yang digunakan untuk pengepakan ektoparasit dan punch sayap.

37

Kardus + Styrofoam box

Kardus untuk mengirim sampel serum dan swab trakhea.

38

Ketamin 50 ml

Anestesi injeksi pada kelelawar, dicampur bersama xylazin.

39

Kursi lipat

Kursi yang digunakan di laboratorium lapangan

Label lapangan

label yang diikatkan pada kantong blacu berisi kelelawar: ditulis nomor jaring kabut, jam penangkapan dan nomor kelelawar

40

35


41

Label kertas ektoparasit

33261 K001

42

Label kertas kalkir

Label yang berisi keterangan tentang kelelawar yang dijadikan spesimen awetan basah dan diikat di kaki kanan.

43

Lakban coklat

Lakban untuk menutup kardus paket.

44

Lakban putih 5 cm

Digunakan untuk merekatkan paket pengiriman dan melapisi stiker pengiriman.

45

Lampu emergency

membantu penerangan saat prosesing kelelawar

46

Lup

Alat untuk membantu melihat ektoparasit kelelawar yang berukuran kecil

47

Map binder plastic

Map untuk menyatukan formulirformulir dalam 1 titik ekosistem.

36

Label yang dimasukkan dalam botol ektoparasit bertuliskan identitas tikus


Masker tali

Alat pelindung diri bagian muka dari percikan dan inhalasi bahan infeksius pada saat bekerja di laboratorium lapangan.

49

Masker 7502 + filter 6005

Melindungi bagian muka dari percikan dan inhalasi bahan infeksius pada saat bekerja di laboratorium lapangan, terutama pada saat pembuatan awetan basah.

50

Meja lipat (80 x 8120 cm)

Meja yang digunakan di laboratorium lapangan

51

Meteran Jahit

Untuk mengukur panjang bentang sayap kelelawar

Mikropipet

Untuk memindahkan serum kelelawar dari venoject ke dalam tabung cryovial.

48

52

53

Nampan untuk meletakkan kelelawar pada pengambilan ektoparasit.

Nampan putih

37


54

Nampan plastic

Nampan untuk meletakkan kelelawar yang akan dibedah

55

Parafilm

Bahan untuk melapisi/menyegel vial tube spesimen.

56

Parang

Memotong semak/ranting kayu saat di ekosistem hutan/pantai

57

Pelindung kepala

Alat pelindung kepala dan rambut dari percikan bahan infeksius dan bahan kimia, saat bekerja di laboratorium lapangan

58

Pencetak label Dimo

Alat pencetak huruf dan angka pada pita Dimo dengan hasil cetakan timbul

59

Permanent marker

Pena dengantinta permanen untuk menulis keterangan spesimen pada tube.

38


60

Pita dymo

Pita untuk memberi label pada kelelawar tertangkap.

61

Pinset ujung lanciplancip

Alat untuk mengambil ektoparasit

62

Pinset ujung tumpul

Untuk mengambil ektoparasit

63

Pipet pasteur

Pipet untuk mengambil serum setelah di sentrifuge

64

Pipet plastic

Pipet untuk mengambil alkohol yang akan di letakkan pada tabung

65

Pisau dapur

Alat memotong kelapa.

39


Plastik biohazard

Plastik untuk menampung limbah infeksius.

67

Plastik klip

plastik untuk membungkus spesimen punch sayap dan kardus serum pada saat pengiriman.

68

Plastik tebal ukuran folio.

plastik untuk melapisi form pengiriman

Perforator

Alat untuk melubangi pita dymo dan kuesioner yang akan dimasukkan dalam binder plastik.

66

69

70

71

Rak untuk meletakkan vacutainer.

Rak tabung reaksi

Rak vial tube

Rak untuk meletakkan cryotube

40


Sarung tangan nitril

Melindungi tangan dari bahan infeksius saat bekerja di laboratorium lapangan

73

Sarung tangan kulit

Melindungi tangan dari gigitan kelelawar saat pelepasan kelelawar dari jaring kabut/harpa

74

Scalpel ujung tombak

Alat untuk mengambil ektoparasit yang jatuh di nampan plastik

75

Sekop besar

Alat untuk mengubur limbah karkas kelelawar.

76

Sepatu boot

Pelindung kaki saat berjalan di lokasi pemasangan perangkap.

77

Sharp safety box

Tempat untuk menampung limbah benda tajam.

72

41


78

Sikat gigi

Alat untuk menyikat bulu kelelawar untuk mengoleksi ektoparasit.

80

Spidol permanen besar

Spidol untuk menulis alamat pengiriman pada kardus

81

Spryer

Alat menyemprotkan alkohol untuk desinfeksi meja, alat laboratorium maupun tangan

82

Spuit 1 cc

Alat untuk menyuntikkan anestesi

83

Spuit 20 cc

Syringe untuk menampung formalin yang akan disuntikkan organ tikus yang akan diawetkan

84

Spuit 3 cc

Alat untuk mengambil darah kelelawar

42


85

Staples besar dan isi

Untuk merekatkan kuesioner

86

Stiker bakti husada

stiker yang ditempel pada kardus sebagai identitas paket.

Stiker Fragile

Stiker yang ditempel pada kardus supaya dalam proses pengiriman kardus tidak dibanting

Stiker jangan dibalik (panah atas)

Stiker yang ditempel pada kardus supaya dalam proses pengiriman kardus tidak di bolak balik

Stiker penerima

stiker alamat B2P2VRP yang ditempel pada bagian atas kardus spesimen yang akan dikirim

Stiker pengirim

Stiker asal pengirim yang ditempel pada bagian atas kardus spesimen yang akan dikirim

87

88

89

90

43


91

Stiker rikhus (logo)

stiker yang ditempel pada kardus sebagai identitas paket.

92

Swab VTM

Bahan yang digunakan untuk melakukan swab trakea pada kelelawar

93

Swab Puritan

Alat yang digunakan untuk melakukan swab trakea pada microchiroptera secara aseptis

94

Tabung duran 250 ml

Tabung untuk menyimpan larutan PBS

95

Tabung duran 500 ml

Tabung untuk menyimpan larutan ethanol absolut

96

Tabung kaca

Tabung untuk menampung sampel ektoparasit, ginjal dan punch sayap.

44


97

Tali Tambang diameter 0.5 cm

Berfungsi untuk membantu pemasangan jaring kabut dan jaring harpa

98

Taplak plastik meja pemrosesan

Taplak untuk melapisi meja yang digunakan pada laboratorium lapangan

99

Tas Kamera

Tempat pelindung kamera saat tidak digunakan

Tip 200 µl

Digunakan bersama-sama dengan mikropipet untuk memindahkan serum dari venoject ke tabung cryovial.

101

Tea Ball

Tempat meletakkan kapas yang sudah dibasahi dengan isoflurane (anestesi kelelawar secara inhalasi)

102

Tempat kapas alcohol

Tempat untuk meletakkan kapas alkohol

100

45


Tenda doom kapasitas 4 orang

Tenda untuk tidur dilapangan saat lokasi jauh dari pemukiman penduduk

104

Tenda pemrosesan

Tenda yang digunakan untuk pembuatan laboratorium lapangan di lokasi jauh dari pemukiman.

105

Terpal

Pelindung tenda laboratorium lapangan

Thermohigrometer

Alat untuk mengukur suhu dan kelembaban udara.

107

Thermometer digital

Alat untuk memantau suhu saat pengiriman paket cold chain.

108

Timbangan digital

Alat untuk menimbang berat kelelawar.

103

106

46


Tisue gulung

Tissue untuk membersihkan meja dan alat laboratorium lapangan

110

Tissue towel

Tissue untuk membersihkan meja dan alat laboratorium lapangan

111

Vacutainer

Tabung untuk menampung darah sebelum di sentrifuge

112

Vial Tube 1,5 ml

Tabung untuk koleksi punch sayap kelelawar.

113

Xylazin 50 ml

Bahan kimia untuk anestesi kelelawar.

114

Zipper map

Alat untuk membantu anestesi kelelawar secara inhalasi

109

47


BAB VII. LABORATORIUM LAPANGAN

Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara penyusunan laboratorium lapangan Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan cara kerja di laboratorium lapangan dengan benar 2. Peserta dapat mengikuti alur pemeriksaan, identifikasi, pengambilan spesimen di laboratorium lapangan dengan benar Pengumpulan data oleh masing-masing tim dilaksanakan selama ± 30 hari dengan rincian: 5 hari pengumpulan data pada tiap ekosistem. Pengumpulan data diutamakan dimulai pada ekosistem hutan dekat pemukiman (5 hari), kemudian berturut-turut dilanjutkan pada ekosistem hutan jauh pemukiman, non-hutan dekat pemukiman, non-hutan jauh pemukiman, pantai dekat pemukiman, dan pantai jauh pemukiman. Rincian kegiatan pada masing-masing ekosistem dijelaskan sebagai berikut: Persyaratan Laboratorium lapangan 1. Memiliki ruangan tertutup atau tempat/ruang/tenda yang memenuhi syarat untuk pemrosesan dengan ventilasi dan penerangan cukup. 2. Memiliki penyimpanan sementara untuk spesimen serum dan swab berupa alat pendingin atau kulkas (refrigerator). 3. Memiliki sumber listrik memadai selama 24 jam untuk tempat penyimpanan serum dan swab sementara sebelum dikirim. Apabila di lokasi pengumpulan data tidak terdapat akses listrik 24 jam, maka ketua tim berkoordinasi dengan PJO untuk penyewaan cadangan listrik (genset,dll). 4. Memiliki ruangan tertutup atau tempat/ruang/tenda yang memenuhi syarat untuk pemrosesan dengan ventilasi dan penerangan cukup. Persiapan di Laboratorium Lapangan 1. Pemeriksaan kelengkapan alat dan bahan laboratorium lapangan serta seluruh formulir (menggunakan checklist alat-bahan). 2. Pemeriksaan ketersediaan refrigerator di laboratorium lapangan. Jika tidak tersedia, maka disiapkan 2 unit kardus stirofom untuk sampel serum, dan swab trachea. Pastikan

48


gel pack selalu dalam kondisi beku, jika gel pack sudah mencair maka diganti yang masih beku; 3. Persiapan meja dan kursi untuk pemrosesan spesimen 4. Persiapan serta pengaturan alat bahan yang digunakan selama proses laboratorium lapangan (anastesi, pengambilan darah, pengukuran, koleksi ektoparasit, pengambilan swab, dan punch sayap) 5. Persiapan tempat pembuangan limbah medis (sharps safety box dan plastik biohazard) serta non medis

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 25. Persiapan laboratorium lapangan Pembekuan Gel Pack Membekukan gel pack sejumlah yang dibutuhkan untuk 1 lokasi ke dalam lemari pendingin yang telah disiapkan sebelumnya dengan berkoordinasi bersama PJO Kabupaten. Gel pack dibekukan minimal selama 12 jam.

49


Gambar 26. Bagan penataan nampan di meja pada laboratorium lapangan untuk pemrosesan kelelawar 50


51


BAB VIII. KESELAMATAN HAYATI Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami tentang keselamatan hayati penanganan hewan yang tertangkap, laboratorium lapangan dan penanganan limbah serta tanggap darurat Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan keselamatan hayati penanganan hewan yang tertangkap 2. Peserta dapat melakukan keselamatan hayati laboratorium lapangan 3. Peserta dapat melakukan keselamatan hayati penanganan limbah 4. Peserta dapat melakukan tanggap darurat Keselamatan hayati adalah prinsip penyimpanan, teknologi dan praktek yang dilaksanakan dalam rangka melindungi pekerja pengumpul data dari paparan bahan-bahan berbahaya potensial (patogen dan toksin) serta tidak mencemari lingkungannya. Tujuan dari penerapan prinsip keselamatan hayati ini adalah melindungi data, sampel dan keselamatan pengumpul data. Hal yang perlu diperhatikan dalam pelaksanaan keselamatan hayati adalah pengumpul data mengetahui tentang resiko yang berpontensi menyebabkan infeksi selama proses pengumpulan data, menentukan dan menggunakan alat perlindungan diri kerja sesuai dengan prosedur dengan baik dan benar dan mengetahui tentang prosedur tanggap darvena yang tepat selama proses pengumpulan data. Semua tenaga pengumpul data harus mendapatkan imunisasi rabies dan telah memiliki titer antibodi proteksi. Berikut adalah tindakan yang diterapkan pada keselamatan hayati pada proses pengumpulan data: 1. Keselamatan hayati tahap penanganan hewan tertangkap a. Kenakan baju khusus lapangan b. Kenakan alas kaki tertutup c. Cuci tangan dan pergelangan tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir d. Kenakan sarung tangan e. Penanganan hewan secara manusiawi, jangan menimbulkan stress, sakit dan terluka Setelah selesai: a. Lepaskan sarung tangan dan buang di plastik biohazard b. Cuci tangan dan pergelangan tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir c. Lepas baju khusus lapangan. Jangan dibawa keluar area kerja. 2. Keselamatan hayati pengambilan sampel di laboratorium lapangan a. Kenakan baju laboratorium b. Kenakan alas kaki tertutup 52


c. Cuci tangan dan pergelangan tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir d. Kenakan masker e. Kenakan goggle f.

Kenakan sarung tangan nitril

g. Disinfeksi area kerja pengambilan sampel mengguinakan alkohol 70% 

Tuang alkohol 70%, pada towel tissue



Usap meja kerja menggunakan towel tissue yang sudah dituangi alkohol 70%

h. Lakukan pengambilan sampel sesuai prosedur kerja i.

j.

Setiap selesai pengambilan sampel satu individu, disinfeksi area dengan alkohol 70% 

Tuang alkohol 70%, pada towel tissue



Usap meja kerja menggunakan towel tissue yang sudah dituangi alkohol

Saat akan menggunakan syringe :2 

Buka tutup dengan cara mendorong lurus ke depan (Gambar 27.A)



Jangan meletakkan syringe yang sudah terbuka tutupnya disembarang tempat



Tutup syringe sudah digunakan dengan metode satu tangan (Gambar 27 B&C)



Buang syringe yang telah digunakan ke dalam sharp safety box A

B

C

Gambar 27. Cara menutup syringe yang telah digunakan k. Jangan menyentuh wajah dengan tangan pada saat bekerja dengan hewan, sampel atau sumber patogen. l.

Jangan makan minum di area pengambilan sampel

m. Jaga kebersihan area dari barang yang tidak terpakai.

53


Setelah selesai: 1. Disinfeksi area kerja menggunakan alkohol 70% dan detergent dengan cara: a. Tuang alkohol 70%, pada towel tissue b. Usap meja kerja menggunakan towel tissue yang sudah dituangi alkohol c. Cuci dengan air detergen menggunakan spon d. Bilas dengan air e. Keringkan 2. Bersihkan tangan dengan alkohol 70% sebelum melepaskan sarung tangan. Lepaskan sarung tangan dan buang di platik biohazard 3. Cuci tangan dan pergelangan tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir 4. Lepas baju khusus lapangan. Jangan dibawa keluar area kerja. 3. Keselamatan hayati penanganan limbah a. Kenakan baju laboratorium b. Kenakan alas kaki tertutup c. Cuci tangan dan pergelangan tangan dengan sabun dan bilas dengan air mengalir d. Kenakan masker e. Kenakan sarung tangan nitril f.

Ikat erat katong biohazard menggunakan tali dan amankan menggunakan isolasi

g. Disinfeksi bagian luar kantong biohazard menggunakan alkohol 70% h. Kumpulkan limbah biohazard di tempat yang aman sebelum sebelum dimusnahkan. i.

Selanjutnya lihat prosedur penanganan limbah.

4. Tanggap darurat pada pengumpulan data :3,4 1. Tanggap darurat jika anda terkena gigitan & cakaran hewan, luka goresan/ tusukan dari benda-benda yang kontak dengan hewan (kandang, jarum bekas, dsb): 2. Jika luka sangat serius : a.

Hentikan

perdarahan,

kontak

penanggung

lapangan/pimpinan/dokter

yang

bertugas, b.

Berobat ke klinik terdekat dan ceritakan tentang semua yang terjadi kepada dokter bertugas

3. Jika perdarahan tidak serius: a.

1-3 menit pertama, cuci luka secepatnya dengan air mengalir.

b.

Gosok luka dengan busa penggosok yang dibubuhi sabun betadine selama 15 menit (pov. Iodine). 54


c.

Tekan luka sedemikian rupa untuk mengeluarkan darah pada waktu penggosokan.

d.

Bilas dengan air mengalir.

e.

Melapor pada penanggung jawab lapangan/ dokter bertugas dan ceritakan tentang semua yang terjadi kepada yang bertugas.

4. Jika terpercik cairan asal hewan (urin, saliva) atau cairan terkontak dengan hewan pada membran mukosa (misalnya pada mata atau mulut): a.

1-3 menit pertama, segera bilas dengan saline steril/ air steril yang tersedia selama 15 menit.

b.

Melapor pada penanggung jawab lapangan/dokter bertugas dan ceritakan tentang semua yang terjadi kepada yang bertugas.

5. Jika goggles terpercik cairan asal hewan (urin, saliva) atau cairan yang terkontak dengan hewan: a. Goggle yang terpercik cairan asal hewan (urin, saliva) atau cairan yang terkontak dengan hewan pada membran mukosa (misalnya pada mata atau mulut), dilepas kemudian gunakan goggle yang baru b. Tutup bagian goggle yang terkena tumpahan dengan towel tissue c. Tuang alkohol 70%, secara perlahan ke towel tissue tersebut d. Ambil towel tissue, buang ke plastik biohazard e. Cuci goggle dengan air deterjen hangat f. Bilas dengan air mengalir g. Keringkan 6. Tanggap darurat apabila terjadi perdarahan besar: a. Apabila pendarahan pada bagian lengan 1)

Angkat lengan sehingga posisi lengan berada diatas jantung

2)

Tekan luka dengan menggunakan kain kasa sampai pendarahan berhenti.

3)

Apabila kain kasa terlalu basah, tambah dengan kain kasa baru diatas kain kasa lama sambil terus ditekan

4)

Ikat bagian lengan yang dekat dengan luka, ikat lengan bagian antara luka dengan badan korban sampai pendarahan berhenti

5)

Segera bawa ke fasilitas kesehatan terdekat

b. Apabila pendarahan pada bagian kaki 1)

Baringkan dan angkat kaki sehingga posisi kaki berada diatas jantung

2)

Tekan luka dengan menggunakan kain kasasampaipendarahanberhenti.

55


3)

Apabila kain kasa terlalu basah, tambah kain kasa baru diatas kain kasa lama sambil terus ditekan

4)

Ikat bagian lengan (kaki) yang dekat dengan luka, ikat lengan bagian antara luka dengan badan korban sampai pendarahan berhenti

5)

Segera bawa ke fasilitas kesehatan terdekat

c. Apabila pendarahan pada bagian kepala: 1) Tekan luka dengan menggunakan kain kasa sampai pendarahan berhenti. 2) Apabila kain kasa terlalu basah, tambah dengan kain kasa baru diatas kain kasa lama sambil terus ditekan 3) Segera bawa ke fasilitas kesehatan terdekat

56


BAB IX. PROSEDUR PENANGKAPAN KELELAWAR Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara penangkapan kelelawar Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat menentukan lokasi penangkapan kelelawar dengan benar 2. Peserta dapat melakukan penangkapan kelelawar dengan benar Penangkapan kelelawar pada survey ini menggunakan jaring kabut (mist net), perangkap harpa (harp trap), dan jaring tangan (hand net). Ketiganya dapat digunakan bersama-sama untuk saling melengkapi. Jaring kabut efektif untuk menangkap kelelawar pemakan buah (megachiropteran), sedangkan perangkap harpa dan jaring tangan terutama digunakan untuk menangkap kelelawar pemakan serangga di jalur terbang, sarang atau tempat roosting (microchiropteran). a. Alat dan Bahan 1. Jaring kabut (mist net) 6 dan 9 m 2. Perangkap harpa (harp trap) 3. Jaring tangan (hand net) 4. Parang 5. Bambu 6. Tali rafia 7. Pita jepang 8. Tali tambang kecil diameter 5 mm 9. GPS (Global Positioning System) 10. Sarung tangan kulit 11. Sarung tangan nitril 12. Kantong Blacu 40x30 Cm 13. Label lapangan 14. Benang kasur 15. Pensil 16. Head lamp dan senter tangan 17. Kamera DSLR 18. Formulir TK.01 57


19. Formulir TK.02 20. Formulir K.03 b. Proses Penangkapan Kelelawar5,6,7 Beberapa tahapan di dalam proses koleksi kelelawar antara lain: 1. Observasi Lapangan Observasi dilakukan selama 2 hari

pada saat memasang dan setelah memasang

perangkap tikus. Tujuan observasi untuk mengetahui jalur terbang, feeding ground kelelawar dan sarang guna menentukan lokasi pemasangan jaring kabut, perangkap harpa, dan jaring tangan. Penentuan lokasi dilakukan dengan cara menjelajah lapangan di berbagai habitat target dengan melihat secara visual ada tidaknya kelelawar terbang dan sisa makanan disekitar pohon buah. Lokasi daerah jelajah kelelawar seperti sungai berarus tenang dengan banyak kobakan sebagai habitat serangga dan sisi kiri dan kanan membentuk lorong, lorong dalam hutan (panjang lorong lebih dari 30 m untuk megachiroptera), sekitar pohon berbunga/berbuah, rumpun bambu, genangan air, di bawah lorong jembatan, gua, punggung bukit dan di bawah atap rumah. Koordinat lokasi pemasangan jaring dideteksi menggunakan GPS terkalibrasi. Setelah lokasi pemasangan ditentukan, pemasangan perangkap siap dilakukan. Pengisian Form TK.1, TK.2, dan K.3 dilakukan pada saat ini. Pemasangan perangkap harus sudah selesai dilakukan pada sore hari sebelum matahari tenggelam. 2. Pemasangan Jaring a. Pemasangan jaring kabut (mist net) Jaring kabut dipasang di lintasan/jalur terbang kelelawar seperti: melintang sungai, tepi hutan atau pintu hutan, lorong di dalam hutan, sekitar pohon berbuah, perbukitan, pemukiman, kebun dan rumpun bambu. Pemasangan jaring kabut di titik dekat pemukiman sejumlah empat buah, sedangkan titik jauh pemukiman, jaring kabut dipasang sejumlah enam buah. Jaring kabut dapat dipasang dengan menggunakan dua tiang, dikerek pada dua pohon atau bisa juga dikerek dengan dua batang bambu. Jaring dipasang pada berbagai ketinggian dari permukaan tanah (0,5 s/d 15 meter) tergantung hasil observasi. Keberadaan kelelawar berukuran besar (Pteropus spp, Dobsonia spp) apabila tidak terlihat secara visual, pemasangan jaring kabut tinggi 10 s/d 15 meter diganti tinggi 1 s/d 6 meter, dan atau di sekitar tanaman yang sedang berbuah dengan ketinggian 10 s/d 15 meter. Jaring kabut 58


untuk kelelawar kecil dipasang ditempat lebih rendah (1 s/d 6 meter). Tenaga lokal dan anggota tim memasang bambu untuk pemasangan jaring kabut. Jaring kabut dipasang sore hari sebelum matahari terbenam. Jaring kabut dilepas pada pagi setelah pemanenan. Pemanenan kelelawar dilakukan pada pukul 19.00 s/d 22.00 dengan interval satu jam dan pukul 06.00 pagi. Cara pemasangan jaring kabut (mist net) tinggi (10 s/d 15 meter) : 1) Siapkan form GPS, parang, tali rafia dan tali tambang. 2) Siapkan jaring kabut 3) Siapkan bambu setinggi ± 15 meter 4) Buat simpul pada ujung bambu (gambar 28) 5) Masukkan tali tambang sepanjang ± 40 meter pada tali simpul di ujung bambu (gambar 28) 6) Pemasangan bambu dilakukan oleh tenaga lokal sesudah pengambilan tikus 7) Ikat bambu pada pohon atau menggunakan pasak di lokasi terpilih (gambar 28) 8) Jaring kabut dipasang sore hari 9) Rentangkan jaring kabut dan jangan sampai ada bagian jaring mengenai tanah ataupun tanaman disekitar, karena seresah yang menempel di jaring susah dibersihkan. 10) Susun tali pengekang (trammel) di pinggir jaring dari nomor 1 hingga nomor 4, dari atas kebawah (gambar 28) 11) Pemasangan trammel dilakukan satu persatu pada tali tambang yang sebelumnya dibuat simpul dan dimulai dari trammel no 1 - 4 (dari atas kebawah) dengan kerek tali tambang keatas secara perlahan. Perhatian: pengerekan jaring harus bersamaan antara sisi kanan dan kiri. 12) Ikat tali tambang pada patok atau pohon disekitar 13) Jarak antar trammel meregang membentuk kantong agar jaring kuat saat terbentang sehingga kelelawar tertangkap tergulung akan trammel. 14) Setelah selesai pemasangan jaring, pasang pita jepang disekitar tiang pancang dan beri label (gambar 28) 15) Ambil koordinat titik pemasangan jaring menggunakan GPS (lihat Prosedur Penggunaan GPS) 16) Catat hasilnya di formulir TK.2. 17) Hal sama dilakukan pada jaring kabut ke 2

59


@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 28. Cara memasang mist net dengan tiang bambu Cara pemasangan jaring kabut (mist net) rendah (1 – 6 meter) : 1) Siapkan jaring kabut 2) Cari pohon dengan jarak ± 6 -9 meter dan tinggi dahan ± 7 meter 3) Bila menggunakan bambu langkah pemasangan seperti mist net 10-15 m 4) lemparkan tali tambang sampai tersangkut di batang pohon dengan ketinggian ± 7 meter (gambar 29) 5) Rentangkan mist net dan jangan sampai ada bagian jaring mengenai tanah atau tanaman sekitar, karena serasah yang menempel di jaring susah dibersihkan. 6) Susun tali trammel dari nomor 1 hingga nomor 4 (dari atas kebawah) 7) Pemasangan trammel dilakukan satu persatu pada simpul tali tambang dan dimulai dari atas kebawah, trammel nomor 1 hingga nomer 4, dan kerek tali tambang

keatas

secara

perlahan.

Perhatian:

pengerekan

jaring

harus

bersamaan antara sisi kanan dan kiri. 8) Jaring kabut diberi nomor dengan pita jepang. (gambar 29) 9) Ikat tali tambang pada patok atau pohon disekitar (gambar 29) 10) Jarak antar trammel meregang membentuk kantong agar jaring kuat saat kelelawar tergulung pada trammel

60


@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 29. Cara memasang mist net pada pohon disekitar lintasan kelelawar 11) Setelah selesai pemasangan jaring ambil koordinat titik pemasangan jaring menggunakan GPS (lihat Prosedur Penggunaan GPS) 12) Catat hasilnya di formulir TK.2 dan lakukan hal yang sama pada jaring kabut berikutnya. b. Pemasangan perangkap harpa (harp trap)8 Perangkap harpa dipasang pada jalur terbang atau tempat sumber pakan kelelawar microchiropteran seperti, melintang sungai, kubangan air, lorong dalam hutan atau bekas jalan logging yang membentuk lorong. Usahakan pemasangan perangkap harpa lebih dekat dengan sarang atau kombinasi dengan jaring kabut (berfungsi mengarahkan

kelelawar

microchiropteran

ke

perangkap

harpa)

untuk

mensiasati perilaku terbang kelelawar pemakan serangga yang lebih banyak di atas kanopi tanaman saat makan. Bagian kiri, kanan dan/atau atas perangkap harpa ditutup menggunakan batang daun/tumbuhan yang terdapat di sekitarnya dan atau dimodifikasi dengan pemasangan jaring kabut. Hal tersebut dilakukan agar kelelawar tidak lolos melalui bagian terbuka. Jika dalam dua kali pengamatan perangkap harpa kosong, maka dapat dipindahkan ke tempat lain sesuai observasi.

61


Cara pemasangan perangkap harpa: 1) Buka kain pembungkus dengan hati-hati 2) Pisahkan bagian kaki, tiang penghubung, harpa dan tiang penyangga 3) Pasang bagian bawah dengan menyambungkan antara tiang penghubung dengan tiang penyangga (gambar 30) 4) Pasang harpa pada tiang penyangga dengan kuat 5) Turunkan harpa satu per satu dimulai dari bagian dalam keluar kemudian pasang besi pada lubang bagian bawah. 6) Pasang kantung kelelawar pada bagian bawah (gambar 30) 7) Pasang dan atur kaki perangkap harpa sesuai tinggi lorong 8) Ikat tiang perangkap harpa kiri dan kanan pada pohon didekat lokasi atau ikat pada beberapa pasak 9) Tutup bagian atas, bawah, kanan dan kiri harpa dengan dedaunan atau pohon disekitar agar kelelawar tidak bisa terbang menerobos 10) Tutup bagian kiri dan kanan bagian atas kantung kelelawar dengan menggunakan daun, karena beberapa jenis kelelawar (Murina sp., Kerivoula sp.) mampu memanjat keluar kantung melalui bagian ini 11) Setelah selesai pemasangan ambil koordinat titik pemasangan perangkap harpa menggunakan GPS (lihat Prosedur Penggunaan GPS) 12) Catat hasilnya di formulir TK.2. 13) Ambil dokumentasi habitat (lihat Prosedur Dokumentasi)

@. ghaniy

@. Ghaniy

Gambar 30. Cara memasang perangkap harpa (harp trap) c. Penangkapan dengan jaring tangan (handnet) Handnet digunakan untuk menangkap kelelawar di sekitar gua, sarang kelelawar atau kelelawar yang terlihat. Penangkapan dengan handnet dilakukan saat pemasangan perangkap dan setelah pemasangan mist net serta harp trap.

62


Penggunaan handnet di luar gua digunakan pada habitat bersarang/roosting koloni kelelawar, area berburu kelelawar atau area aktivitas terbang kelelawar dapat diamati dengan jelas. Misalnya: di bawah lampu penerang jalan untuk spesies dari Famili Vespertilionidae, atau lorong-lorong kebun dengan vegetasi agak rapat untuk spesies dari Famili Pteropodidae pada umumnya, kecuali dari Genus Dobsonia, Pteropus dan kelelawar besar lainya. Penggunaan handnet dilakukan sepanjang waktu selama memungkinkan (pada hari ketiga). Koordinat titik kelelawar tertangkap diambil menggunakan GPS (lihat Prosedur Penggunaan GPS). Hasilnya dicatat di formulir

TK.02.

Habitat

kelelawar

tertangkap

didokumentasikan

(prosedur

dokumentasi). 3.

Penanganan Kelelawar a. Penanganan kelelawar dari jaring kabut 1)

Menetapkan dari sisi mana kelelawar masuk/menabrak jaring. Kelelawar dilepaskan dari sisi arah masuknya. Untuk mengetahui arah kelelawar menabrak jaring dapat diketahui dengan posisi arah dada/ventral kelelawar terhadap bentangan jaring kabut.

2)

Gunakan sarung tangan kulit untuk menahan dan mengontrol kepala kelelawar dengan tangan kiri (leher kelelawar dipegang dengan cara melingkarkan jari telunjuk dan ibu jari) dan tangan kanan memakai sarung tangan nitril untuk melepas jaring.

3)

Lepaskan daerah punggung bawah dan kaki dari jaring, usahakan kelelawar tidak kembali terjerat jaring.

4)

Lepaskan bagian jari dari jaring satu per satu, kumpulkan mesh pada sayap mengarah ke pangkal lengan bawah

5)

Tarik secara perlahan kelima jari sayap, setelah lepas naikkan mesh yang terkumpul pada pangkal lengan bawah sehingga sayap terlepas dari jaring kabut.

6)

Sesudah seluruh bagian sayap terlepas dari jaring, lipat sayap kearah tubuh kelelawar dan genggam menggunakan tangan kiri untuk mencegah kelelawar kembali terjerat dalam jaring. Lanjutkan dengan mengeluarkan kelelawar ke depan di atas tubuh dan kepala. Pastikan kepala cukup terkendali untuk mencegah digigit.

7)

Alihkan perhatian kelelawar besar dengan memberi kayu kecil untuk mencegah kelelawar mengunyah jaring atau mengigit tangan ekstraktor,. 63


8)

Masukan kelelawar ke dalam kantung belacu dan diberi label lapangan diisi berdasar nomor jaring kabut dan jam ekstraksi, gantung kantong berisi kelelawar secara berurutan dan kelompokkan berdasar label lapangan. Beri kode pada label untuk kelelawar dengan kondisi bunting atau sedang menyusui (B= bunting dan M=menyusui)

9)

Dilanjutkan dengan Prosedur Anestesi.

@. Yuli

Gambar 31. Pelepasan Kelelawar dari Jaring Kabut b. Penanganan Kelelawar dari Perangkap Harpa Pengecekan perangkap harpa dilakukan pada pukul 19.00-22.00 dengan interval 1 jam dan pukul 06.00 (menyesuaikan dengan kondisi terbitnya matahari, jika kondisi sudah panas kelelawar dikhawatirkan akan mati). Kelelawar diambil dari kantung perangkap dengan cara membalik kantong blacu kemudian mengambil kelelawar dalam kantong harpa dengan kondisi tangan terlindungi kantong yang dibalik. Setelah kantong blacu diikat, beri label lapangan sesuai urutan penomoran perangkap harpa, gantung kantong berisi kelelawar. Dilanjutkan dengan Prosedur Anestesi Kelelawar c. Penanganan Kelelawar dari Jaring Tangan Kelelawar yang tertangkap jaring tangan harus segera dipindahkan ke kantung blacu untuk mengurangi resiko stress. Kantung blacu diberi label lapangan dan sesuaikan dengan jam penangkapan jaring kabut dan perangkap harpa, gantung kantong berisi kelelawar dan sesuaikan urutannya. Dilanjutkan dengan Prosedur Anestesi Kelelawar.

64


4.

Pemberian label lapangan : Label lapangan berupa kertas manila berlubang di ujungnya untuk mengikatkan benang kasur pada kantong kain, dituliskan nomor jaring kabut, atau perangkap harpa dan atau jaring tangan dan nomor kelelawar tertangkap serta jam ekstraksinya.

5. Penurunan Jaring a. Penurunan jaring kabut (mist net) Cara penurunan jaring kabut (mist net) tinggi (10 – 15 meter) : 1) Turunkan jaring secara bersama antara sisi kanan dan kiri. Perhatian jangan sampai ada bagian jaring mengenai tanah ataupun tanaman/serasah, apabila menempel di jaring susah dibersihkan (gambar 26) 2) Urutkan trammel dari nomor 4 hingga nomor 1, dari bawah keatas (gambar 26) 3) Bagian jaring yang menggantung dinaikkan ke trammel 4) Salah satu sisi (sebelah kiri) pegang ujung trammel pada tangan kiri, tangan kanan mengambil jaring sepanjang bentang tangan kemudian disatukan dengan tangan kiri. Lakukan hingga ujung sisi yang lain (kanan) (gambar 26) 5) Pegang jaring pada tangan kiri, tangan kanan mengambil tali jaring yang ada dibawah dan disatukan 6) Masukan jaring yang sudah dilipat pada sebuah plastik. Jaring tidak boleh dicampur. Satu plastik untuk 1 jaring kabut 7) Tarik tali tambang panjang hingga terlepas dari simpul diujung bambu

Gambar 32. Cara melepas mist net Cara penurunan jaring kabut (mist net) rendah (1 – 6 meter) : @. Yuli 1) Lepas ikatan tali tambang pada pasak atau pohon

65


2) Turunkan jaring secara bersama antara sisi kanan dan kiri. Perhatian jangan sampai ada bagian jaring mengenai tanah ataupun tanaman/serasah, apabila menempel di jaring susah dibersihkan 3) Urutkan trammel dari nomor 4 hingga nomor 1 (dari bawah keatas) 4) Bagian jaring yang menggantung dinaikkan ke trammel 5) Salah satu sisi (sebelah kiri) pegang ujung trammel pada tangan kiri, tangan kanan mengambil jaring sepanjang bentang tangan kemudian disatukan dengan tangan kiri. Lakukan hingga ujung sisi yang lain (kanan) (gambar 26) 6) Pegang jaring pada tangan kiri, tangan kanan mengambil tali jaring yang ada di bawah dan disatukan 7) Masukan jaring yang sudah dilipat pada sebuah plastik. Jaring tidak boleh dicampur. Satu wadah/plastik hanya untuk 1 jaring kabut 8) Tarik tali tambang panjang hingga terlepas dari simpul diujung bambu b. Pembongkaran perangkap harpa (harp trap) Cara pembongkaran perangkap harpa : 1) Lepas dan buang semua daun dan dahan pohon yang dipasang pada sekitar perangkap harpa 2) Lepas ikatan jaring pengaman perangkap harpa pada pohon atau patok pasak 3) Lepas kaki perangkap harpa 4) Lepas kantong perangkap harpa dan letakkan diatas tanah 5) Lepas dan gulung satu per satu harpa dimulai dari harpa paling luar, letakkan diatas kantong harpa 6) Lepas bagian bawah harpa. Hati-hati skrup jangan sampai jatuh dan hilang 7) Lepas satu per satu tiang penghubung dan tiang penyangga 8) Satukan semua bagian perangkap harpa di atas kantong harpa kemudian bungkus supaya tidak tercecer dan mudah dibawa

66


67


BAB X. PROSEDUR PENGUKURAN PARAMETER LINGKUNGAN Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara pengukuran parameter lingkungan. Tujuan Pembelajaran Khusus: Peserta dapat melakukan pengukuran parameter lingkungan dengan benar Parameter lingkungan dalam Riset Khusus Reservoir penangkapan kelelawar meliputi suhu udara dan kelembaban udara. Pengukuran parameter lingkungan dilakukan menggunakan peralatan yang telah disediakan berupa thermo-hygrometer.

Pengukuran suhu udara dan kelembaban udara 1. Alat dan bahan a. Thermo-hygrometer digital b. Formulir K.3 (Lokasi Penangkapan Kelelawar) c. Alat tulis 2. Cara kerja a. Siapkan formulir K.3 (Lokasi Penangkapan Kelelawar) b. Pengukuran suhu dan kelembapan dilakukan selama 5x (setiap kali ekstraksi) c. Posisikan alat thermo-hygrometer digital pada lokasi pengumpulan data (lokasi pemasangan perangkap) saat ekstraksi kelelawar. d. Nyalakan alat dengan memasukkan baterai. e. Tunggu sejenak sampai alat menunjukkan angka yang tetap/stabil. f.

Jika sudah stabil, catat suhu dan kelembaban udara di formulir K.3 (Lokasi Penangkapan Kelelawar)

g. Matikan alat setelah selesai menggunakan dengan mencabut baterai.

68


69


BAB XI. PROSEDUR ANESTESI KELELAWAR Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara anestesi pada kelelawar. Tujuan Pembelajaran Khusus: Peserta dapat melakukan anestesi pada kelelawar dengan benar Anestesi atau pembiusan adalah pengurangan atau penghilangan sensasi untuk sementara, sehingga operasi atau prosedur lain yang menyakitkan dapat dilakukan. Anestesi pada kelelawar dilakukan secara general bertujuan untuk menghilangkan kesadaran dan mengurangi rasa sakit pada saat pengambilan sampel dilakukan. Ada dua jenis anestesi yang bisa dilakukan pada kelelawar yaitu secara inhalasi memakai isoflurane (Microchiropteran) dan secara

injeksi

intramuscular

memakai

ketamin

dikombinasi

dengan

xylazine

(Megachiropteran)9,10 1. Alat dan Bahan a. Jas Laboratorium

g. Ketamin

b. Sarung tangan nitril

h. Xylazine

c. Masker

i.

Kapas

d. Ziper plastik

j.

Alkohol 70%

e. Tea ball

k. Timbangan digital

f.

l.

Isoflurane

Syringe 1 cc

2. Pembiusan Kelelawar dengan Isoflurane (untuk kelelawar kecil/ Microchiroptera)11 a. Tenaga pengumpul data memakai sarung tangan nitril b. Siapkan form koleksi kelelawar (form K.4) dan (Form TK. 11) c. Tulis label kelelawar yang ada di kantung belacu pada form koleksi bagian catatan. d. Timbang berat badan kelelawar dengan timbangan digital. a. Tulis berat badan kelelawar pada form K.4, bagian B (Identifikasi dan morfometri) no 10 (pengukuran) dan form TK. 11 e. Siapkan tea ball dan kapas yang sudah diberi isoflurane sebanyak 0,5 cc. f.

Masukkan kapas kedalam tea ball, letakkan di dalam plastik zipper dan tutup rapat. (Gambar 33.A)

70


g. Keluarkan kelelawar dari kantong dan masukkan ke dalam ziper plastik berisi isoflurane. (Gambar 33B) h. Kelelawar dibiarkan selama ± 2-3 menit agar isoflurane bekerja atau periksa reflek kelelawar dengan menekan ujung jari sayap, jika reflek sayap sudah tidak ada berarti sudah terbius. i.

Keluarkan kelelawar dari kantong plastik dan tutup kembali plastik zipper (bisa digunakan untuk pembiusan kelelawar selanjutnya).

j.

Dilanjutkan dengan Prosedur Koleksi Ektoparasit.

A

B

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 33. Tea ball (A) dan kelelawar microcheroptera dalam kantong zipper (B) 3. Pembiusan

Kelelawar

dengan

Ketamin

dan

Xylazine

(untuk

kelelawar

besar/

Megachiroptera)9,10 a. Tenaga pengumpul data memakai sarung tangan nitril b. Siapkan form koleksi kelelawar (form K.4) dan (form TK. 11) c. Tulis label kelelawar yang ada di kantung belacu pada form koleksi bagian catatan. d. Timbang berat badan kelelawar dengan timbangan digital. e. Tulis berat badan kelelawar pada form K.4, bagian B (Identifikasi dan morfometri) no 10 (pengukuran) dan form TK. 11 f.

Buka ikatan karung blacu, kemudian palpasi karung berisi kelelawar untuk menentukan kepala kelelawar.

g. Tangan kanan memegang tengkuk kelelawar bagian belakang dengan keempat jari, sedangkan ibu jari diletakkan di bawah mandibula agar kelelawar tidak menggigit (Gambar 34.A). h. Buka karung sampai separuh badan kelelawar bagian belakang terlihat. i.

Fiksasi kedua sayap kelelawar.

j.

Kedua kaki belakang kelelawar dipegang dengan tangan kiri.

71


k. Tenaga pengumpul data kedua menyiapkan ketamin dan xylazine dalam satu syringe (gambar 34.B) l.

Usap bagian paha kelelawar dengan kapas yang dibasahi alkohol 70%. (gambar 34.C)

m. Kelelawar diinjeksi dengan campuran ketamin dan xylazine sesuai dosis secara intramuscular di kaki belakang. (gambar 34.D) n. Dilanjutkan dengan Prosedur Koleksi Ektoparasit.

A

B @. Yuli

@. Yuli

D

C

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 34. Pembiusan kelelawar dengan ketamine dan xylazine

Catatan : a. Campur ketamine dan xylazine dalam satu syringe dengan perbandingan 1 : 1. Misalnya : 0.5 ml ketamin + 0.5 ml xylazine b. Injeksi kelelawar dengan dosis 0.04 ml/100 gram berat badan

72


73


BAB XII. PROSEDUR KOLEKSI EKTOPARASIT Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara koleksi ektoparasit pada kelelawar. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan koleksi ektoparasit dengan benar 2. Peserta dapat memberi label pada spesimen ektoparasit dengan benar Koleksi ektoparasit dimaksudkan untuk mengetahui infestasi keragaman maupun jumlah ektoparasit pada tubuh kelelawar. Ektoparasit merupakan organisme parasit yang hidup pada permukaan luar tubuh kelelawar, termasuk di dalam liang-liang dalam kulit dan rongga telinga yang mempunyai hubungan dengan dunia luar. Organisme ektoparasit kelelawar mempunyai bentuk, sifat dan tempat hidup yang beragam. Jenis ektoparasit pada kelelawar seperti Macronyssidae, Spintumicidae, Argasidae, Ioxididae dan Trombiculidae sedangkan jenis serangga seperti Streblidae, Nycteribidae dan Hemiptera (Lekagul dan McNeely, (1977). 1. Alat dan Bahan a. Jas Laboratorium

i.

Alkohol 70%


j.

Label ektoparasit

c. Masker

k. Pensil

d. Baki putih

l.

e. Pinset ujung lancip

m. Pencetak label pita Dimo

f.

n. Form K.4 (Koleksi kelelawar)

Skalpel ujung tombak

g. Sikat gigi

Pita Dimo

o. Form TK.11 (Koleksi kelelawar)

h. Vial ektoparasit (vial kaca tutup ulir) 2. Cara Kerja a. Siapkan formulir koleksi kelelawar (form K.4) dan (form TK. 11) b. Kelelawar pertama diproses diberi label pita dimo berisi kode wilayah (Provinsi, Kabupaten, Jenis Ekosistem) dan nomor urut kelelawar. Kelelawar pertama diberi nomor urut spesimen 001 dan seterusnya. Label diikatkan pada kaki kanan kelelawar. c. Catat nomor jaring yang tertera di label lapangan pada kolom catatan formulir koleksi kelelawar

74


d. Siapkan stiker label ektoparasit e. Siapkan vial ektoparasit, diisi alkohol 70% sebanyak 2/3 volume vial. f.

Kelelawar hidup atau mati disisir menggunakan sikat gigi. Beberapa jenis ektoparasit harus diambil menggunakan pinset ujung runcing dan mencapit langsung dari tubuh kelelawar (gambar 35 A&B)

g. Ektoparasit yang jatuh dibaki enamel, diambil menggunakan pinset kecil atau skalpel ujung tombak dan dimasukkan kedalam vial. (gambar 35 C) h. Beri label kertas ektoparasit berisi kode spesimen menggunakan pensil dan dimasukkan kedalam vial. i.

Satu vial berisi ektoparasit dari satu ekor kelelawar (gambar 35 D)

j.

Beri stiker label Kode Wilayah dan label nomor urut kelelawar pada dinding luar vial.

k. Setelah selesai, isi formulir K.4, bagian A (Koleksi spesimen 1) dan formulir TK. 11 l.

Dilanjutkan dengan Prosedur Dokumentasi Sampel.

.

A

B

@. Yuli

@. Yuli

C

D

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 35. Koleksi ektoparasit pada kelelawar

75


BAB XIII. PROSEDUR DOKUMENTASI SAMPEL Dokumentasi foto dan video dilakukan untuk merekam ekosistem tempat pemasangan jaring kabut dan perangkap harpa serta sebagai salah satu alat bantu proses identifikasi morfologi dari koleksi sampel kelelawar. Identifikasi dilakukan berdasarkan ukuran tubuh dan warna rambut kelelawar. Penggunaan formalin dalam pembuatan awetan akan membuat warna rambut berubah sehingga pengambilan dokumentasi koleksi sampel yang tertangkap sangat penting. Dokumentasi foto, digunakan juga sebagai database yang dihasilkan Riset khusus Vektor dan Reservoir Penyakit. Dokumentasi foto dilakukan pada semua sampel tertangkap. Dokumentasi sampel kelelawar diperlukan untuk mengkonfirmasi identifikasi spesies oleh tim teknis pusat (B2P2VRP) setelah spesimen diterima di laboratorium. Dokumentasi diambil setelah prosedur koleksi ektoparasit selesai 1. Alat dan bahan: a.

Kamera digital resolusi minimal 12 Megapiksel (MP).

b.


c.

Formulir K.4 (Koleksi Kelelawar)

d.

Formulir TK. 11 (Koleksi Kelelawar)

2. Cara kerja : a.

Siapkan formulir koleksi kelelawar

b.

Siapkan kamera digital.

c.

Seting kamera pada mode full auto

d.

Latar belakang pemotretan gelap, apabila sampel akan di-release pengambilan gambar dilakukan dalam kondisi kelelawar dipegang dengan tangan

e.

Bentangkan kedua sayap kesamping.

f.

Gunakan mode makro (macro mode) untuk memotret bagian sampel pada jarak sangat dekat sehingga akan memperlihatkan bentuk dan struktur bagian sampel tersebut (memotret microchiroptera di bagian muka, telinga, tragus dan antitragus.

g.

Penajaman obyek: usahakan obyek difoto harus fokus, tidak kabur/blur.

h.

Atur sehingga label pita dimo terfoto dengan jelas.

i.

Pengambilan dokumentasi kelelawar dilakukan pada bagian muka, telinga, ventral dan dorsal 76


j.

Muka depan (gambar 36A) dan samping (gambar 36B), untuk kelelawar pemakan serangga ditambahkan foto bagian telinga untuk menunjukkan tragus dan antitragus (gambar 36C)

A

C

B

@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

b.Ventral

c. Dorsal

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 36 Dokumentasi foto bagian bagian kelelawar k.

Hasil foto dicatat dalam formulir koleksi kelelawar (K.4) bagian C (Pengambilan Dokumentasi Spesimen) dan formulir TK. 11

l. Dilanjutkan dengan Prosedur Identifikasi. 3. Dokumentasi Habitat Dokumentasi habitat tempat pemasangan perangkap dilakukan dalam 2 mode, format gambar (*.jpg) dan video (*.mov). Dokumentasi habitat dilakukan pada saat pemasangan perangkap kelelawar pada semua ekosistem. Hal utama yang harus diperhatikan dalam foto habitat adalah adanya objek di dalam foto sebagai pembanding, agar mengetahui skala dari foto. Objek pembanding tersebut bisa menggunakan objek manusia. Dokumentasi video, atur kamera dalam mode merekam video kemudian tekan tombol movie dan arahkan kamera pada tempat pemasangan perangkap. Gerakkan kamera secara vertikal dan atau horisontal secara perlahan, rekam habitat pemasangan perangkap 77


dengan durasi setiap video lebih dari 15 detik. Durasi video setiap ekosistem selama 5 – 10 menit.

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 37. Dokumentasi habitat kelelawar

4. Dokumentasi Kegiatan Dokumentasi kegiatan berisi semua kegiatan pengumpulan data dari persiapan, pemasangan dan pengambilan jaring, pemrosesan kelelawar dari anastesi sampai koleksi awetan basah. 5. Penyimpanan Data a. Penyimpanan dilakukan dengan menyimpan hasil foto dalam satu folder dengan nama forlder adalah kode wilayah (contoh: 33261 untuk Provinsi Jawa Tengah, Kabupaten Pekalongan, Ekosistem Hutan Dekat Pemukiman). b. Foto dan video habitat disimpan dalam folder per ekosistem dengan nama folder FH. kode wilayah.untuk dokumentasi foto dan VH. Kode wilayah untuk dokumentasi video. Contoh FH 33261; VH.33261 c. Rename/ubah nama file asli kamera dengan nama: i. Foto muka depan : MD.kode wilayah + no.urut kelelawar.Contoh: MD.33261K001 ii. Foto muka samping : MS. kode wilayah + no.urut kelelawar. Contoh: MS.33261K001 iii. Foto dorsal

: D.kode wilayah + no.urut kelelawar. Contoh: D.33261K001

iv. Foto ventral

: V.kode wilayah + no.urut kelelawar. Contoh: V.33261K001

78


v. Nama file foto i-iv dituliskan dalam formulir koleksi bagian dokumentasi sampel, sedangkan nama file foto habitat dituliskan dalam kolom catatan pada formulir koleksi. d. Transfer file foto dan video dari memory card ke hard disk dengan cara cut file dan paste ke media simpan. e. Jangan melakukan editing menggunakan aplikasi edit foto seperti photoshop, dll karena akan merubah identitas foto. f.

Setelah seluruh puldat selesai, copy folder-folder (jumlah: 6 folder), kemudian tim teknis yang melakukan supervisi akan meng-copy folder tersebut.

g. Semua dokumentasi kegiatan selama pengumpalan data (Foto dan video kegiatan, tim puldat) diserahkan ke tim teknis B2P2VRP 5. Hal yang Perlu Diperhatikan a. Hindari suhu ekstrim (ketahanan mmc) b. Hindari debu saat membuka lensa c. Selalu bersihkan dengan cleaning kit (terutama setelah digunakan pada daerah pantai maupun berdebu) d. Hindari jatuh e. Setelah selesai dari lapangan keluarkan dari tas, simpan dalam dry kardus untuk menghindari jamur f.

Selalu back-up data usai dari lapangan

79


BAB XIV. PROSEDUR IDENTIFIKASI KELELAWAR Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara identifikasi spesimen kelelawar sesuai dengan kunci identifikasi yang terdapat pada buku pedoman. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1.

Peserta dapat melakukan identifikasi keleawar dengan benar

2.

Peserta dapat menentukan umur keleawar dengan benar Pengetahuan mengenai ciri-ciri penting kelelawar merupakan kunci utama dalam

identifikasi jenis.

Beberapa ciri penting yang dapat digunakan dalam identifikasi kelelawar

antara lain: 1.

Ukuran tubuh (FA=Forearm/Lengan bawah, Tb=Tibia/betis, E=Ear/telinga, T=Tail/ekor, HF=Hind foot/kaki belakang). (gambar 32&33). Morfologi microchiroptera

Gambar. 38. Morfologi microchiroptera

80


2.

Ada tidaknya cakar pada jari kedua (gambar 39).

3.

Rambut: lebat, hampir gundul, gundul, ada/tidak ada garis hitam/coklat di punggung, totol putih.

4.

Selaput kulit antar paha (Interfemoral membran): pada kelelawar pemakan serangga kecuali Rhinopomatidae, kelelawar pemakan buah selaput ini tidak berkembang.

5.

Ekor : Kelelawar yang tidak mempunyai ekor atau ekornya sangat pendek: Pteropus, Acerodon,

Harpyionycteris,

Styloctenium,

Balionycteris,

Aethalops,

Megaerops,

Syconycteris,Thoopterus, Chironax, Macroglossus, Megaderma dan Coelops. 6.

Microchiroptera mempunyai ekor yang terbungkus membran interfemoral. (Gambar 38)

Gambar 39 Morfologi megachiroptera

81


Gambar 40. Morfologi ekor hidung dan telinga microchiroptera

82


7.

Telinga: bentuk sederhana atau kompleks dengan adanya tragus dan antitragus (gambar 40)

8.

Bentuk hidung, sederhana, sekedar tonjolan kulit atau mempunyai cuping hidung (Noseleaf). (gambar 40)

9.

Identifikasi diupayakan sedapat mungkin sampai tingkat jenis, namun jika tidak berhasil cukup sampai di tingkat genus.

Alat dan Bahan. 1. Jas laboratorium 2.


3.

Masker

4.

Kaliper/Jangka sorong

5.

Meteran.

6.

Pensil.

7.

Penghapus

8.

Form K.04 (Koleksi Kelelawar)

9.

Form TK. 11 (Koleksi Kelelawar)

Cara kerja. 1. Siapkan formulir koleksi kelelawar (K.04) dan formulir TK. 11 2.

Siapkan digital caliper

3.

Mengukur panjang tubuh (HB) yaitu panjang dari ujung kepala hingga rectum.

4.

Mengukur lengan bawah (FA) yaitu panjang pergelangan tangan hingga siku.

5.

Mengukur ekor (T) yaitu panjang ujung hingga pangkal ekor.

6.

Mengukur telapak kaki belakang (HF) yaitu panjang tumit hingga ujung kaki tanpa cakar.

7.

Mengukur betis (Tb) yaitu panjang lutut hingga tumit kaki.

8.

Mengukur telinga (E) yaitu panjang dari pangkal hingga ujung telinga.

9.

Mengukur tragus (Tr) yaitu panjang pangkal hingga ujung tragus.

10. Mengukur bentang sayap (Wp) yaitu panjang kedua sayap saat dibentangkan secara maksimal. 11. Sesudah selesai, tulis di formulir koleksi kelelawar (K.4) bagian B (identifikasi dan morfometri) no 10 (Pengukuran) serta di formulir TK. 11 12. Dilanjutkan dengan Prosedur Swab Trakea .

83


Penentuan umur kelelawar. Pada umumnya umur sampel kelelawar di bagi menjadi 3 kelompok umur yaitu: 1. Dewasa/Adult: Ciri-ciri: ukuran tubuh sesuai dengan ukuran pada buku-buku panduan untuk jenis yang dimaksud.

Alat kelaminnya sudah berkembang dengan baik, warna rambut

mantap/tegas, betina telah ditunjukan dengan berkembangnya puting susu. Pada tengkoraknya, di bagian sutura basioccipitallis (sambungan antara basisphenoid dan occiput) sudah menutup. 2.

Remaja/Subadult: Ciri-ciri: ukuran tubuh sudah cukup besar tanda-tanda kelamin sekunder belum begitu berkembang. Warna rambut belum benar-benar tegas seperti pada yang dewasa.

3.

Anak/Juvenille: Ciri-ciri: ukuran tubuh masih kecil untuk ukuran jenisnya, memiliki gigi susu dan tanda sekunder belum berkembang sama sekali kadang-kadang sangat sulit ditentukan apakah jantan atau betina karena sama-sama berupa tonjolan daging kecil. Biasanya Apabila jarak tonjolan dan anus dekat dianggap betina, sedangkan kalau jauh dianggap jantan. Tulang rawan pada persendian tampak jelas terutama pada kelelawar. Kadang sulit mengidentifikasinya karena ciri-ciri morfologi jenisnya tidak jelas kelihatan. Dengan adanya perbedaan ciri morfologi dan ukuran tubuh, serta kesulitan dalam memastikan nama jenis untuk individu remaja dan subadult, maka sedapat mungkin yang diambil untuk dijadikan koleksi referensi adalah yang dewasa.

84


85


BAB XV. PROSEDUR SWAB TRAKHEA Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara pengambilan swab trakhea pada kelelawar. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan pengambilan swab trakhea dengan benar 2. Peserta dapat memberi label pada spesimen swab trakhea dengan benar Pengambilan spesimen swab trakhea harus dilakukan secara aseptis 1. Alat dan Bahan a. Jas laboratorium b. Sarung tangan nitril c. Masker d. Viral Transport Medium e. Swab stick f. Gunting g. Label h. Pensil i. Penghapus j. Pinset ujung tumpul k. Stryrofoam + kardus l. Gel Pack m. Form K.04 (Koleksi Kelelawar) n. Form TK. 11 2. Prosedur Pengambilan Swab Trakea11 a. Siapkan form koleksi kelelawar (form K.4) dan Form TK. 11 b. Siapkan viral transport medium. c. Pakai sarung tangan nitril. d. Letakkan ibu jari dan jari telunjuk di antara rahang atas dan bawah, kemudian tekan perlahan-lahan sampai mulut kelelawar terbuka. (gambar 41A) e. Buka bagian atas kemasan swab stick. Swab harus steril, tidak boleh menyentuh benda lainnya.

86


f. Usapkan ujung swab stick steril secara perlahan-lahan dan menyeluruh pada tenggorokan bagian belakang (oropharynx) dengan gerakan memutar (bukan diantara sela-sela gigi dan pipi). Usahakan swab stick menyentuh langit-langit oropharynx. (gambar 41B) g. Masukkan ujung swab stick hasil swab trakhea ke dalam viral transport medium. h. Tempelkan stiker Kode Wilayah dan Nomor Urut Kelelawar pada dinding vial, seal dengan parafilm. i. Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.4) bagian D (Koleksi Spesimen 2) dan Form TK. 11 j. Simpan sementara viral transport medium pada styrofoam yang berisi gel pack beku. k. Setelah proses laboratorium lapangan selesai, serum dipindahkan pada kulkas 4°C menunggu penjemputan dari tim kabupaten (lihat Prosedur Pengepakan dan Pengiriman) l. Dilanjutkan dengan prosedur Pengambilan Punch Sayap.

A

B

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 41. Pengambilan Swab Trakea 11

87


BAB XVI. PROSEDUR PENGAMBILAN PUNCH SAYAP Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara melakukan pengambilan punch sayap pada kelelawar. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan punch sayap dengan benar 2. Peserta dapat memberi label pada specimen punch sayap dengan benar

a. Alat dan Bahan 1. Jas laboratorium 2. Sarung tangan nitril 3. Masker 4. Puncher steril (disposable) 5. Vial tube 1.5 ml + ethanol 96% 6. Label 7. Pensil 8. Pinset 9. Pipet plastik 10. Parafilm 11. Form K.04 (Koleksi Kelelawar) 12. Form TK.11 (Koleksi Kelelawar) b. Pengambilan Wing Punch 12,13 1. Siapkan formulir koleksi kelelawar (K.4) dan formulir TK. 11 2. Siapkan wing puncher steril. 3. Desinfeksi tray dengan kapas alkohol 70%. 4. Letakkan kelelawar diatas tray dengan posisi terlentang. 5. Bentangkan sayap kelelawar bagian kanan. 6. Tekan wing puncher ke membran yang tidak banyak mengandung vena dan putar searah jarum jam. (gambar 42A) 7. Masukkan jaringan sayap terpotong kedalam Vial tube 1.5 ml berisi ethanol 96%. (gambar 42B)

88


@. Yuli

@. Yuli

Gambar 42. Pengambilan Wing Punch 8. Ulangi prosedur diatas untuk sayap bagian kiri. 9. Tempelkan stiker Kode Wilayah dan Nomor Urut Kelelawar pada dinding vial, seal dengan parafilm. 10. Letakkan Vial tube 1.5 ml berisi punch sayap ke dalam plastik zipper. 11. Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.04) bagian D (Koleksi Spesimen 2) dan formulir TK. 11. 12. Dilanjutkan dengan Prosedur Pengambilan Darah dan Serum. Jika kelelawar bunting atau kelelawar spesies tertentu sudah memenuhi kuota untuk pembuatan awetan basah (masing-masing spesies dua pasang), maka dilanjutkan dengan Prosedur Pelepasan Kelelawar.

89


BAB XVII. PROSEDUR PELEPASAN KELELAWAR Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara pelepasan kelelawar. Tujuan Pembelajaran Khusus: Peserta dapat melakukan pelepasan kelelawar dengan benar Pelepasan atau release kelelawar dilakukan pada saat ditemukan kelelawar bunting, kelelawar menyusui yang mengendong anaknya dan jika spesies kelelawar tertentu sudah memenuhi kuota per spesies untuk pembuatan awetan basah. Kelelawar dilepas harus sudah melalui prosedur sebagai berikut : 1. Penimbangan berat badan. 2. Pembiusan dengan Isoflurane. 3. Pengambilan ektoparasit 4. Identifikasi atau pengukuran, minimal harus ada FA, HF, Tb dan E. 5. Dokumentasi. 6. Pengambilan punch sayap. Proses pelepasan : 1. Kelelawar sudah melalui prosedur diatas dimasukkan kembali ke dalam kantung. 2. Pelepasan kelelawar dilakukan pada jam 05.00 pagi dan sesudah jam 18.30 3. Kelelawar dipanen pagi hari harus dilepaskan pada malam hari. Kelelawar harus diberi cairan gula 10% dengan menggunakan pipet plastik, dimasukkan lagi ke dalam kantung blacu dan digantung ditempat lembab, sejuk dan terhindar dari sinar matahari. 4. Buka ikatan kantung, kemudian kantung dibuka dengan cara menggulung tepi kantung kearah luar secara perlahan-lahan (gambar 43A) 5. Dekatkan kantung yang sudah terbuka di dahan pohon dengan ketinggian minimal 80 cm dari permukaan tanah. (gambar 43B) 6. Kelelawar akan keluar dari kantung dan menggelanyut didahan pohon. (gambar 43C) 7. Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.04) di bagian D ( Koleksi Spesimen 2) dan formulir TK. 11

90


@. Yuli

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 43. Pelepasan kelelawar

91


BAB XVIII. PROSEDUR KOLEKSI DARAH DAN SERUM KELELAWAR Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara pengambilan darah dan koleksi serum tikus Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan pengambilan darah tikus dengan benar 2. Peserta dapat melakukan koleksi serum dengan benar 1. Alat dan Bahan a. Jas laboratorium

k. Cryotube 2 ml


l.

c. Masker

m. Label

d. Alkohol 70%

n. Parafilm

e. Jarum 26G steril

o. Gel pack

f.

p. Styrofoam + kardus

Kapas bola-bola

Vial tube 1,5 ml + PBS 1x

g. Spuit 3 cc dan 1 cc

q. Form K.04 (Koleksi Kelelawar)

h. Micropipette dan tips

r.

i.

Venoject 10 cc

j.

Centrifuge

Form TK. 11 (Koleksi Kelelawar)

2. Pengambilan Darah pada Kelelawar dengan Berat Badan ≤ 100 gram11 a. Siapkan formulir koleksi kelelawar (form K.04) dan form TK. 11 b. Siapkan jarum 26G steril. c. Desinfeksi salah satu siku kelelawar dengan kapas yang dibasahi alkohol 70%. d. Tusuk vena bracial yang ada di siku dengan jarum 26G. (gambar43) e. Biarkan darah terkumpul di titik tusukan, ambil dengan micropipet dan tempatkan ke dalam vial tube 1,5 ml yang sudah diisi PBS 1x (volume PBS 9x volume darah). f.

Tekan tempat tusukan dengan kapas sampai darah berhenti mengalir.

g. Sentrifuse dengan kecepatan 8000 rpm selama 5 menit untuk memisahkan serum. h. Ambil serum secara perlahan dengan mikropipet (diusahakan gumpalan darah tidak ikut terambil), masukkan kedalam cryotube 2 ml. i.

Setelah semua serum terambil lalu seal cryotube dengan parafilm. (gambar 43)

j.

Tempelkan stiker Kode Wilayah dan Nomor Urut Kelelawar pada dinding vial. seal dengan parafilm.

92


k. Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.04) bagian A (Koleksi Spesimen 1) dan Form TK. 11. l.

Simpan dalam kardus styrofoam yang berisi gel pack beku.

m. Setelah proses laboratorium lapangan selesai, serum dipindahkan pada kulkas 4°C menunggu penjemputan dari tim kabupaten (lihat Prosedur Pengepakan dan Pengiriman). 3. Prosedur Pengambilan darah pada kelelawar dengan berat badan > 100 gram a. Siapkan formulir koleksi kelelawar (K.04) dan Form TK. 11. b. Siapkan spuit 1 cc. c. Desinfeksi area sekitar vena bracial atau vena cephalic atau vena saphenous dengan kapas yang dibasahi alkohol 70%. d. Ambil darah dengan spuit 1 cc sebanyak 1% dari berat badan kelelawar. e. Lepas jarum dari syringe lalu tempelkan syringe pada mulut vacutainer. f.

Darah dialirkan ke dinding vacutainer secara perlahan agar tidak hemolisis.

g. Tutup vacutainer, ditempeli stiker label dan dibiarkan minimal 1 jam agar menggumpal. h. Tekan tempat tusukan dengan kapas sampai darah berhenti mengalir. i.

Sentrifuse dengan kecepatan 8000 rpm selama 5 menit untuk memisahkan serum.

j.

Ambil serum secara perlahan dengan mikropipet (diusahakan gumpalan darah tidak ikut terambil), kemudian masukkan kedalam cryotube 2 ml.

k. Setelah semua serum terambil lalu seal cryotube dengan parafilm. n. Setelah semua serum terambil, lalu seal cryotube dengan parafilm. seal dengan parafilm. l.

Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.4) bagian A (Koleksi Spesimen 1) dan Form TK. 11.0

m. Simpan sementara serum pada styrofoam yang berisi gel pack beku. n. Setelah proses laboratorium lapangan selesai, serum dipindahkan pada kulkas 4°C menunggu penjemputan dari tim kabupaten (lihat Prosedur Pengepakan dan Pengiriman) o. Dilanjutkan dengan Prosedur Pembuatan Awetan Basah

93


A

B

@. Yuli @. Yuli

Gambar 44. Pengambilan darah pada kelelawar dengan berat badan > 100 gram

4. Prosedur pengambilan darah pada kelelawar terpilih sebagai awetan basah (intracardial). a. Siapkan form koleksi kelelawar b. Siapkan spuit 1 cc atau 3 cc. c. Desinfeksi area sekitar sternum/dada dengan kapas yang dibasahi alkohol 70%. d. Jarum suntik ditusukkan dibawah tulang rusuk sampai masuk lebih kurang 50 - 75% panjang jarum. Posisi jarum membentuk sudut 45

terhadap badan kelelawar yang

dipegang tegak lurus, setelah posisi jarum tepat mengenai jantung, secara hati-hati darah dihisap sampai diperoleh darah sebanyak 2-3 cc.(Gambar 39) e. Lepas jarum dari syringe lalu tempelkan syringe pada mulut vacutainer. f.

Siapkan vacutainer, tusukan ujung syringe ke tutup vacutainer, posisikan ujung jarum menempel pada dinding vacutainer dan biarkan darah mengalir masuk vacutainer sampai habis.

g. Pada kondisi darah sudah mengental lepas jarum dari syringe dengan penutup jarum dipasang dan diputar berlawanan arah jarum jam. Setelah jarum terlepas tempelkan syringe pada mulut vacutainer. h. Sentrifuse dengan kecepatan 8000 rpm selama 5 menit untuk memisahkan serum. i.

Ambil serum secara perlahan dengan mikropipet (diusahakan gumpalan darah tidak ikut terambil), kemudian masukkan kedalam cryotube 2 ml.

j.

Setelah semua serum terambil, lalu seal cryotube dengan parafilm.

k. Setelah semua serum terambil, lalu seal cryotube dengan parafilm o. Tempelkan Kode Wilayah dan Nomor Urut Kelelawar pada dinding vial. seal dengan parafilm.

94


l.

Setelah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.04) bagian A (Koleksi Spesimen 1) dan formulir TK. 11

m. Simpan sementara serum pada stryrofoam yang berisi gel pack beku. n. Setelah proses laboratorium lapangan selesai, serum dipindahkan pada kulkas 4°C menunggu penjemputan dari tim kabupaten (lihat Prosedur Pengepakan dan Pengiriman). D i l a n j u t kan dengan Prosedur Pembuatan Awetan Basah Gambar 45. Pengambilan darah pada kelelawar terpilih sebagai awetan basah (intracardial).

95


BAB XIX. PROSEDUR PEMBUATAN AWETAN BASAH @. Yuli

Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara pembuatan awetan basah. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan pembuatan awetan basah dengan benar 2. Peserta dapat memberi label pada spesimen basah dengan benar Pembuatan spesimen awetan basah pada kelelawar berguna untuk konfirmasi lebih lanjut identifikasi spesies kelelawar yang didapatkan pada Riset Khusus Vektora. Kelelawar yang dipilih sebagai spesimen awetan basah berjumlah dua pasang (jantan dan betina) dari setiap spesies ditangkap dan belum teridentifikasi atau masih butuh konfirmasi (cf). Awetan basah terpilih kemudian diproses sesuai dengan prosedur kerja, diberi label etiket dan dimasukkan kedalam canoe drum. Pelabelan etiket untuk spesimen basah harus ditulis nama spesiesnya, misalnya: Megaderma spasma, Hipposideros sp,

Macroglosuss minimus,

Kerivoula sp, dst. 1. Alat dan Bahan a. Jas laboratorium

k. Sampel terpilih


l.

c. Masker 3M 7502

m. Pensil

d. Goggles

n. Benang Kasur

e. Jarum 18G

o. Gunting

f.

p. Kain kasa

Canoe Drum

Plastik ukuran besar ukuran 5 Kg

g. Formaldehyde 37%

q. Diseccting kits

h. Kapas

r.

i.

Syringe 20 ml.

s. Form TK.11 (Koleksi Kelelawar)

j.

Label kertas kalkir

Form K.04 (Koleksi Kelelawar)

2. Cara kerja 2.1 Pengawetan dengan Formalin14,15,16 a. Siapkan formulir koleksi kelelawar (form K.04) dan (form TK. 11) b. Gunakan masker Masker 3M 7502 dan goggles

96

Pedoman Koleksi Spesimen dan Data di Lapangan

c. Siapkan formalin dengan konsentrasi 10%, pengenceran dilakukan dengan mencampur formalin dan air dengan perbandingan 1 formaldehyde 37% : 9 air. d. Pilih kelelawar untuk dijadikan awetan basah sesuai kriteria awetan basah (dua pasang per spesies, spesies konfirmasi dan identifikasi masih sampai tingkat genus) e. Masukkan kapas ke dalam mulut kelelawar untuk menjaga posisi mulut tetap terbuka, buat sayatan pada bagian abdomen (perut) 2-3 cm f.

Fiksasi Bagian-bagian tubuh kelelawar yang berotot tebal seperti otak, organ bagian dalam/dada, lengan, paha, dan punggung dengan disuntik formalin 10%, sampai jenuh

g. Basahi rambut menggunakan air sampai pangkal rambut, karena fiksasi terjadi lebih cepat dan merata apabila kondisi rambut basah, sapukan kertas tisu untuk mengurangi kandungan air pada rambut sebelum specimen direndam. h. Rendam spesimen ke dalam formalin 10%, untuk spesies kecil sampai sedang (berat kurang dari 400 gr) minimal direndam selama 3x24 jam, sedangkan pada spesies dengan berat diatas 400 gram perendaman dilakukan selama minimal 5 hari. i.

Volume formalin pada saat perendaman harus minimal tiga kali volume spesimen.

j.

Sesudah selesai, isi formulir koleksi kelelawar (K.04) bagian D (Koleksi Spesimen 2) dan formulir TK. 11.

k. Sebelum spesimen di bungkus kain kasa lakukan pengecekan specimen dengan cara menusukan jarum di bagian kulit, apabila sudah kenyal berarti fiksasi sudah sempurna. l.

Apabila fiksasi belum sempurna rendam kembali pada larutan formalin.

m. Ambil spesimen, beri label kertas kalkir bertuliskan nama spesies dan ukuran morfometri, ikatkan di kaki kanan tikus. Pemberian label kertas kalkir sebaiknya dilakukan setelah perendaman dengan formalin. Kertas kalkir diletakkan di atas kain kasa, kemudian spesimen digulung dan di masukkan plastik klip. n. Kemudian balut/lilit seluruh tubuh spesimen dengan kain kasa dan diikat dengan benang. o. Proses mengikat kain kasa tidak boleh ketat, cukup sebagai pengaman agar kain kasa tidak terlepas p. Satu plastik klip digunakan untuk satu spesimen, setelah spesimen dimasukkan ke dalam plastik tekan plastik dari pangkal untuk menghilangkan udara sebelum dikunci pada klipnya. q. Awetan basah kemudian dimasukkan ke canoe drum sambil menunggu proses pengiriman.

84


r. Pengiriman awetan basah ke B2P2VRP dilakukan di setiap ekosistem (tiap 2 titik selesai).

2.2 Pelabelan Pelabelan spesimen awetan basah terdiri dari 2 macam : 1. Mengikat label spesimen (kertas kalkir). Jika belum mengetahui spesiesnya cukup ditulis nama genus dan ditambah kata sp dibelakangnya, misal : Hipposideros sp, Myotis sp, dll. 2. Label pita Dimo yang dicetak menggunakan pencetak pita Dimo sesuai kode wilayah dan no. urut kelelawar.

A

B

@. Yuli

@. Yuli

C

D

@. Yuli

@. Yuli

Gambar 46. Proses pembuatan spesimen awetan basah

85


86


BAB XX. PROSEDUR PENANGANAN LIMBAH Tujuan Pembelajaran Umum: Peserta memahami cara penanganan limbah. Tujuan Pembelajaran Khusus: 1. Peserta dapat melakukan penanganan limbah dengan benar Limbah merupakan sisa suatu usaha dan atau kegiatan Limbah Bahan Berbahaya dan Beracun (B3) merupakan sisa suatu usaha dan atau kegiatan yang mengandung bahan berbahaya dan atau beracun, yang karena sifat, konsentrasi, atau jumlahnya secara langsung maupun tidak langsung dapat mencemarkan lingkungan dan atau membahayakan lingkungan hidup, kesehatan, kelangsungan hidup manusia atau makhluk hidup lainnya. Limbah dapat dibagi menjadi limbah infeksius ( benda tajam dan non benda tajam) serta limbah non infeksius. Pengelolaan limbah B3 adalah rangkaian kegiatan reduksi, penyimpanan, pengumpulan, pengangkutan, pemanfaatan, pengolahan, sampai dengan penimbunan limbah B3 (PP nomor 18 tahun 1999). Alat dan Bahan : 1. Jas laboratorium 2. Sarung tangan nitril 3. Masker 4. Sepatu boot 5. Tissue towel 6. Alkohol 70% 7. Plastik biohazard 8. Sharp safety box 9. Form TK.08 (form berita acara serah terima limbah). 10. Form TK.09 (form berita acara pemusnahan limbah) 11. Selotip 12. Sekop

87


Cara Kerja Prosedur penanganan limbah selama pemrosesan spesimen 1. Selama

pemrosesan

spesimen,enumerator

wajib

memakai

APD

lengkap

(jas

laboratorium, sarung tangan nitril, dan masker). 2. Siapkan plastik biohazard dan sharp safety box.

Gambar 47. Plastik biohazard dan sharp safety box 3. Tempatkan 1 buah sharp safety box dekat dengan tempat pengambilan darah (nampan 4). Limbah benda tajam (syringe, needles,

dimasukkan ke dalam sharps safety box.

Jika sudah terisi ¾ bagian, tutup sharp safety container dan ganti dengan yang baru.

Gambar 42. Contoh penanganan limbah benda tajam 4.

Tempelkan masing – masing 1 buah plastik biohazard pada tepi meja pemrosesan (di antara nampan 1 dan 2, dan diantara 3 dan 4) untuk menampung limbah infeksius non benda tajam (Contoh : sarung tangan, kapas, tisu, dan lain-lain) .

5. Ikat erat plastik biohazard jika sudah penuh dengan menggunakan tali dan amankan dengan isolasi. Disinfeksi dengan menggunakan alkohol 70%.

88


6. Setelah selesai melakukan pemoresan spesimen, meja yang digunakan sebagai tempat pengambilan spesimen dibersihkan terlebih dahulu dengan menggunakan towel tissue yang sudah dibasahi alkohol 70% dan mengusap seluruh meja lalu biarkan sampai kering. 7. Sebelum limbah diserahkan kepada PJO atau ditimbun, limbah ditempatkan pada tempat yang aman, jauh dari jangkauan masyarakat ataupun hewan. 8. Saat penyerahan limbah infeksius benda tajam dan limbah non infeksius non benda tajam kepada PJO Kabupaten, pengisian form TK.08 dan form TK.09 wajib dilakukan. 9.

Lembar form TK.08 (form berita acara serah terima limbah) dan form TK.09 (form pemusnahan limbah yang berwarna putih diserahkan kepada tim teknis yang melakukan supervisi, warna hijau diserahkan kepada PJO kabupaten , dan warna merah disimpan oleh Ketua Tim Pengumpul Data.

89


90


BAB XXI. PROSEDUR PENGEPAKAN DAN PENGIRIMAN SPESIMEN Tujuan Pembelajaran Umum Prosedur pengepakan dan pengiriman spesimen bertujuan supaya tenaga pengumpul data memahami cara mengepak spesimen berdasarkan jenisnya. Tujuan Pembelajaran Khusus 1. Tenaga pengumpul data dapat memilah antara spesimen dengan standard cold chain dan tidak memerlukan standard cold chain. 2. Tenaga pengumpul data dapat melakukan pengepakan spesimen serum, swab trakhea, ektoparasit, punch sayap, awetan basah dan formulir dengan benar. Spesimen Rikhus Reservoir 2017 berupa serum (tikus dan kelelawar), organ ginjal (tikus), organ paru (tikus), swab trakhea (kelelawar), ektoparasit (tikus dan kelelawar), punch jaringan (tikus dan kelelawar) dan awetan basah (tikus dan kelelawar). Masing-masing spesimen tersebut memiliki metode penyimpanan dan pengepakan yang berbeda. Spesimen serum dan swab trakhea kelelawar digunakan untuk deteksi agen penyakit berupa virus. Oleh karena itu, untuk meminimalisir kerusakan antibodi pada serum serta kerusakan RNA virus pada VTM, maka proses penyimpanan sementara serta metode pengepakan spesimen ini harus mengikuti standar cold chain. Spesimen lainnya seperti ektoparasit, punch jaringan dan spesimen awetan basah tidak memerlukan standard cold chain. Semua spesimen dikirimkan ke Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Vektor dan Reservoir Penyakit (B2P2VRP), Salatiga. a) Proses Persiapan 1. Pembekuan Gel pack Sebelum digunakan, semua gel pack harus dibekukan terlebih dahulu di freezer minimal 12 jam. Semakin lama dibekukan, gel pack semakin baik dalam menyimpan dingin. Pada saat proses di laboratorium lapangan, ambil 3-5 buah gel pack dan masukkan dalam kardus styrofoam. Gunakan wadah ini sebagai penyimpanan sementara serum selama di laboratorium lapangan. Sisanya digunakan untuk mengganti gel pack yang mulai mencair apabila diperlukan. 2. Mengisi Formulir TK.05 (Form Pengiriman dan Penerimaan Spesimen) dan Formulir TK.11 (Form spesimen). Formulir TK.05 dan TK.11 dimasukkan ke dalam paket pengiriman. 91


b) Proses Pengepakan Spesimen dengan Cold Chain Spesimen yang memerlukan penanganan dan pengepakan secara cold chain meliputi: a. Spesimen serum tikus b. Spesimen serum kelelawar c. Spesimen paru-paru tikus d. Spesimen swab trachea kelelawar Alat dan bahan: a.

Spesimen serum tikus

j.

Lakban

b.

Spesimen serum kelelawar

k.

Plastik klip

c.

Spesimen

l.

Stiker logo Rikhus

swab

trachea

kelelawar

m. Stiker logo Kemenkes

d.

Spesimen paru-paru tikus

n.

Stiker fragile

e.

Cardboard cryobox

o.

Stiker jangan dibalik

f.

Gel pack beku

p.

Stiker penerima

g.

Styrofoam kardus

q.

Stiker pengirim

h.

Termometer

r.

Form TK.05 (Pengiriman Spesimen)

i.


s.

Form TK.11 (Form Spesimen)

Cara Kerja: a. Personel pengepak spesimen menggunakan sarung tangan nitril b. Cryotube serum tikus maupun kelelawar, tube swab trakea dan paru-paru dipastikan telah dilabel dan disegel parafilm. c. Cryotube serum dan tube paru-paru dimasukkan dalam cardboard cryobox, per box untuk satu jenis spesimen per titik. Beri tulisan jenis spesimen dan kode wilayah pada tutup cardboard cryobox. Masukkan cardboard cryobox dalam plastik klip d. Untuk spesimen swab trachea, tube disatukan dengan diikat karet kemudian dimasukkan plastik klip. e. Susun cardboard cryobox (3 buah), swab trachea dan gel pack beku ke dalam styrofoam box. f.

Masukkan termometer

g. Masukkan Form TK.05 dan Form TK.11 (lembar untuk tim teknis) yang telah dimasukkan plastik ke dalam styrofoam box. 92


h. Tutup kardus styrofoam dengan benar. Tempel stiker penerima dan stiker pengirim berisi alamat tujuan dan identitas pengirim (nama& alamat), dan identitas sampel (provinsi, kabupaten, & ekosistem), lapisi dengan lakban bening. Tempel stiker logo rikhus, stiker logo Kemenkes, stiker fragile, dan stiker jangan dibalik. i.

Paket diserahkan kepada PJO kabupaten untuk disimpan sementara di lemari pendingin sebelum diambil oleh tim teknis pusat (B2P2VRP).

Catatan penting khusus spesimen yang mengikuti standard cold chain (serum tikus dan kelelawar, swab trachea, paru-paru tikus): Saat di lokasi pengumpulan data a.

Setiap kali selesai proses di laboratorium lapangan, spesimen serum harus langsung dibawa untuk disimpan sementara di lemari es pada suhu 4⁰C (lemari es biasa, bukan di freezer) sambil menunggu petugas pengambil spesimen (PJO).

b.

Apabila dalam kondisi tidak tersedia lemari es, sampel disimpan sementara dalam kardus styrofoam berisi gel pack beku. Selama proses penyimpanan sementara, gel pack yang mulai mencair diganti secara berkala dengan yang baru.

c.

Ketua tim berkoordinasi dengan PJO kabupaten untuk proses penjemputan spesimen ke lokasi.

d.

Petugas pengambil spesimen akan mengambil spesimen dari lokasi puldat untuk dikumpulkandi kabupaten, di kulkas yang telah disediakan untuk menunggu petugas penjemput dari pusat.

Saat di penyimpanan sementara di kabupaten a. Sesampainya di tempat penyimpanan sementara di kabupaten, PJO membuka paket berisi serum untuk dimasukkan dalam lemari pendingin. b. Spesimen serum dalam cardboard cryobox, tanpa dibuka, disimpan dalam lemari es pada suhu 4⁰C. c. Gel pack disimpan dalam freezer (-20⁰C). c) Pengepakan Spesimen Non-Cold Chain Spesimen non-cold chain meliputi: a. Spesimen ginjal tikus b. Spesimen ektoparasit tikus c. Spesimen ektoparasit kelelawar

93


d. Spesimen punch telinga tikus e. Spesimen punch sayap kelelawar Alat dan bahan: a.

Spesimen ginjal tikus

b.

Spesimen ektoparasit tikus

c.

Spesimen ektoparasit kelelawar

d.

Spesimen punch telinga tikus

e.

Spesimen punch sayap kelelawar

f.

Styrofoam box

g.


h.

Kardus packing bersekat

i.

Form TK.05 (Form Pengiriman spesimen)

j.

Form TK.11 (Form spesimen)

k.

Stiker logo Rikhus

l.

Stiker logo Kemenkes

m. Stiker fragile (jangan dibanting) n.

Stiker jangan dibalik

o.

Stiker penerima

p.

Stiker pengirim

Cara kerja: a. Personel pengepak menggunakan sarung tangan nitril. b. Spesimen ektoparasit dan ginjal: Pastikan telah dilabel dan disegel dengan parafilm, kemudian dimasukkan dalam kardus packing bersekat per jenis spesimen (ginjal tikus, ektoparasit tikus, ektoparasit kelelawar) dan per titik. Beri keterangan jenis spesimen dan kode wilayah pada tutup kardus. c. Spesimen punch jaringan: Pastikan telah dilabel dan disegel parafilm, kemudian dimasukkan dalam cardboard cryobox (tikus & kelelawar bisa dijadikan satu per titik). Beri keterangan jenis spesimen dan kode wilayah pada tutup kardus. d. Susun semua spesimen dalam styrofoam box e. Masukkan Form TK.05 dan TK.11 (lembar untuk tim teknis) dalam plastik, kemudian sertakan ke dalam box.

94


f.

Styrofoam box direkatkan dengan lakban coklat kemudian tulis kode wilayah, tempel stiker penerima dan stiker pengirim, stiker logo rikhus, stiker logo Kemenkes, stiker fragile, dan stiker jangan dibalik.

d) Pengepakan Spesimen Awetan Basah Alat dan bahan: a. Spesimen awetan basah tikus b. Spesimen awetan basah kelelawar c. Sarung tangan nitril d. Masker 7502 e. Goggles f.

Drum plastik (canoe drum)

g. Kapas/ tisu gulung h. Plastik ukuran besar i.

Spidol marker

j.

Tali/ karet

k. Form TK.05 (Pengiriman Spesimen) l.

Form TK.11 (Form spesimen)

m. Stiker logo Rikhus n. Stiker logo Kemenkes o. Stiker jangan dibalik p. Stiker fragile q. Stiker penerima r.

Stiker pengirim

Cara kerja: a. Personel pengepak menggunakan sarung tangan nitril, masker 7502, dan goggles. b. Spesimen awetan basah yang telah ditiriskan dari formalin dan dibalut kain kasa dimasukkan dalam plastik klip dan diikat. Perlakuan ini dilakukan pada tiap ekor tikus maupun kelelawar. c. Masukkan semua spesimen dalam drum plastik. Awetan basah tikus dan kelelawar dipisah pada drum yang berbeda. Satu drum digunakan untuk 2 titik ekosistem. d. Masukkan pula Form TK.05 dan Form TK.11 (lembar untuk tim teknis) yang telah dimasukkan ke dalam plastik, lalu tutup erat.

95


e. Pada tutup canoe drum, beri keterangan jenis spesimen dan kode wilayah. Tempelkan stiker penerima dan pengirim. f.

Pada dinding luar canoe drum, tempel stiker logo rikhus dan stiker logo Kemenkes, stiker fragile, dan stiker jangan dibalik.

g. Spesimen dikirim setelah pengambilan sampel di dua titik dalam satu ekosistem selesai. e) Pengepakan formulir 1. Bahan dan alat a.

Form T.01 /K.1 (Formulir Ekosistem Tikus /Kelelawar)

b.

Form TK.02 (Formulir Koordinat GPS)

c.

Form T.03 /K.03 (Formulir Lokasi Penangkapan Tikus/Kelelawar)

d.

Form K.04 /K.04 (Formulir Koleksi Tikus /Kelelawar)

e.

Form TK.08 (Berita Acara Serah Terima Limbah)

f.

Form TK.09 (Berita Acara Pemusnahan Limbah)

g.

Form TK.10 (Berita Acara Serah Terima Spesimen)

h.

Map plastik

i.

Plastik tebal

j.

Lakban

2. Cara kerja a.

Pastikan ketua tim telah melakukan verifikasi internal pada semua form.

b.

Satukan formulir menurut jenisnya (dibedakan antara tikus /kelelawar) dalam map plastik. Satu map plastik untuk semua form dalam satu titik ekosistem.

c.

Tulis kode wilayah pada plastik.

d.

Masukkan semua form (map) ke dalam plastik tebal.

e.

Tempelkan stiker penerima dan pengirim. Tempel stiker logo Rikhus dan logo Kemenkes.

f.

Rekatkan dengan lakban bening

g.

Paket siap dikirimkan. Semua formulir yang disebutkan dalam alat bahan dipak dan dikirim satu kali setelah seluruh titik pengumpulan data berakhir.

96


f)

Proses Pengiriman Proses pengiriman dilakukan oleh personel penanggung jawab pengiriman sampel, melalui agen ekspedisi dengan membawa svena keterangan dari pusat apabila diperlukan. 1. Paket cold chain tidak dikirimkan, melainkan akan dijemput oleh tim teknis pusat. Ketua tim berkoordinasi dengan Penanggung Jawab Operasional (PJO kabupaten) untuk mengambil paket dari lokasi puldat ke penyimpanan sementara di lemari pendingin propinsi. 2. Paket non-cold chain dikirimkan setiap selesai satu titik ekosistem. Paket diambil bersamaan dengan pengambilan paket cold chain, kemudian PJO bertanggung jawab mengirimkan paket menggunakan ekspedisi. 3. Paket C (spesimen awetan basah) dikirimkan selama tiga kali pengiriman (tiap 2 titik pengumpulan data). 4. Paket D (formulir) dikirimkan sekali pada akhir pengumpulan data. Paket Semua spesimen Rikhus 2017 dikirimkan ke alamat kantor B2P2VRP Salatiga. Alamat tujuan: PAKET RESERVOIR KEPADA YTH. KEPALA BALAI BESAR PENELITIAN DAN PENGEMBANGAN VEKTOR DAN RESERVOIR PENYAKIT (B2P2VRP) JL. HASANUDIN 123 SALATIGA, JAWA TENGAH 50721 TELP (0298) 327096

Gambar 43. Alamat tujuan pengiriman spesimen Pengirim : PENGIRIM NAMA

:

NO. TELP/ HP : ALAMAT

:

PROVINSI .................... .......

KAB/KOTA............................ TIPE EKOSISTEM....................

Gambar 44. Alamat tujuan pengiriman spesimen Gambar ..44......Identitas pe 97


98


BAB XXII. PEDOMAN PENGISIAN FORMULIR 1.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR EKOSISTEM TIKUS DAN KELELAWAR (TK.01) Pengisian formulir ekosistem tikus dilakukan pada hari pertama pemasangan

perangkap tikus di lapangan. Sedangkan pengisian formulir ekosistem kelelawar dilakukan pada hari ke-3 pengumpulan data lapangan saat pemasangan perangkap kelelawar. Data yang sudah ada pada formulir selanjutnya diinput ke dalam program entri. Pengertian Ekosistem Ekosistem merupakan sistem yang terbentuk dari interaksi antara komunitas biota dengan lingkungan. Macam-macam ekosistem : 1.

Ekosistem Pantai Adalah pertemuan antara laut dan daratan, diukur pada saat pasang tertinggi & surut terendah dimana aktifitas biotik dan abiotik di darat dan laut masih saling mempengaruhi.

2.

Ekosistem Non Hutan Adalah ekosistem yang sudah pernah ditanami secara intensif oleh manusia, bisa berupa perkebunan, pekarangan rumah, sawah, ladang, belukar dan kebun monokultur.

3.

Ekosistem Hutan Adalah hutan dan seluruh komponen biotik dan abiotik yang belum pernah ditanami secara intensif oleh manusia atau yang sedang mengalami fase pertumbuhan dari keadaan tapak gundul karena alam ataupun antropogen sampai klimaks kembali.

4.

Dekat dengan Pemukiman Lokasi survei berada di sekitar pemukiman, dengan jarak ≤ 5 km dari jenis ekosistem pantai, non-hutan, hutan.

5.

Jauh dari Pemukiman Lokasi survei berada jauh dari pemukiman, dengan jarak › 5 km dari jenis ekosistem pantai, non-hutan, hutan.

I.

PENGENALAN TEMPAT 1.

Rincian Provinsi Isi dengan kode provinsi, 2 digit angka.

2.

Rincian Side Lingkari nomor side kemudian isikan ke dalam kolom yang tersedia. Nomor “1” untuk side A, nomor “2” untuk side B, atau nomor “3” untuk side C. 99


3.

Rincian Kabupaten/Kota Isi dengan kode kabupaten/kota, 2 digit angka.

4.

Rincian Kecamatan Isi dengan kode kecamatan, 3 digit angka.

5.

Rincian Desa/Kelurahan Isi dengan kode Desa/Kelurahan, 3 digit angka.

6.

Rincian Klasifikasi Desa/Kelurahan Lingkari urutan klasifikasi Desa/Kelurahan kemudian isikan di kolom sebelah kanannya. Klasifikasi Perkotaan dengan kode “1” atau Pedesaan dengan kode “2”.

II.

KETERANGAN EKOSISTEM 1.

Rincian Jenis Ekosistem Lingkari urutan nomor klasifikasi ekosistem kemudian isikan pada kolom yang tersedia di sebelah kanannya. Hutan dekat pemukiman dengan kode “1”, Hutan jauh pemukiman dengan kode “2”, Non Hutan dekat pemukiman dengan kode “3”, Non hutan jauh pemukiman dengan kode “4”, Pantai dekat pemukiman dengan kode “5", atau Pantai jauh pemukiman dengan kode “6”.

2.

Rincian Ketinggian Isi ketinggian sesuai dengan hasil pengukuran altitude pada GPS (dpl), 4 digit angka.

3.

Rincian Topografi Lingkari urutan nomor klasifikasi topografi kemudian isikan pada kolom yang tersedia di sebelah kanannya. Klasifikasi topografi Pegunungan/dataran tinggi dengan kode “1” atau Lembah/dataran rendah dengan kode “2”. a. Pegunungan/ dataran tinggi merupakan bagian permukaan bumi yang mendatar dan terletak pada ketinggian lebih dari 600 m di atas permukaan laut. b. Lembah/ dataran rendah merupakan bagian permukaan bumi di daerah rendah yang relatif rata dan biasanya berada di kaki gunung.

III. KETERANGAN PENGUMPULAN DATA 1.

Rincian Nama Pengumpul Data Isi dengan nama lengkap petugas pengumpul data.

2.

Rincian Tanggal Pertama Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun pengumpulan data, terhitung sejak hari pertama pemasangan perangkap di satu titik. 100


3.

Rincian Tanggal Akhir Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun pengumpulan data, terhitung sejak hari terakhir pemasangan perangkap di satu titik.

4.

Rincian Tanda Tangan Pengumpul Data Isi dengan tanda tangan dari petugas pengumpul data.

5.

Rincian Ketua Tim Isi dengan nama lengkap ketua tim.

6.

Rincian Tanggal diperiksa Isi dengan tanggal, bulan dan tahun saat dilakukan pemeriksaan oleh ketua tim.

7.

Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isi dengan tanda tangan ketua tim.

IV. CATATAN Digunakan untuk memberikan keterangan tambahan terkait ekosistem atau hal-hal penting di lokasi pengumpulan data.

2.

PANDUAN PENGISIAN FORM KOORDINAT GPS PERANGKAP KELELAWAR (TK.02) Pengisian formulir koordinat GPS perangkap dilakukan pada saat pemasangan jaring

kabut, jaring harpa dan hand net di lapangan. Data yang sudah ada pada formulir selanjutnya diinput ke dalam program entri. I.

PENGENALAN TEMPAT Isikan dengan kode Provinsi (2 digit), kode Kabupaten/ Kota (2 digit), dan kode jenis Ekosistem (1 digit) sesuai dengan lokasi penangkapan.

II.

KETERANGAN PENGUMPUL DATA 8.

Rincian Nama Pengumpul Data Isi dengan nama lengkap petugas pengumpul data yang melakukan pengambilan titik koordinat.

9.

Rincian Tanggal Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun pengambilan data titik koordinat saat pemasangan jaring kabut, jaring harpa dan hand net.

101


10. Rincian Tanda Tangan Pengumpul Data Isikan dengan tanda tangan dari petugas pengumpul data yang melakukan pengambilan titik koordinat. 11. Rincian Nama Ketua Tim Isi dengan nama lengkap ketua tim. 12. Rincian Tanggal Pengecekan Isi dengan tanggal, bulan dan tahun dilakukannya pengecekan isian formulir koordinat GPS. 13. Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isikan dengan tanda tangan dari ketua tim. III. KETERANGAN KOORDINAT GPS 1.

Rincian Nomor Perangkap Isikan sesuai nomor jaring (jaring kabut 1 dengan kode “1”, jaring kabut 2 dengan “2”, jaring kabut 3 dengan “3”, jaring kabut 4 dengan “4”, jaring kabut 5 dengan “5”, jaring kabut 6 dengan “6”, jaring harpa dengan “7”, atau handnet dengan “8”) diikuti dengan nomer sampel. Titik koordinat untuk hand net diambil saat ada kelelawar yang tertangkap. Misalnya : Kelelawar ditangkap pada jaring kabut 1 dengan kode sampel K01 maka ditulis: 001/K01

2.

Rincian Garis Lintang/Latitute a. N/S : Isikan “N” untuk posisi garis lintang utara, atau “S” untuk posisi garis lintang selatan. b. D : Degree/derajat, isikan derajat lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS. c. M : Minutes, isikan menit lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS. d. S : seconds, isikan detik lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS. Contohnya : 6° 10′ 12.9” Lintang Selatan (LS) atau 6° 10′ 12.9” South (S) Membacanya : “Enam derajat, sepuluh menit, dua belas koma sembilan detik Lintang Selatan.

102


3.

Rincian Bujur/Longitude e. W/E : Isikan “W” untuk posisi garis bujur barat, atau “E” untuk posisi garis bujur timur. f.

D : Degree/derajat, isikan derajat lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS.

g. M : Minutes, isikan menit lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS. h. S : seconds, isikan detik lokasi yang dimaksud sesuai dengan yang ditunjukkan pada GPS. Contohnya: 106° 49′ 27.0” Bujur Timur (BT) atau 106° 49′ 27.0” West (W) Membacanya: “Seratus enam derajat, empat puluh sembilan menit, dua puluh tujuh koma nol, Bujur Timur” 4.

Rincian Elevasi Menunjukkan tingkat elevasi/ ketinggian saat menggunakan GPS. Isikan ketinggian lokasi sesuai yang ditunjukkan pada GPS.

5.

Rincian Kode sampel Isikan dengan kode sampel yang diperoleh, misalnya 33061K001.

IV. CATATAN Digunakan untuk memberikan keterangan tambahan terkait hal-hal penting di lokasi pengambilan titik koordinat.

3.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR LOKASI PENANGKAPAN KELELAWAR (K.03) Pengisian formulir lokasi penangkapan kelelawar dilakukan pada saat pemasangan

jaring kabut, jaring harpa dan hand net di lapangan. Data yang sudah ada pada formulir selanjutnya diinput ke dalam program entri. I.

PENGENALAN TEMPAT Isikan dengan kode Provinsi (2 digit), kode Kabupaten/ Kota (2 digit), dan kode jenis Ekosistem (1 digit) sesuai dengan lokasi penangkapan.

II.

KETERANGAN KOORDINAT PEMASANGAN JARING Lingkari nomor “2” Bujur Timur, kemudian isikan koordinat lokasi perangkap dipasang sesuai dengan titik GPS. Lingkari nomor “1” untuk koordinat Lintang Utara atau nomor “2” 103


untuk koordinat Lintang Selatan, kemudian isikan koordinat lokasi perangkap dipasang sesuai dengan titik GPS. III. KETERANGAN LOKASI PENANGKAPAN 1.

Rincian Jenis Lokasi Penangkapan Lingkari tipe habitat Hutan Primer dengan kode “01”, Hutan Sekunder dengan kode “02”, Hutan Homogen dengan kode “03” sebutkan jenis vegetasinya, Hutan Mangrove dengan kode “04”, Hutan Pantai dengan kode “05”, Perkebunan dengan kode “06” sebutkan jenis vegetasinya, Kebun dengan kode “07” sebutkan jenis vegetasinya, Ladang dengan kode “08” sebutkan jenis vegetasinya, Pemukiman/rumah dengan kode “09”, Pekarangan dengan kode “10”, Gua dengan kode “11”, atau lainnya dengan kode “12” disebutkan jenisnya. Kemudian isikan kode nomor jenis lokasi tersebut pada kolom yang tersedia. . a. Hutan Primer merupakan hutan yang tumbuh berkembang pada habitat lahan kering yang dapat berupa hutan dataran rendah, perbukitan dan pegunungan, atau hutan tropis dataran tinggi yang masih kompak dan belum mengalami intervensi manusia atau belum menampakkan bekas penebangan. b. Hutan Sekunder merupakan hutan yang tumbuh berkembang pada habitat lahan kering yang dapat berupa hutan dataran rendah, perbukitan dan pegunungan, atau hutan tropis dataran tinggi yang telah mengalami intervensi manusia atau telah menampakkan bekas penebangan (kenampakan alur dan bekas tebang). c. Hutan Homogen merupakan hutan yang ditumbuhi satu jenis tanaman. Misalnya pinus, jati dll. d. Hutan mangrove adalah sebutan untuk komunitas tumbuhan yang hidup di daerah pasang surut pantai, tidak terpengaruh oleh iklim, tanah tergenang air laut, tanah berlumpur atau liat, tidak memiliki strata tajuk, pohon-pohon dapat mencapai tinggi 30 m. e. Hutan Pantai merupakan hutan yang terletak di tepi pantai, tumbuh pada tanah kering berpasir dan berbatu dan tidak terpengaruh oleh iklim serta berada di atas garis pasang tertinggi. f.

Perkebunan merupakan lahan yang digunakan untuk kegiatan pertanian tanpa pergantian tanaman selama 2 tahun.

104


g. Kebun merupakan sebidang tanah yang luas yang ditanami pohon musiman (buahbuahan, dsb). h. Ladang merupakan area yang digunakan untuk kegiatan pertanian dengan jenis tanaman semusim di lahan kering. i.

Pemukiman/ rumah merupakan area/ lahan yang digunakan sebagai lingkungan tempat tinggal atau lingkungan hunian dan tempat kegiatan yang mendukung kehidupan.

j.

Pekarangan merupakan tanah yang berada disekitar halaman rumah.

k. Gua merupakan sebuah bentukan alami berupa ruangan di bawah tanah yang berdiri sendiri maupun saling terhubung dengan ruangan-ruangan lainnya sebagai proses pelarutan oleh air maupun aktivitas geologi. l.

Lainnya diisikan apabila tidak ada kriteria habitat yang sesuai dengan yang telah disebutkan sebelumnya.

2.

Rincian Nomor Perangkap Lingkari nomor perangkap jaring kabut 1 dengan kode “1”, jaring kabut 2 dengan “2”, jaring kabut 3 dengan “3”, jaring kabut 4 dengan “4”, jaring kabut 5 dengan “5”, jaring kabut 6 dengan “6”, perangkap harpa dengan “7”, atau hand net dengan “8”. Kemudian isikan nomor tersebut pada kolom yang disediakan.

3.

Rincian Waktu Total Koleksi Isi waktu koleksi sesuai dengan waktu di lokasi pengumpulan data dimulai jam pertama pemasangan perangkap sampai jam pengambilan perangkap.

4.

Rincian Cuaca Lingkari klasifikasi cuaca Cerah dengan kode “1”, Mendung dengan kode “2”, Berkabut dengan kode “3”, Hujan Gerimis dengan kode “4”, atau Hujan Lebat dengan kode “5”, Terang bulan dengan kode “6”, Bulan Sabit dengan kode “7”, cerah+terang bulan dengan kode “8”, Cerah+bulan sabit dengan kode “9”, Mendung+Berkabut dengan kode “10”, Hujan Gerimis+Berkabut dengan kode “11”, atau Hujan Lebat+Berkabut dengan kode “12”. Kemudian isikan nomor tersebut pada kolom yang disediakan.

5.

Rincian Ekstrasi 1 Isi waktu (jam), suhu udara (°C), dan kelembaban udara (%) saat dilakukan ekstrasi pertama kelelawar yang tertangkap.

6.

Rincian Ekstrasi 2 Isi waktu (jam), suhu udara (°C), dan kelembaban udara (%) saat dilakukan ekstrasi kedua kelelawar yang tertangkap. 105


7.

Rincian Ekstrasi 3 Isi waktu (jam), suhu udara (°C), dan kelembaban udara (%) saat dilakukan ekstrasi ketiga kelelawar yang tertangkap.

8.

Rincian Ekstrasi 4 Isi waktu (jam), suhu udara (°C), dan kelembaban udara (%) saat dilakukan ekstrasi keempat kelelawar yang tertangkap.

9.

Rincian Ekstrasi 5 Isi waktu (jam), suhu udara (°C), dan kelembaban udara (%) saat dilakukan ekstrasi keempat kelelawar yang tertangkap.

10. Rincian Foto Habitat Isikan kode foto habitat sesuai dengan kode saat penyimpanan foto . 11. Rincian Video Habitat Isikan kode video habitat sesuai dengan kode saat penyimpanan video. IV. KETERANGAN PENGUMPUL DATA 14. Rincian Nama Pengumpul Data Isi dengan nama lengkap petugas pengumpul data. 15. Rincian Tanggal Pertama Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun pertama pengumpulan data, terhitung sejak hari pertama pemasangan perangkap di satu titik. 16. Rincian Tanggal Akhir Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun terakhir pengumpulan data, terhitung sejak hari terakhir pemasangan perangkap di satu titik. 17. Rincian Tanda Tangan Pengumpul data Isikan dengan tanda tangan dari petugas pengumpul data. 18. Rincian Ketua Tim Isi dengan nama lengkap ketua tim. 19. Rincian Tanggal Pengecekan Isi dengan tanggal, bulan dan tahun saat dilakukan pengecekan oleh ketua tim. 20. Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isi dengan tanda tangan ketua tim.

106


V. CATATAN Digunakan untuk memberikan keterangan tambahan terkait hal-hal penting di lokasi penangkapan.

4.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR KOLEKSI KELELAWAR (K.04) Pengisian formulir koleksi kelelawar dilakukan pada saat pemrosesan kelelawar di

laboratorium lapangan. Data yang sudah ada pada formulir selanjutnya diinput ke dalam program entri. I.

PENGENALAN TEMPAT Diisi sesuai kode wilayah Provinsi (2 digit), kode Kabupaten/Kota (2 digit), kode Ekosistem (1 digit), kode Lokasi Penangkapan (2 digit), nomor jaring kabut/perangkap harpa/hand net dan nomor urut spesimen diisi sesuai urutan spesimen yang didapat diawali huruf “K” untuk jenis spesimen kelelawar, selanjutnya nomor urut spesimen (3 digit angka).

II.

Rincian Koordinat Lokasi jaring kabut/perangkap harpa/hand net Lingkari nomor “2” Bujur Timur, kemudian isikan koordinat lokasi jaring kabut/perangkap harpa/hand net dipasang sesuai dengan titik GPS. Lingkari nomor “1” untuk koordinat Lintang Utara atau nomor “2” untuk koordinat Lintang Selatan, kemudian isikan koordinat lokasi jaring kabut/perangkap harpa/hand net dipasang sesuai dengan titik GPS. Isikan waktu dimulainya proses ekstrasi kelelawar.

III. KOLEKSI Rincian Stiker Nomor Koleksi Kelelawar Tempel stiker nomor sampel tikus pada kolom yang bertuliskan “tempel stiker di sini”. A. KOLEKSI SPESIMEN 1 1.

Rincian Koleksi Spesimen Serum Lingkari nomor “1” jika spesimen serum berhasil dikoleksi, atau nomor “2” jika spesimen serum tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian.

2.

Rincian Koleksi Spesimen Ektoparasit Lingkari nomor “1” jika spesimen ektoparasit berhasil dikoleksi, atau nomor “2” jika spesimen ektoparasit tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian.

107


B. IDENTIFIKASI & MORFOMETRI 1.

Rincian Sub Ordo Lingkari kode nomor sub ordo Megachiroptera dengan kode “1”, atau sub ordo Microchiroptera dengan kode “2” sesuai kunci identifikasi. Kemudian isikan kode pada kolom yang tersedia.

2.

Rincian Family Lingkari kode nomor family Pteropodidae dengan kode “1”, Emballonuridae dengan kode “2”, Hipposideridae dengan kode “3”, Rhinolophidae dengan kode “4”, Vespertilonidae dengan kode “5”, Molossidae dengan kode “6”, Megadermatidae dengan kode “7”, Nycteridae dengan kode “8”, atau Rhinopomatidae dengan kode “9” sesuai kunci identifikasi. Kemudian isikan kode pada kolom yang tersedia.

3.

Rincian Genus Isi genus sesuai dengan hasil identifikasi menggunakan kunci identifikasi.

4.

Rincian Spesies Isikan nama spesies sesuai dengan hasil identifikasi menggunakan kunci identifikasi.

5.

Rincian Umur Lingkari kode nomor klasifikasi umur adult/dewasa dengan kode “1”, sub adult/ pra dewasa dengan kode “2”, atau juvenil/ anak dengan kode “3” sesuai hasil identifikasi.

6.

Rincian Jenis Kelamin Lingkari kode nomor jenis kelamin jantan dengan kode “1” dan lanjut ke pernyataan no 9, atau betina dengan kode “2” dan lanjut ke pernyataan no 7 sesuai hasil identifikasi. Kemudian isikan kode nomor tersebut pada kolom yang tersedia.

7.

Rincian Kondisi Puting Susu Lingkari kode nomor kondisi puting susu dengan hasil pengamatan puting susu berukuran ukuran kecil dengan kode “1”, menonjol dengan kode “2”, atau laktasi/ menyusui dengan kode “3”. Kemudian isikan kode pada kolom yang tersedia.

8.

Rincian Bunting Lingkari kode nomor “1” ya apabila kondisi betina bunting, atau “2” tidak apabila kondisi betida tidak bunting. Kemudian isikan kode nomor tersebut pada kolom yang tersedia. Lanjutkan ke pertanyaan nomor 10.

108


9.

Rincian Kondisi Testis Lingkari kode nomor dengan hasil pengamatan letak testis menonjol dengan kode “1”, atau tersembunyi kode “2”. Kemudian isikan kode nomor tersebut pada kolom yang tersedia.

10. Rincian Pengukuran a. Rincian Berat Tubuh (W) Isi sesuai dengan hasil pengukuran berat tubuh (gram), dua angka dibelakang koma. b. Rincian Panjang Tubuh (TL) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang tubuh kelelawar (mm) mulai dari kepala sampai ujung ekor, dua angka dibelakang koma. c. Rincian Panjang Ekor (T) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang ekor kelelawar (mm) mulai dari pangkal sampai ujung ekor, dua angka dibelakang koma. d. Rincian Panjang Kaki Belakang (HF) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang kaki belakang (mm) mulai dari tumit sampai ujung jari tanpa kuku, dua angka dibelakang koma. e. Rincian Panjang Telinga (E) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang telinga (mm) mulai dari pangkal sampai ujung telinga, dua angka dibelakang koma. f. Rincian Panjang Tragus (Tr) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang tragus (mm), dua angka dibelakang koma. g. Rincian Panjang Lengan Bawah (FA) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang lengan bawah (mm), dua angka dibelakang koma. h. Rincian Panjang Betis (Tb) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang betis (mm), dua angka dibelakang koma. i. Rincian Bentang Sayap (WSP) Isi sesuai dengan hasil pengukuran panjang bentang sayap (mm), dua angka dibelakang koma.

109


C. PENGAMBILAN DOKUMENASI SPESIMEN 1.

a. Foto Muka Depan Lingkari nomor “1” apabila foto bagian muka depan kelelawar berhasil dikoleksi, atau nomor “2” apabila tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. b. Kode Foto Diisi dengan kode foto sesuai kode penyimpanan foto. “MD” untuk muka depan diikuti 5 digit kode foto dilanjutkan “K” diikuti 3 digit angka nomor urut spesimen.

2.

a. Foto Muka Samping Lingkari nomor “1” apabila foto bagian muka samping kelelawar berhasil dikoleksi, atau nomor “2” apabila tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. c. Kode Foto Diisi dengan kode foto sesuai sesuai kode penyimpanan foto, “MS” untuk muka samping diikuti 5 digit kode foto dilanjutkan “K” diikuti 3 digit angka nomor urut spesimen.

3.

a. Foto Dorsal Lingkari nomor “1” apabila foto bagian punggung kelelawar berhasil dikoleksi, atau nomor “2” apabila tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. d. Kode Foto Diisi dengan kode foto sesuai kode penyimpanan foto, “D” untuk dorsal diikuti 5 digit kode foto dilanjutkan “K” diikuti 3 digit angka nomor urut spesimen.

4.

a. Foto Ventral Lingkari nomor “1” apabila foto bagian dada kelelawar berhasil dikoleksi, atau nomor “2” apabila tidak berhasil dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. b. Kode Foto Diisi dengan kode foto sesuai kode penyimpanan foto, “V” untuk ventral diikuti 5 digit kode foto dilanjutkan “K” diikuti 3 digit angka nomor urut spesimen.

110


D. KOLEKSI SPESIMEN 2 1. Rincian Punch Sayap Lingkari nomor “1” apabila spesimen punch sayap berhasil dikoleksi, atau nomor “2” jika punch sayap tidak dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. 2. Rincian Swab Trakhea Lingkari nomor “1” apabila spesimen swab trakhea berhasil dikoleksi, atau nomor “2” jika swab trakhea tidak dikoleksi. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. 3. Rincian Awetan Basah Lingkari nomor “1” apabila spesimen dijadikan awetan basah, atau nomor “2” jika spesimen tidak dijadikan awetan basah. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. Lanjut ke isian form bab XII 4. Rincian Perlakuan Sampel Lingkari nomor “1” apabila spesimen diberi perlakuan lain,

atau nomor “2” jika

spesimen tidak diberi perlakuan. Kemudian tuliskan nomor yang telah dilingkari pada kolom isian. IV. KETERANGAN PENGUMPUL DATA 1.

Rincian Nama Pengumpul Data Isi dengan nama lengkap petugas pengumpul data.

2.

Rincian Tanggal Pertama Pengumpulan Data Isi dengan tanggal, bulan dan tahun pengumpulan data, terhitung sejak hari pertama pemasangan perangkap di satu titik.

3.

Rincian Tanda Tangan Pengumpul Data Isi dengan tanda tangan dari petugas pengumpul data.

4.

Rincian Nama Ketua Tim Isi dengan nama lengkap ketua tim.

5.

Rincian Tanggal diperiksa Isi dengan tanggal, bulan dan tahun saat dilakukan pemeriksaan oleh ketua tim.

6.

Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isi dengan tanda tangan ketua tim.

111


V.

CATATAN Diisi dengan keterangan singkat morfologi spesimen atau keterangan apabila spesimen tidak berhasil dikumpulkan atau jumlahnya kurang.

5.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR PENGIRIMAN DAN PENERIMAAN (TK.05)

I.

Pengenalan Tempat 1.

Rincian Kode Provinsi Diisi kode Provinsi lokasi penangkapan (2 digit).

2.

Rincian Kode Kabupaten Diisi Kode Kabupaten lokasi penangkapan (2 digit).

3.

Rincian Kode Jenis Ekosistem Diisi sesuai dengan kode jenis ekosistem di lokasi penangkapan (1 digit).

II.

Keterangan Spesimen 1. Jenis Spesimen Dilingkari salah satu nomor sesuai dengan jenis spesimen yang akan dikirim, kemudian isikan nomor spesimen tersebut pada kolom yang tersedia. Nomor “1” jenis spesimen serum tikus, “2” ektoparasit tikus, “3” paru paru tikus, “4” ginjal tikus, “5” awetan basah tikus, “6” punch telinga tikus, “7” swab kelelawar, “8” serum kelelawar, “9” ektoparasit kelelawar, “10” awetan basah kelelawar, atau “11” punch sayap kelelawar.

III. Keterangan Kode Spesimen Pengisian dilakukan oleh petugas pengirim spesimen meliputi: 1. Rincian Nomor Spesimen Diisi sesuai dengan nomor urut spesimen yang akan dikirim. Misalkan spesimen serum kelelawar 33261K001. 2. Rincian Suhu Diisi berapa besaran suhu (°C) didalam kotak pengiriman pada saat akan dikirim. 3. Rincian Jumlah Diisi berapa jumlah spesimen yang dikirim. 4. Rincian Kondisi Diisi bagaimana kondisi spesimen yang akan dikirim (Baik/Rusak). Misal untuk spesimen serum kelelawar dalam kondisi lisis/telah diencerkan menggunakan PBS. 5. Rincian Tanggal Pengiriman Spesimen Diisi tanggal, bulan, dan tahun kapan spesimen dikirim.

112


6. Rincian Tanda Tangan Diisi tanda tangan petugas pengirim specimen (ketua tim). 7. Rincian Nama Pengirim Spesimen Diisi nama lengkap petugas pengirim spesimen (ketua tim). Pengisian dilakukan oleh petugas penerima spesimen meliputi: 1. Rincian Suhu Diisi berapa besaran suhu (°C) didalam kotak pengiriman pada saat diterima. 2. Rincian Jumlah Diisi berapa jumlah spesimen yang diterima. 3. Rincian Kondisi Diisi bagaimana kondisi spesimen yang diterima (Baik/Rusak). Misal untuk spesimen serum kelelawar dalam kondisi lisis/telah diencerkan menggunakan PBS. 4. Rincian Tanggal Penerimaan Spesimen Diisi tanggal, bulan, dan tahun kapan spesimen diterima. 5. Rincian Tanda Tangan Diisi tanda tangan petugas penerima spesimen B2P2VRP. 6. Rincian Nama Penerima Spesimen Diisi nama lengkap petugas penerima spesimen B2P2VRP.

6.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR CEK LIST KEGIATAN (TK.06)

I.



2.


3.


II.

Keterangan Kegiatan 1. Berikan tanda centang (√) pada kolom “ya” apabila semua kegiatan yang terdapat pada kolom rincian kegiatan sudah diselesaikan. Apabila rincian kegiatan belum dilakukan berikan tanda centang

(√) pada kolom “tidak” dan berikan alasan kenapa kegiatan

tersebut belum dilakukan serta kapan kegiatan tersebut akan dilakukan. 2. Rincian Tanggal Validasi Internal 113


Isikan tanggal, bulan, dan tahun pada saat dilakukan validasi internal. 3. Rincian Nama Ketua Tim Pengumpulan Data Isikan nama ketua tim pengumpul data. 4. Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Pengumpulan Data Isikan dengan tanda tangan ketua tim pengumpul data.

7.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR CEK LIST ALAT DAN BAHAN (TK.07)

I.



2.


3.


II.

Keterangan Alat Bahan Hasil pengecekan alat dan bahan sebelum melakukan proses pengumpulan data tuliskan pada kolom sebelum. a. Kolom jumlah Tuliskan jumlah alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sebelum pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom jumlah. b. Kolom satuan Tuliskan satuan alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sebelum pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom satuan, misalnya buah, box, pak c. Kolom kondisi Tuliskan kondisi alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sebelum pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom kondisi, misalnya baik atau rusak d. Rincian tanggal pengecekan awal Isikan tanggal, bulan, dan tahun pada saat dilaksanakan pengecekan alat dan bahan sebelum pengumpulan data. e. Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isikan dengan tanda tangan ketua tim pengumpulan data. 114


f. Rincian Nama Ketua Tim Tuliskan nama ketua tim pengumpulan data. Hasil pengecekan alat dan bahan sesudah melakukan proses pengumpulan data tuliskan pada kolom sesudah. a. Kolom jumlah Tuliskan jumlah alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sesudah pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom jumlah. b. Kolom satuan Tuliskan satuan alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sesudah pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom satuan, misalnya buah, box, pak c. Kolom kondisi Tuliskan kondisi alat dan bahan sesuai daftar nama alat dan bahan yang tersedia sesudah pengumpulan data pada satu ekosistem pada kolom kondisi, misalnya baik atau rusak g. Rincian tanggal pengecekan akhir Isikan tanggal, bulan, dan tahun pada saat dilaksanakan pengecekan alat dan bahan sesudah pengumpulan data. h. Rincian Tanda Tangan Ketua Tim Isikan dengan tanda tangan ketua tim pengumpulan data. i. Rincian Nama Ketua Tim Tuliskan nama ketua tim pengumpulan data.

8.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR BERITA ACARA SERAH TERIMA LIMBAH (TK.08)

1. Isikan kode Provinsi lokasi penangkapan (2 digit). 2. Isikan kode Kabupaten lokasi penangkapan (2 digit). 3. Isikan sesuai dengan kode jenis ekosistem di lokasi penangkapan (1 digit). 4. Isikan nama ketua tim pengumpulan data yang melakukan serah terima limbah. 5. Isikan nama kabupaten dan propinsi tempat tim melakukan pengumpulan data. 6. Isikan nama kabupaten, propinsi dan ekosistem tempat limbah dihasilkan. 7. Isikan nama petugas penanggung jawab operasional yang menerima limbah dari ketua tim. 8. Isikan nama kabupaten dan propinsi tempat tim melakukan pengumpulan data. 115


9. Isikan hari, tanggal dilakukannya serah terima limbah. 10. Isikan jam (waktu) dilakukannya serah terima limbah. 11. Isikan tempat dilakukannnya serah terima limbah. 12. Isikan jenis dan jumlah limbah yang diserah terimakan. 13. Isikan nama terang dan tanda tangan dari ketua tim pengumpulan data serta penanggung jawab operasional. 14. Isikan nama terang dan tanda tangan dari saksi-saksi serah terima limbah. 9.

PANDUAN PENGISIAN FORMULIR BERITA ACARA PEMUSNAHAN LIMBAH (TK.09) 1.

Isikan kode Provinsi lokasi penangkapan (2 digit).

2.

Isikan kode Kabupaten lokasi penangkapan (2 digit).

3.

Isikan sesuai dengan kode jenis ekosistem di lokasi penangkapan (1 digit).

4.

Isikan nama petugas penanggung jawab operasional yang bersangkutan.

5.

Isikan nama kabupaten dan propinsi tempat tim melakukan pengumpulan data.

6.

Isikan nama kabupaten, propinsi dan ekosistem tempat limbah dihasilkan.

7.

Isikan hari, tanggal dilakukannya pemusnahan limbah.

8.

Isikan jam (waktu) dilakukannya pemusnahan limbah.

9.

Isikan tempat dilakukannnya pemusnahan limbah.

10. Isikan jenis dan jumlah limbah yang akan dimusnahkan. 11. Isikan nama terang dan tanda tangan penanggung jawab operasional. 12. Isikan nama terang dan tanda tangan dari saksi-saksi pemusnahan limbah. 10. PANDUAN PENGISIAN FORMULIR BERITA ACARA SERAH TERIMA SPESIMEN (TK.10) 1.

Isikan kode Provinsi lokasi penangkapan (2 digit).

2.

Isikan kode Kabupaten lokasi penangkapan (2 digit).

3.

Isikan sesuai dengan kode jenis ekosistem di lokasi penangkapan (1 digit).

4.

Isikan nama ketua tim pengumpulan data yang melakukan serah terima spesimen.

5.

Isikan nama kabupaten dan propinsi tempat tim melakukan pengumpulan data.

6.

Isikan nama kabupaten, provinsi dan ekosistem tempat spesimen berasal.

7.

Isikan nama petugas penanggung jawab operasional yang menerima spesimen dari ketua tim.

8.

Isikan nama kabupaten dan propinsi tempat tim melakukan pengumpulan data. 116


9.

Isikan hari, tanggal dilakukannya serah terima spesimen.

10. Isikan jam (waktu) dilakukannya serah terima spesimen. 11. Iskan tempat dilakukannnya serah terima spesimen. 12. Isikan jenis dan jumlah spesimen yang diserah terimakan. 13. Isikan nama terang dan tanda tangan dari ketua tim pengumpulan data serta penanggung jawab operasional. 14. Isikan nama terang dan tanda tangan dari saksi-saksi serah terima spesimen.

11. PEDOMAN PENGISIAN FORMULIR SPESIMEN (TK.11) I.



2.


3.


4.

Rincian Kode Sampel Diisi sesuai dengan kode sampel yang ada (3 digit). Misal sampel serum tikus T001 atau serum kelelawar K001.

II.

Keterangan Pengiriman Sampel 1. Rincian Nama Spesies Diisi nama spesies sampel yang telah terkonfirmasi sesuai kunci identifikasi. 2. Rincian Jenis Sampel Dilingkari salah satu nomor sesuai dengan jenis sampel yang akan dikirim, kemudian isikan nomor sampel tersebut pada kolom yang tersedia. Nomor “1” jenis sampel serum tikus, “2” ektoparasit tikus, “3” paru paru tikus, “4” ginjal tikus, “5” awetan basah tikus, “6” punch telinga tikus, “7” swab kelelawar, “8” serum kelelawar, “9” ektoparasit kelelawar, “10” awetan basah kelelawar, atau “11” punch sayap kelelawar. Catatan: untuk jenis sampel serum tikus dan serum kelelawar pengisian formulir lanjut ke pertanyaan nomor 3. Jenis sampel non serum tidak perlu mengisi pertanyaan nomer 3. 3. Rincian Sampel di Encerkan

117


Dilingkari nomor “1” apabila sampel telah diencerkan, atau nomor “2” apabila sampel tidak diencerkan. Kemudian isikan nomor yang telah dilingkari pada kolom yang tersedia.

118


BAB XXIII. PROSEDUR PENGKODEAN SPESIMEN Semua spesimen hasil pengumpulan data meliputi serum, ginjal, ektoparasit, punch jaringan, dan awetan basah harus diberi kode (dengan stiker maupun manual). Setiap jenis spesimen yang berasal dari satu individu memiliki nomor kode yang sama. Kode spesimen diisi berdasarkan kode wilayah dan nomor koleksi. Pengkodean spesimen dijabarkan sebagai berikut:

1

2

3

4

5

Keterangan: 1. Kode provinsi (2 digit) 2. Kode kabupaten (2 digit) 3. Kode ekosistem (1 digit) 4. Kode jenis sampel: “K” untuk kelelawar atau “T” untuk tikus 5. Nomor koleksi (3 digit)

119


120


DAFTAR PUSTAKA 1. Manual GPS Oregon 600 series. 2. https://www.bsava.com/Resources/BSAVAMedicinesGuide/Standardoperatingprocedure s.aspx. 3. Kartono mohamad, 1975. Pertolongan Pertama. Gramedia Pustaka Utama.. Jakarta 4. Yayasan IDEP. Panduan Kecil Pertolongan Pertama Gawat Darvena (PPGD). Penanggulangan Bencana Berbasis Masyarakat 5. Barlow, Kate. 1999. Expedition Field Techniques Bats. Royal Geographical Society 6. Suyanto, A. 2001. LIPI, Seri Panduan Lapangan: Kelelawar di Indonesia. Pusat Penelitian dan Pengembangan Biologi-LIPI, Bogor. 7. Jones, C., W.J. Mc Shea,M.J. Conroy and T.H. Kunz. 1996. Capturing mammals. In: Wilson, D.E., F.R. Cole, J.D. Nichols,R. Rudran dan M.S. Foster. (eds). Measuring and Monitoring Biological Diversity. Standard Methods for Mammals. Smithsonian Institution Press, Washington and London. Hal 115-155. 8. Struebig, M. and R. Sujarno. 2006. Forest bat surveys using harp-traps. A Series of Expeditions studying the conservation of bats in Indonesian Borneo. Bat International Conservation. 9. Flecknell, Paul, 2009. Laboratory Animal Anaesthesia. 3rd Ed. Elsevier Inc. 10. West, Gary., Darryl Heard and Nigel Caulkett. Zoo Animal & Wildlife : Immobilization and Anesthesia. 1st Edition. Blackwell Publishing. 2007 11. PREDICT, Protocol Bat and Rodent Sampling Methods. July 22, 2013 12. http://research.amnh.org/vz/mammalogy/f/Sampling_methods. 13. USGS National Wildlife Health Center. Bat White-Nose Syndrome (WNS)/Pd Surveillance Submission Guidelines. Winter 2014/2015. 14. Simmons, N. 2005.

Chiroptera. In: Wilson, D.E. and M. Reeder (Editors). Mammal

Species of the World: A Taxonomic and Geographic Reference. 3rd edition. John Hopkins University Press, Baltimore. 15. Simmon, B. Nancy and Robert S. Voss. Collection, Preparation and Fixation of Spesimens and Tissue. Department of Mammalogy, Division of Vertebrate Zoology, American Museum of Natural History, New York. 16. Suyanto, A. 1999. Pengelolaan Koleksi Mamalia. Dalam: Y.R. Suhardjono (Ed.) Buku Pegangan Pengelolaan Zoologi: pp 21-45. Balai Penelitian dan Pengembangan Zoologi, Pusat Penelitian dan Pengembangan Biologi LIPI, Bogor. 121


17. Srinivasulu, C., Racey, Paul A., and Mistry, Shahroukh. 2010. A Key to The Bats (Mammalia: Chiroptera) of South Asia. JoTT Monograph 2 (7) : 1001-1076 18. Suyanto, A., Yoneda M., Maryanto, I., Maharadatunkamsi dan Sugardjito, J. 2002. Checklist of the Mammals of Indonesia, 2nd ed. LIPI-JICA-PHKA, Bogor. 19. Suyanto, A. Mamalia Di Taman Nasional Gunung Halimun Jawa Barat. Puslit BiologiLIPI dan BCP-JICA, Bogor. 20. Standar Nasional Indonesia. Klasifikasi Penutup Lahan. Badan Standarisasi Nasional. 2010. Jakarta:SNI 7645-2010 21. kbbi.web.id 22. Nancy B. Simmons and Robert S. Voss, Collection, Preparation, and Fixation of Specimens and Tissues, American Museum Natural History 23. Joseph A. Cook, Jonathan L. Dunnum, Division Of Mammals Collection Management Procedures Manual, Museum Of Southwestern Biology University Of New Mexico, 2016

122


Lampiran1. Form Ekosistem

123


Lampiran 2. Form Koordinat GPS Perangkap

124


Lampiran 3. Form Lokasi Penangkapan Kelelawar

125


126


Lampiran 4. Form Koleksi Kelelawar

127


128


Lampiran 5. Form Pengiriman Spesimen

129


Lampiran 6. Form Check list Kegiatan

130


Lampiran 7. Form Check list Alat dan Bahan

131


132


133


134


Lampiran 8. Form Berita cara Serah Terima Limbah

135


Lampiran 9. Form Berita Acara Pemusnahan Limbah

136


Lampiran 10. Berita Acara Serah Terima Spesimen

137


Lampiran 11. Form Spesimen

138

PEDOMAN PENGUMPULAN DATA RESERVOIR (KELELAWAR) DI LAPANGAN

Recommend Documents