DAFTAR PUSTAKA Abidin AZ. 1986. The reproductive biology of a tropical cyprinid Hampala macrolepidota from Negara Zoo Lake, Kuala Lumpur, Malaysia. Journal of Fish Biology 29:381-391 Agostinho AA, Thomaz SM, Minte-Vera CV, and Winemiller KO. 2000. Biodiversity in the high Parana River floodplain. pp: 89-118. in: Gopal B., Junk WJ, and Davis JA (Eds.). Biodiversity in wetlands: assessment, function and conservation, volume 1. Backhuys Publishers, Leiden, The Netherlands Ali AB. 1993. Aspects of the fecundity of the feral catfish, Clarias macrocephalus (Gunther), population obtained from the rice fields used for rice-fish farming, in Malaysia. Hydrobiologia 254: 81-89 Anibeze CIP. 2000. Length-Weight Relationship and relative condition of Heterobranchus longifilis (Valenciennes) from Idodo River, Nigeria. Naga, The ICLARM Quarterly 23 (2):34-35 Anonim. 2005. Statistik perikanan tangkap Provinsi Riau 2004. Dinas Perikanan dan Kelautan Provinsi Riau. Asturiano JF, Sobera LA, Ramos J, Kime DE, Carriloanuy S. 2002. Groupsynchronous ovarian development, ovulation, spermiation in the European sea bass (Dicentrarchus labrax L.) could be regulated by shifts in gonadal steroidogenesis. Sci.Mar., 63 (3): 273-282 Boercherding J, Bauerfeld M, Hintzen D, and Neumann D. 2002. Lateral migrations of fishes between floodplain lakes and their drainage channels at the Lower Rhine: diel and seasonal aspects. Journal of Fish Biology 61:1154-1170 Boyd CE. 1990. Water quality in ponds for aquaculture. Alabama Agricultural Experiment Station. Auburn University, Alabama. USA Bye VJ. 1984. The role of enviromental factors in timing of reproductive cycles. pp:187-204. in: Poots GW, and Wootton RJ (Eds.). Fish reproduction: strategics and tactics. Academic Press, London Casatti L, Mendes HF, and Ferreira KM. 2003. Aquatic macrophytes as feeding site for small fishes in the Rosana Reservoir, Paranapanema River, Southeastern Brazil. Braz. J. Biol. 63 (2): 213-222 Coates D. 1991. Biology of fork-tailed catfishes from the Sepik River, Papua New Guinea. Environmental Biology of Fishes 31: 55-74
42
Copp GH. 1989. The habitat diversity and fish reproductive function of floodplain ecosystems. Enviromental Biology of Fishes 26:1-27 de Carvalho P, Bini LM, Thomaz SM, de Oliveira LG, Robertson B, Tavechio WLG, and Darwisch AJ. 2001. Comparative limnology of South American floodplain lakes and lagoons. Acta Scientiarum Maringa 23 (2): 265-273 de Graaf G. 2003. The flood pulse and growth of floodplain fish in Bangladesh. Fisheries Management and Ecology 10:241–247 de Graaf M, Machiels M, Wudneh T, and Sibbing FA. 2003. Length at maturity and gillnet selectivity of Lake Tana’s Barbus species (Ethiopia): Implications for management and conservation. Aquatic Ecosystem Health & Management 6(3):325–336 Duarte S, and Araújo FG. 2002. Fecundity of the Hypostomus affinis (Siluriformes, Loricariidae) in the Lajes Reservoir, Rio de Janeiro, Brazil. Revista De Biología Tropical 50 (1): 193-197 Effendie MI. 1997. Biologi perikanan. Yayasan Pustaka Nusatama, Yogjakarta Ekanem SB. 2000. Some reproductive aspects of Chrysichthys nigrodigitatus (Lacépède) from Cross River, Nigeria. Naga, The ICLARM Quarterly 23 (2):24-28 Elvyra R. 2004. Beberapa aspek ekologi ikan selais Cryptopterus limpok (Blkr.) di Sungai Kampar Kiri Riau. Tesis. Program pascasarjana Universitas Andalas Padang Encina L, and Granado-Lorencio C. 1997. Seasonal changes in condition, nutrition, gonad maturation and energy content in barbel, Barbus sclateri, inhabiting a fluctuating river. Environmental Biology of Fishes 50: 75–84 Ezenwaji HMG. 1992. The reproductive biology of four African cafishes (Osteichthyes: Clariidae) in Anambra River, Nigeria. Hydrobiologia 242:155-164 Ezenwaji HMG and Inyang NM. 1998. Observations on the biology of Clarias agboyiensis Syndenham,1980 (Osteichthyes: Clariidae) in the Anambra floodriver system, Nigeria. Fisheries Research 36:47–60 Ezenwaji HMG. 2002. The biology of Clarias ebriensis Pellegrin, 1920 (Osteichthyes: Clariidae) in an African rainforest river basin. Fisheries Research 54: 235-252 Gehrke PC. 1990. Spasial and temporal dispersion pattern of golden perch, Macquaria ambigua, larvae in artificial floodplain enviroment. Journal of Fish Biology 37: 225-236
43
Gomes ID, and Araújo, FG. 2004. Influences of the reproductive cycle on condition of marine catfishes (Siluriformes, Ariidae) in a coastal area at southeastern Brazil. Environmental Biology of Fishes 71: 341–351 Gunarso W. 1989. Bahan pengajaran mikroteknik. Departemen Pendidikan dan Kebudayaan, Direktorat Jenderal Pendidikan Tinggi, Pusat Antar Universitas Ilmu Hayat, Institut Pertanian Bogor. Bogor Hartoto DI, Sarnita AS, Sjafei DS, Satya A, Syawal Y, Sulastri, Kamal MM, dan Siddik Y. 1998. Kriteria evaluasi suaka perikanan perairan darat. Pusat Penelitian dan Pengembangan Limnologi LIPI. Cibinong Hartoto DI. 2000. Relationship of water level to water quality in an oxbow lake of Central Kalimantan. pp: 375-386. in: Proceedings of International Symposium on Tropical Peatlands. Bogor, 22-23 November 1999. Hokkaido University & Indonesian Institute of Sciences Harvey BJ, and Hoar WS. 1979. The theory and practice of induced breeding in fish. IDRC, Ottawa, Canada Hirata T, Kaneko T, Ono T, Nakazato T, Furukawa N, Hasegawa S, Wakabayashi S, Shigekawa M, Chang Min-Hwang, Romero MF, and Hirose S. 2003. Mechanism of acid adaptation of fish living in a pH 3.5 lake. Am. J. Physiol. Integr. Comp. Physiol. 284:1199-1212 Hoeinghaus DJ, Layman CA, Arrington DA, and Winemiller KO. 2003. Spatiotemporal variation in fish assemblage structure in tropical floodplain creeks. Enviromental Biology of Fishes 67: 379-387 Hoggarth DD, Cowan J, Halls AS, Thomas MA, McGregor JA, Garaway CA, Payne AL, Welcomme RL. 1996. Management guidelines for Asian floodplain river fisheries. Part 2: Summary of DFID research. FAO Fisheries Technical Paper 384/2. Food and Agriculture Organization of The United Nations. Rome Ikomi RB. 1996. Studies on the growth pattern, feeding habits and reproductive characteristics of the mormyrid Brienomyrus longianalis (Boulenger, 1901) in the upper Warri River, Nigeria. Fisheries Research 26:187-198 Ikomi RB, and Odum O. 1998. Studies on aspects of the ecology of the catfish Chrysichthys auratus Geoffrey St. Hilaire (Osteichthyes: Bagridae) in the River Benin (Niger Delta, Nigeria). Fisheries Research 35:209–218 Jepsen DB. 1997. Fish species diversity in sand bank habitats of a neotropical river. Enviromental Biology of Fishes 49: 449–460
44
Junk WJ, Bayley PB, and Sparks RE. 1989. The flood-pulse in river-floodplain systems. in Dodge DP (Eds.) Proceedings of the International Large River Symposium. Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. 106:110–127 Jurajda P, Ondrackova M, and Reichard M. 2004. Managed flooding as a tool for supporting natural fish reproduction in man-made lentic water bodies. Fisheries Management and Ecology 11: 237-242 Komatsu R, Gumiri S, Hartoto DI, and Iwakuma. 2000. Diel seasonal feeding activities of fishes in an oxbow lake of Central Kalimantan, Indonesia. pp: 455-470 in: Proceedings of International Symposium on Tropical Peatlands. Bogor, 22-23 November 1999. Hokkaido University & Indonesian Institute of Sciences Koeshendrajana S, and Hoggarth DD. 1998. Harvest Reserves in Indonesian River Fisheries. Fifth Asian Fisheries Forum 5th - International Conference on Fisheries and Food Security Beyond the Year 2000. 11-14 November 1998, Chiang May, Thailand Kottelat M, Whitten AJ, Kartikasari SN, and Wirjoatmodjo S. 1993. Freshwater fishes of western Indonesia and Sulawesi. Periplus Editions Limited. Jakarta Lagler KF, Bardach JE, Miller RH, and Passino RM. 1977. Ichthyology. John Wiley & Sons. Inc. Toronto, Canada Lalèyè P, Chikou A, Gnohossou P, Vandewalle P, Philippart JC, and Teugels G. 2006. Studies on the biology of two species of catfish Synodontis schall and Synodontis nigrita (Ostariophysi: Mochokidae) from the Ouémé River, Bénin. Belgium Journal of Zoology 136 (2): 193-201 Li RY, and Gelwick FP. 2005. The relationship of environmental factors to spatial and temporal variation of fish assemblages in a floodplain river in Texas, USA. Ecology of Freshwater Fish 14: 319–330 Liang Shih-Hsiung, Wu Hsiao-Ping, and Shieh Bao-Sen. 2005. Size structure, reproductive phenology, and sex ratio of an exotic armored catfish (Liposarcus multiradiatus) in the Kaoping River of Southern Taiwan. Zoological Studies 44 (2): 252-259 Lim P, Lek S, Touch ST, Mao Sam-Onn, and Chhouk B. 1999. Diversity and spatial distribution of freshwater fish in Great Lake and Tonle Sap River (Cambodia, Southeast Asia). Aquatic Living Resources 12 (6): 379-386 Lizama M de los AP, and Ambrósio AM. 2002. Condition factor in nine species of fish of the Characidae family in the upper Paraná River floodplain, Brazil. Braz. J. Biol., 62 (1): 113-124
45
Lopes C de A, Benedito-Cecilio E, and Agostinho AA. 2000. The reproductive strategy of Leporinus friderici (Characiformes, Anostomidae) in the Paraná river basin: the effect of reservoirs. Rev. Braz. Biol., 60(2):255-266 Lowe-Mc Connell RH. 1987. Ecological studies in tropical fish communities. Cambridge University Press. London Maehata M. 2007. Reproductive ecology of the far eastern catfish, Silurus asotus (Siluridae), with a comparison to its two congeners in Lake Biwa, Japan. Environmental Biology of Fishes 78:135–146 Marraro F, Bistoni MA, and Carranza M. 2005. Spawning season, ovarian development and fecundity of female Trichomycterus corduvense (Osteichthyes, Siluriformes). Hydrobiologia 534: 223–230 Marriott MS, Booth AJ, and Skelton PH. 1997. Reproductive and feeding biology of the Natal mountain catfish, Amphilius natalensis (Siluriformes: Amphiliidae). Environmental Biology of Fishes 49: 461–470 Mazzoni R, and Caramaschi EP. 1997. Observation on the reproductive biology of female Hypostomus luetkeni Lacépède1803. Ecology of Freshwater Fish 6:53-55 Mazzoni R, Caramachi EP, and Fenerich-Verani N. 2002. Reproductive biology of a Characidiinae (Osteichthyes, Characidae) from the Ubatiba River, Maricá – RJ. Braz. J. Biol., 62 (3): 487-494 Minto C, and Nolan CP. 2006. Fecundity and maturity of orange roughy (Hoplostethus atlanticus Collett 1889) on the Porcupine Bank, Northeast Atlantic. Environmental Biology of Fishes 77:39–50 Moodie GEE, and Power M. 1982. The reproductive biology of an armoured catfish, Loricaria uracantha, from Central America. Environmental Biology of Fishes 7 (2):143-148 Murua H, and Saborido-Rey F. 2003. Female reproductive strategies of marine fish species of The North Atlantic. J. Northw. Atl. Fish. Sci. 33:23-31 Neff BD, and Cargnelli LM. 2004. Relationships between condition factors, parasite load and paternity in bluegill sunfish, Lepomis macrochirus. Environmental Biology of Fishes 71: 297–304 Ng HH. 2003. A review of the Ompok hypophthalmus group of silurid catfishes with the description of a new species from South-East Asia. Journal of Fish Biology 62: 1296–1311 Nikolsky GV. 1963. The Ecology of fishes. Academic Press, New York
46
Paugy D. 2002. Reproductive strategies of fishes in a tropical temporary stream of the Upper Senegal basin: Baoulé River in Mali. Aquatic Living Resources 15: 25–35 Penczak T, Galicka W, Głowacki Ł, Koszalinski H, Kruk A, Zieba G, Kostrzewa J, and Marszał L. 2004. Fish assemblage changes relative to environmental factors and time in the Warta River, Poland, and its oxbow lakes. Journal of Fish Biology 64: 483–501 Pulungan CP, Ahmad M, Siregar YI, Ma’amoen A, dan Alawi, H. 1985. Morfometrik ikan selais Siluroidea dari Kecamatan Kampar Kiri Kabupaten Kampar, Riau. Pusat Penelitian Universitas Riau, Pekanbaru. Riau Rachmatika I, Munim A, and Dewantoro GW. 2006. Fish diversity in the Tesso Nilo area, Riau with notes on rare, Cryptic spesies. Treubia 34:59-74 Rao TA, and Sharma SV. 1984. Reproductive biology of Mystus vittatus (Bloch) (Bagridae: Siluriformes) from Guntur, Andhra Pradesh. Hydrobiologia 119: 21-26 Reynolds JD, Jennings S, and Dulvy NK. 2001. Life histories of fishes and population responses to exploitation. pp: 148-168. in: Reynolds JD, Mace GM, Redford KH, and Robinson JG (Eds.). Conservation of Exploited Species. Cambridge University Press, Cambridge Ribeiro F, Crain PK, and Moyle PB. 2004. Variation in condition factor and growth in young-of-year fishes in floodplain and riverine habitats of the Cosumnes River, California. Hydrobiologia 527: 77-84 Roberts T. 1989. The freshwater fishes of Western Borneo (Kalimantan Barat, Indonesia). California Academic of Science. San Francisco Rodriguez MA, and Lewis WM Jr. 1997. Structure of fish assemblages along environmental gradients in floodplain lakes of the Orinoco River. Ecological Monographs 67 (1): 109-128 Rutaisire JR and Booth AJ. 2005. Reproductive biology of ningu, Labeo victorianus (Pisces : Cyprinidae), in the Kagera and Sio Rivers, Uganda. Environmental Biology of Fishes 73:153–162 Sadovy YJ. 1996. Reproductive of reef fishery species. pp: 15-19. in: Polunin NVC, and Roberts CM (Eds.). Reef fisheries. Chapman and Hall, London Saint-Paul U, Zuanon J, Correa MAV, Garcia M, Fabre NN, Berger U, and Junk WJ. 2000. Fish communities in central Amazonian white and blackwater floodplains. Enviromental Biology of Fishes 57: 235–250.
47
Sarnita AS. 2001. Potensi dan tingkat pemanfaatan perikanan perairan umum sekitar lahan persawahan pasang surut Sumatera Selatan. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia 7 (2):1-11 Sinaga TP. 1995. Bioekologi komunitas ikan di Sungai Banjaran Kabupaten Banyumas, Jawa Tengah. Tesis. Program Pascasarjana Institut Pertanian Bogor. Bogor Simanjuntak CPH, Rahardjo MF, dan Sukimin S. 2006. Iktiofauna rawa banjiran Sungai Kampar Kiri. Jurnal Iktiologi Indonesia 6 (2): 73-80 Siregar M. 1999. Stimulasi perkembangan gonad bakal induk betina ikan jambal siam, Pangasius hypophthalmus F, dengan hormon HCG. Tesis. Program Pascasarjana IPB. Bogor Sommer TD, Harrell WC, Kurth R, Feyrer F, Zeug SC, and O’Leary G. 2004. Ecological pattern of early life stages of fishes in large river-floodplain of the San Francisco Estuary. Am. Fish. Soc. Symp. 39:111-123 Sukendi. 2001. Biologi reproduksi dan pengendaliannya dalam upaya pembenihan ikan baung (Mystus nemurus CV) di perairan Sungai Kampar, Riau. Disertasi. Program Pascasarjana IPB. Bogor Suzuki HI, Agostinho AA, and Winemiller KO. 2000. Relationship between oocyte morphology and reproductive strategy in loricariid catfishes of the Paraná River, Brazil. Journal of Fish Biology 57: 791–807 Steel RGD, dan Torrie JH. 1993. Prinsip dan prosedur statistik. Terjemahan Bambang Sumantri. PT. Gramedia. Jakarta Sverdrup-Jensen, S. 2002. Fisheries in the Lower Mekong Basin: Status and Perspectives. Mekong River Commission Technical Paper No. 6:1-84 Takashima F, and Hibiya T. 1995. An atlas of fish histology: normal and phatological features. Second Edition. Kodansha Ltd. Tokyo Tan THT, and Ng HH. 2000. The catfishes (Teleostei: Siluriformes) of Central Sumatera. Journal of Natural History 34:267-303 Torang M, and Buchar T. 2000. Concept for sustainable development of local fish resource in Central Kalimantan. pp: 471-480. in: Proceedings of International Symposium on Tropical Peatlands. Bogor, 22-23 November 1999. Hokkaido University & Indonesian Institute of Sciences Türkmen M, Erdoğan O, Yildirim A, and Akyurt I. 2002. Reproductive tactics, age and growth of Capoeta capoeta umbla Heckel 1843 from the Aşkale Region of the Karasu River, Turkey. Fisheries Research 54: 317-328
48
Tyler CR, and Sumpter JP. 1996. Oocyte growth and development in teleosts. Reviews in Fish Biology and Fisheries 6: 287-318 Utomo AD, dan Asyari. 1999. Peranan ekosistem hutan rawa bagi kelestarian sumberdaya perikanan di Sungai Kapuas, Kalimantan Barat. Jurnal Penelitian Perikanan Indonesia 5 (3):1-14 Utomo AD, Adjie S, dan Asyari. 1990. Aspek biologi ikan lais di perairan Lubuk Lampan Sumatera Selatan. Buletin Penelitian Perikanan Darat 2 (9):105111 Vicentini RN, and Araújo FG. 2003. Sex ratio and size structure of Micropogonias furnieri (Desmarest, 1823) (Perciformes, Sciaenidae) in Sepetiba Bay, Rio De Janeiro, Brazil. Braz. J. Biol., 63 (4): 559-566 Vila-Gispert A, and Moreno-Amich, R. 2000. Fecundity and spawning mode of three introduced fish species in Lake Banyoles (Catalunya, Spain) in comparison with other localities. Aquatic Sciences 61:154–166 Weber M, and de Beaufort LF. 1913. The fishes of Indo-Australian Archipelago. II. Malacopterygii, Myctophoidea, Ostariophysi: I. Siluroidea. E. J. Brill Ltd. Leiden Welcomme RL. 1979. Fisheries ecology of floodplain rivers. Longman Group Limited. London ------------------. 1985. River fisheries. FAO Fisheries Technical Paper 262. Rome Willis SC, Winemiller KO, and Lopez-Fernandez H. 2005. Habitat structural complexity and morphological diversity of fish assemblages in a Neotropical floodplain river. Oecologia 142: 284–295 Winemiller KO, and Jepsen DB. 1998. Effects of seasonality and fish movement on tropical food webs. J. Fish Biol. 53 (Supplement A):267–296 Wootton R. J. 1992. Fish Ecology. Blackie and Son Ltd. London Yani A. 1994. Pola reproduksi ikan bentulu, Barbichthys laevis C.V (Cyprinidae, Ostariophysi) di Sungai Indragiri, Riau. Tesis. Program Pascasarjana IPB. Bogor Yeldan H, and Avsar D. 2000. A Preliminary Study on the Reproduction of the Rabbitfish (Siganus rivulatus (Forsskal, 1775)) in the Northeastern Mediterranean. Turk. J. Zool. 24:173–182
Lampiran 1. Peta lokasi penelitian
Sumber: Peta Rupa Bumi Indonesia, BAKOSURTANAL, tahun 1986 49
50
Lampiran 2. Beberapa foto lokasi penelitian di rawa banjiran Sungai Kampar Kiri
Danau Pakis, Mentulik
Danau Anak Kampar, Mentulik
Danau Baru, Simalinyang
Alur sungai ke D.Baru, Simalinyang
Danau Belanti, Mentulik
Danau Puyuh, Mentulik
Rawa di sekitar D. Baru, Simalinyang
Rawa di sekitar D. Belanti, Mentulik
51
Lampiran 3. Beberapa foto alat tangkap yang dioperasikan selama penelitian di rawa banjiran Sungai Kampar Kiri
Jaring insang eksperimental
Sempirai (perangkap)
Rawai
52
Lampiran 4. Kriteria penilaian tingkat kematangan gonad ikan selais di rawa banjiran Sungai Kampar Kiri, Riau menurut Sukendi (2001) Tingkat Kematangan Gonad
Betina
Jantan
I (ikan muda)
Ovarium berbentuk sepasang benang kasar, terletak pada kiri dan kanan rongga perut, warna bening dan kecoklatan dengan permukaan licin
Testis berbentuk sepasang benang berwarna bening dan licin. Ukuran lebih kecil dari ovarium ikan betina pada TKG yang sama
II (tahap perkembangan)
Ovarium berukuran lebih besar dari TKG I, berwarna coklat muda, butiran telur masih belum dapat dilihat dengan mata telanjang
Testis berukuran lebih besar dari TKG I dan berwarna putih
III (dewasa)
Ovarium berukuran lebih besar dari TKG II dan hampir mengisi setengah rongga perut. Butiran telur mulai kelihatan dengan mata telanjang, beberapa butiran halus membuat ovarium berwarna kuning kehijauan
Testis berukuran lebih besar dari TKG II dan dapat mengisi hampir setengah rongga perut. Warna lebih putih dan lekukan terlihat jelas
IV (matang)
Ovarium telah mengisi dua pertiga rongga perut, usus terdesak keluar, warna menjadi kuning kecoklatan dan lebih gelap. Telur telah terlihat jelas dan lebih besar dari TKG III
Testis berukuran semakin besar, berwarna putih susu dan padat serta mengisi sebagian besar rongga perut. Permukaan berlekuk-lekuk dan kasar karena diisi oleh semen yang padat
V (salin)
Ovarium masih terlihat seperti TKG IV, namun bagian tertentu telah mengempis karena telur telah dikeluarkan pada saat pemijahan
Testis terlihat mengempis, pada bagian tertentu kosong karena semen telah dikeluarkan pada saat pemijahan, warna permukaan telah memerah
53
Lampiran 5. Pembuatan preparat histologi gonad dengan metoda mikroteknik (Gunarso, 1989) 1. Fiksasi Gonad diambil dan dicuci dengan NaCl fisiologis 0,65%, difiksasi ke dalam larutan bouin (15 cc asam pikrat jenuh + 5 cc formalin + 1 cc asam cuka pekat) selama 24 jam lalu dicuci dengan alkohol 70% sampai warna kuning pada gonad hilang. Gonad dapat disimpan dalam larutan alkohol 70% untuk beberapa waktu lamanya sebelum proses dehidrasi 2. Dehidrasi Organ direndam dalam larutan alkohol bertingkat (80%, 85%, 90% dan 95%) masing-masing selama 2 jam dan dipindahkan ke dalam alkohol 100% sebanyak 4 kali masng-masing selama 1 jam 3. Clearing I Organ direndam dalam alkohol 100% + xylol (1:1) selama 45 menit, kemudian ke dalam xylol I, II, dan II masing-masing selama 45 menit 4. Infiltring Organ direndam dalam xylol + parafin (1:1) selama 45 menit pada suhu 600C, kemudian direndam ke dalam parafin I, II, dan III masing-masing selama 45 menit 5. Embiding Organ direndam ke dalam balok parafin cair pada suhu 600C sampai parafin mengeras selama 24 jam 6. Pemotongan Spesimen dipotong setebal 5 mikron dengan menggunakan mikrotom, ditempelkan pada gelas obyek yang telah ditetesi ewid, direnggangkan di atas pemanas dan dikeringkan 24 jam pada suhu 450C 7. Deparafinasi Preparat direndam berturut-turut (xylol I, II, alkohol 100% I, 100% II, 95%, 90%, 85%, 80%, 70% , dan 50%) masing-masing 2 menit dan dicuci sampai berwarna putih.
54
Lanjutan Lampiran 5..
8. Pewarnaan Preparat direndam dalam larutan hematoksilin selama 2 menit, dicuci dengan air keran mengalir, direndam dalam larutan eosin selama 2 menit dan dicuci kembali dengan air keran mengalir 9. Dehidrasi Preparat direndam berturut-turut di dalam alkohol 70%, 80%, 85%, 90%, 95% I, 95% II, 100% I, dan 100% II masing-masing selama 1 menit. 10. Clearing II Preparat direndam ke dalam xylol I dan xylol II masing-masing selama 1 menit 11. Penutupan dengan kaca penutup Preparat diberi zat perekat canda balsem, ditutup dengan kaca penutup, dikeringkan selama 10 menit. Preparat diberi label sesuai dengan keperluan sehingga didapatkan preparat permanen histologi gonad (testis dan ovarium) yang dapat diamati di bawah mikroskop setiap saat.
55
Lampiran 6. Sebaran frekuensi jumlah ikan selais (O. hypohthalmus) berdasarkan selang ukuran panjang setiap bulan
80 80
70
Jun'06; n = 64
70
60
Okt'06; n = 72
60
50 50
40
40
30
30
20
20
10
10
0
0
70-120
120-170
170-220
220-270
270-320
70-120
120-170
170-220
220-270
170-220
220-270
270-320
80
70
80
Jul'06; n = 61 70
60
Nop'06; n = 68 60
50
50
Frekuensi (%)
40
30
20
Frekuensi (%)
10
0 70-120
120-170
170-220
220-270
270-320
40 30 20 10 0
70-120
120-170
270-320
80
70
80
Agust'06; n = 55 70
60
Des'06; n=37
60
50
50 40
40 30
30 20
20 10
10
0
0 70-120
120-170
170-220
220-270
270-320
70-120
120-170
170-220
220-270
80
Panjang total ( )
70
Sept'06; n = 117 60
50
40
30
20
10
0 70-120
120-170
170-220
220-270
Panjang total (mm)
270-320
270-320
56
Lampiran 7. Uji Khi Kuadrat terhadap jenis kelamin ikan selais, O. hypophthalmus 1. Nisbah kelamin total
(oi − ei ) 2 χ =∑ ei 2
Hipotesis H0: jantan: betina = 1:1 (nisbah kelamin seimbang) H0: jantan: betina ≠ 1:1 (nisbah kelamin tidak seimbang)
χ 2 hitung
= (224-237)2 + (250-237)2 237 237 = 1,43
χ 2 tabel
( V; 2-1) = 3,84
χ 2 hitung < χ 2 tabel , sehingga terima H0 (nisbah kelamin ikan seimbang)
2. Nisbah kelamin Ikan Selais Berdasarkan Bulan Bulan
Jumlah (ekor) Jantan Betina 32 32 25 36 22 33 57 60 41 31 33 35 14 23
Juni’07 Juli’07 Agustus’07 September’07 Oktober’07 Nopember’07 Desember’07 2 Keterangan : Nilai χ tabel = 3,841 2 2 (*) Nilai χ hitung < χtabel ; tidak nyata (nisbah kelamin seimbang) 2 2 (¥) Nilai χ hitung > χtabel ; nyata (nisbah kelamin tidak seimbang)
χ2
hitung
*
0 1,984* 2,200* 0,077* 1,389* 0,059* 2,189*
57
Lanjutan Lampiran 7 3. Nisbah kelamin Ikan yang Matang Gonad (TKG IV) setiap Bulan
Bulan
Jumlah (ekor) Jantan Betina 9 10 4 16 9 27 14 34 14 30 10 28 2 8
Juni’07 Juli’07 Agustus’07 September’07 Oktober’07 Nopember’07 Desember’07 2 Keterangan : Nilai χ tabel = 3,841 2 2 (*) Nilai χ hitung < χ tabel ; tidak nyata (nisbah kelamin seimbang) 2 (¥) Nilai χ hitung > χ 2tabel ; nyata (nisbah kelamin tidak seimbang)
χ 2hitung 0,053* 7,200¥ 9,000¥ 8,333¥ 5,818¥ 8,526¥ 3,600*
58
Lampiran 8. Pertelaan tingkat kematangan gonad ikan selais (O. hypophthalmus) (a) Morfologi dan histologi ovarium ikan selais pada setiap tingkat kematangan TKG I
II
III
IV
V
Morfologi Awal Pertumbuhan Ovarium berwarna putih kekuningan dan permukaan licin. Ukuran ovarium relatif kecil dan berbentuk oval dan ganda. Butir telur belum terlihat oleh mata telanjang. Ovarium berada di bagian posterior dekat anus
Berkembang Ukuran ovarium lebih besar dan berwarna kekuningan. Ovarium berbentuk oval. Di bagian anterior ovarium berbentuk lekukan pendek. Butir telur butiran telur masih belum dapat dilihat dengan mata telanjang. Diameter telur berkisar antara 0,25-0,75 mm. Ovarium menempati seperlima dari rongga tubuh Dewasa Ovarium berwarna kuning terang. Butir telur mulai terlihat oleh mata telanjang dengan diameter berukuran berkisar antara 0,375-1,20 mm dan hampir mengisi sepertiga dari rongga perut
Matang Ovarium bertambah besar, mengisi dua pertiga rongga perut dan mendesak usus ke bagian depan. Warna menjadi kuning kecoklatan dan lebih gelap. Butir telur telah terlihat karena selaput gonad transparan dengan diameter berkisar antara 0,30-1,225 mm. Bentuk ovarium bulat oval dengan lekukan yang jelas di bagian anterior dan tengah, menandakan bahwa pasangan organ menyatu Salin Warna gonad masih sama dengan TKG IV. Ovarium bagian posterior telah mengempis karena telur telah dikeluarkan pada saat pemijahan. Ovarium berisi butir telur sisa dan terdapat cairan/plasma warna merah.
Histologi Ovarium didominasi oleh oogonium. Beberapa oogonium mulai berkembang menjadi oosit primer. Inti sel berbentuk bulat, berada di tengah dan dikelilingi oleh sitoplasma. Ukuran inti sel (nukleus) dan jumlah anak inti (nukleolus) selalu bertambah
Oogonium sebagian besar telah berkembang menjadi oosit primer.. Kantung kuning telur mulai terbentuk di lapisan perifer sitoplasma (dekat membran sel). Proses ini disebut sebagai tahap awal vitellogenesis
Jumlah oosit primer semakin bertambah dan letaknya mendekati lumen ovarium. Di beberapa bagian masih tampak oogonium. Sebagian oosit sekunder telah berkembang menjai ootid. Butir kuning telur (yolk egg) dan vacuola minyak menyebar mulai dari inti sel mengarah ke tepi
Ovarium didominasi oleh ootid dan ovum. Vitellogenesis telah selesai; inti bermigrasi ke tepi mendekati mikropil dan melebur ke dinding sel.
Terlihat dinding folikel telah pecah dan sel telur telah dikeluarkan. Telur-telur yang tidak dikeluarkan saat pemijahan mengalami atresia dan beberapa oogonium sudah mulai terlihat.
59
Lanjutan Lampiran 8... (b) Morfologi dan histologi testis ikan selais pada setiap tingkat kematangan TKG I
II
III
IV
V
Morfologi Awal Pertumbuhan Testis seperti buli-buli kecil yang halus dan berwarna putih susu bening, berada di ujung rongga tubuh bagian posterior dekat anus. Berkembang Ukuran testis lebih besar dan kelompok buli-buli yang kecil mengisi 1/5 dari rongga perut. Berwarna putih susu bening dengan permukaan licin.
Dewasa Testis yang terdiri atas kelompok buli-buli semakin membesar dan mengisi 1/4 dari rongga perut. Testis berwarna putih susu.
Matang Ukuran testis semakin membesar dan mengisi 1/3 dari rongga perut. Kelompok buli-buli semakin besar dan pejal. Berwarna putih susu pekat
Salin Buli-buli mengempis dan pada bagian tertentu kosong karena sperma telah dikeluarkan pada saat pemijahan. warna permukaan bulibuli putih bening
Histologi Spermatogonium melekat di membran sel. Sebagian spermatogonium telah berkembang menjadi spermatosit primer
Testis lebih berkembang dibandingkan TKG I. Jaringan ikat semakin sedikit dan kantung tubulus mulai diisi oleh spermatosit primer. Spermatosit berada agak jauh dari membran basal. Selisih ukuran spermatosit dan spermatogonium sangat kecil
Spermatosit primer berkurang karena sebagian besar telah berkembang menjadi spermatosit sekunder. Spermatid sudah mulai terlihat dan letaknya menyebar di dalam tubulus.
Spermatid sudah mulai memenuhi tubulus. Terjadi proses spermiogenesis (spermatid menjadi spermatozoa). Pada akhir spermiogenesis, spermatozoa dilepaskan ke dalam lumen tubulus
