Panduan praktikum planktonologi I. PENDAHULUAN

I. PENDAHULUAN Istilah plankton pertama kali digunakan oleh Victor Hensen pada tahun 1887, dan disempurnakan oleh Haeckel tahun 1890. Difinisi tentang plankton telah banyak dikemukakan oleh para ahli dengan pendapat yang hampir sama yakni, seluruh kumpulan organisme, baik hewan maupun tumbuhan yang hidup terapung atau melayang di dalam air, tidak dapat bergerak atau dapat bergerak sedikit dan tidak dapat melawan arus. Individu

plankton

(plankter)

umumnya

berukuran

mikroskopis, meskipun demikian ada plankter yang berukuran beberapa meter misalnya ubur- ubur dapat mencapai ukuran 1 meter dengan tentakel sepanjang 25 meter. Plankton dapat dikelompokkan menjadi beberapa kelompok berdasarkan cara makan, habitat, asal, ukuran dll. Pengelompokkan plankton yang paling umum didasarkan pada cara makannya. Berdasarkan cara

makan

saproplankton,

plankton

dapat

fitoplankton,

dibedakan

dan

menjadi

zooplankton.

Di

perairan, peran plankton tersebut sangat penting. Terutama dalam usaha budidaya ikan/udang, plankton dapat berfungsi sebagai pakan alami yang ramah

Panduan praktikum planktonologi 2014

1

lingkungan. Plankton juga dapat digunakan sebagai indikator kesuburan perairan. Komunitas

organisme

adalah

sesuatu

yang

dinamis, dimana populasi yang ada di dalamnya saling berinteraksi, dan mengalami variasi dari waktu ke waktu. Variasi atau perubahan komunitas tersebut tidak lain karena adanya pengaruh faktor-faktor lingkungan yang komplek. Demikian pula dengan plankton juga mengalami perubahan dari waktu ke waktu. Spesies yang dominan pada waktu tertentu sering menjadi langka atau menghilang sama sekali pada waktu berikutnya, atau sebaliknya. Perubahan ini dipengaruhi oleh faktor fisika (suhu, intensitas cahaya), faktor kimia (unsur hara), dan faktor biologis (kompetisi dan pemangsaan). Jenis plankton yang berbeda mempunyai reaksi yang berbeda pula misalnya terhadap suhu dan intensitas cahaya. Keberadaan plankton di perairan tidak selalu menguntungkan, keadaan merugikan adalah ketika plankton jenis tertentu tumbuh secara berlebihan atau disebut

juga

blooming

plankton.

Blooming

akan

merusak keseimbangan perairan, terutama jika terjadi defisiensi oksigen pada saat malam hari. Blooming plankton biasanya disebabkan oleh spesies tertentu seperti Gymnodinium sp., Spirulina sp, dll.


2

Banyaknya peran dan pengaruh plankton bagi perairan khususnya dalam bidang perikanan maka studi tentang plankton dijadikan objek tersendiri dan disebut planktonologi. Untuk menambah pengetahuan tentang planktonolgi,

selain

informasi

yang

didapat

dari

perkuliahan diperlukan pendalaman lebih lanjut yang dilakukan melalui kegiatan praktikum. Praktikum planktonologi juga akan mempelajari hubungan plankton dengan lingkungan perairan, seperti potensi plankton nabati (fitoplankton) dalam mensuplai oksigen, sebagai baseline dalam rantai makanan ataupun fungsi lainnya. Sedangkan untuk menganalisa parameter- parameter yang mempengaruhi tersebut dilakukan dengan menggunakan peralatan yang sangat sensitif seperti mikroskop, botol DO, water sampler, buret, dan lain lain. Untuk mencegah terjadinya kerusakan alat, praktikan harus mentaati peraturan yang dibuat oleh asisten maupun peraturan dalam laboratorium serta memahami buku panduan praktikum terutama setiap alat yang digunakan dalam praktikum.


3

II. PRAKTIKUM LAPANG 2.1 Pengamatan Komponen Ekologi Perairan Tujuan komponen

:

agar

ekologi

mempengaruhi

praktikan (biotik

kehidupan

dapat

dan

mengetahui

abiotik)

plankton.

yang

Pengamatan

komponen ekologi perairan dibagi menjadi 2, yaitu pengamatan komponen Biotik dan Abiotik. 2.1.1 Pengamatan Komponen Biotik Pengamatan ini dilakukan dengan cara melihat aspek biologi yang ada di dalam kolam dan disekitar kolam. Seperti plankton (fitoplankton dan zooplankton), organisme

budidaya,

organisme

lain

(hama

gastropoda), vegetasi disekitar kolam. 2.1.2 Pengamatan Komponen Abiotik Komponen

abiotik

yang

diukur

diantaranya

parameter fisika (suhu, kecerahan), parameter kimia (pH, DO, CO2, nitrat nitrogen, orthofosfat, bahan organik total (TOM)) 

Parameter Fisika

a. Suhu  Masukkan thermometer ke dalam perairan  Tunggu beberapa saat sampai air raksa dalam thermometer berhenti ± 2-3 menit


4

 Baca

nilai

suhu

pada

skala

thermometer

secepatnya, sebelum terpengaruh oleh suhu sekitar  Catat dalam oC b. Kecerahan  Secchi disk dimasukkan perlahan dalam perairan sampai batas tidak tampak pertama kali. Batas permukaan air dengan tali diberi tanda dan dicatat sebagai d1  Secchi disk dimasukkan lagi dalam perairan sampai tidak terlihat  Secchi disk ditarik ke atas sampai batas tampak pertama kali. Batas permukaan air dengan tali diberi tanda dan dicatat sebagai d2  Kecerahan dapat dihitung dengan rumus(cm) =



ௗଵାௗଶ ଶ

Parameter Kimia

a. pH  Masukkan pH paper ke dalam air sampel kurang lebih 2 menit  Kibas-kibaskan hingga setengah kering  Cocokkan warna pada pH paper dengan warna kotak standar


5

b. DO  Ukur dan dicatat volume botol DO yang akan digunakan  Masukan botol DO ke dalam air yang akan diukur oksigennya secara perlahan-lahan dengan posisi miring dan usahakan jangan sampai terjadi gelembung udara. Bila botol telah penuh baru ditutup diperairan  Kemudian

buka

botol

yang

berisi

sampel,

tambahkan 2 ml MnSO4 dan 2 ml NaOH + KI lalu bolak-balik sampai terjadi endapan coklat. Lalu diendapkan dan dibiarkan selama beberapa menit  Buang air yang bening diatas endapan (sambil diukur volumenya), kemudian endapan yang tersisa seperti 2 ml H2SO4 pekat yang dikocok sampai endapan larut  Tambahkan 3 - 4 tetes amylum, dititrasi denagn Na-thiosulfat 0,025 N sampai jernih atau tidak berwarna untuk pertama kali  Catat ml Na-tiosulfat yang terpakai (titran)  Perhitungan DO: ۲‫܏ ܕ(۽‬⁄‫= )ۺ‬

‫ × )ܖ܉ܚܜܑܜ(ۼ × )ܖ܉ܚܜܑܜ(ܞ‬ૡ × ૚૙૙૙ ‫ܔܗܜܗ܊ܞ‬۲‫ ۽‬− ૝


6

Keterangan : V (titran)

: ml titrasi Na-thiosulfat

N (titran)

: Normalitas Na-thiosulfat (0,025)

c. CO2  Masukan air sampel 25 ml ke dalam erlenmeyer  Tambahkan 2 – 3 tetes indikator PP  Bila air berwarna pink berarti dalam perairan tidak mengandung CO2 bebas  Bila air tidak berwarna, dititrasi dengan Na 2CO3 0,0454 N sampai menjadi pink pertama kali  Catat ml titran yang terpakai  Perhitungan CO2 :

۱‫ ۽‬૛‫ܛ܉܊܍܊‬ሺ‫܏ ܕ‬⁄‫= )ܔ‬

d. Nitrat Nitrogen

‫ۺ ܕ‬ሺ‫ܖ܉ܚܜܑܜ‬ሻൈ ‫ۼ‬ሺ‫ܖ܉ܚܜܑܜ‬ሻൈ ૛૛ ൈ ૚૙૙૙ ‫ܔ܍ܘ ܕ܉ܛܚܑ܉ۺ ܕ‬

 Masukkan ke dalam cawan porselen sebanyak 25 ml air sampel yang sudah disaring  Panaskan sampai menghasilkan kerak nitrat  Kemudian didinginkan  Tambahkan 1 ml asam fenol disulfonik dan aduk dengan spatula  Tambahkan 10 ml aquadest


7

 Tambahkan tetes demi tetes NH4OH sampai warna kekuningan  Tambahkan aquadest sampai volume 25 ml  Kemudian dimasukkan dalam cuvet ± 10 ml  Ukur

di

spektrofotometer

dengan

panjang

gelombang 410 nm  Nilai nitrat dicari dari persamaan : ܻ = ܽ‫ ݔ‬− ܾ

Keterangan :

Nilai a dan b diperoleh dari persamaan larutan baku Y

: abs (yang sudah diukur di

spektrofotometer) X

: nitrat dalam bentuk N

Untuk mengubah NO3- - N menjadi NO3- mg/l maka nilai x dari persamaan dikalikan 4,43 mg/l nilai ini diperoleh dari perbandingan berat molekul NO3- - N dibagi NO3e. Orthophosphat  Tambahkan 2 ml ammonium molybdate kedalam masing – masing larutan standar yang telah dibuat

dan

dihomogenkan

sampai

larutan

bercampur.


8

 Tambahkan 2 tetes larutan SnCl2 dan dikocok. Warna biru akan timbul (10 – 20 menit) sesuai dengan kadar fosfornya.  Ukur dan tuangkan 25 ml air sampel kedalam Erlenmeyer.  Tambahkan 2 ml ammonium molybdate dan dihomogenkan.  Tambahkan

5

tetes

larutan

SnCl2

dan

dihomogenkan.  Bandingkan warna biru air sampel dengan larutan standar,

baik

secara

visual

atau

dengan

spektrofotometer (panjang gelombang 690 μm).  Perhitungannya : Keterangan :

ܻ = ܽ‫ ݔ‬+ ܾ

Nilai a dan b diperoleh dari persamaan larutan baku Y : abs (yang sudah diukur di spektrofotometer) X : nilai orthofosat f. TOM (TOTAL ORGANIC MATTER) 

Ambil 25 ml air sampel, masukkan kedalam Erlenmeyer.



Tambahkan 4,8 ml KMnO4 dari buret



Tambahkan 5 ml H2SO4 (1:4)


9



Panaskan dalam pemanas air (water bath) sampai suhu mencapai 70-80oC kemudian angkat



Bila suhu telah turun menjadi 60-70oC langsung tambahkan Na-oxalate 0,01 N perlahan sampai tidak bewarna



Segera titrasi dengan KMnO4 0,01 N sampai terbentuk

warna

(merah

jambu/pink).

Catat

sebagai ml titran (x ml). 

Ambil 25 ml aquadest, lakukan prosedur (1-6) dan catat titran yang digunakan sebagai (y ml).

-

Masukkan spektrofotometer ke dalam gelas ukur

-

Tunggu sampai spektrofotometer tidak bergerak dan dibaca skala yang menunjukkan angka TOM

2.2 Pengambilan Sampel Plankton di Perairan Tujuan : 

Menambah keterampilan praktikan terutama dalam

penentuan lokasi dan pengambilan

sampel plankton 

Menambah pengetahuan praktikan tentang tata cara penyimpanan sampel plankton

Dasar teori : Teknik pengumpulan plankton dari perairan yang paling mudah umumnya dapat dilakukan dengan menyaring sejumlah massa air dengan jaring halus


10

(planktonet). Bergantung pada tujuannya sampling plankton

dapat

dilakukan

secara

kualitatif

atau

kuantitatif. Sampling dilakukan

plankton

dengan

secara

menjaring

kualitatif, plankton

dapat dengan

planktonet atau dengan menarik planktonet secara horizontal

maupun

vertical.

Selain

menggunakan

planktonet bisa juga menggunakan ikan planktivor (ikan pemakan plankton), ikan tersebut dapat mengumpulkan berbagai jenis plankton berukulan nano yang masih bisa lolos dari jala. Untuk menghindari agar plankton yang dimakan tidak dicerna lebih lanjut, ikan yang diperoleh harus segera dibunuh. Sampling plankton secara kuantitatif, Pada umumnya pengumpulan plankton secara kuantitatif dapat dilakukan dengan botol, jaring (planktonet), pompa

dan

sampling

Continous

seperti

ini

Plankton umumnya

Recorder.

Cara

dilakukan

untuk

mengetahui kepadatan plankton per satuan volume dengan pasti. Alat dan bahan

:

Alat 

plankton net



botol film


11



water sampler/ ember ukuran 5 liter



pipet tetes



cool box

Bahan : 

bahan preservasi (lugol, formalin, alkohol)



es batu



kertas label

Prosedur

:

1. Kalibrasi terlebih dahulu planktonet dengan aquades dengan cara disemprot menggunakan botol semprot diseluruh permukaan planktonet, atau dengan air lokal (air yang akan diambil planktonnya) dengan cara dicelupkan kedalam perairan sampai seluruh permukaan terkena air kolam. 2. Botol film dipasangkan pada ujung planktonet dan diikat 3. Ambil sampel air dengan menggunakan water sampler/ ember dan disaring menggunakan plankton net (pada saat air disaring plankton net digoyangkan agar plankton yang menempel di permukaan jaring dapat masuk ke botol film. Jumlah air yang disaring dicatat sebagai (W).


12

Dalam praktikum ini jumlah air yang disaring sebanyak 25 liter. 4. konsentrat plankton yang tertampung dalam botol film (V) kemudian diberi bahan preservasi (pengawet) sebanyak 3-4 tetes, kemudian diberi label. Keterangan pada label ditulis menggunakan pensil. 5. Sampel plankton yang sudah diberi label dimasukkan ke dalam cool box yang berisi es batu. 6. Kalau sampel tidak dianalisa pada hari itu maka bisa disimpan dalam refrigerator dengan suhu 4oC.


13

III. PENGAMATAN LABORATORIUM 3.1 Pembuatan Preparat Plankton Tujuan : menambah keterampilan mahasiswa dalam membuat preparat plankton Alat

: 

Objek glass



Cover glass



Pipet tetes



Botol semprot

Bahan : 

Sampel plankton



Tissue



Aquades

Prosedur 1. Objek

: glass

dan

cover

glass

dikalibrasi

menggunakan aquades kemudian dilap secara searah menggunakan tissue 2. Sampel plankton dikocok secara perlahan, kemudian diambil menggunakan pipet tetes lalu diteteskan ke permukaan objek glass sebanyak 1 tetes (v)


14

3. Tutup objek glass dengan cover glass dengan sudut

kemiringan

40o

agar

memperkecil

kemungkinan terjadi gelembung 4. Jika terdapat gelembung dalam pembuatan preparat sebaiknya diulangi agar pengamatan dibawah mikroskop menjadi lebih mudah 3.2 Pengamatan Plankton di bawah Mikroskop Tujuan : 

Menambah

keterampilan

praktikan

dalam

penggunaan mikroskop dan penentuan luas bidang pandang 

Menambah bentuk-

pengetahuan

bentuk

praktikan

plankton

serta

tentang dapat

membedakan antara fitoplankton, zooplankton dan seresah 

Menambah

pengetahuan

tentang

cara

penentuan bidang pandang untuk perhitungan plankton Alat

: 

Preparat plankton



Mikroskop



Alat tulis


15

Prosedur

:

Penentuan luas lapang bidang pandang (LBP) 

Preparat plankton yang sudah jadi diletakkan diatas meja objek mikroskop



Sebelum dinyalakan, dipastikan pengatur cahaya mikroskop berada pada frekuensi terkecil, jika sudah bisa dinyalakan.



Cahaya

diperjelas

dengan

memutar

pengatur

cahaya dan bukaan diafragma, kemudian pilih perbesaan yang diharapkan (40x, 100x, 400x, 1000x) 

Menemukan fokus dengan memutar pemutar kasar dan halus sedemikian rupa sehingga preparat terlihat

jelas,

untuk

perbesaran

1000x

menggunakan minyak emercy agar tidak terjadi gesekan dan memperjelas objek 

Setelah fokus, langkah selanjutnya mencari luas lapang bidang pandang (LBP) seperti petunjuk dibawah


16

D1 ‫ܦ = ܦ‬1 − ‫ܦ‬2 ‫= ܲܤܮ‬

1 ߨ‫ ܦ‬ଶ 4

plankton

D2

Ket

: Prinsip perhitungan adalah mengetahui luas lingkaran yang tampak dibawah lensa objek. Nilai D1 dan D2 dapat dilihat pada mikro meter pada meja objek

Perhitungan plankton di bawah mikroskop 

Perhitungan plankton dapat menggunakan 5 bidang pandang dan 9 bidang pandang, dalam praktikum ini menggunakan 5 bidang pandang. Bp 1

Bp 2 Bp 5

Bp 4



Bp 3

Amati jumlah plankton pada tiap bidang pandang 1 – 5. Jika (P) adalah jumlah bidang


17

pandang maka (n) adalah jumlah plankton dalam bidang pandang 

Plankton

yang

ada

pada

setiap

bidang

pandang digambar dan dihitung jumlahnya. Dan dimasukkan dalam tabel pengamatan dibawah, Contoh : Bidan pandang

Gambar

Jumlah

klasifikasi Filum:

BP1

Ordo:

7

Genus: Spesies:

3.3 Identifikasi dan Perhitungan Kelimpahan 3.3.1 Identifikasi Tujuan : Menambah pengetahuan praktikan tentang bagaimana

cara

mengidentifikasi

plankton

dan

menemukan klasifikasinya. Dasar teori : Plankton dapat dibedakan menjadi beberapa kelompok, berdasarkan cara makan plankton dapat dikelompokkan (saproplankton,

ke

dalam

fitoplankton,

bakterioplankton dan


zooplankton),

18

saproplankton merupakan kelompok plankter yang terdiri atas organisme yang tidak berklorofil, meliputi bakteri dan fungi. Fitoplankton merupakan tumbuhan mikroskopis berklorofil yang umumnya terdiri atas chlorophyta, chyanophyta, rodhophyta, dinoflagelata, chrisophyta dll. Zooplankton merupakan kelompok plankter

yang

mempunyai

cara

makan

holozoik.

Anggota kelompok ini meliputi hewan dari filum protozoa, coelenterata, arthropoda, molusca, rotifera, annelida, copepoda dan masih banyak lagi. Golongan zooplankton yang mendominasi adalah dari filum copepoda. Untuk

mengidentifikasi,

apakah

plankton

yang

diamati masuk dalam golongan fitoplankton, atau zooplankton dapat menggunakan buku identifikasi, buku- buku tersebut menggunakan prinsip identifikasi secara dikotomi yaitu penentuan jenis berdasarkan kesamaan ciri dari karakteristik plankton. Adapun buku yang bisa digunakan untuk mengidentifikasi antara lain Prescott, Davis, Sachlan dll, bisa juga dicari melalui internet. 3.3.2 Estimasi Kelimpahan Plankton Tujuan : menambah pemahaman praktikan tentang perhitungan

kelimpahan

plankton

sehingga


dapat

19

menganalisa

kesuburan

perairan

berdasarkan

kelimpahan planktonnya. Dasar teori : Pada umumnya estimasi kelimpahan plankton yang sering dilakukan adalah pengukuran biomassa (berat kering, berat basa, atau volume plankton) dan menghitung jumlah plankter per satuan volume. Masingmasing

cara

tersebut

mempunyai

kelebihan

dan

kekurangan. Pengukuran biomassa bertujuan untuk mengetahui banyaknya plankton secara kuantitatif tanpa mengidentifikasi. Ini merupakan cara yang praktis dan sederhana namun kurang teliti karena sering terbawa materi lain di luar plankton. Pengukuran volume plankton kurang memberikan informasi yang tepat, oleh karena rongga antara plankton sering ikut terukur. Estimasi kelimpahan plankton dengan cara menghitung

jumlah

plankter

per

satuan

volume

merupakan informasi yang lebih teliti, karena dapat memberikan gambaran yang lebih pasti mengenai kelimpahan plankton di suatu tempat. Kelimpahan plankton

dapat

digunakan

untuk

mengetahui

penyebaran atau distribusi plankton dalam suatu area. Para

peneliti

sering

menganalisa

kelimpahan

plankton berdasarkan jumlah sel plankton per liter air.


20

Pada metode ini tidak diketahui kelimpahan jenisnya atau spesies plankton yang dominan pada perairan tersebut. Dengan demikian metode ini dalam banyak hal belum memberikan informasi tentang plankton secara menyeluruh. Namun secara kuantitatif metode ini cukup baik. Setelah plankton

mendapatkan disetiap

data

bidang

dari

perhitungan

pandang

dan

mengidentifikasinya maka bisa dihitung kelimpahan planktonnya.

Kelimpahan

plankton

(sel/liter

atau

individu/liter) dihitung dengan persamaan modifikasi lackey drop :

keterangan :

ܰ=

ܶ× ܸ ×݊ ‫ܹ ×ܲ ×ݒ ×ܮ‬

T : Luas cover glass (mm2)

V : Volume konsentrat plankton dalam botol tampung L : Luas lapang pandang dalam mikroskop (mm2) v : Volume konsentrat plankton di bawah cover glass P : Jumlah lapang pandang W : Volume air sampel yang disaring N : Kelimpahan plankton (sel/l atau ind/l) n : jumlah plankton yang dalam bidang pandang


21

Penggunaan Haemocytometer Dasar Teori Pertambahan digunakan

sebagai

dan salah

kepadatan satu

fitoplankton

parameter

untuk

mengetahui pertumbuhan fitoplankton tersebut, selain itu juga digunakan untuk menghitung kepadatan bibit, kepadatan pada saat awal kultur, dan kepadatan pada saat akan dipanen. Kepadatan fitoplankton dapat dihitung

menggunakan

haemocytometer

atau

sedwichrafter (untuk yang berfilamen). Alat dan Bahan Alat : Haemocytometer, pipet tetes, cover glass, mikroskop, hand counter, tissue. Bahan : Lugol/formalin, aquadest, fitoplankton. -

Cara penggunaan Haemocytometer 1. Siapkan Haemocytometer yang akan digunakan 2. Bersihkan permukaan Haemocytometer dan cover glass dengan menggunakan tissue kering 3. Tutup Haemocytometer pada bagian tengah dengan menggunakan cover glass 4. Ambil

fitoplankton

kepadatannya

yang

dengan

akan

dihitung

menggunakan

pipet

tetes


22

5. Apabila

algae

bergerak

aktif,

maka

ditambahkan lugol/formalin 6. Tuangkan ke dalam Haemocytometer secara hati-hati (jangan sampai berlebihan) dan jangan sampai ada gelembung udara

7. Letakkkan dan amati di bawah mikroskop dengan perbesaran 100x 8. Bagi bidang pandang menjadi 4 bagian


23

9. Hitung jumlah fitoplankton dilakukan hanya pada fitoplankton yang berada pada bidang pandang 10. Hitung jumlah total sel

fitoplankton pada

keempat bidang pandang kemudian dirata-rata dan dihitung sebagian (n)


24

11. Total kepadatan fitoplankton adalah : n x 104 sel/ml Indeks

Shannon-Wiener

digunakan

untuk

menghitung Indeks Keanekaragaman (diversity index) jenis, indeks keseragaman, dan indeks dominasi dihitung menurut Odum (1998) dengan rumus sebagai berikut : 1.

Indeks Keanekaragaman Shannon-Wiener : ‫ݏ‬

݊݅ ݊݅ ‫ ܪ‬ᇱ = − ෍ ൬ ൰ln ൬ ൰ ܰ ܰ ݅= 1

Kisaran total Indeks Keanekaragaman dapat diklasifikasikan sebagai berikut (modifikasi Wilhm dan Dorris (1968) dalam Mason (1981) : ‫ ܪ‬ᇱ < 2,3026 : keanekaragaman kecil dan kestabilan komunitas rendah

2,3026 < ‫ ܪ‬ᇱ > 6,6078 : keanekaragaman sedang dan kestabilan komunitas sedang

ᇱ

‫ > ܪ‬6,9078 : keanekaragaman tinggi dan kestabilan komunitas tinggi


25



Indeks Keragaman Arinardi (1996) yaitu menggunakan rumus Indeks

Diversity berdasarkan rumus Shannon & Weaver (1963). ‫ ܪ‬ᇱ = −∑ܲ݅ln ܲ݅ ܲ݅=

Dimana : ‫ ܪ‬ᇱ = Indeks Diversitas

݊݅ ܰ

ܲ݅ = Proporsi spesies ke ݅terhadap jumlah total ݊݅ = Jumlah sel/ ekor dari taksa biota ݅

ܰ = Jumlah sel/ekor dari taks biota di dalam sampel 2. 

Indeks Keseragaman : ‫ ܪ = ܧ‬ᇱ/‫ܪ‬௠ ௔௫

Menurut Mackentum (1969), untuk pertumbuhan optimal fitoplankton memerlukan kandungan nitrat pada kisaran 0,9-3,5 mg/l dan ortofosfat adalah 0,09-1,80 mg/l. lebih lanjut dijelaskan Bruno et al., (1979 dalam Sumardianto, 1995) bahwa kandungan ortofosfat fitoplankton

yang

optimal

adalah

bagi

0,27-5,51

pertumbuhan mg/l,

jika

kandungannya kurang dari 0,02 mg/l maka akan menjadi factor pembatas.


26



Menurut Raymont (1980) fosfat merupakan salah satu unsure penting dalam pertumbuhan dan metabolisame tubuh Diatom.



Dikemukakan oleh Effendi (2003) bahwa kisaran suhu yang optimum untuk pertumbuhan fitoplankton di perairan adalah 200-300 C.



pH dibutuhkan untuk kebutuhan fitoplankton di perairan yaitu 6,5-8,0 (Pescod, 1973).



Menurut Sachlan (1972), fitoplankton yang hidup pada kisaran salinitas diatas 20‰ sebagian besar merupakan plankton dari kelompok Bacllariophyta.

3.

Indeks Dominasi ‫ = ܦ‬෍ [݊݅/ܰ ]ଶ ݅= 1

Dengan criteria (Odum, 1971) sebagai berikut : *D mendekati 0 tidak ada jenis yang mendominasi dan D mendekati 1 terdapat jenis yang mendominasi. dengan : ‫ܪ‬ᇱ

= Indeks keanekaragaman Shannon-Wiener

‫ܦ‬

= Indeks Dominasi Simpson

ܰ

= Jumlah total individu seluruh genera

‫ܧ‬

= Indeks Keseragaman

݊݅

= Jumlah individu genus ke-݅


27

‫ܪ‬௠ ௔௫ = Indeks keanekaragaman maksimum (= ln ܵ, dimanaܵ = Jumlah Jenis)



Indeks Dominasi

Indeks Dominasi (F) (Simpson, 1949) ‫=ܦ‬

Dimana :

݊݅2 × 100% ܰ2

‫ܦ‬

= Indeks Dominasi

ܰ

= Jumlah total individu / sel

ܰ݅ = Jumlah individu jenis ke 1/sel Eutrofikasi Didefinisikan sebagai pengayaan (enrichment) air dengan nutrient/unsure hara berupa bahan anorganik yang dibutuhkan oleh tumbuhan dan mengakibatkan terjadinya peningkatan produktivitas primer perairan. Nutrein yang dimaksud adalah nitrogen dan fosfor. Pada sebagian dasar danau, fosfor menjadi faktor pembatas karena keberadaannya yang relative sedikit dibandingkan sengan banyaknya organism akuatik yang memerlukannya. mengakibatkan

Peningkatan peningkatan

kadar

fosfor

produktivitas

akan

perairan.

Pada perairan laut, biasanya yang merupakan faktor pembatas pertumbuhan adalah nitrogen. Pada perairan


28

yang miskin nitrogen tetapi masih tersedia fosfor, beberapa jenis algae Cyanobacteria (Blue Green Algae atau Cyanophyta) masih dapat tumbuh karena mampu mengikat nitrogen bebas (Effendi, 2003).


29

Laporan Sementara Praktikum Laboratorium D1 Bp

:

D2 Gambar

:

LBP: Jumlah


Klasifikasi

30

Bp

Gambar

Jumlah


Klasifikasi

31

LAPORAN SEMENTARA PRAKTIKUM LAPANG Jenis Kolam

:

Deskripsi Lokasi Pengamatan : ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… Deskripsi Lingkungan Sekitar Lokasi Pengamatan : ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… ……………………………………………………………… …


32

Denah Lokasi Pengamatan :

Jam

Warna Kolam

Suhu

Kecerahan

pH


DO

CO2

33

Perhitungan :


34

KARTU KENDALI

Nama

: …………………………………………

Nim / Kelas

: …………………………………………

Asisten

: …………………………………………

No.

Materi

1

Laporan sementara praktikum lapang

2

Tanggal

Ttd Asisten

Laporan sementara praktikum laboratorium Laporan praktikum

3

FOTO

Mengetahui, Koordinator asisten

3X4

Agaputra Awali 125080100111087


35

Panduan praktikum planktonologi I. PENDAHULUAN

Recommend Documents